JP2022528487A - C9orf72のオリゴヌクレオチドベースの調節 - Google Patents
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Abstract
Description
本出願は、2019年3月29日出願の米国仮特許出願62/826,589、2019年7月21日出願の米国仮特許出願62/864,789および2019年10月4日出願の米国仮特許出願62/910,842の優先権を主張し、これらの各々の全内容は引用により本明細書に包含される。
本出願は、米国国立衛生研究所(National Institutes of health)によって認められた許可No.NS104022、HD086111、OD020012、およびGM108803の下の政府支援を受けて行われたものである。政府は本発明について一定の権利を有している。
本開示は、新規のC9orf72標的配列、新規のオリゴヌクレオチド、および筋萎縮性側索硬化症および前頭側頭骨性認知症などの疾患における神経変性を処置および予防する新規の方法に関する。
(a)本明細書に記載の二本鎖リボ核酸(dsRNA)を細胞中に導入すること
(b)工程(a)で作製された細胞を、C9ORF72遺伝子のmRNA転写産物の分解を得るのに十分な時間維持することを含み、それによって細胞内でのC9ORF72遺伝子の発現を阻害する方法を提供する。
本明細書では、アイソフォーム-選択的および非選択的標的配列を含む、新規なC9ORF72標的配列が提供される。また、C9ORF72 mRNAの選択的および非選択的標的配列を標的とすることによって特異的および非特異的mRNAバリアント調節を可能にする新規なsiRNAも提供される。また、C9ORF72関連の病態、例えば筋萎縮性側索硬化症(ALS)や前頭側頭型変性症(FTD)を処置する方法も提供される。
I. C9ORF72標的配列
いくつかの実施態様において、siRNAは以下のように設計される。まず、標的遺伝子(例えば、C9ORF72遺伝子)の一部、例えば、表1~5に記載の標的配列の1つまたはそれ以上を選択する。これらの位置でのmRNAの切断により、対応するC9ORF72タンパク質またはRANペプチドの翻訳を排除するべきである。センス鎖は、標的配列に基づいて設計された。(表1~5を参照のこと)。通常、この部分(および対応するセンス鎖またはアンチセンス鎖)は、約15~25個のヌクレオチドを含む。いくつかの実施態様において、この部分(および対応するセンス鎖)は、21、22または23個のヌクレオチドを含む。しかし、当業者は、19未満ヌクレオチド長または25を超えるヌクレオチド長を有するsiRNAもRNAiを媒介するように機能することができることを理解するであろう。したがって、そのような長さのsiRNAも、RNAiを媒介する機能を保持していれば、本発明の範囲内である。より長いRNAi剤は、特定の哺乳動物の細胞内でのインターフェロンまたはPKR反応を誘発することが実証されており、これは望ましくない可能性がある。通常、本出願のRNAi剤は、PKR応答を誘発しない(すなわち、十分に短い長さである)。しかし、より長いRNAi物質は、例えば、PKR反応を起こすことができない細胞型、またはPKR反応が代替の手段によって下方制御されるか、もしくは弱めらる、といった状況では有用であり得る。
本出願は、例えば、上記のように設計されたsiRNA分子を含む。本出願のsiRNA分子は、化学的に合成できるか、DNA鋳型からインビトロで、もしくは例えばshRNAからインビボで転写させることができるか、または、組換えヒトDICER酵素を用いて、インビトロで転写させたdsRNA鋳型を切断して、例えば、RNAiを媒介する20-、21-または23-bpの二重鎖RNAのプールにすることができる。siRNA分子は、当該技術分野で知られているいずれかの方法を用いて設計できる。
一実施態様において、本出願は、新規な抗C9ORF72 RNAサイレンシング剤(例えば、siRNAおよびshRNA)、該RNAサイレンシング剤の製造方法、およびC9ORF72タンパク質のRNAサイレンシングのために該改善されたRNAサイレンシング剤(またはその一部)を使用するための方法(例えば、研究および/または治療的方法)を提供する。該RNAサイレンシング剤は、ヘテロ接合の単一ヌクレオチド多型に十分に相補的であることでRNA媒介サイレンシングメカニズム(例えば、RNAi)を媒介するアンチセンス鎖(またはその一部)を含む。また、C9ORF72アンチセンス転写産物をサイレンシングするための第二タイプのRNAサイレンシング剤(その一部)も提供される。該第二タイプのRNAサイレンシング剤は、センス鎖(またはその一部)を含み、ここで、センス鎖は、RNA媒介サイレンシングメカニズムを媒介するアンチセンス転写物に対して十分な相補性を有する。
。
X-A(-L-B-L-A)j(-S-B-S-A)r(-S-B)t-OR
[ここで、Xは、5'ホスフェート基であり;Aは、出現するごとに独立して、2'-メトキシ-リボヌクレオチドであり;Bは、出現するごとに独立して、2'-フルオロ-リボヌクレオチドであり;Lは、出現するごとに独立して、ホスホジエステルまたはホスホロチオエートリンカーであり;Sは、ホスホロチオエートリンカーであり;そして、Rは、水素およびキャッピング基(capping group)(例えば、アセチルなどのアシル)から選択され;jは、4、5、6または7であり;rは、2または3であり;そして、tは、0または1である]を有するオリゴヌクレオチドが提供される。
C-L-B(-S-A-S-B)m'(-P-A-P-B)n'(-P-A-S-B)q'(-S-A)r'(-S-B)t'-OR
[ここで、Cは、疎水性分子であり;Aは、出現するごとに独立して、2'-メトキシ-リボヌクレオチドであり;Bは、出現するごとに独立して、2'-フルオロ-リボヌクレオチドであり;Lは、エチレングリコール、ホスホジエステル、およびホスホロチオエートの0~4の反復単位からなる群から選択される1つまたはそれ以上の部分を含むリンカーであり;Sは、ホスホロチオエートリンカーであり;Pは、ホスホジエステルリンカーであり;Rは、水素およびキャッピング基(例えば、アセチルなどのアシル)から選択され;m'は、0または1であり;n'は、4、5または6であり;q'は、0または1であり;r'は、0または1であり;そして、t'は、0または1である]を有する、二本鎖の化学修飾核酸が提供される。
例示的な実施態様において、本出願のsiRNA分子は、センス鎖および相補的なアンチセンス鎖からなる二重鎖であり、アンチセンス鎖は、RNAiを媒介するC9ORF72 mRNAに対して十分な相補性を有する。また、センス鎖が、RNAiを媒介するC9ORF72アンチセンス鎖に対して十分な相補性を有するsiRNA分子が提供される。通常、siRNA分子は、約10~50またはそれ以上のヌクレオチド長を有し、すなわち、各鎖は、10~50個のヌクレオチド(またはヌクレオチドアナログ)を含む。いくつかの実施態様において、siRNA分子は、各鎖において約15~30、例えば、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27、28、29、または30ヌクレオチド長を有し、ここで、鎖の一方は、標的領域に十分に相補的である。通常、鎖は、アニールされるときに二重鎖の一方または両方の末端に1、2または3個の残基の突出部が発生するように、整列しない(すなわち、対向する鎖に相補的な塩基が存在しない)鎖の末端に少なくとも1、2または3個の塩基があるように整列されている。通常、siRNA分子は、約10~50またはそれ以上のヌクレオチド長を有し、すなわち、各鎖は、10~50個のヌクレオチド(またはヌクレオチドアナログ)を含む。いくつかの実施態様において、siRNA分子は、各鎖において約15~30、例えば、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27、28、29、または30ヌクレオチド長を有し、ここで、一方の鎖は標的配列に実質的に相補的であり、他方の鎖は第一鎖と同一または実質的に同一である。
本出願のsiRNA様分子は、C9ORF72 mRNAの標的配列と「十分に相補的」な配列を有し(すなわち、配列を有する鎖を有し)、RNAiまたは翻訳抑制のどちらかによって遺伝子サイレンシングを指示する。siRNA様分子は、siRNA分子と同じ方法で設計されが、センス鎖と標的RNAとの間の配列同一性の度合いは、miRNAとその標的との間で観察されるものに近似している。一般には、miRNA配列と対応する標的遺伝子配列との間の配列同一性の度合いが低下するにつれて、RNAiではなく翻訳抑制によって転写後遺伝子サイレンシングを媒介する傾向が増加する。したがって、標的遺伝子の翻訳抑制による転写後遺伝子サイレンシングが望まれる代替の実施態様において、miRNA配列は標的遺伝子の配列と部分的な相補性を有する。特定の実施態様において、miRNA配列は、標的mRNA内(例えば、標的mRNAの3'-UTR内)に分散されている1つまたはそれ以上の短い配列(相補性部位)と部分的な相補性を有する(Hutvagner and Zamore, Science, 2002; Zeng et al., Mol. Cell, 2002; Zeng et al., RNA, 2003; Doench et al., Genes & Dev., 2003)。翻訳抑制のメカニズムは協調的であるため、特定の実施態様においては、複数の相補性部位(例えば、2、3、4、5、または6個)を標的とすることができる。
特定の特徴的な実施態様において、本出願は、向上された選択性でC9ORF72標的配列のRNAサイレンシングを媒介することができるshRNAを提供する。siRNAとは対照的に、shRNAはマイクロRNA(miRNA)の天然の前駆体を模倣しており、遺伝子サイレンシング経路の最上位に入る。このため、shRNAは、天然の遺伝子サイレンシング経路全体を介して供給されることにより、遺伝子サイレンシングをより効率的に媒介すると考えられている。
他の実施態様において、本出願のRNAサイレンシング剤は、miRNAの細胞間動員に有用な二重機能性オリゴヌクレオチドテザーを含む。動物細胞は、転写後または翻訳後のレベルで遺伝子発現を調節できる約22個のヌクレオチドの非コードRNAである一連のmiRNAを発現する。RISCに結合されているmiRNAを結合し、それを標的mRNAに動員することにより、二重機能性オリゴヌクレオチドテザーは、例えば、動脈硬化過程に関与する遺伝子の発現を抑制することができる。オリゴヌクレオチドテザーの使用では、特定の遺伝子の発現を抑制する既存の技術と比較して、いくつかの利点がある。まず、本明細書に記載の方法により、内因性分子(多くの場合、豊富に存在する)であるmiRNAがRNAサイレンシングを媒介することを可能にする。したがって、本明細書に記載の方法により、RNAサイレンシングを媒介するために外来分子(例えば、siRNA)を導入する必要性を除去する。第二に、RNAサイレンシング剤と、特に結合部分(例えば、2'-O-メチルオリゴヌクレオチドなどのオリゴヌクレオチド)を、安定かつヌクレアーゼ活性に対して耐性のあるものにすることができる。その結果、本出願のテザーは直接送達用に設計することができ、これは、細胞内で所望の薬剤を作るように設計される前駆体分子またはプラスミドを間接的に送達する必要性を除去する。第三に、テザーとそのそれぞれの部分は、特定のmRNA部位および特定のmiRNAに適合するように設計することができる。この設計により、細胞や遺伝子産物に特化したものにすることができる。第四に、本明細書に開示されている方法では、mRNAをそのまま残し、これは、当業者が細胞自身のマシナリーを用いて短いパルスでタンパク質合成をブロックすることを可能にする。その結果、これらのRNAサイレンシングの方法は、高度に制御可能である。
特定の例示的な実施態様において、遺伝子発現(すなわち、C9ORF72遺伝子発現)は、2つまたはそれ以上のアクセス可能な3'末端の存在を可能にするそれらの5'末端を介して結合された2つまたはそれ以上の一本鎖アンチセンスオリゴヌクレオチドを含むオリゴヌクレオチドベースの化合物を用いて調節して、C9ORF72遺伝子の発現を効果的に阻害または低減できる。このように結合されたオリゴヌクレオチドは、遺伝子サイレンシングオリゴヌクレオチド(Gene Silencing Oligonucleotide, GSO)としても知られている。(例えば、Idera Pharmaceuticals, Inc.に譲渡された米国特許第8,431,544号を参照のこと。すべての目的のためにその全体が引用により本明細書に包含される。)
本出願の特定の態様において、上記の本出願のRNAサイレンシング剤(またはそのいずれかの部分)は、その薬剤の活性がさらに改善されるように修飾されてもよい。例えば、上記のセクションIIに記載のRNAサイレンシング剤は、以下に記載のいずれかの修飾で修飾されてもよい。この修飾は、部分的には、標的識別をさらに向上させること、薬剤の安定性を向上させること(例えば、分解を防ぐ)、細胞取込を促進すること、標的効率を向上させること、(例えば、標的)への結合において有効性を改善すること、薬剤に対する患者の耐性を改善すること、および/または毒性を低減するのに役に立つことができる。
特定の実施態様において、本出願のRNAサイレンシング剤は、単一ヌクレオチド標的識別を向上させるために不安定化ヌクレオチドで置換されていてもよい(2007年1月25日出願の米国出願Ser. No.11/698,689、2006年1月25日出願の米国仮出願No.60/762,225を参照のこと。両方は引用により本明細書に包含される)。このような修飾は、標的mRNA(例えば、機能獲得型変異体mRNA)に対するRNAサイレンシング剤の特異性に感知できるほどに影響を与えることなく、非標的mRNA(例えば、野生型mRNA)に対するRNAサイレンシング剤の特異性を破壊するのに十分であり得る。
特定の実施態様において、本出願のRNAサイレンシング剤は、非対称設計ルールによるRNAiの媒介において有効性および特異性の向上を容易にするように改変されてもよい(米国特許8,309,704、7,750,144、8,304,530、8,329,892および8,309,705を参照のこと)。このような改変は、siRNA(例えば、本出願の方法を用いて設計されたsiRNAまたはshRNAから作製されたsiRNA)のアンチセンス鎖が、センス鎖のためにRISCにエントリーすることを容易にし、アンチセンス鎖が標的mRNAの切断または翻訳抑制を優先的に導くようにして、標的切断およびサイレンシングの効率を増加または改善させる。RNAサイレンシング剤の非対称は、RNAサイレンシング剤のアンチセンス鎖5'末端(AS 5')とセンス鎖3'末端(S 3')との間の塩基対強度を、該RNAサイレンシング剤のアンチセンス鎖3'末端(AS 3')とセンス鎖5'末端(S'5)との間の結合強度または塩基対強度と比較して減らすことによって向上させる。
本発明のRNAサイレンシング剤は、血清中または細胞培養のための成長培地中での安定性を改善させるように修飾することができる。安定性を向上させるために、3'-残基は分解に対して安定化されていてもよく、例えば、プリンヌクレオチド、特にアデノシンまたはグアノシンヌクレオチドからなるように選択されてもよい。あるいは、ピリミジンヌクレオチドを修飾アナログで置換すること、例えばウリジンを2'-デオキシチミジンで置換することは許容され、RNA干渉の効率に影響を与えない。
他の実施態様において、RNAサイレンシング剤は、例えば、標的細胞(例えば、神経細胞)による細胞取込を向上させるために、化学的部分で修飾されてもよい。したがって、本出願は、別の部分(例えば、ペプチドなどの非核酸部分)、有機化合物(例えば、染料)などにコンジュゲートされているか、コンジュゲートされていない(例えば、その3'末端で)RNAサイレンシング剤を含む。コンジュゲーションは、当該技術分野で知られている方法によって、例えば、Lambert et al., Drug Deliv. Rev.: 47(1), 99-112 (2001)(ポリアルキルシアノアクリレート(PACA)ナノ粒子にロードされている核酸が記載されいる); Fattal et al., J. Control Release 53(1-3):137-43 (1998) (ナノ粒子に結合された核酸が記載されている); Schwab et al., Ann. Oncol. 5 Suppl. 4:55-8 (1994) (挿入剤、疎水性基、ポリカチオンまたはPACAナノ粒子に結合された核酸が記載されている);およびGodard et al., Eur. J. Biochem. 232(2):404-10 (1995) (ナノ粒子に結合された核酸が記載されている)の方法を用いて達成できる。
他のエンティティは、本出願のRNAサイレンシング剤にテザーされ得る。例えば、安定性、標的核酸とのハイブリダイゼーション熱力学、特定の組織または細胞型の標的、または、例えば、エンドサイトーシス依存性または非依存性メカニズムによる細胞透過性を改善する、RNAサイレンシング剤にテザーされているリガンド。リガンドおよび関連する修飾はまた、配列特異性を増加させ、その結果、オフサイト標的を低減できる。テザーリガンドは、介入物として機能することができる修飾塩基または糖を1つまたはそれ以上含むことができる。これらは、好ましくは、RNAサイレンシング剤/標的二重鎖のバルジのような内部領域に位置する。介入物は、芳香族、例えば、多環式芳香族またはヘテロ環式芳香族化合物であることができる。多環式介入物は、スタッキング機能を有することができ、2、3、または4の縮合環を有するシステムを含むことができる。本明細書に記載の一般的な塩基は、リガンド上に含まれ得る。一実施態様において、リガンドは、標的核酸の切断によって標的遺伝子の阻害に寄与する切断基を含むことができる。切断基は、例えば、ブレオマイシン(例えば、ブレオマイシン-A5、ブレオマイシン-A2、またはブレオマイシン-B2)、ピレン、フェナントロリン(例えば、O-フェナントロリン)、ポリアミン、トリペプチド(例えば、lys-tyr-lysトリペプチド)、または金属イオンキレート基であり得る。金属イオンキレート基は、例えば、Lu(III)またはEU(III)大環状錯体、Zn(II)2,9-ジメチルフェナントロリン誘導体、Cu(II)テルピリジン、またはアクリジンを含むことができ、Lu(III)などの遊離金属イオンによるバルジの部位での標的RNAの選択的切断を促進することができる。いくつかの実施態様において、ペプチドリガンドは、RNAサイレンシング剤にテザーされて、例えば、バルジ領域で標的RNAの切断を促進することができる。例えば、1,8-ジメチル-1,3,6,8,10,13-ヘキサアザシクロテトラデカン(サイクラム)は、ペプチド(例えば、アミノ酸誘導体によって)にコンジュゲートされて、標的RNAの切断を促進することができる。テザーリガンドは、RNAサイレンシング剤が改善されたハイブリダイゼーション性質または改善された配列特異性を有するようにすることができるアミノグリコシドリガンドであることができる。例示的なアミノグリコシドは、グリコシル化ポリリシン、ガラクトシル化ポリリシン、ネオマイシンB、トブラマイシン、カナマイシンA、およびアミノグリコシドのアクリジンコンジュゲート、例えば、ネオ-N-アクリジン、ネオ-S-アクリジン、ネオ-C-アクリジン、トブラ-N-アクリジン、およびKanaA-N-アクリジンを含む。アクリジンアナログの使用により配列特異性を増加させることができる。例えば、ネオマイシンBは、DNAと比較してRNAに対して高い親和性を有するが、配列特異性は低い。アクリジンアナログであるネオ-5-アクリジンは、HIV Rev-応答配列(Rev-response element, RRE)に対して増加された親和性を有する。いくつかの実施態様において、アミノグリコシドリガンドのグアニジンアナログ(グアニジノグリコシド)は、RNAサイレンシング剤にテザーされている。グアニジノグリコシドにおいて、アミノ酸のアミン基がグアニジン基に交換されている。グアニジンアナログの結合により、RNAサイレンシング剤の細胞透過性を向上させることができる。テザーリガンドは、オリゴヌクレオチド剤の細胞取込を向上させることができるポリ-アルギニンペプチド、ペプトイドまたはペプチド模倣のものであることができる。
上記の2つまたはそれ以上の抗C9ORF72 RNAサイレンシング剤、例えば、siRNAなどのオリゴヌクレオチドコンストラクトは、リンカー、スペーサーおよび分岐点から独立して選択される1つまたはそれ以上の部分によって互いに結合されて、2つまたはそれ以上のRNAサイレンシング剤を含む分岐状オリゴヌクレオチドを形成することができる。図70は、2つのsiRNAを送達するためのジ-siRNA足場の例を示す。典型的な実施態様において、分岐状オリゴヌクレオチドの各核酸はアンチセンス鎖(またはその部分)を含み、ここで、アンチセンス鎖は、RNA媒介サイレンシングメカニズム(例えば、RNAi)を媒介するようにへテロ接合単一ヌクレオチド多型に対して十分な相補性を有する。他の実施態様において、C9ORF72アンチセンス転写産物をサイレンシングするためのセンス鎖(たまはその部分)を含む核酸を特徴とする第二型の分岐状オリゴヌクレオチドであって、センス鎖は、RNA媒介サイレンシングメカニズムを媒介するようにアンチセンス転写産物に対して十分な相補性を有する分岐状オリゴヌクレオチドが提供される。さらなる実施態様において、両方の型の核酸、すなわち、アンチセンス鎖(またはその部分)を核酸、およびセンス鎖(またはその部分)を含むオリゴヌクレオチドを含む第三型の分岐状オリゴヌクレオチドが提供される。
分岐状オリゴヌクレオチドの実施態様において、各リンカーは、独立して、エチレングリコール鎖、アルキル鎖、ペプチド、RNA、DNA、ホスフェート、ホスホネート、ホスホルアミデート、エステル、アミド、トリアゾール、およびこれらの組み合わせから選択され;ここで、リンカーのいずれかの炭素または酸素原子は、場合によって窒素原子によって置き換えられていてよく、ヒドロキシル置換基を有するか、オキソ置換基を有する。一実施態様において、各リンカーは、エチレングリコール鎖である。別の実施態様において、各リンカーは、アルキル鎖である。別の実施態様において、各リンカーは、ペプチドである。別の実施態様において、各リンカーは、RNAである。別の実施態様において、各リンカーは、DNAである。別の実施態様において、各リンカーは、ホスフェートである。別の実施態様において、各リンカーは、ホスホネートである。別の実施態様において、各リンカーは、ホスホルアミデートである。別の実施態様において、各リンカーは、エステルである。別の実施態様において、各リンカーは、アミドである。別の実施態様において、各リンカーは、トリアゾールである。別の実施態様において、各リンカーは、図30の式から選択される構造である。
別の態様において、本明細書では、式(I):
いくつかの実施態様において、式(I)で示される化合物は、式(II):
いくつかの実施態様において、式(I)で示される化合物は、式(III):
いくつかの実施態様において、式(I)で示される化合物は、式(IV):
いくつかの実施態様において、式(I)で示される化合物は、式(V):
L2の実施態様において、RはR3であり、nは2である。式(II)の構造の実施態様において、Lは、L2の構造を有する。式(III)の構造の実施態様において、Lは、L2の構造を有する。式(IV)の構造の実施態様において、Lは、L2の構造を有する。式(V)の構造の実施態様、Lは、L2の構造を有する。式(VI)の構造の実施態様において、Lは、L2の構造を有する。式(VI)の構造の実施態様において、Lは、L2の構造を有する。
第三の態様において、本明細書では、式(VI):
本出願のRNAサイレンシング剤は、細胞(例えば、神経細胞)に(すなわち、細胞内に)直接導入されてもよく、細胞外でキャビティ、間質腔、生物の循環に導入されてもよく、経口的に導入されてもよく、核酸を含有する溶液に細胞または生物を浸すことによって導入されてもよい。血管または血管外循環、血液またはリンパ系、および脳脊髄液が、核酸が導入され得る部位である。
特定の例示的な実施態様において、組換えアデノ随伴ウイルス(rAAV)およびその関連するベクターを用いて、1つまたはそれ以上のsiRNAを細胞、例えば、神経細胞(例えば、脳細胞)へ送達することができる。AAVは、さまざまな細胞型に感染することができるが、感染効率は、カプシドタンパク質の配列によって決定される血清型によって異なる。いくつかのネイティブなAAVの血清型が同定されており、血清型1~9が組換えAAVに最もよく使用されている。AAV-2は最もよく研究され、発表されている血清型である。AAV-DJシステムには、血清型AAV-DJおよびAAV-DJ/8を含む。これらの血清型は、複数のAAV血清型のDNAシャッフリングによって作成され、さまざまな細胞および組織においてインビトロ(AAV-DJ)およびインビボ(AAV-DJ/8)で形質導入効率が改善されたハイブリッドキャプシドを有するAAVを生成する。
本出願は、C9ORF72遺伝子における異常によって全体的または部分的に引き起こされる疾患または障害の危険性がある(またはその影響を受けやすい)対象を処置する予防的および治療的方法を提供する。一実施態様において、このような異常が脳および脊髄における神経変性の進行を予測することが見出されている。別の実施態様において、疾患または障害は、ポリグルタミン障害である。好ましい実施態様において、CNSにおけるC9ORF72の低減によりADおよびALSなどの神経変性疾患に見られる臨床症状を低減する疾患または障害のもの。
本発明は、後記のとおり、予防および/または治療処置のための上記薬剤の使用に関する。従って、本出願のモジュレーター(例えば、RNAサイレンシング剤)を、投与に適する医薬組成物に組み込み得る。このような組成物は、一般に核酸分子、タンパク質、抗体または修飾性化合物および薬学的に許容できる担体を含む。本明細書において使用されるとき、用語「薬学的に許容できる担体」は、医薬投与に適合性の、任意かつ全ての溶媒、分散媒体、コーティング、抗細菌および抗真菌剤、等張および吸収遅延剤などを含むことを意図する。薬学的活性物質のためのこのような媒体および薬剤は当分野でよく知られている。慣用の媒体または薬剤が活性化合物と不適合ではない限り、組成物におけるその使用は考慮される。補助的活性化合物も、組成物に組み込み得る。
特定の他の態様において、本出願は、RNAサイレンシング剤、例えば、二本鎖RNAサイレンシング剤またはsRNA剤(例えば、前駆体、例えば、sRNA剤に処理され得る大型RNAサイレンシング剤、またはRNAサイレンシング剤、例えば、二本鎖RNAサイレンシング剤またはsRNA剤またはその前駆体をコードするDNA)の医薬製剤を含む適当な容器を含むキットを提供する。特定の実施態様において、医薬製剤の個々の成分は1つの容器に提供され得る。あるいは、医薬製剤の成分を2つまたはそれ以上の、例えば、一つの容器はRNAサイレンシング剤調剤および少なくとも一つの他方は担体化合物用の容器に提供するのが望ましいことがある。キットは、一つの箱に1つまたはそれ以上の容器などの多数の種々の配置で包装され得る。種々の成分を、例えば、キットと共に提供される使用説明書により、合わせ得る。成分を、例えば、医薬組成物を調製し、投与するために、本明細書に記載の方法により組み合わせ得る。キットはまた送達デバイスも含み得る。
非選択的領域においてC9orf72を標的とする機能的siRNAを同定するための系統的スクリーニング
C9orf72機能的siRNAの候補を以下のようにスクリーニングした。C9orf72レポータープラスミドをHeLa細胞におけるpsiCHECK2システムに挿入した。siRNAは1.5μMの濃度で適用させた。72時間後、レポーター発現ノックダウンについてDualGloアッセイによって試料を分析した。図3に示すように、候補を、エキソン1、エキソン1/イントロン1接合部、イントロン1、およびエキソン2の各領域で同定した。
選択領域においてC9orf72を標的とする機能的siRNAを同定するための系統的スクリン
C9orf72機能的siRNAの候補を以下のようにスクリーニングした。C9orf72レポータープラスミドを、HeLa細胞におけるpsiCHECK2システムに挿入した。siRNAを1.5μMで適用させた。72時間後、レポーター発現ノックダウンについてDualGloアッセイで試料を分析した。図9に示すように、候補を、エキソン1およびイントロン1にまたがる領域で同定した。ノックダウンは、候補244に対して最も強力であることが観察された。
ジ-siRNAsおよびビタミンDコンジュゲートhsiRNAの化学合成
インビトロおよびインビボでの有効性評価に使用されるジ-siRNAを、以下のように合成した。図25に示すように、トリエチレングリコールをアクリロニトリルと反応させて、保護されたアミン官能性を導入した。次に、分岐点をトシル化ソルケタールとして加え、続いてニトリルを還元して一級アミンを得て、これをカルバメートリンカーを介してビタミンD(カルシフェロール)に結合させた。次に、ケタールを加水分解させて、一級ヒドロキシルでジメトキシトリチル(DMTr)保護基で選択的に保護されていたシス-ジオールを放出し、続いて無水コハク酸でスクシニル化した。得られた部分を固体支持体に結合させた後、固相オリゴヌクレオチド合成および脱保護を行い、VitD、キャップされたリンカー、およびジ-siRNAの3つの生成物を得た。次に、合成の生成物を、実施例6に記載されているように分析した。
代替合成経路1
図28に示すように、モノホスホアミデートリンカーのアプローチは、以下の工程を含む:モノアジドテトラエチレングリコールは、トシル化ソルケタールとして付加された分岐点を有する。その後、ケタールを除去して、1級ヒドロキシルでジメトキシトリチル(DMTr)保護基で選択的に保護されているシス-ジオールを放出し、続いて、アジドをトリフェニルホスフィンで一次アミンに還元して、それを直ちにモノメトキシトリチル(MMTr)保護基で保護する。残りのヒドロキシルを無水コハク酸でスクシニル化し、固体支持体(LCAA CPG)に結合させた。オリゴヌクレオチドの合成および脱保護により、ホスフェートおよびホスホアミデート結合を有するジ-siRNAという1つの主要生成物を得た。この例では、ホスフェートおよびホスホアミデートリンカーのみを生成する代替の直接的な合成経路を紹介している。
代替合成経路2
ジ-ホスフェート含有部分を作製するために、第二の代替合成アプローチを開発した。図28に示すように、ジホスホネートリンカーのアプローチは以下の工程を含む:ソルケタール修飾テラエチレングリコールから出発し、ケタールを除去し、2つの一級ヒドロキシルをジメトキシトリチル(DMTr)で選択的に保護する。残りのヒドロキシルは、シリルで保護された1-ブロモエタノールで長さを伸ばす。TBDMSを除去し、サクシニル化し、固体支持体に結合させる。続いて、固相オリゴヌクレオチド合成および脱保護を行い、ジホスフェート含有リンカーを有するジ-siRNAを生成する。
ジ-siRNAおよびビタミンDコンジュゲートhsiRNAの化学合成の品質管理
HPLC
ジ-siRNAおよびビタミンDコンジュゲートhsiRNAの化学合成の品質を評価するために、分析用HPLCを用いて合成された生成物を同定し、定量した。3つの主要な生成物を同定した:トリエチレングリコール(TEG)リンカーでキャップされたsiRNAセンス鎖、ジ-siRNA、およびビタミンDコンジュゲートsiRNAセンス鎖(図3)。各生成物をHPLCによって単離し、その後の実験に使用した。合成した3つの主要生成物の化学構造を図26に示す。HPLCの条件にはいかのものが含まれた:5~80%Bを15分間、緩衝液A(0.1M TEAA + 5%ACN)、緩衝液B(100%ACN)。
さらにマススペクトロメトリーによって品質管理を行い、ジ-siRNA複合体の同一性を確認した。生成物は、11683m/zの質量を有することが観察され、これは、TEGリンカーを介して3'末端に結合されたsiRNAの2つのセンス鎖に対応する(図27)。この特定の例において、ハンチンチン遺伝子(Htt)を標的とするようにsiRNAのセンス鎖を設計した。実施例5に要約されている化学合成方法により、ハンチンチン遺伝子を標的とするジ-分岐状siRNA複合体の所望の生成物を成功的に生成した。LC-MSの条件にはいかのものが含まれていた:0~100%Bを7分間、0.6mL/分. 緩衝液A(25mM HFIP、15mM DBAの20%MeOH)、緩衝液B(MeOHと20%緩衝液A )。
分岐状オリゴヌクレオチド構造における疎水性部分の取り込み:戦略1
一例において、2-シアノエトキシ-ビス(N,N-ジイソプロピルアミノ)ホスフィン(またはその他の適当なホスファイト化試薬)でホスフィレート化できる保護されていないヒドロキシル基(またはアミン)を有する短い疎水性アルキレンまたはアルカン(Hy)を用いて、対応する親油性ホスホロアミダイト(phosphoramidite)を生成する。これらの親油性ホスホロアミダイトは、従来のオリゴヌクレオチド合成条件を用いて、分岐状オリゴヌクレオチドの末端位置に加えることができる。この戦略は、図42に示している。
分岐状オリゴヌクレオチド構造における疎水性部分の取り込み:戦略2
別の例において、2-シアノエトキシ-ビス(N,N-ジイソプロピルアミノ)ホスフィン(または他の適当なホスフィチル化試薬)でホスフィチル化できる正電荷を有するか、または有しない保護されていないヒドロキシル基(またはアミン)を有する短い/小芳香族平面分子(Hy)を用いて、対応する芳香族疎水性ホスホロアミダイトを生成する。芳香族部分は、正電荷を有することができる。これらの親油性ホスホロアミダイトは、従来のオリゴヌクレオチド合成条件を用いて、分岐状オリゴヌクレオチドの末端位置に加えることができる。この戦略は、図43に示している。
分岐状オリゴヌクレオチド構造における疎水性部分の取り込み:戦略3
生物学的に重要な疎水性部分を導入するために、短い親油性ペプチドを、固体支持体上または溶液中で逐次ペプチド合成することによって作成する(後者については本明細書で説明する)。短い(1-10)アミノ酸鎖は、正電荷または極性アミノ酸部分を含むことができ、これは、正電荷はオリゴヌクレオチドの全体的な正味電荷を低減し、したがって疎水性を増加させるからである。適切な長さのペプチドを作成したら、無水酢酸または別の短い脂肪酸でキャッピングして、疎水性を増加させ、遊離アミンをマスクするべきである。その後、カルボニル保護基を除去して、3-アミノプロパン-1-オールを結合させ、遊離ヒドロキシル(またはアミン)をホスフィチル化するようにする。その後、このアミノ酸ホスホロアミダイトは、従来のオリゴヌクレオチド合成条件を用いて、分岐状オリゴヌクレオチドの末端5'位置に加えることができる。この戦略は、図44に示している。
C9ALS研究モデルにおけるRNAiベースの治療法
C9ALSトランスジェニックマウスは、「Balohマウス」(系統名:C57BL/6J-Tg(C9orf72_i3)112Lutzy/J)とも知られており、C9遺伝子のイントロン1内に疾患関連反復G4C2ヘキサヌクレオチド展開を発現し、ALSおよびFTDの研究において研究モデルとして使用することができる。ヘテロ接合性のC9ALSマウスは、生存可能であり、繁殖力があり、メンデルの法則で生まれる。それらは、神経系におけるRNA病巣を含む、C9orf72拡張担体で観察される中核的な病理学的特徴を発達させる。生後3か月までに、脳全体の細胞の40~80%がセンスおよびアンチセンス病巣を示す。
C9ORF72_241:
VP(mU)#(fU)#(mC)(fU)(fU)(fC)(mU)(fG)(mG)(fU)(mU)(fA)(mA)#(fU)#(mC)#(mU)#(mU)#(mU)#(mA)#(fU)によって特徴付けられた。
C9_S_DIO_Cy3_241:
CyMN3-(mG)#(mA)#(fU)(mU)(fA)(mA)(fC)(mC)(fA)(mG)(mA)(mA)(fG)#(mA)#(mA)-DIOの「ジオリゴ」を得た。
C9ALS研究モデルにおけるRNAiベースの追加療法
実施例10を報告した実験を行い、上述の「P3」修飾パターンを有する修飾オリゴヌクレオチドの2つの追加セットを合成した。第一のセットは、本明細書で「C9ORF72_052」と標識された第一のアンチセンス修飾オリゴヌクレオチドを含み、以下の式:
C9ORF72_052:
VP(mU)#(fC)#(mU)(fU)(fU)(fU)(mA)(fC)(mG)(fU)(mG)(fG)(mG)#(fC)#(mG)#(fG)#(mA)#(mA)#(mC)#(fU)によってで特徴付けられた。
C9_S_DIO_Cy3_52:
CyMN3-(mC)#(mG)#(fC)(mC)(fC)(mA)(fC)(mG)(fU)(mA)(mA)(mA)(fA)#(mG)#(mA)-DIOの「ジオリゴ」を得た。
C9ORF72_143:
VP(mU)#(fC)#(mA)(fC)(fC)(fU)(mC)(fC)(mU)(fA)(mA)(fA)(mC)#(fC)#(mC)#(fA)#(mC)#(mA)#(mC)#(fC)によって特徴付けられた。
C9_S_DIO_Cy3_143:
CyMN3-(mG)#(mG)#(fG)(mU)(fU)(mU)(fA)(mG)(fG)(mA)(mG)(mG)(fU)#(mG)#(mA)-DIOの「ジオリゴ」を得た。
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本発明は、その精神または必須特徴から逸脱することなく、他の特定の形態で具現化され得る。それ故に前記実施態様は、全ての本発明の限定ではなく、全ての点で説明用であると解釈されるべきである。故に、本発明の範囲は、上の記載ではなく、添付する特許請求の範囲により示され、特許請求の範囲の均等物の意味および範囲内の全ての変化は、それ故に本明細書に包含されることが意図される。
Claims (118)
- (i)5' AAGAAAAGACCUGAUAAAGAUUAACCAGAAGAAAACAAGGAGGGA 3'、または(ii)5' AAGAAAAGACCUGAUAAAGAUUAACCAGAAGAAAACAAGGAGGGA 3'における10~30個の連続するヌクレオチドの長さを有するその一部、と実質的に相補的な相補性領域を含む、15~35塩基長のRNA分子。
- AUAAAGAUUAACCAGAAGAAと実質的に相補的な相補性領域を含む、請求項1に記載のRNA分子。
- 一本鎖(ss)RNAまたは二本鎖(ds)RNAである、請求項1に記載のRNA分子。
- センス鎖およびアンチセンス鎖を含む、請求項3に記載のdsRNAであって、ここで、アンチセンス鎖は5' AAGAAAAGACCUGAUAAAGAUUAACCAGAAGAAAACAAGGAGGGA 3'と実質的に相補的な相補性領域を含む、該dsRNA。
- 15~25塩基長である、請求項1に記載のRNA分子。
- 該相補性領域が、5' AAGAAAAGACCUGAUAAAGAUUAACCAGAAGAAAACAAGGAGGGA 3'の少なくとも10、11、12または13個の連続するヌクレオチドと相補的である、請求項3に記載のdsRNA。
- 該相補性領域が、5' AAGAAAAGACCUGAUAAAGAUUAACCAGAAGAAAACAAGGAGGGA 3'とのミスマッチを3個以下で含む、請求項3に記載のdsRNA。
- 該相補性領域が、5' AAGAAAAGACCUGAUAAAGAUUAACCAGAAGAAAACAAGGAGGGA 3'と完全に相補的である、請求項3に記載のdsRNA。
- 平滑末端である、請求項3に記載のdsRNA。
- 少なくとも1つの一本鎖ヌクレオチド突出部を含む、請求項3に記載のdsRNA。
- 天然に存在するヌクレオチドを含む、請求項3に記載のdsRNA。
- 少なくとも1つの修飾ヌクレオチドを含む、請求項3に記載のdsRNA。
- 該修飾ヌクレオチドが、2'-O-メチル修飾ヌクレオチド、5'-ホスホロチオエート基を含むヌクレオチド、およびコレステリル誘導体もしくはドデカン酸ビスデシルアミド基に結合された末端ヌクレオチドからなる群から選択される、請求項12に記載のdsRNA。
- 該修飾ヌクレオチドが、2'-デオキシ-2'-フルオロ修飾ヌクレオチド、2'-デオキシ-修飾ヌクレオチド、ロックされたヌクレオチド、脱塩基ヌクレオチド、2'-アミノ-修飾ヌクレオチド、2'-アルキル-修飾ヌクレオチド、モルホリノヌクレオチド、ホスホルアミデートおよび非天然塩基を含むヌクレオチドからなる群から選択される、請求項12に記載のdsRNA。
- 2'-O-メチル修飾ヌクレオチドを少なくとも1つ、および5'ホスホロチオエート基を含むヌクレオチドを少なくとも1つ含む、請求項3記載のdsRNA。
- 少なくとも80%が化学的に修飾されている、請求項3に記載のdsRNA。
- 完全に化学的に修飾されている、請求項3に記載のdsRNA。
- コレステロール部分を含む、請求項3に記載のdsRNA。
- 5'末端および3'末端を含み、標的に対して相補性を有する、請求項1に記載のRNA分子であって、
(1)RNA分子は、2'-メトキシ-リボヌクレオチドおよび2'-フルオロ-リボヌクレオチドを交互に含み;
(2)5'末端から2位および14位のヌクレオチドは、2'-メトキシ-リボヌクレオチドではなく;
(3)ヌクレオチドは、ホスホジエステルまたはホスホロチオエート結合を介して結合され;そして
(4)3'末端から1~2位から1~7位のヌクレオチドは、ホスホロチオエート結合を介して隣接するヌクレオチドに結合されている、該RNA分子。 - 5'末端および3'末端を有し、標的に対して相補性を有し、そして第一のオリゴヌクレオチドおよび第二のオリゴヌクレオチドを含む、請求項3に記載のdsRNAであって、
(1)第一のオリゴヌクレオチドは、5' AAGAAAAGACCUGAUAAAGAUUAACCAGAAGAAAACAAGGAGGGA 3'と実質的に相補的な配列を含み;
(2)第一のオリゴヌクレオチドの一部は、第二のオリゴヌクレオチドの一部と相補的であり;
(3)第二のオリゴヌクレオチドは、2'-メトキシ-リボヌクレオチドおよび2'-フルオロ-リボヌクレオチドを交互に含み;
(4)第二のオリゴヌクレオチドの3'末端から2位および14位のヌクレオチドは、2'-メトキシ-リボヌクレオチドであり;そして
(5)第二のオリゴヌクレオチドのヌクレオチドは、ホスホジエステルまたはホスホロチオエート結合を介して結合されている、該dsRNA。 - 5'末端および3'末端を含み、標的に対して相補性を有する、請求項1に記載のRNA分子であって、
(1)RNA分子は、3つの連続する2'-フルオロ-リボヌクレオチドの領域を含み;
(2)5'末端から2位および14位のヌクレオチドは、2'-メトキシ-リボヌクレオチドではなく;
(3)ヌクレオチドは、ホスホジエステルまたはホスホロチオエート結合を介して結合され;
(4)3'末端から1~2位から1~7位のヌクレオチドは、ホスホロチオエート結合を介して隣接するヌクレオチドに結合され;そして、
(5)5'末端から1~2位のヌクレオチドは、ホスホロチオエート結合を介して互いに結合されている、該RNA分子。 - 5'末端および3'末端を有し、標的に対して相補性を有し、そして第一のオリゴヌクレオチドおよび第二のオリゴヌクレオチドを含む、請求項3に記載のdsRNAであって、
(1)第一のオリゴヌクレオチドは、5' AAGAAAAGACCUGAUAAAGAUUAACCAGAAGAAAACAAGGAGGGA 3'と実質的に相補的な配列を含み;
(2)第一のオリゴヌクレオチドの一部は、第二のオリゴヌクレオチドの一部と相補的であり;
(3)第二のオリゴヌクレオチドは、3つの連続する2'-メトキシ-リボヌクレオチドの領域を含み;
(4)第二のオリゴヌクレオチドの3'末端から2位および14位のヌクレオチドは、2'-メトキシ-リボヌクレオチドであり;そして
(5)第二のオリゴヌクレオチドのヌクレオチドは、ホスホジエステルまたはホスホロチオエート結合を介して結合されている、該dsRNA。 - 第二のオリゴヌクレオチドが、その3'末端に疎水性分子が結合されている、請求項20または21に記載の核酸。
- 第二のオリゴヌクレオチドと疎水性分子との間の結合が、ポリエチレングリコールまたはトリエチレングリコールを含む、請求項23に記載の核酸。
- 第二のオリゴヌクレオチドの3'末端から1位および2位のヌクレオチドが、ホスホロチオエート結合を介して隣接するヌクレオチドに結合されている、請求項20または21に記載の核酸。
- 第二のオリゴヌクレオチドの3'末端から1位および2位のヌクレオチド、および第二のオリゴヌクレオチドの5'末端から1位および2位のヌクレオチドが、ホスホロチオエート結合を介して隣接するリボヌクレオチドに結合されている、請求項20または21に記載の核酸。
- 請求項3に記載のdsRNA、および薬学的に許容できる担体を含む、生物においてC9ORF72遺伝子の発現を阻害するための医薬組成物。
- dsRNAが、該C9ORF72遺伝子の発現を少なくとも50%阻害する、請求項27に記載の医薬組成物。
- dsRNAが、該C9ORF72遺伝子の発現を少なくとも90%阻害する、請求項27に記載の医薬組成物。
- 細胞内でのC9ORF72遺伝子の発現を阻害する方法であって、
(a)請求項3に記載の二本鎖リボ核酸(dsRNA)を細胞に導入すること;および
(b)工程(a)で作製された細胞を、C9ORF72遺伝子のmRNA転写産物の分解を得るのに十分な時間を維持することを含み、それによって細胞内でのC9ORF72遺伝子の発現を阻害する方法。 - 神経変性疾患を処置または管理する方法であって、そのような処置または管理を必要とする患者に、請求項3に記載の該dsRNAの治療有効量を投与することを含む方法。
- 該dsRNAが、患者の脳に投与される、請求項31に記載の方法。
- 該dsRNAが、脳室内(ICV)または髄腔内(IT)注射によって投与される、請求項31に記載の方法。
- dsRNAの投与により、脳においてC9ORF72遺伝子の低減を引き起こす、請求項31に記載の方法。
- dsRNAの投与により、脊髄においてC9ORF72遺伝子の低減を引き起こす、請求項31に記載の方法。
- dsRNAが、該C9ORF72遺伝子の発現を少なくとも50%阻害する、請求項31に記載の方法。
- dsRNAが、該C9ORF72遺伝子の発現を少なくとも90%阻害する、請求項31に記載の方法。
- 細胞内でのC9ORF72遺伝子の発現を阻害するためのベクターであって、5' AAGAAAAGACCUGAUAAAGAUUAACCAGAAGAAAACAAGGAGGGA 3'と実質的に相補的なRNA分子をコードするヌクレオチド配列に操作可能に結合された調節配列を含み、ここで、該RNA分子は、10~35塩基長であり、該RNA分子は、該C9ORF72遺伝子を発現する細胞と接触すると、該C9ORF72遺伝子の発現を少なくとも50%阻害する、該ベクター。
- RNA分子が、該C9ORF72遺伝子の発現を少なくとも90%阻害する、請求項38に記載のベクター。
- 該RNA分子が、ssRNAまたはdsRNAである、請求項38に記載のベクター。
- dsRNAが、センス鎖およびアンチセンス鎖を含み、ここで、アンチセンス鎖は5' AAGAAAAGACCUGAUAAAGAUUAACCAGAAGAAAACAAGGAGGGA 3'と実質的に相補的な相補性領域を含む、請求項40に記載のベクター。
- 請求項38に記載のベクターを含む細胞。
- 5' AAGAAAAGACCUGAUAAAGAUUAACCAGAAGAAAACAAGGAGGGA 3'と実質的に相補的な相補性領域を含む、15~35塩基長のRNA分子であって、C9ORF72遺伝子mRNAのイントロンを標的とする、該RNA分子。
- 該RNA分子が、ssRNAまたはdsRNAである、請求項43に記載のRNA分子。
- センス鎖およびアンチセンス鎖を含み、ここで、アンチセンス鎖は5' AAGAAAAGACCUGAUAAAGAUUAACCAGAAGAAAACAAGGAGGGA 3'と実質的に相補的な相補性領域を含む、請求項44に記載のdsRNA。
- C9ORF72 mRNAと実質的に相補的な相補性領域を含む、15~35塩基長の2つのRNA分子を含むジ分岐状RNA化合物であって、該2つのRNA分子は、リンカー、スペーサーおよび分岐点から独立して選択される1つまたはそれ以上の部分によって互いに結合されている、該ジ分岐状RNA化合物。
- 5' AAGAAAAGACCUGAUAAAGAUUAACCAGAAGAAAACAAGGAGGGA 3'と実質的に相補的な相補性領域を含む、請求項46に記載のRNA分子。
- AUAAAGAUUAACCAGAAGAAと実質的に相補的な相補性領域を含む、請求項46に記載のRNA分子。
- ssRNAまたはdsRNAである、請求項46に記載のRNA分子。
- アンチセンス分子またはギャップマー分子である、請求項46に記載のRNA分子。
- 該アンチセンス分子が、アンチセンスオリゴヌクレオチドである、請求項50に記載のRNA分子。
- 該アンチセンス分子が、相補性領域の分解を向上させる、請求項51に記載のRNA分子。
- 該分解が、ヌクレアーゼ分解である、請求項52に記載のRNA分子。
- 該ヌクレアーゼ分解が、RNase Hによって媒介される、請求項53に記載のRNA分子。
- 表1、表2、表3、表4、または表5に記載のC9ORF72遺伝子における遺伝子領域と実質的に相補的な相補性領域を含む、15~35塩基長のRNA分子。
- 一本鎖(ss)RNAまたは二本鎖(ds)RNAである、請求項55に記載のRNA分子。
- 2つまたはそれ以上の核酸を含む分岐状オリゴヌクレオチド化合物であって、
各核酸は、独立して、15~35塩基長であり、
各核酸は、独立して、5' AAGAAAAGACCUGAUAAAGAUUAACCAGAAGAAAACAAGGAGGGA 3'と実質的に相補的な相補性領域を含み、そして、
該2つまたはそれ以上の核酸は、リンカー、スペーサーおよび分岐点から選択される1つまたはそれ以上の部分によって互い結合されている、該分岐状オリゴヌクレオチド化合物。 - 各核酸が、独立して、15~25塩基長である、請求項57に記載の分岐状オリゴヌクレオチド化合物。
- 少なくとも1つの相補性領域が、5' AUAAAGAUUAACCAGAAGAA 3'と実質的に相補的である、請求項57に記載の分岐状オリゴヌクレオチド化合物。
- 核酸が二本鎖(ds)RNAであり、各核酸がセンス鎖およびアンチセンス鎖を含み、各アンチセンス鎖は5' AAGAAAAGACCUGAUAAAGAUUAACCAGAAGAAAACAAGGAGGGA 3'と実質的に相補的な相補性領域を含む、請求項57に記載の分岐状オリゴヌクレオチド化合物。
- 各相補性領域が、5' AAGAAAAGACCUGAUAAAGAUUAACCAGAAGAAAACAAGGAGGGA 3'の少なくとも10、11、12または13個の連続するヌクレオチドと相補的ある、請求項60に記載の分岐状オリゴヌクレオチド化合物。
- 各相補性領域が、5' AAGAAAAGACCUGAUAAAGAUUAACCAGAAGAAAACAAGGAGGGA 3'とのミスマッチを3個以下で含む、請求項60に記載の分岐状オリゴヌクレオチド化合物。
- 各相補性領域が、5' AAGAAAAGACCUGAUAAAGAUUAACCAGAAGAAAACAAGGAGGGA 3'と完全に相補的である、請求項60に記載の分岐状オリゴヌクレオチド化合物。
- 少なくとも1つの核酸のdsRNAが、少なくとも1つの修飾ヌクレオチドを含む、請求項60に記載の分岐状オリゴヌクレオチド化合物。
- 該修飾ヌクレオチドが、2'-O-メチル修飾ヌクレオチド、5'-ホスホロチオエート基を含むヌクレオチド、2'-デオキシ-2'-フルオロ修飾ヌクレオチド、2'-デオキシ-修飾ヌクレオチド、ロックされたヌクレオチド、脱塩基ヌクレオチド、2'-アミノ-修飾ヌクレオチド、2'-アルキル-修飾ヌクレオチド、モルホリノヌクレオチド、ホスホルアミデート、非天然塩基を含むヌクレオチド、およびコレステリル誘導体もしくはドデカン酸ビスデシルアミド基に結合された末端ヌクレオチドからなる群から選択される、請求項64に記載の分岐状オリゴヌクレオチド化合物。
- 少なくとも1つの核酸のdsRNAが、少なくとも80%が化学的に修飾されている、請求項60に記載の分岐状オリゴヌクレオチド化合物。
- 少なくとも1つの核酸のdsRNAが、完全に化学的に修飾されている、請求項60に記載の分岐状オリゴヌクレオチド化合物。
- 各核酸が、5'末端および3'末端を含み、標的に対して相補性を有する、請求項60に記載の分岐状オリゴヌクレオチド化合物であって、
(1)核酸は、2'-メトキシ-リボヌクレオチドおよび2'-フルオロ-リボヌクレオチドを交互に含み;
(2)5'末端から2位および14位のヌクレオチドは、2'-メトキシ-リボヌクレオチドではなく;
(3)ヌクレオチドは、ホスホジエステルまたはホスホロチオエート結合を介して結合され;そして、
(4)3'末端から1~2位から1~7位のヌクレオチドが、ホスホロチオエート結合を介して隣接するヌクレオチドに結合されている、分岐状オリゴヌクレオチド化合物。 - 2、3、4、6、または8の核酸を含む、請求項57に記載の分岐状オリゴヌクレオチド化合物。
- 核酸が二本鎖(ds)RNAであり、各核酸が、センス鎖およびアンチセンス鎖を含み、各dsRNAが、独立して、センス鎖またはアンチセンス鎖の3'末端または5'末端でリンカー、スペーサーまたは分岐点に結合されている、請求項57に記載の分岐状オリゴヌクレオチド化合物。
- 各リンカーが、独立して、エチレングリコール鎖、アルキル鎖、ペプチド、RNA、DNA、ホスフェート、ホスホネート、ホスホルアミデート、エステル、アミド、トリアゾール、およびこれらの組み合わせから選択され;ここで、リンカーのいずれかの炭素または酸素原子は窒素原子によって置き換えられていてよく、ヒドロキシル置換基を有するか、オキソ置換基を有する、請求項57に記載の分岐状オリゴヌクレオチド化合物。
- 式(I):
Lは、エチレングリコール鎖、アルキル鎖、ペプチド、RNA、DNA、ホスフェート、ホスホネート、ホスホルアミデート、エステル、アミド、トリアゾール、およびこれらの組み合わせから選択され、ここで、式(I)は、1つまたはそれ以上の分岐点B、および1つまたはそれ以上のスペーサーSをさらに含んでいてよく(ここで、
Bは、出現するごとに独立して、多価有機種またはその誘導体であり;
Sは、出現するごとに独立して、エチレングリコール鎖、アルキル鎖、ペプチド、RNA、DNA、ホスフェート、ホスホネート、ホスホルアミデート、エステル、アミド、トリアゾール、およびこれらの組み合わせからなる群から選択される);
Nは、センス鎖およびアンチセンス鎖を含む15~35塩基長の二本鎖核酸であり、ここで、
アンチセンス鎖は、5' AAGAAAAGACCUGAUAAAGAUUAACCAGAAGAAAACAAGGAGGGA 3'と実質的に相補的な相補性領域を含み;
センス鎖およびアンチセンス鎖は、それぞれ独立して、1つまたはそれ以上の化学修飾を含み;そして、
nは、2、3、4、5、6、7または8である]
で示される化合物。 - RがR3であり、nが2である、請求項79に記載の化合物。
- RがR3であり、nが2である、請求項81に記載の化合物。
- 式(VI):
Lは、エチレングリコール鎖、アルキル鎖、ペプチド、RNA、DNA、ホスフェート、ホスホネート、ホスホルアミデート、エステル、アミド、トリアゾール、およびこれらの組み合わせからなる群から選択され、ここで、式(VI)は、1つまたはそれ以上の分岐点B、および1つまたはそれ以上のスペーサーSをさらに含んでいてよく(ここで、
Bは、出現するごとに独立して、多価有機種またはその誘導体であり;
Sは、出現するごとに独立して、エチレングリコール鎖、アルキル鎖、ペプチド、RNA、DNA、ホスフェート、ホスホネート、ホスホルアミデート、エステル、アミド、トリアゾール、およびこれらの組み合わせからなる群から選択される);
各cNAは、独立して、1つまたはそれ以上の化学修飾を含む担体核酸であり;
各cNAは、独立して、5' AAGAAAAGACCUGAUAAAGAUUAACCAGAAGAAAACAAGGAGGGA 3'の少なくとも15個の連続するヌクレオチドを含み;そして、
nは、2、3、4、5、6、7または8である]
の構造を有する、治療的核酸のための送達システム。 - 各cNAが、独立して、化学修飾ヌクレオチドを含む、請求項83に記載の送達システム。
- n個の治療的核酸(NA)をさらに含み、ここで、各NAは、少なくとも1つのcNAにハイブリダイズしている、請求項83に記載の送達システム。
- 各NAが、独立して、少なくとも16個の連続するヌクレオチドを含む、請求項86に記載の送達システム。
- 各NAが、独立して、16~20個の連続するヌクレオチドを含む、請求項87に記載の送達システム。
- 各NAが、少なくとも2個のヌクレオチドの不対突出部を含む、請求項87に記載の送達システム。
- 突出部のヌクレオチドが、ホスホロチオエート結合を介して結合されている、請求項89に記載の送達システム。
- 各NAが、独立して、DNA、siRNA、アンタゴmiR、miRNA、ギャップマー、ミックスマー、またはガイドRNAからなる群から選択される、請求項86に記載の送達システム。
- 生物においてC9ORF72遺伝子の発現を阻害する医薬組成物であって、請求項55~80のいずれか一項に記載の分岐状オリゴヌクレオチド化合物または請求項83~91のいずれか一項に記載の送達システムおよび薬学的に許容できる担体を含む、該医薬組成物。
- 分岐状オリゴヌクレオチド化合物または送達システムが、該C9ORF72遺伝子の発現を少なくとも50%阻害する、請求項92に記載の医薬組成物。
- 分岐状オリゴヌクレオチド化合物または送達システムが、該C9ORF72遺伝子の発現を少なくとも90%阻害する、請求項92に記載の医薬組成物。
- 細胞内でのC9ORF72遺伝子の発現を阻害する方法であって、
(a)請求項57~82のいずれか一項に記載の分岐状オリゴヌクレオチド化合物または請求項83~91のいずれか一項に記載の送達システムを細胞に導入すること;および
(b)工程(a)で作製された細胞を、C9ORF72遺伝子のmRNA転写産物を得るのに十分な時間維持することを含み、それによって細胞内でのC9ORF72遺伝子の発現を阻害する方法。 - 神経変性疾患を処置または管理する方法であって、そのよう処置または管理を必要とする患者に、治療有効量の請求項57~82のいずれか一項に記載の分岐状オリゴヌクレオチド化合物または請求項83~91のいずれか一項に記載の送達システムを投与することを含む方法。
- 分岐状オリゴヌクレオチド化合物または送達システムが、患者の脳に投与される、請求項96に記載の方法。
- 分岐状オリゴヌクレオチド化合物または送達システムが、脳室内(ICV)または髄腔内(IT)注射によって投与される、請求項97に記載の方法。
- 分岐状オリゴヌクレオチド化合物または送達システムの投与により、脳においてC9ORF72遺伝子mRNAの低減を引き起こす、請求項96に記載の方法。
- 分岐状オリゴヌクレオチド化合物または送達システムの投与により、脊髄においてC9ORF72遺伝子mRNAの低減を引き起こす、請求項96に記載の方法。
- 分岐状オリゴヌクレオチド化合物または送達システムが、C9ORF72遺伝子の発現を少なくとも50%阻害する、請求項96に記載の方法。
- 分岐状オリゴヌクレオチド化合物または送達システムが、C9ORF72遺伝子の発現を少なくとも90%阻害する、請求項96に記載の方法。
- それぞれ独立して15~35塩基長である二つの核酸を含む分岐状オリゴヌクレオチド化合物であって、各核酸は、C9ORF72 mRNAと実質的に相補的な相補性領域を含み、ここで、該二つの核酸は、リンカー、スペーサーおよび分岐点からなる群から独立して選択される1つまたはそれ以上の部分によって互いに結合されている、該分岐状オリゴヌクレオチド化合物。
- 各核酸が、独立して、表1、表2、表3、表4、または表5に記載のC9ORF72遺伝子における遺伝子領域と実質的に相補的な相補性領域を含む、請求項103に記載の分岐状オリゴヌクレオチド化合物。
- 各核酸が、独立して、一本鎖(ss)RNAまたは二本鎖(ds)RNAである、請求項103に記載の分岐状オリゴヌクレオチド化合物。
- 第一のガイド鎖、第二のガイド鎖、第一のパッセンジャー鎖、第二のパッセンジャー鎖、およびリンカーを含むジ分岐状オリゴヌクレオチド化合物であって、
第一のガイド鎖および第二のガイド鎖は、それぞれ独立して、5' GAUUAACCAGAAGAA 3'と実質的に相補的な相補性領域を含み;そして、
第一のパッセンジャー鎖および第二のパッセンジャー鎖は、リンカーを介して互いに結合されている、該ジ分岐状オリゴヌクレオチド化合物。 - 第一のガイド鎖および第二のガイド鎖は、それぞれ独立して、5' VP(mU)#(fU)#(mC)(fU)(fU)(fC)(mU)(fG)(mG)(fU)(mU)(fA)(mA)#(fU)#(mC)#(mU)#(mU)#(mU)#(mA)#(fU) 3'を含む、請求項106に記載のジ分岐状オリゴヌクレオチド化合物。
- 第一のパッセンジャー鎖および第二のパッセンジャー鎖はそれぞれ、5' (mG)#(mA)#(fU)(mU)(fA)(mA)(fC)(mC)(fA)(mG)(mA)(mA)(fG)#(mA)#(mA) 3'を含む、請求項106に記載のジ分岐状オリゴヌクレオチド化合物。
- リンカーが、エチレングリコール鎖、アルキル鎖、ペプチド、RNAオリゴヌクレオチド、DNAオリゴヌクレオチド、ホスフェート、ホスホネート、ホスホルアミデート、エステル、アミド、トリアゾール、およびこれらの組み合わせからなる群から選択され;
ここで、リンカーのいずれかの炭素または酸素原子は、窒素原子によって置き換えられていてよく、ヒドロキシル置換基を有していてよく、またはオキソ置換基を有していてよい、請求項106に記載のジ分岐状オリゴヌクレオチド化合物。 - リンカーが、グリセロールまたは式-O-(CH2)o-CH(OH)-(CH2)p-O-[式中、oおよびpは、独立して、1~約6の整数である]のグリセロールホモログ鎖;および
式-O-(CH2)m-C(O)NH-CH2-CH(OH)-CH2-NHC(O)-(CH2)m-O-[式中、mは、0~約10の整数である]の1,3-ジアミノ-2-ヒドロキシプロパンの誘導体からなる群から選択される、請求項106に記載のジ分岐状オリゴヌクレオチド化合物。 - 第一のパッセンジャー鎖の3'末端が、リンカーを介して第二のパッセンジャー鎖の3'末端に結合されている、請求項106に記載のジ分岐状オリゴヌクレオチド。
- 神経変性疾患を処置または管理する方法であって、そのような処置または管理を必要とする患者に、請求項106~111のいずれか一項に記載の治療有効量のジ分岐状オリゴヌクレオチド化合物を投与することを含む方法。
- ジ分岐状オリゴヌクレオチド化合物が、患者の脳に投与される、請求項112に記載の方法。
- ジ分岐状オリゴヌクレオチド化合物が、脳室内(ICV)または髄腔内注射によって投与される、請求項112に記載の方法。
- ジ分岐状オリゴヌクレオチド化合物の投与により、脳においてC9ORF72疾患アイソフォーム遺伝子mRNAの低減を引き起こす、請求項112に記載の方法。
- ジ分岐状オリゴヌクレオチド化合物の投与により、脊髄においてC9ORF72疾患アイソフォーム遺伝子mRNAの低減を引き起こす、請求項112に記載の方法。
- ジ分岐状オリゴヌクレオチド化合物が、C9ORF72疾患アイソフォーム遺伝子の発現を少なくとも50%阻害する、請求項112に記載の方法。
- ジ分岐状オリゴヌクレオチド化合物が、C9ORF72疾患アイソフォーム遺伝子の発現を少なくとも90%阻害する、請求項112に記載の方法。
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