JP2010022279A - スフィンゴ脂質富化麹とその製造方法 - Google Patents

Abstract

【課題】大量かつ安定的に、安全なスフィンゴ脂質を製造する方法を提供する。
【解決手段】蒸きょうした製麹原料に麹菌を植菌して培養を行う製麹において、盛り以降の工程を、湿度７５％以上の条件下で、場合により製麹時間が計４６時間以上となるまで、行うことを特徴とする、スフィンゴ脂質富化麹の製造方法。
【選択図】なし

Description

本発明は、スフィンゴ脂質富化麹及びその製造方法に関する。

スフィンゴ脂質とは、スフィンゴイド塩基（長鎖塩基）を構造骨格としてもつ複合脂質の総称である。動物細胞のスフィンゴ脂質の骨格はスフィンゴシンであるが、植物や真菌では主にフィトスフィンゴシンである（非特許文献１）。

スフィンゴ脂質には、スフィンゴイド塩基のアミノ基にアシル基がアミド結合したセラミドや、セラミドに糖、リン、硫黄、アミノ酸など様々な極性基が付加した複合スフィンゴ脂質などがある。なかでも糖が結合したスフィンゴ糖脂質は、真核生物やバクテリアの一部などに普遍的に存在しており、糖鎖部分の構造は様々であることが知られている。グルコースが結合したグルコシルセラミドは、セレブロシドとも呼ばれ植物、真菌、動物に共通してみられる代表的なスフィンゴ糖脂質である（非特許文献２）。

セラミドはヒトの皮膚の角質層の細胞間脂質の主成分として約５０％を占め、皮膚の保湿性や柔軟性にかかわっていると言われている。加齢により減少し、しわ、ドライスキン、肌荒れの原因となるほか、アトピー性皮膚炎にも関与していると考えられている。従来はセラミドを補充する方法として、安価な供給源である牛脳由来のスフィンゴ脂質が用いられていたが、ＢＳＥ（牛海綿状脳症）発症の原因であるプリオンが脳幹部位に蓄積していることが明らかとなって以来、食品・化粧品用途での利用は不可能となっている。また、合成セラミドは安全性の観点から食品素材としては利用の制限がある。

牛脳の代替供給源として、現在では主に農産加工副産物である大豆油さいやビール粕、米や小麦などの穀類の胚芽、コンニャク芋などが利用されているが、含有量が微量であり、食品としてそのまま利用しにくいことから、有機溶媒などによる抽出・濃縮が行なわれている。このため製造に多大なコストがかり、製品が非常に高価であるという問題があった（特許文献１、２）。

また、酵母、キノコなどの真菌類からもセレブロシドの抽出が行われている。酵母においてはセレブロシドが存在する種は限られているため（非特許文献３）、サッカロミセス・クルイベリ（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｋｌｕｙｖｅｒｉ）などのセレブロシド生産菌を用いて、ビートモラセスを炭素源とし、様々な環境ストレスを与えることによりセレブロシドの生産量、蓄積量を高める製造方法も検討されている（特許文献３）。酵母は高温培養時には菌体量あたりのスフィンゴ脂質が増加し、低温培養時には減少することが分かっている（非特許文献４、５）。このように、培養条件の違いによって、菌体量あたりのスフィンゴ脂質量は変動することが知られている。しかしながら、この方法においても有機溶媒抽出や冷凍処理などが用いられており、工程が煩雑であり、多大なコストがかかるほか、環境への負荷も懸念されるなどの問題があった。

国内で伝統的な発酵食品の製造に利用されてきた麹菌についても、液体培養時にセラミドやセレブロシドといったスフィンゴ脂質を生産するという報告がある（非特許文献６、７）。しかし、仮に麹菌の液体培養において培養条件の検討を行い、麹菌のスフィンゴ脂質含量を増加させたとしても、菌体だけをろ過回収して食するような食経験が無いため、有機溶媒抽出等の処理が必要となり、前述のような問題点が生じる。

一方で、麹菌の固体培養物は、伝統的に「麹」として丸ごと食する食習慣があるため、食品として麹菌スフィンゴ脂質を利用するには非常に適している。そのため固体培養によってスフィンゴ脂質量を増大させる方法の確立が望まれている。

しかしながら固体培養時、すなわち麹にした際のスフィンゴ脂質の生産能力や分子種についての報告は無く、高生産のための培養条件の検討はもちろん、麹をスフィンゴ脂質供給源として利用するための検討さえ行なわれてきていない。

麹菌による固体培養（すなわち、製麹）について述べると、水分量や湿度、時間、温度等の培養条件に関する検討は、一般に穀物の糖質や蛋白質を分解する酵素を生産させるためや、種麹となる胞子を着生させることが目的で行われてきた。

一般的な製麹法では、床もみ（すなわち種麹植菌）を行った後、蒸米を堆積し、布などで包む等して乾燥を防いで湿度を維持し、かつ乾燥が進む原因となる手入れをほとんど行わず、切り返しを行うのみで培養を行う。引き続いて「盛り」とは、床もみ後、一般的には１８〜２０時間前後になって、麹菌の生育が旺盛になりかけたものを麹蓋に入れる等、小区分に分けて品温管理をし易くする作業を指す。麹蓋に入れて棚培養する工程は、麹を薄く盛り、麹の水分蒸発を進める工程でもある。盛りまでを「床時代」、盛り以降を「棚時代」と呼ぶ。棚培養期間中に適宜麹をかき混ぜ、酸素の供給や炭酸ガスの排出とともに水分を発散させて、品温・状貌の均一化をはかる。非特許文献８によると、麹菌植菌後２３〜２８時間後に麹をかき混ぜる操作を仲仕事、または昼仕事といい、仲仕事後５〜７時間目に攪拌する操作を仕舞仕事または留仕事という。また、麹菌の代謝によっても水分が生じるため、製麹後半では麹室内の乾湿差を多く取り、通風製麹の場合は培養３５時間頃から発酵熱により品温が上昇するため、送風を行う事で品温を下げるとともに水分の発散を促している（非特許文献８）。

また培養水分量や湿度に関しては、伝統的にも限定吸水などによって蒸米水分を３０％前後に制御し、製麹の後半（盛り以降）は麹室あるいは培養室の湿度を低下させて麹の水分含量を低下させ、酵素生産量を高める方法が採用されている。さらに、非特許文献８によると、「一般的にいって、湿気の多い麹は酵素力が弱く、粕が多く、清酒の色も濃い。また雑菌も多いので好ましくない。乾燥して、よくはぜた麹は酵素力が強く、清酒の色も淡く、味も軽い。」とある。すなわち水分が多いと酵素活性が低下してしまうので、製麹後半に麹の水分含量を低下させる方法が採用されてきた。

製麹の後半に水分含量を低下させる事は、蒸発潜熱により品温の過昇を防ぐ以外に、麹の保存性を高める目的もある。非特許文献９によると、製麹中に品温を下降させる手段として、最も有効なのは蒸発潜熱を奪うことであり、蒸発潜熱を奪うために最も効率がよいのは、環境の相対湿度を低くすることであると記載されている。

このため、通常の製麹法では、製麹により水分が蒸発するため、白米麹では蒸米水分が３５％であれば、出麹水分は１８％程度となり、醤油麹では初期水分が４５％前後であれば、出麹水分は３０％前後となる（非特許文献８、非特許文献１０）。また製麹日数が長く、１週間となる種麹作成後の水分含量も２５％程度と、仕込み時の水分含量より大きく減少している。

製麹時間については、非特許文献８によると、「米麹の製造は麹菌分生子（種麹）を蒸米に植えつけ、３０℃から４０℃にわたる温度経過を経て、約４０時間の培養によって行われる。」、「製麹時間の標準は酒母麹で４８時間、掛麹で４３時間内外である。」とある。つまり製麹時間は白米麹の場合、４３〜４８時間が一般的である。

醤油麹などでは４日麹のように長時間（３日間）培養するものがある。また種麹作成のように長い特殊な場合では１週間程度製麹するものがある。これらは蛋白分解酵素（酸性カルボキシペプチダーゼ等）を高生産させること、あるいは胞子（分生子）を着生させることが目的である。これら製麹においても後半は麹室あるいは培養室の湿度を低下させて麹の水分含量を低下させる。

このように、製麹時間については従来製麹の目的が酵素生産、あるいは胞子生産であることから、一般的には４３〜４８時間程度、醤油麹の場合は２〜３日程度、種麹作製のように特殊な場合では１週間とされてきた。

以上のように、従来の産業利用上の製麹では、スフィンゴ脂質含量を高くするという観点で製麹条件（固体培養条件）の検討はなされていない。

特開平４−２８２３１７号公報 特開平１１−２７９５８６号公報 特開２００５−１８５１２６公報 Ｃｈｅｍ．Ｐｈｙｓ．Ｌｉｐｉｄｓ，５，６−４３（１９７０） ＣＭＬＳ，Ｃｅｌｌ．Ｍｏｌ．Ｌｉｆｅ Ｓｃｉ．，６０，９１９−９４１（２００３） ＦＥＭＳ Ｙｅａｓｔ Ｒｅｓｅａｒｃｈ，２，５３３−５３８（２００２） Ｔｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ Ｏｆ ＢＩＯＬＯＧＩＣＡＬ ＣＨＥＭＩＳＴＲＹ，２７２，４８，３０１９６−３０２００，１９９７ ＪＯＵＲＮＡＬ ＯＦ ＯＬＥＯ ＳＣＩＥＮＣＥ，５３，３，１２７−１３３（２００４） 日本農芸化学誌，第４９巻，第４号，２０５−２１２（１９７５） Ｂｉｏｃｈｉｍｉｃａ ｅｔ Ｂｉｏｐｈｙｓｉｃａ Ａｃｔａ，４８６，１６１−１７１（１９７７） 麹学，日本醸造協会発行，村上英也 編著（１９８６） 新・みそ技術ハンドブック，全国味噌技術会発行（２００６） 増補 醤油の科学と技術，日本醸造協会発行、栃倉辰六郎 編著

スフィンゴ脂質を効率的に取得するためには、真菌類などの微生物を供給源とすることが適している。しかし、酵母やキノコ類を供給源とした場合、その形態や香味ゆえにいずれも食品としてはそのまま使用しづらく、有機溶媒等による濃縮が必須となるために、食品としては極めて高価なものになることから利用の制限があった。また麹菌は液体培養においてスフィンゴ脂質を生産することが知られるが、食用産業利用上有利な固体培養でスフィンゴ脂質を高生産するための最適な方法がなかった。

したがって、本発明は、麹菌の固体培養によって、煩雑な工程を経ることなく、また食品組成物としてそのまま用いるために有機溶媒抽出や濃縮などを行うことなく、大量かつ安定的に、安全なスフィンゴ脂質を製造する方法を提供することを目的とする。

本発明者らは、上記課題を解決するべく鋭意検討を重ねた結果、驚くべきことに、製麹における盛り以降の工程を、高湿度条件下で、場合により一般的な製麹時間（例えば４６時間）よりも長い時間行うことにより、スフィンゴ脂質量を通常よりも顕著に増大できることを見出した。

すなわち、本発明は以下の特徴を包含する。
（１）蒸きょうした製麹原料に麹菌を植菌して培養を行う製麹において、盛り以降の工程を、湿度７５％以上の条件下で行うことを特徴とする、スフィンゴ脂質富化麹の製造方法。
（２）盛り以降の工程を湿度８５％以上の条件下で行うことを特徴とする上記（１）記載の方法。

（３）製麹時間が計４６〜１６０時間であることを特徴とする上記（１）記載の方法。
（４）植菌後１８〜３２時間の時点で製麹温度を３８〜４２℃とすることを特徴とする、上記（３）記載の方法。
（５）麹菌はアスペルギルス・オリゼ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ）又はアスペルギルス・ソーエ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｓｏｊａｅ）であることを特徴とする上記（１）記載の方法。

（６）製麹原料はイネ科植物であることを特徴とする上記（１）記載の方法。
（７）イネ科植物は米又は大麦であることを特徴とする上記（１）記載の方法。
（８）蒸きょうした製麹原料の水分量が３０〜３６重量％であることを特徴とする上記（１）記載の方法。

（９）スフィンゴ脂質はセレブロシドであることを特徴とする上記（１）記載の方法。
（１０）上記（１）〜（９）のいずれか記載の方法で製造されたスフィンゴ脂質富化麹。
（１１）乾燥重量１ｇ当たり少なくとも１３６μｇ以上のスフィンゴ脂質を含有することを特徴とする上記（１０）記載のスフィンゴ脂質富化麹。
（１２）上記（１０）又は（１１）記載のスフィンゴ脂質富化麹を含有する飲食品。

本発明によれば、簡便かつ安価で、安全なスフィンゴ脂質富化麹を製造することができる。

本明細書で使用する「製麹」とは、蒸きょうした製麹原料に麹菌を植菌して培養する、当業者に公知の製麹方法（例えば、蓋麹法、箱麹法、床麹法、機械麹法など）を指す。これらの製麹方法は、蒸きょうした製麹原料に麹菌を植菌した後に培養する工程を含み、その間、一般的に「引き込み」、「盛り」、「仲仕事」、「仕舞仕事」といった処理を含んでいる。

「盛り」とは、「床もみ」（すなわち種麹植菌）後、麹菌の生育が旺盛になりかけたものを小区分に分けて品温管理をしやすくする作業を指す。一般的に製麹において、盛りまでを「床時代」、盛り以降を「棚時代」と呼ぶ。床時代とは床もみを行った後、蒸した製麹原料を堆積し、布などで包むなどして湿度を維持し、乾燥を防ぐ工程であり、乾燥が進む原因となる手入れをほとんど行わず、切り返しを行うのみで培養を行う。

本明細書において、植菌後から盛りまでの工程（すなわち床時代）を製麹前半、盛り以降の工程（すなわち棚時代）を製麹後半と称する。

製麹前半における製麹温度は、使用する麹菌の菌体生育の至適温度に応じて、一般的には２８〜４２℃、例えば３０〜３７℃とされる。ただし、製麹前半の製麹温度をおよそ３８℃以上の比較的高温とする場合、麹菌が生育阻害を受ける虞がある。なお、製麹温度とは、麹の品温を意味する。製麹温度は、麹菌の生育に伴う発酵熱を制御することによって、又は製麹における周囲温度を制御することによって調節することができる。

製麹前半の所要時間は、一般的には１８時間〜２０時間である。生育が旺盛になった状態のまま長時間放置すると発酵熱を除くことができず、品温が制御できなくなるうえに、原料が密集しているため製麹の生育が抑制されてしまうため、この時点で盛りを行い、製麹後半に移行する。

一方、製麹後半は、麹を薄く盛り、麹の水分蒸発を進める工程であり、この培養工程の中で、「仲仕事」、「仕舞仕事」と呼ばれる手入れ作業が行われる。上記非特許文献８によれば、出麹までに蒸発する総水分量の７５％が仲仕事までの間に蒸発することが記載されている。

製麹の詳細については、例えば上記非特許文献８及び発酵ハンドブック（（財）バイオインダストリー協会 発酵と代謝研究会編，２００１年）などを参照されたい。

本発明のスフィンゴ脂質富化麹の製造方法（以下、本発明の方法ともいう）において、下記で特に規定されない限り、製麹を上記のような当業者に公知の製麹と同様にして行うことができること、当業者は適宜上記条件を変更できることに留意すべきである。

具体的に、本発明の方法は、製麹において、製麹後半を湿度７５％以上の条件下で行うことを特徴とする。これにより、製麹後半における麹水分の蒸散を抑制することができ、その結果、スフィンゴ脂質の生産を増加することができる。清酒、醤油麹の製造などに使用されている従来の製麹技術は、上記の通り、酵素生産量の増加及び保存性を高める観点から製麹後半において湿度を低下させることによって麹の水分含量を低下させている点で、本発明の方法と異なる。

製麹後半は、湿度８５％以上の条件下で行うことがより好ましい。湿度７５％以上の条件は、従来の製麹技術と比較して製造される麹中のスフィンゴ脂質含量を増加させるのに十分であるが、下記実施例に示されるように、製麹後半における相対湿度を８５％以上にすることにより、製造されるセレブロシド量をより増加させることができる。

本発明の方法はまた、製麹において、製麹後半を、製麹時間が計４６時間以上となるまで行うことを特徴とする。これにより、製造される麹に含まれるスフィンゴ脂質の量を経時的に増加させることができる。従来の製麹技術は、湿度を高く維持したまま通常の４３〜４８時間（醤油麹の場合は２〜３日間）の製麹時間を越えるような培養を行なっていない点で、本発明の方法と異なる。本発明の方法における製麹時間の上限は特に制限されず、スフィンゴ脂質の量が経時的に増加する限り製麹後半を継続することができる。本発明において、製麹時間は、例えば計４６〜１６０時間、より好ましくは７２〜１６０時間とすることができる。

本発明の方法において、製麹前半における湿度条件は特に制限されず、従来の製麹と同様の条件で行うことができる。ただし、本発明の方法により製造される麹は、上記の通り出麹水分の減少が抑制されたものであることが好ましいところ、製麹前半においても高湿度条件、例えば湿度７５％以上、好ましくは湿度８５％以上の条件下で行うことが好ましい点に留意する。本発明において、製麹を通じて湿度が８５％以上に維持されることが最も好ましい。

また本発明の方法において、従来の製麹時間を越えるような製麹時間で製麹後半を行う場合には、植菌後１８〜４０時間、好ましくは植菌後１８〜３２時間の時点で製麹温度を３８〜４２℃に温度シフトすることが好ましい。従来の製麹時間よりも長時間で製麹後半を行う場合には、麹の味覚上好ましくない胞子の着生の問題が顕著となる。そこで、植菌後１８時間〜４０時間、好ましくは植菌後１８〜３２時間の時点で、製麹温度を３８〜４２℃に温度シフトすることにより、胞子の着生を抑制することができる。

本発明の方法において、蒸きょうした製麹原料の水分量が３０〜３６重量％であることが好ましい。蒸きょう後の製麹原料の水分量が３０％以下であるか又は３６％以上であると、麹菌の立ち上がりが抑制されてしまう虞があるからである。

本発明の方法で使用される製麹原料は、麹菌を生やして麹にできるものであれば特に制限されず、例えば穀類、擬穀類、豆類、ゴマ類、芋類等を使用することができる。具体的に、穀類としては、白米、玄米、黒米、赤米、大麦、小麦などを、擬穀類としてはソバ、アマランサス、キヌアなど、豆類としては大豆、小豆、黒豆、ヒヨコ豆などを挙げることができるが、これらに限定されるものではない。麹の原料として穀類、例えばイネ科植物を使用することが好ましく、イネ科植物として白米や、大麦などの麦類を使用することが特に好ましい。

本発明の方法に用いることができる麹菌は、スフィンゴ脂質を生産できるものであれば特に限定されないが、例えばアスペルギルス・オリゼ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ）や、その近縁のアスペルギルス・ソーエ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｓｏｊａｅ）などを挙げることができる。Ａ．オリゼとして具体的には市販の種麹や、登録番号ＲＩＢ４０、ＮＢＲＣ４２１４、ＪＣＭ２２２８又はＡＴＣＣ３６２６１で指定される特定の菌株などを用いることができる。また、Ａ．ソーエとしては、市販の種麹や、登録番号ＪＣＭ２２２６、ＮＢＲＣ４２３９又はＮＢＲＣ５２４１で指定される特定の菌株などを用いることができる。Ａ．オリゼとしてＮＢＲＣ４２１４、ＪＣＭ２２２８が、そしてＡ．ソーエとしてＪＣＭ２２２６が白米、大麦の両方の麹においてセレブロシド生産量が高いことから、本発明で使用するのに特に適している。また、上記麹菌以外の麹菌として、大麦麹の場合にＡ．オリゼ登録番号ＮＢＲＣ４２５５、ＡＴＣＣ１１４９４、ＡＴＣＣ１６８６８、ＮＢＲＣ５７８６、ＪＣＭ２２４５、ＮＢＲＣ５２４０などを、米麹の場合にＡ．オリゼ登録番号ＪＣＭ２２２７、ＪＣＭ２１７３、ＪＣＭ２２２９、ＮＢＲＣ４２６１などを使用することができる。

上記のようにして製造される麹は、スフィンゴ脂質（特にセレブロシド）を豊富に含むものである。具体的には、従来の製麹時間、製麹湿度にて製麹された麹に比べて、スフィンゴ脂質の総量を約１．７倍〜約６．７倍まで高めることができる。また、本発明の方法により製造されるスフィンゴ脂質富化麹は、乾燥重量１ｇ当たり少なくとも１３６μg以上、好ましくは２４８μg以上のスフィンゴ脂質を含むことができる。なお、麹中のスフィンゴ脂質の量は、薄層クロマトグラフィー、高速液体クロマトグラフィーなどを使用することによって測定することができる。

このように、本発明の方法は、煩雑な条件でストレスをかける工程などを必要とせず、製造されるスフィンゴ脂質富化麹も、有機溶媒を用いた抽出や、濃縮をすることなく、そのまま飲食品として提供することができるため、労力とコストを低減でき、なおかつ安全性が高いといった利点を有する。また、食品用途に供することを踏まえ、長時間培養であっても、植菌後１８〜４０時間、好ましくは植菌後１８〜３２時間の時点で製麹温度を３８〜４２℃に温度シフトすることにより、味覚的に望ましくない胞子の着生を抑制することができるという利点も有する。

したがって、本発明は、本発明に係るスフィンゴ脂質富化麹を含有する飲食品を包含する。

本発明に係る飲食品は、飲食品原料の一部として用いたり、或いは飲食品の製造工程又は製造後に添加又は配合することにより得ることができる。本発明に係る飲食品は、健康食品、機能性食品、特定保健用食品、栄養補助食品などとして提供することもできる。

本発明に係る飲食品の形態は特に制限されず、例えばこれに制限されるものではないが、ヨーグルト、ドリンクヨーグルト、ジュース、牛乳、豆乳、酒類（アルコール性飲料）、コーヒー、紅茶、煎茶、ウーロン茶、スポーツ飲料等の各種飲料や、クッキー、パン、ケーキ、煎餅などの焼き菓子、羊羹などの和菓子、プリン、ゼリー、アイスクリーム類などの冷菓、チューインガム、キャンディ等の菓子類や、クラッカー、チップス等のスナック類や、うどん、そば等の麺類や、かまぼこ、ハム、魚肉ソーセージ等の魚肉練り製品や、みそ、しょう油、ドレッシング、マヨネーズ、甘味料等の調味類や、豆腐、こんにゃく、その他佃煮、サラダ、スープ等の各種総菜などを例示することができる。

また、飲食品中の有効成分としてのスフィンゴ脂質富化麹の摂取量は、通常、２．４〜４．８ｇ／日、好ましくは４．４〜８．８ｇ／日程度とすることができる。

以下、実施例により本発明をより具体的に説明するが、本発明の技術的範囲はこれらの例示に限定されるものではない。

Ａ．オリゼは液体培養時、グルコシルセラミドやセラミドといったスフィンゴ脂質を生産することが知られており、Ａ．ニガー（Ａ．ｎｉｇｅｒ）はその他にガラクトシルセラミドも生産するという報告がある（上記非特許文献２）。すなわち、麹菌は種によって異なる分子種を生産すると考えられる。現在、各種麹菌が上記以外に、どのような複合スフィンゴ脂質を生産しているかについては未解明であるため、以下の実施例では、代表的な麹菌としてＡ．オリゼを選び、スフィンゴ脂質の中でも分析例が多いグルコシルセラミド、すなわちセレブロシド量を測定することで、総スフィンゴ脂質量の評価を行った。

[実施例１] 米麹セレブロシド標準品の精製と構造解析
米麹セレブロシド標準品の調製法を以下に示した。Ａ．オリゼ（Ａ．ｏｒｙｚａｅ）を使用して製麹した米麹５．４ｋｇを粉砕し、５倍量のクロロホルム−メタノール（２：１）で２回抽出、濾過して得られた抽出液を濃縮、乾固後、０．２Ｍ ＫＯＨ−メタノール溶液にて３７℃で２時間振盪し、グリセロ脂質を分解しアルカリ安定脂質を得た。中和後、濃縮、乾固し、クロロホルム−メタノール−０．８％ＮａＣｌ（８：４：３）に再溶解した。振盪混合し、遠心分離後、下層を濃縮した。

これをケイ酸カラムクロマトグラフィーに供し、クロロホルム-メタノールを用いて遊離脂肪酸等を除いた。再度ケイ酸カラムクロマトグラフィーに供した後、セレブロシド画分として白色の固形油脂状物４０７．９ｍｇを得た。その後、わずかに混在する遊離脂肪酸を除去するため、さらにＨＰＬＣ−示差屈折検出器（(株)島津製作所製）を用いて精製を行なった。カラムはＹＭＣ Ｐａｃｋ ＯＤＳ−Ａ；２０×２５０ｍｍ、カラムオーブンは４０℃、移動相にはメタノールを用いて、アイソクラティック溶出を行い、流速６ｍｌ／ｍｉｎとした。得られた精製品は、薄層クロマトに供したところ単一スポットとなり、また以下に示したように主要分子がグルコシルセラミドと同定されたため、これを標準品としてセレブロシドの定量を行った。

主要分子種の構造解析を行った。すなわち、ＨＰＬＣ−示差屈折検出器（（株）島津製作所製）を用いて、前述の条件で、精製セレブロシドに含まれる主要分子を分取した。得られた主要３分子（保持時間２８．７分、３２．１分、３７．４分）について、以下に示すように構造解析を実施した。

保持時間２８．７分の分子をメタノールに溶解し、ＨＲＥＳＩ−ＭＳ（＋）を測定した。この結果ｍ／ｚ ７７６．５７４５６に（Ｍ＋Ｎａ）^＋イオンが観測され、分子式はＣ_４３Ｈ_７９ＮＯ_９（Ｃ_４３Ｈ_７９ＮＯ_９Ｎａ ｃａｌｄ ７７６．５６５２５ （D＋４．５７ｍｍｕ）と決定した。

次にこの分子を重ピリジン（Ｃ_６Ｄ_５Ｎ）に溶解し、核磁気共鳴（ＮＭＲ）解析を行った。^１Ｈ及び^１３Ｃ ＮＭＲスペクトルの特徴からこの分子がセレブロシドであると同定された。まず糖部分の^１Ｈ、^１３Ｃ化学シフト値及びＪ_ＨＨ値から、構成糖はグルコースであり、これがβ−結合（Ｊ_{１”，２”}＝７．８Ｈｚ）で長鎖塩基と結合していること（＝β−グルコシルセラミド）が判明した。次に^１Ｈ−^１Ｈ ＣＯＳＹ、ＨＭＱＣ、ＨＭＢＣスペクトルを測定し、脂肪酸及び長鎖塩基部分の構造について解析を行った。

脂肪酸については^１Ｈ−^１Ｈ ＣＯＳＹスペクトルにおいてＨ−２’（δ５．１０）−Ｈ−３’（δ６．１０、Ｊ_{３’，４’}＝１５．７Ｈｚ）−Ｈ−４’（δ６．１６）というｖｉｃｉｎａｌ ｓｐｉｎ結合が観測されること、また^１Ｈ ＮＭＲで末端メチルはδ０．８５にｔｒｉｐｌｅｔとして観測されることから、直鎖の２−ヒドロキシ、３−トランス脂肪酸であることが明らかとなった。次に脂肪酸の炭素数を明らかにするために、この分子をメタノール性０．９Ｎ ＨＣｌを用いて１００℃、１８時間還流することで分解（メタノリシス）し、脂肪酸メチルエステルとした。ヘキサン抽出で脂肪酸メチルエステルを精製後、これをトリメチルシリル（ＴＭＳ）誘導体化し、ＧＣ／ＭＳ解析を実施した。この結果、ｍ／ｚ ３６９に（Ｍ−１５）^＋のピークが観測され、この分子を構成する脂肪酸炭素数はＣ１８と決定した。

長鎖塩基については^１Ｈ−^１Ｈ ＣＯＳＹスペクトルにおいてＨ−１（δ４．２３、δ４．６９）−Ｈ−２（δ４．７９）−Ｈ−３（δ４．７４）−Ｈ−４（δ５．９９、Ｊ_４，５＝１５．８Ｈｚ）−Ｈ−５（δ５．９２）−Ｈ−６（δ２．１４）−Ｈ−７（δ２．１４）−Ｈ−８（δ５．２４）というｖｉｃｉｎａｌ ｓｐｉｎ ｎｅｔｗｏｒｋが観測されること及びＨＭＢＣスペクトルで９−ＣＨ_３（δ１．６０）からＣ−８（δ１２３．３）、Ｃ−９（δ１３．５）に^１Ｈ−^１３Ｃ遠隔スピン結合が観測されることから、９−メチル−４トランス、８−トランス−スフィンガジエニン構造を有していることが明らかとなった。また^１Ｈ ＮＭＲで末端メチルはδ０．８５にｔｒｉｐｌｅｔとして観測されるため、アルキル鎖部分は直鎖であることも明らかであった。この時点で既に脂肪酸の炭素数は明らかとなっているため、長鎖塩基を構成する炭素数は分子式から糖（Ｃ６）及び脂肪酸（Ｃ１８）の炭素数を引いたＣ１８であると決定された。その結果、この分子の構造は図１に示すように１８ｈ：１−９Ｍｅ ｄ１８：２^{４ｔ，８ｔ}−Ｇｌｃであることが一義的に決定された。また、この構造は真菌類に特徴的な構造であった（非特許文献２）。

保持時間３２．１分の分子をメタノールに溶解し、ＨＲＥＳＩ−ＭＳ（＋）を測定した。この結果、ｍ／ｚ ７７８．５８４０３に（Ｍ＋Ｎａ）^＋イオンが観測され、分子式はＣ_４３Ｈ_８１ＮＯ_９（Ｃ_４３Ｈ_８１ＮＯ_９Ｎａ ｃａｌｄ ７７８．５８０９０ （D＋３．１３ｍｍｕ）と決定した。

次にこの分子を重ピリジン（Ｃ_６Ｄ_５Ｎ）に溶解し、核磁気共鳴（ＮＭＲ）解析を行った。^１Ｈ及び^１３Ｃ ＮＭＲスペクトルは１８ｈ：１−９Ｍｅ ｄ１８：２^{４ｔ，８ｔ}−Ｇｌｃ（保持時間２８．７分）によく類似していた。糖部分の^１Ｈ、^１３Ｃ化学シフト値及びＪ_ＨＨ値はほぼ同一であることから、構成糖はグルコースであり、これがβ−結合（Ｊ_{１”，２”}＝７．８Ｈｚ）で長鎖塩基と結合していること（＝β−グルコシルセラミド）が判明した。次に^１Ｈ−^１Ｈ ＣＯＳＹ、ＨＭＱＣ、ＨＭＢＣスペクトルを測定し、脂肪酸及び長鎖塩基部分の構造について解析を行った。

脂肪酸については^１Ｈ−^１Ｈ ＣＯＳＹスペクトルにおいてＨ−２’（δ４．５６）−Ｈ−３’（δ２．１２）というｖｉｃｉｎａｌ ｓｐｉｎ結合が観測されたこと、また^１Ｈ ＮＭＲで末端メチルがδ０．８５にｔｒｉｐｌｅｔとして観測されることから、直鎖の２−ヒドロキシ脂肪酸であることが明らかとなった。次に脂肪酸の炭素数を明らかにするためにメタノリシスを行い、脂肪酸メチルエステルとした。ヘキサン抽出で脂肪酸メチルエステルを精製後、これをトリメチルシリル（ＴＭＳ）誘導体化し、ＧＣ／ＭＳ解析を実施した。この結果、ｍ／ｚ ３７１に（Ｍ−１５）^＋のピークが観測され、この分子を構成する脂肪酸炭素数はＣ１８と決定した（＝２−ヒドロキシステアリン酸）。

長鎖塩基については^１Ｈ−^１Ｈ ＣＯＳＹスペクトル及びＨＭＢＣスペクトルにおいて１８ｈ：１−９Ｍｅ ｄ１８：２^{４ｔ，８ｔ}−Ｇｌｃとまったく同じ相関が認められることから、この分子の長鎖塩基も９−メチル−４トランス，８−トランス−スフィンガジエニン構造を有していることが明らかとなった。また^１Ｈ ＮＭＲで末端メチルはδ０．８５にｔｒｉｐｌｅｔとして観測されるため、アルキル鎖部分も直鎖であることも明らかであった。既に脂肪酸の炭素数は明らかとなっているため、長鎖塩基を構成する炭素数は分子式から糖（Ｃ６）及び脂肪酸（Ｃ１８）の炭素数を引いたＣ１８あると決定された。その結果、この分子の構造は図１に示すように１８ｈ：０−９Ｍｅ ｄ１８：２^{４ｔ，８ｔ}−Ｇｌｃであることが一義的に決定された。また、この構造は真菌類に特徴的な構造であった（非特許文献２）。

保持時間３７．４分の分子をメタノールに溶解し、ＨＲＥＳＩ−ＭＳ（＋）を測定した。この結果、ｍ／ｚ ７９２．６０１５８に（Ｍ＋Ｎａ）^＋イオンが観測され、Ｆ５の分子式はＣ_４４Ｈ_８３ＮＯ_９（Ｃ_４４Ｈ_８３ＮＯ_９Ｎａ ｃａｌｄ ７９２．５９６５５（Δ＋０．９４ｍｍｕ）と決定した。

次にこの分子を重ピリジン（Ｃ_６Ｄ_５Ｎ）に溶解し、核磁気共鳴（ＮＭＲ解析）を行った。^１Ｈ及び^１３Ｃ ＮＭＲスペクトルは１８ｈ：０−９Ｍｅ ｄ１８：２^{４ｔ，８ｔ}−Ｇｌｃ（保持時間３２．１分）によく類似していた。糖部分の^１Ｈ、^１３Ｃ化学シフト値及びＪ_ＨＨ値についても１８ｈ：０−９Ｍｅ ｄ１８：２^{４ｔ，８ｔ}−Ｇｌｃと同一であることから、構成糖もグルコースであり、これがβ−結合（Ｊ_{１”，２”}＝７．８Ｈｚ）で長鎖塩基と結合していること（＝β−グルコシルセラミド）が判明した。次に^１Ｈ−^１Ｈ ＣＯＳＹ、ＨＭＱＣ、ＨＭＢＣスペクトルを測定し、脂肪酸及び長鎖塩基部分の構造について解析を行った。

脂肪酸については^１Ｈ−^１Ｈ ＣＯＳＹスペクトルにおいて１８ｈ：０−９Ｍｅ ｄ１８：２^{４ｔ，８ｔ}−Ｇｌｃと同様にＨ−２’（δ４．５６）−Ｈ−３’（δ２．１２）というｖｉｃｉｎａｌ ｓｐｉｎ結合が観測されること、また^１Ｈ ＮＭＲで末端メチルがδ０．８５にｔｒｉｐｌｅｔとして観測されることから、直鎖の２−ヒドロキシ脂肪酸であることが明らかとなった。次に脂肪酸の炭素数を明らかにするために、メタノリシスを行い、脂肪酸メチルエステルとした。精製後トリメチルシリル（ＴＭＳ）誘導体化し、ＧＣ／ＭＳ解析を実施した。この結果、ｍ／ｚ ３９９に（Ｍ−１５）^＋のピークが観測され、Ｆ５を構成する脂肪酸炭素数はＣ２０と決定した（＝２−ヒドロキシアラキジン酸）。

長鎖塩基については^１Ｈ−^１Ｈ ＣＯＳＹスペクトルでＨ−１（δ４．２３、δ４．６９）−Ｈ−２（δ４．７９）−Ｈ−３（δ４．７４）−Ｈ−４（δ５．９９、Ｊ_４，５＝１５．８Ｈｚ）−Ｈ−５（δ５．９２）−Ｈ−６（δ２．１６）−Ｈ−７（δ２．１６）−Ｈ−８（δ５．４６）−Ｈ−９（δ５．４６）というｖｉｃｉｎａｌ ｓｐｉｎ ｎｅｔｗｏｒｋが観測されること及び１８ｈ：０−９Ｍｅ ｄ１８：２^{４ｔ，８ｔ}−Ｇｌｃで観測された９−ＣＨ３の信号が観測されないことから、４トランス、８−トランス−スフィンガジエニン構造を有していることが明らかとなった。また^１Ｈ ＮＭＲで末端メチルはδ０．８５にｔｒｉｐｌｅｔとして観測されるため、アルキル鎖部分は直鎖であることも明らかであった。既に脂肪酸炭素数は明らかとなっているため、長鎖塩基を構成する炭素数は分子式から糖（Ｃ６）及び脂肪酸（Ｃ２０）の炭素数を引いたＣ１８であると決定され、この結果、この分子の構造は図１に示すように２０ｈ：０ ｄ１８：２^{４ｔ，８ｔ}−Ｇｌｃであることが一義的に決定された。また、この構造は真菌類及び植物に特徴的な構造であり（非特許文献２）、米由来のセレブロシドも含まれていると考えられる。

続いて、セレブロシドの精製品をＬＣ／ＭＳ（ＬＣＭＳ−２０１０ＥＶ島津製作所）によって分析し、主要３分子の量比を調べた。イオン化モードはＥＳＩ（−）、カラムはＣａｄｅｎｚａ ＣＤ−Ｃ１８ １５０×２ｍｍ、移動相はＴＨＦ／メタノール（１／９ ｖ／ｖ）を用いてアイソクラティック溶出を行い、流速は０．２ｍｌ／ｍｌとした。その結果、それぞれの分子種の量比は、以下のとおりであることが示唆された。このことから、真菌に特徴的な分子である１８ｈ：０−９Ｍｅ ｄ１８：２^{４ｔ，８ｔ}−Ｇｌｃが、米麹中のセレブロシドの大半を占めることが示された。

[実施例２] 米麹、大麦麹中のセレブロシド含量の測定法
実施例３〜７におけるセレブロシドの定量は、各検体から有機溶剤を用いて抽出後、実施例１で得られたセレブロシドを標準品として用い、薄層クロマトグラフィー（ＴＬＣ）又は高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）によって行った。ＴＬＣとＨＰＬＣのどちらの測定法においても、定量値がほぼ一致していることを確認した（図２）。

また、麹からのセレブロシドの抽出は以下に示すように単回または、繰り返し抽出により行った。単回抽出は、より簡便な方法によって、各実験区におけるセレブロシド含量の比較を行うために実施し、繰り返し抽出は実際に麹に含まれるセレブロシド含量を定量する目的で実施した（実施例３〜６については単回抽出を行い、実施例７については繰り返し抽出を行った）。各抽出法で得られる定量値について、比較データの一例を図２に示した。検討の結果、麹中のセレブロシド含量によって、単回抽出の抽出効率は変動し、繰り返し抽出で得られる米麹中のセレブロシド含量は、単回抽出で得られる定量値の約１．５〜２倍程度に相当することが示された。

単回抽出によるセレブロシド量の測定法を以下に示した。麹を凍結乾燥後、粉砕物１ｇに対してクロロホルム−メタノール溶液（２：１）３ｍｌを添加し、４０℃で３０分間超音波処理を行った。これを遠心分離して得られた上清１ｍｌに対し、０．８％ＮａＣｌ溶液を２５０μｌ添加後、振盪混合した。これを遠心分離して得られた下層を回収し、一定量を測定に用いた。

繰り返し抽出による総セレブロシド含量の測定法を以下に示した。米麹を凍結乾燥後、粉砕物１ｇに対し、クロロホルム−メタノール溶液（２：１）３ｍｌを添加し、４０℃で３０分間超音波処理を行い、遠心分離後に上清を得た。計３回の抽出を行った後、上清全量に１／４量の０．８％ＮａＣｌ溶液を添加し、振盪混合した。これを遠心分離して得られた下層を回収した。上清にクロロホルムを添加して、さらに２回の抽出を行った。下層全量を一定量に合わせ測定を行い、１ｇあたりに含まれるセレブロシド量を算出した。

ＴＬＣ−デンシトメトリー法によるセレブロシド定量法を以下に示す。抽出した試料をケイ酸薄層クロマトグラフィー（メルク社製、商品名：ＨＰＴＬＣ ｓｉｌｉｃａ−６０ Ｆ２５４）にかけた。クロロホルム−メタノール（９５：１５）で展開後、オルシノール硫酸試薬（オルシノール：０．２％ ｗ／ｖ、 硫酸：１１．４％ ｖ／ｖ）を噴霧し、加熱後に出現する赤紫色のセレブロシドのスポットについて、デンシトメトリーを用いて定量を行った。

ＨＰＬＣ−コロナＣＡＤ検出器によるセレブロシド定量法を以下に示した。定量法は、ＨＰＬＣ−蒸発光散乱検出器法（Ｊ．Ｏｌｅｏ Ｓｃｉ．， Ｖｏｌ．５３，Ｎｏ．３， ｐ．１２７−１３３， ２００４）を基に、より検出感度を上げるために検出部分を改良して行った。すなわち移動相は、Ａ液：クロロホルム、Ｂ液：９５％メタノール、を用いて、グラジエント溶出を行った。

カラムは、シリカカラム：Ｉｎｅｒｔｓｉｌ ＳＩＬ−１００Ａ （４．６×１５０ｍｍ、５μｍ）を用い、カラムオーブン：４０℃、流速：１ｍｌ／ｍｉｎとした。また、検出器については蒸発光散乱検出器よりも感度、定量範囲、再現性が優れているとされるコロナＣＡＤ検出器を用いた。コロナＣＡＤ検出器は、ガス：窒素ガス、操作時ガス圧：３５ｐｓｉとした。

[実施例３] 各種麹菌のセレブロシド生産量
蒸米および蒸大麦に対し、各種市販種麹１０株及び菌株保存機関より入手した各種麹菌５５株（Ａ．ｏｒｙｚａｅ、Ａ．ｓｏｊａｅ）を０．１％の割合で接種し、品温３５℃、相対湿度８０％以上とし、４６時間製麹した。得られた麹を凍結乾燥し、粉砕後に乾燥麹中のセレブロシド量を実施例１の単回抽出及びＴＬＣによって測定した。

図３に、大麦麹及び米麹に含まれる各種麹菌（Ａ．ｏｒｙｚａｅ、Ａ．ｓｏｊａｅ）のセレブロシド生産量を示した。原料が米、大麦のいずれの場合においても、セレブロシド含量が高い株について、菌株名と入手元の菌株保存機関における識別番号を記した。Ａ．ｏｒｙｚａｅにおいてはＮＢＲＣ４２１４、ＪＣＭ２２２８、ＡＴＣＣ３６２６１を、Ａ．ｓｏｊａｅとしてはＪＣＭ２２２６が、米、大麦、いずれの培地においてもセレブロシド生産量が特に高いことが示された。また、全ての菌株において原料を大麦にした場合の方が、米の場合より生産量が高く（１．１倍〜４倍程度）なった。

[実施例４] 米麹、大麦麹での長時間培養のスフィンゴ脂質量の経時変化
蒸米に対して粉末型麹菌（Ａ．ｏｒｙｚａｅ：ＮＢＲＣ４２１４）、蒸大麦に対して粉末型麹菌（Ａ．ｏｒｙｚａｅ：市販種麹）をそれぞれ０．１％の割合で接種し、品温３５℃、相対湿度８５％以上とし、２４〜３２時間後に品温を４０℃として８８時間製麹した。製麹中に経時的に麹を採取、凍結乾燥し、乾燥麹中のセレブロシド量を実施例１の単回抽出及びＴＬＣによって測定した。

製麹中のセレブロシド量の経時変化を図４に示した。米麹、大麦麹どちらにおいても、上記培養条件によって麹中のセレブロシド量が経時的に増加することがわかった。

[実施例５] 温度シフト時間検討
温度シフトのタイミングの影響を評価するために、蒸大麦に対し、粉末型麹菌（Ａ．ｏｒｙｚａｅ：市販種麹）を０．１％の割合で接種し、品温３５℃、相対湿度８５％以上とし、２４、３２、４０時間後に品温を４０℃として８８時間製麹した。調製した大麦麹のセレブロシド量は実施例１の単回抽出及びＴＬＣによって測定した。

出麹サンプルのセレブロシド量を図５に示した。２４時間に温度シフトした場合は、６４時間製麹では３２〜４０時間にシフトした場合よりもわずかに低かったが、８８時間製麹では温度シフトのタイミングに関わらず、セレブロシド量はほぼ一定であった。

胞子着生スコアを表３に示す。２４〜３２時間に温度シフトした場合と比べて、４０時間にシフトした場合では胞子着生が多く、２４〜３２時間に温度シフトすることが好ましいと考えられた。

[実施例６] 米麹による湿度条件検討
温度シフト後の湿度の影響を評価するために、蒸米に対し、粉末型麹菌（Ａ．ｏｒｙｚａｅ：ＮＢＲＣ４２１４）を０．１％の割合で接種し、品温３５℃、相対湿度８５％以上とし、３２時間後に品温を４０℃とし、相対湿度を１００、９５、８５、７５、５０％として８８時間製麹した。相対湿度はそれぞれ、水、６．５％ＮａＯＨ、１５．８％ＮａＯＨ、飽和ＮａＣｌ、飽和硝酸カルシウム溶液を用いて調湿した。調製した米麹のセレブロシド量は、実施例１の単回抽出及びＴＬＣによって測定した。

製麹後半の相対湿度とセレブロシド量、出麹水分の関係を図６に示した。この結果より、温度シフト後の湿度に応じて出麹水分が低くなり、相対湿度が８５％以下になるとセレブロシド量も低下することがわかった。出麹水分は相対湿度に比例して低くなっており、８５％以下では麹中水分の減少によってセレブロシドの生産が抑制されたと考えられた。

[実施例７] （米麹による長時間製麹検討）
実施例１〜６の結果を踏まえ、製麹後半の湿度保持、高温条件下における長時間製麹検討を実施した。蒸米に対し、粉末型麹菌（Ａ．ｏｒｙｚａｅ：ＮＢＲＣ４２１４）を０．１％の割合で接種し、品温３５℃、相対湿度８５％以上とし、３２時間後に品温を４０℃として１６０時間製麹した。調製した米麹から、総セレブロシド含量を、実施例１の繰り返し抽出及びＨＰＬＣによって測定した。また対照として、一般的な製麹時間（４６時間）、湿度及び温度で製麹された市販麹についても、同様の測定法で総セレブロシド含量を測定した。

調製した米麹中のセレブロシド量の経時変化を図７に示した。市販麹に含まれる総セレブロシド量は８１μｇ／ｇ乾燥麹となった。これに対し、製麹後半の湿度保持、高温条件下における長時間製麹を行った場合、製麹４６時間における総セレブロシド量は１３６μｇ／ｇ乾燥麹となり、製麹時間が同じ市販麹と比較すると約１．７倍であった。さらに１６０時間製麹によって、総セレブロシド量は５４６μｇ／ｇ乾燥麹となり、市販麹の約６．７倍にまで達した。

このことから、本発明者らは、麹菌固体培養において、製麹後半の湿度保持、高温長時間製麹によって、胞子着生をせず、一般的な４６時間製麹と比較して、セレブロシド量が６．７倍増加することを見出した。

[比較例１] 各種液体培地における菌体あたりのセレブロシド量
培地条件の違いが菌体あたりのセレブロシド量に及ぼす影響を評価するために、ＣＺＡＰＥＫ ＤＯＸ培地（２％Ｇｌｕｃｏｓｅ、０．３％ＮａＮＯ_３、０．２％ＫＣｌ、０．１％ＫＨ_２ＰＯ_４、０．０５％ＭｇＳＯ_４・７Ｈ_２Ｏ）、デキストリン・ペプトン培地（２％デキストリン、１％ペプトン、０．５％ＫＨ_２ＰＯ_４、０．１％ＮａＮＯ_３、０．０５％ＭｇＳＯ_４・７Ｈ_２Ｏ）、麦芽エキス培地（２％モルトエキス）およびポテトデキストロース培地（２．４％ポテトデキストロース）に対し、胞子数が１０^５／ｍｌとなるように粉末型麹菌（Ａ．ｏｒｙｚａｅ：ＮＢＲＣ４２１４）を接種し、３０℃、１２０ｒｐｍで７２ｈｒ培養した。培養後、菌体を回収・洗浄後、凍結乾燥し、実施例１の単回抽出及びＴＬＣによって乾燥菌体あたりのセレブロシド量を求めた。

各培地における乾燥菌体あたりのセレブロシド量を図８に示す。図８から分かるとおり、酵母における報告と同様に、麹菌においても培地条件の違いによって菌体あたりのセレブロシド量が変動することがわかった。これは、単純に菌体量が増えればスフィンゴ脂質も増大するものではないことを示唆している。

本発明に係るスフィンゴ脂質富化麹の製造方法は、煩雑な工程を必要とせず、従来微生物によるスフィンゴ脂質製造において行われていたような、有機溶媒を用いた抽出や濃縮をすることも必要としないため、労力とコストを低減できるばかりでなく、食品組成物として安全性が高く、非常に有用なスフィンゴ脂質富化麹を提供することができる。

図１は、米麹由来のグルコシルセラミド主要分子種の構造を示す。 図２は、セレブロシドの測定における薄層クロマトグラフィー（ＴＬＣ）と高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）との比較を示す。 図３は、各種麹菌のセレブロシド生産量を示す。 図４は、本発明の方法による製麹におけるセレブロシド量の経時的変化を示す。 図５は、本発明の方法における温度シフト時間とセレブロシド量との関係を示す。 図６は、本発明の方法における相対湿度とセレブロシド量、出麹水分との関係を示す。 図７は、長時間湿度保持条件下での米麹中の総セレブロシド量の経時的変化を示す。 図８は、各種液体培地における乾燥菌体当たりのセレブロシド量を示す。

Claims (12)

1. 蒸きょうした製麹原料に麹菌を植菌して培養を行う製麹において、盛り以降の工程を、湿度７５％以上の条件下で行うことを特徴とする、スフィンゴ脂質富化麹の製造方法。
2. 盛り以降の工程を湿度８５％以上の条件下で行うことを特徴とする請求項１記載の方法。
3. 製麹時間が計４６〜１６０時間であることを特徴とする請求項１記載の方法。
4. 植菌後１８〜３２時間の時点で製麹温度を３８〜４２℃とすることを特徴とする、請求項３記載の方法。
5. 麹菌はアスペルギルス・オリゼ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ）又はアスペルギルス・ソーエ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｓｏｊａｅ）であることを特徴とする請求項１記載の方法。
6. 製麹原料はイネ科植物であることを特徴とする請求項１記載の方法。
7. イネ科植物は米又は大麦であることを特徴とする請求項６記載の方法。
8. 蒸きょうした製麹原料の水分量が３０〜３６重量％であることを特徴とする請求項１記載の方法。
9. スフィンゴ脂質はセレブロシドであることを特徴とする請求項１記載の方法。
10. 請求項１〜９のいずれか１項記載の方法で製造されたスフィンゴ脂質富化麹。
11. 乾燥重量１ｇ当たり少なくとも１３６μｇ以上のスフィンゴ脂質を含有することを特徴とする請求項１０記載のスフィンゴ脂質富化麹。
12. 請求項１０又は１１記載のスフィンゴ脂質富化麹を含有する飲食品。

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