JP2021519311A - 抗微生物性バクテリオファージ由来ポリペプチド及びグラム陰性細菌に対するそれらの使用 - Google Patents
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Abstract
Description
本願は、2018年3月29日付で出願された米国仮特許出願第62/650,235号の利益を主張し、その出願日に依拠し、その開示全体が引用することにより本明細書の一部をなす。
本願は、ASCIIフォーマットで電子的に提出された配列表を含み、その全体が引用することにより本明細書の一部をなす。2019年3月28日付けで作製された上記ASCIIコピーの名前は0341_0002−PCT_SL.txtであり、28097バイトのサイズである。
本明細書で使用される場合、以下の用語及びその同語源語は、文脈上そうでないことが明示されない限り、下記の意味を有するものとする。
ミクロウイルス科ファージの成員は、幾つかの理由で抗感染症薬の潜在源として特に関心がもたれる可能性がある。本明細書に開示されているように、クラミジアミクロウイルス(Chlamydiamicrovirus)属(ミクロウイルス科、ゴクショウイルス(Gokushovirinae)亜科)のものを含むこれらのファージの大きなサブセットは保存されたアムリン配列を有しておらず、代わりにこれまで性質が知られていない溶菌系の基礎を形成するように見える小さな性質不明のカチオン性ペプチドをコードすることがわかっている。さらに、腸内細菌科(Enterobacteriaceae)、シュードモナス科(Pseudomonadaceae)及びクラミジア科の成員を含むミクロウイルス科のバクテリオファージは、医学的に関連する生物に感染する(Doore SM et al, 2016. Virology 491:45-55.)。これらのバクテリオファージもまたアムリンを欠き、代わりに、本明細書で開示されるように、以前に同定されていないか、それらに起因する機能を有していない、独自の特徴を持たない抗微生物様ペプチド(アムリンペプチドと呼ばれる)をコードする。推定抗微生物様ペプチドが以前に記載される抗微生物ペプチド(AMP)と同様の方式で作用するのであれば、アムリン及びそれらの細胞質標的では不可能な方法で「ない状態からの溶菌」を可能とすることが予測されると推論された。
本明細書で実証及び説明されるように、野生型Chpペプチド、修飾Chpペプチド及びその誘導体又は活性フラグメントを含む本項に記載されるChpペプチドを、本明細書に記載される医薬組成物及び方法において使用することができる。
Chpペプチド及びその活性フラグメント
一態様では、本開示は、Chpペプチド又は溶菌活性を有するその活性フラグメントをコードする核酸分子を含む単離ポリヌクレオチドに関する。本明細書で使用される場合、「溶菌活性」は、ヒト血清の存在下又は不在下で、例えばグラム陰性細菌(例えば、シュードモナス・エルギノーサ)の外膜を透過することによるChpペプチドの細菌を死滅させる能力、細菌の菌数を減少させる能力又は細菌の増殖を阻害する能力を包含する。溶菌活性はまた、ヒト血清の存在下及び/又は不在下で、バイオフィルムを除去若しくは減少させる能力及び/又は抗生物質の最小阻止濃度(MIC)を低下させる能力を包含する。
別の態様では、本開示は、本明細書に開示されるChpペプチド若しくはその活性フラグメントのいずれかをコードする核酸分子を含む単離ポリヌクレオチド又は本単離ポリヌクレオチドの相補配列を含むベクターに関する。幾つかの実施形態では、ベクターはプラスミド又はコスミドである。他の実施形態では、ベクターはウイルスベクターであり、この場合、追加のDNAセグメントをウイルスベクターにライゲートすることができる。幾つかの実施形態では、ベクターは、ベクターが導入された宿主細胞において自律的に複製することができる。幾つかの実施形態では、ベクターは宿主細胞への導入の際に宿主細胞のゲノムに統合され、それによって宿主ゲノムと共に複製され得る。
本開示の組成物は、溶液、懸濁液、エマルション、錠剤、丸剤、ペレット、カプセル剤、液体を含有するカプセル剤、粉末、持続放出製剤、坐剤、タンポン用途エマルション、エアロゾル、スプレー、懸濁液、ロゼンジ、トローチ、キャンディー、注射剤、チューインガム、軟膏、スメア(smears)、時間放出パッチ、液体を吸収したワイプ、及びそれらの組合せの形態をとることができる。
適用される投与量は、治療されている感染の活動性、治療される被験体の年齢、健康及び総合的な健康状態、特定のChpペプチド又はその活性フラグメントの活性、存在する場合には、本開示によるChpペプチド又はその活性フラグメントと組み合わせる抗生物質の性質及び活性、並びにかかる組合せの併用効果等の多くの要因に依存し得る。或る特定の実施形態において、投与されるChpペプチド又はその活性フラグメントの有効量は、約1mg/kg〜50mg/kg(又は1mcg/ml〜50mcg/ml)の範囲内に収まり得る。或る特定の実施形態では、Chpペプチド又はその活性フラグメントは、毎日1回〜4回を1日〜14日間に及ぶ期間にわたって投与され得る。抗生物質も使用される場合は、任意の相乗作用を考慮して標準的な投与計画又は低量で投与され得る。しかしながら、(Chpペプチド若しくはその活性フラグメント、又はそれに伴って投与される任意の抗生物質に関わらず)かかる投与量及び投与計画はいずれも、最適化の対象となる。最適な投与量は、当業者が備えている技能の範囲内であるが、本開示を考慮に入れて、in vitro及びin vivoでのパイロット有効性実験を行うことにより決定され得る。
本開示のChpペプチド及びその活性フラグメントを、被験体において、例えば、シュードモナス・エルギノーサ等のグラム陰性細菌による細菌感染を治療するためin vivoで、並びに例えば、医療用具の表面等の細菌汚染のレベルを低下させるためin vitroで使用することができる。
細菌株及び増殖条件
本明細書に開示される研究の大半は、ニューヨークの特殊外科病院(Hospital for Special Surgery)でヒト血液から得られたカルバペナム耐性シュードモナス・エルギノーサ臨床分離株CFS−1292(病理学及び臨床検査医学の教授であるLars Westblade博士により提供された)を用いて行われたが、市販の抗生物質耐性分離株を使用することもできる。他の全ての分離株は、アメリカンタイプカルチャーコレクション(「ATCC」)、デレルコレクション(d'Herelle collection)(「HER」)、BEIリソース(BEI Resources)(「HM」)又はニューヨークの特殊外科病院(「HSS」)のいずれかから得られた。分離株を、溶原培地(LB;Sigma-Aldrich)、カザミノ酸(CAA)培地(5g/Lカザミノ酸、Ameresco/VWR;5.2mM K2HPO4、Sigma-Aldrich;1mM MgSO4、Sigma-Aldrich)、100mM NaClを添加したCAA、又は2.5%ヒト血清(AB型、男性、プールしたもの;Sigma-Aldrich)を添加したCAAのいずれかで培養し、試験した。特に示されていない限り、全ての抗生物質及びタンパク質試薬(例えば、T4リゾチーム)をSigma-Aldrichから入手した。
全てのタンパク質を、全てのミクロウイルス科及びレビウイルス科のゲノムに関する注釈付きGenBankデータベースエントリにおいて同定した。各Chp群のペプチドのアクセッション番号を下記表1及び表2に示す。Blastp解析をuniprot.org/blast/で利用可能なUniProtサーバーを使用して行った。タンパク質二次構造予測を、www.compbio.dundee.ac.uk/jpred/indexで利用可能なJPRED4、及びwww.zhanglab.ccmb.med.umich.edu/I-TASSER/で利用可能なI−Tasserを用いて行った。系統発生解析を、www.genome.jp/tools-bin/clustalwで利用可能なClustalW多重配列アラインメントツール(Multiple Sequence Alignment tool)を用いて行った。予測される分子量及び等電点を、web.expasy.org/compute_pi/で利用可能なExPASy Resource Portalを用いて決定した。
米国臨床検査標準協議会(CLSI:Clinical and Laboratory Standards Institute)によって規定される標準微量液体希釈参照法(2015. Methods for Dilution Antimicrobial Susceptibility Tests for Bacteria That Grow Aerobically; Approved Standard-10th Edition. Clinical and Laboratory Standards Institute, Wayne, PA.)の修正を用いてMIC値を決定した。修正は、場合によっては、ミューラー・ヒントン・ブロスのCAA培地(NaClを含む又は含まない)又は2.5%ヒト血清を添加したCAAのいずれかによる置換えに基づくものであった。本明細書で使用される場合、MICは、対照と比較して細菌増殖の少なくとも80%を抑制するのに十分なペプチドの最小濃度である。
修正された微量液体希釈MIC法の変法(Ceri H et al., 1999. J Clin Microbiol 37:1771-1776、及びSchuch R et al., 2017. Antimicrob Agents Chemother 61)を用いてMBEC値を決定した。シュードモナス・エルギノーサ株ATCC17647の新鮮なコロニーをPBS(0.5マクファーランド単位)に懸濁し、0.2%グルコースを含むLBに1:100で希釈し、96ウェルCalgary Biofilm Device(Innovotech)の各ウェルに0.15mlのアリコートとして加えて、ポリカーボネートペグ上でのバイオフィルム形成のため37℃で24時間インキュベートした。バイオフィルムを洗浄し、TSBg中の各ペプチドの2倍希釈系列を用いて37℃で16時間処理した。処理後、ウェルを洗浄し、37℃で風乾し、0.05%クリスタルバイオレットで10分間染色し、33%酢酸で脱色した。抽出されたクリスタルバイオレットのOD600を決定した。各サンプルのMBEC値を、クリスタルバイオレットの定量(未処理対照との比較)によって評定されるバイオフィルムバイオマスの95%超を除去するのに必要な最小薬物濃度として決定した。T4ファージリゾチームを陰性対照として使用し、これは抗バイオフィルム活性を提供しない。
チェッカーボードアッセイは、微量液体希釈(CLSI 2015; and Moody J. 2010. Synergy testing: broth microdilution checkerboard and broth macrodilution methods, p 5.12.11-15.12.23. In Garcia LS (ed), Clinical Microbiology Procedures Handbook, vol 2)によるMIC決定のためのCLSI法の修正に基づく。チェッカーボードを、初めに、横軸に沿って各ウェルが同量の2倍希釈した抗生物質を含む96ウェルポリプロピレンマイクロタイタープレートの列を作成することによって構築した。別のプレートに、縦軸に沿って各ウェルが同量の2倍に希釈したペプチドを含む比較用の行を作成した。次いで、各列が一定量の抗生物質及びグラム陰性溶解素の倍加希釈物を含み、各行が一定量のグラム陰性溶解素及び抗生物質の倍加希釈物を含むように、ペプチド及び抗生物質の希釈物を組み合わせた。これにより、各ウェルはペプチド及び抗生物質の独自の組み合わせを含んでいた。細菌を、2.5%ヒト血清を含むCAA中1×105CFU/mLの濃度で各ウェルに加えた。次いで、単独の及び組み合わせた各作用物質のMICを、周囲空気中にて37℃で16時間の後に記録した。部分阻止濃度指数(FICI)の合計を各薬物について算出し、最小のFICIを用いて相乗作用を決定した。FICIを次のように計算した。FICI=FIC A+FIC B(ここで、FIC Aは組み合わせでの各抗生物質のMIC/単独での各抗生物質のMICであり、FIC Bは組み合わせでの各グラム陰性溶解素のMIC/単独での各グラム陰性溶解素のMICである)。組み合わせは、FICIが0.5以下である場合に相乗的、FICIが0.5超〜1未満である場合に強く相加的、FICIが1〜2未満である場合に相加的、及びFICIが2以上である場合に拮抗的とみなされる。アミカシン、アジスロマイシン、アズトレオナム、シプロフロキサシン、コリスチン、ホスホマイシン、ゲンタマイシン、イミペネム、ピペラシリン、リファンピシン及びトブラマイシンを含む11種類の異なる様々な抗生物質に対するChp2又はChp4のいずれかの組み合わせを含むCAA/Husにおいてシュードモナス・エルギノーサ株CFS−1292を用いる、チェッカーボードアッセイを行った。大半の組み合わせで0.5以下のFICI値が観察され、Chp2及びChp4が幅広い抗生物質と相乗作用する能力を示している(下記の表8を参照されたい)。これらの知見は、Chpペプチドが抗生物質の存在下で強力な抗菌活性を提供する可能性があることを示唆している。
ヒト赤血球の溶解によって放出されるヘモグロビンの量として、溶血活性を測定した(Lv Y et al, 2014. PLoS One 9:e86364)。簡潔に述べると、ヘパリンの入ったポリカーボネートチューブ内のプールした健常ドナー(BioreclamationIVT)から得られた3mlの新鮮ヒト血液細胞(hRBC)を1000×gにて4℃で5分間遠心分離した。得られた赤血球をリン酸緩衝生理食塩水(PBS)溶液(pH7.2)で3回洗浄し、30mlのPBS中に再懸濁した。50μl容量の赤血球溶液を、2倍希釈範囲(128μg/mL〜0.25μg/mL)の50μlの各グラム陰性溶解素(PBS中)と共に37℃で1時間の間インキュベートした。無傷赤血球を1000×gにて4℃で5分間の遠心分離によってペレット化し、上清を新たな96ウェルプレートに移した。ヘモグロビンの放出を、570nmでの光学密度(OD)における吸光度を測定することによってモニタリングした。最小溶血濃度を、目に見える溶解を示す最も低いペプチド濃度として決定した(これは、未処理の対照サンプルの5%以上のOD値をもたらす最小濃度に相当する)。0.1%Triton X−100、又はRR12、RR12極性及びRR12疎水性(Mohanram H. et al, 2016. Biopolymers 106:345-356)を含む既知の溶血活性を有する、並びにRI18(Lyu Y. et al., 2016. Sci Rep 6:27258)及びRR22を含む溶血活性の低い又は溶血活性のない一連の各抗微生物ペプチドのいずれかを用いて上記のように処理したPBS中のhRBCを含む追加の対照を使用した。
シュードモナス・エルギノーサ株CFS−1292の一晩培養物を、2.5%ヒト血清を含む新鮮なCAA培地(CAA/HuS)に1:00で希釈し、攪拌しながら37℃で2.5時間増殖させた。次いで、対数期細菌をCAA/HuSに1:100で希釈し、1μg/mL又は10μg/mLのいずれかの最終濃度でペプチドを添加した。ペプチドを添加しない対照培養物(すなわち、バッファー対照)を含めた。培養物を、通気しながら37℃でインキュベートし、1時間、3時間及び24時間の時点で、サンプルをCAA寒天プレート上での定量的プレーティングのため取り出した。
LB中で2.5時間増殖させたシュードモナス・エルギノーサ株CFS−1292のアリコートをPBSで洗浄し、PBS又は100%ヒト血清のいずれかに再懸濁して、最終濃度10μg/mLのペプチドChp2を用いて又はそれを用いずに室温にて15分間処理した。サンプルのサブセットを製造業者のプロトコルに従いLive/Dead Cell Viability Kit(ThermoFisher)を使用して染色し、微分干渉観察(DIC)顕微鏡及び蛍光顕微鏡により調べた。
グラム陰性細菌であるクラミジアに特異的に感染してこれを死滅させる、説明が十分になされていない或る特定のバクテリオファージ(クラミジアミクロウイルス科)の知識を持ち、これらの生物の公開されているゲノムを研究して、当初は新規な溶解素を同定することに注目していたが、溶解素様配列も先に記載されたアムリンに類似するいかなる配列も観察されなかった。クラミジアは、それらの構造において他の細菌と同じように豊富にはペプチドグリカン(溶解素の既知の標的)を利用しておらず、むしろクラミジアは、一般的に分裂時にのみペプチドグリカンを使用する。したがって、クラミジアファージの標的が何であるかという疑問が生じた。クラミジアファージが標的に侵入する機構は以前に知られていたものとは異なる可能性があること、またそれらの標的は異なり、グラム陰性細菌の外膜の主な構成要素であって外膜の溶解素による透過にとって障害であるリポ多糖(LPS)に焦点を当てている可能性があることが仮定された。
全てのChpペプチドを、米国ニュージャージー州のGenScriptにより、個別支払いで(N末端アセチル化(Ac)及びC末端アミド化(NH2))をキャッピングして合成した。GenScriptは、高速液体クロマトグラフィー(HPLC)及び質量分析(MS)により各ペプチドの純度を評定した。GenScriptはまた、全てのペプチドについて溶解性試験を行い、Vario MICRO Organic Elemental Analyzerを用いて正味ペプチド含有量(NPC%)を決定した。Chp5、Lvp1及びLvp2を除き、全てのペプチドは水溶性であり、これらを5mg/mL又は10mg/mLのいずれかの濃度で懸濁した。Chp5及びLvp1を、10mg/mLの濃度でDMSOに懸濁し、Lvp2を2mg/mLの濃度でDMSOに懸濁した。対照ペプチドRI18、RP−1、WLBU2、BAC3、GN−2amp、GN−3amp、GN−4amp、GN−6amp及びBac8cも上記のようにGenScriptで合成された。全ての追加ペプチドは、GenScript又はAnaspecのいずれかから購入した市販品であった。
39種類のChpペプチド(Chp2と同一のペプチド配列を有するChp3を除く)を合成し、抗菌感受性検査(AST:Antimicrobial Susceptibility Testing)形式で調べた。まず、2.5%のヒト血清を添加したCAA培地におけるカルバペナム耐性シュードモナス・エルギノーサ臨床分離株CFS−1292に対するMIC値を決定した(表4)。Chp1、Chp2、Chp4、Chp6、CPAR39(ジチオスレイトール(DTT)を含む)、Chp7、Chp8、Chp10、Chp11、Ecp1、Ecp2、Osp1、Spi1、Gkh3、Unp2、Unp5、Unp6、Ecp3、Ecp4、Lvp1、ALCES1、AVQ206、CDL907、AGT915及びSBR77を含む幾つかのペプチドは、0.25μg/mL〜4μg/mLの範囲の優れたMIC値を示した。ペプチドChp5、CPAR39(DTTなし)、Gkh1、Unp1、Spi2及びBdp1は活性が不十分であり、32μg/mL以上のMIC値を示した。CPAR39は、内部システイン残基を含み、活性に0.5mM DTTの存在を必要とすることから、この群の中では特有である。Chp5は、全ての正に帯電した残基が負電荷に変更されたChp4の誘導体として設計された。カチオン性AMPの研究に基づいて、抗細菌活性にカチオン性残基が必要であり、アニオン性残基によるカチオン性残基の除去は活性を除去すると予測される。したがって、Chp5(MIC>64μg/mL)は、Chp4(MIC=0.5μg/mL)の不活性変異体である。CPAR39(DTTなし)及びChp5をいずれも陰性対照として使用する。
抗バイオフィルム活性を評価するため、MBEC(最小バイオフィルム根絶濃度)値を、2%グルコースを添加したトリプシンソイブロス培地中でシュードモナス・エルギノーサ株ATCC17647により形成された成熟したバイオフィルムに対してChp2及びChp4のペプチドについて決定した。Chp2及びChp4のいずれについても0.25μg/mLのMBEC値が観察され(表7)、これは成熟したバイオフィルムを根絶する強力な能力と一致する。比較すると、活性が高いAMP(15)であるRI18の活性は4μg/mLと実質的に低いことが観察され、また活性が不十分な溶解素であるT4リゾチームの活性は64μg/mL超であることが観察された。
Chp2又はChp4のいずれかと11種類の様々な抗生物質との相乗作用を評価するため、Chp2と11種類の抗生物質及びChp4と11種類の抗生物質との各組み合わせを、2.5%ヒト血清を添加したCAA培地においてシュードモナス・エルギノーサ株CFS−1292を使用する標準的なチェッカーボードアッセイ形式で試験した。チェッカーボードアッセイでは、部分阻止濃度指数(FICI)値を計算する。0.5以下のFICI値は相乗作用と一致し、0.5超〜1の値は強い相加活性と一致し、1〜2の値は相加活性と一致し、2超の値は拮抗的とみなされる。表8に示すように、Chp2及びChp4の両方について、値は、Chpペプチドと抗生物質との間の相乗的(すなわち、0.5以下)又は強く相加的(すなわち、0.5超〜1)な相互作用のいずれかと一致していた。
侵襲的感染の治療に使用することができる抗微生物ペプチドは、赤血球に対して低毒性を示さなければならない(Oddo A. et al, 2017. Methods Mol Biol 1548:427-435)。溶血活性の可能性を調べるため、ヒト赤血球に対する最小溶血濃度(MHC)の決定に基づいて、赤血球を溶解するAMPの能力を測定する一般的な方法論(上記の材料及び方法に記載される)を用いた。試験した37種類のChpペプチドのうち33種類について、MHC値が128μg/mL超であり、溶血の証拠は認められなかった(表9)。Triton X100対照は、2%の開始濃度で試験し、MHCは0.007%で観察された。比較すると、RI18、R12、RR12p及びRR12hを含む既知の溶血活性を有する4種類のAMPでは、4μg/mL〜128μg/mLの範囲のMHC値が観察された。Triton X−100は、一般的に、溶血アッセイで陽性対照として使用される膜溶解性洗浄剤(membranolytic detergent)であり、2%〜0.007%の濃度の範囲にわたって溶血性であった。これらの知見は、ChpペプチドがAMPについて共通して観察されるin vitro毒性(すなわち、溶血活性)を有していないことを示唆している。この特性は、表1及び表2の残りのChpペプチドが、パーセント配列同一性、3D構造類似性及び電荷プロファイルに基づくだけでなく、本ペプチドが、溶菌剤としてグラム陰性細胞のエンベロープに対して非常に高特異的となる可能性が高いという期待に基づいている。
シュードモナス・エルギノーサ株CFS−1292に対するChp2及びChp4の活性を、材料及び方法に記載されているように2.5%ヒト血清を含むCAAを用いた時間−死滅形式で調べた。濃度1μg/mL及び10μg/mLのChp2又はChp4のいずれかによる処理後1時間、3時間及び24時間での細菌生存率の評定は、全ての場合において強力な殺菌活性と一致する数log倍(multi-log fold)の減少をもたらした(表10)。表10は、2.5%ヒト血清を添加したCAAにおける処理後のシュードモナス・エルギノーサ株CFS−1292に時間−死滅形式を用いて決定された、(未処理対照と比較した)コロニー形成単位の対数減少を示す。
Claims (34)
- 医薬組成物であって、
有効量の(i)配列番号1〜配列番号4、配列番号6〜配列番号26及び配列番号54〜配列番号66からなる群から選択されるアミノ酸配列を有する単離Chpペプチド若しくはその活性フラグメント、又は(ii)配列番号1〜配列番号4、配列番号6〜配列番号26及び配列番号54〜配列番号66の少なくとも1つのアミノ酸配列と80%の配列同一性を有し、少なくとも1つの種のグラム陰性細菌の増殖を阻害するか、その菌数を減少させるか、若しくはそれを死滅させる修飾Chpペプチドと、
薬学的に許容可能な担体と、
を含む、医薬組成物。 - 前記Chpペプチドが、配列番号1〜配列番号4、配列番号6〜配列番号26及び配列番号54〜配列番号66のいずれか1つのアミノ酸配列又はその活性フラグメントに対して少なくとも1つの非天然修飾を含む、請求項1に記載の医薬組成物。
- 前記非天然修飾が、置換修飾、N末端アセチル化修飾及びC末端アミド化修飾からなる群から選択される、請求項2に記載の医薬組成物。
- 前記アミノ酸配列が、配列番号1、配列番号2、配列番号3、配列番号4、配列番号6、配列番号7、配列番号8、配列番号10、配列番号11、配列番号16、配列番号18、配列番号19、配列番号20、配列番号22、配列番号23、配列番号24、配列番号25、配列番号54、配列番号55、配列番号56、配列番号57、配列番号59、配列番号60、配列番号62、配列番号63及び配列番号66からなる群から選択される、又はその活性フラグメントである、請求項1〜3のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- 前記アミノ酸配列が、配列番号2、配列番号4、配列番号6、配列番号16、配列番号18及び配列番号54からなる群から選択される、又はその活性フラグメントである、請求項1〜4のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- 溶液、懸濁液、エマルション、吸入用粉末、エアロゾル又はスプレーである、請求項1〜5のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- グラム陰性細菌の治療に適した1つ以上の抗生物質を更に含む、請求項1〜6のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- (i)配列番号1〜配列番号4、配列番号6〜配列番号26及び配列番号54〜配列番号66からなる群から選択されるアミノ酸配列を有するChpペプチド若しくはその活性フラグメント、又は(ii)配列番号1〜配列番号4、配列番号6〜配列番号26及び配列番号54〜配列番号66の少なくとも1つのアミノ酸配列と80%の配列同一性を有し、少なくとも1つの種のグラム陰性細菌の増殖を阻害するか、若しくはその菌数を減少させるか、若しくはそれを死滅させる修飾Chpペプチドをコードする核酸分子を含む、ベクター。
- (i)配列番号1〜配列番号4、配列番号6〜配列番号26及び配列番号54〜配列番号66からなる群から選択されるアミノ酸配列を有するChpペプチド若しくはその活性フラグメント、又は(ii)配列番号1〜配列番号4、配列番号6〜配列番号26及び配列番号54〜配列番号66の少なくとも1つのアミノ酸配列と80%の配列同一性を有し、少なくとも1つの種のグラム陰性細菌の増殖を阻害するか、又はその菌数を減少させるか、又はそれを死滅させる修飾Chpペプチドをコードする核酸分子を含み、該核酸が異種プロモーターに操作可能に連結される、組換え発現ベクター。
- 前記アミノ酸配列が、配列番号1、配列番号2、配列番号3、配列番号4、配列番号6、配列番号7、配列番号8、配列番号10、配列番号11、配列番号16、配列番号18、配列番号19、配列番号20、配列番号22、配列番号23、配列番号24、配列番号25、配列番号54、配列番号55、配列番号56、配列番号57、配列番号59、配列番号60、配列番号62、配列番号63及び配列番号66からなる群から選択される、又はその活性フラグメントである、請求項9に記載の組換え発現ベクター。
- 前記アミノ酸配列が、配列番号2、配列番号4、配列番号6、配列番号16、配列番号18及び配列番号54からなる群から選択される、又はその活性フラグメントである、請求項9又は10に記載の組換え発現ベクター。
- 前記核酸分子がcDNA配列である、請求項8〜11のいずれか一項に記載のベクター。
- 請求項8〜12のいずれか一項に記載のベクターを含む、単離宿主細胞。
- 配列番号1〜配列番号4、配列番号6〜配列番号26及び配列番号54〜配列番号66からなる群から選択されるアミノ酸配列若しくはその活性フラグメントを含むChpペプチドをコードする単離精製された核酸又はそれに相補的な配列を含む核酸。
- 前記Chpペプチドが、配列番号1〜配列番号4、配列番号6〜配列番号26及び配列番号54〜配列番号66のいずれか1つのアミノ酸配列又はその活性フラグメントに対して少なくとも1つの非天然修飾を含む、請求項14に記載の単離精製された核酸。
- 前記修飾が、置換修飾、N末端アセチル化修飾及びC末端アミド化修飾からなる群から選択される、請求項14又は15に記載の単離精製された核酸。
- 配列番号27〜配列番号30、配列番号32〜配列番号53及び配列番号68〜配列番号79からなる群から選択されるヌクレオチド配列を含む、単離精製されたDNA。
- 前記ヌクレオチド配列が、少なくとも1つの非天然修飾を含む、請求項17に記載の単離精製されたDNA。
- 前記非天然修飾が、突然変異、又はN末端アセチル化修飾若しくはC末端アミド化修飾をコードする核酸配列である、請求項17又は18に記載の単離精製されたDNA。
- 少なくとも1つの種のグラム陰性細菌の増殖を阻害するか、その菌数を減少させるか、又はそれを死滅させる方法であって、
前記細菌と、有効量の(i)配列番号1〜配列番号4、配列番号6〜配列番号26及び配列番号54〜配列番号66からなる群から選択されるアミノ酸配列、若しくはその活性フラグメントを含むChpペプチド、又は(ii)配列番号1〜配列番号4、配列番号6〜配列番号26及び配列番号54〜配列番号66の少なくとも1つのアミノ酸配列と80%の配列同一性を有する修飾Chpペプチドを含む組成物とを接触させることを含み、
前記Chpペプチド又は修飾Chpペプチドが前記少なくとも1つの種のグラム陰性細菌の増殖の阻害、その菌数の減少、又はその死滅に十分な期間にわたって溶菌活性を有する、方法。 - 前記アミノ酸配列が、配列番号1、配列番号2、配列番号3、配列番号4、配列番号6、配列番号7、配列番号8、配列番号10、配列番号11、配列番号16、配列番号18、配列番号19、配列番号20、配列番号22、配列番号23、配列番号24、配列番号25、配列番号54、配列番号55、配列番号56、配列番号57、配列番号59、配列番号60、配列番号62、配列番号63及び配列番号66からなる群から選択される、又はその活性フラグメントである、請求項20に記載の少なくとも1つの種のグラム陰性細菌の増殖を阻害するか、その菌数を減少させるか、又はそれを死滅させる方法。
- 前記アミノ酸配列が、配列番号2、配列番号4、配列番号6、配列番号16、配列番号18及び配列番号54からなる群から選択される、又はその活性フラグメントである、請求項20又は21に記載の少なくとも1つの種のグラム陰性細菌の増殖を阻害するか、その菌数を減少させるか、又はそれを死滅させる方法。
- 少なくとも1つの種のグラム陰性細菌によって引き起こされる細菌感染を予防又は治療する方法であって、細菌感染と診断された、そのリスクがある又はその症状を示す被験体に、請求項1〜7のいずれか一項に記載の医薬組成物を投与することを含む、方法。
- 前記グラム陰性細菌が、アシネトバクター・バウマンニ、シュードモナス・エルギノーサ、大腸菌、クレブシエラ・ニューモニエ、エンテロバクター・クロアカエ、サルモネラ属、淋菌及びシゲラ属からなる群から選択される、請求項20〜23のいずれか一項に記載の方法。
- 前記少なくとも1つの種のグラム陰性細菌がシュードモナス・エルギノーサである、請求項20〜24のいずれか一項に記載の方法。
- 前記細菌感染が局所又は全身の細菌感染である、請求項20〜25のいずれか一項に記載の方法。
- 前記グラム陰性細菌感染の治療に適した抗生物質を前記被験体に投与することを更に含む、請求項23〜26のいずれか一項に記載の方法。
- 前記抗生物質が、アジスロマイシン、アズトレオナム、ホスホマイシン、セフタジジム、セフェピム、セフォペラゾン、セフトビプロール、シプロフロキサシン、レボフロキサシン、アミノグリコシド、イミペネム、メロペネム、ドリペネム、ゲンタマイシン、トブラマイシン、アミカシン、ピペラシリン、チカルシリン、ペニシリン、リファンピシン、ポリミキシンB及びコリスチンの1つ以上から選択される、請求項27に記載の方法。
- 前記抗生物質が、アミカシン、アジスロマイシン、アズトレオナム、シプロフロキサシン、コリスチン、ホスホマイシン、ゲンタマイシン、イミペネム、ピペラシリン、リファンピシン及びトブラマイシンの1つ以上から選択される、請求項27又は28に記載の方法。
- 請求物1〜7に記載の医薬組成物を投与することが、前記抗生物質を単独で投与するよりも、前記グラム陰性細菌の増殖を阻害するか、その菌数を減少させるか、又はそれを死滅させる上でより効果的である、請求項27〜29のいずれか一項に記載の方法。
- 少なくとも1つの種のグラム陰性細菌によって引き起こされる細菌感染を予防又は治療する方法であって、
細菌感染と診断された、そのリスクがある又はその症状を示す被験体に、第1の量の請求項1〜7のいずれか一項に記載の医薬組成物と、第2の量のグラム陰性細菌感染の治療に適した抗生物質との組み合わせを同時投与することを含み、
前記第1及び第2の量が共に、前記細菌感染の予防又は治療に効果的である、方法。 - 前記抗生物質が、アジスロマイシン、アズトレオナム、ホスホマイシン、セフタジジム、セフェピム、セフォペラゾン、セフトビプロール、シプロフロキサシン、レボフロキサシン、アミノグリコシド、イミペネム、メロペネム、ドリペネム、ゲンタマイシン、トブラマイシン、アミカシン、ピペラシリン、チカルシリン、ペニシリン、リファンピシン、ポリミキシンB及びコリスチンの1つ以上から選択される、請求項31に記載の方法。
- 前記抗生物質が、アミカシン、アジスロマイシン、アズトレオナム、シプロフロキサシン、コリスチン、ホスホマイシン、ゲンタマイシン、イミペネム、ピペラシリン、リファンピシン及びトブラマイシンの1つ以上から選択される、請求項31又は32に記載の方法。
- 少なくとも1つの種のグラム陰性細菌によって引き起こされる細菌感染の治療に適した抗生物質の有効性を高める方法であって、
請求項1〜7のいずれか一項に記載の医薬組成物と組み合わせて前記抗生物質を同時投与することを含み、
前記組み合わせの投与が、前記抗生物質又は前記医薬組成物のいずれかを個別に投与するよりも、前記グラム陰性細菌の増殖を阻害するか、その菌数を減少させるか、又はそれを死滅させる上でより効果的である、方法。
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