JP2016517393A - ニトロフェニルボロン酸組成物によって安定化したナノ粒子 - Google Patents
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Abstract
Description
本発明は、国立がん研究所に与えられた助成金CA 119347の下での政府の支持により行われた。政府は、本発明における一定の権利を有する。
本開示は、キャリアナノ粒子、特に、目的の化合物を送達するために好適なナノ粒子、並びに関連する組成物、方法およびシステムに関する。
Aは、以下の式:
R1およびR2は、約10kDa以下の分子量を有する任意の炭素ベースの基又は有機基から独立して選択され;
Xは、−H、−F、−C、−N又は−Oの1つ以上を含む脂肪族基から選択され;且つ
Yは、−OHであるか、又はヒドロキシル(−OH)基を有する有機部分(−CH2OH、−CH2CH2OH、−CF2OH、−CF2CF2OHおよびC(R1G1)(RG2)(R1G3)OHが挙げられるがこれらに限定されず、ここでR1G1、R1G2およびR1G3は、独立して有機ベースの官能基である)から独立して選択され、
且つ
Bは、第1のA部分のR1およびR2の1つを第2のA部分のR1およびR2の1つに連結する有機部分である。
dは、0〜100であり;
eは、0〜100であり;
fは、0〜100であり;
Zは、1つの有機部分を別の有機部分、詳細には、本明細書中で規定される部分A又は部分Bに連結する共有結合であり、そして
Z1は、−NH2、−OH、−SHおよび−COOHから独立して選択される。
式中、
スペーサーは、任意の有機部分(詳細には、必要に応じてヘテロ原子、例えば硫黄、窒素、酸素又はフッ素を含むアルキル基、フェニル基又はアルコキシ基が挙げられ得る)から独立して選択され、
アミノ酸は、遊離のアミン基および遊離のカルボン酸基を有する任意の有機基から選択され;
nは、1〜20であり;且つ
Z1は、−NH2、−OH、−SHおよび−COOHから独立して選択される。
他の幾つかの中でもとりわけ、−C(=O)OH、−C(=O)Cl、−C(=O)NHS、−C(=NH2 +)OMe、−S(=O)OCl−、−CH2Br、アルキルおよび芳香族エステル、末端アルキン、トシレート、およびメシレート。部分Aが求電子末端基を含む場合、R5は、−NH2(第1級アミン)、−OH、−SH、N3および第2級アインなどの求核性基を有する。
qは、1〜20であり;且つ詳細には、5であってもよく、
pは、20〜200であり;且つ
Lは、脱離基である。
nは、1〜20であり;且つ詳細には、1〜4である。
R3およびR4は、任意の親水性有機ポリマーから独立して選択され、詳細には、独立して任意のポリ(エチレンオキシド)および双性イオン性ポリマーであってもよく、
X1は、−CH、−N又は−Bの1つ以上を含有する有機部分であり、
Y1は、場合によりオレフィン基又はアルキニル基、又は芳香族基(例えば、フェニル、ビフェニル、ナフチル又はアントラセニル)を含むm≧1である式−CmH2m−を有するアルキル基であってもよく、
rは、1〜1000であり;
aは、0〜3であり;且つ
bは、0〜3であり;
且つ式中、官能基1および官能基2は、同一であるか又は異なっており、標的リガンドに結合可能であり、詳細には、タンパク質、抗体又はペプチド、又は−OH、−OCH3又は−(X1)−(Y1)−B(OH)2−などの末端基である。
ニトロフェニルボロン酸含有ポリマーに結合体化したポリオール含有ポリマーを有するナノ粒子が、本明細書中で記載される。記載される標的されたナノ粒子のポリオールナノ粒子部分を含むポリマーが、以下の構造単位の任意の1つの1つ以上を有し得る:
式(III)の構造単位に示される標的化ナノ粒子のポリオールナノ粒子セグメントを含有するポリマーは、以下:
ここで、nは、1〜20の任意の単一番号である。記載の標的化ナノ粒子の幾つかの実施形態において、ポリオール含有ポリマーは、以下である:
任意の5、4、3、2又は1の標的リガンドに結合体化したポリオール含有ポリマーを有する標的化ナノ粒子が、本明細書中で記載される。記載される標的されたナノ粒子のポリオールナノ粒子部分を含むポリマーが、以下の構造単位の任意の1つの1つ以上を有し得る:
ここで、nは、1〜20の任意の単一番号である。記載の標的化ナノ粒子の幾つかの実施形態において、ポリオール含有ポリマーは、以下である:
5g(22.8mmol)のムチン酸(Aldrich)を、120mLのメタノールおよび0.4mLの濃硫酸を含む500mL丸底フラスコに加えた。この混合物を85℃にて一晩、絶え間ない撹拌の下で還流させた。この混合物を、その後濾過し、メタノールで洗浄し、次いで、80mLメタノールおよび0.5mLトリエチルアミンの混合物から再結晶化させた。真空下で一晩の乾燥の後、8.0g(33.6mmol,71%)のムチン酸ジメチルエステルを得た。1H NMR((CD3)2SO)δ 4.88〜4.91(d,2H),4.78〜4.81(m,2H),4.28〜4.31(d,2H),3.77〜3.78(d,2H),3.63(s,6H).ESI/MS(m/z):261.0[M+Na]+
8g(33.6mmol)のムチン酸ジメチルエステル(1;実施例1)、12.4mL(88.6mmol)のトリエチルアミンおよび160mLのメタノールの混合物を、絶え間なく撹拌した500mLの丸底フラスコ内で還流下で85℃にて、0.5時間にわたって加熱し、その後、メタノール(32mL)中に溶解した14.2g(88.6mmol)N−BOCジアミン(Fluka)を加えた。この反応懸濁液を、次いで、還流に戻した。一晩の還流の後、この混合物を濾過し、メタノールで洗浄し、メタノールから再結晶させ、真空下で乾燥させて、9.4g(19mmol,57%)のN−BOC−保護ムチン酸ジアミンを得た。1H NMR((CD3)2SO)δ 7.66(m,2H),6.79(m,2H),5.13〜5.15(d,2H),4.35〜4.38(d,2H),4.08〜4.11(m,2H),3.78〜3.80(d,2H),2.95〜3.15(m,8H),1.38(s,18).ESI/MS(m/z):517.1[M+Na]+
8g(16.2mmol)のN−BOC−保護ムチン酸ジアミン(2;実施例2)を、メタノール(160mL)中の3M HClを含む500mL丸底フラスコに移し、一晩85℃にて、絶え間なく撹拌したがら還流させた。その後、沈殿物を濾過し、メタノールで洗浄して一晩真空下で乾燥させ、5.7g(15.6mmol,96%)のムチン酸ジアミンを得た。1H NMR((CD3)2SO)δ 7.97(m,8H),5.35〜5.38(m,2H),4.18〜4.20(m,2H),3.82(m,2H),3.35〜3.42(m,8H),2.82〜2.90(m,4H).ESI/MS(m/z):294.3[M]+,317.1[M+Na]+,333.0[M+K]+
1.5mLエッペンドルフ管に、0.8mLの0.1M NaHCO3中の実施例3の85.5mg(0.233mmol)のビス(ヒドロクロリド)塩を、入れた。ジメチルスベリミデート・2HCl(DMS,Pierce Chemical Co.,63.6mg,0.233mmol)を添加し、この溶液をボルテックスし、遠心分離して、構成要素を溶解させた。得られた混合物を、室温にて15時間にわたって撹拌した。次いで、この混合物を、8mLの水で希釈し、1N HClの添加によって、pHを4にした。次いで、この溶液を、3500MWCO透析膜(Pierce pleated dialysis tubing)を用いて、ddH2Oにおいて24時間にわたって透析した。透析溶液を、乾燥するまで凍結乾燥させ、49mgの白いふわふわした粉末を得た。1H NMR(500MHz,dDMSO)δ 9.15(bs),7.92(bs),5.43(bs),4.58(bs),4.17(bs),3.82(bs),3.37(bs),3.28(bs),2.82(bs),2.41(bs),1.61(bs),1.28(bs).13C NMR(126MHz,dDMSO)δ 174.88(s,1H),168.38(s,1H),71.45(s,4H),71.22(s,3H),42.34(s,2H),36.96(s,3H),32.74(s,3H),28.09(s,4H),26.90(s,4H).Mw[GPC]=2520,Mw/Mn=1.15.
実施例4のポリマーは、核酸、例えばsiRNAと共に集められ、ナノ粒子を形成する。これらのナノ粒子は、哺乳動物において使用される立体安定性を有する必要があり、必要に応じて、これらは、含まれる標的薬剤を有し得た。これらの2つの機能を行うために、このナノ粒子は、立体安静性およびPEG−標的リガンドのために、PEGで装飾されてもよい。このようにするために、ボロン酸を含有するPEG化合物が、調製される。例えば、ボロン酸含有PEGは、以下の実施例に従って、合成され得る。
実施例5のPEG化合物の(還元条件下で)開裂可能なバージョンもまた、以下のように合成され得る。
実施例5のボロン酸含有PEG化合物のフッ化バージョンを、合成し得、治療用ナノ粒子を有する画像化剤として使用できる。画像化のためのフッ素原子は、以下に記載され説明されるように、組み込まれ得る。
実施例5のボロン酸含有開裂可能PEG化合物のフッ化バージョンを、合成し得、治療用ナノ粒子を有する画像化剤として使用できる。画像化のためのフッ素原子は、以下に記載され説明されるように、組み込まれ得る。
標的薬剤は、例えば、トランスフェリン付加を参照する、図12に図解されるアプローチに従って、実施例5〜8の化合物におけるボロン酸由来のPEGの他の末端に置かれてもよい。
図1において図示されるように、DNA分解酵素およびRNA分解酵素非含有水中の1μgのプラスミドDNA又はsiRNA(0.1μg/μL,10μL)を、10μLのMAPと、DNA分解酵素およびRNA分解酵素非含有水中の種々の濃度で混合し、0.5、1、1.5、2、2.5および5の電荷比(ポリマー上の「+」電荷対核酸上の「−」電荷)を得た。得られた混合物を、室温にて30分間にわたってインキュベートした。図3および4に示されるように、20μLの溶液の10μLを、1%アガロースゲル上に、3.5μLのローディング緩衝液と共にローディングし、ゲルを、80Vにて45分間にわたって電気泳動した。ナノ粒子中に含まれない核酸は、ゲル上を移動する。これらの結果は、ナノ粒子内の核酸含有物について必須の電荷比についての誘導を与える。
DNA分解酵素およびRNA分解酵素非含有水中1μgのプラスミドDNA(0.1μg/μL,10μL)を、10μLのMAPと、DNA分解酵素およびRNA分解酵素非含有水中の種々の濃度で混合し、0.5、1、1.5、2、2.5および5の電荷比を得た。得られた混合物を、室温にて30分間にわたってインキュベートした。次いで、20μLの混合物を、粒子サイズ測定のために、DNA分解酵素およびRNA分解酵素非含有水で、70μLまで希釈した。次いで、この70μL溶液を、ゼータ電位測定のために、1mM KClで1400μLまで希釈した。粒子サイズおよびゼータ電位の測定を、ZetaPals動的光拡散(DLS)装置(Brookhaven Instruments)を用いて、行った。結果を図5に示す。
図2において図示されるように、DNA分解酵素およびRNA分解酵素非含有水中の2μgのプラスミドDNA(0.45μg/μL,4.4μL)を、DNA分解酵素およびRNA分解酵素非含有水中80μLに、希釈した。このプラスミド溶液を、4.89μgのMAP(0.5μg/μL,9.8μL)と混合し、また、DNA分解酵素およびRNA分解酵素非含有水中80μLに希釈して、3+/−の電荷比および0.0125μg/μLの最終プラスミド濃度を得た。得られた混合物を、室温にて30分間にわたってインキュベートした。この溶液に、480μgのボロン酸PEG5K(化合物6;実施例6)、(20μg/μL,24μL)を加えた。次いで、この混合物を、さらに30分間インキュベートし、DNA分解酵素およびRNA分解酵素非含有水中で、0.5mL 100,000MWCO膜(BIOMAX,Millipore Corporation)を用いて2回透析し、DNA分解酵素およびRNA分解酵素非含有水160μL中で再構築した。この溶液の半分を、ゼータ電位測定のために、1.4mLの1mM KClで希釈した(図6)。BA含有ナノ粒子のゼータ電位は、これを含まないナノ粒子よりも低いゼータ電位を示したことに、留意されたい。これらの結果は、BA含有ナノ粒子は、ナノ粒子の外側にBAを局在させるという結論を、支持する。もう半分を、粒子サイズを測定するために用いた。粒子サイズを、10.2μLの10X PBSを添加して最終的に1X PBS中90.2μLの溶液を得た後の5分間について、毎分測定した。次いで、図7に示されるように、粒子サイズを、別の10分間にわたって、毎分測定した。非粒子構成要素から(濾過によって)分離されたBA含有ナノ粒子は、PBS中で安定であるが、BAを有さない粒子は、安定ではない。これらの結果は、BA含有ナノ粒子は、PBS中で凝集に対し安定的であるので、その外側に局在するBAを有するという結論を、支持する。
HeLa細胞を、トランスフェクションの48時間前に、ウェルあたり20,000個の細胞で、24ウェルプレート内にまき、10% FBSを補充した培地中で成長させた。MAP粒子を、1μgのpGL3を200μLのOpti−MEM I中に、種々のポリマー対pDNAの電荷比で含むように処方した(実施例9を参照されたい)。成長培地を除去し、細胞をPBSで洗浄し、そして粒子処方物を加えた。その後、細胞を、37℃、5% CO2にて5時間インキュベートした後、800μLの10% FBSを補充した成長培地を加えた。48時間のインキュベーションの後、細胞の画分を、MTSアッセイを用いた細胞生存率について分析した。残った細胞を、100μLの1Xルシフェラーゼ培養細胞溶解試薬中で溶解した。ルシフェラーゼ活性を、10ulの細胞溶解物に100μLのルシフェラーゼアッセイ試薬を加えることによって決定し、生物蛍光を、Monolight luminometerを用いて定量した。その後、ルシフェラーゼ活性を、10,000個の細胞あたりの相対光単位(RLU)として報告する。結果を、図8および図9に示す。
HeLa細胞を、トランスフェクションの48時間前に、ウェルあたり20,000個の細胞で、24ウェルプレート内にまき、10% FBSを補充した培地中で成長させた。MAP粒子を、1μgのpGL3および50nMのsiGL3を、5+/−の電荷比で200μLのOpti−MEM I中に含むように処方した。pGL3又はpGL3およびsiCONのみを含む粒子を、対照として使用した。成長培地を除去し、細胞をPBSで洗浄し、そして粒子処方物を加えた。その後、細胞を、37℃、5% CO2にて5時間インキュベートした後、800μLの10% FBSを補充した成長培地を加えた。48時間のインキュベーション後、細胞を、ルシフェラーゼ活性および細胞生存率について、実施例12に記載したようにアッセイした。結果は図10に示される。RLUは、siGL3(正しい配列)によるトランスフェクションにおいてより低く、siGL3およびpGL3の両方が、同時送達されなければならない。
HeLa細胞を、トランスフェクションの48時間前に、ウェルあたり20,000個の細胞で、24ウェルプレート内にまき、10% FBSを補充した培地中で成長させた。MAP粒子を、50および100nMのsiGL3を、5+/−の電荷比で200μLのOpti−MEM I中に含むように処方した。成長培地を除去し、細胞をPBSで洗浄し、そして粒子処方物を加えた。その後、細胞を、37℃、5% CO2にて5時間インキュベートした後、800μLの10% FBSを補充した成長培地を加えた。48時間のインキュベーション後、細胞を、ルシフェラーゼ活性および細胞生存率について、実施例12に記載したようにアッセイした。結果は図11に示される。RLUは、siGL3の濃度の上昇に伴って低下するので、これらのデータは、内在性遺伝子の疎外が起こり得ることを示唆する。
1g(2.7mmol)のムチン酸ジアミン(実施例3)を、3.8mL(27.4mmol)のトリエチルアミンおよび50mLの無水DMFと混合し、その後、1.2mL(13.7mmol)ヨードアセチルクロリドの滴下を、250mL丸底フラスコにおいて行った。この混合物を、絶え間なく撹拌しながら、室温で一晩反応させた。その後、この溶媒を、バキュームポンプによって除去し、生成物を濾過し、メタノールで洗浄し、真空下で乾燥させて、0.8g(1.3mmol,46%)のムチン酸ジヨージドを得た。1H NMR((CD3)2SO)δ 8.20(s 2H),2H),7.77(s,2H),4.11(m,2H),4.03(m,2H),3.79(m,2H),3.11−3.17(m,2H),1.78(d,2H).ESI/MS(m/z):652.8[M+Na]+
7mLの0.1M脱気炭酸ナトリウムを、17mgのL−システインおよび0.4gのムチン酸ジヨージドに加えた。得られた懸濁液を、150℃で5時間にわたり、溶液が透明になるまで還流させた。次いで、この混合物を、室温まで冷やし、1N HClでpH 3に調整した。次いで、アセトンのゆっくりした添加を、生成物の析出のために行った。濾過、アセトンによる洗浄、およびバキューム乾燥の後、60mgの粗生成物を得た。
20mLの、pH 7.5における50mL丸底フラスコ中の0.1M脱気リン酸ナトリウム緩衝液を、0.38gのL−システイン(3.2mmol)および0.40g(0.6mmol)のムチン酸ジヨージドに加えた。得られた懸濁液を、75℃にて一晩還流させ、室温まで冷やして、凍結乾燥させた。その後、80mLのDMFを、この凍結乾燥した明るい茶色の粉末に加え、不溶性の過剰な試薬およびリン酸塩の可溶の生成物からの分離を、濾過によって達成した。DMFを、減圧下で除去し、そしてこの生成物をバキューム乾燥して、12mg(0.02mmol,3%)のムチン酸ジシステインを得た。
12mg(21.7μmol)のムチン酸ジシステインおよび74mg(21.7μmol)のPEG−DiSPA 3400を、真空下で乾燥させ、その後、0.6mLの無水DMSOを、アルゴン下で、2首10mL丸底フラスコにおいて加えた。10分間の撹拌の後、9μL(65.1μmol)の無水DIEAを、アルゴン下で反応容器に移した。この混合物を、アルゴン下で一晩撹拌した。次いで、このポリマー含有溶液を、10kDa膜遠心分離機を用いて透析し、そして凍結乾燥して、47mg(58%)のポリ(ムチン酸−DiCys−PEG)を得た。
10mg(2.7μmolの反復単位)のポリ(ムチン酸−DiCys−PEG)を、ガラス瓶内の1.5mLの無水DMSO中に溶解した。10分間の撹拌の後、1.1μLのDIEA(6.3μmol)、3.3mg(6.3μmol)のTFA−Gly−CPT、1.6mg(8.1μmol)のEDCおよび0.7mg(5.9μmol)のNHSを、反応混合物に加えた。8時間にわたる撹拌の後、1.5mLのエタノールを加え、溶媒を減圧下で除去した。析出物を、水中に溶解し、そして不要な物質を、0.2μmフィルターを通した濾過によって除去した。次いで、ポリマー溶液を、10kDa膜を介して水に対して透析し、その後、凍結乾燥して、ポリ(ムチン酸−DiCys−PEG)−CPT結合体を得た。
ポリ(ムチン酸−DiCys−PEG)およびポリ(ムチン酸−DiCys−PEG)−CPT結合体の有効な径を、このポリマーを再蒸留水中に処方し(0.1〜10mg/mL)、ZetaPALS(Brookhaven Instrument Co)装置を用いた動的光拡散(DLS)を介して評価した。各1分間の連続3回のランを、その後記録し、平均化した。両化合物のゼータ電位を、1.1mM KCl溶液中で、ZetaPALS(Brookhaven Instrument Co)装置を用いて測定した。次いで、0.012の標的残余における連続10回の自動化したランを行い、結果を平均化した(図4)。詳細には、これらの2つの分布を、ポリ(ムチン酸−DiCys−PEG)−CPT結合体について測定し、主要な分布は、57nm(全粒子集団の60%)であった。2番目に少ない分布もまた、233nmにおいて測定される。
ボロン酸ペグ化ポリ(ムチン酸−DiCys−PEG)−CPTナノ粒子を、このポリマーを再蒸留水中に0.1mg/mLの濃度に溶解し、その後、やはり水中のポリマー6(BA−PEG)を添加して、ポリ(ムチン酸−DiCys−PEG)−CPT結合体におけるムチン酸糖上のPBA−PEG対ジオールの比を1:1にする。この混合物を、30分間にわたってインキュベートし、その後、有効な径およびゼータ電位を、ZetaPALS(Brookhaven Instrument Co)装置を用いて測定する。
プラスミドpApoE−HCRLucは、ルシフェラーゼを発現する遺伝子を含み、肝臓特異的プロモーターの制御下にある。ポリマー(MAP)4(0.73mg)、ポリマー6(73mg)およびポリマー9(0.073mg)を、5mLの水中で合わせ、次いで、1.2mLのpApoE−HCRLucプラスミド含有水を、添加した(+3のポリマー4対プラスミドの電荷比を得る)。この粒子を、連続的スピン濾過およびその後のD5Wの添加によって、D5W(水中5%グルコース)中に置いた(水中にある開始処方物から始める)。ヌードマウスに、Hepa−1−6肝癌細胞を移植し、腫瘍を、約200mm3の大きさになるまで増殖させた。標的化ナノ粒子の注射を、5mg/プラスミドkgマウスに等しい量で、尾静脈においてi.v.で行った。マウスを、注射の24時間後に画像化した。マウスは、毒性の兆候を示さず、腫瘍の領域においてルシフェラーゼ発現が検出され、肝臓の領域では検出されなかった。
安定化した標的化ナノ粒子を調製するため、ボロン酸とMAPとの間の可逆的共有結合特性を用いた。フェニルボロン酸(PBA)のpKaは、8.8の高さである。pKaを低下させるため、フェニル環において電子吸引性基を有するPBAを、ホウ素原子の酸性度を増すために使用した。市販の3−カルボキシPBAおよび3−カルボキシ5−ニトロPBAを、塩化オキサリルを用いて塩化アシルに変換した。次いで、これらの塩化アシル種を、NH2−PEGと反応させて、PBA−PEGおよびニトロPBA−PEGをそれぞれ形成した。DMFおよびDIPEAの塩基の付加は、合成反応を進めるために必要であった。しかし、これらの塩基の存在は、酸性のPBAによって四面体付加物形成を生じた。これらの付加物を除くため、0.5N HClにおける作業およびその後の水に対する透析による中性pHへの平衡化を、行った。
ニトロPBA−PEGの生成後、得られた化合物を、抗体に結合体化させた。結合体化のために、36mg(6.4μM)のニトロPBA−PEG−CO2H,12.3mg(64μM)の1−エチル−3−(3−ジメチルアミノプロピル)カルボジイミド(EDC)および11.1mg(96μM)のNHSを、2.4mlの0.1M MES緩衝液、pH 6.0中に溶かした。この混合物を、15分間にわたって、室温にてロータリーシェイカー上で反応させた。過剰な反応物を、3kDa分子量カットオフ膜フィルターデバイス(Amicon(商標))によって透析して除いた。この活性型カルボン酸PEG化合物を、0.1M PBS,pH 7.2中20mg(0.14mM)のヒトIgG1抗体(Herceptin(登録商標))に添加した。反応を、回転シェイカー上で、室温で2時間行い、次いで、50kDa分子量カットオフ膜フィルターデバイス(Amicon(商標))を用いて1x PBSに対してpH 7.4にて4回透析した。質量分析による(MALDI−TOF)は、1つの抗体あたり平均1〜2個のニトロPBA−PEG化合物の結合体を示した。
ナノ粒子処方および安定性におけるPBA−PEGおよびニトロPBA−PEGの効果を、試験した。PBA−PEGの溶液を、MAPの溶液に、3+/−の電荷比(siRNA由来の負電荷あたりのMAP由来の正電荷)にて、pH 7.4のリン酸緩衝液中で加えた。この混合物を、PBA−PEGとジオール含有MAPとの錯体形成のために、室温に10分間にわたって静置した。次いで、これを、等容量の水中siRNAに加え、ピペッティングにより混合した。10分間後、試験および性質決定を行った。粒子の処方物を、ニトロPBA−PEGにて安定化し、異なる電荷比を同じ様式で行った。PBA−PEGの複合体形成は、150〜300nmの大きさのMAP/siRNA粒子を形成した。MAP−4(電荷中心(アミジン)と結合部位(ポリオール)との間の4つのメチレン単位を示す)は、MAP−2が使用された場合よりも小さなナノ粒子をもたらした。しかし、塩の添加の際、凝集した全ての粒子が、PBA−PEGがナノ粒子に充分な安定性を与えられないことを示した。ニトロPBA−PEGを使用した場合、試験した全ての電荷比、1および3(+/−)において、粒子は、安定化したナノ粒子を実証した。PBA−PEGとニトロPBA−PEGとによって付与された粒子安定性における相違は、ペグ化ボロン酸化合物をポリオールに対するより強い結合を有するよう改変することの重要性を示す。
標的化MAP−CPTナノ粒子を調製するため、ボロン酸とMAP(ジオール含有)との間の可逆的共有結合特性を用いた。PBAとMAPとの間の結合定数は、約20M−1の低さである。結合定数を増大させるため、フェニル環において電子吸引性基を有するPBAを、ホウ素原子の酸性度を増し、MAPの結合定数を評価するために使用した。市販の3−カルボキシPBAおよび3−カルボキシ5−ニトロPBAを、塩化オキサリルを用いて塩化アシルに変換した。次いで、これらの塩化アシル種を、NH2−PEG−CO2Hと反応させて、PBA−PEG−CO2HおよびニトロPBA−PEG−CO2Hをそれぞれ形成した。DMFおよびDIPEAの塩基の付加は、合成反応を進めるために必要であった。しかし、これらの塩基の存在は、酸性のPBAによって四面体付加物形成を生じた。これらの付加物を除くため、0.5N HClにおける作業およびその後の水に対する透析による中性pHへの平衡化を、行った。
HER2を過剰発現するヒト乳癌細胞株(BT−474)を、Herceptin(登録商標)標的化MAP−CPTナノ粒子対非標的化ナノ絵融資の細胞取り込みを試験するために使用した。HER2ネガティブな乳癌細胞株(MCF−7)を、ネガティブ対照として使用した。これらの研究のために、24ウェルプレートに、それぞれBT−474(10%ウシ胎仔血清を補ったRPMI−1640培地中)又はMCF−7(10%ウシ胎仔血清を補ったダルベッコ改変イーグル培地)(Cellgro,Manassas,VA)を、ウェルあたり20,000個の細胞でまき、5% CO2を有する湿潤化オーブン内で37℃に保った。40時間後、培地を、0.3mlの新鮮な培地と入れ替えた。培地はそれぞれ、培地MAP−CPT(40μg CPT/ml)、遊離のHerceptin(登録商標)を10mg/mlで含む培地MAP−CPT、種々の標的密度での標的化MAP−CPT(40μg CPT/ml)又は遊離のHerceptin(登録商標)を10mg/mlで含む標的化MAP−CPT含んだ。トランスフェクションを、30分間にわたって37℃にて実施した。処次いで、処方物を除去し、細胞を冷PBSで2回洗浄した。細胞の脱着および溶解のために、1ウェルあたり200μlのRIPA緩衝液を加えた。次いで、溶解した細胞を、4℃にて15分間にわたってインキュベートし、14,000gにて10分間にわたり4℃にて遠心分離した。上清の一部を、BCAアッセイによるタンパク質定量のために用いた。別のタンパク質に、等量の0.1N NaOHを加え、室温で一晩インキュベートして、蛍光を370/440nmにて、既知の濃度のMAP−CPTを標準として用いて測定した。
短型、中型、長型MAP−CPTナノ粒子および標的化MAP−CPTナノ粒子からのCPTの放出を評価する実験を行った。これらの研究を、1x PBS中0.32mg CPT/ml(pH 6.5,7又は7.4);3mg/mlの低密度リポタンパク質(LDL)を含むBALB/cマウス血漿、ヒト血漿、および1x PBS(pH 7.4)、又は100単位/mlのブチリルコリンエステラーゼ(BCHE)又はLDLとBCHEとの組み合わせを用いて行った。
中型MAP、ニトロPBA−PEG、CPT、中型MAP−CPTナノ粒子、標的化MAP−CPTナノ粒子およびHerceptin(登録商標)のインビトロ細胞毒性を、2つのHER2+乳癌細胞株(BT−474,SKBR−3)および2つのHER2−乳癌細胞株(MCF−7,MDA−MB−231)において評価した(表5)。これらの研究のために、5% CO2を有する湿潤化オーブン内で、細胞を37℃に保った。BT−474、MCF−7、SKBR−3およびMDA−MB−231細胞株を、RPMI−1640培地、ダルベッコ改変イーグル培地、McCoy’s 5A改変培地、並びにダルベッコ改変イーグル培地において、それぞれインキュベートした(全て、10%ウシ胎仔血清を補った)。ウェルあたり3,000この細胞を、96ウェルプレートにプレート培養した。24時間後、培地を除去し、種々の濃度の中型MAP、ニトロPBA−PEG、CPT、中型MAP−CPTナノ粒子、標的化MAP−CPTナノ粒子又はHerceptin(登録商標)新鮮な培地と置き換えた。72時間のインキュベーション後、処方物を、新鮮な培地と置き換え、20μlのCellTiter 96(登録商標)AQueous One Solution細胞増殖アッセイ(Promega)を、ウェルあたりに加えた。これを、2時間にわたって37℃にて5% CO2の湿潤化オーブン内でインキュベートし、その後、490nmにて吸光度の測定を行った。未処理細胞を含むウェルを、対照として用いた。
短型、中型および長型のMAP−CPTナノ粒子および標的化MAP−CPTナノ粒子の、10mg/kg(CPTに基づく)注射における血漿薬物動態学研究を、雌BALB/cマウスにおいて行った(図18)。これらの研究のために、0.9wt% NaCl(非標的化ナノ粒子)又はPBS(標的化MAP−CPTナノ粒子)中に処方されたナノ粒子を、ボーラス尾静脈注射を介して、12〜16週齢の雌BALB/cマウスに投与した。所定の時点で、伏在静脈を介して血液採集管(Microvette CB 300 EDTA,Sarstedt)で血液を採集した。直ちに、サンプルを、10,000g、4℃で、15分間にわたって遠心分離し、上清を取り出し、分析の時点まで−80℃で保存した。未結合体化およびポリマー結合CPTの分析は、以下であった。未結合体化CPTの量を、まず、10μlのサンプルを10μlの0.1N HClと混合し、室温で30分間インキュベートした。次いで、80μlのメタノールを添加し、この混合物を、タンパク質沈殿のために、室温で3時間にわたってインキュベートした。この混合物を、14,000gにて10分間にわたって4℃にて遠心分離し、上清を、0.45μmフィルター(Millex−LH)で濾過し、メタノールで20倍に希釈し、そして得られた溶液の10μlを、HPLCに注入した。溶出したCPT(7.8分にて)のピーク面積を、対照のそれと比較した。CPTの全量を測定するため、10μlのサンプルを、6.5μlの0.1N NaOHと混合した。この溶液を、室温で1時間にわたってインキュベートし、CPTを親ポリマーから放出させた。次いで、10μlの0.1N HClを添加し、カルボキシレートCPT形態をラクテート状態に変換した。その後、73.5μlのメタノールを添加し、そして混合物を、3時間にわたって室温でインキュベートした。次いで、サンプルを遠心分離し、上のように処理した。ポリマー結合CPT濃度を、全CPT濃度と未結合体化CPT濃度との差から決定した。Summit Research Services(Montrose,CO)によるNon−compartmentalモデリングソフトウェアPK Solutions 2.0を、薬物動態学データ分析のために使用した。全ての動物を、National Institute of Health Guidelines for Animal Careによって処理し、California Institute of Technology Institutional Animal Care and Use Committeeによる認可を得た。
MTD値を、雌Ncrヌードマウスにおいて決定し、15%未満の体重減少を伴い且つ処置関連の死をもたらさない最高の用量として規定した。これらの実験において、12週齢の雌NCrヌードマウスを、無作為に、各郡5匹を含む13の群に分けた。処方物中型MAP又はニトロPBA−PEGを200mg/kg、短型MAP−CPTナノ粒子を10、15又は20mg/kg(CPTに基づく)、中型MAP−CPTナノ粒子を8、10又は15mg/kg(CPTに基づく)、長型MAP−CPTナノ粒子を5、8又は10mg/kg(CPTに基づく)および標的化MAP−CPTナノ粒子を8又は10mg/kg(CPTに基づく)、0日目および7日目に、尾静脈の静脈内注射を介して投与した。標的化MAP−CPTを除く全ての注射を、0.9w/v%生理食塩水中に処方し、標的化MAP−CPTを、PBS,pH 7.4中に処方した。処置の開始から2週間にわたり、マウスの体重および健康を記録し、モニタリングした。MTDを、15%未満の体重減少を伴い且つ処置関連の死をもたらさない最高の用量として規定した。動物を、MTDについての基準を超えたか、又は研究の最後に、CO2窒息によって安楽死させた。
マウスおいて標的化ナノ粒子の生体分布を評価するために、7週齢のNCrヌードマウスに、17β−エストラジオールペレットを皮下移植した。2日後、RPMI−1640培地中に浮遊させたBT−474癌種細胞を、右前脇腹に、1000万細胞/動物で皮下注射した。処置を、腫瘍が260mm3の平均サイズに達した後に開始した。動物を、各群6匹の2つの群に無作為化し、尾静脈に静脈内注射によって、5mg CPT/kgのMAP−CPTナノ粒子(PBS中,pH 7.4)又は5mg CPT/kgの標的化MAP−CPTナノ粒子および29mgのHerceptin(登録商標)/kg(PBS中,pH 7.4)で処置した。4時間後および24時間後、各群のこれらの動物から、伏在静脈出血を介して血液を採集した。次いで、動物をCO2窒素によって安楽死させ、PBSに浸した。腫瘍、肺、心臓、脾臓、腎臓および肝臓を回収し、2つの同じ大きさの片に切り分けた。1片を、Tissue−Tek(登録商標)OCT(Sakura)中に包埋し、他をエッペンドルフ管に収集し、その両方を、直ちに−80℃にて、処理の時点まで凍らせた。
BT−474腫瘍保有Ncrヌードマウスを、MAP−CPT(5mg CPT/kg)又は標的化MAP−CPT(5mg CPT/kg,29mgハーセプチン/kg)のいずれかによって処置した。4時間および24時間後、マウスを安楽死させ、そして腫瘍を切除し、クライオスタットを用いて、20〜30μm厚の切片にした。腫瘍切片を、Superfrost Plusスライドガラス(Fisher Scientific,Hampton,NH)上に置き、−80℃にて処理の時点まで保存した。スライドガラスを解凍し、組織切片を、スライドガラス上で、10%ホルマリン溶液で15分間にわたり直接固定した。次いで、このスライドガラスを、PBSで各5分間3回洗浄し、5%ヤギ血清ブロッキング緩衝液中で1時間にわたりブロックした。CPTは、440nmにおける発光で、天然に蛍光を発する。MAPの位置を同定するため、MAP内のPEGを、内部PEG単位を認識するラット抗PEG一次抗体で14μg/mlにて染色し、4℃で一晩インキュベートした。この後、3回のPBS洗浄および2μg/mlのAlexa Fluor(登録商標)488ヤギ抗ラットIgM二次抗体と共に1時間のインキュベーションを行った。次いで、このスライドガラスを、PBSで3回洗浄し、2μg/mlのAlexa Fluor(登録商標)633ヤギ抗ヒトIgG二次抗体と共に1時間にわたってインキュベートして、Herceptin(登録商標)を可視化した。このスライドガラスを、PBSでさらに3回洗浄し、Prolong Gold Antifade試薬でマウントして、画像化まで4℃で保存した。画像を、Zeiss LSM 510 Meta共焦点顕微鏡(Carl Zeiss,Germany)で、63x Plan−Neofluar oil対物レンズを用いて撮影した。720nmにおける2−光子励起(発光フィルターBP 390−465nm)を用い、CPTを検出した。488nmにおける励起(発光フィルターLP 530)および633nm(発光フィルターBP 645−700nm)を用いて、それぞれPEGおよびハーセプチンを検出した。全てのレーザーおよび獲得設定を、画像化の最初に設定し、変更しなかった。画像分析を、Zeiss lsm画像ブラウザにおいて行った。
BT−474は、カンプトテシンを含む抗癌剤に対し最も抵抗性の乳癌の1つである。ヌードマウスにおける腫瘍増殖を促進するために、17β−エストラジオールペレットを、7週齢のNcrヌードマウスに移植し、2日後にBT−474腫瘍細胞移植を行った。0日目(移植の5日後)、各群の腫瘍サイズは、平均250mmであった。処置を、1日目に開始した。動物を、各群6〜8匹ずつ9つの群に無作為化し、以下のいずれかで処置した:MAP−CPTナノ粒子、1mg又は8mg/kg(CPTに基づく、PBS中、pH 7.4);CPT、8mg/kg(20% DMSO,20% PEG 400,30%エタノールおよび30% 10mM pH 3.5リン酸中に溶解);イリノテカン、80mg/kg(5w/v%デキストロース溶液,D5W中);Herceptin(登録商標)、2.9又は5.9mg/kg(PBS中,pH 7.4);標的化MAP−CPTナノ粒子、CPT/kgおよび2.9mg Herceptin(登録商標)/kg、又は1mg CPT/kgおよび5.9mg Herceptin(登録商標)/kg(PBS中,pH 7.4);又は生理食塩水。全ての処置を、新鮮に調製し、尾静脈の静脈内注射を介して与えた。注射を、マウスの体重20gあたり150μlにて正規化した。Herceptin(登録商標)を含む処置を、1週間に1度2週間与え、全ての他の群を、1週間に1度3週間与えた。腫瘍サイズを、ノギス測定(長さ×幅2/2)を用いて週に3回記録し、動物の健康を、連続的にモニタリングした。動物を、腫瘍体積が1000mm3を超えたときに安楽死させた。処置の開始から6週間後、動物を、CO2窒息によって安楽死させた。この研究の結果を、図21および表7に示す。
Claims (51)
- ポリオール含有ポリマーおよびニトロフェニルボロン酸含有ポリマーを含むナノ粒子であって、
前記ニトロフェニルボロン酸含有ポリマーは、可逆的共有結合によって前記ポリオール含有ポリマーと結合しており、そして
前記ナノ粒子が、前記ニトロフェニルボロン酸含有ポリマーが前記ナノ粒子の外部の環境に存在するように構成される、前記ナノ粒子。 - 前記ポリオール含有ポリマーは、以下の構造単位の少なくとも1つ以上を含み:
Aは、以下の式の有機部分であり:
R1およびR2は、約10kDa以下の分子量を有する任意の炭素ベースの基又は有機基から独立して選択され;
Xは、−H、−F、−C、−N又は−Oの1つ以上を含む脂肪族基から選択され;且つ
Yは、−OH又は−OHを提示する有機部分から独立して選択され、
且つ
Bは、第1の前記A部分のR1およびR2の1つを第2の前記A部分のR1およびR2の1つに連結してポリマーにする有機部分である、請求項1に記載のナノ粒子。 - R1およびR2は、独立して以下の式を有し:
dは、0〜100であり;
eは、0〜100であり;
fは、0〜100であり;
Zは、ある有機部分を他の有機部分に連結する共有結合であり;且つ
Z1は、−NH2、−OH、−SHおよび−COOHから独立して選択される、請求項2に記載のナノ粒子。 - 式中、
Xは、CnH2n+1であり、ここで、nは、0〜5であり;且つ
式中、
Yは、−OHである、請求項2又は3に記載のナノ粒子。 - Aは、以下:
式中、
スペーサーは、任意の有機基から独立して選択され、
アミノ酸は、遊離のアミン基および遊離のカルボン酸基を有する任意の有機基から選択され;
nは、1〜20であり;且つ
Z1は、−NH2、−OH、−SHおよび−COOHから独立して選択される、請求項2〜4のいずれか1項に記載のナノ粒子。 - 前記Aが、以下:
- 前記Bが、以下:
qは、1〜20であり;
pは、20〜200であり;且つ
Lは、脱離基である、請求項2〜6のいずれか1項に記載のナノ粒子。 - 式(I)の構造単位は、以下である、請求項2に記載のナノ粒子。
- 式(II)の構造単位は、以下である、請求項2に記載のナノ粒子。
- 式(III)の構造単位は、以下:
nは、1〜20である、請求項2に記載のナノ粒子。 - 前記ポリオール含有ポリマーが、以下である、請求項1に記載のナノ粒子。
- 前記ポリマーが、少なくとも1つの末端ニトロフェニルボロン酸基を含み且つ以下の一般式を有し:
R3およびR4は、独立して親水性有機ポリマーであり、
X1は、−C、−N又は−Bの1つ以上を含有する有機部分であり、
Y1は、1つ以上のニトロ基を有するフェニル基であり、
rは、1〜1000であり、
aは、0〜3であり、且つ
bは、0〜3である
ニトロフェニルボロン酸を含有する、請求項1〜11のいずれか1項に記載のナノ粒子。 - R3およびR4は(CH2CH2O)tであり、ここで、tは2〜2000である、請求項12に記載のナノ粒子。
- X1は−NH−C(=O)−、−S−S−、−C(=O)−NH−、−O−C(=O)−又は−C(=O)−O−であり、且つY1は1つ以上のニトロ基を有するフェニル基である、請求項12又は13に記載のナノ粒子。
- r=1、a=0およびb=1である、請求項12〜14のいずれか1項に記載のナノ粒子。
- 官能基1および官能基2は、同じであるか又は異なっており、且つ−B(OH)2、−OCH3、−OHから独立して選択される、請求項12〜15のいずれか1項に記載のナノ粒子。
- 前記ニトロフェニルボロン酸含有ポリマーが、以下:
式中、s=20〜300である、請求項12〜16のいずれか1項に記載のナノ粒子。 - 化合物をさらに含み、前記化合物が、前記ポリオール含有ポリマーおよび/又はニトロフェニルボロン酸含有ポリマーの一部を形成する、請求項1〜17のいずれか1項に記載のナノ粒子。
- 化合物をさらに含み、前記化合物が、前記ポリオール含有ポリマーおよび/又はニトロフェニルボロン酸含有ポリマーに結合している、請求項1〜17のいずれか1項に記載のナノ粒子。
- 化合物をさらに含み、前記化合物が、治療剤である、請求項1〜19のいずれか1項に記載のナノ粒子。
- 前記治療剤が、低分子化学療法剤又はポリヌクレオチドである、請求項20に記載のナノ粒子。
- 前記ポリヌクレオチドが、干渉RNAである、請求項21に記載のナノ粒子。
- 1つ以上の化合物をさらに含み、ここで少なくとも1つの化合物が、標的リガンドである、請求項1〜22のいずれか1項に記載のナノ粒子。
- 前記標的リガンドは、タンパク質、アプタマー、低分子、抗体又は抗体断片である、請求項23に記載のナノ粒子。
- 前記標的リガンドは、1つの単一抗体である、請求項23又は24に記載のナノ粒子。
- 前記1つの単一抗体は、前記ニトロフェニルボロン酸含有ポリマーの末端部分に結合体化される、請求項25に記載のナノ粒子。
- 前記標的リガンドは、トランスフェリン、タンパク質、アプタマー、低分子、抗体、又は抗体断片から選択され、且つ前記ナノ粒子は、カンプトテシン、エポチロン、タキサンもしくはポリヌクレオチド又はこれらの任意の組み合わせから選択される治療剤をさらに含む、請求項23に記載のナノ粒子。
- 請求項1〜27のいずれか1項に記載のナノ粒子並びに好適なビヒクルおよび/又は賦形剤を含む、組成物。
- 前記組成物は、製薬組成物であり、且つ前記好適なビヒクルおよび/又は賦形剤は、製薬的に受容可能なビヒクルおよび/又は賦形剤である、請求項28に記載の組成物。
- 前記ナノ粒子は、少なくとも1つのニトロフェニルボロン酸含有ポリマーの一部として10Bをさらに含み、前記組成物は、インビボホウ素中性子活性化療法のために処方されている、請求項29に記載の組成物。
- 標的に化合物を送達する方法であって、前記標的を請求項1〜27のいずれか1項に記載のナノ粒子と接触させることを含む、前記方法。
- 前記標的は、哺乳動物の体内にある癌細胞である、請求項31に記載の方法。
- 標的に化合物を送達するシステムであって、前記標的に前記化合物を送達するために使用される請求項1〜27のいずれか1項に記載のナノ粒子を含む、前記システム。
- 個体に化合物を投与する方法であって、さらに前記化合物を含む請求項1〜27のいずれか1項に記載のナノ粒子を前記個体に投与することを含む、前記方法。
- 個体に化合物を投与するためのシステムであって、前記システムは、可逆的共有結合を介して相互結合可能な少なくとも1つのポリオール含有ポリマーおよび少なくとも1つのニトロフェニルボロン酸含有ポリマーを含み、前記少なくとも1つのポリオール含有ポリマーおよび少なくとも1つのニトロフェニルボロン酸含有ポリマーは、請求項1〜27のいずれか1項に記載のナノ粒子中に前記化合物と共に集められて前記個体に投与される、前記システム。
- 以下の式:
R3およびR4は、独立して親水性有機ポリマーであり、
X1は、−CH、−N又は−Bの1つ以上を含有する有機部分であり、
Y1は、1つ以上のニトロ基を有するフェニル基であり、
rは、1〜1000であり、
aは、0〜3であり、且つ
bは、0〜3である
ニトロフェニルボロン酸を含有するポリマー。 - R3およびR4は独立して(CH2CH2O)tであり、ここで、tは2〜2000である、請求項36に記載のポリマー。
- X1は−NH−C(=O)−、−S−S−、−C(=O)−NH−、−O−C(=O)−又は−C(=O)−O−であり、且つY1はニトロフェニフェニル基である、請求項36又は37に記載のポリマー。
- rは1、aは0且つbは1である、請求項36、37又は38に記載のポリマー。
- 官能基1および官能基2は、同じであるか又は異なっており、且つ−B(OH)2、−OCH3、−OHから独立して選択される、請求項36〜39のいずれか1項に記載のポリマー。
- 標的リガンドをさらに含む、請求項36〜40のいずれか1項に記載のポリマー。
- 前記標的リガンドは、抗体である、請求項41に記載のポリマー。
- 前記標的リガンドは、1つの単一抗体である、請求項41に記載のポリマー。
- 前記抗体は、前記ニトロフェニルボロン酸含有ポリマーの末端部分に結合体化される、請求項41又は42に記載のポリマー。
- 前記ポリオール含有ポリマーを前記ニトロフェニルボロン酸含有ポリマーとカップリングさせることが可能な時間および条件下で、前記ポリオール含有ポリマーを前記ニトロフェニルボロン酸含有ポリマーと接触させることを含む、請求項1〜27のいずれか1項に記載のナノ粒子を調製する方法。
- 前記ナノ粒子が、前記ニトロフェニルボロン酸含有ポリマーが前記ナノ粒子の外部の環境に存在するように構成される、請求項45に記載の方法。
- 前記ポリオール含有ポリマーは、ムチン酸ポリマーである、請求項45又は46に記載の方法。
- 前記ニトロフェニルボロン酸含有ポリマーが、以下:
式中、s=20〜300である、請求項45〜47のいずれか1項に記載の方法。 - ポリオール含有ポリマーを含むナノ粒子、ニトロフェニルボロン酸含有ポリマー、並びに前記ポリオール含有ポリマーを含むナノ粒子とニトロフェニルボロン酸含有ポリマーとを結合体化させる方法についての指示書を含む、請求項1〜27のいずれか1項に記載のナノ粒子を生成ためのキット。
- 前記ポリオール含有ポリマーは、ムチン酸ポリマーである、請求項49に記載のキット。
- 前記ニトロフェニルボロン酸含有ポリマーは、以下:
式中、s=20〜300である、請求項49又は50に記載のキット。
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