JP2014523250A - 新規クロストリジウム・ディフィシル(Clostridiumdifficile)DNAワクチン - Google Patents
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Abstract
Description
本願は、内容がその全体において本明細書中で参照により組み込まれる2011年7月12日出願の米国仮出願第61/506,973号に対する優先権を主張する。
本発明は、アメリカ合衆国国防総省により与えられた、コンタクト番号W81XWH−09−1−0382のもと、連邦政府による資金により行われた。連邦政府は本発明において一定の権利を有する。
クロストリジウム・ディフィシル(Clostridium difficile)(C.ディフィシル(C.difficile))関連疾患(CDAD)は、死亡および罹患の主要な原因であり、投薬コストまたは手術によって入院期間が長期化することによる米国の医療システムに対する負担は、およそ11億ドル/年に及ぶ。さらに、病院においてこの疾患の割合が増加しており、医師らは、メトロニダゾールでの処置後に再発率が著しく上昇していることを記録している。C.ディフィシル(C.difficile)による死亡率は上昇しており、新しい株は、抗生物質に耐性があるより高いレベルの毒素を産生する。C.ディフィシル(C.difficile)による結腸感染の結果起こる症状の範囲は、軽度の下痢から、生命を脅かす合併症である重度の結腸炎に及ぶ。抗生物質を投与されている高齢入院患者は依然としてCDACのリスクがある主要な群ではあるもの、病院環境または抗生物質の何れとも以前接触したことがない、より若い世代においてCDADが増加している。さらに、小児および妊婦など、以前には低リスクであった特定集団でのCDADが増加している。従って、周術期の者およびまたは長期にわたり抗生物質を使用してきた者を含め、最もリスクが高い者における予防は優先事項とすべきであり、最も重要なことである。
本発明は、C.ディフィシル(C.difficile)関連疾患(CDAD)を予防、阻害および処置するための組成物および方法を提供する。ある実施形態において、本発明の組成物は、C.ディフィシル(C.difficile)タンパク質(例えばトキシンA(TcdA)およびトキシンB(TcdB))に特異的な抗体の産生を誘導するワクチンである。ある実施形態において、本組成物は、トキシンAの受容体結合ドメイン(RBD)を備える。別の実施形態において、本組成物は、トキシンBのRBDを備える。別の実施形態において、本組成物は、トキシンAのRBDと、トキシンBのRBDと、を備える。
別段の定めがない限り、本明細書中で使用される技術用語および科学用語は全て、本発明が属する技術分野の熟練者により一般に理解されるものと同じ意味を有する。本明細書中に記載のものと類似しているかまたは同等であるあらゆる方法および材料が本発明の実施および試験において使用され得るが、好ましい方法および材料を記載する。
本発明は、クロストリジウム・ディフィシル(Clostridium difficile)(C.ディフィシル(C.difficile))トキシンA及び/又はトキシンB核酸の領域の対象への投与の結果、毒性特異的な抗体の産生が起こるという発見に関する。従って、本発明は、免疫反応の調整においておよびCDADおよび関連障害の抑制、予防および処置において有用であるいくつかのものを含む、ポリペプチドまたはポリペプチドの組み合わせ、ポリヌクレオチドまたはポリヌクレオチドの組み合わせ、医薬およびワクチン組成物を提供する。
本発明は、ポリペプチド、ヌクレオチド、ベクターおよびワクチンを含め、哺乳動物に投与されたときに、トキシンA及び/又はトキシンBに対する免疫反応(例えば抗トキシンAおよび抗トキシンB抗体)を含む、C.ディフィシル(C.difficile)に対する免疫反応を誘発する組成物を提供する。さらに、本組成物が哺乳動物に投与されたとき、これらは、接種を受けた哺乳動物をCDAD関連状態から保護するように作用する免疫反応を誘発する。本明細書中で例示されるように、本組成物は、ワクチンとしての使用のために大量に得ることができる。
本発明のポリペプチドまたはポリペプチドの組み合わせをコードする核酸は、プラスミドおよびレトロウイルスベクターを含むがこれらに限定されない適切なベクターに組み込まれ得る。このようなベクターは当技術分野で周知であり、従って本明細書中で詳細は記載しない。
本発明はまた、対象においてCDADを予防、阻害および処置する方法も提供する。本発明の方法は、対象において免疫反応を引き起こす。ある実施形態において、本方法は、トキシンAおよびトキシンBに特異的な抗体の産生を誘導する。別の実施形態において、本方法は、毒素特異的な抗体分泌細胞(ASC)の生成を誘導する。別の実施形態において、本方法は、CDADおよび関連病態を予防、軽減または処置する。
ワクチンとして有用であるべきである抗原性組成物の場合、抗原性組成物は、細胞、組織または哺乳動物(例えばヒト)において抗原に対して免疫反応を誘導しなければならない。好ましくは、本ワクチンは、哺乳動物において防御免疫反応を誘導する。本明細書中で使用される場合、「免疫学的組成物」は、例として、抗原(例えばポリペプチド)、抗原をコードする核酸(例えば抗原発現ベクター)または抗原もしくは細胞成分を発現するかもしくは提示する細胞を備え得る。特定の実施形態において、抗原性組成物は、本明細書中に記載の何らかのポリペプチド抗原または免疫学的に機能のあるその同等物の全てもしくは一部を備えるかまたはコードする。その他の実施形態において、抗原性組成物は、さらなる免疫刺激剤またはこのような物質をコードする核酸を備える混合物中にある。免疫刺激剤としては、さらなる抗原、免疫調節物質、抗原提示細胞またはアジュバントが挙げられるが、これらに限定されない。他の実施形態において、さらなる物質の1以上が、何らかの組み合わせで抗原または免疫刺激剤に共有結合される。ある一定の実施形態において、抗原性組成物は、HLAアンカーモチーフアミノ酸に複合体化されるかまたはこれを備える。
当業者は、ベクターを細胞に投与するために様々な送達方法が利用され得ることを認識する。例としては、(1)物理的手順を利用する方法、例えばエレクトロポレーション(電気)、遺伝子銃(物理的力)または大量の液体(圧)を適用することなど;および(2)このベクターが別の物体、例えばリポソーム、凝集タンパク質またはトランスポーター分子などと複合体化される方法が挙げられる。
本発明は、CDADに関連する疾患または状態の処置を必要とする哺乳動物への本発明の治療用組成物の投与によって、哺乳動物においてCDADに関連する疾患または状態を処置することを想定する。本発明による治療用組成物の投与は、例えば、受容者の生理的状態、投与目的が治療用であるかまたは予防用であるかおよび熟練医師にとって公知のその他の因子に依存して、継続的または間欠的であり得る。本発明の組成物の投与は、予め選択された期間にわたり基本的に継続的であってもよいし、または、間隔をあけた一連の投与であってもよい。局所および全身投与の両者とも企図される。投与される量は、選択される組成物、特定の疾患、体重、身体状態および哺乳動物の齢および予防または処置の何れを達成しようとしているかを含むがこれらに限定されない、様々な因子に依存して変動する。このような因子は、動物モデルまたは当技術分野で周知の他の試験系を使用して臨床家によって容易に決定され得る。
6から8週齢雌Balb/Cマウス(Jackson Laboratory)の大腿四頭筋に、ベクター骨格(pVAX、Invitrogen)または記載のような抗原性プラスミド(2005,Kutzler et al.,J Immunol 175(1):112−123;1998,Kim et al.,J Clin Invest 102(6)1
112−1124)の組み合わせを含有するプラスミドDNA処方物を注射した。処方物は、等張クエン酸緩衝液中の0.25%ブピバカイン−HCL(Sigma)中に含有された。様々な遺伝子プラスミドの同時投与は、20μLの最終体積で、注射前に、各実験群が同じ濃度のDNAを含有するよう(ベクター骨格を添加し、全群で等しいDNA濃度となるように)、指定DNAプラスミドを混合することを含んだ。エンドトキシン不含Qiagenカラムを用いて全DNAを作製した。全動物を温度調節および光サイクル設備下、DUCOMで飼育し、それらの飼育はNational Institutes of HealthおよびDUCOM のIACUC/ULARのガイドライン下で行った。
全実験において矩形波パルスを使用し(Draghia−Akli and Smith,2003,Templeton NS,Lasic DD(eds.)Gene Therapy−Therapeutic Mechanisms and Strategies.Marcel Dekker,Inc.,New York,245−263)、発明者らの研究室で設計され試験済みの定電流EKDにより送達した。マウス実験において三電極アレイ(3−EA)を使用した。3−EAは、2つの長辺の長さが0.5mmであり、短辺の長さが0.3mmである二等辺三角形型の3つの26−ゲージ固体ステンレス鋼電極からなり、非導電プラスチックと一緒に保持される。マウス実験に対する具体的なEP条件は、定電流、0.1Amps、3パルス、52msec/パルス、パルス間4秒を用いるものであった。プラスミド注射とEPとの間の時間のずれは約20秒であった。一連のプラスミド投与/EPのための事象は次のとおりであった:使い捨て電極アセンブリをハンドルのレセプタクルに置き、ハンドル上の開始ボタンを押し、動物実験群番号を入れ、インスリンシリンジを用いてDNAコンストラクトプラスミドを注入し、注射部位周辺の領域にすぐに針を置き、ハンドル上の開始ボタンを押し、4秒数えた後、パルスを送達させる。エレクトロポレーションの5秒後、アレイを穏やかに筋肉から除去する。全処理中、全電極が完全に筋肉に挿入された。
凡例で指定されるエンドポイントで、アベルチンまたはイソフルオランを使用して動物に鎮静をかけ、適量の血液および糞塊を動物屠殺前に採取した。屠殺後、各マウスからの脾臓を各実験群から回収し、R10培地(RPMI1640+10%ウシ胎仔血清、500μg/Lペニシリンおよび500μg/Lストレプトマイシン、Gibco、Invitrogen)を含有する15mLのコニカルチューブに組織を入れた。Seward社製ストマッカー80を用いて、各実験群からの脾臓を1つの細胞懸濁液になるように破砕し、40ミクロン細胞ストレイナーに通し、培地で洗浄し、ペレット化して、ACK溶解緩衝液中で室温で5から10分間温置し、その結果、赤血球細胞の溶解液が得られた。全細胞を洗浄し、培地中で再懸濁し、血球計算盤を用いて数えた(細胞生存能はトリパンブルー染色を用いて決定する。)。
マウス血清および糞抽出物中で抗原特異的なIgGを調べるために、記載のようにELISAを使用した(1989,Ogawa et al.,J Immunol 142(4):1150−1158;2004,Mestecky et al.,AIDS research and human retroviruses 20(9):972−988)。顎下腺または後眼窩出血によりマウスから、マウス血液試料を回収し、マウス群のケージから糞塊を得て、続いて血清および糞便試料の両方に対して各実験群内で個々に実験を行った。最終体積100/ウェルでPBS(Mediatech)中で希釈した0.5から2mg/mLのトキソイドAまたはB(List Biologicals)でEIA/RIAプレート(Costar)を被覆し、4℃で一晩温置した。プレートをPBS/Tween(0.05%Tween20)で3回洗浄し、200μLのブロッキング緩衝液/希釈液(PBS中3%BSA)とともに室温で2時間、非特異的な結合に対してブロッキング処理した。プレートを洗浄し、PBS/1%BSAで希釈した、免疫付与マウスからのプール血清または糞抽出物をウェルに最終体積100μLで添加した。エンドポイントタイター(実験群に対する測定がベクター免疫付与マウス試料O.D.値と等しくなる最低試料希釈率として定める。)を調べるために、1:25から1:150,000の希釈系列の希釈で試料を3つ組で添加し、室温で2時間または4℃で一晩温置した。ホースラディッシュペルオキシダーゼ−標識ヤギ抗マウスIgGまたはIgA(Santa Cruz)を用いて結合抗体を検出し、基質TMB H2O2(SIGMA)で発色させた。2N H2SO4で呈色反応を停止させ、EL312 Bio−Kineticsマイクロプレートリーダー(Bio−Tek Instruments Inc.)において450nmでの吸収を読み取った。DeltaSoft IIプログラム(BioMettalics,Inc.)を使用し、較正曲線上で光学密度を補間することによって、血清または糞便分泌物中の総IgGまたはIgA量を計算した。
下記のように一部変更を加えて、既に記載されているように、B細胞ELISPOTを行った(1996,Slifka et al.,J Immunol Met 199(1):37−46;2000,Brown et al.,J Infect Dis 182(4):1039−1043;2004,Crotty et al.,J Immunol Met 286(1−2):111−122;2003,Qadri et al.,Infect Immun 71(8):4808−4814)。最後の免疫付与の1週間後に免疫付与マウスを屠殺し、脾臓細胞から抗体分泌細胞を回収した。最終体積100μL/ウェルで、PBS(Mediatech)中で希釈した2μg/mLのトキソイドAまたはB(List Biologicals)でELISpot96−ウェルプレートを被覆し、4℃で24時間温置した。プレートを洗浄し、1%BSAで2時間ブロッキング処理した。免疫付与マウスからの50万個の総リンパ球を3つ組で各ウェルに添加し、37℃、5%CO2で5時間温置した。プレートを洗浄し、100μLの抗マウスIgA−ビオチンの1:2000希釈液(PBS/1%BSA中で希釈)を添加し、4℃で一晩温置した。プレートを洗浄し、100μLのストレプトアビジン−アルカリホスファターゼの1:100希釈液(PBS/1%BSA中で希釈)を添加し、室温で2時間温置した。プレートを洗浄し、(BCIP)および(NBT)基質を各ウェルに添加した。プレートを蒸留水ですすぎ、室温で乾燥させた。自動ELISpotリーダー(CTL Limited,Inc.)により、および目視によりスポットを数えた。未処理の値を定め、係数を乗じ、データが百万個のIgA−分泌B細胞あたりのASC(抗体分泌細胞)として表されるようにする。
各実験群からのプールリンパ球の3つ組のウェルから計算した平均±標準偏差(st dev)としてデータを表す。必要に応じて、両側、対応のあるスチューデントのt検定を使用することによって、免疫付与群間の統計学的差異を評価し、各実験群に対して特定のp値を得た。p値<0.05での試料間の比較は、統計学的に差があるとみなされ、従って有意とした。
新規プラスミドに基づく粘膜ケモカインと組み合わせて、C.ディフィシル(C.difficile)のトキシンA(TcdA)およびトキシンB(TcdB)に基づいて、高度に最適化されたプラスミドを設計した。高度に最適化された抗原性コンストラクトの作製のために、C.ディフィシル(C.difficile)株VPI10463(NCBI AAA23283)のトキシンAおよびBタンパク質に対応する全長アミノ酸配列を同定し;タンパク質の3分の1のカルボキシ末端を占有することが知られている推定受容体結合ドメイン(RBD)のアミノ酸配列に対応する残基をコンピュータ上で新規遺伝子配列に戻し翻訳した。(ヒトに対する)コドン最適化、効果的な分泌リーダーの付加(IgE)、KOZAKコンテクストおよび翻訳を妨げるシス作用配列モチーフ/RNA二次構造の除去を含め、タンパク質発現を促進するために、遺伝子修飾を導入した(図1)。さらに、細菌性毒素のネイティブグリコシル化を保護するために、潜在的なN結合型グリコシル化配列を突然変異させた。次に、業者による合成のためにこの遺伝子を提出した(Geneart)。遺伝子挿入物を消化し(EcoR1/Xho1、New England Biolabs)、市販のベクター、pVAX(Invitrogen、Carlsbad、CA)に連結させ、インビボで試験するためにウェスタンブロットによりタンパク質発現を確認した(図1)。抗原性コンストラクトは、TcdA−RBDおよびTcdB−RBDと呼ぶ。まとめると、これらのデータは、ケモカインのプラスミド形態が、特異的なケモカインタンパク質を発現することを明らかにする。
全部で25μgの総プラスミドを確実にするために、必要量の不活性ベクター骨格pVAXとともに、pA RBD N→QまたはpB RBD N→Qの何れかの様々な量の抗原性コンストラクト(5μg、10μgまたは25μg)に対するプラスミドDNA処方物で雌Balb/Cマウス(6から8週齢)に免疫付与した。第0、14および28日にマウスに免疫付与した。第38日にマウスを屠殺した。1:20から1:200000の範囲の希釈率で、免疫付与群からの血清および糞便試料をPBS/1%BSA中で希釈した。1μg/mLトキソイドA(txdA)またはトキソイドB(txdB)で被覆したEIA/RIAプレートに希釈液を加えた。温置後、450nmでの吸収読み取り(OD450)を通じて、抗体結合を検出した。試験したpA RBD N→QおよびpB RBD N→Qの全ての量に対して抗体結合を検出した(図2)。さらに、免疫付与マウスの血清中で、IgAではないトキシンAおよびトキシンBに特異的なIgGを検出した。
10μgのpA RBD N→Qおよび10μgのpB RBD N→Qで同時に、または20μgのベクター骨格対照、pVAXを用いて、第0、14および28日に、IM/EPによってマウスに免疫付与した。免疫付与動物の血清試料中で、ELISAによって、トキシンAおよびトキシンBに特異的な抗体を検出した(図4)。さらに、免疫付与動物からの単離脾臓細胞から、免疫付与後、トキシンA−特異的なおよびトキシンB−特異的なASCの両方の数の増加が示される(図4)。
ワクチン接種マウスからの脾臓細胞をPWIM(1:100,000)、CpG2006(6μg/mL)およびS.アウレウス コワン(S.aureus Cowan)(1:10,000)で72時間刺激し、次いで1μg/mLのtxdAまたはtxdBで被覆したプレートとともに温置した。トキシンA−またはトキシンB−ワクチン接種マウスから回収した刺激脾臓細胞は、トキシンA−またはトキシンB−特異的なASC数の増加を示したので、トキシンA−特異的なおよびトキシンB−特異的な記憶反応が認められた。
毒素適用によって、アフリカミドリザルからの腎臓細胞由来の不死化細胞株である、ベロ細胞の用量依存的円形化が起こる。従って、インビトロでの毒素介在病態のマーカーとして細胞円形化が使用され得る。pA RBD N→Qで免疫付与されたマウスからの血清試料は、250ngトキシンAから誘導された細胞円形化に対する防御能を示した。さらに、pB RBD N→Qで免疫付与されたマウスからの血清試料も、250ngトキシンBの適用で見られる細胞円形化に対する防御能を示した(図6)。まとめると、これらのデータは、本明細書中に記載のDNAコンストラクトで免疫付与されたマウスにおいて産生されるトキシンA−およびトキシンB−特異的な抗体が、C.ディフィシル(C.difficile)により産生される毒素により誘導される病態を防ぐことを示す。
pA RBD N→QおよびpB RBD N→Qで第0、14および28日にマウスに免疫付与した。最後の免疫付与の投与から5週間後、マウスにトキシンAおよびトキシンBを負荷した。次いで、体重減少およびC.ディフィシル(C.difficile)関連疾患(CDAD)の兆候について、マウスを14日間にわたり毎日監視した。対照pVAXのみで免疫付与されたマウスにおいて、24時間以内に負荷が行われた全マウスが死亡した。しかし25μgのpA RBD N→Qで免疫付与されたマウスは、300ngのトキシンAが介在する死亡から防御され、一方で25μgのpB RBD N→Qで免疫付与されたマウスは、150ngの各トキシンAおよびトキシンBの負荷が介在する死亡から防御された(図7)。
pTcdA/B N→Qの何れかで第0、6、12および18週にIM/EPにより雌インドアカゲザルに免疫付与した。第2、8および14週にIgG抗A RBDおよびIgG抗B RBDの力価を評価した。分析から、免疫付与スケジュールを通じて特異的な抗体が検出されたので、ワクチン接種コンストラクトの免疫原性が非常に高いことが明らかになった(図8)。
推定N結合型グリコシル化部位が改変されたトキシンAおよびトキシンBからのRBDをコードする高度に最適化されたプラスミドの作製が本明細書中に記載されている。本明細書中に含まれる抗原DNA修飾は図9Aでまとめられている。pVAXのキーとなる成分を示すプラスミドマップは図9Aで示される。AまたはB RBDwtおよびAまたはB RBD N→Qをコードする4つのプラスミドを最適化し、構築した。図9Bで示されるように、トキシンAおよびBのRBDにおける推定N結合型グリコシル化部位に下線を付す。これらの部位で、DNAワクチンプラスミドの構築中、最初のAsn(N)がGln(Q)で置換された。発現を検証するために、リポフェクタミン2000を用いて2μgのpRBD N→Qコンストラクトにより293T細胞(3.0x105細胞)に遺伝子移入した。遺伝子移入48時間後、溶解液(RIPA緩衝液)および上清を回収し、SDS−PAGE(4から12%)上で分画化し、PVDF膜に転写した。特異的なマウス抗血清を用いて免疫検出を行い、ECL検出系を用いて、発現されたタンパク質をホースラディッシュペルオキシダーゼ結合ヤギ抗マウスIgGで視覚化した(図9C)。溶解液および上清のアリコートを500UのポリペプチドN−グリコシダーゼF(PNGaseF)で37℃で1時間消化し、65℃で15分間不活性化した。試料を上述のようにSDS−PAGE(8%)および免疫検出に供した(図9D)。コンストラクトの免疫検出から、N→Qコンストラクトがグリコシル化されていなかったことが明らかになった。
Claims (26)
- a.配列番号3のアミノ酸配列を備えるポリペプチドをコードする核酸および
b.配列番号4のアミノ酸配列を備えるポリペプチドをコードする核酸
からなる群から選択される少なくとも1つの核酸を含むワクチン。 - 分泌リーダーペプチドをコードする核酸をさらに含む、請求項1に記載のワクチン。
- 前記分泌リーダーペプチドが、IgE分泌リーダーペプチドである、請求項2に記載のワクチン。
- 前記核酸が1つの発現ベクターに組み込まれる、請求項1に記載のワクチン。
- 前記核酸が、2以上の発現ベクターに組み込まれる、請求項1に記載のワクチン。
- 前記少なくとも1つの核酸が、ヒト細胞での発現に対してコドン最適化されている、請求項1に記載のワクチン。
- 哺乳動物の組織に請求項1に記載のワクチンを投与するステップを含む、C.ディフィシル(C.difficile)に対して哺乳動物に免疫付与する方法。
- a.前記哺乳動物の組織に前記ワクチンを投与し;
b.細胞への核酸分子の移入を可能にするのに効果的である電流で前記哺乳動物の組織の細胞にエレクトロポレーション法を行う
ステップを含む、請求項7に記載の方法。 - 前記哺乳動物の組織が筋肉である、請求項8に記載の方法。
- 前記ワクチンが、筋肉内または皮内注射により投与される、請求項7に記載の方法。
- 前記哺乳動物が現在、C.ディフィシル(C.difficile)に感染しておらず、前記ワクチンが防御免疫反応を誘導する、請求項7に記載の方法。
- 前記防御免疫反応が、配列番号3のポリペプチドおよび配列番号4のポリペプチドからなる群の少なくとも1つのポリペプチドに特異的に結合する少なくとも1つの抗体を含む、請求項11に記載の方法。
- 前記哺乳動物がヒトである、請求項7に記載の方法。
- 哺乳動物の組織に請求項1に記載のワクチンを投与するステップを含む、C.ディフィシル(C.difficile)に感染した哺乳動物を処置する方法。
- a.前記哺乳動物の組織に前記ワクチンを投与し;
b.細胞への核酸分子の移入を可能にするのに効果的である電流で前記哺乳動物の組織の細胞にエレクトロポレーション法を行う
ステップを含む、請求項14に記載の方法。 - 前記哺乳動物の組織が筋肉である、請求項14に記載の方法。
- 前記ワクチンが、筋肉内または皮内注射により投与される、請求項14に記載の方法。
- 前記哺乳動物が現在C.ディフィシル(C.difficile)に感染しており、前記ワクチンが治療的免疫反応を誘導する、請求項14に記載の方法。
- 前記治療的免疫反応が、配列番号3のポリペプチドおよび配列番号4のポリペプチドからなる群の少なくとも1つのポリペプチドに特異的に結合する少なくとも1つの抗体を含む、請求項18に記載の方法。
- 前記哺乳動物がヒトである、請求項14に記載の方法。
- 配列番号3のアミノ酸配列を含む、単離ポリペプチド。
- 配列番号3のアミノ酸配列をコードする、単離核酸。
- 配列番号4のアミノ酸配列を含む単離ポリペプチド
- 配列番号4のアミノ酸配列をコードする単離核酸。
- 配列番号3のアミノ酸配列を含む単離ポリペプチドと、配列番号4のアミノ酸配列を含む単離ポリペプチドとを含む組成物。
- 配列番号3のアミノ酸配列をコードする単離核酸と、配列番号4のアミノ酸配列をコードする単離核酸とを含む組成物。
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