JP2016522223A

JP2016522223A - チロシンキナーゼ阻害活性を有する物質ならびにその調製方法および使用

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Publication number: JP2016522223A
Application number: JP2016520212A
Authority: JP
Inventors: 暁明楊; 林王; 長燕李; 軼群 ▲チャン▼; 靖劉; 騰羅; 海燕顔; 首国張; 圍李; 暁雪温; 涛彭; 魯李
Original assignee: Institute Of Radiation Medicine Academy Of Military Medical Sciences People's Libration Army Of China; Institute of Radiation Medicine of CAMMS
Current assignee: Institute Of Radiation Medicine Academy Of Military Medical Sciences People's Libration Army Of China; Institute of Radiation Medicine of CAMMS
Priority date: 2013-06-20
Filing date: 2013-06-20
Publication date: 2016-07-28
Anticipated expiration: 2033-06-20
Also published as: JP6239103B2; EP3012248A4; US20160151334A1; WO2014201587A1; EP3012248B1; EP3012248A1; US9642839B2

Abstract

本発明において開示されるのは、チロシンキナーゼ阻害活性を有する物質ならびにその調製方法および使用であって、該物質は、一般式（Ｉ）の構造を有する化合物、またはその幾何異性体および医薬的塩である。本発明は、チロシンキナーゼ阻害活性の評価および関連がある実験を通じて、それらの化合物が、良好なチロシンキナーゼ阻害活性を有すること、および様々な腫瘍細胞を阻害し得ることを確証する。本発明は、腫瘍疾患、特に、耐性の肝癌、肺癌および神経芽細胞腫を予防および治療する薬物へ発展する。【化１】

Description

本開示は、医療および医薬品分野に関し、新たな種類の化合物、特に、一連の２−インドロン（２−ｉｎｄｏｌｏｎｅ）誘導体（一般式Ｉ）、その幾何異性体および薬学的塩、ならびにそれらの化合物を調製する方法、ならびに腫瘍疾患の予防および治療におけるそれらの使用に関する。

腫瘍は、ヒトの健康を危うくする主な疾患であり、悪性腫瘍による全世界での年間死亡数はすべての疾患のうち２番目に多い。抗腫瘍薬に関する研究は、世界中の強い関心を引いてきた。従来の化学療法薬物は、細胞分裂を非特異的に阻止し得るまたは直接細胞死を引き起こし得るため、腫瘍細胞を死滅させる一方で、ヒト正常細胞を破壊することがある。腫瘍の形成および発達の背後にある機序についての理解が十分に進むにつれて、高い有効性、低い毒性、および腫瘍細胞のシグナル伝達経路に不可欠な酵素を標的とすることによる高い特異性をもつ新規薬物の開発が、抗腫瘍薬物に関する現在の研究において重要な傾向となっている。

抗腫瘍薬物の様々な標的の中で、タンパク質チロシンキナーゼシグナル伝達経路が、腫瘍細胞の増殖および分化に密接に関係している。チロシンキナーゼシグナル伝達経路を干渉および遮断することが、抗腫瘍薬物の現在の研究および開発において注目されている。毎年、多数の研究が報告されている。肺癌を治療するためのチロシンキナーゼ阻害薬であるゲフィチニブ（Ｇｅｆｉｔｉｎｉｂ）、慢性骨髄性白血病を治療するためのチロシンキナーゼ阻害薬であるグリベック（Ｇｌｅｅｖｅｃ）、および進行腎細胞癌を治療するためのスニチニブ（Ｓｕｎｉｔｉｎｉｂ）など、様々なチロシンキナーゼ阻害薬が上市されている。これらは、上皮成長因子受容体（ＥＧＦＲ）および血管内皮増殖因子受容体（ＶＥＧＦＲ）などを含む複数の標的に作用し得る。さらに他の現在開発中のチロシンキナーゼ阻害薬も、臨床試験の種々のステージに入っている。

抗腫瘍薬ゲフィチニブ（イレッサ）は、アストラゼネカＵＫによって開発されたチロシンキナーゼ阻害薬である。同剤は、２００３年に、米国で、進行性または転移性非小細胞肺癌（ＮＳＣＬＣ）における使用が承認され、２００５年に、中国での販売が承認された。以前に化学療法を受けたことのあるＮＳＣＬＣ患者におけるゲフィチニブ錠剤２５０ｍｇ／日の奏効率を評価するための臨床試験が、中国の５つの臨床試験施設で行われた。計１５９例にゲフィチニブ錠剤２５０ｍｇの少なくとも１回用量を投与した。その結果は、奏効率は２７．０％であった（ゲフィチニブ説明書、ｈｔｔｐ：／／ｂａｉｋｅ．ｓｏｓｏ．ｃｏｍ／ｖ８２９２０８０．ｈｔｍによる）ことを示した。これは、該薬物の有効性が低かったことを示唆した。したがって、効果的なチロシンキナーゼ阻害薬を探索し続けることに、実際的な重要性がある。

本開示の目的は、チロシンキナーゼ活性を阻害する能力がある物質および抗腫瘍効果を有する薬物を提供することである。

本開示の第１の態様は、チロシンキナーゼ阻害活性を有する物質、すなわち一般式Ｉ：

［式中、
Ｒ_２は水素またはハロゲンであり；Ｒ_１は水素または−ＳＯ_２ＮＲ_３Ｒ_４であり、ここで、Ｒ_３は水素またはメチルであり、Ｒ_４はフェニル、シクロヘキシル、ハロゲン置換フェニル、メチルフェニル、エチルフェニル、エトキシフェニル、ヒドロキシフェニルまたはβ−ナフチルである］
の化合物、その幾何異性体および薬学的に許容される塩に関する。

式Ｉの化合物は、以下：
３−（１Ｈ−ベンゾイミダゾール−２−メチレン）−５−（β−ナフチルアミノスルホ）−２−インドロン（Ｉｎｄｏ１）；
３−（１Ｈ−ベンゾイミダゾール−２−メチレン）−５−（３−クロロ−４−フルオロフェニルアミノスルホ）−２−インドロン（Ｉｎｄｏ２）；
３−（１Ｈ−ベンゾイミダゾール−２−メチレン）−５−（Ｎ−メチルフェニルアミノスルホ）−２−インドロン（Ｉｎｄｏ３）；
３−（１Ｈ−ベンゾイミダゾール−２−メチレン）−５−（シクロヘキシルアミノスルホ）−２−インドロン（Ｉｎｄｏ４）；
３−（１Ｈ−ベンゾイミダゾール−２−メチレン）−５−（２−メチルフェニルアミノスルホ）−２−インドロン（Ｉｎｄｏ５）；
３−（１Ｈ−ベンゾイミダゾール−２−メチレン）−５−（４−クロロフェニルアミノスルホ）−２−インドロン（Ｉｎｄｏ６）；
３−（１Ｈ−ベンゾイミダゾール−２−メチレン）−５−（４−ヒドロキシエチルアミノスルホ）−２−インドロン（Ｉｎｄｏ７）；
３−（１Ｈ−ベンゾイミダゾール−２−メチレン）−５−（４−メチルフェニルアミノスルホ）−２−インドロン（Ｉｎｄｏ８）；
３−（１Ｈ−ベンゾイミダゾール−２−メチレン）−５−（４−エトキシフェニルアミノスルホ）−２−インドロン（Ｉｎｄｏ９）
のうちのいずれか１つを含む。

チロシンキナーゼ阻害薬の構造活性相関に従って、一連の化合物を設計し、合成した化合物のチロシンキナーゼ阻害活性を評価し、これらの化合物が良好なチロシンキナーゼ阻害活性を有することを実証する。

本開示の化合物は、チロシンキナーゼ活性を効果的に阻害し得、したがって、潜在的な抗腫瘍活性を有し、抗腫瘍療法に使用し得る。

上記化合物の幾何異性体、薬学的に許容される塩、水和物または溶媒和物と、薬学的に許容される担体または賦形剤とを含む医薬組成物もまた、本開示の範囲内である。具体的には、該医薬組成物は：
ｓｙｎ（合成）またはａｎｔｉ（抗）化合物など、上記の化合物の異性体または水和物；
硫酸塩、ピロ硫酸塩、重硫酸塩、亜硫酸塩、亜硫酸水素塩、リン酸塩、リン酸一水素塩、リン酸二水素塩、メタリン酸塩、ピロリン酸、塩酸塩、臭化物、ヨウ化物、酢酸塩、プロピオン酸塩、カプリル酸塩、アクリル酸塩、ギ酸塩、イソ酪酸塩、エナント酸塩、デカン酸塩、プロピオル酸塩、シュウ酸塩、マロン酸塩、コハク酸塩、スベリン酸塩、セバシン酸塩、フマル酸塩、マレイン酸塩、２−ブチン−１，４−二酸塩（2-butyne-1,4-dioate）、３−シクロヘキシン−２，５−二酸塩（3-cyclohexyne-2,5-dioate）、安息香酸塩、クロロ安息香酸塩、フェニル酢酸塩、フェニルプロピオン酸塩、フェニル酪酸塩、クエン酸塩、乳酸塩、馬尿酸塩、β−ヒドロキシ酪酸塩、グリコール酸塩、マレイン酸塩、酒石酸塩、メタンスルホン酸塩、プロパンスルホン酸塩、ナフタレン−１−スルホン酸塩、ナフタレン−２−スルホン酸塩、マンデル酸塩、グルタミン酸塩、アルギニナート（argininate）、リシナート（lysinate）などを含む、上記の化合物の薬学的に許容される塩を含む。本開示の化合物の医薬および薬学的目的を考慮して、塩酸塩およびリン酸塩が特に好ましい。

本開示の別の態様は：
式ＩＩの化合物および式ＩＩＩの化合物

［式中、
Ｒ_１およびＲ_２は、上に定義される通りである］
を、メタノール、エタノールもしくはイソプロパノールまたはそれらの混合溶液中で混合すること、そこに塩基性または酸性の触媒を加えること、ならびに、還流させて所望の生成物を得ること
を含む、一般式Ｉの化合物を調製する方法に関する。

調製の間、塩基性触媒は、水酸化カリウム、水酸化ナトリウム、アンモニア、酸化カルシウム、およびそれらの水溶液を含む無機塩基性化合物；トリエチルアミン、ピペリジン、ジメチルアミノピリジン、２，４，５−トリメチルピリジンまたはピリジンを含む有機アミンなどから選択される。酸性触媒は、塩酸、およびリン酸を含む無機酸；ｐ−トルエンスルホン酸および酢酸を含む有機酸などから選択される。

上記のチロシンキナーゼ阻害活性を有する１つまたは複数の物質を薬学的に有効な量で、および薬学的に許容される担体または賦形剤を含む医薬組成物もまた、本開示の範囲内である。本開示の化合物の有効量を含有する医薬組成物は、当業者によく知られている薬学的担体を用いて調製し得る。

本開示のさらなる態様は、チロシンキナーゼ阻害薬または抗腫瘍薬の製造における一般式Ｉの化合物、その幾何異性体もしくは薬学的に許容される塩、または組成物の使用に関する。

本開示はまた、哺乳動物、好ましくはヒトにおける腫瘍および関連疾患を治療、予防、阻害または緩和する前記化合物から調製されたプロドラッグの使用も含む。該使用は、治療を必要とする哺乳動物に対して、薬学的に有効な量の本開示の薬物またはその医薬組成物を投与することを含む。

該使用は、腫瘍細胞アポトーシスを誘導する、腫瘍血管新生を阻害する、ならびに腫瘍の化学療法耐性および腫瘍の悪性転移を予防することを意図している。

腫瘍は、乳癌、肺癌、皮膚癌、結腸癌、前立腺癌、膵癌、肝癌、胃癌、頭頸部癌、神経膠腫、神経芽細胞腫、黒色腫、腎癌腫または白血病である。

チロシンキナーゼ阻害薬は、ｃ−ＭｅｔまたはＴｒｋシグナル伝達経路に関係する疾患を治療する薬である。

ｃ−Ｍｅｔシグナル伝達経路に関係する疾患は、肝癌、乳癌、肺癌、前立腺癌、膵癌、結腸癌、胃癌、頭頸部癌または白血病などを含むが、これらには限定されない。

Ｔｒｋシグナル伝達経路に関係する疾患は、乳癌、肺癌、皮膚癌、胃癌、神経膠腫、神経芽細胞腫、黒色腫、腎癌腫または白血病を含むが、これらには限定されない。

本開示のさらなる態様は、チロシンキナーゼ阻害薬または抗腫瘍薬の製造における３−（１Ｈ−ベンゾイミダゾール−２−メチレン）−５−（２−メチルフェニルアミノスルホ）−２−インドロン（Ｉｎｄｏ５）の使用に関する。腫瘍は、乳癌、肺癌、結腸癌、前立腺癌、膵癌、肝癌、胃癌、頭頸部癌、神経膠腫、黒色腫、腎癌腫および白血病など、特に、肝癌、乳癌、肺癌、前立腺癌、膵癌、結腸癌、胃癌、頭頸部癌または白血病、特に肝癌、肺癌または神経芽細胞腫を含むが、これらには限定されないＴｒｋまたはｃ−Ｍｅｔシグナル伝達経路に関係する疾患を含むが、これらには限定されない。

チロシンキナーゼ阻害活性を有する本開示の物質は、注射、経口または非経口投与で与えられ得る。該物質は、錠剤、丸剤、粉末混合物、カプセル剤、被覆剤、溶液、乳剤、分散剤、注射剤もしくは坐剤の形態、または任意の他の適切な形態とし得る。これらの製剤は、当業者によく知られている方法によって調製される。錠剤、カプセル剤および被覆剤の調製に使用される補助剤は、デンプン、ゼラチン、アラビアガム、シリカ、ポリエチレングリコールならびに水、エタノール、プロピレングリコールならびにコーン油、ピーナッツ油およびオリーブ油など植物油などの液体剤形で使用される溶剤などの従来の補助剤である。本開示の化合物を含有する製剤は、界面活性剤、潤滑剤、崩壊剤、保存剤、香味料または色素などの他の補助剤をさらに含み得る。

本開示の化合物に関連した薬物を使用する場合、所望の生物学的効果を達成するために、所望の薬学的に有効な量は、選択される具体的な化合物、使用目的、投与経路および患者の臨床状態など、様々な要因に左右される。薬学的に有効な量は、既存のチロシンキナーゼ阻害薬、抗腫瘍薬であるゲフィチニブ（イレッサ）、例えば２５０ｍｇ／日を基準として決定され得る。

本開示は、チロシンキナーゼ阻害活性を有する一連の２−インドロン誘導体、その幾何異性体および薬学的に許容される塩、ならびにそれらの化合物の調製方法および使用を提供する。チロシンキナーゼ阻害活性の評価を通じて、これらの化合物が優れたチロシンキナーゼ阻害活性を有し、したがって、潜在的な抗腫瘍活性を有することが実証されてきた。腫瘍疾患の予防および治療のための薬物（抗腫瘍剤）は、該化合物を有効成分として使用することにより調製され得る。本開示は、抗腫瘍療法において重要な役割を果たし、有望な適用が期待できる。

本開示は、具体的な実施例とともに詳述される。

ＨｅｐＧ２担癌マウスにおける腫瘍に対する異なる用量の化合物Ｉｎｄｏ５の阻害を示す。ＭＨＣＣ９７−Ｌ担癌マウスにおける腫瘍に対する異なる用量の化合物Ｉｎｄｏ５の阻害を示す。ＭＨＣＣ９７−Ｈ担癌マウスにおける腫瘍に対する異なる用量の化合物Ｉｎｄｏ５の阻害を示す。ＮＣＩ−Ｈ４６０担癌マウスにおける腫瘍に対する異なる用量の化合物Ｉｎｄｏ５の阻害を示す。肝同所性腫瘍モデルにおける本開示の２−インドロン誘導体（Ｉｎｄｏ５）のｉｎｖｉｖｏ抗腫瘍活性を示す。ヘパトーマ細胞株ＨｅｐＧ２におけるＨＧＦ−誘導型ｃ−Ｍｅｔリン酸化およびシグナル伝達経路に対する２−インドロン誘導体Ｉｎｄｏ５の阻害を示す。ヘパトーマ細胞株ＭＨＣＣ９７−Ｈにおけるｃ−Ｍｅｔリン酸化およびシグナル伝達経路に対する２−インドロン誘導体Ｉｎｄｏ５の阻害を示す。ＳＫ−Ｎ−ＳＨ細胞におけるＮＧＦ−誘導型ＴｒｋＡリン酸化およびシグナル伝達経路に対する２−インドロン誘導体Ｉｎｄｏ５の阻害を示す。ＳＫ−Ｎ−ＳＨ細胞におけるＢＤＮＦ−誘導型ＴｒｋＢリン酸化およびシグナル伝達経路に対する２−インドロン誘導体Ｉｎｄｏ５の阻害を示す。ＳＫ−Ｎ−ＳＨ担癌マウスにおける腫瘍に対する腹腔内注射および経管栄養投与による２−インドロン誘導体Ｉｎｄｏ５の阻害効果を示す。

別段の記載がないかぎり、百分率濃度は、質量／体積（Ｗ／Ｖ）百分率濃度または体積／体積（Ｖ／Ｖ）百分率濃度である。

実施例に記載の様々な生物学的材料を入手するための手法は、具体的な開示の目的のために、実験的に入手する手法を与えることを意図しているに過ぎず、本開示の生物学的材料の供給源への限定として解釈されるものではない。実際には、使用される生物学的材料を入手し得る数多くの供給源が存在する。いかなる法律または倫理にも反することなく入手し得る任意の生物学的材料を、実施例の中の助言に従い、代替として使用し得る。

実施例は、本開示の技術的解決法に基づいて実施され、実施の詳細な方法および具体的な手順を提供する。実施例は、本開示の理解に役立つが、本開示の保護範囲は以下の実施例に限定されない。

３−（１Ｈ−ベンゾイミダゾール−２−メチレン）−５−（β−ナフチルアミノスルホ）−２−インドロン（Ｉｎｄｏ１）
０．１７ｇ（０．５ｍｍｏｌ）の５−（Ｂ−ナフチルアミノスルホ）−２−インドロンと０．１０ｇ（０．６８５ｍｍｏｌ）の１Ｈ−ベンゾイミダゾール−２−ホルムアルデヒドとを、６ｍＬの無水エタノールに懸濁させた後、ピペリジンを２滴加えた。該混合物を３０分間、油浴で加熱し、還流させた。大量の黄色の固形物を沈殿させ、ろ過および無水エタノールで洗浄して、７７．３％の収率で０．１８ｇの淡黄色の固形物を得た。

核磁気共鳴（ＮＭＲ）分光分析法による分析結果：¹H-NMR (DMSO-d₆) δ(ppm): δ13.81 (s, 1H), 11.68 (s, 1H), 10.51 (s, 1H), 8.48 (s, 1H), 8.13 (s, 1H), 7.58-7.82 (m, 6H), 7.64 (s, 1H, J=8.4 Hz), 7.29-7.46 (m,5H), 7.05 (d, 1H, J=8.4 Hz)。ESI-MS m/z: 465 [M-H]⁺(100)。分析により、淡黄色の固形物は、その構造式が式Ｉに示され、式中、Ｒ_１がβ−ナフチルアミノスルホであり、Ｒ_２が水素である、３−（１Ｈ−ベンゾイミダゾール−２−メチレン）−５−（β−ナフチルアミノスルホ）−２−インドロンであることが示された。

３−（１Ｈ−ベンゾイミダゾール−２−メチレン）−５−（３−クロロ−４−フルオロフェニルアミノスルホ）−２−インドロン（Ｉｎｄｏ２）
０．１７ｇ（０．５ｍｍｏｌ）の５−（３−クロロ−４−フルオロフェニルアミノスルホ）−２−インドロンと０．１０ｇ（０．６８５ｍｍｏｌ）の１Ｈ−ベンゾイミダゾール−２−ホルムアルデヒドとを、６ｍＬの無水エタノールに懸濁させた後、ピペリジンを２滴加えた。該混合物を３０分間、油浴で加熱し、還流させた。大量の黄色の固形物を沈殿させ、ろ過および無水エタノールで洗浄して、６４．１％の収率で０．１５ｇの淡黄色の固形物を得た。

ＮＭＲ分光分析法による分析結果：¹H-NMR (DMSO-d₆) δ (ppm): δ13.82 (s, 1H), 11.74 (s, 1H), 10.45 (s, 1H), 8.38 (s, 1H), 8.14 (s, 1H), 7.78-7.84 (q, 2H), 7.69 (d, 1H), 7.26-7.38 (m, 4H), 7.17-7.15 (m, 1H), 7.09 (d, 1H, J=8.4Hz)。ESI-MS m/z: 467 [M-H]⁺(100)。分析により、淡黄色の固形物は、その構造式が式Ｉに示され、式中、Ｒ_１が３−クロロ−４−フルオロフェニルアミノスルホであり、Ｒ_２が水素である、３−（１Ｈ−ベンゾイミダゾール−２−メチレン）−５−（３−クロロ−４−フルオロフェニルアミノスルホ）−２−インドロンであることが示された。

３−（１Ｈ−ベンゾイミダゾール−２−メチレン）−５−（Ｎ−メチルフェニルアミノスルホ）−２−インドロン（Ｉｎｄｏ３）
０．１５ｇ（０．５ｍｍｏｌ）の５−（Ｎ−メチルフェニルアミノスルホ）−２−インドロンと０．１０ｇ（０．６８５ｍｍｏｌ）の１Ｈ−ベンゾイミダゾール−２−ホルムアルデヒドとを、６ｍＬの無水エタノールに懸濁させた後、ピペリジンを２滴加えた。該混合物を３０分間、油浴で加熱し、還流させた。大量の黄色の固形物を沈殿させ、ろ過および無水エタノールで洗浄して、６５．１％の収率で０．１４ｇの淡黄色の固形物を得た。

ＮＭＲ分光分析法による分析結果：¹H-NMR (DMSO-d₆) δ (ppm): δ13.83 (s, 1H), 11.73 (s, 1H), 8.24 (s, 1H), 8.20 (s, 1H), 7.81 (b, 2H), 7.27-7.37 (m, 6H), 7.17 (s, 1H), 7.15 (s, 1H), 7.05 (d, 1H, J=8.4Hz), 3.21 (s, 3H)。ESI-MS m/z: 429 [M-H]⁺(100)。分析により、淡黄色の固形物は、その構造式が式Ｉに示され、式中、Ｒ_１がＮ−メチルフェニルアミノスルホであり、Ｒ_２が水素である、３−（１Ｈ−ベンゾイミダゾール−２−メチレン）−５−（Ｎ−メチルフェニルアミノスルホ）−２−インドロンであることが示された。

３−（１Ｈ−ベンゾイミダゾール−２−メチレン）−５−（シクロヘキシルアミノスルホ）−２−インドロン（Ｉｎｄｏ４）
０．１５ｇ（０．５ｍｍｏｌ）の５−（シクロヘキシルアミノスルホ）−２−インドロンと０．１０ｇ（０．６８５ｍｍｏｌ）の１Ｈ−ベンゾイミダゾール−２−ホルムアルデヒドとを、６ｍＬの無水エタノールに懸濁させた後、ピペリジンを２滴加えた。該混合物を３０分間、油浴で加熱し、還流させた。大量の黄色の固形物を沈殿させ、ろ過および無水エタノールで洗浄して、８０．６％の収率で０．１７ｇの淡黄色の固形物を得た。

ＮＭＲ分光分析法による分析結果：¹H-NMR (DMSO-d₆) δ (ppm): δ13.86 (s, 1H), 11.68 (s, 1H), 8.35 (s, 1H), 8.08 (s, 1H), 7.76-7.84 (m, 3H), 7.48 (d, 1H, J=7.2Hz), 7.66 (d, 1H, J=6.4Hz), 7.38 (t, 1H), 7.31 (t, 1H), 7.10 (d, 1H, J=8.0Hz), 3.02 (b, 1H), 1.60 (b, 5H), 1.50 (b, 5H)。ESI-MS m/z: 421 [M-H]⁺(100)。分析により、淡黄色の固形物は、その構造式が式Ｉに示され、式中、Ｒ_１がシクロヘキシルアミノスルホであり、Ｒ_２が水素である、３−（１Ｈ−ベンゾイミダゾール−２−メチレン）−５−（シクロヘキシルアミノスルホ）−２−インドロンであることが示された。

３−（１Ｈ−ベンゾイミダゾール−２−メチレン）−５−（２−メチルフェニルアミノスルホ）−２−インドロン（Ｉｎｄｏ５）
０．１５ｇ（０．５ｍｍｏｌ）の５−（２−メチルフェニルアミノスルホ）−２−インドロンと０．１０ｇ（０．６８５ｍｍｏｌ）の１Ｈ−ベンゾイミダゾール−２−ホルムアルデヒドとを、６ｍＬの無水エタノールに懸濁させた後、ピペリジンを２滴加えた。該混合物を３０分間、油浴で加熱し、還流させた。大量の黄色の固形物を沈殿させ、ろ過および無水エタノールで洗浄して、５５．８％の収率で０．１２ｇの淡黄色の固形物を得た。

ＮＭＲ分光分析法による分析結果：¹H-NMR (DMSO-d₆) δ (ppm): δ13.82 (s, 1H), 11.70 (s, 1H), 9.44 (s, 1H), 8.20 (s, 1H), 8.00 (s, 1H), 7.82 (d, 1H, J=8.0Hz), 7.78 (d, 1H, J=8.0Hz), 7.61 (dd, 1H, J=16.8Hz), 7.38 (t, 1H), 7.30 (t, 1H), 7.00-7.15 (m, 5H), 2.09 (s, 3H)。ESI-MS m/z: 429 [M-H]⁺(100)。分析により、淡黄色の固形物は、その構造式が式Ｉに示され、式中、Ｒ_１が２−メチルフェニルアミノスルホであり、Ｒ_２が水素である、３−（１Ｈ−ベンゾイミダゾール−２−メチレン）−５−（２−メチルフェニルアミノスルホ）−２−インドロンであることが示された。

３−（１Ｈ−ベンゾイミダゾール−２−メチレン）−５−（４−クロロフェニルアミノスルホ）−２−インドロン（Ｉｎｄｏ６）
０．１６ｇ（０．５ｍｍｏｌ）の５−（４−クロロフェニルアミノスルホ）−２−インドロンと０．１０ｇ（０．６８５ｍｍｏｌ）の１Ｈ−ベンゾイミダゾール−２−ホルムアルデヒドとを、６ｍＬの無水エタノールに懸濁させた後、ピペリジンを２滴加えた。該混合物を３０分間、油浴で加熱し、還流させた。大量の黄色の固形物を沈殿させ、ろ過および無水エタノールで洗浄して、８０．０％の収率で０．１８ｇの淡黄色の固形物を得た。

ＮＭＲ分光分析法による分析結果：¹H-NMR (DMSO-d₆) δ(ppm): δ13.81 (s, 1H), 11.70 (s, 1H), 10.36 (s, 1H), 8.36 (s, 1H), 8.10 (s, 1H), 7.80 (b, 2H), 7.70(dd, 1H, J=16.4Hz), 7.38 (b, 2H), 7.30 (d, 2H, J=13.6Hz), 7.17 (d, 2H, J=11.6Hz), 7.08 (d, 1H, J=8.4Hz)。ESI-MS m/z: 449[M-H]⁺(100)。分析により、淡黄色の固形物は、その構造式が式Ｉに示され、式中、Ｒ_１が４−クロロフェニルアミノスルホであり、Ｒ_２が水素である、３−（１Ｈ−ベンゾイミダゾール−２−メチレン）−５−（４−クロロフェニルアミノスルホ）−２−インドロンであることが示された。

３−（１Ｈ−ベンゾイミダゾール−２−メチレン）−５−（４−ヒドロキシエチルフェニルアミノスルホ）−２−インドロン（Ｉｎｄｏ７）
０．１６ｇ（０．５ｍｍｏｌ）の５−（４−ヒドロキシエチルフェニルアミノスルホ）−２−インドロンと０．１０ｇ（０．６９ｍｍｏｌ）の１Ｈ−ベンゾイミダゾール−２−ホルムアルデヒドとを、６ｍＬの無水エタノールに懸濁させた後、ピペリジンを２滴加えた。該混合物を３０分間、油浴で加熱し、還流させた。大量の黄色の固形物を沈殿させ、ろ過および無水エタノールで洗浄して、６９．６％の収率で０．１６ｇの淡黄色の固形物を得た。

ＮＭＲ分光分析法による分析結果：¹H-NMR (DMSO-d₆) δ(ppm): δ13.83 (s, 1H), 11.71 (s, 1H), 10.12 (s, 1H), 8.33 (s, 1H), 8.06 (s, 1H), 7.81 (b, 2H), 7.70(dd, 1H, J=16.4Hz), 7.34 (d, 2H), 7.06-7.08 (m, 5H), 4.60 (s, 1H), 4.49 (d, 2H), 2.59(t, 3H)。ESI-MS m/z: 459[M-H]⁺(100)。分析により、淡黄色の固形物は、その構造式が式Ｉに示され、式中、Ｒ_１が４−ヒドロキシエチルフェニルアミノスルホであり、Ｒ_２が水素である、３−（１Ｈ−ベンゾイミダゾール−２−メチレン）−５−（４−ヒドロキシエチルフェニルアミノスルホ）−２−インドロンであることが示された。

３−（１Ｈ−ベンゾイミダゾール−２−メチレン）−５−（４−メチルフェニルアミノスルホ）−２−インドロン（Ｉｎｄｏ８）
０．１５ｇ（０．５ｍｍｏｌ）の５−（４−メチルフェニルアミノスルホ）−２−インドロンと０．１０ｇ（０．６８５ｍｍｏｌ）の１Ｈ−ベンゾイミダゾイル−２−ホルムアルデヒドとを、６ｍＬの無水エタノールに懸濁させた後、ピペリジンを２滴加えた。該混合物を３０分間、油浴で加熱し、還流させた。大量の黄色の固形物を沈殿させ、ろ過および無水エタノールで洗浄して、８３．７％の収率で０．１８ｇの淡黄色の固形物を得た。

ＮＭＲ分光分析法による分析結果：¹H-NMR (DMSO-d₆) δ(ppm): δ13.82 (s, 1H), 11.70 (s, 1H), 10.06 (s, 1H), 8.32 (s, 1H), 8.06 (s, 1H), 7.83 (d, 1H, J=8.0Hz), 7.79 (d, 1H, J=8.4Hz), 7.67(dd, 1H, J=16.8Hz), 7.38(t, 1H), 7.31 (t, 1H), 7.30 (d, 2H, J=13.6Hz), 7.06 (d, 2H, J=8.4Hz), 7.03 (s, 4H), 2.17 (s, 3H)。ESI-MS m/z: 429[M-H]⁺(100)。分析により、淡黄色の固形物は、その構造式が式Ｉに示され、式中、Ｒ_１が４−メチルフェニルアミノスルホであり、Ｒ_２が水素である、３−（１Ｈ−ベンゾイミダゾール−２−メチレン）−５−（４−メチルフェニルアミノスルホ）−２−インドロンであることが示された。

３−（１Ｈ−ベンゾイミダゾール−２−メチレン）−５−（４−エトキシフェニルアミノスルホ）−２−インドロン（Ｉｎｄｏ９）
０．１６ｇ（０．５ｍｍｏｌ）の５−（４−エトキシフェニルアミノスルホ）−２−インドロンと０．１０ｇ（０．６８５ｍｍｏｌ）の１Ｈ−ベンゾイミダゾイル−２−ホルムアルデヒドとを、６ｍＬの無水エタノールに懸濁させた後、ピペリジンを２滴加えた。該混合物を３０分間、油浴で加熱し、還流させた。大量の黄色の固形物を沈殿させ、ろ過および無水エタノールで洗浄して、５８．３％の収率で０．１３ｇの淡黄色の固形物を得た。

ＮＲＭ分析法による分析結果：¹H-NMR (DMSO-d₆) δ(ppm): δ13.82 (s, 1H), 11.71 (s, 1H), 9.83 (s, 1H), 8.24 (s, 1H), 8.02 (s, 1H), 7.83 (d, 1H, J=8.0Hz), 7.79 (d, 1H, J=8.0Hz), 7.62(dd, 1H, J=16.4Hz), 7.38 (t, 1H), 7.31 (t, 1H), 7.05 (d, 1H, J=8.4Hz), 7.01 (d, 2H, J=9.2Hz), 7.05 (d, 2H, J=8.8Hz), 3.90 (q, 2H), 1.24 (t, 3H)。ESI-MS m/z): 459 [M-H]⁺(100)。分析により、淡黄色の固形物は、その構造式が式Ｉに示され、式中、Ｒ_１が４−エトキシフェニルアミノスルホであり、Ｒ_２が水素である、３−（１Ｈ−ベンゾイミダゾール−２−メチレン）−５−（４−エトキシフェニルアミノスルホ）−２−インドロンであることが示された。

実験例１
２−インドロン誘導体のチロシンキナーゼ阻害活性
材料：
チロシンキナーゼ緩衝液：１０ｍＬ１ＭＨＥＰＥＳ（ｐＨ７．５）、０．４ｍＬ５％ＢＳＡ／ＰＢＳ、０．２ｍＬ０．１ＭＮａ_３ＶＯ_４、および１ｍＬ５ＭＮａＣｌを８８．４ｍＬの再蒸留水（ＤＤＷ）に加えた（ＨＥＰＥＳ：Ａｍｒｅｓｃｏ；Ｎａ_３ＶＯ_４：Ｓｉｇｍａ）。

ＡＴＰ：アデノシン三リン酸、Ａｍｒｅｓｃｏ
組織抽出物ＰＴＫの抽出：マウス脳組織を速やかに取り除き、重さを量った後、均質化のために、５倍の体積の予備冷却した均質化緩衝液を加えた。４℃、１，０００ｇで１０分間遠心分離した後、核および細胞片を取り除いた。上清Ｓ１を採取し、４℃、１０，０００ｇで２０分間遠心分離した後、上清Ｓ２を採取した。粗膜タンパク質画分に相当する、沈殿物Ｐ２が保持された。Ｓ２は、細胞質タンパク質を含み、タンパク質チロシンキナーゼ（ＰＴＫ）活性を試験するために使用した。膜タンパク質画分の検出において、２倍の体積の溶解緩衝液をＰ２に加え、得られたものを氷上に１０分間置き、４℃、１０，０００ｇで１０分間遠心分離した。ＰＴＫ活性を試験するために、可溶性膜タンパク質を含む粗膜タンパク質に相当する上清Ｓ３を採取した。ＢＣＡタンパク質濃度測定キット（ＢＣＡｐｒｏｔｅｉｎｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎｋｉｔ）（ＢｅｙｏｔｉｍｅＩｎｓｔｉｔｕｔｅｏｆＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙから購入）を使用して、細胞質または膜タンパク質中のタンパク質含量を検出した。組織抽出物は−７０℃で保管した。

９６ウェルプレートのコーティング：ＰＴＫ基質を溶解し、各ウェルに１００μｌの量で加えた。プレートに蓋をして、４℃で一晩（１０〜１２時間）インキュベートした。その後、２００μｌの溶出緩衝液で１回洗浄し、３７℃で２時間乾燥させた。その後、１０ｍＭのＰＢＳで１回洗浄し、室温で乾燥させた後、さらなる使用のために４℃で保管した。

群：ブランク対照：ＡＴＰ含有の８０μｌ１×チロシンキナーゼ緩衝液＋２０μｌ１×チロシンキナーゼ緩衝液；陰性対照：ＡＴＰ含有の８０μｌ１×チロシンキナーゼ緩衝液＋１０μｌ１×チロシンキナーゼ緩衝液＋７μｌ組織抽出物＋３μｌ１×チロシンキナーゼ緩衝液；陽性対照：ＡＴＰ含有の８０μｌ１×チロシンキナーゼ緩衝液＋１０μｌゲフィチニブ＋７μｌ組織抽出物＋３μｌ１×チロシンキナーゼ緩衝液（最初に、陽性薬物を、室温で１０分間、チロシンキナーゼ組織抽出物と相互作用させ、一方、陰性対照群の組織抽出物も室温で１０分間置き、その後、ＡＴＰ含有の８０μｌ１×チロシンキナーゼ緩衝液をそれぞれの群に加えた）；溶媒対照（vehicle control）：ＡＴＰ含有の８０μｌ１×チロシンキナーゼ緩衝液＋１０μｌＤＭＳＯ＋７μｌ組織抽出物＋３μｌ１×チロシンキナーゼ緩衝液；スクリーニング対象となる薬物：ＡＴＰ含有の８０μｌ１×チロシンキナーゼ緩衝液＋１０μｌ検査対象となる薬物＋７μｌ組織抽出物＋３μｌ１×チロシンキナーゼ緩衝液。

ＰＴＫ活性アッセイ：１ｍＬの（１０×）チロシンキナーゼ緩衝液を９ｍＬのＤＤＷと均一に混ぜ合わせることによって、１×チロシンキナーゼ緩衝液を調製した。組織抽出物を１×チロシンキナーゼ緩衝液を用いて適切に希釈し、それ（ｉｔ）とゆっくりと均一に混ぜ合わせて、氷上に置いた。ＡＴＰ保存液を、４８μｌのＡＴＰ保存液を１ｍＬの１×チロシンキナーゼ緩衝液と均一に混ぜ合わせることによって溶解させて、氷上に置いた。上記の通り処置された各群のそれぞれのウェルにマイクロプレートリーダーを取り付けて、蓋をし、室温で３０分間、インキュベートした。残留している緩衝液が取り除かれるまで、マイクロプレートリーダーを２００μｌの溶出緩衝液で洗浄し、液を抜き取り（ｔａｐｐｅｄ）、この手順を５回繰り返した。各ウェルに対して、１００μｌの抗体希釈液（１：２０００の比率で希釈した抗体溶出緩衝液）を加えた。リーダーに蓋をし、室温で３０分間、インキュベートした。４ｍｇのＯＰＤを０．１ｍｏｌ／Ｌのクエン酸溶液４．８６ｍＬと０．２ｍｏｌ／ＬのＮａ_２ＨＰＯ_４溶液５．１４ｍＬとの混合物に加えた後、５０μｌの３０％Ｈ_２Ｏ_２を加えて完全に溶解させた後、遮光することによって、ＯＰＤ溶液を調製した。抗体溶液を取り除いた。残留している緩衝液が取り除かれるまで、リーダーを２００μｌの溶出緩衝液で洗浄し、液を抜き取り、この手順を５回繰り返した。１００μｌの新たに調製したＯＰＤを加えて、遮光の下で（ｌｉｇｈｔｔｉｇｈｔ）、正確に７分間、室温で反応させた。陽性ウェルは、オレンジ色を示した。１００μｌの２．５ＮＨ_２ＳＯ_４を加えて、反応を終了させた。ＯＤを４９２ｎｍで測定した。

サンプルスクリーニング：サンプルを予備的にスクリーニングした。タンパク質チロシンキナーゼ活性に対するサンプルの効果を試験し、阻害率を算出した。阻害率（％）＝（ＯＤ_陰性対照−ＯＤ_サンプル）／（ＯＤ_陰性対照 ^＊−ＯＤ_ブランク）×１００％；^＊陽性薬物の阻害率を算出する場合、式中のＯＤ_陰性対照をＯＤ_溶媒対照で置き換えて、ＰＴＫ活性に及ぼすＤＭＳＯの影響を除外する。

結果：表１を参照。表１は、薬物群（化合物番号は、対応する実施例から得た）および陽性薬物群（ゲフィチニブ）からの結果を示す。

表１のデータは以下のことを示した：陽性薬物であるゲフィチニブは、４００μＭで、チロシンキナーゼ活性を４０．２％の阻害率で有意に阻害し、一方、本開示の実施例のすべての化合物が、同じ濃度で、４５％を超える阻害率でチロシンキナーゼ活性に対する強力な阻害を示し、これは、陽性対照薬物と同等、または陽性対照薬物よりも優れ、これらの化合物が、チロシンキナーゼを高発現する腫瘍を予防および治療する可能性があることを示唆した。

実験例２
本開示の２−インドロン誘導体のｉｎｖｉｔｒｏ抗腫瘍活性
方法：１４種の細胞株（ΜＫＮ−４５細胞、ＭＨＣＣ９７−Ｌ細胞、ＭＨＣＣ９７−Ｈ細胞、ＨＬＥ細胞、ＨｅｐＧ２細胞、７７２１細胞、Ｌ０２細胞、Ａ３７５細胞、Ｈ４６０細胞、Ａ５４９細胞、ＳＫ−Ｎ−ＳＨ細胞、ＭＣＦ−７細胞、Ｋ５６２細胞、およびＢａ／Ｆ３−Ｔｐｒ−Ｍｅｔ細胞（ｃ−Ｍｅｔ構成的活性変異体Ｔｐｒ−Ｍｅｔによって悪性転換された前駆Ｂ細胞）を、９６ウェルプレートに１×１０^４細胞／ウェルで播種し、各ウェルに１０％ウシ胎仔血清（Ｈｙｃｌｏｎｅから購入）含有の１５０μｌのＤＭＥＭ培地（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎから購入）を加えた。細胞の付着が観察される場合、陰性対照（溶媒対照群）およびブランク対照（培地群）に加えて、種々の濃度（０．１〜１０μＭの濃度）の２−インドロン誘導体を加えた。３７℃で、５％ＣＯ_２下で７２時間の培養後、ＭＴＳ試薬（ＰｒｏｍｅｇａＣｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）を加え、さらに２〜４時間培養させた。マイクロプレートリーダーを用いて４５０ｎｍの波長でＯＤ値を検出し、ソフトウェアＳＰＳＳを用いてＩＣ５０（細胞増殖の阻害率が５０％に達する化合物の濃度）を算出した。

結果を表２に示す（ＩＣ５０（μＭ）は、細胞増殖の阻害率が５０％に達する化合物の濃度を示す）。化合物は、正常な肝細胞Ｌ０２の増殖にわずかに影響を与えたことを除き、他の腫瘍細胞株に対して有意な阻害を示し、本開示の２−インドロン誘導体が有意なｉｎｖｉｔｒｏ抗腫瘍活性を有し、正常細胞に対する有害作用を有さないことが示唆された。

実験例３
皮下接種されたヌードマウスモデルにおける２−インドロン誘導体（Ｉｎｄｏ５）のＩｎｖｉｖｏ抗腫瘍活性
方法：本開示の２−インドロン誘導体の全体的なｉｎｖｉｖｏ抗腫瘍活性を評価するために、ＨｅｐＧ２細胞、ＭＨＣＣ９７−Ｌ、ＭＨＣＣ９７−Ｈ細胞、およびＮＣＩ−Ｈ４６０細胞を含む様々な担癌ヌードマウスモデルを確立し、担癌ヌードマウスにおける腫瘍の成長に対する腹腔内注射した２−インドロン誘導体（実施例としてＩｎｄｏ５）の効果を観察した。

担癌モデルの確立：腫瘍細胞を、対数的成長を達成するまでＴ７５フラスコ内で培養した。細胞をトリプシン処理し、１０％ウシ胎仔血清含有のＤＭＥＭ培地を加えてトリプシン処理を終了させた。細胞をＰＢＳで２回洗浄し、懸濁させた。細胞濃度を５×１０^７個／ｍｌに調整し、１５０μｌの細胞懸濁液をマウスの右側腹部に注射した。接種後、ヌードマウス内の腫瘍を毎日観察し、腫瘍が１００ｍｍ^３の体積に達したときに、マウスを群に分けた。各ヌードマウスに番号を付け、腫瘍サイズを測定した。選別のためにデータをＥＸＣＥＬに入力することで、極値を除外した。マウスの数に合わせてランダムな番号を作成し、これらのランダムな番号を使用してマウスを無作為に群に分けた。

投与：それぞれ４ｍｇ／ｋｇ、８ｍｇ／ｋｇおよび１６ｍｇ／ｋｇの用量で、腹腔内注射を使用した。溶媒対照群には同量のＤＭＳＯを注射した。マウスは、２４時間毎に１回処置を行い、合計で６回の投与を施した。投与の間、腫瘍サイズ（長さ×幅×幅／２）の変化をリアルタイムでモニターして、記録し、結果は平均値±標準偏差として表した。２週間後、マウスを屠殺し、腫瘍を取り出して、計量し、腫瘍に対する化合物の阻害率を算出した。

結果：図１は、ＨｅｐＧ２担癌マウスにおける腫瘍に対する異なる用量の化合物Ｉｎｄｏ５の阻害を示す；Ａは、腫瘍体積変化曲線を表し、Ｂは、阻害率を表す。

図２は、ＭＨＣＣ９７−Ｌ担癌マウスにおける腫瘍に対する異なる用量の化合物Ｉｎｄｏ５の阻害を示す；Ａは、腫瘍体積変化曲線を表し、Ｂは、阻害率を表す。

図３は、ＭＨＣＣ９７−Ｈ担癌マウスにおける腫瘍に対する異なる用量の化合物Ｉｎｄｏ５の阻害を示す；Ａは、腫瘍体積変化曲線を表し、Ｂは、阻害率を表す。

図４は、ＮＣＩ−Ｈ４６０担癌マウスにおける腫瘍に対する異なる用量の化合物Ｉｎｄｏ５の阻害を示す；Ａは、腫瘍体積変化曲線を表し、Ｂは、阻害率を表す。

腫瘍阻害率は、以下の式に従って、測定値を使用することにより算出された：
腫瘍阻害率＝（対照群の平均重量−処置群の平均重量）／対照群の平均重量×１００％
算出結果から、腹腔内投与による化合物Ｉｎｄｏ５は、用量依存的に腫瘍細胞成長を阻害することができ、ＨｅｐＧ２細胞、ＭＨＣＣ９７−Ｌ／Ｈ細胞およびＮＣＩ−Ｈ４６０細胞のｉｎｖｉｖｏ増殖に対する最高用量（１６ｍｇ／ｋｇ）での化合物Ｉｎｄｏ５の阻害率はそれぞれ６１％、６８％、６１％および５９％であることが示され、化合物Ｉｎｄｏ５が様々な腫瘍細胞を皮下接種されたヌードマウスモデルに対して有意な抗腫瘍効果を有することが示された。

実験例４
肝同所性腫瘍モデルにおける２−インドロン誘導体（Ｉｎｄｏ５）のｉｎｖｉｖｏ抗腫瘍活性
動物モデルの確立：ＭＨＣＣ−９７Ｈ細胞を、１０％ウシ胎仔血清（１００μｌ／ｍＬのペニシリンおよび１００μｌ／ｍＬのストレプトマイシンで補充）含有の１６４０培地で、３７℃、５％ＣＯ_２含有のインキュベーターで培養した。１〜２日毎に１回、培地を変えた。細胞を０．２５％トリプシンで消化し、１，０００回転／分で５分間遠心分離した。上清を廃棄し、新鮮な培地を継代培養のために加えた。継代培養した腫瘍細胞を無菌条件下で消化（digested）し、塩化ナトリウム注入で再懸濁させ、ヌードマウスの右側腹部に皮下接種した。ヌードマウスの皮下腫瘍が、体積約１，５００〜２，０００ｍｍ^３まで成長したとき、腫瘍塊を無菌条件下で取り出し、今後の使用のために約１．０×１．０ｍｍのサイズに細切りした。その後、接種の対象となるヌードマウスは、麻酔をかけて、手術台に固定した。腹部の皮膚を消毒し、左上腹部に約１ｃｍの切り込みを入れ、肝臓を露出させ、手術部位を覆った。用意した腫瘍断片を接種専用トロカール（ｄｅｄｉｃａｔｅｄｉｎｏｃｕｌａｔｉｏｎｔｒｏｃａｒ）内に置き、トロカールを使用して肝臓内に移植した。創傷の出血部位を滅菌ガーゼまたは滅菌綿棒で処置し、止血した。その後、手術を施した肝臓をマウスの腹腔内に戻した。次いで、腹筋および腹部の皮膚を４／０規格手術針で縫合した。２週間にわたるマウスへの通常の給餌後、肝腫瘍のサイズをＢ−超音波の下で観察した。約１００ｍｍ^３の腫瘍から、同所性接種モデルが首尾よく確立されたことが示された。

方法：動物モデルを、溶媒対照群、腹腔内低用量群（１８ｍｇ／ｋｇ）、腹腔内高用量群（３６ｍｇ／ｋｇ）、および経管栄養群（３６ｍｇ／ｋｇ）に、各群９例で無作為化した。マウスは２４時間毎に１回処置した。腹腔内投与は腹腔内注射で行った。溶媒対照群は、ＤＭＳＯを腹腔内に注射して処置した。６回の投与を施した。最後の投与後、動物をさらに３週間維持し、その後、頸椎脱臼により屠殺し、解剖して、肝臓を採取した。視認できる腫瘍を切除し、計量した。

結果を図５および表３に示した。図５は、それぞれ９例の動物（腫瘍サイズにより分類し、１〜９の番号を付した）を含む各群の屠殺した動物から解剖した腫瘍の写真を示した。本実験の終了時、腹腔内高用量群のうち１例の動物（Ｎｏ．９）において肝癌が消滅した。データは、本開示の２−インドロン誘導体（Ｉｎｄｏ５）が、同所性に肝腫瘍を形成するヘパトーマ細胞株の能力を有意に阻害する可能性があることを示唆し、用量依存性を示した。さらに、経管栄養群および腹腔内注射群は、同等の抗腫瘍効果を示し、経口投与される場合、本開示の化合物が抗腫瘍効果を有し、したがって、経口抗腫瘍剤へと開発される可能性があることを示した。

実験例５
肺癌細胞Ａ５４９の肺同所性腫瘍形成を阻害する本開示の２−インドロン誘導体の能力
本研究は、肺癌細胞Ａ５４９の肺同所性腫瘍形成を阻害する本開示の２−インドロン誘導体（実施例としてＩｎｄｏ５）の能力を試験することを目的とした。

動物モデルの確立：ヒト肺癌細胞株Ａ５４９を、１０％ウシ胎仔血清（１００μｌ／ｍＬのペニシリンおよび１００μｌ／ｍＬのストレプトマイシンで補充）含有の１６４０培地で、３７℃で、５％ＣＯ_２含有のセルインキュベーター内で培養した。１〜２日毎に１回、培地を変えた。細胞を０．２５％トリプシンで消化し、１，０００回転／分で５分間遠心分離した。上清を廃棄し、新鮮な培地を継代培養のために加えた。継代培養した腫瘍細胞を無菌条件下で懸濁液へ消化し、ＢＡＬＢ／ｃヌードマウスに、左胸部の第３と第４の肋骨の間に、同所性に注入した（３．０×１０^６個／マウス、３０μｌ）。接種針を肺葉内に約５ｍｍの深さで挿入した。接種日はＤ０としてラベルで表示した。７日後、動物を計量し、体重に基づき各群に無作為化した。この時点で、胸部Ｘ線により、マウスの肺に腫瘍が形成されていることが示され、これは動物モデルが首尾よく確立されたことが示された。

方法：動物モデルを、溶媒対照群（ＤＭＳＯ腹腔内注射）、腹腔内低用量群（１８ｍｇ／ｋｇ）、および腹腔内高用量群（３６ｍｇ／ｋｇ）の３つの群に無作為化した。動物は２４時間毎に１回処置した。６回の逐次的投与の後、動物をさらに３０日間維持した。本実験の終了時、動物を屠殺し、解剖して、肺を採取した。腫瘍を切除し、計量した。

結果を表４に示した。表に示されるように、本開示の２−インドロン誘導体（Ｉｎｄｏ５）は、肺癌細胞Ａ５４９の肺同所性腫瘍形成を有意に阻害でき、用量依存性を示した。

実験例６
ｃ−ＭｅｔおよびＴｒｋ活性に対する本開示の２−インドロン誘導体（Ｉｎｄｏ５）の特異的阻害
ｃ−ＭｅｔおよびＴｒｋＡ／Ｂキナーゼを含む１５種の受容体型チロシンキナーゼを選択し、それぞれのｉｎｖｉｔｒｏリン酸化に対する本開示の２−インドロン誘導体（実施例としてＩｎｄｏ５）の効果を試験した。実験方法は以下の通りである：
１）ｉｎｖｉｔｒｏｃ−Ｍｅｔキナーゼ活性に対するＩｎｄｏ５の阻害を試験するためにＥＬＩＳＡおよびＭｅｔキナーゼアッセイキット（ＣｅｌｌＳｉｇｎａｌｉｎｇから購入）を使用した：１０１０μｌの１０ｍＭＡＴＰを、１．２５ｍｌの６μＭ基質ペプチドに加え、水で希釈して２．５ｍｌとし、２×ＡＴＰ／基質混合物（［ＡＴＰ］＝４０μＭ、［基質］＝３μｍ）を調製した。酵素を−８０℃から取り出し、解凍のため、直ちに氷上に置いた。４℃で遠心分離し、液体を管の底に濃縮させて、速やかに氷上に戻した。１０μｌのＤＴＴ（１．２５Ｍ）を４×ＨＴＳｃａｎチロシンキナーゼ溶液（２４０ｍＭのＨＥＰＥＳｐＨ７．５、２０ｍＭのＭｇＣＩ２、２０ｍＭのＭｎＣＩ２、１２μＭのＮａ３ＶＯ４）に加えて、ＤＴＴ／キナーゼ溶液を調製した。１．２ｍｌのＤＴＴ／キナーゼ溶液を、それぞれのキナーゼの管に加えて、４×反応混合物（［酵素］＝４×反応混液中４ｎｇ／μＬ）を調製した。１２．５μｌの４×反応混合物と１２．５μｌの溶解前Ｉｎｄｏ５（異なる用量）とを、室温で５分間インキュベートし、これに２５μｌ２×ＡＴＰ／基質を加えて、均一に混合し、その後、さらに３０分間室温でインキュベートした。５０μｌの停止緩衝液（５０ｍＭのＥＤＴＡ、ｐＨ８）を加えて反応を終了させた。上記の反応物のうち２５μｌと７５μｌの水とを、ストレプトアビジン結合型９６ウェルプレートに加えて、室温で６０分間インキュベートした。プレートを２００μｌのＰＢＳで３回洗浄した。Ｐ−Ｔｙｒ−１００抗体を１：１０００の比率で希釈し、９６ウェルプレートに加えて、６０分間室温でインキュベートした。プレートを２００μｌのＰＢＳで３回洗浄した。西洋ワサビペルオキシダーゼ結合型二次抗体を希釈し、１００μｌの量で９６ウェルプレートに加えて、３０分間室温でインキュベートした。その後、プレートを２００μｌのＰＢＳ／Ｔで３回洗浄した。１００μｌのＴＭＢ基質を加えて、１５分間室温でインキュベートした。その後、１００μｌの停止液を加えて、均一に混合した。分光光度計を使用して４５０ｎｍで吸光度を読み取った。ソフトウェアＳＰＳＳを用いて、ＩＣ_５０（キナーゼ活性の阻害率が５０％に達する化合物の濃度）を算出した。
２）ＫｉｎａｓｅＧｌｏＰｌｕｓアッセイフォーマット、Ｐｒｏｇｍａｇを使用して、残り１４種の受容体型チロシンキナーゼの活性を試験し、キナーゼ活性に関するＩＣ_５０を阻害率に基づき算出した。

結果を表５に示した。ｃ−Ｍｅｔキナーゼに対する本開示の２−インドロン誘導体（Ｉｎｄｏ５）の阻害に関するＩＣ_５０は０．１６μＭであり、ＴｒｋＡキナーゼについてのＩＣ_５０は０．０２２μＭであり、ＴｒｋＢキナーゼについてのＩＣ_５０は０．２３μＭであったのに対し、他のキナーゼに対する阻害についてのＩＣ５０は１０μＭ超であった。これらの結果は、本開示の２−インドロン誘導体（Ｉｎｄｏ５）が、ｃ−ＭｅｔおよびＴｒｋ（ＴｒｋＡおよびＴｒｋＢを含む）キナーゼの活性を有意に阻害し、良好な選択性を示すことを示唆した。該結果は、本開示の２−インドロン誘導体（Ｉｎｄｏ５）は、ｃ−ＭｅｔおよびＴｒｋキナーゼの活性を特異的に阻害することができ、一方、他のキナーゼに対しては有意な効果を有さないことを示した。

実験例７
ヘパトーマ細胞におけるｃ−Ｍｅｔリン酸化およびシグナル伝達経路に対する２−インドロン誘導体（Ｉｎｄｏ５）の阻害
これまで報告されたように、肝細胞増殖因子（ＨＧＦ）によって介在されるｃ−Ｍｅｔシグナル伝達経路は、腫瘍の形成および発達に重要な役割を果たす。ｃ−Ｍｅｔキナーゼは、ＨＧＦの高親和性受容体であり、組織修復、創傷治癒、肝再生および胚発生において必要不可欠な機能を有する。研究により、ｃ−Ｍｅｔの異常発現が直接、腫瘍形成を引き起こす可能性があることが示されてきた。ｃ−Ｍｅｔは、ＨＧＦに結合することで、下流シグナル伝達経路を活性化させ、腫瘍細胞間の接着を妨害し、細胞運動を促進し、したがって腫瘍細胞の浸潤能および血管新生を高める。癌と臨床的に診断された患者におけるｃ−Ｍｅｔの異常形成は、不良な予後、急速な病勢進行、高転移および短期の生存期間と密接に関係している。ｃ−Ｍｅｔは、国際的に、癌治療の標的として認識されている。本開示は、２つのヘパトーマ細胞株を使用してｃ−Ｍｅｔシグナル伝達経路に対する化合物の有効性を試験した。ＨｅｐＧ２細胞はｃ−Ｍｅｔを高発現し、ＨＧＦ刺激は、ＥＲＫ、Ａｋｔなどの活性化を含む、ｃ−Ｍｅｔリン酸化およびその下流シグナル伝達経路を活性化する可能性がある。ＭＨＣＣ９７−Ｈ細胞は、ＨＧＦそれ自体を分泌するヘパトーマ細胞株であり、したがって、この細胞は、通常の培養条件下で、高くおよび持続性のあるレベルのｃ−Ｍｅｔリン酸化を有する。

２つのヘパトーマ細胞株、ＨｅｐＧ２およびＭＨＣＣ９７−Ｈを使用して、ＨＧＦ−誘導型ｃ−Ｍｅｔリン酸化およびシグナル伝達経路に対する本開示の２−インドロン誘導体（実施例としてＩｎｄｏ５）の阻害を試験した。

細胞培養：ｃ−Ｍｅｔを高発現するＨｅｐＧ２細胞および持続的に活性のあるｃ−Ｍｅｔを有するＭＨＣＣ９７−Ｈ細胞を、１０％ウシ胎仔血清（１００μｌ／ｍＬのペニシリンおよび１００μｌ／ｍＬのストレプトマイシンで補充）含有の１６４０培地で、３７℃で、５％ＣＯ_２含有のセルインキュベーターで培養した。１〜２日毎に１回、培地を変えた。細胞を０．２５％トリプシンで消化し、５分間１，０００回転／分で遠心分離した。上清を廃棄し、新鮮な培地を継代培養のために加えた。
ウエスタンブロットアッセイ：
（Ａ）ＨｅｐＧ２細胞について：ＨｅｐＧ２細胞を２４時間、無血清条件下で培養し、次いで２時間、様々な濃度（０．１μＭ、０．５μＭ、１．０μＭおよび２．０μＭ）のＩｎｄｏ５または溶剤ＤＭＳＯ（０）で予備培養した。その後、２０ｎｇ／ｍＬのＨＧＦ（加えない場合には、「−」と表示）を加えて、５分置いた。細胞溶解後、全タンパク質を抽出した。ｃ−Ｍｅｔリン酸化および非リン酸化抗体、ＥＲＫリン酸化および非リン酸化抗体、Ａｋｔリン酸化および非リン酸化抗体（すべてＣｅｌｌＳｉｇｎａｌｉｎｇから購入）ならびにＧＡＰＤＨ抗体（ＳａｎｔａＣｒｕｚから購入）を用いて、ウエスタンブロットアッセイを行った。
（Ｂ）ＭＨＣＣ９７−Ｈ細胞について：ＭＨＣＣ９７−Ｈ細胞を２４時間、通常の条件下で培養し、次いで、様々な濃度（０．１μＭ、０．５μＭ、１．０μＭおよび２．０μＭ）のＩｎｄｏ５または溶剤ＤＭＳＯ（０）あるいは１μＭのＳＵ１１２７４で処理した。ＳＵ１１２７４（Ｓｉｇｍａから購入）は、ｃ−Ｍｅｔの活性化を遮断し得る特異的ｃ−Ｍｅｔキナーゼ阻害剤である。但し、この化合物の溶解性および大きな有害作用により、適切な臨床薬ではないが、この化合物は本研究において陽性対照として使用することができる。化合物とともに２時間インキュベーション後、細胞を収集し、全タンパク質を抽出した。ｃ−Ｍｅｔリン酸化および非リン酸化抗体、ＥＲＫリン酸化および非リン酸化抗体、Ａｋｔリン酸化および非リン酸化抗体（すべてＣｅｌｌＳｉｇｎａｌｉｎｇから購入）ならびにＧＡＰＤＨ抗体（ＳａｎｔａＣｒｕｚから購入）を用いて、ウエスタンブロットアッセイを行った。

結果を図６Ａおよび６Ｂに示した。ＨｅｐＧ２細胞において、ＨＧＦは、ｃ−Ｍｅｔのリン酸化を速やかに誘導し、Ｉｎｄｏ５は、ｃ−ＭｅｔのＨＧＦ−誘導型リン酸化を用量依存的に阻害した。２μＭでｃ−Ｍｅｔリン酸化がほぼ完全に阻害され、ｃ−Ｍｅｔの重要な下流シグナル伝達分子であるＡｋｔおよびＥＲＫのリン酸化も阻害された（図６Ａ参照）。ＭＨＣＣ９７−Ｈ細胞は、高転移ヒトヘパトーマ細胞株である。それは、ＨＧＦを分泌し、自己分泌を通じてＨＧＦ／ｃ−Ｍｅｔシグナル伝達経路を活性化し得る。通常の培養条件下で、ＭＨＣＣ９７−Ｈ細胞は高レベルのｃ−Ｍｅｔリン酸化を有する。Ｉｎｄｏ５は、ｃ−Ｍｅｔのリン酸化ならびにその下流シグナル伝達経路分子であるＡｋｔおよびＥＲＫのリン酸化を用量依存的に阻害し得る（図６Ｂ参照）。２μＭの濃度でのＩｎｄｏ５の阻害効果は、陽性対照ＳＵ１１２７４と同等であった。上記の結果は、本開示の２−インドロン誘導体（Ｉｎｄｏ５）が、ｃ−Ｍｅｔの活性化とその下流シグナル伝達分子であるＥＲＫのリン酸化とを用量依存的に有意に阻害したことを示し、ｉｎｖｉｔｒｏ細胞においてＨＧＦ／ｃ−Ｍｅｔを効果的に阻害し得ること、ならびにｃ−Ｍｅｔの異常活性化がみられる腫瘍および肝癌を治療するための治療剤へと開発し得ることを示唆した。

実験例８
ＴｒｋＡおよびＴｒｋＢリン酸化ならびにシグナル伝達経路に対するＩｎｄｏ５の阻害
Ｔｒｋ（ＮＴＲＫ）キナーゼは、受容体型チロシンキナーゼファミリーのサブファミリーに属している。このサブファミリーのキナーゼは、ニューロトロフィン受容体であり、中枢および末梢神経系の発生および維持において重要な役割を果たしている。そのメンバーとしては、ＴｒｋＡ（ＮＴＲＫ１）、ＴｒｋＢ（ＮＴＲＫ２）およびＴｒｋＣ（ＮＴＲＫ３）が含まれる。Ｔｒｋは、腫瘍の形成および発達に密接に関係しており、Ｔｒｋシグナル伝達経路を阻害することは、すでに腫瘍治療の戦略の１つとなっている。Ｔｒｋを標的とする低分子阻害剤および治療的モノクロナール抗体が、末梢性疼痛に対する臨床的介入ならびに中枢神経系の異常および癌に対する治療において使用されている。ＴｒｋＡはＮＧＦの高親和性受容体であり、ＴｒｋＢはＢＤＮＦの高親和性受容体である。ＴｒｋＡのリン酸化、ＴｒｋＢのリン酸化および下流シグナルを検出することによって、該シグナル伝達経路に対する本開示の２−インドロン誘導体（実施例としてＩｎｄｏ５）の効果を評価し得、さらに、本細胞経路に関連している神経芽細胞腫、乳癌、および肺癌などに対する阻害効果も予測し得る。

方法：神経芽細胞腫細胞ＳＫ−Ｎ−ＳＨを、１０％ウシ胎仔血清（１００μｌ／ｍＬのペニシリンおよび１００μｌ／ｍＬのストレプトマイシンで補充）含有の１６４０培地で、３７℃で、５％ＣＯ_２含有のセルインキュベーターで培養した。１〜２日毎に１回、培地を変えた。細胞を０．２５％トリプシンで分解し、５分間１，０００回転／分で遠心分離した。上清を廃棄し、新鮮な培地を継代培養のために加えた。２４時間無血清条件下でＳＫ−Ｎ−ＳＨ細胞の培養後、様々な濃度（０．０５μＭ、０．１μＭ、０．５μＭおよび１．０μＭ）のＩｎｄｏ５または溶剤ＤＭＳＯ（０）を２時間の予備培養のために加えた。５００ｎｇ／ｍＬのＮＧＦまたは２００ｎｇ／ｍｌのＢＤＮＦ（加えない場合には、「−」と表示）を加えて、５分間細胞を刺激した。細胞溶解後、全タンパク質を抽出した。ＴｒｋＡリン酸化および非リン酸化（ｐ−ＴｒｋＡ）抗体、ＴｒｋＢリン酸化および非リン酸化（ｐ−ＴｒｋＢ）抗体、ＥＲＫリン酸化および非リン酸化（ｐ−ＥＲＫ）抗体、Ａｋｔリン酸化および非リン酸化（ｐ−Ａｋｔ）抗体ならびにＧＡＰＤＨ抗体を用いて、ウエスタンブロットアッセイを行った。

結果を図７に示した。本開示の２−インドロン誘導体（Ｉｎｄｏ５）は、ＴｒｋＡのリン酸化およびその下流シグナル伝達分子であるＥＲＫのリン酸化を用量依存的に有意に阻害した。図８に示すように、本開示の２−インドロン誘導体（Ｉｎｄｏ５）は、ＴｒｋＢのリン酸化ならびにその下流シグナル伝達分子であるＥＲＫおよびＡｋｔのリン酸化を用量依存的に有意に阻害した。これらのデータは、本開示の２−インドロン誘導体（Ｉｎｄｏ５）が、ｉｎｖｉｔｒｏ細胞におけるＴｒｋシグナル伝達経路を効果的に阻害し得ること、ならびに神経芽細胞腫、乳癌および肺癌などを治療する治療剤へと開発し得ることを示唆した。

実験例９
ｉｎｖｉｖｏにおける神経芽細胞腫ＳＫ−Ｎ−ＳＨ細胞の成長に対するＩｎｄｏ５の阻害
ＮＧＦ／ＴｒｋＡが神経細胞性（ｎｅｕｒｏｃｙｔｅ）腫瘍の形成および発達において重要な役割を果たすことが報告されている。神経芽細胞腫ＳＫ−Ｎ−ＳＨ細胞を用いて、担癌ヌードマウスモデルを確立し、該担癌ヌードマウスにおける腫瘍に対する本開示の２−インドロン誘導体（実施例としてＩｎｄｏ５）の効果を観察した。

モデルの確立：６〜８週齢のｎｕ／ｎｕ雌マウスを、１週間、動物施設においてＳＰＦ条件下で給餌し、５×１０^６個の神経芽細胞腫ＳＫ−Ｎ−ＳＨ細胞（ＡＴＣＣから購入）を各マウスの左側腹部に皮下接種した。接種後、腫瘍体積を毎日モニターした。サイズが約１００ｍｍ^３までに達したとき、マウスをグループに分けた。各ヌードマウスに番号を付けて、腫瘍サイズを測定した。選別するために測定したデータをＥＸＣＥＬに入力し、極値を除外した。マウスの数に合わせてランダムな番号を作成し、これらのランダムな番号を使用してマウスを無作為にグループ化した。

方法：４ｍｇ／ｋｇ、８ｍｇ／ｋｇおよび１６ｍｇ／ｋｇの各用量での腹腔内注射群；経管栄養群（１６ｍｇ／ｋｇ）；ならびに同量のＤＭＳＯを注射した溶媒対照群。それぞれの群に１０例の動物が含まれていた。マウスに２４時間毎に１回処置を行い、合計で６回の投与を施した。投与の間、腫瘍サイズ（長さ×幅×幅／２）の変化をリアルタイムでモニターして、記録し、結果は、平均値±標準偏差として表した。２週間後、マウスを屠殺し、視認できる腫瘍を取り出して、計量し、腫瘍に対する化合物の阻害率を算出した。

図９は、ＳＫ−Ｎ−ＳＨ担癌マウスに対する異なる用量での化合物Ｉｎｄｏ５の阻害を示した；Ａは、腫瘍体積変化曲線を表し、Ｂは、阻害率を表す。図は、化合物Ｉｎｄｏ５の腹腔内注射がＳＫ−Ｎ−ＳＨ細胞の成長を効果的に阻害し得ることを示し、および用量依存性を示すことを示した。腫瘍阻害率は、測定されたデータから算出し、算出した結果は、腹腔内投与による化合物Ｉｎｄｏ５が腫瘍細胞の成長を用量依存的に阻害し得ることを示した。ＳＫ−Ｎ−ＳＨ細胞のｉｎｖｉｖｏ増殖に対する最高用量（１６ｍｇ／ｋｇ）の化合物Ｉｎｄｏ５の阻害率は５０％であり、化合物Ｉｎｄｏ５がＳＫ−Ｎ−ＳＨ腫瘍細胞を皮下接種したヌードマウスモデルに対し有意な抗腫瘍効果を有することを示した。

さらに、ＳＫ−Ｎ−ＳＨ細胞のｉｎｖｉｖｏ増殖に対する経管栄養および腹腔内投与の効果を比較したところ、腫瘍細胞の増殖に対する１６ｍｇ／ｋｇの経管栄養投与の阻害率は４８％で、腹腔内注射の阻害率と同等であったとの結果が示され、これは本開示の化合物が経口投与された場合、抗腫瘍効果を有し、経口抗腫瘍薬へと開発される可能性があることを示唆した。

本開示は、２−インドロン誘導体およびその調製方法を提供し、それらの物質は、チロシンキナーゼ阻害活性を有し、チロシンキナーゼ阻害剤または抗腫瘍剤の有効成分として使用することができ、したがって、腫瘍疾患の予防および治療ならびに抗腫瘍剤の開発のために使用することができる。

Claims

一般式Ｉ：

［式中、
Ｒ_２は水素またはハロゲンであり；Ｒ_１は水素または−ＳＯ_２ＮＲ_３Ｒ_４であり、ここで、Ｒ_３は水素またはメチルであり、Ｒ_４はフェニル、シクロヘキシル、ハロゲン置換フェニル、メチルフェニル、エチルフェニル、エトキシフェニル、ヒドロキシフェニルまたはβ−ナフチルである］
の化合物、その幾何異性体または薬学的に許容される塩である、チロシンキナーゼ阻害活性を有する物質。
式Ｉの化合物が、以下：
３−（１Ｈ−ベンゾイミダゾール−２−メチレン）−５−（β−ナフチルアミノスルホ）−２−インドロン（Ｉｎｄｏ１）；
３−（１Ｈ−ベンゾイミダゾール−２−メチレン）−５−（３−クロロ−４−フルオロフェニルアミノスルホ）−２−インドロン（Ｉｎｄｏ２）；
３−（１Ｈ−ベンゾイミダゾール−２−メチレン）−５−（Ｎ−メチルフェニルアミノスルホ）−２−インドロン（Ｉｎｄｏ３）；
３−（１Ｈ−ベンゾイミダゾール−２−メチレン）−５−（シクロヘキシルアミノスルホ）−２−インドロン（Ｉｎｄｏ４）；
３−（１Ｈ−ベンゾイミダゾール−２−メチレン）−５−（２−メチルフェニルアミノスルホ）−２−インドロン（Ｉｎｄｏ５）；
３−（１Ｈ−ベンゾイミダゾール−２−メチレン）−５−（４−クロロフェニルアミノスルホ）−２−インドロン（Ｉｎｄｏ６）；
３−（１Ｈ−ベンゾイミダゾール−２−メチレン）−５−（４−ヒドロキシエチルアミノスルホ）−２−インドロン（Ｉｎｄｏ７）；
３−（１Ｈ−ベンゾイミダゾール−２−メチレン）−５−（４−メチルフェニルアミノスルホ）−２−インドロン（Ｉｎｄｏ８）；
３−（１Ｈ−ベンゾイミダゾール−２−メチレン）−５−（４−エトキシフェニルアミノスルホ）−２−インドロン（Ｉｎｄｏ９）
のうちのいずれか１つを含む、請求項１に記載の物質。
式ＩＩの化合物および式ＩＩＩの化合物

［式中、
Ｒ_１およびＲ_２は、請求項１に定義される通りである］
を、メタノール、エタノールもしくはイソプロパノールまたはそれらの混合溶液中で混合すること、そこに塩基性または酸性の触媒を加えること、ならびに、還流させて所望の生成物を得ること
を含む、請求項１または２に記載の化合物の調製方法。
調製の間、塩基性触媒が、水酸化カリウム、水酸化ナトリウム、アンモニア、酸化カルシウム、およびそれらの水溶液を含む無機塩基性化合物；トリエチルアミン、ピペリジン、ジメチルアミノピリジン、２，４，５−トリメチルピリジンまたはピリジンを含む有機アミンから選択され、酸性触媒が、塩酸およびリン酸を含む無機酸；ｐ−トルエンスルホン酸および酢酸を含む有機酸から選択される、請求項３に記載の調製方法。
請求項１または２に記載のチロシンキナーゼ阻害活性を有する物質のうち１つまたは複数および薬学的に許容される担体または賦形剤を含む医薬組成物である、組成物。
チロシンキナーゼ阻害薬または抗腫瘍薬の製造における請求項１または２に記載の化合物、その幾何異性体または薬学的に許容される塩、あるいは請求項５に記載の組成物の使用。
腫瘍細胞アポトーシスを誘導すること、腫瘍血管新生を阻害すること、ならびに腫瘍の化学療法耐性および腫瘍の悪性転移を予防することを含む、腫瘍を予防および治療するために、チロシンキナーゼが阻害される、請求項６に記載の使用。
腫瘍が、乳癌、肺癌、皮膚癌、結腸癌、前立腺癌、膵癌、肝癌、胃癌、頭頸部癌、神経膠腫、神経芽細胞腫、黒色腫、腎癌腫または白血病である、請求項６または７に記載の使用。
チロシンキナーゼ阻害薬が、ｃ−ＭｅｔまたはＴｒｋシグナル伝達経路に関係する疾患を治療する薬物である、請求項６に記載の使用。
ｃ−Ｍｅｔシグナル伝達経路に関係する疾患が、肝癌、乳癌、肺癌、前立腺癌、膵癌、結腸癌、胃癌、頭頸部癌または白血病を含むがこれらには限定されない、請求項９に記載の使用。
Ｔｒｋシグナル伝達経路に関係する疾患が、乳癌、肺癌、皮膚癌、胃癌、神経膠腫、神経芽細胞腫、黒色腫、腎癌腫または白血病を含むがこれらには限定されない、請求項９に記載の使用。
腫瘍が、乳癌、肺癌、結腸癌、前立腺癌、膵癌、肝癌、胃癌、頭頸部癌、神経膠腫、黒色腫、腎癌腫および白血病を含むがこれらには限定されない、抗腫瘍薬の製造における３−（１Ｈ−ベンゾイミダゾール−２−メチレン）−５−（２−メチルフェニルアミノスルホ）−２−インドロン（Ｉｎｄｏ５）の使用。
腫瘍が、乳癌、肺癌、肝癌、胃癌、皮膚癌、神経芽細胞腫または白血病である、請求項１２に記載の使用。
チロシンキナーゼ阻害薬の製造における３−（１Ｈ−ベンゾイミダゾール−２−メチレン）−５−（２−メチルフェニルアミノスルホ）−２−インドロン（Ｉｎｄｏ５）の使用。
チロシンキナーゼ阻害薬が、ｃ−ＭｅｔまたはＴｒｋシグナル伝達経路に関係する疾患を治療する薬物である、請求項１４に記載の使用。
ｃ−Ｍｅｔシグナル伝達経路に関係する疾患が、肝癌、乳癌、肺癌、前立腺癌、膵癌、結腸癌、胃癌、頭頸部癌または白血病を含むがこれらには限定されない、請求項１５に記載の使用。
Ｔｒｋシグナル伝達経路に関係する疾患が、乳癌、肺癌、皮膚癌、胃癌、神経膠腫、神経芽細胞腫、黒色腫、腎癌腫または白血病を含むがこれらには限定されない、請求項１５に記載の使用。
腫瘍が肝癌、肺癌または神経芽細胞腫である、抗腫瘍薬の製造における３−（１Ｈ−ベンゾイミダゾール−２−メチレン）−５−（２−メチルフェニルアミノスルホ）−２−インドロン（Ｉｎｄｏ５）の使用。