JP2021525105A - 標的細菌を死滅させるための方法および組成物 - Google Patents
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Abstract
Description
本出願は、2018年5月25日に出願された米国仮特許出願第62/676,818に基づく利益を主張し、参照によってその全体が本明細書に組み込まれる。
本発明は、米国の国立衛生研究所(NIH)によって助成番号GM119561の下で米国政府の支援を受けてなされた。政府は本発明において一定の権利を有している。
特に他に定義されない限り、本明細書で使用される全ての技術的用語および科学的用語は、本開示が属する分野の当業者によって一般に理解されるものと同じ意味を有する。本明細書における本開示の説明に使用される用語は、特定の実施形態のみを記載するためのものであり、本開示を限定することを意図していない。
CRISPR−Cpf1系は、細菌および古細菌で見られる自然適応免疫系である。CRISPR系は、後天性免疫の形態をもたらす、侵入するファージおよびプラスミドに対する防御に関与するヌクレアーゼ系である。
Cpf1と適合するCRISPRアレイが本明細書に開示される。いくつかの実施形態では、CRISPRアレイをコードする核酸は、標的細菌中の標的遺伝子からの標的ヌクレオチド配列に相補的である、少なくとも1つの反復配列および少なくとも1つのスペーサー配列を含む。いくつかの実施形態では、CRISPRアレイは任意の長さのものであり、かつ、1つ以上の標的遺伝子の使用によって標的細菌の死滅の所望のレベルを達成するのに必要な反復ヌクレオチド配列と交互になる任意の数のスペーサーヌクレオチド配列を含む。いくつかの実施形態では、CRISPRアレイは、1〜約100のスペーサーヌクレオチド配列を含むか、それから本質的になるか、またはそれからなり、その各々は、その5’末端およびその3’末端上で反復ヌクレオチド配列に連結される。いくつかの実施形態では、本明細書で開示される組換えCRISPRアレイは、1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27、28、29、30、31、32、33、34、35、36、37、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63、64、65、66、67、68、69、70、71、72、73、74、75、76、77、78、79、80、81、82、83、84、85、86、87、88、89、90、91、92、93、94、95、96、97、98、99、100、またはそれ以上から本質的になるか、あるいはそれからなる。
いくつかの実施形態では、CRISPRアレイは複数のスペーサーを含み、ここで、各スペーサーは、標的遺伝子の複数の遺伝子位置を標的とし、本明細書では多重スペーサーとも呼ばれる。いくつかの実施形態では、多重スペーサー(multiple spacer)は、少なくとも2つ、少なくとも3つ、少なくとも4つ、または少なくとも5つのスペーサーを含む。いくつかの実施形態において、多重スペーサーは、少なくとも4つのスペーサーを含む。4つの単一スペーサーと比較された4つのスペーサーを含む多重スペーサーの例が、図11Cに示される。ある実施形態では、標的細菌を死滅させるための方法が本明細書に記載され、上記方法は、多重スペーサー配列あるいはそれから転写されたcrRNAをコードする核酸を含むベクターを投与する工程を含み、ここで上記多重スペーサー配列は、上記標的細菌中の標的遺伝子からの少なくとも2つの標的ヌクレオチド配列に相補的である少なくとも2つのスペーサーを含む。いくつかの実施形態では、多重スペーサー配列は、必須遺伝子を標的とするスペーサーを含む。いくつかの実施形態では、多重スペーサー配列は、必須遺伝子のみを標的とするスペーサーを含む。いくつかの実施形態では、多重スペーサー配列は、非必須遺伝子を標的とするスペーサーを含む。いくつかの実施形態では、多重スペーサー配列は、非必須遺伝子のみを標的とするスペーサーを含む。いくつかの実施形態では、多重スペーサー配列は、必須遺伝子および非必須遺伝子を標的とするスペーサーを含む。いくつかの実施形態では、多重スペーサーは、本明細書に記載される長さである。
いくつかの実施形態では、標的DNAと比較して、本明細書に記載されるスペーサー配列は、1つ、2つ、3つ、4つ、または5つのミスマッチを含む。いくつかの実施形態では、ミスマッチは隣接している。いくつかの実施形態では、ミスマッチは隣接していない。いくつかの実施形態では、スペーサー配列は、標的DNAに対して70%の相補性を有する。いくつかの実施形態では、スペーサーヌクレオチド配列は、標的DNAに対して80%の相補性を有する。いくつかの実施形態では、スペーサーヌクレオチド配列は、標的遺伝子の標的ヌクレオチド配列に対して、85%、90%、95%、96%、97%、98%、99%、または100%相補性である。いくつかの実施形態では、スペーサー配列は、標的DNAに対して100%の相補性を有する。いくつかの実施形態では、スペーサー配列は、少なくとも約8つのヌクレオチド〜約150のヌクレオチドの長さである標的ヌクレオチド配列の領域にわたって、完全な相補性あるいは実質的な相補性を有する。いくつかの実施形態では、スペーサー配列は、少なくとも約20のヌクレオチド〜約100のヌクレオチドの長さである標的ヌクレオチド配列の領域にわたって、完全な相補性または実質的な相補性を有する。いくつかの実施形態では、スペーサー配列の5’領域は、標的DNAに対して100%相補的であるが、スペーサーの3’領域は、標的DNAに対して実質的に相補的であり、したがって、標的DNAに対するスペーサー配列の全体的な相補性は100%未満である。例えば、いくつかの実施形態では、20のヌクレオチドスペーサー配列の3’領域における最初の7、8、9、10、11、12、13、14、15、16のヌクレオチド(シード領域)は、標的DNAに対して100%相補的であるが、上記スペーサー配列の5’領域中の残りのヌクレオチドは、標的DNAに対して実質的に相補的(例えば、少なくとも約70%相補的)である。いくつかの実施形態では、スペーサー配列の3’末端の最初の7〜12のヌクレオチドは標的DNAに対して100%相補的であるが、スペーサー配列の5’領域中の残りのヌクレオチドは標的DNAに対して実質的に相補的(例えば、少なくとも約50%相補的(例えば、50%、55%、60%、65%、70%、71%、72%、73%、74%、75%、76%、77%、78%、79%、80%、81%、82%、83%、84%、85%、86%、87%、88%、89%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97% 98% 99%、またはそれ以上)である。いくつかの実施形態では、スペーサー配列の3’末端の最初の7〜10のヌクレオチドは標的DNAに対して75%〜99%相補的であるが、スペーサー配列の5’領域中の残りのヌクレオチドは標的DNAに対して少なくとも約50%〜約99%相補的である。いくつかの実施形態では、スペーサー配列の3’末端の最初の7〜10のヌクレオチドは標的DNAに対して100%相補的であるが、スペーサー配列の5’領域中の残りのヌクレオチドは、標的DNAに対して実質的に相補的(例えば、少なくとも約70%相補的)である。いくつかの実施形態では、スペーサー配列の最初の10のヌクレオチド(シード領域内の)は、標的DNAに対して100%相補的であるが、スペーサー配列の5’領域中の残りのヌクレオチドは、標的DNAに対して実質的に相補的(例えば、少なくとも約70%相補的)である。いくつかの実施形態において、スペーサー配列の5’領域(例えば、5’末端における最初の8つのヌクレオチド、5’末端における最初の10のヌクレオチド、5’末端における最初の15のヌクレオチド、5’末端における最初の20のヌクレオチド)は、標的DNAに対して約75%以上の相補性(75%〜約100%相補性)を有するが、スペーサー配列の残りは、標的DNAに対して約50%以上の相補性を有する。いくつかの実施形態では、スペーサー配列の5’末端における最初の8つのヌクレオチドは、標的ヌクレオチド配列に対して100%の相補性を有しているか、または1つあるいは2つの突然変異を有しており、したがって、標的DNAに対して、それぞれ約88%相補的であるか、または約75%相補的であるが、スペーサーヌクレオチド配列の残りは、標的DNAに対して少なくとも約50%以上相補的である。
いくつかの実施形態では、本明細書に記載されるポリヌクレオチド、ヌクレオチド配列、および/または組換え核酸分子(例えば、CRISPRアレイを含むポリヌクレオチド、Cpf1ポリペプチド、転写活性化因子をコードするポリヌクレオチドなど)は、対象の任意の種における発現に最適化されたコドンである。コドン最適化は、種特異的なコドン使用頻度表を使用した、コドン使用バイアスのためのヌクレオチド配列の修飾を含む。コドン使用頻度表は、対象の種で最も高度に発現した遺伝子の配列分析に基づいて生成される。ヌクレオチド配列が核において発現される場合、コドン使用頻度表は、対象の種で高度に発現した核内遺伝子の配列分析に基づいて生成される。ヌクレオチド配列の修飾は、種特異的なコドン使用頻度表を天然のポリヌクレオチド配列中に存在するコドンと比較することによって、決定される。ヌクレオチド配列のコドン最適化は、天然のヌクレオチド配列に対して、100%未満(例えば、50%、60%、70%、71%、72%、73%、74%、75%、76%、77%、78%、79%、80%、81%、82%、83%、84%、85%、86%、87%、88%、89%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%など)の同一性を有するヌクレオチド配列を結果としてもたらすが、もとのヌクレオチド配列によってコードされたものと同じ機能を有するポリペプチドを依然としてコードする。いくつかの実施形態では、本開示のヌクレオチド配列および/または組換え核酸分子は、対象の生物/種における発現に最適化されたコドンである。
いくつかの実施形態では、CRISPRアレイの反復ヌクレオチド配列は、CRISPR−Cpf1系の任意の既知の反復ヌクレオチド配列のヌクレオチド配列を含む。いくつかの実施形態において、反復ヌクレオチド配列は、CRISPR−Cpf1系からの天然反復の二次構造(例えば、内部ヘアピン)を含む、合成配列である。
いくつかの実施形態では、本明細書に開示される組換えCRISPRアレイ、ヌクレオチド配列、および/または核酸分子は、様々な生物あるいは細胞における発現のための様々なプロモーター、ターミネーター、および他の調節エレメントに作動可能に関連する。いくつかの実施形態では、少なくとも1つのプロモーターおよび/またはターミネーターは、本明細書に開示される組換え核酸分子および/または組換えCRISPRアレイに作動可能に連結される。本開示で有用なあらゆるプロモーターは使用され、例えば、対象の生物で機能的であるプロモーター、および、本明細書に記載されるような構成的プロモーター、誘導性プロモーター、発生調節されたプロモーター、組織に特異的/好ましいプロモーターなどを含む。本明細書で使用される調節エレメントは、内因性または異種である。いくつかの実施形態では、被験体生物に由来する内因性調節エレメントは、それが自然に発生しない遺伝学的状況(例えば、自然界で見られるものとは異なるゲノムにおける位置)に挿入され、それにより、組換え核酸または非天然核酸を産生する。
いくつかの実施形態では、本明細書に開示されるヌクレオチド配列、構築物、および発現カセットは、一過性に発現され、および/または宿主生物のゲノムへと安定して組み込まれる。いくつかの実施形態では、本明細書に開示されるポリヌクレオチドは、当業者に既知の任意の方法によって細胞に導入される。形質転換の例示的な方法は、コンピテント細胞のエレクトロポレーションによる形質転換、コンピテント細胞による受動的取り込み(passive uptake)、コンピテント細胞の化学変換、および、細胞への核酸の導入を結果としてもたらす他の電気的、化学的、物理的(機械的)および/または生物学的な機構を含む(それらの任意の組み合わせを含む)。いくつかの実施形態では、細胞の形質転換は核形質転換を含む。いくつかの実施形態では、細胞の形質転換は、プラスミド形質転換およびプラスミド接合(conjugation)を含む。
いくつかの実施形態では、核酸構築物は「発現カセット」であるか、または発現カセット内にある。本明細書で使用されるように、「発現カセット」は、対象のヌクレオチド配列(例えば、本明細書に開示される組換え核酸分子およびCRISPRアレイ)を含む組換え核酸分子を意味し、ここで、上記ヌクレオチド配列は、対照配列(例えば、プロモーター)と作動可能に少なくとも関連する。いくつかの実施形態では、発現カセットは、本明細書に開示される組換え核酸分子および/または組換えCRISPRアレイを発現するように設計される。
発現カセットに加えて、本明細書に記載される核酸分子およびヌクレオチド配列(例えば、CRISPRアレイを含むポリヌクレオチド、転写活性化因子をコードするポリヌクレオチド、Cpf1をコードするポリヌクレオチド、または抗CRISPRポリペプチド)は、ベクターに関連して使用される。用語「ベクター」は、核酸(複数可)を細胞へと移行するか、送達するか、または導入するための組成物を指す。ベクターは、移行されるか、送達されるか、導入されるヌクレオチド配列を含む、核酸分子を含む。一般的なクラスのベクターの非限定的な例としては、限定されないが、自己伝達性あるいは可動性である場合とそうでない場合がある、二本鎖もしくは一本鎖の直鎖状あるいは環状の形態の、ウイルスベクター、プラスミドベクター、ファージベクター、ファージミドベクター、コスミドベクター、フォスミドベクター、バクテリオファージ、人工染色体、またはアグロバクテリウムバイナリーベクターが挙げられる。いくつかの実施形態では、ベクターはバクテリオファージである。いくつかの実施形態では、ベクターはプラスミドである。
いくつかの実施形態では、本明細書に開示されるCRISPR−Cas系は、核酸の二本鎖切断(DNA二本鎖切断/開裂)を引き起こす。いくつかの実施形態では、二本鎖切断は、例えば、非相同末端結合、マイクロホモロジー媒介末端結合、あるいは相同組換え修復によって修理される。非相同末端結合は、ドナーポリヌクレオチドを必要とせずに、切断の1つの末端を切断のもう1つの末端に直接ライゲーションすることによる、DNAにおける二本鎖切断の修復を指す。いくつかの実施形態では、DNAリガーゼIVは、補助因子XRCC4との複合体を形成し、DNA切断の2つの末端を直接結合する。相同組換え修復は、修復のための鋳型の存在に依存する。ゲノム工学のいくつかの例では、ドナーポリヌクレオチドまたはその一部は切断に挿入される。いくつかの実施形態では、RecAは、二本鎖DNA切断の修復を開始する。いくつかの実施形態では、AddABは、二本鎖DNA切断の修復を開始する。いくつかの実施形態では、RecBCD酵素は、相同組換えにより二本鎖DNA切断の修復を開始する。いくつかの実施形態では、二本鎖切断を修復する酵素は、ヘリカーゼ・ヌクレアーゼである。いくつかの実施形態では、リガーゼAは二本鎖切断修復に関与する。
バクテリオファージまたは「ファージ」は、細菌ウイルスのグループを表し、環境源から設計あるいは供給される。個々のバクテリオファージ宿主域は通常狭く、このことは、ファージが、細菌種の1つの菌種あるいはわずかな菌種に高度に特異的であることを意味し、この特異性は抗菌作用においてファージを独特にする。バクテリオファージは、宿主の細胞機構に依存して複製する細菌ウイルスである。一般に、ファージは通常、3つのカテゴリー:溶菌性(lytic)、溶原性(lysogenic)、およびテンペレート(temperate)に分類される。溶菌性バクテリオファージは宿主細胞を感染させ、複製の多数のラウンド(rounds)を経験し、細胞溶解を引き起こし、新しく作られたバクテリオファージ粒子を放出する。溶原性バクテリオファージは、細菌ゲノム内に、または、染色体外プラスミドとして、宿主細胞内に永久に存在する。テンペレートバクテリオファージは、溶菌性または溶原性であることが可能であり、細胞の増殖条件および生理的状態に応じて、他方に対して一方(one versus the other)を選択する。いくつかの実施形態では、溶原菌が悪条件にさらされるときはいつでも、溶原性状態は終了する。このプロセスは誘導と呼ばれる。溶原性状態の終了を支持する悪条件は、乾燥、UVまたは電離放射線への曝露、および変異原性化学物質への暴露を含む。このことは、ファージ遺伝子の発現、組み込みプロセスの逆転(reversal of the integration process)、および溶菌増殖につながる。
いくつかの実施形態では、CRISPRアレイをコードする核酸のバクテリオファージへの導入は、上記バクテリオファージの溶菌活性を妨害しない。いくつかの実施形態では、CRISPRアレイをコードする核酸のバクテリオファージへの導入は、上記バクテリオファージの溶菌活性を保護する。いくつかの実施形態では、核酸は、バクテリオファージゲノムへと挿入される。いくつかの実施形態では、核酸は、対象のオペロンの末端に転写ターミネーター部位でバクテリオファージゲノムに挿入される。いくつかの実施形態では、1つ以上の除去された非必須遺伝子の代わりとして、核酸がバクテリオファージゲノムに挿入される。いくつかの実施形態では、1つ以上の除去された溶原性遺伝子(lysogenic genes)の代わりとして、核酸がバクテリオファージゲノムに挿入される。いくつかの実施形態では、非必須遺伝子および/または溶原性遺伝子の核酸との置換は、バクテリオファージの溶菌活性に影響しない。いくつかの実施形態では、非必須遺伝子および/または溶原性遺伝子の核酸との置換は、バクテリオファージの溶菌活性を保護する。いくつかの実施形態では、非必須遺伝子および/または溶原性遺伝子の核酸との置換は、バクテリオファージの溶菌活性を増強する。いくつかの実施形態では、非必須遺伝子および/または溶原性遺伝子の核酸との置換は、溶原性バクテリオファージを溶菌性にする。
いくつかの実施形態では、バクテリオファージから除去および/または置換されるべき非必須遺伝子は、ΦCD146クロストリジウム・ディフィシル・バクテリオファージからのgp49である。いくつかの実施形態では、バクテリオファージから除去および/または置換されるべき非必須遺伝子は、ΦCD24−2Cクロストリジウム・ディフィシル・バクテリオファージからのgp75である。いくつかの実施形態では、バクテリオファージから除去および/または置換されるべき非必須遺伝子は、T4大腸菌バクテリオファージからのhoc遺伝子である。いくつかの実施形態では、バクテリオファージから除去および/または置換されるべき非必須遺伝子は、T7大腸菌バクテリオファージからのgp0.7、gp4.3、gp4.5、gp4.7、あるいはそれらの任意の組み合わせを含む。いくつかの実施形態では、バクテリオファージから除去および/または置換されるべき非必須遺伝子は、T7m大腸菌バクテリオファージからのgp0.6、gp0.65、gp0.7、gp4.3、gp4.5、あるいはそれらの任意の組み合わせである。
外因性Cpf1をコードする核酸を含むバクテリオファージを産生する方法が本明細書に開示される。さらに、外因性Cpf1をコードする核酸を含むバクテリオファージが本明細書に開示される。
いくつかの実施形態では、本明細書に開示されるバクテリオファージは、抗CRISPRをさらに含む。
ある実施形態では、細菌を死滅させる方法が本明細書に開示される。いくつかの実施形態では、標的細菌の死滅は、バクテリオファージの溶菌活性によって達成される。いくつかの実施形態では、標的細菌の死滅は、標的細菌中の標的遺伝子における標的ヌクレオチド配列に相補的である少なくとも1つのスペーサーを含む、CRISPRアレイの活性によって達成される。いくつかの実施形態では、標的細菌の死滅は成熟crRNAの活性によって達成される。いくつかの実施形態では、細菌の死滅は、細菌の標的遺伝子中の標的ヌクレオチド配列において、CRISPR−Cpf1ベースのエンドヌクレアーゼ活性および/または切断を指示することができる、処理されたcrRNAを産生するためのCRISPR−Cpf1系による、CRISPRアレイの処理によって達成される。いくつかの実施形態では、標的細菌の死滅は、バクテリオファージの溶菌活性および/または非溶菌活性とは独立したCRISPRアレイの活性によって達成される。いくつかの実施形態では、標的細菌の死滅は、本明細書に開示される任意の方法あるいは方法の組み合わせによるものである。
いくつかの実施形態では、本明細書に開示されるバクテリオファージは、抗菌性ペプチド、抗菌性ペプチドの機能的断片、または溶菌性遺伝子を発現するようにさらに遺伝子組換えされている。いくつかの実施形態では、本明細書に開示されるバクテリオファージは、本明細書に開示される少なくとも1つの抗菌剤またはペプチドを発現する。いくつかの実施形態では、本明細書に開示されるバクテリオファージは、核酸配列のタンパク質産物がファージ耐性菌を標的とするエンザイバイオティック(enzybiotic)をコードする核酸配列を含む。いくつかの実施形態では、バクテリオファージは、バイオフィルムマトリックスを破壊(breaking down)または分解(degrading)するのを促進する酵素をコードする核酸を含む。いくつかの実施形態では、本明細書に開示されるバクテリオファージは、Dispersin Dアミノペプチダーゼ、アミラーゼ、カルボヒドラーゼ、カルボキシペプチダーゼ、カタラーゼ、セルラーゼ、キチナーゼ、クチナーゼ、シクロデキストリン・グリコシルトランスフェラーゼ、デオキシリボヌクレアーゼ、エステラーゼ、アルファ−ガラクトシダーゼ、βガラクトシダーゼ、グルコアミラーゼ、αグルコシダーゼ、βグルコシダーゼ、ハロペルオキシダーゼ、インベルターゼ、ラッカーゼ、リパーゼ、マンノシダーゼ、オキシダーゼ、ペクチン分解酵素、ペプチドグルタミナーゼ、ペルオキシダーゼ、フィターゼ、ポリフェノールオキシダーゼ、タンパク分解酵素、リボヌクレアーゼ、トランスグルタミナーゼ、キシラナーゼ、またはリアーゼをコードする核酸を含む。いくつかの実施形態では、酵素は、セルラーゼAとも呼ばれる酵素のグリコシルヒドロキシラーゼ5ファミリーなどの、セルラーゼのグリコシルヒドロキシラーゼ・ファミリーなどのセルラーゼと;ポリグルコサミン(polyglucosamine)(PGA)デポリメラーゼと;コラン酸(colanic acid)を分解する1,4−β−フコシド(fucoside)ヒドロラーゼの1,4−L−フコシド(fucodise)ヒドロラーゼ特徴、解重合アルギナーゼ(depolymerazing alginase)、DNase I、またはそれらの組み合わせなどの、コロン酸デポリメラーゼ(colonic acid depolymerases)からなる群から選択される。いくつかの実施形態では、本明細書で開示されるバクテリオファージは、本明細書で開示される酵素を分泌する。
細菌感染症
細菌感染症を処置する方法が本明細書で開示される。いくつかの実施形態では、本明細書で開示されるバクテリオファージは、ヒトもしくは動物の被験体において、本明細書に開示される細菌によって媒介または引き起こされる疾患あるいは疾病を処置するか、または防ぐ。そのような細菌は、典型的に、腸、口腔、肺、腋窩、眼、膣、肛門、耳、鼻、または咽喉の組織を含む、被験体の組織に接触している。いくつかの実施形態では、細菌感染症は、細菌の活性を調節することにより、および/または細菌を直接死滅させることにより処置される。
いくつかの実施形態では、本明細書で開示されるバクテリオファージは、食物および農業の衛生(食肉、果物、および野菜の衛生を含む)、病院の衛生、家庭の衛生、車両と設備の衛生、産業衛生などにさらに使用される。いくつかの実施形態では、本明細書に開示されるバクテリオファージは、医学の、獣医の、畜産の環境、あるいは任意の細菌がヒトまたは動物に渡される任意の追加の環境から、抗生物質耐性あるいは他の好ましくない病原体を除去するために使用される。
いくつかの実施形態では、本明細書で開示されるバクテリオファージは、様々な分野で衛生剤として使用される。「ファージ」または「バクテリオファージ」という用語が使用されてもよいが、適切な場合、この用語は、単一のバクテリオファージ、複数のバクテリオファージ、例えば、バクテリオファージ混合物、および、殺菌剤、洗浄剤、界面活性剤、水などの薬剤とバクテリオファージの混合物を含むように、広く解釈されるべきことに留意されたい。
いくつかの実施形態では、本明細書に記載されるバクテリオファージは、汚染を防ぐために、任意の食品あるいは栄養補助食品に使用される。食品または医薬製品の例は、乳、ヨーグルト、凝乳、チーズ、発酵乳、乳ベースの発酵製品、アイスクリーム、発酵した穀物ベースの製品、乳ベースの粉末、乳児用調製乳または錠剤、液体懸濁液、乾燥経口サプリメント、湿性経口サプリメント、または乾燥経管栄養である。
いくつかの実施形態では、本開示は、医薬組成物、および細菌、古細菌感染症を処置するか、または領域を殺菌するためにその医薬組成物を投与する方法を提供する。いくつかの実施形態では、医薬組成物は、薬学的に許容可能な担体中に、上述される試薬のいずれかを含む。
本明細書に開示される組成物の投与の用量および持続時間は、被験体の年齢、被験体の体重、およびファージの耐性を含む、様々な要因に依存する。いくつかの実施形態では、本明細書で開示されるバクテリオファージは、経口投与によって患者に投与される。いくつかの実施形態では、103〜1020の間のPFUのファージの用量が与えられる。例えば、いくつかの実施形態では、バクテリオファージは、103〜1011の間のPFUの量が組成物中に存在する。いくつかの実施形態では、バクテリオファージは、約103、104、105、106、107、108、109、1010、1011、1012、1013、1014、1015、1016、1017、1018、1019、1020、1021、1022、1023、1024PFU、あるいはそれ以上の量で組成物中に存在する。いくつかの実施形態では、バクテリオファージは、101PFUより少ない量で組成物中に存在する。いくつかの実施形態では、バクテリオファージは、101〜108、104〜109、105〜1010、あるいは107〜1011の間のPFUの量で組成物中に存在する。いくつかの実施形態では、バクテリオファージまたは混合物は、それを必要とする被験体に、1日に1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、または24回投与される。いくつかの実施形態では、バクテリオファージまたは混合物は、それを必要とする被験体に、1週間に少なくとも1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、または21回投与される。いくつかの実施形態では、バクテリオファージまたは混合物は、それを必要とする被験体に、1ヵ月に少なくとも1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27、28、29、30、31、32、33、34、35、36、37、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63、64、65、66、67、68、69、70、71、72、73、74、75、76、77、78、79、80、81、82、83、84、85、86、87、88、89、または90回投与される。
本明細書で開示されるのは使用のためのキットである。いくつかの実施形態では、キットは、CRISPRアレイのための核酸構築物、外因性Cpf1、転写活性化因子、および/または抗CRISPRポリペプチド、ならびに細胞導入および/または被験体への投与に適した形態の、本明細書で開示されるバクテリオファージおよび/または他のベクター/発現カセットを含む。いくつかの実施形態では、キットは他の治療剤、担体、緩衝剤、容器、投与のための装置などを含む。いくつかの実施形態では、キットは、標的遺伝子の発現の抑制および/または標的遺伝子の発現の抑制の調節のためのラベルおよび/または説明書を含む。いくつかの実施形態では、ラベルおよび/または説明書は、例えば、CRISPRアレイのための核酸構築物、外因性Cpf1、転写活性化因子、ならびに抗CRISPRポリペプチド、ならびにバクテリオファージおよび/または任意の他のベクター/発現カセットの導入および/または投与の量、頻度、および方法に関する情報を含む。
実施例1:CRISPRを増強されたバクテリオファージの生成についての概観
CRISPRを増強されたバクテリオファージは、細胞溶解の生活環のための必須遺伝子を維持するバクテリオファージゲノムからCRISPR RNA構築物を発現するように操作されたファージである。工程は、細菌に対する広い宿主域を備えたバクテリオファージおよびバクテリオファージのカクテルを、調達すること、単離させること、および、特定することを包含し、その後、細菌のゲノムを標的とする発現構築物(例えば、crRNA)を運ぶように各ファージを操作すること、および、臨床のリード候補として使用されるcrPhageの最適化された組み合わせを検証することが続く。いくつかの実施形態では、一般的なプロセスは、図1の工程1〜5で概略的に示される。工程1〜5は、野生型のバクテリオファージの適切な番号を特定するために設計される。:
細菌株と増殖条件。本明細書に記載する実施例において使用される細菌株は、大腸菌MG1655、大腸菌BW25113、大腸菌O9:HS、腸管出血性大腸菌(ETEC)E2437A、志賀赤痢菌(Shigella dysenteriae)血清型1 ATCC9361、クレブシェラ・ニューモニエ(肺炎杆菌)亜種ニューモニエ(pneumoniae) ATCC700721、またサルモネラ・エンテリカ LT2、であった。大腸菌TOP10と大腸菌NEBをクローニングとベクター構築に使用し、適切な時に、抗生物質(50μg/mLのカナマイシン、100μg/mLのアンピシリン、および25μg/mLのクロラムフェニコール)で補ったLuria−Bertani培地において培養した。大腸菌、志賀赤痢菌、およびサルモネラ菌株を、すべて、LB培地(10g/リットルのトリプトン、5g/リットルの酵母エキスと10g/リットルの塩化ナトリウム)中で、37°Cおよび250rpmで、適切な抗生物質を伴って培養した。同じ株を適切な誘導物質で補われたLB寒天プレートにまき(1.5%寒天を備えたLB培地)、37°Cでインキュベートした。肺炎杆菌を0.5%のEDTA(ref.)で補われたLB培地(10g/リットルのトリプトン、5g/リットルの酵母エキス、および10g/リットルの塩化ナトリウム)において培養した。
pBAD33−Cas12aについては、pFnCpf1(Addgene #69973)のテンプレートを使用してフランシセラ・ノビシダ菌U112からのCpf1(Cas12a)遺伝子をPCR増幅によって生成し、Cpf1(Cas12a)遺伝子の上流の構成型プロモーターJ23108によって、pBAD33を連結した(図13A)。pBAD33−Cpf1−MuGamプラスミドを生成するために、化学的に合成したgBlock(IDT)によってMu Gam配列を生成し、その後、ギブソン・アセンブリによってpBAD33−Cpf1に挿入した(図13B)。SpyCas9のためのsgRNAを生成するために、構成的プロモーターを備えたsgRNAをプラスミドへクローニングした。Cas12a(Cpf1)およびCas13a(C2c2)のためのスペーサーを生成するために、golden gate アセンブリを使用した。Cpf1(Cas12a)およびCas13aのための部位特異的突然変異誘発はすべて、Q5R部位特異的突然変異誘発キット(NEB)で行った。ガイドまたはCRISPRアレイ・スペーサーを、20nt(Cas9用)、25nt(Cpf1(Cas12a)用)、または26nt(Cas13a用)の長さであり、および、関心の標的遺伝子中にあるように設計した。特異的配列を同定するために、標的遺伝子中のPAMを最初に同定した。その後、同定された配列がユニークかどうか決定するためにゲノム配列を調査した。sgRNAまたはスペーサー構築物を含むプラスミドの模式図を図13に示す。
大腸菌MG1655およびサルモネラ・エンテリカLT2においてrecA欠失を生成するために、受容株大腸菌MG1655またはサルモネラ・エンテリカ LT2に温度感受性pKD46プラスミドを形質転換した。細胞を回収し、および30°Cで夜通しインキュベートした。受容株大腸菌MG1655またはサルモネラ・エンテリカ LT2によってpKD46プラスミドを含有している、形質転換したコロニーをリコンビニアリング(recombineering)のために使用した。pKD13プラスミド(KanR)を用いる相同組換え(HR)カセットをPCR増幅によって調製し、フォワードプライマーとリバースプライマーは、FRT−flanked抵抗カセットが後続するrecAに隣接して50−bp相同性アームを有する。PCR産物をDpnIとカラム精製でダイジェストし、pKD46を備えた菌株においてリコンビニアリングするために準備した。pKD46を含有している受容株の一つのコロニーを、アンピシリンを含有している3mlのLB培地に接種し、30°Cで一夜の間成長させた。翌日、一夜の培養物の100ulをアンピシリンと0.2%アラビノースを含有している25mlLB中で薄め戻した。アラビノースは、リコンビナーゼの発現を引き起こす。この混合物を30°CにおいてOD600値0.6までインキュベートした。50ulの細胞を使用してエレクトロコンピテントセル(Electrocompetent cell)を調製してエレクトロポレーションし、そして、PCR産物の10〜1000ngのDNAを調製し、リコンビニアリングした。細胞のみの陰性対照も含めた。500ulのSOCを伴う細胞を回収し、および37°Cで3〜4時間インキュベートした。回収した細胞からより高い温度によってpKD46プラスミドを取り除き、次にその250ulを37°Cにおいてカナマイシン(pKD13)上にまいた。一次選択の後、カナマイシン・プレートおよびアンピシリン・プレート上で単一のコロニーの複製プレートを作った。細胞がアンピシリン中ではなくカナマイシン上で成長すると予想した。カナマイシン・プレート上だけで成長することができるコロニーを採取し、DNAを単離し、また、遺伝子ノックアウトを確認するためにPCRを実行した。
pCas9、pBAD33−Cpf、またはpZ003(Cas13a)プラスミド(様々なsgRNAまたはスペーサー・プラスミドを備えた)を50ngのプラスミドDNAを使用して、MicroPulser electroporator(Bio−Rad)を用いて、電気形質転換によって受容大腸菌株、志賀赤痢菌、肺炎杆菌とサルモネラ・エンテリカ LT2中に形質転換し、そしてSOC培地450ul中で1時間、37°C、250rpmで回復させた。回復期間の後、細胞を抗生物質を伴う適切な選択培地上にまき、または階段希釈でスポッティングした。CFUを、対照(非標的のsgRNAまたはスペーサー)の形質転換で得られたCFUの数値と比較した。変換はすべて、少なくとも3回よりも多く繰り返した。高い死滅効率を得るために、sgRNAまたはスペーサー・プラスミドをそれら自身の天然の宿主(志賀赤痢菌、肺炎杆菌とサルモネラ・エンテリカ)において形質転換し、精製した。その後、死滅アッセイを精製されたスペーサー・プラスミドを用いて実施した。
treFまたはyfaPスペーサー・プラスミドを用いた死滅アッセイを生き延びたコロニーを適切な抗生物質を伴うLB寒天平板へ再度ストリークした。翌日、一夜にわたって、抗生物質を伴う3mlのLB培地中に単一のコロニーを接種し、そして、光学濃度A600に基づいて増殖を評価した。測定可能な増殖を示す培養物は、非標的のスペーサーに対して(A600 1.0〜2.0)、treFに対して(A600 0.1〜0.4)、およびyfaPに対して(A600 0.1〜0.3)であった。その後、プラスミドを同じ培養物から単離して、直接配列決定に送るか、または、欠失した、あるいは変異したスペーサーを確認するために、スペーサー(tref 、またはyfaP)を増幅するPCRを実施した。スペーサー(treFとyfaP)のために使用されたプライマーは、特異的にスペーサー・プラスミドのプロモーターまたはターミネーターの内に結合した。データはすべて、GraphPad Prism バージョン7.0(GraphPad Software、 米国カリフォルニア州サンディエゴ、http://www.graphpad.com/)を使用して、統計的に分析された。
CRISPR−Casに基づく抗生物質への代替エフェクターとして、Cpf1(Cas12a)をCas9およびCas13a(図2のA−図2のC)と比較して調査した。本明細書において、Cas13aはC2c2とも呼ばれる。プラスミドに基づくCRISPRアレイ(sgRNAまたはスペーサー)が大腸菌MG1655のゲノム全体にわたる10の遺伝子を標的とするように設計し、これらの10の遺伝子のうち8つ(treF、eamB、irhA、lacZ、soxS、rdgC、zwf1とacnA)は非必須であり、また、2つ(yfaPとspeA)は必須であった。Cas9をエフェクターとして使用した時、非標的のsgRNAとの比較において、非必須遺伝子標的の死滅効率は103倍だけ増加し、その一方で、必須遺伝子の死滅効率は106倍だけ増加した(図2のD)。Cpf1(Cas12a)をエフェクターとして使用した時、非標的のスペーサーとの比較において、非必須遺伝子標的と必須遺伝子標的を死滅させる効率の両方は103〜105倍だけ増加した(図2のE)。Cas13aをエフェクターとして使用した場合、非必須と必須の遺伝子のいずれも、死滅効率についていかなる増加も示さず(図2のF)、そのことは、Cas13aがCas9またはCpf1(Cas12a)との比較において、優れた抗生物質ではないことを例証した。これらの結果は、これらの3つのエンドヌクレアーゼの間で、Cpf1(Cas12a)が、標的とされた遺伝子が非必須か必須かにかかわらず、死滅効率における同様の増加を示したよりよい抗生物質であることを示す。これに対して、必須遺伝子を標的として、Cas9をエフェクターとして使用した場合、非必須の遺伝子との比較においてより大きな死滅効率の増加を示した。
Cpf1(Cas12a)とCas13aの死滅効率における差、および、recAによって制御されるそれらの修復機構をCas9と比較した。大腸菌MG1655ΔrecAゲノム中の必須および非必須の標的遺伝子を変形する各エンドヌクレアーゼの死滅効率を図5のA−図5のCに示す。Cas9を発現する大腸菌細胞中で、1つの細胞も生き延びられず(図5のA)、そのことはCas9によるゲノム開裂がrecAによって修復されることを例証した。しかしながら、Cpf1(Cas12a)を発現する大腸菌細胞において、非必須遺伝子に対してまったく効果はなく、その一方で必須遺伝子は、Cas9と同様に、死滅効率における増加を示し、および生き延びた細胞はなく(図5のB)、Cpf1については、非必須遺伝子の修復機構がrecAのみに依存するのではないこと、および、他の修復機構が存在することを示唆した。Cas13aを発現する大腸菌細胞において、rdgCを標的化することは、他の標的スペーサーおよび非標的スペーサーと比較して、死滅効率は103倍の増加を示した(図5のC)。RdgCタンパク質はRecA機能の潜在的な負のレギュレーターであり、および、特定の実施形態では、一本鎖DNA上で形成されたRecAフィラメントによって触媒されたDNA鎖交換を相同の二重DNAに結合することによって阻害し、および、その結果として、RecA核タンパク質フィラメントによってそのDNAへのアクセスをブロックする。特定の実施形態では、RdgCはまた、一本鎖の(ss)DNAと二本鎖DNAに非特異的に結合し、および他の非標的mRNAまたはssDNAを劣化させる。
大腸菌BW25113、大腸菌O9:HS、大腸菌E2437A(ETEC)、志賀赤痢菌、肺炎杆菌、およびサルモネラ・エンテリカなどの他のグラム陰性菌細菌性宿主に対するCpf1(Cas12a)の抗微生物アプローチの有用性は実証された。大腸菌BW25113大腸菌BW25113ΔrecA、大腸菌O9:HS、大腸菌E2437A(ETEC)菌株については、treFとeamB(非必須)、およびspeAとyfaP(必須)を標的化するCRISPRアレイを設計した。大腸菌BW25113株における死滅効率(図10A−図10B)は、非必須と必須の両方の遺伝子について、大腸菌MG1655(図2のD−図2のF)と一致したが、大腸菌O9:HS(図10C)および大腸菌E2437A(ETEC)(図10D)株においては、完全に死滅されることは必須遺伝子において増加し、および、標的とする非必須遺伝子については大腸菌MG1655と一致した。結果は、種が同じ属の場合でも、異なる種の修復機構には差異があることを示した。
treFとftsZを標的化するCRISPRアレイによるrecA変異を有するサルモネラ・エンテリカ菌株の死滅効率を決定した。死滅効率は非標的スペーサーとの比較において104倍だけ増加し(図11B)、それに対して野生型菌株は死滅効率において103倍の増加を示した(図10G)。これらのデータは、サルモネラ生存コロニーがrecAによって修復されることをと表わす。
プラスミドをコードするCpf1ヌクレアーゼ単独、Cpf1ヌクレアーゼとftsAを標的とするcrRNA、または、Cpf1ヌクレアーゼとgyrBを標的とするcrRNAを、エレクトロコンピテントの緑膿菌の中へ形質転換した。プラスミドの存在を決定するために、カルベニシリンを含有するプレート上に細菌を加えた。対照のCpf1プラスミドの形質転換が結果として、1形質転換あたり106CFUより大きくなった一方で、緑膿菌を標的とするcrRNAを備えたプラスミドについては、耐カルベニシリン性のコロニーは、ひとつも回収されなかった(図14A)。CPFI+crRNAのプラスミド形質転換は、2つの異なる緑膿菌株において、細菌ゲノム標的化の致死性、および、ファージに送達される抗微生物活性のためのヌクレアーゼとしての有用性を例示する。
表2は、野生型の緑膿菌ファージ、CpfIをコードする緑膿菌ファージ、およびCpfI+crRNAをコードする緑膿菌ファージについての増殖曲線宿主域分析を例示する。宿主域へのヒット(hit)は、増殖曲線下に0.7以下の相対的な面積を持っていることにより定義される。簡潔に述べると、ファージp1106とCPFIを操作されたその変異体は、緑膿菌株のサブセットと共にインキュベートされ、および、600nmの光学濃度でモニタリングされた。各増殖曲線下の面積を定量化し、その後、各株について、未処置の培養物の増殖曲線下の面積でその領域を割った。表示された値は曲線下の相対的な面積を表わし、および、0.7未満の値はファージの宿主域内にあると見なされる。野生型のp1106と操作されたその変異体の宿主域は類似しており、それが感染する菌株に関して、ファージの適応度がCPFIとcrRNAの挿入によって不変だったことを実証している。
ファージp1106とその操作された変異体を、感染しやすい緑膿菌株(PA14)と感染しやすくない菌株(LFP1160)を用いてインキュベートし、細菌CFUを列挙するように様々な時点でサンプリングを行った。PA14に対し、3時間の減少は3つのファージすべてについて同様に見える(〜2log)(図15のA)。CFUは、感染しやすくない菌株において、すべての群について同値である(図15のB)。
Cpf1のmRNAと細菌のゲノム標的化crRNAの発現レベルを決定し、かつバクテリオファージ感染の間のtsA切断のレベルを決定するために、研究を実施した。緑膿菌株LFP1163、および2つのバクテリオファージ:野生型p1032(WT)とp1032_cpf1_full構築物(crPhage)を利用した。LFP1163はMOI=1でWTバクテリオファージあるいはcrPhageのいずれかに感染した。研究は感染していないLFP1163の対照も含んだ。緑膿菌LFP1163/b1834を一夜培養し、薄め戻し、増殖し、OD=0.25で感染させた。研究設計を図16で例示する。
Claims (216)
- 標的細菌を死滅させるための方法であって、前記方法は:
(a)スペーサー配列またはそれから転写されたcrRNAをコードする第1の核酸であって、ここで、前記スペーサー配列は、前記標的細菌中の標的遺伝子からの標的ヌクレオチド配列に相補的である、第1の核酸と;
(b)標的細菌中のCRISPR−Cpf1系のための転写活性化因子をコードする第2の核酸と;
を含むバクテリオファージを、標的細菌に導入する工程を含み:
ここで、前記標的細菌は、前記スペーサー配列あるいはそれから転写された前記crRNAを使用して、前記バクテリオファージの溶菌活性またはCRISPR−Cpf1系の活性によって死滅される、
方法。 - 第1の核酸配列は、少なくとも1つの反復配列をさらに含むCRISPRアレイである、請求項1に記載の方法。
- 前記転写活性化因子は前記標的細菌に内因性である、請求項1−2のいずれか1つに記載の方法。
- 前記転写活性化因子は前記標的細菌に外因性である、請求項1−2のいずれか1つに記載の方法。
- 前記転写活性化因子はクオラムセンシング(QS)シグナルによって調節される、請求項2−4のいずれか1つに記載の方法。
- 前記転写活性化因子は細菌膜のストレスの感知に関与するタンパク質である、請求項2−4のいずれか1つに記載の方法。
- 前記転写活性化因子はCpf1を安定化するタンパク質である、請求項2−4のいずれか1つに記載の方法。
- 前記転写活性化因子は代謝感知タンパク質である、請求項2−4のいずれか1つに記載の方法。
- 前記代謝感知タンパク質はσ因子である、請求項8に記載の方法。
- 前記転写活性化因子は阻害要素の活性を妨害する、請求項2−4のいずれか1つに記載の方法。
- 前記阻害要素は転写リプレッサーである、請求項10に記載の方法。
- 前記転写リプレッサーは全体的な転写リプレッサーである、請求項11に記載の方法。
- 前記CRISPR−Cpf1系は前記標的細菌に内因性である、請求項1−12のいずれか1つに記載の方法。
- 前記CRISPR−Cpf1系は前記標的細菌に外因性である、請求項1−12のいずれか1つに記載の方法。
- 前記標的ヌクレオチド配列は、前記標的遺伝子のためのプロモーター配列のすべてまたは一部を含む、請求項1−14のいずれか1つに記載の方法。
- 前記標的ヌクレオチド配列は、前記標的遺伝子の転写領域のコード鎖上にあるヌクレオチド配列のすべてまたは一部を含む、請求項1−15のいずれか1つに記載の方法。
- 前記標的ヌクレオチド配列は、前記標的細菌の生存に必要とされる必須遺伝子の少なくとも一部分である、請求項1−16のいずれか1つに記載の方法。
- 前記必須遺伝子は、yfaP、speA、ftsZ、Tsf、acpP、gapA、infA、secY、csrA、trmD、ftsA、fusA、glyQ、eno、またはnusGである、請求項17に記載の方法。
- 前記少なくとも1つの反復配列は、その5’末端またはその3’末端のいずれかにおいて、少なくとも1つの前記スペーサー配列に作動可能に連結される、請求項2−18のいずれか1つに記載の方法。
- 前記標的細菌は前記バクテリオファージの溶菌活性のみによって死滅される、請求項1−19のいずれか1つに記載の方法。
- 前記標的細菌は前記CRISPR−Cpf1系の活性のみによって死滅される、請求項1−19のいずれか1つに記載の方法。
- 前記標的細菌は、前記バクテリオファージの溶菌活性と前記CRISPR−Cpf1系の活性の両方の組み合わせによって死滅される、請求項1−19のいずれか1つに記載の方法。
- 前記標的細菌は、前記バクテリオファージの溶菌活性とは無関係に、前記CRISPR−Cpf1系の活性によって死滅される、請求項1−19のいずれか1つに記載の方法。
- 前記CRISPR−Cpf1系の活性は、前記バクテリオファージの溶菌活性を補足または増強する、請求項22に記載の方法。
- スペーサーヌクレオチド配列は第2のスペーサー配列と重複する、請求項1−24のいずれか1つに記載の方法。
- 前記バクテリオファージの溶菌活性および前記CRISPR−Cpf1系の活性は相乗的である、請求項1−25のいずれか1つに記載の方法。
- 前記バクテリオファージの溶菌活性、前記CRISPR−Cpf1系の活性、またはその両方は、前記バクテリオファージの濃度によって調節される、請求項1−26のいずれか1つに記載の方法。
- 前記バクテリオファージは複数のバクテリア菌株に感染する、請求項1−27のいずれか1つに記載の方法。
- 前記バクテリオファージは偏性溶菌性バクテリオファージである、請求項1−28のいずれか1つに記載の方法。
- 前記バクテリオファージは、溶菌性にされるテンペレートバクテリオファージである、請求項1−28のいずれか1つに記載の方法。
- 前記バクテリオファージは、前記バクテリオファージの溶菌活性および/または前記CRISPR−Cpf1アレイの活性によって引き起こされた細胞死を超えて、前記標的細菌に新しい特性を与えない、請求項1−30のいずれか1つに記載の方法。
- 前記標的細菌は、大腸菌、肺炎杆菌、サルモネラ菌、または志賀赤痢菌である、請求項1−31のいずれか1つに記載の方法。
- スペーサー配列またはcrRNAをコードする前記第1の核酸は、非必須バクテリオファージ遺伝子に挿入される、請求項1−32のいずれか1つに記載の方法。
- 前記非必須バクテリオファージ遺伝子はgp49である、請求項33に記載の方法。
- 前記非必須バクテリオファージ遺伝子はgp75である、請求項33に記載の方法。
- 前記非必須バクテリオファージ遺伝子はhocである、請求項33に記載の方法。
- 前記非必須バクテリオファージ遺伝子は、gp0.7、gp4.3、gp4.5、またはgp4.7である、請求項33に記載の方法。
- 前記非必須バクテリオファージ遺伝子は、gp0.6、gp0.65、gp0.7、gp4.3、またはgp4.5である、請求項33に記載の方法。
- 前記バクテリオファージは、Gamタンパク質をコードする第3の核酸をさらに含む、請求項1−38のいずれか1つに記載の方法。
- バクテリオファージであって、前記バクテリオファージは:
(a)スペーサー配列あるいはそれから転写されたcrRNAをコードする第1の核酸であって、ここで、前記スペーサー配列は、標的細菌中の標的遺伝子からの標的ヌクレオチド配列に相補的である、第1の核酸と;
(b)標的細菌中のCRISPR−Cpf1系のための転写活性化因子をコードする第2の核酸と、を含み、
ここで、前記標的細菌は、前記スペーサー配列あるいはそれから転写されたcrRNAを使用して、前記バクテリオファージの溶菌活性またはCRISPR−Cpf1系の活性によって死滅される、
バクテリオファージ。 - 前記転写活性化因子はクオラムセンシング(QS)シグナルによって調節される、請求項40に記載のバクテリオファージ。
- 前記転写活性化因子は細菌膜のストレスの感知に関与するタンパク質である、請求項40に記載のバクテリオファージ。
- 前記転写活性化因子はCpf1を安定化するタンパク質である、請求項40に記載のバクテリオファージ。
- 前記転写活性化因子は代謝感知タンパク質である、請求項40に記載のバクテリオファージ。
- 前記代謝感知タンパク質はσ因子である、請求項44に記載のバクテリオファージ。
- 前記転写活性化因子は、前記標的細菌の阻害要素の活性を妨害する、請求項40に記載のバクテリオファージ。
- 前記阻害要素は転写リプレッサーである、請求項46に記載のバクテリオファージ。
- 前記転写リプレッサーは全体的な転写リプレッサーである、請求項47に記載のバクテリオファージ。
- 前記CRISPR−Cpf1系は前記標的細菌に内因性である、請求項40−48のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 前記CRISPR−Cpf1系は前記標的細菌に外因性である、請求項40−48のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 前記標的ヌクレオチド配列は、前記標的遺伝子のためのプロモーター配列のすべてまたは一部を含む、請求項40−50のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 前記標的ヌクレオチド配列は、前記標的遺伝子の転写領域のコード鎖上にあるヌクレオチド配列のすべてまたは一部を含む、請求項40−51のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 前記標的ヌクレオチド配列は必須である、請求項40−52のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 必須遺伝子は、yfaP、speA、ftsZ、Tsf、acpP、gapA、infA、secY、csrA、trmD、ftsA、fusA、glyQ、eno、またはnusGである、請求項53に記載のバクテリオファージ。
- 前記標的ヌクレオチド配列は非必須遺伝子である、請求項40−52のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 第1の核酸配列は、少なくとも1つの反復配列を含むCRISPRアレイである、請求項40−55のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 前記少なくとも1つの反復配列は、その5’末端またはその3’末端のいずれかにおいて、前記スペーサー配列に作動可能に連結される、請求項56に記載のバクテリオファージ。
- 前記バクテリオファージは複数のバクテリア菌株に感染する、請求項40−57のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 前記バクテリオファージは偏性溶菌性バクテリオファージである、請求項40−58のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 前記バクテリオファージは、溶菌性にされるテンペレートバクテリオファージである、請求項40−58のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 前記テンペレートバクテリオファージは、1つ以上の溶原性遺伝子の除去、置換、または不活性化によって溶菌性にされる、請求項60に記載のバクテリオファージ。
- 前記標的細菌は、大腸菌、肺炎杆菌、サルモネラ菌、または志賀赤痢菌である、請求項40−61のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- スペーサー配列またはcrRNAをコードする前記第1の核酸は、非必須バクテリオファージ遺伝子に挿入される、請求項40−62のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 前記非必須バクテリオファージ遺伝子はgp49である、請求項40−63のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 前記非必須バクテリオファージ遺伝子はgp75である、請求項40−63のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 前記非必須バクテリオファージ遺伝子はhocである、請求項40−63のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 前記非必須バクテリオファージ遺伝子は、gp0.7、gp4.3、gp4.5、またはgp4.7である、請求項40−63のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 前記非必須バクテリオファージ遺伝子は、gp0.6、gp0.65、gp0.7、gp4.3、またはgp4.5である、請求項40−63のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- Gamタンパク質をコードする第3の核酸をさらに含む請求項40−68のいずれか1つのバクテリオファージ。
- 細菌中のCRISPR−Cpf1系の活性を調節するための方法であって、前記方法は:
標的細菌中の前記CRISPR−Cpf1系のための転写活性化因子をコードする核酸を含む、バクテリオファージを導入する工程を含む、
方法。 - 前記転写活性化因子はクオラムセンシング(QS)シグナルによって調節される、請求項70に記載の方法。
- 前記転写活性化因子は、細菌膜へのストレスの感知に関与するタンパク質である、請求項70に記載の方法。
- 前記転写活性化因子はCpf1を安定化するタンパク質である、請求項70に記載の方法。
- 前記転写活性化因子は代謝感知タンパク質である、請求項70に記載の方法。
- 前記代謝感知タンパク質はσ因子である、請求項74に記載の方法。
- 前記転写活性化因子は阻害要素の活性を妨害する、請求項70−75のいずれか1つに記載の方法。
- 前記阻害要素は転写リプレッサーである、請求項76に記載の方法。
- 前記転写リプレッサーは全体的な転写リプレッサーである、請求項77に記載の方法。
- 前記CRISPR−Cpf1系は前記標的細菌に内因性である、請求項70−78のいずれか1つに記載の方法。
- 前記CRISPR−Cpf1系は前記標的細菌に外因性である、請求項70−78のいずれか1つに記載の方法。
- 前記バクテリオファージは複数のバクテリア菌株に感染する、請求項70−80のいずれか1つに記載の方法。
- 前記バクテリオファージは偏性溶菌性バクテリオファージである、請求項70−81のいずれか1つに記載の方法。
- 前記バクテリオファージは、溶菌性にされるテンペレートバクテリオファージである、請求項70−82のいずれか1つに記載の方法。
- 前記標的細菌は、大腸菌、肺炎杆菌、サルモネラ菌、または志賀赤痢菌である、請求項70−83のいずれか1つに記載の方法。
- 転写活性化因子をコードする前記核酸は、非必須バクテリオファージ遺伝子に挿入される、請求項70−84のいずれか1つに記載の方法。
- 前記非必須バクテリオファージ遺伝子はgp49である、請求項70−85のいずれか1つに記載の方法。
- 前記非必須バクテリオファージ遺伝子はgp75である、請求項70−85のいずれか1つに記載の方法。
- 前記非必須バクテリオファージ遺伝子はhocである、請求項70−85のいずれか1つに記載の方法。
- 前記非必須バクテリオファージ遺伝子は、gp0.7、gp4.3、gp4.5、またはgp4.7である、請求項70−85のいずれか1つに記載の方法。
- 前記非必須バクテリオファージ遺伝子は、gp0.6、gp0.65、gp0.7、gp4.3、またはgp4.5である、請求項70−85のいずれか1つに記載の方法。
- 前記バクテリオファージは、Gamタンパク質をコードする第2の核酸をさらに含む、請求項70−90のいずれか1つに記載の方法。
- 標的細菌中のCRISPR−Cpf1系のための転写活性化因子をコードする核酸を含む、バクテリオファージ。
- 前記転写活性化因子はクオラムセンシング(QS)シグナルによって調節される、請求項92に記載のバクテリオファージ。
- 前記転写活性化因子は、細菌膜へのストレスの感知に関与するタンパク質である、請求項92に記載のバクテリオファージ。
- 前記転写活性化因子はCpf1を安定化するタンパク質である、請求項92に記載のバクテリオファージ。
- 前記転写活性化因子は代謝感知タンパク質である、請求項92に記載のバクテリオファージ。
- 前記代謝感知タンパク質はσ因子である、請求項93に記載のバクテリオファージ。
- 前記転写活性化因子は阻害要素の活性を妨害する、請求項92−97のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 前記阻害要素は転写リプレッサーである、請求項98に記載のバクテリオファージ。
- 前記転写リプレッサーは全体的な転写リプレッサーである、請求項99に記載のバクテリオファージ。
- 前記CRISPR−Cpf1系は前記標的細菌に内因性である、請求項92−100のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 前記CRISPR−Cpf1系は前記標的細菌に外因性である、請求項92−100のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 前記バクテリオファージは複数のバクテリア菌株に感染する、請求項92−102のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 前記バクテリオファージは偏性溶菌性バクテリオファージである、請求項92−103のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 前記バクテリオファージは、溶菌性にされるテンペレートバクテリオファージである、請求項92−103のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 前記標的細菌は、大腸菌、肺炎杆菌、サルモネラ菌、または志賀赤痢菌である、請求項92−105のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 転写活性化因子をコードする前記核酸は、非必須バクテリオファージ遺伝子に挿入される、請求項92−106のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 前記非必須バクテリオファージ遺伝子はgp49である、請求項92−107のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 前記非必須バクテリオファージ遺伝子はgp75である、請求項92−107のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 前記非必須バクテリオファージ遺伝子はhocである、請求項92−107のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 前記非必須バクテリオファージ遺伝子は、gp0.7、gp4.3、gp4.5、またはgp4.7である、請求項39−107のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 前記非必須バクテリオファージ遺伝子は、gp0.6、gp0.65、gp0.7、gp4.3、またはgp4.5である、請求項39−107のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- Gamタンパク質をコードする第2の核酸をさらに含む、請求項92−112のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 標的細菌を死滅させる方法であって、前記方法は:
(a)溶菌活性と、
(b)抗CRISPRポリペプチドをコードする第1の核酸配列と、
を含むバクテリオファージを、標的細菌に導入する工程を含み、
ここで、前記抗CRISPRポリペプチドは、前記バクテリオファージの前記溶菌活性を増強する、
方法。 - 前記抗CRISPRポリペプチドは、CRISPR−Cpf1系を不活性化する、請求項114に記載の方法。
- 前記抗CRISPRポリペプチドは、遺伝子調節干渉を含むプロセスを使用して、前記CRISPR−Cpf1系を不活性化する、請求項115に記載の方法。
- 前記抗CRISPRポリペプチドは、ヌクレアーゼ動員干渉を含むプロセスを使用して、前記CRISPR−Cpf1系を不活性化する、請求項115−116のいずれか1つに記載の方法。
- 前記抗CRISPRポリペプチドは、短縮タンパク質、融合タンパク質、二量体タンパク質、または変異タンパク質である、請求項114−117のいずれか1つに記載の方法。
- 前記バクテリオファージは、CRISPRアレイをコードする第2の核酸をさらに含む、請求項114−118のいずれか1つに記載の方法。
- 前記CRISPRアレイは、前記標的細菌中の標的遺伝子からの標的ヌクレオチド配列に相補的である、少なくとも1つの反復配列および少なくとも1つのスペーサー配列を含む、請求項119に記載の方法。
- バクテリオファージであって、前記バクテリオファージは:
(a)溶菌活性と、
(b)抗CRISPRポリペプチドをコードする第1の核酸配列と、を含み、
ここで、前記抗CRISPRポリペプチドは、前記バクテリオファージの前記溶菌活性を増強する、
バクテリオファージ。 - 前記抗CRISPRポリペプチドは、CRISPR−Cpf1系を不活性化する、請求項121に記載のバクテリオファージ。
- 前記抗CRISPRポリペプチドは、遺伝子調節干渉を含むプロセスを使用して、前記CRISPR−Cpf1系を不活性化する、請求項122に記載のバクテリオファージ。
- 前記抗CRISPRポリペプチドは、ヌクレアーゼ動員干渉を含むプロセスを使用して、前記CRISPR−Cpf1系を不活性化する、請求項112または123に記載のバクテリオファージ。
- 前記抗CRISPRポリペプチドは、短縮タンパク質、融合タンパク質、二量体タンパク質、または変異タンパク質である、請求項121−124のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 前記バクテリオファージは、CRISPRアレイをコードする第2の核酸をさらに含む、請求項121−124のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 前記CRISPRアレイは、前記標的細菌中の標的遺伝子からの標的ヌクレオチド配列に相補的である、少なくとも1つの反復配列および少なくとも1つのスペーサー配列を含む、請求項126に記載のバクテリオファージ。
- 請求項40−69、92−113、または121−127のいずれか1つに記載のバクテリオファージを被験体に投与する工程を含む、前記被験体の疾患を処置する方法。
- 前記被験体が哺乳動物である、請求項128に記載の方法。
- 前記疾患は細菌感染症である、請求項128−129のいずれか1つに記載の方法。
- 前記細菌感染症を引き起こす細菌は、アシネトバクター属、アクチノミセス属、バークホルデリア属、カンピロバクター属、カンジダ属、クロストリジウム属、コリネバクテリア属、コクシジオイデス属、クリプトコックス属、エンテロコッカス属、Escherichica属、Haemophilis属、ヘリコバクター属、クレブシェラ属、モラクセラ属、マイコバクテリウム属、ナイセリア属、ポルフィロモナス属、プレボテラ属、シュードモナス属、サルモネラ属、セラチア属、ブドウ球菌属、連鎖球菌属、またはビブリオ属の細菌である、請求項130に記載の方法。
- 前記細菌感染症を引き起こす細菌は、バークホリデリア・セパシア、クロストリジウム・ディフィシル、コリネバクテリウム・ミヌティシマム、偽ジフテリア菌、コリネバクテリウム・ストリアタム、大腸菌、インフルエンザ菌、肺炎杆菌、モラクセラ属種、結核菌、淋菌、髄膜炎菌、プレボテラ・メラニノゲニカス、ネズミチフス菌、サルモネラ・エンテリカ、志賀赤痢菌、霊菌、黄色ブドウ球菌、ストレプトコッカスアガラクティエ、表皮ブドウ球菌、ストレプトコッカス・サリバリウス、ストレプトコッカス・ミチス、ストレプトコッカス・サングイス、肺炎連鎖球菌、化膿連鎖球菌、コレラ菌、ヘリコバクター・フェリス、ヘリコバクター・ピロリ、またはクロストリジウム・ボルテアエである、請求項130に記載の方法。
- 前記細菌は、少なくとも1つの抗生物質に耐性を示す薬剤耐性細菌である、請求項131または132のいずれか1つに記載の方法。
- 前記細菌は、少なくとも1つの抗生物質に耐性を示す多剤耐性細菌である、請求項131−133のいずれか1つに記載の方法。
- 前記抗生物質は、セファロスポリン、フルオロキノロン、カルバペネム、コリスチン、アミノグリコシド、バンコマイシン、ストレプトマイシン、またはメチシリンを含む、請求項133または134のいずれか1つに記載の方法。
- 前記投与する工程は、動脈内、静脈内、筋肉内、経口、皮下、吸入、またはそれらの任意の組み合わせである、請求項128−135のいずれか1つに記載の方法。
- 医薬組成物であって、前記医薬組成物は:
a.請求項40−69、92−113、または121−127のいずれか1つに記載のバクテリオファージと;
b.薬学的に許容可能な賦形剤と、
を含む、
医薬組成物。 - 錠剤、液体、シロップ剤、経口製剤、静脈内製剤、鼻腔内製剤、眼製剤、耳製剤、皮下製剤、吸入可能な呼吸器製剤、坐剤、およびそれらの任意の組み合わせの形態である、請求項137に記載の医薬組成物。
- 標的細菌を死滅させるための方法であって、前記方法は:
(a)スペーサー配列またはそれから転写されたcrRNAをコードする第1の核酸であって、ここで、前記スペーサー配列は、前記標的細菌中の標的遺伝子からの標的ヌクレオチド配列に相補的である、第1の核酸と;
(b)外因性Cpf1をコードする第2の核酸と;
を含む、バクテリオファージを標的細菌に導入する工程を含み、
ここで、前記標的細菌は、前記スペーサー配列あるいはそれから転写されたcrRNAおよび外因性Cpf1を使用して、前記バクテリオファージの溶菌活性またはCRISPR−Cpf1系の活性によって死滅される、
方法。 - 第1の核酸配列は、少なくとも1つの反復配列をさらに含むCRISPRアレイである、請求項139に記載の方法。
- 前記CRISPR−Cpf1系は前記標的細菌に内因性である、請求項139−140のいずれか1つに記載の方法。
- 前記CRISPR−Cpf1系は前記標的細菌に外因性である、請求項139−140のいずれか1つに記載の方法。
- 前記標的ヌクレオチド配列は、前記標的遺伝子のためのプロモーター配列のすべてまたは一部を含む、請求項139−142のいずれか1つに記載の方法。
- 前記標的ヌクレオチド配列は、前記標的遺伝子の転写領域のコード鎖上にあるヌクレオチド配列のすべてまたは一部を含む、請求項139−143のいずれか1つに記載の方法。
- 前記標的ヌクレオチド配列は、前記標的細菌の生存に必要とされる必須遺伝子の少なくとも一部分である、請求項139−144のいずれか1つに記載の方法。
- 前記必須遺伝子は、yfaP、speA、ftsZ、Tsf、acpP、gapA、infA、secY、csrA、trmD、ftsA、fusA、glyQ、eno、またはnusGである、請求項145に記載の方法。
- 前記少なくとも1つの反復配列は、その5’末端またはその3’末端のいずれかにおいて、少なくとも1つのスペーサー配列に作動可能に連結される、請求項140−146のいずれか1つに記載の方法。
- 前記標的細菌はバクテリオファージの溶菌活性のみによって死滅される、請求項139−147のいずれか1つに記載の方法。
- 前記標的細菌は前記CRISPR−Cpf1系の活性のみによって死滅される、請求項139−147のいずれか1つに記載の方法。
- 前記標的細菌は、前記バクテリオファージの溶菌活性と前記CRISPR−Cpf1系の活性の両方の組み合わせによって死滅される、請求項139−147のいずれか1つに記載の方法。
- 前記標的細菌は、前記バクテリオファージの溶菌活性とは無関係に、前記CRISPR−Cpf1系の活性によって死滅される、請求項139−147のいずれか1つに記載の方法。
- 前記CRISPR−Cpf1系の活性は、前記バクテリオファージの溶菌活性を補足または増強する、請求項151に記載の方法。
- スペーサーヌクレオチド配列は第2のスペーサー配列と重複する、請求項139−152のいずれか1つに記載の方法。
- 前記バクテリオファージの溶菌活性および前記CRISPR−Cpf1系の活性は相乗的である、請求項139−153のいずれか1つに記載の方法。
- 前記バクテリオファージの溶菌活性、前記CRISPR−Cpf1系の活性、またはその両方は、前記バクテリオファージの濃度によって調節される、請求項139−154のいずれか1つに記載の方法。
- 前記バクテリオファージは複数のバクテリア菌株に感染する、請求項139−155のいずれか1つに記載の方法。
- 前記バクテリオファージは偏性溶菌性バクテリオファージである、請求項139−156のいずれか1つに記載の方法。
- 前記バクテリオファージは、溶菌性にされるテンペレートバクテリオファージである、請求項139−156のいずれか1つに記載の方法。
- 前記バクテリオファージは、前記バクテリオファージの溶菌活性および/または前記CRISPR−Cpf1アレイの活性によって引き起こされた細胞死を超えて、前記標的細菌に新しい特性を与えない、請求項139−158のいずれか1つに記載に方法。
- 前記標的細菌は、大腸菌、肺炎杆菌、サルモネラ菌、または志賀赤痢菌である、請求項139−159のいずれか1つに記載の方法。
- スペーサー配列またはcrRNAをコードする前記第1の核酸は、非必須バクテリオファージ遺伝子に挿入される、請求項139−160のいずれか1つに記載の方法。
- 前記非必須バクテリオファージ遺伝子はgp49である、請求項161に記載の方法。
- 前記非必須バクテリオファージ遺伝子はgp75である、請求項161に記載の方法。
- 前記非必須バクテリオファージ遺伝子はhocである、請求項161に記載の方法。
- 前記非必須バクテリオファージ遺伝子は、gp0.7、gp4.3、gp4.5、またはgp4.7である、請求項161に記載の方法。
- 前記非必須バクテリオファージ遺伝子は、gp0.6、gp0.65、gp0.7、gp4.3、またはgp4.5である、請求項161に記載の方法。
- 前記バクテリオファージは、Gamタンパク質をコードする第3の核酸をさらに含む、請求項139−166のいずれか1つに記載の方法。
- バクテリオファージであって、前記バクテリオファージは:
(a)スペーサー配列あるいはそれから転写されたcrRNAをコードする第1の核酸であって、ここで、前記スペーサー配列は、標的細菌中の標的遺伝子からの標的ヌクレオチド配列に相補的である、第1の核酸と;
(b)外因性Cpf1をコードする第2の核酸と、を含み、
ここで、前記標的細菌は、前記スペーサー配列あるいはそれから転写された前記crRNAおよび外因性Cpf1を使用して、前記バクテリオファージの溶菌活性またはCRISPR−Cpf1系の活性によって死滅される、
バクテリオファージ。 - 前記CRISPR−Cpf1系は前記標的細菌に内因性である、請求項168に記載のバクテリオファージ。
- 前記CRISPR−Cpf1系は前記標的細菌に外因性である、請求項168に記載のバクテリオファージ。
- 前記標的ヌクレオチド配列は、前記標的遺伝子のためのプロモーター配列のすべてまたは一部を含む、請求項168−170のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 前記標的ヌクレオチド配列は、前記標的遺伝子の転写領域のコード鎖上にあるヌクレオチド配列のすべてまたは一部を含む、請求項168−171のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 前記標的ヌクレオチド配列は必須である、請求項168−172のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 必須遺伝子は、yfaP、speA、ftsZ、Tsf、acpP、gapA、infA、secY、csrA、trmD、ftsA、fusA、glyQ、eno、またはnusGである、請求項173に記載のバクテリオファージ。
- 前記標的ヌクレオチド配列は非必須遺伝子である、請求項168−172のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 第1の核酸配列は、少なくとも1つの反復配列を含むCRISPRアレイである、請求項168−175のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 前記少なくとも1つの反復配列は、その5’末端またはその3’末端のいずれかにおいて、前記スペーサー配列に作動可能に連結される、請求項176に記載のバクテリオファージ。
- 前記バクテリオファージは複数のバクテリア菌株に感染する、請求項168−177のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 前記バクテリオファージは偏性溶菌性バクテリオファージである、請求項168−178のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 前記バクテリオファージは、溶菌性にされるテンペレートバクテリオファージである、請求項168−178のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 前記テンペレートバクテリオファージは、1つ以上の溶原性遺伝子の除去、置換、または不活性化によって溶菌性にされる、請求項180に記載のバクテリオファージ。
- 前記標的細菌は、大腸菌、肺炎杆菌、サルモネラ菌、または志賀赤痢菌である、請求項168−181のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- スペーサー配列またはcrRNAをコードする前記第1の核酸は、非必須バクテリオファージ遺伝子に挿入される、請求項168−182のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 前記非必須バクテリオファージ遺伝子はgp49である、請求項168−183のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 前記非必須バクテリオファージ遺伝子はgp75である、請求項168−183のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 前記非必須バクテリオファージ遺伝子はhocである、請求項168−183のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 前記非必須バクテリオファージ遺伝子は、gp0.7、gp4.3、gp4.5、またはgp4.7である、請求項168−183のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 前記非必須バクテリオファージ遺伝子は、gp0.6、gp0.65、gp0.7、gp4.3、またはgp4.5である、請求項168−183のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- Gamタンパク質をコードする第3の核酸をさらに含む、請求項168−188のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 細菌中のCRISPR−Cpf1系の活性を調節するための方法であって、前記方法は:
前記標的細菌中の前記CRISPR−Cpf1系のための外因性Cpf1をコードする核酸を含む、バクテリオファージを導入する工程を含む、
方法。 - 前記CRISPR−Cpf1系は前記標的細菌に内因性である、請求項190に記載の方法。
- 前記CRISPR−Cpf1系は前記標的細菌に外因性である、請求項190に記載の方法。
- 前記バクテリオファージは複数のバクテリア菌株に感染する、請求項190−192のいずれか1つに記載の方法。
- 前記バクテリオファージは偏性溶菌性バクテリオファージである、請求項190−193のいずれか1つに記載の方法。
- 前記バクテリオファージは、溶菌性にされるテンペレートバクテリオファージである、請求項190−193のいずれか1つに記載の方法。
- 前記標的細菌は、大腸菌、肺炎杆菌、サルモネラ菌、または志賀赤痢菌である、請求項190−195のいずれか1つに記載の方法。
- 前記バクテリオファージは、Gamタンパク質をコードする第2の核酸をさらに含む、請求項190−196のいずれか1つに記載の方法。
- 標的細菌中のCRISPR−Cpf1系のための外因性Cpf1をコードする核酸を含む、バクテリオファージ。
- 前記CRISPR−Cpf1系は前記標的細菌に内因性である、請求項198に記載のバクテリオファージ。
- 前記CRISPR−Cpf1系は前記標的細菌に外因性である、請求項198に記載のバクテリオファージ。
- 前記バクテリオファージは複数のバクテリア菌株に感染する、請求項198−200のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 前記バクテリオファージは偏性溶菌性バクテリオファージである、請求項198−201のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 前記バクテリオファージは、溶菌性にされるテンペレートバクテリオファージである、請求項198−201のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 前記標的細菌は、大腸菌、肺炎杆菌、サルモネラ菌、または志賀赤痢菌である、請求項198−203のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- Gamタンパク質をコードする第2の核酸をさらに含む、請求項198−204のいずれか1つに記載のバクテリオファージ。
- 請求項168−189、または198−205のいずれか1つに記載のバクテリオファージを被験体に投与する工程を含む、前記被験体の疾患を処置する方法。
- 前記被験体が哺乳動物である、請求項206に記載の方法。
- 前記疾患は細菌感染症である、請求項206−207のいずれか1つに記載の方法。
- 前記細菌感染症を引き起こす細菌は、アシネトバクター属、アクチノミセス属、バークホルデリア属、カンピロバクター属、カンジダ属、クロストリジウム属、コリネバクテリア属、コクシジオイデス属、クリプトコックス属、エンテロコッカス属、Escherichica属、Haemophilis属、ヘリコバクター属、クレブシェラ属、モラクセラ属、マイコバクテリウム属、ナイセリア属、ポルフィロモナス属、プレボテラ属、シュードモナス属、サルモネラ属、セラチア属、ブドウ球菌属、連鎖球菌属、またはビブリオ属の細菌である、請求項208に記載の方法。
- 前記細菌感染症を引き起こす細菌は、バークホリデリア・セパシア、クロストリジウム・ディフィシル、コリネバクテリウム・ミヌティシマム、偽ジフテリア菌、コリネバクテリウム・ストリアタム、大腸菌、インフルエンザ菌、肺炎杆菌、モラクセラ属種、結核菌、淋菌、髄膜炎菌、プレボテラ・メラニノゲニカス、ネズミチフス菌、サルモネラ・エンテリカ、志賀赤痢菌、霊菌、黄色ブドウ球菌、ストレプトコッカスアガラクティエ、表皮ブドウ球菌、ストレプトコッカス・サリバリウス、ストレプトコッカス・ミチス、ストレプトコッカス・サングイス、肺炎連鎖球菌、化膿連鎖球菌、コレラ菌、ヘリコバクター・フェリス、ヘリコバクター・ピロリ、またはクロストリジウム・ボルテアエである、請求項208に記載の方法。
- 前記細菌は、少なくとも1つの抗生物質に耐性を示す薬剤耐性細菌である、請求項209または210のいずれか1つに記載の方法。
- 前記細菌は、少なくとも1つの抗生物質に耐性を示す多剤耐性細菌である、請求項209−211のいずれか1つに記載の方法。
- 前記抗生物質は、セファロスポリン、フルオロキノロン、カルバペネム、コリスチン、アミノグリコシド、バンコマイシン、ストレプトマイシン、またはメチシリンを含む、請求項211または212のいずれか1つに記載の方法。
- 前記投与する工程は、動脈内、静脈内、筋肉内、経口、皮下、吸入、またはそれらの任意の組み合わせである、請求項206−213のいずれか1つに記載の方法。
- 医薬組成物であって、前記医薬組成物は:
a.請求項168−189、または198−205のいずれか1つに記載のバクテリオファージと;
b.薬学的に許容可能な賦形剤と、
を含む、
医薬組成物。 - 錠剤、液体、シロップ剤、経口製剤、静脈内製剤、鼻腔内製剤、眼製剤、耳製剤、皮下製剤、吸入可能な呼吸器製剤、坐剤、およびそれらの任意の組み合わせの形態である、請求項215に記載の医薬組成物。
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