JP2011010583A - Liquid oil component-removing method, cell-separating method and cell-separating kit - Google Patents
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Abstract
Description
本発明は、液性油成分を含む体液から、該成分を除去する方法、該除去方法を用いた細胞分離方法、並びに該分離方法に供する細胞分離キットに関する。 The present invention relates to a method for removing a component from a body fluid containing a liquid oil component, a cell separation method using the removal method, and a cell separation kit used for the separation method.
近年になって、骨髄液、臍帯血の中には、骨、軟骨、筋肉、脂肪等の様々な細胞に分化し得る性質を持った付着性の幹細胞が存在することが明らかになってきており(特許文献1、非特許文献1、非特許文献2、非特許文献3)、該細胞を効率良く分離・増幅させる方法は、再生医療発展の見地から極めて重要である。
In recent years, it has become clear that bone marrow fluid and umbilical cord blood have adherent stem cells that can differentiate into various cells such as bone, cartilage, muscle, and fat. (
付着性の幹細胞は、骨髄液中に成人で1万〜100万個に1つ程度の数という非常に存在頻度が少ないことが報告されており(非特許文献4)、該細胞画分を分離・濃縮後に回収する方法が種々検討されている。例えば、Pittengerらは、密度勾配遠心分離法であるフィコールパック分画法を用いて比重1.073の分画に脂肪、軟骨、骨細胞への分化前駆細胞が存在することを見出している(非特許文献4)。しかしながら、上記フィコールを用いた分離法は、分離液と細胞を分けるために遠心分離機を使用して細胞を数回洗浄する操作が必要であり、操作性が煩雑を伴うため、作業者によって分離効率にばらつきが生じてしまい、安定的な細胞分離を行うことが難しい。 Adherent stem cells have been reported to occur in bone marrow at a very low frequency of about 1 in 10,000 to 1 million adults (Non-Patent Document 4), and the cell fraction is separated. -Various methods for collecting after concentration have been studied. For example, Pittenger et al. Have found that differentiation precursor cells into fat, cartilage, and bone cells are present in a fraction having a specific gravity of 1.073 using the Ficoll-pack fractionation method, which is a density gradient centrifugation method (non-native). Patent Document 4). However, the separation method using Ficoll requires the operation of washing the cells several times using a centrifuge to separate the separation liquid from the cells, and the operability is complicated. Variations in efficiency occur and it is difficult to perform stable cell separation.
より安定的に細胞分離を行う方法として、不織布を用いたデバイスによる分離法も開示されている(特許文献2)。しかし不織布を用いたデバイスを用いる場合、細胞分離効率は分離対象となる骨髄液等の性状に大きく依存することが予想される。例えば、骨髄液を採取する際に同時に採取される液性油成分の量によっては不織布表面が該成分によって覆われてしまい本来の細胞分離性能が発揮されない、あるいは、液性油成分が不織布に付着すると目詰まりが生じ目的細胞のロスが起こる等の問題が生じている。 As a method of performing cell separation more stably, a separation method using a device using a nonwoven fabric is also disclosed (Patent Document 2). However, when using a device using a nonwoven fabric, the cell separation efficiency is expected to greatly depend on the properties of the bone marrow fluid to be separated. For example, depending on the amount of the liquid oil component collected at the same time as the bone marrow fluid is collected, the surface of the nonwoven fabric is covered with the component and the original cell separation performance is not exhibited, or the liquid oil component adheres to the nonwoven fabric. Then, problems such as clogging and loss of target cells occur.
本発明の目的は、液性油成分を含む骨髄液、末梢血、臍帯血、及び月経血等の体液から該成分を除き、安定的に細胞を分離することが可能な、細胞分離方法及び細胞分離キットを提供することにある。 An object of the present invention is to provide a cell separation method and cell capable of stably separating cells by removing the components from body fluids such as bone marrow fluid, peripheral blood, umbilical cord blood, and menstrual blood containing a liquid oil component It is to provide a separation kit.
本発明者らは、液性油成分を含む体液から安定的に細胞を分離する方法について鋭意検討した。その結果、体液から液性油成分の除去方法を見出し、細胞分離デバイスを組み合わせることによって、安定的かつ効率的な細胞分離を可能にする本発明に至った。 The present inventors diligently studied a method for stably separating cells from a body fluid containing a liquid oil component. As a result, the present inventors have found a method for removing a liquid oil component from a body fluid and combined it with a cell separation device to achieve the present invention that enables stable and efficient cell separation.
よって、本発明は以下の通りである。
(1)体液から細胞を分離する方法であって、1)液性油成分除去工程、2)細胞分離工程の順で処理を行うことを特徴とする細胞分離方法、
(2)体液から細胞を分離する工程として、液流入部と液流出部を有する容器に目的細胞を捕捉可能な細胞分離材を充填して細胞分離デバイスとし、該デバイスに体液を通液することで細胞を分離することを特徴とする(1)に記載の細胞分離方法、
(3)液性油成分の除去工程として、該成分に比べて比重の高い液の入ったチャンバーの上部から流入させ、チャンバー下部から該成分を除去した体液を回収することを特徴とする(1)または(2)のいずれかに記載の細胞分離方法、
(4)液性油成分の除去方法として、液性油成分を含んだ体液を容器に入れて静置し、油水分離後に該容器下部から該成分を除去した体液を回収することを特徴とする(1)または(2)のいずれかに記載の細胞分離方法、
(5)細胞が、幹細胞であることを特徴とする(1)〜(4)のいずれかに記載の細胞分離方法、
(6)少なくとも、液性油成分除去用チャンバーおよび細胞分離デバイスを有し、それらが回路によって接続されていることを特徴とする細胞分離キット、
(7)(6)に記載の細胞分離キットを用いることを特徴とする細胞分離方法、
(8)液性油成分を含んだ体液を、該成分に比べて比重の高い液の入ったチャンバーの上部から流入させ、チャンバー下部から該成分を除去した体液を回収することを特徴とする液性油成分除去方法、
(9)液性油成分を含んだ体液を容器に入れて静置し、油水分離後に該容器下部から該成分を除去した体液を回収することを特徴とする液性油成分除去方法、
(10)体液が骨髄液、臍帯血液、末梢血液、月経血液、酵素処理等により液状化した脂肪組織等の生体組織、該液状化物から得られた細胞を、生理食塩水や細胞培養用培地等のバッファーに再懸濁した懸濁液、脂肪吸引時に脂肪組織と同時に得られた液成分、のいずれかを含むことを特徴とする(8)または(9)のいずれかに記載の液性油成分除去方法。
Therefore, the present invention is as follows.
(1) A method for separating cells from a body fluid, wherein the treatment is performed in the order of 1) liquid oil component removal step, 2) cell separation step,
(2) As a step of separating cells from body fluid, a cell separation device is prepared by filling a container having a liquid inflow portion and a liquid outflow portion with a cell separation material capable of capturing target cells, and the body fluid is passed through the device. The cell separation method according to (1), wherein the cells are separated by
(3) The liquid oil component removing step is characterized in that it is made to flow from the upper part of the chamber containing a liquid having a higher specific gravity than the component, and the body fluid from which the component has been removed is recovered from the lower part of the chamber (1 ) Or the cell separation method according to any one of (2),
(4) As a method for removing the liquid oil component, the body fluid containing the liquid oil component is placed in a container and allowed to stand, and the body fluid from which the component has been removed is recovered from the lower part of the container after oil-water separation. (1) or the cell separation method according to any one of (2),
(5) The cell separation method according to any one of (1) to (4), wherein the cell is a stem cell,
(6) A cell separation kit comprising at least a chamber for removing liquid oil components and a cell separation device, which are connected by a circuit,
(7) A cell separation method comprising using the cell separation kit according to (6),
(8) A body fluid containing a liquid oil component is introduced from the upper part of a chamber containing a liquid having a higher specific gravity than the component, and the body fluid from which the component has been removed is recovered from the lower part of the chamber. Oily oil component removal method,
(9) A liquid oil component removing method, wherein a body fluid containing a liquid oil component is placed in a container and allowed to stand, and the body fluid from which the component has been removed is recovered from the bottom of the container after oil-water separation,
(10) A biological fluid such as bone marrow fluid, umbilical cord blood, peripheral blood, menstrual blood, biological tissue such as adipose tissue liquefied by enzyme treatment, cells obtained from the liquefied material, physiological saline, cell culture medium, etc. The liquid oil according to any one of (8) and (9), comprising any one of a suspension resuspended in the buffer and a liquid component obtained simultaneously with adipose tissue during liposuction Component removal method.
本発明の液性油成分除去方法、細胞分離方法及び細胞分離キットを用いることにより、液性油成分を含んだ体液中から細胞を安定的かつ効率的に分離することが可能となる。 By using the liquid oil component removal method, cell separation method, and cell separation kit of the present invention, it becomes possible to stably and efficiently separate cells from a body fluid containing the liquid oil component.
以下、本発明を詳細に説明する。 Hereinafter, the present invention will be described in detail.
本発明における体液とは、血液(末梢血、G−CSF動員末梢血を含む)、骨髄液、臍帯血、月経血等であり、細胞を含むものを指す。また、脂肪組織等の生体組織を酵素処理等により液状化したもの、及び該液状化物から得られた細胞を、生理食塩水や細胞培養用培地等のバッファーに再懸濁したもの、脂肪吸引時に脂肪組織と同時に得られた液成分も含まれる。 The body fluid in the present invention refers to blood (including peripheral blood, G-CSF mobilized peripheral blood), bone marrow fluid, umbilical cord blood, menstrual blood, and the like, including cells. In addition, a living tissue such as adipose tissue liquefied by enzyme treatment or the like, and a cell obtained from the liquefied material resuspended in a buffer such as a physiological saline or a cell culture medium, during liposuction Liquid components obtained simultaneously with adipose tissue are also included.
本発明における液性油成分とは、実質的に液状化している油成分が該当し、流動性があればペースト状でも良く、粒子上の油成分を含んでも良い。 The liquid oil component in the present invention corresponds to an oil component that is substantially liquefied, and may have a paste form as long as it has fluidity, and may include an oil component on particles.
本発明における幹細胞とは、例えば間葉系幹細胞、多能性成体幹細胞、骨髄ストローマ細胞、造血幹細胞等、多分化能を有する細胞等を指す。 The stem cells in the present invention refer to cells having pluripotency such as mesenchymal stem cells, pluripotent adult stem cells, bone marrow stromal cells, hematopoietic stem cells and the like.
間葉系幹細胞とは、体液中から分離され、自己増殖を繰り返す能力を有し、下流の細胞系譜への分化が可能な細胞を指す。多能性幹細胞とは、分化誘導因子により神経細胞、肝細胞にも分化する可能性のある細胞をいうが、これらに限定されるものではない。骨髄ストローマ細胞とは、骨髄細胞中、未熟及び成熟血液細胞を除く全ての付着性細胞成分を指す。造血幹細胞とは、血球系細胞、例えば白血球、赤血球、血小板に分化可能な細胞を指す。以上、本発明における幹細胞を例示したが、本発明はこれに限定されるものではない。 A mesenchymal stem cell refers to a cell that is isolated from a body fluid, has the ability to repeat self-proliferation, and can differentiate into a downstream cell lineage. A pluripotent stem cell refers to a cell that can be differentiated into a nerve cell or a hepatocyte by a differentiation-inducing factor, but is not limited thereto. Bone marrow stromal cells refer to all adherent cell components in bone marrow cells except immature and mature blood cells. A hematopoietic stem cell refers to a cell that can differentiate into a blood cell, for example, a white blood cell, a red blood cell, and a platelet. As mentioned above, although the stem cell in this invention was illustrated, this invention is not limited to this.
本発明におけるチャンバーとは、液流入口と液流出口を有した容器であれば良く、形態は、球、コンテナ、カセット、バッグ、チューブ、カラム等、任意の形態であって良い。また、液流入口と液流出口は異なる方が好ましく、チャンバーを鉛直方法に設置した際に液流出口が最下部に配されることが好ましい。また、該チャンバーは、任意の構造材料を使用して作製することができる。 The chamber in the present invention may be any container having a liquid inlet and a liquid outlet, and may have any form such as a sphere, a container, a cassette, a bag, a tube, and a column. Moreover, it is preferable that the liquid inflow port and the liquid outflow port are different from each other, and it is preferable that the liquid outflow port is disposed at the lowermost part when the chamber is installed in the vertical method. The chamber can be manufactured using any structural material.
構造材料としては、具体的には非反応性ポリマー、生体親和性金属、合金、ガラス等が挙げられる。非反応性ポリマーとしては、アクリロニトリルブタジエンスチレンターポリマー当のアクリルニトリルポリマー;ポリテトラフルオロエチレン、ポリクロロトリフルオロエチレン、テトラフルオロエチレンとヘキサフルオロプロピレンのコポリマー、ポリ塩化ビニル等のハロゲン化ポリマー;ポリアミド、ポリイミド、ポリスルホン、ポリカードネート、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリビニルクロリドアクリルコポリマー、ポリカーボネートアクリロニトリルブタジエンスチレン、ポリスチレン、ポリメチルペンテン等が上げられる。 Specific examples of the structural material include non-reactive polymers, biocompatible metals, alloys, and glass. Non-reactive polymers include: acrylonitrile butadiene styrene terpolymer acrylonitrile polymers; polytetrafluoroethylene, polychlorotrifluoroethylene, copolymers of tetrafluoroethylene and hexafluoropropylene, halogenated polymers such as polyvinyl chloride; polyamides, Examples thereof include polyimide, polysulfone, polycarbonate, polyethylene, polypropylene, polyvinyl chloride acrylic copolymer, polycarbonate acrylonitrile butadiene styrene, polystyrene, polymethylpentene, and the like.
金属材料(生体親和性金属、合金)としては、ステンレス鋼、チタン、白金、タンタル、金、およびそれらの合金、並びに金メッキ合金鉄、白金メッキ合金鉄、コバルトクロミウム合金、窒化チタン被覆ステンレス鋼等が挙げられる。以上、該チャンバーの構造材料の具体例を示したが、中でも好ましくは、耐滅菌製を有する素材である。具体的には、ポリプロピレン、ポリ塩化ビニル、ポリエチレン、ポリイミド、ポリカードネート、ポリスルホン、ポリメチルペンテン等が挙げられる。また、該チャンバーは軟質、硬質どちらでも良く、指圧で変形する程度の軟質でも良い。 Examples of metal materials (biocompatible metals and alloys) include stainless steel, titanium, platinum, tantalum, gold, and alloys thereof, as well as gold-plated alloy iron, platinum-plated alloy iron, cobalt chromium alloy, and titanium nitride-coated stainless steel. Can be mentioned. As mentioned above, specific examples of the structural material of the chamber have been shown. Among them, a material having sterilization resistance is preferable. Specific examples include polypropylene, polyvinyl chloride, polyethylene, polyimide, polycardinate, polysulfone, and polymethylpentene. The chamber may be either soft or hard, and may be soft enough to be deformed by finger pressure.
本発明におけるチャンバー内に入れる液は、液性油成分に比べて比重が重ければ特に限定は無いが、体液中の細胞も通過することから、等張液であることが好ましい。 The liquid to be placed in the chamber of the present invention is not particularly limited as long as the specific gravity is heavier than that of the liquid oil component, but is preferably an isotonic liquid because cells in body fluid also pass through.
例えば、生理的食塩液、リンゲル液、細胞培養に使用する培地、燐酸緩衝液等の一般的な緩衝液等が挙げられるが、安全面から生理的食塩液が好ましい。 For example, a physiological saline solution, Ringer's solution, a medium used for cell culture, a general buffer solution such as a phosphate buffer, and the like can be mentioned. From the viewpoint of safety, a physiological saline solution is preferable.
また、チャンバー内に入れる液量はチャンバー内を満たす量であっても良く、チャンバー内に空気等の気層があっても良い。チャンバーに流入する体液の速度は特に限定は無いが、油成分がチャンバー上部に浮き上がる速度であることが好ましい。 In addition, the amount of liquid put into the chamber may be an amount that fills the chamber, or an air layer such as air may exist in the chamber. The speed of the body fluid flowing into the chamber is not particularly limited, but is preferably a speed at which the oil component floats on the upper portion of the chamber.
次に、該チャンバーの使用例を次に記すが、本発明はこれに限定されない。生理食塩水と空気の入ったチャンバー内に、チャンバー上部に配された液流入口から液性油成分を含んだ体液が流入すると、液性油成分は等張液の上側に、細胞成分を含んだ体液は等張液と混ざってチャンバー下部に集まる。チャンバー最下部に配された液流出口から液性油成分が除かれた体液が流出し、これを回収する。この際、液性油成分にも目的とする細胞成分が含まれるが、チャンバー内に体液が流入することによって油界面が乱れ、細胞成分が拡散してチャンバー下部に集まっていくため細胞成分のロスが少なくなり、効率的な細胞分離が可能となる。 Next, although the usage example of this chamber is described below, this invention is not limited to this. When body fluid containing liquid oil components flows into the chamber containing physiological saline and air from the liquid inlet located at the top of the chamber, the liquid oil components contain cellular components on the upper side of the isotonic solution. The body fluid is mixed with the isotonic solution and collected at the bottom of the chamber. The body fluid from which the liquid oil component has been removed flows out from the liquid outlet located at the bottom of the chamber and is collected. At this time, the target oil component is also contained in the liquid oil component, but the fluid interface is disturbed by the flow of body fluid into the chamber, and the cell component diffuses and collects in the lower part of the chamber. Therefore, efficient cell separation becomes possible.
本発明における、液性油成分を含む体液を静置する容器は、液体を保持できるものであれば良いが、液流入口および液流出口を有することが好ましい。形態は、球、コンテナ、カセット、バッグ、チューブ、カラム等、任意の形態であって良い。また容器は、任意の構造材料を使用して作製することができる。 In the present invention, the container for standing the body fluid containing the liquid oil component may be any container that can hold the liquid, but preferably has a liquid inlet and a liquid outlet. The form may be any form such as a sphere, container, cassette, bag, tube, column, and the like. The container can be made using any structural material.
構造材料としては、具体的には非反応性ポリマー、生体親和性金属、合金、ガラス等が挙げられる。非反応性ポリマーとしては、アクリロニトリルブタジエンスチレンターポリマー当のアクリルニトリルポリマー;ポリテトラフルオロエチレン、ポリクロロトリフルオロエチレン、テトラフルオロエチレンとヘキサフルオロプロピレンのコポリマー、ポリ塩化ビニル等のハロゲン化ポリマー;ポリアミド、ポリイミド、ポリスルホン、ポリカードネート、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリビニルクロリドアクリルコポリマー、ポリカーボネートアクリロニトリルブタジエンスチレン、ポリスチレン、ポリメチルペンテン等が挙げられる。 Specific examples of the structural material include non-reactive polymers, biocompatible metals, alloys, and glass. Non-reactive polymers include: acrylonitrile butadiene styrene terpolymer acrylonitrile polymers; polytetrafluoroethylene, polychlorotrifluoroethylene, copolymers of tetrafluoroethylene and hexafluoropropylene, halogenated polymers such as polyvinyl chloride; polyamides, Examples thereof include polyimide, polysulfone, polycarbonate, polyethylene, polypropylene, polyvinyl chloride acrylic copolymer, polycarbonate acrylonitrile butadiene styrene, polystyrene, and polymethylpentene.
金属材料(生体親和性金属、合金)としては、ステンレス鋼、チタン、白金、タンタル、金、およびそれらの合金、並びに金メッキ合金鉄、白金メッキ合金鉄、コバルトクロミウム合金、窒化チタン被覆ステンレス鋼等が挙げられる。 Examples of metal materials (biocompatible metals and alloys) include stainless steel, titanium, platinum, tantalum, gold, and alloys thereof, as well as gold-plated alloy iron, platinum-plated alloy iron, cobalt chromium alloy, and titanium nitride-coated stainless steel. Can be mentioned.
以上、該容器の構造材料の具体例を示したが、中でも好ましくは、耐滅菌製を有する素材である。具体的には、ポリプロピレン、ポリ塩化ビニル、ポリエチレン、ポリイミド、ポリカードネート、ポリスルホン、ポリメチルペンテン等が挙げられる。 Specific examples of the structural material of the container have been described above. Among them, a material having sterilization resistance is preferable. Specific examples include polypropylene, polyvinyl chloride, polyethylene, polyimide, polycardinate, polysulfone, and polymethylpentene.
該容器の大きさは、特に限定されないが容積が過度に小さい場合は、油成分の除去が不十分となる。また、容積が過度に大きい場合は、体液のロスに繋がる。以上の観点から、該容器の容積は、0.5〜100mLが好ましく、より好ましくは3〜50mL、さらに好ましくは5〜30mLである。 The size of the container is not particularly limited, but when the volume is excessively small, removal of the oil component is insufficient. Moreover, when the volume is excessively large, it leads to a loss of body fluid. From the above viewpoint, the volume of the container is preferably 0.5 to 100 mL, more preferably 3 to 50 mL, and still more preferably 5 to 30 mL.
本発明における油水分離に要する静置時間は、実質的に油水が分離できれば良いが、処理時間が長時間に渡ると細胞生存率が低下することが懸念される。従って、静置時間は1〜60分が好ましく、3〜30分がより好ましく、5〜15分がより好ましい。 The standing time required for the oil / water separation in the present invention is only required to be able to substantially separate the oil / water, but there is a concern that the cell viability decreases when the treatment time is long. Accordingly, the standing time is preferably 1 to 60 minutes, more preferably 3 to 30 minutes, and more preferably 5 to 15 minutes.
本発明における細胞分離材は、特定の細胞成分を捕捉することで、その他の細胞成分と分離し得る。該分離材の材質としては、ポリプロピレン、ポリエチレン、高密度ポリエチレン、低密度ポリエチレン等のポリオレフィン、ポリエステル、塩化ビニル、ポリビニルアルコール、塩化ビニリデン、レーヨン、ビニロン、ポリスチレン、アクリル(ポリメチルメタクリレート、ポリヒドロキシエチルメタクリレート、ポリアクリロニトリル、ポリアクリル酸、ポリアクリレート等)、ナイロン、ポリウレタン、ポリイミド、アラミド、ポリアミド、キュプラ、ケブラー、カーボン、フェノール、テトロン、パルプ、麻、セルロース、ケナフ、キチン、キトサン、ガラス、綿等から選ばれる少なくとも1種からなるものが好ましい。より好ましくは、ポリエステル、ポリスチレン、アクリル、レーヨン、ポリオレフィン、ビニロン、ナイロン、ポリウレタン等から選ばれる少なくとも1種からなる合成高分子が挙げられる。 The cell separation material in the present invention can be separated from other cell components by capturing specific cell components. Examples of the material of the separating material include polyolefins such as polypropylene, polyethylene, high density polyethylene, and low density polyethylene, polyester, vinyl chloride, polyvinyl alcohol, vinylidene chloride, rayon, vinylon, polystyrene, acrylic (polymethyl methacrylate, polyhydroxyethyl methacrylate). , Polyacrylonitrile, polyacrylic acid, polyacrylate, etc.), nylon, polyurethane, polyimide, aramid, polyamide, cupra, kevlar, carbon, phenol, tetron, pulp, hemp, cellulose, kenaf, chitin, chitosan, glass, cotton, etc. What consists of at least 1 type chosen is preferable. More preferably, a synthetic polymer composed of at least one selected from polyester, polystyrene, acrylic, rayon, polyolefin, vinylon, nylon, polyurethane and the like can be mentioned.
2種以上の合成高分子を組み合わせる場合は、その組み合わせに特に限定はないが、ポリエステル及びポリプロピレン;レーヨン及びポリオレフィン;またはポリエステル、レーヨン及びビニロンからなる組み合わせ等が好ましく挙げられる。 When two or more synthetic polymers are combined, the combination is not particularly limited, and preferred examples include polyester and polypropylene; rayon and polyolefin; or a combination of polyester, rayon and vinylon.
2種以上の合成高分子を組み合わせて繊維とする場合の繊維の形態としては、1本の繊維が異成分同士の合成高分子よりなる繊維、あるいは異成分同士が剥離分割した分割繊維でもよい。また成分の異なる合成高分子単独よりなる繊維をそれぞれ複合化した形態でもよい。ここでいう複合化とは、特に限定は無く、2種以上の繊維が混在した状態より構成される形態、あるいは合成高分子単独よりなる形態をそれぞれ張り合わせたもの等が挙げられるが、本発明はこれらに限定されるものではない。 As a form of the fiber when combining two or more kinds of synthetic polymers to form a fiber, a fiber in which one fiber is made of a synthetic polymer of different components, or a split fiber in which different components are separated from each other may be used. Moreover, the form which each compounded the fiber which consists of a synthetic polymer with a different component individually may be sufficient. The term “composite” as used herein is not particularly limited, and examples thereof include a form constituted by a state in which two or more kinds of fibers are mixed, or a form in which a form composed of a single synthetic polymer is bonded together. It is not limited to these.
該分離材の形態は、特に限定されず、連通孔構造の多孔質体、繊維の集合体、織物等が挙げられる。好ましくは繊維で構成されるものであり、より好ましくは不織布である。該分離材は、赤血球が実質的に通過可能であることが好ましい。ここでいう赤血球が実質的に通過可能とは、該分離材に対する赤血球の通過率が80%以上を意味する。 The form of the separating material is not particularly limited, and examples thereof include a porous body having a communication hole structure, an aggregate of fibers, and a woven fabric. Preferably it is comprised with a fiber, More preferably, it is a nonwoven fabric. The separating material preferably allows red blood cells to substantially pass therethrough. Here, the fact that red blood cells can substantially pass means that the passing rate of red blood cells with respect to the separating material is 80% or more.
本発明における細胞分離デバイスとは、上記細胞分離材を、液流入口と液流出口を有する容器に充填してなるものである。このとき、該細胞分離材は、圧縮せず容器に充填しても良いし、圧縮して容器に充填しても良い。該細胞分離材は、前期の条件を満たせば、形状等の限定はない。細胞分離デバイスに用いる容器の形態、大きさ、材質には特に限定はない。 The cell separation device in the present invention is obtained by filling the cell separation material in a container having a liquid inlet and a liquid outlet. At this time, the cell separation material may be filled into a container without being compressed, or may be compressed into a container. The cell separating material is not limited in shape or the like as long as the conditions of the previous period are satisfied. There is no particular limitation on the form, size, and material of the container used for the cell separation device.
容器の形態は、球、コンテナ、カセット、バッグ、チューブ、カラム等、任意の形態であって良い。好ましい具体例としては、例えば、容量約0.1〜400ml程度、直径0.1〜15cm程度の筒状容器;一片の長さ0.1〜20cm程度の正方形または長方形で、厚みが0.1〜5cm程度の四角柱状容器等が挙げられるが、本発明はこれらに限定されるものではない。 The form of the container may be any form such as a sphere, a container, a cassette, a bag, a tube, or a column. Preferable specific examples include, for example, a cylindrical container having a capacity of about 0.1 to 400 ml and a diameter of about 0.1 to 15 cm; a square or rectangle having a length of about 0.1 to 20 cm and a thickness of 0.1. Examples include a square columnar container of about 5 cm, but the present invention is not limited to these.
上記細胞分離デバイスに用いる容器は、任意の構造材料を使用して作製することができる。構造材料としては、具体的には非反応性ポリマー、生体親和性金属、合金、ガラス等が挙げられる。 The container used for the cell separation device can be produced using any structural material. Specific examples of the structural material include non-reactive polymers, biocompatible metals, alloys, and glass.
非反応性ポリマーとしては、アクリロニトリルブタジエンスチレンターポリマー当のアクリルニトリルポリマー;ポリテトラフルオロエチレン、ポリクロロトリフルオロエチレン、テトラフルオロエチレンとヘキサフルオロプロピレンのコポリマー、ポリ塩化ビニル等のハロゲン化ポリマー;ポリアミド、ポリイミド、ポリスルホン、ポリカードネート、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリビニルクロリドアクリルコポリマー、ポリカーボネートアクリロニトリルブタジエンスチレン、ポリスチレン、ポリメチルペンテン等が上げられる。 Non-reactive polymers include: acrylonitrile butadiene styrene terpolymer acrylonitrile polymers; polytetrafluoroethylene, polychlorotrifluoroethylene, copolymers of tetrafluoroethylene and hexafluoropropylene, halogenated polymers such as polyvinyl chloride; polyamides, Examples thereof include polyimide, polysulfone, polycarbonate, polyethylene, polypropylene, polyvinyl chloride acrylic copolymer, polycarbonate acrylonitrile butadiene styrene, polystyrene, polymethylpentene, and the like.
金属材料(生体親和性金属、合金)としては、ステンレス鋼、チタン、白金、タンタル、金、およびそれらの合金、並びに金メッキ合金鉄、白金メッキ合金鉄、コバルトクロミウム合金、窒化チタン被覆ステンレス鋼等が挙げられる。以上、該デバイスに用いる容器の構造材料の具体例を示したが、中でも好ましくは、耐滅菌製を有する素材である。具体的には、ポリプロピレン、ポリ塩化ビニル、ポリエチレン、ポリイミド、ポリカードネート、ポリスルホン、ポリメチルペンテン等が挙げられる。 Examples of metal materials (biocompatible metals and alloys) include stainless steel, titanium, platinum, tantalum, gold, and alloys thereof, as well as gold-plated alloy iron, platinum-plated alloy iron, cobalt chromium alloy, and titanium nitride-coated stainless steel. Can be mentioned. As mentioned above, specific examples of the structural material of the container used in the device have been shown. Among them, a material having sterilization resistance is preferable. Specific examples include polypropylene, polyvinyl chloride, polyethylene, polyimide, polycardinate, polysulfone, and polymethylpentene.
次に該デバイスの使用例を次に記すが、本発明はこれに限定されない。まず細胞分離デバイスの液流入口から、体液を通液することにより、赤血球が実質的に捕捉されずに液流出口より流出し、細胞分離材内に目的細胞を捕捉することが可能である。次に、洗浄液を同方向から通液することにより、細胞分離材内にたまっている赤血球の大多数を洗浄除去することが可能である。さらに、液流出口から、すなわち体液及び洗浄液を流した方向とは逆方向から、細胞回収液を流すことにより、上記目的細胞を高い効率で分離回収することが可能である。 Next, although the usage example of this device is described below, this invention is not limited to this. First, by passing a body fluid from the liquid inlet of the cell separation device, red blood cells can flow out of the liquid outlet without being substantially captured, and target cells can be captured in the cell separation material. Next, it is possible to wash and remove the majority of red blood cells accumulated in the cell separation material by passing the washing solution from the same direction. Furthermore, the target cells can be separated and recovered with high efficiency by flowing the cell recovery liquid from the liquid outlet, that is, in the direction opposite to the direction in which the body fluid and the washing liquid are flowed.
本発明における細胞分離キットとは、上記チャンバー及び細胞分離デバイスを有し、それらが回路によって接続されているものを指す。その他に、体液を貯蔵するバッグや、洗浄液を貯蔵するバッグ、デバイスから流出する液を貯蔵するバッグ、回収した細胞を回収するバッグを有してもよく、それらが回路によって閉鎖的に接続されていることが好ましい。 The cell separation kit in the present invention refers to one having the chamber and the cell separation device, which are connected by a circuit. In addition, you may have a bag that stores body fluids, a bag that stores cleaning fluid, a bag that stores fluid that flows out of the device, and a bag that collects recovered cells, which are closed by a circuit. Preferably it is.
最も好ましい形態として、図1に基づき説明すると、チャンバー1の上流に体液バッグ3及び洗浄液バッグ4を、チャンバー下流に細胞分離デバイス2、流出液バッグ5、回収バッグ6を配する。該キットを用いた細胞分離方法を以下に例示するが、本発明はこれに限定されるものではない。
As the most preferable mode, referring to FIG. 1, the
1)液性油成分除去工程;
まず、洗浄液バッグ4から、チャンバー1の5割を満たすように洗浄液を流入させる。この際、洗浄液は洗浄液バッグ4から回路12、13を通じて自然落下で送液しても、ポンプにより通液しても良い。輸液ポンプによる通液の場合、チャンバー1に液滴を感知するプローブを装着しても良い。
1) Liquid oil component removal step;
First, the cleaning liquid is caused to flow from the cleaning
次に、チャンバー1の液流出口から細胞分離デバイス2の内部も生理食塩液で満たす。次に、三方活栓8を切り替え、体液バッグ3からチャンバー1に体液を流入させる。この際、体液はチャンバー1液流入口から液滴としてチャンバー1内に流入するが、液性油成分は比重が低いため、チャンバー1上部に集まる。
Next, the inside of the
チャンバー1上部に集まった液性油成分にも目的細胞が含まれるが、液流入口から滴下する体液によって集まった液性油成分は逐次拡散するので、目的細胞は体液に拡散し、ロスなくチャンバー1液流出口から流出する。
The target oil is also contained in the liquid oil component collected in the upper part of the
2)細胞分離工程;
まず、チャンバー1から流出した体液は、回路14、16を通じて細胞分離デバイス2に流入し、目的とする細胞が細胞分離デバイス2に捕捉される。
2) cell separation step;
First, the body fluid that has flowed out of the
次に、チャンバー1及び細胞分離デバイス2に洗浄液を通液する。洗浄液は、回路12、13、14、16を通じて自然落下で送液しても、ポンプにより通液しても良い。洗浄量は、細胞分離デバイス容量により異なるが、該デバイス容積の約1〜100倍程度の体積で洗浄することが好ましい。
Next, a washing solution is passed through the
また、細胞洗浄液としては、生理的食塩液、リンゲル液、細胞培養に使用する培地、燐酸緩衝液等の一般的な緩衝液等が挙げられるが、安全面から生理的食塩液が好ましい。 Examples of the cell washing solution include physiological saline, Ringer's solution, medium used for cell culture, and general buffers such as phosphate buffer, and physiological saline is preferable from the viewpoint of safety.
次に、細胞分離デバイス2に、体液および洗浄液を流した方向とは逆方向(液流出側)から細胞回収液を入れ、捕捉された細胞を回収する。
Next, the cell collection liquid is put into the
目的細胞を回収する時は、細胞回収液をシリンジ等に予め入れておき、シリンジのプランジャーを手等で勢いよく押し出すこと等により実現できる。この場合、細胞回収液は回収ポート7にシリンジ等を接続して流入させる。細胞回収液量および流速は、デバイス容量により異なるが、デバイス容積の1〜100倍量程度の細胞回収液を、流速0.5〜20ml/sec程度で注入することが好ましいが、これに限定されるものではない。 When the target cells are collected, the cell collection solution can be put in a syringe or the like in advance, and the plunger of the syringe can be pushed out by hand or the like. In this case, the cell recovery solution is caused to flow by connecting a syringe or the like to the recovery port 7. Although the amount of the cell recovery solution and the flow rate vary depending on the device volume, it is preferable to inject the cell recovery solution of about 1 to 100 times the device volume at a flow rate of about 0.5 to 20 ml / sec. It is not something.
細胞回収液としては、等張液であれば特に限定はないが、生理的食塩液やリンゲル液等の注射用剤として使用実績のあるものや、緩衝液、細胞培養用の培地等が挙げられる。 The cell recovery solution is not particularly limited as long as it is an isotonic solution, and examples thereof include those that have been used as injections such as physiological saline and Ringer's solution, buffer solutions, and cell culture media.
また、細胞分離デバイスに捕捉された細胞の回収率をあげるため、細胞回収液の粘張度を上げても良い。そのために上記細胞回収液に、アルブミン、フィブリノーゲン、グロブリン、デキストラン、ヒドロキシエチルスターチ、ヒドロキシエチルセルロース、コラーゲン、ヒアルロン酸、ゼラチン等を添加することが出来る。 Further, in order to increase the recovery rate of the cells captured by the cell separation device, the viscosity of the cell recovery solution may be increased. For that purpose, albumin, fibrinogen, globulin, dextran, hydroxyethyl starch, hydroxyethylcellulose, collagen, hyaluronic acid, gelatin and the like can be added to the cell recovery solution.
以下に本発明の実施例として、骨髄液からの間葉系幹細胞分離を詳細に説明するが、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。
[実施例1]
(1)液性油成分を含んだ体液の調製
体重約30kgの家畜ブタに筋肉注射にてケタラール、セラクタールを注入し、その後ネンブタールを静脈注射にて追加することにより麻酔を行った。10mlのシリンジに約20IU/mlになるように予めヘパリンを入れておき、腸骨より15Gの骨髄穿刺針を用いて骨髄液を採取した。
Hereinafter, as examples of the present invention, mesenchymal stem cell separation from bone marrow fluid will be described in detail, but the present invention is not limited to these examples.
[Example 1]
(1) Preparation of body fluid containing liquid oil component Anesthesia was performed by injecting ketalal and cerectal by intramuscular injection into domestic pigs weighing approximately 30 kg, and then adding nembutal by intravenous injection. Heparin was put in advance in a 10 ml syringe so as to be about 20 IU / ml, and bone marrow fluid was collected from the ilium using a 15 G bone marrow puncture needle.
次に採取した骨髄液プールに、ヘパリンを最終濃度で50IU/mlになるように追加添加して、十分に転倒混和を行った。次に、液性油成分として、ウシ骨髄脂(太邦株式会社)とサラダ油(日清)を体積比1:1で混合した。この液性油成分を骨髄液:液性油成分=6:1となるように添加し、十分に転倒混和を行った。 Next, heparin was additionally added to the collected bone marrow fluid pool to a final concentration of 50 IU / ml, and the mixture was thoroughly inverted. Next, bovine bone marrow fat (Taiko Co., Ltd.) and salad oil (Nisshin) were mixed at a volume ratio of 1: 1 as a liquid oil component. The liquid oil component was added so that the bone marrow fluid: liquid oil component = 6: 1, and the mixture was thoroughly inverted and mixed.
(2)細胞分離キットの作製
出入口を供えた内径2.2cm、長さ0.9cmの円筒状のポリカーボネイト製の筒に、細胞分離材としてレーヨンとポリオレフィンからなる不織布(目付け=95(g/m2)、繊維径=15±9μ)を直径2.2cmの円形に打抜いて36枚を圧縮・積層し、上下をストッパーで挟み込んで細胞分離デバイスを作製した。
(2) Preparation of cell separation kit Non-woven fabric made of rayon and polyolefin as a cell separation material (weight per unit = 95 (g / m) on a cylindrical polycarbonate cylinder having an inner diameter of 2.2 cm and a length of 0.9 cm provided with an inlet / outlet 2 ), fiber diameter = 15 ± 9 μ) was punched out into a circular shape having a diameter of 2.2 cm, 36 sheets were compressed and laminated, and the upper and lower sides were sandwiched between stoppers to prepare a cell separation device.
次に、長さ6cm、直径2cm、塩化ビニル製の円筒状容器の上端に液流入口を、下端に液流出口を設け、チャンバーとした。該チャンバー液流出口と細胞分離デバイスの上端を回路でつなぎ、細胞分離キットとした。また、細胞分離デバイスの上端の回路を分岐させ、圧力計を設置した。 Next, a liquid inlet was provided at the upper end of a cylindrical container made of vinyl chloride having a length of 6 cm and a diameter of 2 cm, and a liquid outlet was provided at the lower end to form a chamber. The chamber liquid outlet and the upper end of the cell separation device were connected by a circuit to obtain a cell separation kit. Moreover, the circuit at the upper end of the cell separation device was branched and a pressure gauge was installed.
(3)性能評価
該チャンバーの液流入口に生理食塩液バッグをつないだ後、該チャンバー体積の5割を生理食塩液で満たすと共に、該チャンバーの液流出口から該細胞分離デバイスの内部も生理食塩液で満たした。生理食塩液バッグをはずした後、(1)で調製した液性油成分を含んだ骨髄液35mlを流速6ml/minで通液した。次に同方向から生理食塩液37mlを同流速にて流すことにより、赤血球等の洗浄除去を行った。骨髄液通液から洗浄液通液の間、デバイスの目詰りの指標として、デバイス入口側圧力を圧力計にて測定した。
(3) Performance evaluation After a physiological saline bag is connected to the liquid inlet of the chamber, 50% of the chamber volume is filled with physiological saline, and the inside of the cell separation device is also physiologically supplied from the liquid outlet of the chamber. Filled with saline solution. After removing the physiological saline bag, 35 ml of bone marrow fluid containing the liquid oil component prepared in (1) was passed at a flow rate of 6 ml / min. Next, 37 ml of physiological saline was flowed from the same direction at the same flow rate to wash away erythrocytes and the like. Between the bone marrow fluid passage and the washing fluid passage, the device inlet side pressure was measured with a pressure gauge as an index of clogging of the device.
その結果、デバイス入口側最大圧力は、106mmHgであった。次に、ウシ胎児血清10%を含む細胞培養液(GIBCO α−MEM培地)100mlを、骨髄液を流した方向と逆方向から勢い良く流すことにより、捕捉された細胞画分を回収した。 As a result, the device inlet side maximum pressure was 106 mmHg. Next, 100 ml of a cell culture solution (GIBCO α-MEM medium) containing 10% fetal calf serum was vigorously flowed in the direction opposite to the direction in which the bone marrow fluid was flowed, thereby collecting the captured cell fraction.
次に回収した細胞懸濁液の1/30量(骨髄液1ml処理相当分)にウシ胎児血清10%を含む細胞培養液(GIBCO α−MEM培地)を加えてポリスチレンシャーレ(直径10cm)に移し、37℃、5%CO2環境下で培養を行った。培養9日後にクリスタルバイオレット−メタノール液にてコロニーを染色し、出現したコロニー数を測定し、回収コロニー数とした。その結果、回収コロニー数=90個であった。
[比較例1]
細胞分離キットにチャンバーを設けないとした以外は、実施例1と同様の方法で、細胞分離デバイス入口側圧力、回収コロニー数を測定した。その結果、細胞分離デバイス入口側最大圧力=266mmHg、回収コロニー数=62個であった。
[実施例2]
(4)液性油成分を含んだ体液の調製 体重約30kgの家畜ブタに筋肉注射にてケタラール、セラクタールを注入し、その後ネンブタールを静脈注射にて追加することにより麻酔を行った。10mlのシリンジに約20IU/mlになるように予めヘパリンを入れておき、腸骨より15Gの骨髄穿刺針を用いて骨髄液を採取した。
Next, a cell culture solution (GIBCO α-MEM medium) containing fetal
[Comparative Example 1]
The cell separation device inlet pressure and the number of recovered colonies were measured in the same manner as in Example 1 except that the chamber was not provided in the cell separation kit. As a result, the maximum pressure on the cell separation device inlet side was 266 mmHg, and the number of recovered colonies was 62.
[Example 2]
(4) Preparation of body fluid containing liquid oil component Anesthesia was performed by injecting ketalal and cerectal by intramuscular injection into domestic pigs weighing approximately 30 kg, and then adding nembutal by intravenous injection. Heparin was put in advance in a 10 ml syringe so as to be about 20 IU / ml, and bone marrow fluid was collected from the ilium using a 15 G bone marrow puncture needle.
次に採取した骨髄液プールに、ヘパリンを最終濃度で50IU/mlになるように添加して、十分に転倒混和を行った。次に、液性油成分として、ウシ骨髄脂(太邦株式会社)とサラダ油(日清)を体積比1:1で混合した。この液性油成分を骨髄液:液性油成分=20:1となるように添加し、十分に転倒混和を行った。 Next, heparin was added to the collected bone marrow pool so as to have a final concentration of 50 IU / ml, and the mixture was thoroughly inverted. Next, bovine bone marrow fat (Taiko Co., Ltd.) and salad oil (Nisshin) were mixed at a volume ratio of 1: 1 as a liquid oil component. The liquid oil component was added so that the bone marrow fluid: liquid oil component = 20: 1, and the mixture was thoroughly inverted and mixed.
(5)細胞分離デバイスの作製
出入口を供えた内径2.2cm、長さ0.9cmの円筒状のポリカーボネイト製の筒に、細胞分離材としてレーヨンとポリオレフィンからなる不織布(目付け=95(g/m2)、繊維径=15±9μ)を直径2.2cmの円形に打抜いて36枚を圧縮・積層し、上下をストッパーで挟み込んで細胞分離デバイスを作製した。細胞分離デバイスの上端に回路を設けて分岐させ、圧力計を設置した。
(5) Production of cell separation device A cylindrical polycarbonate tube having an inner diameter of 2.2 cm and a length of 0.9 cm provided with an inlet / outlet, and a nonwoven fabric made of rayon and polyolefin as a cell separation material (mesh = 95 (g / m 2 ), fiber diameter = 15 ± 9 μ) was punched out into a circular shape having a diameter of 2.2 cm, 36 sheets were compressed and laminated, and the upper and lower sides were sandwiched between stoppers to prepare a cell separation device. A circuit was provided at the upper end of the cell separation device and branched, and a pressure gauge was installed.
(6)性能評価
該細胞分離フィルター体積の約20倍量の生理食塩液にて不織布の洗浄を行った。次に、(4)で調製した液性油成分を含んだ骨髄液31.5mlを50mLシリンジに入れ該分離デバイスの上端に設置し、鉛直にして10分間静置した後、流速6ml/minで通液した。この際、シリンジ内に油成分のみが残ったことを目視で確認した時点で通液を終えた。
(6) Performance evaluation The nonwoven fabric was washed with a physiological saline solution about 20 times the volume of the cell separation filter. Next, 31.5 ml of bone marrow fluid containing the liquid oil component prepared in (4) is placed in a 50 mL syringe and placed at the upper end of the separation device and left to stand vertically for 10 minutes, and then at a flow rate of 6 ml / min. The liquid was passed. At this time, liquid passing was finished when it was visually confirmed that only the oil component remained in the syringe.
次に、同方向から生理食塩液37mlを同流速にて流した。骨髄液通液から洗浄液通液の間、デバイスの目詰りの指標として、デバイス入口側圧力を圧力計にて測定した。その結果、デバイス入口側最大圧力=25mmHgであった。
[比較例2]
骨髄液通液前に静置しない以外は、実施例2と同様の方法で、細胞分離デバイス入口側圧力を測定した。その結果、細胞分離デバイス入口側最大圧力=118mmHgであった。
Next, 37 ml of physiological saline was flowed from the same direction at the same flow rate. Between the bone marrow fluid passage and the washing fluid passage, the device inlet side pressure was measured with a pressure gauge as an index of clogging of the device. As a result, the device inlet side maximum pressure was 25 mmHg.
[Comparative Example 2]
The cell separation device inlet side pressure was measured in the same manner as in Example 2 except that the sample was not allowed to stand before passing through the bone marrow fluid. As a result, the cell separation device inlet side maximum pressure was 118 mmHg.
以上の結果から、本発明の液性油成分除去方法、及び該除去方法を用いた細胞分離方法を実施することによって、細胞分離デバイスの入口側圧力の上昇が押さえられ、該分離デバイスの目詰りが抑制できることが示された。 From the above results, by carrying out the liquid oil component removal method of the present invention and the cell separation method using the removal method, an increase in the inlet pressure of the cell separation device is suppressed, and the separation device is clogged. It was shown that can be suppressed.
これによって、液性油成分を含んだ体液を該分離デバイスにて処理する場合においても、油成分の影響を受けることなく細胞分離の実施が可能となることが示された。 As a result, it was shown that cell separation can be performed without being affected by the oil component even when the body fluid containing the liquid oil component is processed by the separation device.
1. チャンバー
2. 細胞分離デバイス
3. 体液バッグ
4. 洗浄液バッグ
5. 流出液バッグ
6. 回収バッグ
7. 回収ポート
8、9、10. 三方活栓
11〜17. 回路
1.
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