JP2021159045A - Production of fission yeast schizosaccharomyces japonicus kumadai strain suitable for shochu/sake brewing - Google Patents
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Abstract
Description
本発明は、吟醸香成分高生産分裂酵母およびその利用に関する。具体的には、分裂酵母Schizosaccharomyces japonicusのセルレニン耐性株であって、その野生株と比較してカプロン酸エチル生産能が向上している分裂酵母およびその利用に関する。本発明は、分裂酵母 Schizosaccharomyces japonicus の薬剤耐性株を用いて発酵を行うことを含む、焼酎の製造方法に関する。 The present invention relates to fission yeast having a high production of ginjo aroma component and its utilization. Specifically, the present invention relates to a fission yeast that is a cerulenin-resistant strain of the fission yeast Schizosaccharomyces japonicus and has an improved ethyl caproate production ability as compared with the wild strain thereof, and its utilization. The present invention relates to a method for producing shochu, which comprises fermenting with a drug-resistant strain of fission yeast Schizosaccharomyces japonicus.
酵母は優れた代謝能力と分裂能力を持つため、古くから食品・醸造・製薬など様々な産業に利用されている。従来、清酒、焼酎など酒類の醸造に使用する酵母は、全て協会7号や協会9号のような出芽酵母(Saccharomyces cerevisiae、サッカロミセス・セレビシエ、以下、S. cerevisiaeと記載する場合がある)株が用いられてきた。 Yeast has been used in various industries such as food, brewing, and pharmaceuticals for a long time because it has excellent metabolic capacity and division ability. Conventionally, the yeast used for brewing alcoholic beverages such as sake and shochu is all budding yeast (Saccharomyces cerevisiae, Saccharomyces cerevisiae, hereinafter sometimes referred to as S. cerevisiae) strains such as Association No. 7 and Association No. 9. Has been used.
1928年に、福岡県九州大学圃場で採取された「苺」から最初に分離された分裂酵母(Schizosaccharomyces japonicus、シゾサッカロミセス・ジャポニカス、S. japonicusと記載する場合がある)は、富栄養条件下での細胞周期が約3時間と短く、分裂酵母属の他の種である Schizosaccharomyces pombe(シゾサッカロミセス・ポンベ)(アフリカの地ビールから分離された)や出芽酵母 S. cerevisiaeと同様に、真核細胞のモデル生物として研究されており、全ゲノム配列も解読されている。分裂酵母は出芽酵母と進化的には3〜4億年前に分岐したと考えられており、両酵母は同じ単細胞真核生物であるが遺伝学的に大きく異なっている。S. japonicusは出芽酵母等と比較して細胞体サイズが数倍大きいことから、染色体動態の研究などにも用いられている。 The fission yeast (Schizosaccharomyces japonicus, Schizosaccharomyces japonicus, sometimes referred to as S. japonicus) first isolated from "strawberry" collected in the field of Kyushu University, Fukuoka Prefecture in 1928 is a nutrient-rich condition. The cell cycle underneath is as short as about 3 hours, and is true, as is the other species of the genus Schizosaccharomyces pombe (isolated from African local beer) and the budding yeast S. cerevisiae. It is being studied as a model organism for nuclear cells, and the entire genome sequence has been decoded. Schizosaccharomyces cerevisiae is thought to have evolved from Saccharomyces cerevisiae 300-400 million years ago, and both yeasts are the same unicellular eukaryote but are genetically very different. Since S. japonicus has a cell body size several times larger than that of Saccharomyces cerevisiae, it is also used for studies of chromosomal dynamics.
分裂酵母 S. japonicusを醸造用酵母として用いた例としては、山梨県甲府技術支援センターによる報告「分裂酵母を使用した高品質清酒製造法の開発」(非特許文献1)があり、S. japonicusを含む分裂酵母の試験株のほとんどについて清酒もろみを培養基剤としてアルコール発酵が可能であることを報告している。同報告では、分裂酵母単独では清酒醸造環境における増殖が難しい可能性があるとの理由により、分裂酵母 S. japonicusの株(NBRC1609株)と清酒酵母(S. cerevisiae FJA025株)の混合培養による清酒醸造が試みられている。 An example of using fission yeast S. japonicus as a brewing yeast is the report "Development of a high-quality sake production method using fission yeast" (Non-Patent Document 1) by the Kofu Technical Support Center of Yamanashi Prefecture. It has been reported that alcoholic fermentation is possible using sake mash as a culture base for most of the test strains of fission yeast containing. According to the same report, sake produced by a mixed culture of fission yeast S. japonicus strain (NBRC1609 strain) and sake yeast (S. cerevisiae FJA025 strain) may be difficult to grow in a sake brewing environment with fission yeast alone. Brewing is being attempted.
一方、従来、醸造用酵母として用いられている出芽酵母 S. cerevisiaeでは育種が盛んである。出芽酵母の育種方法としては交配・細胞融合法のほか、突然変異誘発法、遺伝子組換え法等がある。突然変異誘発の方法としては、エチルメタンスルホネートやニトロソグアニジン等の突然変異誘発剤による処理法、紫外線や放射線の照射法等が行われている。例えば、非特許文献2では、出芽酵母 S. cerevisiaeの育種に、エチルメタンスルホネートによる突然変異誘発を実施し、セルレニン耐性株を分離して吟醸香であるカプロン酸エチル高生産株を分離する技術が用いられている。
On the other hand, brewer's yeast S. cerevisiae, which has been conventionally used as a brewing yeast, is actively bred. Breeding methods for Saccharomyces cerevisiae include mating and cell fusion methods, as well as mutagenesis methods and gene recombination methods. As a method of mutagenesis, a treatment method with a mutagenesis agent such as ethylmethanesulfonate or nitrosoguanidine, a method of irradiating ultraviolet rays or radiation, or the like is performed. For example, in Non-Patent
従来、醸造用酵母としては、出芽酵母 S. cerevisiae が汎用されているため、製造される酒の味や風味の多様性が低いという問題があった。そのため、醸造や食品の製造に使用できる新たな酵母の探索およびその育種が課題としてある。 Conventionally, Saccharomyces cerevisiae S. cerevisiae has been widely used as a brewing yeast, so that there is a problem that the variety of tastes and flavors of the produced liquor is low. Therefore, the search for new yeasts that can be used for brewing and food production and their breeding are issues.
分裂酵母 Schizosaccharomyces japonicus が、清酒もろみを培養基剤としてアルコール発酵が可能であることは報告されているが(例えば、非特許文献1)、醸造用酵母として用いられた例は少ない。また、突然変異誘発法により分裂酵母 S. japonicusの育種株を得た例は、従来知られていない。分裂酵母 S. japonicus について飲食品の製造のために有用な性質を有する育種株を得たという報告もない。 It has been reported that the fission yeast Schizosaccharomyces japonicus can undergo alcoholic fermentation using sake mash as a culture base (for example, Non-Patent Document 1), but there are few examples of its use as a brewing yeast. In addition, there has been no known example of obtaining a breeding strain of fission yeast S. japonicus by a mutagenesis method. There is no report that a breeding strain having useful properties for the production of food and drink was obtained for fission yeast S. japonicus.
本発明は、突然変異誘発法により、分裂酵母 S. japonicusの新規育種株を提供することを目的とする。また、本発明は、当該新規育種株を用いた、良好な香味を有する飲食品の製造方法を提供することを目的とする。 An object of the present invention is to provide a novel breeding strain of fission yeast S. japonicus by a mutagenesis method. Another object of the present invention is to provide a method for producing a food or drink having a good flavor using the newly bred strain.
上記課題の下、本発明者は、鋭意検討を行った結果、分裂酵母 Schizosaccharomyces japonicusを静置培養(嫌気的培養)すると日本酒の吟醸香様の芳醇な香りを発することを見出し、突然変異誘発法により分裂酵母 S. japonicus の育種株作出を試みた。分裂酵母S. japonicusにおいて更により良い香りを醸し出す株を分離するため、紫外線照射またはニトロソグアニジン処理による変異導入スクリーニングを行い、セルレニン耐性株を36株分離した。それらの株を更に解析し、カプロン酸エチルを高生産するKumadai-T11号およびU28号株を分離することに成功した。本発明は、上記の知見に基づいて完成したものである。 Under the above-mentioned problems, the present inventor has found that when the fission yeast Schizosaccharomyces japonicus is statically cultured (anaerobic culture), it emits a mellow scent like Ginjo scent of Japanese sake. Attempted to produce a breeding strain of fission yeast S. japonicus. In order to isolate strains that produce even better aroma in fission yeast S. japonicus, mutagenesis screening was performed by ultraviolet irradiation or treatment with nitrosoguanidine, and 36 cerulenin-resistant strains were isolated. These strains were further analyzed, and Kumadai-T11 and U28 strains, which produce high ethyl caproate, were successfully separated. The present invention has been completed based on the above findings.
本発明によれば以下の発明が提供される。
[1] 分裂酵母シゾサッカロミセス・ジャポニカスのセルレニン耐性株であって、分裂酵母シゾサッカロミセス・ジャポニカス野生株と比較してカプロン酸エチル生産能が向上している、分裂酵母。
[2] 受託番号NITE P-03177(Kumadai-T11株)またはNITE P-03178(Kumadai-U28株)の分裂酵母。
[3] [1]または[2]に記載の分裂酵母を用いる、飲食品の製造方法。
[4] 飲食品がアルコール飲料である、[3]に記載の製造方法。
[5] 分裂酵母シゾサッカロミセス・ジャポニカスに対して突然変異誘発処理をすること、および突然変異誘発処理した分裂酵母シゾサッカロミセス・ジャポニカスをセルレニン含有培地で選抜することを含む、[1]または[2]に記載の分裂酵母の製造方法。
[6] 分裂酵母シゾサッカロミセス・ジャポニカスの薬剤耐性株を用いて発酵を行うことを含み、上記薬剤耐性株がセルレニン、カナバニン、オーレオバシジンA、プレグネノロン、ハイグロマイシンBおよびp−フルオロフェニルアラニンからなる群から選択される薬剤に耐性を有する、焼酎の製造方法。
[7] 上記薬剤耐性株がセルレニン耐性株であり、[1]または[2]に記載の分裂酵母である、[6]に記載の焼酎の製造方法。
According to the present invention, the following inventions are provided.
[1] A fission yeast that is a cerulenin-resistant strain of fission yeast Sizosaccharomyces japonicas and has improved ethyl caproate production ability as compared with the wild strain of fission yeast Sizosaccharomyces japonicas.
[2] Fission yeast of accession number NITE P-03177 (Kumadai-T11 strain) or NITE P-03178 (Kumadai-U28 strain).
[3] A method for producing a food or drink using the fission yeast according to [1] or [2].
[4] The production method according to [3], wherein the food or drink is an alcoholic beverage.
[5] This includes mutagenesis treatment of fission yeast Sizosaccharomyces japonicas and selection of mutagenesis fission yeast Sizosaccharomyces japonicas in a cerulenin-containing medium [1]. Alternatively, the method for producing fission yeast according to [2].
[6] Including fermentation using a drug-resistant strain of the fission yeast Sizosaccharomyces japonicas, the drug-resistant strain is derived from cerulenin, canabanine, aureobasidin A, pregnenolone, hygromycin B and p-fluorophenylalanine. A method for producing shochu, which is resistant to a drug selected from the group.
[7] The method for producing shochu according to [6], wherein the drug-resistant strain is a cellrenin-resistant strain and is the fission yeast according to [1] or [2].
本発明によれば、分裂酵母Schizosaccharomyces japonicusの吟醸香成分高生産株を提供することができる。吟醸香成分高生産株を用いることにより、良好な香味を有する飲食品を製造することができる。本発明の吟醸香成分高生産株は、アルコール飲料の醸造に適した性質を有しており、従来の醸造用酵母を用いた酒とは異なった味や風味の酒を製造することができる。それにより、製造される酒の味や風味の多様性を高めることができる。 According to the present invention, it is possible to provide a highly producing strain of ginjo aroma component of fission yeast Schizosaccharomyces japonicus. By using a strain with a high production of ginjo aroma components, it is possible to produce foods and drinks having a good flavor. The high-producing ginjo fragrance component strain of the present invention has properties suitable for brewing alcoholic beverages, and can produce liquor having a taste and flavor different from those using conventional brewing yeast. As a result, the variety of tastes and flavors of the produced sake can be increased.
以下に記載する本発明の説明は、代表的な実施形態や具体例に基づいてなされることがあるが、本発明はそのような実施形態に限定されるものではない。なお、本明細書において「〜」を用いて表される数値範囲は「〜」の前後に記載される数値を下限値および上限値として含む範囲を意味する。 The description of the present invention described below may be based on typical embodiments or specific examples, but the present invention is not limited to such embodiments. In this specification, the numerical range represented by using "~" means a range including the numerical values before and after "~" as the lower limit value and the upper limit value.
(カプロン酸エチル高生産分裂酵母)
本発明は、分裂酵母 Schizosaccharomyces japonicus のカプロン酸エチル高生産株に関する。本発明は、具体的には分裂酵母 S. japonicusのセルレニン耐性株であって、分裂酵母 S. japonicus 野生株と比較してカプロン酸エチル生産能が向上している分裂酵母に関する。分裂酵母 S. japonicus 野生株と比較してカプロン酸エチル生産能が向上しているとは、野生株と比較してカプロン酸エチルの生産量が高いことを意味する。限定されないが、10mLの麹汁培地での静置培養サンプル(温度25℃、3日間)で、野生株と比較して、カプロン酸エチル生産量が、1.1倍以上、1.2倍以上、1.3倍以上、1.4倍以上、または1.5倍以上高いことが好ましい。
(Highly producing fission yeast with ethyl caproate)
The present invention relates to a highly ethyl caproate-producing strain of the fission yeast Schizosaccharomyces japonicus. The present invention specifically relates to a fission yeast that is a cellrenin-resistant strain of fission yeast S. japonicus and has improved ethyl caproate production ability as compared with a wild strain of fission yeast S. japonicus. The improved ability to produce ethyl caproate as compared with the wild strain of fission yeast S. japonicus means that the production of ethyl caproate is higher than that of the wild strain. Although not limited, the static culture sample (
分裂酵母 S. japonicus 野生株と比較してカプロン酸エチル生産能が向上している分裂酵母は、分裂酵母 S. japonicus 野生株に対して突然変異誘発処理した後にセルレニン含有培地で選抜されたセルレニン耐性株である。突然変異誘発処理法およびセルレニン耐性株の選抜方法については、後記する。分裂酵母 S. japonicus 野生株は、突然変異誘発処理を施す前の S. japonicus の親株を意味する。野生株は、天然に存在する酵母を分離してもよいし、国内外の酵母リソース機関から分譲されたものであってもよい。天然に存在する酵母を親株とする場合、酵母の特性を解析し、分裂酵母 Schizosaccharomyces japonicus であることが同定された菌株を親株として用いることができる。日本における、代表的な酵母リソース機関としては、NBRP(ナショナルバイオリソースプロジェクト)酵母、公益財団法人発酵研究所(IFO)および Schizosaccharomyces japonicus Network (JapoNet、国立遺伝学研究所微生物機能研究室)を挙げることができる。一実施形態では、分裂酵母 S. japonicus 野生株は、NIG2008株(ATCC10660;IFO1609)株、NIG2017株、NIG2021株、NIG2025株、NIG2028株等であり、特にNIG2028株が好ましい(K. Furuya and H. Niki, Yeast 2009; 26: 221-233)。 Schizosaccharomyces p. It is a strain. The mutagenesis treatment method and the selection method for cerulenin-resistant strains will be described later. The wild strain of fission yeast S. japonicus means the parent strain of S. japonicus before mutagenesis treatment. The wild strain may be isolated from naturally occurring yeast, or may be distributed from domestic and foreign yeast resource organizations. When a naturally occurring yeast is used as the parent strain, the strain identified as the fission yeast Schizosaccharomyces japonicus by analyzing the characteristics of the yeast can be used as the parent strain. Representative yeast resource institutions in Japan include NBRP (National BioResource Project) yeast, Institute for Fermentation (IFO) and Schizosaccharomyces japonicus Network (JapoNet, National Institute of Genetics Microbial Function Laboratory). can. In one embodiment, the fission yeast S. japonicus wild strain is NIG2008 strain (ATCC10660; IFO1609) strain, NIG2017 strain, NIG2021 strain, NIG2025 strain, NIG2028 strain and the like, and NIG2028 strain is particularly preferable (K. Furuya and H. Niki, Yeast 2009; 26: 221-233).
本発明は、受託番号NITE P-03177(Kumadai-T11株)またはNITE P-03178(Kumadai-U28株)の分裂酵母に関する。上記Kumadai-T11株およびKumadai-U28株は、親株の Schizosaccharomyces japonicus NIG2028株から、それぞれ紫外線照射またはニトロソグアニジンによる突然変異誘発処理後、セルレニン含有培地で選抜されたセルレニン耐性株である。Kumadai-T11株および-U28株ともに、カプロン酸エチルの生産能が親株と比較して高く、かつ酢酸イソアミルおよびβ-フェネチルアルコールの生産能が、醸造用酵母として汎用されている Saccharomyces cerevisiae (例えば、協会7号株、協会9号株、KF3株、KF7株)と比較して高いため、吟醸香成分高生産性であるといえる。更に、Kumadai-T11株および-U28株は親株と同等程度のアルコール生産能を有する。吟醸香成分生産性およびアルコール生産能については後記する。 The present invention relates to fission yeast of accession number NITE P-03177 (Kumadai-T11 strain) or NITE P-03178 (Kumadai-U28 strain). The Kumadai-T11 strain and the Kumadai-U28 strain are celllenin-resistant strains selected from the parent strain Schizosaccharomyces japonicus NIG2028 strain by ultraviolet irradiation or mutagenesis treatment with nitrosoguanidine, respectively, in a cellrenin-containing medium. Both the Kumadai-T11 strain and the -U28 strain have a higher ability to produce ethyl caproate than the parent strain, and the ability to produce isoamyl acetate and β-phenethyl alcohol are widely used as brewing yeasts (for example, Saccharomyces cerevisiae). It can be said that the ginjo fragrance component is highly productive because it is higher than the association No. 7 strain, the association No. 9 strain, the KF3 strain, and the KF7 strain). Furthermore, the Kumadai-T11 and -U28 strains have the same level of alcohol-producing ability as the parent strain. Ginjo aroma component productivity and alcohol production capacity will be described later.
分裂酵母属には、Schizosaccharomyces japonicus のほか、S. pombe、S. octosporus、S. cryophilusがある。S. japonicus は、S. pombeや出芽酵母Saccharomyces cerevisiaeより細胞体が大きい。S. japonicus の接合型には、h+とh−が存在し、培養条件によって、菌糸体を形成する。S. japonicus の実験室での培養には、後記の実施例で使用しているYE培地のほか、YPD培地(1%イーストイクストラクト,2%ポリペプトン、2%デキストロース)およびYM培地(0.3%イーストイクストラクト、0.5%ポリペプトン、0.3%マルトイクストラクト、1%グルコース)などを使用することができる。 In addition to Schizosaccharomyces japonicus, the genus Schizosaccharomyces includes S. pombe, S. octosporus, and S. cryophilus. S. japonicus has a larger cell body than S. pombe and Saccharomyces cerevisiae. In the junction type of S. japonicus, h + and h − exist, and mycelium is formed depending on the culture conditions. For culturing S. japonicus in the laboratory, in addition to the YE medium used in the examples below, YPD medium (1% yeast extract, 2% polypeptone, 2% dextrose) and YM medium (0.3). % Yeast ectact, 0.5% polypeptone, 0.3% maltoix tract, 1% glucose) and the like can be used.
Kumadai-T11株およびKumadai-U28株の親株であるNIG2028株は、国立遺伝学研究所微生物機能研究室から分譲されたものである。NIG2028株(接合型:h−、matsj−P2028)は、S. japonicus のタイプ株に由来する(K. Furuya and H. Niki, Yeast 2009; 26: 221-233)。 The NIG2028 strain, which is the parent strain of the Kumadai-T11 strain and the Kumadai-U28 strain, was distributed from the Microbial Function Laboratory of the National Institute of Genetics. . NIG2028 strain (mating type: h -, matsj-P2028) is, S from japonicus type strains (K. Furuya and H. Niki, Yeast 2009; 26: 221-233).
(微生物寄託)
Schizosaccharomyces japonicus Kumadai-T11株およびKumadai-U28株は、国立大学法人熊本大学(住所:熊本県熊本市中央区黒髪2丁目39番1号)により、以下のとおり、寄託機関へ寄託されている。
(i) 寄託機関:独立行政法人製品評価技術基盤機構 特許微生物寄託センター(NITE-NPMD)
(住所:日本国千葉県木更津市かずさ鎌足2-5-8 122室)
(ii) 受託日:2020年3月18日
(iii) 受託番号NITE P-03177(S. japonicus Kumadai-T11株)およびNITE -03178(S. japonicus Kumadai-U28株)
(Deposit of microorganisms)
The Schizosaccharomyces japonicus Kumadai-T11 and Kumadai-U28 strains have been deposited by the national university corporation Kumamoto University (Address: 2-39-1, Kurokami, Chuo-ku, Kumamoto City, Kumamoto Prefecture) as follows.
(i) Depositary organization: National Institute of Technology and Evaluation Patent Microorganisms Depositary Center (NITE-NPMD)
(Address: 2-5-8 Kazusakamatari, Kisarazu City, Chiba Prefecture, Japan, Room 122)
(ii) Contract date: March 18, 2020
(iii) Accession Nos. NITE P-03177 (S. japonicus Kumadai-T11 strain) and NITE-03178 (S. japonicus Kumadai-U28 strain)
(香気成分)
日本酒や焼酎の吟醸香は、酒類に華やかさを与える香気である。吟醸香には様々な成分が寄与しているが、主成分は酢酸イソアミルとカプロン酸エチルである。カプロン酸エチルは華やかなリンゴ様の香りであり、吟醸香のトレンドとなっており、酵母の脂肪酸合成経路において生合成されたカプロン酸とエタノールがエステラーゼによって結合することで生成する(三井俊、清酒に含まれる吟醸香の分析について、あいち産業科学技術総合センターニュース 2015年1月号)。
(Aroma component)
Ginjo incense of sake and shochu is an aroma that gives liquor gorgeousness. Various components contribute to Ginjo incense, but the main components are isoamyl acetate and ethyl caproate. Ethyl caproate has a gorgeous apple-like scent and has become a trend of ginjo aroma, and is produced by the binding of caproic acid and ethanol biosynthesized in the fatty acid synthesis pathway of yeast by esterase (Shun Mitsui, Sake). About the analysis of Ginjo incense contained in Aichi Industrial Science and Technology Center News January 2015 issue).
酢酸イソアミルは落ち着いたバナナ様の香りであり、カプロン酸エチル高生産酵母が開発される以前の伝統的な吟醸香ということができ、清酒酵母によって生合成されたイソアミルアルコールがアルコールアセチルトランスフェラーゼによってアセチル化されることで生成する(三井俊、上掲)。また、日本酒や焼酎に含まれる香気成分としては、β-フェネチルアルコールが知られている。β-フェネチルアルコールはバラの香りである。一方、酢酸エチルはほとんどすべての酒類に存在するが、含量が多くなるとオフフレーバーとみなされる場合がある。 Isoamyl acetate has a subdued banana-like scent, and can be said to be a traditional ginjo scent before the development of high-production yeast with ethyl caproate. Isoamyl alcohol biosynthesized by sake yeast is acetylated by alcohol acetyltransferase. Generated by being done (Shun Mitsui, above). Further, β-phenethyl alcohol is known as an aroma component contained in sake and shochu. β-Phenethyl alcohol has a rose scent. Ethyl acetate, on the other hand, is present in almost all alcoholic beverages, but may be considered off-flavour when its content is high.
(変異株の製造方法)
本発明は、分裂酵母 Schizosaccharomyces japonicus に対して突然変異誘発処理をすること、および突然変異誘発処理した分裂酵母 S. japonicusをセルレニン含有培地で選抜することを含む、カプロン酸エチル高生産分裂酵母の製造方法に関する。セルレニン耐性株のほか、例えば、カナバニン、オーレオバシジンA、プレグネノロン、ハイグロマイシンB、p−フルオロフェニルアラニン等に耐性を有する株を選抜する方法を用いて、吟醸香成分高生産性の変異株を得てもよい。突然変異誘発処理を施す前の S. japonicusの株(親株)は、上記のとおり、天然に存在する酵母を分離してもよいし、国内外の酵母リソース機関から分譲されたものであってもよい。
(Manufacturing method of mutant strain)
The present invention comprises producing a highly ethyl caproate fission yeast, which comprises mutagenesis treatment of fission yeast Schizosaccharomyces japonicus and selection of mutagenesis-treated fission yeast S. japonicus in a celllenin-containing medium. Regarding the method. In addition to the cerulenin-resistant strain, for example, a strain having resistance to canavanine, aureobasidin A, pregnenolone, hygromycin B, p-fluorophenylalanine, etc. is selected to obtain a mutant strain having high productivity of the ginjo fragrance component. You may. As described above, the strain (parent strain) of S. japonicus before mutagenesis treatment may be isolated from naturally occurring yeast, or may be distributed from domestic and foreign yeast resource institutions. good.
突然変異誘発処理は、例えば、紫外線照射、放射線照射および重イオンビーム照射等の物理的変異処理法、並びにエチルメタンスルホネートおよびニトロソグアニジン等の薬剤を使用する化学的変異処理法等を用いることができるがこれらに限定されず、任意の突然変異誘発処理法を用いることができる。物理的変異処理法および化学的変異処理法ともに、当該技術分野で知られている任意の方法に基づいて実施することができる。紫外線照射による突然変異誘発は、例えば後記の実施例のように、紫外線照射装置(例えば、UVクロスリンカーCL−1000、UVP社)を用いてプレート表面の酵母細胞に12.5mJの紫外線を照射することにより実施することができる。ニトロソグアニジン処理による突然変異誘発は、例えば後記の実施例のように、酵母懸濁液4mLに1mg/mLのニトロソグアニジン400μLを加え、30℃で30分間保温することにより実施することができる。 As the mutagenesis treatment, for example, a physical mutagenesis treatment method such as ultraviolet irradiation, irradiation and heavy ion beam irradiation, and a chemical mutagenesis treatment method using a drug such as ethylmethanesulfonate and nitrosoguanidine can be used. However, any mutagenesis treatment method can be used. Both the physical mutation treatment method and the chemical mutation treatment method can be carried out based on any method known in the art. For mutagenesis by ultraviolet irradiation, the yeast cells on the plate surface are irradiated with 12.5 mJ of ultraviolet rays using an ultraviolet irradiation device (for example, UV crosslinker CL-1000, UVP), for example, as in the examples described later. It can be carried out by. Mutagenesis by treatment with nitrosoguanidine can be carried out by adding 400 μL of 1 mg / mL nitrosoguanidine to 4 mL of yeast suspension and incubating at 30 ° C. for 30 minutes, for example, as in the examples below.
突然変異誘発処理後の分裂酵母 S. japonicus をセルレニン含有培地で培養することによって、セルレニンに耐性を有する S. japonicus を選抜することができる。培養方法の一例としては、突然変異誘発処理した菌体を、1〜50μM、好ましくは1〜10μMのセルレニンを含有するYE寒天平板培地に塗布し、20〜30℃で2〜10日間、好ましくは3〜7日間培養し、生育したものをセルレニンに耐性を示す株として選抜することができる。 By culturing the fission yeast S. japonicus after the mutagenesis treatment in a cellrenin-containing medium, S. japonicus resistant to cellrenin can be selected. As an example of the culture method, the mutagenesis-treated cells are applied to a YE agar plate medium containing 1 to 50 μM, preferably 1 to 10 μM of cerulenin, and the cells are applied at 20 to 30 ° C. for 2 to 10 days, preferably. After culturing for 3 to 7 days, the grown one can be selected as a strain showing resistance to cerulenin.
上記セルレニン含有培地で生育したセルレニン耐性株の中から、突然変異誘発処理前の親株と比較してカプロン酸エチルの生産能が高い変異株を選抜することができる。セルレニン耐性株は、Fas2p のGly1250Ser変異により長鎖脂肪酸合成が減少しカプロン酸を多量に生成することが知られている。親株と比較してカプロン酸エチルの生産能が高いとは、親株と比較してカプロン酸エチルの生産量が高いことを意味する。限定されないが、10mLの麹汁培地での静置培養サンプル(温度25℃、3日間)で、変異株のカプロン酸エチル生産量が、親株と1.1倍以上、1.2倍以上、1.3倍以上、1.4倍以上、または1.5倍以上高い変異株を選抜することが好ましい。
From the cellrenin-resistant strains grown in the cellrenin-containing medium, a mutant strain having a higher ethyl caproate-producing ability than the parent strain before the mutagenesis treatment can be selected. It is known that cerulenin-resistant strains produce a large amount of caproic acid by reducing long-chain fatty acid synthesis due to the Gly1250Ser mutation of Fas2p. The high production capacity of ethyl caproate as compared with the parent strain means that the production of ethyl caproate is high as compared with the parent strain. In a static culture sample (
上記セルレニン含有培地で生育したセルレニン耐性株の中から、突然変異誘発処理前の親株と比較してβ-フェネチルアルコールの生産能が高い変異株を選抜することができる。親株と比較してβ-フェネチルアルコールの生産能が高いとは、親株と比較してβ-フェネチルアルコールの生産量が高いことを意味する。限定されないが、10mLの麹汁培地での静置培養サンプル(温度25℃、3日間)で、変異株のカプロン酸エチル生産量が、親株と比較して1.1倍以上、1.2倍以上、1.3倍以上、1.4倍以上、1.5倍以上、1.6倍以上、1.7倍以上、または1.8倍以上高い変異株を選抜することが好ましい。
From the cellrenin-resistant strains grown in the cellrenin-containing medium, a mutant strain having a higher β-phenethyl alcohol-producing ability than the parent strain before the mutagenesis treatment can be selected. The higher production capacity of β-phenethyl alcohol as compared with the parent strain means that the production of β-phenethyl alcohol is higher than that of the parent strain. In a static culture sample (
上記セルレニン含有培地で生育したセルレニン耐性株の中から、親株と同等以上のアルコール発酵能を有する変異株を選抜することができる。親株と同等以上のアルコール発酵能を有するとは、アルコール発酵の指標となる炭酸ガス減量が親株と比較して同等以上であることを意味し、親株と変異株との炭酸ガス減量の差が5重量%以内であれば同等であると判断できる。 From the cellrenin-resistant strains grown in the cellrenin-containing medium, a mutant strain having an alcohol fermentation ability equal to or higher than that of the parent strain can be selected. Having an alcohol fermentation ability equal to or higher than that of the parent strain means that the carbon dioxide weight loss, which is an index of alcohol fermentation, is equal to or higher than that of the parent strain, and the difference in carbon dioxide weight loss between the parent strain and the mutant strain is 5 If it is within% by weight, it can be judged to be equivalent.
本発明の好ましい実施形態では、親株と比較してカプロン酸エチルの生産能が高く、かつ親株と同等以上のβ-フェネチルアルコールの生産能およびアルコール発酵能を有する変異株が選抜される。本発明のより好ましい実施形態では、親株と比較してカプロン酸エチルの生産能が高く、かつ親株と同等以上のβ-フェネチルアルコールおよびアルコール発酵能を有し、かつ親株の50%程度以上の酢酸イソアミルの生産能を有する変異株が選抜される。本願において、親株NIG2028株は酢酸イソアミルの生産量が、Saccharomyces cerevisiae の醸造用酵母株(例えば、協会7号株、協会9号株、KF3株、KF7株)と比較して高いことが明らかとなっている。カプロン酸エチル高生産株として選抜された変異株は、突然変異誘発処理前の親株の50%程度以上の酢酸イソアミルの生産能を有すれば、酒類に十分な香りを提供すると考えられる。 In a preferred embodiment of the present invention, a mutant strain having a higher ability to produce ethyl caproate as compared with the parent strain and having an ability to produce β-phenethyl alcohol and an ability to ferment alcohol equal to or higher than that of the parent strain is selected. In a more preferable embodiment of the present invention, the production capacity of ethyl caproate is higher than that of the parent strain, β-phenethyl alcohol and alcohol fermentation ability are equal to or higher than those of the parent strain, and about 50% or more of the acetic acid of the parent strain. A mutant strain capable of producing isoamyl is selected. In the present application, it was clarified that the production amount of isoamyl acetate of the parent strain NIG2028 is higher than that of the brewing yeast strain of Saccharomyces cerevisiae (for example, Association No. 7, Association No. 9, KF3 strain, KF7 strain). ing. It is considered that the mutant strain selected as the high-producing ethyl caproate-producing strain provides a sufficient aroma to alcoholic beverages if it has an isoamyl acetate-producing ability of about 50% or more of that of the parent strain before the mutagenesis treatment.
本発明のさらにより好ましい実施態様では、親株と比較してカプロン酸エチルの生産能が高く、かつ親株と同等以上のβ-フェネチルアルコールおよびアルコール発酵能を有し、さらに親株と比較して酢酸エチルの生産量が低い変異株が選抜される。本願において、親株NIG2028株は酢酸エチルの生産量が、Saccharomyces cerevisiae の醸造用酵母株(例えば、協会7号株、協会9号株、KF3株、KF7株)と比較して高いことが明らかとなっている。酢酸エチルは、多量に存在する場合オフフレーバーとみなされる場合があるので、酢酸エチルの生産量は親株と比較して低い変異株が好ましい。本発明の吟醸香成分高生産株(例えば、Kumadai-T11株またはKumadai-U28株)を用いて製造された焼酎は、香りについての官能評価が出芽酵母協会9号株と同程度までに改善されていると評価されている。これは、カプロン酸エチルなどの吟醸香成分の含量が高いため、オフフレーバーとなる酢酸エチル臭がマスクされているためと考えられる。 In an even more preferable embodiment of the present invention, the production capacity of ethyl caproate is higher than that of the parent strain, β-phenethyl alcohol and alcohol fermentation ability are equal to or higher than those of the parent strain, and ethyl acetate is further compared with the parent strain. Variants with low production are selected. In the present application, it was clarified that the production amount of ethyl acetate of the parent strain NIG2028 was higher than that of the brewing yeast strain of Saccharomyces cerevisiae (for example, Association No. 7, Association No. 9, KF3 strain, KF7 strain). ing. Since ethyl acetate may be regarded as off-flavour when it is present in a large amount, a mutant strain in which the production amount of ethyl acetate is lower than that of the parent strain is preferable. The shochu produced using the ginjo fragrance component high-producing strain of the present invention (for example, Kumadai-T11 strain or Kumadai-U28 strain) has improved sensory evaluation of fragrance to the same extent as Saccharomyces cerevisiae No. 9 strain. It is evaluated as being. It is considered that this is because the content of ginjo aroma components such as ethyl caproate is high, and the off-flavour ethyl acetate odor is masked.
突然変異誘発処理後の分裂酵母 S. japonicus を、カナバニン、オーレオバシジンA、プレグネノロン、ハイグロマイシンBおよびp−フルオロフェニルアラニンからなる群から選択される薬剤を含有する培地で培養することによって、上記薬剤に耐性を有する S. japonicus を選抜することができる。カナバニン耐性株を選抜する場合には、これに限定されないが、突然変異誘発処理した菌体を、1〜100ppm、好ましくは5〜20ppmのカナバニンを含有するYE寒天平板培地に塗布し、20〜30℃で2〜10日間、好ましくは3〜7日間培養し、生育したものをカナバニンに耐性を示す株として選抜することができる。 By culturing the fission yeast S. japonicus after the mutagenesis treatment in a medium containing a drug selected from the group consisting of canabanine, aureobasidin A, pregnenolone, hygromycin B and p-fluorophenylalanine, the above-mentioned drug. S. japonicus that is resistant to S. japonicus can be selected. When selecting a canavanine-resistant strain, the mutagenesis-treated cells are applied to a YE agar plate medium containing 1 to 100 ppm, preferably 5 to 20 ppm of canavanine, and the cells are applied to a YE agar plate medium containing 20 to 30 ppm. After culturing at ° C. for 2 to 10 days, preferably 3 to 7 days, the grown one can be selected as a strain exhibiting resistance to canavanine.
上記カナバニン含有培地で生育したカナバニン耐性株の中から、突然変異誘発処理前の親株と比較して吟醸香成分、例えば酢酸イソアミルの生産能が高く、かつ親株と同等以上のアルコール発酵能を有する変異株を得ることができる。親株と比較して酢酸イソアミルの生産能が高いとは、親株と比較して酢酸イソアミルの生産量が高いことを意味する。酢酸イソアミル以外の吟醸香成分について分析し、その生産能が高い変異株を得てもよい。 Among the canavanine-resistant strains grown in the above-mentioned canavanine-containing medium, a mutation having a higher production ability of a ginjo fragrance component, for example, isoamyl acetate, and an alcohol fermentation ability equal to or higher than that of the parent strain as compared with the parent strain before mutagenesis treatment. You can get the stock. The high production capacity of isoamyl acetate as compared with the parent strain means that the production of isoamyl acetate is high as compared with the parent strain. Ginjo aroma components other than isoamyl acetate may be analyzed to obtain a mutant strain having high productivity.
オーレオバシジンA耐性株を選抜する場合には、これに限定されないが、突然変異誘発処理した菌体を、0.1〜50ppm、好ましくは0.5〜20ppmのオーレオバシジンAを含有するYE寒天平板培地に塗布し、20〜30℃で2〜10日間、好ましくは3〜7日間培養し、生育したものをオーレオバシジンAに耐性を示す株として選抜することができる。 When selecting an aureobasidin A-resistant strain, YE containing 0.1 to 50 ppm, preferably 0.5 to 20 ppm of aureobasidin A in the mutagenesis-treated cells, is not limited to this. It can be applied to an agar plate medium and cultured at 20 to 30 ° C. for 2 to 10 days, preferably 3 to 7 days, and the grown strain can be selected as a strain exhibiting resistance to aureobasidin A.
プレグネノロン耐性株を選抜する場合には、これに限定されないが、突然変異誘発処理した菌体を、1〜100ppm、好ましくは5〜20ppmのプレグネノロンを含有するYE寒天平板培地に塗布し、20〜30℃で2〜10日間、好ましくは3〜7日間培養し、生育したものをプレグネノロンに耐性を示す株として選抜することができる。 When selecting a pregnenolone-resistant strain, the mutagenesis-treated cells are applied to a YE agar plate medium containing 1 to 100 ppm, preferably 5 to 20 ppm of pregnenolone, and the cells are applied to a YE agar plate medium containing 20 to 30 ppm. After culturing at ° C. for 2 to 10 days, preferably 3 to 7 days, the grown one can be selected as a strain exhibiting resistance to pregnenolone.
ハイグロマイシンB耐性株を選抜する場合には、これに限定されないが、突然変異誘発処理した菌体を、10〜2000ppm、好ましくは100〜1000ppmのハイグロマイシンBを含有するYE寒天平板培地に塗布し、20〜30℃で2〜10日間、好ましくは3〜7日間培養し、生育したものをハイグロマイシンBに耐性を示す株として選抜することができる。 When selecting a hygromycin B resistant strain, the mutagenesis-treated cells are applied to a YE agar plate medium containing 10 to 2000 ppm, preferably 100 to 1000 ppm of hygromycin B. After culturing at 20 to 30 ° C. for 2 to 10 days, preferably 3 to 7 days, the grown strain can be selected as a strain exhibiting resistance to hygromycin B.
上記オーレオバシジンA、プレグネノロンまたはハイグロマイシンB含有培地で生育した、それぞれオーレオバシジンA、プレグネノロンまたはハイグロマイシンB耐性株の中から、突然変異誘発処理前の親株と比較して吟醸香成分、例えば酢酸イソアミルの生産能が高く、かつ親株と同等以上のアルコール発酵能を有する変異株を得ることができる。酢酸イソアミル以外の吟醸香成分について分析し、その生産能が高い変異株を得てもよい。 From the aureobasidin A, pregnenolone or hygromycin B resistant strains grown in the above-mentioned aureobasidin A, pregnenolone or hygromycin B-containing medium, respectively, a ginjo fragrance component, for example, as compared with the parent strain before mutagenesis treatment, for example. It is possible to obtain a mutant strain having high production ability of isoamyl acetate and having alcohol fermentation ability equal to or higher than that of the parent strain. Ginjo aroma components other than isoamyl acetate may be analyzed to obtain a mutant strain having high productivity.
p−フルオロフェニルアラニン耐性株を選抜する場合には、これに限定されないが、突然変異誘発処理した菌体を、10〜500μg/mL、好ましくは50〜300μg/mLのp−フルオロフェニルアラニンを含有するYE寒天平板培地に塗布し、20〜30℃で2〜10日間、好ましくは3〜7日間培養し、生育したものをp−フルオロフェニルアラニンに耐性を示す株として選抜することができる。 When selecting a p-fluorophenylalanine-resistant strain, YE containing 10 to 500 μg / mL, preferably 50 to 300 μg / mL of p-fluorophenylalanine in the mutagenesis-treated cells, without limitation. It can be applied to an agar plate medium and cultured at 20 to 30 ° C. for 2 to 10 days, preferably 3 to 7 days, and the grown one can be selected as a strain exhibiting resistance to p-fluorophenylalanine.
上記p−フルオロフェニルアラニン含有培地で生育したp−フルオロフェニルアラニン耐性株の中から、突然変異誘発処理前の親株と比較して吟醸香成分、例えばβ-フェネチルアルコールの生産能が高く、かつ親株と同等以上のアルコール発酵能を有する変異株を得ることができる。例えば、親株と比較してβ-フェネチルアルコールの生産能が高いとは、親株と比較してβ-フェネチルアルコールの生産量が高いことを意味する。β-フェネチルアルコール以外の吟醸香成分について分析し、その生産能が高い変異株を得てもよい。 Among the p-fluorophenylalanine-resistant strains grown in the above p-fluorophenylalanine-containing medium, the production ability of the ginjo fragrance component, for example, β-phenethyl alcohol, is higher than that of the parent strain before the mutagenesis treatment, and is equivalent to that of the parent strain. A mutant strain having the above alcohol fermentation ability can be obtained. For example, a high production capacity of β-phenethyl alcohol as compared with the parent strain means that the production of β-phenethyl alcohol is high as compared with the parent strain. Ginjo aroma components other than β-phenethyl alcohol may be analyzed to obtain a mutant strain having high productivity.
変異株選抜のための香気成分の生産能の評価は、酵母株を植えて培養した得た麹汁培養液を用いて行うことができる。例えば、酵母株のコロニーを3mLの麹汁培地(一例としては、米麹500gに蒸留水2Lを加え、温度55℃で16時間糖化処理した後で培養したもの)に植え、30℃で一晩振盪培養し、この培養液の濁度を測定し、比較する菌株間で加える菌体数がほぼ同数となるように10mLの麹汁培地に加え、25℃で3日間静置培養して得た麹汁培養液を分析することにより実施することができる。 The production ability of the aroma component for selecting the mutant strain can be evaluated using the koji soup culture solution obtained by planting and culturing the yeast strain. For example, yeast strain colonies are planted in 3 mL of Jiuqu medium (for example, 500 g of rice Jiuqu with 2 L of distilled water added, saccharified at a temperature of 55 ° C. for 16 hours, and then cultured) and cultured at 30 ° C. overnight. The cells were cultured with shaking, the turbidity of this culture solution was measured, and the cells were added to 10 mL of aspergillus medium so that the number of cells to be added between the strains to be compared was almost the same, and the cells were allowed to stand at 25 ° C. for 3 days to obtain the cells. It can be carried out by analyzing the koji juice culture medium.
小仕込み試験を行い、香気成分の生産能およびアルコール生産能を確認または評価してもよい。小仕込み試験の一例としては、酵母を麹汁培地に植菌し、25℃で一晩振盪培養し、一次仕込みに用いる乾燥麹(白麹20g、徳島製麹、MKS)に汲水24mLを加えて一次原料を作成し、一晩振盪培養した培養液を一次原料の1/500量加え、25℃で5日間静置培養する(一次仕込み)。次に、一次仕込み後のもろみに蒸米67gおよび汲水115mLを加え、25℃で10日程静置培養する(二次仕込み)。炭酸ガス減量からアルコール生産量を推測するために、一次仕込みおよび二次仕込みの前後または仕込み期間中毎日若しくは一定期間ごとに培地重量を測定することができる。 A small charge test may be performed to confirm or evaluate the aroma component-producing ability and the alcohol-producing ability. As an example of the small preparation test, yeast is inoculated into a koji juice medium, cultured with shaking at 25 ° C. overnight, and 24 mL of pumped water is added to the dried koji (white koji 20 g, Tokushima koji, MKS) used for the primary preparation. To prepare the primary raw material, add 1/500 of the culture solution that has been shake-cultured overnight to the primary raw material, and incubate at 25 ° C. for 5 days (primary preparation). Next, 67 g of steamed rice and 115 mL of pumped water are added to the mash after the primary preparation, and the mash is statically cultured at 25 ° C. for about 10 days (secondary preparation). In order to estimate the amount of alcohol produced from the weight loss of carbon dioxide, the medium weight can be measured before and after the primary and secondary charges, or every day or at regular intervals during the preparation period.
本発明の一実施形態において、小仕込み試験で得られた醸造サンプルについて分析した場合、分裂酵母 S. japonicus のカプロン酸エチル高生産株は、親株と比較して、カプロン酸エチルの生産量が2倍以上、5倍以上、10倍以上、20倍以上、30倍以上、40倍以上、または50倍以上高くてもよい。 In one embodiment of the present invention, when the brewed sample obtained in the small preparation test was analyzed, the high ethyl caproate-producing strain of fission yeast S. japonicus produced 2 ethyl caproate as compared with the parent strain. It may be fold or more, 5 times or more, 10 times or more, 20 times or more, 30 times or more, 40 times or more, or 50 times or more higher.
香気成分は、ヘッドスペースガスクロマトグラフィーにより実施することができるが、これに限定されない。例えば、麹汁培養液の上清1mLにN−アミルアルコール内部標準液を100μL加えたものをガスクロマトグラフ分析用サンプルとして用いることができる。ヘッドスペースガスクロマトグラフ分析システムとしては、限定されないがHS−20、GC−2010 Plus(島津製作所)を用いることができる。分析システムは、例えば、オーブン温度70℃、保温時間30分、サンプルライン温度150℃、トランスファーライン温度150℃、トラップ冷却温度 −10℃、トラップ加熱温度280℃、トラップ待機温度 25℃、キャリアガス He、キャリアガス気圧 99.9kPa、パージライン流量3.0mL/分、全流量16.8mL/分に設定して測定することができる。 The aroma component can be performed by headspace gas chromatography, but is not limited to this. For example, 1 mL of the supernatant of the Jiuqu culture solution plus 100 μL of the N-amyl alcohol internal standard solution can be used as a sample for gas chromatograph analysis. As the headspace gas chromatograph analysis system, HS-20 and GC-2010 Plus (Shimadzu Corporation) can be used without limitation. The analysis system includes, for example, an oven temperature of 70 ° C., a heat retention time of 30 minutes, a sample line temperature of 150 ° C., a transfer line temperature of 150 ° C., a trap cooling temperature of -10 ° C., a trap heating temperature of 280 ° C., a trap standby temperature of 25 ° C., and a carrier gas He. , Carrier gas pressure 99.9 kPa, purge line flow rate 3.0 mL / min, total flow rate 16.8 mL / min can be set for measurement.
アルコール生産能は、炭酸ガス減量を算出することにより推測することができる。培養前後または培養期間中毎日若しくは一定期間ごとに培地重量を測定して、重量差をアルコール発酵によって炭酸ガスとして放出された量とみなし、アルコール生産量を推測する。炭酸ガス減量を株間で比較することにより、各株のアルコール生産能を評価することができる。親株の炭酸ガス減量と、セルレニン耐性株またはその他の薬剤耐性株の炭酸ガス減量とを比較して、セルレニン耐性株またはその他の薬剤耐性株のアルコール生産能が親株と比較して同等程度であるか、劣っているか、優れているかを評価することができる。例えば、セルレニン耐性株またはその他の薬剤耐性株の炭酸ガス減量と親株の炭酸ガス減量の差が、親株における炭酸ガス減量の5重量%以内であれば親株と同等程度のアルコール生産能を有すると判断することができる。 Alcohol production capacity can be estimated by calculating carbon dioxide weight loss. The weight of the medium is measured before and after culturing or every day or at regular intervals during the culturing period, and the weight difference is regarded as the amount released as carbon dioxide by alcohol fermentation, and the amount of alcohol produced is estimated. By comparing the carbon dioxide weight loss between the strains, the alcohol production ability of each strain can be evaluated. Comparing the carbon dioxide weight loss of the parent strain with the carbon dioxide gas weight loss of the cellrenin-resistant strain or other drug-resistant strain, is the alcohol-producing ability of the cellrenin-resistant strain or other drug-resistant strain comparable to that of the parent strain? , Inferior or superior can be evaluated. For example, if the difference between the carbon dioxide weight loss of the cerulenin-resistant strain or other drug-resistant strain and the carbon dioxide weight loss of the parent strain is within 5% by weight of the carbon dioxide weight loss of the parent strain, it is judged that the parent strain has the same alcohol-producing ability as the parent strain. can do.
後記の実施例4(図3)で、培養16日の炭酸ガス減量は、親株2028株が21.6gであり、CR17株が19.3gとなっており、約10.6重量%((21.6−19.3)×100/21.6)の差があり、CR17株のアルコール発酵能は親株より劣る(同程度未満)と判断される。CR11株(21.5g)とCR28株(22.24g)については、親株との差が5重量%以内であり、同等程度と判断することができる。
In Example 4 (FIG. 3) described later, the weight loss of carbon dioxide on the 16th day of culture was 21.6 g for the
(酵母利用飲食品の製造方法および酵母利用飲食品)
本発明は、分裂酵母 Schizosaccharomyces japonicusのセルレニン耐性株であって、分裂酵母 S. japonicus野生株と比較してカプロン酸エチル生産能が向上している分裂酵母を用いる、飲食品の製造方法に関する。上記飲食品の製造方法は、酵母を用いて発酵を行うことを含むことが好ましい。上記方法により製造された飲食品は、発酵飲食品ということができる。上記カプロン酸エチル生産能が向上している分裂酵母は、特に受託番号NITE P-03177(Kumadai-T11株)またはNITE P-03178(Kumadai-U28株)の分裂酵母であってもよい。本発明において製造される飲食品としては、アルコール飲料、ノンアルコール飲料、その他の発酵飲料、パン、菓子、味噌、醤油漬物等を挙げることができるがこれらに限定されない。本発明において製造される飲食品は、アルコール飲料、パン、菓子、味噌、醤油が好ましく、アルコール飲料が特に好ましい。本明細書においてアルコール飲料とは、アルコール分を1%以上含む飲料を指し、好ましくは、日本酒(清酒、濁酒(どぶろく)、濁り酒、もろみ酒を含む)、ビール、発泡酒、ワイン、果実酒、その他の醸造酒、焼酎(米焼酎、麦焼酎、芋焼酎、黒糖焼酎、落花生焼酎、そば焼酎、栗焼酎、泡盛など)、ウイスキー、ブランデー、スピリッツ等を挙げることができる。酵母利用飲食品の製造は、本発明の分裂酵母 Schizosaccharomyces japonicusのセルレニン耐性株であって、分裂酵母 S. japonicus野生株と比較してカプロン酸エチル生産能が向上している分裂酵母を用いて公知の方法に従って行うことができる。本発明の分裂酵母 S. japonicus野生株と比較してカプロン酸エチル生産能が向上している分裂酵母を単独で用いて発酵を行ってもよいし、出芽酵母(例えば、S. cerevisiae)と組み合わせて発酵を行ってもよい。
(Manufacturing method of yeast-based food and drink and yeast-based food and drink)
The present invention relates to a method for producing foods and drinks using a fission yeast that is a cerulenin-resistant strain of fission yeast Schizosaccharomyces japonicus and has an improved ethyl caproate production ability as compared with a wild strain of fission yeast S. japonicus. The method for producing food and drink preferably includes fermentation using yeast. The food and drink produced by the above method can be called a fermented food and drink. The fission yeast having improved ethyl caproate production ability may be a fission yeast of Accession No. NITE P-03177 (Kumadai-T11 strain) or NITE P-03178 (Kumadai-U28 strain). Examples of the food and drink produced in the present invention include, but are not limited to, alcoholic beverages, non-alcoholic beverages, other fermented beverages, bread, confectionery, miso, and soy sauce pickles. The food and drink produced in the present invention is preferably alcoholic beverages, bread, confectionery, miso, and soy sauce, and alcoholic beverages are particularly preferable. In the present specification, the alcoholic beverage refers to a beverage containing 1% or more of alcohol, and is preferably sake (including sake, turbid liquor (doburoku), turbid liquor, and moromi liquor), beer, sparkling liquor, wine, and fruit liquor. , Other brewed sake, shochu (rice shochu, barley shochu, potato shochu, brown sugar shochu, peanut shochu, buckwheat shochu, chestnut shochu, awamori, etc.), whiskey, brandy, spirits, etc. can be mentioned. The production of yeast-based foods and drinks is known using a fission yeast of the present invention, which is a cerulenin-resistant strain of the fission yeast Schizosaccharomyces japonicus and has improved ethyl caproate production ability as compared with the fission yeast S. japonicus wild strain. It can be done according to the method of. Fermentation may be carried out using fission yeast having improved ethyl caproate production ability as compared with the fission yeast S. japonicus wild strain of the present invention alone, or in combination with budding yeast (for example, S. cerevisiae). May be fermented.
以下に、本発明の飲食品の製造方法で採用することができる清酒の製造方法を概説するが、これに限定されず、任意の清酒製造法を用いることができる。清酒の製造方法は、麹づくり工程、酒母づくり工程、もろみ仕込み工程、もろみ発酵工程、固液分離工等を含むことができる。まず、原料となる玄米を精米して白米にし、それを蒸して蒸米を製造する。蒸米は、麹づくり、酒母やもろみの仕込みに使用される。麹づくり工程では、蒸米に麹菌(黄麹菌)を植えて麹を造る。麹は米のデンプンを糖に変化させるものであり、酒母やもろみに入れられる。酒母づくり工程では、蒸米、水、麹に酵母を加え、もろみの発酵を促すために必要な酵母を大量に培養する。もろみ仕込み工程では、酒母に、麹、蒸米、水を加えてもろみの仕込みをする。この仕込みは、発酵タンクで行うことができ、通常、「段仕込み」が行われ、4日間で複数回(多くは3回)の仕込みが行われる。段仕込みによって、雑菌の繁殖を抑えながら、酵母の増殖を促進し、もろみの温度を管理しやすくしてもろみを製造する。もろみ発酵工程では、もろみ仕込みが終了した後、20日間から40日間、もろみを発酵させる。発酵期間中は、発酵タンク内はもろみから発生す炭酸ガスで充満されることから、もろみの近辺は無酸素状態(又は低酸素状態)となり、もろみが空気中の酸素に接触しない状態となる。もろみの発酵工程が終了すると、次に発酵させたもろみを清酒と酒粕に分離する「固液分離工程」が行われる。もろみを清酒と酒粕に分離するためには、布や圧搾機を利用して絞ることができるが、発酵タンク内部のガス圧力を高めることによる固液分離を利用することもできる。 The method for producing sake that can be adopted in the method for producing food and drink of the present invention is outlined below, but the method is not limited to this, and any method for producing sake can be used. The method for producing sake can include a koji making process, a sake mother making process, a mash preparation process, a mash fermentation process, a solid-liquid separation process, and the like. First, brown rice, which is the raw material, is milled to make white rice, which is then steamed to produce steamed rice. Steamed rice is used for making koji and preparing sake mother and moromi. In the process of making Jiuqu, steamed rice is planted with Jiuqu (Yellow Jiuqu) to make Jiuqu. Jiuqu is used to convert rice starch into sugar, which can be added to sake mash and mash. In the sake mother making process, yeast is added to steamed rice, water, and koji, and a large amount of yeast necessary to promote fermentation of mash is cultivated. In the mash preparation process, mash is prepared by adding koji, steamed rice, and water to the sake mother. This preparation can be performed in a fermentation tank, and usually, "stage preparation" is performed, and the preparation is performed a plurality of times (mostly three times) in four days. By stepping, the growth of yeast is promoted while suppressing the growth of various germs, and the temperature of the mash is easily controlled to produce mash. In the mash fermentation step, the mash is fermented for 20 to 40 days after the mash preparation is completed. During the fermentation period, the fermentation tank is filled with carbon dioxide gas generated from the mash, so that the vicinity of the mash is in an oxygen-free state (or a low oxygen state), and the mash is in a state where it does not come into contact with oxygen in the air. When the fermentation process of mash is completed, the "solid-liquid separation process" is performed to separate the fermented mash into sake and sake lees. In order to separate the mash into sake and sake lees, it can be squeezed using a cloth or a squeezer, but solid-liquid separation by increasing the gas pressure inside the fermentation tank can also be used.
本発明の分裂酵母 Schizosaccharomyces japonicus のセルレニン耐性株であって、分裂酵母 S. japonicus 野生株と比較してカプロン酸エチル生産能が向上している分裂酵母はパンの製造にも適している。本発明の分裂酵母を用いて発酵させる公知の方法によりパンを製造することで、良好な香味を有するパンを製造することができる。以下に、本発明の飲食品の製造方法で採用することができるパンの製造方法を概説するが、これに限定されず、任意のパン製造法を用いることができる。強力小麦粉、酵母、砂糖、塩、ぬるま湯を入れて混ぜたパン生地を作るが、この際生地がしまり、キメが細かくなるまでパン生地をこねる。この過程でバターをパン生地に加えてもよい。暖かいところ(例えば温度30〜40℃)で生地が1.5〜2倍程度に膨らむまで発酵させる(一次発酵)。生地をパン1つ分のサイズに分ける。この作業で堅くなった生地を再びやわらかくする為、5分間ほど待つ(ベンチタイム)。ガス抜きや成形を行った後生地が1.5〜2倍程度に膨らむまで発酵させ(二次発酵、温度35〜40℃、湿度80〜85%)、180〜200℃のオーブンで、10〜30分程度焼く。 The cerulenin-resistant strain of the fission yeast Schizosaccharomyces japonicus of the present invention, which has improved ethyl caproate production ability as compared with the fission yeast S. japonicus wild strain, is also suitable for bread production. By producing bread by a known method of fermenting with fission yeast of the present invention, bread having a good flavor can be produced. The method for producing bread that can be adopted in the method for producing food and drink of the present invention is outlined below, but the method is not limited to this, and any bread production method can be used. Add strong flour, yeast, sugar, salt and lukewarm water to make a dough, but at this time knead the dough until the dough is tight and the texture is fine. Butter may be added to the bread dough during this process. Ferment in a warm place (for example, temperature 30-40 ° C.) until the dough swells about 1.5 to 2 times (primary fermentation). Divide the dough into the size of one bread. Wait for about 5 minutes (bench time) to soften the dough hardened by this work again. After degassing and molding, ferment until the dough swells about 1.5 to 2 times (secondary fermentation, temperature 35-40 ° C, humidity 80-85%), and in an oven at 180-200 ° C, 10 to 10 Bake for about 30 minutes.
(焼酎の製造方法)
本発明は、分裂酵母 Schizosaccharomyces japonicus の薬剤耐性株を用いて発酵を行うことを含み、上記薬剤耐性株がセルレニン、カナバニン、オーレオバシジンA、プレグネノロン、ハイグロマイシンBおよびp−フルオロフェニルアラニンからなる群から選択される薬剤に耐性を有する、焼酎の製造方法に関する。上記薬剤耐性株は、上記の通り、分裂酵母 S. japonicusに対して突然変異誘発処理後、セルレニン、カナバニン、オーレオバシジンA、プレグネノロン、ハイグロマイシンBおよびp−フルオロフェニルアラニンからなる群から選択される薬剤を含有する培地で培養する工程を含む、S. japonicusの上記薬剤耐性株の製造方法を用いて得ることができるが、これに限定されるものではない。本発明に用いる薬剤耐性株は、吟醸香成分高生産株であることが好ましく、カプロン酸エチル高生産株、酢酸イソアミル高生産株および/またはβ−フェネチルアルコール高生産株であることがより好ましい。本発明の焼酎の製造方法は、分裂酵母 Schizosaccharomyces japonicus の薬剤耐性株を用いて、公知の方法に従って行うことができる。本発明の焼酎の製造方法は、連続式蒸留および単式蒸留のどちらでもよい。以下に、本発明の焼酎の製造方法で採用することができる単式蒸留による焼酎の製造方法を概説するが、これに限定されず、任意の焼酎製造法を用いることができる。
(Manufacturing method of shochu)
The present invention comprises fermenting with a drug resistant strain of the fission yeast Schizosaccharomyces japonicus, wherein the drug resistant strain consists of the group consisting of cerulenin, canabanine, aureobasidin A, pregnenolone, hygromycin B and p-fluorophenylalanine. The present invention relates to a method for producing shochu, which is resistant to the selected drug. As described above, the drug-resistant strain is selected from the group consisting of cerulenin, canabanine, aureobasidin A, pregnenolone, hygromycin B and p-fluorophenylalanine after mutagenesis treatment against the fission yeast S. japonicus. It can be obtained by using the method for producing a drug-resistant strain of S. japonicus, which comprises a step of culturing in a medium containing a drug, but is not limited thereto. The drug-resistant strain used in the present invention is preferably a high-producing strain of ginjo fragrance component, more preferably a high-producing ethyl caproate production strain, a high-producing isoamyl acetate production strain, and / or a high-producing β-phenethyl alcohol production strain. The method for producing shochu of the present invention can be carried out according to a known method using a drug-resistant strain of fission yeast Schizosaccharomyces japonicus. The method for producing shochu of the present invention may be either continuous distillation or single distillation. The method for producing pot stills by pot still that can be adopted in the method for producing shochu of the present invention is outlined below, but the method is not limited to this, and any shochu manufacturing method can be used.
単式蒸留焼酎の製造方法は、一次もろみ製造工程、二次もろみ製造工程、蒸留工程、蒸留後ろ過工程、割水工程、割水後ろ過工程等を含んでもよい。一次もろみ製造工程では、一次もろみの原料となる米、麦、芋などを洗い、浸漬し、蒸した後、放冷する。そして、放冷した後の原料に種麹(白麹菌、黒麹菌等)を種付して、製麹を行う。その後、焼酎酵母および水等が加えられ、一次熟成もろみ(酒母)が製造される。ここで、焼酎酵母として、例えば、分裂酵母 Schizosaccharomyces japonicus の上記薬剤耐性株や、受託番号NITE P-03177(Kumadai-T11株)またはNITE P-03178(Kumadai-U28株)の分裂酵母を用いることができる。二次もろみ製造工程では、一次もろみ製造工程で製造された一次熟成もろみに、水や主原料である米、麦または芋等を加える。そして、温度等を管理しながら数日〜数十日間、発酵させることにより、二次熟成もろみが製造される。蒸留工程では、二次もろみ製造工程で製造された二次熟成もろみを単式蒸留機により蒸留する。単式蒸留機による蒸留には、蒸留機内の温度が100℃前後である常圧蒸留と、50〜60℃以下である減圧蒸留とが存在するが、いずれでもよい。蒸留後ろ過工程では、蒸留工程後の原酒中の油性成分を除去するためにろ過を施す。割水工程では、アルコール度数を下げるために、蒸留後ろ過工程後の焼酎に水を加える。割水後ろ過工程では、割水工程の割水により、アルコール度数が低くなることで析出する油性成分を除去するためにろ過を施す。ろ過処理に用いる装置等については、特に限定されない。割水後ろ過工程を経た焼酎はビン詰めし、出荷される。 The method for producing simple distilled mash may include a primary mash manufacturing step, a secondary mash manufacturing step, a distillation step, a post-distillation filtration step, a water splitting step, a post-splitting filtration step, and the like. In the primary mash manufacturing process, rice, wheat, potatoes, etc., which are the raw materials for the primary mash, are washed, soaked, steamed, and then allowed to cool. Then, seed koji (white aspergillus, black aspergillus, etc.) is seeded in the raw material after allowing to cool, and the koji is produced. After that, shochu yeast and water are added to produce the primary aged mash (sake mother). Here, as the shochu yeast, for example, the drug-resistant strain of the fission yeast Schizosaccharomyces japonicus or the fission yeast of accession number NITE P-03177 (Kumadai-T11 strain) or NITE P-03178 (Kumadai-U28 strain) can be used. can. In the secondary mash manufacturing process, water, rice, wheat, potatoes, etc., which are the main raw materials, are added to the primary aged mash produced in the primary mash manufacturing process. Then, the secondary aging mash is produced by fermenting for several days to several tens of days while controlling the temperature and the like. In the distillation step, the secondary aged mash produced in the secondary mash manufacturing process is distilled by a pot still. Distillation by a pot still includes atmospheric distillation in which the temperature in the distillation machine is around 100 ° C. and vacuum distillation in which the temperature in the distiller is 50 to 60 ° C. or lower, but any of them may be used. In the post-distillation filtration step, filtration is performed to remove oily components in the raw liquor after the distillation step. In the water splitting step, water is added to the shochu after the distillation and filtration steps in order to reduce the alcohol content. In the post-splitting filtration step, filtration is performed in order to remove the oily component that precipitates due to the lowering of the alcohol content due to the splitting water in the water splitting step. The apparatus or the like used for the filtration process is not particularly limited. The shochu that has undergone the filtration process after water splitting is bottled and shipped.
以下の例に基づいて本発明をより具体的に説明するが、本発明はこれらの例に限定されるものではない。なお、本明細書において、特に記載しない限り、「%」等は質量基準であり、数値範囲はその端点を含むものとして記載される。 The present invention will be described in more detail based on the following examples, but the present invention is not limited to these examples. In the present specification, unless otherwise specified, "%" and the like are based on mass, and the numerical range is described as including the end points thereof.
(実施例1)紫外線照射による変異誘導を用いたセルレニン耐性株のスクリーニング
分裂酵母 Schizosaccharomyces japonicus NIG2028株(接合型:h−、matsj−P2028)を10mLのYE培地(3%グルコース、0.5%バクトイーストイクストラクト)に白金耳を用いて植菌し、26℃にて18時間振盪培養した。細胞数を血球計算盤を用いてカウントした後、高速冷却遠心機を用いて遠心(2,500 rpm、5分)し集菌した。沈殿を1mLのYE培地に懸濁後、5μM セルレニン(富士フィルム和光純薬)を含むYEプレート(3%グルコース、0.5%バクトイーストイクストラクト、2%寒天)46枚にプレートあたり50〜60万細胞になるようにスプレッダーを用いて塗布した。
(Example 1) Screening fission yeast Schizosaccharomyces japonicus NIG2028 strain cerulenin-resistant strains with mutations induced by ultraviolet irradiation (mating type: h -, matsj-P2028) and 10mL of YE medium (3% glucose, 0.5% Bacto The yeast extract) was inoculated using a loop loop and cultured at 26 ° C. for 18 hours with shaking. After counting the number of cells using a hemocytometer, the cells were centrifuged (2,500 rpm, 5 minutes) using a high-speed cooling centrifuge to collect the cells. After suspending the precipitate in 1 mL of YE medium, 40 to 60 YE plates (3% glucose, 0.5% bactoeast exact, 2% agar) containing 5 μM cerulenin (Fujifilm Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) per plate. It was applied using a spreader so that it became 10,000 cells.
塗布した酵母細胞懸濁液を乾燥後、紫外線照射装置(UVクロスリンカーCL−1000、UVP社)を用いてプレート表面の酵母細胞に12.5mJの紫外線を照射した。紫外線照射後、プレートを暗箱に入れて26℃で5日間保温した。その結果、紫外線を照射したプレート(約2,500万細胞をスクリーニング)から15株(CR1〜CR15)のセルレニン耐性株が分離された(図1AおよびB)。 After the applied yeast cell suspension was dried, the yeast cells on the plate surface were irradiated with 12.5 mJ of ultraviolet rays using an ultraviolet irradiation device (UV crosslinker CL-1000, UVP). After irradiation with ultraviolet rays, the plate was placed in a dark box and kept warm at 26 ° C. for 5 days. As a result, 15 strains (CR1 to CR15) of cellrenin-resistant strains were isolated from UV-irradiated plates (screening about 25 million cells) (FIGS. 1A and 1B).
(実施例2)突然変異誘発剤ニトロソグアニジンを用いたセルレニン耐性株のスクリーニング
分裂酵母 S. japonicus NIG2028株のコロニーを10mLのYE培地に植え、26℃で一晩振盪培養した。培養後、高速冷却遠心機で遠心(2,500 rpm、5分)し、沈殿を5mLのトリス−マレイン酸緩衝液(50mM トリス、50mM マレイン酸、pH6.0)に懸濁した。懸濁液4mLに1mg/mLのニトロソグアニジン(富士フィルム和光純薬)400μLを加え、30℃で30分間保温したのち、微量遠心機で遠心(10,000 rpm、2分)した。上清を除き、1mLのトリス−マレイン酸緩衝液で3回、1mLのYE培地で1回沈殿を洗った。次に、菌体を5mLのYE培地に懸濁して26℃で一晩保温した。この培養液を50μLずつ、5μM セルレニン含有YEプレート50枚に塗布して26℃で保温し、3日後コロニー形成の有無を観察した(約2,500万細胞をスクリーニング)。増殖してきたコロニーを再び5μM セルレニン添加YEプレートにストリークし、生育したものを変異株として取得した。最終的に21株のセルレニン耐性株が分離された(CR16〜CR36)。
(Example 2) Screening of a celllenin-resistant strain using the mutagen nitrosoguanidine A colony of fission yeast S. japonicus NIG2028 strain was planted in 10 mL of YE medium and cultured with shaking at 26 ° C. overnight. After culturing, the cells were centrifuged in a high-speed cooling centrifuge (2,500 rpm, 5 minutes), and the precipitate was suspended in 5 mL of Tris-maleic acid buffer (50 mM Tris, 50 mM maleic acid, pH 6.0). 400 μL of 1 mg / mL nitrosoguanidine (Fujifilm Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) was added to 4 mL of the suspension, and the mixture was kept warm at 30 ° C. for 30 minutes and then centrifuged (10,000 rpm, 2 minutes) in a microcentrifuge. The supernatant was removed and the precipitate was washed 3 times with 1 mL Tris-maleic acid buffer and once with 1 mL YE medium. Next, the cells were suspended in 5 mL of YE medium and kept warm at 26 ° C. overnight. 50 μL of this culture solution was applied to 50 YE plates containing 5 μM celllenin, kept warm at 26 ° C., and after 3 days, the presence or absence of colonization was observed (screening for about 25 million cells). The grown colonies were streaked again on a 5 μM cellrenin-added YE plate, and the grown colonies were obtained as mutant strains. Finally, 21 cerulenin-resistant strains were isolated (CR16-CR36).
(実施例3)ヘッドスペースガスクロマトグラフィーによる麹汁培養液の香気成分分析
実施例1および2において、紫外線照射またはニトロソグアニジン処理で分離した36株の分裂酵母S. japonicus セルレニン耐性株(CR1〜CR36)から、カプロン酸エチルやその他の吟醸香香気成分の高生産株を更に選択するため、これらの株について、以下に示す手順で麹汁培地を用いて培養し、ヘッドスペースガスクロマトグラフィーを用いた香気成分分析を行った。なお、香気成分分析および小仕込み試験は熊本県産業技術センターにて実施した。
麹汁培地は、米麹500gに蒸留水2Lを加え、温度55℃で16時間糖化処理した後、遠心して調製した。
(Example 3) Analysis of aroma components of koji juice culture medium by headspace gas chromatography In Examples 1 and 2, 36 fission yeast S. japonicus cellrenin-resistant strains (CR1 to CR36) separated by ultraviolet irradiation or nitrosoguanidine treatment. ), In order to further select high-producing strains of ethyl caproate and other ginjo aroma components, these strains were cultured in a koji juice medium according to the procedure shown below, and headspace gas chromatography was used. Aroma component analysis was performed. The aroma component analysis and small preparation test were conducted at the Kumamoto Prefectural Industrial Technology Center.
The koji juice medium was prepared by adding 2 L of distilled water to 500 g of rice koji, saccharifying at a temperature of 55 ° C. for 16 hours, and then centrifuging.
NIG2021株(分裂酵母 S. japonicus 二倍体株)、NIG2028株、および実施例1および2において分離した36株のセルレニン耐性変異株のコロニーを3mLの麹汁培地に植え、30℃で一晩振盪培養した。また、コントロール酵母として、日本酒醸造に用いられる出芽酵母 Saccharomyces cerevisiae 協会7号株(K7)と協会9号株(K9)、焼酎醸造用の出芽酵母 S. cerevisiae KF7株を用い、麹汁培地にて同様に一晩培養した。これらの培養液の濁度を測定し、菌株間で加える菌体数がほぼ同数となるように10mLの麹汁培地に加えた。調製した麹汁培養液を25℃で3日間静置培養した。培養後、遠心(KOKUSAN H−103NR、3,000 rpm、10分)し、上清1mLにN−アミルアルコール内部標準液を100μL加えたものをガスクロマトグラフ分析用サンプルとした。作成したサンプルの香気成分分析は、ヘッドスペースガスクロマトグラフ分析システム(島津製作所 HS−20、GC−2010 Plus)を用いて行った。分析システムは、オーブン温度70℃、保温時間30分、サンプルライン温度150℃、トランスファーライン温度150℃、トラップ冷却温度 ?10℃、トラップ加熱温度280℃、トラップ待機温度 25℃、キャリアガス He、キャリアガス気圧 99.9kPa、パージライン流量3.0mL/分、全流量16.8mL/分に設定して測定した。 Colonies of NIG2021 strain (fission yeast S. japonicus diploid strain), NIG2028 strain, and 36 cerulenin-resistant mutant strains isolated in Examples 1 and 2 were planted in 3 mL of aspergillus medium and shaken overnight at 30 ° C. It was cultured. In addition, as control yeast, Saccharomyces cerevisiae Association No. 7 strain (K7) and Association No. 9 strain (K9) used for sake brewing, and Saccharomyces cerevisiae KF7 strain used for brewing shochu were used in a koji juice medium. Similarly, it was cultured overnight. The turbidity of these cultures was measured and added to 10 mL of aspergillus medium so that the number of cells added between the strains was approximately the same. The prepared Jiuqu juice culture solution was statically cultured at 25 ° C. for 3 days. After culturing, the cells were centrifuged (KOKUSAN H-103NR, 3,000 rpm, 10 minutes), and 100 μL of N-amyl alcohol internal standard solution was added to 1 mL of the supernatant to prepare a sample for gas chromatograph analysis. The aroma component analysis of the prepared sample was performed using a headspace gas chromatograph analysis system (Shimadzu HS-20, GC-2010 Plus). The analysis system has an oven temperature of 70 ° C, a heat retention time of 30 minutes, a sample line temperature of 150 ° C, a transfer line temperature of 150 ° C, a trap cooling temperature of -10 ° C, a trap heating temperature of 280 ° C, a trap standby temperature of 25 ° C, a carrier gas He, and a carrier. The measurement was performed by setting the gas pressure to 99.9 kPa, the purge line flow rate to 3.0 mL / min, and the total flow rate to 16.8 mL / min.
図2に香気成分の解析結果を示す。香気成分の分析結果から、36株のセルレニン耐性株のうち、リンゴ様の吟醸香であるカプロン酸エチル高生産株としてCR11とCR17、バラ様の吟醸香であるβ−フェネチルアルコール高生産株としてCR28を選択した。 FIG. 2 shows the analysis results of the aroma components. From the analysis results of the aroma components, among the 36 cerulenin-resistant strains, CR11 and CR17 were used as apple-like ginjo-scented ethyl caproate high-producing strains, and CR28 was used as rose-like ginjo-scented β-phenethyl alcohol high-producing strains. Was selected.
(実施例4)小仕込み試験(300mLフラスコ)による分析
次に、実施例3で選択した3株のセルレニン耐性株CR11、CR17、およびCR28が米焼酎醸造に適しているか調べるため、蒸米を使用した300mLフラスコでの小仕込み試験を行った。コントロールの酵母としては、出芽酵母S. cerevisiae協会7号と9号、焼酎酵母であるKF3とKF7を用いた。まず、酵母を麹汁培地に植菌し、25℃で一晩振盪培養した。一次仕込みに用いる乾燥麹(白麹20g、徳島製麹、MKS)に汲水24mLを加えて一次原料を作成し、一晩振盪培養した培養液を一次原料の1/500量加え、25℃で5日間静置培養した(一次仕込み)。この間、重量を測定し、アルコール発酵によって炭酸ガスとして放出された量を算出し、アルコール生産量を推測するためグラフ化した(図3)。次に、一次仕込み後のもろみに蒸米(ひとめぼれ)67gおよび汲水115mLを加え、25℃で10日程静置培養した(二次仕込み)。この期間中も炭酸ガス減量の測定を行った(図3)。炭酸ガス減量の測定結果から、CR17は他の株よりアルコール生産量が低いことが推測された。そこで、培養後のもろみのアルコール濃度測定を酒類用振動式密度計(DA−155、京都電子工業)を用いて行った結果、炭酸ガス減量の測定結果で推測されたとおり、CR17株はアルコール濃度が他の株より有意に低いことが示された(11.7%)。CR11とCR28はアルコール濃度がそれぞれ12.93%、13.46%と、日本酒や焼酎醸造に用いられる協会7号などの出芽酵母株(アルコール濃度17.29%)よりはアルコール生産量が低かったが、醸造に十分使用できると判断された。
(Example 4) Analysis by small preparation test (300 mL flask) Next, steamed rice was used to examine whether the three cerulenin-resistant strains CR11, CR17, and CR28 selected in Example 3 were suitable for rice shochu brewing. A small brewing test was performed in a 300 mL flask. As the control yeast, Saccharomyces cerevisiae No. 7 and No. 9 and Saccharomyces cerevisiae KF3 and KF7 were used. First, yeast was inoculated into a koji juice medium and cultured with shaking at 25 ° C. overnight. To prepare the primary raw material by adding 24 mL of pumped water to the dried koji (white koji 20 g, Tokushima koji, MKS) used for the primary preparation, add 1/500 of the culture solution cultivated by shaking overnight, and at 25 ° C. It was statically cultured for 5 days (primary preparation). During this period, the weight was measured, the amount released as carbon dioxide by alcohol fermentation was calculated, and a graph was made to estimate the amount of alcohol produced (Fig. 3). Next, 67 g of steamed rice (Hitomebore) and 115 mL of pumped water were added to the mash after the primary preparation, and the cells were statically cultured at 25 ° C. for about 10 days (secondary preparation). Carbon dioxide weight loss was measured during this period as well (Fig. 3). From the measurement results of carbon dioxide weight loss, it was inferred that CR17 produced a lower amount of alcohol than other strains. Therefore, as a result of measuring the alcohol concentration of the mash after culturing using a vibrating densitometer for alcoholic beverages (DA-155, Kyoto Denshi Kogyo), as estimated from the measurement result of carbon dioxide weight loss, the CR17 strain has an alcohol concentration. Was shown to be significantly lower than other strains (11.7%). The alcohol concentrations of CR11 and CR28 were 12.93% and 13.46%, respectively, which were lower than those of the sprouting yeast strains (alcohol concentration 17.29%) such as Association No. 7 used for sake and shochu brewing. However, it was judged that it could be used sufficiently for brewing.
次に、培養後のもろみ1mLをバイアル瓶に分注し、100μLの内部標準液(N−アミルアルコール)を加え、ヘッドスペースガスクロマトグラフ分析システム(島津製作所 HS−20、GC−2010 Plus)を用いて香気成分を解析した。その結果、蒸米を使用した小仕込み試験でも、CR11、CR17、CR28はリンゴ様吟醸香カプロン酸エチルの生産量が顕著に高く、セルレニン耐性によるカプロン酸エチル高生産株スクリーニングが成功していることが示された。CR28は麹汁培地を用いた培養ではカプロン酸エチルの生産量は高くなかったが、小仕込み試験では親株のNIG2021、2028よりカプロン酸エチルの生産量が高いことが示された。一方、β−フェネチルアルコールについては、小仕込み条件では他の株と同等程度の生産量であった。また、酢酸エチルの生産量が分裂酵母 S. japonicus では出芽酵母より高いことが示された。小仕込み試験の結果、CR17はアルコール生産量が他の株より低かったため、今後の解析には用いないこととした。 Next, 1 mL of the mash after culturing was dispensed into a vial, 100 μL of an internal standard solution (N-amyl alcohol) was added, and a headspace gas chromatograph analysis system (Shimadzu HS-20, GC-2010 Plus) was used. The aroma components were analyzed. As a result, even in the small preparation test using steamed rice, the production of apple-like ginjo fragrance ethyl caproate was remarkably high for CR11, CR17, and CR28, and it was found that screening for high ethyl caproate production strains based on cerulenin resistance was successful. Shown. Although the production of ethyl caproate was not high in the culture of CR28 in the koji juice medium, the small preparation test showed that the production of ethyl caproate was higher than that of the parent strains NIG2021 and 2028. On the other hand, the production of β-phenethyl alcohol was about the same as that of other strains under small preparation conditions. It was also shown that the production of ethyl acetate was higher in fission yeast S. japonicus than in Saccharomyces cerevisiae. As a result of the small preparation test, the alcohol production of CR17 was lower than that of other strains, so it was decided not to use it for future analysis.
(実施例5)小仕込み試験(2Lフラスコ)サンプルの減圧蒸留による米焼酎の作成
次に、CR11株とCR28株を用いて、使用する一次原料の米麹を134g、一次汲水160.8mL、二次原料の蒸米(ひとめぼれ)448g、二次汲水770mLにスケールアップ(2Lフラスコ)して醸造した後、減圧蒸留し米焼酎を作成した。コントロールサンプルとして日本酒醸造用の出芽酵母協会9号株および焼酎醸造に用いられているKF7株を用いて醸造した。仕込み条件は、300mL容小仕込み試験と同様な条件で行った。醸造後のサンプルについて香気成分分析を行った結果、親株のNIG2028、出芽酵母協会9号およびKF7と比較して、リンゴ様の吟醸香であるカプロン酸エチルがCR11およびCR28株では高生産されていた(図5)。出芽酵母協会9号株でカプロン酸エチルの生産量が低い理由は、醸造に一般的な食米を使っていること、使用米に磨きを全くかけていないことなどが考えられた。また、バナナ様の吟醸香である酢酸イソアミル量も分裂酵母株では4〜6倍近く高いことが示された(図5)。バラ様の吟醸香β−フェネチルアルコールも出芽酵母協会9号やKF7株と同等以上生産されていた(図5)。一方、除光液様のオフフレーバーである酢酸エチルが分裂酵母 S. japonicus では生産量が多いことが示された。CR11およびCR28株では親株のNIG2028株よりは酢酸エチル生産量が低く、香りが改善されていることが示された。
(Example 5) Small preparation test (2L flask) Preparation of rice shochu by vacuum distillation of sample Next, using CR11 strain and CR28 strain, 134 g of rice jiuqu as the primary raw material to be used, 160.8 mL of primary pumped water, After brewing by scaling up (2 L flask) to 448 g of steamed rice (Hitomebore) as a secondary raw material and 770 mL of secondary pumped water, it was distilled under reduced pressure to prepare rice shochu. As control samples, Saccharomyces cerevisiae No. 9 strain for sake brewing and KF7 strain used for shochu brewing were used for brewing. The charging conditions were the same as in the 300 mL small charging test. As a result of aroma component analysis of the sample after brewing, the apple-like ginjo aroma ethyl caproate was highly produced in the CR11 and CR28 strains as compared with the parent strains NIG2028, Saccharomyces cerevisiae No. 9 and KF7. (Fig. 5). The reason why the production of ethyl caproate was low in Saccharomyces cerevisiae No. 9 strain was considered to be that the rice used for brewing was used in general and the rice used was not polished at all. It was also shown that the amount of isoamyl acetate, which is a banana-like ginjo fragrance, was nearly 4 to 6 times higher in the fission yeast strain (Fig. 5). Rose-like ginjo fragrance β-phenethyl alcohol was also produced at the same level as or higher than that of Saccharomyces cerevisiae No. 9 and KF7 strain (Fig. 5). On the other hand, it was shown that ethyl acetate, which is a nail polish remover-like off-flavour, is produced in a large amount in the fission yeast S. japonicus. The CR11 and CR28 strains produced lower ethyl acetate than the parent strain NIG2028, indicating that the aroma was improved.
(実施例6)米焼酎の官能評価試験
次に、実施例5で製造した醸造サンプルを用いて減圧蒸留を行い、蒸留液約400mLを回収した。回収した留液は、サンプル瓶に密閉後1ヶ月間15℃にて保存した。1ヶ月保存した蒸留サンプルについて、香り、味、総合の3項目について、専門家パネル1名による5段階評価の官能評価試験を行った。結果を表1に示す。数値が1に近いほど高評価である。
結果、親株の分裂酵母 S. japonicus NIG2028株は、酢酸エチル臭が強く、香り、味、総合で5段階評価の香り4、味4、総合4(5に近い4の評価)でそのままでは醸造に適していないことが示された。一方、育種株CR11株は、香り3、味2、総合3で、出芽酵母協会9号株(香り3、味3,総合3)より良いスコアで充分米焼酎として賞味できる風味であった。CR28株は味評価において3で、CR11株より味については一段階低いスコアであった。
As a result, the parent strain, fission yeast S. japonicus NIG2028, has a strong ethyl acetate odor, and can be brewed as it is with aroma, taste, and
以上の小仕込み試験の結果から、CR11株とCR28株は、新たな味と風味の米焼酎醸造に利用できることが示され、CR11株をKumadai-T11、CR28株をKumadai-U28と命名した。 From the results of the above small preparation test, it was shown that the CR11 strain and the CR28 strain can be used for brewing rice shochu with a new taste and flavor, and the CR11 strain was named Kumadai-T11 and the CR28 strain was named Kumadai-U28.
本発明は、飲食品製造分野において、有用である。 The present invention is useful in the field of food and drink manufacturing.
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CN115558611A (en) * | 2022-10-24 | 2023-01-03 | 贵州大学 | Schizosaccharomyces japonicus strain with high flocculation property and application thereof |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS63309175A (en) * | 1987-06-09 | 1988-12-16 | Getsukeikan Kk | Culture of yeast variant |
JP2012147680A (en) * | 2011-01-14 | 2012-08-09 | Brewing Society Of Japan | High-ester production yeast for distilled liquor |
JP2016119893A (en) * | 2014-12-25 | 2016-07-07 | 徳島県 | Manufacturing method of mutant yeast, mutant yeast and use of the same, and uv-led irradiation device for microorganism mutant |
-
2020
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Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS63309175A (en) * | 1987-06-09 | 1988-12-16 | Getsukeikan Kk | Culture of yeast variant |
JP2012147680A (en) * | 2011-01-14 | 2012-08-09 | Brewing Society Of Japan | High-ester production yeast for distilled liquor |
JP2016119893A (en) * | 2014-12-25 | 2016-07-07 | 徳島県 | Manufacturing method of mutant yeast, mutant yeast and use of the same, and uv-led irradiation device for microorganism mutant |
Non-Patent Citations (4)
Title |
---|
PAOLA DOMIZIO ET AL.: "Evaluation of the Yeast Schizosaccharomyces japonicus for Use in Wine Production", AMERICAN JOURNAL OF ENOLOGY AND VITICULTURE, vol. 69, no. 3, JPN6023046185, 1 June 2018 (2018-06-01), pages 266 - 277, ISSN: 0005195453 * |
佐藤憲亮・小松正和・木村英生: "分裂酵母を使用した高品質清酒製造法の開発", 山梨県工業技術センター研究報告, JPN6023046188, 2017, pages 10 - 13, ISSN: 0005195450 * |
西尾 昭: "薬剤耐性を利用した特徴ある清酒酵母変異株の選抜手法の検討", 鳥取県産業技術センター研究報告, JPN6023046186, 2019, pages 27 - 29, ISSN: 0005195452 * |
高峯和則: "技術解説 酵母の育種開発およびその実施例", 鹿工技ニュース, JPN6023046187, 1996, pages 8 - 9, ISSN: 0005195451 * |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN115558611A (en) * | 2022-10-24 | 2023-01-03 | 贵州大学 | Schizosaccharomyces japonicus strain with high flocculation property and application thereof |
CN115558611B (en) * | 2022-10-24 | 2024-02-23 | 贵州大学 | High flocculation property schizosaccharomyces japonica strain and application thereof |
Also Published As
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