JP2015149986A - 細胞捕捉用マイクロ流路 - Google Patents

細胞捕捉用マイクロ流路 Download PDF

Info

Publication number
JP2015149986A
JP2015149986A JP2014043276A JP2014043276A JP2015149986A JP 2015149986 A JP2015149986 A JP 2015149986A JP 2014043276 A JP2014043276 A JP 2014043276A JP 2014043276 A JP2014043276 A JP 2014043276A JP 2015149986 A JP2015149986 A JP 2015149986A
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
microchannel
fine
individual
capturing
region
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
JP2014043276A
Other languages
English (en)
Inventor
勝己 谷田
Katsumi Tanida
勝己 谷田
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
HOUSEN KK
Original Assignee
HOUSEN KK
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by HOUSEN KK filed Critical HOUSEN KK
Priority to JP2014043276A priority Critical patent/JP2015149986A/ja
Publication of JP2015149986A publication Critical patent/JP2015149986A/ja
Pending legal-status Critical Current

Links

Landscapes

  • Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)

Abstract

【課題】各種細胞、高分子、金属など微細個体を所定の位置に固定し、さらにその表面を容易に化学的に修飾できるマイクロ流路を提供することにある。また、細胞を用いた場合は、その培養、遺伝子導入実験も同時に行うことができるマイクロ流路を提供することを課題とする。【解決手段】流路内の所定の位置に微細個体を固定するためのカップ状の構造物を配置する。このカップ状構造物は周囲を流れる液体とカップ内を流れる液体の流速を近似せしめる為の液抜きの穴を具備している。この構造により微細個体を簡単にカップ内に導入することができる。【選択図】図1

Description

本発明は、微細個体として動植物細胞、バクテリア、ウイルスなどの細胞またはそれらの構成要素であるオルガネラなど生物粒子、さらには金属、高分子、無機、セラミック、金属酸化物、金属窒化物粒子を捕捉し、一定時間同一箇所にとどまらせることにより、動植物細胞であるなら培養、染色、遺伝子導入など各種トランスフェクション、分化誘導、さらには化学的、物理的修飾および処理、動植物細胞以外の粒子であるならその表面化学および物理修飾を応用可能とするマイクロ流路である。また、細胞スフェロイド形成足場の構築のため、足場剤をマイクロ流路に導入し、更に導入後放置、光照射などの処理を行い足場剤を固定した基板を剥がして足場基板として細胞培養に用いることも可能である。
金属、高分子、無機、セラミック、金属酸化物、金属窒化物粒子の表面修飾は、通常ある一定時間修飾分子が溶解もしくは分散した溶液に導入し、その後、洗浄などの方法で精製するのが一般的な方法である。この方法で修飾した粒子は免疫分析、DNA、ペプチド、ポリマーの固相合成において重要である。動植物細胞において細胞表面で起こる膜たんぱく質分子の構造変化や細胞内でのシグナル伝達解析を検討する場合、細胞を一定時間特定の溶液に浸漬し、化学的もしくは物理的もしくは生理学的処理を施し、さらにその処理の停止をおこなう必要がある。さらに、細胞、オルガネラ、微生物の染色を定量的に行うことは例えばフローサイトメトリー解析に対して非常に重要なことである。
これら上記記載の表面修飾に関して従来、金属、高分子、無機、セラミック、金属酸化物、金属窒化物粒子の表面修飾は、目的とする例えば化学分子を懸濁させた溶液にこれら粒子を混合することで行われたが、粒子サイズが小さくなると粒子間の凝集が起こり、粒子の分散状態が悪化するなどの問題があった。また、これら凝集を抑制するために一般的に溶液の塩基性もしくは酸性を制御する(すなわちピーエイチ制御)方法があるが、この場合表面修飾する化学分子が変性するなどの問題が生じることが問題となっている。
細胞表面もしくはその内部の修飾や染色に関しては、例えば培養ビン、もしくは培養シャーレ内で細胞を所定のセルラインに従って培養し、その後、バッファーなどで洗浄した後に直接染色液や修飾分子含有溶液に細胞を所定時間浸し、染色もしくは修飾を完了する方法、もしくは培養した細胞をトリプシンなどの酵素により培養器からはがし、その後剥がした細胞のみをバッファー等に分散し、この細胞分散バッファー溶液に染色剤、化学修飾剤を添加して細胞表面の修飾もしくは染色を完了している。しかしながら前者の方法では特定細胞の経時的変化を追跡する場合には非常に手間がかかるなどの問題、また個々の細胞の特性による変異を細かくモニターすることが難しく、薬理動態など薬物試験において問題があり、また後者の方法ではトリプシンで処理された時点で細胞表面の改質が起こってしまい実細胞の表面と異なった状態になってしまうという問題があった。
近年、半導体産業を中心として急速に発展した微細加工技術を応用し作製したマイクロ流路を用いて細胞の染色、修飾、培養を行う技術が検討されている。この様に個々の細胞を捕捉することが出来れば、その細胞に対して例えばRCA法(in situ padlock probe rolling circle amplification)(非特許文献1参照。)等を行うことにより、その細胞が、特定のがん遺伝子を有しているか否かを調べることができる。一方、細胞捕捉を目的としたマイクロ流路も提案されている。例えば、捕捉すべき細胞の表面の抗原を標的とする抗体を固定化した円柱状ピラーをマイクロ流路内に分散して配置し、これらピラーと衝突した目的細胞を捕捉するものである(非特許文献2参照)。
N.Nilcon et al., Science,265,1994. S.Nagrath et. al., Nature 450,2007
以上のような背景の下に、本発明は、所望の微細個体を破壊することなく効率よく単離捕捉することができ、捕捉された微細個体を顕微鏡等で観察することが容易であり、また、微細個体が細胞である場合捕捉位置での培養、染色、遺伝子導入など細胞操作を可能とするものである。
本発明者らは、上記課題を解決するべく鋭意検討を行った結果、マイクロ流路内に細胞捕捉用のカップ状壁を配置し、そのカップ状壁が捕捉すべき構造物の開口部のサイズが細胞サイズの50%以上100%未満でありさらにその構造体は数箇所液体が通り抜けられる流路を形成してあることでその構造体に細胞を導入することを可能とした。またこの構造体は予め数および位置が決められているため、例えば電動X−Yステージ付顕微鏡を用いれば、その形態観察等が全て自動で行えることを見出し、本発明を完成した。
すなわち、本発明は、一つの態様において、
(1)特定の微細個体を捕捉するためのマイクロ流路であって、シリコンゴムで形成されたブロック内にマイクロ流路を具備し、さらにそのマイクロ流路内に微細個体捕捉領域を所定の位置に有し、さらにその微細個体捕捉領域は周囲を流れる液体と捕捉領域を流れる液体の流速を近似せしめる為のいくつかの貫通領域を具備していることを特徴とするマイクロ流路。
(2)第1項において、微細個体が細胞もしくは高分子単粒子もしくはその凝集体もしくは金属粒子単体もしくはその凝集体であり、これら微粒子の大きさが少なくとも3μm以上、100μm未満で、さらに流路内にこれら個体を捕捉可能な形態を具備しているマイクロ流路
(3)第1項において、微細個体捕捉領域がカップ状の形状をなし、その開口部の寸法が捕捉すべき微細個体のサイズの50%以上200%未満であるマイクロ流路。
(4)第1項において、マイクロ流路の流路深さが捕捉すべき微細個体のサイズの1.5倍から0.5倍であるマイクロ流路。
(5)第1項ないし第3項において、微細個体捕捉領域の平面的寸法が縦横何れも100μm以下であるマイクロ流路。
(6)第1項において、微細個体捕捉領域の形状としてその捕捉領域外と捕捉領域内を流れる流速を近似せしめる為に微細個体捕捉領域に液抜きのための穴が具備されているマイクロ流路。
(7)第5項において、液抜きのための穴の幅が5μm以下であるマイクロ流路。
(8)微細個体捕捉領域は顕微鏡による自動観察ができるようにその位置が固定されているマイクロ流路。
(9)第1項において、マイクロ流路において薬剤導入口として微細個体の導入口、それを染色する薬剤の導入口、薬剤を洗い流す洗浄剤の導入口など少なくとも1つ以上の導入口を有するマイクロ流路。
(10)第1項において、微細個体が細胞であって、個々の固定サイトに細胞を固定した後に細胞を培養することが可能であるマイクロ流路。
(11)第1項及び第2項において、微細個体を捕捉領域はマイクロ流路内の液体の流れる方向に対して90度をなす方向に開口する向きで少なくとも1箇所以上設置されており、さらにその微細個体の捕捉領域は少なくともマイクロ流路内において200μmに1個以上の割合で設置されるマイクロ流路。
(12)第1項において、マイクロ流路において個体を捕捉可能な形態物を具備した流路の幅が少なくとも20μm以上であるマイクロ流路。
(13)第1項ないし第9項、及び第11項ないし第12項において、微細個体捕捉領域はマイクロ流路内の基板表面処理剤を導入し、その後、冷却もしくは常温もしくは加熱処理を行い、基板表面に所定形状の表面を処理を施して成るマイクロ流路。
本発明によれば、表面修飾を必要とする微細個体を凝集することなく個々に捕捉し、その捕捉した位置で所望の修飾剤を作用させることによって、かかる微細個体の表面を効率的に修飾することが可能となる。特に、細胞への遺伝子導入、染色に関しては蛍光標識等の検出部位を付与した抗体を含むキット等に応用することで、生体から採取した細胞や組織を測定対象とする簡便かつハイスループットな蛍光標識細胞の作製又は蛍光イメージングを行うことができる。また、細胞を予め定位置に具備させた捕捉領域に固定することで、顕微鏡等による自動観察を可能としている。さらに、本発明のマイクロ流路本体にシリコン樹脂を用いていることから従来のようにガラス等の無機基板にレーザーなどにより直接設置していたマイクロ流路とは異なり簡便に作製することできるという利点も有する。
マイクロ流路内に設置されている微細個体捕捉領域の模式図 マイクロ流路内に具備された微細固体補足領域1内に設置された微細固体補足を目的とした構造体の断面の模式図 マイクロ流路内に具備された微細固体補足領域2内に設置された微細固体補足を目的とした構造体の断面の模式図 マイクロ流路内に具備された微細固体補足領域3内に設置された微細固体補足を目的とした構造体の断面の模式図 マイクロ流路内に具備された微細固体補足領域4内に設置された微細固体補足を目的とした構造体の断面の模式図 マイクロ流路内に具備された微細固体補足領域5内に設置された微細固体補足を目的とした構造体の断面の模式図 微細固体補足領域5に補足された細胞の顕微鏡写真 微細固体補足領域5に補足された細胞から発せられる蛍光の顕微鏡写真
以下、本発明の実施形態について説明する。本発明の範囲はこれらの説明に拘束されることはなく、以下の例示以外についても、本発明の趣旨を損なわない範囲で適宜変更し実施することができる。
1.マイクロ流路
本願において「マイクロ流路」とは、ターゲットとなる微細個体を凝集することなく所定の捕捉領域に固定し、その固定位置で固定されている微細個体表面を各種表面修飾剤により染色もしくは遺伝子導入、さらには培養を行うことができる流路である。本発明に係わる微細個体としては細胞、ウイルス、バクテリアなど生態物質または高分子粒子または無機粒子であり、好ましくはその大きさが3μ以上、より好ましくは5μ以上、さらに好ましくは8μ以上であり、その流路内には上記微細個体を捕捉可能な形態を具備しており、さらにその具備された捕捉領域はその周りを流れる液体の流速と捕捉領域を流れる液体の流速を近似せしめる為に液体の貫通穴が設置してある。貫通穴は少なくとも1箇所、好ましくは3箇所、さらに好ましくは5箇所以上である。これは貫通穴が多いほど1つの貫通穴の幅を小さくすることができ、捕捉された微細個体が貫通穴から抜け出る恐れがなくなる。また、具備されている微細個体捕捉領域の開口部は微細個体のサイズの好ましくは50%以上200%未満、更に好ましくは50%以上150%未満、より好ましくは50%以上100%未満であり、微細個体単体が1つの捕捉エリアに捕捉されるように設計されている。またマイクロ流路自体の深さは捕捉される微細個体のサイズの好ましくは1.5倍から0.5倍であり、さらに好ましくは1.2倍から0.7倍、モットの好ましくは1倍から0.8倍である。好ましい実施態様において、本発明にマイクロ流路内に具備されている。微細個体捕捉領域の平面的寸法が縦横何れも100μm以下、好ましくは50μm以下、更に好ましくは15μm以下である。
これら捕捉領域の形態を図1に示す。捕捉領域の形状に関しては特に限定するものではないが、少なくとも微細個体を捕捉するためのカップ状の形態を有することが好ましい。
これら捕捉領域には液体を流すための貫通口(図1)が設けられている。この貫通口の開口部サイズは5μm以下、より好ましくは3μ以下である。また1つの捕捉領域に対して少なくとも1つ、より好ましくは3つ、さらに好ましくは5つ以上の貫通口を有している。この数は多いほど貫通口の開口部サイズを小さくすることが可能となり、それにより一度捕捉された微細個体がその貫通口から抜け出ることを抑制することが出来る。また、たとえば、細胞を染色する場合の染色液がこの微細領域に捕捉されている細胞等に接触しやすくするために貫通口を増やすことが望ましい。上記マイクロ流路は微細個体、染色等の薬剤、さらに洗浄剤を導入する導入口(1)を同一にしても構わないが、それぞれ別の導入口を設けることで、さまざまな染色など表面処理を行うことが可能となる。この導入口の数は少なくとも1箇所、好ましくは3箇所、更に好ましくは4箇所以上である。またこれら微細個体捕捉領域を有するマイクロ流路で、例えば細胞を捕捉した場合、そのまま、その場所で細胞を培養することも可能である。このことから、本マイクロ流路は細胞へのストレス試験、分化誘導にも適しているといえる。これら微細個体捕捉領域はマイクロ流路内の液体の流れる方向に対して90度をなす方向に少なくとも1箇所以上設置されており、さらにその微細個体捕捉領域は少なくとも200μmに1個の割合で設置されることが望ましい。また、流路全体の幅は少なくとも20μm以上であり、好ましくは2000μm以上である。
2.微細個体の自動観察システム
本微細個体捕捉領域を付帯したマイクロ流路はその捕捉領域が固定であるため、電動X−Yステージを具備した顕微鏡を用いることにより指定した捕捉領域に捕捉されている細胞等の状態を経時的に自動で観察することができる。このため本システムは細胞に対する薬理動態、分化誘導の経時的変化、培養状態のチェックなどに応用することができる。また、マイクロ流路を用いているため、培地を継続的に流すことが可能で交換する必要がなく、また、一定期間の後細胞を回収する場合、トリプシンなどの剥離剤を導入した後、リバース側に培地やバッファーを流すことで簡単に細胞を回収できる。
以下、実施例により本発明をさらに詳細に説明するが、本発明はこれらによって限定されるものではない。
マイクロ流路の作製:マイクロ流路は通常のソフトリソグラフィー法によって作製が可能である。その工程を以下に示す。
1) CADによるマイクロパターンの作製
2) リソグラフィー用マスクの作製
3) リソグラフィーによる型の作製
4) 型にシリコン樹脂を流し、マイクロパターンを転写しレプリカを作製
5) 所定の大きさに切り出し、導入口を開けた後に平面基板へ貼り付ける。
より詳細な実験手順は、以下のとおりである。
フォトマスクの作成:キャドソフトにより作製したマイクロパターンを図1から図6に示す。これらマイクロパターンは石英ガラスに転写されフォトマスクとして使用される。
型の作成:ネガ型レジンエスユーエイト3010をシリコンウエハー上に滴下し振り切り回転速度3000回転で30秒間スピンコートする。シリコン基板上におよそ10μmの膜が形成される。その後、95℃に設定されたホットプレート上に3分間放置してソフトベークを行う。表面のベタつきがほぼなくなるまで冷却した後、ネガ型レジン用フォトマスクを介して紫外線を照射する。使用する紫外線ランプは350nmの波長であり、積算光量として200mJ/cmを照射する。照射したレジン付きシリコンウエハーは95℃に設定されたホットプレート上で2分間加熱される。この時、レジン上にパターンが浮かび上がる。この焼成をポストベークと呼ぶ。ポストベーク後シリコンウエハーをエスユーエイト3010の剥離剤であるマイクロケムエスユーエイトデベロッパーを用いて未照射部を剥離する。剥離後ウエハーを純粋でよく洗浄し、その後150℃焼成炉で2時間焼成する。
レプリカの作成:上記作成した型をガラスシャーレに入れ、これにシリコンレジンシリガード184と硬化剤を1:1で混合した粘性液体を流し込み、減圧下で脱泡した後に80℃炉に3時間放置し硬化させる。硬化後手術用メスを用いて流路相当部に切り込みを入れ、その端部からピンセットを用いて慎重にシリコンウエハーから剥がしとる。
マイクロ流路の作成:上記方法で作成したレプリカのドレイン及び薬剤導入部にパンチで穴を開ける。ガラス基板との貼り合わせはプラズマを用いるが、貼り合わされる面にプラズマが照射する。プラズマはおよそ30秒程度照射する。プラズマガスは空気もしくは酸素を用いる。プラズマ照射後レプリカとガラス基板を貼り合わせる。この時貼り合わせ面に空気が残らないように張り合わせる。その後80℃炉に30分放置し接着を完了する。接着後導入口及びドレイン口にそれぞれピンを立て、その根元をシリコン接着剤で必要に応じて硬化する。
細胞の固定及び染色実験:直径30mmの小型シャーレに培養したマウス大腸がん細胞(細胞濃度 2.5×10cell/mL)の培地を吸い出し、燐酸バッファーを用いて洗浄を3回行う。タカラバイオ株式会社より購入したリブアンドデッド試薬を次の書式に従って調整する。
1)2mM ErgD−1溶液の20μLを10mL燐酸バッファーに添加し攪拌する。この状態で濃度はおよそ4μM溶液となる。
2)1)で調整した溶液に4mM カルセインAM溶液の5μLを添加し攪拌する。
3)直径30mmの小型シャーレにバッファー200μLを添加し、これに100μLの2)で調整した染色試薬を添加して37℃インキュベーター内で30分放置する。その後、トリプシンを用いて細胞をシャーレから剥離した後、遠心により燐酸バッファーで洗浄し、十分に燐酸バッファーに分散した後にシリンジに充填し、マイクロ流路に0.5mL/minの速度で流し込む。
4)流し込みながら蛍光顕微鏡を用いて流路内に固定される細胞を観察し、その固定細胞から発せられる蛍光を観察する。
流路内の微細固体補足領域5に補足された細胞の顕微鏡写真を図7に示す。また、その細胞から発せられる蛍光の顕微鏡写真を図8に示す。
1 導入口 直径2mm、 2 濾過エリア、
3 微細固体補足領域1、 4 濾過エリア、
5 微細固体補足領域2、 6 濾過エリア、
7 微細固体補足領域3、 8 濾過エリア、
9 微細固体補足領域4、 10 濾過エリア、
11 微細固体補足領域5、 12 濾過エリア、
13 ドレイン口、 14 開口部 7.5 μm、
15 貫通口 2.0 μm、 16 貫通口 2.0 μm、
17 貫通口 4.0 μm、 18 微細固体補足用ピラー、
19 開口部 7.5 μm、 20 貫通口 4.0 μm、
21 開口部 20 μm、 22 貫通口 3 μm、
23 貫通口 3 μm、 24 貫通口 10 μm、
25 貫通口 5 μm、 26 閉塞用構造体、
27 閉塞用構造体、 28 閉塞用構造体間隔 15μm、
29 開口部 10 μm、 30 貫通口 3.5μm、
31 誘導用構造体

Claims (13)

  1. 特定の微細個体を捕捉するためのマイクロ流路であって、シリコンゴムで形成されたブロック内にマイクロ流路を具備し、さらにそのマイクロ流路内に微細個体捕捉領域を所定の位置に配置し、さらにその微細個体捕捉領域は周囲を流れる液体と捕捉領域を流れる液体の流速を近似せしめる為のいくつかの貫通領域を具備していることを特徴とするマイクロ流路。
  2. 請求項1において、該微細個体が細胞もしくは高分子単粒子もしくはその凝集体もしくは金属粒子単体もしくはその凝集体であり、これら微粒子の大きさが少なくとも3μm以上、100μm未満で、さらに流路内にこれら個体を捕捉可能な形態を具備しているマイクロ流路。
  3. 請求項1において、該微細個体捕捉領域がカップ状の形状をなし、その開口部の寸法が捕捉すべき微細個体のサイズの50%以上200%未満であるマイクロ流路。
  4. 請求項1において、該マイクロ流路の流路深さが捕捉すべき微細個体のサイズの1.5倍から0.5倍であるマイクロ流路。
  5. 請求項1ないし請求項3において、該微細個体捕捉領域の平面的寸法が縦横何れも100μm以下であるマイクロ流路。
  6. 請求項1において、該微細個体捕捉領域の形状としてその捕捉領域外と捕捉領域内を流れる流速を近似せしめる為に微細個体捕捉領域に液抜きのための穴が具備されているマイクロ流路。
  7. 請求項5において、該液抜きのための穴の幅が5μm以下であるマイクロ流路。
  8. 請求項1において、該微細個体捕捉領域は顕微鏡による自動観察ができるようにその位置が固定されているマイクロ流路。
  9. 請求項1において、該マイクロ流路において薬剤導入口として微細個体を導入口、それを染色する薬剤の導入口、薬剤を洗い流す洗浄剤を導入口など少なくとも1つ以上の導入口を有するマイクロ流路。
  10. 請求項1において、該微細個体が細胞であって、個々の固定サイトに細胞を固定した後に細胞を培養することが可能であるマイクロ流路。
  11. 請求項1及び請求項2において、該微細個体捕捉領域はマイクロ流路内の液体の流れる方向に対して90度をなす方向に開口する向きで少なくとも1箇所以上設置されており、さらにその微細個体捕捉領域は少なくともマイクロ流路内において200μmに1個以上の割合で設置されるマイクロ流路。
  12. 請求項1において、該マイクロ流路において個体を捕捉可能な形態物を具備した流路の幅が少なくとも20μm以上であるマイクロ流路。
  13. 請求項1ないし請求項9、及び請求項11ないし請求項12において、該微細個体捕捉領域はマイクロ流路内の基板表面処理剤を導入し、その後、冷却もしくは常温もしくは加熱処理を行い、基板表面に所定形状の表面を処理を施して成るマイクロ流路。
JP2014043276A 2014-02-14 2014-02-14 細胞捕捉用マイクロ流路 Pending JP2015149986A (ja)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2014043276A JP2015149986A (ja) 2014-02-14 2014-02-14 細胞捕捉用マイクロ流路

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2014043276A JP2015149986A (ja) 2014-02-14 2014-02-14 細胞捕捉用マイクロ流路

Publications (1)

Publication Number Publication Date
JP2015149986A true JP2015149986A (ja) 2015-08-24

Family

ID=53892901

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2014043276A Pending JP2015149986A (ja) 2014-02-14 2014-02-14 細胞捕捉用マイクロ流路

Country Status (1)

Country Link
JP (1) JP2015149986A (ja)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2019154241A (ja) * 2018-03-07 2019-09-19 株式会社豊田中央研究所 細胞トラップ構造体及びその利用
CN110753750A (zh) * 2017-05-17 2020-02-04 公立大学法人大阪 颗粒捕捉装置和颗粒捕捉方法

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN110753750A (zh) * 2017-05-17 2020-02-04 公立大学法人大阪 颗粒捕捉装置和颗粒捕捉方法
CN110753750B (zh) * 2017-05-17 2024-01-16 公立大学法人大阪 颗粒捕捉装置和颗粒捕捉方法
JP2019154241A (ja) * 2018-03-07 2019-09-19 株式会社豊田中央研究所 細胞トラップ構造体及びその利用
JP7192221B2 (ja) 2018-03-07 2022-12-20 株式会社豊田中央研究所 細胞トラップ構造体及びその利用

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Khoo et al. Expansion of patient-derived circulating tumor cells from liquid biopsies using a CTC microfluidic culture device
Kashaninejad et al. Advances in microfluidics‐based assisted reproductive technology: From sperm sorter to reproductive system‐on‐a‐chip
Ziolkowska et al. PDMS/glass microfluidic cell culture system for cytotoxicity tests and cells passage
WO2017177839A1 (zh) 一种超疏水微坑阵列芯片及其制备方法与应用
JP2022022281A (ja) ペン内アッセイの方法、システム及びキット
CN105026562B (zh) 基因定量、序列分析用二维细胞阵列器件及装置
US7999937B1 (en) Microfluidic devices and methods for integrated flow cytometry
JP2012529643A (ja) 単一細胞または他の粒子の分析用ピコウェル捕捉装置
JP2014523534A (ja) 相転移媒体を有したフィルター支持
WO2017087693A2 (en) Customizable hydrogel microwell array
Li et al. Injection molded microfluidics for establishing high-density single cell arrays in an open hydrogel format
Gao et al. A microfluidic approach for anticancer drug analysis based on hydrogel encapsulated tumor cells
Pitingolo et al. Beyond the on/off chip trade-off: A reversibly sealed microfluidic platform for 3D tumor microtissue analysis
Ugolini et al. Generation of functional cardiac microtissues in a beating heart-on-a-chip
Cai et al. Disk-like hydrogel bead-based immunofluorescence staining toward identification and observation of circulating tumor cells
Zurgil et al. Polymer live-cell array for real-time kinetic imaging of immune cells
JP2015149986A (ja) 細胞捕捉用マイクロ流路
Han et al. Large-scale investigation of single cell activities and response dynamics in a microarray chip with a microfluidics-fabricated microporous membrane
Liu et al. A microfluidic photolithography for controlled encapsulation of single cells inside hydrogel microstructures
Al-Mofty et al. A microfluidic platform for dissociating clinical scale tissue samples into single cells
CN112973986B (zh) 一种离心装置
KR20240029728A (ko) 개인 맞춤형 약 및 약물 개발에 사용하기 위한 미세-유기구체
Shen et al. Integrated Microwell Array-Based Microfluidic Chip with a Hand-Held Smartphone-Controlled Device for Nucleic Acid Detection
Chen et al. Droplet-based microfluidics for single-cell encapsulation and analysis
Qiao et al. High throughput and uniform tumour spheroids culture system for drug screening