JP2021166553A - 合成メッセンジャーｒｎａによるヒト人工多能性幹細胞のフィーダーフリー誘導 - Google Patents

Abstract

【課題】合成メッセンジャーＲＮＡによるヒト人工多能性幹細胞のフィーダーフリー誘導の提供。
【解決手段】本開示は、全般的には、動態的に調節されたプロセスによる人工多能性幹細胞（ｉＰＳＣ）の作製に、操作された再プログラム化因子（複数可）を使用するための新規方法および組成物に関する。具体的には、本開示は、様々な種類の細胞の再プログラム化に最適化された、従来の再プログラム化因子とトランス活性化ドメインの融合体を含む、再プログラム化因子の組合せの確立に関する。より具体的には、本明細書に開示されている例示的な方法は、ヒト線維芽細胞を含む様々な哺乳動物細胞型から人工多能性幹細胞を作製するのに使用することができる。合成メッセンジャーＲＮＡを使用するヒト人工多能性幹細胞のフィーダーフリー誘導の例示的な方法も開示されている。
【選択図】なし

Description

関連出願
本出願は、２０１３年５月１３日に出願された米国出願１３／８９３，１６６号の利益
を請求し、米国出願１３／８９３，１６６号の一部継続出願である。この米国出願は、２
０１２年５月１３日に出願された米国仮出願第６１／６４６，２９２号の優先権の利益を
請求する。これらの内容はそれぞれ、その全体が本明細書により参考として援用される。

本発明の分野
本開示は、全般的には、プロセスによる人工多能性幹細胞（ｉＰＳＣ）の作製に、操作
された再プログラム化因子（複数可）を使用するための新規方法および組成物に関する。
具体的には、本開示は、様々な細胞型の再プログラム化に最適化された、従来の再プログ
ラム化因子とトランス活性化ドメインの融合体を含む、再プログラム化因子の組合せの確
立に関する。より具体的には、本明細書に開示されている例示的な方法は、非ヒト霊長類
細胞を含む様々な哺乳動物細胞型から人工多能性幹細胞を作製するのに使用することがで
きる。合成メッセンジャーＲＮＡを使用するヒト人工多能性幹細胞のフィーダーフリー誘
導の例示的な方法も開示されている。

背景
次に、本開示の様々な態様および実施形態の理解において有用となり得る情報を挙げる
。これは、本明細書に提供されている情報のいずれかが、現下記載または特許請求されて
いる発明の先行技術であるまたはこれに関連することも、あるいは明確にまたは暗に参照
されているいずれかの刊行物または文書が、先行技術であることも承認しない。

人工多能性幹細胞（ｉＰＳＣ）の治療可能性は、多能性状態への再プログラム化を引き
起こすために体細胞を遺伝子改変する必要を回避する再プログラム化方法を開発する取り
組みを促した。この点において成功を収めるための第１の「非組み込み」アプローチ（タ
ンパク質形質導入、プラスミドトランスフェクションおよびアデノウイルスベクターの使
用）は、得られるｉＰＳＣ転換の効率が低いために応用が限定されていた。最近になって
、エピソームＤＮＡ、センダイウイルスおよび合成メッセンジャーＲＮＡ（ｍＲＮＡ）を
用いる技法は、組み込み型ウイルスベクターを使用して得られるｉＰＳＣに匹敵するまた
はこれに勝る効率で、「フットプリントフリー（footprint-free）」ｉＰＳＣを生成する
ことを示した。ＲＮＡトランスフェクションは、ベクターの残渣痕跡を一掃するために再
プログラム化された細胞を「クリーンアップ」する必要を完全になくしつつ、再プログラ
ム化因子（ＲＦ）発現の時間経過にわたって正確な調節をもたらすため、原則として、こ
れらの方法の中で最も魅力的である。しかし、ｍＲＮＡに基づく再プログラム化のための
現在のプロトコールは、ヒト細胞における多能性の誘導に要求されるほぼ２週間毎日の再
トランスフェクトを行う必要のため、相対的に労働集約的である。これらの手順はまた、
フィーダー細胞の使用を利用し、プロセスに複雑さと技術的可変性を加える一方、非ヒト
由来の（「異種」）生物材料により汚染源を導入する可能性がある。

人工多能性幹細胞（ｉＰＳＣ）産生の主要な困難は、分化細胞を多能性細胞へと再プロ
グラム化する際の低効率であった。Ｓｏｘ２、Ｋｌｆ４およびｃ−Ｍｙｃ（ＳＫＭ）と共
に、Ｏｃｔ４およびＭｙｏＤのトランス活性化ドメイン（Ｍ_３Ｏと呼ばれる）で構成され
た融合遺伝子により形質導入した場合、マウス胚性線維芽細胞（ＭＥＦ）の５％がｉＰＳ
Ｃへと再プログラム化されたことが以前に報告された。加えて、Ｍ_３Ｏは、ｉＰＳＣには
ならない細胞を含む形質導入されたＭＥＦの大部分において、多能性遺伝子のクロマチン
リモデリングを容易にした。これらの観察は、より好ましい培養条件であれば、５％を超
える細胞がｉＰＳＣになる能力を獲得したであろう可能性を示唆した。

ｍＲＮＡを使用して非ヒト由来の細胞の再プログラム化を成功させることは捉え所のな
いことであり、それは、ＲＮＡ分子が細胞、特に哺乳動物細胞にトランスフェクトされる
と、そのＲＮＡ分子によって細胞性免疫応答が誘導される可能性があるためである。ヒト
線維芽細胞の再プログラム化において、一般的な慣例は、ウイルスタンパク質を、トラン
スフェクトされたｍＲＮＡ分子によって誘導されるインターフェロンを鈍らせるためのデ
コイ受容体として使用することである。しかし、デコイ受容体を使用するこのような戦略
または他の類似の戦略は、ヒヒ、ウマ、およびイヌを含む非ヒト種からの線維芽細胞の再
プログラム化を成功させていない。

したがって、これらの問題点に取り組むために、本開示は、体のあらゆる異なる組織を
産生することのできる幹細胞を作製するための方法および組成物を提供する。ある特定の
態様において、メッセンジャーＲＮＡ分子を使用して、ウイルスベクターまたはフィーダ
ー細胞を必要とせず、本明細書に開示されている方法を使用して、非ヒト線維芽細胞を人
工多能性幹細胞（ｉＰＳＣ）に再プログラム化することができる。この例示的な方法およ
び組成物の使用は、以前に報告された細胞再プログラム化方法論に優る驚くべき予想外の
効率改善をもたらし、非ヒト哺乳動物細胞において細胞性免疫応答を抑制するという、以
前に解決されなかった課題を克服した。

したがって、特に、ＶＰ１６およびＭｙｏＤ等、公知の強力な転写因子のトランス活性
化ドメインを組み入れた、Ｏｃｔ４（Ｏｃｔ３／４とも称される）、Ｓｏｘ２等、従来の
再プログラム化因子の操作されたバリアントの適用により再プログラム化因子（ＲＦ）カ
クテルを改善することにより、ｍＲＮＡ媒介性再プログラム化を加速させるのに有用な方
法、薬剤および／または組成物が提供される。本明細書に開示されている方法および組成
物は、ｍＲＮＡに基づく再プログラム化に関与する時間、費用および労力を劇的に低下さ
せるフィーダーフリープロトコールをもたらす。

一態様において、本開示は、体細胞を脱分化または再プログラム化するための方法であ
って、ａ）Ｏｃｔ４、Ｓｏｘ２、Ｋｌｆ４、ｃＭｙｃ、ＮａｎｏｇおよびＬｉｎ２８から
選択される合成ｍＲＮＡ再プログラム化因子のうちいずれか１種または複数とトランス活
性化ドメインとの融合産物を有効量含む組成物を、単離された体細胞にトランスフェクト
し、これにより体細胞を再プログラム化または脱分化するステップを含む方法を提供する
。

一実施形態において、組成物が、Ｎ末端ＭｙｏＤトランス活性化ドメインと融合したＯ
ｃｔ４を含む、請求項１に記載の方法が提供される。一実施形態において、Ｏｃｔ４は、
タンデムに３連でＮ末端ＭｙｏＤトランス活性化ドメインと融合している。

一態様において、請求項１に記載の再プログラム化因子の合成ｍＲＮＡのうちいずれか
１種または複数を使用することにより哺乳動物細胞を再プログラム化するための方法であ
って、ａ）フィーダーフリー表面において標準６ウェルプレートのウェルあたり細胞１５
ｋ〜５００ｋの密度で標的細胞を成長させるステップと、ｂ）再プログラム化の間に各回
５０ｎｇ〜８００ｎｇ／ｍｌで変動する用量のｍＲＮＡを細胞にトランスフェクトするス
テップとを含む方法が提供される。

一実施形態において、標的細胞を、フィーダーフリー表面において標準６ウェルプレー
トのウェルあたり細胞３０ｋ、７５ｋ、１００ｋまたは１５０ｋの密度で成長させ、ｂ）
再プログラム化の間に各回５０ｎｇ〜８００ｎｇ／ｍｌで変動する用量のｍＲＮＡを細胞
にトランスフェクトするステップであるが、より初期の時点においてより後期の時点より
も低い用量を使用するステップと、ｃ）継代せずにｉＰＳＣを獲得するステップとを含む
方法が提供される。

一実施形態において、標的細胞を、フィーダーフリー表面において標準６ウェルプレー
トのウェルあたり細胞１５ｋ、７５ｋ、１００ｋまたは１５０ｋの密度で成長させるが、
各ウェルの容量を、０．５ｍｌ〜５ｍｌの適切な培地となるよう調整し；再プログラム化
の間に各回５０ｎｇ〜８００ｎｇ／ｍｌで変動する用量のｍＲＮＡを細胞にトランスフェ
クトするステップであるが、より初期の時点においてより後期の時点よりも低い用量を使
用するステップと；継代せずにｉＰＳＣを獲得するステップとを含む方法が提供される。

ある特定の実施形態では、再プログラム化プロセスの全体を通してより低い用量を使用
することによって、細胞性免疫応答が低下し、ｉＰＳＣの成功率の改善がもたらされた。
他の実施形態では、より高い純度のｍＲＮＡ分子、すなわち、ｉｎ ｖｉｔｒｏでの転写
からの汚染異常転写産物を有さないｍＲＮＡ分子を使用することによって、細胞がより低
い密度で播種され、反復的トランスフェクションを生き残ること、およびより高いｉＰＳ
Ｃ収量が可能になった。

一実施形態において、哺乳動物細胞は、ヒト細胞である。一実施形態において、その方
法は異種フリーである。一実施形態では、哺乳動物細胞は非ヒト霊長類細胞である。一実
施形態では、非ヒト霊長類細胞はカニクイザル細胞である。

一実施形態において、１種または複数の因子は、ｍＲＮＡ、制御性ＲＮＡ、ｓｉＲＮＡ
、ｍｉＲＮＡおよびこれらの組合せからなる群から選択される。

一実施形態において、体細胞に、少なくとも２種の異なるＲＮＡをトランスフェクトす
る。一実施形態において、体細胞は、単能性、複能性（multipotent）、多能性および分
化細胞からなる群から選択される。一実施形態において、１種または複数のＲＮＡは、体
細胞から単能性、複能性または多能性細胞への脱分化を誘導する。

一実施形態において、その因子のうち少なくとも１種は、ＯＣＴ４、ＳＯＸ２、ＮＡＮ
ＯＧ、ＬＩＮ２８、ＫＬＦ４およびＭＹＣ ｍＲＮＡからなる群から選択される。一実施
形態において、ＯＣＴ４、ＳＯＸ２、ＮＡＮＯＧおよびＬＩＮ２８ ｍＲＮＡを組み合わ
せて投与する。一実施形態において、ＯＣＴ４、ＳＯＸ２、ＫＬＦ４およびＭＹＣ ｍＲ
ＮＡを組み合わせて投与する。

一実施形態において、トランスフェクトされた細胞は、培養において人工多能性幹（ｉ
ＰＳ）細胞として維持される。一実施形態において、トランスフェクトされた細胞が、人
工多能性幹細胞を形成し、分化細胞を形成するようにｉＰＳ細胞を誘導するステップをさ
らに含む方法が提供される。

一態様において、患者における疾患または障害の１種または複数の症状を処置または阻
害するための方法であって、細胞をｉｎ ｖｉｔｒｏで脱分化させるステップと、細胞を
患者に投与するステップとを含む方法が提供される。一実施形態において、組成物は、Ｒ
ａｒｇおよびＬｒＨ−１トランス活性化ドメインをさらに含む。一実施形態において、組
成物は、ＶＰ１６トランス活性化ドメインと融合したＯＣＴ４を含む。

一実施形態では、本開示は非ヒト霊長類細胞に由来するｉＰＳＣを提供し、これを、他
の動物性製品を伴わない組み込みフリー、フィーダーフリーの検査環境をもたらし得るた
め、疾患モデル系の確立に使用した。したがって、本明細書に記載されている非ヒトｉＰ
ＳＣは、前臨床検査に有用である。
本発明は、例えば、以下の項目を提供する。
（項目１）
体細胞を脱分化または再プログラム化するための方法であって、
Ｏｃｔ４、Ｓｏｘ２、Ｋｌｆ４、ｃＭｙｃ、ＮａｎｏｇおよびＬｉｎ２８から選択され
る合成ｍＲＮＡ再プログラム化因子のうちいずれか１種または複数とトランス活性化ドメ
インとの融合産物を有効量含む組成物を、単離された体細胞にトランスフェクトし、これ
により前記体細胞を再プログラム化または脱分化するステップ
を含む、方法。
（項目２）
前記合成ｍＲＮＡが、転写からのいかなる汚染非ｍＲＮＡ種も除去するために精製され
る、項目１に記載の方法。
（項目３）
前記細胞が、ウェル内から密度勾配で播種される、項目１に記載の方法。
（項目４）
前記細胞が非ヒト霊長類細胞である、項目１に記載の方法。
（項目５）
前記細胞がカニクイザル細胞である、項目１に記載の方法。
（項目６）
前記細胞がアカゲザル細胞である、項目１に記載の方法。
（項目７）
前記細胞がヒヒ細胞である、項目１に記載の方法。
（項目８）
前記細胞がイヌ細胞である、項目１に記載の方法。
（項目９）
前記細胞がウマ細胞である、項目１に記載の方法。
（項目１０）
前記細胞がウシ細胞である、項目１に記載の方法。
（項目１１）
前記細胞がブタ細胞である、項目１に記載の方法。
（項目１２）
前記細胞がヒツジ細胞である、項目１に記載の方法。
（項目１３）
前記組成物が、Ｎ末端ＭｙｏＤトランス活性化ドメインと融合したＯｃｔ４を含む、項
目１に記載の方法。
（項目１４）
Ｏｃｔ４が、タンデムに３連でＮ末端ＭｙｏＤトランス活性化ドメインと融合している
、項目２に記載の方法。
（項目１５）
哺乳動物細胞を再プログラム化するための方法であって、
フィーダーフリー表面上で標準６ウェルプレート内でウェルあたり細胞２５ｋ〜２５０
ｋの密度で、標的細胞を成長させるステップと、
約５０ｎｇ〜約８００ｎｇ／ｍｌにわたる用量の、項目１に記載の再プログラム化因子
の合成ｍＲＮＡのうちいずれか１種または複数を前記細胞にトランスフェクトするステッ
プと
を含む、方法。
（項目１６）
標的細胞を、フィーダーフリー表面上で標準６ウェルプレート内でウェルあたり細胞５
０ｋ、７５ｋ、１００ｋまたは１５０ｋの密度で成長させるステップと、
１ｍｌのｍＲＮＡあたり約５０ｎｇ〜約８００ｎｇにわたる用量の、項目１に記載の再
プログラム化因子の合成ｍＲＮＡのうちいずれか１種または複数を前記細胞にトランスフ
ェクトするステップであって、より初期の時点においてより後期の時点よりも低い用量を
使用する、ステップと、
継代せずにｉＰＳＣを獲得するステップと
を含む、項目４に記載の方法。
（項目１７）
標的細胞を、フィーダーフリー表面において標準６ウェルプレート内でウェルあたり細
胞１５ｋ、３０ｋ、５０ｋ、７５ｋ、１００ｋ、１５０ｋ、２５０Ｋ、５００Ｋのうち選
択されたいずれか１種の密度で成長させるステップであって、各ウェルの容量を、０．５
ｍｌ〜５ｍｌの適切な培地となるよう調整する、ステップと、
１ｍｌのｍＲＮＡあたり約５０ｎｇ〜８００ｎｇにわたる用量の、項目１に記載の再プ
ログラム化因子の合成ｍＲＮＡのうちいずれか１種または複数を細胞にトランスフェクト
するステップであって、より初期の時点においてより後期の時点よりも低い用量を使用す
る、ステップと、
前記細胞を継代せずにｉＰＳＣを獲得するステップと
を含む、項目４に記載の方法。
（項目１８）
前記哺乳動物細胞が、ヒト細胞である、項目４に記載の方法。
（項目１９）
異種フリーである、項目４に記載の方法。
（項目２０）
前記１種または複数の因子が、ｍＲＮＡ、制御性ＲＮＡ、ｓｉＲＮＡ、ｍｉＲＮＡおよ
びこれらの組合せからなる群から選択される、項目１に記載の方法。
（項目２１）
前記体細胞に、少なくとも２種の異なるＲＮＡをトランスフェクトする、項目１に記載
の方法。
（項目２２）
前記体細胞が、単能性細胞、複能性細胞、多能性細胞および分化細胞からなる群から選
択される、項目１に記載の方法。
（項目２３）
前記１種または複数のＲＮＡが、前記体細胞から単能性細胞、複能性細胞または多能性
細胞への脱分化を誘導する、項目１に記載の方法。
（項目２４）
前記因子のうち少なくとも１種が、ＯＣＴ４、ＳＯＸ２、ＮＡＮＯＧ、ＬＩＮ２８、Ｋ
ＬＦ４およびＭＹＣ ｍＲＮＡからなる群から選択される、項目４に記載の方法。
（項目２５）
ＯＣＴ４、ＳＯＸ２、ＮＡＮＯＧおよびＬＩＮ２８ ｍＲＮＡを組み合わせて投与する
、項目４に記載の方法。
（項目２６）
ＯＣＴ４、ＳＯＸ２、ＫＬＦ４およびＭＹＣ ｍＲＮＡを組み合わせて投与する、項目
４に記載の方法。
（項目２７）
前記トランスフェクトされた細胞が、培養において人工多能性幹（ｉＰＳ）細胞として
維持される、項目１に記載の方法。
（項目２８）
前記トランスフェクトされた細胞が、人工多能性幹細胞を形成し、分化細胞を形成する
ように前記ｉＰＳ細胞を誘導するステップをさらに含む、項目１に記載の方法。
（項目２９）
患者における疾患または障害の１種または複数の症状を処置または阻害するための方法
であって、項目１に記載の方法に従って細胞をｉｎ ｖｉｔｒｏで脱分化させる、ステッ
プと、前記細胞を前記患者に投与するステップとを含む、方法。
（項目３０）
前記組成物が、ＲａｒｇおよびＬｒＨ−１トランス活性化ドメインをさらに含む、項目
２に記載の方法。
（項目３１）
前記組成物が、ＶＰ１６トランス活性化ドメインと融合したＯｃｔ４を含む、項目１に
記載の方法。

本明細書に記載および特許請求されている発明は、本概要に表記または記載または参照
されている特質および実施形態等を含むがこれらに限定されない、多くの特質および実施
形態を有する。これは包括的であるようには企図されておらず、本明細書に記載および特
許請求されている発明は、本概要に同定されている特色または実施形態に（よって）限定
されず、これら特色または実施形態は、制限目的ではなく単なる説明目的で含まれている
。後述する詳細な説明において、追加的な実施形態を開示することができる。

図１は、Ｍ_３Ｏに基づくｍＲＮＡ再プログラム化カクテルによって派生したｉＰＳＣコロニーを示す図である。（Ａ）第１のＭ_３Ｏに基づくＢＪ再プログラム化試行に由来する増大化したｉＰＳＣクローンのうち２種の１０×明視野像。（Ｂ）多能性マーカーに対する増大化したクローンの免疫染色。 図１は、Ｍ_３Ｏに基づくｍＲＮＡ再プログラム化カクテルによって派生したｉＰＳＣコロニーを示す図である。（Ａ）第１のＭ_３Ｏに基づくＢＪ再プログラム化試行に由来する増大化したｉＰＳＣクローンのうち２種の１０×明視野像。（Ｂ）多能性マーカーに対する増大化したクローンの免疫染色。

図２は、Ｍ_３Ｏに基づくカクテルを使用したフィーダーフリー再プログラム化を示す図である。（Ａ）ｃ−ＭｙｃおよびＬ−Ｍｙｃに基づくカクテルならびに４時間および２４時間トランスフェクションレジメンを比較する、５０Ｋ ＸＦＦ線維芽細胞におけるフィーダーフリー誘導由来のＴＲＡ−１−６０^＋コロニー収量を示す免疫蛍光イメージング。全ウェルを９日間トランスフェクトした。染色のために実験１５日目に４時間トランスフェクション培養物を固定し、１１日目に２４時間トランスフェクション培養を固定した。（Ｂ）誘導９日目にこの培養物を追い越すほとんどコンフルエントなｈＥＳＣ様コロニーを示す、同じ実験由来の４００ｎｇ／ｍｌ Ｓｔｅｍｆｅｃｔウェルの１０×明視野イメージング。（Ｃ）４００ｎｇ／ｍｌ Ｓｔｅｍｆｅｃｔレジメンを使用して１００Ｋ ＸＦＦを９日間再度トランスフェクトした追跡調査試行における、マークした視野の１０×明視野の時間経過であり、上皮化と、その後のｈＥＳＣ様コロニーの出現を示す。 図２は、Ｍ_３Ｏに基づくカクテルを使用したフィーダーフリー再プログラム化を示す図である。（Ａ）ｃ−ＭｙｃおよびＬ−Ｍｙｃに基づくカクテルならびに４時間および２４時間トランスフェクションレジメンを比較する、５０Ｋ ＸＦＦ線維芽細胞におけるフィーダーフリー誘導由来のＴＲＡ−１−６０^＋コロニー収量を示す免疫蛍光イメージング。全ウェルを９日間トランスフェクトした。染色のために実験１５日目に４時間トランスフェクション培養物を固定し、１１日目に２４時間トランスフェクション培養を固定した。（Ｂ）誘導９日目にこの培養物を追い越すほとんどコンフルエントなｈＥＳＣ様コロニーを示す、同じ実験由来の４００ｎｇ／ｍｌ Ｓｔｅｍｆｅｃｔウェルの１０×明視野イメージング。（Ｃ）４００ｎｇ／ｍｌ Ｓｔｅｍｆｅｃｔレジメンを使用して１００Ｋ ＸＦＦを９日間再度トランスフェクトした追跡調査試行における、マークした視野の１０×明視野の時間経過であり、上皮化と、その後のｈＥＳＣ様コロニーの出現を示す。 図２は、Ｍ_３Ｏに基づくカクテルを使用したフィーダーフリー再プログラム化を示す図である。（Ａ）ｃ−ＭｙｃおよびＬ−Ｍｙｃに基づくカクテルならびに４時間および２４時間トランスフェクションレジメンを比較する、５０Ｋ ＸＦＦ線維芽細胞におけるフィーダーフリー誘導由来のＴＲＡ−１−６０^＋コロニー収量を示す免疫蛍光イメージング。全ウェルを９日間トランスフェクトした。染色のために実験１５日目に４時間トランスフェクション培養物を固定し、１１日目に２４時間トランスフェクション培養を固定した。（Ｂ）誘導９日目にこの培養物を追い越すほとんどコンフルエントなｈＥＳＣ様コロニーを示す、同じ実験由来の４００ｎｇ／ｍｌ Ｓｔｅｍｆｅｃｔウェルの１０×明視野イメージング。（Ｃ）４００ｎｇ／ｍｌ Ｓｔｅｍｆｅｃｔレジメンを使用して１００Ｋ ＸＦＦを９日間再度トランスフェクトした追跡調査試行における、マークした視野の１０×明視野の時間経過であり、上皮化と、その後のｈＥＳＣ様コロニーの出現を示す。

図３は、４種の異なるｍＲＮＡカクテルを使用した再プログラム化効率の比較を示す図である。４カクテル比較実験をまとめるフローチャート。

図４は、ＨＤＦ−ａフィーダーフリー再プログラム化培養物におけるｈＥＳＣ様コロニーを示す図である。Ｓｔｅｍｆｅｃｔトランスフェクション試薬を使用して培地サプリメントとして送達した４００ｎｇ／ｍｌ ｍＲＮＡカクテル（Ｍ_３Ｏ＋ｃ−Ｍｙｃ^＋Ｎａｎｏｇ^＋）で９日間処理した、７５Ｋ ＨＤＦ−ａ成体線維芽細胞からのフィーダーフリー誘導９日目に出現したｈＥＳＣ様コロニーの１０×明視野像。

図５は、合成ｍＲＮＡカクテルの作製を示す図である。（Ａ）ｍＲＮＡ再プログラム化カクテルを作製するための手順をまとめた模式図。（Ｂ）ＳＹＢＲ Ｅ−ゲルにおける、多数のＲＦおよび蛍光レポーターをコードする合成ｍＲＮＡ。１レーン当たり５００ｎｇのＲＮＡをロードした。 図５は、合成ｍＲＮＡカクテルの作製を示す図である。（Ａ）ｍＲＮＡ再プログラム化カクテルを作製するための手順をまとめた模式図。（Ｂ）ＳＹＢＲ Ｅ−ゲルにおける、多数のＲＦおよび蛍光レポーターをコードする合成ｍＲＮＡ。１レーン当たり５００ｎｇのＲＮＡをロードした。

図６は、カクテルの再プログラム化に２−チオウラシルを使用する、合成ｍＲＮＡカクテルの作製を示す図である。ＳＹＢＲ Ｅ−ゲルにおける、多数のＲＦをコードする合成ｍＲＮＡ。ｍＲＮＡは、それらのウラシル塩基の１０％が２−チオウラシルで置き換えられている。１レーン当たり１００ｎｇのＲＮＡをロードした。

図７は、ｍＲＮＡが２−チオウラシルで修飾されたｍＲＮＡカクテルを使用して作製されたヒトｉＰＳＣを示す図である。Ｐｌｕｒｉｔｏｎ（Ａ）またはＡｌｌｅｌｅ Ｒｅｐｒｏｇｒａｍｍｉｎｇ培地（Ｂ）における異なる再プログラム化実行の間の再プログラム化の（Ａ）７日後または（Ｂ）１１日後のヒトｉＰＳＣ集団。 図７は、ｍＲＮＡが２−チオウラシルで修飾されたｍＲＮＡカクテルを使用して作製されたヒトｉＰＳＣを示す図である。Ｐｌｕｒｉｔｏｎ（Ａ）またはＡｌｌｅｌｅ Ｒｅｐｒｏｇｒａｍｍｉｎｇ培地（Ｂ）における異なる再プログラム化実行の間の再プログラム化の（Ａ）７日後または（Ｂ）１１日後のヒトｉＰＳＣ集団。

図８は、フィーダーフリー再プログラム化培養においてｍＲＮＡカクテルを使用して作製されたカニクイザルｉＰＳＣコロニーを示す図である。１０日目および１３日目に出現したｈＥＳＣ様コロニーの１０×明視野像が図において示される。１０日目のパネルにおいて、中央に近い細胞は、線維芽細胞から幹細胞への形態変化を示す。１３日目のパネルにおいて、細胞は、完全に形質転換されたサルｉＰＳＣの大きなコロニーを形成した。

本発明の記載において、本明細書において定義されていないあらゆる用語は、本技術分
野において認識されているその一般的な意義を有する。次の記載が本発明の特異的な実施
形態または特定の使用の記載である程度まで、これは、単なる説明のために企図されてお
り、特許請求されている発明を限定するためのものではない。次の記載は、本発明の精神
および範囲に含まれているあらゆる代替物、修正および均等物を網羅するよう企図されて
いる。

分化細胞は、転写因子の選択群の発現により多能性状態に復帰することができ、この事
実は、患者特異的な細胞を使用して、ｉｎ ｖｉｔｒｏにおける遺伝性疾患の研究のため
に、そして最終的には細胞補充療法のために、いかなる所望の種類の細胞も生成すること
ができるという見通しを切り開いた。再プログラム化因子の発現は、ゲノム組み込み型ウ
イルスベクターの適用により達成することができ、ｉＰＳＣ誘導は、通常、依然として組
み込み型レトロウイルスまたはレンチウイルスにより行われる。付随するゲノム改変は、
ｉＰＳＣの治療応用に対する重要なハードルを表し、一方、組み込まれたウイルスカセッ
トからの発現再活性化の可能性は、ｉｎ ｖｉｔｒｏ研究であっても懸念となる。近年、
ゲノム改変問題を軽減またはなくす新規発現ベクターの適用において相当な進歩が為され
た。現在、ｌｏｘ組換え部位に隣接した単一のポリシストロニックカセットにおいてｉＰ
ＳＣ誘導に要求される複数の因子をコードするレンチウイルスベクターを利用することが
でき、この構成により、このベクターは、Ｃｒｅリコンビナーゼの一過性発現により、再
プログラム化後に導入遺伝子をほぼシームレスに切除することができる。導入遺伝子挿入
とその後の切除は、トランスポゾンベクターを使用し、続いてトランスポサーゼを短時間
発現することにより達成することもできる。アデノウイルス、プラスミドおよびエピソー
ムＤＮＡを含む、再プログラム化因子を十分な時間一過性発現して多能性を誘導すること
のできる数種の異なる種類の非組み込み型ＤＮＡベクターが用いられてきた。低効率では
あるが、細胞透過性ペプチドを組み入れる組換えＲＦタンパク質による細胞の反復的形質
導入によりｉＰＳＣを生成することが可能であることも判明した。現在、相対的に効率的
なｉＰＳＣ転換は、完全にＲＮＡに基づく生殖周期を有するセンダイウイルスを使用して
、また、山中（Yamanaka）因子をコードする合成ｍＲＮＡ転写物の持続的トランスフェク
ションにより達成することができる。

再プログラム化（ならびに潜在的には、定方向分化および分化転換）へのｍＲＮＡトラ
ンスフェクションの適用は魅力的であるが、その理由として、この系は、再プログラム化
カクテルおよびさらには個々の構成成分因子の発現を、どの転写物を細胞培養培地に加え
るか単純に変化させることにより日々モジュレートできることが挙げられる。特定の因子
のトランスフェクションが終了すると、細胞質におけるｍＲＮＡの急速な崩壊により、標
的細胞内の異所性発現が迅速に終わる。非組み込み型ＤＮＡベクターまたはＲＮＡウイル
スとは対照的に、ｍＲＮＡトランスフェクションに浄化は要求されず、ランダムゲノム組
み込みまたは持続性のウイルス感染のいかなるリスクもない。最終的に複数ラウンドの異
所性ＲＦ発現を用いて、患者生検から、ｉＰＳＣ中間体を経て所望の種類の特殊化した細
胞を得ることができると想定する場合、これらの利点は、より大きな重要性を仮定する。
にもかかわらず、現在実施されているｍＲＮＡに基づく再プログラム化には弱点が存在す
る。ＲＦの発現は、典型的には、ｍＲＮＡがトランスフェクトされてからおおよそ２４時
間は頑強であるが、ヒト細胞において多能性を誘導するためには約２週間の因子発現を要
し、そのため、この技法による細胞の再プログラム化に要求される実践時間は、相対的に
長い。あらゆる細胞型および培養培地が、効率的なｍＲＮＡ送達に等しく貢献するとは限
らず、これは現在、血液細胞を含む対象とするある特定の細胞型の、ｍＲＮＡに基づく再
プログラム化に対する妨害となっている。また、現在のところ、ｍＲＮＡ方法を使用して
ｉＰＳＣへの細胞の再プログラム化を成功させるために、有糸分裂停止した線維芽細胞の
フィーダー層を用いることが必要であると判明した。標的細胞は、ｉＰＳＣ誘導に要求さ
れる延長された時間経過にわたって低い出発密度から成長させるため、このようなフィー
ダー細胞は、培養物の集団密度を緩衝し、ＲＮＡおよびトランスフェクション試薬（両方
とも関連毒性を有する）の送達される用量を一定にし、再プログラム化プロセスによって
生み出されるアポトーシス促進性および細胞増殖抑制性の力を前にして標的細胞の生存率
を支持する。この要件は、手順に複雑さおよび実践時間を加え、特に、フィーダーそれ自
体がトランスフェクションに付される場合、技術的可変性の重要な発生源を導入する。フ
ィーダー層の存在はまた、再プログラム化プロセスのモニターおよび解析を妨げる。最後
に、ヒトフィーダー細胞は現在、ｍＲＮＡ再プログラム化の標準であるが、その誘導およ
び増大化において非ヒト動物性製品が使用されている場合、係る細胞は、潜在的な異種生
物学的汚染源でもある。

したがって、以前より公知の手順に伴う課題に鑑みて、再プログラム化の効率が改善さ
れ、その結果得られる細胞の品質が改善された、ｉＰＳＣを産生するための新規方法、材
料およびプロトコールが本明細書に提供されている。本発明の実施形態を首尾よく使用し
て、細胞に送達されるＲＦカクテルの増強により、著しい驚くべき予想外の改善を達成し
た。本発明の実施形態はまた、ｍＲＮＡ再プログラム化プロセスを圧縮および合理化し、
フィーダー細胞または他のいかなる潜在的に異種汚染された試薬も使用せずにヒト線維芽
細胞からフットプリントフリーｉＰＳＣの産生を支持する新規プロトコール（複数可）を
提供する。本明細書に提供されている新規方法および組成物は、以前から公知のｍＲＮＡ
方法の利益を拡大させ、ｉＰＳＣ技術の治療応用に対する残りの障害物を乗り越えるのに
役立つであろう。

本開示は、全般的には、動態的に調節されたプロセスによる人工多能性幹細胞（ｉＰＳ
Ｃ）の作製に、操作された再プログラム化因子（複数可）を使用する方法に関する。より
具体的には、本発明は、異なる種類の細胞の再プログラム化に最適化された、従来の再プ
ログラム化因子とトランス活性化ドメインの融合体を含む、再プログラム化因子の組合せ
を確立するステップと、適切なレベルの導入遺伝子発現をもたらす方法により、これらの
因子を合成メッセンジャーＲＮＡ（ｍＲＮＡ）として好ましい密度の培養哺乳動物細胞に
導入するステップと、規定の条件下で細胞を維持して、以前には達成不可能な効率で再プ
ログラム化をもたらすステップとに関する。本技術分野において公知の他の方法と比較す
ると、本発明は、再プログラム化に関与する時間、費用および労力を劇的に低下させ、完
全にフィーダーフリーおよび異種フリーであり継代を伴わない選択肢を有する。本明細書
に開示されている材料および手順は、ヒト線維芽細胞を含む異なる種類の哺乳動物細胞か
らの人工多能性幹細胞の作製に有用である。

本開示の態様はまた、ウイルスベクター、動物性製品またはフィーダー細胞を必要とし
ない、メッセンジャーＲＮＡ分子を使用することによる、人体の種々の異なる組織を産生
することのできる幹細胞を生成するための方法を提供する。本明細書に開示されている新
規方法を使用して、最適条件下において驚くべき予想外の効率で、ヒト線維芽細胞を人工
多能性幹細胞（ｉＰＳＣ）へと再プログラム化することができる。

本開示は、本明細書に記載されている例示的な再プログラム化因子をコードする「クリ
ーンアップされた」ｍＲＮＡのカクテルを用いる、非ヒト哺乳動物細胞（例えば線維芽細
胞）を処置するための有用なプロセスおよび組成物を提供する。ｍＲＮＡ組成物は、処置
した細胞をｍＲＮＡ分子の導入に関連する細胞死に至らせることなく、使用され得る。一
実施形態では、非ヒト哺乳動物細胞は、カニクイザル細胞である。別の実施形態では、カ
ニクイザル細胞は、細胞が様々な局所密度で成長するように、ウェル内で勾配で播種され
る。

定義
本明細書において、本方法による使用に適した細胞として、初代細胞および樹立細胞株
、胚性細胞、免疫細胞、幹細胞および分化細胞が挙げられるがこれらに限定されず、その
例として、線維芽細胞、実質細胞、造血細胞および上皮細胞を含む、外胚葉、内胚葉およ
び中胚葉に由来する細胞等が挙げられるがこれらに限定されない。本明細書において、幹
細胞は、造血幹細胞、間葉系幹細胞、上皮幹細胞および筋サテライト細胞等、単能性細胞
、複能性細胞および多能性細胞；胚性幹細胞および成体幹細胞を含む。一実施形態におい
て、体細胞は、脱分化または再プログラム化される。いかなる適した体細胞を使用しても
よい。代表的な体細胞として、線維芽細胞、ケラチノサイト、含脂肪細胞（adipocyte）
、筋細胞、臓器および組織細胞、ならびに造血幹細胞を含む造血細胞および短期または長
期造血生着をもたらす細胞等が挙げられるがこれらに限定されない様々な血液細胞が挙げ
られる。最も好ましい細胞型として、ヒト線維芽細胞、ケラチノサイトおよび造血幹細胞
が挙げられるがこれらに限定されない。本方法は、脱分化および任意選択で再分化細胞に
特に有用であり、細胞ゲノムに永続的な変更を生じない。

開示されている方法において有用なＲＮＡは、ｍＲＮＡ、制御性ＲＮＡまたはｓｉＲＮ
ＡもしくはｍｉＲＮＡ等の低分子ＲＮＡを含み、１種または複数のｍＲＮＡは、細胞を脱
分化または再プログラム化するよう機能するポリペプチドをコードする。トランスフェク
ションの効率は高い。典型的には、トランスフェクトされた細胞集団の９０％超が、導入
されたＲＮＡを発現するであろう。したがって、細胞に１種または複数の別個のＲＮＡを
トランスフェクトすることが可能である。例えば、細胞の集団に、１種もしくは複数の別
個のｍＲＮＡ、１種もしくは複数の別個のｓｉＲＮＡ、１種もしくは複数の別個のｍｉＲ
ＮＡまたはこれらの組合せをトランスフェクトすることができる。細胞の集団に、複数の
ＲＮＡを単一の投与において同時にトランスフェクトすることができ、あるいは複数の投
与を、数分間、数時間、数日間または数週間置いて交互に行うことができる。複数の別個
のＲＮＡのトランスフェクションを交互に行うことができる。例えば、１種または複数の
追加的なＲＮＡの発現に先立ち、第１のＲＮＡが発現されることが望ましい場合に。

インプットＲＮＡの量を変化させて、各トランスフェクトされたＲＮＡの発現レベルを
個々に制御できるようにすることにより、トランスフェクトされたＲＮＡの発現のレベル
を広範囲にわたって操作することができる。インプットＲＮＡの有効量は、所望の結果に
基づき決定される。さらに、ＰＣＲに基づくｍＲＮＡ産生技法は、異なる構造およびドメ
イン組合せを有するｍＲＮＡの設計を容易にする。開示されている方法において有用なＲ
ＮＡは、本技術分野において公知のものであり、標的宿主細胞型と、操作しようとする経
路もしくは細胞活性、または治療応用に基づき選択されるであろう。細胞の脱分化、例え
ば、成体の分化した体細胞を幹細胞へと転換するのに有用な構築物は、公知の遺伝子、ｍ
ＲＮＡまたは他のヌクレオチドもしくはタンパク質配列に基づき構築することができる。

本明細書において互換的に使用されている用語「ポリヌクレオチド」および「核酸」は
、リボヌクレオチドまたはデオキシリボヌクレオチドのいずれかである、いずれかの長さ
のポリマー型のヌクレオチドを指す。よって、この用語は、一本、二本または複数鎖ＤＮ
ＡまたはＲＮＡ、ゲノムＤＮＡ、ｃＤＮＡ、ＤＮＡ−ＲＮＡハイブリッド、あるいはプリ
ンおよびピリミジン塩基または他の天然、化学もしくは生化学的に修飾された非天然また
は誘導体化ヌクレオチド塩基を含むポリマーを含むがこれらに限定されない。「オリゴヌ
クレオチド」は一般に、一本または二本鎖ＤＮＡである約５〜約１００ヌクレオチドの間
のポリヌクレオチドを指す。しかし、本開示の目的において、オリゴヌクレオチドの長さ
に上限は存在しない。オリゴヌクレオチドは、オリゴマーまたはオリゴとしても公知のも
のであり、遺伝子から単離することができ、あるいは本技術分野において公知の方法によ
り化学合成することができる。

本明細書において、用語「マイクロＲＮＡ」は、いずれかの種類の干渉ＲＮＡを指し、
例として、内在性マイクロＲＮＡおよび人工マイクロＲＮＡ（例えば、合成ｍｉＲＮＡ）
等が挙げられるがこれらに限定されない。内在性マイクロＲＮＡは、ｍＲＮＡの生産的利
用をモジュレートすることのできる、ゲノムにおいて天然にコードされている低分子ＲＮ
Ａである。人工マイクロＲＮＡは、ｍＲＮＡの活性をモジュレートすることのできる、内
在性マイクロＲＮＡを除くいかなる種類のＲＮＡ配列であってもよい。マイクロＲＮＡ配
列は、これらの配列のうちいずれか１種または複数で構成されたＲＮＡ分子となり得る。

「マイクロＲＮＡ前駆体」（または「プレｍｉＲＮＡ」）は、マイクロＲＮＡ配列が組
み入れられたステム・ループ構造を有する核酸を指す。「成熟マイクロＲＮＡ」（または
「成熟ｍｉＲＮＡ」）は、マイクロＲＮＡ前駆体（「プレｍｉＲＮＡ」）から切断された
、あるいは合成された（例えば、無細胞合成により研究室において合成された）マイクロ
ＲＮＡを含み、約１９ヌクレオチド〜約２７ヌクレオチドの長さを有する、例えば、成熟
マイクロＲＮＡは、１９ｎｔ、２０ｎｔ、２１ｎｔ、２２ｎｔ、２３ｎｔ、２４ｎｔ、２
５ｎｔ、２６ｎｔまたは２７ｎｔの長さを有し得る。成熟マイクロＲＮＡは、標的ｍＲＮ
Ａに結合し、標的ｍＲＮＡの翻訳を阻害することができる。

ＯＣＴ４の例示的なゲノム、ｍＲＮＡ（ｃＤＮＡ）およびタンパク質配列は、本技術分
野において公知のものであり、例えば、（ＯＣＴ４）ＰＯＵ５Ｆ１ ＰＯＵクラス５ホメ
オボックス［Ｈｏｍｏ ｓａｐｉｅｎｓ］遺伝子ＩＤ：５４６０を参照されたい。これは
、ｍＲＮＡ（ｃＤＮＡ）配列Ｇｅｎｂａｎｋ受託番号ＮＭ＿００１１７３５３１．１、標
題Ｈｏｍｏ ｓａｐｉｅｎｓ ＰＯＵクラス５ホメオボックス１（ＰＯＵ５Ｆ１）、転写
物バリアント３、ｍＲＮＡ；Ｇｅｎｂａｎｋ受託番号ＮＭ＿００２７０１．４、標題Ｈｏ
ｍｏ ｓａｐｉｅｎｓ ＰＯＵクラス５ホメオボックス１（ＰＯＵ５Ｆ１）転写物バリア
ント１、ｍＲＮＡ；およびＧｅｎｂａｎｋ受託番号ＮＭ＿２０３２８９．４、標題Ｈｏｍ
ｏ ｓａｐｉｅｎｓ ＰＯＵクラス５ホメオボックス１（ＰＯＵ５Ｆ１）、転写物バリア
ント２、ｍＲＮＡを提示する。ＳＯＸ２の例示的なゲノム、ｍＲＮＡ（ｃＤＮＡ）および
タンパク質配列もまた、本技術分野において公知のものであり、例えば、ＳＯＸ２ ＳＲ
Ｙ（性決定領域Ｙ）−ｂｏｘ２［Ｈｏｍｏ ｓａｐｉｅｎｓ］、遺伝子ＩＤ：６６５７を
参照されたい。これは、ｍＲＮＡ（ｃＤＮＡ）配列Ｇｅｎｂａｎｋ受託番号ＮＭ＿００３
１０６．２、標題ｍＲＮＡ配列Ｈｏｍｏ ｓａｐｉｅｎｓ ＳＲＹ（性決定領域Ｙ）−ｂ
ｏｘ２（ＳＯＸ２）、ｍＲＮＡを提示する。ＮＡＮＯＧの例示的なゲノム、ｍＲＮＡ（ｃ
ＤＮＡ）およびタンパク質配列もまた、本技術分野において公知のものであり、例えば、
ＮＡＮＯＧ Ｎａｎｏｇホメオボックス［Ｈｏｍｏ ｓａｐｉｅｎｓ］、遺伝子ＩＤ：７
９９２３を参照されたい。これは、ｍＲＮＡ（ｃＤＮＡ）配列Ｇｅｎｂａｎｋ受託番号Ｎ
Ｍ＿０２４８６５．２、標題Ｈｏｍｏ ｓａｐｉｅｎｓ Ｎａｎｏｇホメオボックス（Ｎ
ＡＮＯＧ）、ｍＲＮＡを提示する。ＬＩＮ２８の例示的なゲノム、ｍＲＮＡ（ｃＤＮＡ）
およびタンパク質配列もまた、本技術分野において公知のものであり、例えば、ＬＩＮ２
８ＡホモログＡ（Ｃ．ｅｌｅｇａｎｓ）［Ｈｏｍｏ ｓａｐｉｅｎｓ］、遺伝子ＩＤ：７
９７２７を参照されたい。これは、ｍＲＮＡ（ｃＤＮＡ）配列Ｇｅｎｂａｎｋ受託番号Ｎ
Ｍ＿０２４６７４．４、標題Ｈｏｍｏ ｓａｐｉｅｎｓ ｌｉｎ−２８ホモログＡ（Ｃ．
ｅｌｅｇａｎｓ）（ＬＩＮ２８Ａ）、ｍＲＮＡを提示する。ＫＬＦ４の例示的なゲノム、
ｍＲＮＡ（ｃＤＮＡ）およびタンパク質配列は、本技術分野において公知のものであり、
例えば、ＫＬＦ４クルッペル様因子４（腸）［Ｈｏｍｏ ｓａｐｉｅｎｓ］、遺伝子ＩＤ
：９３１４を参照されたい。これは、ｍＲＮＡ（ｃＤＮＡ）配列Ｇｅｎｂａｎｋ受託番号
ＮＭ＿００４２３５．４、標題Ｈｏｍｏ ｓａｐｉｅｎｓクルッペル様因子４（腸）（Ｋ
ＬＦ４）、ｍＲＮＡを提示する。ＭＹＣのｍＲＮＡ配列もまた、本技術分野において公知
のものであり、例えば、ＭＹＣ ｖ−ｍｙｃ骨髄球腫症ウイルス癌遺伝子ホモログ（トリ
）［Ｈｏｍｏ ｓａｐｉｅｎｓ］、遺伝子ＩＤ：４６０９を参照されたい。これは、ｍＲ
ＮＡ（ｃＤＮＡ）配列Ｇｅｎｂａｎｋ受託番号ＮＭ＿００２４６７．４、標題Ｈｏｍｏ
ｓａｐｉｅｎｓ ｖ−ｍｙｃ骨髄球腫症ウイルス癌遺伝子ホモログトリ）（ＭＹＣ）、ｍ
ＲＮＡを提示する。

「ステム・ループ構造」は、主として一本鎖ヌクレオチド（ループ部分）の領域により
一側面において連結された二本鎖（ステム部分）を形成することが公知または予測される
ヌクレオチドの領域を含む、二次構造を有する核酸を指す。用語「ヘアピン」および「折
り畳み」構造もまた、ステム・ループ構造を指すように本明細書において使用されている
。係る構造は、本技術分野において周知のものであり、これらの用語は、本技術分野にお
けるその公知の意義と一貫して使用されている。二次構造が存在するのであれば、ステム
・ループ構造内のヌクレオチドの実際の一次配列は、本発明の実施に決定的ではない。本
技術分野において公知の通り、二次構造は、正確な塩基対形成を要求しない。よって、ス
テムは、１個または複数の塩基ミスマッチを含むことができる。あるいは、塩基対形成は
、正確であってもよい、即ち、いかなるミスマッチも含まない。

本明細書において、用語「幹細胞」は、増殖するよう誘導することのできる未分化細胞
を指す。幹細胞は、自己保全を行うことができ、これは、各細胞分裂により、一方の娘細
胞も幹細胞となることができることを意味する。幹細胞は、胚性、胎児、出生後、若年期
または成体組織から得ることができる。用語「先駆細胞」は、本明細書において、幹細胞
に由来する未分化細胞を指し、これ自体は幹細胞ではない。一部の先駆細胞は、２種以上
の細胞型に分化することができる後代を産生することができる。

用語「人工多能性幹細胞」（または「ｉＰＳ細胞」）は、本明細書において、体細胞、
例えば、分化した体細胞から誘導された幹細胞を指し、前記体細胞よりも高い潜在能力を
有する。ｉＰＳ細胞は、自己再生し、成熟細胞、例えば、平滑筋細胞へと分化することが
できる。ｉＰＳは、平滑筋先駆細胞へと分化することもできる。

本明細書において、細胞に関する用語「単離された」は、細胞が天然に発生する環境と
は異なる環境に存在する細胞を指し、例えば、細胞が多細胞生物において天然に発生し、
細胞がこの多細胞生物から取り出される場合、細胞は「単離された」。単離された遺伝子
改変宿主細胞は、遺伝子改変宿主細胞の混合集団、または遺伝子改変宿主細胞および遺伝
子改変されていない宿主細胞を含む混合集団に存在し得る。例えば、単離された遺伝子改
変宿主細胞は、ｉｎ ｖｉｔｒｏにおける遺伝子改変宿主細胞の混合集団、または遺伝子
改変宿主細胞および遺伝子改変されていない宿主細胞を含む混合ｉｎ ｖｉｔｒｏ集団に
存在し得る。

「宿主細胞」は、本明細書において、ｉｎ ｖｉｖｏまたはｉｎ ｖｉｔｒｏ細胞（例
えば、単細胞実体として培養された真核細胞）を表示し、このような真核細胞は、核酸（
例えば、外来性核酸）のレシピエントとして使用することができ、あるいは使用されたこ
とがあり、核酸により遺伝子改変された本来の細胞の後代を含む。単一の細胞の後代は、
天然、偶発的または計画的な突然変異によって、本来の親と形態またはゲノムまたは総Ｄ
ＮＡ相補体が必ずしも完全に同一でなくてもよいことが理解される。

用語「遺伝的改変」は、新たな核酸（即ち、細胞にとって外来性の核酸）の導入後に細
胞において誘導された、永続的なまたは一過性の遺伝的変化を指す。遺伝的変化（「改変
」）は、新たな核酸を宿主細胞のゲノムへと組み入れることにより、あるいは新たな核酸
を染色体外エレメントとして一過的または安定的に維持することにより達成することがで
きる。細胞が真核細胞である場合、永続的な遺伝的変化は、細胞のゲノムへの核酸の導入
により達成することができる。遺伝的改変の適した方法として、ウイルス感染、トランス
フェクション、コンジュゲーション、プロトプラスト融合、エレクトロポレーション、パ
ーティクルガン技術、リン酸カルシウム沈殿、直接的マイクロインジェクションその他が
挙げられる。

本明細書において、用語「外来性核酸」は、自然状態の細胞に正常にはまたは天然には
存在しないおよび／もしくは産生されない、ならびに／または細胞に導入される（例えば
、エレクトロポレーション、トランスフェクション、感染、リポフェクションまたは細胞
へと核酸を導入するその他の手段による）核酸を指す。

本明細書において、用語「処置」、「処置する」その他は、所望の薬理学および／また
は生理学的効果を得ることを指す。効果は、疾患またはその症状の完全または部分的防止
の観点から予防的であっても、ならびに／または疾患および／もしくは疾患に起因し得る
有害な影響の部分的または完全治癒の観点から治療的であってもよい。

「処置」は、本明細書において、哺乳動物、特にヒトにおける疾患のいかなる処置も網
羅し、（ａ）疾患の素因を有する可能性があるが、そうであるとは未だ診断されていない
対象における疾患発生の防止；（ｂ）疾患の阻害、即ち、その発症の停止；および（ｃ）
疾患の緩和、即ち、疾患を退行させることを含む。

本明細書において互換的に使用されている用語「個体」、「対象」、「宿主」および「
患者」は、ヒト、非ヒト霊長類、齧歯類（例えば、マウス、ラット等）、有蹄動物、イヌ
、ウサギ類、ネコ等が挙げられるがこれらに限定されない哺乳動物を指す。一部の実施形
態において、対象とする対象はヒトである。一部の実施形態において、対象は、サル、齧
歯類またはウサギ類等、非ヒト動物である。

「治療有効量」または「効果的な量」は、疾患を処置するために対象に投与されると、
疾患の係る処置をもたらすのに十分な化合物、核酸または多数の細胞の量を意味する。「
治療有効量」は、化合物または細胞、疾患およびその重症度、ならびに処置しようとする
対象の年齢、体重等に応じて変動するであろう。

本発明をさらに説明する前に、当然ながらこれは変動し得るため、本発明は、記載され
ている特定の実施形態に限定されないことを理解されたい。本発明の範囲は、添付の特許
請求の範囲によってのみ限定されるため、本明細書に使用されている用語法は、単に特定
の実施形態を説明することを目的とし、限定を企図していないことも理解されたい。

値の範囲が提示されている場合、文脈がそれ以外を明らかに指示しない限り、下限の単
位の１０分の１までの該範囲の上限および下限の間の各介在値、ならびに該規定範囲にお
けるその他の規定値または介在値は、本発明の範囲内に包含されることが理解される。こ
のようなより小さい範囲の上限および下限は、より小さい範囲に独立的に含まれることが
でき、これもまた本発明の範囲内に包含され、規定範囲におけるいずれかの特に除外され
た限界の対象となる。規定範囲が、限界の一方または両方を含む場合、含まれている限界
のいずれか一方または両方を除外する範囲もまた、本発明に含まれている。

他に定めがなければ、本明細書に使用されているあらゆる技術および科学用語は、本発
明が属する技術分野の当業者に一般に理解されているものと同じ意義を有する。本発明の
実施または検査において、本明細書に記載されているものと類似または均等のいかなる方
法および材料を使用してもよいが、好ましい方法および材料は、本明細書に記載されてい
る。刊行物の引用に関連する方法および／または材料を開示および記載するために、本明
細書に言及されているあらゆる刊行物を、ここに本明細書の一部を構成するものとしてそ
の内容を援用する。

本開示の一態様において、ｍＲＮＡに基づく再プログラム化は、Ｎ末端ＭｙｏＤトラン
ス活性化ドメイン（Hiraiら、Stem Cells、２０１１年）またはＶＰ１６トランス活性化
ドメインのＣ末端三重反復（Wangら、EMBO Reports、２０１１年；この場合、ＶＰ１６
トランス活性化ドメインをＯＣＴ４（Ｐｏｕ５ｆ１としても公知）、ＮＡＮＯＧおよびＳ
ＯＸ２それぞれに融合することにより合成再プログラム化因子を調製し、これら合成因子
は、強化された効率かつ加速された動態でマウスおよびヒト線維芽細胞の両方を再プログ
ラム化することができた）を組み入れたＯｃｔ４またはＳｏｘ２の操作されたバリアント
の使用により、あるいは２種の追加的な因子、ＲａｒｇおよびＬｒｈ−１による「標準」
ＲＦカクテルの増大化（Wangら、PNAS、２０１１年）により強化することができる。これ
ら文献それぞれの内容を、これによりここに本明細書の一部を構成するものとして援用す
る。強力な転写活性化因子は、ＤＮＡの特異的部位に結合すると、複数のクロマチンリモ
デリング複合体を有効に動員することができる。良い一例として、分化細胞の運命をスイ
ッチすることができる骨格筋形成のマスター転写因子であるＭｙｏＤが挙げられる。Ｈｉ
ｒａｉらは、ＭｙｏＤは、このように強力な転写因子であるため、一体に融合させた場合
にｉＰＳ因子のクロマチン到達性を増加させることができると推察した。Ｓｏｘ２および
Ｋｌｆ４と共にＯｃｔ−ＭｙｏＤ ＴＡＤ融合遺伝子を保有するレトロウイルスベクター
によりマウスまたはヒト細胞を形質導入すると、正準ｉＰＳ因子と比較してｉＰＳＣコロ
ニー数がほぼ５０倍増加された。同様に、頑強な転写活性化因子であると広く公知のＶＰ
１６は、異なるｉＰＳ因子に融合すると、再プログラム化において強力な刺激効果を提示
することができる。

ヒトｉＰＳＣの例示的な調製
本方法を細胞の再分化または再プログラム化に広く使用して、例えば、造血幹細胞、間
葉系幹細胞、上皮幹細胞および筋サテライト細胞、または赤血球細胞、リンパ球を含む白
血球細胞、血小板、ストローマ細胞、脂肪細胞、破骨細胞を含む骨細胞、皮膚細胞を含む
上皮組織、平滑筋、骨格筋および心筋を含む筋組織、内皮細胞を含む血管組織、肝細胞を
含む肝臓組織ならびにニューロンを含む神経組織等が挙げられるがこれらに限定されない
ヒト組織の分化細胞を形成するようさらにモジュレートすることのできるｉＰＳ細胞を産
生することもできる。心筋細胞、造血幹細胞、破骨細胞等の骨細胞、肝細胞、網膜細胞お
よびニューロン等が挙げられるがこれらに限定されない様々な分化細胞型へとｉＰＳ細胞
の分化を誘導する方法。単離された胚性幹細胞、造血幹細胞および人工多能性幹細胞等が
挙げられるがこれらに限定されない幹細胞は、分化を誘導するＲＮＡの一過性トランスフ
ェクションにより、分化するよう誘導することができる。その上またはその代わりに、細
胞型特異的条件下で細胞を培養することにより、細胞を再分化させることができる。例え
ば、ｉＰＳ細胞は、ＣＦ−１フィーダーにおいて維持し、その後フィーダーフリー条件に
適応させることができる。ノギン、Ｄｋｋ−１およびＩＧＦ−１の存在下で細胞を培養す
ることにより、ｉＰＳ細胞を誘導して分化した網膜細胞を形成させることができる。

以前に報告された方法論は、改変された因子を運ぶために、組み込み型ベクター、即ち
、ウイルスまたはプラスミドに利用していた。一実施形態において、ｍＲＮＡ再プログラ
ム化のための５種の因子（Ｏｃｔ４、Ｓｏｘ２、Ｋｌｆ４、ｃＭｙｃ−Ｔ５８ＡおよびＬ
ｉｎ２８）の転写物を含む６種の異なるｍＲＮＡ組合せカクテル、またはＲａｒｇおよび
Ｌｒｈ−１を含む７再プログラム化因子ＲＦカクテルの性能を比較しつつ、再プログラム
化試行を行い、野生型Ｏｃｔ４ならびにＭｙｏＤ−およびＶＰ１６−Ｏｃｔ４融合構築物
（それぞれＭ_３ＯおよびＶＰｘ３と命名）に基づく３種の変種において各組合せを検査し
た。フィーダーに基づく再プログラム化培養において１１日間ＢＪ線維芽細胞をトランス
フェクトし、この時点までに、ウェルのいくつかにおいて進行した形態が明らかとなった
。続く数日間にわたって、野生型Ｏｃｔ４およびＭ_３Ｏに基づくカクテルをトランスフェ
クトしたウェルにおいて、特徴的なｈＥＳＣ形態を有するコロニーが出現した。ＶＰｘ３
トランスフェクト培養における標的細胞は、加速的な成長およびフォーカスに凝集する一
部の傾向およびコロニー出現なしを示してはいたが、線維芽細胞の形態を保持していた。
野生型Ｏｃｔ４およびＭ_３Ｏに基づくカクテルの５因子および７因子の実施形態は、同様
のコロニー生産性を示し、したがって、カクテルにおけるＲａｒｇおよびＬｒｈ−１の包
含による利点は生じなかった。しかし、Ｍ_３Ｏカクテルは、野生型Ｏｃｔ４により産生さ
れたコロニーの数倍の数を生じた。この結果を踏まえ、増大化およびさらなる解析のため
に、Ｍ_３Ｏ ５因子ウェルからコロニーを採取した（図１）。核および細胞表面マーカー
の免疫染色により、また、３種の一次胚葉へのｉｎ ｖｉｔｒｏ分化により、Ｍ_３Ｏ由来
コロニーの多能性を確認した。６種の増大化させたｉＰＳＣクローンを、核型解析および
ＤＮＡフィンガープリント法に付したところ、全事例において細胞の核型の正常性および
ＢＪ系列が確認された。

本方法を細胞の再分化または再プログラム化に広く使用して、例えば、造血幹細胞、間
葉系幹細胞、上皮幹細胞および筋サテライト細胞、または赤血球細胞、リンパ球を含む白
血球細胞、血小板、ストローマ細胞、脂肪細胞、破骨細胞を含む骨細胞、皮膚細胞を含む
上皮組織、平滑筋、骨格筋および心筋を含む筋組織、内皮細胞を含む血管組織、肝細胞を
含む肝臓組織ならびにニューロンを含む神経組織等が挙げられるがこれらに限定されない
ヒト組織の分化細胞を形成するようさらにモジュレートすることができるｉＰＳ細胞を産
生することもできる。心筋細胞、造血幹細胞、破骨細胞等の骨細胞、肝細胞、網膜細胞お
よびニューロン等が挙げられるがこれらに限定されない様々な分化細胞型へとｉＰＳ細胞
の分化を誘導する方法は、本技術分野において公知のものである（Songら、Cell Res.、
１９巻（１１号）：１２３３〜４２頁（２００９年）、Lambaら、PLoS One、５巻（１号
）：ｅ８７６３頁（２０１０年）、Gaiら、Cell Biol Int.２００９３３巻（１１号）
：１１８４〜９３頁（２００９年）、Grigoriadisら、Blood、１１５巻（１４号）：２７
６９〜７６頁（２０１０年））。単離された胚性幹細胞、造血幹細胞および人工多能性幹
細胞等が挙げられるがこれらに限定されない幹細胞は、分化を誘導するＲＮＡの一過性ト
ランスフェクションにより、分化するよう誘導することができる。その上またはその代わ
りに、細胞型特異的条件下で細胞を培養することにより、細胞を再分化させることができ
る。例えば、ｉＰＳ細胞は、ＣＦ−１フィーダーにおいて維持し、その後フィーダーフリ
ー条件に適応させることができる。ノギン、Ｄｋｋ−１およびＩＧＦ−１の存在下で細胞
を培養することにより、ｉＰＳ細胞を誘導して分化した網膜細胞を形成させることができ
る。別の態様において、ｍＲＮＡカクテルの効力は、Ｎａｎｏｇ転写物の包含によりさら
に強化させることができる。本実施形態において、フィーダーにおいて５０Ｋ ＢＪ線維
芽細胞を含有する４個のウェルに、野生型Ｏｃｔ４またはＭ_３Ｏに基づく５因子または６
因子カクテルを６日間トランスフェクトし、次に、各培養物を新鮮なフィーダーにおいて
１：６継代して、６ウェルプレート（４）に定着させた。各プレート内でさらに０〜５日
間トランスフェクションを継続した。ｉＰＳＣ生産性における異なるカクテルおよびトラ
ンスフェクション時間経過の影響を評価するために、１８日目に（０日目は、第１のトラ
ンスフェクションに相当する）培養物を固定し、ＴＲＡ−１−６０抗体で染色した。結果
は、カクテルへのＮａｎｏｇの追加が、用いたＯｃｔ４バリアントに関係なく非常に有益
であり、一方、Ｍ_３ＯおよびＮａｎｏｇを共に使用した場合に最大の転換効率が獲得され
たことを示した。

一実施形態において、３種の追加的なヒト線維芽細胞株（ＨＤＦ−ｆ、ＨＤＦ−ｎおよ
びＸＦＦ）を使用した追加的なフィーダーに基づく実験において、Ｍ_３Ｏに基づく５因子
または６因子カクテルの有効性を確認した。再プログラム化動態および効率は、正常増大
化培養においてＢＪよりも速い自然集団倍加時間を呈したこれら低継代系統の全３種によ
り、顕著に改善された。一部の事例において、本出願人らは、早くもトランスフェクショ
ン６日間からｈＥＳＣ様コロニーを得たが、収量は、さらに数日間トランスフェクション
を継続した実験においてはるかに高かった。新鮮な細胞の添加によるフィーダー層の定期
的補強に関与する実験は、この戦略はいくらかの利益をもたらし得るが、得られたプロト
コールの複雑さにより相殺されるであろうことを示唆した。したがって、本出願人らは、
合理化されたフィーダーフリープロトコールの開発へと、より強力なカクテルを適用する
ことに集中すると決断した。

本開示は、フィーダーフリーｉＰＳＣの作製に関する。フィーダー非依存的ｉＰＳＣ誘
導は、一般に、用いられている再プログラム化技術に関係なく幾分厄介であるが、持続的
トランスフェクションレジメの文脈において特殊な困難を生じることが判明した。細胞生
存率および増殖活性を損なうことなく線維芽細胞を蒔くことのできる密度には下限が存在
する。低密度培養において有糸分裂停止またはアポトーシスを行うという細胞の性向は、
再プログラム化因子のトランスフェクションおよび異所性発現により細胞にストレスを与
えると増悪される。さらに、フィーダーに基づく再プログラム化に特徴的な高い細胞密度
において優れた耐容性を示すＲＮＡ用量は、より少ない細胞の間に分布させるとより過酷
な細胞毒性効果を生じる。同時に、ｍＲＮＡトランスフェクションにより達成することが
できる発現の浸透率は、線維芽細胞がコンフルエンスに達した後に激しく減退するが、こ
れはおそらく、接触阻害およびＧ１停止に伴うエンドサイトーシスの下方制御のためであ
ろう。込み入った培養におけるトランスフェクションに対する寛容性のこのような低下は
、細胞が間葉系−上皮移行（ＭＥＴ）を行った後の再プログラム化において軽減されると
考えられる。しかし、本ｍＲＮＡカクテルを使用した場合にヒト線維芽細胞がＭＥＴに達
するにはほぼ７日間が典型的に必要とされることは、細胞を最低生存可能な初期密度で蒔
いたとしても、線維芽細胞過成長の問題の阻止を困難にする。継代することにより細胞を
疎らにして、この運命を先延ばしにすることができるが、非常にストレスを与えられた再
プログラム化中間体のプレーティング効率は予測が難しく、いずれの場合においても、継
代に基づく誘導プロトコールは、簡便さを犠牲にし、ハイスループット適用にはスケール
を不十分にするであろう。ある特定の実施形態では、細胞はまた、異なる局所細胞密度が
反復的トランスフェクションを容易にし得るように、ウェル内で勾配で播種され得る。

本開示は、ＭＥＴの表現型指標に関する（線維芽細胞プロセスの退行ならびにフォーカ
スおよび玉石形態の出現）。一実施形態において、ＭＥＴは、強化されたカクテルを使用
した本出願人らの発明により加速され、これは、６因子Ｍ_３Ｏカクテルを使用し、継代な
しで、標的細胞を種々の低密度（ウェル当たり５０Ｋ対１００Ｋ対１５０Ｋ）で播種して
、フィーダーフリー再プログラム化を可能にした。別の実施形態では、細胞は、ウェル当
たり約１５Ｋから５００Ｋ細胞にわたる全細胞数の密度勾配で播種される。

本発明の一態様は、播種密度に対する高度な感受性が判明した再プログラム化培養物の
運命に関し、これはおそらく、過剰な細胞毒性および線維芽細胞過成長の効果の両方が、
トランスフェクションレジメの過程にわたって自己補強しているためである。「標準」Ｒ
ＮＡ投薬（ウェル当たり１２００ｎｇ）を使用する実験において、ウェル当たり１００Ｋ
で蒔いたＨＤＦ−ｎおよびＸＦＦ線維芽細胞から、数十個のｈＥＳＣ様コロニーを得たが
、相当する５０Ｋおよび１５０Ｋ培養物は、それぞれ集団衝突および線維芽細胞過成長に
陥った後に、数個のコロニーのみを生じた。２種の他の線維芽細胞株ＢＪおよびＨＤＦ−
ａを用いて試みた誘導において、最も有望な（１５０Ｋ）培養物であっても、コンフルエ
ンスに達した直後に実質的に静止状態となり、その後、遅延した動態で孤発性コロニーの
みを生じた。

本発明の一態様は、ｉｎ ｖｉｔｒｏで転写されたｍＲＮＡをサイズ排除クロマトグラ
フィーを介して精製して、それら自体でまたはｍＲＮＡと共にｄｓＲＮＡ構造を形成し得
る異常なＲＮＡ種を除去し、細胞性免疫応答を引き起こすことに関する。このような「ク
リーンアップされた」ｍＲＮＡ、すなわち、細胞免疫原性が低下したｍＲＮＡを使用する
ことで、勾配密度で成長した非ヒト霊長類細胞を有効に再プログラム化できた。

本発明の特異的な一実施形態において、本出願人らは、ストレス誘導性細胞老化を最小
化する試みにおいて、外界から５％酸素培養へとスイッチし、トランスフェクションの最
初の４日間をかけて４分の１用量から完全ＲＮＡ投薬へと徐々に増やした。

これら新たな条件を使用した本発明の一例において、本発明者らは、ｃ−ＭｙｃをＬ−
Ｍｙｃに置換することにより再プログラム化カクテルをさらに改善することができるか検
査した。

別の実施形態において、本出願人らは、別々のステップにおいて４時間早く送達するの
ではなく、毎日の培地交換により細胞にＲＮＡを添加する、単純化されたトランスフェク
ションスキームを評定した。「２４時間トランスフェクション」ウェルにおいてＲＮＡ投
薬をスケールダウンして、予想される細胞毒性増加を代償し、２種の異なるトランスフェ
クション試薬を検査した（ＲＮＡｉＭＡＸおよびＳｔｅｍｆｅｃｔ）。ウェル当たり５０
ＫでＸＦＦ細胞を蒔き、９日間トランスフェクトした。従来の「４時間トランスフェクシ
ョン」レジメは、ｃ−Ｍｙｃに基づくカクテルにより、ウェル当たりおおよそ百個のＴＲ
Ａ−１−６０^＋コロニーを生じたが、一方、Ｌ−Ｍｙｃカクテルの結果は比較的不十分で
あった（図２）。「２４時間トランスフェクション」培養の結果は、さらにまた印象的で
あった。これらのウェルのうち最も生産的なウェルにおいて（ｃ−Ｍｙｃ ４００ｎｇ／
ｍｌ Ｓｔｅｍｆｅｃｔ条件に相当する）、９日目、最後のトランスフェクションの２４
時間後に、培養物はほぼ過成長となり、ｈＥＳＣ様細胞を有した。「２４時間トランスフ
ェクション」のより優れた性能の機構的基盤は、細胞により放出される拡散性因子を濃縮
することにより、疎らな培養の有効密度増加の効果を有したものと思われる。このような
好ましいプロトコール条件を別の実例的実験において適用した場合、ウェル当たり７５Ｋ
細胞で播種した培養におけるＨＤＦ−ａ線維芽細胞を使用した誘導において、生産性は、
高度に増殖性のＸＦＦ細胞により達成されるものよりも注目に値しなかったが、早くもプ
ロトコール９日目までに多数のｈＥＳＣ様コロニーが再度出現した（図４）。

特定の一実施形態において、一般に使用される容量よりも少ない培地容量で、例えば、
１ｍｌ、０．７５ｍｌ、０．５ｍｌまたは細胞培養を持続することができる最小量の培地
で細胞を播種した場合、上に開示されている条件を使用した再プログラム化の効率は明ら
かに改善される。これにより、再プログラム化における係る少容量条件を本発明に組み入
れる。

本明細書に記載してきた実施形態は、決して本発明の適用のみではない。当業者であれ
ば、本開示が、やや可変的な条件下における、または再プログラム化、定方向分化もしく
は分化転換のための従来のもしくは操作された因子の同様の組合せによる、他の細胞の再
プログラム化にも有用であることを認識するであろう。

他の実施形態において、因子化学量論の最適化も、再プログラム化のペースを強化する
ことができる。ｍＲＮＡ方法は、独立的にｉｐＰＳＣ誘導の初期および後期に取り組むカ
クテルを定義する機会を与える。Ｍ３Ｏの使用から得られる利益は、ｉＰＳＣ生成への新
規の操作された再プログラム化因子の最近の適用に関する検証をもたらす。係る操作され
た再プログラム化因子は、ＳＯＸ２、ＫＬＦ４、ＣＭＹＣ、ＬＭＹＣ、ＬＩＮ２８、ＮＡ
ＮＯＧ等と、ＧＡＬ４、ＧＡＴＡ１、Ｐ５３等、ＶＰ１６またはＭＹＯＤ以外の因子由来
のトランス活性化ドメインの融合を含む。ｍＲＮＡの送達に使用される試薬および方法論
は、ｓｉＲＮＡおよびｍｉＲＮＡを同時トランスフェクトするのに使用することもでき、
これは、ｉＰＳＣ作製に有益であることが既に判明した。にもかかわらず、本明細書に開
示されているフィーダーフリープロトコールは、現在のプロトコールを上回る相当な進歩
を表し、再プログラム化に要求される時間を半分にまで低下させ、同等またはこれを超え
る労力および材料費の低下をもたらし、手順から手間のかかるステップを取り除き、増殖
因子またはサイトカインとほぼ同じ容易さで、即ち、培地サプリメントとしてｍＲＮＡを
細胞に送達する。

一部の実施形態において、細胞は、免疫応答をモジュレートするよう再プログラム化さ
れる。例えば、リンパ球は、再プログラム化されて制御性Ｔ細胞となり、それを必要とす
る患者にこれを投与して、免疫寛容、特に自己寛容を増加または移植することができる。
Ｆｏｘｐ３陽性Ｔ細胞の誘導または投与は、移植片拒絶等、自己免疫応答の低下において
、および／または糖尿病、多発性硬化症、喘息、炎症性腸疾患、甲状腺炎、腎臓疾患、関
節リウマチ、全身性エリテマトーデス、円形脱毛症（alopecia greata）、強直性脊椎炎
（anklosing spondylitis）、抗リン脂質症候群、自己免疫性アジソン病、自己免疫性溶
血性貧血、自己免疫性肝炎、自己免疫性内耳疾患、自己免疫性リンパ球増殖性症候群（Ａ
ＬＰＳ）、自己免疫性血小板減少性紫斑病（ＡＴＰ）、ベーチェット病、水疱性類天疱瘡
、心筋症、セリアックスプルー・皮膚炎、慢性疲労症候群・免疫不全症候群（ＣＦＩＤＳ
）、慢性炎症性脱髄性多発ニューロパチー、瘢痕性類天疱瘡、寒冷凝集素症、クレスト症
候群、クローン病、デゴス病、皮膚筋炎、皮膚筋炎−若年性、円板状ループス、本態性混
合型クリオグロブリン血症、線維筋痛症−線維筋炎、グレーブス病、ギラン・バレー、橋
本甲状腺炎、特発性肺線維症、特発性血小板減少性紫斑病（ＩＴＰ）、ＩｇＡ腎症、イン
スリン依存性糖尿病（Ｉ型）、若年性関節炎、メニエール病、混合性結合組織病、多発性
硬化症、重症筋無力症、尋常性天疱瘡、悪性貧血、結節性多発動脈炎、多発性軟骨炎、多
腺性（polyglancular）症候群、リウマチ性多発筋痛症、多発性筋炎・皮膚筋炎、原発性
無ガンマグロブリン血症、原発性胆汁性肝硬変、乾癬、レイノー現象、ライター症候群、
リウマチ熱、サルコイドーシス、強皮症、シェーグレン症候群、全身硬直症候群、高安動
脈炎、側頭動脈炎／巨細胞性動脈炎、潰瘍性大腸炎、ぶどう膜炎、血管炎、白斑およびウ
ェゲナー肉芽腫症等、自己免疫性疾患もしくは障害の１種もしくは複数の症状の低下、阻
害もしくは抑制において有用となり得る。

本方法を使用して、パーキンソン、アルツハイマー病、創傷治癒および多発性硬化症等
の疾患等が挙げられるがこれらに限定されない、種々の疾患および障害の処置において有
用となり得る細胞を生成することができる。本方法は、臓器再生および免疫系の回復また
は補給にも有用である。例えば、ｉＰＳ細胞、造血幹細胞、複能性細胞または前駆体細胞
等の単能性細胞、例えば、上皮前駆体細胞その他等、異なる分化ステージの細胞は、静脈
内投与または局所的外科手術により投与することができる。本方法は、処方薬レジメ、外
科手術、ホルモン療法、化学療法および／または放射線療法等、他の従来方法と組み合わ
せて使用することができる。

一実施形態において、キットは、ＲＮＡ、細胞、およびＲＮＡを細胞にトランスフェク
トするための手段を含む。ＲＮＡは、凍結乾燥させても、溶液中に溶解されてもよい。キ
ットは、細胞培養試薬等、他の材料を任意選択で含むことができる。代替的な実施形態に
おいて、キットは、開示されている方法に従って調製され、後の使用のために冷蔵または
冷凍されて貯蔵および／または輸送された、再分化、脱分化または再プログラム化された
細胞を提供する。細胞は典型的に、溶液中に貯蔵されて、生存率を維持する。細胞を含有
するキットは、細胞が４℃より低く、好ましくは−２０℃より低く維持されるように、ド
ライアイスを含有する冷却器内等、生存率に相応の方法を使用して貯蔵または輸送するべ
きである。

本キットは、次のうち１種または複数を任意選択で含む：生物活性剤、培地、賦形剤お
よび次のうち１種または複数：シリンジ、針、糸、ガーゼ、包帯、消毒薬、抗生物質、局
所麻酔薬、鎮痛剤、外科用の糸、ハサミ、外科用のメス、無菌液および無菌容器。キット
の構成成分は、個々に包装することができ、無菌となり得る。キットは一般に、商業販売
に適した器、例えば、プラスチック、ボール紙または金属の器の中に提供される。キット
のいずれかは、使用説明書を含むことができる。本方法は、パーキンソン、アルツハイマ
ー病および多発性硬化症等、神経変性疾患等が挙げられるがこれらに限定されない、種々
の疾患および障害の処置において有用となり得る細胞の生成に使用することができる。本
明細書に開示されている方法は、臓器再生および免疫系の回復または補給にも有用である
。例えば、ｉＰＳ細胞、造血幹細胞、複能性細胞または前駆体細胞等の単能性細胞、例え
ば、上皮前駆体細胞その他等、異なる分化ステージの細胞は、静脈内投与または局所的外
科手術により投与することができる。本方法は、処方薬レジメ、外科手術、ホルモン療法
、化学療法および／または放射線療法等、他の従来方法と組み合わせて使用することがで
きる。

本開示の態様は、幹細胞の培養系、創傷処置のための皮膚組織細胞を産生するための分
化方法、ならびに関節炎、ループスおよび他の自己免疫関連疾患の処置のための幹細胞療
法を提供する。

次に、以下の実施例を参照しつつ本発明を説明する。これらの実施例は、単なる説明目
的のために示されており、本発明は、これら実施例に限定されないが、それどころか、本
明細書に提示されている教示の結果明らかなあらゆる変種を包含する。

（実施例１）
ＩＶＴ鋳型の作製
ライゲーション非依存性クローニング（Ligation Independent Cloning）（ＬＩＣ）
を使用して、直鎖状ＰＣＲ産物ｉｎ ｖｉｔｒｏ転写（ＩＶＴ）鋳型を生成するためのプ
ラスミド構築物を構築した。本出願人らは先ず、対象とするタンパク質をコードするオー
プンリーディングフレーム（ＯＲＦ）インサートを受け入れるよう設計された挿入部位に
隣接する５’および３’非翻訳領域（ＵＴＲ）を組み入れた、親プラスミド（ｐＩＶＴ）
を構築した。ＯＲＦ隣接配列は、Warrenら、Cell Stem Cell、２０１０年に記載されて
いる通りのものであり、低二次構造リーダーおよび強力なコザック（Kozak）部位（５’
ＵＴＲ）ならびにマウスα−グロビン３’ＵＴＲを含む。テイルド（tailed）プライマー
を使用してプラスミドから増幅された２種のＰＣＲ産物の再アニーリングにより、５’オ
ーバーハングを有する直鎖化バージョンのＰＩＶＴベクターを産生した。相補的オーバー
ハングを有するＯＲＦ ＰＣＲ産物を類似の手順により産生し、ベクターＰＣＲ産物と共
にプールし、熱ショックによりＤＨ５α細菌に形質転換して、遺伝子特異的構築物（ｐＩ
ＶＴ−ＫＬＦ４等）をクローニングした。得られたプラスミドを鋳型ＰＣＲ反応に使用し
て、Warrenら、Cell Stem Cell、２０１０年に記載されている通り、Ｔ７プロモーター
、ＵＴＲ隣接ＯＲＦ、およびポリＡテイルの付加を駆動するためのＴ１２０テイルを組み
入れた直鎖状ＩＶＴ鋳型を作製した。テイルドリバースプライマー（Ｔ１２０ＣＴＴＣＣ
ＴＡＣＴＣＡＧＧＣＴＴＴＡＴＴＣＡＡＡＧＡＣＣＡ）の使用により、Ｔ１２０テイル領
域を導入した。Ｍ_３ＯおよびＶＰｘ３融合構築物に関して、トランス活性化ドメインをコ
ードする配列を、テイルドプライマーを使用したＰＣＲによりＯＲＦに付け加えた。ＰＣ
Ｒ産物鋳型ストックをほぼ１００ｎｇ／ｕＬの濃度で維持した。

（実施例２）
ｍＲＮＡカクテルの産生
ｍＲＮＡ合成プロセスを図５にまとめる。４：１比のＡＲＣＡキャップアナログ対ＧＴ
Ｐを使用したＩＶＴ反応において合成ｍＲＮＡを生成して、高いパーセンテージのキャッ
ピングされた転写物を生成した。ＣＴＰを５ｍ−ＣＴＰで、ＵＴＰをシュード（Pseudo）
−ＵＴＰで完全置換したヌクレオチド三リン酸（ＮＴＰ）ミックスを用いて、ＲＮＡ産物
の免疫原性を低下させた。キャップアナログおよび修飾ＮＴＰは、Ｔｒｉｌｉｎｋ Ｂｉ
ｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓから購入した。２．５×ＮＴＰミックスを調製して（ＡＲＣ
Ａ：ＡＴＰ：５ｍ−ＣＴＰ：ＧＴＰ：シュード−ＵＴＰ、１５：１５：３．７５：３．７
５：３．７５ｍＭ）、ＩＶＴ反応の実施に使用されるＭＥＧＡｓｃｒｉｐｔ Ｔ７キット
（Ａｍｂｉｏｎ）により提供された標準ＮＴＰを置き換えた。各４０ｕＬのＩＶＴ反応液
は、１６ｕＬのＮＴＰミックス、４ｕＬの１０×Ｔ７バッファー、１６ｕＬのＤＮＡ鋳型
および４ｕＬのＴ７酵素を含んだ。反応液を３７℃で４〜６時間インキュベートし、次に
２ｕＬのＴＵＲＢＯ ＤＮａｓｅでさらに３７℃で１５分間処理し、その後、ＭＥＧＡｃ
ｌｅａｒ（Ａｍｂｉｏｎ）スピンカラムにおいて精製し、１００ｕＬの容量においてＲＮ
Ａ産物を溶出した。キャッピングしていない転写物から免疫原性５’三リン酸部分を除去
するため、１０ｕＬのＡｎｔａｒｃｔｉｃホスファターゼ反応バッファーおよび３ｕＬの
Ａｎｔａｒｃｔｉｃホスファターゼ（ＮＥＢ）を各プレップに加えた。ホスファターゼ反
応液を３７℃で３０分間インキュベートし、ＩＶＴ産物を再精製した。Ｎａｎｏｄｒｏｐ
（Ｔｈｅｒｍｏ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）によりＲＮＡ収量を定量化し、その結果、ＴＥ
ｐＨ７．０（Ａｍｂｉｏｎ）の添加によりプレップを標準化作業濃度１００ｎｇ／ｕＬ
に調整した。所望の化学量論比において様々なＲＦを表すプレップをプールすることによ
り、ＲＮＡカクテルを集合させた。使用した各ＲＦの分率は、それぞれの転写物の予測さ
れる分子量を考慮し、３×モル濃度で含まれたＯｃｔ４およびその誘導体以外の全ＲＦは
、等モルであった。短命の核化（nuclearized）単量体ＬａｎＹＦＰ蛍光タンパク質をコ
ードするｍＲＮＡの１０％スパイクをカクテルに加えて、再プログラム化試行におけるト
ランスフェクション効力のモニターを容易にした。他の実施形態では、ｍＲＮＡは、全ウ
ラシルの２５％または１０％の２−チオウラシルを使用することによっても産生された（
図６を参照されたい）。

（実施例３）
細胞および培養培地
再プログラム化に標的化された細胞は、ＢＪ新生児線維芽細胞（ＡＴＣＣ）、ＨＤＦ−
ｆ胎児線維芽細胞、ＨＤＦ−ｎ新生児線維芽細胞およびＨＤＦ−ａ成体線維芽細胞（Ｓｃ
ｉｅｎＣｅｌｌ）およびＸＦＦ異種フリー新生児線維芽細胞（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ）を含
んだ。それぞれＢＪ、ＨＤＦおよびＸＦＦ細胞のために、ＢＪ培地（ＤＭＥＭ＋１０％Ｆ
ＢＳ）、ＳｃｉｅｎＣｅｌｌ線維芽細胞培地およびＦｉｂｒｏＧＲＯ異種フリーヒト線維
芽細胞増大化培地（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ）において増大化培養を行った。使用したフィー
ダー細胞は、３００１Ｇ放射線照射新生児ヒト包皮線維芽細胞（ＧｌｏｂａｌＳｔｅｍ）
およびＦｉｂｒｏＧＲＯマイトマイシンＣ不活性化異種フリーヒト新生児線維芽細胞（Ｍ
ｉｌｌｉｐｏｒｅ）であった。異種フリーフィーダーに基づくおよびフィーダーフリー再
プログラム化試行に該当する細胞継代ステップは、ＴｒｙｐＬＥ Ｓｅｌｅｃｔ（Ｇｉｂ
ｃｏ）、動物性製品フリー細胞解離試薬を使用して行った。

（実施例４）
ヒト線維芽細胞の再プログラム化
メーカーの指示書に従って、ＣＥＬＬｓｔａｒｔ（Ｇｉｂｃｏ）異種フリー基質でコー
ティングされた６ウェル組織培養プレートにおいて、記載されている全再プログラム化実
験を行った。最初のＢＪ再プログラム化実験において、ＦＢＳ含有ＢＪ培地を使用して、
ＧｌｏｂａｌＳｔｅｍフィーダーをウェル当たり２５０Ｋで蒔いた。後のフィーダーに基
づく試行の一部において、播種密度を増加させ、新規ＲＦカクテルを使用して直面する高
い損耗率に応じてほとんどコンフルエントなフィーダー層を持続する試みにおいて、培地
交換の際に臨機応変にフィーダーを補充した。異種フリーフィーダーは、使用するのであ
れば、血清を含まないＰｌｕｒｉｔｏｎに基づく再プログラム化培地に蒔いた。Ｐｌｕｒ
ｉｔｏｎ無血清培地（Ｓｔｅｍｇｅｎｔ）プラス抗生物質、Ｐｌｕｒｉｔｏｎサプリメン
トおよび２００ｎｇ／ｍｌ Ｂ１８Ｒインターフェロン阻害剤（ｅＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅ
）に標的細胞を蒔いた。再プログラム化の間とその後に、培地を毎日交換し、最終トラン
スフェクション翌日にＢ１８Ｒ補給を中断した。再プログラム化の間に新鮮なフィーダー
において細胞を分割した実験において、再プレーティングに使用される培地に１０ｕＭ
Ｙ２７６３２（Ｓｔｅｍｇｅｎｔ）を含めた。標的細胞播種の翌日にトランスフェクショ
ンを開始し、これを本文に示す持続時間において２４時間間隔で反復した。他に注記され
ている場合を除き、毎日の培地交換の４時間前にＲＮＡｉＭＡＸ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ
）を使用して、１２００ｎｇのＲＮＡ用量を各ウェルに送達した。１００ｎｇ／ｕＬのＲ
ＮＡをカルシウム／マグネシウム不含ＤＰＢＳに５×希釈し、１ｕｇのＲＮＡ当たり５ｕ
ＬのＲＮＡｉＭＡＸを同じ希釈液に１０×希釈し、これらをプールして１０ｎｇ／ｕＬの
ＲＮＡ／媒体懸濁液を産生し、１５分間の室温インキュベーション後に培養培地に分注す
ることにより、ＲＮＡｉＭＡＸに基づくトランスフェクションカクテルを作製した。Ｓｔ
ｅｍｆｅｃｔ試薬（Ｓｔｅｍｇｅｎｔ）を使用するトランスフェクションに関して、ＲＮ
ＡおよびＳｔｅｍｆｅｃｔ（１ｕｇのＲＮＡ当たり４ｕＬ）をＳｔｅｍｆｅｃｔバッファ
ーにおいて混合して、１０ｎｇ／ｕＬのＲＮＡ濃度を得た。混合物を１５分間インキュベ
ートし、次に培養培地に送達した、あるいは後の使用のために冷蔵した。

他の実施形態では、ヒト線維芽細胞の再プログラム化を、ｐｌｕｒｉｔｏｎ以外の培地
、例えば、Ａｌｌｌｅ’ｓ Ｒｅｐｒｏｇｒａｍｍｉｎｇ培地内でも行った（図７を参照
されたい）。一部の実験ではＢ１８Ｒを全く使用せず、他の実験では、Ｂ１８Ｒを一部の
トランスフェクションにおいてのみ使用した。

（実施例５）
ｉＰＳＣコロニーの特徴付け
ｉＰＳＣコロニー生産性を評価するために、ＤＰＢＳ（カルシウム／マグネシウム含有
）中４％パラホルムアルデヒドを使用して再プログラム化培養物を固定し、ＤＰＢＳ（カ
ルシウム／マグネシウム含有）に１００×希釈したＳｔａｉｎＡｌｉｖｅ ＴＲＡ−１−
６０ Ａｌｅｘａ４８８抗体（Ｓｔｅｍｇｅｎｔ）で免疫染色した。コロニーを採取し、
増大化し、その後に免疫染色して多能性の分子および機能検証のための三血球系分化アッ
セイを行った。ＤＮＡフィンガープリント法および核型解析を行った。奇形腫形成を行い
、２セット以上のマウスモデルにおいて確認した。これにより、幹細胞の多能性を実証し
た。

約９日間、場合によっては６日もの短さで、あるいはさらには５日間でｉＰＳＣが産生
され得るような仕方で、操作された再プログラム化因子および操作されていない再プログ
ラム化因子の組合せと標的細胞とを接触させることによる、非幹細胞を多能性幹細胞へと
高度に効率的に再プログラム化するための新規方法を開示する。このようなｉＰＳ細胞は
、フィーダーフリー、異種フリーおよびフットプリントフリーのｉＰＳＣとして産生する
ことができる。考案されたプロセスによる再プログラム化の劇的な効率増加に加えて、新
規技術はまた、このように作製されたｉＰＳＣが、いかなるウイルスまたはベクターとも
接触されていないことから「クリーン」であるという点において、あらゆる以前に公知の
技術とは異なる。本発明の有用性は、幹細胞樹立、分化、細胞および発生研究における有
用性ならびに臨床応用に関与する実質的にあらゆる分野において見出すことができる。同
様の手順は、定方向分化または分化転換において有用となることもできる。

（実施例６）
カニクイザル線維芽細胞の再プログラム化
メーカーの指示書に従って、ＣＥＬＬｓｔａｒｔ（Ｇｉｂｃｏ）基質でコーティングさ
れた６ウェル組織培養プレートにおいて、カニクイザル線維芽細胞を使用する再プログラ
ム化実験を行った。Ａｌｌｅｌｅ Ｂｉｏｔｅｃｈの無血清培地プラス抗生物質に標的細
胞を蒔いた。再プログラム化の間とその後に、Ｂ１８Ｒを使用してまたは使用せずに、１
２日間連続して、新鮮な培地と共に送達される２−チオ修飾型ｍＲＮＡ／トランスフェク
ション試薬ミックスで、培地を毎日交換した（図８）。サルｉＰＳＣのコロニーは９日目
に現れ始め、１２日目に、成熟段階、すなわちコンパクトコロニー段階に達した。

（実施例１）
ＩＶＴ鋳型の作製
ライゲーション非依存性クローニング（Ligation Independent Cloning）（ＬＩＣ）
を使用して、直鎖状ＰＣＲ産物ｉｎ ｖｉｔｒｏ転写（ＩＶＴ）鋳型を生成するためのプ
ラスミド構築物を構築した。本出願人らは先ず、対象とするタンパク質をコードするオー
プンリーディングフレーム（ＯＲＦ）インサートを受け入れるよう設計された挿入部位に
隣接する５’および３’非翻訳領域（ＵＴＲ）を組み入れた、親プラスミド（ｐＩＶＴ）
を構築した。ＯＲＦ隣接配列は、Warrenら、Cell Stem Cell、２０１０年に記載されて
いる通りのものであり、低二次構造リーダーおよび強力なコザック（Kozak）部位（５’
ＵＴＲ）ならびにマウスα−グロビン３’ＵＴＲを含む。テイルド（tailed）プライマー
を使用してプラスミドから増幅された２種のＰＣＲ産物の再アニーリングにより、５’オ
ーバーハングを有する直鎖化バージョンのＰＩＶＴベクターを産生した。相補的オーバー
ハングを有するＯＲＦ ＰＣＲ産物を類似の手順により産生し、ベクターＰＣＲ産物と共
にプールし、熱ショックによりＤＨ５α細菌に形質転換して、遺伝子特異的構築物（ｐＩ
ＶＴ−ＫＬＦ４等）をクローニングした。得られたプラスミドを鋳型ＰＣＲ反応に使用し
て、Warrenら、Cell Stem Cell、２０１０年に記載されている通り、Ｔ７プロモーター
、ＵＴＲ隣接ＯＲＦ、およびポリＡテイルの付加を駆動するためのＴ１２０テイル（配列
番号１）を組み入れた直鎖状ＩＶＴ鋳型を作製した。テイルドリバースプライマー（Ｔ１
２０ＣＴＴＣＣＴＡＣＴＣＡＧＧＣＴＴＴＡＴＴＣＡＡＡＧＡＣＣＡ（配列番号２））の
使用により、Ｔ１２０テイル（配列番号１）領域を導入した。Ｍ_３ＯおよびＶＰｘ３融合
構築物に関して、トランス活性化ドメインをコードする配列を、テイルドプライマーを使
用したＰＣＲによりＯＲＦに付け加えた。ＰＣＲ産物鋳型ストックをほぼ１００ｎｇ／ｕ
Ｌの濃度で維持した。

Claims (1)

1. 図面に記載の発明。

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