JP2010503385A

JP2010503385A - 哺乳類卵母細胞発達適格性の顆粒膜マーカーおよびその使用

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Publication number: JP2010503385A
Application number: JP2009527663A
Authority: JP
Inventors: マルク−アンドレ・シラール; メラニー・アメル; クロード・ロベール
Original assignee: Universite Laval
Current assignee: Universite Laval
Priority date: 2006-09-15
Filing date: 2007-09-14
Publication date: 2010-02-04
Also published as: CA2666819A1; WO2008031226A1; EP2064343A4; EP2064343A1; US20120164636A1; US20100021898A1

Abstract

本発明は子宮着床および生個体への発達のための卵母細胞の応答能に関連する。本発明は、より具体的には、卵母細胞吸引が補助生殖技術において行われるので、卵母細胞吸引の期間中に卵母細胞と一緒に採取される顆粒膜細胞において検出および測定されるマーカーに関連する。マーカーには、ＲＴ−ＰＣＲを使用して検出および測定されるチトクロームＰ４５０アロマターゼ（ＣＹＰ１９Ａ１）、細胞分裂サイクル４２（ＣＤＣ４２）、３−β−ヒドロキシステロイドデヒドロゲナーゼ１（３βＨＳＤ１）、セルピンペプチダーゼ阻害剤クレードＥメンバー２（ＳＥＲＰＩＮＥ２）およびアドレノドキシン（ＡＤＸ）が含まれる。

Description

本発明は、健康な胎児および生産児に発達するための哺乳類卵母細胞適格性の顆粒膜マーカー、ならびに、その使用に関連する。

卵母細胞の質は、数多くの動物研究およびヒト研究において示されるように、卵母細胞の起原である卵胞に大きく依存する。卵巣刺激および排卵誘導に基づくＩＶＦ手法の期間中に、不均一な卵胞のコホート集団が、それらの状態に差があるにもかかわらず、発達および排卵を行わせるために漸加される。このことは、補助生殖のために回収される卵母細胞の成熟化プロセスにおける非同時性および質における不均一性をもたらす。卵母細胞の発達応答能に関連する要因を決定するためには、また、そのような要因がどのように卵母細胞の質に正の影響を及ぼすかを理解するためには、卵母細胞の質が異なる様々な卵胞をタンパク質レベルおよび遺伝子レベルでこれらの要因について分析しなければならない。

以前の研究はこれまで、体外受精の成功を予測するために胚の外観（形態学）に集中する傾向があった。胚の質を精査するための他の手段は胚の生存能を妨げることがあり、このことは、どの胚を母体に移すかという、数個の胚を区別するための客観的判断基準がないことをもたらしている。近年では、動物モデルおよびヒトの両方から得られる様々な科学的証拠は、卵母細胞の質、従って、移植後に着床するその能力が、卵母細胞が取り出される前の卵巣において優勢である卵胞の状態に依存するという仮説を支持し続けている。これは、女性患者から採取された生物学的サンプルにおける標的化合物のレベルを最初に決定し、その後、決定されたその化合物のレベルから、妊娠をＩＶＦによって被験者において確立する確率を予測することを伴った、ＩＶＦの結果を予測する方法に至っている。（同じ個体から得られる）異なる卵胞に由来する細胞のプールについて測定される活性は必ずしも常に、個々の卵胞における活性を真に反映しているとは限らず、このことは、１つまたは複数の卵胞が、妊娠を確立する可能性に影響を及ぼす化合物を有することを示唆している。

どの卵母細胞が、胚になるために適格であるかを特定することにおける大きな問題の１つが、そのような目的のために設計された手法はどれも、卵母細胞の質または生存能に悪影響を及ぼしてはならないということである。

米国特許出願公開第２００６０１４７９００号は、卵丘特異的なマーカー（例えば、ペントラキシン３）、および、卵母細胞の発達能を明らかにするためにこの卵丘特異的なマーカーを使用する方法を記載する。限られた数のマーカーが記載される。可溶性ペントラキシン３の上昇したレベルが卵胞液において見出され得ること、ペントラキシン３の卵胞液中の濃度は卵母細胞の質のマーカーとして使用できないこと、および、ペントラキシン３の血漿中の濃度が卵巣の過刺激によって影響されないことがこの技術分野では示される（Ｇａｒｌａｎｄａ他、Ｊ．Ｓｏｃ．Ｇｙｎｅｃｌｏ．Ｉｎｖｅｓｔｉｇ．、２００６：１３：２２６〜２３１）。同様にまた、ペントラキシン３の遺伝子発現が顆粒膜細胞において検出されなかった（Ｍａｔｚｕｋ他、２００４、ＨｕｍａｎＲｅｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ、１９：２８６９〜２８７４）。

この技術分野の状態を考慮した場合、生個体における子宮着床および発達のための卵母細胞の適格性を明らかにするためのマーカーが依然として求められている。

米国特許出願公開第２００６０１４７９００号

Ｇａｒｌａｎｄａ他、Ｊ．Ｓｏｃ．Ｇｙｎｅｃｌｏ．Ｉｎｖｅｓｔｉｇ．、２００６：１３：２２６〜２３１Ｍａｔｚｕｋ他、２００４、ＨｕｍａｎＲｅｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ、１９：２８６９〜２８７４ＲｏｂｅｒｔＣ他（２００１）、ＢｉｏｌＲｅｐｒｏｄ６４、１８１２〜２０ＦａｉｒＴ（２００３）、ＡｎｉｍＲｅｐｒｏｄＳｃｉ、７８、２０３〜１６ＥｓｐｅｙＬＬ、ＲｉｃｈａｒｄｓＪＳ（２００２）、ＢｉｏｌＲｅｐｒｏｄ、６７、１６６２〜７０

本発明の１つの実施形態によれば、患者から得られた卵母細胞の、体外受精（ＩＶＦ）、子宮着床および／または出生時の生個体への発達のための応答能を明らかにするための顆粒膜細胞マーカーであって、ＣＹＰ１９Ａ１、ＣＤＣ４２、ＤＰＹＳＬ３、３βＨＳＤ１、ＥＲＥＧ、ＳＥＲＰＩＮＥ２、ＳＣＡＲＢ１、ＩＮＨＢＡ、ＳＰＲＹ２、ＢＡＣＨ２、ＩＬＳＴ６、ＡＤＸ、ＴＮＦＡＩＰ６、ＳＥＲＰＩＮＡ３、ＥＧＲ１、ＮＲＰ１、ＲＧＳ２およびＰＧＫ１、それらの全長ｃＤＮＡクローンならびにそれらの組合せから選択される少なくとも１つのポリヌクレオチドまたはポリペプチドを含む顆粒膜細胞マーカーが提供される。

卵母細胞は哺乳類に由来し得る。卵母細胞および顆粒膜細胞マーカーは１個の卵胞に由来し得る。ポリヌクレオチドはＤＮＡ配列またはＲＮＡ配列であり得る。

本発明の別の実施形態によれば、患者から得られた卵母細胞の、ＩＶＦ、子宮着床および／または出生時の生個体への発達のための応答能を明らかにするための方法が提供され、この方法は、前記患者から得られた顆粒膜細胞に由来する顆粒膜細胞マーカーの発現レベルを明らかにすることを含み、前記マーカーが、ＣＹＰ１９Ａ１、ＣＤＣ４２、ＤＰＹＳＬ３、３βＨＳＤ１、ＥＲＥＧ、ＳＥＲＰＩＮＥ２、ＳＣＡＲＢ１、ＩＮＨＢＡ、ＳＰＲＹ２、ＢＡＣＨ２、ＩＬＳＴ６、ＡＤＸ、ＴＮＦＡＩＰ６、ＳＥＲＰＩＮＡ３、ＥＧＲ１、ＮＲＰ１、ＲＧＳ２およびＰＧＫ１、それらの全長ｃＤＮＡクローンならびにそれらの組合せから選択される少なくとも１つのポリヌクレオチドまたはポリペプチドを含み、卵母細胞の顆粒膜細胞に由来する前記マーカーの発現レベルが前記卵胞に由来するコントロール顆粒膜細胞の前記マーカーの発現レベルよりも高いことにより、子宮着床および出生時の生個体への発達に対する前記卵母細胞の適格性が表される。

患者は哺乳類であり得る。卵母細胞および前記顆粒膜細胞は１個の卵胞に由来し得る。

本発明の方法はさらに、発現レベルをコントロール顆粒膜細胞の発現レベルと比較すること、および、有意な変化を比率または絶対量を使用して示し、卵母細胞の応答能を反映させることを含むことができる。

本発明の方法によれば、顆粒膜細胞は排卵前の卵胞液の吸引によって得ることができる。

本発明の方法によれば、ＡＤＸ、ＣＹＰ１９Ａ１、ＣＤＣ４２、ＳＥＲＰＩＮＥ２および３βＨＳＤ１の発現レベルが明らかにされる。

本発明の方法によれば、ＣＹＰ１９Ａ１、ＣＤＣ４２、ＤＰＹＳＬ３、３βＨＳＤ１、ＥＲＥＧ、ＳＥＲＰＩＮＥ２、ＳＣＡＲＢ１、ＩＮＨＢＡ、ＳＰＲＹ２、ＢＡＣＨ２、ＩＬＳＴ６、ＡＤＸ、ＴＮＦＡＩＰ６、ＳＥＲＰＩＮＡ３、ＥＧＲ１、ＮＲＰ１、ＲＧＳ２およびＰＧＫ１から選択される少なくとも２つのマーカーの発現レベルが明らかにされる。

本発明の方法によれば、ＣＹＰ１９Ａ１、ＣＤＣ４２、ＤＰＹＳＬ３、３βＨＳＤ１、ＥＲＥＧ、ＳＥＲＰＩＮＥ２、ＳＣＡＲＢ１、ＩＮＨＢＡ、ＳＰＲＹ２、ＢＡＣＨ２、ＩＬＳＴ６、ＡＤＸ、ＴＮＦＡＩＰ６、ＳＥＲＰＩＮＡ３、ＥＧＲ１、ＮＲＰ１、ＲＧＳ２およびＰＧＫ１から選択される少なくとも３つのマーカーの発現レベルが明らかにされる。

本発明の別の実施形態によれば、卵母細胞のＩＶＦ、子宮着床または出生時の生個体への発達のための応答能に対して刺激性または阻害性である化合物をスクリーニングするための方法が提供され、この方法は、下記の工程：
ａ）顆粒膜細胞を、卵母細胞のＩＶＦ、子宮着床または出生時の生個体への発達のための応答能を刺激または阻害する活性についてスクリーニングすべき化合物により処理する工程；
ｂ）前記顆粒膜細胞における請求項１に定義される少なくとも１つのマーカーの発現レベルを明らかにする工程；
ｃ）工程ｂ）で測定された発現レベルを、コントロール顆粒膜細胞の発現レベルと比較し、卵母細胞の応答能を反映させる工程
を含む。

コントロール顆粒膜細胞におけるマーカーの発現レベルで割った、処理された顆粒膜細胞におけるマーカーの発現レベルの比率が１．５よりも大きいことにより、前記マーカーの発現における前記化合物の刺激性作用が示され、また、前記比率が１未満であることにより、阻害性作用が示される。

処理がインビトロまたはインビボで行われる。
本発明の目的のために、下記の用語が下記において定義される。

用語「患者」は、得られた卵母細胞の応答能が本発明に従って検査され、処置が適用され得る動物または哺乳類（これらには、とりわけ、ヒト、霊長類、ウシ、ブタ、ヤギ、齧歯類、有蹄類、脊椎動物、ウマ、ネコ、鳥類、反芻動物が含まれるが、これらに限定されない）を意味することが意図される。患者の用語は、同じことを意味することによって本明細書中では交換可能に使用される被験者または個体の用語と、代替では同一であることが認められ得る。

本明細書中で使用される用語「レシピエント」は、本発明に従って試験された受精後の卵母細胞または胚が移植されるヒトまたは動物の雌性体を意味することが意図される。当業者は、卵母細胞をインビボ成熟化またはインビトロ成熟化によって所望の段階で得ることができること、同様にまた、胚を体外受精または卵母細胞内への精子核移植によって作製することができることを認識する。

本明細書中で使用される用語「応答能」は、着床および生個体への発達についての卵母細胞の応答能または適格性（これらはともに等価である）を意味することが意図される。本発明の主題により、卵母細胞の適格性を明らかにするための予測値が、レシピエントに移植される胚を選択する際にもまた提供される。

本明細書中で使用される表現「顆粒膜細胞」により、卵胞の壁細胞が規定される。洞が発達し、大きくなるとき、顆粒膜細胞は２つの機能的な群に分かれる：卵丘細胞と呼ばれる、卵母細胞と直に接触している細胞（卵丘）、および、洞を囲んで卵胞壁を裏打ちする壁顆粒膜細胞。卵丘細胞は、壁顆粒膜細胞とは異なった特徴を発現する。

特注製作された顆粒膜マイクロアレイ（２，２７８個の転写物）およびＡｆｆｙｍｅｔｒｉｘ社のヒトＵ１３３ＧｅｎｅＣｈｉｐ（登録商標）（４４，７００個の転写物）によるプール１およびプール２についての４つのハイブリダイゼーションのベン図を例示する。数字は、バックグラウンド閾値を超えるシグナルを示す異なる遺伝子の数を表す。括弧内の数字は、バックグラウンド閾値を超えるシグナルを示す異なる転写物の数を表す。示差的発現（Ｐ＜０．０５）を、妊娠をもたらした卵胞に由来する顆粒膜細胞（陽性群）および発達の停止した胚を生じた卵胞に由来する顆粒膜細胞（陰性群）において示した、リアルタイムＰＣＲによるｍＲＮＡレベルの定量化を例示する。^＊＊は遺伝子内での有意な差を示す（Ｐ＜０．０１）。^＊は遺伝子内での有意な差を示す（Ｐ＜０．０５）。結果は平均±ＳＥＭとして表し、ｔ検定分析によって分析した。有意な示差的発現（Ｐ＜０．０５）を示さないが、妊娠をもたらした卵胞に由来する顆粒膜細胞（陽性群）および発達の停止した胚を生じた卵胞に由来する顆粒膜細胞（陰性群）において示差的に発現される傾向を示す、リアルタイムＰＣＲによるｍＲＮＡレベルの定量化を例示する。結果は平均±ＳＥＭとして表し、ｔ検定分析によって分析した。

次に、本発明が、本発明の好ましい実施形態が示される添付された図面を参照して本明細書中下記においてより詳しく記載される。しかしながら、本発明は多くの異なる形態で具体化することができ、従って、本明細書中に示される実施形態に限定されるように解釈してはならない。むしろ、これらの実施形態は、本開示が完璧かつ完全であり、本発明の範囲を当業者に十分に伝えるように提供される。

本発明によれば、得られた顆粒膜細胞が測定される同じ卵胞に由来する卵母細胞の、着床または生個体への発達（または、より正確には、成功した着床）に対する適格性を予測すること、具体的には、体外受精（ＩＶＦ）および雌性個体における着床の結果を予測することを、顆粒膜細胞におけるそれらの測定により可能にするポリペプチド、および、そのようなｍＲＮＡまたはポリペプチドをコードするヌクレオチド配列が提供される。

本発明はまた、ＩＶＦの結果、または、補助生殖処置のための雌性個体の好適性を明らかにするためのそのような診断方法に関連する。卵母細胞は、壁顆粒膜細胞の表現型の分化を抑制すること、および、卵丘細胞の表現型の分化を促進させることによってその環境を制御する。卵母細胞はこの抑制を不安定なパラ分泌シグナル伝達因子の分泌によって達成する。この調節機能における誤りは、これが卵母細胞由来リガンドの産生における欠陥によって引き起こされようとも、または、卵母細胞由来リガンドに対する顆粒膜細胞の応答によって引き起こされようとも、胚の発達を受けることができない卵母細胞の産生、または、異常な卵胞発達を受ける卵母細胞の産生を生じさせることがある。

本発明によれば、壁顆粒膜細胞または顆粒膜細胞を、この技術分野では知られているように、適切なニードルを用いて患者の膣において卵胞を介して吸引によって直接に集めることができる。この関連では、卵母細胞はインビボ卵細胞として定義される。顆粒膜細胞はまた、患者の身体の外部において卵巣からのその穿刺によって得ることができる。

本発明の別の実施形態において、受精した卵母細胞または胚の、レシピエント雌性体の子宮に着床するための応答能、および、生個体に発達するための応答能を明らかにするための顆粒膜特異的なマーカー、ポリペプチド、および、それをコードするヌクレオチドが提供される。従って、本発明のマーカーおよびその使用は、適格な胚のスクリーニングをヒトまたは動物のレシピエント雌性体におけるその移植の前に行うために有用である。

本発明の別の実施形態において、顆粒膜細胞が得られる同じ卵胞に起原を有する卵母細胞の、ＩＶＦ、子宮着床および生産児への発達に対する能力または応答能を明らかにするために顆粒膜細胞において測定される、Ｆａｓオンコジーン、Ｆａｓリガンド（ＦａｓＬ）、Ｂａｘ、アポトーシス阻害剤Ｘ（ＸＩＡＰ）、ＮＩＡＰ、ＨＩＡＰ−１、ＨＩＡＰ−２、ＢＣＬｘｌ、ＦＬＩＰ、ＰＡＬ３１、骨形態形成タンパク質１５（ＢＭＰ−１５）、カスパーゼ切断タンパク質またはカスパーゼ活性化タンパク質３、同７、同８または同９、ＡｋＴリン酸化タンパク質、ＤＮＡ結合タンパク質Ａ、マトリックスメタロプロテイナーゼ（ＭＭＰ）、リボソームＬ２７ａ、Ｓｐｒｏｕｔｙ２、初期増殖応答１、（Ｅｒｇ−１）、ホスファチジルセリンシンターゼ１、チトクロームＣオキシダーゼ、メタロプロテイナーゼ（ＭＭＰ）誘導因子、プロテインキナーゼ阻害剤、逆転写酵素、バーシカンＶ３変化体、リングフィンガータンパク質１３、酸性リボソームタンパク質ＰＯ、プロスタグランジン受容体（ＥＰ３Ｂ）、プロゲステロン受容体、エピレグリン（ＥＲＧ）、スプライシング因子およびトランスグルタミナーゼ３からなる群から選択されるマーカーが提供される。核酸配列の発現レベルもまた、試験された卵母細胞の応答能を評価するために明らかにすることができる。

試験された卵母細胞の顆粒膜細胞におけるマーカーの発現レベルが、（不適格な卵胞をもたらす卵胞の範囲と比較して）適格な卵胞に関連する範囲にある場合、この試験された卵母細胞は、雌性体の子宮壁における着床のために、また、生産児としての胎児と同様に、生個体に発達するために適格であると見なされる。このことは、選択された卵母細胞および胚からの成功した妊娠および健康な乳児を有するためのより良好な予測性をもたらす。本明細書中で定義されるような卵母細胞の適格性を表す、ポリペプチドまたはヌクレオチドの形態のもとでの標的マーカーの平均発現レベルは、着床し、また、出産まで胎児において適切に発達する可能性のある卵母細胞を選択または評価するために使用される。

本発明の別の実施形態によれば、マーカーの発現レベルが、顆粒膜細胞がその卵母細胞とともに卵胞から吸引によって採取される時点での顆粒膜細胞におけるマーカーポリペプチドまたはその対応するｍＲＮＡの測定によって明らかにされる。この技術分野において知られている任意の好適な方法を、マーカーの遺伝子発現を測定するために使用することができる。好適な測定方法には、目的とするｍＲＮＡに特異的にハイブリダイゼーションすることができる核酸プローブの使用、標的ヌクレオチド配列を特異的に増幅することができるオリゴヌクレオチドまたはＰＣＲプライマーの使用、および、目的とする遺伝子によって発現されるポリペプチドに特異的に結合することができる抗体の使用が含まれるが、これらに限定されない。遺伝子発現には、遺伝子にコードされる遺伝子情報の、ＲＮＡ転写酵素による遺伝子の転写によるＲＮＡ（例えば、ｍＲＮＡ、ｒＲＮＡ、ｔＲＮＡまたはｓｎＲＮＡなど）への変換、および、ＲＮＡの、発現された遺伝子に対応するタンパク質またはポリペプチドへの翻訳が含まれるが、これらに限定されない。本発明が行われる状況に依存して、核酸プローブ、オリゴヌクレオチドまたはＰＣＲプライマーは、長さが約５個〜２００個の核酸のものであり得る。そのような核酸プローブ、オリゴヌクレオチドまたはＰＣＲプライマーを調製する方法は当業者によって広く知られている。ＰＣＲ分析が好ましくは、逆転写酵素ＰＣＴ（ＲＴ−ＰＣＲ）として行われる。逆転写酵素により、ＲＮＡ分子が、ＰＣＲまたはＴ７ポリメラーゼによって増幅することができるＤＮＡフラグメントに変換される。ＰＣＲ増幅産物は、その後、精密な定量化のためにリアルタイムで可視化または測定されるゲル電気泳動で泳動することができる（リアルタイムＰＣＲ）。より良好な結果のために、ＰＣＲプライマーはそれ自体、放射性核酸の染料により印を付けることができる。

核酸プローブまたはＰＣＲプライマーなどには、例えば、ハイブリダイゼーションまたは増幅（これらに限定されない）の場合などでは、ＤＮＡまたはＲＮＡの任意の知られている塩基アナログが検出の必要性のために挿入され得るＤＮＡまたはＲＮＡ、あるいは、マーカー分子が含まれるが、これらに限定されない。他の方法、例えば、マイクロアレイ分析、ノーザンブロット、サザンブロットまたはリアルタイムＰＣＲなど。

代替では、抗体を、免疫化学、ＥＬＩＳＡ（酵素結合免疫吸着アッセイ）、サンドイッチ免疫アッセイ、免疫蛍光光度法、免疫放射測定アッセイ、ゲル拡散沈殿反応、免疫拡散アッセイ、インシトゥー免疫アッセイ、ウエスタンブロット、放射免疫アッセイ（ＲＩＡ）、特異的な抗体もしくはそのフラグメントと、規定された分析物を混合物において定量するための放射能標識された検出体分子とを使用する生化学的方法、または、特定の分子を標的とするために抗体を使用するこの技術分野で知られている任意の他の方法を行うために使用することができる。多くの免疫アッセイを、色素または他のマーカーを放射性標識の代わりに使用して行うことができる。抗体、すなわち、免疫グロブリンは、抗原またはエピトープを認識し、これに特異的に結合するタンパク質である。エピトープは、特異的な抗体に結合する抗原の一部である。エピトープを介する抗体の特異性の程度が、その標的エピトープ、すなわち、抗原にだけ結合するか、または、その標的エピトープ、すなわち、抗原に結合しないその能力によって定義される。抗体には、ポリクローナル抗体、モノクローナル抗体、キメラ抗体、ヒト化抗体およびＦａｂフラグメントが含まれるが、これらに限定されない。単鎖抗体および二重鎖抗体もまた含まれる。抗体はまた、この技術分野では知られているようなインビボ画像化検出のために使用することができる。このことは、女性または動物の雌性体の身体に直接に標的化されたカーマーの検出を可能にするか、また、この女性または動物の雌性体が、受精、着床または子宮発達に適格な卵母細胞を有するかを予測することを可能にする。本発明のマーカーが所望の比率に従って検出されるとき、試験された女性または動物の雌性体は、受精し、適切に妊娠するために適格であると見なすことができる。

本発明の別の実施形態において、卵母細胞の応答能を１つの発現プロフィルの発現レベルの測定によって検討することができる。後者は、試験された卵母細胞の遺伝子発現プロフィルのパターンを引き出すことを可能にし、この発現プロフィルにより、本明細書中で定義されるような卵母細胞の応答能をより細かく明らかにする可能性が与えられる。

試験された卵母細胞におけるマーカーの発現レベルが、適格な卵母細胞の群における同じマーカーの平均レベルよりも低い場合、その卵母細胞は、受精または着床するために適格でない可能性があると見なされる。これに反して、コントロール（適格群）と類似するマーカーの発現レベルを有する試験された卵母細胞は、ＩＶＦ、着床および子宮内発達に適格であるとして分類される。コントロール卵母細胞におけるマーカーの発現レベルに対する、試験された卵母細胞におけるマーカーの発現レベルの比率は、卵母細胞が、ＩＶＦ、着床、および、生産児への子宮発達に適格であるためには、コントロールを越える約１．５から、１５０までが可能であり、好ましくは２を超えることができる。

１つの実施形態において、マーカーを検出するためのパネルおよびキットが提供される。試験された卵母細胞の応答能マーカーの存在が、試験された卵母細胞がＩＶＦを適切に可能にするか、または、移植後に子宮に着床することを可能にする可能性を明らかにするために使用される。本発明のパネルおよびキットは、数個のマーカーを同時に分析するために使用することができ、また、遺伝子発現プロフィルを与える結果を提供するために使用することができる。

薬物スクリーニング
本発明の別の実施形態において、本明細書中に記載されるような本発明のマーカーの発現を増大または低下させることができる候補化合物をスクリーニングするための方法が提供される。例えば、しかし、限定されないが、インビトロ培養条件に置かれる単離された顆粒膜細胞をいくつかの化合物による処理に付し、その後、卵母細胞応答能マーカーの遺伝子発現レベルの増大または低下を測定するために、従って、化合物の影響を反映するために試験することができる。この方法は、卵母細胞の応答能に対して刺激性または阻害性である化合物のスクリーニングを可能にする。同じ化合物試験をインビボ条件で行うことができる。すなわち、女性患者または動物患者への化合物の投与を行うことができ、これにより、卵巣の刺激状態を、本明細書中に記載されるような適格な卵母細胞の産生について試験することができる。

応答能の誘導
本発明の別の実施形態において、卵母細胞において非適格と見なされる卵母細胞を、ＩＶＦ、着床および子宮発達に対して適格にするための方法が提供される。本発明の方法では、非適格な卵母細胞を、本明細書中上記で定義されるように、卵母細胞応答能マーカーの発現を刺激することが知られている因子により処理することが含まれる。その後、本発明のマーカーの測定により、その刺激が効率的であったかが示される。代替として、本発明のマーカーおよびその使用方法を、ホルモン処置に対する女性または動物雌性体の応答性を評価するために使用することができる。この実施形態によって、黄体形成ホルモン（ＬＨ）またはヒト絨毛性ゴナドロピン（ｈＣＧ）の使用、あるいは、卵胞刺激ホルモン（ＦＳＨ）の濃度を低下させることが、限定ではないが、ホルモン処置がどのように卵母細胞応答能および応答能マーカーのそのレベルを高め得るかの例である。

本発明が、本発明の範囲を限定するためではなく、むしろ、本発明を例示するために示される下記の実施例を参照することによってより容易に理解される。

適格な卵母細胞に関連するヒト卵胞細胞におけるマーカー
卵胞細胞の収集
卵胞細胞を、ＯｔｔａｗａＨｏｓｐｉｔａｌ（カナダ）の不妊症センターにおいて女性の同意によりＩＶＦ処置を受けている女性（ｎ＝４０）から得た。これらの女性は、子宮内膜症、卵管性不妊症または特発性不妊症の診断を受けていたが、多嚢胞性卵巣症候群（ＰＣＯ）を有していなかった。手法が、ＯｔｔａｗａＨｏｓｐｉｔａｌの研究倫理委員会からの承認により行われた。卵巣刺激の後、卵胞液、卵胞細胞、および、個々の卵胞に由来する卵母細胞を、二重管ニードルを使用する超音波誘導の卵胞吸引によって集めた。卵母細胞および周囲の卵丘細胞をＩＶＦ処置のために取り出した。残りの卵胞液を、それぞれの個々の卵胞について、８００Ｘｇにおいて室温で１０分間遠心分離して、壁顆粒膜細胞を含有する卵胞細胞を単離した。得られたペレットを４℃で５００μｌのリン酸塩緩衝化生理的食塩水溶液（ＰＢＳ）に懸濁し、クライオバイアルに移した。２０００Ｘｇにおける室温での１分間の遠心分離の後、上清を除き、細胞を液体窒素で急速冷凍し、ＲＮＡ抽出まで液体窒素中に保存した。受精プロセスの後、卵母細胞を取り囲む卵丘細胞もまた、卵胞細胞の単離について記載されたのと同じプロトコルを使用して個々の卵胞毎に回収した。

１個〜１５個の範囲の卵胞が患者あたり平均して７．４８個の卵胞について吸引され、平均して４．１３個の胚が女性あたり得られた。それぞれの卵胞からもたらされるデータ（受精、胚発達、胚形態学、移植および妊娠）が発生学者によって記録された。使用されたＩＶＦプロトコルに依存して、１個または２個の胚（平均して１．４個）が合計で３４名の患者について３日目（６７％）または５日目（３３％）のどちらかで移植され、全体での移植あたりの妊娠率は５３％であった。妊娠が、６週〜８週での超音波による胎児鼓動の存在によって確認された。

処置の割り当て（表１）
壁顆粒膜細胞について、卵胞の３つのプール［プール１（ｎ＝６）、プール２（ｎ＝１５）およびプール３（ｎ＝９）］が、成功した妊娠をもたらした卵母細胞から作製され、これらは、陽性群１、陽性群２および陽性群３とそれぞれ呼ばれた。これらのプールを使用して、適格な卵胞に関連するＲＮＡを得た。３つのさらなるプール［プール１（ｎ＝６）、プール２（ｎ＝１５）およびプール３（ｎ＝９）］が、その発達を８細胞段階の前に停止させた胚をもたらした卵胞を含有する陰性群１、陰性群２および陰性群３にそれぞれ割り当てられた。これらには、着床しなかった１つの胚が含まれる（群１）。プール１が、特注製作のｃＤＮＡマイクロアレイを作製するためにを使用され、陽性群および陰性群の両方に由来するプール１およびプール２がアレイのハイブリダイゼーションのために役立ち、一方、３つすべてのプールがＱ−ＰＣＲ分析のために役立った。陽性群１および陰性群１の両方について選択された同じ卵胞に由来する卵丘細胞を、特注製作のｃＤＮＡマイクロアレイを作製するために別々に使用した。

ＲＮＡの単離
壁顆粒膜細胞および卵丘細胞の両方からの総ＲＮＡを、１ｍｌのＴｒｉｚｏｌ試薬（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、Ｂｕｒｌｉｎｇｔｏｎ、カナダ）を製造者のプロトコルに従って用いて抽出した。その後、ＤＮＡｓｅ処理を、ＤＮＡｓｅＩＡｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎＧｒａｄｅキット（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、Ｂｕｒｌｉｎｇｔｏｎ、カナダ）を製造者の説明書に従って使用して適用した。抽出されたＲＮＡを３０μｌの水に溶解し、２６０ｎｍでの分光光度法によって定量した。総ＲＮＡの品質および完全性を、ＡｇｉｌｅｎｔＢｉｏａｎａｌｙｚｅｒ２１００（ＡｇｉｌｅｎｔＴｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓＩｎｃ．、ＳａｎｔａＣｌａｒａ、米国）を使用して確認した。

マイクロアレイスライドの調製
顆粒膜細胞および卵丘細胞についてのサプレッシブサブトラクティブハイブリダイゼーション（ＳＳＨ）
ＢＤＳＭＡＲＴＰＣＲｃＤＮＡＳｙｎｔｈｅｓｉｓＫｉｔ（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ、ＭｏｕｎｔａｉｎＶｉｅｗ、合衆国）についての製造者の説明書に従って、総ＲＮＡのプールからの顆粒膜細胞および卵丘細胞に由来する陽性群１および陰性群１から得られたｍＲＮＡ（１μｇ）を逆転写した。サプレッシブサブトラクティブハイブリダイゼーションを、ＰＣＲＳｅｌｅｃｔｃＤＮＡＳｕｂｔｒａｃｔｉｏｎＫｉｔ（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ、ＭｏｕｎｔａｉｎＶｉｅｗ、合衆国）を製造者の説明書に従って用いて行った。適格な壁顆粒膜細胞および卵丘細胞のそれぞれの群（陽性群１）からそれぞれＳＭＡＲＴキットにより以前に増幅されたＤＮＡがテスターとして役立ち、壁顆粒膜細胞および卵丘細胞の両方の異なる群（陰性群１）についての非適格細胞がドライバーとして役立った。

ｃＤＮＡの配列決定
ＰＣＲ産物を、ｐＧＥＭ（登録商標）−ＴＥａｓｙＶｅｃｔｏｒ（Ｐｒｏｍｅｇａ、Ｎｅｐｅａｎ、カナダ）を使用してベクターに連結し、その後、ＤＨ５−α−Ｔ１ＭａｘＥｆｆｉｃｉｅｎｃｙ細胞（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、Ｂｕｒｌｉｎｇｔｏｎ、カナダ）に形質転換した。壁顆粒膜細胞のサブトラクションライブラリーおよび卵丘細胞のサブトラクションライブラリーの両方について、細菌コロニー（１０５０個）を無作為に選び、２００μｌのＬＢ培地（ＢＤＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ、Ｍｉｓｓｉｓｓａｕｇａ、カナダ）を５０μｇ／ｍｌのアンピシリン（Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ、Ｏａｋｖｉｌｌｅ、カナダ）とともに含有する９６ウエルプレートにおいて成長させた。コロニーを撹拌とともに３７℃で６時間インキュベーションし、その後、挿入されたフラグメントのＰＣＲ増幅まで４℃で保った。ＰＣＲのために、２μｌの細菌上清を、１ＸＰＣＲ緩衝液、０．２５μＭのｄＮＴＰ、０．２５ｍＭのＰＣＲＮｅｓｔｅｄＰｒｉｍｅｒ１（５’−ＡＧＣＧＴＧＧＴＣＧＣＧＧＣＣＧＡＧＧＴ−３’；配列番号１）およびＰｒｉｍｅｒ２Ｒ（５’−ＴＣＧＡＧＣＧＧＣＣＧＣＣＣＧＧＧＣＡＧＧＴ−３’；配列番号２）（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ、ＭｏｕｎｔａｉｎＶｉｅｗ、合衆国）、ならびに、１．２５ＵのＨｏｔＭａｓｔｅｒＴａｑＤＮＡＰｏｌｙｍｅｒａｓｅ（Ｅｐｐｅｎｄｏｒｆ、Ｍｉｓｓｉｓｓａｕｇａ、カナダ）を含有するＰＣＲミックスに加えた。ＰＣＲ条件は、２分間の９４℃の最初の変性工程と、９４℃での２０秒の変性工程、６５℃での１０秒のアニーリング工程および６５℃での１分の伸長工程からなる３０サイクルと、６５℃での７分間の最後の工程とからなった。ＰＣＲ産物のアリコート（３μｌ）を、ｃＤＮＡの長さおよび品質（一本鎖）を確認するために１％アガロース−ＥｔＢｒゲルで可視化した。２つ以上のバンドを有するアンプリコンは除外された。残っている細菌懸濁物を２０％グリセロールにおいて−８０℃で保存した。

ＰＣＲ産物を以前の記載のように精製し、配列決定した。配列の軌跡をオンラインフリーウエアのＣｈｒｏｍａｓ１．４５（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｔｅｃｈｎｅｌｙｓｉｕｍ．ｃｏｍ．ａｕ／ｃｈｒｏｍａｓ．ｈｔｍｌ）により可視化し、配列を、修正（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｐｈｒａｐ．ｏｒｇ／ｐｈｒｅｄｐｈｒａｐｃｏｎｓｅｄ．ｈｔｍｌ）が行われたｃＤＮＡＬｉｂｒａｒｙＭａｎａｇｅｒＰｒｏｇｒａｍ（ＧｅｎｏｍｅＣａｎａｄａｂｉｏｉｎｆｏｒｍａｔｉｃｓ、Ｑｕｅｂｅｃ、カナダ）に入力し、ＧｅｎＢａｎｋデータベース（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｇｏｖ／ＢＬＡＳＴ／）に対して比較した。ＢＬＡＳＴ結果をそれぞれの付託された配列についてのレポートチャートに編集した。

特注製作ｃＤＮＡマイクロアレイの調製
精製されたＰＣＲ産物をスピードバックによりエバポレーションし（ＳＰＤＳｐｅｅｄＶａｃＴｈｅｒｍｏＳａｖａｎｔ）、等量のジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）およびＨ_２Ｏの溶液に懸濁し、ＶｅｒｓＡｒｒａｙＣｈｉｐＷｒｉｔｅｒＰｒｏロボット（Ｂｉｏ−Ｒａｄ、Ｍｉｓｓｉｓｓａｕｇａ、カナダ）を使用してＧＡＰＳＩＩガラススライド（Ｃｏｒｎｉｎｇ、Ｃｏｒｎｉｎｇ、ＮＹ、合衆国）上の異なる場所に２連でスポットした。ヒトの壁顆粒膜細胞サブトラクションライブラリーおよび卵丘細胞サブトラクションライブラリーに加えて、本発明者らの研究室で以前に得られた他のライブラリーもまた２連でスライドにスポットした。これらのライブラリーはウシの卵丘細胞サブトラクションライブラリーおよびウシの適格な顆粒膜細胞サブトラクションライブラリーに由来する（ＲｏｂｅｒｔＣ他（２００１）、ＢｉｏｌＲｅｐｒｏｄ６４、１８１２〜２０）。ＳｐｏｔＲｅｐｏｒｔＡｌｉｅｎおよびＰｌａｎｔｃＤＮＡＡｒｒａｙＶａｌｉｄａｔｉｏｎＳｙｓｔｅｍ（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ、Ｏｔｔａｗａ、カナダ）を陰性コントロールとして印刷した。ヒトのアクチンｃＤＮＡ、チューブリンｃＤＮＡおよびＧＡＰＤＨｃＤＮＡが陽性コントロールとして作用し、緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）のフラグメントを外因性の陽性コントロールとして使用した。その後、ＤＮＡを紫外線（３００ｍＶ）により架橋し、品質コントロールをＴｈｅｒｍｉｎａｌＤｅｏｘｙｎｕｃｌｅｏｔｉｄｙｌＴｒａｎｓｆｅｒａｓｅＡｓｓａｙ（ＧＥｈｅａｌｔｈｃａｒｅ、Ｑｕｅｂｅｃ、カナダ）により行った。

マイクロアレイのハイブリダイゼーション
特注製作ｃＤＮＡスライドのハイブリダイゼーション
壁顆粒膜細胞の陽性群２および陰性群２に由来する総ＲＮＡを、ＲｉｂｏＡｍｐ（商標）ＲＮＡＡｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎキット（ＭｏｌｅｃｕｌａｒＤｅｖｉｃｅｓ、ＭｏｕｎｔａｉｎＶｉｅｗ、合衆国）を製造者の説明書に従って使用して増幅した。簡単に記載すると、総ＲＮＡを、Ｔ７ＲＮＡポリメラーゼのプロモーター配列を取り込むプライマーにより逆転写した。二本鎖ｃＤＮＡを合成し、カラム精製し（Ｑｉａｇｅｎ、Ｍｉｓｓｉｓｓａｕｇａ、カナダ）、Ｔ７ポリメラーゼを使用するインビトロ転写を行わせるためのテンプレートとして使用した。この包括的な増幅が１回の反応によって線形的に増幅され、得られたａａＲＮＡをカラム精製し、ＵＴＰ−アミノアリルＲＮＡ（ａａＲＮＡ）の量を２６０ｎｍでの分光光度法によって推定した。プローブを、ＭｏｌｅｃｕｌａｒＰｒｏｂｅｓから得られるプロトコルに従ってＡｌｅｘａＦｌｕｏｒ５５５およびＡｌｅｘａＦｌｕｏｒ６４７の反応性色素パック（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、Ｂｕｒｌｉｇｔｏｎ、カナダ）により標識した。スライドを、ＳｌｉｄｅＨｙｂ＃１緩衝液（Ａｍｂｉｏｎ、Ａｕｓｔｉｎ、合衆国）を使用して、標識された精製プローブと５５℃（ｃＤＮＡについて）または５０℃（ＲＮＡについて）で一晩ハイブリダイゼーションした。ハイブリダイゼーションを、ＡｄｖａｃａｒｄＡＣ３Ｃ（ＴｈｅＧｅｌＣｏｍｐａｎｙ、ＳａｎＦｒａｎｃｉｓｃｏ、米国）を使用してＡｒｒａｙＢｏｏｓｔｅｒにおいて行った。その後、スライドを、５５℃（ｃＤＮＡについて）または５０℃（ＲＮＡについて）で１５分間、２ｘＳＳＣ／０．５％ＳＤＳにより２回洗浄し、次いで、５５℃（ｃＤＮＡについて）または５０℃（ＲＮＡについて）で１５分間、０．５ｘＳＳＣ／０．５％ＳＤＳにより２回洗浄した。

特注製作ｃＤＮＡマイクロアレイのハイブリダイゼーションのための実験設計
２回のハイブリダイゼーションを、患者の異なるプール（群１および群２）を使用して行った。最初のハイブリダイゼーションのために、ヒト壁顆粒膜細胞ライブラリー（陽性群１および陰性群１）に由来するフォワードサブトラクション後のＰＣＲ産物を、特注製作ｃＤＮＡマイクロアレイにハイブリダイゼーションさせるためのプローブとして使用した。２回目のハイブリダイゼーションのために、１回のＴ７によって増幅された陽性群２および陰性群２の両方に由来するＲＮＡをプローブとして使用した。

スライドを、ＶｅｒｓＡｒｒａｙＣｈｉｐＲｅａｄｅｒＳｙｓｔｅｍ（Ｂｉｏ−Ｒａｄ、Ｍｉｓｓｉｓｓａｕｇａ、カナダ）を使用して走査し、ＣｈｉｐＲｅａｄｅｒおよびＡｒｒａｙＰｒｏＡｎａｌｙｚｅｒソフトウエア（ＭｅｄｉａＣｙｂｅｒｎｅｔｉｃｓ、Ｂｅｔｈｅｓｄａ、米国）を使用して分析した。データ分析を以前に記載された通りに行った。それぞれの反復実験物についての蛍光シグナル強度をｌｏｇ_２変換し、Ｌｏｅｓｓ法によって正規化し、バックグラウンドについて補正した。バックグラウンドシグナル閾値の決定を、バックグランドを決定するＳｐｏｔＲｅｐｏｒｔｃＤＮＡコントロール（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ、Ｏｔｔａｗａ、カナダ）を用いて行った（ｔ＝ｍ＋２ｘｓｄ、式中、「ｔ」は、計算された閾値であり、「ｍ」は平均であり、「ｓｄ」は陰性コントロールデータ（ｎ＝５８）の標準偏差である）。閾値を超える転写物を、顆粒膜細胞に存在すると見なし、これに対して、それ以外の転写物を分析から除外した。１つの反復実験物がバックグラウンドよりも低かったならば、そのクローンは分析から完全に除外された。両方のハイブリダイゼーションについて、ｌｏｇ_２の比が２を越える候補物が列挙され、両方のリストに現れる候補物にはより多くの注意を払った。

Ａｆｆｙｍｅｔｒｔｉｘスライドのハイブリダイゼーション
２つのＡｆｆｙｍｅｔｒｉｘヒトゲノムアレイを、ＣＲＥＭＯ（ＣｅｎｔｒｅｄｅｒｅｃｈｅｒｃｈｅｄｕＣＨＵＬ、Ｑｕｅｂｅｃ、カナダ）において陽性群１および陽性群２ならびに陰性群１および陰性群２によりそれぞれハイブリダイゼーションした。逆転写によって合成された二本鎖ｃＤＮＡを２５０ｎｇのＲＮＡから得て、これをＡｆｆｙｍｅｔｒｉｘの説明書に従って２回増幅した。ビオチン標識されたａＲＮＡを、壁顆粒膜細胞に由来するｃＤＮＡから作製し、Ａｆｆｙｍｅｔｒｉｘヒトゲノムアレイ（ＨＧ−Ｕ１３３＿Ｐｌｕｓ＿２アレイ）（Ａｆｆｙｍｅｔｒｉｘ、Ｌｅｘｉｎｇｔｏｎ、合衆国）（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ａｆｆｙｍｅｔｒｉｘ．ｃｏｍ／ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ／ｉｎｄｅｘ．ａｆｆｘ）をプローブするために使用した。この遺伝子チップは、３３，０００個の十分に裏付けられたヒト遺伝子（４４，７００個の転写物）についてのプローブを含有する。ハイブリダイゼーションおよび洗浄を、Ａｆｆｙｍｅｔｒｉｘ遺伝子チップシステムを製造者の説明書に従って使用して行った。遺伝子の平均差および発現レベルを、製造者によって勧められるような無条件分析アルゴリズムおよび比較分析アルゴリズムに従って計算した。２を越える比率（陽性群：陰性群）を、候補物を選択するために使用した。

候補遺伝子の選択
さらなる分析のためのクローンのクローン選択は、特注製作ｃＤＮＡアレイスライドおよびＡｆｆｙｍｅｔｒｉｘスライドから得られるマイクロアレイ結果に基づいた。その後、合計で１１５個の異なるマーカーが選択され、異なるライブラリーにおけるそれらの存在数、ヒト顆粒膜ライブラリーにおけるそれらの存在、同じライブラリーにおけるそれらの繰り返し、および、シグナル強度に従って類別された。選択および類別を行った後、１０個の候補遺伝子を定量的リアルタイムＰＣＲによって妥当性評価し（ＣＹＰ１９Ａ１、ＣＤＣ４２、ＨＳＤ３β１、ＳＥＲＰＩＮＥ２、ＡＤＸ）、２つのハウスキーピング遺伝子（アクチンおよびＧＡＰＤＨ）を内部コントロールとして使用した。

リアルタイムＰＣＲ
それぞれの候補遺伝子のプライマーを、本発明者らのライブラリー配列に対応するＮＣＢＩ由来の配列を使用してＰｒｉｍｅｒ３ウエブインターフェースにより設計した（表２）。

リアルタイム分析では、陽性群および陰性群についての壁顆粒膜細胞の３つの異なる群が、既に発表された同じ手順により測定および比較された。簡単に記載すると、それぞれのサンプルについて、逆転写酵素を、Ｓｅｎｓｉｓｃｒｉｐｔキット（Ｑｉａｇｅｎ、Ｍｉｓｓｉｓｓｕｇａ、カナダ）を製造者の指示書に従って用いて５０ｎｇの顆粒膜細胞ＲＮＡ（これは分光光度法によって定量された）を使用して行った。ＧＦＰのＲＮＡ（７ｐｇ）を反応のための外因性コントロールとしてＲＮＡ混合物に加えた。正しい生成物が増幅されたことを確認するために、すべての増幅物をアガロースゲル（２％）で視覚化し、その後、配列決定した。

統計学的分析
増幅されたｃＤＮＡのすべてのプールにおけるそれぞれの遺伝子についてのデータの正規化を、既に発表されているように、ＧＦＰＲＮＡのレベルに対する比として計算することによって行った。データは平均±ＳＥＭとして表される。ＧＡＰＤＨおよびβ−アクチンのハウスキーピング遺伝子が、ＲＮＡ品質の安定性を確認するために評価された。陽性群と、陰性群との間におけるｍＲＮＡ差の評価を、ノンパラメトリック両側ｔ検定によって行った。差は、９５％の信頼水準（Ｐ＞０．０５）で統計学的に有意であると見なされた。

結果
サプレッシブサブトラクティブハイブリダイゼーション
ＳＳＨ技術を使用して、本発明者らは、ｍＲＮＡサブトラクションを、成功した妊娠をもたらした６個の卵胞（陽性群１）から得られる逆転写物、および、発達が不良であった胚を引き起こした６個の卵胞（陰性群１）から得られる逆転写物に対して行った。クローニングおよび形質転換の後、１０５０個のクローンがそれぞれのサブトラクションライブラリーから選択され、この場合、ヒトの壁顆粒膜細胞のサブトラクションライブラリーに由来する８５２個のクローン、および、ヒトの卵丘細胞のサブトラクションライブラリーに由来する８４２個のクローンが、１つだけの挿入物について陽性であった（表３）。その後、クローンを配列決定し、ヌクレオチド−ヌクレオチドＢＬＡＳＴ（ｂｌａｓｔｎ）プログラムをＮＣＢＩデータベースに対して使用して分析した。顆粒膜細胞サブトラクションライブラリーおよび卵丘細胞サブトラクションライブラリーにおいて、総配列の８９％および６８％が、機能が既知である遺伝子にそれぞれ由来し、これにより、合計で４６５個および６４５個の特有配列がそれぞれのライブラリーにおいてもたらされた（表３）。これら２つのサブトラクションライブラリーはわずかに５８個の特有配列を共有するだけであり、従って、これらの遺伝子は、これら２つの細胞集団が異なる潜在的な候補遺伝子のレパートリーを有するという証拠となっている。

特注製作の顆粒膜マイクロアレイの設計
１２００を越える異なる遺伝子をコードする２２７８個の転写物を含有する卵胞細胞ＥＳＴのｃＤＮＡマイクロアレイを、ヒトおよびウシのサブトラクション後の顆粒膜細胞ライブラリーおよび卵丘細胞ライブラリーから作製した。予備的ハイブリダイゼーションでは、ヒトプローブがヒトおよびウシの両方のｃＤＮＡマイクロアレイと首尾良くハイブリダイゼーションし得ることが明らかにされた。

マイクロアレイのハイブリダイゼーション
２回のハイブリダイゼーション実験を特注製作の顆粒膜マイクロアレイにより行った（図１）。最初のハイブリダイゼーションを、ＳＳＨ技術によって得られたサブトラクションサンプルにより行った。合計で２２７８個の転写物のうちの合計で１５０３個の転写物が陽性群（潜在的な真の陽性）についての強い比率を明らかにした。２回目のハイブリダイゼーションにおいて、本発明者らは、異なる患者群（陽性群および陰性群）に由来する壁顆粒膜細胞の別のプールを使用し、陽性群についての強い比率を有する５９３個の転写物を得た。これらの２回のハイブリダイゼーションのための材料が、遺伝子のより厳しい群が両方のハイブリダイゼーションにおいて陽性であったことをもたらした異なる増幅手法によって、すなわち、ＳＭＡＲＴ−ＰＣＲおよびＴ−７増幅によってそれぞれ得られたことに留意することは重要である。

特注製作の顆粒膜マイクロアレイでの２つの異なるプールに由来する陽性クローンのリストの比較では、両方のハイブリダイゼーションにおける強い強度（２を越える比率）を有する２８８個の異なる遺伝子の特定がもたらされた。それは、特注製作の顆粒膜マイクロアレイの総転写物の１３％を表す。

ヒトのＡｆｆｙｍｅｔｒｉｘＧｅｎｅＣｈｉｐ（登録商標）については、合計で３２５個および５０５個の遺伝子が、２より大きい比率を、これら２回のハイブリダイゼーションについてそれぞれ、陽性群と、陰性群との間において有した。Ａｆｆｙｍｅｔｒｉｃチップでの顆粒膜マイクロアレイハイブリダイゼーションのために使用された同じ２つのプールの比較により、２４個の遺伝子が特定された。Ａｆｆｙｍｅｔｒｉｘスライドは、顆粒膜細胞に対して特異的でない、従って、これまでに陽性となっていない大多数の遺伝子を含有する（４４，７００個の転写物のうちの０．０５％）。そのうえ、特注製作マイクロアレイのハイブリダイゼーションおよびＡｆｆｙｍｅｔｒｉｘＣｈｉｐｓのハイブリダイゼーションの両方の比較では、これら２つの異なるＣｈｉｐを用いて、１３個の遺伝子が第１のプール（群１）について共通しており、また、９個の遺伝子が第２のプール（群２）について共通していたことが示された。これらの遺伝子リストの間には重複がほとんどなかった。ＣＹＰ１９Ａ１が、強い比率を４回のハイブリダイゼーションのすべてにおいて有した唯一の遺伝子である。

リアルタイムＰＣＲによる候補遺伝子の選択
適格な候補遺伝子の選択は、両方のプラットフォームでのハイブリダイゼーションの結果に基づいた。特注製作マイクロアレイのハイブリダイゼーションについては、シグナル強度について２より大きいｌｏｇ_２比率を、陽性で表されると見なした。異なるパラメーターを潜在的な候補物の選択のために使用した。クローンを選択し、それらの知られている機能、それらのハイブリダイゼーション強度、および、２つ以上のハイブリダイゼーションでのそれらの存在、同じライブリーにおけるそれらの存在数に従って分類した。さらには、本発明者らは、卵母細胞の応答能に関与することが知られている機能を有するクローンを選択している。

リアルタイムＰＣＲ
リアルタイムＰＣＲを、それぞれの群（陽性群および陰性群）に由来するヒトの壁顆粒膜細胞の３つのプールのすべてを用いて行った。ハウスキーピング遺伝子（β−アクチンおよびＧＡＰＤＨ）の発現は両方の群で類似していた（Ｐ＞０．０５）（表５）。選択された１８個の候補遺伝子から、５個の遺伝子（ＡＤＸ（Ｐ＝０．０２０３）、ＣＹＰ１９Ａ１（Ｐ＝０．０３５９）、ｃｄｃ４２（Ｐ＝０．０３９６）、ＳＥＲＰＩＮＥ２（Ｐ＝０．０４９９）および３βＨＳＤ１（Ｐ＝０．００７８））が、統計学的な差を、適格細胞群と、非適格細胞群との間で有していた（Ｐ＜０．０５）（図２）。３βＨＳＤ１（Ｐ＝０．００７８）はより大きい遺伝子発現を陽性群において有した（Ｐ＜０．０１）（図２）。ＥＧＲ１（Ｐ＝０．１１１７）、ＰＧＫ１（Ｐ＝０．１２３１）、ＮＲＰ−１（Ｐ＝０．１４２４）、ＲＧＳ２（Ｐ＝０．１４５６）およびＳＥＲＰＩＮＡ３（Ｐ＝０．１７１２）などの遺伝子は、主として、測定されたレベルの変化がより大きいことのために、統計学的な差がこれら２つの群の間にはなく、しかし、卵胞の応答能の潜在的な指標物であるとみなすことができた（図３）。

本明細書に示される結果により、ヒトにおける成功した妊娠をもたらす胚の質に関連する５個の潜在的な卵胞マーカーが特定されている。これらのマーカーは、アドレノドキシン（ＡＤＸ）、チトクロームＰ４５０アロマターゼ（ＣＹＰ１９Ａ１）、細胞分裂サイクル４２（ｃｄｃ４２）、セルピンペプチダーゼ阻害剤クレードＥメンバー２（ＳＥＲＰＩＮＥ２）および３−β−ヒドロキシステロイドデヒドロゲナーゼ１（３βＨＳＤ１）である。

本発明者らは、これらのマーカーが壁顆粒膜細胞に由来するであろうと考えており、だが、本発明者らは、卵胞液吸引の方法を用いた場合、顆粒膜細胞の純粋なサンプルを得ることが困難であることを承知している。卵胞細胞は、いくつかの卵丘細胞、血液細胞、および、おそらくは、いくつかの間質細胞／卵胞膜細胞を含有することがあり、しかし、本発明者らのプロトコルは、候補遺伝子に現れる混入物の可能性を低下させるために組み立てられた。最初に、陽性群および陰性群の両方に存在するならば、サブトラクティブハイブリダイゼーションにより、何らかの混入クローンが除かれているにちがいない。第２に、臨床的局面のために、分析されたサンプルに存在する細胞集団は、正常なＩＶＦにおいて回収される生物学的組織サンプルを反映しなければならず、そのような場合、陽性マーカーは、たとえ、顆粒膜細胞に起原を有しなくても、有用であり得る。最後に、７５％の純度を有するサンプルが、特注製作アレイおよびＡｆｆｙｍｅｔｒｉｘマイクロアレイ技術の両方を使用する遺伝子発現プロフィルにおいて、純粋なサンプルと区別できなかったことが示されている。

本研究では、２つのプラットフォームが組み込まれた（候補遺伝子の選択のための判断基準を強化するために２つの異なる種を有する特注製作マイクロアレイおよびＡｆｆｙｍｅｔｒｉｘアレイの両方）。２回の異なるハイブリダイゼーションを、最初に偽陽性を除くために特注製作マイクロアレイを用いて行い、次いで、ＲＮＡの新しいプールを用いて行った。これら２回のハイブリダイゼーションでは、陰性群と比較して、適格な胚を伴う陽性群においてより高い発現を有する２８８個の遺伝子が共有された（顆粒膜マイクロアレイにおける総転写物の１２．６４％）。ＡｆｆｙｍｅｔｒｉｘＣｈｉｐに関しては、２４個の転写物（チップにおける総転写物の０．０５％）のみが両方のハイブリダイゼーションにおいて２よりも大きい比率を示した。ＡｆｆｙｍｅｔｒｉｘＵ１３３アレイＣｈｉｐ（登録商標）はヒトゲノムを表すので、特注製作の顆粒膜マイクロアレイにおける遺伝子のすべてがＡｆｆｙｍｅｔｒｉｘＵ１３３アレイＣｈｉｐ（登録商標）に存在すると考えるならば、このことは低い。従って、１つだけの遺伝子、すなわち、ＣＹＰ１９Ａ１が、２つのチップにわたってこれら４つの異なるハイブリダイゼーションに存在したことは驚くべきことである。いくつかの研究では、より再現性のある結果を与える、クロスプラットフォームマイクロアレイの付加価値が明らかにされており、しかし、様々なプラットフォームが、異なる実験プロトコル、ハイブリダイゼーションおよび分析に基づくので、アレイのいくつかの供給源からの比較は複雑であり、また、信頼できないことがある。本発明者らの結果は、本発明者らの研究室で作製された特注製作の顆粒膜マイクロアレイでは、顆粒膜細胞および卵丘細胞において示差的に発現される遺伝子の集団が表されるので、このマイクロアレイ技術が、Ａｆｆｙｍｅｔｒｉｘアレイと比較して、同じ組織での遺伝子発現における微細な違いを検出するためのより大きな感度および正確性を有することを示唆している。

候補遺伝子を選択した後、１８個の遺伝子の発現レベルが、卵胞応答能におけるそれらの起こり得る関与についてのマーカーとしてのそれらのロバストネスについてより精密に評価され、５個（２８％）の遺伝子が、陽性群と、陰性群との間で統計学的に有意であった。候補物の妥当性確認についてのこれらの結果は、ライブラリーサブトラクションを使用する類似するマイクロアレイ研究、および、定量的リアルタイムＰＣＲによるさらなる妥当性確認と一致している（ＦａｉｒＴ（２００３）、ＡｎｉｍＲｅｐｒｏｄＳｃｉ、７８、２０３〜１６）。

本研究では、妊娠をもたらす卵胞において著しくより多く発現される遺伝子のうちの３つ（ＡＤＸ、３βＨＳＤ、ＣＹＰ１９Ａ１）がステロイド生成に関与する。アドレノドキシン（ＡＤＸ）および３−β−ヒドロキシステロイドデヒドロゲナーゼ１（３βＨＳＤ１）はプロゲステロン合成に関与し、一方、チトクロームＰ４５０アロマターゼ（ＣＹＰ１９Ａ１）は顆粒膜細胞においてアンドロゲンをエストラジオール−１７βに代謝する。アドレノドキシン（ＡＤＸ）はフェレドキシンファミリーのメンバーであり、ミトコンドリアのチトクロームＰ_４５０のための電子伝達系における構成要素である。ミトコンドリアにおいて、プレグネノロンが、ＡＤＸ、アドレノドキシントランスフェラーゼ、および同様に、チトクロームＰ_４５０−側鎖切断（チトクロームＰ_４５０ｓｃｃ）によってコレステロールから産生される。その後、プレグネノロンは顆粒膜細胞において３βＨＳＤによってプロゲステロンに代謝され得る。

ｈＣＧ投与後、ＡＤＸのｍＲＮＡ発現がラットの顆粒膜細胞において強くアップレギュレーションされ、処置後４時間で最大の発現に達する。その後、ｍＲＮＡ発現は排卵まで徐々に低下する（ｈＣＧ後１２時間）（ＥｓｐｅｙＬＬ、ＲｉｃｈａｒｄｓＪＳ（２００２）、ＢｉｏｌＲｅｐｒｏｄ、６７、１６６２〜７０）。同様に、ＬＨまたはｈＣＧはラットの顆粒膜細胞における３βＨＳＤのｍＲＮＡ発現の主要な刺激因子であり、また、ＡＤＸのように、３βＨＳＤのｍＲＮＡ発現が排卵前に低下する。ウシの顆粒膜細胞における３βＨＳＤの発現は、優位な卵胞において、他の劣位な卵胞よりも高く、このことは、３βＨＳＤが、優位な卵胞の選択機構に関連し得ることを示唆する。さらには、他の研究では、優位な卵胞はヒトの顆粒膜細胞において３βＨＳＤの発現を要求することが示された。Ｐ４５０アロマターゼ（ＣＹＰ１９Ａ１）は、優位な卵胞においてＦＳＨによって刺激され、高濃度で発現されることが広く知られている。従って、これら３つの酵素のより高い発現レベルは、ステロイドホルモン（エストロゲンおよびプロゲステロン）の産生に対する、また、おそらくは卵胞優位機構に対するホルモン誘導（ＦＳＨおよびＬＨ）に関係づけられるようである。

ヒト顆粒膜細胞におけるＳＥＲＰＩＮＥ２（Ｐ＝０．０４９９）およびｃｄｃ４２（Ｐ＝０．０３９６）のｍＲＮＡのレベルもまた、妊娠をもたらした卵胞と相関づけられた。ＳＥＲＰＩＮＥ２は、標的酵素を阻害するために立体配座の変化を使用するプロテアーゼ阻害剤のファミリーのメンバーである。セルピン類は、至る所に存在するようであり、多くの細胞機能（例えば、アポトーシスおよびクロマチン凝縮など）に関与する。ＳＥＲＰＩＮＥ２の発現がウシにおける優位な卵胞においてより高く、ＦＳＨによって増大し、しかし、ＬＨサージ後に低下する。ｃｄｃ４２は、多くの細胞機能に関与するＧＴＰ結合タンパク質のＲｈｏファミリーメンバーのメンバーである。ｃｄｃ４２はアポトーシス進行の速度を遅らせることができ、従って、プログラム化された細胞死に影響を及ぼす。

適格な卵胞においてより多く発現されること（Ｐ＜０．０５）、または、適格な卵胞においてより多く発現される傾向があること（０．０５＞Ｐ＞０．２）が見出された遺伝子の大多数は、ＬＨ（ｈＣＧ）サージによって誘導されること（３βＨＳＤ、ＡＤＸ、ＥＧＲ１、ＳＥＲＰＩＮＥ２、ＰＧＫ１、ＲＧＳ−２、ＳＥＲＰＩＮＡ３）、または、優位な卵胞において発現されること（３βＨＳＤ、ＳＥＲＰＩＮＥ２、ＣＹＰ１９）、または、卵胞の発達に関与すること（ＮＲＰ−１）、または、抗アポトーシス的役割に関与すること（ｃｄｃ４２）のどれかが知られている。しかしながら、卵母細胞の応答能の良好な指標物であることが見出された遺伝子のいくつかについては、それらの発現が、排卵のとき、より低いことが報告される（ＣＹＰ１９Ａ１、３βＨＳＤ、ＡＤＸ（ＥｓｐｅｙＬＬ、ＲｉｃｈａｒｄｓＪＳ（２００２）、ＢｉｏｌＲｅｐｒｏｄ、６７、１６６２〜７０）、ＳＥＲＰＩＮＥ２、ＥＧＲ１、ＮＲＰ−１、ＲＧＳ−２）。

黄体形成プロセスが排卵前に始まることが広く知られている。ヒトのＩＶＦでは、卵巣刺激プロトコルの期間中に、ＬＨ／ｈＣＧの高濃度での注射により、顆粒膜細胞の初期黄体形成を刺激することができる。本研究では、適格な卵母細胞を生じさせる卵胞に由来する顆粒膜細胞において選択される遺伝子は、ＬＨ／ｈＣＧによって誘導されることが知られている。しかしながら、アドレノドキシン（ＥｓｐｅｙＬＬ、ＲｉｃｈａｒｄｓＪＳ（２００２）、ＢｉｏｌＲｅｐｒｏｄ、６７、１６６２〜７０）、ＣＹＰ１９Ａ１、ＳＥＲＰＩＮＥ２のような一部の遺伝子は、黄体を形成する初期段階で発現されることが知られている。ＬＨサージの後では、適格な卵胞は、黄体形成プロセスを迅速に開始させている卵胞であり得る。

別の考えられる仮説は、優位な卵胞が排卵前のＬＨサージの前にＬＨ受容体を徐々に獲得することであり得る。ＬＨ受容体のｍＲＮＡ発現が卵胞の直径の増大とともに直線的に増大する。従って、過剰排卵プロトコルの関連において、優位な卵胞に類似する特徴を有する卵胞が、より多くのＬＨ受容体を含有する。受容体の脱感作がアゴニストの解離によって達成される。しかしながら、ｈＣＧ／ＬＨはＬＨ受容体との高い親和性を有するので、アゴニストの解離は不可逆的であると見なされる。従って、受容体とのＬＨの会合、脱感作、リン酸化および内在化は、ＬＨ受容体の存在の重要な制御である。このプロセスは受容体の活性化の後における細胞応答を制限することができる。高濃度のＬＨ／ｈＣＧは受容体内在化の大きな負のフィードバックを生じさせ、その後、ＬＨに対する標的細胞の脱感作を生じさせる。従って、卵胞刺激プロトコルの関連において、ＬＨに対する最も大きい感受性を有する卵胞は、ＬＨ誘導可能な遺伝子の増大した発現により最も強く応答する卵胞であると考えられる。

まとめると、マイクロアレイ法は、新しい遺伝子を発見するための、また、卵母細胞の応答能に関する情報を提供するための非常に有用なツールである。この技術は、適格な卵母細胞に関連する顆粒膜細胞のトランスクリプトームを明確にすることを助け、同様にまた、良好な妊娠率をもたらす健全な卵母細胞／胚の選択を改善することを助ける。適格な卵胞において発現される遺伝子に関する情報はまた、機構が十分に理解されると、ヒト患者におけるホルモン処置の精緻化を助ける。

適格な卵母細胞に関連するヒト卵胞細胞における患者内マーカー
卵胞細胞の回収
壁顆粒膜細胞を、ＯｔｔａｗａＨｏｓｐｉｔａｌ（カナダ）の不妊症センターにおいてＩＶＦ処置を受けている女性（ｎ＝４０）から得た。卵管性不妊症、原因不明の不妊症（これには、子宮内膜症（Ｉ期／ＩＩ期／ＩＩＩ期）、および、ＩＣＳＩを必要としないパートナーが含まれる）などの、ＩＶＦのための主要な適応症を有する女性が研究に対して募集された。多嚢胞性卵巣症候群（ＰＣＯ）の患者、または、ＩＣＳＩを必要とする重篤な男性要因を有するパートナーは研究には含まれなかった。手法が、ＯｔｔａｗａＨｏｓｐｉｔａｌの研究倫理委員会からの承認により行われた。

卵巣刺激の後、卵胞液、卵胞細胞、および、個々の卵胞に由来する卵母細胞を、二重管ニードルを使用する超音波誘導の卵胞吸引によって集めた。卵母細胞および周囲の卵丘細胞をＩＶＦ手法のために取り出した。壁顆粒膜細胞の回収を、実施例１において以前に記載されたように行った。回収手法の後、細胞を液体窒素で急速冷凍し、ＲＮＡ抽出まで液体窒素中で保存した。

それぞれの卵胞からもたらされるデータ（受精、胚発達、胚形態学、移植および妊娠）が発生学者によって記録された。この研究に募集された４０名の患者から、本発明者らは、成功した妊娠を有する胚をもたらした卵胞に由来する卵胞細胞（陽性サンプル）、および、その発達を８細胞段階の前に停止させた胚をもたらした卵胞（陰性サンプル）の両方を生じさせた患者を選択している。９名の患者から得られたサンプルはこれらの基準と一致していた。これら９名の患者から、３個〜１１個の範囲の卵胞が患者あたり平均して６．４４個の卵胞について吸引され、平均して３．７７個の胚が女性あたり得られた。使用されたＩＶＦプロトコルに依存して、１個または２個の胚（平均して１．６７個）が３日目（７名の患者）または５日目（２名の患者）のどちらかで移植された。合計で５個の陽性サンプルおよび９個の陰性サンプルがＱ−ＰＣＲ分析のために役立った。妊娠が、８名の患者については６週〜８週での超音波による胎児鼓動の存在によって確認され、１名の患者については生化学的妊娠によって確認された。

ＲＮＡの抽出
顆粒膜細胞からの総ＲＮＡを、１ｍｌのＴｒｉｚｏｌ試薬（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、Ｂｕｒｌｉｎｇｔｏｎ、カナダ）を製造者のプロトコルに従って用いて抽出した。その後、ＲＮＡを、ＤＮＡｓｅ処理を必要に応じて伴うＲＮｅａｓｙ総ＲＮＡクリーンアッププロトコル（Ｑｉａｇｅｎ）を使用してさらに精製した。ＲＮＡサンプルの濃度および完全性を、２６０ｎｍでの分光光度法により、また、ＲＮＡサンプルについてのアリコートをＲＮＡ６０００ＮａｎｏＬａｂＣｈｉｐ（ＡｇｉｌｅｎｔＴｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）で処理するＡｇｉｌｅｎｔＢｉｏａｎａｌｉｓｅｒ２１００（ＡｇｉｌｅｎｔＴｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）で評価した。無傷の１８Ｓピークおよび２８Ｓピークを示したＲＮＡのみをリアルタイムＰＣＲ分析のためにｃＤＮＡに逆転写した。

リアルタイムＰＣＲ
プライマーの設計および配列は実施例１において以前に記載されている。リアルタイム分析では、個々の卵胞に由来する壁顆粒膜細胞のそれぞれのサンプル（陽性サンプルおよび陰性サンプル）が、実施例１において既に記載された同じプロトコルにより測定および比較された。β−アクチン、グリセロアルデヒド−３−リン酸デヒドロゲナーゼ（ＧＡＰＤＨ）およびユビキチンのハウスキーピング遺伝子が、ＲＮＡの質の安定性を確認するために評価された。

分析
患者内リアルタイムＰＣＲによる妥当性確認
異なる陽性サンプルおよび陰性サンプルについての遺伝子発現安定性の分析を、ｇｅＮｏｒｍソフトウエアを使用して行った。この分析は、２つの理想的な内部コントロール遺伝子の発現比率が、実験条件または細胞タイプにかかわらず、すべてのサンプルにおいて同一であり、対数変換された発現比率の標準偏差として求められるという原理に依拠する。このソフトウエアを使用して、内部コントロール遺伝子の安定性（Ｍ値）を、特定の遺伝子の、残りの遺伝子に関しての平均対偏差として計算し、ランクづけをこれらの値に基づいて行った。最も安定な参照遺伝子が、安定性が最も小さい遺伝子を段階的に排除し、Ｍ値を再計算することによって特定された。

この分析により、妊娠の結果を伴う胚または胚発達が不良の胚を生じる個々の卵胞に由来する顆粒膜細胞について、各患者のｍＲＮＡを定量化することができる。

患者内比率
比率を、リアルタイムＰＣＲによる正規化されたｍＲＮＡ定量化の間で計算した（陽性胚／陰性胚）。同じ患者における比率１および比率２が陽性胚１または陽性胚２に関してそれぞれ計算される。

これらの結果により、本発明者らは、陽性胚と、陰性胚との間でのｍＲＮＡレベルの比率を、同じ患者において個々に比較することができる。

主成分分析（ＰＣＡ）およびペアードｔ検定分析
６名の患者は、２つの胚が移植され１つの妊娠の結果となった。本発明者らは、移植された胚についての真の陽性および偽陽性を識別するために主成分分析（ＰＣＡ）を使用した。ＰＣＡ分析では、ユークリッド距離が使用される。同じ患者に由来する陽性胚と、陰性胚との間での最も接近した距離が、偽陽性であると見なされ、それよりも遠い距離が、真の陽性であると見なされる。偽陰性のデータは統計学的分析のためには棄却される。

この分析はさらなる統計学的分析のために必要である。ＰＣＡ分析の後、有意な差を、真の陽性胚と、陰性胚との間において示す遺伝子を明らかにするためにペアードｔ検定を行うことができる。

遺伝子発現と、妊娠との間における連関をさらに検討するために、本発明者らは条件的ロジスティック回帰のモデルを行った。このモデルでは、細胞の状態を遺伝子発現の関数で予測することができる。データが対照・事例タイプ（それぞれの女性が陽性細胞（事例）および陰性細胞（対照）を有する）ので、本発明者らは、遺伝子の発現と、細胞の状態との間における関係を調べるために条件的ロジスティック回帰を使用する。この分析を行うために、本発明者らは正確推定法を使用する。

２つの遺伝子が有意な関係を示す（ｐ値＜０．０５％）。例えば、本発明者らは、確率のロジットと、遺伝子ＲＧＳ２についての発現のｌｏｇとの間における関係の傾きを２．９１において推定する。ＲＧＳ２についての発現のｌｏｇが１単位ほど大きくなるとき、確率のロジットが２．９１増大する（確率は、そのロジットと同じ様式で変化する）。さらには、この分析に関連するオッズ比により、ＲＧＳ２遺伝子についてのｌｏｇ発現の１単位による増大は、正となるべき確率オッズに１８．３を乗ずることが示される。

加法的確率
１．５または２．０のカットオフ比を用いて、本発明者らは、１つ、２つまたは３つの遺伝子の組合せを行った。百分率を、真の陽性胚および陰性胚により得られた比率を用いてそれぞれの遺伝子について計算した。これらのデータは、真の陽性である、比率が１．５または２．０よりも大きい患者の百分率を示す。

これらの確率を用いて、本発明者らは、妊娠を予測するために、遺伝子のより適切な組合せの考えを有することができる。

本発明がその具体的な実施形態に関連して記載されているが、本発明はさらなる改変が可能であり、従って、本出願は、本発明の何らかの変化、使用または適合化を包含するために意図され、この場合、そのような変化、使用または適合化は、一般には本発明の原理に従うこと、また、本発明が関係する技術分野における既知の実施または慣例的な実施の範囲内に入るような、また、本明細書中前記において示される本質的特徴、および、添付された請求項の範囲においては下記のような本質的特徴に適用され得るような本開示からの逸脱を含むことが理解される。

Claims

患者から得られた卵母細胞の、体外受精（ＩＶＦ）、子宮着床および／または出生時の生個体への発達のための応答能を明らかにするための顆粒膜細胞マーカーであって、ＣＹＰ１９Ａ１、ＣＤＣ４２、ＤＰＹＳＬ３、３βＨＳＤ１、ＥＲＥＧ、ＳＥＲＰＩＮＥ２、ＳＣＡＲＢ１、ＩＮＨＢＡ、ＳＰＲＹ２、ＢＡＣＨ２、ＩＬＳＴ６、ＡＤＸ、ＴＮＦＡＩＰ６、ＳＥＲＰＩＮＡ３、ＥＧＲ１、ＮＲＰ１、ＲＧＳ２およびＰＧＫ１、それらの全長ｃＤＮＡクローンならびにそれらの組合せから選択される少なくとも１つのポリヌクレオチドまたはポリペプチドを含む、顆粒膜細胞マーカー。
前記卵母細胞が哺乳類に由来する、請求項１に記載の顆粒膜細胞マーカー。
前記卵母細胞および顆粒膜細胞マーカーが１個の卵胞に由来する、請求項２に記載の顆粒膜細胞マーカー。
前記ポリヌクレオチドがＤＮＡ配列またはＲＮＡ配列である、請求項１〜３のいずれか一項に記載の顆粒膜細胞マーカー。
患者から得られた卵母細胞の、ＩＶＦ、子宮着床および／または出生時の生個体への発達のための応答能を明らかにするための方法であって、前記患者から得られた顆粒膜細胞に由来する顆粒膜細胞マーカーの発現レベルを明らかにすることを含み、前記マーカーが、ＣＹＰ１９Ａ１、ＣＤＣ４２、ＤＰＹＳＬ３、３βＨＳＤ１、ＥＲＥＧ、ＳＥＲＰＩＮＥ２、ＳＣＡＲＢ１、ＩＮＨＢＡ、ＳＰＲＹ２、ＢＡＣＨ２、ＩＬＳＴ６、ＡＤＸ、ＴＮＦＡＩＰ６、ＳＥＲＰＩＮＡ３、ＥＧＲ１、ＮＲＰ１、ＲＧＳ２およびＰＧＫ１、それらの全長ｃＤＮＡクローンならびにそれらの組合せから選択される少なくとも１つのポリヌクレオチドまたはポリペプチドを含み、卵母細胞の顆粒膜細胞に由来する前記マーカーの発現レベルが前記卵胞に由来するコントロール顆粒膜細胞の前記マーカーの発現レベルよりも高いことにより、子宮着床および生個体への発達に対する前記卵母細胞の適格性が表される、方法。
前記患者が哺乳類である、請求項５に記載の方法。
発現レベルをコントロール顆粒膜細胞の発現レベルと比較すること、および、有意な変化を比率または絶対量を使用して示し、卵母細胞の応答能を反映させることを含む、請求項５または請求項６に記載の方法。
前記卵母細胞および前記顆粒膜細胞が１個の卵胞に由来する、請求項５〜７のいずれか一項に記載の方法。
顆粒膜細胞が排卵前の卵胞液の吸引によって得られる、請求項５〜８のいずれか一項に記載の方法。
ＡＤＸ、ＣＹＰ１９Ａ１、ＣＤＣ４２、ＳＥＲＰＩＮＥ２および３βＨＳＤ１の発現レベルが明らかにされる、請求項５〜９のいずれか一項に記載の方法。
ＣＹＰ１９Ａ１、ＣＤＣ４２、ＤＰＹＳＬ３、３βＨＳＤ１、ＥＲＥＧ、ＳＥＲＰＩＮＥ２、ＳＣＡＲＢ１、ＩＮＨＢＡ、ＳＰＲＹ２、ＢＡＣＨ２、ＩＬＳＴ６、ＡＤＸ、ＴＮＦＡＩＰ６、ＳＥＲＰＩＮＡ３、ＥＧＲ１、ＮＲＰ１、ＲＧＳ２およびＰＧＫ１から選択される少なくとも２つのマーカーの発現レベルが明らかにされる、請求項５〜９のいずれか一項に記載の方法。
ＣＹＰ１９Ａ１、ＣＤＣ４２、ＤＰＹＳＬ３、３βＨＳＤ１、ＥＲＥＧ、ＳＥＲＰＩＮＥ２、ＳＣＡＲＢ１、ＩＮＨＢＡ、ＳＰＲＹ２、ＢＡＣＨ２、ＩＬＳＴ６、ＡＤＸ、ＴＮＦＡＩＰ６、ＳＥＲＰＩＮＡ３、ＥＧＲ１、ＮＲＰ１、ＲＧＳ２およびＰＧＫ１から選択される少なくとも３つのマーカーの発現レベルが明らかにされる、請求項５〜９のいずれか一項に記載の方法。
卵母細胞のＩＶＦ、子宮着床または出生時の生個体への発達のための応答能に対して刺激性または阻害性である化合物をスクリーニングするための方法であって、下記の工程：
ａ）顆粒膜細胞を、卵母細胞のＩＶＦ、子宮着床または出生時の生個体への発達のための応答能を刺激または阻害する活性についてスクリーニングすべき化合物により処理する工程；
ｂ）前記顆粒膜細胞における請求項１に定義される少なくとも１つのマーカーの発現レベルを明らかにする工程；
ｃ）工程ｂ）で測定された発現レベルを、コントロール顆粒膜細胞の発現レベルと比較し、卵母細胞の応答能を反映させる工程
を含む、方法。
コントロール顆粒膜細胞におけるマーカーの発現レベルで割った、処理された顆粒膜細胞におけるマーカーの発現レベルの比率が１．５よりも大きいことにより、前記マーカーの発現における前記化合物の刺激性作用が示され、また、前記比率が１未満であることにより、阻害性作用が示される、請求項１３に記載の方法。
前記処理がインビトロまたはインビボで行われる、請求項１４に記載の方法。