JP2010538056A - マルチブロック共重合体 - Google Patents
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Abstract
マルチブロック共重合体は、少なくとも一つの親水性コラーゲン状ブロックおよび少なくとも一つのシルク状ブロックを有する。前記シルク状ブロックはアミノ酸配列（（ＧＡ）ｍＧＸ）ｎを有し、ここでＧはグリシンであり、Ａはアラニンであり、ｍおよびｎは少なくとも２である。Ｘはイオン化可能アミノ酸である。正電荷を帯びた前記イオン化可能アミノ酸は好ましくはヒスチジンであり、負電荷を帯びたものは好ましくはグルタミン酸である。
Description
本発明は、マルチブロック共重合体に関し、より詳細にはｐＨスイッチ可能マルチブロック共重合体に関し、さらに詳細にはトリブロック共重合体に関し、さらに詳細には超分子ナノファイバーを形成するトリブロック共重合体に関する。
非共有相互作用によって推進される複雑で明確に定義された（ｗｅｌｌ−ｄｅｆｉｎｅｄ）構造の自己集合および自然形成は、化学、材料科学およびナノテクノロジーにおいて重要なテーマになっている。合成構成要素、超分子構造およびナノ構造材料のインスピレーションの多くは生物学から来ている。例えば、超分子化学の最も成功した「主力商品」のうちの一つであるウレイドピリミジノン四重水素結合性基はヌクレオチド塩基によって着想を与えられた。天然タンパク質の内部でまたそれらの間で、多くの異なった非共有相互作用間での繊細な相互作用が、膨大な種類の明確に定義された分子構造および集合体を決定する。知られた非共有相互作用を有する自然発生のペプチド配列を用いて新しい超分子構造を作ることは魅力的と思われる。分子生物学における最近の発展のため、設計されたＤＮＡテンプレートの生物表現によって新規なペプチド共重合体を設計して作ることが現在実現可能である。ペプチド共重合体は、合成ポリマーと天然タンパク質との間の中間物として考えることができる。これらのペプチド共重合体のアミノ酸配列は、異なった複雑さを有するペプチド共重合体を作るのに調整することができる。ペプチド共重合体は、天然タンパク質の興味深いモデルとして考えることができる。これらはまた、完璧に定義された長さおよびモノマー配列として有用であることがわかった。
通常、ブロック共重合体は、ホモポリマーのブロックから作られる。しかし、天然タンパク質生産バイオマシナリーを用いて、種々のモノマー（アミノ酸）の配列からなるブロックを作ることができ、ブロックが示す機能、形および物理的挙動のレパートリーを増やすことができる。ブロックに用いられる多くのアミノ酸配列は、天然配列にその起源を持つ。特定の挙動を有する天然配列は、所望の長さのブロックを達成するように合理的に再設計され繰り返される。興味深い挙動を持つこのような天然配列の例は、絹タンパク質におけるグリシン、アラニンリッチな繰り返しおよびプロリンリッチなコラーゲン分子である。
アミノ酸配列（ＧＡＧＡＧＡＧＸ）ｎ（ここでＧはグリシン、Ａはアラニン、Ｘはグルタミン酸（Ｅ、ｐＨ約３−５より上でアニオン性または部分的にアニオン性）またはリジン（Ｋ、ｐＨ１０より下でカチオン性））を含むシルク状ブロックが文献で報告されている。ＸがＥであるシルク状ブロックは文献１に記載されている。同様に、ＸがＫであるシルク状ブロックは文献２に、Ｘが交互にＹ、Ｅ、ＨおよびＫであるシルク状ブロックは文献３、４に記載されている。グルタミン酸（Ｅ）を含むシルク状ブロックは負電荷を帯びており、酸性条件においてのみ超分子構造を形成する。一部のアプリケーションにおいては、中性のｐＨまたは塩基性条件で構造を形成することが必要でありうる。
中間ブロック（ｍｉｄ ｂｌｏｃｋ）（ＧＡＧＡＧＡＧＥ）ｎを持ち両側に多分散ＰＥＧ鎖が化学的に結合したポリマーが文献５、６に記載されている。中間ブロック（ＧＡＧＡＧＡＧＥ）ｎを持ち片側に多分散ＰＥＧ鎖が化学的に結合したポリマーの化学合成は、多くの処理ステップを伴い面倒でありうる。
ＥＰ１７９０６５７Ａ１はｐＨスイッチ可能な膜透過ペプチドを開示し、さらに、それらを含む複合体および膜融合の刺激剤としてのそれらの使用を開示する。ここで主張されている発明のペプチドは、治療上有効な物質を真核性細胞に導入するのに特に有用である。これは、式（Ａ）ｘ（Ｂ）ｙ（Ｃ）ｚ（Ｂ）ｙ（Ａ）ｘを有するアミノ酸配列を持つペプチドを説明し、ここで、Ａは本質的に親水性のアミノ酸、好ましくはグリシン（Ｇ）、リジン（Ｋ）またはアルギニン（Ｒ）であり、特に好ましくはヒスチジン（Ｈ）であり；Ｘは０または１であり；Ｂはヒスチジン（Ｈ）でありり；Ｙは１〜６の整数であり；またはＹは０〜５の整数であり；（Ａがヒスチジン（Ｈ）でありＸが係数１のときには）；Ｃは本質的に疎水性のアミノ酸であり、好ましくはバリン（Ｖ）、ロイシン（Ｌ）、イソロイシン（Ｉ）、プロリン（Ｐ）、グリシン（Ｇ）、システイン（Ｃ）、トリプトファン（Ｗ）、アラニン（Ａ）、フェニルアラニン（Ｆ）およびメチオニンからなる群から選択され；Ｚは７から３０の整数である。これらのペプチドは非常に小さく膜透過ペプチドとしてのみ用いられる。
本発明の目的は、制御された自己集合が可能であり好ましくは任意のｐＨで超分子構造を形成することのできる大きなマルチブロック共重合体を合成することである。
第１の側面によれば、本発明は、少なくとも一つの親水性コラーゲン状ブロックおよび少なくとも一つのシルク状ブロックを有するマルチブロック共重合体であって、前記シルク状ブロックはアミノ酸配列（（ＧＡ）ｍＧＸ）ｎを有し、ここでＧはグリシンであり、Ａはアラニンであり、ｍおよびｎは少なくとも２であり、Ｘはイオン化可能アミノ酸であり、前記イオン化可能アミノ酸は正電荷または負電荷を帯びるようにすることができる、共重合体に関する。
本発明の第２の側面によれば、ナノワイヤ構造が上記のマルチブロック共重合体を有する。
第３の側面によれば、上記共重合体は、ゲル、細胞培養、再生医療足場、ナノワイヤもしくはナノワイヤテンプレートを形成するために使用され、または、上記共重合体は、複合材料における材料として使用される。
本発明は、少なくとも一つの親水性コラーゲン状ブロックおよび少なくとも一つのシルク状ブロックを有するマルチブロック共重合体であって、前記シルク状ブロックはアミノ酸配列（（ＧＡ）ｍＧＸ）ｎを有し、ここでＧはグリシンであり、Ａはアラニンであり、ｍおよびｎは少なくとも２であり、Ｘはイオン化可能アミノ酸であり、前記イオン化可能アミノ酸は正電荷または負電荷を帯びるようにすることができる、共重合体に関する。ヒスチジンのプロトン化は酸性条件、すなわちｐＨ＜７で起こる。
ヒスチジンは低いｐＫａを有し、マイルドなｐＨで電荷を操作することを可能にする。さらに、分子中全体で同じ電荷を有する（ＧＡＧＡＧＡＧＨ）ｎのような分子は、電荷斥力のため分子を中性から酸性のｐＨで可溶にする。一種類の全ての分子の正確なアイデンティティ（等しい構造）および純粋なエナンチオマー構造は、特定の二次および三次構造へのより良くより速い折り畳み、さらには結晶性超分子構造への自己集合を可能にする。分子全体を通じての全モノマー配列は完全に定義されている。全モノマーは好ましくはＬ−ａ−アミノ酸である。全ての個別ブロックは、好ましくは各分子において完全に同じ構造および長さを有する。本発明の好ましい特徴として、サンプルは完全に単分散である。これは、ｐＨまたは温度等の外部刺激によってトリガされて（反転可能な態様で制御される）、特定の一時的に安定な構造、例えば極端なアスペクト比（５２０ｎｍ ｘ ５〜２０μｍ）を有する個別のナノファイバーが自然に自己集合することを可能にする（ボトムアップ構造形成）。
（（ＧＡ）ｍＧＸ）ｎブロック中に電荷を帯びたアミノ酸を有することは、ｐＨを用いてブロックを荷電および放電させることを可能にする。ｐＨを低下させると、可溶で負電荷を帯びたブロックは非荷電になり、その配座を変化させ、超分子構造に自己集合する。ｐＨを戻すことは、ブロックに電荷を帯びさせ、これらの構造を再び崩壊させる。正電荷を帯びたブロックの場合、反対のｐＨ変化で同じ効果が達成される。この効果は、ブロックの配座および形成された超分子構造をｐＨスイッチ可能にする。また、中程度のｐＨにおいて、反対の電荷を有するブロックは、互いに集合し、二成分超分子構造を形成する。コラーゲン状ブロックは、シルク状ブロックを互いからスクリーンして、これらが集合体に凝結する代わりに規定された小繊維を形成するようにする。
コラーゲンブロックはまた、小繊維を水溶液中で安定化させ、小繊維がゲルを形成することを可能にする。コラーゲン状ブロックは、好ましくは、高度に極性でありランダムにコイルを形成したブロックであって比較的少ない電荷を持つ。これらのブロックは、反対に荷電したブロックを混合したときに安定性を与える。コラーゲン状ブロックがマルチブロック共重合体の中間ブロックを形成するとき、コラーゲン状ブロックは小繊維間の架橋剤として働く。これらのマルチブロック共重合体は、非毒性、非アレルギー性、動物不使用であってよい。これらの分子の分解に際して毒性物質は形成されない。これらのブロック共重合体は大規模で比較的安価に作製可能である。
マルチブロック共重合体は好ましくはトリブロック共重合体である。トリブロック共重合体はシルク状ブロックおよびコラーゲン状ブロックを有する。コラーゲン状ブロックが外側ブロックを形成しシルク状ブロックが中間ブロックを形成するか、または、コラーゲン状ブロックが中間ブロックを形成しシルク状ブロックが外側ブロックを形成する。シルク状ブロックはグルタミン酸を有してよい。このときトリブロック共重合体はＳＥＣＣＳＥおよびＣＳＥＳＥＣとして表される。トリブロック共重合体はまた、ヒスチジンを有するシルク状ブロックを有してよく、このときＳＨＣＣＳＨおよびＣＳＨＳＨＣとして表される。ＳＥはＥ、グルタミン酸を有するシルク状ブロックを表し、ＳＨはＨ、ヒスチジンを有するシルク状ブロックを表す。Ｃはコラーゲン状ブロックを表す。
両端に正電荷を有するブロック共重合体（ＳＨＣＣＳＨ）は、好ましくは、中に負電荷を有するブロック共重合体（ＣＳＥＳＥＣ）と組み合わせられ、両端に負電荷を有するブロック共重合体（ＳＥＣＣＳＥ）は、好ましくは、中に正電荷を有するブロック共重合体（ＣＳＨＳＨＣ）と組み合わせられる。反対の構造を有する、これらの反対にチャージしたブロック共重合体を混合するとき、一方のブロック共重合体中の中間ブロックは、他方の反対に荷電したエンドブロックと高濃度で関連し、ブロックの部分的な重なりを強制し、したがってネットワーク形成に至る。ＳＥおよびＳＨの２つのブロックは別々の構成要素としては水溶性であるが、混合されると凝集する。これらはコラーゲン状ブロックにより混合の最中一時的に安定化される。ゲル形成は数分で進行し、良好な混合を可能にする。
アミノ酸配列（（ＧＡ）ｍＧＸ）ｎにおいては、ｍは好ましくは２〜１０の範囲にあり、ｎは好ましくは３〜１００の範囲にある。ｍが非常に大きいとき、凝集する傾向は増大する。電荷密度、すなわちストランドを離しておき可溶にしておく力は低下する。分子を可溶にし、さらにｐＨをスイッチ可能にするには、ＧＡ繰り返しの量と電荷の量とが釣り合っているべきである。さらに、ｎが非常に小さいとき、凝集／自己集合への駆動力は小さい。親水性の外側ブロックが支配的になり、フィブリルを引き離してＡおよびＢブロックの大きさが釣り合うようにする。ｍが２〜５の範囲にあり、ｎが２５〜６０の範囲にあることが好ましい。ｍが３に等しくｎが４８に等しいときよい釣り合いが取れることがわかったので、この組み合わせが最も好ましい。大きい分子を作り、これにより、形成されるフィブリルが深いエネルギー最小値を取ることが好ましい。反対の構造の分子ＡＢＢＡおよびＢＡＡＢが高濃度で組み合わせられると、ブロックは部分的に重なり合い架橋機構として働く可能性があり、これはマクロスコピックなファイバーを作ることを可能にしうる。マクロスコピックなファイバーを作るとき、長い分子（８０２アミノ酸）が短い分子よりも好ましい。共有結合は分子間相互作用よりも強い。大きな分子は物質の単位質量あたりより大量の共有結合を与える。共有結合に加えて、分子間絡み合いが長い分子では起こりえ、これは有利でありうる。長い分子が他の分子のファイバーマトリックスへの付着を分子当たりの分子間結合の量を短い分子と同じに保証すると、長い分子は、特に、ファイバーなどの配向した伸張した分子は、短い分子よりも、同じ量の分子当たり分子間結合でより長い距離に亘ることを可能にする。これは、より柔軟な（より脆さの低い）ファイバーにつながる可能性があり、このことは有利である。
コラーゲンブロックは好ましくは非集合性ブロックである。非集合性コラーゲンブロックは、広範囲のｐＨ、温度および浸透圧値下で変わらない挙動を有する。しかし、集合性コラーゲンも追加の物性のために用いられうる。なぜなら、これは、ファイバーの物性のために有利である、更なる絡み合いを加えることができるからである。当業者には、集合性コラーゲンブロックが用いられる場合特定のプロセス温度が必要になることは明らかであろう。
本発明の他の側面によれば、本発明は、上記のブロック共重合体を有するナノワイヤ構造に関する。これらのブロック共重合体は、可逆性超分子自己集合性ナノサイズテープを形成することができる。これらのテープは、極端なアスペクト比を有する。グルタミン酸を含むシルク状ブロックは、負電荷を帯びており、低いｐＨにおいてまたは正に荷電した（場合により伝導性の）高分子電解質と混合されたときにしかテープを形成することができない。したがって、高いｐＨでまたは負電荷を帯びた（場合により伝導性の）高分子電解質と混合されたときにテープを形成する正電荷を帯びた対応物が必要である。この正電荷を帯びた対応物も、中性ｐＨでＳＥとともに凝集して複合体コアッセベレートテープ（ｃｏｍｐｌｅｘ ｃｏ−ａｓｓｅｖｅｒａｔｅ ｔａｐｅｓ）を形成する。ＳＨはそのような正電荷を帯びた対応物を形成する。このようにして形成されたナノワイヤ構造は生体適合性であってよい。生体模倣アミノ酸配列の挿入は、生体適合性を生じさせる。例えば、コラーゲン状の中間ブロックはヒト細胞と結合することができる。マルチブロック共重合体は、非免疫原性であり、非アレルギー性である。なぜならシルクおよびコラーゲンは両方ともこの点に関し有益だからである。原理的には、増大または減少した数の細胞結合部位、増大した、減少したまたは「トリガ可能な」生分解性（酵素的切断／プロテアーゼ認識部位）生体活性配列（成長因子状、抗菌性等）等の他の構造が、シルク状ブロックのフィブリル形成能力に影響を与えることなく遺伝子工学によってランダムコイルコラーゲン状ブロックに容易に挿入されることができる。
本発明は、ここで以下の非制限的例により説明される。
例１：ＳＥブロックのためのテンプレートＤＮＡコーディングの作製
負電荷を帯びたシルク状配列（ＳＥブロック）をコードするための第１のテンプレートブロックが以下のようにコードされた。二重らせんＤＮＡは以下のオリゴ核酸のアニーリングにより作製された。
および
二重らせんＤＮＡは、通常存在するＢｓａＩ部位を削除されたＥｃｏＲＩ／ＸｈｏＩ消化ｐＭＴＬ２３ベクターに結紮された（ｌｉｇａｔｅｄ）（文献７）。挿入は、ＢｓａＩ／ＢａｎＩによる消化および方向性結紮（ｄｉｒｅｃｔｉｏｎａｌ ｌｉｇａｔｉｏｎ）で六量体サイズ（アミノ酸配列ＧＡＧＡＧＡＧＥの２４繰り返しをコードする）に延長された。
例２：ＳＨブロックのためのテンプレートＤＮＡコーディングの作製
正電荷を帯びたシルク状配列（ＳＨブロック）をコードするための第２のテンプレートブロックが同様に作製された。二重らせんＤＮＡは以下のオリゴ核酸のアニーリングにより作製された。
および
二重らせんＤＮＡは、上記のｐＭＴＬ２３ベクターのＥｃｏＲＩ／ＸｈｏＩ部位に結紮された。挿入は、ＢｓａＩ／ＢａｎＩおよび方向性結紮で六量体サイズ（アミノ酸配列ＧＡＧＡＧＡＧＥの２４繰り返しをコードする）に延長された。
例３：コラーゲン状ブロック（Ｃ−ブロック）のためのテンプレートＤＮＡコーディングの作製
親水性コラーゲン状配列（Ｃ−ブロック）をコードするための第３のテンプレートブロックが以下のように作製された。二重らせんアダプタはオリゴ核酸のアニーリングにより作製された。
および
次にアダプタは、上記の修正ｐＭＴＬ２３ベクターのＥｃｏＲＩ／ＸｈｏＩ部位に結紮された。生じたベクターはＤｒａＩＩＩで線形化され、脱リン酸化された。親水性コラーゲン状配列（Ｐ２）をコードする遺伝子は上述のベクターｐＭＴＬ２３−Ｐ２からＤｒａＩＩＩ／Ｖａｎ９１Ｉで切断されて（引用文献８）線形化ベクターに挿入され、Ｃ−ブロックテンプレートを生じた。
例４：ＳＨおよびＳＥのためのテンプレートＤＮＡコーディングのコラーゲンブロックのためのＤＮＡコーディングへの接続
ＢｓａＩおよびＢａｎＩを用いて、３つのテンプレートブロックの（最初にジブロックＳＥＣ、ＣＳＥ、ＳＨＣおよびＣＳＨへの、次にテトラブロックＳＥＣＣＳＥ、ＣＳＥＳＥＣ、ＳＨＣＣＳＨおよびＣＳＨＳＨＣへの）消化および方向性結紮がなされた。最後に、テトラブロックはＥｃｏＲＩおよびＮｏｔＩを用いて発現ベクターｐＰＩＣ９（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）にクローニングされた。文献９に記載されたように、生じたベクターはＳａｌＩで線形化され、エレクトロポレーションによるＰｉｃｈｉａｐａｓｔｏｒｉｓ ＧＳ１１５の転換の際にｈｉｓ４遺伝子座での同種統合を促進した。
例５：ポリマー製造および精製
２．５リットルＢｉｏｆｌｏ ３０００発酵槽（Ｎｅｗ Ｂｒｕｎｓｗｉｃｋ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）中のＰｉｃｈｉａ ｐａｓｔｏｒｉｓのフェッドバッチ発酵で、炭素源としてグリセロールから０．２体積％メタノールに切り替えることによりポリマー製造（文献１０）が引き起こされた。ｐＨは、負電荷を帯びたポリマーについてはｐＨ５に維持され、正電荷を帯びたポリマーについてはｐＨ３に維持された。ポリマーが製造され発酵媒体中に分泌され、２０００ｇ、４℃、１５分の遠心分離（ＳＬＡ１５００ロータ付きＳｏｒｖａｌ遠心分離機中）により細胞から分離され、これに上澄みの精密ろ過が続いた。ポリマーは、硫酸アンモニウムを最終濃度１６４（ｇ／ｋｇ）（３０％飽和）まで加え、２１℃で３０分間インキュベートし、８０００ｇ、４℃で２０分間遠心分離（Ｓｏｒｖａｌ、ＳＬＡ１５００）することにより発酵上澄みから選択的に沈殿した。負電荷を帯びたポリマーのペレットは１０ｍＭアンモニア（ｐＨ９）に溶解された一方で、正電荷を帯びたポリマーのペレットは１０ｍＭギ酸に溶解された。ポリマーペレットは元の体積の２０％に溶解され、沈殿工程は一回繰り返された。再懸濁されたポリマーは、最終濃度８０％（体積）までアセトンを加えることにより選択的に沈殿させられた。再懸濁およびアセトン沈殿はもう一回繰り返され、その後ペレットは水に再懸濁され保存のためフリーズドライされた。塩を含むフリーズドライプロダクトは、それぞれが１００ｍｌの５０ｍＭアンモニア中に再懸濁され、４Ｌの１０ｍＭアンモニアに対し４回１８時間透析され、その後ポリマーは再度フリーズドライされ実験に用いられた。
文献１． Ｋｒｅｊｃｈｉ， Ｍ．Ｔ． ｅｔ ａｌ． Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｓｅｑｕｅｎｃｅ Ｃｏｎｔｒｏｌ Ｏｆ Ｂｅｔａ−Ｓｈｅｅｔ Ａｓｓｅｍｂｌｙ Ｉｎ Ｍａｃｒｏｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｒｙｓｔａｌｓ ｏｆ Ｐｅｒｉｏｄｉｃ Ｐｏｌｙｐｅｐｔｉｄｅｓ． Ｓｃｉｅｎｃｅ ２６５，１４２７−１４３２（１９９４）．（周期的ポリペプチドの高分子結晶中のベータシートアセンブリの化学的配列制御）
文献２． Ｃａｎｔｏｒ， ＥＪ． ｅｔ ａｌ． Ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ａｍｉｎｏ ａｃｉｄ ｓｉｄｅ−ｃｈａｉｎ ｖｏｌｕｍｅ ｏｎ ｃｈａｉｎ ｐａｃｋｉｎｇ ｉｎ ｇｅｎｅｔｉｃａｌｌｙ ｅｎｇｉｎｅｅｒｅｄ ｐｅｒｉｏｄｉｃ ｐｏｌｙｐｅｐｔｉｄｅｓ． Ｊｏｕｒｎａｌ Ｏｆ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ １２２，２１７−２２５（１９９７）．（遺伝子工学的周期的ポリペプチドにおける鎖パッキングへのアミノ酸側鎖体積の影響）
文献３． Ｔｏｐｉｌｉｎａ，Ｎ．Ｉ． ｅｔ ａｌ． Ｂｉｌａｙｅｒ ｆｉｂｒｉｌ ｆｏｒｍａｔｉｏｎ ｂｙ ｇｅｎｅｔｉｃａｌｌｙ ｅｎｇｉｎｅｅｒｅｄ ｐｏｌｙｐｅｐｔｉｄｅｓ：Ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎ ａｎｄ ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ．Ｂｉｏｍａｃｒｏｍｏｌｅｃｕｌｅｓ ７，１１０４−１１１１（２００６）．（遺伝子工学的ポリペプチドによる二層フィブリル形成）
文献４． Ｈｉｇａｓｈｉｙａ，Ｓ．， Ｔｏｐｉｌｉｎａ，Ｎ．Ｉ．， Ｎｇｏ，Ｓ．Ｃ．， Ｚａｇｏｒｅｖｓｋｉｉ，Ｄ．＆Ｗｅｌｃｈ，Ｊ．Ｔ． Ｄｅｓｉｇｎ ａｎｄ ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｂｅｔａ−ｓｈｅｅｔ ｆｏｒｍｉｎｇ ｒｅｐｅｔｉｔｉｖｅ ａｎｄ ｂｌｏｃｋ−ｃｏｐｏｌｙｍｅｒｉｚｅｄ ｐｏｌｙｐｅｐｔｉｄｅｓ． Ｂｉｏｍａｃｒｏｍｏｌｅｃｕｌｅｓ ８，１４８７−１４９７（２００７）．（反復的・ブロック共重合ポリペプチドを形成するベータシートの設計および作製）
文献５． Ｓｍｅｅｎｋ，Ｊ．Ｍ． ｅｔ ａｌ． Ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄ ａｓｓｅｍｂｌｙ ｏｆ ｍａｃｒｏｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｂｅｔａ−ｓｈｅｅｔ ｆｉｂｒｉｌｓ． Ａｎｇｅｗａｎｄｔｅ Ｃｈｅｍｉｅ−Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｅｄｉｔｉｏｎ ４４，１９６８−１９７１（２００５）．（高分子ベータシートフィブリルの制御された集合）
文献６．Ｓｍｅｅｎｋ，Ｊ．Ｍ．ｅｔ ａｌ．Ｆｉｂｒｉｌ ｆｏｒｍａｔｉｏｎ ｂｙ ｔｒｉｂｌｏｃｋ ｃｏｐｏｌｙｍｅｒｓ ｏｆ ｓｉｌｋｌｉｋｅ ｂｅｔａ−ｓｈｅｅｔ ｐｏｌｙｐｅｐｔｉｄｅｓ ａｎｄ ｐｏｌｙ（ｅｔｈｙｌｅｎｅ ｇｌｙｃｏｌ）．Ｍａｃｒｏｍｏｌｅｃｕｌｅｓ ３９，２９８９−２９９７（２００６）．（シルク状ベータシートポリペプチドおよびポリエチレングリコールのトリブロック共重合体によるフィブリル形成）
文献７． Ｃｈａｍｂｅｒｓ，Ｓ．Ｐ．， Ｐｒｉｏｒ，Ｓ．Ｅ．， Ｂａｒｓｔｏｗ，Ｄ．Ａ．＆Ｍｉｎｔｏｎ，Ｎ．Ｐ． Ｔｈｅ Ｐｍｔｌ Ｎｉｃ−Ｃｌｏｎｉｎｇ Ｖｅｃｔｏｒｓ．１．Ｉｍｐｒｏｖｅｄ Ｐｕｃ Ｐｏｌｙｌｉｎｋｅｒ Ｒｅｇｉｏｎｓ Ｔｏ Ｆａｃｉｌｉｔａｔｅ Ｔｈｅ Ｕｓｅ Ｏｆ Ｓｏｎｉｃａｔｅｄ Ｄｎａ Ｆｏｒ Ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ Ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ． Ｇｅｎｅ ６８，１３９−１４９（１９８８）．（ＰｍｔｌＮｉｃクローニングベクター１核酸配列のための超音波分解されたＤＮＡの使用を促進するための改善されたＰｕｃポリリンカー領域）
文献８． Ｗｅｒｔｅｎ，Ｍ．Ｗ．Ｔ．， Ｗｉｓｓｅｌｉｎｋ，Ｗ．Ｈ．， ｖａｎ ｄｅｎ Ｂｏｓｃｈ，Ｔ．Ｊ．Ｊ．， ｄｅＢｒｕｉｎ，Ｅ．Ｃ．＆ｄｅＷｏｌｆ，Ｆ．Ａ． Ｓｅｃｒｅｔｅｄ ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ ｏｆ ａｃｕｓｔｏｍ−ｄｅｓｉｇｎｅｄ， ｈｉｇｈｌｙ ｈｙｄｒｏｐｈｉｌｉｃ ｇｅｌａｔｉｎ ｉｎ Ｐｉｃｈｉａ ｐａｓｔｏｒｉｓ． Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ １４，４４７−４５４（２００１）．（Ｐｉｃｈｉａ ｐａｓｔｏｒｉｓ中のカスタムデザインされた高度に親水性のゼラチンの分泌製造）
文献９． Ｗｅｒｔｅｎ，Ｍ．Ｗ．Ｔ．， Ｖａｎ ｄｅｎ Ｂｏｓｃｈ，Ｔ．Ｊ．， Ｗｉｎｄ，Ｒ．Ｄ．， Ｍｏｏｉｂｒｏｅｋ，Ｈ．＆ＤｅＷｏｌｆ，Ｆ．Ａ． Ｈｉｇｈ−ｙｉｅｌｄ ｓｅｃｒｅｔｉｏｎ ｏｆ ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ ｇｅｌａｔｉｎｓ ｂｙ Ｐｉｃｈｉａ ｐａｓｔｏｒｉｓ． Ｙｅａｓｔ １５，１０８７−１０９６（１９９９）．（Ｐｉｃｈｉａ ｐａｓｔｏｒｉｓによる組み換え型ゼラチンの高収率分泌）
文献１０．Ｗｅｒｔｅｎ，Ｍ．Ｗ．Ｔ．＆ｄｅ Ｗｏｌｆ，Ｆ．Ａ． Ｒｅｄｕｃｅｄ ｐｒｏｔｅｏｌｙｓｉｓ ｏｆ ｓｅｃｒｅｔｅｄ ｇｅｌａｔｉｎ ａｎｄ Ｙｐｓｌ−ｍｅｄｉａｔｅｄ ａｌｐｈａ−ｆａｃｔｏｒ ｌｅａｄｅｒ ｐｒｏｃｅｓｓｉｎｇ ｉｎ ａ Ｐｉｃｈｉａ ｐａｓｔｏｒｉｓ ｋｅｘ２ ｄｉｓｒｕｐｔａｎｔ． Ａｐｐｌｉｅｄ Ａｎｄ Ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ ７１，２３１０−２３１７（２００５）．（分泌ゼラチンの低減されたタンパク質分解およびＰｉｃｈｉａｐａｓｔｏｒｉｓｋｅｘ２ディスラプタントにおけるＹｐｓｌ仲介アルファファクターリーダ処理）
文献２． Ｃａｎｔｏｒ， ＥＪ． ｅｔ ａｌ． Ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ａｍｉｎｏ ａｃｉｄ ｓｉｄｅ−ｃｈａｉｎ ｖｏｌｕｍｅ ｏｎ ｃｈａｉｎ ｐａｃｋｉｎｇ ｉｎ ｇｅｎｅｔｉｃａｌｌｙ ｅｎｇｉｎｅｅｒｅｄ ｐｅｒｉｏｄｉｃ ｐｏｌｙｐｅｐｔｉｄｅｓ． Ｊｏｕｒｎａｌ Ｏｆ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ １２２，２１７−２２５（１９９７）．（遺伝子工学的周期的ポリペプチドにおける鎖パッキングへのアミノ酸側鎖体積の影響）
文献３． Ｔｏｐｉｌｉｎａ，Ｎ．Ｉ． ｅｔ ａｌ． Ｂｉｌａｙｅｒ ｆｉｂｒｉｌ ｆｏｒｍａｔｉｏｎ ｂｙ ｇｅｎｅｔｉｃａｌｌｙ ｅｎｇｉｎｅｅｒｅｄ ｐｏｌｙｐｅｐｔｉｄｅｓ：Ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎ ａｎｄ ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ．Ｂｉｏｍａｃｒｏｍｏｌｅｃｕｌｅｓ ７，１１０４−１１１１（２００６）．（遺伝子工学的ポリペプチドによる二層フィブリル形成）
文献４． Ｈｉｇａｓｈｉｙａ，Ｓ．， Ｔｏｐｉｌｉｎａ，Ｎ．Ｉ．， Ｎｇｏ，Ｓ．Ｃ．， Ｚａｇｏｒｅｖｓｋｉｉ，Ｄ．＆Ｗｅｌｃｈ，Ｊ．Ｔ． Ｄｅｓｉｇｎ ａｎｄ ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｂｅｔａ−ｓｈｅｅｔ ｆｏｒｍｉｎｇ ｒｅｐｅｔｉｔｉｖｅ ａｎｄ ｂｌｏｃｋ−ｃｏｐｏｌｙｍｅｒｉｚｅｄ ｐｏｌｙｐｅｐｔｉｄｅｓ． Ｂｉｏｍａｃｒｏｍｏｌｅｃｕｌｅｓ ８，１４８７−１４９７（２００７）．（反復的・ブロック共重合ポリペプチドを形成するベータシートの設計および作製）
文献５． Ｓｍｅｅｎｋ，Ｊ．Ｍ． ｅｔ ａｌ． Ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄ ａｓｓｅｍｂｌｙ ｏｆ ｍａｃｒｏｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｂｅｔａ−ｓｈｅｅｔ ｆｉｂｒｉｌｓ． Ａｎｇｅｗａｎｄｔｅ Ｃｈｅｍｉｅ−Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｅｄｉｔｉｏｎ ４４，１９６８−１９７１（２００５）．（高分子ベータシートフィブリルの制御された集合）
文献６．Ｓｍｅｅｎｋ，Ｊ．Ｍ．ｅｔ ａｌ．Ｆｉｂｒｉｌ ｆｏｒｍａｔｉｏｎ ｂｙ ｔｒｉｂｌｏｃｋ ｃｏｐｏｌｙｍｅｒｓ ｏｆ ｓｉｌｋｌｉｋｅ ｂｅｔａ−ｓｈｅｅｔ ｐｏｌｙｐｅｐｔｉｄｅｓ ａｎｄ ｐｏｌｙ（ｅｔｈｙｌｅｎｅ ｇｌｙｃｏｌ）．Ｍａｃｒｏｍｏｌｅｃｕｌｅｓ ３９，２９８９−２９９７（２００６）．（シルク状ベータシートポリペプチドおよびポリエチレングリコールのトリブロック共重合体によるフィブリル形成）
文献７． Ｃｈａｍｂｅｒｓ，Ｓ．Ｐ．， Ｐｒｉｏｒ，Ｓ．Ｅ．， Ｂａｒｓｔｏｗ，Ｄ．Ａ．＆Ｍｉｎｔｏｎ，Ｎ．Ｐ． Ｔｈｅ Ｐｍｔｌ Ｎｉｃ−Ｃｌｏｎｉｎｇ Ｖｅｃｔｏｒｓ．１．Ｉｍｐｒｏｖｅｄ Ｐｕｃ Ｐｏｌｙｌｉｎｋｅｒ Ｒｅｇｉｏｎｓ Ｔｏ Ｆａｃｉｌｉｔａｔｅ Ｔｈｅ Ｕｓｅ Ｏｆ Ｓｏｎｉｃａｔｅｄ Ｄｎａ Ｆｏｒ Ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ Ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ． Ｇｅｎｅ ６８，１３９−１４９（１９８８）．（ＰｍｔｌＮｉｃクローニングベクター１核酸配列のための超音波分解されたＤＮＡの使用を促進するための改善されたＰｕｃポリリンカー領域）
文献８． Ｗｅｒｔｅｎ，Ｍ．Ｗ．Ｔ．， Ｗｉｓｓｅｌｉｎｋ，Ｗ．Ｈ．， ｖａｎ ｄｅｎ Ｂｏｓｃｈ，Ｔ．Ｊ．Ｊ．， ｄｅＢｒｕｉｎ，Ｅ．Ｃ．＆ｄｅＷｏｌｆ，Ｆ．Ａ． Ｓｅｃｒｅｔｅｄ ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ ｏｆ ａｃｕｓｔｏｍ−ｄｅｓｉｇｎｅｄ， ｈｉｇｈｌｙ ｈｙｄｒｏｐｈｉｌｉｃ ｇｅｌａｔｉｎ ｉｎ Ｐｉｃｈｉａ ｐａｓｔｏｒｉｓ． Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ １４，４４７−４５４（２００１）．（Ｐｉｃｈｉａ ｐａｓｔｏｒｉｓ中のカスタムデザインされた高度に親水性のゼラチンの分泌製造）
文献９． Ｗｅｒｔｅｎ，Ｍ．Ｗ．Ｔ．， Ｖａｎ ｄｅｎ Ｂｏｓｃｈ，Ｔ．Ｊ．， Ｗｉｎｄ，Ｒ．Ｄ．， Ｍｏｏｉｂｒｏｅｋ，Ｈ．＆ＤｅＷｏｌｆ，Ｆ．Ａ． Ｈｉｇｈ−ｙｉｅｌｄ ｓｅｃｒｅｔｉｏｎ ｏｆ ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ ｇｅｌａｔｉｎｓ ｂｙ Ｐｉｃｈｉａ ｐａｓｔｏｒｉｓ． Ｙｅａｓｔ １５，１０８７−１０９６（１９９９）．（Ｐｉｃｈｉａ ｐａｓｔｏｒｉｓによる組み換え型ゼラチンの高収率分泌）
文献１０．Ｗｅｒｔｅｎ，Ｍ．Ｗ．Ｔ．＆ｄｅ Ｗｏｌｆ，Ｆ．Ａ． Ｒｅｄｕｃｅｄ ｐｒｏｔｅｏｌｙｓｉｓ ｏｆ ｓｅｃｒｅｔｅｄ ｇｅｌａｔｉｎ ａｎｄ Ｙｐｓｌ−ｍｅｄｉａｔｅｄ ａｌｐｈａ−ｆａｃｔｏｒ ｌｅａｄｅｒ ｐｒｏｃｅｓｓｉｎｇ ｉｎ ａ Ｐｉｃｈｉａ ｐａｓｔｏｒｉｓ ｋｅｘ２ ｄｉｓｒｕｐｔａｎｔ． Ａｐｐｌｉｅｄ Ａｎｄ Ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ ７１，２３１０−２３１７（２００５）．（分泌ゼラチンの低減されたタンパク質分解およびＰｉｃｈｉａｐａｓｔｏｒｉｓｋｅｘ２ディスラプタントにおけるＹｐｓｌ仲介アルファファクターリーダ処理）
Claims (12)
- 少なくとも一つの親水性コラーゲン状ブロックおよび少なくとも一つのシルク状ブロックを有するマルチブロック共重合体であって、前記シルク状ブロックはアミノ酸配列（（ＧＡ）ｍＧＸ）ｎを有し、ここでＧはグリシンであり、Ａはアラニンであり、ｍおよびｎは少なくとも２であり、Ｘはイオン化可能アミノ酸であり、前記イオン化可能アミノ酸は正電荷または負電荷を帯びるようにすることができる、共重合体。
- 請求項１に記載の共重合体において、前記イオン化可能アミノ酸は正電荷を帯びヒスチジンである、共重合体。
- 請求項１に記載の共重合体において、前記イオン化可能アミノ酸は負電荷を帯びグルタミン酸である、共重合体。
- トリブロック共重合体である請求項１に記載の共重合体。
- 請求項１ないし４の何れか一項に記載の共重合体において、前記コラーゲン状ブロックは外側ブロックを形成し、前記シルク状ブロックは中間ブロックを形成する、共重合体。
- 請求項１ないし４の何れか一項に記載の共重合体において、前記コラーゲン状ブロックは中間ブロックを形成し、前記シルク状ブロックは前記外側ブロックを形成する、共重合体。
- 請求項１ないし４の何れか一項に記載の共重合体において、ｍは好ましくは２〜１０の範囲にある、共重合体。
- 請求項１ないし４の何れか一項に記載の共重合体において、ｎは好ましくは３〜１００の範囲にある、共重合体。
- 請求項１ないし４の何れか一項に記載の共重合体において、ｍおよびｎは好ましくは２〜１０および３〜１００の範囲にある、共重合体。
- 請求項１ないし４の何れか一項に記載の共重合体において、前記コラーゲン状ブロックは非集合性ブロックである、共重合体。
- 請求項１ないし１０の何れか一項に記載の共重合体を有するナノワイヤ構造。
- ゲル、細胞培養、再生医療足場、ナノワイヤもしくはナノワイヤテンプレートを形成するためのまたは複合材料における材料としての請求項１ないし１０の何れか一項に記載のマルチブロック共重合体の使用。
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