JP2021509290A - 双方向活性化共刺激分子受容体及びその用途 - Google Patents
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Abstract
Description
chain Variable Fragment, scFv)を介して、細胞内シグナルCD3ζまたはFcεRIγのITAM(immunoreceptor tyrosine−based activation motifs)シグナル伝達を活性化する。ただし、第1世代のCAR受容体はT細胞の共刺激シグナルを欠いているため、T細胞は瞬間的な効果しか発揮できず、体内に短時間存在し、分泌されるサイトカインが少なくなる。
本発明の一つは、分離されたポリペプチドを関わり、それが、N末端からC末端まで順に下記のエレメントを含む:
任意的に含まれても良いシグナルペプチド、共刺激シグナル分子を活性化するポリペプチド(例えば共刺激シグナル分子の活性化一本鎖抗体又は共刺激シグナル分子のリガンド)、細胞外ヒンジ領域、膜貫通領域と細胞内共刺激シグナル分子。
(1)上記のシグナルペプチドは、膜タンパク質シグナルペプチドである;好ましくに、上記のシグナルペプチドは、CD8シグナルペプチド、CD28シグナルペプチドとCD4シグナルペプチドから選べられる一つ又は複数である;好ましくに、上記のシグナルペプチドは、CD8シグナルペプチドである;好ましくに、CD8シグナルペプチドのアミノ酸配列は、SEQ ID NO:1に示された;
(2)上記の共刺激シグナル分子の活性化一本鎖抗体は、CD137活性化一本鎖抗体、CD28活性化一本鎖抗体とCD40活性化一本鎖抗体から選べられる任意的な一つ又は複数である;上記の共刺激シグナル分子のリガンドは、CD137のリガンド、CD28のリガンドとCD40のリガンドから選べられる任意的な一つ又は複数である;
好ましくに、上記のCD137活性化一本鎖抗体のアミノ酸配列は、SEQ ID NO: 2に示された;
好ましくに、上記のCD28活性化一本鎖抗体のアミノ酸配列は、SEQ ID NO:
31に示された;
好ましくに、上記のCD40活性化一本鎖抗体のアミノ酸配列は、SEQ ID NO:
55に示された;
好ましくに、上記のCD137のリガンドは、4−1BBLである;
好ましくに、上記のCD28のリガンドは、CD80/CD86である;
好ましくに、上記のCD40のリガンドは、CD40Lである;
(3)上記の細胞外ヒンジ領域は、IgG4Fc CH2CH3ヒンジ領域、CD28ヒンジ領域とCD8ヒンジ領域から選べられる一つ又は複数である;
好ましくに、CD8ヒンジ領域である;
好ましくに、上記のCD8ヒンジ領域のアミノ酸配列は、SEQ ID NO: 3に示された;
好ましくに、IgG4Fc CH2CH3ヒンジ領域である;
好ましくに、上記のIgG4Fc CH2CH3ヒンジ領域のアミノ酸配列は、SEQ ID NO: 56に示された;
(4)上記の膜貫通領域は、CD28膜貫通領域、CD8膜貫通領域、CD3ζ膜貫通領
域、CD134膜貫通領域、CD137膜貫通領域、ICOS膜貫通領域とDAP10膜貫通領域から選べられる一つ又は複数である;好ましくに、上記の膜貫通領域は、CD28膜貫通領域である;好ましくに、上記のCD28膜貫通領域のアミノ酸配列は、SEQ
ID NO: 4に示された;
(5)上記の細胞内共刺激シグナル分子は、CD28細胞内ドメイン、CD134/OX40細胞内ドメイン、CD137/4−1BB細胞内ドメイン、LCK細胞内ドメイン、ICOS細胞内ドメインとDAP10細胞内ドメインから選べられる一つ又は複数である;好ましくに、上記の細胞内共刺激シグナル分子は、CD28細胞内ドメイン及び/又はCD137細胞内ドメインである;好ましくに、上記のCD28細胞内ドメインのアミノ酸配列は、SEQ ID NO: 5に示された;好ましくに、上記のCD137細胞内ドメインのアミノ酸配列は、SEQ ID NO: 6に示された。
任意的に含まれても良いCD8シグナルペプチド、CD137活性化一本鎖抗体、CD8細胞外ヒンジ領域、CD28膜貫通領域、CD28細胞内ドメイン及び/又はCD137細胞内ドメイン;
任意的に含まれても良いCD8シグナルペプチド、CD28活性化一本鎖抗体、CD8細胞外ヒンジ領域、CD28膜貫通領域、CD28細胞内ドメイン及び/又はCD137細胞内ドメイン;或いは
任意的に含まれても良いCD8シグナルペプチド、CD40活性化一本鎖抗体、IgG4Fc CH2CH3ヒンジ領域、CD28膜貫通領域、CD28細胞内ドメイン及び/又はCD137細胞内ドメイン。
本発明の一つ又は複数の実施の形態において、上記のポリペプチドは、図1A−2〜図1D−2に示された。
本発明の一つ又は複数の実施の形態において、上記のポリペプチドは、図1A−3〜図1D−3に示された。
SEQ ID NO: 32〜SEQ ID NO: 39のいずれか一つの配列に示された;或いは
SEQ ID NO: 57〜SEQ ID NO: 64のいずれか一つの配列に示された。
SEQ ID NO: 40〜SEQ ID NO: 47のいずれか一つの配列に示された;或いは
SEQ ID NO: 65〜SEQ ID NO: 72のいずれか一つの配列に示された。
beauty、frog prince、Tn5又はTyから選べられる転置因子を含有する;好ましくに、上記の組換え発現ベクターは、本発明のポリヌクレオチドとPS328bベクトルとを組み換えてなる組換えベクターである。
上記の第1組換えベクターは、本発明の組換えベクターであり、
上記の第2組換えベクターが、第1世代キメラ抗原受容体のコード配列を含有する;好ましくに、上記の第1世代キメラ抗原受容体は、メソセリン、Muc1又はEGFRを標的とする第1世代キメラ抗原受容体である;好ましくに、上記の第1世代キメラ抗原受容体のアミノ酸配列は、SEQ ID NO: 23、SEQ ID NO: 48又はSEQ ID NO: 73に示された;好ましくに、上記の第1世代キメラ抗原受容体の核酸配列は、SEQ ID NO: 24、SEQ ID NO: 49又はSEQ ID
NO: 74に示された;
好ましくに、上記の第2組換えベクターは、組み換えられたPNB328ベクトルである。
ただし、上記の「第1組換えベクター」と「第2組換えベクター」における「第1」和「第2」は、指し示されたものの違いを区別するためにのみ使用され、順番の意味はない。
それが位置する自然環境が変化したか、或いは物質が自然環境から分離されたか、またはその両方に当たる可能性がある。例えば、生きている動物に分離されていないあるポリヌクレオチドまたはポリペプチドが自然に存在する場合、この自然の状態から分離された高純度の同じポリヌクレオチドまたはポリペプチドは、「分離された」ものと呼ばれる。用語「分離の」または「分離された」は、人工または合成材料の混合を排除しなく、材料の活性に影響を及ぼさない他の不純な材料の存在も排除しない。
はAPCの第2シグナルを置き換えて役割を果たすことができる。
;イオン強度増強剤は、塩化ナトリウムを含むが、これに限定されない。
本発明において、上記の被験者は、ヒトなどの哺乳動物であってよい。
受容体との組み合わせで修飾されたT細胞が、EGFRが高発現される腫瘍細胞株を特異的に殺すことができ、かつEGFRの第1世代、第2世代CAR−Tより優れ、発現しない腫瘍細胞株に対しては殺傷効果もほとんどないか、まったくなく、高い効率と高い特異性を備える。本発明には、第1世代、第2世代CARの治療効果を維持する上に、CDV双方向共刺激分子活性化受容体に活性化されたT細胞は、自身のT細胞の第2シグナルを活性化でき、腫瘍特異的抗原が強いほど、第1シグナルCD3ζの活性化が強くなり、これに応じて、CD40細胞外活性化抗体に伝達されたT細胞の活性化に関連する第2シグナルも強くなる;それらは腫瘍の周りに集まり、継続的に周囲の非活性化T細胞を動員して活性化し、T細胞のカスケード的な下流シグナル伝達経路を活性化し、T細胞の活性化、増殖および生存を引き起こす。
1. CD8シグナルペプチドのアミノ酸配列(SEQ ID NO: 1)
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NO: 11)
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NO: 12)
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NO: 13)
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NO: 14)
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15)
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16)
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17)
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18)
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GACCCCTGAGGTCACGTGCGTGGTGGTGGACGTGAGCCAGGAAGACCCCGAGGTCCAGTTCAACTGGTACGTGGATGGCGTGGAGGTGCATAATGCCAAGACAAAGCCGCGGGAGGAGCAGTTCAACAGCACGTACCGTGTGGTCAGCGTCCTCACCGTCCTGCACCAGGACTGGCTGAACGGCAAGGAGTACAAGTGCAAGGTCTCCAACAAAGGCCTCCCGTCCTCCATCGAGAAAACCATCTCCAAAGCCAAAGGGCAGCCCCGAGAGCCACAGGTGTACACCCTGCCCCCATCCCAGGAGGAGATGACCAAGAACCAGGTCAGCCTGACCTGCCTGGTCAAAGGCTTCTACCCCAGCGACATCGCCGTGGAGTGGGAGAGCAATGGGCAGCCGGAGAACAACTACAAGACCACGCCTCCCGTGCTGGACTCCGACGGCTCCTTCTTCCTCTACAGCAGGCTAACCGTGGACAAGAGCAGGTGGCAGGAGGGGAATGTCTTCTCATGCTCCGTGATGCATGAGGCTCTGCACAACCACTACACACAGAAGAGCCTCTCCCTGTCTCTGGGTAAACCCTTTTGGGTGCTGGTGGTGGTTGGTGGAGTCCTGGCTTGCTATAGCTTGCTAGTAACAGTGGCCTTTATTATTTTCTGGGTGAGGAGTAAGAGGAGCAGGCTCCTGCACAGTGACTACATGAACATGACTCCCCGCCGCCCCGGGCCCACCCGCAAGCATTACCAGCCCTATGCCCCACCACGCGACTTCGCAGCCTATCGCTCC
ATGGCCTTACCAGTGACCGCCTTGCTCCTGCCGCTGGCCTTGCTGCTCCACGCCGCCAGGCCGAGCCAGGTGCAGCTGGTGCAGTCTGGGGCTGAGGTGAAGAAGCCTGGGGCCTCAGTGAAGGTCTCCTGCAAGGCTTCTGGATACACCTTCACCGGCTACTATATGCACTGGGTGCGACAGGCCCCTGGACAAGGGCTTGAGTGGATGGGATGGATCAACCCTGACAGTGGTGGCACAAACTATGCACAGAAGTTTCAGGGCAGGGTCACCATGACCAGGGACACGTCCATCAGCACAGCCTACATGGAGCTGAACAGGCTGAGATCTGACGACACGGCCGTGTATTACTGTGCGAGAGATCAGCCCCTAGGATATTGTACTAATGGTGTATGCTCCTACTTTGACTACTGGGGCCAGGGAACCCTGGTCACCGTCTCCTCAGGTGGAGGCGGTTCAGGCGGAGGTGGCAGCGGCGGTGGCGGGTCGGACATCCAGATGACCCAGTCTCCATCTTCCGTGTCTGCATCTGTAGGAGACAGAGTCACCATCACTTGTCGGGCGAGTCAGGGTATTTACAGCTGGTTAGCCTGGTATCAGCAGAAACCAGGGAAAGCCCCTAACCTCCTGATCTATACTGCATCCACTTTACAAAGTGGGGTCCCATCAAGGTTCAGCGGCAGTGGATCTGGGACAGATTTCACTCTCACCATCAGCAGCCTGCAACCTGAAGATTTTGCAACTTACTATTGTCAACAGGCTAACATTTTCCCGCTCACTTTCGGCGGAGGGACCAAGGTGGAGATCAAAGAGTCCAAATATGGTCCCCCATGCCCACCATGCCCAGCACCTGAGTTCCTGGGGGGACCATCAGTCTTCCTGTTCCCCCCAAAACCCAAGGACACTCTCATGATCTCCCGGACCCCTGAGGTCACGTGCGTGGTGGTGGACGTGAGCCAGGAAGACCCCGAGGTCCAGTTCAACTGGTACGTGGATGGCGTGGAGGTGCATAATGCCAAGACAAAGCCGCGGGAGGAGCAGTTCAACAGCACGTACCGTGTGGTCAGCGTCCTCACCGTC
CTGCACCAGGACTGGCTGAACGGCAAGGAGTACAAGTGCAAGGTCTCCAACAAAGGCCTCCCGTCCTCCATCGAGAAAACCATCTCCAAAGCCAAAGGGCAGCCCCGAGAGCCACAGGTGTACACCCTGCCCCCATCCCAGGAGGAGATGACCAAGAACCAGGTCAGCCTGACCTGCCTGGTCAAAGGCTTCTACCCCAGCGACATCGCCGTGGAGTGGGAGAGCAATGGGCAGCCGGAGAACAACTACAAGACCACGCCTCCCGTGCTGGACTCCGACGGCTCCTTCTTCCTCTACAGCAGGCTAACCGTGGACAAGAGCAGGTGGCAGGAGGGGAATGTCTTCTCATGCTCCGTGATGCATGAGGCTCTGCACAACCACTACACACAGAAGAGCCTCTCCCTGTCTCTGGGTAAACCCTTTTGGGTGCTGGTGGTGGTTGGTGGAGTCCTGGCTTGCTATAGCTTGCTAGTAACAGTGGCCTTTATTATTTTCTGGGTGAGGAGTAAGAGGAGCAGGCTCCTGCACAGTGACTACATGAACATGACTCCCCGCCGCCCCGGGCCCACCCGCAAGCATTACCAGCCCTATGCCCCACCACGCGACTTCGCAGCCTATCGCTCCAAACGGGGCAGAAAGAAGCTCCTGTATATATTCAAACAACCATTTATGAGACCAGTACAAACTACTCAAGAGGAAGATGGCTGTAGCTGCCGATTTCCAGAAGAAGAAGAAGGAGGATGTGAACTG
ATGGCCTTACCAGTGACCGCCTTGCTCCTGCCGCTGGCCTTGCTGCTCCACGCCGCCAGGCCGAGCCAGGTGCAGCTGGTGCAGTCTGGGGCTGAGGTGAAGAAGCCTGGGGCCTCAGTGAAGGTCTCCTGCAAGGCTTCTGGATACACCTTCACCGGCTACTATATGCACTGGGTGCGACAGGCCCCTGGACAAGGGCTTGAGTGGATGGGATGGATCAACCCTGACAGTGGTGGCACAAACTATGCACAGAAGTTTCAGGGCAGGGTCACCATGACCAGGGACACGTCCATCAGCACAGCCTACATGGAGCTGAACAGGCTGAGATCTGACGACACGGCCGTGTATTACTGTGCGAGAGATCAGCCCCTAGGATATTGTACTAATGGTGTATGCTCCTACTTTGACTACTGGGGCCAGGGAACCCTGGTCACCGTCTCCTCAGGTGGAGGCGGTTCAGGCGGAGGTGGCAGCGGCGGTGGCGGGTCGGACATCCAGATGACCCAGTCTCCATCTTCCGTGTCTGCATCTGTAGGAGACAGAGTCACCATCACTTGTCGGGCGAGTCAGGGTATTTACAGCTGGTTAGCCTGGTATCAGCAGAAACCAGGGAAAGCCCCTAACCTCCTGATCTATACTGCATCCACTTTACAAAGTGGGGTCCCATCAAGGTTCAGCGGCAGTGGATCTGGGACAGATTTCACTCTCACCATCAGCAGCCTGCAACCTGAAGATTTTGCAACTTACTATTGTCAACAGGCTAACATTTTCCCGCTCACTTTCGGCGGAGGGACCAAGGTGGAGATCAAAGAGTCCAAATATGGTCCCCCATGCCCACCATGCCCAGCACCTGAGTTCCTGGGGGGACCATCAGTCTTCCTGTTCCCCCCAAAACCCAAGGACACTCTCATGATCTCCCGGACCCCTGAGGTCACGTGCGTGGTGGTGGACGTGAGCCAGGAAGACCCCGAGGTCCAGTTCAACTGGTACGTGGATGGCGTGGAGGTGCATAATGCCAAGACAAAGCCGCGGGAGGAGCAGTTCAACAGCACGTACCGTGTGGTCAGCGTCCTCACCGTCCTGCACCAGGACTGGCTGAACGGCAAGGAGTACAAGTGCA
AGGTCTCCAACAAAGGCCTCCCGTCCTCCATCGAGAAAACCATCTCCAAAGCCAAAGGGCAGCCCCGAGAGCCACAGGTGTACACCCTGCCCCCATCCCAGGAGGAGATGACCAAGAACCAGGTCAGCCTGACCTGCCTGGTCAAAGGCTTCTACCCCAGCGACATCGCCGTGGAGTGGGAGAGCAATGGGCAGCCGGAGAACAACTACAAGACCACGCCTCCCGTGCTGGACTCCGACGGCTCCTTCTTCCTCTACAGCAGGCTAACCGTGGACAAGAGCAGGTGGCAGGAGGGGAATGTCTTCTCATGCTCCGTGATGCATGAGGCTCTGCACAACCACTACACACAGAAGAGCCTCTCCCTGTCTCTGGGTAAACCCTTTTGGGTGCTGGTGGTGGTTGGTGGAGTCCTGGCTTGCTATAGCTTGCTAGTAACAGTGGCCTTTATTATTTTCTGGGTGAAACGGGGCAGAAAGAAGCTCCTGTATATATTCAAACAACCATTTATGAGACCAGTACAAACTACTCAAGAGGAAGATGGCTGTAGCTGCCGATTTCCAGAAGAAGAAGAAGGAGGATGTGAACTGAGGAGTAAGAGGAGCAGGCTCCTGCACAGTGACTACATGAACATGACTCCCCGCCGCCCCGGGCCCACCCGCAAGCATTACCAGCCCTATGCCCCACCACGCGACTTCGCAGCCTATCGCTCC
CAGGTGCAGCTGGTGCAGTCTGGGGCTGAGGTGAAGAAGCCTGGGGCCTCAGTGAAGGTCTCCTGCAAGGCTTCTGGATACACCTTCACCGGCTACTATATGCACTGGGTGCGACAGGCCCCTGGACAAGGGCTTGAGTGGATGGGATGGATCAACCCTGACAGTGGTGGCACAAACTATGCACAGAAGTTTCAGGGCAGGGTCACCATGACCAGGGACACGTCCATCAGCACAGCCTACATGGAGCTGAACAGGCTGAGATCTGACGACACGGCCGTGTATTACTGTGCGAGAGATCAGCCCCTAGGATATTGTACTAATGGTGTATGCTCCTACTTTGACTACTGGGGCCAGGGAACCCTGGTCACCGTCTCCTCAGGTGGAGGCGGTTCAGGCGGAGGTGGCAGCGGCGGTGGCGGGTCGGACATCCAGATGACCCAGTCTCCATCTTCCGTGTCTGCATCTGTAGGAGACAGAGTCACCATCACTTGTCGGGCGAGTCAGGGTATTTACAGCTGGTTAGCCTGGTATCAGCAGAAACCAGGGAAAGCCCCTAACCTCCTGATCTATACTGCATCCACTTTACAAAGTGGGGTCCCATCAAGGTTCAGCGGCAGTGGATCTGGGACAGATTTCACTCTCACCATCAGCAGCCTGCAACCTGAAGATTTTGCAACTTACTATTGTCAACAGGCTAACATTTTCCCGCTCACTTTCGGCGGAGGGACCAAGGTGGAGATCAAAGAGTCCAAATATGGTCCCCCATGCCCACCATGCCCAGCACCTGAGTTCCTGGGGGGACCATCAGTCTTCCTGTTCCCCCCAAAACCCAAGGACACTCTCATGATCTCCCGGACCCCTGAGGTCACGTGCGTGGTGGTGGACGTGAGCCAGGAAGACCCCGAGGTCCAGTTCAACTGGTACGTGGATGGCGTGGAGGTGCATAATGCCAAGACAAAGCCGCGGGAGGAGCAGTTCAACAGCACGTACCGTGTGGTCAGCGTCCTCACCGTCCTGCACCAGGACTGGCTGAACGGCAAGGAGTACAAGTGCAAGGTCTCCAACAAAGGCCTCCCGTCCTCCATCGAGAAAACCATCTCCAAAGCCAAAGGGCAGCCCCGAGAGCCACAGGTGTACACCCTGCCCCCATCCCAGGAGGA
GATGACCAAGAACCAGGTCAGCCTGACCTGCCTGGTCAAAGGCTTCTACCCCAGCGACATCGCCGTGGAGTGGGAGAGCAATGGGCAGCCGGAGAACAACTACAAGACCACGCCTCCCGTGCTGGACTCCGACGGCTCCTTCTTCCTCTACAGCAGGCTAACCGTGGACAAGAGCAGGTGGCAGGAGGGGAATGTCTTCTCATGCTCCGTGATGCATGAGGCTCTGCACAACCACTACACACAGAAGAGCCTCTCCCTGTCTCTGGGTAAACCCTTTTGGGTGCTGGTGGTGGTTGGTGGAGTCCTGGCTTGCTATAGCTTGCTAGTAACAGTGGCCTTTATTATTTTCTGGGTGAGGAGTAAGAGGAGCAGGCTCCTGCACAGTGACTACATGAACATGACTCCCCGCCGCCCCGGGCCCACCCGCAAGCATTACCAGCCCTATGCCCCACCACGCGACTTCGCAGCCTATCGCTCC
CAGGTGCAGCTGGTGCAGTCTGGGGCTGAGGTGAAGAAGCCTGGGGCCTCAGTGAAGGTCTCCTGCAAGGCTTCTGGATACACCTTCACCGGCTACTATATGCACTGGGTGCGACAGGCCCCTGGACAAGGGCTTGAGTGGATGGGATGGATCAACCCTGACAGTGGTGGCACAAACTATGCACAGAAGTTTCAGGGCAGGGTCACCATGACCAGGGACACGTCCATCAGCACAGCCTACATGGAGCTGAACAGGCTGAGATCTGACGACACGGCCGTGTATTACTGTGCGAGAGATCAGCCCCTAGGATATTGTACTAATGGTGTATGCTCCTACTTTGACTACTGGGGCCAGGGAACCCTGGTCACCGTCTCCTCAGGTGGAGGCGGTTCAGGCGGAGGTGGCAGCGGCGGTGGCGGGTCGGACATCCAGATGACCCAGTCTCCATCTTCCGTGTCTGCATCTGTAGGAGACAGAGTCACCATCACTTGTCGGGCGAGTCAGGGTATTTACAGCTGGTTAGCCTGGTATCAGCAGAAACCAGGGAAAGCCCCTAACCTCCTGATCTATACTGCATCCACTTTACAAAGTGGGGTCCCATCAAGGTTCAGCGGCAGTGGATCTGGGACAGATTTCACTCTCACCATCAGCAGCCTGCAACCTGAAGATTTTGCAACTTACTATTGTCAACAGGCTAACATTTTCCCGCTCACTTTCGGCGGAGGGACCAAGGTGGAGATCAAAGAGTCCAAATATGGTCCCCCATGCCCACCATGCCCAGCACCTGAGTTCCTGGGGGGACCATCAGTCTTCCTGTTCCCCCCAAAACCCAAGGACACTCTCATGATCTCCCGGACCCCTGAGGTCACGTGCGTGGTGGTGGACGTGAGCCAGGAAGACCCCGAGGTCCAGTTCAACTGGTACGTGGATGGCGTGGAGGTGCATAATGCCAAGACAAAGCCGCGGGAGGAGCAGTTCAACAGCACGTACCGTGTGGTCAGCGTCCTCACCGTCCTGCACCAGGACTGGCTGAACGGCAAGGAGTACAAGTGCAAGGTCTCCAACAAAGGCCTCCCGTCCTCCATCGAGAAAACCATCTCCAAAGCCAAAGGGCAGCCCCGAGAGCCACAGGTGTACACCCTGCCCCCATCCCAGGAGGAGATGACCAAGAACCAGGTCAGCCTGACCTGCCTGGTCAAAGGCTTCTACCCCAGCGACATCGCCGTGGAGTGGGAGAGCAATGGGCAGCCGGAGAACAACTACAAGACCACGCCTCCCGTGCTGGACTCCGACGGCTCCTTCTTCCTCTACAGCAGGCTAACCGTGGACAAGAGCAGGTGGCAGGAGGGGAATGTCTTCTCATGCTCCGTGATGCATGAGGCTCTGCACAACCACTACAC
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CAGGTGCAGCTGGTGCAGTCTGGGGCTGAGGTGAAGAAGCCTGGGGCCTCAGTGAAGGTCTCCTGCAAGGCTTCTGGATACACCTTCACCGGCTACTATATGCACTGGGTGCGACAGGCCCCTGGACAAGGGCTTGAGTGGATGGGATGGATCAACCCTGACAGTGGTGGCACAAACTATGCACAGAAGTTTCAGGGCAGGGTCACCATGACCAGGGACACGTCCATCAGCACAGCCTACATGGAGCTGAACAGGCTGAGATCTGACGACACGGCCGTGTATTACTGTGCGAGAGATCAGCCCCTAGGATATTGTACTAATGGTGTATGCTCCTACTTTGACTACTGGGGCCAGGGAACCCTGGTCACCGTCTCCTCAGGTGGAGGCGGTTCAGGCGGAGGTGGCAGCGGCGGTGGCGGGTCGGACATCCAGATGACCCAGTCTCCATCTTCCGTGTCTGCATCTGTAGGAGACAGAGTCACCATCACTTGTCGGGCGAGTCAGGGTATTTACAGCTGGTTAGCCTGGTATCAGCAGAAACCAGGGAAAGCCCCTAACCTCCTGATCTATACTGCATCCACTTTACAAAGTGGGGTCCCATCAAGGTTCAGCGGCAGTGGATCTGGGACAGATTTCACTCTCACCATCAGCAGCCTGCAACCTGAAGATTTTGCAACTTACTATTGTCAACAGGCTAACATTTTCCCGCTCACTTTCGGCGGAGGGACCAAGGTGGAGATCAAAGAGTCCAAATATGGTCCCCCATGCCCACCATGCCCAGCACCTGAGTTCCTGGGGGGACCATCAGTCTTCCTGTTCCCCCCAAAACCCAAGGACACTCTCATGATCTCCCGGACCCCTGAGGTCACGTGCGTGGTGGTGGACGTGAGCCAGGAAGACCCCGAGGTCCAGTTCAACTGGTACGTGGATGGCGTGGAGGTGCATAATGCCAAGACAAAGCCGCGGGAGGAGCAGTTCAACAGCACGTACCGTGTGGTCAGCGTCCTCACCGTCCTGCACCAGGACTGGCTGAACGGCAAGGAGTACAAGTGCAAGGTCTCCAACAAAGGCCTCCCGTCCTCCATCGAGAAAACCATCTCCAAAGCCAAAGGGCAGCCCCGAGAGCCACAGGTGTACACCCTGCCCCCATCCCAGGAGGAGATGACCAAGAACCAGGTCAGCCTGACCTGCCTGGTCAAAGGCTTCTACCCCAGCGACATCGCCGTGGAGTGGGAGAGCAATGGGCAGCCGGAGAACAACTACAAGACCACGCCTCCCGTGCTGGACTCCGACGGCTCCTTCTTCCTCTACAGCAGGCTAACCGTGGACAAGAGCAGGTGGCAGGAGGGGAATGTCTTCTCATGCTCCGTGATGCATGAGGCTCTGCACAACCACTACACACAGAAGAGCCTCTCCCTGTCTCTGGGTAAACCCTTTTGGGTGCTGGTGGTGGTTGGTGGAGTCCTGGCTTGCTATAGCTTGCTAGTAACAGTGGCCTTTATTATTTTCTGGGTGAGGAGTAAGAGGAGCAGGCTCCTGCACAGTGACTACATGAACATGACTCCCCGCCGCCCCGGGCCCACCCGCAAGCATTACCAGCCCTATGCCCCACCACGCGACTTCGCAGCCTATCGCTCCAA
ACGGGGCAGAAAGAAGCTCCTGTATATATTCAAACAACCATTTATGAGACCAGTACAAACTACTCAAGAGGAAGATGGCTGTAGCTGCCGATTTCCAGAAGAAGAAGAAGGAGGATGTGAACTG
CAGGTGCAGCTGGTGCAGTCTGGGGCTGAGGTGAAGAAGCCTGGGGCCTCAGTGAAGGTCTCCTGCAAGGCTTCTGGATACACCTTCACCGGCTACTATATGCACTGGGTGCGACAGGCCCCTGGACAAGGGCTTGAGTGGATGGGATGGATCAACCCTGACAGTGGTGGCACAAACTATGCACAGAAGTTTCAGGGCAGGGTCACCATGACCAGGGACACGTCCATCAGCACAGCCTACATGGAGCTGAACAGGCTGAGATCTGACGACACGGCCGTGTATTACTGTGCGAGAGATCAGCCCCTAGGATATTGTACTAATGGTGTATGCTCCTACTTTGACTACTGGGGCCAGGGAACCCTGGTCACCGTCTCCTCAGGTGGAGGCGGTTCAGGCGGAGGTGGCAGCGGCGGTGGCGGGTCGGACATCCAGATGACCCAGTCTCCATCTTCCGTGTCTGCATCTGTAGGAGACAGAGTCACCATCACTTGTCGGGCGAGTCAGGGTATTTACAGCTGGTTAGCCTGGTATCAGCAGAAACCAGGGAAAGCCCCTAACCTCCTGATCTATACTGCATCCACTTTACAAAGTGGGGTCCCATCAAGGTTCAGCGGCAGTGGATCTGGGACAGATTTCACTCTCACCATCAGCAGCCTGCAACCTGAAGATTTTGCAACTTACTATTGTCAACAGGCTAACATTTTCCCGCTCACTTTCGGCGGAGGGACCAAGGTGGAGATCAAAGAGTCCAAATATGGTCCCCCATGCCCACCATGCCCAGCACCTGAGTTCCTGGGGGGACCATCAGTCTTCCTGTTCCCCCCAAAACCCAAGGACACTCTCATGATCTCCCGGACCCCTGAGGTCACGTGCGTGGTGGTGGACGTGAGCCAGGAAGACCCCGAGGTCCAGTTCAACTGGTACGTGGATGGCGTGGAGGTGCATAATGCCAAGACAAAGCCGCGGGAGGAGCAGTTCAACAGCACGTACCGTGTGGTCAGCGTCCTCACCGTCCTGCACCAGGACTGGCTGAACGGCAAGGAGTACAAGTGCAAGGTCTCCAACAAAGGCCTCCCGTCCTCCATCGAGAAAACCATCTCCAAAGCCAAAGGGCAGCCCCGAGAGCCACAGGTGTACACCCTGCCCCCATCCCAGGAGGAGATGACCAAGAACCAGGTCAGCCTGACCTGCCTGGTCAAAGGCTTCTACCCCAGCGACATCGCCGTGGAGTGGGAGAGCAATGGGCAGCCGGAGAACAACTACAAGACCACGCCTCCCGTGCTGGACTCCGACGGCTCCTTCTTCCTCTACAGCAGGCTAACCGTGGACAAGAGCAGGTGGCAGGAGGGGAATGTCTTCTCATGCTCCGTGATGCATGAGGCTCTGCACAACCACTACACACAGAAGAGCCTCTCCCTGTCTCTGGGTAAACCCTTTTGGGTGCTGGTGGTGGTTGGTGGAGTCCTGGCTTGCTATAGCTTGCTAGTAACAGTGGCCTTTATTATTTTCTGGGTGAAACGGGGCAGAAAGAAGCTCCTGTATATATTCAAACAACCATTTATGAGACCAGTACAAACTACTCAAGAGGAAGATGGCTGTAGCTGCCGATTTCCAGAAGAAGAAGAAGGAGGATGTGAACTGAGGAGTAAGAGGAGCAGGCTCCTGCACAGTGACTACATGAACATGACTCCCCGCCGCCCCGGGCCCACCCGCAAGCATT
ACCAGCCCTATGCCCCACCACGCGACTTCGCAGCCTATCGCTCC
ATMALPVTALLLPLALLLHAARPSDILLTQSPVILSVSPGERVSFSCRASQSIGTNIHWYQQRTNGSPRLLIKYASESISGIPSRFSGSGSGTDFTLSINSVESEDIADYYCQQNNNWPTTFGAGTKLELKGGGGSGGGGSGGGGSQVQLKQSGPGLVQPSQSLSITCTVSGFSLTNYGVHWVRQSPGKGLEWLGVIWSGGNTDYNTPFTSRLSINKDNSKSQVFFKMNSLQSNDTAIYYCARALTYYDYEFAYWGQGTLVTVSSFVPVFLPAKPTTTPAPRPPTPAPTIASQPLSLRPEACRPAAGGAVHTRGLDFACDIYIWAPLAGTCGVLLLSLVITLYCNHRSKRSRLLHSDYMNMTPRRPGPTRKHYQPYAPPRDFAAYRSRVKFSRSADAPAYQQGQNQLYNELNLGRREEYDVLDKRRGRDPEMGGKPRRKNPQEGLYNELQKDKMAEAYSEIGMKGERRRGKGHDGLYQGLSTATKDTYDALHMQALPPR
GCCACCATGGCCTTACCAGTGACCGCCTTGCTCCTGCCGCTGGCCTTGCTGCTCCACGCCGCCAGGCCGAGCGACATCTTGCTGACTCAGTCTCCAGTCATCCTGTCTGTGAGTCCAGGAGAAAGAGTCAGTTTCTCCTGCAGGGCCAGTCAGAGTATTGGCACAAACATACACTGGTATCAGCAAAGAACAAATGGTTCTCCAAGGCTTCTCATAAAGTATGCTTCTGAGTCTATCTCTGGGATCCCTTCCAGGTTTAGTGGCAGTGGATCAGGGACAGATTTTACTCTTAGCATCAACAGTGTGGAGTCTGAAGATATTGCAGATTATTACTGTCAACAAAATAATAACTGGCCAACCACGTTCGGTGCTGGGACCAAGCTGGAGCTGAAAGGTGGAGGCGGTTCAGGCGGAGGTGGCAGCGGCGGTGGCGGGTCGCAGGTGCAGCTGAAGCAGTCAGGACCTGGCCTAGTGCAGCCCTCACAGAGCCTGTCCATCACCTGCACAGTCTCTGGTTTCTCATTAACTAACTATGGTGTACACTGGGTTCGCCAGTCTCCAGGAAAGGGTCTGGAGTGGCTGGGAGTGATATGGAGTGGTGGAAACACAGACTATAATACACCTTTCACATCCAGACTGAGCATCAACAAGGACAATTCCAAGAGCCAAGTTTTCTTTAAAATGAACAGTCTGCAATCTAATGACACAGCCATATATTACTGTGCCAGAGCCCTCACCTACTATGATTACGAGTTTGCTTACTGGGGCCAAGGGACTCTGGTCACTGTCTCTTCGTTCGTGCCGGTCTTCCTGCCAGCGAAGCCCACCACGACGCCAGCGCCGCGACCACCAACACCGGCGCCCACCATCGCGTCGCAGCCCCTGTCCCTGCGCCCAGAGGCGTGCCGGCCAGCGGCGGGGGGCGCAGTGCACACGAGGGGGCTGGACTTCGCCTGTGATATCTACATCTGGGCGCCCCTGGCCGGGACTTGTGGGGTCCTTCTCCTGTCACTGGTTATCACCCTTTACTGCAACCACAGGAGTAAGAGGAGCAGGCTCCTGCACAGTGACTACATGAACATGACTCCCCGCCGCCCCGGGCCCACCCGCAAGCATTACCAGCCCTATGCCCCACCACGCGACTTCGCAGCCTATCGCTCCAGAGTGAAGTTCAGCAGGAGCGCAGACGCCCCCGCGTACCAGCAGGGCCAGAACCAGCTCTATAACGAGCTCAATCTAG
GACGAAGAGAGGAGTACGATGTTTTGGACAAGAGACGTGGCCGGGACCCTGAGATGGGGGGAAAGCCGAGAAGGAAGAACCCTCAGGAAGGCCTGTACAATGAACTGCAGAAAGATAAGATGGCGGAGGCCTACAGTGAGATTGGGATGAAAGGCGAGCGCCGGAGGGGCAAGGGGCACGATGGCCTTTACCAGGGTCTCAGTACAGCCACCAAGGACACCTACGACGCCCTTCACATGCAGGCCCTGCCCCCTCGCTGATAA
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ACCTCCTGATCTATACTG
GATGGTGAGAGTGAAATC
CACTGCCGCTGAACCTTGATG
1. 人工的に137DCR1の遺伝子(SEQ ID NO: 15)、137DCR2の遺伝子(SEQ ID NO: 16)、137DCR3の遺伝子(SEQ ID NO: 17)、meso G1 CAR遺伝子(SEQ ID NO: 24)及びmeso G2 CAR遺伝子(SEQ ID NO: 26)を合成し、それらの構造模式図は、それぞれに図1A−1、図1B−1、図1C−1、図1E−1と図1F−1に示された。合成された五つの遺伝子を、それぞれにPNB328ベクトルとPS328bベクトルのEcoRIとSalI制限サイトの間に挿入し、
pNB328ベクトルは、EF1αプロモーター、PBトランスポゾンなどのエレメントを含み、pNB328ベクトルの構築について、WO2017054647A1の実施例2を参照する。PS328bは、上海捷瑞生物工学有限会社に人工的に合成された配列であり、その配列は、SEQ ID NO:27に示された。
構築された組換えプラスミドは、それぞれに、pNB328−meso G1 CARプラスミド、pNB328−meso G2 CARプラスミド、PS328b 137DCR1プラスミド、PS328b 137DCR2プラスミドとPS328b 137DCR3プラスミドと呼ばれる。構築された組換えプラスミドは、外来遺伝子を運び、それらを宿主細胞のゲノムに組み込むことができる。
1. 人工的に28DCR1の遺伝子(SEQ ID NO: 40)、28DCR2の遺伝子(SEQ ID NO: 41)、28DCR3の遺伝子(SEQ ID NO:
42)、Muc1 G1 CAR遺伝子(SEQ ID NO: 49)及びMuc1
G2 CAR遺伝子(SEQ ID NO: 50)を合成し、それらの構造模式図は、それぞれに図1A−2、図1B−2、図1C−2、図1E−2と図1F−2に示された。合成された五つの遺伝子を、それぞれにPNB328ベクトルとPS328bベクトルのEcoRIとSalI制限サイトの間に挿入し、
pNB328ベクトルは、EF1αプロモーター、PBトランスポゾンなどのエレメントを含み、pNB328ベクトルの構築について、WO2017054647A1の実施例2を参照する。PS328bは、上海捷瑞生物工学有限会社に人工的に合成された配列で
あり、その配列は、SEQ ID NO:27に示された。
構築された組換えプラスミドは、それぞれに、pNB328−Muc1 G1 CARプラスミド、pNB328−Muc1 G2 CARプラスミド、PS328b 28DCR1プラスミド、PS328b 28DCR2プラスミドとPS328b 28DCR3プラスミドと呼ばれる。構築された組換えプラスミドは、外来遺伝子を運び、それらを宿主細胞のゲノムに組み込むことができる。
1. 人工的に40DCR1の遺伝子(SEQ ID NO: 65)、40DCR2の遺伝子(SEQ ID NO: 66)、40DCR3の遺伝子(SEQ ID NO:
67)、EGFR G1 CAR遺伝子(SEQ ID NO: 74)及びEGFR
G2 CAR遺伝子(SEQ ID NO: 75)を合成し、それらの構造模式図は、それぞれに図1A−3、図1B−3、図1C−3、図1F−3と図1D−3に示された。合成された五つの遺伝子を、それぞれにpNB328ベクトルとPS328bベクトルのEcoRIとSalI制限サイトの間に挿入し、
pNB328ベクトルは、EF1αプロモーター、PBトランスポゾンなどのエレメントを含み、pNB328ベクトルの構築について、WO2017054647A1の実施例2を参照する。PS328bは、上海捷瑞生物工学有限会社に人工的に合成された配列であり、その配列は、SEQ ID NO:27に示された。
構築された組換えプラスミドは、それぞれに、pNB328−EGFR G1 CARプラスミド、pNB328−EGFR G2 CARプラスミド、PS328b 40DCR1プラスミド、PS328b 40DCR2プラスミドとPS328b 40DCR3プラスミドと呼ばれる。構築された組換えプラスミドは、外来遺伝子を運び、それらを宿主細胞のゲノムに組み込むことができる。
(1)九つの組換え細胞の構築
末梢血単核細胞(PBMC)を2〜4時間付着培養し、その中に、付着していない浮遊細胞は、ナイーブT細胞である。浮遊細胞を15ml遠心チューブに集め、1200rpmで3分間遠心し、上清を捨てた;「生理食塩水を加え、1200rpmで3分間遠心し、生理食塩水を捨てる」というステップを3回繰り返した。
1.5mlの遠心チューブ8本を取り、各チューブに5×106個の上記細胞を加え、それぞれにa、b、c、d、e、f、g、hの番号を付け、1200rpmで3分間遠心し、上清を捨て、エレクトロポレーションキット(Lonza製)を用意し、各チューブに100ulの比率でエレクトロポレーション試薬を加え、ただし、
チューブaにpNB328−meso G1 CARプラスミド8μgを添加し、
チューブbにpNB328−meso G2 CARプラスミド8μgを添加し、
チューブcにPS328b 137DCR1プラスミドとpNB328−meso G1
CARプラスミド各4μgを添加し、
チューブdにPS328b 137DCR2プラスミドとpNB328−meso G1
CARプラスミド各4μgを添加し、
チューブeにPS328b 137DCR3プラスミドとpNB328−meso G1
CARプラスミド各4μgを添加し、
チューブfにPS328b 137DCR1プラスミド 8μgを添加し、
チューブgにPS328b 137DCR2プラスミド 8μgを添加し、
チューブhにPS328b 137DCR3プラスミド 8μgを添加し、
上記の8本のチューブをそれぞれ再懸濁し、均一まで混合し、混合液を得た。
各混合液をエレクトロポレーションカップに移し、それをエレクトロポレーターに入れ、必要な手順を選択し、電気ショックを実行した;キットにおけるマイクロピペットを使用し、エレクトロポレーションされた細胞懸濁液を、培養液(2%FBSを含むAIM−V培養液)を含む6ウェルプレートに移し、均一まで混合して、37°C、5%CO2でインキュベートし、6時間後、刺激因子IL−2とmeso/anti−CD28を加え、37℃、5%CO2で3〜4日間培養し、T細胞の成長状況を観察した。これにより、それぞれにpNB328−meso G1 CAR、pNB328−meso G2 CAR、pNB328−meso G1 CAR−137DCR1、pNB328−meso
G1 CAR−137DCR2、pNB328−meso G1 CAR−137DCR3、PS328b 137DCR1、PS328b 137DCR2とPS328b 137DCR3遺伝子を発現する組換えT細胞を得、順に、組換え細胞meso G1 CAR、組換え細胞meso G2 CAR、組換え細胞meso G1 CAR−137DCR1、組換え細胞meso G1 CAR−137DCR2和組換え細胞meso
G1 CAR−137DCR3、組換え細胞137DCR1、組換え細胞137DCR2及び組換え細胞137DCR3と呼ばれる。
なお、別の遠心チューブ(番号i)を取り、5×106個の細胞を加え、1200rpmで3分間遠心し、上清を捨て、エレクトロポレーションキット(Lonza製)を用意し、100ulの比率でエレクトロポレーション試薬を加え、8μgのコントロールプラスミド(PNB328)を加え、前記に記載された方法で、コントロールT細胞を構築し、Mock Tと呼ばれる。
[1]mesoG1 CARまたはmeso G2 CAR遺伝子の発現をウエスタンブロットで検出
上記の組換え細胞meso G1 CAR、meso G2 CAR、meso G1 CAR−137DCR1、meso G1CAR−137DCR2、meso G1 CAR−137DCR3およびMock−T細胞をそれぞれに収集し、生理食塩水で2回洗浄し、
160μlの細胞溶解液を加え、氷上に10分間置いた;細胞が完全に溶解した後、12000 rpm、4℃で10分間遠心し、上清を回収した。40μlの5×ローディングバッファー(loading Buffer)を加え、100℃で10分間加熱してから、氷上に5分間置いた。
CD3ζ抗体(abcamから購入)、GAPDH抗体(Beyotimeから購入)、HRPヤギ抗マウス二次抗体(Jacksonから購入)を使用し、前記の構築された組換え細胞におけるCD3ζの発現をウエスタンブロットなどで検出し、結果は、図2A−1に示された。
結果としては、いずれか構築された組換えT細胞において、CD3ζが高度に発現した。[2]RT−PCRで137DCR1−3遺伝子の発現を検出
組換え細胞のmeso G1 CAR、meso G2 CAR、meso G1 CAR−137DCR1、meso G1 CAR−137DCR2、meso G1 CAR−137DCR3とMock−TのゲノムDNA(キット法)を、それぞれに抽出し、実験手順は、キットに添付されている説明書を参照した。
各組換え細胞のDNA濃度を測定し、137DCR遺伝子の発現レベルを蛍光リアルタイム定量PCRにより検出した反応は:95℃、15秒;95℃、5秒;60℃、15秒の40サイクルを行った。
PCR反応系(20μl)は以下の通り:
Taqman:10μl
CD137−F: 0.4μl
CD137−R: 0.4μl
Cd137−probe: 0.2μl
Actin mix: 1μl
H2O:7μl
プライマーの配列は次のとおり:
CD137−F:CGAGTCACCATATCAGTA (SEQ ID NO:28)
CD137−R:CGAAGTACCAGTCATAATTC (SEQ ID NO:29)
Taqman:5’FAM−CCTCGCACAGTAATATACAGCCGT−Trama(SEQ ID NO:30)
結果は、図2B−1に示された。結果としては、組換え細胞meso G1 CAR−137DCR1、meso G1 CAR−137DCR2、meso G1 CAR−137DCR3細胞において、137DCR1、137DCR2または137DCR3遺伝子の発現量が高いことを示した。
(1)九つの組換え細胞の構築
末梢血単核細胞(PBMC)を2〜4時間付着培養し、その中に、付着していない浮遊細胞は、ナイーブT細胞である。浮遊細胞を15ml遠心チューブに集め、1200rpmで3分間遠心し、上清を捨てた;「生理食塩水を加え、1200rpmで3分間遠心し、生理食塩水を捨てる」というステップを3回繰り返した。
1.5mlの遠心チューブ8本を取り、各チューブに5×106個の上記細胞を加え、それぞれにa、b、c、d、e、f、g、hの番号を付け、1200rpmで3分間遠心し、上清を捨て、エレクトロポレーションキット(Lonza製)を用意し、各チューブに100ulの比率でエレクトロポレーション試薬を加え、ただし、
チューブaにpNB328−Muc1 G1 CARプラスミド8μgを添加し、
チューブbにpNB328−Muc1 G2 CARプラスミド8μgを添加し、
チューブcにPS328b 28DCR1プラスミドとpNB328−Muc1 G1 CARプラスミド各4μgを添加し、
チューブdにPS328b 28DCR2プラスミドとpNB328−Muc1 G1 CARプラスミド各4μgを添加し、
チューブeにPS328b 28DCR3プラスミドとpNB328−Muc1 G1 CARプラスミド各4μgを添加し、
チューブfにPS328b 28DCR1プラスミド 8μgを添加し、
チューブgにPS328b 28DCR2プラスミド 8μgを添加し、
チューブhにPS328b 28DCR3プラスミド 8μgを添加し、
上記の8本のチューブをそれぞれ再懸濁し、均一まで混合し、混合液を得た。
各混合液をエレクトロポレーションカップに移し、それをエレクトロポレーターに入れ、必要な手順を選択し、電気ショックを実行した;キットにおけるマイクロピペットを使用し、エレクトロポレーションされた細胞懸濁液を、培養液(2%FBSを含むAIM−V培養液)を含む6ウェルプレートに移し、均一まで混合して、37°C、5%CO2でインキュベートし、6時間後、刺激因子IL−2とMuc1/anti−CD28を加え、37℃、5%CO2で3〜4日間培養し、T細胞の成長状況を観察した。これにより、それぞれにpNB328−Muc1 G1 CAR、pNB328−Muc1 G2 CAR、pNB328−Muc1 G1 CAR−28DCR1、pNB328−Muc1 G1 CAR−28DCR2、pNB328−Muc1 G1 CAR−28DCR3、
PS328b 28DCR1、PS328b 28DCR2とPS328b 28DCR3遺伝子を発現する組換えT細胞を得、順に、組換え細胞Muc1 G1 CAR、組換え細胞Muc1 G2 CAR、組換え細胞Muc1 G1 CAR−28DCR1、組換え細胞Muc1 G1 CAR−28DCR2和組換え細胞Muc1 G1 CAR−28DCR3、組換え細胞28DCR1、組換え細胞28DCR2及び組換え細胞28DCR3と呼ばれる。
なお、別の遠心チューブ(番号i)を取り、5×106個の細胞を加え、1200rpmで3分間遠心し、上清を捨て、エレクトロポレーションキット(Lonza製)を用意し、100ulの比率でエレクトロポレーション試薬を加え、8μgのコントロールプラスミド(PNB328)を加え、前記に記載された方法で、コントロールT細胞を構築し、Mock Tと呼ばれる。
[1]Muc1 G1 CARまたはMuc1 G2 CAR遺伝子の発現をウエスタンブロットで検出
上記の組換え細胞Muc1 G1 CAR、Muc1 G2 CAR、Muc1 G1 CAR−28DCR1、Muc1 G1CAR−28DCR2、Muc1 G1 CAR−28DCR3およびMock−T細胞をそれぞれに収集し、生理食塩水で2回洗浄し、160μlの細胞溶解液を加え、氷上に10分間置いた;細胞が完全に溶解した後、12000 rpm、4℃で10分間遠心し、上清を回収した。40μlの5×ローディングバッファー(loading Buffer)を加え、100℃で10分間加熱してから、氷上に5分間置いた。
CD3ζ抗体(abcamから購入)、GAPDH抗体(Beyotimeから購入)、HRPヤギ抗マウス二次抗体(Jacksonから購入)を使用し、前記の構築された組換え細胞におけるCD3ζの発現をウエスタンブロットなどで検出し、結果は、図2A−2に示された。
結果としては、いずれか構築された組換えT細胞において、CD3ζが高度に発現した。[2]RT−PCRで28DCR1−3遺伝子の発現を検出
組換え細胞のMuc1 G1 CAR、Muc1 G2 CAR、Muc1 G1 CAR−28DCR1、Muc1 G1 CAR−28DCR2、Muc1 G1 CAR−28DCR3とMock−TのゲノムDNA(キット法)を、それぞれに抽出し、実験手順は、キットに添付されている説明書を参照した。
各組換え細胞のDNA濃度を測定し、28DCR遺伝子の発現レベルを蛍光リアルタイム定量PCRにより検出した反応は:95℃、15秒;95℃、5秒;60℃、15秒の40サイクルを行った。
PCR反応系(20μl)は以下の通り:
Taqman:10μl
CD28−F: 0.4μl
CD28−R: 0.4μl
CD28−probe: 0.2μl
Actin mix: 1μl
H2O:7μl
プライマーの配列は次のとおり:
CD28−F:GCTTCTGGATACACCTTC (SEQ ID NO:51)CD28−R:CCTTGAACTTCTCATTATAGTTAG (SEQ ID NO:52)
Taqman:5’FAM−AATACATCCAATCCACTCAAGCC−Trama(SEQ ID NO:53)
結果は、図2B−2に示された。結果としては、組換え細胞Muc1 G1 CAR−28DCR1、Muc1 G1 CAR−28DCR2、Muc1 G1 CAR−28D
CR3細胞において、28DCR1、28DCR2または28DCR3遺伝子の発現量が高いことを示した。
(1)九つの組換え細胞の構築
末梢血単核細胞(PBMC)を2〜4時間付着培養し、その中に、付着していない浮遊細胞は、ナイーブT細胞である。浮遊細胞を15ml遠心チューブに集め、1200rpmで3分間遠心し、上清を捨てた;「生理食塩水を加え、1200rpmで3分間遠心し、生理食塩水を捨てる」というステップを3回繰り返した。
1.5mlの遠心チューブ8本を取り、各チューブに5×106個の上記細胞を加え、それぞれにa、b、c、d、e、f、g、hの番号を付け、1200rpmで3分間遠心し、上清を捨て、エレクトロポレーションキット(Lonza製)を用意し、各チューブに100ulの比率でエレクトロポレーション試薬を加え、ただし、
チューブaにpNB328−EGFR G1 CARプラスミド8μgを添加し、
チューブbにpNB328−EGFR G2 CARプラスミド8μgを添加し、
チューブcにPS328b 40DCR1プラスミドとpNB328−EGFR G1 CARプラスミド各4μgを添加し、
チューブdにPS328b 40DCR2プラスミドとpNB328−EGFR G1 CARプラスミド各4μgを添加し、
チューブeにPS328b 40DCR3プラスミドとpNB328−EGFR G1 CARプラスミド各4μgを添加し、
チューブfにPS328b 40DCR1プラスミド 8μgを添加し、
チューブgにPS328b 40DCR2プラスミド 8μgを添加し、
チューブhにPS328b 40DCR3プラスミド 8μgを添加し、
上記の8本のチューブをそれぞれ再懸濁し、均一まで混合し、混合液を得た。
各混合液をエレクトロポレーションカップに移し、それをエレクトロポレーターに入れ、必要な手順を選択し、電気ショックを実行した;キットにおけるマイクロピペットを使用し、エレクトロポレーションされた細胞懸濁液を、培養液(2%FBSを含むAIM−V培養液)を含む6ウェルプレートに移し、均一まで混合して、37°C、5%CO2でインキュベートし、6時間後、刺激因子IL−2とEGFR/anti−CD28を加え、37℃、5%CO2で3〜4日間培養し、T細胞の成長状況を観察した。これにより、それぞれにpNB328−EGFR G1 CAR、pNB328−EGFR G2 CAR、pNB328−EGFR G1 CAR−40DCR1、pNB328−EGFR G1 CAR−40DCR2、pNB328−EGFR G1 CAR−40DCR3、PS328b 40DCR1、PS328b 40DCR2とPS328b 40DCR3遺伝子を発現する組換えT細胞を得、順に、組換え細胞EGFR G1 CAR、組換え細胞EGFR G2 CAR、組換え細胞EGFR G1 CAR−40DCR1、組換え細胞EGFR G1 CAR−40DCR2和組換え細胞EGFR G1 CAR−40DCR3、組換え細胞40DCR1、組換え細胞40DCR2及び組換え細胞40DCR3を呼ばれる。
なお、別の遠心チューブ(番号j)を取り、5×106個の細胞を加え、1200rpmで3分間遠心し、上清を捨て、エレクトロポレーションキット(Lonza製)を用意し、100ulの比率でエレクトロポレーション試薬を加え、8μgのコントロールプラスミド(PNB328)を加え、前記に記載された方法で、コントロールT細胞を構築し、Mock Tと呼ばれる。
[1]EGFR G1 CARまたはEGFR G2 CAR遺伝子の発現をウエスタンブロットで検出
上記の組換え細胞EGFR G1 CAR、EGFR G2 CAR、EGFR G1 CAR−40DCR1、EGFR G1CAR−40DCR2、EGFR G1 CAR−40DCR3およびMock−T細胞をそれぞれに収集し、生理食塩水で2回洗浄し、160μlの細胞溶解液を加え、氷上に10分間置いた;細胞が完全に溶解した後、12000 rpm、4℃で10分間遠心し、上清を回収した。40μlの5×ローディングバッファー(loading Buffer)を加え、100℃で10分間加熱してから、氷上に5分間置いた。
CD3ζ抗体(abcamから購入)、GAPDH抗体(Beyotimeから購入)、HRPヤギ抗マウス二次抗体(Jacksonから購入)を使用し、前記に構築された五つの組換え細胞におけるCD3ζの発現をウエスタンブロットなどで検出し、結果は、図2A−3に示された。
結果としては、いずれか構築された五つの組換えT細胞において、CD3ζが高度に発現した。
[2]RT−PCRで40DCR遺伝子の発現を検出
組換え細胞のEGFR G1 CAR、EGFR G2 CAR、EGFR G1 CAR−40DCR1、EGFR G1 CAR−40DCR2、EGFR G1 CAR−40DCR3とMock−TのゲノムDNA(キット法)を、それぞれに抽出し、実験手順は、キットに添付されている説明書を参照した。
各組換え細胞のDNA濃度を測定し、40DCR遺伝子の発現レベルを蛍光リアルタイム定量PCRにより検出した反応は:95℃、15秒;95℃、5秒;60℃、15秒の40サイクルを行った。
PCR反応系(20μl)は以下の通り:
Taqman:10μl
CD40−F: 0.4μl
CD40−R: 0.4μl
CD40−probe: 0.2μl
Actin mix: 1μl
H2O:7μl
プライマーの配列は次のとおり:
CD40−F:ACCTCCTGATCTATACTG (SEQ ID NO:76)CD40−R:GATGGTGAGAGTGAAATC(SEQ ID NO:77)
Taqman:5’FAM−CACTGCCGCTGAACCTTGATG−Trama(SEQ ID NO:78)
結果は、図2B−3に示された。結果としては、組換え細胞EGFR G1 CAR−40DCR1、EGFR G1 CAR−40DCR2、EGFR G1 CAR−40DCR3細胞において、40DCR遺伝子の発現量が高いことを示した。
1.実験サンプル、試薬、機器
実施例2−(1)で得られた組換え細胞137DCR1、137DCR2、137DCR
3とMock T。
50ml遠心チューブに2%FBSを含むPBS(1ml Hyclone FBS +
49ml PBS)を調製した;10xBD Perm / WashTMバッファーをddH2Oで10倍に希釈し、氷上に置いた;Hoechst33342原液をddH2Oで1:100の比率で作業用液に希釈した(1μl/ test)。
低温遠心機(4℃予冷)。
2.実験方法
実験中、すべての試薬を氷上に置いた。
具体的な手順は次のとおり:
(1)1x106−2x106個の上記の各細胞を1.5ml遠心チューブに集め、2%FBSを含む適量のPBSを加え、5000rpm、4℃で5分間遠心し、上清を捨てた;
(2)100μlの固定液/透過処理溶液で細胞を十分に再懸濁し、動作が穏やかに、4℃で20分間固定・透過処理を行った;
(3)1mlの使用濃度のPerm / WashTMバッファーを加え、均一まで混合し、7000rpm、4℃で5分間遠心分離し、上清を捨て、洗浄を1回繰り返した;
(4)100μlの使用濃度のPerm / WashTMバッファーで細胞を再懸濁した。2〜3μlのKi−67−APC抗体を加え、暗所で4℃で30分間インキュベートした;
(5)1mlの使用濃度のPerm / WashTMバッファーを加え、均一まで混合し、7000rpm、4℃で5分間遠心分離し、上清を捨て、洗浄を1回繰り返した;
(6)100μlの使用濃度のPerm / WashTMバッファーで細胞を再懸濁した。1μlの使用濃度のHoechst 33342を加え、氷上で15分間インキュベートした;
(7)400μlの使用濃度のPerm / WashTMバッファーを追加し、均一まで混合し、機器で検測した。
3.実験結果
結果は、図3A−1から3D−1に示された。
結果としては、Mock Tの増殖速度が最も遅く、137DCR1の増殖速度がやや遅く、137DCR2の増殖速度がやや速く、137DCR3の増殖速度が最も速かった。
1.実験サンプルと試薬
実施例2−(1)で得られた組換え細胞meso G1 CAR、meso G2 CAR、meso G1 CAR−137DCR2とMock T。
CellTiter−Glo(R) Luminescent Cell Viability Assay,Promega,Cat.# G7570。
2.実験方法
(1)96ウェルの白色プレートを準備し、培養8日目の上記の各細胞を取り、各ウェルに細胞を含むAIM−V培地100μLを加えた。
(2)バックグラウンド蛍光値を得るために、細胞を含まないブランクコントロールを準備した。
(3)試験しようとするコンプレックスをウェルプレートに加え、インキュベーターで30分間インキュベートした。
(4)100μLのCellTiter−Glo試薬を加え、シェーカーで2分間混合し、室温で10分間インキュベートし、読み取った。
(5)培養8日目、9日目、10日目には、上記の手順で毎日実行した。
3.実験結果
図4−1に示された。
結果としては、Mock Tの増殖速度が最も遅く、meso G1 CARの増殖速度がやや遅く、meso G2 CARの増殖速度がやや速く、meso G1 CAR−137DCR2の増殖速度が最も速かった。
1.実験サンプルと試薬
実施例2−(2)で得られた組換え細胞Muc1 G1 CAR、Muc1 G2 CAR、Muc1 G1 CAR−28DCR2、28DCR1、28DCR2、28DCR
3とMock T。
CellTiter−Glo(R) Luminescent Cell Viability Assay,Promega,Cat.# G7570。
2.実験方法
(1)96ウェルの白色プレートを準備し、培養8日目の上記の各細胞を取り、各ウェルに細胞を含むAIM−V培地100μLを加えた。
(2)バックグラウンド蛍光値を得るために、細胞を含まないブランクコントロールを準備した。
(3)試験しようとするコンプレックスをウェルプレートに加え、インキュベーターで30分間インキュベートした。
(4)100μLのCellTiter−Glo試薬を加え、シェーカーで2分間混合し、室温で10分間インキュベートし、読み取った。
(5)培養8日目、9日目、10日目には、上記の手順で毎日実行した。
3.実験結果
それぞれに、図3−2と図4−2に示された。
図3−2によって、Mock Tの増殖速度が最も遅く、いずれかの28DCRの増殖速度が速いことを示している。
図4−2によって、Mock Tの増殖速度が最も遅く、Muc1 G1 CARの増殖速度がやや遅く、Muc1 G2 CARの増殖速度がやや速く、Muc1 G1 CAR−28DCR2の増殖速度が最も速かった。
1.実験サンプルと試薬
実施例2−(3)で得られた組換え細胞EGFR G1 CAR、EGFR G2 CAR、EGFR G1 CAR−40DCR2、40DCR1、40DCR2、40DCR3とMock T。
CellTiter−Glo(R) Luminescent Cell Viability Assay,Promega,Cat.# G7570。
2.実験方法
(1)96ウェルの白色プレートを準備し、培養8日目の上記の各細胞を取り、各ウェルに細胞を含むAIM−V培地100μLを加えた。
(2)バックグラウンド蛍光値を得るために、細胞を含まないブランクコントロールを準備した。
(3)試験しようとするコンプレックスをウェルプレートに加え、インキュベーターで30分間インキュベートした。
(4)100μLのCellTiter−Glo試薬を加え、シェーカーで2分間混合し、室温で10分間インキュベートし、読み取った。
(5)培養8日目、9日目、10日目には、上記の手順で毎日実行した。
3.実験結果
それぞれに、図3−3と図4−3に示された。
図3−3によって、Mock Tの増殖速度が最も遅く、いずれかの40DCRの増殖速度が速いことを示している。
図4−3によって、Mock Tの増殖速度が最も遅く、EGFR G1 CARの増殖速度がやや遅く、EGFR G2 CARの増殖速度がやや速く、EGFR G1 CAR−40DCR2の増殖速度が最も速かった。
1.実験サンプル
実施例2−(1)で得られた組換え細胞137DCR1,137DCR2,137DCR
3, meso G1 CAR、meso G2 CAR、meso G1 CAR−137DCR3とMock T。
2.実験方法
上記の各細胞を個別に収集し、カウント後、1.5ml EPチューブに1×106細胞/チューブを加え、PBSで2回洗浄し、1200rpmで5分間遠心分離し、それぞれに、2μlのアイソタイプコントロール抗体IgG1−PE、蛍光フローサイトメトリー抗体である抗CD137、アイソタイプコントロール(IgG1FITC + IgG1PC5 + IgG1PE)、(抗CD45RO−PC5、抗CD62L−FITC、抗CCR7−PE)を加え、沈殿物を軽くフリックし、均一まで混合し、暗所で室温で30分間インキュベートし、PBSで1回洗浄し、400μlのPBSを加えて細胞をフローサイトメトリー用チューブに移し、機器で検測した。
3.実験結果
図5A−1〜5D−1、図6A−1〜6D−1、図7A−1〜7D−1、および図8A−1〜8D−1に示された。ただし:
図5A−1〜5D−1には、137DCR1、137DCR2、および137DCR3の3つの単一トランスフェクト細胞を示した;CD137表現型は、Mock Tより大幅に改善された。
図6A−1〜6D−1には、Mock T、meso G1 CAR、meso G2 CAR、meso G1 CAR−137DCR2のCD137表現型を示した;他の3つのグループと比較すると、meso G1 CAR−137DCR2は大幅に改善された。
図7A−1〜7D−1には、Mock T、meso G1 CAR、meso G2 CAR、meso G1 CAR−137DCR2のCD45RO表現型を示し、細胞の活性化の程度について、すべての細胞は大量に活性化された。
図8A−1〜8D−1には、Mock T、meso G1 CAR、meso G2 CAR、meso G1 CAR−137DCR2の記憶T表現型を示した;他の3つのグループと比較すると、meso G1 CAR−137DCR2が、記憶Tの形成を促進できる。
1.実験サンプル
実施例2−(2)で得られた組換え細胞Muc1 G1 CAR、Muc1 G2 CAR、Muc1 G1 CAR−28DCR3、28DCR1、28DCR2、28DCR
3とMock T。
2.実験方法
上記の各細胞を個別に収集し、カウント後、1.5ml EPチューブに1×106細胞/チューブを加え、PBSで2回洗浄し、1200rpmで5分間遠心分離し、それぞれに、2μlのアイソタイプコントロール抗体IgG1−PE、蛍光フローサイトメトリー抗体である抗CD137、アイソタイプコントロール(IgG1FITC + IgG1PC5 + IgG1PE)、(抗CD45RO−PC5、抗CD62L−FITC、抗CCR7−PE)を加え、沈殿物を軽くフリックし、均一まで混合し、暗所で室温で30分間インキュベートし、PBSで1回洗浄し、400μlのPBSを加えて細胞をフローサイトメトリー用チューブに移し、機器で検測した。
3.実験結果
図5A−2〜5D−2、図6A−2〜6D−2、図7A−2〜7D−2、および図8A−2〜8D−2に示された。ただし:
図5A−2〜5D−2には、28DCR1、28DCR2、および28DCR3の3つの
単一トランスフェクト細胞を示した;CD137表現型は、Mock Tより大幅に改善された。
図6A−2〜6D−2には、Mock T、Muc1 G1 CAR、Muc1 G2 CAR、Muc1 G1 CAR−28DCR2のCD137表現型を示した;他の3つのグループと比較すると、Muc1 G1 CAR−28DCR2は大幅に改善された。図7A−2〜7D−2には、Mock T、Muc1 G1 CAR、Muc1 G2 CAR、Muc1 G1 CAR−28DCR2のCD45RO表現型を示し、細胞の活性化の程度について、すべての細胞は大量に活性化された。
図8A−2〜8D−2には、Mock T、Muc1 G1 CAR、Muc1 G2 CAR、Muc1 G1 CAR−28DCR2の記憶T表現型を示した;他の3つのグループと比較すると、Muc1 G1 CAR−28DCR2が、記憶Tの形成を促進できる。
1.実験サンプル
実施例2−(3)で得られた組換え細胞EGFR G1 CAR、EGFR G2 CAR、EGFR G1 CAR−40DCR3、40DCR1,40DCR2,40DCR
3とMock T。
2.実験方法
上記の各細胞を個別に収集し、カウント後、1.5ml EPチューブに1×106細胞/チューブを加え、PBSで2回洗浄し、1200rpmで5分間遠心分離し、それぞれに、2μlのアイソタイプコントロール抗体IgG1−PE、蛍光フローサイトメトリー抗体である抗CD137、アイソタイプコントロール(IgG1FITC + IgG1PC5 + IgG1PE)、(抗CD45RO−PC5、抗CD62L−FITC、抗CCR7−PE)を加え、沈殿物を軽くフリックし、均一まで混合し、暗所で室温で30分間インキュベートし、PBSで1回洗浄し、400μlのPBSを加えて細胞をフローサイトメトリー用チューブに移し、機器で検測した。
3.実験結果
図5A−3〜5D−3、図6A−3〜6D−3、図7A−3〜7D−3、および図8A−3〜8D−3に示された。ただし:
図5A−3〜5D−3には、40DCR1、40DCR2、および40DCR3の3つの単一トランスフェクト細胞を示した;CD137表現型は、Mock Tより大幅に改善された;
図6A−3〜6D−3には、Mock T、EGFR G1 CAR、EGFR G2 CAR、EGFR G1 CAR−40DCR2のCD137表現型を示した;他の3つのグループと比較すると、EGFR G1 CAR−40DCR2は大幅に改善された;図7A−3〜7D−3には、Mock T、EGFR G1 CAR、EGFR G2 CAR、EGFR G1 CAR−40DCR2のCD45RO表現型を示し、細胞の活性化の程度について、すべての細胞は大量に活性化された;
図8A−3〜8D−3には、Mock T、EGFR G1 CAR、EGFR G2 CAR、EGFR G1 CAR−40DCR2の記憶T表現型を示した;他の3つのグループと比較すると、EGFR G1 CAR−40DCR2が、記憶Tの形成を促進できる。
1.実験サンプル
エフェクター細胞:実施例2−(1)で得られた組換え細胞meso G1 CAR、meso G2 CAR、meso G1 CAR−137DCR1、meso G1 CAR−137DCR3とMock T。
ターゲット細胞:子宮頸がん細胞Hela、卵巣がん細胞SK−OV−3(どちらもATCC、American Culture Collectionから購入)。
2.実験方法
MHCクラスIタイピングが一致するエフェクター細胞とターゲット細胞を選択し、リアルタイムラベルフリー細胞機能アナライザー(RTCA)を使用し、上記の細胞の生体外殺傷活性を検測し、具体的な手順は次のとおり:
(1)ゼロ調整:50μlのDMEMまたは1640培地を各ウェルに加え、それを機器に入れ、ステップ1を選択し、ゼロを調整した;
(2)ターゲット細胞のプレーティング:子宮頸がん細胞Helaと卵巣がん細胞SK−OV−3を、それぞれに1ウェルあたり104細胞/50μlで検出電極を含むプレートに広げ、数分間置き、細胞が安定した後に、それを機器に入れ、ステップ2を開始し、細胞を培養した;
(3)エフェクター細胞の添加:ターゲット細胞を24時間培養した後、ステップ2を一時停止し、1ウェルあたり50μlでエフェクター細胞を加え、フェクター/ターゲット比をそれぞれに8:1と4:1に設定し(どちらの腫瘍細胞も104個)、プラスミドが導入されないMock T細胞をコントロールとし、ステップ3を開始し、24時間共培養を継続し、細胞増殖曲線を観察した。
2.実験結果
図9A−1〜9D−1に示された。
結果としては、Mock Tが腫瘍細胞に対して最も弱い殺傷効果を持ち、meso G1 CARが腫瘍細胞に対してやや弱い殺傷効果を持ち、meso G2 CARが腫瘍細胞に対してやや強い殺傷効果を持ち、meso G1 CAR−137DCR1とmeso G1 CAR−137DCR3が腫瘍細胞に対して最も強い殺傷効果を持つ。
1.実験サンプル
エフェクター細胞:実施例2−(2)で得られた組換え細胞Muc1 G1 CAR、Muc1 G2 CAR、Muc1 G1 CAR−28DCR1、Muc1 G1 CAR−28DCR3、28DCR1、28DCR2及び28DCR3とMock T。
ターゲット細胞:子宮頸がん細胞Hela、卵巣がん細胞SK−OV−3(どちらもATCC、American Culture Collectionから購入)。
2.実験方法
MHCクラスIタイピングが一致するエフェクター細胞とターゲット細胞を選択し、リアルタイムラベルフリー細胞機能アナライザー(RTCA)を使用し、上記の細胞の生体外殺傷活性を検測し、具体的な手順は次のとおり:
(1)ゼロ調整:50μlのDMEMまたは1640培地を各ウェルに加え、それを機器に入れ、ステップ1を選択し、ゼロを調整した;
(2)ターゲット細胞のプレーティング:子宮頸がん細胞Helaと卵巣がん細胞SK−OV−3を、それぞれに1ウェルあたり104細胞/50μlで検出電極を含むプレートに広げ、数分間置き、細胞が安定した後に、それを機器に入れ、ステップ2を開始し、細胞を培養した;
(3)エフェクター細胞の添加:ターゲット細胞を24時間培養した後、ステップ2を一時停止し、1ウェルあたり50μlでエフェクター細胞を加え、フェクター/ターゲット比をそれぞれに8:1と4:1に設定し(どちらの腫瘍細胞も104個)、プラスミドが導入されないMock T細胞をコントロールとし、ステップ3を開始し、24時間共培
養を継続し、細胞増殖曲線を観察した。
2.実験結果
図9A−2〜9D−2に示された。
結果としては、Mock Tが腫瘍細胞に対して最も弱い殺傷効果を持ち、Muc1 G1 CARが腫瘍細胞に対してやや弱い殺傷効果を持ち、Muc1 G2 CARが腫瘍細胞に対してやや強い殺傷効果を持ち、Muc1 G1 CAR−28DCR1とMuc1 G1 CAR−28DCR3が腫瘍細胞に対して最も強い殺傷効果を持つ。
1.実験サンプル
エフェクター細胞:実施例2−(3)で得られた組換え細胞EGFR G1 CAR、EGFR G2 CAR、EGFR G1 CAR−40DCR1、EGFR G1 CAR−40DCR3、40DCR1、40DCR2、40DCR3とMock T。
ターゲット細胞:子宮頸がん細胞Hela、卵巣がん細胞SK−OV−3(どちらもATCC、American Culture Collectionから購入)。
2.実験方法
MHCクラスIタイピングが一致するエフェクター細胞とターゲット細胞を選択し、リアルタイムラベルフリー細胞機能アナライザー(RTCA)を使用し、上記の細胞の生体外殺傷活性を検測し、具体的な手順は次のとおり:
(1)ゼロ調整:50μlのDMEMまたは1640培地を各ウェルに加え、それを機器に入れ、ステップ1を選択し、ゼロを調整した;
(2)ターゲット細胞のプレーティング:子宮頸がん細胞Helaと卵巣がん細胞SK−OV−3を、それぞれに1ウェルあたり104細胞/50μlで検出電極を含むプレートに広げ、数分間置き、細胞が安定した後に、それを機器に入れ、ステップ2を開始し、細胞を培養した;
(3)エフェクター細胞の添加:ターゲット細胞を24時間培養した後、ステップ2を一時停止し、1ウェルあたり50μlでエフェクター細胞を加え、フェクター/ターゲット比をそれぞれに8:1と4:1に設定し(どちらの腫瘍細胞も104個)、プラスミドが導入されないMock T細胞をコントロールとし、ステップ3を開始し、24時間共培養を継続し、細胞増殖曲線を観察した。
2.実験結果
図9A−3〜9D−3に示された。
結果としては、Mock Tが腫瘍細胞に対して最も弱い殺傷効果を持ち、EGFR G1 CARが腫瘍細胞に対してやや弱い殺傷効果を持ち、EGFR G2 CARが腫瘍細胞に対してやや強い殺傷効果を持ち、EGFR G1 CAR−40DCR1とEGFR G1 CAR−40DCR3が腫瘍細胞に対して最も強い殺傷効果を持つ。
1.実験サンプル
実施例2−(1)で得られた組換え細胞meso G1 CAR、meso G2 CAR、meso G1 CAR−137DCR1とMock T。
2.実験方法
1. 96ウェルプレートを5μg/ mlメソセリン抗原でコーティングし、4°Cで一晩コーティングし、PBSで3回洗浄し、各サンプルの1x105細胞を加え、24時間培養し、細胞上清を収集した。BDTMCBA Human Th1 / Th2 Cytokine Kit IIを使用し、メソセリン抗原に刺激されたmeso CAR−T細胞のサイトカイン分泌状況を検出した。
具体的な手順は次のとおり:
(1)ヒトのIL−2、IL−4、IL−6、IL−10、TNF、IFN−γキャプチャー磁気ビーズを混合し、渦励振盪でキャプチャー磁気ビーズを混合し、各チューブに50μlの混合されたキャプチャー磁気ビーズを添加した;
(2)50μlのヒトTh1/Th2サイトカイン標準液(倍加希釈、5000pg/ml、2500pg/ml、1250pg/ml、625pg/ml、312.5pg/ml、156pg/ml、80pg/ml、40pg/ml、20pg/ml、0pg/ml)と50μlの試験サンプル(希釈剤で2倍に希釈)を加えた。
(3)各チューブに50μlのヒトTh1 / Th2−II−PE検測抗体を加えた;(4)暗所で室温で3時間インキュベートした;
(5)各チューブに1 mlの洗浄バッファーを加え、200℃で5分間遠心し、上清を捨てた;
(6)各チューブに300μlの洗浄バッファーを加えて細胞を再懸濁し、フローサイトメトリー用チューブに移し、フローサイトメーターを使用して蛍光値を検測した。
3.実験結果
図10−1に示された。
結果としては、Mock T細胞と比較して、他の細胞における様々なサイトカイン(IL−2、IL−4、IL−6、IL−10、TNF−αとIFN−γ)の分泌量が大幅に改善されたことを示した。Mock Tにおける各種のサイトカインの分泌量は、最も弱く、meso G1 CARにおける各種のサイトカインの分泌量は、やや弱く、meso G2 CARにおける各種のサイトカインの分泌量は、やや強く、meso G1 CAR−137DCR1における各種のサイトカインの分泌量は、最も強かった。
1.実験サンプル
実施例2−(2)で得られた組換え細胞Muc1 G1 CAR、Muc1 G2 CAR、Muc1 G1 CAR−28DCR1とMock T。
2.実験方法
1. 96ウェルプレートを5μg/ ml Muc1抗原でコーティングし、4ーCで一晩コーティングし、PBSで3回洗浄し、各サンプルの1x105細胞を加え、24時間培養し、細胞上清を収集した。BDTMCBA Human Th1 / Th2 Cytokine Kit IIを使用し、Muc1抗原に刺激されたMuc1 CAR−T細胞のサイトカイン分泌状況を検出した。
具体的な手順は次のとおり:
(1)ヒトのIL−2、IL−4、IL−6、IL−10、TNF、IFN−γキャプチャー磁気ビーズを混合し、渦励振盪でキャプチャー磁気ビーズを混合し、各チューブに50μlの混合されたキャプチャー磁気ビーズを添加した;
(2)50μlのヒトTh1/Th2サイトカイン標準液(倍加希釈、5000pg/ml、2500pg/ml、1250pg/ml、625pg/ml、312.5pg/ml、156pg/ml、80pg/ml、40pg/ml、20pg/ml、0pg/ml)と50μlの試験サンプル(希釈剤で2倍に希釈)を加えた。
(3)各チューブに50μlのヒトTh1 / Th2−II−PE検測抗体を加えた;(4)暗所で室温で3時間インキュベートした;
(5)各チューブに1 mlの洗浄バッファーを加え、200℃で5分間遠心し、上清を捨てた;
(6)各チューブに300μlの洗浄バッファーを加えて細胞を再懸濁し、フローサイトメトリー用チューブに移し、フローサイトメーターを使用して蛍光値を検測した。
3.実験結果
図10−2に示された。
結果としては、Mock T細胞と比較して、他の細胞における様々なサイトカイン(IL−2、IL−4、IL−6、IL−10、TNF−αとIFN−γ)の分泌量が大幅に改善されたことを示した。Mock Tにおける各種のサイトカインの分泌量は、最も弱く、Muc1 G1 CARにおける各種のサイトカインの分泌量は、やや弱く、Muc1 G2 CARにおける各種のサイトカインの分泌量は、やや強く、Muc1 G1 CAR−28DCR1における各種のサイトカインの分泌量は、最も強かった。
1.実験サンプル
実施例2−(3)で得られた組換え細胞EGFR G1 CAR、EGFR G2 CAR、EGFR G1 CAR−40DCR1とMock T。
2.実験方法
1. 96ウェルプレートを5μg/ ml EGFR抗原でコーティングし、4ーCで一晩コーティングし、PBSで3回洗浄し、各サンプルの1x105細胞を加え、24時間培養し、細胞上清を収集した。BDTMCBA Human Th1 / Th2 Cytokine Kit IIを使用し、EGFR抗原に刺激されたEGFR CAR−T細胞のサイトカイン分泌状況を検出した。
具体的な手順は次のとおり:
(1)ヒトのIL−2、IL−4、IL−6、IL−10、TNF、IFN−γキャプチャー磁気ビーズを混合し、渦励振盪でキャプチャー磁気ビーズを混合し、各チューブに50μlの混合されたキャプチャー磁気ビーズを添加した;
(2)50μlのヒトTh1/Th2サイトカイン標準液(倍加希釈、5000pg/ml、2500pg/ml、1250pg/ml、625pg/ml、312.5pg/ml、156pg/ml、80pg/ml、40pg/ml、20pg/ml、0pg/ml)と50μlの試験サンプル(希釈剤で2倍に希釈)を加えた。
(3)各チューブに50μlのヒトTh1 / Th2−II−PE検測抗体を加えた;(4)暗所で室温で3時間インキュベートした;
(5)各チューブに1 mlの洗浄バッファーを加え、200℃で5分間遠心し、上清を捨てた;
(6)各チューブに300μlの洗浄バッファーを加えて細胞を再懸濁し、フローサイトメトリー用チューブに移し、フローサイトメーターを使用して蛍光値を検測した。
3.実験結果
図10−3に示された。
結果としては、Mock T細胞と比較して、他の細胞における様々なサイトカイン(IL−2、IL−4、IL−6、IL−10、TNF−αとIFN−γ)の分泌量が大幅に改善されたことを示した。Mock Tにおける各種のサイトカインの分泌量は、最も弱く、EGFR G1 CARにおける各種のサイトカインの分泌量は、やや弱く、EGFR G2 CARにおける各種のサイトカインの分泌量は、やや強く、EGFR G1 CAR−40DCR1における各種のサイトカインの分泌量は、最も強かった。
1.実験サンプルと実験動物
20匹の平均体重22−27gの4〜6週齢のNSG完全免疫不全マウスは、北京維通達生物技術株式会社から提供され、SPF級の動物実験室で飼育された。
実施例2−(1)で得られた組換え細胞meso G1 CAR、meso G2 CAR、meso G1 CAR−137DCR3とMock T。
卵巣がん細胞SK−OV−3−luc(上海慧穎生物テクノロジー株式会社から購入)。2.実験方法
(1)ヒト卵巣がん細胞SK−OV−3−lucをin vitroで培養し、対数増殖期の付着増殖細胞を取り、0.25%トリプシンで消化して遠心分離し、細胞を回収し、PBS溶液に再懸濁し、室温で1000rpmで2分間遠心分離し、上清を捨て、PBS溶液に再懸濁し、遠心分離して細胞を収集し、細胞懸濁液の濃度を5×107個/mlに調整した。
(2)SK−OV−3−luc細胞をマウスの右側のリブ裏側に0.1ml/匹で皮下接種した。接種から10日後、腫瘍のサイズをin vivoイメージャーで観察できる。(3)NSG免疫不全マウスをランダムに4つのグループに分け、各グループに5匹ずつ。投与経路は、直接尾静脈注射で、マウスあたり0.1ml、すなわち5×106個の陽性細胞であり、溶媒はPBSである。一回だけ投与した。
(4)マウスの生活状況を毎日観察し、マウスの腫瘍の変化を10日ごとにin vivoイメージャーで観察した。
3.実験結果
図11−1に示された。
結果としては、Mock Tは、コントロールグループであり、腫瘍細胞の蛍光強度が強い;meso G1 CARは、メソセリンを標的とする第1世代CARで、腫瘍細胞の蛍光強度が弱まり、ある程度の治療効果を示した;meso G2 CAR腫瘍細胞の蛍光強度はより弱く、より良い治療効果を示した;meso G1 CAR−137DCR3腫瘍細胞の蛍光強度は最も低く、最も優れた治療効果を示した。
1.実験サンプルと実験動物
20匹の平均体重22−27gの4〜6週齢のNSG完全免疫不全マウスは、北京維通達生物技術株式会社から提供され、SPF級の動物実験室で飼育された。
実施例2−(2)で得られた組換え細胞Muc1 G1 CAR、Muc1 G2 CAR、Muc1 G1 CAR−28DCR3とMock T。
卵巣がん細胞SK−OV−3−luc(上海慧穎生物テクノロジー株式会社から購入)。2.実験方法
(1)ヒト卵巣がん細胞SK−OV−3−lucをin vitroで培養し、対数増殖期の付着増殖細胞を取り、0.25%トリプシンで消化して遠心分離し、細胞を回収し、PBS溶液に再懸濁し、室温で1000rpmで2分間遠心分離し、上清を捨て、PBS溶液に再懸濁し、遠心分離して細胞を収集し、細胞懸濁液の濃度を5×107個/mlに調整した。
(2)SK−OV−3−luc細胞をマウスの右側のリブ裏側に0.1ml/匹で皮下接種した。接種から10日後、腫瘍のサイズをin vivoイメージャーで観察できる。(3)NSG免疫不全マウスをランダムに4つのグループに分け、各グループに5匹ずつ。投与経路は、直接尾静脈注射で、マウスあたり0.1ml、すなわち5×106個の陽性細胞であり、溶媒はPBSである。一回だけ投与した。
(4)マウスの生活状況を毎日観察し、マウスの腫瘍の変化を10日ごとにin vivoイメージャーで観察した。
3.実験結果
図11−2に示された。
結果としては、Mock Tは、コントロールグループであり、腫瘍細胞の蛍光強度が強い;Muc1 G1 CARは、Muc1を標的とする第1世代CARで、腫瘍細胞の蛍光強度が弱まり、ある程度の治療効果を示した;Muc1 G2 CAR腫瘍細胞の蛍光強度はより弱く、より良い治療効果を示した;Muc1 G1 CAR−28DCR3腫瘍細胞の蛍光強度は最も低く、最も優れた治療効果を示した。
Rとが組み合わされたT細胞の生体内機能実験
1.実験サンプルと実験動物
20匹の平均体重22−27gの4〜6週齢のNSG完全免疫不全マウスは、北京維通達生物技術株式会社から提供され、SPF級の動物実験室で飼育された。
実施例2−(3)で得られた組換え細胞EGFR G1 CAR、EGFR G2 CAR、EGFR G1 CAR−40DCR3とMock T。
卵巣がん細胞SK−OV−3−luc(上海慧穎生物テクノロジー株式会社から購入)。2.実験方法
(1)ヒト卵巣がん細胞SK−OV−3−lucをin vitroで培養し、対数増殖期の付着増殖細胞を取り、0.25%トリプシンで消化して遠心分離し、細胞を回収し、PBS溶液に再懸濁し、室温で1000rpmで2分間遠心分離し、上清を捨て、PBS溶液に再懸濁し、遠心分離して細胞を収集し、細胞懸濁液の濃度を5×107個/mlに調整した。
(2)SK−OV−3−luc細胞をマウスの右側のリブ裏側に0.1ml/匹で皮下接種した。接種から10日後、腫瘍のサイズをin vivoイメージャーで観察できる。(3)NSG免疫不全マウスをランダムに4つのグループに分け、各グループに5匹ずつ。投与経路は、直接尾静脈注射で、マウスあたり0.1ml、すなわち5×106個の陽性細胞であり、溶媒はPBSである。一回だけ投与した。
(4)マウスの生活状況を毎日観察し、マウスの腫瘍の変化を10日ごとにin vivoイメージャーで観察した。
3.実験結果
図11−3に示された。
結果としては、Mock Tは、コントロールグループであり、腫瘍細胞の蛍光強度が強い;EGFR G1 CARは、EGFRを標的とする第1世代CARで、腫瘍細胞の蛍光強度が弱まり、ある程度の治療効果を示した;EGFR G2 CAR腫瘍細胞の蛍光強度はより弱く、より良い治療効果を示した;EGFR G1 CAR−40DCR3腫瘍細胞の蛍光強度は最も低く、最も優れた治療効果を示した。
Claims (20)
- N末端からC末端まで順に下記のエレメントを含む分離されたポリペプチド:
任意的に含まれても良いシグナルペプチド、共刺激シグナル分子を活性化するポリペプチド(例えば共刺激シグナル分子の活性化一本鎖抗体又は共刺激シグナル分子のリガンド)、細胞外ヒンジ領域、膜貫通領域と細胞内共刺激シグナル分子。 - 以下の(1)−(5)からのいずれか一つ、二つ、三つ、四つ又は五つを特徴とする請求項1に記載のポリペプチド:
(1)上記のシグナルペプチドは、膜タンパク質シグナルペプチドである;好ましくに、上記のシグナルペプチドは、CD8シグナルペプチド、CD28シグナルペプチドとCD4シグナルペプチドから選べられる一つ又は複数である;好ましくに、上記のシグナルペプチドは、CD8シグナルペプチドである;好ましくに、CD8シグナルペプチドのアミノ酸配列は、SEQ ID NO: 1に示された;
(2)上記の共刺激シグナル分子の活性化一本鎖抗体は、CD137活性化一本鎖抗体、CD28活性化一本鎖抗体とCD40活性化一本鎖抗体から選べられる任意的な一つ又は複数である;上記の共刺激シグナル分子のリガンドは、CD137のリガンド、CD28のリガンドとCD40のリガンドから選べられる任意的な一つ又は複数である;
好ましくに、上記のCD137活性化一本鎖抗体のアミノ酸配列は、SEQ ID NO: 2に示された;
好ましくに、上記のCD28活性化一本鎖抗体のアミノ酸配列は、SEQ ID NO:
31に示された;
好ましくに、上記のCD40活性化一本鎖抗体のアミノ酸配列は、SEQ ID NO:
55に示された;
好ましくに、上記のCD137のリガンドは、4−1BBLである;
好ましくに、上記のCD28のリガンドは、CD80/CD86である;
好ましくに、上記のCD40のリガンドは、CD40Lである;
(3)上記の細胞外ヒンジ領域は、IgG4Fc CH2CH3ヒンジ領域、CD28ヒンジ領域とCD8ヒンジ領域から選べられる一つ又は複数である;
好ましくに、CD8ヒンジ領域である;
好ましくに、上記のCD8ヒンジ領域のアミノ酸配列は、SEQ ID NO: 3に示された;
好ましくに、IgG4Fc CH2CH3ヒンジ領域である;
好ましくに、上記のIgG4Fc CH2CH3ヒンジ領域のアミノ酸配列は、SEQ ID NO: 56に示された;
(4)上記の膜貫通領域は、CD28膜貫通領域、CD8膜貫通領域、CD3ζ膜貫通領域、CD134膜貫通領域、CD137膜貫通領域、ICOS膜貫通領域とDAP10膜貫通領域から選べられる一つ又は複数である;好ましくに、上記の膜貫通領域は、CD28膜貫通領域である;好ましくに、上記のCD28膜貫通領域のアミノ酸配列は、SEQ
ID NO: 4に示された;
(5)上記の細胞内共刺激シグナル分子は、CD28細胞内ドメイン、CD134/OX40細胞内ドメイン、CD137/4−1BB細胞内ドメイン、LCK細胞内ドメイン、ICOS細胞内ドメインとDAP10細胞内ドメインから選べられる一つ又は複数である;好ましくに、上記の細胞内共刺激シグナル分子は、CD28細胞内ドメイン及び/又はCD137細胞内ドメインである;好ましくに、上記のCD28細胞内ドメインのアミノ酸配列は、SEQ ID NO: 5に示された;好ましくに、上記のCD137細胞内ドメインのアミノ酸配列は、SEQ ID NO: 6に示された。 - N末端からC末端まで順に下記のエレメントを含む、請求項1又は2に記載のポリペプチド:
任意的に含まれても良いCD8シグナルペプチド、CD137活性化一本鎖抗体、CD8細胞外ヒンジ領域、CD28膜貫通領域、CD28細胞内ドメイン及び/又はCD137細胞内ドメイン;
任意的に含まれても良いCD8シグナルペプチド、CD28活性化一本鎖抗体、CD8細胞外ヒンジ領域、CD28膜貫通領域、CD28細胞内ドメイン及び/又はCD137細胞内ドメイン;或いは
任意的に含まれても良いCD8シグナルペプチド、CD40活性化一本鎖抗体、IgG4Fc CH2CH3ヒンジ領域、CD28膜貫通領域、CD28細胞内ドメイン及び/又はCD137細胞内ドメイン。 - アミノ酸配列は、SEQ ID NO: 7〜SEQ ID NO: 14のいずれか一つの配列に示された;
SEQ ID NO: 32〜SEQ ID NO: 39のいずれか一つの配列に示された;或いは
SEQ ID NO: 57〜SEQ ID NO: 64のいずれか一つの配列に示された
請求項1〜3のいずれか一項に記載のポリペプチド。 - 請求項1〜4のいずれか一項に記載の分離されたポリペプチドをコードする分離されたポリヌクレオチド;好ましくに、上記の分離されたポリヌクレオチドの配列は、SEQ ID NO: 15又はSEQ ID NO: 22のいずれか一つの配列に示された;SEQ ID NO: 40〜SEQ ID NO: 47のいずれか一つの配列に示された;或いは
SEQ ID NO: 65〜SEQ ID NO: 72のいずれか一つの配列に示された。 - 請求項5に記載のポリヌクレオチドを含む核酸コンストラクト。
- 請求項5に記載のポリヌクレオチド或いは請求項6に記載の核酸コンストラクトを含有する組換えベクター;好ましくに、上記の組換えベクターは、組換えクローニングベクター、組換え真核生物発現プラスミド或いは組換えウイルスベクターである;好ましくに、上記の組換え発現ベクターは、組み換えられたトランスポゾンベクトルである;好ましくに、上記のトランスポゾンベクトルは、piggybac、sleeping beauty、frog prince、Tn5又はTyから選べられる転置因子を含有する;好ましくに、上記の組換え発現ベクターは、請求項5に記載のポリヌクレオチドとPS328bベクトルとを組み換えてなる組換えベクターである。
- 第1組換えベクターと第2組換えベクターを含む組換えベクター組み合わせ、ただし:上記の第1組換えベクターは、請求項7に記載の組換えベクターであり、
上記の第2組換えベクターが、第1世代キメラ抗原受容体のコード配列を含有する;好ましくに、上記の第1世代キメラ抗原受容体は、メソセリン、Muc1又はEGFRを標的とする第1世代キメラ抗原受容体である;好ましくに、上記の第1世代キメラ抗原受容体のアミノ酸配列は、SEQ ID NO: 23、SEQ ID NO: 48又はSEQ ID NO: 73に示された;好ましくに、上記の第1世代キメラ抗原受容体の核酸配列は、SEQ ID NO: 24、SEQ ID NO: 49又はSEQ ID
NO: 74に示された;
好ましくに、上記の第2組換えベクターは、組み換えられたPNB328ベクトルである。 - 細胞が、請求項5に記載のポリヌクレオチド、請求項6に記載の核酸コンストラクト、
請求項7に記載の組換えベクター或いは請求項8に記載の組換えベクター組み合わせを含有する組換え宿主細胞;好ましくに、上記の組換え宿主細胞は、組換え哺乳類細胞である;好ましくに、上記の組換え宿主細胞は、組換えT細胞である;好ましくに、上記の組換えT細胞は、組み換えられた末梢血単球細胞である。 - 請求項1〜4のいずれか一項に記載のポリペプチド、及び第1世代キメラ抗原受容体を発現するT細胞;好ましくに、上記の組換えT細胞は、組み換えられた末梢血単球細胞である;好ましくに、上記の第1世代キメラ抗原受容体は、メソセリン、Muc1又はEGFRを標的とする第1世代キメラ抗原受容体である;好ましくに、上記の第1世代キメラ抗原受容体のアミノ酸配列は、SEQ ID NO: 23、SEQ ID NO: 48又はSEQ ID NO: 73に示された。
- 請求項1〜4のいずれか一項に記載のポリペプチド、請求項5に記載のポリヌクレオチド、請求項6に記載の核酸コンストラクト、請求項7に記載の組換えベクター、請求項8に記載の組換えベクター組み合わせ、請求項9に記載の組換え宿主細胞或いは請求項10に記載のT細胞を含む医薬用組成物;ただし、薬学的に許容される補助原料を任意的に含んでも良い。
- 請求項1〜4のいずれか一項に記載のポリペプチド、請求項5に記載のポリヌクレオチド、請求項6に記載の核酸コンストラクト、請求項7に記載の組換えベクター、請求項8に記載の組換えベクター組み合わせ、請求項9に記載の組換え宿主細胞或いは請求項10に記載のT細胞が、がんを治療及び/又は予防する医薬品の調製における用途;好ましくに、上記のがんは、そのがん細胞の表面にメソセリン、Muc1又はEGFRを異常に発現するがんである;好ましくに、上記のがんは、腺がん、肺がん、結腸がん、大腸がん、乳がん、卵巣がん、子宮頸がん、胃がん、胆管がん、胆嚢がん、食道がん、膵臓がん、または前立腺がんから選べられる。
- 請求項1〜4のいずれか一項に記載のポリペプチド、請求項5に記載のポリヌクレオチド、請求項6に記載の核酸コンストラクト、請求項7に記載の組換えベクター、請求項8に記載の組換えベクター組み合わせ、請求項9に記載の組換え宿主細胞或いは請求項10に記載のT細胞が、がん細胞を抑制する医薬品の調製における用途;好ましくに、上記のがん細胞は、細胞表面にメソセリン、Muc1又はEGFRを異常に発現するがん細胞である;好ましくに、上記のがん細胞は、腺がん、肺がん、結腸がん、大腸がん、乳がん、卵巣がん、子宮頸がん、胃がん、胆管がん、胆嚢がん、食道がん、膵臓がん、または前立腺がんのがん細胞から選べられるものである。
- 請求項1〜4のいずれか一項に記載のポリペプチド、請求項5に記載のポリヌクレオチド、請求項6に記載の核酸コンストラクト、請求項7に記載の組換えベクター、請求項8に記載の組換えベクター組み合わせ、請求項9に記載の組換え宿主細胞或いは請求項10に記載のT細胞が、サイトカインの分泌を促進する医薬品の調製における用途、ただし、上記のサイトカインは、IL−2、IL−4、IL−6、IL−10、TNF−αとIFN−γから選べられる一つ又は複数である。
- がんを治療及び/又は予防するための、請求項1〜4のいずれか一項に記載のポリペプチド、請求項5に記載のポリヌクレオチド、請求項6に記載の核酸コンストラクト、請求項7に記載の組換えベクター、請求項8に記載の組換えベクター組み合わせ、請求項9に記載の組換え宿主細胞或いは請求項10に記載のT細胞;好ましくに、上記のがんは、そのがん細胞の表面にメソセリン、Muc1又はEGFRを異常に発現するがんである;好ましくに、上記のがんは、腺がん、肺がん、結腸がん、大腸がん、乳がん、卵巣がん、子宮頸がん、胃がん、胆管がん、胆嚢がん、食道がん、膵臓がん、または前立腺がんから選
べられる。 - がん細胞を抑制するための、請求項1〜4のいずれか一項に記載のポリペプチド、請求項5に記載のポリヌクレオチド、請求項6に記載の核酸コンストラクト、請求項7に記載の組換えベクター、請求項8に記載の組換えベクター組み合わせ、請求項9に記載の組換え宿主細胞或いは請求項10に記載のT細胞;好ましくに、上記のがん細胞は、細胞表面にメソセリン、Muc1又はEGFRを異常に発現するがん細胞である;好ましくに、上記のがん細胞は、腺がん、肺がん、結腸がん、大腸がん、乳がん、卵巣がん、子宮頸がん、胃がん、胆管がん、胆嚢がん、食道がん、膵臓がん、または前立腺がんのがん細胞から選べられるものである。
- サイトカインの分泌を促進するための、請求項1〜4のいずれか一項に記載のポリペプチド、請求項5に記載のポリヌクレオチド、請求項6に記載の核酸コンストラクト、請求項7に記載の組換えベクター、請求項8に記載の組換えベクター組み合わせ、請求項9に記載の組換え宿主細胞或いは請求項10に記載のT細胞;ただし、上記のサイトカインは、IL−2、IL−4、IL−6、IL−10、TNF−αとIFN−γから選べられる一つ又は複数である。
- 有効量で、請求項1〜4のいずれか一項に記載のポリペプチド、請求項5に記載のポリヌクレオチド、請求項6に記載の核酸コンストラクト、請求項7に記載の組換えベクター、請求項8に記載の組換えベクター組み合わせ、請求項9に記載の組換え宿主細胞或いは請求項10に記載のT細胞を必要とする被験者へ投与するステップを含む、がんを治療及び/又は予防する方法;
好ましくに、上記のがんは、そのがん細胞の表面にメソセリン、Muc1又はEGFRを異常に発現するがんである;
好ましくに、上記のがんは、腺がん、肺がん、結腸がん、大腸がん、乳がん、卵巣がん、子宮頸がん、胃がん、胆管がん、胆嚢がん、食道がん、膵臓がん、または前立腺がんから選べられる。 - 有効量で、請求項1〜4のいずれか一項に記載のポリペプチド、請求項5に記載のポリヌクレオチド、請求項6に記載の核酸コンストラクト、請求項7に記載の組換えベクター、請求項8に記載の組換えベクター組み合わせ、請求項9に記載の組換え宿主細胞或いは請求項10に記載のT細胞をがん細胞に使用するステップを含む、生体内又は生体外でがん細胞を抑制する方法;
好ましくに、上記のがん細胞は、細胞表面にメソセリン、Muc1又はEGFRを異常に発現するがん細胞である;
好ましくに、上記のがん細胞は、腺がん、肺がん、結腸がん、大腸がん、乳がん、卵巣がん、子宮頸がん、胃がん、胆管がん、胆嚢がん、食道がん、膵臓がん、または前立腺がんのがん細胞から選べられるものである - 有効量で、請求項1〜4のいずれか一項に記載のポリペプチド、請求項5に記載のポリヌクレオチド、請求項6に記載の核酸コンストラクト、請求項7に記載の組換えベクター、請求項8に記載の組換えベクター組み合わせ、請求項9に記載の組換え宿主細胞或いは請求項10に記載のT細胞をがん細胞に使用するステップを含む、生体内又は生体外でT細胞のサイトカインの分泌を促進する方法;ただし、上記のサイトカインは、IL−2、IL−4、IL−6、IL−10、TNF−αとIFN−γから選べられる一つ又は複数である。
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