JP2022542443A - 多発性骨髄腫治療用の抗ｂｃｍａ ｃａｒ ｔ細胞 - Google Patents

Abstract

本発明は、多発性骨髄腫の治療薬を提供する。特に、本発明は、Ｂ細胞成熟抗原を標的とすることができるキメラ抗原受容体（ＣＡＲ）Ｔ細胞を提供する。

Description

本発明は、多発性骨髄腫の治療薬を提供する。特に、本発明は、Ｂ細胞成熟抗原を標的とすることができるキメラ抗原受容体（ＣＡＲ）Ｔ細胞を提供する。

多発性骨髄腫（ＭＭ）は依然として不治の血液悪性腫瘍であり、全ての癌の１％及び全ての血液悪性腫瘍の１５％～２０％を占めており、過去１０年間に新規症例では毎年平均０．８％増加している。ＭＭは、骨髄（ＢＭ）内の悪性形質細胞がクローン的に増加し、血液及び／又は尿中にモノクローナル免疫グロブリン（Ｉｇ）が過剰に産生され、高カルシウム血症、感染症、及び臓器機能不全を含む臨床症状を伴う溶骨性病変を引き起こすことを特徴とする。ＭＭの自然経過は難治性疾患まで再燃し、生存のプラトーに達せず、自己幹細胞移植（ＡＳＣＴ）後５年～１０年を超えて持続的完全寛解（ＣＲ）を達成した患者は１０％未満である。さらに、高用量化学療法とそれに続くＡＳＣＴの後に患者が治癒することはほとんどなく、重要なことに、ＣＲを達成した患者はＣＲを得られなかった患者よりも生存期間が長い。したがって、Ｒ／Ｒ ＭＭ患者、特に細胞遺伝学的に有害な高リスク患者の生存率を向上させるには、新たな戦略が必要である。

近年、腫瘍細胞に発現した抗原を認識するために遺伝子修飾された自己Ｔ細胞を注入することに基づくキメラ抗原受容体（ＣＡＲ）Ｔ細胞免疫療法により、或る特定の血液悪性腫瘍の治療法に変化があった。具体的には、急性リンパ芽球性白血病（ＡＬＬ）及びリンパ腫において、ＣＤ１９を標的としたこの治療は優れた応答（responses：奏効）を達成し、ＦＤＡによるこれらの新規治療法の承認に至った。ＭＭでは、Ｂ細胞の成熟及び生存の調節に関与する膜貫通型糖タンパク質であり、成熟Ｂ細胞及び形質細胞に特異的かつ限定的な発現を伴う、Ｂ細胞成熟抗原（ＢＣＭＡ）が、ＣＡＲＴ細胞免疫療法の最も有望な標的となっている。

ＭＭ患者において現在進行中のＣＡＲＴＢＣＭＡ細胞を用いた臨床試験はいずれも、ＣＡＲＴ１９と比較して、応答を達成するためにより高用量のＣＡＲＴ細胞（１５０×１０^６のＣＡＲＴ細胞）を必要とし、応答を得るためにより低い用量が必要とされていることを示した。さらに、非常に良好な部分奏効の数が経時的に完全奏効へと進むにつれて、経時的に応答が深くなることが示されている。さらに、ＣＡＲＴ細胞の早期消失による再燃を避けることを目的として、ＣＡＲＴ細胞免疫療法では、マウスＣＡＲの代わりにヒト化又はヒトＣＡＲを使用することが現在の傾向となっている（非特許文献１、非特許文献２）

ここでは、Ｂ細胞悪性腫瘍の多施設臨床試験第ＩＩ相に既に使用されているＣＡＲＴ１９（ＡＲＩ１）（非特許文献３）から開始して、本発明者らは、公的医療システムにおいて患者が使用することができる、ＢＣＭＡに対するマウスＣＡＲＴ細胞（ＡＲＩ２ｍ）を作製した。ｉｎ ｖｉｔｒｏ及びｉｎ ｖｉｖｏでの有効性を確認すると、本発明者らは、ＡＲＩ２ｍをＡＲＩ２ｈヘとヒト化した。ＡＲＩ２ｍとＡＲＩ２ｈの両方の有効性及び炎症反応を比較すると、両方のＣＡＲが同等の有効性を示したが、ＡＲＩ２ｈの炎症プロファイルの低下が観察された。さらに、本発明らの施設でのＧＭＰ臨床規模への拡大は、両方のＣＡＲで成功裏に達成された。最後に、ＡＲＩ２活性における可溶性ＢＣＭＡ（ｓＢＣＭＡ）の影響を分析し、ｓＢＣＭＡがどのようにＣＡＲＴ活性に悪影響を及ぼし得るかを示した。これら全ての結果により、スペインで本発明者らのＡＲＩ２ｈ細胞を用いたＭＭ患者を対象とした多施設臨床試験の実施が可能になる。

Sommermeyer D, Hill T, Shamah SM, et al. Fully human CD19-specific chimeric antigen receptors for T-cell therapy. Leukemia. 2017;31(10):2191-2199 Turtle CJ, Hanafi LA, Berger C, et al. CD19 CAR-T cells of defined CD4+:CD8+ composition in adult B cell ALL patients. J Clin Invest. 2016;126(6):2123-2138 Castella M, Boronat A, Martin-Ibanez R, Rodriguez V, Sune G, Caballero M, et al. Development of a Novel Anti-CD19 Chimeric Antigen Receptor: A Paradigm for an Affordable CAR T Cell Production at Academic Institutions. Mol Ther Methods Clin Dev. 2019 Mar 15;12:134-44

多発性骨髄腫（ＭＭ）細胞に対するＣＡＲＴＢＣＭＡマウス（ＡＲＩ２ｍ）の設計及び機能特性決定を示す図である。（Ａ）ＡＲＩ２ｍの設計。（Ｂ）凍結保存前後のＡＲＩ２細胞及びＮＴ Ｔ細胞の形質導入効率。（Ｃ）２つのＭＭ細胞株（ＡＲＰ１及びＵ２６６）及び１つの非骨髄腫細胞株（Ｋ５６２）に対するＡＲＩ２の細胞毒性アッセイ。ＡＲＰ１及びＵ２６６（ＭＭ細胞株）、並びにＫ５６２（ＣＭＬ）に対する限外希釈細胞毒性アッセイを３６時間（Ｄ）及び７２時間（Ｅ）において１：１～０．１２５：１の比率（Ｔ細胞：腫瘍細胞株）で実施した。（Ｆ）２４時間及び４８時間の共培養（Ｔ細胞及びＡＲＰ１細胞）後のＩＦＮγ、ＩＬ－６及びＴＮＦ－αのサイトカインプロファイル。（Ｇ～Ｋ）ＡＲＩ２ｍ細胞のｉｎ ｖｉｖｏでの有効性：（Ｇ）：実験計画の図、並びにＡＲＩ２ｍで処理したマウス、対ＮＴ Ｔ細胞群で処理したマウス、対未処理群の週毎の生物発光（Ｈ）及び全生存率（Ｉ）による疾患進行の定量。（Ｊ）実験終了時のマウスの骨髄（ＢＭ）及び脾臓のフローサイトメトリー。（Ｋ）ＡＲＩ２ｍで処理したマウスのＢＭ及び脾臓におけるＴ細胞及びＣＡＲＴ細胞の総量のパーセンテージ。（Ｌ）ＡＲＩ２ｍ又はＮＴ Ｔ細胞で処理した後のマウス血清からの可溶性ＢＣＭＡ（ｓＢＣＭＡ）ＥＬＩＳＡ。 ＡＲＩ２ｍのＡＲＩ２ｈへのヒト化、及びＡＲＩ２ｍ対ＡＲＩ２ｈの比較を示す図である。（Ａ）ＢＬＡＳＴ又はＧｅｒｍｌｉｎｅのアルゴリズムに基づくヒト化ＡＲＩ２におけるｓｃＦｖの重鎖と軽鎖のアミノ酸不均衡（amino acid disparity）の概略図。（Ｂ）ＡＲＩ２ｍ対両方のヒト化バージョン（Ｂｌａｓｔ及びＧｅｒｍｌｉｎｅ）の限界希釈細胞毒性アッセイ。（Ｃ）ＡＲＰ１（ＭＭ）及びＫ５６２（ＣＭＬ）に対してマウスのＡＲＩ２とヒト化したＡＲＩ２とを比較した長期細胞毒性アッセイ、並びにそのＩＦＮγ産生。（Ｄ～Ｉ）ｉｎ ｖｉｖｏでの結果：それぞれ、初期モデル（Ｄ）及び進行モデル（Ｅ）における週毎の生物発光による疾患の進行、並びにその定量（Ｆ）。（Ｇ）初期及び進行した疾患モデルにおける未処理、ＡＲＩ２ｍ及びＡＲＩ２ｈのマウス群の全生存率を表すカプラン－マイヤー曲線。（Ｈ）初期及び進行の両方の疾患モデルについてＢＭ及び脾臓で見られるＣＤ３＋Ｔ細胞集団の総ＣＤ３＋Ｔ細胞及びＡＲＩ２細胞のパーセンテージ。（Ｉ）初期疾患モデルでは３日目と３１日目、及び進行疾患モデルでは５日目と２１日目のマウス血清からのＩＦＮγのＥＬＩＳＡ。 ＡＲＩ２ｍ対ＡＲＩ２ｈのＴ細胞プロファイル及び炎症反応を示す図である。（Ａ）反復抗原刺激アッセイの概略図。（Ｂ）４つの連続したチャレンジの間のＡＲＩ２ｍ、ＡＲＩ２ｈ、及びＮＴ Ｔ細胞のＣＤ４／ＣＤ８ Ｔ細胞比プロファイル、並びにＣＤ４又はＣＤ８ Ｔ細胞サブセットにおけるＣＡＲＴ細胞のパーセンテージ（Ｃ）。（Ｄ）同一のバフィーコートからの自己単球及びＴ細胞単離、並びにその増加、分化及びＭＭ細胞株との共培養の概略図。（Ｅ）マクロファージを併用する又は併用しないＡＲＰ１細胞に対するＡＲＩ２ｍの細胞毒性、及び炎症誘発性サイトカイン（ＩＬ６、ＴＮＦα及びＩＬ１β）の産生（Ｆ）。（Ｇ）ＡＲＩ２ｍ／ＡＲＩ２ｈをマクロファージ及びＡＲＰ１と共培養した後のＩＦＮγ、ＩＬ６、ＴＮＦα及びＩＬ１βの４８時間にわたるサイトカイン産生。 ＡＲＩ２ｍ及びＡＲＩ２ｈの臨床産生及び活性を示す図である。ＡＲＩ２ｍ細胞及びＡＲＩ２ｈ細胞（Ａ及びＢ）の臨床的増加は、増加終了時に達成されたＴ細胞の総数（左）及び達成されたＣＡＲＴ細胞のパーセンテージ（右）を示す。（Ｃ）ＡＲＩ２ｍ細胞及びＡＲＩ２ｈ細胞の４つの臨床的増加の中央値。結果は、増加の終了時に達成されたＡＲＩ２細胞のパーセンテージ及び総数を示す。（Ｄ）増加の終了時におけるＡＲＩ２ｍ細胞とＡＲＩ２ｈ細胞の両方のＵ２６６ ＭＭ細胞株に対する細胞毒性アッセイ。 可溶性ＢＣＭＡはＡＲＩ２活性に影響を与えることを示す図である。（Ａ）５名の意義不明の単クローン性ガンマグロブリン血症（ＭＧＵＳ）、診断時（Ｄｘ）及び再燃時のＭＭの患者に由来するｓＢＣＭＡのＥＬＩＳＡ。（Ｂ）ＭＭ細胞をｃｅｌｌ ｔｒａｃｋｅｒ ＣＭＡＣで染色し、ＢＣＭＡをモノクローナル抗ＴＮＲＳＦ１７で染色した共焦点蛍光画像。（Ｃ及びＤ）ｃｅｌｌ ｔｒａｃｋｅｒ ＣＭＡＣで染色されたＡＲＩ２ｍ、及びＧＦＰでＢＣＭＡを過剰発現するＡＲＰ１ ＭＭ細胞の３時間にわたる２つの異なるｉｎ ｖｉｖｏタイムラプス実験からの代表画像。（Ｅ）ＢＣＭＡに対する抗体（Ａｂ）を用いて又はそれを用いずに、組換えＢＣＭＡタンパク質（ＢＣＭＡ）を添加した、ＡＲＰ１ ＭＭ細胞と共培養されたＡＲＩ２ｍの細胞毒性アッセイ及びＩＦＮγ産生（Ｆ）。（Ｇ）ＤＡＰＴを用いる又はそれを用いない、ＡＲＰ１ ＭＭ細胞株単独又はＡＲＩ２／ＮＴ Ｔ細胞との共培養におけるＢＣＭＡのＭＦＩ、及びそのｓＢＣＭＡ定量（Ｈ）。（Ｉ）トランスウェル（ＴＷ）を用いる又はそれを用いない細胞毒性アッセイの概略図。ウェルでＡＲＩ２ｍ／ＮＴ Ｔ細胞とＡＲＰ１細胞株との共培養を行い、ｓＢＣＭＡの連続放出源として追加のＡＲＰ１細胞をＴＷに添加する。ＤＡＰＴも並行して添加した。（Ｊ）（Ｉ）に示す実験の細胞毒性の結果。 非常に進行した疾患モデルにおけるＡＲＩ２ｍ対ＡＲＩ２ｈの更なる比較を示す図である。（Ａ）ＡＲＰ１ ＭＭ細胞に遭遇した後のＡＲＩ２増殖を分析するための４日間にわたるＣＦＳＥアッセイ。（Ｂ）０．１２５：１（Ｅ：Ｔ）の比でＡＲＩ２ｍ細胞及びＡＲＩ２ｈ細胞とＡＲＰ１ ＭＭ細胞とを共培養した７日間にわたるＴＮＦα及びＩＬ６の産生。（Ｃ）ＡＲＰ１ ＭＭ細胞と、ＡＲＩ２ｍ細胞及びＡＲＩ２ｈ細胞のいずれかとを受けたマウスでのｉｎ ｖｉｖｏ実験の概略図。（Ｄ）（Ｃ）の実験の疾患の進行とそれに続く週毎の生物発光。

定義
患者に薬剤を「投与する」又は患者への薬剤の「投与」（及びこの表現と文法的に同等のもの）は、医療専門家による患者への投与若しくは自己投与であり得る直接投与、及び／又は薬物を処方する行為であり得る間接投与を指す。例えば、薬剤を自己投与するよう患者に指示するか、又は患者に薬物を処方する医師が患者に薬物を投与する。

「アフィボディ（affibody）」という用語は、プロテインＡのＺドメインに由来し、特定の標的に結合するように改変されたタンパク質を指す（Frejd & Kim, 2017. Exp Mol Med. 49(3): e306を参照されたい）。

「抗体」という用語は、特定の標的に結合するか、又は特定の標的と免疫学的に反応性の少なくとも１つの免疫グロブリンドメインを含む分子を指す。この用語は、全抗体及びその任意の抗原結合部分又は一本鎖、並びにそれらの組合せを含む。例えば、「抗体」という用語は、特に二価抗体及び二価二重特異性抗体を含む。

典型的なタイプの抗体は、ジスルフィド結合によって相互接続した少なくとも２つの重鎖（「ＨＣ」）と２つの軽鎖（「ＬＣ」）とを含む。

各「重鎖」は、「重鎖可変ドメイン」（本明細書にて「ＶＨ」と略される）及び「重鎖定常ドメイン」（本明細書にて「ＣＨ」と略される）を含む。重鎖定常ドメインは通例、３つの定常ドメインＣＨ１、ＣＨ２及びＣＨ３を含む。

各「軽鎖」は、「軽鎖可変ドメイン」（本明細書にて「ＶＬ」と略される）及び「軽鎖定常ドメイン」（「ＣＬ」）を含む。軽鎖定常ドメイン（ＣＬ）は、κ型又はλ型であり得る。ＶＨドメイン及びＶＬドメインは、「フレームワーク領域」（「ＦＷ」）と称される、より保存された領域が散在する、相補性決定領域（「ＣＤＲ」）と称される超可変性の領域に更に細分することができる。

ＶＨ及びＶＬは各々、アミノ末端からカルボキシ末端に向かって以下の順序で配置された３つのＣＤＲ及び４つのＦＷから構成される：ＦＷ１、ＣＤＲ１、ＦＷ２、ＣＤＲ２、ＦＷ３、ＣＤＲ３、ＦＷ４。本開示は特に、ＶＨ配列及びＶＬ配列、並びにＣＤＲ１、ＣＤＲ２及びＣＤＲ３に対応する部分配列を提示する。

所与のＣＤＲの正確なアミノ酸配列の境界は、Kabat et al. (1991), "Sequences of Proteins of Immunological Interest," 5th Ed. Public Health Service, National Institutes of Health, Bethesda, MD（「Kabat」ナンバリングスキーム）、Al-Lazikani et al., (1997) JMB 273, 927-948（「Chothia」ナンバリングスキーム）に記載されているものを含む多数の既知のスキームのいずれかを用いて決定することができる。

したがって、ＦＷ１、ＦＷ２、ＦＷ３及びＦＷ４の配列が等しく開示されることが当業者には理解される。特定のＶＨについて、ＦＷ１はＶＨのＮ末端とＨ－ＣＤＲ１のＮ末端との間の部分配列であり、ＦＷ２はＨ－ＣＤＲ１のＣ末端とＨ－ＣＤＲ２のＮ末端との間の部分配列であり、ＦＷ３はＨ－ＣＤＲ２のＣ末端とＨ－ＣＤＲ３のＮ末端との間の部分配列であり、ＦＷ４はＨ－ＣＤＲ３のＣ末端とＶＨのＣ末端との間の部分配列である。同様に、特定のＶＬについて、ＦＷ１はＶＬのＮ末端とＬ－ＣＤＲ１のＮ末端との間の部分配列であり、ＦＷ２はＬ－ＣＤＲ１のＣ末端とＬ－ＣＤＲ２のＮ末端との間の部分配列である。ＦＷ３はＬ－ＣＤＲ２のＣ末端とＬ－ＣＤＲ３のＮ末端との間の部分配列であり、ＦＷ４はＬ－ＣＤＲ３のＣ末端とＶＬのＣ末端との間の部分配列である。

重鎖及び軽鎖の可変ドメインは、結合標的と相互作用する領域を含有し、この結合標的と相互作用する領域は、本明細書にて「抗原結合部位」（"antigen-binding site" or "antigen binding site"）とも称される。抗体の定常ドメインは、免疫系の様々な細胞（例えばエフェクター細胞）及び古典的補体系の第１成分（Ｃ１ｑ）を含む宿主組織又は宿主因子への抗体の結合を媒介することができる。本開示の例示的な抗体としては、典型的な抗体だけでなく、Ｆ（ａｂ’）２等のその二価フラグメント及び変形も挙げられる。

本明細書にて使用される場合、「抗体」という用語は、無傷ポリクローナル抗体、無傷モノクローナル抗体、二価抗体フラグメント（Ｆ（ａｂ’）２等）、二重特異性抗体等の多重特異性抗体、キメラ抗体、ヒト化抗体、ヒト抗体、及び抗原結合部位を含む任意の他の修飾免疫グロブリン分子を包含する。

抗体は、それぞれα、δ、ε、γ及びμと称されるそれらの重鎖定常ドメインの同一性に基づいて、免疫グロブリンの５つの主要クラス（アイソタイプ）：ＩｇＡ、ＩｇＤ、ＩｇＥ、ＩｇＧ及びＩｇＭ、又はそのサブクラス（例えばＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、ＩｇＧ４、ＩｇＡ１及びＩｇＡ２）のいずれかとすることができる。異なるクラスの免疫グロブリンは、異なる既知のサブユニット構造及び三次元配置を有する。抗体は、裸であっても、又は治療剤若しくは診断剤等の他の分子とコンジュゲートして免疫複合体を形成してもよい。

「抗原結合フラグメント」又は「Ｆａｂ」という用語は、重鎖及び軽鎖の各々の１つの定常ドメイン及び１つの可変ドメインを含む抗体フラグメントを指す。Ｆａｂフラグメントは、無傷モノクローナル抗体をパパインで消化することによって得ることができる。

形質細胞骨髄腫としても知られる「多発性骨髄腫」という用語は、通常は抗体を産生する白血球の一種である形質細胞の癌である。多くの場合、初期には症状が認められない。進行すると、骨痛、出血、頻繁な感染、及び貧血が起こることがある。合併症にはアミロイドーシスが含まれる場合がある。

腫瘍壊死因子受容体スーパーファミリーメンバー１７（ＴＮＦＲＳＦ１７）としても知られる「Ｂ細胞成熟抗原」（ＢＣＭＡ又はＢＣＭ）という用語は、ヒトにおいてＴＮＦＲＳＦ１７遺伝子によってコードされるタンパク質である。

「ＢＣＭＡ標的化部分」という用語は、ＢＣＭＡに結合することが可能な物質を指す。ＣＡＲとの関連で、ＢＣＭＡ標的化部分は、Ｔ細胞をＢＣＭＡ陽性細胞、好ましくは癌細胞に標的化する。ＣＡＲとの関連で、ＢＣＭＡ標的化部分が遺伝的にコード可能であることを理解されたい。

「キメラ抗原受容体」又は「ＣＡＲ」という用語は、Ｔ細胞を選ばれた抗原に標的化し、Ｔ細胞の機能、代謝及び持続性をリプログラミングする合成受容体を指す（Riviere & Sadelain, 2017. Mol Ther. 25(5):1117-1124を参照されたい）。同様に、「ＣＡＲＴ」という用語は、ＣＡＲを含むＴ細胞を指す。

「併用療法」、「と組み合わせて」又は「と併用して」は、本明細書にて使用される場合、少なくとも２つの異なる治療モダリティ（modalities）（すなわち化合物、構成要素、標的化剤又は治療剤）による任意の形態の併用、並行、同時、連続又は間欠的治療を表す。そのため、これらの用語は、被験体への一方の治療モダリティの投与の前、その間又はその後の他方の治療モダリティの投与を指す。組合せでのモダリティは、任意の順序で投与することができる。治療効果のあるモダリティは、共に（例えば、同じ又は別個の組成物、配合物又は単位剤形において同時に）又は別個に（例えば、同じ日又は異なる日に、別個の組成物、配合物又は単位剤形に適切な投与プロトコルに従って任意の順序で）、医療従事者によって処方される又は規制機関に従う方式及び投与計画で投与される。概して、各治療モダリティは、その治療モダリティについて決定される用量及び／又は日程で投与される。任意に、３つ以上のモダリティを併用療法において用いてもよい。さらに、本明細書にて提供される併用療法は、他のタイプの治療と併用することができる。例えば、他の抗癌治療は、被験体に対する現在の標準治療と関連する他の治療の中でも化学療法、外科手術、放射線療法（放射線）及び／又はホルモン療法からなる群より選択することができる。

「完全奏効」又は「完全寛解」又は「ＣＲ」は、ＲＥＣＩＳＴ ｖ１．１ガイドラインにおいて規定される全ての標的病変の消失を示す。これは必ずしも癌が治癒したことを意味するわけではない。

「共刺激シグナル伝達ドメイン」という用語は、例えばＴＣＲ／ＣＤ３複合体のＣＤ３ζ鎖によって与えられる一次シグナルに加えて、活性化、増殖、分化、サイトカイン分泌等を含むが、これらに限定されないＴ細胞応答を媒介するシグナルをＴ細胞に与えるシグナル伝達部分を指す。本発明の文脈において、共刺激ドメインは４－１ＢＢである。「４－１ＢＢ」という用語は、活性化Ｔ細胞の表面にアクセサリー分子の一種として発現される腫瘍壊死因子受容体（ＴＮＦＲ）スーパーファミリーのメンバーであるＣＤ１３７とも呼ばれる膜受容体タンパク質を指す［Kwon et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 86:1963 (1989); PoUok et al., J. Immunol. 151:771 (1993)］。４－１ＢＢは５５ｋＤａの分子量を有し、ホモダイマーとして見出される。４－１ＢＢは細胞外から内部へのシグナル伝達経路を媒介することが示唆されている［Kim et al., J. Immunol. 151:1255 (1993)］。ヒト４－１ＢＢ遺伝子は、活性化ヒト末梢Ｔ細胞ｍＲＮＡから作られたｃＤＮＡライブラリーから単離された［Goodwin et al., Eur. J. Immunol. 23:2631 (1993);］。ヒト４－１ＢＢのアミノ酸配列は、マウス４－１ＢＢに対して６０％相同性を示し［Kwon et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 86:1963 (1989); Gen Bank No:NM_011612］、これは配列が高度に保存されていることを示す。上記で述べたように、４－１ＢＢはＣＤ４０、ＣＤ２７、ＴＮＦＲ－Ｉ、ＴＮＦＲ－ＩＩ、Ｆａｓ、及びＣＤ３０と共に、ＴＮＦＲスーパーファミリーに属する［Alderson et al., Eur. J. Immunol. 24:2219 (1994)］。Ｔ細胞の表面に発現される４－１ＢＢにモノクローナル抗体が結合すると、抗ＣＤ３ Ｔ細胞の活性化が何倍も増加する［Pollok et al., J. Immunol. 150:771 (1993)］。４－１ＢＢは、マクロファージ及び活性化Ｂ細胞等の幾つかの抗原提示細胞に発現する高親和性リガンド（４－１ＢＢＬ、ＣＤ１３７Ｌとも呼ばれる）に結合する［Pollok et al., J. Immunol. 150:771 (1993) Schwarz et al., Blood 85:1043 (1995)］。４－１ＢＢＬは米国特許第５，６７４，７０４号の特許請求の範囲に記載され、説明されている。４－１ＢＢとそのリガンドとの相互作用は、Ｔ細胞の活性化及び成長につながる共刺激シグナルを提供する［Goodwin et al., Eur. J. Immunol. 23:2631 (1993)；Alderson et al., Eur. J. Immunol. 24:2219 (1994)；Hurtado et al., J. Immunol. 155:3360 (1995); Pollock et al., Eur. J. Immunol. 25:488 (1995)；DeBenedette et al., J. Exp. Med. 181:985 (1995)］。

「無病生存」（ＤＦＳ）は、患者が無病のままである治療中及び治療後の期間を指す。

本明細書にて使用される場合、作用物質、例えばＣＡＲＴ等の治療剤の「有効量」という用語は、有益な又は所望の結果、例えば臨床結果をもたらすのに十分な量であり、このため、「有効量」は、それが適用される状況に左右される。例えば、多発性骨髄腫を治療する治療剤を投与する状況では、有効量は、癌細胞の数を減少させ、腫瘍サイズ若しくは負荷を減少させ、末梢器官への癌細胞の浸潤を阻害し（すなわち、或る程度遅らせ、或る特定の実施形態においては停止させる）、腫瘍転移を阻害し（すなわち、或る程度遅らせ、或る特定の実施形態においては停止させる）、腫瘍成長を或る程度阻害し、癌と関連する症状の１つ以上を或る程度緩和し、及び／又は無進行生存（ＰＦＳ）、無病生存（ＤＦＳ）若しくは全生存（ＯＳ）の増大、完全奏効（ＣＲ）、部分奏効（ＰＲ）、若しくは場合によっては病勢安定（ＳＤ）、進行性疾患（ＰＤ）の減少、進行までの時間（ＴＴＰ）の短縮、若しくはそれらの任意の組合せ等の有利な応答をもたらすことができる。「有効量」という用語は、「有効用量」、「治療有効量」又は「治療有効用量」と区別なく使用することができる。

「個体」、「患者」又は「被験体」という用語は、ヒトを指定するために本出願において区別なく使用され、決して限定することを意図するものではない。「個体」、「患者」又は「被験体」は、任意の年齢、性別及び身体状態であってもよい。

「注入」又は「注入する」は、治療目的での静脈を介した体内への治療剤を含有する溶液の導入を指す。概して、これは静注バッグ（intravenous bag）によって達成される。

「細胞内シグナル伝達ドメイン」は、本明細書にて使用される場合、リンパ球の活性化をもたらす分子（ここではキメラ受容体分子）の１つ以上のドメインの全て又は一部を指す。かかる分子の細胞内ドメインは、細胞メディエーターと相互作用することによってシグナルを媒介し、増殖、分化、活性化及び他のエフェクター機能をもたらす。本発明のＣＡＲに使用される細胞内シグナル伝達ドメインの例としては、ＣＤ３ζ鎖の細胞内配列、及び／又はＣＡＲ連結後にシグナル伝達を開始するように協調して作用する補助受容体、並びにこれらの配列の任意の誘導体又は変異体、並びに同じ機能を有する任意の合成配列が挙げられる。

「モノボディ（monobody）」という用語は、フィブロネクチンＩＩＩ型ドメインに由来し、特定の標的に結合するように改変されたタンパク質を指す（Koide et al., 2013. J Mol Biol. 415(2):393-405を参照されたい）。

「ナノボディ」という用語は、重鎖抗体、好ましくはラクダ科重鎖抗体の可溶性単一抗原結合Ｖドメインを含むタンパク質を指す（Bannas et al., 2017. Front Immunol. 8:1603を参照されたい）。

「全生存」（ＯＳ）は、患者の登録から死亡又は判明している最後の生存日で打ち切られるまでの期間を指す。ＯＳは、未投与又は未治療の個体又は患者と比較した平均余命の延長を含む。全生存は、例えば診断又は治療の時点から１年、５年等の規定の期間にわたって患者が生存し続ける状況を指す。

「部分奏効」又は「ＰＲ」は、ＲＥＣＩＳＴ ｖ１．１ガイドラインにおいて規定される、治療に応答した、ベースライン直径和を参照として少なくとも３０％の標的病変の直径の和の減少を指す。

「ペプチドアプタマー」という用語は、特定の標的に結合することができる短い５～２０アミノ酸残基の配列を指す。ペプチドアプタマーは通例、安定したタンパク質足場のループ領域内に挿入される（Reverdatto et al., 2015. Curr Top Med Chem. 15(12):1082-101を参照されたい）。

本明細書にて使用される場合に、「薬学的に許容可能な担体」又は「薬学的に許容可能な希釈剤」は、医薬品投与と適合可能な任意の全ての溶剤、分散媒、コーティング剤、抗細菌剤及び抗真菌剤、等張剤及び吸収遅延剤を意味する。医薬品活性物質用のそのような媒体及び作用物質の使用は、当該技術分野でよく知られている。許容可能な担体、賦形剤又は安定剤は、使用される投与量及び濃度でレシピエントに対して非毒性であり、本発明の範囲を限定するものではないが、追加の緩衝剤、保存剤、共溶媒、アスコルビン酸及びメチオニンを含む酸化防止剤、ＥＤＴＡ等のキレート化剤、金属複合体（例えば、Ｚｎ－タンパク質複合体）、ポリエステル類等の生分解性ポリマー、ナトリウム、多価糖アルコール等の塩形成対イオン、アラニン、グリシン、グルタミン、アスパラギン、ヒスチジン、アルギニン、リジン、オルニチン、ロイシン、２－フェニルアラニン、グルタミン酸及びトレオニン等のアミノ酸、ラクチトール、スタキオース、マンノース、ソルボース、キシロース、リボース、リビトール、ミオイニシトース（myoinisitose）、ミオイニシトール（myoinisitol）、ガラクトース、ガラクチトール、グリセロール、シクリトール類（例えば、イノシトール）、ポリエチレングリコール等の有機糖類又は糖アルコール、尿素、グルタチオン、チオクト酸、チオグリコール酸ナトリウム、チオグリセロール、α－モノチオグリセロール及びチオ硫酸ナトリウム等の硫黄含有還元剤、ヒト血清アルブミン、ウシ血清アルブミン、ゼラチン又は他の免疫グロブリン等の低分子量タンパク質、並びにポリビニルピロリドン等の親水性ポリマーが挙げられる。Remington's Pharmaceutical Sciences 16th edition, Osol, A. Ed. (1980)に記載されるもののような他の薬学的に許容可能な担体、賦形剤又は安定剤が、医薬組成物の所望の特性に悪影響を及ぼさない限りにおいて、本明細書に記載される医薬組成物に含まれていてもよい。

「進行性疾患」又は「進行した疾患」は、ＲＥＣＩＳＴ ｖ１．１ガイドラインにおいて規定される、もう１つの新たな病変若しくは腫瘍の出現及び／又は既存の非標的病変の明白な進行を指す。進行性疾患又は進行した疾患は、腫瘍の量又は広がりのいずれかの増大による治療開始からの２０パーセントを超える腫瘍成長を指す場合もある。

「無進行生存」（ＰＦＳ）は、登録から疾患の進行又は死亡までの期間を指す。ＰＦＳは概して、カプラン－マイヤー法及び固形癌効果判定基準（Response Evaluation Criteria in Solid Tumors：ＲＥＣＩＳＴ）１．１標準を用いて測定される。概して、無進行生存は、癌が増悪することなく患者が生存し続ける状況を指す。

「ＲＥＣＩＳＴ」という用語は、固形癌効果判定基準を意味する。ＲＥＣＩＳＴガイドライン、基準又は標準は、成人及び小児癌の臨床試験に用いられる腫瘍サイズの変化の客観的評定のための固形腫瘍の測定及び定義の標準アプローチを記載している。ＲＥＣＩＳＴ ｖ１．１は、改訂ＲＥＣＩＳＴガイドラインのバージョン１．１を意味し、European Journal of Cancers 45 (2009) 228-247に公開されている。

「リピボディ（repebody）」という用語は、ロイシンリッチリピートモジュールに由来し、特定の標的に結合するように改変されたタンパク質を指す（Lee et al., 2012. PNAS. 109(9): 3299-3304を参照されたい）。

「有利に応答する」という用語は概して、被験体において有益な状態を生じることを指す。癌治療に関して、この用語は、被験体に対して治療効果をもたらすことを指す。癌における好ましい治療効果は、多数の方法で測定することができる（Weber, 2009. J Nucl Med. 50 Suppl 1:1S-10Sを参照されたい）。例えば、腫瘍成長阻害、分子マーカー発現、血清マーカー発現及び分子イメージング技術は全て、抗癌治療法の治療効力を評定するために用いることができる。腫瘍成長阻害に関して、ＮＣＩ標準によると、Ｔ／Ｃ≦４２％が抗腫瘍活性の最低レベルである。Ｔ／Ｃ＜１０％は、高い抗腫瘍活性レベルとみなされ、Ｔ／Ｃ（％）＝治療した場合の腫瘍体積中央値／対照の腫瘍体積中央値×１００である。有利な応答は、例えば無進行生存（ＰＦＳ）、無病生存（ＤＦＳ）若しくは全生存（ＯＳ）の増大、完全奏効（ＣＲ）、部分奏効（ＰＲ）、若しくは場合によっては病勢安定（ＳＤ）、進行性疾患（ＰＤ）の減少、無増悪期間（ＴＴＰ）の短縮、又はそれらの任意の組合せによって評定することができる。

「配列同一性」という用語は、ペアワイズ配列アラインメントツールを用いて２つの配列を比較した場合に得られるパーセンテージ値を指す。本件では、配列同一性は、デフォルト設定を用いるグローバルアラインメントツール「ＥＭＢＯＳＳ Ｎｅｅｄｌｅ」を用いて得られる（Rice et al., 2000. Trends Genet. 16(6):276-7、Li et al., 2015. Nucleic Acids Res. 43(W1):W580-4）。グローバルアラインメントツールは、https://www.ebi.ac.uk/Tools/psa/で利用可能である。

「一本鎖抗原結合フラグメント」又は「ｓｃＦａｂ」という用語は、抗体の重鎖の１つの可変ドメイン及び１つの定常ドメインに付着した抗体の軽鎖の１つの可変ドメイン及び１つの定常ドメインを含み、重鎖及び軽鎖が短ペプチドによって連結した融合タンパク質を指す。

「一本鎖可変フラグメント」又は「ｓｃＦｖ」という用語は、ペプチドリンカーによって互いに連結した抗体の重鎖（ＶＨ）及び軽鎖（ＶＬ）の可変ドメインを含む融合タンパク質を指す。この用語は、ジスルフィド安定化Ｆｖ（ｄｓＦｖ）も含む。ジスルフィド結合によってｓｃＦｖを安定化する方法は、Reiter et al., 1996. Nat Biotechnol. 14(10):1239-45に開示されている。

「病勢安定」は、ＲＥＣＩＳＴ ｖ１．１ガイドラインにおいて規定される、進行又は再燃のない疾患を指す。病勢安定では、部分奏効とみなすのに十分な腫瘍縮小も、進行性疾患とみなすのに十分な腫瘍増加も見られない。

「無増悪期間」（ＴＴＰ）は、登録から疾患の進行までの時間として規定される。ＴＴＰは概して、ＲＥＣＩＳＴ ｖ１．１基準を用いて測定される。

本出願で使用される「治療」及び「療法」という用語は、疾患及び／又は症状を治癒及び／又は緩和する目的と共に健康上の問題の改善を目標として使用される一連の衛生的手段、薬理学的手段、外科的手段及び／又は物理的手段を指す。「治療」及び「療法」という用語には、予防法及び治癒法が含まれる。それというのも、両者とも個体又は動物の健康の維持及び／又は回復に向けられるからである。症状、疾患及び障害の原因にかかわらず、健康上の問題を軽減及び／又は治癒するために適した薬剤の投与は、本出願の文脈内の治療又は療法の形として解釈されるべきである。

発明の詳細な説明
本発明者らは、プロテアソーム阻害剤、免疫調節剤及び抗ＣＤ３８モノクローナル抗体を含む少なくとも２種類の治療に対して再燃した又は難治性（Ｒ／Ｒ）になったＭＭ患者を治療するための多施設第Ｉ相臨床試験で投与される４－１ＢＢを共刺激ドメインとするＢＣＭＡに対するＣＡＲＴ細胞（ＡＲＩ２ｍ細胞）の開発に成功した。本発明者らのＡＲＩ２ｍ細胞はＡＲＩ２ｈにヒト化され、抗ＭＭ活性がヒト化バージョンで保持され、さらに、ＡＲＩ２ｈ細胞ではより低い細胞毒性プロファイルが観察されたことを示す。

ＢＣＭＡは、２０１３年にＣＡＲＴ細胞を用いたＭＭの治療のための有望な抗原として登場し（Carpenter RO, Evbuomwan MO, Pittaluga S, et al. B-cell maturation antigen is a promising target for adoptive T-cell therapy of multiple myeloma. Clin Cancer Res. 2013;19(8):2048-2060）、２０１６年にＣＤ２８を共刺激ドメインとするＣＡＲＴ ＢＣＭＡ細胞を受けたＭＭ患者を対象とした最初の臨床研究へと導いた（Ali SA, Shi V, Maric I, et al. T cells expressing an anti-B-cell maturation antigen chimeric antigen receptor cause remissions of multiple myeloma. Blood. 2016;128(13):1688-1700）。これらのＣＡＲＴ細胞は有効性を示したが、活性用量で治療された全ての患者が重度のＣＲＳを発症したことから、高い細胞毒性プロファイルを示した。したがって、ＣＤ２８は４－１ＢＢに置き換えられ、ｂｂ２１２１と呼ばれる新たなＣＡＲは管理可能な毒性を示し、応答を得るには１５０×１０^６個の最低用量のＣＡＲＴ細胞が必要であることを示した（Raje N, Berdeja J, Lin Y, et al. Anti-BCMA CAR T-Cell Therapy bb2121 in Relapsed or Refractory Multiple Myeloma. N Engl J Med. 2019;380(18):1726-1737）。並行して、ＭＭ患者における２つの追加の研究（Cohen AD, Garfall AL, Stadtmauer EA, et al. B cell maturation antigen-specific CAR T cells are clinically active in multiple myeloma. J Clin Invest. 2019;130及びZhao WH, Liu J, Wang BY, et al. A phase 1, open-label study of LCAR-B38M, a chimeric antigen receptor T cell therapy directed against B cell maturation antigen, in patients with relapsed or refractory multiple myeloma. J Hematol Oncol. 2018;11(1):141）は、以前の治療回数が少ないほど応答が良くなること、及びｉｎ ｖｉｖｏでのＣＡＲ Ｔ細胞の増加及び活性にリンパ球枯渇が絶対的に必要ではないものの、リンパ球枯渇後の短期的な増加がより一貫していることを実証した。ほとんどのＭＭ患者が最終的に再燃することが研究で示されている（ＣＡＲＴ１９で治療されたＡＬＬ患者には認められない知見である）ため、様々な要因がＣＡＲＴＢＣＭＡ療法で改善される必要がある因子である疾患の長期の制御を強化するＣＡＲＴの増加及び持続に影響を与える。これに関して、ＣＡＲのｓｃＦｖのマウス成分がヒト免疫系による免疫反応を開始し、ＣＡＲＴ細胞の早期消失を引き起こすため、ＣＡＲＴ細胞の持続性はヒト又はヒト化されたＣＡＲの使用により改善され得る。これらの以前の研究に基づき、またＡＲＩ２ｍとＡＲＩ２ｈの両方が疾患の進行を等しく回避したことを示すという結果に裏付けられて、本発明者らは、４－１ＢＢ共刺激ドメインを含むヒト化ＣＡＲＴＢＣＭＡ細胞であるＡＲＩ２ｈ細胞を選択した。

ＣＡＲＴ細胞の持続性に影響を与える他の要因としては、ＣＡＲＴ細胞の疲弊プロファイル、及びＣＡＲＴＢＣＭＡ細胞ではｉｎ ｖｉｖｏでのＣＡＲＴ増加と相関する白血球アフェレーシス産物におけるＣＤ４／ＣＤ８比が挙げられる。本発明において、初期のＣＤ４／ＣＤ８比にかかわらず、全てのｉｎ ｖｉｔｒｏでの増加はＣＤ４／ＣＤ８＞１を達成し、腫瘍細胞への曝露後、優先的なＣＤ８Ｔ細胞増殖により、ほぼ等しい量のＣＤ４及びＣＤ８に正常化した。さらに、腫瘍細胞への連続曝露は、ＡＲＩ２ｈ細胞がＡＲＩ２ｍと比較してより高い増殖を達成したことを示し、ＡＲＩ２ｈ細胞の疲弊が少ないことを示唆している。これに関して、ＣＤ２８及び４－１ＢＢ共刺激ドメインを用いたＣＡＲＴ１９における研究では、標的抗原の高親和性又は高発現によるＣＡＲＴ細胞の強力な活性化が、疲弊の増加を伴うエフェクターＴ細胞の表現型につながることが示され、逆に、より低い親和性によるより弱い活性化は、疲弊を軽減するＴ細胞記憶表現型につながる。ここで、ヒト化プロセスは、ＡＲＩ２ｈ細胞のＣＡＲＴ親和性が低下する可能性のあるアミノ酸配列の変化を含み、１回のチャレンジの後、アッセイでのｉｎ ｖｉｔｒｏ活性が遅くなることを説明し、それどころか、腫瘍細胞への連続的なチャレンジの後、持続的でより高いＣＡＲＴ細胞増殖が起こり、非常に進行した腫瘍モデルではより長いｉｎ ｖｉｖｏでの疾患の制御が可能となる。

ＣＲＳの高い発生率及び神経毒性は、ＣＡＲＴ細胞投与後に発生する一般的な事象であり、国際的なガイドラインに従って効率的に管理されているが、理想的なＣＡＲＴ治療はＣＲＳの発症を最小限に抑えるよう努めるべきである。ここで、ＡＲＩ２ｍの代わりにＡＲＩ２ｈ細胞を使用することは、ＡＲＩ２ｍ細胞と比較して、ＡＲＩ２ｈのより低いｉｎ ｖｉｖｏ毒性プロファイル及びより低いＴＮＦαのｉｎ ｖｉｔｒｏでの産生の観察によって更に裏付けられる。ＩＬ６は単球及びマクロファージによって産生されるＣＲＳのエフェクターサイトカインであり、ＣＲＳが発症するにつれて指数関数的に増加するのに対し、ＴＮＦα及びＩＬ１β等の他のサイトカインはＣＲＳの主なイニシエータであり、それらは、ＣＡＲＴ細胞によって産生されるＩＦＮによって活性化されると、単球及びマクロファージによって早い時期に産生される。実際、ＴＮＦαは、様々な炎症性疾患の治療標的として現れる多くの炎症性疾患におけるサイトカインカスケードを組織するイニシエータサイトカインとして作用する。ここでは、ｉｎ ｖｉｖｏシナリオにより類似したモデルを模倣する、マクロファージを使用した本発明者らのｉｎ ｖｉｔｒｏモデルが、ＡＲＩ２ｈ細胞がマクロファージによるＴＮＦα産生の低下につながったことを示し、これは、ＴＮＦαの高いピークに関連するＣＡＲＴＢＣＭＡ後のＭＭ患者におけるＣＲＳと関連する知見である。

最後に、この研究では、ｓＢＣＭＡがＣＡＲＴ活性に及ぼす影響を注意深く分析し、ｓＢＣＭＡが標的からＣＡＲＴ細胞を受け入れる（entertains）ことを確認し、更に、ＣＡＲＴＢＣＭＡ細胞間でフラトリサイド（fratricide）を引き起こす可能性がある。ＭＭにおけるＣＡＲＴＢＣＭＡを用いた前臨床及び臨床試験では、ｓＢＣＭＡとＣＡＲＴ活性との間に何らの相関関係も見られないにもかかわらず、本発明者らは、ＭＭ細胞を急速に排除する高いｉｎ ｖｉｔｒｏ ＣＡＲＴ活性が前臨床試験におけるｓＢＣＭＡの役割を適切に分析するのを妨げることを観察した。さらに、応答を誘導するためにＡＬＬ患者におけるＣＡＲＴ１９と比較してＭＭで必要とされるＣＡＲＴＢＣＭＡ細胞の用量が高いことから、必要とされるこの高用量のＣＡＲＴにｓＢＣＭＡが関与する可能性があるという仮説が導かれた。したがって、本発明者らのｉｎ ｖｉｔｒｏモデルは低いＣＡＲＴＢＣＭＡ：ＭＭ比で実施され、ｓＢＣＭＡの持続放出を伴う環境が作り出され、γ－セクレターゼ阻害剤の添加により、ｓＢＣＭＡがＣＡＲＴＢＣＭＡ活性に及ぼす悪影響が確認された。

結論として、本発明者らは本明細書で高い有効性を保持し、そのマウス対応物（ＡＲＩ２ｍ）よりも低い毒性プロファイルを示すヒト化されている共刺激ドメインとして４－１ＢＢを有するＣＡＲＴ ＢＣＭＡ（ここで、ＣＡＲは配列番号１３のＡＲＩ２ｈに対応する）を提示する。このＣＡＲ（ＡＲＩ２ｈ）を、臨床試験で使用するために、ＧＭＰ条件下で効率的に増加させる。したがって、本発明の主な目的は、ＡＲＩ２ｈのキメラ抗原受容体及びその変異体を保護することであり、以下の説明に記載されている。

ＡＲＩ２ｈのキメラ抗原受容体及びその変異体
一態様において、本発明は、ＢＣＭＡ標的化部位を含む細胞外ドメイン、膜貫通ドメイン、及び細胞内シグナル伝達ドメインを含む、ＡＲＩ２ｈのキメラ抗原受容体（ＣＡＲ）又はその変異体を提供する。かかるドメインについて、以下で詳しく説明する。

ＢＣＭＡ標的化部分
幾つかの実施形態において、ＢＣＭＡ標的化部分は抗体、アンチカリン、リピボディ、モノボディ、ｓｃＦｖ、Ｆａｂ、ｓｃＦａｂ、アフィボディ、フィノマー、ＤＡＲＰｉｎ、ナノボディ、又はＢＣＭＡに特異的に結合するペプチドアプタマーである。

ＢＣＭＡに特異的に結合する結合分子は、ＭＭの診断及び治療に非常に役立つ可能性がある。ＢＣＭＡに対する幾つかのマウスモノクローナル抗体がこの分野で知られている。しかしながら、マウス抗体は、短い血清半減期、或る特定のヒトエフェクター機能を誘発することができないこと、及びマウス抗体に対する望ましくない免疫応答の生成等といったマウス抗体のヒトへの投与に関連する問題により、ｉｎ ｖｉｖｏでの使用が制限されている。これらの先に言及された欠点を克服して、新たなヒト抗体が開発された。

抗体を生成するファージディスプレイ及びコンビナトリアル方法が当該技術分野で既知である（例えば、Ladner et al.の米国特許第５，２２３，４０９号、Kang et al.の国際公開第９２／１８６１９号、Dower et al.の国際公開第９１／１７２７１号、Winter et al.の国際公開第９２／２０７９１号、Markland et al.の国際公開第９２／１５６７９号、Breitling et al.の国際公開第９３／０１２８８号、McCafferty et al.の国際公開第９２／０１０４７号、Garrard et al.の国際公開第９２／０９６９０号、Ladner et al.の国際公開第９０／０２８０９号、Fuchs et al. (1991) Bio/Technology 9:1370-1372、Hay et al. (1992) Hum Antibod Hybridomas 3:81-85、Huse et al. (1989) Science 246:1275-1281、Griffths et al. (1993) EMBO J 12:725-734、Hawkins et al. (1992) J Mol Biol 226:889-896、Clackson et al. (1991) Nature 352:624-628、Gram et al. (1992) PNAS 89:3576-3580、Garrad et al. (1991) Bio/Technology 9:1373-1377、Hoogenboom et al. (1991) Nuc Acid Res 19:4133-4137及びBarbas et al. (1991) PNAS 88:7978-7982に記載され、これらのいずれの内容も引用することにより本明細書の一部をなす）。

さらに、特定の標的に結合する非免疫グロブリン足場を生成及び選択する方法が当該技術分野で既知である（例えば、Skrlec, et al., 2015. Trends Biotechnol. 33(7):408-18を参照されたい）。

幾つかの実施形態において、ＢＣＭＡ標的化部分、好ましくは抗体、ｓｃＦｖ、Ｆａｂ、又はｓｃＦａｂは、ＶＨドメインを含み、該ＶＨドメインは、配列番号１：

、又は配列番号１と少なくとも８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％若しくは９９％の配列同一性を有するその変異体を含むか、又はそれのみからなる。

幾つかの実施形態において、ＢＣＭＡ標的化部分、好ましくは抗体、ｓｃＦｖ、Ｆａｂ、又はｓｃＦａｂは、上述のＶＨドメインを含み、ＶＬドメインを更に含み、該ＶＬドメインは、配列番号２：

、又は配列番号２と少なくとも８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％若しくは９９％の配列同一性を有するその変異体を含むか、又はそれのみからなる。

幾つかの実施形態において、ＢＣＭＡ標的化部分、好ましくは抗体、ｓｃＦｖ、Ｆａｂ、又はｓｃＦａｂは、ＶＬドメイン及びＶＨドメインを含み、該ＶＬドメイン及び該ＶＨドメインは、配列番号１及び２又は上記で定義したこれらの配列のいずれかの変異体を含むか又はそれらのみからなる。好ましくは、上記配列ＶＬドメイン及び上記ＶＨドメインは、配列番号３：

、又は配列番号３と少なくとも８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％若しくは９９％の配列同一性を有するその変異体を含むか、又はそれのみからなる。

本明細書において、上述の配列番号３のＶＬドメイン及びＶＨドメインは、リンカー配列、特に配列番号４：

を含むことに留意されたい。ただし、他のリンカー配列が使用される場合もある。

さらに、ＶＬドメイン及びＶＨドメイン、特に配列番号３は、ペプチドシグナルを更に含む場合があり、好ましくは、該シグナルペプチドは、配列番号５：

、又は配列番号５と少なくとも８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％若しくは９９％の配列同一性を有するその変異体を含むか、又はそれのみからなることに留意されたい。

幾つかの実施形態において、ＢＣＭＡ標的化部分、好ましくは抗体、ｓｃＦｖ、Ｆａｂ、又はｓｃＦａｂは、配列番号６：

、又は配列番号６と少なくとも８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％若しくは９９％の配列同一性を有するその変異体を含むか、又はそれのみからなる。

膜貫通ドメイン
膜貫通ドメインは、天然供給源又は合成供給源のいずれに由来していてもよい。供給源が天然である場合、ドメインは任意の膜結合又は膜貫通タンパク質に由来し得る。膜貫通領域は、少なくともＣＤ２８、ＣＤ３、ＣＤ４５、ＣＤ４、ＣＤ８、ＣＤ９、ＣＤ１６、ＣＤ２２、ＣＤ３３、ＣＤ３７、ＣＤ６４、ＣＤ８０、ＣＤ８６、ＣＤ１３４、ＣＤ１３７又はＣＤ１５４のα鎖、β鎖又はζ鎖の一又は複数の膜貫通領域を含み得る。膜貫通領域は、少なくとも一又は複数の膜貫通領域ＣＤ８ａを含むことが好ましい。

膜貫通ドメインは、合成であっても又は自然発生膜貫通ドメインの変異体であってもよい。幾つかの実施形態において、合成又は変異体膜貫通ドメインは、主にロイシン及びバリン等の疎水性残基を含む。

幾つかの実施形態において、膜貫通ドメインはＣＤ２８、ＣＤ３、ＣＤ４５、ＣＤ４、ＣＤ８、ＣＤ９、ＣＤ１６、ＣＤ２２、ＣＤ３３、ＣＤ３７、ＣＤ６４、ＣＤ８０、ＣＤ８６、ＣＤ１３４、ＣＤ１３７、ＣＤ１５４の膜貫通ドメイン、又はそれらの変異体を含み、それらの変異体は少なくとも８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％、又は９９％の配列同一性を有する。上記膜貫通ドメインは、少なくともＣＤ８ａの膜貫通ドメインを含むか、又はそれのみからなることが好ましい。

幾つかの実施形態において、膜貫通ドメインは、ＣＤ８ａの膜貫通ドメイン又はその変異体を含むか、又はそれからなり、その変異体は少なくとも８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％又は９９％の配列同一性を有する。

特に、幾つかの実施形態において、膜貫通ドメインは、配列番号７、又は配列番号７と少なくとも８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％若しくは９９％の配列同一性を有する変異体を含むか、又はそれのみからなる。

ＣＤ８ａ由来の膜貫通ドメイン（配列番号７：

）。

幾つかの実施形態において、ＣＤ８ａに由来するドメインは、ＣＤ８ヒンジ、好ましくは配列番号８：

、又は配列番号８と少なくとも８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％若しくは９９％の配列同一性を有するその変異体に直接結合される。

したがって、更に幾つかの実施形態において、膜貫通ドメインはＣＤ８ヒンジを更に含み、配列番号９：

、又は配列番号９と少なくとも８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％若しくは９９％の配列同一性を有するその変異体を含むか、又はそれのみからなる。

細胞内シグナル伝達ドメイン
細胞内シグナル伝達ドメインは、腫瘍細胞上で発現されるリガンドへの結合後にＣＡＲを発現する細胞の少なくとも１つの機能の活性化をもたらす。幾つかの実施形態において、細胞内シグナル伝達ドメインは、１つ以上の細胞内シグナル伝達ドメインを含有する。幾つかの実施形態において、細胞内シグナル伝達ドメインは、ＣＡＲを含む細胞の少なくとも１つの機能の活性化をもたらす細胞内シグナル伝達ドメインの一部及び／又は変異体である。

幾つかの実施形態において、細胞内シグナル伝達ドメインは、ＣＤ３ζ、ＦｃＲγ、ＣＤ３γ、ＣＤ３δ、ＣＤ３ε、ＣＤ５、ＣＤ２２、ＣＤ７９ａ、ＣＤ７９ｂ、ＣＤ６６ｂの細胞内ドメイン、又はそれらの変異体を含むか、又はそれらからなり、それらの変異体は少なくとも８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％又は９９％の配列同一性を有する。

幾つかの実施形態において、細胞内シグナル伝達ドメインは、ＣＤ３ζ又はその変異体の細胞内ドメインを含むか、又はそれからなり、その変異体は少なくとも８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％又は９９％の配列同一性を有する。

幾つかの実施形態において、細胞内シグナル伝達ドメインは、配列番号１０、又は配列番号１０と少なくとも８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％若しくは９９％の配列同一性を有するその変異体を含む。配列番号１０は、以下の配列で表されることに留意されたい。

共刺激シグナル伝達ドメイン
本発明のＣＡＲ、ＡＲＩ２ｈ ＣＡＲ又はその変異体は、共刺激シグナル伝達メインを更に含まなければならないことに留意されたい。幾つかの実施形態において、共刺激シグナル伝達ドメインは、４－１ＢＢの細胞内ドメイン又はその変異体を含み、その変異体は、少なくとも８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％、又は９９％の配列同一性を有する。

幾つかの実施形態において、共刺激シグナル伝達ドメインは、４－１ＢＢの細胞内ドメイン又はその変異体を含むか、又はそれからなり、その変異体は、少なくとも８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％、又は９９％の配列同一性を有する。

幾つかの実施形態において、共刺激シグナル伝達メインは、配列番号１１又は配列番号１１と少なくとも８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％若しくは９９％の配列同一性を有するその変異体を含むか、又はそれのみからなる。本明細書において、４－１ＢＢに由来する共刺激シグナル伝達ドメインは、配列番号１１：

で表されることに留意されたい。

本発明による全配列ＣＡＲ
本発明によるＡＲＩ２ｈ ＣＡＲの全アミノ酸配列は、配列番号１３：

（ここで、
シグナルペプチドは配列番号５からなり、
ＶＨドメインは配列番号１からなり、
リンカー配列は配列番号４からなり、
ＶＬドメインは配列番号２からなり、
ＣＤ８ヒンジは配列番号８からなり、
膜貫通ドメインは配列番号７からなり、
４－１ＢＢドメインは配列番号１１からなり、
ＣＤ３ｚドメインは配列番号１０のみからなる）を含むか、又はそれのみからなることに留意されたい。

幾つかの実施形態において、本発明によるＣＡＲは、以下を含むことを特徴とし得る：
（ｉ）ＶＬドメイン及びＶＨドメインを含むか、又はそれのみからなるＢＣＭＡ標的化部分、好ましくは抗体、ｓｃＦｖ、Ｆａｂ、又はｓｃＦａｂであって、該ＶＨドメイン及び該ＶＬドメインはそれぞれ、配列番号１及び配列番号２、又はそのいずれかの変異体を含むか、又はそれらからなり、その変異体は、配列番号１及び／又は配列番号２のいずれかと少なくとも８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％、又は９９％の配列同一性を有する、ＢＣＭＡ標的化部分；
（ｉｉ）配列番号９又はその変異体を含むか、又はそれのみからなるヒンジドメインに結合した膜貫通ドメインであって、その変異体は、配列番号９と少なくとも８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％、又は９９％の配列同一性を有する、膜貫通ドメイン；
（ｉｉｉ）配列番号１１又はその変異体を含むか、又はそれのみからなる共刺激シグナル伝達ドメインであって、その変異体は、配列番号１１と少なくとも８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％、又は９９％の配列同一性を有する、共刺激シグナル伝達ドメイン；並びに、
（ｉｖ）配列番号１０又はその変異体を含むか、又はそれのみからなる細胞内シグナル伝達ドメインであって、その変異体は、配列番号１０と少なくとも８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％、又は９９％の配列同一性を有する、細胞内シグナル伝達ドメイン。

幾つかの実施形態において、ＣＡＲは、配列番号１３：

、又は配列番号１３と少なくとも８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％若しくは９９％の配列同一性を有するその変異体を含むか、又はそれのみからなる。

核酸
一態様において、本発明は、上記に開示するＣＡＲのいずれか１つを含む本発明のＣＡＲのいずれか１つをコードする核酸を提供する。キメラ受容体をコードする核酸配列は、効率的なＴ細胞活性化及びＢＣＭＡの認識に対してキメラ受容体をカスタマイズするために切除し、他の構成要素と置き換えることができる多数のモジュール構成要素同士を接続する。

幾つかの実施形態において、核酸は、細胞の形質導入又は形質転換に適している。幾つかの実施形態において、核酸は、養子免疫療法に使用されるＴ細胞の形質導入又は形質転換に適している。

幾つかの実施形態において、核酸は、哺乳動物細胞における発現のためにコドン最適化される。コドン最適化方法は、当該技術分野で既知である（例えば、Parret et al., 2016. Curr Opin Struct Biol. 39: 155-162を参照されたい）。

本発明の核酸は、Ｔ細胞の形質導入又は形質転換に使用することができるレンチウイルスベクターに含まれ得る（Riviere & Sadelain, 2017. Mol Ther. 25(5):1117-1124を参照されたい）。現在、レンチウイルスベクターを用いたＴ細胞の形質導入は、ヒトにおいてより広く用いられている手法である。ＤＮＡトランスポゾン、ＲＮＡトランスフェクション、又はＴＡＬＥＮ、ＺＦＮ及びＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓ９等のゲノム編集技術を用いて核酸を細胞に挿入することもできる（Riviere & Sadelain, 2017. Mol Ther. 25(5):1117-1124を参照されたい）。

本発明によるＣＡＲＳの全ヌクレオチド配列は、配列番号１２：

を含むか、又はそれのみからなることが好ましい。

細胞
一態様において、本発明は、本発明の核酸及び／又は本発明のＣＡＲを含む細胞を提供する。幾つかの実施形態において、細胞はＴ細胞（ＣＡＲＴと称される）である。

幾つかの実施形態において、細胞はナイーブＴ細胞、メモリーステムＴ細胞又はセントラルメモリーＴ細胞である。これらの細胞が適応免疫療法により良好に適していると現在考えられている（Riviere & Sadelain, 2017. Mol Ther. 25(5):1117-1124を参照されたい）。

幾つかの実施形態において、細胞は自己Ｔ細胞である。「自己細胞」という用語は、本発明の方法のいずれか１つを用いて治療されるのと同じ患者から得られた細胞を指す。

幾つかの実施形態において、細胞は同種寛容（allo-tolerant）Ｔ細胞である。「同種寛容細胞」という用語は、移植片対宿主病応答のリスクを低下させるように改変された細胞を指す。幾つかの実施形態において、これはＴＣＲ及び／又はβ２－ミクログロブリンのゲノム編集を介した欠失によって達成される^{１５、１９}。同種寛容細胞は、当該技術分野で既知である（Riviere & Sadelain, 2017. Mol Ther. 25(5):1117-1124の同種Ｔ細胞の章を参照されたい）。

幾つかの実施形態において、細胞は、成熟Ｔ細胞へと分化する能力を有するリンパ球前駆体、胚性幹細胞又は誘導多能性幹細胞である（Riviere & Sadelain, 2017. Mol Ther. 25(5):1117-1124を参照されたい）。

医薬組成物
一態様において、本発明は、本発明の複数の細胞と薬学的に許容可能な担体又は希釈剤とを含む医薬組成物を提供する。

本明細書に記載される医薬組成物は、その他の物質も含有し得る。これらの物質としては、限定されるものではないが、凍結保護剤、界面活性剤、酸化防止剤及び安定剤が挙げられる。本明細書にて使用される「凍結保護剤」という用語は、凍結誘導ストレスに対してＣＡＲＴに安定性を与える作用物質を含む。凍結保護剤の非限定的な例としては、スクロース、グルコース、トレハロース、マンニトール、マンノース及びラクトース等の糖類、デキストラン、ヒドロキシエチルデンプン及びポリエチレングリコール等のポリマー、ポリソルベート等の界面活性剤（例えば、ＰＳ－２０又はＰＳ－８０）並びにグリシン、アルギニン、ロイシン及びセリン等のアミノ酸が挙げられる。生物系における毒性が低い凍結保護剤が一般的に使用される。

幾つかの実施形態において、細胞を初めにそれらの培養培地から採取し、次いで細胞を洗浄し、投与に適している培地及び容器システム（「薬学的に許容可能な」担体）において治療有効量で濃縮することによって細胞を配合する。好適なインフュージョン培地は任意の等張培地配合物、通例、生理食塩水、Ｎｏｒｍｏｓｏｌ Ｒ（Abbott）又はＰｌａｓｍａ－Ｌｙｔｅ Ａ（Baxter）とすることができ、水又は乳酸リンゲル液中の５％デキストロースを用いることもできる。インフュージョン培地にヒト血清アルブミン、ウシ胎仔血清又は他のヒト血清成分を添加してもよい。

一態様において、本発明は、薬剤として使用される本発明による細胞又は本発明による医薬組成物を提供する。

治療方法
一態様において、本発明は、本発明の細胞又は本発明の医薬組成物を、それを必要とする患者に投与することを含む、多発性骨髄腫を治療する方法を提供する。

幾つかの実施形態において、患者に治療有効量の細胞を投与する。幾つかの実施形態において、患者に少なくとも１０^２個、１０^３個、１０^４個、１０^５個、１０^６個、１０^７個、１０^８個、１０^９個又は１０^１０個の細胞を投与する。細胞の数は、組成物が対象とする最終的な用途によって決まり、組成物に含まれる細胞のタイプも同様である。

幾つかの実施形態において、細胞又は医薬組成物を静脈内に、腹腔内に、骨髄に、リンパ節に及び／又は脳脊髄液に投与する。

幾つかの実施形態において、方法は併用療法を含む。幾つかの実施形態において、方法は、免疫チェックポイント阻害剤を更に投与することを含む（Lim & June, 2017. Cell. 168(4):724-740を参照されたい）。更なる実施形態において、方法は、免疫チェックポイント阻害剤及び／又はＩＡＰ阻害剤を更に投与することを含む（国際公開第２０１６／０５４５５５号を参照されたい）。

幾つかの実施形態において、本明細書に記載される細胞又は医薬組成物を化学療法剤及び／又は免疫抑制剤と組み合わせて投与する。一実施形態において、患者を初めに他の免疫細胞を阻害又は破壊する化学療法剤、続いて本明細書に記載される細胞又は医薬組成物で治療する。場合によっては、化学療法を完全に回避することができる。

以下の実施例は、本発明を説明する役割を果たすが、これらに限定されるものではない。

材料及び方法
倫理声明：人体材料に関する研究は、臨床研究倫理委員会（Hospital Clinic、バルセロナ）によって承認された。末梢血（ＰＢ）Ｔ細胞を、インフォームドコンセントを得た健康なドナーから取得した。全ての動物にかかわる作業を、動物研究倫理委員会（Hospital Clinic、バルセロナ）の下で行った。

細胞培養：ＲＰＭＩ８２２６、Ｕ２６６、及びＫ５６２を、Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｔｉｓｓｕｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（ATCC、バージニア州マナッサス）から購入した。ＡＲＰ１細胞株は、多発性骨髄腫研究センター（米国アラスカ州リトルロック）から親切に提供された。細胞株（Ｋ５６２、ＲＰＭＩ８２２６、及びＡＲＰ１）を、１０％ウシ胎児血清（ＦＢＳ）及び１％のペニシリン／ストレプトマイシン（Ｐｅｎ／Ｓｔｒｅｐ）を含むＲＰＭＩ、並びに１５％ＦＢＳを含むＵ２６６で培養した。２９３－Ｔ細胞を１０％ＦＢＳ及び１％Ｐｅｎ／Ｓｔｒｅｐを含むＤＭＥＭで培養した。リンパ球を、フィコール及びＴ細胞分離キットによる磁気枯渇（Miltenyi Biotec）によって健康なドナーから得た。Ｔ細胞はＣｌｉｃｋの培地（Irvine Scientific製の５０％ＲＰＭＩ、５０％Ｃｌｉｃｋの培地、５％ヒト血清及び１％Ｐｅｎ／ｓｔｒｅｐを添加）で増加させ、Ｄｙｎａｂｅａｄｓ Ｈｕｍａｎ Ｔ－Ａｃｔｉｖａｔｏｒ ＣＤ３／ＣＤ２８（Thermo Fisher Scientific）及びＩＬ－２（１００ＩＵ）で一日おきに活性化した。Ｔ細胞増加の８日～１０日後に実験を行った。マクロファージは、１週間にＲＰＭＩ １０％ＦＢＳ及び０．１ｍｇ／ｍｌのＭ－ＣＳＦ（Thermo Fisher Scientific）で増加後に単球から分化させた。

クローニング及びヒト化：ＡＲＩ２ｍ膜貫通ドメイン、共刺激ドメイン（４－１ＢＢ）及びＣＤ３ζを、本発明者らの施設で使用されたＣＡＲＴ１９を含むレンチウイルスベクターから得た（ｐＣＣＬ－ＥＦ１α－ＣＤ１９－ＣＤ８ａ－４１ＢＢ－ＣＤ３ζ）。ｓｃＦｖ－ＣＤ１９を、Oden F. et alが以前に発表した抗ＢＣＭＡ抗体Ｊ２２．９から得て、ＮＣＢＩ－Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｇｅｎｂａｎｋにて無償で入手可能なｓｃＦｖ ＢＣＭＡの代わりに使用した。マウスＡＲＩ２ｍに対応する、シグナルペプチド、ＶＨ、リンカー、ＶＬ、ＣＤ８ヒンジ、ＣＤ８ ＴＭ、４－１ＢＢ、及びＣＤ３ζに対応する完全なアミノ酸配列を以下に示す。

マウス（ＡＲＩ２ｍ）（配列番号１４）：

シグナルペプチド（配列番号５）：

ＶＨ（配列番号１５）：

リンカー（配列番号４）：

ＶＬ（配列番号１６）：

ＣＤ８ヒンジ（配列番号８）：

ＣＤ８ ＴＭ（配列番号７）：

４－１ＢＢ（配列番号１１）：

ＣＤ３ζ（配列番号１０）：

ＡＲＩ２ｈを得るため、ＡＲＩ２ｍ配列のｓｃＦｖを２つの予測モデル（Ｂｌａｓｔ及びＧｅｒｍｌｉｎｅ）を用い、ヒト化してマウスのアミノ酸をそれらのヒトのホモログに置き換え、相補性決定領域（ＣＤＲ）とバーニアゾーン（Vernier Zone）の両方を除いた。配列の準備が整うと、ＡＲＩ２ｍと同じ手順を用いてｐＣＣＬベクターにクローニングした。ヒト化配列と並んで、ＡＲＩ２ｈとＡＲＩ２ｍとのアミノ酸配列の違いを以下に示す。

ヒト化（配列番号１３に対応するＡＲＩ２ｈ（Ｇｅｒｍｌｉｎｅ変異体））：

ＶＨ（配列番号１）：

リンカー（配列番号４）：

ＶＬ（配列番号２）：

ＣＤ８ヒンジ（配列番号８）：

ＣＤ８ ＴＭ（配列番号７）：

４－１ＢＢ（配列番号１１）：

ＣＤ３ζ（配列番号１０）：

ヒト化プロセス中に生じたアミノ酸の違い（ＡＲＩ２ｍとＡＲＩ２ｈとの比較）：
太字：ＣＤＲ
斜体：バーニアゾーン
下線付き：ＡＡの変更
ＶＨ：
マウス（ＡＲ２ｍ）：

ヒト化（ＡＲ２ｈ）：

ＶＬ：
マウス（ＡＲ２ｍ）：

ヒト化（ＡＲ２ｈ）：

ウイルス産生及びＣＡＲ発現：２９３－Ｔ細胞をレンチウイルスベクター（ｐＣＣＬ－ＥＦ１α－ＢＣＭＡ、ｐＲＥＶ－ＲＥＶ、ｐＭＤＬｇ／ｐＲＲＥ及びｐＣＭＶ－ＶＳＶ－Ｇ）でトランスフェクトしてレンチウイルスウイルスを産生し、４８時間後に上清を採取し、製造業者のプロトコルに従ってＬｅｎｔｉＸ濃縮器（Clontech、Takara）で濃縮した。濃縮レンチウイルスを、使用するまで－８０℃に保持した。健康なドナーからのＴ細胞をＤｙｎａｂｅａｄｓで０日目に活性化させ、２日目にポリブレン（Merck Millipore）を加えて濃縮レンチウイルスで形質導入し、２０００ｒｐｍで１時間遠心分離した。

フローサイトメトリー：ＣＡＲ－ＢＣＭＡ検出のために、細胞を組換えＢＣＭＡ－Ｆｃタンパク質（Enzo Life Sciences）と共にインキュベートした後、Ｂｒｉｌｌｉａｎｔ Ｖｉｏｌｅｔ（ＢＶ）－４２１（Biolegend）にコンジュゲートした二次抗体抗ヒトＩｇＧ ＦＣと共にインキュベートした。Ｔ細胞の染色及び疲弊に用いた抗体は、ＣＤ３－ＡＰＣ及びＣＤ８－ＰＥ（Becton Dickinson）、ＰＤ１－ＡＰＣ、ＴＩＭ３－ＡＰＣ、及びＬＡＧ３－ＡＰＣ（Thermo Fisher Scientific）であった。多発性骨髄腫細胞をＣＤ１３８－ＢＶ４２１（Becton Dickinson）及びＢＣＭＡ－ＡＰＣ（Biolegend)で染色した。全ての実験でフローサイトメトリー分析を、ＦｌｏｗＪｏソフトウェアを用いて行った。

増殖アッセイ：ＣＡＲ－Ｔ細胞をＣｅｌｌＴｒａｃｅ（商標）ＣＦＳＥ細胞増殖キット（Invitrogen、Thermo Fisher Scientific）で染色した後、異なる条件下及び細胞株で９６時間共培養した。フローサイトメトリーにより増殖を分析した。

サイトカイン産生及びｓＢＣＭＡ：ＩＦＮ－γ、ＴＮＦ－α、ＩＬ－６、ＩＬ－１βサイトカインを製造業者のプロトコルに従ってＥＬＩＳＡ（ＥＬＩＳＡ ＭＡＸ（商標）デラックスセット、Biolegend）によって定量した。可溶性ＢＣＭＡを製造業者のプロトコルに従ってＥＬＩＳＡ（ヒトＢＣＭＡ／ＴＮＦＲＳＦ１７デュオセットＥＬＩＳＡ、R&D systems）によって検出した。

共焦点顕微鏡法：ＲＰＭＩ細胞株をレンチウイルス粒子で形質導入し、緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）に融合したＢＣＭＡを過剰発現させ、次いでＣｅｌｌＴｒａｃｋｅｒ（商標） Ｂｌｕｅ ＣＭＡＣ色素（Thermo Fisher Scientific）で染色したＣＡＲＴ細胞と共培養した。さらに、ＢＣＭＡはまた、モノクローナル抗ＴＮＲＳＦ１７マウス抗体（Sigma-Aldrich）及び二次抗マウスＩｇＧ Ａｌｅｘａ ６４７（Cell signaling Technologies）を用いた共焦点蛍光顕微鏡法によって検出した。画像をＬｅｉｃａ ＳＰ５顕微鏡を使用して取得した。４０５、４８８、及び６３３のレーザーを励起に使用し、Ｚスタック取得画像を作成し、対応するフィルターを適用した。ｉｎ ｖｉｖｏでのタイムラプスでは、２０秒毎に画像取得を行った。

細胞毒性：アッセイを、１：１～０．１２５：１の様々なエフェクター：標的比で、Ｔ細胞と、ＧＦＰ－ホタルルシフェラーゼ（ＧＦＰ－ｆｆＬｕｃ）を過剰発現させるようにレンチウイルスベクター（ｐＬＶ）で修飾した腫瘍細胞とを２４時間～９６時間、共培養させることで行った。残存する生存ＧＦＰ＋腫瘍細胞のパーセンテージを次の式を適用してフローサイトメトリーで調べた：生細胞の％＝ｘ時点でのＧＦＰ＋細胞の％／０ｈでのＧＦＰ＋細胞の％）。

ｉｎ ｖｉｖｏ骨髄腫マウスモデル：８週齢～１２週齢のＮＯＤ／ＳＣＩＤ ＩＬ－２Ｒｃｎｕｌｌ（ＮＳＧ）マウスを、－１日目及び０日目に２Ｇで照射し、ＧＦＰ－ｆｆＬｕｃ－ＡＲＰ－１細胞をマウスに接種した。マウスは、雌性又は雄性のマウスに応じて、それぞれ１個又は１．５×１０^６個のＡＲＰ１細胞／マウスのいずれかを受けた。腫瘍細胞を６日～１４日間増殖させ、次いでＮＴ Ｔ細胞又はＣＡＲＴ細胞のいずれかをマウスに接種した。マウスを毎週の生物発光イメージング（ＢＬＩ）に供した。ＢＬＩは、Ｄ－ルシフェリン（２０ｍｇ／ｍＬ ＰＢＳ）の１００μＬ ＩＰ注入に続いて、ＨａｍａｍａｔｓｕカラーＣＤＤカメラ（ニュージャージー州ブリッジウォーターのHamamatsu Photonics Systems）を用いて実施した。シグナルの定量をＩｍａｇｅＪソフトウェアで行った。

結果
マウスＣＡＲＴＢＣＭＡ（ＡＲＩ２ｍ）の設計及び機能特性決定
ＡＲＩ２ｍの設計は、それぞれヒンジ、膜貫通ドメイン、共刺激ドメイン、及びシグナル伝達ドメインとしてＣＤ８ａ、４－１ＢＢ及びＣＤ３ζを含む本発明者らのＣＡＲＴ１９（ＡＲＩ１）に基づいた。抗ＣＤ１９（Ａ３Ｂ１抗体）をコード化する一本鎖可変フラグメント（ｓｃＦｖ）を、ＭＭ ２２に対する試験に成功した抗ＢＣＭＡ抗体Ｊ２２．９ ２１の配列と交換した。この配列全体を第３世代のｐＣＣＬレンチウイルスベクターにクローニングした（図１Ａ）。ＣＡＲＴ細胞のトランスフェクション効率は３０％を超え、ＣＡＲＴ細胞の凍結保存と解凍後に保持されたｉｎ ｖｉｔｒｏ及びｉｎ ｖｉｖｏ実験の全てで３０％～６０％の間で変動した（図１Ｂ）。異なるＭＭ細胞株（ＡＲＰ１及びＵ２６６）に対するＡＲＩ２の有効性は、Ｔ細胞とＭＭ細胞をＥ：Ｔ比１：１で４日間にわたって共培養した後に確認され、非形質導入Ｔ細胞と比較してＭＭ細胞を効率的に排除することが示された（図１Ｃ）。さらに、ＢＣＭＡを発現しないＫ５６２非ＭＭ細胞はＡＲＩ２ｍ細胞では排除されず、これによりＡＲＩ２ｍ細胞の特異性が示された（図１Ｃ）。さらに、１：１～０．１２５：１のＥ：Ｔ比の限外希釈細胞毒性アッセイは、ＭＭ細胞を低Ｅ：Ｔ比において３６時間（図１Ｄ）で排除することにより、ＡＲＩ２ｍ細胞の高い有効性を実証し、有効性は７２時間（図１Ｅ）後も増加し続けた。予想通り、Ｋ５６２細胞に対する毒性は検出されなかった（図１Ｄ及び図１Ｅ）。

ＡＲＩ２ｍ細胞による炎症誘発性サイトカインの産生は、異なるＥ：Ｔ比でＡＲＩ２細胞とＭＭ細胞とを２４時間及び４８時間共培養させて更に分析した。２４時間のＡＲＩ２ｍ細胞で高いＩＦＮγ産生が観察され、４８時間後も増加し続けた（図１Ｆ）。ｉｎ ｖｉｔｒｏでの増加によりＮＴ Ｔ細胞が活性化されるため、非形質導入（ＮＴ）Ｔ細胞では予想通り幾らかのＩＦＮγ産生が検出された。ＩＬ６の最小レベルも２４時間で検出され、４８時間の共培養で増加した。さらに、予想通り、ＭＭ細胞だけで幾らかのＩＬ６分泌が観察された（図１Ｆ）。ＴＮＦαの産生は２４時間と比較して４８時間で減少し、ＴＮＦαはＣＡＲＴ活性化の早い時期に産生されることを示す（図１Ｆ）。残念ながら、このｉｎ ｖｉｔｒｏシステムではＩＬ１β産生を検出することができなかった。

ＡＲＩ２ｍ細胞のｉｎ ｖｉｖｏでの有効性を、本発明者らのマウスモデルで分析し、ＮＳＧマウスは１×１０^６個のＡＲＰ１ ＭＭ細胞を受け、６日後に１０×１０^６個のＮＴ細胞又は２×１０^６個のＡＲＩ２ｍ細胞を含む１０×１０^６個のＴ細胞のいずれかで処理した（図１Ｇ）。疾患の進行とそれに続く生物発光は、未処理のマウス及びＮＴ Ｔ細胞で処理したマウスと比較して、ＡＲＩ２ｍ細胞が疾患の進行を回避することを示し（図１Ｈ）、これはより高い生存率につながった（図１Ｉ）。さらに、実験終了時のマウス組織の分析は、ＢＭ及び脾臓にＭＭ細胞が存在しないことを示し（図１Ｊ）、Ｔ細胞は主に脾臓でみられたのに対し（図１Ｋ）、ＣＡＲＴ細胞は主にＢＭで増殖し、ＢＭにおける全Ｔ細胞集団からのＣＡＲＴ細胞のパーセンテージは、脾臓におけるよりも高いことが示され（図１Ｋ）、ＭＭはＢＭの疾患であることから、これは関連性の高い所見である。さらに、ＭＭ進行の追加マーカーとして、本発明者らは、マウス血清中のｓＢＣＭＡ量を分析し、ＮＴ Ｔ細胞で処理したマウスでは大量のｓＢＣＭＡを確認し、ＡＲＩ２ｍ細胞で処理したマウスではｓＢＣＭＡが全く存在しないことを確認した（図１Ｌ）。

ＡＲＩ２ｍのＡＲＩ２ｈへのヒト化及びＡＲＩ２ｍ対ＡＲＩ２ｈの比較
患者におけるＣＡＲＴ細胞の早期消失は、非持続的応答を引き起こす可能性があり、ＣＡＲ内のｓｃＦｖのマウス成分に対するヒト免疫系による異種認識と関連している。したがって、ＡＲＩ２ｍのｓｃＦｖヒト化を行った。ＡＲＩ２の２つの異なる変異体（Ｂｌａｓｔ及びＧｅｒｍｌｉｎｅ）は、マウスアミノ酸（ａａ）をヒトコードでより頻繁に見られるａａに置換することによって、２つの異なる予測アルゴリズムに基づいて作製された。重鎖ではマウス配列と比較して両方の変異体が同じ置換ａａの数を示したのに対し、軽鎖ではＧｅｒｍｌｉｎｅ変異体の置換ａａの数がＢｌａｓｔ変異体よりも少なかった（図２Ａ）。両変異体の有効性をｉｎ ｖｉｔｒｏで比較したところ、Ｇｅｒｍｌｉｎｅ変異体ではわずかに高い抗ＭＭ活性（図２Ｂ）及びいずれの変異体もＫ５６２細胞を排除しなかったことから、ＭＭ細胞に対する特異性（図２Ｂ）が示された。したがって、ＡＲＩ２ｍとＡＲＩ２ｈとを比較するために、全ての追加アッセイでＧｅｒｍｌｉｎｅ変異体を選択した（両方のＣＡＲの完全な配列については、材料及び方法を参照されたい）。ＡＲＩ２ｈ対ＡＲＩ２ｍのｉｎ ｖｉｔｒｏでの有効性がわずかに低いことが認められたため（図２Ｂ）、腫瘍細胞及びＣＡＲＴ細胞を低いＥ：Ｔ（０．１２５：１）比で共培養した長期細胞毒性アッセイを実施した。このアッセイは、ＡＲＩ２ｈはＡＲＩ２ｍよりも遅いものの、全てのＭＭ細胞を排除することでその目的を達成することが示された（図２Ｃ）。さらに、増殖アッセイは、ＡＲＩ２ｈ細胞の増殖速度が遅くなることを確認した。さらに、長期の細胞毒性アッセイで両方のＣＡＲについて同じＩＦＮγのｉｎ ｖｉｔｒｏ産生が観察されたのに対し（図２Ｃ）、ＡＲＩ２ｈ対ＡＲＩ２ｍではＴＮＦα及びＩＬ６の産生が低いことが示され、ＡＲＩ２ｈの毒性プロファイルが低いことが示唆された。

ＡＲＩ２ｈ及びＡＲＩ２ｍを、ＭＭ疾患の２つの異なるモデル（初期及び進行）でｉｎ ｖｉｖｏで比較した。マウスは０日目にＭＭ細胞を受け、６日目又は１４日目のいずれかに５×１０^６個のＣＡＲＴ細胞で処理して、疾患の初期モデル及び進行モデルをそれぞれ作製した（図２Ｄ及び図２Ｅ）。初期疾患モデルでは、ＡＲＩ２ｈとＡＲＩ２ｍの両方がＭＭ疾患の進行を同等に回避した（図２Ｄ及び図２Ｆ）。予想通り、約５０日でマウスが異種移植片対宿主病（ＧＶＨＤ）の徴候を示し始め、これはＡＲＩ２ｍ群でより重症であり、この群では生存率が低下した（図２Ｇ）。進行した疾患モデルでは、ＡＲＩ２ｍは疾患の進行は認められなかったが、ＡＲＩ２ｈ群では所定の時点で何らかの疾患シグナルが検出された（図２Ｅ）が、有意ではなかった（図２Ｆ）。さらに、ＡＲＩ２ｈで処理したマウスは、ＡＲＩ２ｍと比較して毒性がはるかに低いため、生存期間が長くなった（図２Ｇ）。マウス組織の分析では、ＢＭと比較して脾臓のＴ細胞のホーミングが高いことが再び示された（図２Ｈ）。どちらのモデルでも、Ｔ細胞の増殖はＡＲＩ２ｈよりもＡＲＩ２ｍの方が高かったため、ＡＲＩ２ｍの毒性が高いことが説明される可能性があり（図２Ｈ）、重要なことに、両方のＣＡＲ及び両方の疾患モデルにおいて、ＢＭにおけるＴ細胞の大部分はＣＡＲＴ細胞であった（図２Ｈ）。最後に、マウスの血清分析は、両方のＣＡＲが大量のＩＦＮγを分泌することを示した。しかしながら、ＡＲＩ２ｈの毒性プロファイルが低いという以前の観察と一致して、ＡＲＩ２ｈによるＩＦＮγ産生はＡＲＩ２ｍよりも遅かった。したがって、初期モデルでは、ＣＡＲＴ注入の３日後、ＡＲＩ２ｈ群ではＩＦＮγ産生を検出できず、ＣＡＲＴ注入の３１日後にはＡＲＩ２ｍとＡＲＩ２ｈの両方で高量のＩＦＮγ産生が示された（図２Ｉ）。進行モデルでは、同じパターンが観察され、５日間のＣＡＲＴ投与ではＡＲＩ２ｈによるＩＦＮγ産生がなく、２１日で両方のＣＡＲでＩＦＮγ産生が高いが、ＡＲＩ２ｈでは低いことが示された（図２Ｉ）。

これらの結果は、ＡＲＩ２ｍ対ＡＲＩ２ｈの活性が速いことを示唆しており、腫瘍負荷が高い場合、これによりＣＡＲＴ細胞の疲弊が速くなると考えられる
したがって、ＣＡＲＴ細胞用量を低くした第３のｉｎ ｖｉｖｏ実験（３×１０^６）を実施した。この場合、生物発光の画像化は、マウスが１４日目にＣＡＲＴ細胞を受けると、以前の進行モデルと比較して疾患がより進行したことを示した。このモデルでは、ＡＲＩ２ｍもＡＲＩ２ｈも疾患の進行を回避することができなかった。しかしながら、ＡＲＩ２ｈは疾患の進行が遅く、ＡＲＩ２ｍよりも優れたパフォーマンスを示し、そのより遅い活性が、腫瘍負荷が高い場合にＣＡＲＴ細胞の疲弊の低下につながる可能性があることを示唆する。

腫瘍細胞への連続チャレンジに対する応答及びＡＲＩ２ｍ対ＡＲＩ２ｈの炎症反応
以前の結果は、ＡＲＩ２ｈはｉｎ ｖｉｖｏでの活性が遅く、ｘｅｎｏ－ＧＶＨＤに関して毒性が低くなることを示した。さらに、腫瘍負荷が高いと、ＡＲＩ２ｍの有効性が低下し、これは、ＡＲＩ２ｍ対ＡＲＩ２ｈの疲弊がより速いためであり得ると仮定される。この仮説を確認するため、本発明者らは、ＣＡＲＴ細胞を腫瘍細胞との連続したｉｎ ｖｉｔｒｏチャレンジに曝露した（図３Ａ）。これらの実験は最初に、Ｔ細胞のｉｎ ｖｉｔｒｏでの増加がＣＤ８ Ｔ細胞と比較してより多数のＣＤ４ Ｔ細胞を達成したことを示し、これは、ＣＡＲＴ細胞とＮＴ Ｔ細胞の両方で観察された知見である。しかしながら、腫瘍細胞への曝露はＣＤ８ Ｔ細胞の増殖を高め、このＣＤ４／ＣＤ８比の正常化につながった（図３Ｂ）。

さらに、ＣＡＲＴ細胞の腫瘍細胞への連続チャレンジは、ＡＲＩ２ｈではＣＤ４及びＣＤ８－ＣＡＲＴ細胞増殖の増加を示したが、ＡＲＩ２ｍではこの増殖は継続的ではなく（図３Ｃ）、ＭＭ細胞への連続チャレンジの後、ＡＲＩ２ｍ細胞が疲弊したか又は死んでいることを示唆している。

さらに、本発明者らは、ＣＡＲＴ細胞によって活性化された後、マクロファージがＩＬ６、ＩＬ１β及びＴＮＦαの主な生産者である患者で観察されるサイトカイン放出症候群（ＣＲＳ）とより類似したモデルを確立する両方のＣＡＲの炎症促進プロファイルを比較した。したがって、同じ個体から単離された単球及びＴ細胞をそれぞれマクロファージ及びＣＡＲＴ細胞に分化させ、両方をＭＭ細胞とのｉｎ ｖｉｔｒｏ共培養に添加して細胞毒性及びサイトカイン産生を評価した（図３Ｅ）。マクロファージの添加はＣＡＲＴ抗ＭＭ活性に悪影響を及ぼさず（図３Ｆ）、ＩＦＮγ産生がわずかに増加し（図３Ｇ）、ＩＬ６及びＴＮＦα産生の大幅な増加が誘発された（図３Ｇ）。さらに、マクロファージ不在下では検出することができなかったＩＬ１βをマクロファージ添加後に大量に検出した（図３Ｇ）。したがって、この状況では、ＡＲＩ２ｍ及びＡＲＩ２ｈの炎症促進活性を２日間にわたって比較し、両方のＣＡＲで同様のＩＦＮγ、ＩＬ６及びＩＬ１βの産生が示され（図３Ｇ）、ＡＲＩ２ｈのＴＮＦ産生が低い（図３Ｈ）ことが示され、以前に示されたｉｎ ｖｉｖｏ研究のようにＡＲＩ２ｈの炎症誘発性及び毒性活性が低いことが示唆された（図２Ｄ～図２Ｇ）。

ＡＲＩ２ｍ及びＡＲＩ２ｈの効率的な臨床産生と活性
２０１９年に本発明者らの施設で生成されたＡＲＩ２細胞から始まり、参加している全てのセンターに提供された、これらの以前のデータは、ＭＭ患者を対象とした第Ｉ相多施設臨床試験の開発を支持した（ＥｕｄｒａＣＴ コード：２０１９－００１４７２－１１）。したがって、ＡＲＩ２ｍ及びＡＲＩ２ｈを、ＡＲＩ１細胞を有するＢ細胞悪性腫瘍の多施設第ＩＩ相臨床試験のために本発明者らの施設で使用されているのと同じプロトコルに従って、本発明者らの施設のＧＭＰ設備において増加させた^１７。ＡＲＩ２ｍ（図４Ａ及び図４Ｃ）とＡＲＩ２ｈ（図４Ｂ及び図４Ｃ）の両方が効率的に増加され、ＭＭ患者の応答を達成するための最小必要量（１５０×１０^６個を超えるＣＡＲＴ細胞）よりも多くのＣＡＲＴ細胞を達成した。４つの臨床的増加を比較すると、増加の終わりに同等の数のＡＲＩ２ｈ細胞及びＡＲＩ２ｍ細胞が達成されたことが示され、ＡＲＩ２ｈ細胞の割合が高くなったにもかかわらず、この差は有意ではなく、おそらくＡＲＩ２ｈのウイルス滴定率が高かったためである（図４Ｃ）。さらに、これらのＣＡＲＴ細胞は、低いＥ：Ｔ比でＭＭ細胞を排除する高い有効性を示した（図４Ｄ）。

可溶性ＢＣＭＡがＡＲＩ２の活性に影響を与える
ＡＬＬにおいてＣＡＲＴ１９を用いた臨床研究によれば、ＭＭにおいてＣＡＲＴＢＣＭＡ（１５０×１０^６超）を用いた研究と比較して、完全奏効（ＣＲ）を達成するにはＣＡＲＴ細胞用量を低くする必要がある（１００×１０^６）ことが示されている。これに関して、ＭＭ細胞の表面でのＢＣＭＡ発現は、細胞外環境にｓＢＣＭＡとして持続的に放出されるため、安定していない。したがって、本発明者らは、ｓＢＣＭＡがＣＡＲＴＢＣＭＡ細胞に結合し、それらの活性を一時的に阻害すると仮定して、ＭＭ患者においてＣＲを達成するために必要な高用量を説明する。したがって、本発明者らはまず、意義不明の単クローン性γグロブリン血症（ＭＧＵＳ）を有する患者、新たに診断されたＭＭ患者において、及び再燃時に血清中のｓＢＣＭＡ量を測定し、ＭＭ患者ではより多い量のｓＢＣＭＡを確認した（図５Ａ）。さらに、共焦点蛍光顕微鏡法は、小胞においてＭＭ細胞からＢＣＭＡが放出されることを確認した（図５Ｂ）。したがって、ｓＢＣＭＡが一時的にＣＡＲＴＢＣＭＡ活性に影響を与え得ることを確認するため、ＧＦＰに融合されたＢＣＭＡ過剰発現するＭＭ細胞（ＭＭ－ＢＣＭＡ－ＧＦＰ）を３時間にわたってＡＲＩ２細胞と共培養し、ｉｎ ｖｉｖｏタイムラプスイメージングを行った。本発明者らは、小胞で放出されたｓＢＣＭＡが、ＡＲＩ２細胞に結合し、それらの標的ＭＭ細胞からＡＲＩ２細胞を受け入れることを確認した（図５Ｃ）。さらに、本発明者らはまた、ＭＭ細胞と接触した後、ＡＲＩ２細胞は、ＭＭ細胞の表面からＢＣＭＡの一部をそれらの膜内に獲得することができ、その結果、ＡＲＩ２細胞間でフラトリサイドが認められたことを観察した（図５Ｄ）。

ｓＢＣＭＡがＣＡＲＴ活性を阻害することを更に確認するために、ＭＭ細胞を組換えＢＣＭＡタンパク質の存在下で、抗ＢＣＭＡ抗体の有無にかかわらずＡＲＩ２ｍ細胞と共培養した。結果は、組換えＢＣＭＡタンパク質が細胞毒性及びＩＦＮγ産生の観点からＡＲＩ２ｍ活性を阻害することを確認した（図５Ｅ及び図５Ｆ）。抗ＢＣＭＡの添加は、細胞毒性ではなくＩＦＮγ産生のみの観点から、この阻害を部分的に回復させた（図５Ｅ及び図５Ｆ）。さらに、ＭＭ細胞から放出されるｓＢＣＭＡは、ＭＭ細胞におけるＢＣＭＡ発現の減少につながり、これは、γ－セクレターゼが媒介する効果であり、ＢＣＭＡを放出する可溶性ＢＣＭＡを直接切断し、これはγ－セクレターゼ阻害剤を使用することで回避することができる。したがって、本発明者らはまず、ＭＭ細胞上のＢＣＭＡ発現及び放出されたｓＢＣＭＡの量におけるγ－セクレターゼ阻害剤（ＤＡＰＴ）の影響を分析した。予想通り、ＤＡＰＴ処理はＭＭ細胞におけるＢＣＭＡ発現を増加させ、ｓＢＣＭＡの放出を減少させた（図５Ｇ及び図５Ｈ）。このＤＡＰＴに関連するＢＣＭＡ発現の増加は、ＭＭ細胞をＮＴ Ｔ細胞と共培養した後にも検出された（図５Ｇ）。ＡＲＩ２／ＭＭ細胞の共培養へのＤＡＰＴ添加は、ｓＢＣＭＡの量も減少させた。しかしながら、ＭＭ細胞を排除する高いＡＲＩ２ ｉｎ ｖｉｔｒｏ活性により、ＢＣＭＡ発現の影響は通常のｉｎ ｖｉｔｒｏ共培養ではほとんど検出されなかった（図５Ｇ及び図５Ｈ）。ｓＢＣＭＡの量を減少させることによってＡＲＩ２活性を増強するＤＡＰＴの可能性のある役割を確認するため、本発明者らは、ＡＲＩ２細胞に触れられていないＭＭ細胞によるｓＢＣＭＡの持続放出を伴うｉｎ ｖｉｔｒｏの状況でその影響を分析した。したがって、本発明者らは、同じｉｎ ｖｉｔｒｏ実験をトランスウェルプレートで並行して行い、ここでは、ＡＲＩ２細胞に触れられていないＭＭ細胞が持続的にｓＢＣＭＡを放出し得る（図５Ｉ）。この状況では、未接触のＭＭ細胞によるｓＢＣＭＡの持続放出によりＡＲＩ２活性が低下し（図５Ｊ）、ＤＡＰＴ添加により未接触のＭＭ細胞から放出されるｓＢＣＭＡの悪影響が部分的に回避されることが確認された（図５Ｊ）。

Claims (8)

1. ａ．ＶＬドメイン及びＶＨドメインを含み、該ＶＨドメイン及び該ＶＬドメインがそれぞれ配列番号１及び配列番号２を含む、一本鎖可変フラグメント（ｓｃＦｖ）ＢＣＭＡ標的化部分と、
   ｂ．配列番号９を含むヒンジドメインに結合した膜貫通ドメインと、
   ｃ．配列番号１１を含む共刺激シグナル伝達ドメインと、
   ｄ．配列番号１０を含む細胞内シグナル伝達ドメインと、
   を含む、キメラ抗原受容体（ＣＡＲ）。
2. 前記キメラ抗原受容体（ＣＡＲ）が配列番号１３のみからなる、請求項１に記載のＣＡＲ。
3. 請求項１又は２に記載のＣＡＲをコードする核酸。
4. 請求項３に記載の核酸を含む細胞。
5. 前記細胞がＴ細胞である、請求項４に記載の細胞。
6. 複数種の請求項５に記載の細胞と、薬学的に許容可能な担体又は希釈剤とを含む医薬組成物。
7. 医薬である、請求項５に記載の細胞、又は請求項６に記載の医薬組成物。
8. 多発性骨髄腫の治療方法において使用される、請求項５に記載の細胞、又は請求項６に記載の医薬組成物であって、前記方法が、前記細胞又は組成物を、それを必要とする患者に投与することを含む、請求項５に記載の細胞、又は請求項６に記載の医薬組成物。

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