JP2023103416A - 拡張型心筋症治療剤 - Google Patents

Abstract

【課題】本発明は、拡張型心筋症ＤＣＭの治療において優れた効果を奏し、かつ多くの患者に対して一定の効果が得られる拡張型心筋症疾患治療剤を提供することを目的とする。【解決手段】本発明は、間葉系幹細胞及び間葉系幹細胞由来の微小粒子からなる群より選択される少なくとも１種を含有する、拡張型心筋症治療剤である。間葉系幹細胞は、微小粒子を含有又は分泌する能力を有する細胞であること、上記微小粒子はその平均粒子径が１，０００ｎｍ以下であること、エクソソームであることが好ましい。【選択図】なし

Description

本発明は拡張型心筋症治療剤に関する。

拡張型心筋症（ＤＣＭ）は、特発性心筋症の中で、心筋収縮不全と左室内腔の拡張を特徴とする疾患群であり、多くの場合進行性である。また、拡張型心筋症は慢性心不全症状を特徴とし急性増悪を繰り返す予後不良の疾患である。さらに、致死性不整脈による突然死や動脈の血栓塞栓症を生ずることがある。拡張型心筋症は遺伝性と後天性の混合した疾患群であり、定義上は形態学的及び機能学的な分類に基づき、臨床上は、「左室拡大」と「左室収縮能障害」を来たす類似の疾患が多く存在する。そのため、拡張型心筋症を考える上では、他の種々の類似の特定心筋症を除外する必要があると言われている。

拡張型心筋症の病因は永らく不明とされてきたが、遺伝的素因とともにウイルス感染と自己免疫異常が関与することが明らかとなっており、様々な細胞性免疫異常が観察されている。拡張型心筋症患者の血清において制御性Ｔ細胞が減少し、代わりにヘルパーＴ細胞が増加していることや、心筋生検標本を用いた検討でＭＨＣクラスII分子が発現していることが報告されている。また、拡張型心筋症患者の血清には様々な抗心筋自己抗体が存在する。このような抗心筋自己抗体は、家族性拡張型心筋症患者に多く検出されることも明らかにされている（非特許文献１）。さらに、家族性拡張型心筋症患者の約２０％に何らかの遺伝子変異が検出され、その変異の多くは直接心収縮に関連するサルコメア蛋白をコードする遺伝子や心収縮力を伝達する役割を担うジストロフィン関連蛋白をコードする遺伝子の変異である。このような遺伝子変異は拡張型心筋症発症の直接の原因となるだけではなく、発症の遺伝的素地として働くこともあり、遺伝子変異を有する場合、ウイルス感染後に持続的な自己免疫機序が作動し、拡張型心筋症に移行することが推定されている。また、拡張型心筋症患者は予後不良のため、しばしば心臓移植の対象となるが、ドナーが不足している上に、移植した際の拒絶反応も問題となっている。そのため、拡張型心筋症の新規治療法の開発が望まれている。

ドキソルビシン（ｄｏｘｏｒｕｂｉｃｉｎ）、５－アザシチジン（５－ａｚａｃｙｔｉｄｉｎｅ）等の薬物によって心筋症を誘発した動物に対して、これを拡張型心筋症病態モデルとして間葉系幹細胞（ＭＳＣ）による治療の効果の検討が行われている（非特許文献２－３）。しかしながら、ドキソルビシン、５－アザシチジン等の薬物によって誘発された心筋症は薬剤誘発性心筋症と呼ばれ、拡張型心筋症と臨床的に類似した心筋症疾患群ではあるものの、拡張型心筋症ならびに関連する二次性心筋症の治療に関するガイドライン（循環器病の診断と治療に関するガイドライン２０１１）によれば、拡張型心筋症とは異なる分類として取扱われている。また、拡張型心筋症の遺伝的な成因として、心筋δ－サルコグリカン、アクチン、ミオシン等の細胞質に含まれるタンパク質の遺伝子異常が関与すると考えられているが、薬剤によって誘起される心筋症とは、その点で根本的に成因が異なる。従って、薬剤誘発性心筋症モデルで改善効果が見られたとしても、実際の拡張型心筋症に対して効果を奏するとはいい難い。

δサルコグリカンを欠損したＪ２Ｎハムスターが報告されている。このハムスターは、生後１６Ｗ程度で拡張型心筋症を発症し、心機能低下、心臓細胞肥大、線維化等の形態学的病変等がみられる。これらの形態学的病変等はヒト病態と類似していることから、ヒトの拡張型心筋症のモデルとして用いられている。また、ヒトの拡張型心筋症においてもδサルコグリカンの変異が認められており、Ｊ２Ｎハムスター及びヒトの拡張型心筋症において、ＡＮＴ－１の機能低下がみられることも知られている（非特許文献４～６）。

一方、間葉系幹細胞は、Ｆｒｉｅｄｅｎｓｔｅｉｎ（１９８２）によって初めて骨髄から単離された多分化能を有する前駆細胞である（非特許文献７）。この間葉系幹細胞は、骨髄、臍帯、脂肪等の様々な組織に存在することが明らかにされており、間葉系幹細胞移植は、様々な難治性疾患に対する新しい治療方法として、期待されている（特許文献１～４）。最近では、脂肪組織、胎盤、臍帯、卵膜等の胎児付属物の間質細胞に同等の機能を有する細胞が存在することが知られている。そのため、間葉系幹細胞を間質細胞（Ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ Ｓｔｒｏｍａｌ Ｃｅｌｌ）と称することもある。

特表２００２－５０６８３１号公報 特表２０００－５０８９１１号公報 特開２０１２－１５７２６３号公報 特表２０１２－５０８７３３号公報

友池仁暢ら、循環器病の診断と治療に関するガイドライン２０１１ Ｍｏｌ． Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｃｈｅｍ．，２０１４，３８７，ｐｐ．２７９－２８５ Ｍｅｄ． Ｓｃｉ． Ｍｏｎｉｔ． Ｂａｓｉｃ Ｒｅｓ．，２０１３．１４，ｐｐ．２０－３１ Ｃｉｒｃ． Ｊ．，２００５，６９，ｐｐ．１０７－１１３ Ｊ． Ｂｉｏｃｈｅｍ．，２００３，３４（２），ｐｐ．２６９－７６ ＪＣＩ．，２０００，１０６，ｐｐ．６５５－６６２ Ｐｉｔｔｅｎｇｅｒ Ｆ． Ｍ． ｅｔ ａｌ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ，１９９９．２８４，ｐｐ．１４３－１４７

本発明は上述のような事情に基づいてなされたものであり、拡張型心筋症の治療において優れた効果を奏し、かつ多くの患者に対して一定の効果が得られる拡張型心筋症治療剤を提供することを目的とする。

本発明者らは上記課題を解決すべく鋭意検討した結果、拡張型心筋症に対して、間葉系幹細胞又は間葉系幹細胞由来の微小粒子を投与することにより、心機能等を顕著に改善させることができることを見出した。本発明はこれらの知見に基づいて完成されたものである。すなわち上記課題を解決するためになされた発明は、以下の通りである。

［１］間葉系幹細胞及び間葉系幹細胞由来の微小粒子からなる群より選択される少なくとも１種を含有する、拡張型心筋症治療剤。
［２］上記間葉系幹細胞が、微小粒子を含有又は分泌する能力を有する、［１］に記載の拡張型心筋症治療剤。
［３］上記微小粒子の平均粒子径が１，０００ｎｍ以下である、［１］又は［２］に記載の拡張型心筋症治療剤。
［４］上記微小粒子が、エクソソーム（ｅｘｏｓｏｍｅ）である、［１］から［３］のいずれかに記載の拡張型心筋症治療剤。
［５］上記微小粒子が、ＩＬ－１０、ＨＧＦ、アポリポプロテインＡ－２（Ａｐｏｐｒｏｔｅｉｎ Ａ－２）、色素上皮由来因子（Ｐｉｇｍｅｎｔ ｅｐｉｔｈｅｌｉｕｍ－ｄｅｒｉｖｅｄ ｆａｃｔｏｒ（ＰＥＤＦ）、ＳＥＲＰＩＮＦ１）、及びハプトグロビン（Ｈａｐｔｏｇｌｏｂｉｎ）からなる群より選択される少なくとも１種の因子を含有する、［１］から［４］のいずれかに記載の拡張型心筋症治療剤。
［６］上記間葉系幹細胞が、被験体に対して同種異系である、［１］から［５］のいずれかに記載の拡張型心筋症治療剤。
［７］上記間葉系幹細胞が、脂肪由来、臍帯由来又は骨髄由来である、［１］から［６］のいずれかに記載の拡張型心筋症治療剤。
［８］上記拡張型心筋症が、特発性拡張型心筋症、家族性拡張型心筋症及び遺伝性拡張型心筋症からなる群より選択される拡張型心筋症である、［１］から［７］のいずれかに記載の拡張型心筋症治療剤。
［９］上記間葉系幹細胞が、凍結保存した細胞である、［１］から［８］のいずれかに記載の拡張型心筋症治療剤。
［１０］間葉系幹細胞及び間葉系幹細胞由来の微小粒子からなる群より選択される少なくとも１種を含有する、拡張型心筋症における線維化抑制剤。
［１１］間葉系幹細胞及び間葉系幹細胞由来の微小粒子からなる群より選択される少なくとも１種を含有する、拡張型心筋症における心肥大抑制剤。
［１２］［１］から［９］のいずれかに記載の拡張型心筋症治療剤、［１０］に記載の線維化抑制剤又は［１１］に記載の心肥大抑制剤、容器及びラベルを含む、拡張型心筋症治療用キット。
［１３］間葉系幹細胞及び間葉系幹細胞由来の微小粒子からなる群より選択される少なくとも１種を投与することを特徴とする、拡張型心筋症の治療方法。
［１４］間葉系幹細胞及び間葉系幹細胞由来の微小粒子からなる群より選択される少なくとも１種を投与することを特徴とする、拡張型心筋症における線維化抑制方法。
［１５］間葉系幹細胞及び間葉系幹細胞由来の微小粒子からなる群より選択される少なくとも１種を投与することを特徴とする、拡張型心筋症における心肥大抑制方法。

本発明の拡張型心筋症治療剤によると、拡張型心筋症の疾患に対して、間葉系幹細胞又は間葉系幹細胞由来の微小粒子を投与することにより、心臓等の疾患部位の機能、構造等を顕著に改善させることができる。上記間葉系幹細胞は同種異系の被験体に対しても拒絶反応を起こしにくいため、あらかじめ調製されたドナーの細胞を拡大培養して凍結保存したものを、本発明の拡張型心筋症治療剤における間葉系幹細胞として使用することができる。また、同様に、あらかじめ調製されたドナーの細胞を拡大培養して凍結保存した間葉系幹細胞から得られる間葉系幹細胞由来の微小粒子を、本発明の拡張型心筋症治療剤における間葉系幹細胞由来の微小粒子として使用することができる。そのため、自己の間葉系幹細胞を調製して用いる場合と比較して、商品化も容易であり、かつ安定した一定の効果を得られ易いという利点もある。

図１は、拡張型心筋症のモデル動物であるＪ２Ｎ－ｋハムスターに対する本発明の拡張型心筋症治療剤の治療効果を示す図である（心機能評価）。 図２は、拡張型心筋症のモデル動物であるＪ２Ｎ－ｋハムスターに対する本発明の拡張型心筋症治療剤の治療効果を示す図である（心組織中のＡＴＰ含有量）。 図３は、拡張型心筋症のモデル動物であるＪ２Ｎ－ｋハムスターに対する本発明の拡張型心筋症治療剤の治療効果を示す図である（心組織中ミトコンドリアのＭｔ．ＡＮＴ－１発現量）。 図４は、拡張型心筋症のモデル動物であるＪ２Ｎ－ｋハムスターに対する本発明の拡張型心筋症治療剤の治療効果を示す図である（心臓の直径）。 図５は、拡張型心筋症のモデル動物であるＪ２Ｎ－ｋハムスターに対する本発明の拡張型心筋症治療剤の治療効果（長期間）を示す図である（心機能評価）。 図６は、ヒト心筋細胞に対する本発明の拡張型心筋症治療剤の機能亢進効果を示す図である。

以下に、本発明の拡張型心筋症治療剤、線維化抑制剤、心肥大抑制剤、及び拡張型心筋症治療用キットについて詳細に説明する。

＜拡張型心筋症治療剤＞
本発明の拡張型心筋症治療剤は、間葉系幹細胞及び間葉系幹細胞由来の微小粒子からなる群より選択される少なくとも１種を含有する。

〈間葉系幹細胞〉
本発明において間葉系幹細胞とは、間葉系に属する細胞（骨細胞、心筋細胞、軟骨細胞、腱細胞、脂肪細胞など）への分化能を有し、当該能力を維持したまま増殖できる細胞を意味する。本発明において用いる間葉系幹細胞なる用語は、間質細胞と同じ細胞を意味し、両者を特に区別するものではない。間葉系幹細胞を含む組織としては、例えば、脂肪組織、臍帯、骨髄、臍帯血、子宮内膜、胎盤、真皮、骨格筋、骨膜、歯小嚢、歯根膜、歯髄、歯胚等が挙げられる。従って、例えば脂肪組織由来間葉系幹細胞とは、脂肪組織に含有される間葉系幹細胞を意味し、脂肪組織由来間質細胞と称してもよい。これらのうち、本発明の拡張型心筋症治療剤による内臓疾患改善等の作用効果の観点、及び入手容易性の観点等から、脂肪組織由来間葉系幹細胞、臍帯由来間葉系幹細胞、骨髄由来間葉系幹細胞、胎盤由来間葉系幹細胞、歯髄由来間葉系幹細胞が好ましく、脂肪組織由来間葉系幹細胞、臍帯由来間葉系幹細胞がより好ましい。

本発明における間葉系幹細胞は、被験体に対して同種同系又は同種異系であることが好ましい。間葉系幹細胞は同種異系の被験体に対しても拒絶反応を起こしにくいため、あらかじめ調製されたドナーの細胞を拡大培養して凍結保存したものを、本発明の拡張型心筋症治療剤における間葉系幹細胞として使用することができる。そのため、自己の間葉系幹細胞を調製して用いる場合と比較して、商品化も容易であり、かつ安定して一定の効果を得られ易いという観点から、本発明における間葉系幹細胞は、同種異系であることがより好ましい。

間葉系幹細胞は同種異系の被験体に対しても拒絶反応を起こしにくいため、あらかじめ調製されたドナーの細胞を拡大培養して凍結保存したものを、本発明の拡張型心筋症治療剤における間葉系幹細胞として使用することができる。また、同様に、あらかじめ調製されたドナーの細胞を拡大培養して凍結保存した間葉系幹細胞から得られる間葉系幹細胞由来の微小粒子を、本発明の拡張型心筋症治療剤における間葉系幹細胞由来の微小粒子として使用することができる。そのため、自己の間葉系幹細胞又は微小粒子を調製して用いる場合と比較して、商品化も容易であり、かつ安定して一定の効果を得られ易いという観点から、本発明における間葉系幹細胞は、同種異系であることがより好ましい。

また、本発明において、間葉系幹細胞とは、間葉系幹細胞を含む任意の細胞集団を意味する。当該細胞集団は、少なくとも２０％以上、好ましくは、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９３％、９６％、９７％、９８％又は９９％が間葉系幹細胞である。

本発明において脂肪組織とは、脂肪細胞、及び微小血管細胞等を含む間質細胞を含有する組織を意味し、例えば、哺乳動物の皮下脂肪を外科的切除又は吸引して得られる組織である。脂肪組織は、皮下脂肪より入手され得る。後述する脂肪組織由来間葉系幹細胞の投与対象と同種動物から入手されることが好ましく、ヒトへ投与することを考慮すると、より好ましくは、ヒトの皮下脂肪である。皮下脂肪の供給個体は、生存していても死亡していてもよいが、本発明において用いる脂肪組織は、好ましくは、生存個体から採取された組織である。個体から採取する場合、脂肪吸引は、例えば、ＰＡＬ（パワーアシスト）脂肪吸引、エルコーニアレーザー脂肪吸引、又は、ボディジェット脂肪吸引などが例示され、細胞の状態を維持するという観点から、超音波を用いないことが好ましい。

本発明において臍帯とは、胎児と胎盤を結ぶ白い管状の組織であり、臍帯静脈、臍帯動脈、膠様組織（ウォートンジェリー；Ｗｈａｒｔｏｎ’ｓ Ｊｅｌｌｙ）、臍帯基質自体等から構成され、間葉系幹細胞を多く含む。臍帯は、本発明の拡張型心筋症治療剤を使用する被験体（投与対象）と同種動物から入手されることが好ましく、本発明の拡張型心筋症治療剤をヒトへ投与することを考慮すると、より好ましくは、ヒトの臍帯である。

本発明において骨髄とは、骨の内腔を満たしている柔組織のことをいい、造血器官である。骨髄中には骨髄液が存在し、その中に存在する細胞を骨髄細胞と呼ぶ。骨髄細胞には、赤血球、顆粒球、巨核球、リンパ球、脂肪細胞等の他、間葉系幹細胞、造血幹細胞、血管内皮前駆細胞等が含まれている。骨髄細胞は、例えば、ヒト腸骨、長管骨、又はその他の骨から採取することができる。

本発明において、脂肪組織由来間葉系幹細胞、臍帯由来間葉系幹細胞、骨髄由来間葉系幹細胞といった各組織由来間葉系幹細胞とは、それぞれ脂肪組織由来間葉系幹細胞、臍帯由来間葉系幹細胞、骨髄由来間葉系幹細胞といった各組織由来間葉系幹細胞を含む任意の細胞集団を意味する。当該細胞集団は、少なくとも２０％以上、好ましくは、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９３％、９６％、９７％、９８％又は９９％が、脂肪組織由来間葉系幹細胞、臍帯由来間葉系幹細胞、骨髄由来間葉系幹細胞といった各組織由来間葉系幹細胞である。

本発明における間葉系幹細胞は、例えば、成長特徴（例えば、継代から老化までの集団倍加能力、倍加時間）、核型分析（例えば、正常な核型、母体系統又は新生児系統）、フローサイトメトリー（例えば、ＦＡＣＳ分析）による表面マーカー発現、免疫組織化学及び／又は免疫細胞化学（例えば、エピトープ検出）、遺伝子発現プロファイリング（例えば、遺伝子チップアレイ；逆転写ＰＣＲ、リアルタイムＰＣＲ、従来型ＰＣＲ等のポリメラーゼ連鎖反応）、ｍｉＲＮＡ発現プロファイリング、タンパク質アレイ、サイトカイン等のタンパク質分泌（例えば、血漿凝固解析、ＥＬＩＳＡ、サイトカインアレイ）、代謝産物（メタボローム解析）、本分野で知られている他の方法等によって、特徴付けられてもよい。

〈間葉系幹細胞の調製方法〉
当該間葉系幹細胞は、当業者に周知の方法により調製することができる。以下に、一つの例として、脂肪組織由来間葉系幹細胞の調製方法を説明する。脂肪組織由来間葉系幹細胞は、例えば米国特許第６，７７７，２３１号に記載の製造方法によって得られて良く、例えば、以下の工程（i）～（iii）を含む方法で製造することができる：
（i） 脂肪組織を酵素により消化して細胞懸濁物を得る工程；
（ii） 細胞を沈降させ、細胞を適切な培地に再懸濁する工程；ならびに
（iii） 細胞を固体表面で培養し、固体表面への結合を示さない細胞を除去する工程。

工程（i）において用いる脂肪組織は、洗浄されたものを用いることが好ましい。洗浄は、生理学的に適合する生理食塩水溶液（例えばリン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ））を用いて、激しく攪拌して沈降させることによって行い得る。これは、脂肪組織に含まれる夾雑物（デブリとも言い、例えば損傷組織、血液、赤血球など）を組織から除去するためである。したがって、洗浄及び沈降は一般に、上清からデブリが総体的に除去されるまで繰り返される。残存する細胞は、さまざまなサイズの塊として存在するので、細胞そのものの損傷を最小限に抑えながら解離させるため、洗浄後の細胞塊を、細胞間結合を弱めるか、又は破壊する酵素（例えば、コラゲナーゼ、ディスパーゼ又はトリプシンなど）で処理することが好ましい。このような酵素の量及び処理期間は、使用される条件に依存して変わるが、当技術分野で既知である。このような酵素処理に代えて、又は併用して、細胞塊を、機械的な攪拌、超音波エネルギー、熱エネルギーなどの他の処理法で分解することができるが、細胞の損傷を最小限に抑えるため、酵素処理のみで行うことが好ましい。酵素を用いた場合、細胞に対する有害な作用を最小限に抑えるために、適切な期間をおいた後に培地等を用いて酵素を失活させることが望ましい。

工程（i）により得られる細胞懸濁物は、凝集状の細胞のスラリー又は懸濁物、ならびに各種夾雑細胞、例えば赤血球、平滑筋細胞、内皮細胞、及び線維芽細胞を含む。従って、続いて凝集状態の細胞とこれらの夾雑細胞を分離、除去してもよいが、後述する工程（iii）での接着及び洗浄により、除去可能であることから、当該分離、除去は割愛してもよい。夾雑細胞を分離、除去する場合、細胞を上清と沈殿に強制的に分ける遠心分離によって達成しえる。得られた夾雑細胞を含む沈殿は、生理学的に適合する溶媒に懸濁させる。懸濁状の細胞には、赤血球を含む恐れがあるが、後述する個体表面への接着による選択により、赤血球は除外されるため、溶解する工程は必ずしも必要ではない。赤血球を選択的に溶解する方法として、例えば、塩化アンモニウムによる溶解による高張培地又は低張培地中でのインキュベーションなど、当技術分野で周知の方法を使用することができる。溶解後、例えば濾過、遠心沈降、又は密度分画によって溶解物を所望の細胞から分離してもよい。

工程（ii）において、懸濁状の細胞において、間葉系幹細胞の純度を高めるために、１回もしくは連続して複数回洗浄し、遠心分離し、培地に再懸濁してもよい。この他にも、細胞を、細胞表面マーカープロファイルを基に、又は細胞のサイズ及び顆粒性を基に分離してもよい。

再懸濁において用いる培地は、間葉系幹細胞を培養できる培地であれば、特に限定されないが、このような培地は、基礎培地に、血清を添加する、及び／又は、アルブミン、トランスフェリン、脂肪酸、インスリン、亜セレン酸ナトリウム、コレステロール、コラーゲン前駆体、微量元素、２－メルカプトエタノール、３’－チオールグリセロールなどの１つ以上の血清代替物を添加して作製してもよい。これらの培地は、必要に応じて、さらに脂質、アミノ酸、タンパク質、多糖、ビタミン、増殖因子、低分子化合物、抗生物質、抗酸化剤、ピルビン酸、緩衝剤、無機塩類などの物質を添加してもよい。基礎培地は、例えば、ＩＭＤＭ培地、Ｍｅｄｉｕｍ １９９培地、Ｅａｇｌｅ’ｓ Ｍｉｎｉｍｕｍ Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ Ｍｅｄｉｕｍ（ＥＭＥＭ）培地、αＭＥＭ培地、Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ ｍｏｄｉｆｉｅｄ Ｅａｇｌｅ’ｓ Ｍｅｄｉｕｍ（ＤＭＥＭ）培地、Ｈａｍ’ｓ Ｆ１２培地、ＲＰＭＩ １６４０培地、Ｆｉｓｃｈｅｒ’ｓ培地、ＭＣＤＢ２０１培地及びこれらの混合培地などが挙げられる。血清は、例えば、ヒト血清、ウシ胎児血清（ＦＢＳ）、ウシ血清、仔ウシ血清、ヤギ血清、ウマ血清、ブタ血清、ヒツジ血清、ウサギ血清、ラット血清などがあるがこれらに限定されない。血清を用いる場合、基礎培地に対して、５ｖ／ｖ％～１５ｖ／ｖ％、好ましくは、１０ｖ／ｖ％を添加してもよい。脂肪酸は、リノール酸、オレイン酸、リノレイン酸、アラキドン酸、ミリスチン酸、パルミトイル酸、パルミチン酸、及びステアリン酸等が例示されるが、これらに限定されない。脂質は、フォスファチジルセリン、フォスファチジルエタノールアミン、フォスファチジルコリン等が例示されるが、これらに限定されない。アミノ酸は、例えば、Ｌ－アラニン、Ｌ－アルギニン、Ｌ－アスパラギン酸、Ｌ－アスパラギン、Ｌ－システイン、Ｌ－シスチン、Ｌ－グルタミン酸、Ｌ－グルタミン、Ｌ－グリシンなどを含むがこれらに限定されない。タンパク質は、例えば、エコチン、還元型グルタチオン、フィブロネクチン及びβ２－ミクログロブリン等が例示されるが、これらに限定されない。多糖は、グリコサミノグリカンが例示され、グリコサミノグリカンのうち特に、ヒアルロン酸、ヘパラン硫酸等が例示されるが、これらに限定されない。増殖因子は、例えば、血小板由来増殖因子（ＰＤＧＦ）、塩基性線維芽細胞成長因子（ｂＦＧＦ）、トランスフォーミング増殖因子ベータ（ＴＧＦ－β）、肝細胞増殖因子（ＨＧＦ）、上皮成長因子（ＥＧＦ）、結合組織増殖因子（ＣＴＧＦ）、血管内皮細胞増殖因子（ＶＥＧＦ）等が例示されるが、これらに限定されない。本発明において得られる脂肪由来間葉系幹細胞を細胞移植に用いるという観点から、血清等の異種由来成分を含まない（ゼノフリー）培地を用いることが好ましい。このような培地は、例えば、ＰｒｏｍｏＣｅｌｌ社、Ｌｏｎｚａ社、Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｉｎｄｕｓｔｒｉｅｓ社、Ｖｅｒｉｔａｓ社、Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ社、Ｃｏｒｎｉｎｇ社及びＲｏｈｔｏ社などから間葉系幹細胞（間質細胞）用として予め調製された培地として提供されている。

続いて、工程（iii）では、工程（ii）で得られた細胞懸濁液中の細胞を分化させずに固体表面上で、上述の適切な細胞培地を使用して、適切な細胞密度及び培養条件で培養する。本発明において、「固体表面」とは、本発明における脂肪組織由来間葉系幹細胞の結合を可能とする任意の材料を意味する。特定の態様では、このような材料は、その表面への哺乳類細胞の結合を促すように処理されたプラスチック材料である。固体表面を有する培養容器の形状は特に限定されないが、シャーレやフラスコなどが好適に用いられる。非結合状態の細胞及び細胞の破片を除去するために、インキュベーション後に細胞を洗浄する。

本発明では、最終的に固体表面に結合した状態で留まる細胞を、脂肪組織由来間葉系幹細胞の細胞集団として選択することができる。

選択された細胞について、本発明における脂肪組織由来間葉系幹細胞であることを確認するために、表面抗原についてフローサイトメトリー等を用いて従来の方法で解析してもよい。さらに、各細胞系列に分化する能力について検査してもよく、このような分化は、従来の方法で行うことができる。

本発明における間葉系幹細胞は、上述の通り調製することができるが、次の特性を持つ細胞として定義してもよい；
（１）標準培地での培養条件で、プラスチックに接着性を示す、
（２）表面抗原ＣＤ４４、ＣＤ７３、ＣＤ９０が陽性であり、ＣＤ３１、ＣＤ４５、が陰性であり、及び
（３）培養条件にて骨細胞、脂肪細胞、軟骨細胞に分化可能。

〈間葉系幹細胞の凍結保存〉
本発明における間葉系幹細胞は、疾患治療効果を備えていれば、適宜、凍結保存及び融解を繰り返した細胞であってもよい。本発明において、凍結保存は、当業者に周知の凍結保存液へ間葉系幹細胞を懸濁し、冷却することによって行い得る。懸濁は、細胞をトリプシンなどの剥離剤によって剥離し、凍結保存容器に移し、適宜、処理した後、凍結保存液を加えることによって行い得る。

凍結保存液は、凍害防御剤として、ＤＭＳＯ（Ｄｉｍｅｔｈｙｌ ｓｕｌｆｏｘｉｄｅ）を含有していてもよいが、ＤＭＳＯは、細胞毒性に加えて、間葉系幹細胞を分化誘導する特性を有することから、ＤＭＳＯ含有量を減らすことが好ましい。ＤＭＳＯの代替物として、グリセロール、プロピレングリコール又は多糖類が例示される。ＤＭＳＯを用いる場合、５ｖ／ｖ％～２０ｖ／ｖ％、好ましくは５ｖ／ｖ％～１０ｖ／ｖ％、より好ましくは１０ｖ／ｖ％を含有する。この他にも、ＷＯ２００７／０５８３０８に記載の添加剤を含んでもよい。このような凍結保存液として、例えば、バイオベルデ社、日本ジェネティクス株式会社、リプロセル社、ゼノアック社、コスモ・バイオ社、コージンバイオ株式会社、サーモフィッシャーサイエンティフィック社などから提供されている凍結保存液を用いてもよい。

上述の懸濁した細胞を凍結保存する場合、－８０℃～－１００℃の間の温度（例えば、－８０℃）で保管することで良く、当該温度に達成しえる任意のフリーザーを用いて行い得る。特に限定されないが、急激な温度変化を回避するため、プログラムフリーザーを用いて、冷却速度を適宜制御してもよい。冷却速度は、凍結保存液の成分によって適宜選択しても良く、凍結保存液の製造者指示に従って行われ得る。

保存期間は、上記条件で凍結保存した細胞が融解した後、凍結前と同等の性質を保持している限り、特に上限は限定されないが、例えば、１週間以上、２週間以上、３週間以上、４週間以上、２か月以上、３か月以上、４か月以上、５か月以上、６か月以上、１年以上、又はそれ以上が挙げられる。より低い温度で保存することで細胞障害を抑制することができるため、液体窒素上の気相（約－１５０℃以下から－１８０℃以下）へ移して保存してもよい。液体窒素上の気相で保存する場合、当業者に周知の保存容器を用いて行うことができる。特に限定されないが、例えば、２週間以上保存する場合、液体窒素上の気相で保存することが好ましい。

融解した間葉系幹細胞は、次の凍結保存までに適宜、培養してもよい。間葉系幹細胞の培養は、上述した間葉系幹細胞を培養できる培地を用いて行われ、特に限定されないが、約３０～４０℃、好ましくは約３７℃の培養温度で、ＣＯ_２含有空気の雰囲気下で行われてもよい。ＣＯ_２濃度は、約２～５％、好ましくは約５％である。培養において、培養容器に対して適切なコンフルエンシー（例えば、培養容器に対して、５０％から８０％を細胞が占有することが挙げられる）に達した後に、細胞をトリプシンなどの剥離剤によって剥離し、別途用意した培養容器に適切な細胞密度で播種して培養を継続してもよい。細胞を播種する際において、典型的な細胞密度として、約１００細胞／ｃｍ^２～約１００，０００細胞／ｃｍ^２、約５００細胞／ｃｍ^２～約５０，０００細胞／ｃｍ^２、約１，０００～１０，０００細胞／ｃｍ^２、約２，０００～１０，０００細胞／ｃｍ^２などが例示される。特定の態様では、細胞密度は２，０００～１０，０００細胞／ｃｍ^２である。適切なコンフルエンシーに達するまでの期間が、３日間から７日間となるように調整することが好ましい。培養中、必要に応じて、適宜、培地を交換してもよい。

凍結保存した細胞の融解は、当業者に周知の方法によって行い得る。例えば、３７℃の恒温槽内又は湯浴中にて静置又は振とうすることによって行う方法が例示される。

〈間葉系幹細胞由来の微小粒子〉
本発明における間葉系幹細胞由来の微小粒子は、間葉系幹細胞から得られる微小粒子であり、間葉系幹細胞により産生される。本発明における間葉系幹細胞の微小粒子は、間葉系幹細胞中に含まれるものでもよく、間葉系幹細胞培養上清中に含まれるものでもよく、間葉系幹細胞中もしくは間葉系幹細胞培養上清から単離された微小粒子でもよい。すなわち、本発明における間葉系幹細胞由来の微小粒子は、いかなる形態であってもよく、微小粒子自体であることは勿論、微小粒子を含有又は分泌する能力を有する間葉系幹細胞の形態であってもよい。

微小粒子の単離方法としては、超遠心法、精密濾過法、抗体による捕捉、マイクロ流体システムの利用等が挙げられる。単離された微小粒子は、間葉系幹細胞等の細胞を含んでいてもよく、また、間葉系幹細胞培養培地を含んでいてもよい。

本発明における間葉系幹細胞由来の微小粒子は、間葉系幹細胞を上述の培地を用いて培養して得られる培養上清から回収することができる。培養上清を回収する場合には、例えば、間葉系幹細胞を培養容器中でサブコンフルエント又はコンフルエントの状態にし、新しい培地へと交換してから、更に１～５日間培養を行って、その培養上清を回収することができる。この培養上清を、本発明の拡張型心筋症治療剤として用いることもできるが、微小粒子を超遠心分離法、密度勾配遠心法、各種微小粒子分離キット等により分離して、それを本発明の拡張型心筋症治療剤の材料として用いることもできる。

本発明の拡張型心筋症治療剤は、上記微小粒子に加えて、上記微小粒子を包含する、又は分泌する能力を有する間葉系幹細胞自体を含んでいてもよい。なお、拡張型心筋症治療剤が上記微小粒子を含有する、又は分泌する能力を有する間葉系幹細胞を含む場合には、上記間葉系幹細胞を含むことで、同時に上記微小粒子を含むという要件を満たすこととなるとも解釈できる。

本発明における間葉系幹細胞由来の微小粒子は、典型的には間葉系幹細胞から放出される、電子顕微鏡で確認することができるサイズの小胞である。微小粒子のサイズとしては、平均粒子径が１ｎｍ以上１，０００ｎｍ以下であり、１０ｎｍ以上５００ｎｍ以下であることが好ましく、３０ｎｍ以上２００ｎｍ以下であることが更に好ましい。ここで、平均粒子径とは、動的光散乱法又は電子顕微鏡での測定による各粒子の直径の平均値である。上記微小粒子は、生体分子を囲む脂質二重層を有することができる。

また、上記微小粒子としては、例えば、膜粒子、膜小胞、微小胞、ナノ小胞、微小小胞体（ｍｉｃｒｏｖｅｓｉｃｌｅｓ、平均粒子径３０～１，０００ｎｍ）、エクソソーム様小胞、エクソソーム（ｅｘｏｓｏｍｅ、平均粒子径３０～２００ｎｍ）、エクトソーム様小胞、エクトソーム（ｅｃｔｏｓｏｍｅ）又はエキソベシクル等が挙げられ、好ましくはエクソソームである。異なる種類の間葉系幹細胞由来の微小粒子は、細胞内起源、スクロース中での微小粒子の密度、形状、沈降速度、脂質組成、タンパク質マーカー及び分泌の様式（即ち、シグナル（誘導性）後又は自発的（構成的））に基づいても区別される。微小粒子は、例えば、密度勾配遠心法では、１．０～１．５ｇ／ｍＬ、好ましくは１．１～１．３ｇ／ｍＬに分画される。さらに、微小粒子はその構成脂質としてフォスファチジルセリン、コレステロール、スフィンゴミエリン及びセラミドのいずれかを含有する。

本発明における間葉系幹細胞由来の微小粒子は、タンパク質、脂肪酸、ｍｉＲＮＡ等の核酸を含む。上記タンパク質、脂肪酸としては、例えば、ＩＬ－１０、ＨＧＦ（Ｈｅｐａｔｏｃｙｔｅ Ｇｒｏｗｔｈ Ｆａｃｔｏｒ）、アポリポプロテインＡ－２（Ａｐｏｐｒｏｔｅｉｎ Ａ－２）、色素上皮由来因子（Ｐｉｇｍｅｎｔ ｅｐｉｔｈｅｌｉｕｍ－ｄｅｒｉｖｅｄ ｆａｃｔｏｒ（ＰＥＤＦ）、ＳＥＲＰＩＮＦ１）、ハプトグロビン（Ｈａｐｔｏｇｌｏｂｉｎ）、ペラルゴン酸、ラウリン酸、ミリスチン酸、ペンタデカン酸、イソペンタデカン酸、パルミチン酸、イソパルミチン酸、マルガリン酸、Ｉｓｏｈｅｐｔａｄｅｃａｎｏｉｃ ａｃｉｄ、ステアリン酸、イソステアリン酸、オレイン酸、エライジン酸、リノール酸、ノナデシル酸、イソノナデシル酸、アラキジン酸、１１Ｚ－ｅｉｃｏｓｅｎｏｉｃ ａｃｉｄ、Ｄｉｈｏｍｏ－γ－ｌｉｎｏｌｅｎｉｃ ａｃｉｄ、アラキドン酸、エルカ酸、１３Ｚ，１６Ｚ－Ｄｏｃｏｓａｄｉｅｎｏｉｃ ａｃｉｄ、１３Ｚ，１６Ｚ，１９Ｚ－Ｄｏｃｏｓａｄｉｅｎｏｉｃ ａｃｉｄ、アドレン酸、Ｃｌｕｐａｎｏｄｏｎｉｃ ａｃｉｄ等、好ましくはＩＬ－１０、ＨＧＦ、アポリポプロテインＡ－２（Ａｐｏｐｒｏｔｅｉｎ Ａ－２）、色素上皮由来因子（Ｐｉｇｍｅｎｔ ｅｐｉｔｈｅｌｉｕｍ－ｄｅｒｉｖｅｄ ｆａｃｔｏｒ（ＰＥＤＦ）、ＳＥＲＰＩＮＦ１）、ハプトグロビン（Ｈａｐｔｏｇｌｏｂｉｎ）、ペラルゴン酸、ラウリン酸、ミリスチン酸、ペンタデカン酸、イソペンタデカン酸、パルミチン酸、イソパルミチン酸、マルガリン酸、Ｉｓｏｈｅｐｔａｄｅｃａｎｏｉｃ ａｃｉｄ、ステアリン酸、イソステアリン酸、オレイン酸、エライジン酸、リノール酸、アラキジン酸、１１Ｚ－ｅｉｃｏｓｅｎｏｉｃ ａｃｉｄ、アラキドン酸、エルカ酸、１３Ｚ，１６Ｚ－Ｄｏｃｏｓａｄｉｅｎｏｉｃ ａｃｉｄ、更に好ましくはＩＬ－１０、ＨＧＦ、アポリポプロテインＡ－２（Ａｐｏｐｒｏｔｅｉｎ Ａ－２）、色素上皮由来因子（Ｐｉｇｍｅｎｔ ｅｐｉｔｈｅｌｉｕｍ－ｄｅｒｉｖｅｄ ｆａｃｔｏｒ（ＰＥＤＦ）、ＳＥＲＰＩＮＦ１）、ハプトグロビン（Ｈａｐｔｏｇｌｏｂｉｎ）、ミリスチン酸、ペンタデカン酸、パルミチン酸、マルガリン酸、Ｉｓｏｈｅｐｔａｄｅｃａｎｏｉｃ ａｃｉｄ、ステアリン酸、オレイン酸、リノール酸、ノナデシル酸、エルカ酸、１３Ｚ，１６Ｚ－Ｄｏｃｏｓａｄｉｅｎｏｉｃ ａｃｉｄ、特に好ましくはＩＬ－１０、ＨＧＦ、パルミチン酸、マルガリン酸、ステアリン酸、オレイン酸、１３Ｚ，１６Ｚ－Ｄｏｃｏｓａｄｉｅｎｏｉｃ ａｃｉｄが挙げられ、本発明における間葉系幹細胞由来の微小粒子は、これらを含む微小粒子であることが好ましい。

〈間葉系幹細胞及び間葉系幹細胞由来の微小粒子の形態〉
本発明の間葉系幹細胞は、いずれの状態の細胞であってもよいが、例えば培養中の細胞を剥離して回収された細胞でもよいし、凍結保存液中に凍結された状態の細胞でもよい。拡大培養して得られる同ロットの細胞を小分けして凍結保存したものを使用すると、安定した作用効果が得られる点、取扱い性に優れる点等において好ましい。凍結保存状態の間葉系幹細胞は、使用直前に融解し、凍結保存液に懸濁したまま直接投与してもよいし、輸液もしくは培地に懸濁した後に、投与してもよい。また、遠心分離等の方法により凍結保存液を除去してから輸液もしくは培地に混合してもよい。

本発明の間葉系幹細胞由来の微小粒子は、いずれの状態の微小粒子であってもよいが、例えば培養中の細胞から単離された間葉系幹細胞由来の微小粒子でもよいし、凍結保存液中に凍結された状態の間葉系幹細胞由来の微小粒子でもよい。拡大培養して得られる同ロットの細胞から単離された間葉系幹細胞由来の微小粒子を小分けして凍結保存したものを使用すると、安定した作用効果が得られる点、取扱い性に優れる点等において好ましい。凍結保存状態の単離された間葉系幹細胞由来の微小粒子は、使用直前に融解し、凍結保存液に懸濁したまま直接投与してもよいし、輸液もしくは培地に懸濁した後に、投与してもよい。また、遠心分離等の方法により凍結保存液を除去してから輸液もしくは培地に混合してもよい。

ここで、本発明における「輸液」とは、ヒトの治療の際に用いられる溶液のことをいい、特に限定されないが、例えば、生理食塩水、日局生理食塩液、５％ブドウ糖液、日局ブドウ糖注射液、リンゲル液、日局リンゲル液、乳酸リンゲル液、酢酸リンゲル液、１号液（開始液）、２号液（脱水補給液）、３号液（維持液）、４号液（術後回復液）等が挙げられる。なお、上記の輸液もしくは培地等は、後述するその他の成分（薬学的に許容される担体や添加物）を含むように調製されてもよい。

本発明の拡張型心筋症治療剤は、本発明の効果を損なわない範囲であれば、その用途や形態に応じて、常法に従い、薬学的に許容される担体や添加物を含有させてもよい。このような担体や添加物としては、例えば、等張化剤、増粘剤、糖類、糖アルコール類、防腐剤（保存剤）、殺菌剤又は抗菌剤、ｐＨ調節剤、安定化剤、キレート剤、油性基剤、ゲル基剤、界面活性剤、懸濁化剤、結合剤、賦形剤、滑沢剤、崩壊剤、発泡剤、流動化剤、分散剤、乳化剤、緩衝剤、溶解補助剤、抗酸化剤、甘味剤、酸味剤、着色剤、呈味剤、香料又は清涼化剤等が挙げられるが、これらに限定されない。

本発明の拡張型心筋症治療剤は、目的に応じて種々の形態、例えば、固形剤、半固形剤、液剤等の様々な剤形で提供することができる。例えば、固形剤（錠剤、粉末、散剤、顆粒剤、カプセル剤等）、半固形剤［軟膏剤（硬軟膏剤、軟軟膏剤等）、クリーム剤等］、液剤［ローション剤、エキス剤、懸濁剤、乳剤、シロップ剤、注射剤（輸液剤、埋め込み注射剤、持続性注射、用時調製型の注射剤を含む）、透析用剤、エアゾール剤、軟カプセル剤、ドリンク剤等］、貼付剤、パップ剤等の形態で利用できる。また、本発明の拡張型心筋症治療剤は、油性又は水性のビヒクル中の溶液又は乳液等の形態でも利用できる。さらに、本発明の拡張型心筋症治療剤は噴霧により、患部に適用することもでき、本発明の拡張型心筋症治療剤は噴霧した後に患部でゲル化もしくはシート化される形態でも利用できる。本発明の拡張型心筋症治療剤は上記間葉系幹細胞をシート状または立体構造体とした後に、患部に適用することもできる。

本発明の拡張型心筋症治療剤は、生理食塩水、日局生理食塩液、５％ブドウ糖液、日局ブドウ糖注射液、リンゲル液、日局リンゲル液、乳酸リンゲル液、酢酸リンゲル液、重炭酸リンゲル液、１号液（開始液）、２号液（脱水補給液）、３号液（維持液）、４号液（術後回復液）等の輸液、又は、ＤＭＥＭ等の細胞培養培地を用いて、懸濁もしくは希釈して用いることができ、好ましくは生理食塩液、５％ブドウ糖液、１号液（開始液）で、より好ましくは５％ブドウ糖液、１号液（開始液）で懸濁もしくは希釈して用いることができる。

本発明の拡張型心筋症治療剤が液剤である場合、拡張型心筋症治療剤のｐＨは、医薬上、薬理学的に（製薬上）又は生理学的に許容される範囲内であれば特に限定されるものではないが、一例として、２．５～９．０、好ましくは３．０～８．５、より好ましくは３．５～８．０となる範囲が挙げられる。

本発明の拡張型心筋症治療剤が液剤である場合、拡張型心筋症治療剤の浸透圧については、生体に許容される範囲内であれば、特に制限されない。本発明の組成物の浸透圧比の一例として、好ましくは０．７～５．０、より好ましくは０．８～３．０、さらに好ましくは０．９～１．４となる範囲が挙げられる。浸透圧の調整は無機塩、多価アルコール、糖アルコール、糖類等を用いて、当該技術分野で既知の方法で行うことができる。浸透圧比は、第十五改正日本薬局方に基づき２８６ｍＯｓｍ（０．９ｗ／ｖ％塩化ナトリウム水溶液）の浸透圧に対する試料の浸透圧の比とし、浸透圧は日本薬局方記載の浸透圧測定法（氷点降下法）を参考にして測定する。なお、浸透圧比測定用標準液（０．９ｗ／ｖ％塩化ナトリウム水溶液）は、塩化ナトリウム（日本薬局方標準試薬）を５００～６５０℃で４０～５０分間乾燥した後、デシケーター（シリカゲル）中で放冷し、その０．９００ｇを正確に量り、精製水に溶かし正確に１００ｍＬとして調製するか、市販の浸透圧比測定用標準液（０．９ｗ／ｖ％塩化ナトリウム水溶液）を用いる。

本発明の拡張型心筋症治療剤は、間葉系幹細胞又は間葉系幹細胞由来の微小粒子と、間葉系幹細胞又は間葉系幹細胞由来の微小粒子を懸濁するための溶液とが別々の容器に封入されて保管され、使用時に両者を混合して用いる形態であってもよい。なお、保管の際、上記間葉系幹細胞又は間葉系幹細胞由来の微小粒子、及び間葉系幹細胞又は間葉系幹細胞由来の微小粒子を懸濁するための溶液は凍結状態であってもよいし、冷蔵状態であってもよい。

本発明の拡張型心筋症治療剤は、拡張型心筋症の治療に好適に用いることができ、中でも、遺伝性拡張型心筋症、家族性拡張型心筋症もしくは特発性拡張型心筋症の治療により好適に用いることができる。

本発明の拡張型心筋症治療剤の投与経路は、心臓表面への直接投与、心臓内投与、経口投与、皮下投与、筋肉内投与、静脈内投与、動脈内投与、髄腔内投与、舌下投与、経直腸投与、経腟投与、経鼻投与、吸入、経皮投与等が挙げられるが、本発明の拡張型心筋症治療剤の有効性の観点から、好ましくは心臓表面への直接投与、筋肉内投与、静脈内投与、動脈内投与である。

本発明の拡張型心筋症治療剤において、間葉系幹細胞の用量（投与量）は、患者の状態（体重、年齢、症状、体調等）、及び本発明の拡張型心筋症治療剤の剤形等によって異なりうるが、十分な拡張型心筋症治療剤の治療効果を奏する観点からは、間葉系幹細胞の量は多い方が好ましい傾向にあり、一方、副作用の発現を抑制する観点からは間葉系幹細胞の量は少ない方が好ましい傾向にある。通常、成人に投与（噴霧）する場合には、細胞数として、１×１０^３～１×１０^１２個／回、好ましくは１×１０^４～１×１０^１１個／回、より好ましくは１×１０^５～１×１０^１０個／回、さらに好ましくは５×１０^６～１×１０^９個／回である。また、患者の体重あたりの間葉系幹細胞の投与（噴霧）量としては、１×１０～５×１０^１０個／ｋｇ、好ましくは１×１０^２～５×１０^９個／ｋｇ、より好ましくは１×１０^３～５×１０^８個／ｋｇ、さらに好ましくは１×１０^４～５×１０^７個／ｋｇである。なお、本用量を１回量として、間葉系幹細胞複数回投与（噴霧）してもよく、本用量を複数回に分けて投与（噴霧）してもよい。

本発明の拡張型心筋症治療剤において、微小粒子を分泌する間葉系幹細胞を含む場合、その用量（投与量）は、患者の状態（体重、年齢、症状、体調等）、及び本発明の拡張型心筋症治療剤の剤形等によって異なりうるが、十分な拡張型心筋症治療剤の治療効果を奏する観点からは、その量は多い方が好ましい傾向にあり、一方、副作用の発現を抑制する観点からはその量は少ない方が好ましい傾向にある。通常、成人に投与する場合には、細胞数として、１×１０^３～１×１０^１２個／回、好ましくは１×１０^４～１×１０^１１個／回、更に好ましくは１×１０^５～１×１０^１０個／回、特に好ましくは５×１０^６～１×１０^９個／回である。なお、本用量を１回量として、複数回投与してもよく、本用量を複数回に分けて投与しても良い。

本発明の拡張型心筋症治療剤が、微小粒子を分泌する間葉系幹細胞を含む場合、その用量（投与量）は、患者の状態（体重、年齢、症状、体調等）、及び本発明の拡張型心筋症治療剤の剤形等によって異なりうるが、通常、成人に投与する場合には、細胞数として、１×１０～５×１０^１０個／ｋｇ、好ましくは１×１０^２～５×１０^９個／ｋｇ、更に好ましくは１×１０^３～５×１０^８個／ｋｇ、特に好ましくは１×１０^４～５×１０^７個／ｋｇである。なお、本用量を１回量として、複数回投与してもよく、本用量を複数回に分けて投与しても良い。

本発明の拡張型心筋症治療剤が、単離された微小粒子又は微小粒子を含む間葉系幹細胞培養上清を含む場合、その用量（投与量）は、患者の状態（体重、年齢、症状、体調等）、及び本発明の拡張型心筋症治療剤の剤形等によって異なりうるが、通常、成人に投与する場合には、微小粒子として、１×１０^４～５×１０^１３個／ｋｇ、好ましくは１×１０^５～５×１０^１２個／ｋｇ、更に好ましくは１×１０^６～５×１０^１１個／ｋｇ、特に好ましくは１×１０^７～５×１０^１０個／ｋｇである。なお、本用量を１回量として、複数回投与してもよく、本用量を複数回に分けて投与しても良い。

本発明の拡張型心筋症治療剤は、１又は２以上の他の薬剤と共に投与してもよい。他の薬剤としては、心臓疾患の拡張型心筋症治療剤として用いることができる任意の剤を薬剤が挙げられ、たとえばＡＣＥ阻害薬、アンギオテンシンII受容体拮抗薬、β遮断薬、抗血小板薬、ワーファリン、カルシウム拮抗薬、硝酸薬、利尿剤、ＨＭＧ－ＣｏＡ還元酵素阻害薬、アンカロン等が挙げられる。なお、本発明の拡張型心筋症治療剤が、１又は２以上の他の薬剤と共に投与される場合とは、本発明の拡張型心筋症治療剤と他の薬剤とを同時に使用する場合、どちらか一方を投与した後に一定の時間が経過してから他方の薬剤を投与する場合、これらの組み合わせ等、種々の場合を含む。

本発明の拡張型心筋症治療剤は、拡張型心筋症を罹患した被験体に対して、顕著な治療効果を奏する。上記治療効果は、例えば心エコー検査や、病理組織学的検査（心肥大、線維化の検査）によって確認することができる。具体的には、本発明の拡張型心筋症治療剤は、拡張型心筋症を罹患した被験体の心肥大、心組織の線維化を抑制し、心機能を回復させることができる。さらにその効果は長期間に渡って維持され得る。また、本発明の拡張型心筋症治療剤は、拡張型心筋症を罹患した被験体の心組織中のＡＴＰ含有量の上昇、ミトコンドリア中のＡＮＴ－１タンパクの発現上昇等に寄与し、生存率を上昇させることができる。

〈拡張型心筋症治療剤の調製方法〉
本発明の拡張型心筋症治療剤は、それぞれの剤型に合わせて、常法に従って、間葉系幹細胞又は間葉系幹細胞由来の微小粒子と、適切な、細胞又は微小粒子懸濁用液体等（薬学的に許容される担体や添加物を含む）とを混合することによりに得られる。一つの好ましい例としては、間葉系幹細胞又は間葉系幹細胞由来の微小粒子をフィブリノーゲン溶液に懸濁し、得られた懸濁液とトロンビン溶液とを、又は、間葉系幹細胞又は間葉系幹細胞由来の微小粒子をトロンビン溶液に懸濁し、得られた懸濁液とフィブリノーゲン溶液とを、実質的に同時に疾患部位に直接噴霧して、ゲル状の拡張型心筋症治療剤を調整する方法が挙げられる。

＜線維化抑制剤＞
本発明は、間葉系幹細胞又は間葉系幹細胞由来の微小粒子を含有する、拡張型心筋症における線維化抑制剤も含む。上述した本発明の拡張型心筋症治療剤は、拡張型心筋症における線維化を特に抑制する顕著な効果を有することから、拡張型心筋症における線維化抑制剤としても有効である。なお、本発明の拡張型心筋症における線維化抑制剤の具体的な説明については、上述した拡張型心筋症治療剤の説明を適用できる。

＜心肥大抑制剤＞
本発明は、間葉系幹細胞又は間葉系幹細胞由来の微小粒子を含有する、拡張型心筋症における心肥大抑制剤も含む。上述した本発明の拡張型心筋症治療剤は、拡張型心筋症における心肥大を特に効果的に抑制する効果を有することから、拡張型心筋症における心肥大抑制剤としても有効である。なお、本発明の拡張型心筋症における心肥大抑制剤の具体的な説明については、上述した拡張型心筋症治療剤の説明を適用できる。

＜拡張型心筋症治療用キット＞
本発明は、上述した本発明の拡張型心筋症治療剤、線維化抑制剤又は心肥大抑制剤、容器及びラベルを含む拡張型心筋症治療用のキットも含む。本発明のキットが含む適切な容器としては、特に限定されないが、例えば、間葉系幹細胞又は間葉系幹細胞由来の微小粒子凍結用のクライオチューブ、間葉系幹細胞又は間葉系幹細胞由来の微小粒子懸濁用溶液用のボトル、バイアル、試験管等が挙げられる。これらの容器は、ガラス、金属、プラスチック又はこれらの組み合わせ等の多様な材料から形成されていてもよい。これらの容器上のラベルには、内容物を説明する内容が記載されている。

＜治療方法＞
本発明は、間葉系幹細胞及び間葉系幹細胞由来の微小粒子からなる群より選択される少なくとも１種を投与することを特徴とする、拡張型心筋症の治療方法も含む。本発明の治療方法によると、拡張型心筋症の疾患に対して、間葉系幹細胞又は間葉系幹細胞由来の微小粒子を投与することにより、心臓等の疾患部位の機能、構造等を顕著に改善させることができる。上記間葉系幹細胞は同種異系の被験体に対しても拒絶反応を起こしにくいため、あらかじめ調製されたドナーの細胞を拡大培養して凍結保存したものを使用することができる。また、同様に、あらかじめ調製されたドナーの細胞を拡大培養して凍結保存した間葉系幹細胞から得られる間葉系幹細胞由来の微小粒子を使用することができる。そのため、自己の間葉系幹細胞を調製して用いる場合と比較して、商品化も容易であり、かつ安定した一定の効果を得られ易いという利点もある。なお、本発明の治療方法は、上述した本発明の拡張型心筋症治療剤を投与することにより拡張型心筋症を治療する方法とも言え、間葉系幹細胞及び間葉系幹細胞由来の微小粒子についての説明やその他の説明は、上述した拡張型心筋症治療剤の項における説明を適用できる。

また、本発明は、間葉系幹細胞及び間葉系幹細胞由来の微小粒子からなる群より選択される少なくとも１種を投与することを特徴とする、線維化の抑制方法、特に拡張型心筋症における線維化の抑制方法も含む。さらに、本発明は、間葉系幹細胞及び間葉系幹細胞由来の微小粒子からなる群より選択される少なくとも１種を投与することを特徴とする、心肥大、特に拡張型心筋症における心肥大の抑制方法も含む。なお、なお、本発明の抑制方法は、上述した本発明の拡張型心筋症治療剤を投与することにより線維化や心肥大をする方法とも言え、本発明の抑制方法における間葉系幹細胞及び間葉系幹細胞由来の微小粒子についての説明やその他の説明は、上述した拡張型心筋症治療剤の項における説明を適用できる。

本発明のキットは、その他の添加剤、その他の薬剤、希釈剤、フィルター、針、シリンジ、使用法を記載した添付文書を含めた、商業的、及び利用者の観点から望ましい他の材料を包含することができる。

以下の実施例にて本発明を具体的に説明するが、本発明は実施例によって限定されるものではない。

［１］本発明の拡張型心筋症治療剤の調製
（脂肪組織由来間葉系幹細胞の調製）
ヒトドナーから同意を得た後、脂肪吸引法で得た皮下脂肪組織を生理食塩液で洗浄した。細胞外基質の破壊、及び細胞の単離を達成するために、コラゲナーゼ（Ｒｏｃｈｅ社）（溶媒は生理食塩液）を添加し、３７℃で９０分間振倒し、分散した。続いて、この細胞を回収し、細胞懸濁液を８００ｇで５分間、遠心分離して間質血管細胞群の沈殿を得た。上記細胞の沈殿に間葉系幹細胞用無血清培地（Ｒｏｈｔｏ社）を加え、当該細胞懸濁液を４００ｇで５分間遠心分離し、上清除去後に間葉系幹細胞用無血清培地（Ｒｏｈｔｏ社）に再懸濁し、フラスコに細胞を播種した。細胞を３７℃で数日間、５％ＣＯ_２中で培養した。数日後に培養物をＰＢＳで洗浄して、培養液中に含まれていた血球や脂肪組織の残存等を除去し、プラスチック容器に接着している脂肪組織由来間葉系幹細胞（Ａｄｉｐｏｓｅ Ｄｅｒｉｖｅｄ Ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌｓ；ＡＤＳＣ）を得た。

（脂肪組織由来間葉系幹細胞の凍結保存）
得られた脂肪組織由来間葉系幹細胞を、トリプシンを用いて剥離し、遠沈管に移し、４００ｇで５分間、遠心分離し細胞の沈殿を得た。上清を除去した後、細胞凍結保存液（ＳＴＥＭ－ＣＥＬＬＢＡＮＫＥＲ（ゼノアック社））を適量加え懸濁した。当該細胞懸濁液を、クライオチューブに分注した後、フリーザー内で－８０度にて保存後、液体窒素上の気相に移し、保存を継続した。

（細胞表面マーカーの解析（フローサイトメトリー））
脂肪組織由来間葉系幹細胞上の種々の表面マーカーの評価は、フローサイトメトリーによって実施した。脂肪組織由来間葉系幹細胞を、ＦＡＣＳ染色用バッファーに再懸濁した。ＦＡＣＳ分析に用いた抗体は、ＦＩＴＣ（蛍光イソシアニン）又はＰＥ（フェコエリスリン）標識のマウス抗ヒト抗体ＣＤ１１ｂ、ＣＤ４５、ＣＤ７３、ＣＤ９０、及び相当するマウスＩｇＧ１アイソタイプコントロール抗体であった。細胞は室温で３０分間染色し、次に洗浄し、ＢＤＦＡＤＳＣａｎｔｏＩＩ（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ、Ｓａｎ Ｊｏｓｅ、ＣＡ）を用いて解析した。データは、ＢＤ ＦＡＣＳＤｉｖａ ＳｏｆｔｗＣｒｅ（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ）を用いて分析した。その結果、脂肪組織由来間葉系幹細胞は、ＣＤ４５は陰性、ＣＤ７３、ＣＤ９０は陽性であった。

（スプレー用拡張型心筋症治療剤の調製）
スプレー用のフィブリノーゲン溶液及びトロンビン溶液は、ＢｅｒｉｐｌａｓｔＲＰ Ｃｏｍｂｉ－Ｓｅｔ Ｔｉｓｓｕｅ ａｄｈｅｓｉｏｎ（ＣＬＳ Ｂｅｈｒｉｎｇ、Ｃｏ、Ｌｔｄ）を用いて調製した。フィブリノーゲン溶液（ベリプラストＡ液）は、フィブリノーゲン ８０ｍｇ／ｍＬ、ファクターＸＩＩＩ ６０ＩＵ、及び牛アプロチニン ５，０００ＫＩＥを含む。トロンビン溶液（ベリプラストＢ液）は、トロンビン ３００単位／ｍＬを含む。具体的には、凍結保存の脂肪組織由来間葉系幹細胞（ＡＤＳＣ）はスプレーする直前に解凍し、下記表１に示した量のＨＢＳＳ（×１）に懸濁後、ベリプラストＡ液を添加して溶液Ａを調製した。また、下記表１に示した量のＨＢＳＳ（×１）にベリプラストＢを添加し、溶液Ｂを調製した。これらの溶液をそれぞれ別のシリンジ内に封入して準備し、下記の移植試験に用いた。

［２］移植試験１
（移植試験のプロトコール）
Ｊ２Ｎ－ｋハムスター（２０週齢、雄）を開胸後、それぞれ別のシリンジ内に封入した上記表１に示す組成の溶液Ａ及びＢを、拡張型心筋症を発症している心臓の表面（心嚢膜内）に、同時に直接滴下して疾患部位を被覆した（ＡＤＳＣ群）。媒体投与グループにおいて、Ｊ２Ｎ－ｋハムスター（２０週齢、雄）を開胸後、それぞれ別のシリンジ内に封入した下記表２に示す組成の溶液Ａ’及びＢを、拡張型心筋症を発症している心臓の表面（心嚢膜内）に、同時に直接噴霧して疾患部位を被覆した（Ｃｏｎｔｒｏｌ群）。偽手術では、Ｊ２Ｎ－ｋハムスター（２０週齢、雄）及び心筋症を発症しない正常ハムスターのＪ２Ｎ－ｎハムスター（２０週齢、雄）に対して、開胸のみ行い、上記の薬剤の滴下は行わなかった（それぞれＳｈａｍ群、Ｎｏｒｍａｌ）。

移植前（ベースライン）、移植後の１週、２週、３週及び４週に、心エコー検査を実施した。この研究の最終期には、動物は心臓組織の組織学的及び生化学的分析のために、細胞移植の４週後に人道的に殺処分した。以下に移植試験について詳細に説明する。

（脂肪由来間葉系幹細胞移植実験）
Ｊ２Ｎ－ｋハムスター（２０週齢、雄）及びＪ２Ｎ－ｎハムスター（２０週齢、雄）に対して、全身麻酔下で胸骨正中切開を行い、脂肪組織由来間葉系幹細胞、媒体の移植又は偽手術のいずれかを実施した。心筋梗塞を発症している部位は、表面の瘢痕及び異常な壁運動に基づいて視覚的に確認することができる。具体的には、ＡＤＳＣグループでは、それぞれ別のシリンジ内に封入した上記表１に示す組成（１×１０^６個の脂肪組織由来間葉系幹細胞を含む）の溶液Ａ（２０μＬ）及びＢ（２０μＬ）を、心筋梗塞を発症している部位の表面（心表面）に、同時に直接噴霧して疾患部位を被覆した。Ｊ２Ｎ－ｋハムスター及びＪ２Ｎ－ｎハムスターは、温度制御された個々のケージで回復させた。

（脂肪組織由来間葉系幹細胞移植の効果）
Ｊ２Ｎ－ｋハムスター及びＪ２Ｎ－ｎハムスターに対する、脂肪組織由来間葉系幹細胞の移植の効果を、心機能及び病理組織学的検査により評価した。心機能の検査として、心エコー検査によりＬＶＥＦを計測した。病理組織学的検査では、心肥大と線維化について評価した。また、心筋組織中のＡＴＰ含量を測定した。さらに、心組織よりミトコンドリアを単離し、ミトコンドリアに発現するａｄｅｎｉｎｅ ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ ｔｒａｎｓｌｏｃａｔｏｒ－１ （Ｍｔ．ＡＮＴ－１、ｇｅｎｅ ｓｙｍｂｏｌ： ＳＬＣ２５Ａ４）を、ウエスタンブロット法により測定した。それぞれの評価方法について以下に説明する。

（心エコー検査）
Ｊ２Ｎ－ｋハムスター及びＪ２Ｎ－ｎハムスターは上記の通り麻酔した。超音波心臓検査は市販のエコ―機器（ＨＩＴＡＣＨＩ： ＰＲＯＳＯＵＮＤ Ｆ７５ ＰｒｅｍｉｅｒＣＶ）を用いて実施した。８．０－ＭＨｚの環状アレイトランスデューサを心臓評価に用いた。Ｊ２Ｎハムスター及びＪ２Ｎ－ｎハムスターは左側臥位で検査した。ＬＶ拡張終末期及び収縮終末期容積（ＬＶＥＤＶ及びＬＶＥＳＶ）はタイヒホルツ（Ｔｅｉｃｈｈｏｌｚ）式から計算した。ＬＶエジェクションフラクション（ＬＶＥＦ）は下記の式から計算した。結果を図１に示した。
ＬＶＥＦ（％）＝１００×（ＬＶＥＤＶ－ＬＶＥＳＶ）／（ＬＶＥＤＶ）

図１に示すとおり、開胸のみを行ったＳｈａｍ群、媒体を投与したＣｏｎｔｒｏｌ群においては、経時的にＬＶＥＦが低下し、心機能の低下がみられたが、脂肪組織由来間葉系幹細胞の移植群では、ＬＶＥＦの低下が見られず、拡張型心筋症の進行を抑制した。

（心組織中のＡＴＰ含有量の測定）
移植後２週における心組織中のＡＴＰ含有量を、市販のＡＴＰ測定キットを用いて測定した。図２に示すとおり、開胸のみを行ったＳｈａｍ群、媒体を投与したＣｏｎｔｒｏｌ群においては、正常ハムスターに比べＡＴＰ含有量が有意に低下した。これに対して、脂肪組織由来間葉系幹細胞の移植群では、ＡＴＰ含有量の低下が見られず、Ｓｈａｍ群に比べ、ＡＴＰ含有量が有意に上昇した。

（心組織中ミトコンドリアのＭｔ．ＡＮＴ－１／ＣＯＸ４の測定）
移植後２週における心組織よりミトコンドリアを単離し、ミトコンドリアに発現するａｄｅｎｉｎｅ ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ ｔｒａｎｓｌｏｃａｔｏｒ－１（Ｍｔ．ＡＮＴ－１、ｇｅｎｅ ｓｙｍｂｏｌ：ＳＬＣ２５Ａ４）を、ウエスタンブロット法により測定した。なお、ｃｙｔｏｃｈｒｏｍｅ ｃ ｏｘｉｄａｓｅ４（ＣＯＸ４）をウエスタンブロット法における内在性コントロールとした。

図３に示すとおり、正常ハムスターと比較して、開胸のみを行ったＳｈａｍ群、媒体を投与したＣｏｎｔｒｏｌ群においては、Ｍｔ．ＡＮＴ－１発現量が有意に低かった。これに対して、脂肪組織由来間葉系幹細胞の移植群（ＡＤＳＣ）では、Ｍｔ．ＡＮＴ－１の発現量は、Ｓｈａｍ群及びＣｏｎｔｒｏｌ群に比べ、有意に高かった。同様に、移植後４週における心組織中のＭｔ．ＡＮＴ－１を測定した。その結果、移植後２週と同様に、ｓｈａｍ群及びＣｏｎｔｏｒｏｌ群では、Ｍｔ．ＡＮＴ－１の発現量は、有意に低値であったが、脂肪組織由来間葉系幹細胞の移植群（ＡＤＳＣ）では、Ｎｏｒｍａｌ群との間に有意な差が無い程度にまで発現量が高くなっていた。

（心臓サイズの測定）
移植後４週における、心臓のＨＥ染色標本を用いて心臓の直径を、顕微鏡下により測定した。図４に示すとおり、開胸のみを行ったＳｈａｍ群、媒体を投与したＣｏｎｔｒｏｌ群においては、拡張型心筋症が進行し、正常ハムスターに比べ心臓が肥大した。これに対して、脂肪組織由来間葉系幹細胞の移植群では、Ｓｈａｍ群に比べ、心臓肥大が有意に抑制され、拡張型心筋症を改善した。

（線維化面積の測定）
移植後４週における、心臓のシリウスレッド染色標本を用いて線維化面積を測定した。開胸のみを行ったＳｈａｍ群の線維化面積に対して、脂肪組織由来間葉系幹細胞の移植Ｊ群の線維化面積は７８．３％であり、間葉系幹細胞により、拡張型心筋症の線維化が抑制されることが明らかとなった。

（δサルコグリカン発現量の測定）
移植後４週における、心臓のδサルコグリカン発現を、免疫染色法により測定した。Ｓｈａｍ群、Ｓｈａｍ群及びＡＤＳＣ群のいずれにおいても、δサルコグリカンの発現は認められず、脂肪組織由来間葉系幹細胞によって、δサルコグリカン遺伝子は影響を受けないことが明らかとなった。

［３］移植試験２
移植試験１と同様に、Ｊ２Ｎ－ｋハムスター（２０週齢、雄）に対して、全身麻酔下で胸骨正中切開を行い、脂肪組織由来間葉系幹細胞（ＡＤＳＣ）又は媒体（Ｃｏｔｒｏｌ）を移植した。具体的には、移植試験１と同様に、ＡＤＳＣグループでは、それぞれ別のシリンジ内に封入した上記表１に示す組成（１×１０^６個の脂肪組織由来間葉系幹細胞を含む）の溶液Ａ（２０μＬ）及びＢ（２０μＬ）を、心筋症を発症している部位の表面（心表面）に、同時に直接滴下して疾患部位を被覆した。これらのＪ２Ｎ－ｋハムスターは、温度制御された個々のケージで回復させた。Ｊ２Ｎ－ｋハムスターに対する、脂肪組織由来間葉系幹細胞の移植の効果を、移植前（ベースライン）、移植後の２週、４週、８週、１２週、１６週及び２０週に、心エコー検査を実施し、心機能により評価した。心機能の検査として、移植試験１と同様に、心エコー検査によりＬＶＥＦを計測した。なお、試験に使用した動物は、細胞移植の２０週後に人道的に殺処分した。

図５に示すとおり、媒体を投与したＣｏｎｔｒｏｌ群においては、経時的にＬＶＥＦが低下したが、脂肪組織由来間葉系幹細胞の移植群（ＡＤＳＣ）では、ＬＶＥＦの低下が見られず、拡張型心筋症の症状の進行を抑制した。また、この拡張型心筋症の症状の進行を抑制する効果は、移植後２０週という長期間に渡って維持された。

［４］移植試験３
移植試験１と同様に、Ｊ２Ｎ－ｋハムスター（２０週齢、雄）に対して、全身麻酔下で胸骨正中切開を行い、脂肪組織由来間葉系幹細胞（ＡＤＳＣ）又は媒体（Ｃｏｔｒｏｌ）の移植のいずれかを実施した。具体的には、移植試験１と同様に、ＡＤＳＣグループでは、それぞれ別のシリンジ内に封入した上記表１に示す組成（１×１０^６個の脂肪組織由来間葉系幹細胞を含む）の溶液Ａ（２０μＬ）及びＢ（２０μＬ）を、心筋梗塞を発症している部位の表面（心表面）に、同時に直接噴霧して疾患部位を被覆した。Ｊ２Ｎ－ｋハムスターは、温度制御された個々のケージで回復させた。

その結果、１２週間後の死亡率は、Ｃｏｎｔｒｏｌ群で２８．６％であったのに対して、ＡＤＳＣ投与群では１２．５％と、脂肪組織由来間葉系幹細胞を移植することにより、死亡率が低下することが示された。

［５］微小粒子の調製及び心筋細胞に対する効果の検討
前述と同様に調製した脂肪由来間葉系幹細胞の培養上清を回収し、回収した培養上清をフィルター（０．２２μｍ、メルクミリポア）でろ過した後、遠心（３５，０００ｒｐｍ、７０分、４℃、ＢＥＣＫＭＡＮ Ｏｐｔｉｍａ ＸＥ－９０）により微小粒子を回収した。得られた微小粒子の平均粒子径は、１５５±６ｎｍであった（平均±標準誤差、ｎ＝３）。

間葉系幹細胞の培養上清６０ｍＬから回収した微小粒子を０．５ｍＬのＰＢＳに懸濁した。得られた脂肪由来間葉系幹細胞由来微小粒子をヒト由来心筋細胞（ＰｒｏｍｏＣｅｌｌ社製、５×１０^５ｃｅｌｌｓ／ｄｉｓｈ）に、それぞれ１０μＬ、３０μＬ及び１００μＬ添加して、エネルギー産生量としてＮＡＤＰＨ活性を測定したところ、微小粒子量依存的にエネルギー産出量が増加した（図６）。このことより、間葉系幹細胞による心機能改善効果には、間葉系幹細胞が分泌する微小粒子が関与している可能性が示唆された。

［６］微小粒子が含むタンパクの解析
脂肪由来間葉系幹細胞の培養上清（無血清培地）１００ｍＬにＴｏｔａｌ Ｅｘｏｓｏｍｅ Ｉｓｏｌａｔｉｏｎ（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ Ｉｎｃ．、品番：４４７８３５９）を５０ｍＬ加え、充分に転倒混和した。冷蔵庫（２～８℃）で一晩保存した後、遠心分離（１０，０００×ｇ、１時間、２～８℃）し、その上清を除去した。その時得られた沈渣を５００μＬのＰＢＳで懸濁し、この懸濁液を微小粒子含有懸濁液とした。微小粒子含有懸濁液１５０μＬに２０％トリクロロ酢酸（Ｔｒｉｃｈｌｏｒｏａｃｅｔｉｃ ａｃｉｄ（ＴＣＡ）、和光純薬工業（株）社製）を１５０μＬ加え、タンパク質を凝集させ沈殿させた。得られた沈殿全量にトリス塩酸緩衝液（Ｔｒｉｓ Ｈｙｄｒｏｃｈｌｏｒｉｄｅ Ａｃｉｄ Ｂｕｆｆｅｒ（Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ）、ｐＨ８．５）２０μＬを加えて、沈殿を溶解した。さらに、０．０１％のトリプシン（Ｔｒｙｐｓｉｎ、アプロサイエンス社製）を含むトリスバッファー（Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ、ｐＨ８．０）を加え、３７℃で２０時間反応させた。その後、得られたサンプル溶液をＬＣ－ＭＳ／ＭＳ（ＬＣ：Ｍｉｃｈｒｏｍ ＢｉｏＲｅｓｏｕｒｃｅｓ社製、ＭＳ：ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒＳｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社製）で分析したところ、アポリポプロテインＡ－２（Ａｐｏｌｉｐｏｐｒｏｔｅｉｎ Ａ－２）、色素上皮由来因子（Ｐｉｇｍｅｎｔ ｅｐｉｔｈｅｌｉｕｍ－ｄｅｒｉｖｅｄ ｆａｃｔｏｒ（ＰＥＤＦ）、ＳＥＲＰＩＮＦ１）及びハプトグロビン（Ｈａｐｔｏｇｌｏｂｉｎ）が検出された。

本発明の拡張型心筋症治療剤によると、拡張型心筋症の心臓の機能等を顕著に改善させることができる。上記間葉系幹細胞は同種異系の被験体に対しても拒絶反応を起こしにくいため、あらかじめ治療効果が確認されたドナーの細胞を拡大培養して凍結保存したものを、本発明の拡張型心筋症治療剤における間葉系幹細胞として使用することができる。そのため、自己の間葉系幹細胞を調製して用いる場合と比較して、商品化も容易であり、かつ一定の効果を得られ易いという利点もある。

Claims (1)

1. 間葉系幹細胞及び間葉系幹細胞由来の微小粒子からなる群より選択される少なくとも１種を含有する、拡張型心筋症治療剤。

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