JP2019511516A - タバコ葉抽出物及びタバコ中毒の治療のためのその使用 - Google Patents
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Abstract
Description
a. タバコ葉の乾燥(Curing)、
b. 粉砕した乾燥させたタバコ葉を取得するための、乾燥させたタバコ葉の粉砕、
c. 溶媒、例えば水性溶媒、好ましくは6.0〜8.5のpHを有する水性緩衝剤溶液を用いる、機械的撹拌下での、粉砕した乾燥させたタバコ葉の抽出、
d. 固体残渣を含まない粉砕した乾燥させたタバコ葉の抽出物の溶液を取得するための、ろ過又は遠心分離による、粉砕した乾燥させたタバコ葉の抽出物の溶液からの固体残渣の分離、
e. 抽出物の体積に基づき、体積で2〜12倍、好ましくは体積で3〜10倍、好ましくは体積で4〜8倍の範囲、好ましくは体積で6倍の量の溶媒、好ましくは水性溶媒を用いる、及び、10kDaカットオフ膜を用いる、工程dにおいて取得される溶液の定積ろ過、
f. 任意で、工程eにおいて取得されるタンパク質溶液の凍結乾燥
を含む、プロセスにも関する。
本発明は、乾燥抽出物の総重量に基づき少なくとも5重量%、好ましくは少なくとも10重量%、好ましくは少なくとも15重量%、好ましくは約20重量%の、分子量が10kDaより大きいタンパク質を含有し、分子量が10kDa未満である分子を本質的に含まない、タバコ葉抽出物に関する。
− 溶媒又は溶媒混合物の極性(極性又は非極性);
− 溶媒又は溶媒混合物の物理的状態(例えば、液体、固体、超臨界状態又は気体);
− 溶媒又は溶媒混合物の化学的性質(例えば、有機又は無機);
− 溶媒又は溶媒混合物の電荷(例えば、イオン性又は非イオン性);
− 溶媒又は溶媒混合物の起源;
− 溶媒又は溶媒混合物の混和性;
− 溶媒又は溶媒混合物の溶解性。
第2の態様では、本発明は、上で記載されるようなタバコ葉抽出物を活性成分として含む医薬組成物に関する。
第3の態様では、本発明は、タバコ中毒の治療のための医薬組成物の使用に関する。
− パッチの各コンパートメントの表面積と体積との比;
− 1つ又は複数の親水性添加剤の任意の添加;
− 1つ又は複数の拡散活性化剤又は阻害剤の任意の添加;
− 1つ又は複数の可溶化剤の任意の添加;
− 1つ又は複数の安定化剤の任意の添加;
− 1つ又は複数の吸収促進剤の任意の添加;並びに
− より一般的に、タバコ葉抽出物の流れ及び安定性の良好な制御を可能とする、当業者に周知の全ての種類の添加剤。
− 噴霧器、気化器又はエアロゾルの各コンパートメント又はリザーバの表面積と体積との比;
− 1つ又は複数の親水性添加剤の任意の添加;
− 1つ又は複数の拡散活性化剤又は阻害剤の任意の添加;
− 1つ又は複数の可溶化剤の任意の添加;
− 1つ又は複数の安定化剤の任意の添加;
− 1つ又は複数の吸収促進剤の任意の添加;並びに
− より一般的に、タバコ葉抽出物の流れ及び安定性の良好な制御を可能とする、当業者に周知の全ての種類の添加剤。
(i)シガレット消費を低減するための、本発明による医薬組成物の、喫煙を中断する試みの前における、投与、その後、負の強化の効果、特に離脱の感覚を限定するための、負の強化に作用する活性剤の投与;
(ii)即時の中止を目的とする、喫煙を中断する試みの時点での、本発明による医薬組成物の、及び負の強化に作用する活性剤の同時投与;
(iii)再発の防止を目的とする、例えば中断する試みの後12週間にわたる、負の強化に作用する活性剤の、喫煙を中断する試みの時点での、投与、その後、例えば負の強化に作用する活性剤の投与の終了後2週間にわたる、本発明による医薬組成物の投与。
第4の態様においては、本発明は、本発明によるタバコ葉抽出物の調製に関する。
a. タバコ葉の乾燥、
b. 粉砕した乾燥させたタバコ葉を取得するための、乾燥させたタバコ葉の粉砕、
c. 溶媒、例えば水性溶媒、好ましくは6.0〜8.5のpHを有する水性緩衝剤溶液を用いる、機械的撹拌下での、粉砕した乾燥させたタバコ葉の抽出、
d. 固体残渣を含まない粉砕した乾燥させたタバコ葉の抽出物の溶液を取得するための、ろ過又は遠心分離による、粉砕した乾燥させたタバコ葉の抽出物の溶液からの固体残渣の分離、
e. 抽出物の体積に基づき、体積で2〜12倍、好ましくは体積で3〜10倍、好ましくは体積で4〜8倍の範囲、好ましくは体積で6倍の量の溶媒、好ましくは水性溶媒を用いる、及び、10kDaカットオフ膜を用いる、工程dにおいて取得される溶液の定積ろ過、
f. 任意で、工程eにおいて取得されるタンパク質溶液の凍結乾燥。
− 溶媒又は溶媒混合物の極性(極性又は非極性);
− 溶媒又は溶媒混合物の物理的状態(例えば、液体、固体、超臨界状態又は気体);
− 溶媒又は溶媒混合物の化学的性質(例えば、有機又は無機);
− 溶媒又は溶媒混合物の電荷(例えば、イオン性又は非イオン性);
− 溶媒又は溶媒混合物の起源;
− 溶媒又は溶媒混合物の混和性;
− 溶媒又は溶媒混合物の溶解性。
第5の態様では、本発明は、本発明によるタバコ葉抽出物を含む医薬組成物の調製に関する。
a. 上で定義されるようなタバコ葉抽出物の調製、
b. 100〜200μg/mLの範囲のタンパク質濃度を取得するための、タンパク質濃度の調整、
c. 薬学的に許容可能な賦形剤の添加、及び
d. 任意で、この抽出物への補助剤の添加、好ましくは、マンニトールの添加。
− タンパク質濃度をより低くするための、水での希釈、又は
− タンパク質濃度を増大させるための、透析ろ過。
第6の態様では、本発明は、複数用量のタバコ葉抽出物又は本発明による医薬組成物を含むキットに関する。
実施例1:本発明によるタバコ葉抽出物の調製
バーリータバコ葉を使用して、抽出物を調製する。
実施例1のタバコ葉抽出物のタンパク質を、先ず、ポリアクリルアミドゲルで分離する。このために、分析対象の抽出物を、NuPage(登録商標)Bis−Trisゲル(4〜12%)に添加し、電気泳動を、200Vで35分間実施し、その後、20mLのInstant Blueと1h接触させ、その後、水で終夜リンスする。選択されたポリアクリルアミドゲルのバンドを、切り出し(6つのバンド)、その後、50mM NH4CO3/CH3CN(50/50)緩衝剤で脱染する。ジスルフィド架橋を、その後、10mM ジチオスレイトール/50mM NH4CO3溶液を用いて、55℃で40分間還元する。還元されたシステインを、その後、100mM ヨードアセトアミド/50mM NH4CO3溶液を用いて、30分間室温、暗所でアルキル化する。
− P36401;E13H_TOBAC;グルカンエンド−1,3−ベータ−グルコシダーゼ、酸性アイソフォームPR−Q’(EC3.2.1.39)((1−>3)−ベータ−グルカンエンドヒドロラーゼ)((1−>3)−ベータ−グルカナーゼ)(ベータ−1,3−エンドグルカナーゼ)(PR−35);MM:36995Da;
− P17513;CHIP_TOBAC;酸性エンドキチナーゼP(EC3.2.1.14)(病態形成関連タンパク質P)(PR−P);MM:27469Da;
− P17514;CHIQ_TOBAC;酸性エンドキチナーゼQ(EC3.2.1.14)(病態形成関連タンパク質Q)(PR−Q);MM:27633Da;
− P27666;E13F_TOBAC;グルカンエンド−1,3−ベータ−グルコシダーゼ、塩基性液胞型アイソフォームGLB(EC3.2.1.39)((1−>3)−ベータ−グルカンエンドヒドロラーゼ)((1−>3)−ベータ−グルカナーゼ)(ベータ−1,3−エンドグルカナーゼ、塩基性)(グルカナーゼ GLB);MM:40443Da;
− P14170;OSMO_TOBAC;オスモチン;MM:26681Da
− P24091;CHI2_TOBAC;エンドキチナーゼB(CHN−B)(EC3.2.1.14);MM:34721Da;
− P11965;PERX_TOBAC;リグニン形成性アニオン性ペルオキシダーゼ (EC1.11.1.7)(TOPA);MM:34674Da;
− P13046;PRR1_TOBAC;病態形成関連タンパク質R主要形態(タウマチン様タンパク質E22);MM:24667Da;
− P29062;PR4A_TOBAC;病態形成関連タンパク質PR−4A;MM:16221Da;
− Q03199;IPIB_TOBAC;プロテイナーゼ阻害剤I−B(PI−IB)(微生物セリンプロテイナーゼ主要アイソフォームの阻害剤);MM:11916Da;
− Q03198;IPIA_TOBAC;プロテイナーゼ阻害剤I−A(PI−IA)(微生物セリンプロテイナーゼ主要アイソフォームの阻害剤);MM:11880Da;
− P29063;PR4B_TOBAC;病態形成関連タンパク質PR−4B;MM:16235Da。
実施例1によるタバコ葉抽出物中の(透析ろ過工程の前及び後の)タンパク質含有量を、ブラッドフォード法に従って決定した。
− 透析ろ過前:295.45 +/− 9.91μg/mL;
− 透析ろ過後:160.61 +/− 1.31μg/mL。
実施例1によるタバコ葉抽出物における、分子量が10kDa未満である分子の除去を、使用された透析ろ過体積に従って、透析ろ過工程中に、モニタリングした。モニタリングを、10kDa未満の分子量の分析トレーサー(ニコチン)のガスクロマトグラフィアッセイによって行う。
材料及び方法:
− 使用された製品
PMA/イオノマイシン(Sigma−Aldrich 製品番号P8139/I0634)
BSA(Sigma Aldrich 製品番号A7020)
PBS(PAA Laboratories 製品番号H15−002)
Tween20(Sigma Aldrich 製品番号P1379)
ヤギ抗マウスIgG(g鎖特異的)−アルカリホスファターゼ(Southern Biotech 製品番号1030−04)
ビオチン−抗マウスIgE(Biolegend 製品番号BLE406904)
ストレプトアビジン−アルカリホスファターゼ(Southern Biotech 製品番号7100−04)
種々の健康なドナー由来の末梢血単核細胞を、密度勾配上の遠心分離によって単離した(分離培地:LMS 1077 PAA Laboratories)。取得した単核細胞を、種々の希釈率で実施例1による抽出物を用いて24h又は48h刺激した。上清を、取り出し、Luminex法を使用するサイトカインプロファイル分析のために、24h又は48hの刺激の後で−80℃で貯蔵した。24hの刺激の後、細胞を、フローサイトメトリーによる表現型分析のために採取した。
細胞を、最初に、生存度マーカー(Dye eFluor450(65−0863−14 eBioscience)で、その後、種々の膜マーカーの検出のための蛍光色素に直接結合した抗体で、染色した。T及びBリンパ球集団を、マーカーCD3及びCD19を用いて同定した。NK細胞を、マーカーNKp46若しくはマーカーCD56及びCD16の組合せのいずれかを用いて、又はCD3の不存在下におけるCD56発現を介して、検出した。これらの細胞集団から、種々の活性化マーカー(CD69、CD25、HLA−DR)のための「ゲート」が設定された。
ELISA及びサイトメトリー原理に基づくこの技術は、複数の分析物を同時にアッセイすることを可能とする。
7週齢の雌のC57BL/6及びBalb/cマウスを、Charles River(L’Arbresles、フランス)から購入した。マウスを、0及び21日目に、凍結乾燥し5mLの生理食塩水で再構成した、200μLの実施例1によるタバコ葉抽出物を用いて、腹腔内に免疫化した。血液を、免疫化前及び後の全てのマウスから回収した。遠心分離後、血清を、−20℃で凍結した。
ELISA実験のために、製品の1つのバイアルを、2.5mLの炭酸塩−重炭酸塩緩衝剤(0.1M、pH9)を用いて再構成した。Nunc Maxisorb 96Wプレートを、実施例1に従って凍結乾燥した後再構成し18hインキュベートした、100μLのタバコ葉抽出物とともに、インキュベートした。PBS−0.05%Tween緩衝剤でプレートを洗浄した後、プレートを、200μLのPBS−1%BSA緩衝剤を用いて、室温で1時間飽和させる。PBS−0.05%Tween緩衝剤でプレートを洗浄した後、PBS−1%BSAで1/20に希釈した100μLのマウス血清を、室温で2時間インキュベートする。
PBS−Tween20緩衝剤での洗浄後、100μLの、PBS−1%BSAで希釈した、アルカリホスファターゼに結合したヤギ抗マウスIgG二次抗体(Southern Biotechnology 製品番号1030−04)を、温度で1時間インキュベートする。PBS−0.05%Tweenでの洗浄後、100μLの、アルカリホスファターゼのp−ニトロフェニルホスフェート基質(Sigma pNPP)を添加し、室温で15分間、暗所で放置する。反応を、その後、50μLの3M NaOHを添加することによって中断し、光学密度(OD)を、405nmで読み取る。
PBS−Tween20緩衝剤での洗浄後、100μLの、PBS−1%BSAで希釈した、ビオチンに結合したラット抗マウスIgE二次抗体(Biolegend製品番号BLE406904)を、室温で1時間インキュベートする。PBS−0.05% Tweenでの洗浄後、100μLの、アルカリホスファターゼに結合したストレプトアビジン(Southern Biotechnology 製品番号7100−04)を添加し、室温で1時間インキュベートする(供給業者の推奨に従い、PBS−1%BSAで112000倍希釈)。PBS−0.05% Tweenでのさらなる洗浄の後、100μLの、アルカリホスファターゼのpNPP基質を添加し、室温で15分間、暗所で放置する。反応を、その後、50μLの3M NaOHを添加することによって中断し、光学密度(OD)を、405nmで読み取る。
− 実施例1によるタバコ葉抽出物は、マウスにおいて特異的なIgG体液性応答を引き起こす。
実施例1に従って凍結乾燥し5mLの生理食塩水で再構成した、タバコ葉抽出物によるマウスの2回の免疫化の後、製品の成分に対するIgG誘導が観察された。したがって、4/5のC57BL/6マウス及び4/5のBalb/cマウスが、28日目に、すなわち、2回目のワクチン投与の7日後に、タバコ葉抽出物に対して、それらのIgGの増大を示した(図2)。応答しなかった各群における唯一のマウスは、基礎IgG抗体レベルを有していた。抗体力価は、C57BL/6マウスよりもBalb/cマウスにおいて、より低いようである(図2)。
密度勾配(Ficoll)による末梢血からの単核細胞の単離の後、種々の細胞集団(T及びBリンパ球、NK細胞等)を、特徴づけることができる(図3)。したがって、NK細胞を、CD3ネガティブ集団においてはマーカーCD56及びCD16によって、又は、マーカーNKp46によって、同定した。実施例1によるタバコ葉抽出物での単核細胞のインキュベーション後、活性化マーカーCD69、CD25及びHLA−DRの発現の増大が、マーカーCDI6+CD56+(CD3−)(図4A)及びマーカーNKp46の両方によって特定される、NK細胞において観察された(図4B)。結果は、1/2に希釈したタバコ葉抽出物を用いた場合、及びCD69発現について、より明瞭である。したがって、60%を超えるNK細胞が、タバコ葉抽出物との接触の24時間後に、マーカーCD69を発現する(図4A−B)。静止時には、5%未満の血液NK細胞が、CD69を発現する。
末梢血単核細胞を、実施例1に従って凍結乾燥し異なる希釈率(1/2又は1/20)で5mLのPBSで再構成した、タバコ葉抽出物と、24時間接触させ、サイトカイン、ケモカイン及び成長因子のアッセイを、上清におけるLuminexによって行った。
実施例1によるタバコ葉抽出物は、異なる遺伝的背景を有する2つのマウス系列において、製品に存在するタンパク質を対象とする特異的なIgG体液性応答を誘導することが可能である。
材料及び方法:
以下の全ての研究が、実施例1によるタバコ葉抽出物を用いて行われた。
この研究の目的は、皮下投与(1週間に1回、2週間)の後のラットにおける実施例1によるタバコ葉抽出物の毒性を決定することであった。
− いずれの用量でも、死亡は、観察されない;
− 治療に関連する臨床徴候は、観察されず、皮下投与は、局所的に十分な耐容性を示す(臨床徴候及び局所の耐容性が、注射の前及び後に、また、治療を行わないときには1日1回、観察された);
− (対照と比較して)体重及び食品消費に対する効果は、有害ではない;
− 治療されたげっ歯類と治療されないげっ歯類と間に、白血球計測数において生物学的に顕著な差異が存在するが、これらの差異は、毒性効果を有しない;
− 変動が、タンパク質及びコレステロール濃度に関して、治療群と非治療群との間に、観察されたが、これらの変動は、対照群の変動の範囲内であるか又は対照群の変動に近い。これらの効果は、有害ではない;
− 変化は、治療群と対照群との間における臓器重量において、観察されなかった。
目的は、 Wistarラットに対する1週間に1回の皮下投与の後における実施例1によるタバコ葉抽出物の毒性を決定すること、及び、治療を行わない場合の4週間の期間にわたる、毒性のいずれかの徴候の退行を決定することであった。
− いずれの用量でも、死亡は、観察されない;
− 16.8、33.6及び112.0μg/kg/admの、タンパク質として発現された用量での皮下投与は、局所的に十分な耐容性を示した;
− 治療に関連する臨床徴候は、観察されない;
− 体温は、影響を受けない;
− 治療に関連する眼科的効果は、観察されなかった;
− 体重及び食品消費は、影響を受けない;
− 血液学、凝固及び尿に関して、顕著な差異は、観察されなかった;
− クレアチンキナーゼ酵素活性は、雌群3及び4において、治療期間の終了時に、減少した(中間用量及び高用量;それぞれ、33.6及び112μg/kg/adm)。これらの変動は、それらが組織病理学的特徴と関連しない限りにおいて、有害ではないと考えられた;
− 治療された雌における、並びに中間用量及び高用量で治療された雄(群3及び4)における、循環NK細胞の数の僅かな減少;
− 観察期間の終了時に、高用量で治療された雄(群4)における循環NK細胞の平均数は、より低かった;
− 臓器重量の変化は、観察されなかった;
− 暗色のスポットが、注射部位で、観察され、これは、組織病理学的評価中の皮下出血に該当する。この観察は、投与手順に関連しないと考えられる。
100μg又は200μgのタンパク質及びマンニトールを含有する、実施例1によるタバコ葉抽出物を含む医薬組成物を、24人の喫煙者に、1回目は0日目に、及び2回目は29日目に(各回各腕に1mL)、皮下注射によって投与した。組み入れ(Inclusions)を、コホート拡張の原理に従って行い、6人の最初の患者が、最初に含まれる100μgを受け、その後、6人の最初の患者が、200μgを受け、その後、6人の追加の患者の組み入れが、100μgを受けた。治療された対象の集団は、30歳と65歳の間の、24人の人々、すなわち14人の男性及び10人の女性からなるものであり、年齢の中央値は44.5歳であった。
(シガレット訪問n(cigarettes visit n)の数 − 組み入れ時のシガレットの数) / 組み入れ時のシガレットの数。
Claims (20)
- 乾燥抽出物の総重量に基づき少なくとも5重量%の、分子量が10kDaより大きいタンパク質を含有し、分子量が10kDa未満である分子を本質的に含まない、タバコ葉抽出物であって、前記タンパク質が、以下のタンパク質ファミリー:リグニン形成性アニオン性ペルオキシダーゼ、グルカンエンド−1,3−ベータ−グルコシダーゼ、エンドキチナーゼ、病態形成関連タンパク質、オスモチン、及びプロテイナーゼ阻害剤、並びにそれらの混合物からなる群から好ましくは選ばれる、タバコ葉抽出物。
- 高分子量タンパク質を本質的に含まないことを特徴とする、請求項1に記載のタバコ葉抽出物。
- その分子量が500kDaより大きい、好ましくはその分子量が400kDaより大きい、より好ましくはその分子量が300kDaより大きい、優先的にはその分子量が200kDaより大きい、より優先的にはその分子量が150kDaより大きい、さらにより優先的にはその分子量が100kDaより大きい、さらに良好にはその分子量が50kDaより大きいタンパク質を本質的に含まないことを特徴とする、請求項1又は2に記載のタバコ葉抽出物。
- 分子量が10kDa未満である分子の含有量が、前記抽出物の総重量に基づき、5重量%未満、好ましくは2.5重量%未満、さらに良好には1重量%未満であることを特徴とする、請求項1〜3のいずれか一項に記載のタバコ葉抽出物。
- 粉砕した乾燥させたタバコ葉の溶媒抽出プロセス、例えば水性溶媒、その後、粉砕した乾燥させたタバコ葉の抽出物の溶液からの固体残渣の分離、その後、前記抽出物の体積に基づき、体積で2〜12倍、好ましくは体積で3〜10倍、好ましくは体積で4〜8倍の範囲、好ましくは体積で6倍の量の水性溶媒を用いる、及び、10kDaカットオフ膜を用いる、固体残渣を含まない粉砕した乾燥させたタバコ葉の抽出物の溶液の定積透析ろ過によって取得可能であることを特徴とする、請求項1〜4のいずれか一項に記載のタバコ葉抽出物。
- グルカンエンド−1,3−ベータ−グルコシダーゼのファミリーに属し、ベータ−1,3−エンドグルカナーゼ酸性アイソフォームPR−Q’(UniProtデータベースによれば、PR36401)、ベータ−1,3−エンドグルカナーゼ塩基性液胞型アイソフォームGLB(UniProtデータベースによれば、P27666)、及びそれらの混合物から好ましくは選択される、少なくとも1つのタンパク質を含むことを特徴とする、請求項1〜5のいずれか一項に記載のタバコ葉抽出物。
- エンドキチナーゼのファミリーに属し、酸性エンドキチナーゼP(UniProtデータベースによれば、P17513)、酸性エンドキチナーゼQ(UniProtデータベースによれば、P17514)、エンドキチナーゼB(UniProtデータベースによれば、P24091)、及びそれらの混合物から好ましくは選ばれる、少なくとも1つのタンパク質を含むことを特徴とする、請求項1〜6のいずれか一項に記載のタバコ葉抽出物。
- 少なくともオスモチン(UniProtデータベースによれば、P14170)を含むことを特徴とする、請求項1〜7のいずれか一項に記載のタバコ葉抽出物。
- 少なくとも1つのリグニン形成性アニオン性ペルオキシダーゼ(UniProtデータベースによれば、P11965)を含むことを特徴とする、請求項1〜8のいずれか一項に記載のタバコ葉抽出物。
- 病態形成関連タンパク質R(UniProtデータベースによれば、P13046)、病態形成関連タンパク質PR−4A(UniProtデータベースによれば、PR29062)、病態形成関連タンパク質PR−4B(UniProtデータベースによれば、PR29063)、及びそれらの混合物から好ましくは選ばれる、少なくとも1つの病態形成関連タンパク質を含むことを特徴とする、請求項1〜9のいずれか一項に記載のタバコ葉抽出物。
- プロテイナーゼ阻害剤のファミリーに属し、プロテイナーゼ阻害剤I−B(UniProtデータベースによれば、Q03199)、プロテイナーゼ阻害剤I−A(UniProtデータベースによれば、Q03198)、及びそれらの混合物から好ましくは選ばれる、少なくとも1つのタンパク質を含むことを特徴とする、請求項1〜10のいずれか一項に記載のタバコ葉抽出物。
- 乾燥抽出物中のタンパク質含有量が、前記乾燥抽出物の総重量に基づき、少なくとも10重量%、好ましくは少なくとも15重量%、好ましくは少なくとも20重量%であることを特徴とする、請求項1〜11の少なくともいずれか一項に記載のタバコ葉抽出物。
- 活性成分としての請求項1〜12のいずれか一項に記載のタバコ葉抽出物、及び薬学的に許容可能な賦形剤を含む医薬組成物。
- 前記タバコ葉抽出物に存在するタンパク質が、1〜1000μg/mL、好ましくは10〜500μg/mL、好ましくは50〜300μg/mL、好ましくは60〜200μg/mL、好ましくは80〜150μg/mLの範囲の量で存在することを特徴とする、請求項13に記載の医薬組成物。
- カンナビスから抽出されるタンパク質をさらに含有することを特徴とする、請求項13又は14に記載の医薬組成物。
- 皮下注射による投与に好適な形態で提供されることを特徴とする、請求項13〜15のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- タバコ中毒の治療における使用のための、請求項13〜16のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- タバコ及びカンナビス中毒の連結治療における使用のための、請求項15に記載の医薬組成物。
- 前記医薬組成物が、0.03mL〜10mLの、好ましくは0.1mL〜5mLの、好ましくは0.5〜2mLの投与形態で提供されることを特徴とする、請求項17に記載のタバコ中毒の治療における、又は請求項18に記載のタバコ及びカンナビス中毒の連結治療における使用のための医薬組成物。
- 以下の工程:
a. タバコ葉の乾燥、
b. 粉砕した乾燥させたタバコ葉を取得するための、乾燥させたタバコ葉の粉砕、
c. 溶媒、例えば水性溶媒、好ましくは6.0〜8.5のpHを有する水性緩衝剤溶液を用いる、機械的撹拌下での、前記粉砕した乾燥させたタバコ葉の抽出、
d. 固体残渣を含まない粉砕した乾燥させたタバコ葉の抽出物の溶液を取得するための、ろ過又は遠心分離による、前記粉砕した乾燥させたタバコ葉の抽出物の溶液からの固体残渣の分離、
e. 前記抽出物の体積に基づき、体積で2〜12倍、好ましくは体積で3〜10倍、好ましくは体積で4〜8倍の範囲、好ましくは体積で6倍の量の溶媒、好ましくは水性溶媒を用いる、及び、10kDaカットオフ膜を用いる、工程cにおいて取得される溶液の定積ろ過、
f. 任意で、工程dにおいて取得されるタンパク質溶液の凍結乾燥
を含む、請求項1〜12のいずれか一項に記載のタバコ葉抽出物を調製するためのプロセス。
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