JP2022500042A - 抗hiv抗体10−1074バリアント - Google Patents
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Abstract
Description
本出願は、米国特許法第119条(e)に基づく、2018年9月14日に出願された米国仮特許出願第62/731,356号に対する優先権を主張する。上記の出願はその全体が参照により本明細書に組み込まれる。
本発明はNIHによる認可番号第P01AI081677号に基づく連邦政府の支援を受けて行われたものである。連邦政府は本発明について一定の権利を有する。
本開示は、改良された生物物理学的特徴をもたらす修飾された軽鎖可変領域及び/又は重鎖可変領域を有する広域中和抗HIV抗体の新規カテゴリと、その製造方法及び使用方法とに関する。
したがって、一態様では、本開示は、配列番号3〜13、22、24〜28、35〜39、43〜45、及び47の軽鎖可変領域からなる群から選択されるポリペプチド配列と少なくとも75%(すなわち、80%、85%、90%、95%、97%、98%、99%)同一である軽鎖アミノ酸配列を有する軽鎖可変領域を含む、単離された抗HIV抗体又はその抗原結合部分を提供する(表2)。単離された抗HIV抗体又はその抗原結合部分は、軽鎖可変領域の内部又は外部に位置する1つ以上の残基における1つ以上の軽鎖置換を含み得る。置換に対する残基は、LmdV:Y2、LmdV:R7、LmdV:P9、LmdV:E17、LmdV:H46、LmdV:P81.1、LmdV:I81.3、LmdV:N82、LmdV:R88、LmdV:D110、及びLmdV:A142のうちの1つ以上であり得る。
対象におけるHIVウイルス力価、ウイルス複製、ウイルス増殖又はHIVウイルスタンパク質の量の増加を低減させるための方法を更に提供する。別の態様によると、ある方法は、対象における1つ以上のHIV株又は単離体のHIV力価、ウイルス複製又はHIVタンパク質の量の増加を低減させるのに有効な量のHIV抗体を対象に投与することを含む。
別の実施形態によると、本開示は、ウイルス感染症に感染した、例えばHIVなどに感染した、哺乳動物を治療するための方法を提供し、この方法は、本明細書に開示するHIV抗体を含む医薬組成物を該哺乳動物に投与することを含む。一実施形態によると、HIVに感染した哺乳動物を治療するための方法は、本開示の抗体又はその断片を含む医薬組成物を該哺乳動物に投与することを含む。本開示の組成物は、開示する特徴を有する1つより多くの抗体(例えば、複数の抗体又は抗体のプール)を含むことができる。また、当該技術分野で周知である他のHIV中和抗体、例えば、10−259、10−303、10−410、10−847、10−996、10−1121、10−1130、10−1146、10−1341、10−1369、10−1074GM、GL、10E8、12A12、12A21、2F5、2G12、35022、3BC176、3BNC117、3BNC55、3BNC60、3BNC62、447−52D、4E10、5H/I1−BMV−D5、8ANC195、b12、CAP256−VRC26.01、CAP256−VRC26.02、CAP256−VRC26.03、CAP256−VRC26.04、CAP256−VRC26.05、CAP256−VRC26.06、CAP256−VRC26.07、CAP256−VRC26.08、CAP256−VRC26.09、CAP256−VRC26.10、CAP256−VRC26.11、CAP256−VRC26.12、CH01、CH02、CH03、CH04、CH103、HGN194、HJ16、HK20、M66.6、NIH45−46、PCDN−33A、PCDN−33B、PCDN−38A、PG9、PG16、PGDM1400、PGDM1401、PGDM1402、PGDM1403、PGDM1404、PGDM1405、PGDM1406、PGDM1407、PGDM1408、PGDM1409、PGDM1410、PGDM1411、PGDM1412、PGT121、PGT122、PGT123、PGT125、PGT126、PGT127、PGT128、PGT130、PGT131、PGT135、PGT136、PGT137、PGT141、PGT142、PGT143、PGT145、PGT151、PGT152、VRC−CH30、VRC−CH31、VRC−CH32、VRC−CH33、VRC−CH34、VRC−PG04、VRC−CH04b、VRC−PG20、VRC01、VRC02、VRC03、VRC07、VRC23、及びZ13を含むことができるが、これらに限定されない。
本開示による組成物及び方法の詳細な説明の理解を助けるために、いくつかの明確な定義が提供されることで、本開示の様々な態様の明確な開示が容易となる。別段の定義がない限り、本明細書で使用される全ての技術的及び科学的用語は、本開示が属する当業者によって一般に理解されるものと同じ意味を有する。
10−1074広域中和抗体のバリアントの同定及び性質決定−ラウンド1
表9に示すような、MS−203、MS−204、MS−205、MS−206、MS−207、MS−208、MS−209、MS−210、MS−211、MS−212、MS−213、MS−214、MS−215、MS−216、MS−217、MS−218、MS−219、MS−220、及びMS−224を含む第1ラウンドのバリアントを、HEK293細胞における一過性発現を用いて作製し、プロテインAクロマトグラフィによって精製した。バリアントを分析するために使用した性質決定法を、サイズ排除クロマトグラフィ(exclusion chromatography:SEC)、示差走査蛍光光度(Differential Scanning Fluorimetry:DSF)、低pH安定性及び相対溶解度アッセイ(relative solubility assay:RSA)を含め、表8に列挙する。抗体をリン酸緩衝生理食塩水中へ緩衝液交換し、分析に使用した。第1ラウンドバリアントの分析に使用したアッセイは、精製後の単量体及び高分子量種を定量するためのSECと、熱ランピング中のCH2及びFabドメインの安定性を性質決定するためのDSFと、中和能の保持と、を含んだ。
10−1074広域中和抗体のバリアントの同定及び性質決定−ラウンド2
第2ラウンドの組合せバリアントは、前のセクションで説明した第1ラウンドのバリアントに基づいて設計した。第2の最適化ラウンドにおいて試験された組合せバリアントを表12に示す。これは、10の二重組合せ、10の三重組合せ、5つの四重組合せ、及び5つ全てのアミノ酸修飾からなる1つの五重組合せからなる。これらのバリアントとして、MS−200、MS−201、MS−202、MS−225、MS−226、MS−227、MS−228、MS−229、MS−230、MS−231、MS−232、MS−233、MS−234、MS−235、MS−236、MS−237、MS−238、MS−239、MS−240、MS−241、MS−242、MS−243、MS−244、及びMS−245が挙げられる。HEK293細胞における一過性発現を用いて組合せバリアントを作製し、プロテインAクロマトグラフィによって精製した。抗体は、分析に使用する前に、リン酸緩衝生理食塩水中へ緩衝液交換した。第2ラウンドのバリアントの分析に使用したアッセイは、精製後の単量体及び高分子量種を定量するためのSECと、熱ランピング中のCH2及びFabドメインの安定性、化学的アンフォールディング、低pH安定性、溶解性、中和能の保持を性質決定するための示差走査蛍光光度と、を含んだ。
最終的に最適化されたバリアントは、上で定義された最終的なバリアントセットに基づいた。実施した分析は、下流精製(図1〜図2)、加速安定性(図3〜図4)であった。下流精製分析及び加速安定性のために、CHO−S細胞株における一過性発現を用いて分子を作製した。
抗体材料をクローニングし、以前に説明されたとおりに作製した(Durocher,Y.、Perret,S.及びKamen,A.(2002年)「Nucleic Acids Research」第30巻第2号第E9頁)。bNAbs抗体材料をは、2つの懸濁細胞系である、ヒト胎児腎細胞293(Human Embryonic Kidney 293:HEK293)及びチャイニーズハムスター卵巣(Chinese Hamster Ovary:CHO)の一過性発現から生成した。軽鎖(LC)又は重鎖(HC)コード領域のいずれかを含むpTT5哺乳動物発現ベクタを、ポリエチレンイミン(PEI)(Durocher、Perret、及びKamen(2002年))を用いて1×10^6細胞/mLの生細胞密度(viable cell density:VCD)でHEK293細胞中にコトランスフェクトし、次いで1/5振とうフラスコ容積となるように予め加温した培地で2倍希釈した。発現期間は、37℃、5%CO2、湿度85%、振とう速度130RPM、軌道19mmにおいて5〜7日であった。ExpiCHO−S(商標)の「max titer」法は、基本的にThermoFisher(カタログ番号A29133、文書パーツ番号A29518)の説明に従った。LC又はHCコード領域のいずれかを含むpcDNA3.4発現ベクタを、expifectamineを用いて6×10^6のVCDにてCHO−S細胞にコトランスフェクトした。発現期間は、32℃、5%CO2、湿度85%、振とう速度130RPM、軌道19mmにおいて12日であった。全ての清澄化された上清は、3000gで20分間細胞をペレッティングし、続いて0.22μmのろ過を行って生産した。MabSelect SuReプロテインA樹脂を用いて、清澄化した上澄から抗体を精製した。アルギニン洗浄液及び酢酸pH3.5溶出物を伴うリン酸ナトリウム、塩化ナトリウム緩衝系を利用した。プロテインA溶出液をトリスで中和し、20mMリン酸ナトリウム、150mM NaCl、pH7.4へ緩衝液交換した。
ウイルス中和は、TZM.bl細胞におけるルシフェラーゼに基づくアッセイを用いて評価した(「J Virol」第79巻第16号第10108〜10125頁)。試験したHIV−1シュードウイルスは大部分がtier2及びtier3ウイルスを含んでいた(「Journal of Virology」第84巻第3号第1439〜1452頁)。25μMのキフネンシン(Enzo Life Sciences)で処理した野生型細胞中、又はHEK 293S GnTI−/−細胞中で、高マンノースのみのシュードウイルス生産した。非線形回帰分析を使用して、半減期阻害が観察された濃度(IC50値)を算出した。中和活性はまた、1985年と1989年との間(「過去のセロコンバータ」、n=14)又は2003年と2006年との間(「現在のセロコンバータ」、n=21)のいずれかの既知のセロコンバージョン日程を有するクレードB感染ドナーから単離した一次HIV−1バリアント(n=95)による感染を用い、以前に性質決定したPBMCに基づくアッセイでも評価した(「Journal of Virology」第85巻第14号第7236〜7245頁;「Nat Med」第16巻第9号第995〜997頁)。各抗体の中和活性は、GraphPad Prismソフトウェア(v5.0b)を用いて、0.001〜50μg/mLの範囲のIC50値にわたって中和されたウイルスの割合に適合する最良曲線当嵌め下の面積として、算出した。
高速サイズ排除クロマトグラフィ(HP−SEC)は、流体力学的体積の違いに基づいてタンパク質を分離する。大きな流体力学的タンパク質体積を持つ分子は、小さな体積を持つ分子よりも早く溶出する。未希釈の試料を、Waters XBridge Protein BEH SEC 200Aカラム(3.5μm、7.8×300mm)にロードし、100mMリン酸ナトリウム、250mM塩化ナトリウム、pH6.8ランニング緩衝液で等透過的に分離し、溶離物を280nmのUV吸光度でモニタした。純度は総面積に対する各分離成分の割合を計算することで判定した。
DSF法は、タンパク質の疎水性領域の転移温度及び曝露を判定するために、徐々に温度を上げて疎水性プローブの蛍光強度を測定することからなる。転移温度として報告されたこの方法による測定値は、示差走査熱量測定(differential scanning calorimetry:DSC)から得られたデータとよく相関している。DSFは、タンパク質の相対的な熱力学的安定性を推定するために使用されるハイスループット技術であり、結果をランク付けすることで、より好ましい安定性特性を持つ候補を選択するツールとして使用することができる。DSFによる熱遷移温度を以前説明された方法に従って測定した(Feng Hら、「J Pharm Sci」(2010年)第99巻第4号第1707〜1720頁)。最終タンパク質濃度0.15mg/mL及び最終Sypro Orange濃度3倍で、PBS緩衝液(20mMリン酸ナトリウム及び150mM塩化ナトリウムpH7.1)中において分析を行った。タンパク質とSypro Orangeとを96ウェルPCRプレート中で1:1の容積比で混合し、熱シフト分析ソフトウェアを備えたRocheのLightCycler 480装置を用いて分析した。20〜95℃から4.4℃/病のランプ速度で試料を加熱し、Ex=465nm、Em=580nmで10回/℃で取得して熱曲線を作成した。遷移温度と及びショルダースコアは融解曲線の一次導関数を用いて判定した。
20mM PBS中1mg/mLでのタンパク質試料のpHは、2M酢酸を用いておよそpH3.3まで低下した。30分間のインキュベーション後、試料を2Mトリス塩基を用いておよそpH5に中和した。試料はSE−HPLC法を用いて高分子量種について二重に測定した。対照として、タンパク質試料に2M酢酸及び2Mトリス塩基と同量のPBSを加え、高分子量種を測定した。
溶解性は以前に説明した方法に従って評価した(Vishal M.Toprani、Sangeeta B.Joshi、Lisa A.Kueltzo、Richard M.Schwartz、C.Russell Middaugh、David B.Volkin)。モノクローナル抗体の設計及び製剤開発のための相対的溶解度スクリーニングツールとしての、マイクロポリエチレングリコール沈殿アッセイ(「J.Pharm.Sci」(2016年)第105巻第8号第2319〜2327頁)。分析は、PBS緩衝液(20mMリン酸ナトリウム、150mM塩化ナトリウム、pH7.1)及び最終PEG10,000濃度7.9%で行った。1mg/mLのタンパク質を1:4の比でPEG溶液に希釈し、96ウェルの0.22μmフィルタプレートで室温にて一晩インキュベートした。PEGインキュベーション後、試料を遠心分離でフィルタに通し、残った可溶性タンパク質をプロテインA力価アッセイにより測定する。
0〜6M GNDの範囲であるPBS中の塩酸グアニジン(GND)濃度32種類を、リキッド・ハンドリング・ロボットを用いて調製した。その後、20mMのPBS中1mg/mLのタンパク質試料を、最終的なタンパク質濃度が0.05mg/mLを達成するよう各GND濃度に移した。24時間インキュベーションした後、試料をSpectraMax M5プレートリーダで測定した(励起:280nm、発光:300〜450nm)。測定された373nmの蛍光強度は、散乱及び迷光を補正するために、300〜320nmの間で測定された合計強度(散乱によるシグナルの代用として使用)を少量差し引いて補正し、次いで320〜440nmの間で測定された合計強度と比例させ、合計強度の変動を補正した。その後、各補正後強度をGND濃度に対してグラフ化することで、化学的アンフォールディング曲線を作成した。曲線の変曲点を計算し、この曲線から各タンパク質試料を報告した。試料は3重に作成した。
サブビジブル粒子は、80μmのフローセル及び10倍の拡大レンズを備え、かつVisual Spreadsheetソフトウェアで制御された、Flowcam 8100ベンチトップマイクロフロー撮像システムを用いて測定した。試料を室温に平衡させ、軽く振り混ぜて完全に混合した。100μL/試料の単一読取りを行い、2μm以上の総粒子濃度を記録した。
ウイルス不活性化及び精製工程における10−1074バリアントのオリゴマー種及びHMWの形成に関する性質決定
図1は、ウイルス中和の前後における高速サイズ排除クロマトグラフィ(「HP−SEC」)による抗HIV抗体10−1074バリアントMS−194(図1A)及びMS−203(図1B)の性質決定を示す。ウイルス不活化中に形成されたオリゴマー種に対応するHP−SECプロファイルのピークは、矢印で示す。図2は、10−1074個の抗体バリアントであるMS−194、MS−200、MS−201、及びMS−203について、精製工程の各々に続く高分子量(「HMW」)及びオリゴマー種のレベルによって表される凝集度の定量を示す。
10−1074バリアントの安定性の性質決定
図3は、10−1074抗体バリアントであるMS−194、MS−200、MS−201、及びMS−203について、40℃で最大13週間のインキュベーション中におけるHMWレベルを示す。図は、40℃で最大13週間までのインキュベーションの間における、二量体形成の同様の速度を示す。図4は、10−1074抗体バリアントであるMS−194、MS−200、MS−201、及びMS−203について、6週間及び13週間におけるサブビジブル粒子形成のレベルを示す。図は、抗体MS−200、MS−201及びMS−203が、MS−194よりもはるかに小さい程度まで粒子化されたことを示す。6週間後、MS−194は、MS−200、MS−201及びMS−203より6倍多い粒子を示したが、13週間後にはMS−200及びMS−203はMS−194よりおよそ2倍少なく、MS−203は4倍少ない粒子形成を示した。
抗HIV−1抗体との併用療法
抗HIV−1抗体はART5の潜在的な代替物を構成するが、単一抗体によるウイルス血症患者の治療もまた、耐性ウイルスバリアントを出現させる((Caskey,M.ら、「Nature」第522巻第487〜491頁(2015年);Caskey,M.ら、「Nat.Med.」第23巻第185〜191頁(2017年);Lynch,R.M.ら、「Sci.Transl.Med.」第7巻第319ra206頁(2015年))。更に、第一世代の抗HIV−1広域中和抗体(bNAb)の併用は、感染に対する測定可能な効果をほとんど示さなかった。本開示は、HIV−1エンベロープスパイク上の独立部位を標的とする2つの強力なモノクローナル抗HIV−1広域中和抗体である3BNC117及び10−1074の組合せが、分析的治療中断(ATI)中に投与された、第1b相臨床試験(NCT02825797)からの結果を示す(Mendozaら、「Nature.」(2018年9月)第561巻第7724号第479〜484頁;Bar−Onら、「Nature Medicine」第24巻第1701〜1707頁(2018年))。参加者は、0、3、及び6週間で各抗体の30mg/kgを3回注入した。2つの抗体の注入は一般に忍容性が良好であった。抗体感受性潜在ウイルスリザーバである登録した9人は、15週〜30週未満(中央値=21週)の抑制を維持した。二重抗体感受性ウイルスを有する4人の個体では、免疫療法は、2.05log10コピー/mLのHIV−1ウイルス負荷の平均減少をもたらし、最大3回までの注入の初回後から3ヶ月間有意な減少が維持された。加えて、両抗体に耐性を示すウイルスは発生しなかった。抗HIV−1モノクローナル抗体3BNC117及び10−1074の併用は、抗体感受性ウイルスリザーバである個体においてARTの非存在下で長期抑制を維持できると結論された。
非盲検第1b相試験は抗レトロウイルス療法(antiretroviral therapy:ART)でウイルス学的に抑制されたHIV−1感染参加者において実施された(http://www.clinicaltrials.gov;NCT02825797;EudraCT:2016−002803−25)(Mendozaら、「Nature.」(2018年9月)第561巻第7724号第479〜484頁;Bar−Onら、「Nature Medicine」第24巻第1701〜1707頁(2018年))。試験参加者は適格基準に従って順次登録した。参加者は、ウイルス性リバウンドが起こらない場合、3BNC117及び10−1074を、各抗体30mg/kg体重の用量で、0、3、6週目に静脈内投与された。ARTは抗体の初回注入から2日後に中止した(2日目)。血漿HIV−1ウイルスRNAレベルを毎週モニタし、ウイルス負荷が200コピー/mL以上に増加した場合、又はCD4+T細胞数が2回の連続した測定で350細胞/pl未満に減少した場合、ARTを再開した。ウイルスリバウンドの時間は、初回ウイルス負荷を200コピー/mL超で判定した。試験参加者を初回注入後30週間追跡した。安全性データは試験の追跡調査が終了するまで報告される。全ての参加者は試験に参加する前に書面によってインフォームドコンセントを受け、本試験は、優良臨床試験基準(Good Clinical Practice:GCP)に従って実施した。このプロトコルは、米国の食品医薬品局(Federal Drug Administration:FDA)、ドイツのPaul−Ehrlich−Institute、並びにロックフェラー大学及びケルン大学での治験審査委員会(Institutional Review Board:IRBs)によって承認された。
試験参加者は、ロックフェラー大学病院(ニューヨーク、米国)及びケルン大学病院(ケルン、ドイツ)で募集した。適格な参加者は、18〜65歳の成人、HIV−1感染者、少なくとも24ヶ月間ARTを受けており、少なくとも18ヶ月にわたり血漿中HIV−1RNAレベルが50コピー/mL未満(この18ヶ月間に50コピー/mLを超えるが500コピー/mL未満であるウイルスブリップ(blip)が一度認められる)、血漿中HIV−1 RNAレベルがスクリーニング受診時に20コピー/mL未満、及び現在のCD4+T細胞数が500細胞/pl超であった。加えて、参加者は、以下に記載するように、バルクPBMCウイルス増殖培養によって、3BNC117及び10−1074に対する潜在プロウイルスの感受性について事前にスクリーニングされた。感受性は、増殖ウイルスに対する3BNC117及び10−1074の両方についてIC50が2pg/mL未満と定義された。NNRTIベースのARTレジメンの参加者は、NNRTIの半減期が長いため、治療中断の4週間前にインテグラーゼ阻害剤ベースのレジメン(ドルテグラビル+テノホビルジソプロキシルフマル酸塩/エムトリシタビン)に切り替えられた。除外基準は、報告されたCD4+T細胞最低値が200細胞/pl未満、B型又はC型肝炎の同時感染、任意の種類のモノクローナル抗体の事前投与、臨床的に関連する身体所見、医学的状態又は臨床検査異常、及び妊娠又は授乳を含んだ。
3BNC117及び10−1074は30mg/kgの用量レベルで静脈内投与された(Mendozaら、「Nature.」(2018年9月)第561巻第7724号第479〜484頁;Bar−Onら、「Nature Medicine」第24巻第1701〜1707頁(2018年))。3BNC117及び10−1074の適切な貯蔵容量を体重に応じて計算し、滅菌生理食塩水で希釈して、抗体当たりの総容量250mLとした。モノクローナル抗体注入は連続的に60分かけて静脈内投与で行った。試験参加者は最後の抗体注入から1時間後にロックフェラー大学病院又はケルン大学病院で観察された。参加者は、安全性評価のためATI期間中に週1回の追跡来院のために戻ってきた。これには,身体検査、及び血液学的検査、化学的検査、尿検査、及び妊娠検査(女性の場合)などの臨床検査パラメータの測定が含まれた。血漿HIV−1RNAレベルをATI期間中は毎週モニタし、CD4+T細胞数を1〜2週間毎に測定した。ARTが再開された後、参加者はウイルス再抑制が達成されるまで最大2週間毎、その後は8週間毎に追跡調査のため戻った。試験責任医師らは、有害事象をDAIDS AE Grading Table(バージョン2.0、2014年11月)に従って評価及びグレーディングし、因果関係を判定した。白血球アフェレーシスをロックフェラー大学病院又はケルン大学病院で第−2週及び第12週に実施した。血液試料は、3BNC117及び10−1074注入の前及び後に複数回採取した。試料を回収後4時間以内に処理し、血清及び血漿試料を−80℃で貯蔵した。末梢血単核細胞(PBMC)を密度勾配遠心分離によって単離した。PBMCの絶対数を自動細胞計数器(Vi−Cell XR;Beckman Coulter)又は手動で判定し、細胞をウシ胎児血清+10% DMSO中で凍結保存した。
血漿中のHIV−1RNAレベルは、スクリーニング時、−2週目、0日目(注入前)、ATI中は毎週、及びウイルスリバウンド発生後は2週毎〜8週毎に測定した。RocheのCOBAS AmpliPrep/COBAS TaqMan HIV−1 Assay(バージョン2.0)又はRocheのCOBAS HIV−1定量核酸試験(COBAS6800)を用いてHIV−1 RNAレベルを測定し、2×101〜1×107コピー/mLの範囲でHIV−1 RNAを定量した。これらのアッセイはLabCorp又はケルン大学病院で実施した。
CD4+T細胞数は、LabCorp又はケルン大学病院で、スクリーニング時、0週目(注入前)、2週目、3週目、5週目、6週目、8週目、10週目、及びその後週1回実施した臨床フローサイトメトリ分析によって測定したが、参加者はARTを中止したままであった。
抗体注入前に得られた精製IgG(Protein G Sepharose 4 Fast Flow、GE Life Sciences)を、前述のように12のHIV−1シュードウイルスのパネルに対して試験した(Schoofs Tら、「Science」第352巻第997〜1001頁(2016年))。
血液試料を、各3BNC117注入の前、終了時、及び各10−1074注入の終了時に、0、3、及び6週目に、並びにATI期間中の最大30週目まで毎週、収集した。3BNC117及び10−1074の血清レベルは、TZM−blアッセイ及びELISAによって、各抗体注入の前後、及び追跡期間中およそ3週間毎、並びにウイルスリバウンド時に得られた試料から判定された。
3BNC117及び10−1074に対するHIV−1ウイルス株の感受性を試験するために、単離したCD4+T細胞を、MOLT−4/CCR−5細胞又はCD8+T細胞枯渇ドナーリンパ芽球と共培養することによって、バルクウイルス増殖培養を行った。予備スクリーニングのためのPBMCは、ロックフェラー大学及びケルン大学のIRBによって承認された別のプロトコルに基づいて、登録の最大72週間(54〜505日の範囲)前に得られた。以下に記載するように、TZM−bl中和アッセイによって感受性を判定した。IC50<2μg/mLの培養上清は感受性でとみなした。
定量的及び定性的なウイルス増殖アッセイ(Q2VOA)を、前述のように第2週及び第12週に白血球アフェレーシスから単離したPBMCを用いて行った(Lorenzi JCら、「PNAS」第113巻第E7908〜E7916頁(2016年))。簡単に述べれば、単離されたCD4+T細胞を、1μg/mLのフィトヘマグルチニン(Life Technologies)及び100U/mLのIL−2(Peprotech)で活性化し、24ウェルプレート中で健康なドナーからの1×106照射PBMCと共培養した。合計6×107〜6.2×108個の細胞を、2つの時点の各々で各個体についてアッセイした。24時間後、PHAを除去し、0.1×106個のMOLT−4/CCR5細胞を各ウェルに添加した。培養は2週間維持し、培養開始から7日後、及びその後は1日おきに、MOLT−4/CCR5細胞を半分に分割した。ELISAによるp24の測定により陽性ウェルを検出した。潜在感染細胞の頻度はSiliciano Labが開発した100万個当たりの感染単位(IUPM)のアルゴリズムにより算出した(http://silicianolab.johnshopkins.edu)。
リバウンド時点からPBMCより単離したCD4+T細胞を、Q2VOAについて記載されているとおり正確に限界希釈で培養した。CD4+T細胞は、T細胞活性化ビーズ(Miltenyi)により、0.5×106ビーズ/106CD4+T細胞及び20U/mLのIL−2の濃度で活性化した。リバウンド増殖は、最高ウイルス負荷試料からのPBMCSを用いて実施した(通常、反復測定≧200コピー/mL)。潜在的に再活性化されたPBMC由来潜在リザーバウイルスとは対照的に、その配列がSGA env配列と一致し、したがって血漿中に存在するウイルスと同一であるウイルスを、中和試験のために選択した。
p24陽性バルクPBMC培養物、リバウンドPBMC増殖培養物、及びQ2VOAウェルからの上清について、前述のように、TZM−bl中和アッセイによって3BNC117及び10−1074に対する感受性を試験した(Sarzotti−Kelsoe Mら、「J Immunol Methods」第409巻第131〜146頁(2014年))。
HIV−1 RNA抽出及び単一ゲノム増幅を前述のように行った(Salazar−Gonzalez JFら、「J Virol」第82巻第3952〜3970頁(2008年))。要約すると、MinElute Virus Spin kit(Qiagen)を用いて血漿試料又はQ2VOA由来ウイルス上清からHIV−1 RNAを抽出した後、SuperScript III逆転写酵素(Invitrogen)を用いて第一鎖cDNA合成を行った。血漿由来HIV−1 RNAのcDNA合成は、アンチセンスプライマenvB3out Fidelity Platinum Taq(Invitrogen)を用いて行い、94℃で2分間;94℃で15秒間、55℃で30秒間、及び68℃で4分間を35サイクル;並びに68℃で15分実施した。第2ラウンドPCRを、テンプレートとしての1μlの第1のPCR生成物及びHigh Fidelity Platinum Taqを用いて、94℃で2分間;94℃で15秒間、55℃で30秒間、及び68℃で4分間を45サイクル;並びに68℃で15分実施した。アンチセンスプライマR3B6Rを用いて、Q2VOA由来HIV−1 RNAのcDNA合成を行った。
併用bNab注入は高い耐性を示す。
リバウンドウイルスと循環潜在性リザーバとの間の関係を調べるために、血漿リバウンドウイルスから得たenv配列を、注入前及び12週試料の両方からQ2VOAによって得た配列とSGAによって比較した。加えて、3BNC117及び10−1074に対するリバウンド増殖ウイルス及び/又はシュードウイルスの感受性を、TZM−bl中和アッセイにより測定した(図7B及び図7C)。血漿SGAにより得られた合計154のウイルスenv配列を分析し、Q2VOAにより潜在リザーバから得られた408の配列と比較した。リバウンドウイルス及びリザーバウイルスは各個体で一緒にクラスタを形成していたが、調査した個体のいずれにおいても2つのコンパートメント間に同一の配列は認められなかった(図8及び図9A)。この差は、インビトロ及びインビボでのHIV−1再活性化について異なる必要性、リザーバウイルスのコンパートメント化、治験過程中のHIV−1突然変異、及び/又は一部の個体におけるウイルス組換えによって説明することができた。bNAb療法が組換え事象の選択に影響を及ぼすかどうかはまだ明らかにされていない。
観察期間中に循環リザーバに変化があったかどうかを判定するために、少なくとも12週間抑制されたままであった9個体のうち8個体について、ATIの開始時及び開始後12週間に実施したQ2VOAアッセイの結果を比較した(図9)。以前の報告と同様に、Q2VOAによって得られた全ウイルスの63%が拡大クローンに属していた。増殖培養で出現したウイルスのenv配列を比較した結果、60%の配列を両時点で見出すことができた。しかし、この時点の間に出現した又は消失したクローンの例は数多くあり、これらの変化のいくつかは重要であった。100万個当たりの感染単位(IUPM、http://silicianolab.johnshopkins.edu/)を決定するために、6.0×107〜6.2×108個のCD4+T細胞を各時点についてQ2VOAによってアッセイした(図9B)。2時点間の差はいずれの個体でも6.5倍を超えることはなく2時点間に統計的な差は認められなかった(P=0.078)。更に、リバウンドまでの時間はIUPMと直接相関しなかった。免疫療法を受けている個体におけるリザーバの半減期を計算するためには、更なる時点が必要であろう。
第一世代抗HIV−1 bNAbは、動物モデル及びヒトにおけるウイルス血症の抑制に一般的に無効であり、このアプローチを追求すべきでないという結論に至った。3BNC117又はVRC01を用いたbNAb単剤療法はHIV−1感染ヒトにおけるATI中の制御を維持するのに充分ではなかった。対照的に、3BNC117及び10−1074の組合せは、両方の抗体の濃度が血清中で特定のレベル、例えば10μg/mLを超えたままである場合、感受性のある個体におけるウイルス抑制を維持するのに充分であった。リバウンドは3BNC117レベルが10μg/mLを効果的に下回ると起こり、10−1074の単剤療法が発生し、ほぼ全ての患者が10−1074の接触部位の突然変異によって速やかに回避された。異なるウイルスに感染した9人が中央値21週にわたって二重耐性ウイルスを発生させることができなかったという観察は、ウイルス複製がこの抗体の組合せによって厳しく制限されたことを示唆している。
Claims (34)
- 単離された抗HIV抗体又はその抗原結合部分であって、配列番号3〜13、22、24〜28、35〜39、43〜45、及び47の軽鎖可変領域からなる群から選択されるポリペプチド配列と少なくとも75%同一である軽鎖アミノ酸配列を有する軽鎖可変領域を含み、ここで、前記単離された抗HIV抗体又はその抗原結合部分が、LmdV:Y2、LmdV:R7、LmdV:P9、LmdV:E17、LmdV:H46、LmdV:P81.1、LmdV:I81.3、LmdV:N82、LmdV:R88、LmdV:D110、及びLmdV:A142からなる群から選択される1つ以上の残基における1つ以上の軽鎖置換を含む、単離された抗HIV抗体又はその抗原結合部分。
- 単離された抗HIV抗体又はその抗原結合部分であって、配列番号61〜94の重鎖可変領域からなる群から選択されるポリペプチド配列と少なくとも75%同一である重鎖アミノ酸配列を有する重鎖可変領域を含み、ここで、前記単離された抗HIV抗体又はその抗原結合部分が、HV:D29、HV:S47、HV:N75、HV:V79、HV:R82、HV:L89、HV:T108、及びHV:K141からなる群から選択される1つ以上の残基における1つ以上の重鎖置換を含む、単離された抗HIV抗体又はその抗原結合部分。
- 配列番号61〜94の前記重鎖可変領域からなる群から選択されるポリペプチド配列と少なくとも75%同一である重鎖アミノ酸配列を有する重鎖可変領域を更に含み、ここで、前記単離された抗HIV抗体又はその抗原結合部分が、HV:D29、HV:S47、HV:N75、HV:V79、HV:R82、HV:L89、HV:T108、及びHV:K141からなる群から選択される1つ以上の残基における1つ以上の重鎖置換を含む、請求項1に記載の単離された抗HIV抗体又はその抗原結合部分。
- LmdV:Y2P、LmdV:R7P、LmdV:P9S、LmdV:E17Q、LmdV:H46Q、LmdV:P81.1N、LmdV:I81.3S、LmdV:N82G、LmdV:R88T、LmdV:D110E、及びLmdV:A142Gからなる群から選択される前記1つ以上の軽鎖置換、又はそれらの保存的置換を含む、請求項1に記載の単離された抗HIV抗体又はその抗原結合部分。
- HV:D29G、HV:S47P、HV:N75Q、HV:V79T、HV:R82V、HV:L89F、HV:T108R、及びHV:K141Qからなる群から選択される前記1つ以上の重鎖置換、又はそれらの保存的置換を含む、請求項2に記載の単離された抗HIV抗体又はその抗原結合部分。
- LmdV:Y2P、LmdV:R7P、LmdV:P9S、LmdV:E17Q、LmdV:H46Q、LmdV:P81.1N、LmdV:I81.3S、LmdV:N82G、LmdV:R88T、LmdV:D110E、及びLmdV:A142Gからなる群から選択される前記1つ以上の軽鎖置換又はそれらの保存的置換と、HV:D29G、HV:S47P、HV:N75Q、HV:V79T、HV:R82V、HV:L89F、HV:T108R、及びHV:K141Qからなる群から選択される前記1つ以上の重鎖置換又はそれらの保存的置換と、を含む、請求項3に記載の単離された抗HIV抗体又はその抗原結合部分。
- 前記軽鎖アミノ酸配列が、配列番号3の前記軽鎖可変領域と少なくとも75%同一であり、LmdV:Y2P置換又はLmdV:Y2におけるプロリンの保存的置換を含む、請求項1に記載の単離された抗HIV抗体又はその抗原結合部分。
- 前記重鎖アミノ酸配列が、配列番号63の前記重鎖可変領域と少なくとも75%同一であり、HV:V79T置換又はHV:V79におけるスレオニンの保存的置換を含む、請求項2に記載の単離された抗HIV抗体又はその抗原結合部分。
- 前記重鎖アミノ酸配列が、配列番号64の前記重鎖可変領域と少なくとも75%同一であり、HV:R82V置換又はHV:R82におけるバリンの保存的置換を含む、請求項2に記載の単離された抗HIV抗体又はその抗原結合部分。
- 前記重鎖アミノ酸配列が、配列番号65の前記重鎖可変領域と少なくとも75%同一であり、HV:L89F置換又はHV:L89におけるフェニルアラニンの保存的置換を含む、請求項2に記載の単離された抗HIV抗体又はその抗原結合部分。
- 前記重鎖アミノ酸配列が、配列番号66の前記重鎖可変領域と少なくとも75%同一であり、HV:T108R置換又はHV:T108におけるアルギニンの保存的置換を含む、請求項2に記載の単離された抗HIV抗体又はその抗原結合部分。
- 前記軽鎖アミノ酸配列が、配列番号22の前記軽鎖可変領域と少なくとも75%同一であり、LmdV:Y2P置換又はLmdV:Y2におけるプロリンの保存的置換を含み、ここで、前記重鎖アミノ酸配列が、配列番号69の前記重鎖可変領域と少なくとも75%同一であり、
HV:R82V置換又はHV:R82におけるバリンの保存的置換と、
HV:T108R置換又はHV:T108におけるアルギニンの保存的置換と、
を含む、請求項3に記載の単離された抗HIV抗体又はその抗原結合部分。 - 前記重鎖アミノ酸配列が、配列番号70の前記重鎖可変領域と少なくとも75%同一であり、
HV:V79T置換又はHV:V79におけるスレオニンの保存的置換と、
HV:L89F置換又はHV:L89におけるフェニルアラニンの保存的置換と、
HV:T108R置換又はHV:T108におけるアルギニンの保存的置換と、
を含む、請求項3に記載の単離された抗HIV抗体又はその抗原結合部分。 - 前記軽鎖アミノ酸配列が、配列番号24の前記軽鎖可変領域と少なくとも75%同一であり、LmdV:Y2P置換又はLmdV:Y2におけるプロリンの保存的置換を含み、ここで、前記重鎖アミノ酸配列が、配列番号71の前記重鎖可変領域と少なくとも75%同一であり、
HV:V79T置換又はHV:V79におけるスレオニンの保存的置換と、
HV:L89F置換又はHV:L89におけるフェニルアラニンの保存的置換と、
HV:T108R置換又はHV:T108におけるアルギニンの保存的置換と、
を含む、請求項3に記載の単離された抗HIV抗体又はその抗原結合部分。 - 配列番号3を含む、請求項1に記載の単離された抗HIV抗体又はその抗原結合部分。
- 配列番号63、64、65、66、又は70を含む、請求項2に記載の単離された抗HIV抗体又はその抗原結合部分。
- 前記軽鎖可変領域が、配列番号22の軽鎖可変領域(light variable region)を含み、前記重鎖可変領域が、配列番号69の重鎖可変領域(heavy variable region)を含む、請求項3に記載の単離された抗HIV抗体又はその抗原結合部分。
- 前記軽鎖可変領域が、配列番号24の軽鎖可変領域(light variable region)を含み、前記重鎖可変領域が、配列番号71の重鎖可変領域(heavy variable region)を含む、請求項3に記載の単離された抗HIV抗体又はその抗原結合部分。
- 請求項1〜18のいずれか一項に記載の単離された抗HIV抗体又はその抗原結合部分と、薬学的に許容される担体又は賦形剤と、を含む、医薬組成物。
- 第2の治療剤を更に含む、医薬組成物。
- 請求項1〜18のいずれか一項に記載の単離された抗HIV抗体又はその抗原結合部分をコードする、核酸又はコドン最適化核酸。
- 請求項21のいずれか一項に記載の少なくとも1つの核酸を含む、ベクタ又はベクタ系。
- 請求項21に記載の核酸を含む、細胞。
- 組換え抗HIV抗体又はその抗原結合部分を作製する方法であって、以下:
a.請求項23に記載の細胞を得ることと、
b.前記ベクタによってコードされるポリペプチドの発現を許容する条件下における培地中で前記細胞を培養すること、及び抗体又はその断片を集成することと、
c.前記培養細胞又は前記細胞の前記培地から前記抗体又は断片を精製することと、
を含む、方法。 - HIV感染症又はHIV関連疾患を予防又は治療する方法であって、以下の工程:
a.かかる予防又は治療を必要とする患者を同定することと、
b.請求項1〜18のいずれか一項に記載の少なくとも1つの抗HIV抗体又はその抗原結合部分の治療有効量を含む、第1の治療剤を前記患者に投与することと、
を含む、方法。 - 第2の治療剤を投与することを更に含む、請求項25に記載の方法。
- 前記第2の治療剤が、前記抗HIV抗体又はその抗原結合部分の前記投与の前、同時、又は後に投与される、請求項26に記載の方法。
- 前記第2の治療剤が、抗HIV−1広域中和抗体(broadly neutralizing antibody:bNAb)である、請求項24又は25に記載の方法及び請求項20に記載の医薬組成物。
- 前記抗HIV−1広域中和抗体が、3BNC117である、請求項26に記載の方法。
- 請求項1〜18のいずれか一項に記載の薬学的有効量である少なくとも1つの単離された抗HIV抗体又はその抗原結合部分の薬学的に許容される用量単位を含む、キット。
- 薬学的有効量である抗HIV剤の薬学的に許容される用量単位を更に含み、ここで、前記2つの薬学的に許容される用量単位は、単一の薬学的に許容される用量単位の形態を任意にとることができる、請求項30に記載のキット。
- 前記抗HIV剤が、非ヌクレオシド逆転写酵素阻害剤、プロテアーゼ阻害剤、侵入阻害剤又は融合阻害剤、及びインテグラーゼ阻害剤からなる群から選択される抗HIV剤である、請求項31に記載のキット。
- 前記抗HIV剤が、抗HIV広域中和抗体である、請求項31に記載のキット。
- 前記抗HIV広域中和抗体が、3BNC117である、請求項33に記載のキット。
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