JP2020515512A - ナノ粒子 - Google Patents
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Abstract
Description
本出願は、2016年12月21日に出願されたオーストラリア特許仮出願第2016905306号の優先権を主張し、その内容は参照により本明細書に組み込まれる。
約3470G〜約3520Gの範囲内に中心があり、及び/または約2.001〜約2.005の範囲内のg因子に対応する広い電子常磁性共鳴ピーク、
約1019〜約1015スピン/cm3の範囲の合成後約0時間〜約2時間以内に電子常磁性共鳴により測定されたスピン密度、
合成後約0時間〜約240時間以内に電子常磁性共鳴により測定された約1017〜約1015スピン/cm3の範囲であるスピン密度、
−約3680〜約2700cm−1の範囲内;
−約1800〜約1200cm−1の範囲内;
−約2330〜約2020cm−1の範囲内;
−約1200〜約1010cm−1の範囲内;及び/または
−約1010〜約700cm−1の範囲内;
に中心がある赤外スペクトルの1つ以上の吸収帯、
−約3600〜3100cm−1の範囲内;及び/または
−約3100〜2700cm−1の範囲内;
に中心がある赤外スペクトルの1つ以上の吸収帯、
約−100mV〜約+100mVの範囲内のゼータ電位;
約2〜約10のpH範囲内の溶液中で測定された約−80mV〜約+80mVの範囲内のゼータ電位;または、
窒素:炭素の元素比が約0.01:1〜約2:3であること
のうちの1つ以上を特徴とするナノ粒子ポリマーが、本明細書にて開示される。
第1の態様のナノ粒子ポリマー、または第2の態様の凝集体、及び
少なくとも1つの第2の種
を含むコンジュゲートが、本明細書にて開示される。
第1の態様のナノ粒子ポリマー、
第2の態様の凝集体、または
それらの混合物の、
コンジュゲートの形成における使用が、本明細書にて開示される。
i)反応チャンバ内に少なくとも1種のガスを提供することと、
ii)前記反応チャンバ内にプラズマを発生させるように第1電極に電力を供給することと、
iii)前記反応チャンバ内の第2電極に電圧を印加することと、
iv)得られたナノ粒子ポリマーまたは凝集体を収集することと、を含み、
前記少なくとも1種のガスが有機ガスを含む、ナノ粒子ポリマーまたは凝集体の調製方法が、本明細書にて開示される。
i)反応チャンバ内に少なくとも1種のガスを提供することと、
ii)前記反応チャンバ内に容量結合プラズマを発生させるように前記反応チャンバ内の第1電極に高周波(RF)電力を供給することと、
iii)前記反応チャンバ内の第2電極に電圧を印加することと、
iv)得られたナノ粒子ポリマーまたは凝集体を収集することと、を含み、
前記少なくとも1種のガスが有機ガスを含む、ナノ粒子ポリマーまたは凝集体の調製方法が、本明細書にて開示される。
i)反応チャンバ内に少なくとも1種のガスを提供することと、
ii)前記反応チャンバ内に誘導結合プラズマを発生させるように高周波(RF)電力を供給することと、
iii)前記反応チャンバ内の第2電極に電圧を印加することと、
iv)得られたナノP3材料を収集することと、を含み、
前記少なくとも1種のガスが有機ガスを含む、ナノ粒子ポリマーまたは凝集体の調製方法が、本明細書にて開示される。
i)第1の態様のナノ粒子ポリマー、第2の態様の凝集体、または第10の態様のナノ粒子ポリマーもしくは凝集体、及び
ii)少なくとも1つの第2の種
を提供することと、
ナノ粒子ポリマーまたは凝集体と少なくとも1つの第2の種とが物理的または化学的に互いに結び付くように、ナノ粒子ポリマーまたは凝集体と少なくとも1つの第2の種とを接触させることと、
を含むコンジュゲートの形成方法が、本明細書にて開示される。
本明細書全体を通じて、「含む(comprise)」という単語、または「含む(comprises)」もしくは「含むこと」などの変形形態は、記載された要素、整数、もしくは工程、または要素、整数、もしくは工程のグループを包含することを意味するが、他の要素、整数、もしくは工程、または要素、整数、もしくは工程のグループを除外することを意味するものではないことが理解されよう。
本明細書では、用語「約」は、その用語に関連する任意の値(複数可)における10%の許容範囲を包含する。
本明細書に開示される炭化水素モノマーは、水素原子と炭素原子のみからなるモノマーであると理解される。炭化水素の例には、アルケン、アルキン、シクロアルケン、芳香族化合物、またはそれらの混合物が含まれる。
本明細書で使用される場合、用語「凝集体」は、特に明記しない限り、またはそれが使用されている文脈から明らかでない限り、複数のナノ粒子ポリマーを含み、5nm〜100μmの範囲内のサイズ、例えば約5nm〜約500nmの範囲内のサイズを有する粒子を意味するものとする。
本明細書では、用語「コンジュゲート」は、ナノ粒子ポリマー、またはナノ粒子ポリマーを含む凝集体への1つ以上の化合物の付着によって形成された分子を指す。「1つ以上の化合物」は、本明細書で定義されるような第2の種であり得る。付着は、共有結合または静電的相互作用を介したものであり得る。
用語「モノマー」は、特に明記しない限り、プラズマ中でのフラグメンテーション及び反応プロセスによって生成され得る1つ以上の反応性官能基によって反応してポリマーを形成することができるモノマー化合物を意味すると理解されよう。
用語「ナノP3」は、特に明記しない限り、またはそれが使用されている文脈から明らかでない限り、100ミクロン未満のサイズを有するナノ粒子材料を指し、例えば、ナノP3は約5〜500nmのサイズを有し得る。記載のない限り、または文脈から暗示されない限り、用語「ナノP3」は、特に明記しない限り、またはそれが使用されている文脈から明らかでない限り、本明細書で定義されるような「ナノ粒子ポリマー」及び「凝集体」の両方を包含する。用語「ナノP3」は、「ナノ粒子材料」と互換的に使用され得る。好ましい一実施形態では、ナノ粒子材料はプラズマポリマーを含む。プラズマポリマーは、プラズマ中でのフラグメントの凝縮によって形成され得、該材料は、1つ以上の化合物、例えば有機種または有機金属種を含む1つ以上の「第2の種」を共有結合することができる。
本明細書では、用語「ナノ粒子ポリマー」は、本明細書で定義されるモノマーによって形成されたポリマーを指し、該ナノ粒子ポリマーは、約1nm〜約50nmの範囲の粒径を有する。好ましい一実施形態では、ナノ粒子ポリマーは、プラズマ中でのフラグメントの凝縮によって形成され、該材料は、有機種または有機金属種を含む1つ以上の化合物を共有結合することができる。
用語「ポリマー」は、重合の過程を通じて生成される、不均一であり得る、及び/または無秩序構造に配置され得る繰り返し構造単位からなる化合物または化合物の混合物を指す。本発明において有用な好適なポリマーは全体を通して記載されている。一実施形態では、ポリマーは、繰り返し単位が比較的無秩序な構造に集合したプラズマポリマーである。
用語「プラズマ」は、一般に、イオン、電子、中性種、及び放射線の混合物を含む(部分的に)イオン化されたガス様集合体を指す。本明細書で言及するプラズマは少なくとも1つのモノマーを含む。
本明細書において「プラズマポリマー」は、1つ以上のモノマーを含むプラズマから誘導されたポリマーである。
本明細書に記載のナノP3材料は、1つ以上のモノマーから誘導される。
ナノP3材料は、ホモポリマーまたはコポリマーであり得る。一実施形態では、ナノP3材料は、ホモポリマーである。別の実施形態では、ナノP3材料は、コポリマーである。
約3470G〜約3520Gの範囲内に中心があり、及び/または約2.001〜約2.005の範囲内のg因子に対応する広い電子常磁性共鳴ピーク、
約1019〜約1015スピン/cm3の範囲の合成後約0時間〜約2時間以内に電子常磁性共鳴により測定されたスピン密度、
合成後約0時間〜約240時間以内に電子常磁性共鳴により測定された約1017〜約1015スピン/cm3の範囲であるスピン密度、
−約3680〜約2700cm−1の範囲内;
−約1800〜約1200cm−1の範囲内;
−約2330〜約2020cm−1の範囲内;
−約1200〜約1010cm−1の範囲内;及び/または
−約1010〜約700cm−1の範囲内;
に中心がある赤外スペクトルの1つ以上の吸収帯、
−約3600〜3100cm−1の範囲内;及び/または
−約3100〜2700cm−1の範囲内;
に中心がある赤外スペクトルの1つ以上の吸収帯、
約−100mV〜約+100mVの範囲内のゼータ電位;
約2〜約10のpH範囲内の溶液中で測定された約−80mV〜約+80mVの範囲内のゼータ電位;または
窒素:炭素の元素比が約0.01:1〜約2:3であること、
のうちの1つ以上を特徴とし得る。
−約3680〜約2700cm−1の範囲内;
−約1800〜約1200cm−1の範囲内;
−約2330〜約2020cm−1の範囲内;
−約1200〜約1010cm−1の範囲内;
−約1010〜約700cm−1の範囲内;
−約3600〜3100cm−1の範囲内;
−約3100〜2700cm−1の範囲内;及び/または
これらの混合物
に中心がある赤外スペクトルの1つ以上の吸収帯を示し得る。
ナノP3材料の作製中に、本明細書に記載のナノ粒子ポリマーから凝集体が形成され得る。
本明細書に記載のナノ粒子ポリマー、凝集体、またはナノP3材料は、コンジュゲートを形成するために、1つ以上の化合物、例えば有機化合物、有機金属化合物、または本明細書に定義された第2の種に結合し得る。第2の種が表面電荷を帯びていると、ナノP3への荷電した第2の種の結合は、コンジュゲーションプロセス中において反応条件のpHを変えることによって調節され得る。溶液のpHは、アミン及びカルボン酸基などの表面官能基のプロトン化または脱プロトン化を通じてナノP3の電荷を調節する。例えば、ナノP3材料及び第2の種を含有する溶液のpHを上昇させることによって、ナノP3材料への正電荷を帯びたコンジュゲートの結合が改善され得る。アルカリ性の高い媒体では、ナノP3は、脱プロトン化カルボキシル表面基を介して負電荷を帯びるようになり、これはまた、負電荷を帯びた粒子間の反発力のためにナノ粒子を安定化させる。あるいは、ナノP3材料及び第2の種を含有する溶液のpHを低下させることによって、ナノP3材料への負電荷を帯びたコンジュゲートの結合が改善され得る。本明細書に示されるように、第2の種の表面電荷に関係なく、反応条件のpHを変えることなく、多くの第2の種が、本明細書に記載のナノP3材料にコンジュゲートすることができる。
(1)Fab、抗体分子の一価の結合フラグメントを含み、酵素パパインにより抗体全体を消化し、インタクトな軽鎖及び1つの重鎖の一部が生じることによって生成することができるフラグメント;
(2)Fab’、抗体全体をペプシンで処理し、続いて還元してインタクトな軽鎖及び重鎖の一部が生じることによって得ることができる抗体分子のフラグメント;抗体分子あたり2つのFab’フラグメントが得られる;
(3)(Fab’)2、抗体全体を酵素ペプシンにより処理し、その後還元せずに得ることができる抗体のフラグメント;F(ab)2は2つのジスルフィド結合によって一緒に保持された2つのFab’フラグメントの二量体である;
(4)Fv、2本の鎖として発現される軽鎖の可変領域及び重鎖の可変領域を含む遺伝子組換えされたフラグメントとして定義される;
(5)一本鎖抗体(「SCA」)、遺伝的に融合した一本鎖分子として適切なポリペプチドリンカーによって連結された、軽鎖の可変領域、重鎖の可変領域を含む遺伝子組換え分子として定義される;このような一本鎖抗体は、多特異性であってもなくてもよいダイアボディ、トリアボディ、及びテトラボディなどの多量体の形態であり得る;ならびに
(6)単一ドメイン抗体、典型的には軽鎖を含まない可変重鎖ドメイン。
本明細書で定義されるようなナノ粒子ポリマー、凝集体、またはコンジュゲート、及び薬学的に許容可能なキャリア、賦形剤、または結合剤を含む医薬組成物が本明細書に開示される。一実施形態では、ナノ粒子ポリマー、凝集体、またはコンジュゲートは、薬学的に許容可能である。本明細書に開示の医薬組成物において、第2の種は治療薬または診断薬であり得る。
疾患、障害、または状態の1つ以上の症状に罹患している、罹患しやすい、またはそれを示す対象を治療する方法が本明細書に開示され、該方法は、本明細書で定義されるようなナノ粒子ポリマー、凝集体もしくはそのコンジュゲート、または本明細書で定義されるような医薬組成物を対象に投与する工程を含む。用語「処置すること」は、本明細書において、治療的処置及び予防的処置の両方を包含するために使用される。したがって、本明細書に開示される処置方法は、疾患、障害、または状態の1つ以上の症状を予防する方法を包含し得る。「処置すること」は、疾患、障害、または状態の任意の1つ以上の症状の軽減をもたらすと解釈され得ることが理解されよう。また、対象の状態を治療または予防するための医薬の製造における、本明細書で定義されるようなナノ粒子ポリマー、凝集体またはコンジュゲートの使用が本明細書に開示される。
本明細書で定義されるようなナノ粒子ポリマー、凝集体、またはコンジュゲートを含む基質が本明細書にて開示される。
i)反応チャンバ内に少なくとも1種のガスを提供することと、
ii)前記反応チャンバ内にプラズマを発生させるように第1電極に電力を供給することと、
iii)前記反応チャンバ内の第2電極に電圧を印加することと、
iv)得られたナノP3材料を収集することと、を含み、
前記少なくとも1種のガスが有機ガスを含む、ナノP3材料(ナノ粒子ポリマー及びそれらの凝集体を含む)の調製方法が、本明細書にて開示される。存在するガスの少なくとも1種はモノマーとして作用する。
ii)前記反応チャンバ内に容量結合プラズマを発生させるように前記反応チャンバ内の第1電極に高周波(RF)電力を供給することと、
iii)前記反応チャンバ内の第2電極に電圧を印加することと、
iv)得られたナノP3材料を収集することと、を含み、
前記少なくとも1種のガスが有機ガスを含む、ナノP3材料(ナノ粒子ポリマー及びそれらの凝集体を含む)の調製方法もまた、本明細書にて開示される。存在するガスの少なくとも1種はモノマーとして作用する。
ii)前記反応チャンバ内に誘導結合プラズマを発生させるように高周波(RF)電力を供給することと、
iii)前記反応チャンバ内の第2電極に電圧を印加することと、
iv)得られたナノP3材料を収集することと、を含み、
前記少なくとも1種のガスが有機ガスを含む、ナノP3材料(ナノ粒子ポリマー及びそれらの凝集体を含む)の調製方法もまた、本明細書にて開示される。存在するガスの少なくとも1種はモノマーとして作用する。
i)絶対圧力約1〜約1500Paの圧力で反応チャンバ内にガスを提供することと、
ii)反応チャンバ内にプラズマを発生させるために、前記反応チャンバ内の第1電極に約1〜約50MHzかつ5〜500Wで高周波(RF)電力を供給することと、
iii)約1Hz〜約50kHzの周波数及び約1〜約150マイクロ秒のパルス幅で、パルス状の負のバイアス電圧を前記反応チャンバ内の第2の電極に印加すること(前記第2電極は前記第1電極から約5〜約20cm離れている)と、
iv)得られたナノ粒子材料を収集することとを含み、
前記ガスが炭化水素ガス、窒素及び希ガスを含む、ナノP3材料を調製するためのプロセスが提供される。
i)絶対圧力約6Pa〜約67Paの圧力で反応チャンバ内にガスを提供することと、
ii)反応チャンバ内にプラズマを発生させるために、前記反応チャンバ内の第1電極に約60〜約20MHzかつ5〜200Wで高周波(RF)電力を供給することと、
iii)約1〜約5kHzの周波数及び約10〜約30マイクロ秒のパルス幅でパルス状の負のバイアス電圧を前記反応チャンバ内の第2の電極に印加すること(前記第2電極は前記第1の電極から約5〜約20cm離れている)と、
iv)第1電極と第2電極との間であるかつ第2電極に極めて近接して配置された密封可能なバイアル内にナノ粒子材料を収集することと、
v)有機種をナノ粒子材料に共有結合させ、それにより官能化ナノ粒子材料を作製するために、密封可能なバイアル内のナノ粒子材料を有機種に曝露することとを含み、
前記ガスが炭化水素ガス、窒素及び希ガスを含む、ナノP3材料を調製するためのプロセスが提供される。
i)絶対圧力約6Pa〜約67Paの圧力で反応チャンバ内にガスを提供することと、
ii)反応チャンバ内にプラズマを発生させるために、前記反応チャンバ内の第1電極に約10〜約15MHzかつ5〜200Wで高周波(RF)及び電力を供給することと、
iii)第2の電気的に絶縁された電極が、前記反応チャンバ内で放電中に電極の帯電によって定まる浮遊電位を獲得することを可能にすること(前記第2電極は前記第1電極から約5〜約20cm離れている)と、
iv)第1電極と第2電極との間であるかつ第2電極に極めて近接して配置された密封可能なバイアル内にナノ粒子材料を収集することと、
v)有機種をナノ粒子材料に共有結合させ、それにより官能化ナノ粒子材料を作製するために、密封可能なバイアル内のナノ粒子材料を有機種に曝露することとを含み、
前記ガスが炭化水素ガス、窒素及び希ガスを含むナノP3材料を調製するためのプロセスが提供される。
i)ナノ粒子ポリマー、凝集体、またはそれらの混合物、及び
ii)少なくとも1つの第2の種
を提供することと、
該ナノ粒子ポリマーまたは凝集体と該少なくとも1つの第2の種とが物理的または化学的に互いに結び付くように、該ナノ粒子ポリマーまたは凝集体と該少なくとも1つの第2の種とを接触させることと、
を含むコンジュゲートの形成方法が、本明細書にて開示される。
ナノP3の合成
図2に概説した手順を用いてナノ粒子を合成した。
プラズマによって放出された放射線は、ナノ粒子コレクタの真上のプラズマ領域と見通し線内に配置された光ファイバによって得られた。放電スペクトルは、UV−VIS−NIR分光計(約0.2nmのスペクトル分解能を有するOcean Optics HR 4000)によってモニターされ、200〜1000nmの波長範囲をカバーするパーソナルコンピュータによって記録された。シグナルノイズ比の改善のため、積分時間を10スキャンで300msに設定し、各取得について平均化した。高分解能スペクトルが、1200溝mm−1回折格子を備えたActon SpectraPro 2750分光計(Princeton Instruments,USA)を使用して得られ、50μmで開いた入口スリットに対して0.014nmの公称解像度をもたらす。放電発光スペクトルは、分光計の出射面と光学的に結合された1024×1024ピクセルアレイを有するPI−MAX(Princeton Instruments,USA)強化型電荷結合素子(ICCD)によって得た。ICCD露光時間は300μsであり、平均取得数は25〜150の間で変動した。実験を通して全光学的設定を変えないようにした。プラズマ中のいくつかの種が関与する特定の放射遷移に関連した強度の時間的プロファイルを得るために、特定の測定を実施した(図2)。
ナノ粒子の化学的特性評価は、半球形分析器及びAl Kα単色X線源を備えたSPECS−XPS(Germany)を使用してX線光電子分光法(XPS)により研究した。システムを、200Wの電力で90°の取り出し角で、約10−9Torrの一定圧力で運転した。試料の調査スペクトルを、1eVのエネルギーステップ及び30eVのエネルギーパスを使用して、50eV〜1400eVのエネルギー範囲でスキャンした。C1s、N1s、及びO1sに関する高解像度スキャンを、0.03eVのエネルギーステップ及び23eVのエネルギーパスで記録した。CasaXPSソフトウェアを用いてピーク分析を行った。粒子中のこれらの元素の原子分率は、C1s、N1s、及びO1sピークの積分面積を計算し、それらが合計100%になる(すなわち、水素及び微量の他の元素を無視して)と仮定することにより決定された。ピークフィッティングは、各成分についてシャーリーバックグラウンド、及び同一の半値全幅を有する混合(convoluted)ローレンツ(30%)−ガウス(70%)線形状を採用することによって実施した。電荷補償は、約285eVの結合エネルギーでC1sピークにおいてC−C/C−H成分を割り当てることによって全てのスペクトルに適用した。
Vertex v70システムに統合され、ゲルマニウム結晶による20xATR対物レンズを備えたBruker Hyperion FTIR顕微鏡を用いて、減衰全反射モード(FTIR−ATR)でフーリエ変換分光法によって赤外スペクトルを記録した。各スペクトルは、4000cm−1〜750cm−1の範囲の波数で4cm−1のスペクトル分解能で合計500スキャンを平均することによって得られた。下にある基板からのバックグラウンドシグナルを排除するために、スペクトルサブトラクション及びベースラインを適用した。
ナノ粒子を3kV〜10kVの範囲の加速電圧で4〜8.5mmの作動距離でZeiss ULTRA PLUS走査型電子顕微鏡を用いて画像化した。
ナノ粒子中の不対電子の検出は、Bruker EMXplus Xバンドスペクトロメーターを用いたESR分光法によって実施した。スペクトルは、3490Gの中心磁場、90msのサンプリング時間、3Gの変調振幅、105Hzの変調周波数、ならびにそれぞれ9.8GHz及び25mWのマイクロ波周波数及び電力で収集した。ナノP3材料を超純水に懸濁し、150μLの試料容積の石英ガラス製Suprasilフラットセル内に移した。定量的EPR分析は、ナノ粒子の二重積分スペクトルを既知のスピン線密度(約1013スピン/cm)の標準試料と比較することによって実施した。
ナノP3及びコンジュゲート型ナノP3材料の表面電荷は、Zetasizer Nano ZS(Malvern Instruments,Germany)を使用して、使い捨て折り畳みキャピラリーセル(Malvern,DTS1070)中のゼータ電位を測定することによって決定した。平均値及び対応する標準偏差が計算された;n=3。
ナノP3を、ヌクレアーゼ不含水中で2.5μg/mlのPhotinus pyralis由来のルシフェラーゼ(abcam,L9506)に4℃で1時間コンジュゲートし、Bio RS−24ミニローテーターを用いて穏やかに撹拌した。200nmの金ナノ粒子(Cytodiagnostics;G−200)へのルシフェラーゼのコンジュゲーションも同様に実施した。インキュベーション後、ナノP3試料を、ヌクレアーゼ不含水中で1回の洗浄あたり5分間、16,100gでの遠心分離によって3回洗浄したが、金ナノ粒子は製造元の指示にしたがって3回均等に洗浄した。次に各試料を100μlの生理食塩水に再懸濁し、1mLのシリンジに移した。
(1)介入なし;
(2)ナノP3のみ;
(3)金ナノ粒子とルシフェラーゼ、及び
(4)ナノP3とルシフェラーゼ。
ナノP3は、RT−PCRグレードの水(Life technologies,4387936)を含む組織培養フード内で無菌条件下でナノ粒子コレクタから収集した。ナノP3の濃度はNanoSight NS300によって測定した。ナノP3を所望の第2の種とインキュベートして4℃で1時間コンジュゲートを形成させ、Bio RS−24ミニローテーターを用いて穏やかに撹拌した。インキュベーション後、試料を16,100gで5分間の遠心分離により洗浄した。
ナノ粒子ポリマー及び凝集体は、上記の「ナノP3の合成」のセクションで概説した方法を用いて調製した。アセチレン以外の他のモノマーから他のナノ粒子ポリマー及び凝集体を形成することができることが理解されよう。
(i)放電に結合した電力;
(ii)放電圧力;
(iii)モノマー流速;及び/または
(iv)コレクタ寸法。
アセチレン/窒素/アルゴンプラズマ放電で作製されたナノ粒子の場合、窒素の存在下でアセチレンを使用して作製されたナノ粒子及び凝集体は、主に炭素及び窒素で構成されている(図11)。水素も存在すると予想されるが、この方法では検出できない。ナノ粒子の表面元素組成及び結合配置は、X線光電子分光法を用いてより詳細に分析した。結果は、それぞれ65.6%、27.6%、及び6.8%の相対濃度での炭素、窒素、及び酸素の存在を明らかにする。したがって、本明細書に開示されるナノ粒子及び/または凝集体は、それぞれ60〜70%、20〜30%、及び5〜10%の相対濃度で炭素、窒素、及び酸素を含み得る(例えば、X線光電子分光法によって決定されるように)。
定常状態発光分光法を使用して、本発明者らは、水溶液(または細胞培地)中に分散したナノP3がUV−VIS−NIR範囲内で自己蛍光性であることを見出した。マイクロプレートリーダーを使用して、乾燥(合成されたまま(as synthesized))及び再懸濁した(PCRグレードの水または細胞培地)ナノP3の両方の蛍光発光/励起スペクトルを測定した。図26の画像Aは発光プロファイルが励起エネルギーに依存することを示し、図26の画像Bは強度が溶液中のナノP3濃度と共に著しく増加することを示す。図26の画像Cは、ウェルコレクタにおける合成されたままの乾燥ナノP3の蛍光分布を示す。マッピングモードで各ウェルをスキャンすることによって、ウェル内のナノP3の分布を測定した。30×30マトリックスを使用し、900ポイント/ウェル分解能を得た。励起モノクロメーター及び発光モノクロメーターをそれぞれ360nm及び430nmに設定し、ゲインを2200に、焦点重量を9mmに設定した。図26の画像Dは、ナノP3の蛍光特性が、青色、緑色、黄色、及び赤色のチャネルで測定された共焦点蛍光顕微鏡によって確認されたことを示す。この実験では、合成パラメータは、アセチレン、窒素、及びアルゴンに対してQ=3、10、及び3sccm、作動圧力150mTorr、ならびに高周波電力50Wに設定した。
マイクロプレートリーダーを使用して、乾燥(合成されたまま)及び再懸濁した(PCRグレードの水または細胞培地)ナノP3の両方の蛍光発光/励起スペクトルを測定した。図27の画像Aは、最大ストークスシフトが360nmの励起波長で80nm、600nmの励起で25nmに減少したことを示す。ストークスシフトは、励起波長を対応する発光波長から差し引くことによって計算された。図27の画像Bは、ナノP3蛍光の強度が溶液中で経時的に増加することを示し、これは、粒子表面へのラジカル拡散によって引き起こされる連続的な表面酸化と相関していた。この実験では、合成パラメータは、アセチレン、窒素、及びアルゴンに対してQ=3、10、及び3sccm、作動圧力150mTorr、ならびに高周波電力50Wに設定した。
本発明のナノP3は多くの利点を提供する。ナノP3によって与えられる利点の一例は、有効担持量を保持するために使用される凝集体の数によって有効担持量を適合または最適化することができることである。本発明者らは、ナノP3表面に結合した分子の総数が最終的にはナノP3表面積及びカーゴの分子量との比率に依存することを見出した(図28)。インキュベーション後にナノP3に結合した分子カーゴの量を、ナノP3の吸光度及び/または蛍光測定を用いて計算した−カーゴ試料及びそれらの対応する洗浄液(カーゴ=2,2−ジフェニル−1−ピクリルヒドラジル(DPPH)、インドシアニングリーン(ICG)、パクリタキセル−Oregon Green 488(パクリタキセル)、CY5−CPKKKRKV−NH2(siRNA)、及びヤギ抗ラットIgG−Alexa647(IgG))。全体的に見て、分子量の増加とともに、ナノP3に結合した分子の数は著しく減少した。この実験では、プラズマパラメータは、アセチレン、窒素、及びアルゴンについてQ=3、10、及び3sccm、150mTorr、ならびに50Wに設定した。ナノP3(109ナノP3/mL)とカーゴとのインキュベーションは、室温でRT−PCRグレード水(pH=7)中で1時間実施した。
図29は、結合カーゴの量が溶液中のそれらの濃度と共に増加することを示す。薬物(パクリタキセル)、造影剤(インドシアニングリーン;「ICG」)、及びターゲティングリガンド(IgG)による例示は、それぞれ2.3μg、2.9μg、及び0.8μgで表面飽和を示した。この実験では、プラズマパラメータは、アセチレン、窒素、及びアルゴンについてQ=3、10、及び3sccm、150mTorr、ならびに50Wに設定した。ナノP3(109ナノP3/mL)とカーゴとのインキュベーションは、室温でRT−PCRグレード水(pH=7)中で1時間実施した。
単純なナノP3コンジュゲーションプロセスに関連する結合キネティクスは、異なるインキュベーション時点及び温度で結合カーゴの量を測定することによって評価することができる。ナノP3材料を、実施例5で計算された正確な量のインドシアニングリーン(ICG)とコンジュゲートさせて、単層、すなわち単一のナノP3粒子(半径99nm)上の1.9×106のICG分子においてナノ粒子表面を飽和させた。図30は、総カーゴの90%が24℃でのインキュベーション後の最初の30秒以内にナノP3の表面に固定化された一方、より低い温度(4℃)でのインキュベーションは同じ時点で60%の結合をもたらしたことを示す。両方の条件に対して、インキュベーション後5分以内に表面飽和が達成された。この実験では、プラズマパラメータは、アセチレン、窒素、及びアルゴンについてQ=3、10、及び3sccm、150mTorr、ならびに50Wに設定した。ナノP3(109ナノP3/mL)とICGとのインキュベーションは、室温でRT−PCRグレード水(pH=7)中で1時間実施した。
ナノ粒子プラットフォームが臨床用途に適用可能であるためには、長い保管寿命及び官能化への容易な経路が必要条件である。ナノP3は、リンカー化学または長いインキュベーション期間を必要としない、費用及び時間効果の高いナノ粒子プラットフォームをもたらす。テンプレート分子としてインドシアニングリーン(ICG)を用いて、長期間保管したナノP3の結合効率を測定した。図31は、ナノP3がカーゴを固定化する能力が、室温で空気中に保存されてから最初の6ヶ月間は実質的に一定のままであることを示す(図31)。最大16ヶ月まで保存された試料については、結合効率において28%の減少(有意ではない)が観察された。しかしながら、溶液中のICGの濃度を増加させることによって、ナノP3の表面を完全に飽和させることは依然として可能であった。低温、真空、または他の非反応性環境を含む、代替的な保管方法を採用することによって、場合により長期の保管寿命が実現する。プラズマパラメータは、アセチレン、窒素、及びアルゴンについてQ=3、10、及び3sccm、150mTorr、ならびに50Wに設定した。ナノP3(109ナノP3/mL)とICGとのインキュベーションは、室温でRT−PCRグレード水(pH=7)中で1時間実施した。
インドシアニングリーン(ICG)は、それぞれ805nm及び830nmでの発光波長及び励起波長を有する蛍光色素である。このスペクトルウィンドウにおける組織の吸光度特性が低いために、ICGは医療診断のために臨床で広く使われている。しかしながら、ICGは、in vivoでの短い半減期循環を特徴とする。
検出のためにCy−5蛍光標識に結合した正荷電を帯びたペプチド配列(Cy−5−CPKKKRKV−NH2)を用いて、高荷電カーゴへのナノP3の結合も調べた。
ナノ粒子ポリマー凝集体は、以下のように異なるpHでリン酸緩衝液(PB)中で試験された。
最初の研究では、3つの異なる細胞型について細胞毒性を評価した:
1)ヒト冠動脈内皮細胞(hCAEC,4継代,Cell Applications,300−05a);
2)ヒト冠動脈平滑筋細胞(hCASMC,5継代,Cell Applications,350−05a)及び;
3)乳癌細胞(MCF7,15継代,Sigma−Aldrich,86012803)。
図36は、抗体によるナノP3の単一官能化の概略図を示す。図37は、薬物によるナノP3の単一官能化の概略図を示す。図38は、抗体及び薬物によるナノP3の官能化の概略図を概説する。
ナノP3を、RT−PCRグレードの水を用いて組織培養フード内で無菌条件下でナノ粒子コレクタから収集した。ナノ粒子の濃度は、NanoSight LM10によって測定した。次いで、ナノ粒子を、光から保護して4℃で最大16時間まで、所望の抗体(ヤギ抗ラットIgG−Cy5;abcam ab6565;及びヤギ抗ウサギIgG;1:100希釈でのabcam ab150089)、薬物(ドキソルビシン:100μg/mlでのSigma−Aldrich,D1515、及び5μg/mLでのパクリタキセル−Oregon Green 488,Invitrogen P22310)またはタンパク質(0.5μg/mLでの西洋ワサビ由来ペルオキシダーゼ;Sigma−Aldrich HRP;P6782)にコンジュゲートさせた。150nmの金ナノ粒子へのHRPのコンジュゲーションを同じ方法で実施した(Cytodiagnostics;G−150)。試料をBio RS−24ミニローテーターを用いて穏やかに撹拌した。インキュベーション後、試験試料及び適切な対照を、最初の4回の洗浄については5分間16,000gで遠心分離し、5回目の洗浄については15分間洗浄することによって5回均等に洗浄した。プレートリーダーを用いて蛍光強度を測定し、Ex/Emは各抗体または薬物上の蛍光色素標識にしたがって設定した。例えば、Alexa 488及びOregon Green488のEx/Emが494/517であるのに対し、Cy5のEx/Emは650/667nmである。ドキソルビシンのEx/Emは、470/585である。HRPの検出では、コンジュゲート型ナノ粒子及び各対照を、色が視認されるまでABTS(Sigma−Aldrich;A1888)及び過酸化水素(Merck;386790)と共にインキュベートし、405nmで測定した。
方法及び材料
アクチン染色
固定後、実施例11に列挙した細胞型をPBS中0.1%のx−triton 100で5分間透過処理した。次に試料をPBS中で3回洗浄した。次いで、細胞をActin Red 555 ReadyProbes試薬(Life technologies,R37112)中で30分間、500μlのPBSに対して20μlの試薬を希釈してインキュベートした。
固定後、細胞をDAPI溶液(PBS中1:1000希釈,SAPBIO,NBP2−34422R)と共に室温で5分間インキュベートした。試料をPBS中で3回洗浄した後、水性蛍光シールド封入剤で封入した。カバースリップをかけた後、画像を蛍光顕微鏡下で24時間以内に撮影した。
RT−PCRグレードの水を用いて組織培養フード内の無菌条件下で粒子コレクタからナノ粒子を収集した。ドキソルビシンを含まないナノ粒子対照の場合、ドキソルビシンの代わりに等量の水をウェルに加えた。同様に、ドキソルビシン対照ウェルでは、ナノ粒子の代わりとして水を加えた。50μg/mLのドキソルビシン(Sigma−Aldrich,D1515)を含むウェルにナノ粒子を添加した場合、時間経過測定は、0分から開始して5分まで30秒毎に、プレートリーダー(Ex/Em:470/585)を介して直ちに開始された。ドキソルビシンの蛍光損失を時間0に対して計算した。
実験では、細胞透過剤を必要とせずに、試験した全ての細胞型においてナノ粒子が細胞壁を透過することが確かめられた。さらに、最大1500万ナノ粒子/mLまでの濃度の非コンジュゲート型ナノ粒子は、内皮細胞及び平滑筋細胞に対して無毒であることが示されたが、乳癌細胞の増殖に対しては穏やかに阻害性であった。
1)介入なし;
2)ナノP3のみ;
3)市販の金ナノ粒子及びルシフェラーゼ;または
4)尾静脈注射によるナノP3及びルシフェラーゼ。
別の動物実験では、マウスを無作為に3つの群に分けた:
1)ナノP3のみ;
2)ナノP3及びICG;または
3)ICGのみ。
別の動物実験では、図51の画像Aに示すように、様々な試料群:生理食塩水対照(切開1)、ナノP3のみ(切開2)、ナノP3−VEGF−ICG(切開3)、及びナノP3−VEGF(切開4)の局所送達のために各マウスの背中に合計4つの切開(5mm)を施した。創傷あたりの総投与試料容量は5μLであった。ナノP3を含有する群では、投与量は以下の通りであった。切開2:5×109ナノP3;切開3:5×109ナノP3と0.058μgのVEGF/109ナノP3及び1.25μgのICG/109ナノP3;切開4:5×109ナノP3と0.115μgのVEGF/109ナノP3。図51の画像Bは、ICGで官能化されたナノP3を含有する試料群のみが陽性蛍光シグナルを生じたことを示す。蛍光強度は経時的に減少し(切開後14日目まで定量化)、創傷部位に限定されたままであった。図51の画像Cに示すように、免疫組織化学による創傷組織のさらなる分析により、生理食塩水及びナノP3のみの対照と比較して、ナノP3−VEGF−ICG及びナノP3−VEGF群における内皮化の促進(後者は有意)が明らかになった。これらの結果は、宿主組織におけるナノP3の分布の同時イメージングを可能にしながら、ナノP3に固定化された官能性カーゴをin vivoで送達することができることを実証している。
方法及び材料
細胞生存率アッセイ
3つの異なる細胞型について細胞毒性を評価した:
1)ヒト冠動脈内皮細胞(hCAEC,4継代,Cell Applications,300−05a);
2)ヒト乳細胞株(MCF10A,20継代);及び
3)乳癌細胞(MCF7,15継代,Sigma−Aldrich,86012803)。
ナノP3を所望の抗体(ヤギ抗ウサギIgG−40nm金;abcam,ab119180、ヤギ抗マウスIgG−20nm金;abcam,ab27242、及び/またはヤギ抗ラットIgG−10nm金;abcam,ab41512)と共に4℃で1時間インキュベートし、Bio RS−24ミニローテーターを用いて穏やかに撹拌した。インキュベーション後、試料を16,100gで5分間の遠心分離により洗浄した。次に試料を収集し、300メッシュ銅(Proscitech,GSCu300C)上の組織培養フード内で風乾させ、Zeiss Sigma HD FEG SEM(SMM Facilities,Sydney)を使用して可視化した。
ナノP3を二次抗体(ロバ抗ヤギIgG−Alexa488;abcam,ab6881;ヤギ抗ラットIgG−Alexa647;abcam,ab150159、ヤギ抗ウサギIgG−750;abcam,ab175733)及び/または薬物(パクリタキセル−Oregon Green 488,Invitrogen P22310)に4℃で1時間コンジュゲートし、光から保護してBio RS−24ミニローテーターを用いて穏やかに撹拌した。インキュベーション後、試験試料及び適切な対照を、1回の洗浄につき5分間、16,100gでの遠心分離を介して3回均等に洗浄した。プレートリーダーを用いて蛍光強度を測定し、Ex/Emを各抗体または薬物上の蛍光色素標識にしたがって設定した。
hCAEC、MCF10A、及びMCF7細胞を、画像を得るための細胞培養に適したLab−Tekガラスチャンバスライド(Lab−Tek,154534、及び155380)上に10,000〜15,000細胞/cm2の密度で播種した。細胞播種から4時間後、試験ナノP3試料及び対照を24時間全細胞型と共にインキュベートした。次に、細胞を室温で10分間3.7%パラホルムアルデヒドで固定した。次いで、細胞染色の前に試料をPBSで3回洗浄した。
固定後、細胞をPBS中0.1%のx−トリトン100で5分間透過処理した。次に試料をPBS中で3回洗浄した。次いで、細胞をActin Red 555 ReadyProbes試薬(Life technologies,R37112)中で15分間、1000μlのPBSに対して20μlの試薬を希釈してインキュベートした。次に試料をPBS中で3回洗浄した。細胞をDAPI溶液(PBS中1:1000希釈,SAPBIO,NBP2−34422R)と共に室温で5分間インキュベートした。試料をPBS中で3回洗浄した後、水性蛍光シールド封入剤(Cat.)で封入した。カバースリップをかけた後、画像は蛍光顕微鏡(Zeiss Microscope)下で24時間以内に撮影された。
ナノP3を、Photinus pyralis由来のルシフェラーゼに2.5μg/ml(abcam,L9506)で4℃で1時間コンジュゲートし、Bio RS−24ミニローテーターを用いて穏やかに撹拌した。200nmポリスチレン(ThermoFisher Scientific;R200)及び200nm金ナノ粒子(Cytodiagnotics;G−150)へのルシフェラーゼのコンジュゲーションを同一の様式で実施した。インキュベーション後、ナノP3試料は、1回の洗浄につき5分間、16,100gでの遠心分離を介して3回洗浄した一方、適切な対照は、製造元の指示にしたがって3回均等に洗浄した。全ての洗浄液を収集した。ルシフェラーゼの検出の場合、コンジュゲート型ナノ粒子及び各対照、ならびにそれらの全ての洗浄液を、70mM ATP−Mg2+を含有するD−ルシフェリン(Sigma−Aldrich;A1888)と共にインキュベートした。次いで、IVISシステムを介して生物発光を検出した(露光時間:30秒)。
ナノP3中の遊離ラジカルの存在は、単純なインキュベーションによる生体分子の直接的な共有結合的固定化の可能性を示唆しており、競合するプラットフォームを超える本質的な利点をもたらす。非官能化ナノP3は、ヒト冠動脈内皮細胞(HCAEC)の膜を透過し、細胞質内に蓄積し、3View断面SEMを用いて観察した(図52,画像A)。これらの画像の3Dレンダリングは、核の外側(長円形の枠で囲まれている)の細胞膜内(長方形の枠で囲まれている)に分布したナノP3(これらの一部は三角形の枠で囲まれている)を示す(図52,画像B)。HCAEC、線維芽細胞(MCF10A)、またはヒト乳腺癌細胞(MC7)とのナノP3インキュベーションは、細胞生存率に有意な影響を及ぼさず、1ウェルあたり最大1×108粒子であった(図53,画像C)。細胞形態はまた、培養液中で3日または5日後にも影響を受けなかった(図53,画像D)。追加の化学的リンカーの非存在下でのルシフェラーゼとのインキュベーション、その後の3回の遠心洗浄工程(W1〜W3)は、ナノP3の生体分子固定化能力を示した。生物発光酵素ルシフェラーゼは、アンフォールドすると立体構造的に影響を受けやすく、かつ不活性であるので官能的活性の同時研究を可能にするように選択された。アッセイは、粒子なしで、または市販の金(GNP)もしくはポリスチレンナノ粒子を用いても行い、ナノP3と比較した(図54)。全ての洗浄工程を通じて、不可逆的な固定化及びルシフェラーゼ活性の保存をもたらしたのはナノP3のみであった。実験は、金及びポリスチレンナノ粒子について本明細書に示される他の全ての市販のプラットフォームが、官能性分子の強固な結合のために化学結合中間体を必要とすることを強調している。
ナノP3を核局在化配列(NLS)とコンジュゲートし、特にH−CPKKKRKV−OHのNLSを使用した。得られたコンジュゲートは、ヒト臍静脈内皮細胞(HUVEC)の核膜を透過した(図58)。ナノP3−NLSコンジュゲートの大部分は、ナノ粒子を細胞とインキュベートしたときに一般的に観察されるように、インキュベーションの24時間後に核の周囲に蓄積する。しかしながら、48時間後、陽性の蛍光シグナルが細胞の核領域に存在し、この細胞小器官へのナノ粒子−NLSトラッキングを示す。この実験は、異なる細胞小器官が適切なコンジュゲートを形成することによって標的化され得ることを示す。
VEGFに対するsiRNAとコンジュゲートしたナノ粒子(上記の実施例12に概して記載したようにコンジュゲートした)は、ウエスタンブロット分析によって確認されるように、48時間後にHUVECSにおけるVEGF発現を最大40%まで有意に減少させることに成功した(図59)。HUVEC細胞におけるナノ粒子−siRNAコンジュゲートの送達は、Cy−5によって標識したsiRNA−VEGFを使用する蛍光顕微鏡法によって確認した(図60)。この実験は、本明細書に開示されるナノP3材料が、siRNAの生物学的活性を維持しながらsiRNA分子を細胞内にうまく運搬することができることを示す。
ナノP3及び金(GNP)のナノ粒子を、西洋ワサビペルオキシダーゼ(HRP)とコンジュゲートした。これらは、2,2’−アジノ−ビス(3−エチルベンゾチアゾリン−6−スルホン酸)(ABTS)とのインキュベーションによって検出された。生成物の検出は405nmで実施され(図61)、ナノP3材料にコンジュゲートした相当量のHRPが示された。この実験は、本明細書に開示されているナノP3材料への生物活性タンパク質の成功したコンジュゲーションの別の例を提供する。
初代マウス線維芽細胞における(a)100nm及び(b)200nm(直径)ナノP3に結合したルシフェラーゼ(siLuci)に対する低分子干渉RNAの送達の効果を調べた。図62では、ウェルあたり1010粒子の濃度で100nmのナノP3と共にsiLuciを送達することによって、未処理細胞対照と比較して、ルシフェラーゼの発現は、72時間で39.74±6.42%へと有意に減少した。スクランブルsiRNA及び非官能化ナノP3の送達は有意な効果を及ぼさなかった。全てのナノP3試験群において細胞生存率の有意な減少は観察されなかった。IPSC由来ヒト内皮細胞における(a)100nm及び(b)200nm(直径)ナノP3に結合したルシフェラーゼ(siLuci)に対する低分子干渉RNAの送達の効果を調べた。図63では、ウェルあたり107粒子の濃度で200nmのナノP3と共にsiLuciを送達することによって、未処理細胞対照と比較して、ルシフェラーゼの発現は、72時間で48.96±1.24%へと有意に減少した。スクランブルsiRNA及び非官能化ナノP3の送達は有意な効果を及ぼさなかった。全てのナノP3試験群において細胞生存率の有意な減少は観察されなかった(図63)。
本発明者らは、本明細書で定義したようなナノP3材料を保持するために電界紡糸ポリウレタン足場を利用した。
群1−ポリウレタン(未処理)
群2−ポリウレタン及びナノ粒子(1×109mL−1)
群3:ポリウレタン、及び血管内皮細胞増殖因子(VEGF)を有するナノ粒子(1.5μg/mL、4℃で4時間担持)
群4−ポリウレタン、及びデキサメタゾン(DEX)を有するナノ粒子(10μg/mL、4℃で4時間担持)。
Claims (38)
- 以下の特徴:
約3470G〜約3520Gの範囲内に中心があり、及び/または約2.001〜約2.005の範囲内のg因子に対応する広い電子常磁性共鳴ピーク、
約1019〜約1015スピン/cm3の範囲の合成後約0時間〜約2時間以内に電子常磁性共鳴により測定されたスピン密度、
合成後約0時間〜約240時間以内に電子常磁性共鳴により測定された約1017〜約1015スピン/cm3の範囲であるスピン密度、
−約3680〜約2700cm−1の範囲内;
−約1800〜約1200cm−1の範囲内;
−約2330〜約2020cm−1の範囲内;
−約1200〜約1010cm−1の範囲内;及び/または
−約1010〜約700cm−1の範囲内;
に中心がある赤外スペクトルの1つ以上の吸収帯、
−約3600〜3100cm−1の範囲内;及び/または
−約3100〜2700cm−1の範囲内;
に中心がある赤外スペクトルの1つ以上の吸収帯、
約−100mV〜約+100mVの範囲内のゼータ電位;
約2〜約10のpH範囲内の溶液中で測定された約−80mV〜約+80mVの範囲内のゼータ電位;または
窒素:炭素の元素比が約0.01:1〜約2:3
のうちの1つ以上を特徴とするナノ粒子ポリマー。 - 前記ポリマーが架橋している、請求項1に記載のナノ粒子ポリマー。
- 前記ポリマーが、炭化水素、ペルフルオロカーボン、エーテル、エステル、アミン、アルコール、またはカルボン酸モノマー類、またはそれらの混合物から誘導されたモノマー単位を含む、請求項1または請求項2に記載のナノ粒子ポリマー。
- 前記炭化水素が、アルケン、アルキン、シクロアルケン、シクロアルキン、またはそれらの混合物から選択される、請求項3に記載のナノ粒子ポリマー。
- 前記炭化水素がアルキンである、請求項3または請求項4に記載のナノ粒子ポリマー。
- 前記ポリマーが、第2の種に結合することができる少なくとも1つの結合部位を含む、請求項1〜5のいずれか一項に記載のナノ粒子ポリマー。
- 前記ポリマーが、
第2の種に共有結合することができる不対電子を含む結合部位、及び
化学的または物理的に第2の種に結合することができる少なくとも1つの官能基
のうちの少なくとも1つを含む、請求項1〜6のいずれか一項に記載のナノ粒子ポリマー。 - 前記ポリマーが、不対電子を含む前記結合部位を含む、請求項6または請求項7に記載のナノ粒子ポリマー。
- 前記第2の種が、ターゲティングリガンド、医薬品、造影剤、アミノ酸、ペプチド、天然生物活性分子の合成類似体、合成ペプチド模倣物、タンパク質、受容体ターゲティングリガンド、遺伝子標的化剤、ポリヌクレオチド、RNA、感光性色素、切断可能な連結分子、炭化水素、全細胞、細胞フラグメント、ミセル、リポソーム、ハイドロゲル、ポリマー粒子、半導体粒子、セラミック粒子、金属粒子、またはそれらの混合物から選択される、請求項6〜8のいずれか一項に記載のナノ粒子ポリマー。
- 前記ポリマーが、少なくとも1つのアミン基、イミン基、一酸化窒素基、またはニトリル基、またはそれらの混合物を含む、請求項1〜9のいずれか一項に記載のナノ粒子ポリマー。
- 前記ポリマーの粒子が、約1nm〜約1000nmの平均直径を有する、請求項1〜8のいずれか一項に記載のナノ粒子ポリマー。
- 前記ナノ粒子ポリマーが、少なくとも1つのモノマーを含むプラズマから形成される、請求項1〜11のいずれか一項に記載のナノ粒子ポリマー。
- 請求項1〜12のいずれか一項に記載の2つ以上のナノ粒子ポリマーを含む凝集体。
- 請求項1〜12のいずれか一項に記載のナノ粒子ポリマーまたは請求項13に記載の凝集体、及び
少なくとも1つの第2の種
を含むコンジュゲート。 - 2つ以上の第2の種が前記ナノ粒子ポリマーまたは凝集体に結合している、請求項14に記載のコンジュゲート。
- 請求項1〜12のいずれか一項に記載のナノ粒子ポリマー、請求項13に記載の凝集体、または請求項14もしくは請求項15に記載のコンジュゲート、及び薬学的に許容可能なキャリア、賦形剤、もしくは結合剤を含む医薬組成物。
- 請求項1〜12のいずれか一項に記載のナノ粒子ポリマー、請求項13に記載の凝集体、または請求項14もしくは請求項15に記載のコンジュゲートを含む基質。
- 前記ナノ粒子ポリマー、凝集体、またはコンジュゲートが、前記基質の少なくとも1つの表面上に存在する、請求項17に記載の基質。
- 前記ナノ粒子ポリマー、凝集体、またはコンジュゲートが、前記基質内に組み込まれる、請求項17に記載の基質。
- 前記ナノ粒子ポリマー、凝集体、またはコンジュゲートが、前記基質に共有結合している、請求項17〜19のいずれか一項に記載の基質。
- 請求項1〜12のいずれか一項に記載のナノ粒子ポリマー、
請求項13に記載の凝集体、または
それらの混合物の、
コンジュゲートの形成における使用。 - i)反応チャンバ内に少なくとも1種のガスを提供することと、
ii)前記反応チャンバ内に容量結合プラズマを発生させるように第1の電極に電力を供給することと、
iii)前記反応チャンバ内の第2の電極に電圧を印加することと、
iv)得られたナノ粒子ポリマーまたは凝集体を収集することと、を含み、
前記少なくとも1種のガスが有機ガスを含む、ナノ粒子ポリマーまたは凝集体の調製方法。 - 工程iii)における前記電圧がパルス状バイアス電圧である、請求項22に記載の方法。
- 工程iii)における前記電圧が、前記電極が前記プラズマからの電荷の蓄積によって浮遊電位を獲得する自己バイアスである、請求項22に記載の方法。
- 工程i)における前記ガスが、2種以上のガスの混合物である、請求項22〜24のいずれか一項に記載の方法。
- 前記2種以上のガスの混合物が、不活性ガスを含む、請求項25に記載の方法。
- 前記2種以上のガスの混合物が、周期表の15、16または17族から選択される元素を含むガスを含む、請求項25または請求項26に記載の方法。
- 前記2種以上のガスの混合物が、窒素を含む、請求項25〜27のいずれか一項に記載の方法。
- 工程i)において有機金属化合物を導入することをさらに含む、請求項22〜28のいずれか一項に記載の方法。
- 請求項22〜29のいずれか一項に記載の方法によって作製されたナノ粒子ポリマー。
- i)請求項1〜11、もしくは30のいずれか一項に記載のナノ粒子ポリマー;または請求項12に記載の凝集体、及び
ii)少なくとも1つの第2の種
を提供することと、
前記ナノ粒子ポリマーまたは凝集体と前記少なくとも1つの第2の種とが物理的または化学的に互いに結び付くように、前記ナノ粒子ポリマーまたは凝集体と前記少なくとも1つの第2の種とを接触させることと、
を含む、コンジュゲートの形成方法。 - 前記少なくとも1つの第2の種が、前記ナノ粒子ポリマーまたは凝集体に共有結合する、請求項31に記載の方法。
- 請求項31または請求項32に記載の方法によって作製されたコンジュゲート。
- 疾患、障害、または状態の1つ以上の症状に罹患している、罹患しやすい、またはそれを示す対象を治療する方法であって、前記方法が、請求項1〜12もしくは30のいずれか一項に記載のナノ粒子ポリマー、請求項13に記載の凝集体、請求項14、15もしくは33のいずれか一項に記載のコンジュゲート、または請求項16に記載の医薬組成物を前記対象に投与する工程を含む、前記方法。
- 前記疾患、障害、または状態が、急性冠症候群、加齢性疾患もしくは障害、アレルギー性疾患もしくは関連状態、アルツハイマー病、喘息、HIV、抗生物質耐性、アテローム性動脈硬化症、自己免疫疾患、細菌感染、がん、認知症、うつ病もしくは関連状態、糖尿病、脂質異常症、高脂血症、高血圧、魚鱗癬、免疫疾患、代謝性疾患もしくは障害、神経学的疾患もしくは障害、肥満症、パーキンソン病、疼痛、関節リウマチ、または増殖性疾患から選択される、請求項34に記載の方法。
- 対象における疾患、障害、または状態を治療するための医薬の形成における、請求項1〜12もしくは30のいずれか一項に記載のナノ粒子ポリマー、請求項13に記載の凝集体、または請求項14、15もしくは33のいずれか一項に記載のコンジュゲートの使用。
- 前記疾患、障害、または状態が、急性冠症候群、加齢性疾患もしくは障害、アレルギー性疾患もしくは関連状態、アルツハイマー病、アテローム性動脈硬化症、自己免疫疾患、細菌感染、がん、認知症、うつ病もしくは関連状態、糖尿病、脂質異常症、高脂血症、高血圧、魚鱗癬、免疫疾患、代謝性疾患もしくは障害、神経学的疾患もしくは障害、肥満症、パーキンソン病、疼痛、関節リウマチ、または増殖性疾患から選択される、請求項36に記載の使用。
- 少なくとも1つの第2の種が造影剤である、請求項14、15もしくは33のいずれか一項に記載のコンジュゲートまたは請求項16に記載の医薬組成物を対象に投与する工程を含む、前記対象内の領域のイメージング方法。
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