JP2015504490A

JP2015504490A - 抗菌性織物

Info

Publication number: JP2015504490A
Application number: JP2014541804A
Authority: JP
Inventors: フクレットゥン・サヒン; セラミ・デミルジ; ゼイネップ・ウスタオグル
Original assignee: BACTOGEN BIYOTEKNOLOJIK URUNLER SANAYI VE TICARET AS
Current assignee: BACTOGEN BIYOTEKNOLOJIK URUNLER SANAYI VE TICARET AS
Priority date: 2011-11-16
Filing date: 2012-11-16
Publication date: 2015-02-12
Also published as: EP2780500A1; CN104204340A; US20140294905A1; WO2013072883A1

Abstract

本発明は、抗真菌特性、抗カンジダ特性および抗菌特性を備えた織物に関する。本発明の目的は、織物によって伝染またはまん延する感染の発生率を低下させ、衛生状態を確実にするための追加費用とエネルギーの損失を低下させ、そして使い捨ての織物の衛生条件を強化する抗菌性織物を実現することである。織物は、3つの方法で抗菌特性を備えることができる。第1の方法では、メタノールにホウ酸ナトリウムを溶かし、次に布地に固定する。第2の方法では、水にホウ酸ナトリウムを溶かし、次に布地の上にスプレーする。第3の方法では、水にホウ酸ナトリウムを溶かし、繊維染料と混合し、染料として適用する。ディスク拡散分析に基づいて、38種の細菌種、9種の酵母および11種の菌類の分離株の上でホウ酸ナトリウムの抗菌特性をテストする。

Description

＜技術的背景＞
本発明は、抗真菌特性、抗カンジダ特性および抗菌特性を備えた織物に関する。

＜従来の技術＞
何千年もの間、人類が生産し使用してきた天然繊維は、一般に動植物から作られていた。しかしながら、前世紀には、天然繊維から生産された織物は、ナイロン、ビスコースもしくはレーヨンまたはそれらの組み合わせなどのポリマーに取って代わられた。現代のテキスタイルでは、天然繊維は、織物製品の新しい特性を実現するために、化学繊維に取って代わられてきた。目標とされる特性の例として、高弾性または疎水性の特徴を与えることができる[1]。

天然製品は栄養素に富んでいるので、それらは微生物の生命に適した環境を提供する。カビ(moulds)、酵母(yeasts)および細菌(bacteria)などの微生物は、一般的には、どんな環境にも順応して、急速に成長する。断熱性の悪い建物の内面における相対湿度が高いことにより、微生物叢の季節的要因による増加が見られる屋内での細菌および菌類胞子の成長は、そのような場所に住む人々にアレルギーの問題を引き起こすだけでなく、いくつかの臨床的に重大な疾病の感染源となる。さらに、そのような条件下で成長する微生物のうちのいくつかは、通常の条件では環境生物と認められるにもかかわらず、自己免疫疾患を引き起こし、または、日和見病原体として免疫不全者に様々な疾病を引き起こす。いくつかの研究は、病院が多くの感染症の伝染の根本的な原因であることを示す[2]。世界保健機構(WHO)のデータによれば、入院治療を受けた患者のおよそ10人に1人は、「院内感染」を受けることになる。WHOは、この問題が先進国よりも開発途上国においてより深刻であり、一般に、十分な衛生条件の欠如、そして院内感染の重要性および感染を制御する重要性に対する意識の欠如のためだと示している[3]。

院内感染は、患者の有する既存の愁訴を引き起こしている臨床症状とは別の疾病をすべて含む。患者の入院後2〜3時間で、患者の自然の細菌叢(natural flora)は、環境内の細菌叢を受け入れ始める。多くの感染ケースでは、病院に入院後48時間で、臨床的に顕在化する。このことは、病院で新たに感染したことを示す。患者の入院後数時間以内に、微生物は、患者の皮膚、気道および泌尿生殖器系で成長し且つ生成し始める[4]。

衛生状態は、社会を発展させる際の清潔の重要な基準だった。しかしながら、あまりにも衛生的な環境は、望まない結果を引き起こし得る。微生物負荷(a load of microorganisms)に人体を露出すると、身体の防御システムが活性化されて、微生物に対する免疫ができる。近年の生活基準の改善と並行して人間の平均寿命も向上したが、個人の微生物に対する耐性は低くなっている。これは、微生物に、抗生物質に対する耐性ができたという事実によるものであり、その結果、抗生物質中の有効成分の量は徐々に増加してきた[2]。メチシリン耐性黄色ブドウ球菌(MRSA)は、抗生物質に対する耐性を獲得した細菌の例である。耐性微生物(抵抗菌:Resistant microorganisms)は、特に病院において、深刻な病原性および流行性の症例を引き起こす。そのような感染は、細菌のみならず、真菌によっても起こり得る。真菌感染の治療費は、細菌感染の治療費より高い[5]。

研究によれば、病院で入院治療を受ける患者の3〜10%が、複数の抗生物質に対して耐性のある病原体に感染し、それにより、治療費の増加に加えて病院に長期入院することが示されている。いくつかのケースでは、死に至ることさえある。米国では、200万人以上が院内感染により、5000〜5500ドルの追加費用の影響を受けている[5]。

手術室の衛生状態の問題は、病院での微生物汚染への暴露の原因の1つである。外科的感染を引き起こす第1の病原体はブドウ球菌である(25.8%)。2番目によく見られる病原体は腸内細菌であり、12.4%である。それら２つに続いて、連鎖球菌種が11.2%、コアグラーゼ陰性ブドウ球菌が10.1%、腸球菌種が7.9%、緑膿菌が6.7%、そしてますます且つ急速な伝染性のMRSAが4.5%である。MRSAに感染した患者の割合は、1995年には9%であったのに対して、2000年は30%であった[9]。通常の黄色ブドウ球菌の分離株(Normal Staphylococcus aereus isolate)は、皮膚や軟組織の感染、骨および関節の感染、肺炎および血管の感染を引き起こす最も一般的な病原体である。黄色ブドウ球菌の感染数はここ20年で増加し、そして黄色ブドウ球菌(S. aereus)は、最も一般的な病原体となり、MRSAの発生後は病院と保健所で大問題になった[8]。

2009年から行われているJohn M. Boyceの研究には、メチシリン耐性黄色ブドウ球菌(MRSA)およびバンコマイシン耐性腸球菌(VRE)は、閉鎖された病院エリアに、かなり長期間にわたって残存できると報告している。これらが、訪問客、看護師および介護士が触れる表面を汚染し、病室内での微生物のコロニー形性が始まる。病原体は、内科医、看護師および介護士の日常業務中に、頻繁に触れられる表面を介して、患者に使用する医療消耗品および化学薬品により、または病院内で伝染され得る。MRSA、VREおよびクロストリジウム・ディフィシレなどの病原体は、フォーマイカなどの材料の上で14日以内、コットンの表面で6〜9週間、残存できる[10]。

洗濯物を洗濯機の中で一緒に洗うので、洗濯工程中の相互汚染(Cross-contamination)のリスクはかなり高い。微生物は、洗濯前に積み上げている間に、そして洗濯中に布地から布地へと移動するそれらはさらに機械内に留まり、次に洗われる洗濯物の山に移動する[11]。このリスクは、ホテル、病院、宿舎などの人口の多い場所で使用されて洗濯される衣類ではかなり高い。織物が清潔になり、汚れやシミがなく、汚染のリスクを生じる全ての要因および薬剤(agent)が除去されたときにのみ、衣類の衛生状態について語ることが可能になる。病院で使用される織物は、多くの病原性の微生物を有しているので、これらの製品をシミから清潔にするだけでは十分ではなく、微生物叢を除去することが必要である[12]。

衣類の衛生状態の改善に関する研究は、衛生意識の増加に伴って発展してきた。科学者は、洗濯工程によって、布地上の微生物負荷が著しく減少することに同意する。微生物負荷(microbial load)と感染との間の関連性を確立する出版物が今までなかったという事実にもかかわらず、ヨーロッパおよび各地からのデータは、微生物負荷が洗濯工程後にも織物に存在し続けることを示す[11]。したがって、下敷き(under sheets)、手術用ドレープ(surgical drapes)、手術器具の下に敷かれるドレープ、患者、医者およびスタッフ用のエプロン、マスク、ならびに患者用スリッパなどの織物は、使い捨ての製品である。

今日では、ディスポーザブルな使い捨て製品は、一般的に、殺菌して使用可能になる。しかしながら、殺菌された製品は、それらを開封するまでは、微生物負荷を含んでいない。開封した製品はすべて、それらが空気、表面または手と接触することにより、微生物の成長に適した環境を構成する。

特開2011-052338は、抗菌織物およびその特定の織物を得るための方法に言及している。この文献では、その製品を得るために、まず亜鉛または銅イオンの少なくとも1つと、次いでアルカリ金属酸化物およびアルミナを使用することが必要であると述べている。

使用された織物は、今までのところ、微生物の成長に適した環境を提供している。本明細書における本発明では、織物にホウ酸ナトリウムを適用することにより、抗菌特性が得られることを見いだした。

本発明の目標は、抗菌特性を有する織物を実現することである。

本発明の別の目標は、織物によって伝染する感染の発生率を低下させる抗菌特性を有する織物を実現することである。

本発明の別の目標は、衛生状態を確実にするための追加費用とエネルギーの損失を低下させる抗菌特性を有する織物を実現することである。

この発明の別の目標は、ディスポーザブルの（使い捨ての）織物の衛生条件を強化する抗菌性織物(又は抗菌性繊維：antimicrobial textiles)を実現することである。

＜発明の詳細な説明＞
本発明の目標を果たすために達成された抗菌性織物は、添付の図中に示されている。これらは以下のとおりである。

pHを10に設定した10%のホウ酸ナトリウム溶液を様々な量でスプレーすることで得られた織物の、大腸菌に対する効果を示す。 pHを10に設定した10%のホウ酸ナトリウム溶液を様々な量でスプレーすることで得られた織物の、黄色ブドウ球菌に対する効果を示す。 pHを10に設定した10%のホウ酸ナトリウム溶液を様々な量でスプレーすることで得られた織物の、カンジダ・アルビカンスに対する効果を示す。 pHを10に設定した7%のホウ酸ナトリウム溶液を様々な量でスプレーすることで得られた織物の、カンジダ・グラブラタに対する効果を示す。 pHを10に設定した7%のホウ酸ナトリウム溶液を様々な量でスプレーすることで得られた織物の、黒色アスペルギルス(黒色コウジ菌: Aspergillus niger)に対する効果を示す。 7%のナトリウムホウ酸塩メタノール溶液からの固定によって得られた織物の、黄色ブドウ球菌に対する効果を示す。 10%のナトリウムホウ酸塩メタノール溶液からの固定によって得られた織物の、カンジダ・アルビカンスに対する効果を示す。 15%のナトリウムホウ酸塩メタノール溶液からの固定によって得られた織物の、ペニシリウム・エクパンサムに対する効果を示す。

＜発明の詳細な説明＞
（実験的研究）
本発明の対象である抗菌性織物を得るために、3つの異なる方法を使用する。

（第1の方法:）
この方法では、まずメタノールにホウ酸ナトリウムを溶かし、次に布地に固定する。この研究では、100mlのメタノール＋5〜15gのホウ酸ナトリウムの混合物中で、メタノールにホウ酸ナトリウムを溶解して溶液を生成し、超音波浴を45℃にセットする。使用される織物をこの溶液中に置き、そして、溶液内のメタノールが蒸発するまで、70℃にセットしたオーブン中にそれらを一緒に置く。布地が乾燥すると、織物にホウ酸ナトリウムが固定される。使用された布地の基材は、繊維工業(textile industry)で使用される任意の種類の織物とすることができる。

（第2の方法:）
本発明に適用される別の方法では、pHの高い水(pH:10)にホウ酸ナトリウムを溶かし、次に布地の上にスプレーする。その後、0.2〜0.8L/m²の割合で、5〜15%のホウ酸ナトリウム溶液を織物に均一にスプレーする。スプレー後、織物を乾かすために放置する。ホウ酸ナトリウムの水への溶解度は、室温で約2〜3%である。しかしながら、NaOHを加えて水のpHを10まで増加させると、ホウ酸ナトリウムの水への溶解度も増加する。これにより、室温で、5〜15%のホウ酸ナトリウム水溶液を得ることができる。その結果、ホウ酸ナトリウム溶液を吹きかけた織物は、抗菌特性を獲得する。

（第3の方法:）
本発明の最後の方法では、水に溶かしたホウ酸ナトリウムは、それを適用する前に、繊維染料(textile dye)と混合される。そのpHも増加するにつれて、ホウ酸ナトリウムの水への溶解度が増加する。したがって、水性繊維染料の溶剤(the base of the water-based textile dye)を、5〜15%のホウ酸ナトリウム溶液で調製し、そのpHを10に設定する。その後、この混合物は、所望の色を得るために繊維染料と所定の割合で混合される。

その後、スプレーまたは固定法により、その混合物を織物に適用（または塗布）する。

＜テスト研究＞
（改良されたディスク拡散法）
テストされる各微生物上でのホウ酸ナトリウムの抗菌作用を識別するのに使用するために、標準NCCLSディスク拡散法[13]を改良する。新しい培養物(cultures)から、108cfu/mlの細菌、106cfu/mlの酵母および104胞子/mlのカビを含む溶液100μlを調製し、そして、トリプケースソイ寒天培地(TSA)、サブローデキストロース寒天培地(SDA)およびポテトデキストロース寒天培地(PDA)の各々に、拡散法を用いて接種(植え付け:inoculated)される。空のディスク上に滅菌水20μlを滴下し、次に、ディスクに粉末状(powder format)のホウ酸ナトリウムをつける(dip)。その後、ホウ酸ナトリウムをつけたディスクを、接種済みのペトリ皿の上に置く。陰性対照(negative control)として、滅菌水20μlを滴下したブランクディスク(blank discs)を使用する。陽性対照(positive control)として、それぞれオフロキサシン(10μg/ディスク)およびナイスタチン(30μg/ディスク)を、それぞれ細菌と菌類に使用する。

改良されたディスク拡散法を適用した接種済みのペトリ皿を、細菌用は36±1℃で24時間、酵母用は36±1℃で48時間、カビ用は25±1℃で72時間、維持する。改良されたディスク拡散法でテストされた微生物について、抗菌活性阻害ゾーン(Antimicrobial activity inhibition zone)（微生物が成長しないゾーン)を測定し評価する。全てのテストは、少なくとも2度繰り返す。試験されたホウ素化合物の抗菌作用のテスト結果を表１にまとめる。

（抗菌性テスト）
3つの異なる技術で調製されたホウ酸ナトリウム添加織物(Sodium borate-added textiles)と、ホウ酸ナトリウムを加えていない未処理の織物とを、微生物を接種したペトリ皿に置いて、それらの抗菌効率(antimicrobial efficiency)をテストする。

メタノールで固定したホウ酸ナトリウム添加織物、pH強化水(pH-enhanced water)に溶かしたホウ酸ナトリウムをスプレーした織物、およびホウ酸ナトリウムを添加して調製された溶剤の水性繊維染料によって染色された織物をテストする。陰性対照として、未処理の織物上での微生物の成長を阻害する潜在的な影響を観察する。陽性対照として、オフロキサシン(10μg/ディスク)とナイスタチン(30μg/ディスク)を、細菌と菌類にそれぞれ使用する。接種済みのペトリ皿を、細菌用は37℃で24時間、酵母用は37℃で48時間、カビ用は室温で72時間、維持する。テストされた抗菌活性は、取り扱った微生物の阻害ゾーンの測定によって評価する。全てのテストは、少なくとも2度繰り返す。

実験は、微生物のうちのいくつかの菌類および細菌で行われた。実験された細菌の種類は、アシネトバクター・バウマンニ(Acinetobacter baumannii)、アシネトバクター・カルコアセティカス(Acinetobacter calcoaceticus)、アシネトバクター遺伝種(Acinetobacter genomospecies)、アクチノマヅラ・クリミア(Actinomadura cremea)、バチルス・コアグランス(Bacillus coagulans)、バシラス・メガテリウム(Bacillus megaterium,)、枯草菌(Bacillus subtilis)、ブレブノディモナス・ベシキュラーリス(Brevundimonas vesicularis)、イネもみ枯細菌病(Burkolderia glumea)、セルロサイマイクロビウム・セルランス(Cellulosimicrobium cellulans)、クリセオバクテリウム・バルスティナス(Chryseobacterium balustinus)、クリセオバクテリウム・メニンゴセプティカム(Chryseobacterium meningosepticum)、ドガネラ・ズーグロオイデス(Duganella zoogloeoides)、エンテロコッカス・フェシウム(Enterococcus faecium)、大腸菌(Escherichia coli)、ゴードニア・ルブロペンティクチック(Gordonia rubropentinctuc)、ゴードニア・スプーチ(Gordonia sputi)、ハイドロゲノファーガ・シュードフラーバ(Hydrogenophaga pseudoflava)、ノカルジア・ブラジリエンシス(Nocardia brasiliensis)、ノカルジア・グロベルラ(Nocardia globerula)、ノカルジア・トランスバレンシス(Nocardia transvalensis)、トウモロコシ萎凋ちょう細菌病菌(Pantoea stewartii ss stewartii)、緑膿菌(シュードモナス・エルジノーサ:Pseudomonas aeruginos)、シュードモナス・クロロラフィス(Pseudomanas chlororaphis)、シュードモナス・フルオレスセンス(Pseudomonas flourescens)、黒斑細菌病(シュードモナス・マクリコラ:Pseudomonas maculicola)、シュードモナス・プチダ(Pseudomonas putida)、シュードキサントモナス種(Pseudoxanthomonas spp.)、ペディオコッカス・アシディラクティシ/パルブルス(Pediococcus acidilactici/parvulus)、プロビデンシアン・ハイムバッハ(Providencian heimbachae)、ロドコッカス・ロドニイ(Rhodococcus rhodnii)、スフィンゴモナス・テラエ(Sphingomonas terrae)、コリネバクテリア種(Corynebacterium spp.)、スフィンゴモナス・サングイニス(Sphingomonas sanguinis)、黄色ブドウ球菌(Staphylococcus aureus)、メチシリン耐性黄色ブドウ球菌(MRSA)、スタフィロコッカス・ホミニス・ホミニス(Staphylococcus hominis hominis)、ステノトロホモナス・マルトフィリア(Stenotrophomonas maltophlia)、キサントモナス種(Xanthomonas spp.)である。

実験された酵母の種類は、カンジダ・アルビカンス(Candida albicans)、カンジダ・グラブラタ(Candida glabrata)、カンジダ・パラシローシス(Candida parapsilosis)、カンジダ・トロピカリス(Candida tropicalis)、フィロバジエラ‐ネオフォルマンス(Filobasidiella neoformansve)、ハイフォピキア・バートニイ(Hyphopichia burtanii)、クルイベロマイセス・マルシアヌス(Kluyveromyces marxianus)、ピキア・メンブラニーファシエンス(Pichia membranifaciens)およびシュワンニオミセス・オシデンタリス(Schwanniomyces occidentalis) である。

実験で使用された菌類の種類は、アスペルギルス種(Aspergillus spp.)、アルタナリア種(Alternaria spp.)、ボトリティス種(Botrytis spp.)、フザリウム種(Fusarium spp.)、ペシロミセス・リラシナス(Paecilomyces lilacinus)、ペニシリウム・チャールズii(Penicillium charlesii)、ペニシリウム・エクパンサム(Penicillium expansum)、ペニシリウム・ビナセウム(Penicillium vinaceum)、フィチウム種(フハイカビ種: Pythium spp.)、フィトフトラ種(疫病菌:Phytophthora spp.)およびスクレロティニア・スクレロティイラム(Sclerotinia sclerotiorum)です。

＜実験結果＞
（抗菌性テストの結果）
テストされた微生物に対する阻害ゾーンが、本発明の対象である抗菌性織物を得るために3つの異なる方法で調製されたホウ酸ナトリウム添加織物から得られたサンプルの区画の周りで観察されるのに対して、対照群の織物サンプルの区画の周りには阻害ゾーンは観察されない（表2）。

本発明の対象である織物は、医療分野における透析フィルタ、救急絆創膏(band-aids)、手術衣、マスク、スクラブハットおよびキャップ（手術帽子）、ガットならびに外科用布用に、被服産業用に、仕事着用に、融着および芯地用に、下着用に、衛生状態が要求される乳幼児の衣類用に、カーペット、カーテン、フロアタイル、テーブルクロス、ベッドカバーおよび衛生状態が要求されるその他すべての家庭用織物用に、使用することができる。これらに加えて、建設部門において、微生物の成長を防止し、そしてそれらが引き起こし得る潜在的な腐食を防止するために、羽目板および断熱要素用に使用することができる。

＜引用文献＞
1. Askew, Peter D., "Measuring activity in antimicrobial textiles（抗菌性織物中の活性の測定）", Chemistry Today, vol. 27, January-February 2009.
2. Johannes Oosterom, "The importance of hygiene in modern society（近代社会における衛生の重要性）", International Biodeterioration & Biodegradation, Volume 41, Issues 3-4, Pages 185-189, 1998.
3. World Helth Organization, "Prevention of hospital-acquired infections（院内感染の予防）", 2002.
4. Quoc V Nguyen, "Hospital-Acquired Infections（院内感染）", Journal of Hospital Infection, 2004.
5. W.H. Sheng, J.T. Wang, D.C.T. Lu, W.C. Chie, Y.C. Chen, S.C. Chang, "Comparative impact of hospital-acquired infections on medical costs, length of hospital stay and outcome between community hospitals and medical centres（医療費、入院期間の長さ、及び地域病院と医療センターとの間の業績に対する院内感染の影響）", Journal of Hospital Infection, Volume 59, Issue 3, Pages 205-214, March 2005.
6. L.T. Curtis, "Prevention of hospital-acquired infections: review of non-pharmacological interventions（院内感染の予防: 非薬理学的介入の調査）", Journal of Hospital Infection, 69(3):204-19, Epub, 2008 Jun 2.
7. Weigelt JA, Lipsky BA, Tabak YP, Derby KG, Kim M, Gupta V., "Surgical site infections: Causative pathogens and associated outcomes（手術部位感染: 原因となる病原体および関連する結果）", Am J Infect Control,
38(2):112-20, 2010 March.
8. Cheol-In Kang, Jae-Hoon Song, Doo Ryeon Chung et al., "Clinical impact of methicillin resistance on outcome of patients with Staphylococcus aureus infection: A stratified analysis according to underlying diseases and sites of infection in a large prospective cohort（黄色ブドウ球菌に感染した患者の結果へのメチシリン耐性の臨床的影響: 大きなプロスペクティブコホート中での伝染の基礎疾患および感染部位よる層別分析）", Journal of Infection, Volume 61, Issue 4, Pages 299-306, October 2010.
9. Carol A. Cantlon, Mary E. Stemper, William R. Schwan, Michael A. Hoffman, Salah S. Qutaishat, "Significant pathogens isolated from surgical site infections at a community hospital in the Midwest（中西部の地域病院で手術部位感染から分離された重大な病原体）", American Journal of Infection Control, Volume
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11. Elaine L. Larson, "Home hygiene: A remerging issue for the new millennium（家庭衛生:新世紀に残された問題）", American Journal of Infection Control, Volume 27, Issue 6, Pages S1-S3, 1999 December.
12. S. Fijan, S. Sostar-Turk, A. Cencic, "Implementing hygiene monitoring systems in hospital laundries in order to reduce microbial contamination of hospital textiles（病院の織物の微生物汚染を低下させるための病院の洗濯室における衛生モニタリングシステムの実行）",Journal of Hospital Infection, 61(1):30-8, 2005 September.
13. Lalitha, M. K. and T. N. Vellore, "Manual on antimicrobial susceptibility testing（抗菌薬感受性試験のマニュアル）", URL: http://www. ijmm. org/documents/Antimicrobial. doc, 2005.

Claims

織物にホウ酸ナトリウムを適用して得られた抗菌性織物。
メタノール100mlにホウ酸ナトリウム5〜15gを溶かした溶液で特徴付けられる請求項１に記載の抗菌性織物。
45℃のホウ酸ナトリウムのメタノール溶液で特徴付けられる請求項２に記載の抗菌性織物。
前記織物に適用されたホウ酸ナトリウムメタノール溶液の蒸発で特徴付けられる請求項３に記載の抗菌性織物。
前記織物に適用された前記ホウ酸ナトリウムメタノール溶液の70℃での蒸発で特徴付けられる請求項４に記載の抗菌性織物。
pH10の水へのホウ酸ナトリウムの溶解で特徴付けられる請求項１に記載の抗菌性織物。
織物への5〜15%のホウ酸ナトリウム溶液の適用で特徴付けられる請求項６に記載の抗菌性織物。
0.2〜0.8L/m²の割合での織物への5〜15%のホウ酸ナトリウム溶液の適用で特徴付けられる請求項７に記載の抗菌性織物。
5〜15%のホウ酸ナトリウム溶液の繊維染料との混合物で特徴付けられる請求項１に記載の抗菌性織物。
前記織物が、アシネトバクター・バウマンニ, アシネトバクター・カルコアセティカス, アシネトバクター遺伝種, アクチノマヅラ・クリミア, バチルス・コアグランス, バシラス・メガテリウム, 枯草菌, ブレブノディモナス・ベシキュラーリス, イネもみ枯細菌病, セルロサイマイクロビウム・セルランス, クリセオバクテリウム・バルスティナス, クリセオバクテリウム・メニンゴセプティカム, ドガネラ・ズーグロオイデス, エンテロコッカス・フェシウム, 大腸菌, ゴードニア・ルブロペンティクチック, ゴードニア・スプーチ, ハイドロゲノファーガ・シュードフラーバ, ノカルジア・ブラジリエンシス, ノカルジア・グロベルラ, ノカルジア・トランスバレンシス, トウモロコシ萎凋ちょう細菌病菌, 緑膿菌, シュードモナス・クロロラフィス, シュードモナス・フルオレスセンス, 黒斑細菌病, シュードモナス・プチダ, シュードキサントモナス種, ペディオコッカス・アシディラクティシ/パルブルス, プロビデンシアン・ハイムバッハ, ロドコッカス・ロドニイ, スフィンゴモナス・テラエ, コリネバクテリア種, スフィンゴモナス・サングイニス, 黄色ブドウ球菌, メチシリン耐性黄色ブドウ球菌, スタフィロコッカス・ホミニス・ホミニス, ステノトロホモナス・マルトフィリア, キサントモナス種の菌種でテストされたことを特徴とする請求項１に記載の抗菌性織物。
前記織物が、カンジダ・アルビカンス, カンジダ・グラブラタ, カンジダ・パラシローシス, カンジダ・トロピカリス, フィロバジエラ‐ネオフォルマンス, ハイフォピキア・バートニイ, クルイベロマイセス・マルシアヌス, ピキア・メンブラニーファシエンス, シュワンニオミセス・オシデンタリスに対する抗カンジダ特性によって特徴付けられる請求項１に記載の抗菌性織物。
前記織物が、アスペルギルス種, アルタナリア種, ボトリティス種, フザリウム種, ペシロミセス・リラシナス, ペニシリウム・チャールズii, ペニシリウム・エクパンサム, ペニシリウム・ビナセウム, フィチウム種, フィトフトラ種, スクレロティニア・スクレロティイラムに対する抗真菌特性によって特徴付けられる請求項１に記載の抗菌性織物。
医療分野における透析フィルタ、救急絆創膏、手術衣、マスク、スクラブハットおよびキャップ、ガットならびに外科用布用、被服産業用、仕事着用、融着および芯地用、下着用、衛生状態が要求される乳幼児の衣類用、カーペット、カーテン、フロアタイル、テーブルクロス、ベッドカバーならびに衛生状態が要求されるその他すべての織物の原料および補助的製品用に使用できる請求項１に記載の抗菌性織物。