JP2016163549A - マイクロウェルプレート、マイクロウェル装置、細胞解析方法及びマイクロウェルプレートの製造方法 - Google Patents
マイクロウェルプレート、マイクロウェル装置、細胞解析方法及びマイクロウェルプレートの製造方法 Download PDFInfo
- Publication number
- JP2016163549A JP2016163549A JP2015044934A JP2015044934A JP2016163549A JP 2016163549 A JP2016163549 A JP 2016163549A JP 2015044934 A JP2015044934 A JP 2015044934A JP 2015044934 A JP2015044934 A JP 2015044934A JP 2016163549 A JP2016163549 A JP 2016163549A
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- microwell
- cell
- compartment
- microwell plate
- mold
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Landscapes
- Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
【課題】本発明は、多数の細胞を１細胞毎に個別にアッセイ試薬と反応させ解析することができる、マイクロウェルプレート及びマイクロウェル装置を提供することを目的とする。また、本発明は、本発明のマイクロウェル装置を用いて、簡便に多数の細胞を１細胞毎に分離して高感度に解析することができる、細胞解析方法を提供することを目的とする。さらに、本発明は、本発明のマイクロウェルプレートを安定的に得ることができる、マイクロウェルプレートの製造方法を提供することを目的とする。【解決手段】本発明のマイクロウェルプレートは、前記マイクロウェルが、１個の細胞を補足する第１区画と、該第１区画に連通して設けられる第２区画とを備え、前記第２区画の容積が、前記第１区画の容積より大きく、前記連通は、前記第１区画に補足された細胞が、第２区画に落下しないように構成されることを特徴とする。【選択図】図３
Description
本発明は、マイクロウェルプレート、マイクロウェルプレートの製造方法、マイクロウェル装置、及びマイクロウェル装置を用いた細胞解析方法に関する。
従来、遺伝子やタンパク質の解析には、多数の細胞を含んだ試料を用いて解析する手法が多く採用されている。しかしながら、同じ組織から採取した細胞集団の中にも、多様な細胞が含まれることから、細胞１個１個の遺伝子またはタンパク質の挙動を解析することが望まれ、斯かる解析が可能な１細胞解析用のデバイスの開発が期待されている。
斯かるニーズに対応して、マイクロチャンバーアレイ技術を用いて、細胞を１細胞ごとに分離して、遺伝子増幅反応を行う技術が開発されてきている（例えば、非特許文献１）。
しかしながら、複雑な流体制御機構を採用しているため、１チップ上で解析可能な細胞数は１００程度にとどまっている。
斯かるニーズに対応して、マイクロチャンバーアレイ技術を用いて、細胞を１細胞ごとに分離して、遺伝子増幅反応を行う技術が開発されてきている（例えば、非特許文献１）。
しかしながら、複雑な流体制御機構を採用しているため、１チップ上で解析可能な細胞数は１００程度にとどまっている。
がん細胞の多様性の解明に向けたシングルセル解析、実験医学、２０１４年、Ｖｏｌ．３２、Ｎｏ．１２、１１０−１１６
本発明は、多数の細胞を１細胞毎に個別にアッセイ試薬と反応させ解析することができる、マイクロウェルプレート及びマイクロウェル装置を提供することを目的とする。また、本発明は、本発明のマイクロウェル装置を用いて、簡便に多数の細胞を１細胞毎に分離して高感度に解析することができる、細胞解析方法を提供することを目的とする。さらに、本発明は、本発明のマイクロウェルプレートを安定的に得ることができる、マイクロウェルプレートの製造方法を提供することを目的とする。
本発明のマイクロウェルプレートは、複数のマイクロウェルを備え、前記マイクロウェルが、１個の細胞を補足する第１区画と、該第１区画に連通して設けられる第２区画とを備え、前記第２区画の容積が、前記第１区画の容積より大きく、前記連通は、前記第１区画に補足された細胞が、第２区画に落下しないように構成されることを特徴とする。
本発明のマイクロウェル装置は、（ａ）本発明のマイクロウェルプレートと、（ｂ）前記マイクロウェルプレートの前記第１区画に対向して配置されるカバー部材と、を備えることを特徴とする。
本発明のマイクロウェル装置は、前記マイクロウェルプレートと前記カバー部材との間に画成される流路を更に備えることが好ましい。
本発明の細胞解析方法は、本発明のマイクロウェル装置の前記流路に細胞懸濁液を流入させて、前記マイクロウェルの前記第１区画に１個の細胞を補足させる細胞補足工程と、前記第１区画に補足された細胞の各細胞に由来する成分を、各マイクロウェル内で解析する細胞解析工程と、を含むことを特徴とする。
本明細書において、「細胞解析」とは、ＤＮＡ、ＲＮＡ、タンパク質、ペプチド、脂質、糖質、有機分子化合物（例えば、環境ホルモン、代謝産物）等の細胞に由来する成分を、
解析することを意味する。
解析することを意味する。
本発明のマイクロウェルプレートの製造方法は、請求項１に記載のマイクロウェルプレートの製造方法であって、（ａ）前記マイクロウェルプレートのマイクロウェルの鋳型を、光硬化性樹脂を硬化させて得る鋳型硬化工程と、（ｂ）前記鋳型硬化工程の後に、前記硬化した光硬化性樹脂のまわりに気相蒸着法によりパリレンを蒸着させるパリレン蒸着工程と、（ｃ）前記パリレン蒸着工程の後に、前記パレリンが蒸着した鋳型にシリコーンゴムをキャスティングするキャスティング工程と、（ｄ）前記キャスティング工程の後に、キャスティングされたシリコーンゴムから前記鋳型を離型する離型工程と、を含むことを特徴とする。
本発明によれば、細胞由来の反応阻害物質の影響を低減させ、多数の細胞を１細胞毎に個別にアッセイ試薬と反応させ解析することができる、マイクロウェルプレート及びマイクロウェル装置を提供することができる。また、本発明によれば、本発明のマイクロウェル装置を用いて、簡便に多数の細胞を１細胞毎に高感度に解析することができる、細胞解析方法を提供することができる。さらに、本発明によれば、本発明のマイクロウェルプレートを安定的に得ることができる、マイクロウェルプレートの製造方法を提供することができる。
以下に本発明を実施するための形態を例示する。
（マイクロウェル装置）
以下に、図面を参照しながら本発明の一実施形態に係るマイクロウェル装置について説明する。
図１は、本発明のマイクロウェル装置の一実施形態を示す斜視図である。
図２は、本発明のマイクロウェル装置の一実施形態を説明するための図である。
図１及び図２に示すマイクロウェル装置１は、マイクロウェル配置部分５にマイクロウェル１０を備えるマイクロウェルプレート２と、マイクロウェルプレート２の第１区画８に対向して配置されたカバー部材３と、を備えている。カバー部材３のマイクロウェルプレート２に対向し接する面には、溝７が設けられ、該溝７に連通するように開口４が設けられている。この例では、溝７は、後述するマイクロプレート２の列状に配置されたマイクロウェル１０の少なくとも一部を覆うように、直線状に３本設けられている。マイクロウェルプレート２とカバー部材３との間の溝７に対応する部分に流路６が画成されている。
本実施形態に係る本発明のマイクロウェル装置によれば、細胞を１細胞ごとに簡便に分離することができ、且つ、多数（例えば、１０３個以上）のマイクロウェルを１つのマイクロウェルプレート上に形成することにより、多数の細胞を１細胞毎に解析することができる。
以下に、図面を参照しながら本発明の一実施形態に係るマイクロウェル装置について説明する。
図１は、本発明のマイクロウェル装置の一実施形態を示す斜視図である。
図２は、本発明のマイクロウェル装置の一実施形態を説明するための図である。
図１及び図２に示すマイクロウェル装置１は、マイクロウェル配置部分５にマイクロウェル１０を備えるマイクロウェルプレート２と、マイクロウェルプレート２の第１区画８に対向して配置されたカバー部材３と、を備えている。カバー部材３のマイクロウェルプレート２に対向し接する面には、溝７が設けられ、該溝７に連通するように開口４が設けられている。この例では、溝７は、後述するマイクロプレート２の列状に配置されたマイクロウェル１０の少なくとも一部を覆うように、直線状に３本設けられている。マイクロウェルプレート２とカバー部材３との間の溝７に対応する部分に流路６が画成されている。
本実施形態に係る本発明のマイクロウェル装置によれば、細胞を１細胞ごとに簡便に分離することができ、且つ、多数（例えば、１０３個以上）のマイクロウェルを１つのマイクロウェルプレート上に形成することにより、多数の細胞を１細胞毎に解析することができる。
図示例のマイクロウェル装置１は、直方体の形状であるが、本発明のマイクロウェル装置は、直方体以外の形状であってもよい。
図示例のマイクロウェル装置１は、カバー部材３に開口４を備えているが、本発明のマイクロウェル装置は、開口を備えなくともよい。
図示例のマイクロウェル装置１は、３本の直線状の流路６を備えているが、本発明のマイクロウェル装置１は、流路の本数に制限はない。
図示例のマイクロウェル装置１は、カバー部材３に開口４を備えているが、本発明のマイクロウェル装置は、開口を備えなくともよい。
図示例のマイクロウェル装置１は、３本の直線状の流路６を備えているが、本発明のマイクロウェル装置１は、流路の本数に制限はない。
＜マイクロウェルプレート＞
以下に、図面を参照しながら本発明の一実施形態に係るマイクロウェルプレートについて説明する。
図３は、本発明のマイクロウェル装置の一実施形態を示す、図１のＡ−Ａ線に沿う部分断面の拡大図である。
図４は、本発明のマイクロウェルプレートの一実施形態を示す、光学顕微鏡による図１のＡ−Ａ線に沿う部分断面画像であり、図４（ａ）〜図４（ｊ）は、それぞれ異なる形状の鋳型を用いて作製したマイクロウェルプレートについてのものである。図４（ａ）〜図４（ｊ）のマイクロウェルの第１区画の開口面における直径は、約３０μｍである。
図示例のマイクロウェルプレート２は、表面のマイクロウェル配置部分５に複数のマイクロウェル１０を備えている。マイクロウェル１０は、１個の細胞１１を補足する、図示の例では円柱形の空間とされた第１区画８と、第１区画８に連通して設けられる、第１区画８の容積の３倍以上の容積の、円柱形の空間とされた第２区画９とを備えている。
本実施形態に係る本発明のマイクロウェル装置によれば、細胞を１細胞ごとに簡便に分離することができ、且つ、多数（例えば、１０３個以上）のマイクロウェルを形成することにより、多数の細胞を１細胞毎に解析することができる。
以下に、図面を参照しながら本発明の一実施形態に係るマイクロウェルプレートについて説明する。
図３は、本発明のマイクロウェル装置の一実施形態を示す、図１のＡ−Ａ線に沿う部分断面の拡大図である。
図４は、本発明のマイクロウェルプレートの一実施形態を示す、光学顕微鏡による図１のＡ−Ａ線に沿う部分断面画像であり、図４（ａ）〜図４（ｊ）は、それぞれ異なる形状の鋳型を用いて作製したマイクロウェルプレートについてのものである。図４（ａ）〜図４（ｊ）のマイクロウェルの第１区画の開口面における直径は、約３０μｍである。
図示例のマイクロウェルプレート２は、表面のマイクロウェル配置部分５に複数のマイクロウェル１０を備えている。マイクロウェル１０は、１個の細胞１１を補足する、図示の例では円柱形の空間とされた第１区画８と、第１区画８に連通して設けられる、第１区画８の容積の３倍以上の容積の、円柱形の空間とされた第２区画９とを備えている。
本実施形態に係る本発明のマイクロウェル装置によれば、細胞を１細胞ごとに簡便に分離することができ、且つ、多数（例えば、１０３個以上）のマイクロウェルを形成することにより、多数の細胞を１細胞毎に解析することができる。
＜＜マイクロウェルの数及び配置密度＞＞
上記マイクロウェルプレートにおける前記マイクロウェルの個数は、目的に応じて適宜選択することができるが、１０３個以上であることが好ましい。マイクロウェルの数が１０３個以上であると、１度に十分に細胞解析をすることができる。
上記マイクロウェルプレートにおける前記マイクロウェルの個数は、目的に応じて適宜選択することができるが、１０３個以上であることが好ましい。マイクロウェルの数が１０３個以上であると、１度に十分に細胞解析をすることができる。
＜＜マイクロウェルプレートの材質＞＞
上記マイクロウェルプレートの材質としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、シリコーン樹脂、ポリスチレン、メチルメタアクリレート（ＰＭＭＡ）、ＡＢＳ樹脂（アクリロニトリル・ブタジエン・スチレン共重合合成樹脂）、ポリカーボネート、ガラス、などが挙げられる。これらは１種単独で使用してもよいし、２種以上を併用してもよい。
これらの中でも、シリコーン樹脂のポリジメチルシロキサン（ＰＤＭＳ）は、ソフトリソグラフィ法による作製が可能となる点、弾性率が小さく三次元的な構造を持つ鋳型からも離型が可能な点、透明性が高く光学的な手法による細胞観察が可能となる点、他の弾性透明樹脂に比べ毒性が低い点で有利である。
上記マイクロウェルプレートの材質としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、シリコーン樹脂、ポリスチレン、メチルメタアクリレート（ＰＭＭＡ）、ＡＢＳ樹脂（アクリロニトリル・ブタジエン・スチレン共重合合成樹脂）、ポリカーボネート、ガラス、などが挙げられる。これらは１種単独で使用してもよいし、２種以上を併用してもよい。
これらの中でも、シリコーン樹脂のポリジメチルシロキサン（ＰＤＭＳ）は、ソフトリソグラフィ法による作製が可能となる点、弾性率が小さく三次元的な構造を持つ鋳型からも離型が可能な点、透明性が高く光学的な手法による細胞観察が可能となる点、他の弾性透明樹脂に比べ毒性が低い点で有利である。
−ポリジメチルシロキサン（ＰＤＭＳ）−
上記ポリジメチルシロキサンとしては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、下記式（１）で表されるポリジメチルシロキサン、ポリジメチルシロキサンの両末端、片末端または側鎖のメチル基を他の官能基で置換した変性ポリジメチルシロキサン、分子内に電離放射線硬化性基が導入された変性ポリジメチルシロキサン、ポリエステル変性ポリジメチルシロキサン、ポリエーテル変性ポリジメチルシロキサン、などが挙げられる。これらは１種単独で使用してもよいし、２種以上を併用してもよい。
（式（１）中、ｎは０〜２０００の整数である。）
上記ポリジメチルシロキサンとしては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、下記式（１）で表されるポリジメチルシロキサン、ポリジメチルシロキサンの両末端、片末端または側鎖のメチル基を他の官能基で置換した変性ポリジメチルシロキサン、分子内に電離放射線硬化性基が導入された変性ポリジメチルシロキサン、ポリエステル変性ポリジメチルシロキサン、ポリエーテル変性ポリジメチルシロキサン、などが挙げられる。これらは１種単独で使用してもよいし、２種以上を併用してもよい。
＜＜マイクロウェルプレートの形状＞＞
上記マイクロウェルプレートとしては、マイクロウェルを備える限り、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができる。
上記マイクロウェルプレートとしては、マイクロウェルを備える限り、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができる。
＜＜マイクロウェル＞＞
上記マイクロウェルは、第１区画と、該第１区画に連通して設けられる第２区画とを少なくとも備える。前記連通は、前記第１区画に補足された細胞が、前記第２区画に落下しないように構成される。
上記マイクロウェルは、第１区画と、該第１区画に連通して設けられる第２区画とを少なくとも備える。前記連通は、前記第１区画に補足された細胞が、前記第２区画に落下しないように構成される。
−第１区画−
上記第１区画は、１個の細胞を補足する区画である。
上記第１区画の形状としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、円柱形、直方体、逆円錐形、逆角錐形、などが挙げられる。
上記第１区画は、１個の細胞を補足する区画である。
上記第１区画の形状としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、円柱形、直方体、逆円錐形、逆角錐形、などが挙げられる。
ここで、一般的な細胞の直径を例示すると、ヒトリンパ球細胞の直径は、約１０〜１５μｍであり、パン酵母の直径は約５μｍであり、マウス胎児性繊維芽細胞の直径は約１０〜２０μｍであり、大腸菌の直径は、約１〜２μｍである。
このように、細胞の種類によって、細胞の直径が異なるため、上記第１区画は、解析しようとする細胞の大きさに応じて、第１区画の形状を適宜選択する必要がある。
このように、細胞の種類によって、細胞の直径が異なるため、上記第１区画は、解析しようとする細胞の大きさに応じて、第１区画の形状を適宜選択する必要がある。
上記第１区画の寸法の目安としては、第１区画が円柱型である場合は、マイクロウェルの第１区画の開口面における直径が、補足しようとする細胞の直径の１．０〜３．０倍であり、且つ、第１区画の深さが、補足しようとする細胞の直径の１．０〜３．０倍であることが好ましい。
−第２区画−
上記第２区画としては、上記第１区画に連通して設けられ、且つ、前記第１区画の容積より大きい容積である限り、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができる。
前記第２区画は、前記第１区画と連通し、該連通は、第１区画に補足された細胞が、第２区画に落下しないように構成される。
上記第２区画の形状としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、円柱形、直方体、逆円錐形、逆角錐形、などが挙げられる。
上記第２区画としては、上記第１区画に連通して設けられ、且つ、前記第１区画の容積より大きい容積である限り、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができる。
前記第２区画は、前記第１区画と連通し、該連通は、第１区画に補足された細胞が、第２区画に落下しないように構成される。
上記第２区画の形状としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、円柱形、直方体、逆円錐形、逆角錐形、などが挙げられる。
第１区画に補足される細胞が第２区画に落下しない構成としては、例えば、図３に示す例のように、第１区画８の直径より狭い直径で、第２区画９を第１区画８に連結させる構成が挙げられる。また、第１区画と第２区画の各区画を網目状の部材を用いて仕切ることで連通させる構成が挙げられる。
また、第２区画は、第１区画の下部側に配置させて連通させると、第２区画側から顕微鏡等で観察する際に高感度に観察することができる点で有利である。
また、第２区画は、第１区画の下部側に配置させて連通させると、第２区画側から顕微鏡等で観察する際に高感度に観察することができる点で有利である。
上記第２区画の容積は、上記第１区画の容積より大きい限り、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、３〜１０００倍が好ましい。
第１区画に補足した細胞に対して試薬を反応させ、その反応産物量を蛍光色素を用いて定量する際に、前記第２区画を有することで、第２区画を有さない場合に比べて反応容積が大きいため、蛍光を高感度に検出できる。そして、前記第２区画の容積が第１区画の容積の３倍以上であると、蛍光色素を含んだ試料を顕微鏡で観察するときに、蛍光を十分高感度に検出することができる。
第１区画に補足された細胞を、マイクロウェル内で例えば逆転写反応や核酸増幅反応をさせる場合は、それぞれの反応に必要な試薬を第２区画内にも保持させることができるため、第２区画を有することにより遺伝子解析などを行うことが可能となる。そして、前記第２区画の容積が第１区画の容積の３倍以上であると、逆転写反応や核酸増幅反応を効率良く十分に行うことができる。
第１区画に補足した細胞に対して試薬を反応させ、その反応産物量を蛍光色素を用いて定量する際に、前記第２区画を有することで、第２区画を有さない場合に比べて反応容積が大きいため、蛍光を高感度に検出できる。そして、前記第２区画の容積が第１区画の容積の３倍以上であると、蛍光色素を含んだ試料を顕微鏡で観察するときに、蛍光を十分高感度に検出することができる。
第１区画に補足された細胞を、マイクロウェル内で例えば逆転写反応や核酸増幅反応をさせる場合は、それぞれの反応に必要な試薬を第２区画内にも保持させることができるため、第２区画を有することにより遺伝子解析などを行うことが可能となる。そして、前記第２区画の容積が第１区画の容積の３倍以上であると、逆転写反応や核酸増幅反応を効率良く十分に行うことができる。
＜カバー部材＞
上記カバー部材としては、上記マイクロウェルプレートの上記第１区画に対向して配置される限り、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができる。
上記カバー部材としては、上記マイクロウェルプレートの上記第１区画に対向して配置される限り、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができる。
＜＜カバー部材の材質＞＞
上記カバー部材の材質としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、シリコーン樹脂、ポリスチレン、メチルメタアクリレート（ＰＭＭＡ）、ＡＢＳ樹脂、ポリカーボネート、ガラス、などが挙げられる。これらは１種単独で使用してもよいし、２種以上を併用してもよい。
上記カバー部材の材質としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、シリコーン樹脂、ポリスチレン、メチルメタアクリレート（ＰＭＭＡ）、ＡＢＳ樹脂、ポリカーボネート、ガラス、などが挙げられる。これらは１種単独で使用してもよいし、２種以上を併用してもよい。
＜＜カバー部材の形状＞＞
上記カバー部材の形状としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、上記カバー部材は、前記マイクロプレートに接する面において、溝（溝状の切り込み）を備えるのが好ましい。
前記カバー部材に溝を備えることで、マイクロウェルプレートと貼り合わせたときに、マイクロウェルプレートの表面と、カバー部材の溝部分との間に空間ができ、該空間が流路として画成される。
図１及び図２の例では、溝７を３本備えているが、溝の本数は限定されない。
図１及び図２の例では、カバー部材３に開口４を備えるが、開口を備えなくてもよい。
上記カバー部材の形状としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、上記カバー部材は、前記マイクロプレートに接する面において、溝（溝状の切り込み）を備えるのが好ましい。
前記カバー部材に溝を備えることで、マイクロウェルプレートと貼り合わせたときに、マイクロウェルプレートの表面と、カバー部材の溝部分との間に空間ができ、該空間が流路として画成される。
図１及び図２の例では、溝７を３本備えているが、溝の本数は限定されない。
図１及び図２の例では、カバー部材３に開口４を備えるが、開口を備えなくてもよい。
＜＜流路＞＞
本発明のマイクロウェル装置は、上記マイクロウェルプレートと上記カバー部材との間に画成される流路を更に備えることが好ましい。
前記流路としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができる。
該流路を通じて、細胞懸濁液やその他の試薬をマイクロウェルプレートのマイクロウェルに供給させることができる。
本発明のマイクロウェル装置は、上記マイクロウェルプレートと上記カバー部材との間に画成される流路を更に備えることが好ましい。
前記流路としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができる。
該流路を通じて、細胞懸濁液やその他の試薬をマイクロウェルプレートのマイクロウェルに供給させることができる。
（細胞解析方法）
本発明の細胞解析方法は、本発明のマイクロウェル装置の前記流路に細胞懸濁液を流入させて、前記マイクロウェルの前記第１区画に１個の細胞を補足させる細胞補足工程と、前記第１区画に補足された細胞の各細胞に由来する成分を、各マイクロウェル内で解析する細胞解析工程とを含み、必要に応じて、区画化工程等のその他の工程を含む。
本発明の細胞解析方法によれば、複数の細胞を１細胞ごとに容易に分離することができ、且つ、高感度に細胞解析をすることができる。
本発明の細胞解析方法は、本発明のマイクロウェル装置の前記流路に細胞懸濁液を流入させて、前記マイクロウェルの前記第１区画に１個の細胞を補足させる細胞補足工程と、前記第１区画に補足された細胞の各細胞に由来する成分を、各マイクロウェル内で解析する細胞解析工程とを含み、必要に応じて、区画化工程等のその他の工程を含む。
本発明の細胞解析方法によれば、複数の細胞を１細胞ごとに容易に分離することができ、且つ、高感度に細胞解析をすることができる。
＜細胞補足工程＞
上記細胞補足工程は、本発明のマイクロウェル装置の上記流路に細胞懸濁液を流入させて上記マイクロウェルの上記第１区画に１個の細胞を補足させる工程である。
例えば、図１及び図２に例示したマイクロウェル装置１を用いる場合には、細胞懸濁液を、カバー部材３の開口４から注ぎ込み、細胞懸濁液を流路６に流入させると、マイクロウェルプレート２に備えられたマイクロウェル１０の第１区画８に、細胞懸濁液に含まれる細胞が、およそ１つずつ補足される。このように第１区画８に細胞を補足させた後に、次工程にすすむことができる。なお、細胞補足工程では、開口４にピペットの先端を挿入した状態で数回ピペッティングすることで、細胞の補足を効率よく行うことができる。
上記細胞補足工程は、本発明のマイクロウェル装置の上記流路に細胞懸濁液を流入させて上記マイクロウェルの上記第１区画に１個の細胞を補足させる工程である。
例えば、図１及び図２に例示したマイクロウェル装置１を用いる場合には、細胞懸濁液を、カバー部材３の開口４から注ぎ込み、細胞懸濁液を流路６に流入させると、マイクロウェルプレート２に備えられたマイクロウェル１０の第１区画８に、細胞懸濁液に含まれる細胞が、およそ１つずつ補足される。このように第１区画８に細胞を補足させた後に、次工程にすすむことができる。なお、細胞補足工程では、開口４にピペットの先端を挿入した状態で数回ピペッティングすることで、細胞の補足を効率よく行うことができる。
＜区画化工程＞
上記区画化工程は、上記細胞補足工程の後に、反応空間としての各マイクロウェルの体積を分割する工程である。その方法の一例として、疎水性流体を開口から注入する工程がある。
前記疎水性流体としては、疎水性である限り、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、例えば、フルオロカーボンオイル等のオイル、などが挙げられる。これらは１種単独で使用してもよいし、２種以上を併用してもよい。
これらの中でも、フルオロカーボンオイルは、細胞懸濁液の水溶性溶媒に溶解しにくい点、溶液の比重が大きい点、細胞毒性が低い点、などで有利である。
図１〜図３に例示したマイクロウェル装置１を用いる場合には、上記細胞補足工程の後に、カバー部材３の開口４から疎水性流体を注ぎ込み、流路６を疎水性流体で充填させる。疎水性流体は、比重が高い。更に細胞懸濁液の溶媒が水であると、疎水性流体は水と混じりにくいことから、流路６に疎水性流体を充填することにより、細胞懸濁液で満たされている各マイクロウェル１０は、疎水性流体によって密閉状態にできる。このように、各マイクロウェル１０を疎水性流体で密閉することにより、マイクロウェル間のクロストーク（溶液成分の移動や拡散）を確実に回避することができる。
上記区画化工程は、上記細胞補足工程の後に、反応空間としての各マイクロウェルの体積を分割する工程である。その方法の一例として、疎水性流体を開口から注入する工程がある。
前記疎水性流体としては、疎水性である限り、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、例えば、フルオロカーボンオイル等のオイル、などが挙げられる。これらは１種単独で使用してもよいし、２種以上を併用してもよい。
これらの中でも、フルオロカーボンオイルは、細胞懸濁液の水溶性溶媒に溶解しにくい点、溶液の比重が大きい点、細胞毒性が低い点、などで有利である。
図１〜図３に例示したマイクロウェル装置１を用いる場合には、上記細胞補足工程の後に、カバー部材３の開口４から疎水性流体を注ぎ込み、流路６を疎水性流体で充填させる。疎水性流体は、比重が高い。更に細胞懸濁液の溶媒が水であると、疎水性流体は水と混じりにくいことから、流路６に疎水性流体を充填することにより、細胞懸濁液で満たされている各マイクロウェル１０は、疎水性流体によって密閉状態にできる。このように、各マイクロウェル１０を疎水性流体で密閉することにより、マイクロウェル間のクロストーク（溶液成分の移動や拡散）を確実に回避することができる。
＜細胞解析工程＞
上記細胞解析工程は、上記第１区画に補足された細胞の各細胞に由来する成分を、各マイクロウェル内で解析する工程である。
前記細胞解析工程としては、前記第１区画に補足された細胞の各細胞に由来する成分を、各マイクロウェル内で解析する限り、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、細胞形態観察、細胞内動態観察、遺伝子解析、タンパク質解析、ペプチド解析、代謝産物解析、などが挙げられる。これらは１種単独で使用してもよいし、２種以上を併用してもよい。
前記細胞解析工程は、定量測定、定性測定、シーケンシング、分析、観察等に先立って行われる公知の前処理をマイクロウェル内で行うことも含む。前記前処理としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、溶解処理、加熱処理、非働化処理、撹拌処理、変性処理、マイクロウェーブ処理、超音波処理、放射線処理、磁気処理、化学反応処理、酵素反応処理、染色処理、抗原抗体反応処理、アフィニティー吸着処理、などが挙げられる。これらは１種単独で使用してもよいし、２種以上を併用してもよい。
上記細胞解析工程は、上記第１区画に補足された細胞の各細胞に由来する成分を、各マイクロウェル内で解析する工程である。
前記細胞解析工程としては、前記第１区画に補足された細胞の各細胞に由来する成分を、各マイクロウェル内で解析する限り、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、細胞形態観察、細胞内動態観察、遺伝子解析、タンパク質解析、ペプチド解析、代謝産物解析、などが挙げられる。これらは１種単独で使用してもよいし、２種以上を併用してもよい。
前記細胞解析工程は、定量測定、定性測定、シーケンシング、分析、観察等に先立って行われる公知の前処理をマイクロウェル内で行うことも含む。前記前処理としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、溶解処理、加熱処理、非働化処理、撹拌処理、変性処理、マイクロウェーブ処理、超音波処理、放射線処理、磁気処理、化学反応処理、酵素反応処理、染色処理、抗原抗体反応処理、アフィニティー吸着処理、などが挙げられる。これらは１種単独で使用してもよいし、２種以上を併用してもよい。
＜＜細胞に由来する成分＞＞
上記細胞に由来する成分としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、ＤＮＡ、ＲＮＡ、タンパク質、ペプチド、脂質、糖質、有機分子化合物（例えば、環境ホルモン、代謝産物）などが挙げられる。これらは１種単独で使用してもよいし、２種以上を併用してもよい。
上記細胞に由来する成分としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、ＤＮＡ、ＲＮＡ、タンパク質、ペプチド、脂質、糖質、有機分子化合物（例えば、環境ホルモン、代謝産物）などが挙げられる。これらは１種単独で使用してもよいし、２種以上を併用してもよい。
上記各細胞に由来する成分を解析する態様としては、細胞を溶解して、１細胞に含まれる成分を測定する方法が挙げられる。例えば、第１区画に細胞を補足させた後に、各マイクロウェル内で、１細胞を試料として核酸増幅反応をさせることが可能である。前記核酸増幅反応の態様としては、１細胞に含まれるｍＲＮＡを逆転写してｃＤＮＡを増幅するＲＴ−ＰＣＲ反応を挙げることができる。ＲＴ−ＰＣＲ反応により、１細胞に由来するｍＲＮＡを定量的または定性的に解析することができる。ＲＴ−ＰＣＲ反応は、公知の方法で実施することができ、ＲＴ−ＰＣＲ反応専用の試薬を細胞に添加する必要がある。
１細胞に含まれるｍＲＮＡを逆転写し増幅するためには、１細胞の体積よりも多くの試薬量を添加する必要があるとの報告がある。本発明のマイクロウェルプレートのマイクロウェルは、上記第２区画を有するため、ＲＴ−ＰＣＲ反応を行うのに必要な試薬量を第２区画内に保持させることが可能となる。したがって、第２区画を備えないで第１区画に相当する区画しか有さない従来のマイクロウェル内、または、第２区画は備えるがその容積が十分ではないマイクロウェル内では、核酸増幅反応を十分に行えないが、本発明のマイクロウェルプレートを用いた本発明のマイクロウェル装置を用いると、各マイクロウェル内で核酸増幅反応を達成することができる。なお、第２区画を設けず、単に第１区画の容積を増やすだけならば、ＲＴ−ＰＣＲ反応用の試薬を第１区画内に充分量保持させることができるが、第１区画内に２個以上の細胞が含まれるおそれがあり、１細胞の解析が困難となる。
１細胞に含まれるｍＲＮＡを逆転写し増幅するためには、１細胞の体積よりも多くの試薬量を添加する必要があるとの報告がある。本発明のマイクロウェルプレートのマイクロウェルは、上記第２区画を有するため、ＲＴ−ＰＣＲ反応を行うのに必要な試薬量を第２区画内に保持させることが可能となる。したがって、第２区画を備えないで第１区画に相当する区画しか有さない従来のマイクロウェル内、または、第２区画は備えるがその容積が十分ではないマイクロウェル内では、核酸増幅反応を十分に行えないが、本発明のマイクロウェルプレートを用いた本発明のマイクロウェル装置を用いると、各マイクロウェル内で核酸増幅反応を達成することができる。なお、第２区画を設けず、単に第１区画の容積を増やすだけならば、ＲＴ−ＰＣＲ反応用の試薬を第１区画内に充分量保持させることができるが、第１区画内に２個以上の細胞が含まれるおそれがあり、１細胞の解析が困難となる。
また、上記各細胞に由来する成分を解析する態様のその他の例としては、第１区画に補足させた細胞を溶解させずに、細胞の形態を観察することで細胞に由来する成分を解析する方法が挙げられる。例えば、第１区画に細胞を補足させた後に、倒立型顕微鏡の試料台にマイクロウェル装置のマイクロウェルプレートを底部にして配置して、細胞を観察することができる。細胞を蛍光色素または発光色素で染色した場合、倒立型顕微鏡で蛍光を観察することができる。例えば、細胞内の酵素活性を測定するための蛍光色素試薬を用いて細胞を前処理しておくと、細胞内の酵素活性に応じた蛍光や発光を観察することが可能である。このように、１細胞を顕微鏡で観察することにより、細胞に由来する成分を解析することができる。
（マイクロウェルプレートの製造方法）
本発明のマイクロウェルプレートの製造方法は、本発明のマイクロウェルプレートの製造方法であって、（ａ）前記マイクロウェルプレートのマイクロウェルの鋳型を、光硬化性樹脂を硬化させて得る鋳型硬化工程と、（ｂ）前記鋳型硬化工程の後に、前記硬化した光硬化性樹脂のまわりに気相蒸着法によりパリレンを蒸着させるパリレン蒸着工程と、（ｃ）前記パリレン蒸着工程の後に、前記パレリンが蒸着した鋳型にシリコーンゴムをキャスティングするキャスティング工程と、（ｄ）前記キャスティング工程の後に、キャスティングされたシリコーンゴムから前記鋳型を離型する離型工程と、を含む。
図５は、本発明のマイクロウェルプレートの製造方法における、鋳型硬化工程後の鋳型の状態の一例を示す走査型電子顕微鏡（ＳＥＭ）による拡大画像であり、図５（ａ）〜図５（ｊ）は、それぞれ異なる形状の鋳型の場合を示す。図５（ａ）〜図５（ｊ）のマイクロウェルの鋳型は、ガラス基板の上に光硬化性樹脂が硬化されてなる造形物が成形されている。ガラス基板と光硬化性樹脂の造形物とが接する面は、円型であり、該円の直径が約３０μｍである。
本発明のマイクロウェルプレートの製造方法によれば、安定的に本発明のマイクロウェルプレートを得ることができ、特に、マイクロウェルプレートから鋳型を確実に離型することができるため、安定的な製造が可能となる。
本発明のマイクロウェルプレートの製造方法は、本発明のマイクロウェルプレートの製造方法であって、（ａ）前記マイクロウェルプレートのマイクロウェルの鋳型を、光硬化性樹脂を硬化させて得る鋳型硬化工程と、（ｂ）前記鋳型硬化工程の後に、前記硬化した光硬化性樹脂のまわりに気相蒸着法によりパリレンを蒸着させるパリレン蒸着工程と、（ｃ）前記パリレン蒸着工程の後に、前記パレリンが蒸着した鋳型にシリコーンゴムをキャスティングするキャスティング工程と、（ｄ）前記キャスティング工程の後に、キャスティングされたシリコーンゴムから前記鋳型を離型する離型工程と、を含む。
図５は、本発明のマイクロウェルプレートの製造方法における、鋳型硬化工程後の鋳型の状態の一例を示す走査型電子顕微鏡（ＳＥＭ）による拡大画像であり、図５（ａ）〜図５（ｊ）は、それぞれ異なる形状の鋳型の場合を示す。図５（ａ）〜図５（ｊ）のマイクロウェルの鋳型は、ガラス基板の上に光硬化性樹脂が硬化されてなる造形物が成形されている。ガラス基板と光硬化性樹脂の造形物とが接する面は、円型であり、該円の直径が約３０μｍである。
本発明のマイクロウェルプレートの製造方法によれば、安定的に本発明のマイクロウェルプレートを得ることができ、特に、マイクロウェルプレートから鋳型を確実に離型することができるため、安定的な製造が可能となる。
＜鋳型硬化工程＞
上記鋳型硬化工程は、上記マイクロウェルプレートの鋳型を、光硬化性樹脂を硬化させて得る工程である。
前記鋳型は、前記光硬化性樹脂を光照射により硬化させて、所望の形状に光硬化性樹脂を成形する公知の光造形技術で得ることができる。前記光造形技術は、ＣＡＤデータを基に３次元の立体物を自動的かつ迅速に作製する技術であり、例えば、三次元マイクロ光造形装置（Ｄ−ＭＥＣ社製、製品名：Ａｃｃｕｌａｓ）を用いて光硬化性樹脂の成形体を作製することができる。斯かる装置を用いると、３次元のＣＡＤデータに基づいて、アクリル系またはエポキシ系の光硬化性樹脂の成形物を、ガラス基板上にレーザー照射により作製できる。なお、得られた鋳型は、未硬化の樹脂を溶剤で洗浄してから次工程のパリレン蒸着工程に進むこともできる。
上記鋳型硬化工程は、上記マイクロウェルプレートの鋳型を、光硬化性樹脂を硬化させて得る工程である。
前記鋳型は、前記光硬化性樹脂を光照射により硬化させて、所望の形状に光硬化性樹脂を成形する公知の光造形技術で得ることができる。前記光造形技術は、ＣＡＤデータを基に３次元の立体物を自動的かつ迅速に作製する技術であり、例えば、三次元マイクロ光造形装置（Ｄ−ＭＥＣ社製、製品名：Ａｃｃｕｌａｓ）を用いて光硬化性樹脂の成形体を作製することができる。斯かる装置を用いると、３次元のＣＡＤデータに基づいて、アクリル系またはエポキシ系の光硬化性樹脂の成形物を、ガラス基板上にレーザー照射により作製できる。なお、得られた鋳型は、未硬化の樹脂を溶剤で洗浄してから次工程のパリレン蒸着工程に進むこともできる。
＜＜光硬化性樹脂＞＞
上記光硬化性樹脂としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、アクリル樹脂、エポキシ樹脂、ウレタン樹脂、イミド樹脂、シリコーン樹脂などが挙げられる。これらは１種単独で使用してもよいし、２種以上を併用してもよい。これらの中でも、アクリル樹脂およびエポキシ樹脂は、精細な光造形に用いることができる点で有利である。
上記光硬化性樹脂を硬化させる光としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、紫外線、可視光、ラマンレーザー、半導体レーザー、色素レーザー、などが挙げられる。これらは１種単独で使用してもよいし、２種以上を併用してもよい。
上記光硬化性樹脂としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、アクリル樹脂、エポキシ樹脂、ウレタン樹脂、イミド樹脂、シリコーン樹脂などが挙げられる。これらは１種単独で使用してもよいし、２種以上を併用してもよい。これらの中でも、アクリル樹脂およびエポキシ樹脂は、精細な光造形に用いることができる点で有利である。
上記光硬化性樹脂を硬化させる光としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、紫外線、可視光、ラマンレーザー、半導体レーザー、色素レーザー、などが挙げられる。これらは１種単独で使用してもよいし、２種以上を併用してもよい。
＜パリレン蒸着工程＞
上記パリレン蒸着工程は、前記鋳型硬化工程の後に、前記硬化した光硬化性樹脂のまわりに気相蒸着法によりパリレンを蒸着させる工程である。
前記パリレンとしては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、パリレンＮ、パリレンＣ、パリレンＤ、パリレンＨＴ、などが挙げられる。これらの中でも、パリレンＣを鋳型に蒸着させると、鋳型にキャスティングされたシリコーンゴムから鋳型を離す離型工程において、離型をより確実に行うことができる点で好ましい。
前記気相蒸着法は、公知の方法で実施することができる。例えば、日本パリレン合同会社製のパリレン蒸着装置（ＰＤＳ ２０１０ ＬＡＢＣＯＴＥＲＴＭ ２）を用い、所定量のパリレンダイマーを昇華させ、同装置の真空蒸着器内で蒸着させることができる。
パリレン蒸着により鋳型に蒸着させるパリレン層の厚みとしては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、０．５〜２μｍが好ましく、１〜２μｍがより好ましい。
前記パリレン層の厚みが、前記好ましい範囲内または前記より好ましい範囲内であると、離型時の鋳型の破断を防ぐことができ、鋳型が大きくなり過ぎない点で有利である。
上記パリレン蒸着工程は、前記鋳型硬化工程の後に、前記硬化した光硬化性樹脂のまわりに気相蒸着法によりパリレンを蒸着させる工程である。
前記パリレンとしては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、パリレンＮ、パリレンＣ、パリレンＤ、パリレンＨＴ、などが挙げられる。これらの中でも、パリレンＣを鋳型に蒸着させると、鋳型にキャスティングされたシリコーンゴムから鋳型を離す離型工程において、離型をより確実に行うことができる点で好ましい。
前記気相蒸着法は、公知の方法で実施することができる。例えば、日本パリレン合同会社製のパリレン蒸着装置（ＰＤＳ ２０１０ ＬＡＢＣＯＴＥＲＴＭ ２）を用い、所定量のパリレンダイマーを昇華させ、同装置の真空蒸着器内で蒸着させることができる。
パリレン蒸着により鋳型に蒸着させるパリレン層の厚みとしては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、０．５〜２μｍが好ましく、１〜２μｍがより好ましい。
前記パリレン層の厚みが、前記好ましい範囲内または前記より好ましい範囲内であると、離型時の鋳型の破断を防ぐことができ、鋳型が大きくなり過ぎない点で有利である。
＜キャスティング工程＞
上記キャスティング工程は、上記パリレン蒸着工程の後に、前記パレリンが蒸着した鋳型にシリコーンゴムをキャスティングする工程である。
前記キャスティングは、公知の方法で実施することができる。例えば、信越化学製のＰＤＭＳ（商品名：ＫＥ−１０６）を硬化剤と混合させたものを鋳型に流し込み，ホットプレート上で約７０℃で２時間保持して硬化させて作製することができる。
上記キャスティング工程は、上記パリレン蒸着工程の後に、前記パレリンが蒸着した鋳型にシリコーンゴムをキャスティングする工程である。
前記キャスティングは、公知の方法で実施することができる。例えば、信越化学製のＰＤＭＳ（商品名：ＫＥ−１０６）を硬化剤と混合させたものを鋳型に流し込み，ホットプレート上で約７０℃で２時間保持して硬化させて作製することができる。
＜離型工程＞
上記離型工程は、前記キャスティング工程の後に、キャスティングされたシリコーンゴムから前記鋳型を離型する工程である。
前記離型は、公知の方法で実施することができる。例えば、鋳型の周囲をナイフで矩形に切断し，ピンセットを用いて引きはがすことで離型することができる。
上記離型工程は、前記キャスティング工程の後に、キャスティングされたシリコーンゴムから前記鋳型を離型する工程である。
前記離型は、公知の方法で実施することができる。例えば、鋳型の周囲をナイフで矩形に切断し，ピンセットを用いて引きはがすことで離型することができる。
以下、実施例を挙げて本発明のマイクロウェルプレート、マイクロウェルプレートの製造方法、マイクロウェル装置、及びマイクロウェル装置を用いた細胞解析方法をさらに詳しく説明するが、本発明は下記の実施例になんら限定されるものではなく、その要旨を変更しない範囲において適宜変更可能である。
実施例１
（マイクロウェルプレートの作製）
（マイクロウェルプレートの作製）
１．鋳型硬化工程
鋳型は、マイクロウェル型の構造物どうしの間隔を１００μｍとし、ガラス面上に前記構造物を縦１００個×横１００個で作製した。三次元マイクロ光造形装置（Ｄ−ＭＥＣ社製、製品名：Ａｃｃｕｌａｓ）を用いて、装置マニュアルに従って、光硬化性樹脂としてエポキシ系樹脂（ＪＳＲ社製、製品名：ＫＣ１２０７）を用いて成形した。硬化は、厚さ１０mｍの各積層における露光量を１５０ｍＪ／ｃｍ２とする条件で行った。
鋳型は、マイクロウェル型の構造物どうしの間隔を１００μｍとし、ガラス面上に前記構造物を縦１００個×横１００個で作製した。三次元マイクロ光造形装置（Ｄ−ＭＥＣ社製、製品名：Ａｃｃｕｌａｓ）を用いて、装置マニュアルに従って、光硬化性樹脂としてエポキシ系樹脂（ＪＳＲ社製、製品名：ＫＣ１２０７）を用いて成形した。硬化は、厚さ１０mｍの各積層における露光量を１５０ｍＪ／ｃｍ２とする条件で行った。
２．パリレン蒸着工程
気相蒸着によりパリレンを蒸着させた。パリレン蒸着装置（日本パリレン合同会社製、製品名：ＰＤＳ ２０１０ ＬＡＢＣＯＴＥＲＴＭ ２）を用いて、装置マニュアルに従って、パリレンＣ（ＳＰＥＣＩＡＬＴＹ ＣＯＡＴＩＮＧ ＳＹＳＴＥＭＳ社製）を蒸着した。
パリレンは、厚さが２μｍとなるように蒸着させた。得られた鋳型は、引張強度が７０ＭＰａとなった。
気相蒸着によりパリレンを蒸着させた。パリレン蒸着装置（日本パリレン合同会社製、製品名：ＰＤＳ ２０１０ ＬＡＢＣＯＴＥＲＴＭ ２）を用いて、装置マニュアルに従って、パリレンＣ（ＳＰＥＣＩＡＬＴＹ ＣＯＡＴＩＮＧ ＳＹＳＴＥＭＳ社製）を蒸着した。
パリレンは、厚さが２μｍとなるように蒸着させた。得られた鋳型は、引張強度が７０ＭＰａとなった。
３．キャスティング工程
パリレン蒸着をした上記鋳型に、ＰＤＭＳのプレポリマー（信越化学社製、製品名：ＫＥ−１０６）と硬化剤（信越化学社製、製品名：ＣＡＴ−ＲＧ）とを混合した組成物を流し込んだ。約７０℃で２時間保持して組成物を硬化させた。硬化後のヤング率は０．５〜１ＭＰａ程度であった。
パリレン蒸着をした上記鋳型に、ＰＤＭＳのプレポリマー（信越化学社製、製品名：ＫＥ−１０６）と硬化剤（信越化学社製、製品名：ＣＡＴ−ＲＧ）とを混合した組成物を流し込んだ。約７０℃で２時間保持して組成物を硬化させた。硬化後のヤング率は０．５〜１ＭＰａ程度であった。
４．離型工程
硬化後のＰＤＭＳについて，鋳型の周囲をナイフで矩形に切断し，ピンセットを用いて引きはがして、マイクロウェルプレートを得た。鋳型から離型したマイクロウェルプレートの断面の電子顕微鏡写真を図６（ａ）〜（ｄ）に示す。鋳型は破断することなく、マイクロウェルから離型した。
硬化後のＰＤＭＳについて，鋳型の周囲をナイフで矩形に切断し，ピンセットを用いて引きはがして、マイクロウェルプレートを得た。鋳型から離型したマイクロウェルプレートの断面の電子顕微鏡写真を図６（ａ）〜（ｄ）に示す。鋳型は破断することなく、マイクロウェルから離型した。
（マイクロウェル装置の作製）
ＰＤＭＳのプレポリマー（信越化学社製、製品名：ＫＥ−１０６）と硬化剤（信越化学社製、製品名：ＣＡＴ−ＲＧ）とを混合した組成物を鋳型成形して、高さ５０μｍ、幅３ｍｍの溝を３本有するカバー部材を作製した。該カバー部材のそれぞれの溝には、直径が１．５ｍｍの開口を２個設けた。
上記カバー部材の溝側を有する面と、離型して得られたマイクロウェルプレートのマイクロウェルを有する面とを、それぞれ酸素プラズマで約１分間処理し、酸素プラズマ処理をした面どうしで貼り合わせた。その後、９０℃に加熱したホットプレートの上で、３０分間ベーキング処理をして、結合を強化した。
ＰＤＭＳのプレポリマー（信越化学社製、製品名：ＫＥ−１０６）と硬化剤（信越化学社製、製品名：ＣＡＴ−ＲＧ）とを混合した組成物を鋳型成形して、高さ５０μｍ、幅３ｍｍの溝を３本有するカバー部材を作製した。該カバー部材のそれぞれの溝には、直径が１．５ｍｍの開口を２個設けた。
上記カバー部材の溝側を有する面と、離型して得られたマイクロウェルプレートのマイクロウェルを有する面とを、それぞれ酸素プラズマで約１分間処理し、酸素プラズマ処理をした面どうしで貼り合わせた。その後、９０℃に加熱したホットプレートの上で、３０分間ベーキング処理をして、結合を強化した。
（細胞解析方法）
１．細胞の調製
５μＭのカンプトテシン（ＣＰＴ）で２４時間処理したＪｕｒｋａｔ細胞を、２．０×１０６細胞／ｍＬの細胞濃度に調製して、カスパーゼの活性を検出できるＣａｓｐａｓｅ Ｓｕｂｓｔｒａｔｅ及びＡｐｏ−ＯＮＥ Ｃａｓｐａｓｅ−３／７ Ｂｕｆｆｅｒの混合溶液（体積比１：１００）（Ｐｒｏｍｅｇａ社製、製品名：Ａｐｏ−ＯＮＥ Ｈｏｍｏｇｅｎｅｏｕｓ Ｃａｓｐａｓｅ−３／７ Ａｓｓａｙ）を体積比１：１で添加して、細胞懸濁液とした。
１．細胞の調製
５μＭのカンプトテシン（ＣＰＴ）で２４時間処理したＪｕｒｋａｔ細胞を、２．０×１０６細胞／ｍＬの細胞濃度に調製して、カスパーゼの活性を検出できるＣａｓｐａｓｅ Ｓｕｂｓｔｒａｔｅ及びＡｐｏ−ＯＮＥ Ｃａｓｐａｓｅ−３／７ Ｂｕｆｆｅｒの混合溶液（体積比１：１００）（Ｐｒｏｍｅｇａ社製、製品名：Ａｐｏ−ＯＮＥ Ｈｏｍｏｇｅｎｅｏｕｓ Ｃａｓｐａｓｅ−３／７ Ａｓｓａｙ）を体積比１：１で添加して、細胞懸濁液とした。
２．細胞補足工程
得られた細胞懸濁液をマイクロウェル装置の開口から５μＬ注入して、５回ピペッティング操作をした。図８は、図中矢印で示したマイクロウェルの第一区画に、１細胞が封入されている様子を示している。
得られた細胞懸濁液をマイクロウェル装置の開口から５μＬ注入して、５回ピペッティング操作をした。図８は、図中矢印で示したマイクロウェルの第一区画に、１細胞が封入されている様子を示している。
３．区画化工程
疎水性流体としてのフルオロカーボンオイル（３Ｍ社製、製品名：ＦＣ−４０）を開口から５μＬ注入して、流してマイクロウェルに封をして、１時間インキュベーションをした。フルオロカーボンオイルを開口から流し込むことによっても、細胞を効率よくマイクロウェルの第１区画に補足させることができた。
疎水性流体としてのフルオロカーボンオイル（３Ｍ社製、製品名：ＦＣ−４０）を開口から５μＬ注入して、流してマイクロウェルに封をして、１時間インキュベーションをした。フルオロカーボンオイルを開口から流し込むことによっても、細胞を効率よくマイクロウェルの第１区画に補足させることができた。
４．細胞観察工程
上記で得たマイクロウェルプレートを用いて、細胞に由来する酵素の活性を蛍光観察するために、倒立蛍光顕微鏡（オリンパス製ＩＸ−５１）を使用し、励起としてＢ励起を用い、×４倍の倍率でカスパーゼにより加水分解された蛍光基質由来の蛍光を観察した。結果を図９（ａ）に示す。
上記で得たマイクロウェルプレートを用いて、細胞に由来する酵素の活性を蛍光観察するために、倒立蛍光顕微鏡（オリンパス製ＩＸ−５１）を使用し、励起としてＢ励起を用い、×４倍の倍率でカスパーゼにより加水分解された蛍光基質由来の蛍光を観察した。結果を図９（ａ）に示す。
（実施例２）
実施例１の細胞観察工程において、倒立型顕微鏡で４倍の倍率で観察したかわりに、倒立型顕微鏡で２０倍の倍率で観察した以外は実施例１と同様にして、細胞を観察した。実施例２の結果を図９（ｂ）に示す。
実施例１の細胞観察工程において、倒立型顕微鏡で４倍の倍率で観察したかわりに、倒立型顕微鏡で２０倍の倍率で観察した以外は実施例１と同様にして、細胞を観察した。実施例２の結果を図９（ｂ）に示す。
（実施例３）
実施例１の細胞補足工程において、細胞懸濁液をマイクロウェル装置の開口から注入したかわりに、濃度１ｍＭの蛍光色素のカルセイン水溶液をマイクロウェル装置の開口から注入した以外は実施例１と同様にして、蛍光像を観察した。実施例３の結果を図１０（ａ）に示す。
実施例１の細胞補足工程において、細胞懸濁液をマイクロウェル装置の開口から注入したかわりに、濃度１ｍＭの蛍光色素のカルセイン水溶液をマイクロウェル装置の開口から注入した以外は実施例１と同様にして、蛍光像を観察した。実施例３の結果を図１０（ａ）に示す。
（実施例４）
実施例３の細胞観察工程において、倒立型顕微鏡で４倍の倍率で観察したかわりに、倒立型顕微鏡で２０倍の倍率で観察した以外は実施例３と同様にして、蛍光像を観察した。実施例４の結果を図１０（ｂ）に示す。
実施例３の細胞観察工程において、倒立型顕微鏡で４倍の倍率で観察したかわりに、倒立型顕微鏡で２０倍の倍率で観察した以外は実施例３と同様にして、蛍光像を観察した。実施例４の結果を図１０（ｂ）に示す。
（比較例１）
実施例３の細胞補足工程において、第二区画を設けたマイクロウェルプレートを用いたかわりに、第二区画を設けない（第一区画のみを有する）マイクロウェルプレートを用いた以外は実施例３と同様にして、蛍光像を観察した。比較例１の結果を図１０（ｃ）に示す。
実施例３の細胞補足工程において、第二区画を設けたマイクロウェルプレートを用いたかわりに、第二区画を設けない（第一区画のみを有する）マイクロウェルプレートを用いた以外は実施例３と同様にして、蛍光像を観察した。比較例１の結果を図１０（ｃ）に示す。
（比較例２）
比較例１の細胞観察工程において、倒立型顕微鏡で４倍の倍率で観察したかわりに、倒立型顕微鏡で２０倍の倍率で観察した以外は比較例１と同様にして、蛍光像を観察した。比較例２の結果を図１０（ｄ）に示す。
比較例１の細胞観察工程において、倒立型顕微鏡で４倍の倍率で観察したかわりに、倒立型顕微鏡で２０倍の倍率で観察した以外は比較例１と同様にして、蛍光像を観察した。比較例２の結果を図１０（ｄ）に示す。
（比較例３）
実施例１のマイクロウェルプレートの作製において、パリレン蒸着工程を実施したかわりに、パリレン蒸着工程を実施しなかったこと以外は実施例１と同様にしてマイクロウェルプレートを作製した。鋳型から離型した後のマイクロウェルプレート断面の電子顕微鏡写真を図７に示す。図７中矢印で示した部分に、本来ならば空洞となる部分に、光硬化性樹脂が破断し残っている。
実施例１のマイクロウェルプレートの作製において、パリレン蒸着工程を実施したかわりに、パリレン蒸着工程を実施しなかったこと以外は実施例１と同様にしてマイクロウェルプレートを作製した。鋳型から離型した後のマイクロウェルプレート断面の電子顕微鏡写真を図７に示す。図７中矢印で示した部分に、本来ならば空洞となる部分に、光硬化性樹脂が破断し残っている。
実施例１に係る図９（ａ）、（ｂ）の結果から、本発明のマイクロウェル装置を用いて、多数の細胞を１細胞毎に分離して、細胞に由来する酵素の活性をマイクロウェルごとに観察できることが確認できた。
図１０（ａ）〜（ｄ）の結果から、１つのマイクロウェルから発せられる蛍光強度は、第二区画を設けないマイクロウェルプレートよりも、第二区画を設けたマイクロウェルプレートの方が強いことが示された。それゆえ、実施例１、２のマイクロウェルプレートを用いると、比較例１、２のマイクロウェルプレートを用いるよりも、細胞に由来する成分をより高感度で解析可能であることが示唆された。
実施例１においてパリレン蒸着を実施して離型が良好となった結果（図６）と、比較例３においてパリレン蒸着を実施せずに離型が不良となった結果（図７）との比較から、パリレン蒸着工程を行うことにより、マイクロウェルプレートがより安定的に製造できることが示された。鋳型にパリレン蒸着をすると、離型工程において、鋳型がシリコーンゴムと離れやすくなり、離型が可能となることが示された。
本発明のマイクロウェル装置およびマイクロウェルプレートにより、例えば、数千〜数万個の１細胞解析を簡便かつ比較的安価に行うことが可能となることが見込まれることから、細胞応答メカニズムの早期解明に貢献できる。また、本発明のマイクロウェル装置は、細胞組織診断への適用や、再生医療研究のツールとしても期待される。
１ マイクロウェル装置
２ マイクロウェルプレート
３ カバー部材
４ 開口
５ マイクロウェル配置部分
６ 流路
７ 溝
８ 第１区画
９ 第２区画
１０ マイクロウェル
１１ 細胞
２ マイクロウェルプレート
３ カバー部材
４ 開口
５ マイクロウェル配置部分
６ 流路
７ 溝
８ 第１区画
９ 第２区画
１０ マイクロウェル
１１ 細胞
Claims (5)
- 複数のマイクロウェルを備え、
前記マイクロウェルが、１個の細胞を補足する第１区画と、該第１区画に連通して設けられる第２区画とを備え、
前記第２区画の容積が、前記第１区画の容積より大きく、
前記連通は、前記第１区画に補足された細胞が、第２区画に落下しないように構成されることを特徴とする、マイクロウェルプレート。 - （ａ）請求項１に記載のマイクロウェルプレートと、
（ｂ）前記マイクロウェルプレートの前記第１区画に対向して配置されるカバー部材と、
を備えることを特徴とする、マイクロウェル装置。 - 前記マイクロウェルプレートと前記カバー部材との間に画成される流路を更に備える、請求項２に記載のマイクロウェル装置。
- 請求項３に記載のマイクロウェル装置の前記流路に細胞懸濁液を流入させて、前記マイクロウェルの前記第１区画に１個の細胞を補足させる細胞補足工程と、
前記第１区画に補足された細胞の各細胞に由来する成分を、各マイクロウェル内で解析する細胞解析工程と、
を含むことを特徴とする、細胞解析方法。 - 請求項１に記載のマイクロウェルプレートの製造方法であって、
（ａ）前記マイクロウェルプレートのマイクロウェルの鋳型を、光硬化性樹脂を硬化させて得る鋳型硬化工程と、
（ｂ）前記鋳型硬化工程の後に、前記硬化した光硬化性樹脂のまわりに気相蒸着法によりパリレンを蒸着させるパリレン蒸着工程と、
（ｃ）前記パリレン蒸着工程の後に、前記パレリンが蒸着した鋳型にシリコーンゴムをキャスティングするキャスティング工程と、
（ｄ）前記キャスティング工程の後に、キャスティングされたシリコーンゴムから前記鋳型を離型する離型工程と、
を含むことを特徴とする、マイクロウェルプレートの製造方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2015044934A JP6579465B2 (ja) | 2015-03-06 | 2015-03-06 | マイクロウェルプレート、マイクロウェル装置、細胞解析方法及びマイクロウェルプレートの製造方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2015044934A JP6579465B2 (ja) | 2015-03-06 | 2015-03-06 | マイクロウェルプレート、マイクロウェル装置、細胞解析方法及びマイクロウェルプレートの製造方法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JP2016163549A true JP2016163549A (ja) | 2016-09-08 |
| JP6579465B2 JP6579465B2 (ja) | 2019-09-25 |
Family
ID=56875739
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP2015044934A Expired - Fee Related JP6579465B2 (ja) | 2015-03-06 | 2015-03-06 | マイクロウェルプレート、マイクロウェル装置、細胞解析方法及びマイクロウェルプレートの製造方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP6579465B2 (ja) |
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2018170986A (ja) * | 2017-03-31 | 2018-11-08 | ソニー株式会社 | 細胞の代謝を測定するためのマイクロチップ、細胞の代謝を測定するための装置、細胞の代謝を測定する方法及び細胞の代謝を測定するためのシステム |
| JP2020504616A (ja) * | 2016-12-30 | 2020-02-13 | エクセラ・バイオサイエンシーズ・インコーポレイテッドＸｃｅｌｌａ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ， Ｉｎｃ． | マルチステージサンプル回収システム |
| US11473081B2 (en) | 2016-12-12 | 2022-10-18 | xCella Biosciences, Inc. | Methods and systems for screening using microcapillary arrays |
| JP7395175B2 (ja) | 2019-09-30 | 2023-12-11 | サムコ株式会社 | 水プラズマによる透明樹脂の接合方法 |
Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2007504816A (ja) * | 2003-09-10 | 2007-03-08 | オバチュアー リサーチ インコーポレイティド | 細胞、胚または、卵母細胞を取り扱う装置と方法 |
-
2015
- 2015-03-06 JP JP2015044934A patent/JP6579465B2/ja not_active Expired - Fee Related
Patent Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2007504816A (ja) * | 2003-09-10 | 2007-03-08 | オバチュアー リサーチ インコーポレイティド | 細胞、胚または、卵母細胞を取り扱う装置と方法 |
Cited By (6)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US11473081B2 (en) | 2016-12-12 | 2022-10-18 | xCella Biosciences, Inc. | Methods and systems for screening using microcapillary arrays |
| JP2020504616A (ja) * | 2016-12-30 | 2020-02-13 | エクセラ・バイオサイエンシーズ・インコーポレイテッドＸｃｅｌｌａ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ， Ｉｎｃ． | マルチステージサンプル回収システム |
| JP7208902B2 (ja) | 2016-12-30 | 2023-01-19 | エクセラ・バイオサイエンシーズ・インコーポレイテッド | マルチステージサンプル回収システム |
| JP7447217B2 (ja) | 2016-12-30 | 2024-03-11 | エクセラ・バイオサイエンシーズ・インコーポレイテッド | マルチステージサンプル回収システム |
| JP2018170986A (ja) * | 2017-03-31 | 2018-11-08 | ソニー株式会社 | 細胞の代謝を測定するためのマイクロチップ、細胞の代謝を測定するための装置、細胞の代謝を測定する方法及び細胞の代謝を測定するためのシステム |
| JP7395175B2 (ja) | 2019-09-30 | 2023-12-11 | サムコ株式会社 | 水プラズマによる透明樹脂の接合方法 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JP6579465B2 (ja) | 2019-09-25 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Neužil et al. | Revisiting lab-on-a-chip technology for drug discovery | |
| Yang et al. | Engineered tools to study intercellular communication | |
| Zhang et al. | Applications of microfluidics in stem cell biology | |
| Zhou | The recent development and applications of fluidic channels by 3D printing | |
| JP6579465B2 (ja) | マイクロウェルプレート、マイクロウェル装置、細胞解析方法及びマイクロウェルプレートの製造方法 | |
| Li et al. | Injection molded microfluidics for establishing high-density single cell arrays in an open hydrogel format | |
| Joshi | Cells and organs on chip—A revolutionary platform for biomedicine | |
| WO2016005741A1 (en) | Cell positioning and analysis device | |
| Li et al. | A plug-and-play, drug-on-pillar platform for combination drug screening implemented by microfluidic adaptive printing | |
| Lovchik et al. | Overflow microfluidic networks for open and closed cell cultures on chip | |
| KR101831531B1 (ko) | 생체 시료의 선별적 분석방법 | |
| Puleo et al. | Applications of MEMS technologies in tissue engineering | |
| Sun et al. | Functional stem cell sorting via integrative droplet synchronization | |
| Han et al. | Photoactivated selective release of droplets from microwell arrays | |
| Erdman et al. | Microfluidics-based laser cell-micropatterning system | |
| Han et al. | Large-scale investigation of single cell activities and response dynamics in a microarray chip with a microfluidics-fabricated microporous membrane | |
| KR101434048B1 (ko) | 세포 박편 표본의 제조 방법 | |
| WO2013021035A1 (en) | Microfluids for cell-based assays | |
| US20240033727A1 (en) | Reagent exchange methods, devices, and systems | |
| Vecchione et al. | Confined gelatin dehydration as a viable route to go beyond micromilling resolution and miniaturize biological assays | |
| US20200009561A1 (en) | Tools and methods for isolation and analysis of individual components from a biological sample | |
| KR20220027661A (ko) | R2r 공정을 이용한 오가노이드 실시간 모니터링 장치 제조 | |
| Solanki et al. | Biological applications of microfluidics system | |
| Duarte et al. | A review of the recent achievements and future trends on 3D printed microfluidic devices for bioanalytical applications | |
| Bae et al. | Double-Sided Microwells with a Stepped Through-Hole Membrane for High-Throughput Microbial Assays |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| A621 | Written request for application examination |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621 Effective date: 20180306 |
|
| A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A821 Effective date: 20180306 |
|
| A977 | Report on retrieval |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A971007 Effective date: 20190123 |
|
| A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20190212 |
|
| A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20190408 |
|
| TRDD | Decision of grant or rejection written | ||
| A01 | Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01 Effective date: 20190723 |
|
| A61 | First payment of annual fees (during grant procedure) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61 Effective date: 20190816 |
|
| R150 | Certificate of patent or registration of utility model |
Ref document number: 6579465 Country of ref document: JP Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150 |
|
| LAPS | Cancellation because of no payment of annual fees |