JP2012211135A - ウイルスの固定化及び安定化 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】コロナ放電により固相物質に固定化されたバクテリオファージを含む、細菌感染の予防及び/又は処置における使用のためのデバイスであって、該バクテリオファージが、該バクテリオファージと該固相物質との間に形成した共有結合を介して該固相物質へ固定化されており、該バクテリオファージが感染性を保持しているデバイス及びその使用方法。該デバイスとしては、絆創膏、縫合糸、圧定布又は創傷包帯、インプラント、ビーズ又は硬膏剤の形態であることが好ましい。
【選択図】なし
Description
本発明は、トレハロースを使用して天然状態のウイルスを安定化することを示すだけではなく、共有結合によって基材へ固定化したウイルスのトレハロース処理による更なる安定化を初めて示すものである。したがって、本発明の更なる側面において、本発明にしたがい基材へ固定化されたウイルスを含むデバイスを更に安定化するためのトレハロースの使用が提供され、本明細書で以下に説明される。既知のタンパク質の共有結合による固定化(化学結合の形成)は安定性を実質的に増加させる。本発明者等は、このことがバクテリオファージに対しても真実であることを、かなりの分子量を有する不溶性ナイロン/バクテリオファージ共重合体の安定性について本明細書に記載することによって示す。
a)基材を活性化して、ウイルスが該基材へ結合することを許容する工程、
b)該修飾された基材と、ウイルスと、該ウイルスの該基材への結合を補助するカップリング剤とを混合する工程
を含む方法を提供する。
増殖:細菌の一晩の継代培養を、1.5×109 細胞/mlの細胞濃度へ調節した。これの0.1mlを1×105 pfu(プラーク形成単位)のバクテリオファージと混合した。37℃で20分間のインキュベーション後、混合物を1.5% LB寒天へ注いだ。これの上に0.7% LB寒天を積み重ねて固化させた。プレートを37℃で12時間インキュベートした。ほとんどコンフルエントなバクテリオファージプラークが形成した。
i)カップリング剤としてのカルボジイミド
ナイロン表面を短い酸加水分解に付した後、サンプルをジメチルホルムアミド(DMF)で洗浄し、20mM 1-シクロヘキシル-3-[2-モルホリノエチル]-カルボジイミドメチル-p-トルエンスルホネートを添加する。溶液を90分間攪拌し、次いでナイロンをDMFで洗浄する。
活性化ナイロンを、適切な緩衝液中でバクテリオファージと共に一晩攪拌し、次いで洗浄して非結合性のバクテリオファージを除去する。
ナイロン表面を短時間の酸加水分解に付した後、サンプルを0.1M炭酸水素塩緩衝液(pH9.4)で洗浄し、0.1M炭酸水素塩緩衝液中、10%グルタルアルデヒドと共にインキュベートした。次いで表面を炭酸水素塩緩衝液及び水の中で洗浄し、その後、適切な緩衝液中のバクテリオファージと共に一晩インキュベートした。
i)ビニルスルホニルエチレンエーテル
ヒドロキシル含有ポリマーをビニルスルホンでpH11で処理することにより、ビニルスルホニル基を当該ポリマーへ導入することができる。活性化したポリマーを、適切な緩衝液中、バクテリオファージと共に一晩攪拌し、次いで洗浄して非結合性のバクテリオファージを除去する。
セルロース又は修飾セルロース(約10g)を、1gの2-アミノ-4,6-ジクロロ-s-トリアジンを含むアセトン/水(1:1)の50mlへ5°で添加し、5分間攪拌する。次いで、0.6容量の1M HClを添加した15%(w/v)水性炭酸ナトリウム 20mlを反応混合物へ注ぐ。次いで濃HClを添加して混合物のpHを7未満にする。アミノ-クロロ-s-トリアジン置換セルロースをアセトン/水で洗浄し、次いで水で洗浄し、最後にpH7.0としての0.05Mリン酸緩衝液で洗浄する。バクテリオファージとのカップリング反応を、pH8.0下、0.05Mリン酸緩衝液中、12〜18時間攪拌することにより行う。
1.コロナ放電
ポリシーンを約1秒間のコロナ放電に暴露した。トレハロースの存在下で脱水したバクテリオファージを、当該処理表面へ直ちにまぶした(dust)。
ポリシーンを、濃過マンガン酸カリウム溶液へ数時間暴露し、蒸留水で洗浄し、直ちにトレハロース又はその他の安定化剤中、バクテリオファージで処理した。
1.大腸菌(Escherichia coli)11291を有するバクテリオファージP1
ナイロン/バクテリオファージ調製物へ、約1×108細胞/mlの50mlの細菌培養物で挑戦した。インキュベーション後、培養物を2層プラークアッセイによりアッセイした。
大腸菌(E. coli)に対するバクテリオファージλ
本実験では、固定化系の調製で使用したpfuの数と、当該固定化系へ細菌で挑戦したときに観察されたpfuの数とを比較する。
スタフィロコッカス・アウレウスに対する未知のバクテリオファージ
スタフィロコッカス・アウレウスのローン(lawn)を、0.18μのフィルターで濾過して細菌を除去した汚染水と共にインキュベートすることによりバクテリオファージを分離した。プラークが形成した場所は、溶菌性バクテリオファージの存在を示した。これを、前記と同様にして分離して、増殖させた。
生存度に対するトレハロースの影響
実験系は、ナイロン/バクテリオファージ調製物を種々の濃度のトレハロース溶液へ浸漬し、乾燥後にアッセイに付したことを除いて前記と同様であった(前記のナイロン/バクテリオファージ調製物は、使用前に24〜48時間緩衝液中で保存した)。乾燥した調製物は72時間後に使用した。
ナイロン/バクテリオファージ反応からの洗浄を、2層プラークアッセイによりアッセイして、遊離バクテリオファージ(化学反応の結果として共有結合性付着を形成しなかったバクテリオファージ)の除去速度及び除去効率を決定した。
組織存在下におけるスタフィロコッカス・アウレウスに対するバクテリオファージNCIMB 9563(ATCC6538-B)
バクテリオファージ9563を、前記と同様にして増殖させ、ナイロン膜へ固定化し、洗浄して非結合性バクテリオファージを除去し、2つの実験状況でスタフィロコッカス・アウレウス株に対して試験した。
固定化バクテリオファージを有するナイロン膜を、50mlのスタフィロコッカス・アウレウス増殖培地及び10gの浸漬牛肉(macerated beef)(創傷状況の模範となる)を有するフラスコ中に置き、当該フラスコへ2×108細菌細胞を接種し、37℃で24時間インキュベートした。サンプルを、前記の2層アッセイによって、バクテリオファージの存在について試験した。結果は、浸漬組織が固定化バクテリオファージ9536によるスタフィロコッカス・アウレウスへの感染へ有意に影響しなかったことを示した。
一連の2cm切れ目を牛肉又は豚肉切片に作成し、それぞれに2×108細菌細胞を接種した。固定化バクテリオファージ9536を有するナイロン膜切片を10の肉片へ挿入し、バクテリオファージを有しないナイロン膜切片を別の10の肉片へ挿入し、更に別の10の肉片は未処理のままとした。
1.創傷モデル:
固定化バクテリオファージを有する縫合糸を使用した仮想の臨床状況下において、ファージが活性である期間が長い程、より大きな保護が与えられる。コンタミネーションの主要期間は外科手術中及び外科手術直後であるが、標的細菌と縫合糸との接触が起こるまで物質は活性化されないだろう。
活性は、「創傷」と接触した3日間は実質的に保持された。図1参照。
本試験では、ストリップ(ナイロン/ファージ)を、新鮮生豚肉の創傷へ挿入し、3日毎に新鮮な組織で交換した。図6b参照。
結果を図2に示す。
活性は、高レベルで6〜7日間保持された。この期間後、複製ストリップの1以上がスタフィロコッカス・アウレウス培養物を透明化することに失敗した。この結果は、単一の提供が、縫合糸が使用される見込みのある期間よりも長く、かつ、創傷包帯が交換されないままである期間よりも長く保護を提供することを示唆している。
本試験の目的は、特定状況下での可能性のあるストレスであるタンパク質分解性分解に対し、ファージがどの程度耐えるかを決定することにあった。2つの実験アプローチを使用した。1つの実験アプローチでは、遊離バクテリオファージを試験して、トリプシンによって生じた不活性化に対する当該ファージの感受性を測定した。もう一つの実験アプローチでは、固定化バクテリオファージを試験して、固定化によるあらゆる保護効果を測定した。
3つの濃度のトリプシンを使用した。
0.1g/l
0.5g/l
2.5g/l
サンプルを希釈し、標準プラークアッセイによって生存可能ファージについてアッセイした。
結果を図3に示す。
これらの濃度及び時間のトリプシンは、遊離ファージに対して影響を与えなかった。
この実験を3回繰り返したが、同様の結果であった。
固定化ファージは、タンパク質分解性不活性化に対し、少なくとも遊離ファージと同等の耐性を示した。
この結果は、バクテリオファージの可能性のある経口投与についての暗示を有する。
2つのアプローチを採用した。一方のアプローチでは、固定化後の残留ファージを測定した。他方のアプローチは電子顕微鏡検であった。
1.活性化ナイロンを、既知濃度のファージ溶液へ添加し、経時的なファージ数減少をプラークアッセイにより測定した。
結果を図5に示す。
ストリップの面積は5×1cmであり、固定化ファージの数はストリップあたり7×107であった。これは、15μ2あたり1つのファージという密度を与える。電子顕微鏡法も同様の密度(7〜15μの間隔)を与える。ファージの大きさは約0.3μであり、そのため、表面密度は増加するだろう。
スタフィロコッカス・アウレウスの疾病株に対し活性な溶菌性バクテリオファージの製造方法
環境ソースから分離した溶菌性バクテリオファージを、変異原性化学物質で処理して、その標的細菌に対する結合能力を変化させた。ランダム突然変異誘発は、あらゆる標準法により行うことができる。以下で報告する場合において、これはヒドロキシルアミン(4%)処理であった。
PF15a及びbは、院内感染の約70%の原因であるEMRSAタイプ15に対応する。PF16a及びMは、同感染の約20%の原因であるEMRSAタイプ16に対応する。このファージは、英国における全院内感染の90%に対して有効であろう。
固定化アデノウイルスの活性
背景
方法
ナイロンサンプルを、カルボジイミドを用いて前記と同様にして活性化し、Adeno-X-LacZ(登録商標)ウイルスストック(BD Biosciences Palo Alta, USA)と反応させた。サンプルを5回洗浄し、次いで12ウェルアッセイプレートのウェルへ導入した。健康なHEK293細胞(5×105細胞/ml)を、ポジティブコントロール及びネガティブコントロールと共に各ウェルへまいた。ポジティブコントロールは、固定化していないAdeno-X LacZウイルス(「遊離ウイルス」)からなっていた。細胞を、DMEM+10%ウシ胎仔血清培地中で培養した。ストックのいくつかの希釈物(10-2〜10-6)を使用した。プレートを、5%CO2/空気中、37℃で48時間インキュベートした。培地を除去し、細胞を5分間空気乾燥し、次いで1ml氷冷メタノールを各細胞へ添加することにより固定した。10分後、メタノールを除去し、ウェルを1mlリン酸緩衝生理食塩水(PBS)+1%ウシ血清アルブミン(BSA)で3回すすいだ。
Adeno-X-LacZ(登録商標)ウイルスを、前述のカルボジイミドプロトコール及び5回の洗浄を使用して直径約10ミクロンのナイロン球へ固定化した。固定化アデノウイルスを有するナイロン球の完全フロイントアジュバント中の懸濁液約0.25mlをBalb Cマウスへ注射し、3週間後更に0.3mlを注射した。
細胞層を有するウェルを、明視野及び位相差で10×、20×及び40×対物の下、倒立顕微鏡を使用して見た。ナイロンスクウェア(nylon square)をスライドにマウントし、明視野及び位相差顕微鏡を用いて10×、20×及び40×対物の下で見た。暗褐色に染まった細胞を感染あり(+)として解釈した。染まらなかった細胞を感染なし(-)として解釈した。
固定化アデノウイルスは、HEK293細胞へ感染することができなかった。遊離のウイルスは感染性であった。これは、固定化が、動物細胞によるウイルス粒子のファゴサイトーシスを妨げ、それゆえウイルスによる感染が妨げられたことを示している。
Bennett, A. R. , Davids, FGC. , Vlahodimou, S. , Banks, J. G. 及び Betts, R. P. , 1997. Journal of Applied Microbiology, . 83, 259-265.
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Crowe, J. H., 及び Crowe, L. M., 2000. Nature Biotechnology, 18, 145.
1.基材に固定化されたウイルスを含むことを特徴とする、医療用途用デバイス。
2.前記ウイルスがバクテリオファージである、上記1に記載のデバイス。
3.抗生物質(殺菌剤)又は静菌剤として使用するための、上記1又は2に記載のデバイス。
4.固定化が前記ウイルスへ増加した安定性を与える、前記上記のいずれかに記載のデバイス。
5.前記デバイスが、該デバイスに固定化された複数の種々の株特異的ウイルスを有する、上記のいずれかに記載のデバイス。
6.前記基材が、活性化されてウイルスの頭部基特異的結合を許容する物質である、上記のいずれかに記載のデバイス。
7.ウイルスが、該ウイルスと基材との間に形成した共有結合を介して固定化されている、上記のいずれかに記載のデバイス。
8.前記ウイルスが、その頭部基を経て固定化され、その尾部基は遊離のままである、前記上記のいずれかに記載のデバイス。
9.前記ウイルスの共有結合を介した基材への固定化が、カップリング剤の添加により補助されている、上記のいずれかに記載のデバイス。
10.前記カップリング剤が、基材であるナイロン又はアミノ表面基又はカルボキシ表面基を有するその他のポリマーへカップリングするためのカルボジイミド又はグルタルアルデヒド、基材であるセルロース又はその他のヒドロキシル含有ポリマーへカップリングするためのビニルスルホニルエチレンエーテル又はトリアジン、又は、ウイルスを基材であるポリシーン又はその他の類似ポリマーへカップリングするためのコロナ放電又は過マンガン酸塩酸化である、上記のいずれかに記載のデバイス。
11.前記固定化ウイルスが、脱水、長期間の保存及びその他のストレスに対してタンパク質を保護する化合物で処理されており、かつ、該固定化ウイルスが、処理されたときに、未処理ウイルスと比較して増加した生存度及び感染性を示す、上記のいずれかに記載のデバイス。
12.前記化合物がトレハロースである、上記11に記載のデバイス。
13.細菌性植物病の処置用である、前記上記のいずれかに記載のデバイス。
14.固定化バクテリオファージを食餌へ組み込むことによるウシの大腸菌除去用である、前記上記のいずれかに記載のデバイス。
15.食品包装として使用するための、上記のいずれかに記載のデバイス。
16.塗料として使用するための、上記のいずれかに記載のデバイス。
17.ワクチンとして使用するための、上記のいずれかに記載のデバイス。
18.基材に固定化されたウイルスを有する当該基材を含むデバイスを製造する方法であって、
a)該基材を活性化して、ウイルスが該基材へ結合することを許容する工程、及び
b)該修飾された基材と、ウイルスと、該ウイルスの該基材への結合を補助するカップリング剤とを混合する工程
を含むことを特徴とする方法。
19.c)前記修飾基材が、脱水、長期間の保存及び/又はその他のストレスに暴露されたときに、該修飾基材へ結合したウイルスの生存度及び感染性を維持する安定化剤を添加する工程
を更に含む、上記18に記載の方法。
20.前記基材を安定化する工程が、
1)酸を用いた予備的な加水分解工程、
2)水を用いた洗浄工程、及び
3)アルカリを用いて洗浄して、該酸を除去する工程
を含む、上記18又は19に記載の方法。
21.前記安定化剤がトレハロース又は熱ショックタンパク質である、上記19に記載の方法。
22.前記デバイスを乾燥して、長期間の保存を許容し、該デバイスはウイルスの感染性及び生存度を維持している、上記19〜21のいずれかに記載の方法。
23.ウイルス、細菌又はプリオンの感染及び/又はコンタミネーションの処置又は予防における薬剤を製造するための、前記上記のいずれかに記載のデバイスの使用。
24.上記1〜18のいずれかに記載のデバイスの固定化ウイルスを更に安定化するための、トレハロース又はその機能性類似体の使用。
25.細菌の感染及び/又はコンタミネーションの予防及び/又は処置のための医療用デバイスであって、基材として固定化されたバクテリオファージを含むことを特徴とする医療用デバイス。
26.絆創膏、縫合糸、圧定布又は創傷包帯、インプラント、ビーズ、硬膏剤等の形態である、上記25に記載のデバイス。
Claims (18)
- コロナ放電により固相物質に固定化されたバクテリオファージを含む、細菌感染の予防及び/又は処置における使用のためのデバイスであって、
該バクテリオファージが、該バクテリオファージと該固相物質との間に形成した共有結合を介して該固相物質へ固定化されており、
該バクテリオファージが感染性を保持している
ことを特徴とするデバイス。 - 細菌コンタミネーションの予防及び/又は処置のための、固相物質に固定化されたバクテリオファージを含むデバイスの使用(ヒトへの適用を除く)であって、
該バクテリオファージが、該バクテリオファージと該固相物質との間に形成した共有結合を介して該固相物質へ固定化されており、
該バクテリオファージが感染性を保持している
ことを特徴とする使用。 - 殺菌剤又は静菌剤として使用するための請求項1に記載のデバイス。
- 前記デバイスが、固相物質に固定化された複数種類の株特異的バクテリオファージを有する、請求項1若しくは3に記載のデバイス。
- 前記バクテリオファージの共有結合を介した固相物質への固定化が、カップリング剤の添加により補助されている、請求項1、3若しくは4に記載のデバイス。
- 前記カップリング剤が以下の化合物:
S-アセチルメルカプトコハク酸無水物;
S-アセチルチオグリコール酸 N-ヒドロキシスクシンイミドエステル;
アジピン酸ジヒドラジド;
4-アジド安息香酸 N-ヒドロキシスクシンイミドエステル;
N-(5-アジド-2- ニトロベンジルオキシ) スクシンイミド;
6-(4-アジド-2- ニトロフェニルアミノ)ヘキサン酸 N-ヒドロキシスクシンイミドエステル;
p-アジドフェナシルブロミド;
4-アジドサリチル酸 N-ヒドロキシスクシンイミドエステル;
ブロモ酢酸 N-ヒドロキシスクシンイミドエステル;
1,4-ブタンジオールジグリシジルエーテル;
2-ジアゾ-3,3,3-トリフルオロプロピオン酸 p-ニトロフェニルエステル;
ジエチルマロニミデート;
4,4'-ジイソチオシアネートスチルベン-2, 2'-ジスルホン酸;
ジメチルアジピミデート;
ジメチル 3,3'-ジチオビスプロピオンイミデート;
ジメチルピメルイミデート;
ジメチルスベルイミデート;
4,4'-ジチオビスフェニルアジド;
ジチオビス(プロピオン酸 N-ヒドロキシスクシンイミドエステル);
エチレングリコールビス- (コハク酸 N-ヒドロキシスクシンイミドエステル);
4-フルオロ-3-ニトロフェニルアジド;
p-ホルミル安息香酸 N-ヒドロキシスクシンイミドエステル;
グルタルアルデヒド;
2-イミノチオラン;
6- (ヨードアセトアミド)カプロン酸 N-ヒドロキシスクシンイミドエステル;
ヨード酢酸 N-ヒドロキシスクシンイミドエステル;
3-マレイミド酢酸 N-ヒドロキシスクシンイミドエステル;
3-マレイミド安息香酸 N-ヒドロキシスクシンイミドエステル;
4- (N. マレイミド) ベンゾフェノン;
γ-マレイミド酪酸 N-ヒドロキシスクシンイミドエステル;
ε-マレイミドカプロン酸 N-ヒドロキシスクシンイミドエステル;
4-(N-マレイミドメチル)シクロヘキセンカルボン酸 N-ヒドロキシスクシンイミドエステル;
4-(N-マレイミドメチル)シクロヘキサンカルボン酸 3-スルホ-N-ヒドロキシスクシンイミドエステル;
β-マレイミドプロピオン酸 N-ヒドロキシスクシンイミドエステル;
N,N'-ビス(3-マレイミドプロピオニル)-2-ヒドロキシ-1,3-プロパンジアミン;
1,4-フェニレンジイソチオシアネート;
N,N'-o-フェニレンジマレイミド;
ポリオキシエチレンビス(グリシジルエーテル);
ビス(ポリオキシエチレンビス(グリシジルエーテル);
ポリオキシエチレンビス(イミダゾリルカルボニル)1;
ビス(ポリオキシエチレンビス[イミドリルカルボニル]);
ポリオキシエチレンビス(p-ニトロフェニ)カーボネート);
3-(2-ピリジルジチオ)プロピオン酸 N-ヒドロキシスクシンイミドエステル;
スベリン酸ビス(N-ヒドロキシスクシンイミド)エステル;
コハク酸マレイミドエチル-N-ヒドロキシスクシンイミドエステル;
1,5-ビス(スクシンイミドオキシカルボニルオキシ)-ペンテン; 及び
ビス(N-スクシンイミジル)カーボネート
からなる群より選ばれる、請求項5に記載のデバイス。 - 前記固相物質がポリシーンである、請求項1、3若しくは4に記載のデバイス。
- 前記固定化バクテリオファージがトレハロースで処理されており、かつ、該固定化バクテリオファージが、未処理バクテリオファージと比較して増加した生存度及び感染性を示す、請求項1、3、4、5、6若しくは7に記載のデバイス。
- 細菌性植物病の処置用である、請求項2に記載の使用。
- 食品包装としての、請求項2又は9に記載の使用。
- 細菌の感染及び/又はコンタミネーションの処置又は予防のための医薬を製造するための、コロナ放電により固相物質に固定化されたバクテリオファージを含むデバイスの使用であって、
該バクテリオファージが、該バクテリオファージと該固相物質との間に形成した共有結合を介して該固相物質へ固定化されており、
該バクテリオファージが感染性を保持している
ことを特徴とする使用。 - 絆創膏、縫合糸、圧定布又は創傷包帯、インプラント、ビーズ又は硬膏剤の形態である、請求項1、3、4、5、6、7若しくは8に記載のデバイス。
- 殺菌剤又は静菌剤としての請求項2に記載のデバイスの使用。
- 前記デバイスが、固相物質に固定化された複数種類の株特異的バクテリオファージを有する、請求項2若しくは13に記載の使用。
- 前記バクテリオファージの共有結合を介した固相物質への固定化が、カップリング剤の添加により補助されている、請求項2、13若しくは14に記載の使用。
- 前記カップリング剤が以下の化合物:
S-アセチルメルカプトコハク酸無水物;
S-アセチルチオグリコール酸 N-ヒドロキシスクシンイミドエステル;
アジピン酸ジヒドラジド;
4-アジド安息香酸 N-ヒドロキシスクシンイミドエステル;
N-(5-アジド-2- ニトロベンジルオキシ) スクシンイミド;
6-(4-アジド-2- ニトロフェニルアミノ)ヘキサン酸 N-ヒドロキシスクシンイミドエステル;
p-アジドフェナシルブロミド;
4-アジドサリチル酸 N-ヒドロキシスクシンイミドエステル;
ブロモ酢酸 N-ヒドロキシスクシンイミドエステル;
1,4-ブタンジオールジグリシジルエーテル;
2-ジアゾ-3,3,3-トリフルオロプロピオン酸 p-ニトロフェニルエステル;
ジエチルマロニミデート;
4,4'-ジイソチオシアネートスチルベン-2, 2'-ジスルホン酸;
ジメチルアジピミデート;
ジメチル 3,3'-ジチオビスプロピオンイミデート;
ジメチルピメルイミデート;
ジメチルスベルイミデート;
4,4'-ジチオビスフェニルアジド;
ジチオビス(プロピオン酸 N-ヒドロキシスクシンイミドエステル);
エチレングリコールビス- (コハク酸 N-ヒドロキシスクシンイミドエステル);
4-フルオロ-3-ニトロフェニルアジド;
p-ホルミル安息香酸 N-ヒドロキシスクシンイミドエステル;
グルタルアルデヒド;
2-イミノチオラン;
6- (ヨードアセトアミド)カプロン酸 N-ヒドロキシスクシンイミドエステル;
ヨード酢酸 N-ヒドロキシスクシンイミドエステル;
3-マレイミド酢酸 N-ヒドロキシスクシンイミドエステル;
3-マレイミド安息香酸 N-ヒドロキシスクシンイミドエステル;
4- (N. マレイミド) ベンゾフェノン;
γ-マレイミド酪酸 N-ヒドロキシスクシンイミドエステル;
ε-マレイミドカプロン酸 N-ヒドロキシスクシンイミドエステル;
4-(N-マレイミドメチル)シクロヘキセンカルボン酸 N-ヒドロキシスクシンイミドエステル;
4-(N-マレイミドメチル)シクロヘキサンカルボン酸 3-スルホ-N-ヒドロキシスクシンイミドエステル;
β-マレイミドプロピオン酸 N-ヒドロキシスクシンイミドエステル;
N,N'-ビス(3-マレイミドプロピオニル)-2-ヒドロキシ-1,3-プロパンジアミン;
1,4-フェニレンジイソチオシアネート;
N,N'-o-フェニレンジマレイミド;
ポリオキシエチレンビス(グリシジルエーテル);
ビス(ポリオキシエチレンビス(グリシジルエーテル);
ポリオキシエチレンビス(イミダゾリルカルボニル)1;
ビス(ポリオキシエチレンビス[イミドリルカルボニル]);
ポリオキシエチレンビス(p-ニトロフェニ)カーボネート);
3-(2-ピリジルジチオ)プロピオン酸 N-ヒドロキシスクシンイミドエステル;
スベリン酸ビス(N-ヒドロキシスクシンイミド)エステル;
コハク酸マレイミドエチル-N-ヒドロキシスクシンイミドエステル;
1,5-ビス(スクシンイミドオキシカルボニルオキシ)-ペンテン; 及び
ビス(N-スクシンイミジル)カーボネート
からなる群より選ばれる、請求項15に記載の使用。 - 前記固相物質がポリシーンである、請求項2、13若しくは14に記載の使用。
- 前記固定化バクテリオファージがトレハロースで処理されており、かつ、該固定化バクテリオファージが、未処理バクテリオファージと比較して増加した生存度及び感染性を示す、請求項2、13、14、15、16若しくは17に記載の使用。
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