JP2015177748A - Methods for producing lactic acid bacterial producing material, lactic acid bacterial producing material and inhibitors of allergic dermatitis - Google Patents
Methods for producing lactic acid bacterial producing material, lactic acid bacterial producing material and inhibitors of allergic dermatitis Download PDFInfo
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- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Description
本発明は、複数の乳酸菌を用いる乳酸菌生産物質の製造方法及び乳酸菌生産物質に関する。 The present invention relates to a method for producing a lactic acid bacterium-producing substance using a plurality of lactic acid bacteria and a lactic acid bacterium-producing substance.
近年の食生活の多様化・大量消費化が進行するのに伴い、食生活・食習慣の改善が謳われている。特に、栄養過多や運動不足を原因とする生活習慣病やメタボリック症候群等に注目が集まっているが、これらに対する有効な予防法が確立されておらず、生活習慣の改善以外に有効な打開策が存在しない状況にある。
この状況において、摂取することで健康増進につながる健康食品に注目が集まっており、そのような健康食品として特に乳酸菌を含有するものが着目されている。乳酸菌は、免疫力の向上、成人病の予防等、様々な健康維持にあたり有益な効果を得られることが期待されている。これは、外部から取り込んだ乳酸菌によって腸内環境が整えられ、腸管免疫機能が向上することから得られる効果であると考えられている(例えば特許文献1参照)。
この乳酸菌を摂取する方法としては、例えば乳酸菌の生菌を含有するヨーグルトなどの発酵食品や飲料、健康食品などの形で摂取する方法が知られている。しかし、実際には、乳酸菌を外部から摂取した場合であっても、その多くは例えば胃酸及び消化酵素の作用によって死滅し、小腸まで届くものはわずかであると言われている。そこで、本発明者らは乳酸菌の生菌を摂取するよりも、乳酸菌を培養することによって得られる物質(乳酸菌生産物質)を摂取することに着目した。
With the recent diversification and mass consumption of eating habits, improvements in eating habits and eating habits are sought. In particular, attention has been focused on lifestyle-related diseases and metabolic syndrome caused by overnutrition and lack of exercise, but effective preventive methods for these have not been established, and effective breakthroughs other than lifestyle improvements have been established. The situation does not exist.
In this situation, attention has been focused on health foods that, when ingested, lead to health promotion, and those containing lactic acid bacteria have attracted attention as such health foods. Lactic acid bacteria are expected to have beneficial effects in various health maintenance such as improving immunity and preventing adult diseases. This is considered to be an effect obtained from the fact that the intestinal environment is adjusted by lactic acid bacteria taken from outside and the intestinal tract immune function is improved (see, for example, Patent Document 1).
As a method of ingesting lactic acid bacteria, for example, a method of ingesting fermented foods such as yogurt containing live bacteria of lactic acid bacteria, beverages, health foods, and the like is known. However, in fact, even when lactic acid bacteria are ingested from the outside, it is said that many of them are killed by the action of, for example, gastric acid and digestive enzymes, and few reach the small intestine. Therefore, the present inventors focused on ingesting a substance (lactic acid bacteria-producing substance) obtained by culturing lactic acid bacteria rather than ingesting live bacteria of lactic acid bacteria.
上記の乳酸菌生産物質を摂取することで免疫力向上等の健康促進効果につなげるためには、まず、乳酸菌を効率よく培養して乳酸菌生産物質を大量に製造する方法を確立する必要がある。また、乳酸菌は数百種類が発見されているが、それぞれ性質が異なっており、得られる乳酸菌生産物質の効果にも大きな違いがある。そこで、本発明者らは、乳酸発酵に用いる乳酸菌の種類、組み合わせ、栄養源(培地)等を選択し、組み合わせてさまざまな研究を行った。 In order to lead to health promotion effects such as improving immunity by ingesting the above-mentioned lactic acid bacteria-producing substance, it is first necessary to establish a method for efficiently cultivating lactic acid bacteria and producing a large amount of lactic acid bacteria-producing substance. Hundreds of types of lactic acid bacteria have been discovered, but their properties are different from each other, and there is a great difference in the effect of the resulting lactic acid bacteria-producing substance. Therefore, the present inventors have selected various kinds of lactic acid bacteria used for lactic acid fermentation, combinations, nutrient sources (medium), etc., and conducted various studies in combination.
本発明は、より効率良く、高い健康増進効果を有する乳酸菌生産物質の製造方法を提供することを目的とする。 An object of this invention is to provide the manufacturing method of the lactic-acid-bacteria production substance which has a more efficient and high health promotion effect.
本発明は、ラクトバシラス(Lactobacillus)属に属する乳酸菌と、ラクトコッカス(Lactococcus)属に属する乳酸菌と、エンテロコッカス(Enterococcus)属に属する乳酸菌とを共棲培養する乳酸菌生産物質の製造方法であって、前記乳酸菌から選択した2、3または4種以上の乳酸菌を組み合わせて、その組み合わせに含まれる乳酸菌が異なる複数のグループを作り、そのグループごとに共棲培養する予備培養工程を含む乳酸菌生産物質の製造方法を提供する。 The present invention relates to a method for producing a lactic acid bacterium-producing substance, wherein a lactic acid bacterium belonging to the genus Lactobacillus , a lactic acid bacterium belonging to the genus Lactococcus, and a lactic acid bacterium belonging to the genus Enterococcus , A method for producing a lactic acid bacterium-producing substance comprising a pre-culturing step of combining two, three or four or more lactic acid bacteria selected from the above to form a plurality of groups in which the lactic acid bacteria included in the combination are different and co-culturing each group To do.
前記本発明は、ラクトバシラス(Lactobacillus)属に属する乳酸菌とラクトコッカス(Lactococcus)属に属する乳酸菌を含むグループを作り、ラクトコッカス(Lactococcus)属に属する乳酸菌とエンテロコッカス(Enterococcus)属に属する乳酸菌を含むグループを作り、エンテロコッカス(Enterococcus)属に属する乳酸菌とラクトバシラス(Lactobacillus)属に属する乳酸菌を含むグループを作り、それぞれのグループで共棲培養する予備培養工程を含むものとすることができる。 It said group present invention, containing lactobacilli (Lactobacillus) create a group comprising lactic acid bacteria belonging to Lactobacillus and Lactococcus (Lactococcus) genus belonging to the genus Lactococcus (Lactococcus) Lactobacillus lactic acid bacteria belonging to Enterococcus (Enterococcus) genus belonging to the genus And a group containing lactic acid bacteria belonging to the genus Enterococcus and lactic acid bacteria belonging to the genus Lactobacillus, and a preculture step of coculturing in each group.
前記本発明は、前記ラクトバシラス属に属する乳酸菌として、L.アシドフィラス(Lactobacillus acidophilus)、L.ブレビス(Lactobacillus brevis)、L.カゼイ(Lactobacillus casei)、L.デルブリッキィ(Lactobacillus delbrueckii)、L.デルブリッキィ亜種ブルガリクス(Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus)、L.ガセリ(Lactobacillus gasseri)、L.ヘルベティカス(Lactobacillus helveticus)、L.パラカゼイ亜種パラカゼイ(Lactobacillus paracasei subsp. paracasei)、L.プランタラム(Lactobacillus plantarum)、L.ラモナウサス(Lactobacillus rhamnosus)、L.サリバリウス(Lactobacillus salivarius)の何れかを用い、前記ラクトコッカス属に属する乳酸菌として、L.ガルビアエ(Lactococcus garvieae)、L.ラクティス亜種ラクティス(Lactococcus lactis subsp. lactis)の何れかを用い、前記エンテロコッカス属に属する乳酸菌として、E.デュランス(Enterococcus durans)、E.フェカリス(Enterococcus faecalis)、E.フェシウム(Enterococcus faecium)の何れかを用いるものとすることができる。 The present invention provides L. lactic acid bacteria belonging to the genus Lactobacillus as described above. Lactobacillus acidophilus , L. Brevis ( Lactobacillus brevis ), L. Lactobacillus casei , L. Lactobacillus delbrueckii , L. Lactobacillus delbrueckii subsp. Bulgaricus , L. Gasseri ( Lactobacillus gasseri ), L. Lactobacillus helveticus , L. Paracasei subspecies paracasei (Lactobacillus paracasei subsp. Paracasei), L. Plantarum ( Lactobacillus plantarum ), L. Lmonobasus ( Lactobacillus rhamnosus ), L. Lactobacillus salivarius is used, and lactic acid bacteria belonging to the genus Lactococcus are L. Lactococcus garvieae , L. Lactococcus lactis subsp. Lactis is used as a lactic acid bacterium belonging to the genus Enterococcus. Enterococcus durans , E.I. Enterococcus faecalis , E. Any of fesium ( Enterococcus faecium ) can be used.
前記本発明は、前記E.フェシウムと前記ラクトバシラス属に属する乳酸菌とを含むグループを作り共棲培養する予備培養工程を含むものとすることができる。 The present invention relates to the E.I. A pre-culturing step of forming a group containing fesium and the lactic acid bacteria belonging to the genus Lactobacillus and co-culturing can be included.
前記本発明は、前記E.デュランスと前記ラクトバシラス属に属する乳酸菌とを含むグループを作り共棲培養する予備培養工程を含むものとすることができる。 The present invention relates to the E.I. It may include a pre-culturing step of forming a group containing Durance and the lactic acid bacteria belonging to the genus Lactobacillus and co-culturing.
前記本発明は、前記E.フェシウムと前記E.デュランスとを含むグループを作り共棲培養する予備培養工程を含むものとすることができる。 The present invention relates to the E.I. Fesium and the aforementioned E.I. It is possible to include a pre-culture process in which a group including Durance is formed and co-cultivated.
前記本発明は、前記E.フェシウムと前記E.デュランスとを含むグループを作り、それとは別に前記E.フェシウムと前記E.デュランスとL.ガルビアエとを含むグループを作りそれぞれ共棲培養する予備培養工程を含むものとすることができる。 The present invention relates to the E.I. Fesium and the aforementioned E.I. A group including Durance is created, and separately from the above E.E. Fesium and the aforementioned E.I. Durance and L. A pre-culturing step of forming a group containing galviae and coculturing each of them can be included.
前記本発明は、前記E.フェシウムを含み他に含まれる乳酸菌がそれぞれ異なる複数のグループを作ってそれぞれ共棲培養する予備培養工程を含むものとすることができる。 The present invention relates to the E.I. It may include a pre-culturing step in which a plurality of groups containing different lactic acid bacteria including fesium and different from each other are formed and cocultured.
前記本発明は、前記予備培養工程を、前記E.フェシウムと前記E.デュランスと前記L.ガルビアエとを含むグループは作らずに行うものとすることができる。 In the present invention, the preliminary culturing step is carried out as described in E. above. Fesium and the aforementioned E.I. Durance and L. Groups that include Galviae can be done without creating them.
前記本発明は、豆乳を発酵させる工程を含むものとすることができる。 The present invention may include a step of fermenting soy milk.
前記本発明は、氷温保存した大豆を原料として用いるものとすることができる。 In the present invention, soybeans stored at an ice temperature can be used as a raw material.
前記本発明は、用いる乳酸菌を全て含めた共棲培養を行う本培養工程を前記予備培養後に行うものとすることができる。 The said this invention shall perform the main culture process which performs the cocultivation culture | cultivation including all the lactic acid bacteria to be used after the said preculture.
前記本発明は、前記本培養工程で得られた培養液を粉砕処理する粉砕処理工程を含むものとすることができる。 The present invention may include a pulverization process for pulverizing the culture solution obtained in the main culture process.
前記本発明は、前記本培養工程で得られた培養液をろ過するろ過工程を含むものとすることができる。 The said invention can include the filtration process which filters the culture solution obtained at the said main culture process.
本発明は、前記ろ過工程によって得られるろ過液を有効成分として含有する乳酸菌生産物質を提供する The present invention provides a lactic acid bacteria-producing substance containing the filtrate obtained by the filtration step as an active ingredient.
前記本発明は、前記ろ過液が、前記大豆成分と、前記乳酸菌の菌体成分とを含有するものとすることができる。 In the present invention, the filtrate may contain the soybean component and the bacterial cell component of the lactic acid bacterium.
前記本発明は、前記ろ過液が、前記乳酸菌の死菌に由来する菌体成分を含むものとすることができる。 In the present invention, the filtrate may contain a bacterial cell component derived from the killed lactic acid bacterium.
前記本発明は、前記ろ過液が、前記乳酸菌の生菌を含まないものとすることができる。 In the present invention, the filtrate may not contain the live lactic acid bacteria.
本発明によれば、効率の良い乳酸菌生産物質の製造方法を提供することができる。また、本発明によれば、免疫力の向上などの健康増進効果が高い乳酸菌生産物質を提供することができる。 ADVANTAGE OF THE INVENTION According to this invention, the manufacturing method of an efficient lactic-acid-bacteria production substance can be provided. Moreover, according to this invention, the lactic acid bacteria production substance with a high health promotion effect, such as improvement of immunity, can be provided.
本発明の乳酸菌生産物質の製造方法と、これによって得られる乳酸菌生産物質について、以下に詳細に説明する。 The manufacturing method of the lactic acid bacteria production substance of this invention and the lactic acid bacteria production substance obtained by this are demonstrated in detail below.
乳酸菌生産物質を製造する方法は、複数の乳酸菌を共棲培養する工程を含むものである。用いる乳酸菌としては、ラクトバシラス(Lactobacillus)属に属する乳酸菌と、ラクトコッカス(Lactococcus)属に属する乳酸菌と、エンテロコッカス(Enterococcus)属に属する乳酸菌である。 The method for producing a lactic acid bacteria production substance includes a step of coculturing a plurality of lactic acid bacteria. The lactic acid bacteria used include lactic acid bacteria belonging to the genus Lactobacillus , lactic acid bacteria belonging to the genus Lactococcus, and lactic acid bacteria belonging to the genus Enterococcus .
上記乳酸菌としては、以下の乳酸菌を好適に例示することができる。
まずラクトバシラス属に属する菌としては、例えばL.アシドフィラス(Lactobacillus acidophilus)、L.ブレビス(Lactobacillus brevis)、L.カゼイ(Lactobacillus casei)、L.デルブリッキィ(Lactobacillus delbrueckii)、L.デルブリッキィ亜種ブルガリクス(Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus)、L.ガセリ(Lactobacillus gasseri)、L.ヘルベティカス(Lactobacillus helveticus)、L.パラカゼイ亜種パラカゼイ(Lactobacillus paracasei subsp. paracasei)、L.プランタラム(Lactobacillus plantarum)、L.ラモナウサス(Lactobacillus rhamnosus)、L.サリバリウス(Lactobacillus salivarius)を挙げることができる。
また、ラクトコッカス属に属する菌としては、例えばL.ガルビアエ(Lactococcus garvieae)、L.ラクティス亜種ラクティス(Lactococcus lactis subsp. lactis)を挙げることができる。
さらにエンテロコッカス属に属する菌としては、例えばE.デュランス(Enterococcus durans)、E.フェカリス(Enterococcus faecalis)、E.フェシウム(Enterococcus faecium)を挙げることができる。
The following lactic acid bacteria can be preferably exemplified as the lactic acid bacteria.
First, examples of bacteria belonging to the genus Lactobacillus include L. Lactobacillus acidophilus , L. Brevis ( Lactobacillus brevis ), L. Lactobacillus casei , L. Lactobacillus delbrueckii , L. Lactobacillus delbrueckii subsp. Bulgaricus , L. Gasseri ( Lactobacillus gasseri ), L. Lactobacillus helveticus , L. Paracasei subspecies paracasei (Lactobacillus paracasei subsp. Paracasei), L. Plantarum ( Lactobacillus plantarum ), L. L actobacillus rhamnosus , L. Salivarius ( Lactobacillus salivarius ) can be mentioned.
Examples of bacteria belonging to the genus Lactococcus include L. Lactococcus garvieae , L. The lactis subspecies lactis ( Lactococcus lactis subsp . Lactis ) can be mentioned.
Further, examples of bacteria belonging to the genus Enterococcus include E. coli. Enterococcus durans, E.I. Enterococcus faecalis, E. Mention may be made of fesium ( Enterococcus faecium).
これらラクトバシラス属、ラクトコッカス属、エンテロコッカス属の各属から1種以上の乳酸菌を選択して用いる。同一種の乳酸菌でも株が異なるものを含んでいても良い。 One or more lactic acid bacteria are selected and used from each genus Lactobacillus genus, Lactococcus genus, Enterococcus genus. The same kind of lactic acid bacteria may contain different strains.
これらの乳酸菌について、好気条件下において以下の1次培養〜4次培養を行う。
1次培養は、それぞれの乳酸菌を単独で培養する培養工程である。例えば乳酸菌を不活化させて保存している場合には、この1次培養によって活性化することができる。また、2次培養で使用するために必要な菌数になるまで増殖するものである。
These lactic acid bacteria are subjected to the following primary culture to fourth culture under aerobic conditions.
The primary culture is a culture process in which each lactic acid bacterium is cultured alone. For example, when the lactic acid bacterium is inactivated and stored, it can be activated by this primary culture. Moreover, it grows until it becomes the number of bacteria required for use in secondary culture.
2次培養は、前記乳酸菌から2、3または4種以上選択して組み合わせたグループを複数作り、それぞれのグループで乳酸菌を共棲培養する培養工程である。これらの各グループに含まれる乳酸菌の組み合わせは、各乳酸菌を様々に組み合わせて共棲培養を行い、継代培養しても各乳酸菌の割合が一定に保たれ、生存競争によりいずれかが淘汰されるといった事態の生じないものの中から見出すことができる。また、このグループを複数作る際には、同一種の乳酸菌が複数のグループに含まれても良い。 The secondary culture is a culture process in which a plurality of groups selected from two, three, or four or more types from the lactic acid bacteria are combined, and the lactic acid bacteria are cocultured in each group. The combination of lactic acid bacteria included in each of these groups is carried out by co-culturing various combinations of each lactic acid bacterium, and the proportion of each lactic acid bacterium is kept constant even when subcultured, and one of them is trapped by survival competition. It can be found from things that do not happen. Further, when a plurality of groups are formed, the same type of lactic acid bacteria may be included in the plurality of groups.
したがって、こうしたグループ分けにより、単独では増殖しにくく他の乳酸菌との混合で増殖しやすくなる乳酸菌の培養に好適である。
また、グループ分けすれば、グループごとに適した原料培地、培養温度、培養時間、雰囲気条件等の培養環境下で培養することが可能となる。さらに、後述する3次培養を行う前に各乳酸菌を他の乳酸菌と培養する条件に慣らし、3次培養への移行をスムーズに行うことができる。
こうした2次培養までの工程が予備培養工程である。
Therefore, such grouping is suitable for culturing lactic acid bacteria that are difficult to grow alone and are easy to grow by mixing with other lactic acid bacteria.
Moreover, if it divides into groups, it will become possible to culture | cultivate in culture environments, such as a raw material culture medium suitable for every group, culture | cultivation temperature, culture | cultivation time, and atmospheric conditions. Furthermore, before performing the tertiary culture described later, each lactic acid bacterium can be adapted to the conditions for culturing with other lactic acid bacteria and the transition to the tertiary culture can be performed smoothly.
Such a process up to the secondary culture is a preliminary culture process.
より具体的な2次培養で行うグループ分けとして、以下のAグループ〜Iグループの組み合わせを例として挙げることができる。下記グループは、発明者らが腸内環境における、複数種の乳酸菌が各細菌叢を形成し共棲した状態を再現するために組み合わせたものである。
この乳酸菌の組み合わせは、効率的に各乳酸菌を培養し、乳酸菌生産物質を得ることができるものである。しかし、継代培養しても各乳酸菌の割合が一定に保たれる組み合わせであれば、これらの組み合わせに限定されるものではない。
As a more specific grouping performed in secondary culture, the following combinations of Group A to Group I can be given as examples. The following group is a combination of the inventors in order to reproduce the state in which multiple types of lactic acid bacteria form and coexist with each other in the intestinal environment.
This combination of lactic acid bacteria can efficiently cultivate each lactic acid bacterium and obtain a lactic acid bacterium-producing substance. However, the combination is not limited to these combinations as long as the ratio of each lactic acid bacterium is kept constant even after subculture.
まず、L.アシドフィラスを単独でAグループとする。
またL.カゼイと、L.ラクティス亜種ラクティスの2種をBグループとし、L.デルブリッキィ亜種ブルガリクスと、L.パラカゼイ亜種パラカゼイの2種をCグループとし、E.デュランスと、E.フェシウムの2種をDグループとする。
さらに、L.ブレビスと、L.プランタラムと、E.フェシウムの3種をEグループとし、L.デルブリッキィと、L.ヘルベティカスと、E.フェカリスの3種をFグループとし、L.ガセリと、L.ラモナウサスと、E.フェシウムの3種をGグループとし、L.ガセリと、L.サリバリウスと、E.デュランスの3種をHグループとし、L.ガルビアエと、E.デュランスと、E.フェシウムの3種をIグループとする。
これらの各組合せは以下の〔表1〕にまとめた。なお、表中のAはAグループを示し、B〜Iについても同様にBグループ〜Iグループを示すものとする。
なお、グループAは、L.アシドフィラスを単独で培養するものであり共棲培養ではないが、後述する3次培養以降でL.アシドフィラスの混合を忘れないために、一つのグループとしておくものである。
L. Casei and L. Lactis subsp. Del Bricky subsp. Bulgaricus and L. Two types of paracasei subspecies paracasei are group C. Durance and E.I. Two types of fesium are designated as D group.
In addition, L. Brevis and L. Plantarum and E.I. Three types of fesium are designated as E group. Del Bricky and L. Helveticas and E. Three types of faecalis are designated as F group. Gasseri and L. Ramonausus and E. Three types of fesium are designated as G group. Gasseri and L. Sarivarius and E. Three types of Durance are grouped as H group. Galviae and E. Durance and E.I. Three types of fesium are designated as I group.
Each of these combinations is summarized in [Table 1] below. In addition, A in a table | surface shows A group and B-I shall show B group-I group similarly.
Group A is an L.I. Acidophilus is cultivated alone and not co-cultured. In order not to forget the mixing of acidophilus, it is a group.
上記のIグループは、DグループにL.ガルビアエを加えた組み合わせである。このL.ガルビアエは豆乳培地の含有成分である大豆イソフラボンを分解し、高い健康増進効果を有するエクオールを産生することが知られている。そこで特にL.ガルビアエと共棲培養しやすいE.デュランス、E.フェシウム(Dグループの組み合わせ)にL.ガルビアエを追加することで、前記のエクオール含有量の多い乳酸菌生産物質を得やすいIグループを設けた。 The above I group is the same as L. It is a combination with Garviae added. This L. Garbiae is known to decompose soy isoflavone, which is a component of soymilk medium, to produce equol having a high health promoting effect. Therefore, L. Easy to cocultivate with galviae Durance, E.C. Fesium (D group combination) By adding galbiae, the above-mentioned I group that easily obtains the lactic acid bacteria-producing substance having a high equol content was provided.
上記グループ分けによれば、全グループとも同一の培地を用い、全グループを32℃〜36℃で12時間〜48時間培養するという、同一の培養器で同条件で一度に培養できる組み合わせである。
また、上記グループ分けによれば、各グループから得られる乳酸菌数をほぼ同数とすることができる。したがって、後の3次培養で増殖させにくい菌株や含有量を多くしたい菌株は複数のグループに含ませておくことができる。また、各グループの等量を混合することで後の培養工程に移ることができるため、混合工程が容易で工程間の移行をスムーズに行うことができる。
According to the above grouping, all groups use the same medium, and all groups are cultured at 32 ° C. to 36 ° C. for 12 hours to 48 hours.
Moreover, according to the said grouping, the number of lactic acid bacteria obtained from each group can be made into substantially the same number. Therefore, strains that are difficult to grow in the subsequent tertiary culture and strains that want to increase the content can be included in a plurality of groups. Moreover, since it can transfer to a subsequent culture | cultivation process by mixing equal amount of each group, a mixing process is easy and can transfer between processes smoothly.
2次培養では、各グループごとに培養した培養液の中からいくつかの培養液を混合してさらに培養する工程を設けることもできる。即ち、適宜グループの細分化も可能である。
上記グループ分けを用いて説明すれば、例えば、A〜Iグループを別個に作製してそれぞれのグループを培養する方法に代えて、あらかじめDグループを作って培養し、その一部を取り出してL.ガルビアエを加えてIグループとすることができる。あるいは、後述する3次培養の前にGグループとIグループを混ぜたグループを作成し培養することでE.フェシウムの含有量を減らすことができる。
In the secondary culture, a step of further culturing by mixing several culture solutions from the culture solutions cultured for each group can be provided. That is, the group can be appropriately subdivided.
If it demonstrates using the said grouping, it will replace with the method of producing A to I group separately and cultivating each group, for example, make D group beforehand, culture | cultivate, take out one part, L. Garbiae can be added to form Group I. Alternatively, the E. coli can be cultured by preparing a group in which the G group and the I group are mixed before the third culture described below. Fesium content can be reduced.
3次培養は、2次培養で分けたグループごとに得られた培養液を混合し、全ての乳酸菌を同時に一つの培養器で培養する培養工程である。この3次培養は、前記選択した全ての乳酸菌を共棲培養するものであって、各種乳酸菌を環境に慣れさせて、後工程である4次培養でより効率よく培養するための中間培養段階である。 The tertiary culture is a culture process in which the culture solutions obtained for each group divided by the secondary culture are mixed and all lactic acid bacteria are cultured simultaneously in one incubator. This tertiary culture is to cocultivate all the selected lactic acid bacteria, and is an intermediate culture stage for making various lactic acid bacteria accustomed to the environment and culturing more efficiently in the post-process quaternary culture. .
3次培養では、2次培養での各グループで培養した培養液を所定の割合、混合量で混合し、所定の培地のもとで培養を行う。
本来、2次培養で得られた乳酸菌を4次培養で用いる大量の培地に直接添加すると、乳酸菌液が薄まってしまい、培養の効率が悪くなる場合がある。そこで予備的培養として3次培養を行い、菌数を増やすことでスムーズに4次培養に移行することができる。
またこの場合、各グループの混合割合、混合量は、3次培養に必要な各乳酸菌の菌体数から導く等して適宜求めることができる。しかしながら作業の便宜のため、各グループの等量を混合することが好ましい。
3次培養工程では各乳酸菌を他の乳酸菌と混合した環境に慣れさせるため、30℃〜36℃の比較的低温で12時間〜72時間培養する。
In the tertiary culture, a culture solution cultured in each group in the secondary culture is mixed at a predetermined ratio and a mixing amount, and cultured under a predetermined medium.
Originally, if the lactic acid bacteria obtained in the secondary culture are added directly to a large amount of medium used in the fourth culture, the lactic acid bacteria solution may be diluted, and the efficiency of the culture may deteriorate. Therefore, tertiary culture can be performed as preliminary culture, and the number of bacteria can be increased to smoothly shift to quaternary culture.
In this case, the mixing ratio and the mixing amount of each group can be appropriately determined by deriving from the number of lactic acid bacteria necessary for the third culture. However, for work convenience, it is preferable to mix equal amounts in each group.
In the third culturing step, each lactic acid bacterium is cultured at a relatively low temperature of 30 ° C. to 36 ° C. for 12 hours to 72 hours in order to get used to the environment in which each lactic acid bacterium is mixed with other lactic acid bacteria.
また、培地となる原料には、乳酸菌で発酵させ得る種々の原料を用いることができるが、豆乳を用いることが好ましい。こうすることで、乳酸菌を培養することで得られる乳酸菌生産物質に、生体にとって好ましい植物性の栄養成分である大豆由来成分を含有させることができる。したがって、栄養価が高く健康増進効果を得られやすい乳酸菌生産物質を得ることができる。 Moreover, various raw materials that can be fermented with lactic acid bacteria can be used as the raw material for the medium, but it is preferable to use soy milk. By carrying out like this, the lactic-acid-bacteria production substance obtained by culture | cultivating lactic acid bacteria can be made to contain the soybean origin component which is a vegetable nutrient component preferable for a biological body. Therefore, it is possible to obtain a lactic acid bacterium-producing substance that has a high nutritional value and can easily obtain a health promotion effect.
また、こうした豆乳も所定の大豆から得られた豆乳であることが好ましい。例えば、好ましい大豆として氷温保存を施した大豆が挙げられる。氷温保存とは、大豆が凍結せずに不凍液が漏出する低温で静置保存する処理である。温度としては、−3℃〜−1℃が好ましく、保存期間としては2日〜3日が好ましい。この氷温保存については様々な効果が知られている。例えば食パンであれば遊離アミノ酸量を従来品よりも約2倍に増加させることができ、納豆であればグルタミン酸などのアミノ酸含有量を従来品よりも増加させることができるといった報告もある。大豆については、氷温保存することで有害微生物の減少及び生物の呼吸代謝を抑制させ、長時間にわたって大豆の鮮度を保つことができるため、豆乳培地の品質を保持することができるといった利点がある。したがって、上記のような種々の効果を得るため本発明では氷温保存した大豆を用いた豆乳を使用することが好ましい。
豆乳の調製には、氷温保存した大豆を用いる場合は、その氷温庫から出した大豆を、氷温より高いが常温より低い5℃〜15℃で6時間〜24時間静置した後、常温に戻した大豆を用いることができる。
Such soy milk is also preferably soy milk obtained from a predetermined soybean. For example, preferred soybeans include soybeans that have been stored at ice temperature. The storage at ice temperature is a process of standing still at a low temperature at which the antifreeze leaks without freezing soybeans. The temperature is preferably -3 ° C to -1 ° C, and the storage period is preferably 2 days to 3 days. Various effects are known for this ice temperature preservation. For example, there is a report that the amount of free amino acids can be increased about twice as much as that of conventional products in the case of bread, and the content of amino acids such as glutamic acid can be increased as compared with conventional products in the case of natto. Soybeans have the advantage of being able to maintain the quality of soy milk medium because storage at ice temperature can suppress the reduction of harmful microorganisms and suppress the respiratory metabolism of living organisms and maintain the freshness of soybeans over a long period of time. . Therefore, in order to obtain the various effects as described above, it is preferable to use soy milk using soybeans stored at ice temperature in the present invention.
For the preparation of soy milk, when using soybeans stored at ice temperature, after leaving the soybeans taken out of the ice temperature storage at 5 ° C. to 15 ° C., which is higher than the ice temperature but lower than normal temperature, for 6 hours to 24 hours, Soybeans returned to room temperature can be used.
培地には豆乳の他、必要に応じて種々の原料を加えることができる。例えば、ブドウ糖やグルコースなどの糖類、酵母エキス、脱脂乳等が挙げられる。 In addition to soy milk, various raw materials can be added to the medium as needed. For example, sugars such as glucose and glucose, yeast extract, skim milk and the like can be mentioned.
4次培養は、3次培養で得た培養液をさらに培養する本培養工程である。
4次培養としては、以下の3ステップを有していることが好ましい。まずステップ1は、32℃〜37℃において、25時間〜30時間培養する段階である。
ステップ1は、3次培養と同様に比較的低温で各乳酸菌を慣らすステップである。この4次培養でも3次培養と同様の工程を設けたのは、培地を3次培養とは変えることができ、その場合に各乳酸菌が環境に慣れない場合が生じるからである。
The quaternary culture is a main culture process in which the culture solution obtained in the tertiary culture is further cultured.
The quaternary culture preferably has the following three steps.
その後ステップ2として、38℃〜43℃において、46時間〜51時間培養する。
このステップ2は、本格的に乳酸菌を増殖し、乳酸菌発酵を進めるステップである。したがって、培養に最も好ましい温度を設定し、最も乳酸菌が増える時間を設定する。
Then, as
This
最後にステップ3として、63℃〜67℃において、16時間〜21時間培養する。このステップ3は、熱処理により殺菌することで乳酸菌の培養を止める工程である。こうした4次培養を行って得た培養液が乳酸菌生産物質となる。
Finally, as
4次培養を経て得られた乳酸菌培養液は、例えばホモジナイザーによって粉砕処理(ホモジナイズ処理)することが好ましい。この処理により、乳酸菌を粉砕して死菌とし、より確実に培養を停止させることができる。また、前記4次培養におけるステップ3の結果、培養液中のタンパク質が熱変性し、部分的に固形化する場合がある。そこで、このホモジナイズ処理を行うことで均一な懸濁液とすることができる。得られた均一な懸濁液である乳酸菌生産物質は、生菌を含まず、変性の起こりにくい品質の安定した乳酸菌生産物質である。
The lactic acid bacteria culture solution obtained through the quaternary culture is preferably pulverized (homogenized) by, for example, a homogenizer. By this treatment, lactic acid bacteria can be crushed into dead bacteria, and culture can be stopped more reliably. As a result of
その後、さらにこの懸濁液をろ過する工程を含めることができる。具体的には、前記ホモジナイズ処理を行った後の乳酸菌培養液をろ過布袋に入れて、重石を載せた状態で数日間(3日間から4日間)掛けてろ過する工程が挙げられる。これにより、上記の乳酸菌培養液はろ過液と醗酵残渣とに分離される。
ろ過液としての乳酸菌生産物質は、固形分を含まない透明な液体として得られることから見た目に優れ、これを摂取する者に不純物が含まれていないという安心感を与えることができる。一方、発酵残渣としての乳酸菌生産物質にはろ過液の乳酸菌生産物質及び大豆成分が含有されており、外用・服用の健康食品等として使用できる。
Thereafter, a further step of filtering the suspension can be included. Specifically, there may be mentioned a step of putting the lactic acid bacteria culture solution after the homogenization treatment into a filter cloth bag and filtering it over several days (3 to 4 days) in a state where the weight is placed. Thereby, said lactic-acid-bacteria culture solution is isolate | separated into a filtrate and a fermentation residue.
The lactic acid bacterium-producing substance as the filtrate is excellent in appearance because it is obtained as a transparent liquid containing no solid content, and can give a sense of security that impurities are not included in those who take it. On the other hand, the lactic acid bacteria production substance as a fermentation residue contains the lactic acid bacteria production substance and soybean component of the filtrate, and can be used as a health food for external use and taking.
ろ過液は更に次の工程へ導くことができる。即ち、小さな貫通孔が設けられているフィルターを用いてろ過を行うフィルターろ過処理工程である。このフィルターろ過処理工程は、十分に粉砕されなかった乳酸菌成分を除去する工程であり、生菌が残っていれば完全に取り除く工程である。その際、前記の貫通孔の大きさは乳酸菌を除去する程度の大きさとするが、より具体的には0.2μm〜0.3μm程度のフィルターを用いることができる。0.2μm〜0.3μmとすれば、ろ過液からほとんどの乳酸菌を除去することができるからであり、0.2μmより小さいとろ過効率が悪くなり、0.3μmを超えると乳酸菌が分離できないからである。このフィルターろ過処理は、複数回繰り返して行うことで、より確実にろ過液から乳酸菌を除去することができる。
こうして得られる最終ろ過液が乳酸菌生産物質の中でも最高品質の最高級品であり、発明者が安心して提供することができる高品位乳酸菌生産物質または純乳酸菌生産物質とも呼べるものである。
The filtrate can be further led to the next step. In other words, it is a filter filtration process that performs filtration using a filter provided with small through holes. This filter filtration process is a process of removing lactic acid bacteria components that have not been sufficiently pulverized, and is a process of completely removing live bacteria if any remain. At this time, the size of the through hole is set to such a size as to remove lactic acid bacteria, and more specifically, a filter of about 0.2 μm to 0.3 μm can be used. This is because most of the lactic acid bacteria can be removed from the filtrate if the thickness is 0.2 μm to 0.3 μm, and if it is smaller than 0.2 μm, the filtration efficiency is deteriorated, and if it exceeds 0.3 μm, the lactic acid bacteria cannot be separated. It is. By performing this filter filtration treatment repeatedly a plurality of times, lactic acid bacteria can be more reliably removed from the filtrate.
The final filtrate thus obtained is the highest quality product among the lactic acid bacteria producing substances, and can be called a high-grade lactic acid bacteria producing substance or a pure lactic acid bacteria producing substance that the inventor can provide with peace of mind.
1.乳酸菌生産物質の生成
〔1次培養〕
本発明に係る乳酸菌生産物質を生成するため、まず、ラクトバシラス属と、ラクトコッカス属と、エンテロコッカス属とに属する乳酸菌を培養した
具体的には、ラクトバシラス属の乳酸菌としてはL.アシドフィラス、L.ブレビス、L.カゼイ、L.デルブリッキィ、L.デルブリッキィ亜種ブルガリクス、L.ガセリ、L.ヘルベティカス、L.パラカゼイ亜種パラカゼイ、L.プランタラム、L.ラモナウサス、L.サリバリウスの11種類の乳酸菌を用いた。
また、ラクトコッカス属に属する乳酸菌としては、L.ガルビアエ、L.ラクティス亜種ラクティスの2種類の乳酸菌を用いた。
さらにエンテロコッカス属に属する乳酸菌としては、E.デュランス、E.フェカリス、E.フェシウムの3種類の乳酸菌を用いた。これらの各乳酸菌は、常法により得た各種乳酸菌を−80℃で保存しておいたものである。
1. Production of lactic acid bacteria production material [primary culture]
In order to produce the lactic acid bacteria-producing substance according to the present invention, first, lactic acid bacteria belonging to the genus Lactobacillus, the genus Lactococcus, and the genus Enterococcus were cultured. Acidophilus, L.H. Brevis, L. Casei, L. Delbricky, L. Delbricky subsp. Bulgaricus, L. Gasseri, L.M. Helveticas, L. Paracasei subspecies Paracasei, L. Plantarum, L.C. Ramonausus, L.M. Eleven types of lactic acid bacteria of Sarivarius were used.
As lactic acid bacteria belonging to the genus Lactococcus, L. Garviae, L. Two types of lactic acid bacteria of Lactis subspecies Lactis were used.
Further, examples of lactic acid bacteria belonging to the genus Enterococcus include E. coli. Durance, E.C. Fecaris, E.E. Three types of lactic acid bacteria of fesium were used. Each of these lactic acid bacteria has various lactic acid bacteria obtained by conventional methods stored at -80 ° C.
上記16種類の各乳酸菌は1次培養として、MRS培地に個別に植菌し、好気環境下において34℃で単独培養し、OD660nm=約1.3とした。 Each of the 16 types of lactic acid bacteria was inoculated individually in MRS medium as a primary culture, and cultured alone at 34 ° C. in an aerobic environment, so that OD 660 nm = about 1.3.
〔2次培養〕
続いて、2次培養として上記16種類の乳酸菌を、1種または複数種の乳酸菌群からなる9つのグループを作った。そして、前記1種の乳酸菌でなるグループは乳酸菌を1種のみ単独で培養し、前記複数の乳酸菌群でなるグループではそれら複数の乳酸菌を共棲培養した。
[Secondary culture]
Subsequently, as the secondary culture, the above 16 types of lactic acid bacteria were made into 9 groups consisting of one or a plurality of types of lactic acid bacteria. And the group which consists of said 1 type of lactic acid bacteria culture | cultivated only 1 type of lactic acid bacteria independently, and the group which consists of the said several lactic acid bacteria group cocultivated these several lactic acid bacteria.
2次培養における各グループに含まれる乳酸菌の組み合わせを示す。
まず、L.アシドフィラスをAグループとした。
またL.カゼイと、L.ラクティス亜種ラクティスの2種をBグループとし、L.デルブリッキィ亜種ブルガリクスと、L.パラカゼイ亜種パラカゼイの2種をCグループとし、E.デュランスと、E.フェシウムの2種をDグループとした。
さらに、L.ブレビスと、L.プランタラムと、E.フェシウムの3種をEグループとし、L.デルブリッキィと、L.ヘルベティカスと、E.フェカリスの3種をFグループとし、L.ガセリと、L.ラモナウサスと、E.フェシウムの3種をGグループとし、L.ガセリと、L.サリバリウスと、E.デュランスの3種をHグループとし、L.ガルビアエと、E.デュランスと、E.フェシウムの3種をIグループとした。
これらの各組合せは以下の〔表2〕にまとめた。なお、表中のAはAグループを示し、B〜Iについても同様にBグループ〜Iグループを示すものとする。
First, L.M. Acidophilus was group A.
L. Casei and L. Lactis subsp. Del Bricky subsp. Bulgaricus and L. Two types of paracasei subspecies paracasei are group C. Durance and E.I. Two types of fesium were made into D group.
In addition, L. Brevis and L. Plantarum and E.I. Three types of fesium are designated as E group. Del Bricky and L. Helveticas and E. Three types of faecalis are designated as F group. Gasseri and L. Ramonausus and E. Three types of fesium are designated as G group. Gasseri and L. Sarivarius and E. Three types of Durance are grouped as H group. Galviae and E. Durance and E.I. Three types of fesium were designated as Group I.
Each of these combinations is summarized in [Table 2] below. In addition, A in a table | surface shows A group and B-I shall show B group-I group similarly.
この2次培養は、前記1次培養液を後述する豆乳培地に加えて混合した後、好気環境下において32℃〜36℃で約1日培養した。これにより得られた培養液を「2次培養液」とする。 In this secondary culture, the primary culture solution was added to and mixed with the soymilk medium described later, and then cultured at 32 ° C. to 36 ° C. for about 1 day in an aerobic environment. The culture solution thus obtained is referred to as “secondary culture solution”.
ここで、2次培養で使用した豆乳培地の製造方法について説明する。
−3℃〜−1℃で2〜3日間静置保存して氷温保存した大豆を冷蔵庫にしばらく静置して常温に戻したものを使用して豆乳を調製した。こうして得られた豆乳は、121℃で15分間、高圧蒸気滅菌に供することで「培地用豆乳」とした。
そして、この培地用豆乳100mlを水で2倍に希釈し、脱脂粉乳、グルコース、酵母エキスを混合して、溶解させた後、115℃で15分間高圧蒸気滅菌を行うことで、「2次培養用の豆乳培地」を得た。
Here, the manufacturing method of the soymilk culture medium used by secondary culture is demonstrated.
Soy milk was prepared using soybeans that had been stored at −3 ° C. to −1 ° C. for 2 to 3 days and stored at ice temperature for a while and then returned to room temperature. The soy milk thus obtained was subjected to high-pressure steam sterilization at 121 ° C. for 15 minutes to obtain “medium soy milk”.
And after diluting 100 ml of this soymilk for culture medium with water twice and mixing skim milk powder, glucose, and yeast extract and dissolving them, high-pressure steam sterilization is performed at 115 ° C. for 15 minutes, thereby “secondary culture” Soymilk medium "was obtained.
前記各2次培養液を希釈後、MRS寒天プレート(φ90mm)に播種した。34℃で24時間培養後に形成されたコロニー数から、前記Aグループ〜Iグループの各2次培養液に含まれる乳酸菌数は平均で2.6×109cfu/mlであった。 Each secondary culture solution was diluted and then seeded on an MRS agar plate (φ90 mm). From the number of colonies formed after culturing at 34 ° C. for 24 hours, the number of lactic acid bacteria contained in each of the secondary culture solutions of the A group to I group was 2.6 × 10 9 cfu / ml on average.
〔3次培養〕
前記16種類の乳酸菌を全て混合し、共棲培養を行った。具体的には、前記Aグループ〜Iグループの各2次培養液を等量ずつ混合した。この混合液を下記の「3次培養用の豆乳培地」に添加して、好気環境下において32℃〜36℃で1日培養し、「3次培養液」とした。この3次培養液は、MRS寒天プレートに播種し、34℃で24時間培養後に形成されたコロニー数から、3次培養原液に含まれる乳酸菌数は約2.6×109cfu/mlであった。
[Tertiary culture]
All of the 16 types of lactic acid bacteria were mixed and co-cultured. Specifically, equal amounts of each of the secondary culture solutions of Group A to Group I were mixed. This mixed solution was added to the following “third culture soymilk medium” and cultured at 32 ° C. to 36 ° C. in an aerobic environment for 1 day to obtain a “tertiary culture solution”. This tertiary culture solution was inoculated on an MRS agar plate, and the number of lactic acid bacteria contained in the tertiary culture stock solution was about 2.6 × 10 9 cfu / ml from the number of colonies formed after culturing at 34 ° C. for 24 hours. It was.
なお、前記3次培養用の豆乳培地は、前記培地用豆乳100mlにその1/4量の水を加えて希釈し、脱脂粉乳、グルコース、酵母エキスを混合し、溶解させた後、115℃で15分間、高圧蒸気滅菌を行うことで得たものである。 The soymilk medium for tertiary culture is diluted by adding 1/4 amount of water to 100 ml of the soymilk for medium, mixed with skim milk powder, glucose and yeast extract, and then dissolved at 115 ° C. It was obtained by performing autoclaving for 15 minutes.
〔4次培養〕
引き続き4次培養を行った。具体的には、3次培養液を下記「4次培養用の豆乳培地」に添加し、好気環境下で培養を行った。この4次培養は、32℃〜37℃において、25時間〜30時間培養するステップ1と、38℃〜43℃において、46時間〜51時間培養するステップ2と、63℃〜67℃において、16時間〜21時間培養するステップ3との3段階で構成される。まずステップ1は、3次培養と同様に比較的低温で各乳酸菌を慣らすステップである。この4次培養でも3次培養と同様の工程を設けたのは、培地を3次培養とは変えることができ、その場合に各乳酸菌が環境に慣れない場合が生じるからである。その後のステップ2では、本格的に乳酸菌を増殖して乳酸菌発酵を進めることができる。最後にステップ3によって、タンパク質が変性することを防ぎながら乳酸菌の培養を止めることができる。また、前記ステップ1を開始して約24時間後には、例えばスパチュラ等の棒状の器具を3次培養液の底部まで挿し入れ混和した。こうすることで、3次培養液の表面から離れた位置にあって空気に触れにくい乳酸菌を好気環境下においた。この操作によって、乳酸菌をより効率良く培養することができる。これらの操作の結果、「4次培養液」を得た。
ステップ1とステップ2の培養液を段階希釈して、MRS寒天プレート(φ90mm)に播種した。34℃で24時間培養後に形成されたコロニー数から、ステップ1で約1.5×109cfu/ml、ステップ2では約2.1×109cfu/mlであった。なお、ステップ3は、高温で処理することによる菌の不活性化工程であるため、生菌数の測定を行わなかった。
[Fourth culture]
Subsequently, quaternary culture was performed. Specifically, the tertiary culture solution was added to the following “fourth culture soymilk medium” and cultured in an aerobic environment. This quaternary culture consists of
また、前記4次培養用の豆乳培地は、前記培地用豆乳を約1/4の量の水で希釈し、脱脂粉乳、グルコース、酵母エキスを混合し、溶解させた後、115℃で15分間、高圧蒸気滅菌を行うことで得たものである。 The soymilk medium for quaternary culture is prepared by diluting the soymilk for medium with about 1/4 amount of water, mixing skim milk powder, glucose and yeast extract, dissolving, and then 15 minutes at 115 ° C. It was obtained by performing high-pressure steam sterilization.
〔ホモジナイズ〕
4次培養液をホモジナイザーを用いて6,000rpmで15分間粉砕処理(ホモジナイズ処理)し、「4次培養懸濁液」を得た。この作業により、乳酸菌を粉砕し、培養を完全に停止させることができる。また、前記ステップ3の高温処理により熱変性が生じ、得られた培養液が部分的に固形化してくるが、このホモジナイズによって培養液を均一な懸濁液にすることができる。
[Homogenization]
The quaternary culture solution was pulverized (homogenized) at 6,000 rpm for 15 minutes using a homogenizer to obtain a “quaternary culture suspension”. By this work, lactic acid bacteria can be crushed and the culture can be completely stopped. In addition, heat denaturation occurs due to the high-temperature treatment in
〔ろ過〕
4次培養懸濁液の全量をろ過布袋に入れ、袋の口を封じた。これに重石(6kg)を載せて約3日間ろ過し、ろ過液と発酵残差とを得た。
[Filtration]
The whole amount of the quaternary culture suspension was put in a filter cloth bag, and the bag mouth was sealed. This was loaded with weight (6 kg) and filtered for about 3 days to obtain a filtrate and fermentation residue.
0.3μmフィルターを用いて前記ろ過液をさらに2回フィルターろ過することで、最終ろ過液として「乳酸菌生産物質」を得た。この乳酸菌生産物質中には乳酸菌の死菌由来の菌体成分、乳酸菌による生成物、培地の原料である大豆や豆乳に由来する液状成分が含まれている。 The filtrate was further filtered twice using a 0.3 μm filter to obtain “lactic acid bacteria-producing substance” as the final filtrate. The lactic acid bacterium-producing substance contains microbial cell components derived from killed lactic acid bacteria, products of lactic acid bacteria, and liquid components derived from soybeans and soy milk, which are raw materials for the medium.
2.試料の作製
2−1.実験動物の準備
本発明に係る乳酸菌生産物質の摂取による免疫力向上効果を検証するために、アレルギー性皮膚炎を誘導したモデルマウスを作製した。
具体的には、4週齢のBALB/c 雄性マウスを用意し、各マウスの両耳介にアセトン溶解ジニトロフルオロベンゼン(以下、DNFB:SIGMA−ALDRICH社製)を週2回(3日または4日に1回の頻度)、計16回塗布した。こうすることで、接触性皮膚炎の症状を示すアレルギー性皮膚炎を誘導することができる。
2. Sample preparation
2-1. Preparation of experimental animals In order to verify the effect of improving immunity by ingesting the lactic acid bacteria-producing substance according to the present invention, model mice in which allergic dermatitis was induced were prepared.
Specifically, 4-week-old BALB / c male mice are prepared, and acetone-dinitrofluorobenzene (hereinafter referred to as DNFB: manufactured by SIGMA-ALDRICH) is twice a week (3 days or 4 days) in both ears of each mouse. It was applied a total of 16 times once a day). By doing so, allergic dermatitis showing symptoms of contact dermatitis can be induced.
飼育期間中、マウスは人工照明による明暗環境下(明期8:00〜20:00、暗期20:00〜8:00)、一定温度(22℃±2℃)、湿度未調節の動物実験室内で飼育し、水及び飼料を自由摂取させた。通常飼料(CE−2:日本クレア社製)及び、この通常飼料に本発明の乳酸菌生産物質を含有させた飼料を与えた。 During the breeding period, the mice were subjected to animal experiments in a light and dark environment with artificial lighting (light period 8:00 to 20:00, dark period 20:00 to 8:00), constant temperature (22 ° C. ± 2 ° C.), and humidity uncontrolled. They were raised indoors and allowed to freely take water and feed. A normal feed (CE-2: manufactured by Nippon Claire Co., Ltd.) and a feed containing the lactic acid bacterium-producing substance of the present invention were given to this normal feed.
2−2.乳酸菌生産物質を含有する飼料の調製方法
上記通常飼料に粉末状の本発明に係る乳酸菌生産物質を質量比3%となるように混合し、3%乳酸菌生産物質含有飼料とした。また、これと同様に上記通常飼料に粉末状の本発明に係る乳酸菌生産物質を質量比5%となるように混合し、5%乳酸菌生産物質含有飼料とした。
2-2. Preparation Method of Feed Containing Lactic Acid Bacterial Producing Substance The powdered lactic acid bacteria producing substance according to the present invention was mixed with the normal feed so as to have a mass ratio of 3% to obtain a feed containing 3% lactic acid bacteria producing substance. Similarly to this, the above-mentioned normal feed was mixed with the powdered lactic acid bacteria-producing substance according to the present invention at a mass ratio of 5% to obtain a feed containing a 5% lactic acid bacteria-producing substance.
2−3.アレルギー性皮膚炎モデル動物への乳酸菌生産物質の投与
実験に供する動物として、DNFB塗布開始20日目から52日目まで上記で得られた乳酸菌生産物質を3%含有する飼料を与えた治療群3%と、同様に乳酸菌生産物質を5%含有する飼料を与えた治療群5%と、DNFB塗布を開始する14日前から塗布52日目まで上記乳酸菌生産物質を3%含有する飼料を与えた予防群3%と、同様に本発明の乳酸菌生産物質を5%含有する飼料を与えた予防群5%と、DNFBの塗布は行ったものの通常飼料のみを与えた対照群と、及びDNFB塗布を行わず通常飼料のみを与えたDNFB(−)群との計5つの群を用意した(n=5)。
本実験で使用した全マウスの平均体重は27.3gであり、平均摂取食餌量は4.2g/day程度であった。したがって前記治療群3%、予防群3%は1日に0.126g程度の乳酸菌生産物質を摂取したものと考えられる。これに対し、前記治療群5%、予防群5%は1日に0.210g程度の乳酸菌生産物質を摂取したものと考えられる。
治療群3%、治療群5%、予防群3%、予防群5%、対照群の各群はDNFB塗布の開始から52日目に採血し、耳介、脾臓を回収した。またDNFB(−)群は他の群と同じ週齢で同様に採血し、耳介、脾臓を回収した。
2-3.
The average body weight of all mice used in this experiment was 27.3 g, and the average food intake was about 4.2 g / day. Therefore, it is considered that 3% of the treatment group and 3% of the prevention group ingested about 0.126 g of lactic acid bacteria-producing substance per day. On the other hand, it is considered that 5% of the treatment group and 5% of the prevention group ingested about 0.210 g of lactic acid bacteria-producing substance per day.
In the
各群をジエチルエーテルにより麻酔し、頸椎脱臼後、注射針を用いて心臓から採血を行った。採取した血液は4℃で一晩静置後、遠心(5℃、10,000rpm×10分)し、上清として血清を回収した。こうして得られた血清は解析時まで−20℃で保管した。 Each group was anesthetized with diethyl ether, and after cervical dislocation, blood was collected from the heart using an injection needle. The collected blood was allowed to stand overnight at 4 ° C. and then centrifuged (5 ° C., 10,000 rpm × 10 minutes), and serum was collected as a supernatant. The serum thus obtained was stored at −20 ° C. until analysis.
耳介及び脾臓は後述のRT−PCRで使用するためにRNA Stabilization Solution(製品名:RNA later Soln(登録商標)、Ambion社製)内で保存し、耳介は4℃で、脾臓は−80℃で、解析時まで保管した。 The auricle and spleen were stored in RNA Stabilization Solution (product name: RNA later Soln (registered trademark), manufactured by Ambion) for use in RT-PCR described below, the auricle was 4 ° C., and the spleen was −80 Stored at ° C until analysis.
3.アレルギー性の炎症抑制効果の検証
本発明に係る乳酸菌生産物質の、アレルギー性の炎症抑制効果を測定するために、上記各群の耳介肥厚の経時変化、各種サイトカイン及び炎症性メディエーター mRNA発現量を測定した。
3. Verification of allergic inflammation inhibitory effect In order to measure the allergic inflammation inhibitory effect of the lactic acid bacterium-producing substance according to the present invention, the time course of ear thickening of each group, various cytokines and inflammatory mediator mRNA expression levels were determined. It was measured.
3−1.耳介肥厚の測定
上記の各マウスについて耳介肥厚をアレルギー症状の指標とし、DNFB塗布後の耳介肥厚の変化を測定することで、上記乳酸菌生産物質とアレルギー症状の関係を検証した。この測定は毎回のDNFB塗布から24時間後に行い、計16回行った。またDNFB(−)群についても、同時期に耳介肥厚の測定を行った。
3-1. Measurement of auricle thickening Using the auricle thickening as an index of allergic symptoms for each of the above-mentioned mice, the relationship between the lactic acid bacteria-producing substance and allergic symptoms was verified by measuring changes in auricular thickening after application of DNFB. This measurement was performed 24 hours after each application of DNFB, for a total of 16 times. In addition, for the DNFB (−) group, the auricle thickening was measured at the same time.
DNFB感作によるアレルギー性皮膚炎への耳介肥厚の測定結果を図1に示す。対照群ではDNFB塗布開始から11日目以降に耳介の肥厚化が急速に進み、20日目にピーク値(0.575mm)を示した。しかしその後は微減しほぼ一定の厚み(0.55mm前後)を維持した。これに対して治療群3%及び治療群5%では、同じようにDNFB塗布開始から11日目以降に耳介の肥厚化が急速に進んだが、19日目に上記乳酸菌生産物質を添加した飼料の摂取を開始すると、間もなく厚みが減少し始めた。その結果、治療群3%では20日目にピーク値(0.532mm)を示し、治療群5%では20日目でピーク値(0.543mm)を示した。したがって、いずれも対照群のピーク値よりも耳介の肥厚化が抑制された。
FIG. 1 shows the results of measurement of auricle thickening on allergic dermatitis caused by DNFB sensitization. In the control group, the thickening of the auricle progressed rapidly after the 11th day from the start of the application of DNFB, and the peak value (0.575 mm) was shown on the 20th day. However, after that, it decreased slightly and maintained a substantially constant thickness (around 0.55 mm). On the other hand, in the
また、予防群3%及び予防群5%では他の群と同様にDNFB塗布開始から11日目以降に肥厚化が急速に進み始めたが、その進行は対照群、治療群3%及び治療群5%と比較して緩やかであり、13日目以降ではさらに肥厚化が緩和された。また予防群3%、予防群5%のいずれにおいても27日目にピーク値を示したが、予防群3%では0.500mm、予防群5%では0.457mmと、他の群よりもピーク値が低かった。
Further, in the
以上の結果より、本発明に係る乳酸菌生産物質の摂取がアレルギー性皮膚炎部位における炎症の抑制に有効であることが示唆された。また同時に、感作以前から上記の乳酸菌生産物質を摂取し続けることで、より高い炎症抑制効果を得られることが示唆された。 From the above results, it was suggested that the intake of the lactic acid bacterium-producing substance according to the present invention is effective in suppressing inflammation at the site of allergic dermatitis. At the same time, it was suggested that a higher inflammation-inhibiting effect can be obtained by continuing to take the above-mentioned lactic acid bacteria-producing substance before sensitization.
3−2.耳介におけるサイトカイン及び炎症性メディエータータンパク質のmRNA発現量の測定
炎症性メディエータータンパク質として、現在、ペリオスチン、TSLPが注目されている。ペリオスチンは慢性皮膚炎部位において高発現するタンパク質である。アレルゲンが皮膚組織に浸入すると2型ヘルパーT細胞(以下、Th2細胞と略記する)が活性化され、活性化されたTh2細胞はIL−4やIL−13を産生する。IL−4やIL−13は線維芽細胞を刺激し、ペリオスチンの産生を促す。このペリオスチンは表皮細胞を刺激して、表皮細胞からTSLPなどの炎症性メディエーターが産生される。そして、TSLPは樹状細胞を刺激し再びTh2細胞が活性化することで上記のサイクルが繰り返され、慢性的にアレルギー性の皮膚炎が持続する原因となっている。従って、各群の耳介におけるペリオスチン及びTSLPのmRNA発現レベルの測定を行うことで、乳酸菌生産物質の慢性的なアレルギー性皮膚炎に対する影響を図ることができる。そこで、さらにアレルギー性皮膚炎への影響を図るべく、耳介におけるIL−13、ペリオスチン、TSLPのmRNA発現量を測定した。
3-2. Measurement of mRNA expression levels of cytokines and inflammatory mediator proteins in the auricle Currently, periostin and TSLP are attracting attention as inflammatory mediator proteins. Periostin is a protein highly expressed at the site of chronic dermatitis. When the allergen enters the skin tissue,
3−2−1.RNAの抽出
上述のように、回収したマウスの耳介からtotal RNAを調製した。
具体的には、まず上述のRNA Stabilization Solutionに保管されている耳介をセラミックビーズ(1.4mm:エムエス機器株式会社製)及びTRIZOL(登録商標) Reagent(invitrogen社製)入り容器内に移した。そして、これに遠心分離処理(6.300rpm、23秒)を6回行うことで組織を破砕した。
こうして得られた耳介について、TORIZOL付属のプロトコールに従ってtotal RNAを抽出し、−20℃で保存した。
3-2-1. Extraction of RNA Total RNA was prepared from the collected mouse pinna as described above.
Specifically, first, the auricles stored in the RNA Stabilization Solution were transferred into a container containing ceramic beads (1.4 mm: manufactured by MS Equipment Co., Ltd.) and TRIZOL (registered trademark) Reagent (manufactured by Invitrogen). . Then, the tissue was crushed by performing centrifugation treatment (6.300 rpm, 23 seconds) 6 times.
From the pinna thus obtained, total RNA was extracted according to the protocol attached to TRIZOL and stored at -20 ° C.
3−2−2.RT−PCRのためのcDNAの調製
上記で得られたtotal RNAからRever Tra Ace qPCR RT kit(TOYOBO社製)を用いてcDNAを調製した。
具体的には、まず上記で得られたtotal RNAの吸光度を測定し、total RNA濃度が1μg/μlとなるようにミリQ水で希釈した。上記キット付属のH2O 6μlに対しこのtotal RNAを1μl加え、65℃で5分間インキュベートした後、氷上に静置した。これに上記キット付属の5×Buffer 2μl、RT Enzyme Mix 0.5μl及びPrimer Mix 0.5μlからなるMix溶液を3μl添加した後、37℃で15分間、さらに98℃で5分間インキュベートし、その後、氷上に静置して反応を停止させた。こうして得られた濃度10ng/μlのcDNA10μlに対し、ミリQ水90μlを添加して全量が100μlのcDNA溶液とし、−20℃で保存した。
3-2-2. Preparation of cDNA for RT-PCR cDNA was prepared from the total RNA obtained above using the Reverse Tra Ace qPCR RT kit (manufactured by TOYOBO).
Specifically, first, the absorbance of the total RNA obtained above was measured, and diluted with milliQ water so that the total RNA concentration became 1 μg / μl. 1 μl of this total RNA was added to 6 μl of H 2 O attached to the kit, incubated at 65 ° C. for 5 minutes, and then allowed to stand on ice. To this was added 3 μl of a Mix solution consisting of 2 μl of 5 × Buffer attached to the kit, 0.5 μl of RT Enzyme Mix and 0.5 μl of Primer Mix, and then incubated at 37 ° C. for 15 minutes and further at 98 ° C. for 5 minutes, The reaction was stopped by standing on ice. To 10 μl of the cDNA having a concentration of 10 ng / μl thus obtained, 90 μl of milli-Q water was added to make a total 100 μl cDNA solution, which was stored at −20 ° C.
3−2−3.定量的RT−PCR
上記cDNAをRT−PCR法により増幅した。
具体的には、上記で得られたcDNA溶液を384穴プレートの各ウェルに2μlずつ滴下し、さらにミリQ水 6.4μl、2×SYBR GREEN(製品名:THUNDERBIRD SYBR(登録商標) qPCR Mix (TOYOBO社製) 10μl、10μM フォワードプライマー 0.6μl、10μM リバースプライマー 0.6μl及び50倍希釈したROX(TOYOBO社製) 0.4μlとからなるMaster Mix 溶液を18μl添加し、最終液量を20μlとした。使用したフォワードプライマー、リバースプライマーの塩基配列はそれぞれ以下のとおりであった。各試料について95℃で60秒間の熱変性を行い、その後95℃で15秒間のアニーリングと60℃で60秒間の伸長を40サイクル繰り返した。
こうして得られたcDNAに基づき、耳介における各種サイトカイン及び炎症性メディエーターmRNAの発現量を測定した。
・使用したプライマーの塩基配列
(IL−13)
F:5´―AGACCAGACTCCCCTGTGCA―3´
R:5´―TGGGTCCTGTAGATGGCATTG―3´
(ぺリオスチン)
F:5´―GAACGAATCATTACAGGTCC―3´
R:5´―GGAGACCTCTTTTTGCAAGA―3´
(TSLP)
F:5´―CTGAGAGAAATGACGGTACTCAGG―3´
R:5´―GGAGATTGCATGAAGGAATACCAC―3´
3-2-3. Quantitative RT-PCR
The cDNA was amplified by RT-PCR method.
Specifically, 2 μl of the cDNA solution obtained above was dropped into each well of a 384-well plate, and 6.4 μl of milli-Q water, 2 × SYBR GREEN (product name: THUNDERBIRD SYBR (registered trademark) qPCR Mix ( 10 μl, 10 μM forward primer 0.6 μl, 10 μM reverse primer 0.6 μl and 50-fold diluted ROX (TOYOBO) 0.4 μl added 18 μl of Master Mix solution, and the final volume was 20 μl. The base sequences of the forward primer and the reverse primer used were as follows: each sample was heat-denatured at 95 ° C. for 60 seconds, then annealed at 95 ° C. for 15 seconds and 60 ° C. for 60 seconds. Extension was repeated for 40 cycles.
Based on the cDNA thus obtained, the expression levels of various cytokines and inflammatory mediator mRNA in the auricle were measured.
-Base sequence of the primer used (IL-13)
F: 5'-AGACCAGAACTCCCCTGTGCA-3 '
R: 5'-TGGGTCCCTGTAGATGGCATTG-3 '
(Periostin)
F: 5'-GAACGAATCATTACAGGTCC-3 '
R: 5'-GGAGACCCTTTTTGCAAGA-3 '
(TSLP)
F: 5'-CTGAGAGAAAATGACGGTACTCAGG-3 '
R: 5'-GGAGATTGCATGAAGGAATAACCAC-3 '
3−3.IL−13のmRNA発現抑制作用
炎症性サイトカインであるIL−13の耳介におけるmRNA発現量を図2に示す。対照群におけるIL−13 mRNAの発現量1に対し治療群3%では0.167、治療群5%では0.250、予防群3%では0.078、予防群5%では0.101であった。よって乳酸菌生産物質を摂取しなかった対照群と比較してIL−13 mRNAの発現はいずれも劇的に抑制されたことが分かった。
3-3. IL-13 mRNA expression inhibitory action IL-13 mRNA expression level in the pinna of IL-13, which is an inflammatory cytokine, is shown in FIG. The expression level of IL-13 mRNA in the control group was 0.167 in the
3−3−1.ペリオスチン及びTSLPのmRNA発現抑制作用
各群のアレルギー性皮膚炎(耳介)におけるペリオスチンmRNAの発現量を図3に、TSLP mRNAの発現量を図4に示す。対照群におけるペリオスチンmRNAの発現量を1とすると、治療群3%では0.901、治療群5%では0.120、予防群3%では0.472、予防群5%では0.355であった。また、TSLPmRNA発現量については、対照群1に対して、治療群3%では0.941、治療群5%では0.614、予防群3%では0.506、予防群5%では0.457であった。
したがって、本発明の乳酸菌生産物質を摂取しなかった対照群と比較してペリオスチン、TSLPのいずれにおいてもmRNAの発現が抑制されることが分かった。
3-3-1. Periostin and TSLP mRNA Expression Inhibitory Actions The expression level of periostin mRNA in allergic dermatitis (auricle) of each group is shown in FIG. 3, and the expression level of TSLP mRNA is shown in FIG. If the expression level of periostin mRNA in the control group is 1, it was 0.901 in the
Therefore, it was found that mRNA expression was suppressed in both periostin and TSLP as compared with the control group that did not take the lactic acid bacteria-producing substance of the present invention.
上記で得られた結果より、本発明に係る乳酸菌生産物質はアレルギー性皮膚炎部位におけるIL−13、ペリオスチン及びTSLPなどのサイトカイン及び炎症性メディエーターの産生を抑制する、アレルギー性炎症の抑制効果を有することが示唆された。 From the results obtained above, the lactic acid bacterium-producing substance according to the present invention suppresses the production of cytokines and inflammatory mediators such as IL-13, periostin and TSLP at the site of allergic dermatitis, and has an inhibitory effect on allergic inflammation. It has been suggested.
4.全身性アレルギー反応抑制効果の検証
上記の結果により、本発明に係る乳酸菌生産物質はアレルギー性皮膚炎部位における炎症抑制効果を有することが見出された。これに対し、乳酸菌生産物質の全身性アレルギー反応に対する効果を測定するために、炎症性サイトカインであるIL−4、血中IgE及び血中IgAの発現量の測定を行った。
4). Verification of systemic allergic reaction inhibitory effect Based on the above results, it was found that the lactic acid bacterium-producing substance according to the present invention has an inflammation-inhibiting effect at the site of allergic dermatitis. On the other hand, in order to measure the effect of lactic acid bacteria production substances on systemic allergic reaction, the expression levels of IL-4, blood IgE and blood IgA, which are inflammatory cytokines, were measured.
4−1.脾臓IL−4 mRNA発現量
脾臓はマウスから採取後、破砕してからTRIZOLに保存した。また、前述の方法でtotal RNAの抽出、cDNAの調製及びRT−PCRを行った。また、RT−PCRで使用したフォワードプライマー、リバースプライマーの塩基配列はそれぞれ以下のとおりであった。
(IL−4)
F:5´―TCTCGAATGTACCAGGAGCCATATC―3´
R:5´―AGCACCTTGGAAGCCCTACAGA―3´
4-1. Spleen IL-4 mRNA expression level The spleen was collected from the mouse, crushed and stored in TRIZOL. In addition, total RNA extraction, cDNA preparation, and RT-PCR were performed as described above. The base sequences of the forward primer and reverse primer used in RT-PCR were as follows.
(IL-4)
F: 5'-TCTCGAAGTTACCAGGAGCATCAT-3 '
R: 5′-AGCACCCTTGGAAGCCCTACAGA-3 ′
DNFB(−)群における脾臓IL−4 mRNA発現量を1とし、これに対する他の群でのmRNA発現量の相対値を図5で示す。DNFB(−)群で1であったのに対し対照群が5.757であり、DNFB感作によるアレルギー性皮膚炎の炎症部位以外においてもIL−4の産生が促進されていることが分かった。また、これに対し、治療群3%では2.438、治療群5%では2.310、予防群3%では3.110、予防群5%では2.164であり、いずれの群においてもmRNA発現の劇的な低下が見られた。
The spleen IL-4 mRNA expression level in the DNFB (−) group is 1, and the relative value of the mRNA expression level in other groups is shown in FIG. The DNFB (-) group was 1, whereas the control group was 5.757, indicating that IL-4 production was promoted at sites other than the inflammation site of allergic dermatitis due to DNFB sensitization. . On the other hand, the
4−2.ELISA法による血中IgE及び血中IgAの定量
ELISA法により血中IgE及び血中IgAの定量を行った。
ELISAキットとしては、血中IgEの定量にはレビス IgE−ELISA キット(マウス) AKRIE−10(株式会社シバヤギ)を用い、血中IgAの定量にはMouse IgA Ready−SET−Go! ELISA 88−50450(eBioscience)を用い、それぞれのキットに付属のプロトコールに従って測定を行った。
4-2. Quantification of blood IgE and blood IgA by ELISA The blood IgE and blood IgA were quantified by ELISA.
As an ELISA kit, Levis IgE-ELISA kit (mouse) AKRIE-10 (Shiba Goat Co., Ltd.) was used for blood IgE quantification, and Mouse IgA Ready-SET-Go! Measurement was performed using ELISA 88-50450 (eBioscience) according to the protocol attached to each kit.
4−2−1.血中IgE濃度の定量結果
ELISA法による血中IgE量の測定結果を図6で示す。血中IgE濃度はDNFB(−)群が1.18(μg/ml)であったのに対し、対照群が12.23(μg/ml)であり、DNFB感作によって血中IgE濃度が有意に上昇することが確認された。その一方で、治療群3%では10.82(μg/ml)、治療群5%では8.60(μg/ml)、予防群3%では8.81(μg/ml)、予防群5%では10.00(μg/ml)であり、対照群に対していずれにおいても低下していた。
4-2-1. Quantitative result of blood IgE concentration FIG. 6 shows the measurement result of the blood IgE amount by the ELISA method. The blood IgE concentration was 1.18 (μg / ml) in the DNFB (−) group, while it was 12.23 (μg / ml) in the control group, and the blood IgE concentration was significantly increased by DNFB sensitization. Confirmed to rise. On the other hand, 10.82 (μg / ml) in the
4−2−2.血中IgA濃度の定量結果
ELISA法による血中IgA濃度の測定結果を図7に示す。血中IgA濃度はDNFB(−)群が50.13(μg/ml)であったのに対し、対照群が29.69(μg/ml)であり、血中IgEとは反対にDNFB感作によって血中IgA濃度が有意に低下することが確認された。その一方で、治療群3%では36.80(μg/ml)、治療群5%では43.01(μg/ml)、予防群3%では48.03(μg/ml)、予防群5%では49.63(μg/ml)であり、いずれにおいても有意に増加した。
4-2-2. Quantitative results of blood IgA concentration FIG. 7 shows the results of measuring blood IgA concentration by ELISA. The blood IgA concentration was 50.13 (μg / ml) in the DNFB (−) group, whereas it was 29.69 (μg / ml) in the control group, and DNFB sensitization was contrary to blood IgE. As a result, it was confirmed that the blood IgA concentration significantly decreased. On the other hand, 36.80 (μg / ml) in the
4−3.全身性アレルギー反応抑制効果の検証結果
以上の結果より、脾臓におけるIL−4の発現が抑制されたことでIgMからIgEへのクラススイッチが抑制され、反対にIgAへのクラススイッチが促進されたことにより、血中IgE濃度が低下したことが示唆された。
通常、過剰なIgE産生に伴いアレルギー症状が生じるものであるが、乳酸菌生産物質を摂取することで、全身レベルにおいてもアレルギー症状抑制効果を発揮することが示された。
4-3. Based on the results of the above-described verification of the systemic allergic reaction inhibitory effect, the suppression of IL-4 expression in the spleen suppressed the class switch from IgM to IgE, and conversely promoted the class switch to IgA. This suggested that the blood IgE concentration decreased.
Usually, allergic symptoms are caused by excessive IgE production, but it has been shown that by ingesting a lactic acid bacteria-producing substance, the allergic symptoms can be suppressed even at the whole body level.
5.統計学的処理及び検定法
図1〜図7で示す各グラフにおいて、測定値は全て平均値±標準偏差で示している。統計学的検定法としてt検定を用い、対照群との間で両側検定を行った。各グラフにおいて、p<0.05の場合を有意差ありと判定し、p<0.05を*で示し、p<0.01を**で示した。
5. Statistical processing and test method In each graph shown in FIGS. 1 to 7, all measured values are shown as mean ± standard deviation. A t-test was used as a statistical test method, and a two-sided test was performed with the control group. In each graph, the case where p <0.05 was determined to be significant, p <0.05 was indicated by *, and p <0.01 was indicated by **.
Claims (18)
前記乳酸菌から選択した2、3または4種以上の乳酸菌を組み合わせて、その組み合わせに含まれる乳酸菌が異なる複数のグループを作り、そのグループごとに共棲培養する予備培養工程を含む乳酸菌生産物質の製造方法。 A lactic acid bacterium belonging to Lactobacillus (Lactobacillus) genus, and lactic acid bacteria belonging to the Lactococcus (Lactococcus) genus, a Enterococcus (Enterococcus) method for producing a lactic acid producing substances that Force culturing lactic acid bacteria belonging to the genus
A method for producing a lactic acid bacterium-producing substance comprising a pre-culturing step of combining two, three or four or more types of lactic acid bacteria selected from the lactic acid bacteria to form a plurality of groups in which the lactic acid bacteria contained in the combination are different and co-culturing each group .
The lactic acid bacteria-producing substance according to claim 15, wherein the filtrate does not contain viable bacteria of the lactic acid bacteria.
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