JP2014048252A - キャピラリー等速電気泳動法を用いる複数回大容量注入−濃縮−分離−分取精製法 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】キャピラリー等速電気泳動法を用いる複数回大容量注入−濃縮−分離−分取精製法が、精製対象水溶性物質を含むトリス−塩酸緩衝液がインレット側に配置され、トリスーグリシン緩衝液がアウトレット側に配置されて、上記精製対象水溶性物質がインレット側からアウトレット側に移動させられる工程(a)、上記精製対象水溶性物質がアウトレット側からインレット側に移動させられる工程(b)、トリスーグリシン緩衝液がインレット側及びアウトレット側に配置されて、上記精製対象水溶性物質がインレット側からアウトレット側に移動させられる工程(c)を実施し、上記工程(a)、(b)がそれぞれ2回以上繰り返され、下記式(1)が満たされる。
|μGly-|<|μL-|<|μCl-| (1)
ただし、|μGly-|はグリシンイオンの移動度、|μL-|は上記精製対象水溶性物質イオンの移動度、|μCl-|は塩化物イオンの移動度を示す。
【選択図】なし
Description
微小量の試料をキャピラリーカラム内で電気泳動的に濃縮する方法の一つが等速電気泳動法(ITP)である。ITPは先行イオンと終末イオンの間の移動度を有する物質を濃縮する方法であるが、ITPのみによる精製対象物質と不純物との分離は不可能である。
本発明が解決使用する課題は、超高純度のFTC−ABNOTA、FTC−PDA、蛍光ラベル化DNA等の水溶性物質の精製法の提供である。
更に、本発明の発明者らは、FTC−ABNOTA以外の水溶性物質、例えば、FTC−PDA、下記式(2)で示される蛍光ラベル化試薬FITC−I、蛍光ラベル化DNA等も、上記キャピラリー等速電気泳動法により非常に高い純度に精製されることを見出し、本発明を完成させた。
|μGly-|<|μL-|<|μCl-| (1)
ただし、|μGly-|はグリシンイオンの移動度、|μL-|は上記精製対象水溶性物質イオンの移動度、|μCl-|は塩化物イオンの移動度を示す。水溶液のpHは8.0〜9.0であってよい。
好ましい上記精製対象水溶性物質は上記式(2)、(3)、(4)で示される化合物又はDNA分子である。
Agilent社製G1602BAがキャピラリー電気泳動装置として使用された。GL Sciences社製溶融シリカキャピラリー(内径100μm、外径350μm、全長100cm、有効長91.5cm)がキャピラリー3用チューブとして使用された。キャピラリー等速電気泳動により分取された溶液は、Invitrogen社製Safe Imager(登録商標)でランプ照射され、ATTO社製AE-6933FXCFゲルイメージングプリントグラフで撮影された。
(1)濃縮用トリス−グリシン溶液
上記1Mトリス水溶液375μL、SIGMA社製グリシン(純度99%以上)が超純水で希釈されて調製された2Mグリシン水溶液1000μLがポリプロピレン製容器に入れられ、超純水で10mLに定容され、濃縮用トリス−グリシン溶液(泳動液a、pH8.5)が調製された。
上記1Mトリス水溶液560μL、上記2Mグリシン水溶液1500μLがポリプロピレン製容器に入れられ、超純水で10mLに定容され、分離用トリス−グリシン溶液(泳動液b、pH8.5)が調製された。
上記1Mトリス水溶液500μL、上記1M塩酸150μLがポリプロピレン製容器に入れられ、超純水で10mLに定容され、濃縮用トリス−塩酸溶液(泳動液c、pH8.5)が調製された。
関東化学(株)製四ホウ酸ナトリウム十水和物(純度99%以上)が超純水に溶解されて調製された0.1M四ホウ酸緩衝溶液400μLのpHが、上記1M水酸化ナトリウム水溶液で9.6に調製され、超純水で10mLに定容された。
MERCK社製ホウ酸(純度99.9999%)が超純水で調製された0.1Mホウ酸緩衝溶液(pH9.89)400μLが超純水で1000μLに定容され、分取用溶液(pH9.8)が調製された。
水溶性物質の純度は、キャピラリー用チューブとしてGL Sciences社製溶融シリカキャピラリー(内径50μm、外径350μm、全長60cm、有効長47.5cm)、レーザー励起蛍光検出器としてPicometrics社製ZETALIF、レーザー装置としてSpectra-Physics社製ArレーザーシステムModel263D(波長488nm)、高圧電源として松定プレシジョン(株)製HCZE-30P、記録計として(株)日立製作所製D-2500 Chromato-Integratorを組み合わせた装置により、キャピラリー電気泳動−レーザー励起蛍光検出法(CE−LIF)により測定された。
最初に、キャピラリーが和光純薬工業(株)製水酸化ナトリウム(純度97%)が超純水に溶解されて調製された1M水酸化ナトリウム水溶液で10分間、超純水で10分間、下記純度評価用ホウ酸緩衝溶液で15分間順次洗浄された。その後、5nLの試料が落差法により(高低差5cm)36秒間で注入され、20kVの電圧が印加されてキャピラリー電気泳動が25℃で行われた。
SIGMA-ALDRICH社製トリス−(ヒドロキシメチル)−アミノメタン(純度99.8%)が超純水に溶解されて調製された1Mトリス水溶液10μL、和光純薬工業(株)製塩酸が超純水で希釈されて調製された1M塩酸2.6μL、上記式(2)で示される(株)同人化学研究所製Fluorescein-4-isothiocyanate(FITC−I)が超純水で希釈されて調製された10-3MのFITC−I10μLがポリテトラフルオロエチレン製バイアルに加えられ、超純水で200μLに定容され、FITC−I試料溶液が調製された。
図12に示すチャートが、上記FITC−I試料溶液のCE−LIFの定量分析により得られた。上記市販のFITC−Iの純度は81.6%であった。
高速液体クロマトグラフィー(HPLC)によるFITC−Iの精製
上記FITC−I試料溶液がHPLCにより精製された.HPLCにより精製されたFITC−IのCE−LIFによる定量分析
HPLCにより精製されたFITC−I溶液は上記CE−LIFにより定量分析され、図13に示されるチャートが得られた。HPLCにより精製されたFITC−Iの純度は81.6%程度であった。
キャピラリー等速電気泳動によるFITC−Iの精製
キャピラリー3が、上記1M水酸化ナトリウム水溶液で10分間、次いで超純水で10分間、その後泳動液aで15分間洗浄された。キャピラリー3内が泳動液aで満たされ、FITC−I試料溶液1μLが、圧力50mbar、注入時間72秒でキャピラリー3のインレット側から注入され、泳動液cがインレット側、泳動液aがアウトレット側に配置され、電気泳動が20kVの電圧が印加されて25℃で行われた。試料ピークが検出され、濃縮された試料が検出器に到達した後、電圧の印加が停止され、−50mbarの陰圧が510秒印加され、濃縮された試料プラグがキャピラリー3のインレット側先端から1cmの箇所まで移動させられた。その後、試料注入、電圧印加、陰圧印加が同様に繰り返された。次いで、試料注入と電圧印加されて試料が濃縮され、電圧の印加が停止され、アウトレット側の泳動液aが泳動液bに代えられ、陰圧が印加されて濃縮試料プラグがキャピラリー3のインレット側先端へ移動させられた。その後、インレット側の泳動液aが泳動液bに代えられ、電圧が印加されて試料が濃縮され、FITC−Iのピークが検出器で確認された後、濃縮されたFITC−Iがアウトレット側に配置され、分取用溶液20μLが入った分取用ポリテトラフルオロエチレン製バイアルに20秒ごとに10回以上分取された。
分取用バイアルがゲルイメージングプリントグラフ装置上に置かれ、波長470nmの光が照射され、FITC−I溶液が分取されているバイアルが探索された。蛍光を発するバイアルが確認され、分取用バイアル由来の汚染防止のため、分取用バイアル中のFITC−I溶液が500μLポリテトラフルオロエチレン製バイアルに移された。
500μLポリテトラフルオロエチレン製バイアルに保存されている、キャピラリー等速電気泳動により精製されたFITC−I溶液は上記CE−LIFにより定量分析され、図14に示されるチャートが得られた。キャピラリー等速電気泳動により精製されたFITC−Iの純度は99.1%以上であった。
下記式(5)で示されるMACROCYCLICS社製ABNOTAが超純水で希釈されて調製された10-3MのABNOTA水溶液50mL、0.1Mマレイン酸水溶液10mL、上記式(2)で示される(株)同人化学研究所製FITC−I(純度95%)が超純水で希釈されて調製された10-3MのFITC−I7.5mL、超純水32.5mLが、この順番で、アルミホイルで覆われて遮光されたポリテトラフルオロエチレン製100mL広口試薬瓶に加えられ、攪拌され、40℃の恒温槽に6時間放置され、図15で示される反応が行われた。15mLの1−ブタノールが合成された溶液に加えられ、攪拌され、冷暗所で静置され、2相が形成され、1−ブタノールに富む上層が除かれた(工程I)。工程Iが更に2回繰り返され、1−ブタノール層は分液漏斗により3回目の操作で完全に除去された。
HPLCによるFTC−ABNOTAの精製
抽出されたFTC−ABNOTA溶液は、高速液体クロマトグラフィー装置(SHIMADZU社製製 LC―10AD)とカラム(ChromaNik Technologies lnc. 社Sunrise C18(4.6 ´ 150 mm)により、反応生成物から分離された。(溶離液:0.01M BES{N,N-Bis(2-hydraxyethyl)-2-aminoethanesulfonic acid}緩衝溶液(pH7.0)70体積%/ アセトニトリル30%)で2回分取された。
36%高純度塩酸(和光純薬工業株式会社製)が、2回目に分取された溶液に加えられ、溶液のpHが2.5程度になると沈殿が発生した。当該沈殿が冷暗所で20〜30分間静置され、その後、メンブランフィルターで吸引濾過され、結晶物が得られた。当該結晶物は暗所に置かれたデシケーター中で常温で2日間乾燥された。
HPLCにより精製されたFTC−ABNOTA試料溶液は上記CE−LIFにより定量分析され、図16に示されるチャートが得られた。HPLCにより精製されたFTC−ABNOTAの純度は57.6%程度であった。
FITC−I試料溶液に代えて上記FTC−ABNOTA試料溶液が使用される以外、実施例1と同じ操作が行われた。その結果、図17に示されるチャートが得られた。キャピラリー等速電気泳動により精製されたFTC−ABNOTAの純度は95.2%であった。
硝酸(和光純薬工業(株)製特級原液)5mL及び硫酸(和光純薬工業(株)製特級原液)10mLが混合された混酸が、図18の式(A)で示される2,9−ジメチル−1,10−フェナントロリン(和光純薬工業(株)製)0.5gに加えられ、115℃で1時間加熱された。100gの氷が得られた溶液に加えられ、冷却された溶液のpHが水酸化ナトリウムで8.0に調整された。生成した沈殿が濾過され、110℃で乾燥され、図18の式(B)で示される5−ニトロ−2,9−ジメチル−1,10−フェナントロリンが得られた。
60mgの図18の式(4)で示される化合物が2mLの10-2Mマレイン酸緩衝水溶液に懸濁させられ、2mLのテトラヒドロフランが懸濁液に添加されて溶解された。更に、68mgの図18の式(5)で示されるフルオレセイン−4−イソチアネート(Aldrich社製)が混合され、暗所にて40℃で12時間加熱され、FTC−PDA溶液(A)が調製された。
HPLCによるFTC−PDAの精製
上記FTC−PDA溶液(A)が、高速液体クロマトグラフィー装置(日本分光(株)製HPLC−2000)とカラム(サーモサイエンティフィック(株)製Hypersil BDS C18)により、反応生成物から分離された。アセトニトリル(A液)と0.1%トリフルオロ酢酸水溶液(B液)が移動相として使用され、A液とB液の体積比(A/B)が、開始時5/95、開始時〜6分後まで5/95、6分〜15分後まで40/60、15分〜20分後まで90/10と変化するグラジエント法が採用され、移動相の流量は1.20mL/min、カラム温度は30℃とされた。ピークが開始から18.4分後に現れ、その時点で集められた溶液の溶媒が減圧下で蒸発させられ、FTC−PDA52mgが精製された。
HPLCにより精製されたFTC−PDAがホウ酸緩衝溶液に溶解され、FTC−PDA試料溶液(B)が調製された。FTC−PDA試料溶液(B)は上記CE−LIFにより定量分析され、図19に示されるチャートが得られた。HPLCにより精製されたFTC−PDAの純度は89.3%であった。
FITC−I試料溶液に代えて上記FTC−PDA溶液(A)が使用される以外、実施例1と同じ操作が行われた。その結果、図20に示されるチャートが得られた。キャピラリー等速電気泳動により精製されたFTC−PDAの純度は97.9%であった。
アプタマー試料の調整
Integrated DNA Technologies社の合成品であり、タンパク質であるトロンビンの検出に有効であるF29−mer(5’ -FAM-AGT CCG TGG TAG GGC AGG TTG GGG TGA CT-3’)31.6μgが165μLの超純水に溶解させられ、2.0×10-5 Mの溶液が調整された。当該F29−merが上記CE−LIFにて定量分析された。その結果、図21に示されるチャートが得られた。当該F29−merの純度は86.1%であった。
FITC−I試料溶液に代えて上記F29−mer溶液が使用され、試料が注入された後(図3)、濃縮限界の向上を図るため、上記濃縮用トリスー塩酸溶液とは異なる濃いトリスー塩酸溶液(1Mトリス水溶液415μL及び1M塩酸110μLがポリプロピレン製容器に入れられ、超純水で1mLに定容されて調製された)が注入され(圧力50mbar、注入時間30秒で約420nLに相当)、その後、トリス‐塩酸溶液がインレット側泳動液2に設置される以外、実施例1と同じ操作が行なわれた。なお、当該濃いトリス‐塩酸溶液の注入は、各試料注入後と試料プラグが陰圧にてインレット側へと戻された後(図9の後)に行なわれたに上記の改善を加え行なった。その結果、図22に示されるチャートが得られた。キャピラリー等速電気泳動により精製されたF29−merの純度は99.4%であった。
Claims (2)
- 精製対象水溶性物質を含むトリス−塩酸緩衝液がインレット側に配置され、トリスーグリシン緩衝液がアウトレット側に配置されて、上記精製対象水溶性物質がインレット側からアウトレット側に移動させられる工程(a)、
上記精製対象水溶性物質がアウトレット側からインレット側に移動させられる工程(b)、
トリスーグリシン緩衝液がインレット側及びアウトレット側に配置されて、上記精製対象水溶性物質がインレット側からアウトレット側に移動させられる工程(c)が実施され、
上記工程(a)、(b)がそれぞれ2回以上繰り返され、下記式(1)が満たされる、キャピラリー等速電気泳動法を用いる複数回大容量注入−濃縮−分離−分取精製法。
|μGly-|<|μL-|<|μCl-| (1)
ただし、|μGly-|はグリシンイオンの移動度、|μL-|は上記精製対象水溶性物質イオンの移動度、|μCl-|は塩化物イオンの移動度を示す。
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