JP2013529082A - 遺伝子組み換えrsウイルスを使用した乳がん治療 - Google Patents

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Abstract

インビトロ及びインビボのエビデンスと共に、NS1遺伝子欠損RSウイルスである遺伝子組み換え腫瘍溶解性RSウイルス(RSV)及びがん細胞を殺すことによって乳がんを治療する方法を提供する。
【選択図】図1

Description

本発明は、腫瘍溶解性ウイルス療法に関する。本発明者は、NS1遺伝子を欠失させることによってRSウイルス(respiratory syncytial virus:RSV)を作り出した。また、NS1遺伝子欠損RSV(ΔNS1 RSV)は乳がん細胞を殺せるが正常ヒト細胞は殺さないことを発見した。
乳がん:
乳がんは、女性で最も多いがんであり、毎年世界中で100万を超える新しい症例が確認されている(非特許文献1)。米国では2009年に推定192370人の患者が乳がんだと新たに診断され、約40170人が乳がんで死亡した(非特許文献2)。診断時にリンパ節への転移がない女性の約24〜30%が再発する。リンパ節陽性の女性の再発率は50〜60%である(非特許文献3)。局所疾患及び転移性疾患と診断された患者の5年生存率はそれぞれ80%及び26%である(非特許文献3)。したがって、安全で効果的な治療が依然として絶対的に必要とされている。
腫瘍溶解性ウイルス療法:
腫瘍溶解性ウイルス療法は、天然または遺伝子操作したウイルスを使用した新しいストラテジーであり、周りの非悪性細胞に害を与えることなく腫瘍細胞を選択的に標的とし、また破壊するためのものである(非特許文献4)。がん細胞の破壊は、複数回にわたるウイルス複製またはそれに続くアポトーシス誘導による直接的な溶解性の破裂を通じて起きる(非特許文献5)。ウイルス療法をうまく応用するためには、がん細胞を溶解させるウイルスの選択的かつ効率的な増幅が必要である。NS1遺伝子欠損RSV(ΔNS1 RSV)は、乳がんに対する腫瘍溶解性ウイルスとしての機能を果たす。
RSVに関する生物学:
RSVは、パラミクソウイルス科、ニューモウイルス亜科、ニューモウイルス属に属する。ウイルスRNAのサイズは約15キロベースであり、ゲノムの3’末端側にリーダー領域、5’末端側にトレーラー領域がある(図1)。ウイルスゲノムには、10個のウイルスタンパク質についての個々の遺伝子が含まれている(非特許文献6)。ニューモウイルス属のメンバーに特有のNS1遺伝子(非特許文献7)は、ウイルスゲノムの3’末端のプロモーター近くに位置し、そのmRNAは、直線的な開始/停止/再開モードのRSV転写物で最も多い(非特許文献8)。NS1タンパク質は非構造的であると言われるが、これはこのタンパク質がRSV粒子では検出されていないからである。NS1は、RSVに感染した細胞でのみ見られる。
本発明者のグループは、他のことに加えて、NS1が、RSV感染時にタイプI−IFNのシグナル伝達を無効にできることを発見した(非特許文献9、10)。これは、NS1が、宿主の自然免疫応答の阻害において直接的な役割を果たすことを意味している。
NS1遺伝子を変異させることによってRSVを非病原性にすることができ、これによってRSVはもうIFNの放出を阻害しなくなり、正常細胞でのウイルス感染が抑えられる。しかしながら、これらの非病原性のRSV(ΔNS1 RSV)は依然として腫瘍溶解性である。これは腫瘍細胞がIFNを産生したり、それに応答する能力を欠き、その結果、ΔNS1 RSVの増殖を効率的に支援するからである。
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本発明は、正常ヒト細胞を殺すことなく乳がん細胞を殺すのに利用できるNS1遺伝子欠損RSV(ΔNS1 RSV)を提供する。一実施形態において、逆遺伝学的アプローチを利用し、アンチゲノムcDNAから122〜630個のヌクレオチドを除去してNS1の上流の非翻訳領域をNS2の翻訳開始コドンに連結することによってNSI遺伝子を欠失させる。ΔNS1 RSVは、ベロ細胞にNS1欠損RSV cDNA及びN、P、M2−1、Lをエンコードする発現プラスミドを共導入することによって回収する。RSV NS1タンパク質はタイプI−IFNアンタゴニストとして機能するが、ΔNS1 RSVウイルス療法ではより多くのタイプI−IFNが産生され、これによって正常細胞でのウイルスの複製は防止され、また抗腫瘍作用が誘導される。
別の実施形態において、遺伝子組み換えウイルスは、タイプI−IFNアンタゴニストとしての関連するタンパク質をエンコードする遺伝子として機能するNS1遺伝子を欠失させるための同様のストラテジーを有するいずれの他のウイルスにもなり得る。
別の実施形態において、ΔNS1 RSVを、直接注射によりがんの部位に適用することができる。あるいは、ΔNS1 RSVを、輸血によりがんの部位に送達することができる。
RSVゲノム並びにその転写及び複製産物の説明図 抗NS1抗体を使用した免疫ブロット法によるウイルスNS1タンパク質の検証写真 感染から24時間後のウイルスに感染したMDA−MB−231及びCCD−1059SK細胞の形態写真 感染から24時間後のプラークアッセイ法で測定したウイルス力価のグラフ。3つの独立した実験の標準偏差をエラーバーで示す。 インビボでの試験的ウイルス療法を示し、皮下MDA−MB−231腫瘍をBALB/cヌードマウスに移植し、サイズを撮影した写真。コントロールのマウスには同量のビヒクルまたはPBSを投与した。腫瘍のサイズを治療終了時に測定した。各データポイントは、6回の腫瘍測定値±標準偏差の平均を表す。 腫瘍のサイズを測定した結果のグラフ。ウイルス療法をX軸下の矢印で示す。コントロールのマウスには同量のビヒクルまたはPBSを投与した。腫瘍のサイズを治療終了時に測定した。各データポイントは、6回の腫瘍測定値±標準偏差の平均を表す。 同じ実験動物から採取した異なる組織ホモジネートにおいて、ウイルス力価を測定して3日間のウイルス注射後のウイルス安全性を試験した結果のグラフ 3日間のウイルス療法後の同じ個体の異なる臓器におけるウイルス安全性を試験するために、ウイルスF遺伝子発現(非特許文献9)をRT−PCRで分析した結果の写真 MDA−MB−231及びCCD−1059SK細胞に指定のウイルス(MOI=5)を感染させ、アネキシンV結合及びPI取り込みアッセイによるアポトーシス分析のために感染から20時間後及び48時間後に回収した結果のグラフ MDA−MB−231細胞にウイルス(MOI=3)を感染させ、IFN−βに対する中和抗体(ND50は約0.05〜0.2μg/ml PBL Interferon Source社)を感染から15分後に添加し、アポトーシスをアネキシンV結合及びPI取り込みアッセイにより測定した結果のグラフ ベロ細胞に指定のウイルス(MOI=5)を感染させ、アポトーシスをアネキシンV結合及びPI取り込みアッセイにより測定した結果のグラフ
RSウイルス(RSV)を本研究において使用した。逆遺伝学的アプローチを利用し、アンチゲノムcDNAから122〜630個のヌクレオチドを除去してNS1の上流の非翻訳領域をNS2の翻訳開始コドンに連結することによってNSI遺伝子を欠失させた。ΔNS1 RSVは、ベロ細胞にNS1欠損ウイルスcDNAクローン及びN、P、M2−1、Lをエンコードする発現プラスミドを共導入することによって回収された。あるいは、遺伝子組み換えウイルスは、同様のNS1遺伝子を欠失させたいずれの他のウイルスにもなり得る。
ΔNS1 RSVがNS1遺伝子を欠いているか否かを確認するために、発明者はベロ細胞(IFN−β遺伝子欠損細胞)に野生株RSV及びΔNS1 RSV(MOI=5)を感染させ、NS1タンパク質を免疫ブロット法によりNS1特異性抗体を使用して試験した。図2Aに示すように、NS1タンパク質は野生株RSV感染ベロ細胞でのみ視覚化され、ΔNS1 RSV感染細胞では視覚化されず、これはΔNS1 RSVがNS1遺伝子を欠くことを示す。
ΔNS1 RSVは、インビトロ及びインビボの両方において乳がん細胞を優先的に殺す。MDA−MB−231乳がん細胞及び正常CCD−1059SK(ヒト正常乳房線維芽細胞)をATCC(American Type Culture Collection)の指示通りに培養し、次に野生株及びΔNS1 RSV(MOI=5)を感染させた。細胞形態の変化を観察し、ウイルス複製を測定した。
図2Bは、ΔNS1 RSVが選択的に細胞変性効果(CPE)をMDA−MB−231乳がん細胞において誘導することを示し、またΔNS1 RSVが感染から24時間後にCCD−1059SK細胞よりこの腫瘍細胞においてより高いウイルス力価を有することは(図2C)、MDA−MB−231細胞がΔNS1 RSVの増殖を効率的に支援することを示唆している。ΔNS1 RSVが他の乳がん細胞株も殺すか否かを試験するために、本発明者は、乳がん細胞株T−47D及びMCF−7にΔNS1 RSV(MOI=5)を感染させた。CPEを感染から48時間後に観察したところ(表1)、ΔNS1 RSVが乳がん細胞を特異的に殺すことが示された。
ΔNS1 RSV感染が腫瘍成長の退行をインビボで誘導するか否かを解明するために、MDA−MB−231乳がん細胞を生後4〜6週間のヌードBALB/cマウス(1グループあたりn=6)の左及び右脇腹に皮下注射し、得られた腫瘍を発達させた。ウイルス(1x1010pfu/ml)を3回にわたって腫瘍に局所注射し、腫瘍のサイズをデジタルノギスで測定した。図2C、Dは、ΔNS1 RSV感染が、コントロールと比較して腫瘍成長の退行を引き起こしたことを示す。局所投与したウイルスの安全性を試験するために、感染マウスの様々な臓器におけるウイルス力価をプラークアッセイ法及びRT−PCRアッセイにより求めた。図2E、Fに示すように、ウイルスは腫瘍に特異的に局在する。
ΔNS1 RSV感染は腫瘍細胞においてアポトーシスを誘導するが、正常ヒト乳房線維芽細胞CCD−1059SK細胞では誘導しない。ΔNS1 RSV感染のアポトーシスに対する差別効果を試験するために、MDA−MB−231腫瘍細胞及び正常CCD−1059SK細胞に指定のウイルス(MOI=5)を感染させ、アポトーシスをアネキシンV結合アッセイにより測定した。図3Aは、コントロールで見られる細胞の自発的アポトーシスと比較すると、ΔNS1 RSVが腫瘍細胞において選択的にアポトーシスを誘導することを示す。
RSV NS1遺伝子のノックダウンは、A549細胞におけるより多くのIFN−βの産生を可能にする(非特許文献9)。乳がん細胞でのウイルス誘導性アポトーシスにおけるIFN−βの関与について更に調査するために、IFN−βに対する中和抗体を使用してIFN活性を阻害したが、ウイルス感染によって誘導された乳がん細胞におけるアポトーシスを減弱させることはできなかった(図3B)。この発見を裏付けるために、本発明者は、ベロ細胞(IFN−β遺伝子欠損細胞)にΔNS1 RSVを感染させ、アポトーシスをアネキシンV結合アッセイにより測定した。図3Cは、コントロールと比較して、ΔNS1 RSVが依然としてベロ細胞においてアポトーシスを誘導することを示し、これはIFNがウイルス誘導性のアポトーシスに関与していない可能性を示唆している。
表1は、ΔNS1 RSVがヒト乳がん細胞を選択的に殺すことを示す細胞変性効果(CPE)試験である。
Figure 2013529082

Claims (8)

  1. 乳がんを治療するための遺伝子組み換えウイルスであって、
    NS1遺伝子を欠失させた腫瘍溶解性RSウイルス(RSV)を含む
    ことを特徴とする遺伝子組み換えウイルス。
  2. NS1遺伝子が逆遺伝学的ストラテジーにより欠失させたものである
    請求項1に記載のRSウイルス。
  3. ベロ細胞において、NS1欠損ウイルスcDNAクローン、ウイルスN、M2−1、P及びLタンパク質を含む形質転換プラスミドの5つのウイルス成分の共発現をする
    請求項1に記載のRSウイルス。
  4. RSV NS1として機能する他の遺伝子を欠失させたウイルスで置き換えた
    請求項1に記載の遺伝子組み換えウイルス。
  5. 乳がんを治療する方法であって、
    NS1遺伝子に変異がある腫瘍溶解性RSウイルス(RSV)を送達する
    ことを特徴とする方法。
  6. NS1遺伝子を逆遺伝学的ストラテジーにより欠失させる
    請求項5に記載のRSウイルス。
  7. ベロ細胞において、NS1欠損ウイルスcDNAクローン、ウイルスN、M2−1、P及びLタンパク質を含む形質転換プラスミドの5つのウイルス成分の共発現をする
    請求項5に記載のRSウイルス。
  8. NS1としての遺伝子機能を有する他のウイルスで置き換えた
    請求項5に記載の遺伝子組み換えウイルス。
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