JP2014523925A - 高脂血症及びその心血管系の合併症の予防及び治療のための3−ヒドロキシアントラニル酸(3−haa)による治療 - Google Patents
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Abstract
Description
1週間に3回、8週間、3-HAAを腹腔内に注入する(200 mg/kg)ことによって、代謝及び炎症へ効果のある防御免疫の誘発が達成され得る、と仮定された。12週齢Ldlr-/-マウスを、3-HAA、又はPBS(対照)で処置した。最初の注入後から8週間後の二酸化炭素による屠殺まで、マウスに高脂肪食最初の2日間を給餌した。
動物及び動物の処置
Ldlr-/-マウスを繁殖させ、Karolinska大学病院の分子医薬センターの動物実験ユニットで飼育した。マウス(1群あたり、n= 7-10)にPBS(200 μl)又は3-HAA(PBS 中、200 mg/Kg)の3回の腹腔内注射を、6週間毎週行い、2週間後、毎週1回の注射を行い(総24回の注射)、CO2で屠殺した。処置の2日後に、マウスに高脂肪食(コーンスターチ、ココアバター、カゼイン、グルコース、スクロース、セルロース小麦粉、ミネラル及びビタミン; 17.2%タンパク質、21 %脂質(62.9% 飽和、33.9% 不飽和及び3.4% ポリ不飽和)、0.15% コレステロール、43% 炭水化物、10% H20及び3.9%セルロース繊維; R638 Lantmannen, Sweden)の給餌を開始した。
参考文献31に記載されるように、健康なドナーのプールした血漿から、LDL(d = 1.019-1.063 g/mL)を超遠心分離法で単離した。単離後に、血漿を調製しPBSに対して広範にLDLを透析した後すぐに、2mMベンズアミジン、0.5mM PMSF及び0.1 U/ml アプロチニンを加えた。1ミリモル濃度のEDTAを一定分量のLDLに添加し、LDL粒子の修飾を防止した。
以前(参考文献32)に記載される方法の変更を使用してLDLを標識した。簡潔には、LDL(1.5-2 mg/ml)を一晩、500 mM NaHCO3 pH 9.5に対して透析した。次に、DMSO(1 mg/ml)に溶解した50 μgのFITC(Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA)を、LDL中のタンパク質1mgに対して添加し、室温で2時間インキュベートした。インキュベーション後、溶出用のPD10カラム(GE Healthcare, Uppsala, Sweden)及びPBSを使用して複合物をゲル濾過によって遊離の蛍光色素から分離した。吸収分光法によって、495 nmでFITC検量線に対してFITC複合を評価した。Bradfordアッセイ(Biorad, CA, USA)によってタンパク質濃度を測定した。37℃で18時間、20 μΜ CuSO4の存在下での1 mlのFITC-LDL(1 mg/ml)のインキュベーションによって、酸化FITC-LDL(FITC-oxLDL)を得た。参考文献33に記載されるように、TBARSアッセイによって酸化の程度を評価した。
3-HAA又はPBSの最後の注入の24時間後、Ldlr-/-マウスからPBSの腹腔洗浄で腹腔マクロファージを単離した。PBS中での2〜3時間後に、1 % FCS含有のRPMI 1640培地において、20 μg/ml FITC-oxLDLと共にウェルあたり1x105細胞の密度で96ウェルプレートにマクロファージを播種した。37℃で2時間のインキュベーション後に、細胞をPBSで2度洗浄し、PBS中で4%パラホルムアルデヒドで固定した。CyAn(登録商標)ADPフローサイトメーター(Dako, Glostrup, Denmark)上で細胞を分析した。
製造者のプロトコールに従って、酵素比色分析キット(Randox Lab. Ltd. Crumin, UK)を使用して、血漿コレステロール及びトリグリセリドを測定した。
血漿コレステロールリポタンパク質特性を、Okazaki等の方法(参考文献34)の変更を使用して測定した。簡潔には、3-HAA又はPBSで処置したマウス由来の血漿試料(50μl)を、Prominence UFLCシステム(Shimadzu, Kyoto, Japan)と組み合わせたHR10/30 Superose 6カラム(GE Healthcare, Uppsala, Sweden)及びプレカラムとしてのDiscovery BIO GFC-500(5 cm x 7.8 i.d.; Supelco(登録商標), Sigma-Aldrich, PA, USA)を使用して分画し、トリス緩衝食塩水、pH 7.4で平衡化した。Foxy Jr(登録商標)画分コレクター(Teledyne Isco Inc, NE, USA)を使用して200 μlの画分を採取し、酵素比色分析キット(Randox Lab. Ltd. Crumin, UK)を使用して総コレステロールを各画分中で測定した。
表面の脂質蓄積を、Sudan IV染色を使用して3-HAA及びPBS処置マウス由来の大動脈弓中で測定した。簡潔には、当該解剖した弓を4% 中性緩衝ホルマリン中で固定した。試料を続いて長軸方向にカットし、広げ、ピンで固定し、Sudan IV染色(赤色)に供した。Leica MZ6実体顕微鏡(Leica, Wetzlar, Germany)に接続されたLeica DC480カメラを使用して画像を取り込んだ。所定の大動脈弓(分岐血管を含まない)における全プラークのさらなる領域を、弓の総表面積への割合として算出した。Image Jソフトウェア(NIH, Bethesda, USA)を使用して、プラークの定量化を行った。
値は、他に表示のない限り、平均値±平均値の標準誤差(SEM)として表される。ノンパラメトリックマンホイットニーのU検定を、群間比較のために使用した。違いはP値0.05未満で顕著と見なされた。
3-ヒドロキシアントラニル酸は、oxLDLの取り込みを抑制する。
蛍光FITC-oxLDLの取り込みを、方法セクションに記載されるようにフローサイトメトリーによって定量化した。図2に示されるように、3-HAAで処置したマウス由来の腹腔マクロファージは約79%減少のFITC-oxLDLの取り込みを示した。よって、3-HAAは修飾LDL粒子の取り込み、泡沫細胞形成における重要事象を抑制する。
免疫調節化合物に記載されていなかったが、Ldlr-/-マウスへの3-HAAの投与が、血漿中総コレステロール(約50%)及びトリグリセリド(約72%)の著しく、統計的に顕著な減少と関係した(図3)。さらに、3-HAAは効率的に、HDLレベルを上昇させ、VLDL/HDL(4.0 ± 0.55及び1.4 ± 0.31、PBSの平均値± 平均値の標準誤差及び3-HAA処置マウスそれぞれ; P< 0.01)及びLDL/HDL比(2.3 ± 0.24及び1.4 ± 0.16、PBSの平均値± 平均値の標準誤差及び3-HAA処置マウスそれぞれ; P<0.05)を低下した。これらのデータは、3-HAAを新型の脂質低下剤として認定するものである。3-HAAの投与は、体重に影響はない(データなし)。
最終的に、3-HAAがアテロームの形成に影響しうるかを我々は試験した。高脂肪餌で処置した場合にアテローム性病変が進行するLdlr-/-マウスを、8週間3-HAAで処置した。総血漿コレステロール及びトリグリセリドレベルの飛躍的な減少は、大動脈弓の表面標本においてアテローム硬化性病変部位の約90 %の減少に繋がった(図4)。
Claims (11)
- 高脂血症の治療又は高脂血症の心血管系の合併症の予防における使用のための、3-HAA又はその機能性類似体。
- 前記高脂血症が、高コレステロール血症、高トリグリセリド血症及び複合型高脂血症(高脂血症の複合型形態)から成る群から選択される、請求項1に記載の使用のための3-HAA又はその機能性類似体。
- 前記高脂血症が、血漿中の高密度リポタンパク質(HDL)の低レベルと関連する、請求項1又は2に記載の使用のための3-HAA又はその機能性類似体。
- 前記高脂血症の心血管系の合併症が、アテロームの形成である、請求項1〜3のいずれか1項に記載の使用のための3-HAA又はその機能性類似体。
- 前記高脂血症の心血管系の合併症が、アテロームの形成の臨床症状である、請求項1〜3のいずれか1項に記載の使用のための3-HAA又はその機能性類似体。
- 心筋梗塞及び/又は心不全の予防のための、請求項4又は5に記載の使用のための3-HAA又はその機能性類似体。
- 狭心症の予防のための、請求項4又は5に記載の使用のための3-HAA又はその機能性類似体。
- 虚血性脳卒中及び/又は一過性脳虚血発作の予防のための、請求項4又は5に記載の使用のための3-HAA又はその機能性類似体。
- アテローム性動脈硬化によって生じる、末梢性虚血、壊疽、腎機能障害、大動脈瘤、及び/又は重症虚血肢の予防のための、請求項4又は5に記載の使用のための3-HAA又はその機能性類似体。
- 前記高脂血症の合併症が高脂血症の皮膚科学合併症である、請求項1又は2に記載の使用のための3-HAA又はその機能性類似体。
- 前記高脂血症の皮膚科学合併症が黄色腫である、請求項10に記載の使用のための3-HAA又はその機能性類似体。
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