JP2009540844A - 磁気共鳴画像法に用いる造影剤の送達 - Google Patents

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Abstract

低張緩衝液を用いた透析にさらされた赤血球は、超常磁性酸化鉄のナノ粒子を安定に取り込み、ＭＲＩ造影剤として使用できる。そのような赤血球は、薬物送達媒体としても使用できる。

Description

本発明は、ＭＲＩ造影剤の製剤と、そのような製剤の調製および使用とに関する。
臓器損傷または病理学的変異の検出、リンパ節の状態およびサイズ、出血をもたらす胃腸病変の検出、脳または他の組織における腫瘍塊の存在、腎病変、ならびに循環系の画像化を含む様々な用途に多くのＭＲＩ造影剤が利用可能である。
より一般的に使用されているＭＲＩ造影剤はガドリニウム（Ｇｄ）キレートであるが、これらは、非特異的な傾向があり、肝臓での急速な蓄積を伴い、それにより、短時間の画像化表示しか許容されない（Kubaska、２００１年）。ガドリニウムキレートは、間質への迅速な血液浸出を示し、腎臓によって迅速に放出される（ｔ１／２≒１．５時間−Allkemper、２００２年）。したがって、その使用は、必要な血管対組織造影（contrast)を提供するために、迅速な画像化技術と併用する必要がある。
近年、超常磁性ナノ粒子が生産され、ＭＲＩ造影剤として使用されている。超常磁性ナノ粒子は、ガドリニウム誘導体に優る、優れたＭＲＩ造影剤である。しかし、それらの界面化学および生体適合性を改善する多くの努力にもかかわらず、循環系におけるそれらの半減期は短く、そのような物質を貪食する組織マクロファージによって迅速に取り込まれる。
典型的なＳＰＩＯ造影剤の緩和度は、ガドリニウムなどの他の常磁性分子の緩和度より実質的に大きい（Jung、１９９５年）。超常磁性酸化鉄の粒子は、最初に臨床的に承認された肝臓特異的な造影剤であり（Low、１９９７年；Halavaara、２００２年）、最近の数年間では、腸造影（bowel contrast）、脾臓画像化、リンパ節画像化、骨髄画像化、灌流画像化（perfusion imaging)、およびＭＲＩ血管造影を含む、生命科学、生物工学、および生物医学的な用途のほとんどすべての領域で使用されている（Wang、２００１年）。
生物医学的用途に用いる磁性粒子の重要な特性には、無毒性、生体適合性、注入可能性（injectability）、および標的組織または臓器における高レベルな蓄積が含まれ、ナノ技術は今では、臨床用途のための磁性ナノ粒子の機能的特性を作製し、特徴付け、特異的に適合させることを可能にする段階にまで発展している。これは磁気共鳴画像法の質の改良と、様々な酸化鉄粒子の製造とをもたらした。
酸化第一鉄または酸化第二鉄は磁性粒子の主要成分であり、それらは、高磁束密度に誘引される場合には、薬物ターゲッティングおよび細胞選別（Ito、２００５年）を含む生物分離（bioseparation）に使用される。粒径はばらつきが大きく、それらの物理化学的および薬物動態学的な特性に影響を与える（Allkemper、２００２年）。現在、超常磁性薬剤の２つの主要な群、すなわち、サイズがコーティングを含めて５０ｎｍ超であるＳＰＩＯ（超常磁性酸化鉄）と、５０ｎｍより小さいＵＳＰＩＯ（微小超常磁性酸化鉄）との間で区別がなされている（Bonnemain、１９９５年）。サイズにおけるこの違いは、Ｒ２／Ｒ１緩和度の比における有意差によって反映されるだけではなく、血漿中半減期および生体分布における有意差によっても反映される（Bonnemain、１９９８年；Reimer、１９９８年）。
磁鉄鉱ナノ粒子に伴う引力による凝集は、静電二重層を生成させることによって、典型的には、ジメルカプトコハク酸（ＤＭＳＡ）（Morais、２００４年）、多糖重合体（デキストランまたはデキストラン誘導体）、デンプン、ポリビニルアルコール（ＰＶＡ）、ポリエチレンオキシド（ＰＥＯ）、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）などの立体安定化剤として機能する高分子界面活性剤を用いることによって、あるいはクエン酸またはシリカコーティングで等電点を修正することによって妨げられる（Cornell、１９９１年；Bacri、１９９０年）。最も一般的に使用される酸化鉄ナノ粒子は、デキストランコーティングされたものであり、生理的に良好に許容される（Babincova、２０００年）。
磁性体上に固定された薬物は、血管系を介して輸送され、外部磁場の作用の下に体内の特定の点に濃縮することができるので、磁性ナノ粒子は、所与の病状のための潜在的な標的特異的薬剤である。標的特異性を高めるために、上記薬物は、通常、標的部位に特異的に認識および結合できる別の分子に連結される。最も一般的なタイプの連結分子は、抗体（およびそれらの断片）、レクチン、タンパク質、ホルモン、荷電分子、および葉酸などの一部の低分子量リガンドである（Sudimack、２０００年；Petri-Fink、２００５年）。磁気薬物送達の広く公表されている例は、化学療法による治療／放射線療法による治療を代替するもの、または強化するものである（Lubbe、２００１年；Hilger、２００２年；Zhou、２００６年）。
ＳＰＩＯは、対象とする領域に上記粒子を輸送するために、血液循環を頼って静脈内注入してもよい。あるいは、多くの場合、治療が望まれている一般領域に上記粒子の懸濁液（磁性流体）を直接注入する。これらの経路はいずれも、粒子が凝集して、それら自体の拡散を阻止することがないという要件を有する。
一般組織塊への拡散は、おそらく、血管から組織空間への圧力勾配によって補助される。直径５０〜１００ｎｍのより大きな粒子は、この方法では輸送されず、血流内に残留したか、血管系の壁に付着して、血栓症の危険性が附随した（Berry、２００３年）。
さらに、ＳＰＩＯの静脈内投与の後、ＳＰＩＯは血漿タンパク質によって迅速にコーティングされる（Davis、１９９７年）。このオプソニン化過程は、上記粒子を、身体の主要な防御系である細網内皮系（ＲＥＳ）によって認識可能なものにする。ＲＥＳは、肝臓、脾臓、およびリンパ節の結合組織構成と結びついた、特殊化した食細胞の拡散系である（Kreuter、１９９４年；Araujo、１９９９年）。肝臓および脾臓のマクロファージ（クッペル）細胞は、オプソニン化された粒子の排除で重要な役割を演じている。したがって、ｉｎ ｖｉｖｏでのナノ粒子の適用には、粒子がＲＥＳに対して確実に安定となるようにする表面の改変が必要となる。文献は、様々な分子を用いたナノ粒子のコーティングと、血漿成分のオプソニン化を阻害して、それによって、より長い循環時間を可能にするのを試みる戦略との両方を報告している（Brigger、２００２年；Moghimi、２００１年）。
細網内皮系へのＳＰＩＯの取込み速度は、その粒径と逆の関係にある（Allkemper、２００２年）ので、粒子表面を最小にすることは、タンパク質吸着の低減をもたらし、これは粒子の食作用を低減させ、終には血管内での保持の長期化をもたらす。
磁性流体のパラメータ、注入時間および速度などの注入経路、ならびに生理的パラメータが何であれ、これらの新しい形態の薬理学的適用に関して、それらを考慮する必要がある。さらに、磁力によって誘導される薬物ターゲッティングの使用に関連した根本的な問題がある。例えば特定の細胞種へのターゲッティングは誘導コーティングを用いて可能となりうるが、細胞は受容体介在性エンドサイトーシスを自動的に開始する傾向があるので、いかなる長さの時間であれ、細胞膜の近傍に上記粒子を保持することは困難である（Wilhelm、２００３年）。
循環時間を長くするため、またはナノ粒子の標的特異性を高めるために、広範囲のサイズおよび材料が探索されてきたが、それらの適用は、循環している異物を除去する効率が高いＲＥＳによって制限されており、これの効果的な回避はいまだ可能となっていない（Gaur、２０００年）。
エントラップされた薬物の作用部位へのターゲッティングを得るために、赤血球に封入された（encapsulated）磁性流体に関する研究も行われている。Ｓｐｒａｎｄｅｌらは、赤血球ゴーストの磁化について記述しており、Ｖｙａｓらは、プレ・スウェル（pre-swell）技術を用いて、イブプロフェンおよび磁鉄鉱を赤血球に充填した。これらの研究は、ｉｎ ｖｉｔｒｏで行われ、赤血球に薬物および磁鉄鉱を封入することが可能であると報告した。しかし、該研究では、赤血球への磁鉄鉱の細胞傷害性および溶血性作用のため、封入された磁鉄鉱のほとんどすべての非常に高い流出が示された（Vyas、１９９４年）。
赤血球は、新規な薬物担体として提唱されており、薬物、酵素、およびペプチドなどの様々な生理活性物質の潜在的な生体適合性ベクターとして認識されている（Magnani、２００２年）。例えば米国特許第６１３９８３６号（Magnaniら）に記載の方法によって、薬物または生理活性薬剤の封入を行うことができる。一部の研究は、磁鉄鉱など、ある種の磁性流体と共に薬物を同時封入することによる、薬物ターゲッティング用の磁気反応性の赤血球の調製物を報告した（Vyas、１９９４年）。担体赤血球のさらに別の用途は、ＭＲＩの造影剤としてのそれらの潜在的な使用であり、例えば、ガドリニウムＤＴＰＡジメグルミン（Ｇｄ−ＤＴＰＡ）がヒトおよびラット赤血球内に封入されている（Johnson、１９９８年）。
超常磁性酸化鉄（ＳＰＩＯ）ナノ粒子を組み込んだ造影剤は、ＭＲＩを用いて標識細胞を可視化する手段としての展望を示している。最近、ＳＰＩＯナノ粒子は、限定されるものではないが、アテローム性動脈硬化、血栓症、および虚血を含む様々な心臓血管疾患の診断およびモニタリングに、ならびに細胞癌治療に提供されている。ＳＨＵ ５５５Ａ（Resovist（登録商標）、Schering社）などの市販されている標準的なＳＰＩＯは、プロトン緩和の極めて強力な賦活薬であるが、それらは数分間以内に血液から迅速に除去され、肝臓および脾臓の細網内皮細胞の中に蓄積されるので、静脈内投与後における極めて短い有用な半減期を有する。
米国特許出願公開第２００５／０２６１５７５号は、磁気で標識付けした細胞、対象物、および組織の陽性造影（positive contrast）ＭＲＩを開示する。
国際公開第２００６／０１２２０１号は、アテローム硬化斑を画像化するためのナノ粒子を開示する。
米国特許出願公開第２００４／００７６５８６号は、ナノ粒子を用いて薬学的に活性な物質を送達するための組成物および方法を開示する。
米国特許第６９３３３３１号は、薬物送達、造影剤、および生物医学インプラントに関するナノ技術を開示する。
米国特許第４６６９４８１号は、クロム標識された赤血球を用いた磁気共鳴画像法を開示する。
国際公開第２００６／０４８３２１号は、生体細胞内に導入できる、ナノ粒子を含む診断用作用物質を開示する。
国際公開第９１／１６０８０号は、造影剤として赤血球内に封入できるガドリニウムまたはヨウ素のキレートを開示する。
米国特許第５９２８９５８号は、３〜５０ｎｍの範囲および１０〜１００ｎｍの範囲のサイズを有する、鉄ベースの超常磁性粒子を記載する。
米国特許出願公開第２００６／００７８５０２号は、Ｇｄ３＋、Ｄｙ３＋、およびＦｅ３＋など、常磁性陽イオンの錯体を含むＭＲＩ造影剤を記載する。
薬物の誘導輸送および調節放出のための生体適合性磁気担体の開発において、鋭意努力がなされている。
驚いたことに、本発明者らはついに、透過性にする量の低張透析溶液の使用を介して、超常磁性酸化鉄の粒子を赤血球に封入できることを見出した。
したがって、第１の態様では、本発明は、ナノ粒子形態にあるサイトゾル超常磁性酸化鉄を含有する生存可能な（viable)赤血球を提供する。
超常磁性酸化鉄（ＳＰＩＯ）の量は、複数のそのような赤血球からなる調製物が個体に注入された際に、磁気共鳴画像法（ＭＲＩ）を可能にするのに十分な量で上記赤血球内に存在することが好ましい。上記赤血球内のＳＰＩＯの濃度が比較的低い場合、あるいはより少ない量の赤血球が使用される場合、ＭＲＩは、外部の磁気源を用いてＳＰＩＯ含有赤血球を特定の位置に誘引した後でのみ可能となりうる。熟練した者ならば適切なレベルを容易に認識できるであろうが、上記赤血球内のＳＰＩＯの量は、指針として、鉄の量に関して約１ｍＭから４０ｍＭの間でなければならず、好ましい範囲は約３ｍＭから２０ｍＭの間である。
本発明は、サイトゾルＳＰＩＯを含有する赤血球の調製物を提供することが理解されよう。そのような調製物は、ＭＲＩの目的で患者に注入するための即時使用に適切でありうる。または、そのような使用のために、後で調製してもよく、例えば、凍結乾燥された状態であってもよい。凍結乾燥される場合には、プロピレングリコールなど、膜分解を阻害または防止する１種以上の物質を上記調製物中に組み入れることが望ましい。
「サイトゾル」は、上記ＳＰＩＯ粒子が、例えば、エンドサイトーシスまたは食作用の過程によって得られるものなど、エンドサイトーシス小胞ではなくて、サイトゾル内に存在していることを意味する。
本発明の赤血球は、薬物送達媒体として上記赤血球を使用できるように、１種以上の薬物を含むことがさらに好ましい。そのような薬物は、上述の通りに使用してもよく、ＳＰＩＯ粒子に連結させても、赤血球表面または赤血球内に保持させてもよい。上記薬物は、外部の磁気の使用によって赤血球が特定の領域にターゲッティングされた場合に有効であるようなものであることが特に好ましく、外部の磁気の印加によって、ＳＰＩＯ粒子への作用を介して赤血球を破裂させるなどによって、上記薬物が放出されうることがさらに好ましい。
上記ＳＰＩＯ粒子は、限定されるものではないが、抗炎症薬および免疫抑制薬、すなわち、糖質コルチコイド類似体など；抗ウイルス薬または抗レトロウイルス薬、すなわち、ヌクレオシド／ヌクレオチド逆転写酵素阻害剤（ＮＲＴＩ）、非ヌクレオシド逆転写酵素阻害剤（ＮＮＲＴＩ）、プロテアーゼ阻害剤、および／または融合もしくは進入阻害剤など；抗癌剤、すなわち、化学療法薬、例えば、アントラサイクリン、インターカレート剤、チロシンキナーゼ阻害薬、メチルトランスフェラーゼ阻害剤、デアセチラーゼ阻害剤、およびプロテアソーム阻害剤など；オリゴヌクレオチド；モノクローナル抗体、ペプチドおよびペプチド核酸；光感作薬（photosensitizing drugs)；ならびに赤外蛍光剤を含むいくつかの部類の薬学的活性物質、成分、または薬物のうちの少なくとも１種と共に赤血球内に同時封入されうることが好ましい。上記のもののうちの任意のものの組合せまたは混合物も使用できることも好ましい。前記薬物の具体的な例は当業者には既知であろう。
例えば封入物質が外部放射線で局所加熱を引き起こす場合、薬物ターゲッティングおよび／または薬物放出および／または細胞破壊のために、ナノ粒子と、薬物および／または他のナノ材料とを赤血球内に同時封入することができる。
このようにして、その他の点では、非特異的であり、かつ他の組織に対して毒性でありうる薬物を慎重にターゲッティングすることができる。したがって、毒物、化学療法薬、および抗体は、本発明で使用することが好ましい薬物である。
「生存可能な」という用語は、赤血球を注入した宿主により未だ生存可能であると認識される赤血球を意味する。当技術分野で調製された鋸歯状赤血球（crenated erythrocytes）などの生存不能な赤血球、すなわち死んだ赤血球は、生存不能であると直ちに認識され、宿主系から排除される。本発明の赤血球の利点は、それらが排除されずに、何日間も生き残ることができ、しばしば、未処置の赤血球のものに匹敵する寿命を有することである。この点で、ＲＢＣ（赤血球）を安定した赤血球と呼ぶことができる。特に、上記ＲＢＣは免疫クリアランスを実質的に回避できること、および充填ＲＢＣのほぼ少なくとも５０％、より好ましくは少なくとも６０％から少なくとも７０％または８０％が、未改変のＲＢＣのものに匹敵する統計的に有意なｉｎ ｖｉｖｏ寿命を有することが好ましい。
ＲＢＣおよび赤血球という用語は、本明細書では同義的に使用される。
サイトゾル超常磁性酸化鉄は、本明細書では、封入または実質的に内在化された超常磁性酸化鉄、または封入または実質的に内在化されたＳＰＩＯも指し、小胞またはミセルＳＰＩＯとは区別される。上記粒子のサイズは、本明細書中において下記に論じるが、ＳＰＩＯに限定されず、サイズの範囲にはＵＳＰＩＯが含まれる。デキストランなどのいかなるコーティングも含めた各粒子の全サイズが、８０〜９０ｎｍ以下、好ましくは２０から６０ｎｍの間、より好ましくは３から５０ｎｍの間、より好ましくは１０から１００ｎｍの間、より好ましくは１０から３０ｎｍの間、より好ましくは２０から５０ｎｍより好ましくは５０から８０ｎｍの間、そして、最も好ましくは４０〜６０ｎｍの間であることが好ましい。
本発明のナノ粒子をＳＰＩＯＮ（ＳＰＩＯナノ粒子）ともいうことができることを理解されたい。
実施例の結果セクション内でさらに論じる通り、従来技術での以前の試みでは、細胞表面上に造影材料を示す赤血球をもたらした。
この膜修飾は、上記赤血球のオプソニン化による免疫クリアランスをもたらす。しかし、本発明は、造影剤ナノ粒子を赤血球の細胞質中に実質的に内在化させることによってこれを回避する。国際公開第２００６／０４８３２１号は、哺乳動物細胞（血球、したがって赤血球を含める）におけるナノ粒子の形態にある作用物質および診断作用物質の取込みに関する。しかし、同じ出願人および他者の最近の論文（Nano Letters 6, 2505-2509、２００６年）は、提案された方法が、膜に結合したナノ粒子を含有する赤血球を生成することを実証している。したがって、上記赤血球は表面が修飾されており、細胞表面の吸着された造影剤ナノ粒子の存在は免疫クリアランスをもたらす。したがって、この方法は生存可能な赤血球または安定血球をもたらさない。
国際公開第９１／１６０８０号（Guerbet）は、古く公開されたものであり、溶解再封技術によって赤血球内に封入された造影剤に関する。この出願の焦点は、造影剤としてのガドリニウムまたはヨウ素のキレートの使用に対するものである。超常磁性コロイドを含む造影剤に関する短い言及があるが、分散などの問題が無視されているという事実によって証明されるように、そのことのさらなる議論もなければ、これに関する実験的研究もない。さらに、ナノ粒子に関する言及もなされておらず、実際、これらの超常磁性コロイドの可能なサイズに関する参照も報告されていない。
この公開以来、超常磁性コロイドが実際に赤血球の相互作用および損傷をもたらしうることが明らかになっている。したがって、この公開は、生存可能な赤血球について教示しておらず、また、ナノ粒子の使用も記載していない。さらに、それらの封入方法は、溶解再封技術である。著者らは、ガドリニウムおよびヨウ素を用いたそれらの研究に基づいて、酸化鉄を含む他の造影剤も同様な挙動に従っていた可能性があると推測しているに過ぎない。しかし、最近の証拠（上記のNano Lettersの論文を含める）は、これに反することを教示しており、いまでは、ガドリニウムキレートおよびヨウ素含有分子に適したものに基づく条件は、ＳＰＩＯナノ粒子には適していないことが明確である。
対照的に、本発明者らは、驚くべきことに、ＳＰＩＯが以下の別々であるが相補的な利点のうちの少なくとも１つを提供できることを見出した。まず第一に、本発明の赤血球は、常磁性物質を充填された際に免疫系によって除去されない。これは、少量でさえ、それらの細胞表面に結合した常磁性物質を有する赤血球に優る重要な利点である。これは、改善されたｉｎ ｖｉｖｏ寿命を本発明の赤血球に提供し、それゆえ、遅延が起こりうる臨床環境におけるＭＲＩ診断に著しく役立ち、赤血球が体組織の深部に入るのを可能にするものでもある。実際、上記赤血球の安定性および生存率の増大は、同一の患者を経時的に何度もの機会において画像化することを可能にし、それによって、薬物効力を数日間わたってまたは何週間にさえわたって検査するのに使用できる継時撮影（time-lapsed）データセットを得ることが可能となる。
別の、そしてかなり予想外であった利点は、ＲＢＣ内に封入、すなわち充填された超常磁性ナノ粒子が、同一ＲＢＣ（赤血球）の懸濁液またはインタクトな血液に同量のナノ粒子を添加することによって測定したシグナルより有意に低減したＴ２ ＊緩和時間を生じる（同一条件下で）ことを本発明者らが発見したことである。Ｔ２ ＊緩和時間を低減させることによって、ＭＲＩ画像の解像度が改善される。これは、例えば、医師がさらに小さい腫瘍を検出するのに役立つ。
上記超常磁性ナノ粒子は、一般式Ｆｅ２ ３＋Ｏ３Ｍ２＋Ｏを有することが特に好ましく、式中、Ｍ２＋は、二価鉄イオン、マンガン、ニッケル、コバルト、またはマグネシウムなどの二価金属陽イオンである。
好ましくは、ＳＰＩＯは磁鉄鉱である。これは、金属イオン（Ｍ２＋）が二価鉄イオン（Ｆｅ２＋）であり、化学式ＦｅＦｅ２Ｏ４の超常磁性ナノ粒子を生じる場合に起こる。したがって、Ｍ２＋が二価鉄イオン（Ｆｅ２＋）であることが好ましい。
しかし、上記ＳＰＩＯは二価鉄イオンの代替物を含むことも好ましい。但し、これはＭ２＋に関するものであり、ＳＰＩＯは依然として酸化鉄であることが理解されよう。換言すれば、ＳＰＩＯの一般式Ｆｅ２ ３＋Ｏ３Ｍ２＋ＯのＦｅ２ ３＋要素ではなく、Ｍ２＋のみが置換される。したがって、他の非磁鉄鉱ベースのＳＰＩＯも好ましい。
したがって、Ｍ２＋が、以下の二価陽イオンのうちの少なくとも１つであること、すなわちマンガン、ニッケル、コバルト、およびマグネシウムからなる群から選択されることが特に好ましい。これは、Ｎａｔｕｒｅ Ｍｅｄｉｃｉｎｅ、第１３巻、第１号、９５〜９９頁、２００７年１月（Jae-Hyun Leeら）、およびＥｕｒ．Ｒａｄｉｏｌ．第１１巻、２３１９〜２３３１頁、２００１年（Yi-Xiang J.Wangら）に教示されている、ＭｎＦｅ２Ｏ４、ＮｉＦｅ２Ｏ４、ＣｏＦｅ２Ｏ４、およびＭｇＦｅ２Ｏ４を与える。マンガンは、その高い緩和値のため、強い磁気共鳴造影効果を提供するので特に好ましく、これはＭｎＦｅ２Ｏ４を与える。
本発明は、本明細書で定義する１つ以上の赤血球を調製する方法をさらに提供し、前記方法は、前記赤血球を透過性にするのに十分な低張緩衝液に対して前記赤血球の調製物を透析すること（ここで、前記調製物は単分散ＳＰＩＯを含む）と、その後赤血球を再封することとを含む。
本発明の手順を用いた、赤血球への磁性ナノ粒子の充填は、低張緩衝液中でのＲＢＣ懸濁液の透析から生じるＲＢＣ膜の穴を介して起こる。これは以前の報告に記載されているものとは異なる。著者らは、限定的な安定性を有する鋸歯状ゴースト細胞（Jain、１９９４年）を産生する技術によって赤血球内への磁性流体の封入を報告している。
「単分散」という用語は、ＳＰＩＯの粒子が凝集しないように処理されていることを示し、赤血球の調製中にＳＰＩＯを処理するのではなく、そのような様態で予め調製されたＳＰＩＯを得ることが好ましい。ＳＰＩＯナノ粒子は、十分に小さくて、それらが低張緩衝液にさらされて多孔性になった際に、赤血球内に容易に入ることができることが特に好ましい。そのようなナノ粒子は、デキストランでコーティングされていることが好ましい。しかし、本発明は、単分散を得るためのいかなる他の手段も想定している。Ｇ．Ｋｉｓｋｅｒ ＧｂＲ社販売の単分散磁気ナノ材料ＰＭＰ−５０が好ましい。特に好ましい磁性流体は、ＳＨＵ ５５５Ａ（Resovist（登録商標））としてＳｃｈｅｒｉｎｇ社によって販売されているものである。
上記低張緩衝液は、赤血球の穿孔を実現するのに適したいかなる濃度で存在してもよい。低張緩衝液のモル浸透圧濃度が高過ぎる場合には、穿孔は起こらない可能性がある。一方、モル浸透圧濃度が低過ぎる場合には、赤血球に過度の損傷が生じて、十分な生存可能な細胞が回収されない可能性がある。それゆえ、指針として、６０から１２０ｍＯｓｍの間のモル浸透圧濃度が好ましく、７０から１１０ｍＯｓｍの範囲がさらに好ましい。
十分に高い内部濃度のＳＰＩＯを獲得し、上記赤血球の浸透圧が処置後に９０ｍＯｓｍ未満に低下しない状態で、低張緩衝液にさらされた赤血球の７０％を超える回収率が実現できることが見出された。
赤血球の調製物に対する比率として、緩衝液の体積は、約１５から無限大の間が好ましく、約２０から１００の間の範囲がさらに好ましく、４０〜８０の範囲が特に好ましい。
上記処置後に生存する赤血球の数を著しく低減させるか、あるいは望ましくない様式で患者に毒性となるような在り方で患者の赤血球に有害とならない限り、緩衝液の性質は特に重要でない。適した緩衝液には、炭酸緩衝液およびリン酸緩衝液が含まれる。
満足できる程度の赤血球生存率を得るには、穿孔中における赤血球の持続的に良好な状態を確実にする成分を含む低張緩衝液を用いることが好ましい。この点では、グルコースおよびＡＴＰと共に、好ましくは約７．４で、平衡状態にあるｐＨの存在が好ましい。生存可能な赤血球の生存率および回収率を高めるために、グルタチオンなどの他の成分も組み込まれていてもよい。
低張緩衝液に赤血球を曝す期間は、望む限りの長さでよいが、２０分間から５時間の間が好ましく、３０分間から４時間の間が、より好ましく、１時間から３時間がさらに好ましい。穿孔された（porated)赤血球は脆弱なので、曝す量は、最大量のＳＰＩＯの取込みを確実にしながらできる限り最小となることが特に好ましい。
処置された赤血球の再封は、透析緩衝液を除去した後に、既知な技術によって行う。再封の後、いかなる細胞外ＳＰＩＯも除去するために、赤血球を洗浄することが好ましい。適した洗浄液は、ＨＥＰＥＳ緩衝液である。その後、赤血球は、使用する前にＨＥＰＥＳ緩衝液、または人工血漿などの任意の他の適した溶液中に保存できる。
本発明は、磁気共鳴画像化技術における、本明細書に定義する赤血球の調製物の使用をさらに提供する。
本発明は、状態（condition)の治療における、本明細書に定義する赤血球の調製物の使用であって、治療される領域の近傍に本発明の赤血球が外部磁力によって局在化可能である使用をさらに提供する。
赤血球はいかなる動物に由来するものでもよいが、哺乳動物由来であることが好ましく、ヒト由来であることが好ましいことが理解されよう。同様に、治療または画像化される対象は、動物であってもよいが、哺乳動物が好ましく、ヒトが特に好ましい。患者から得られた赤血球を用いることが好ましいが、適合供血者から、特に好ましくは万能供血者から調製された赤血球を用いることも許容できる。
本発明は、患者から赤血球を取り出し、それらを他の血球および任意選択で血清から任意選択で分離し、ＳＰＩＯを赤血球に充填し、上記赤血球を患者内に再導入する方法をさらに提供する。赤血球はどの段階でも保存できることが好ましく、例えば、緊急事態で有用な充填赤血球の事前調製された保存物の存在が可能となるように、ＳＰＩＯを充填した後に保存できることが最も好ましい。そのような場合、上記赤血球は、万能供血者、血液型Ｏのものであることが好ましい。
本発明のＳＰＩＯ充填ＲＢＣを投与することを含む、共鳴画像化の方法も提供する。上記方法はまた、好ましくは、患者から赤血球を取り出すことと、それらを他の血球から、また任意選択で血清から任意選択で分離することと、ＳＰＩＯを赤血球に充填することと、上記赤血球を患者内に再導入することとを含む。上記赤血球は、上記の通り、どの段階でも保存できることが好ましく、ＳＰＩＯを充填した後に保存できることが最も好ましい。
超常磁性酸化鉄のＴ２ ＊緩和時間を、赤血球に該超常磁性酸化鉄を封入することにより低減する方法であって、前記封入赤血球は生存可能である方法も提供する。
さらに別の態様では、生存可能な赤血球に超常磁性酸化鉄を封入することによって、超常磁性酸化鉄の共鳴画像化の解像度を増大させる方法を提供する。
さらに別の態様では、共鳴画像化のために患者に投与するのに適した、生存可能な赤血球に封入された超常磁性物質を含む薬理学的に活性な調製物を提供する。
したがって、本発明者らはついに、ＲＥＳクリアランスを回避し、かつ血管内薬物送達および血液プールの画像化のための新規アプローチを提供する方法で、ヒト赤血球にＳＰＩＯナノ粒子を充填する戦略を見出した。本発明者らは、予想外にも、造影剤として有用であるのに十分に多い量でヒト赤血球内に超常磁性ナノ粒子を封入できること、およびこれらの構築物が安定であることを見出した。超常磁性ナノ粒子とは対照的に、これらの粒子充填赤血球は、その生理的寿命の終わりでない限り、あるいは特異的に修飾されていない限り、マクロファージによって認識されない。
これらの超常磁性酸化鉄充填赤血球は、造影剤として、特に循環系の画像化、および閉塞した血管、または特定の身体領域における血管新生の変化、または出血をもたらす血管損傷の検出に有用な人工構築物である。
本発明は、ＭＲＩ造影剤として、特に循環系の画像化に有用な超常磁性ナノ粒子充填されたヒト赤血球を提供する。前記赤血球は、前記超常磁性ナノ粒子と共に同時封入された１種以上の薬物も含有でき、封入された薬物を選択された臓器内または選択された身体領域で優先的に放出するように、外部磁場によって誘導することができる。
これより、以下の非限定的実施例を参照して、本発明を説明する。本明細書に引用されたすべての参考文献を、別段のことが明らかでない限り、そして本願の教示の補完となる程度に、参照により本明細書に組み込む。
材料および方法
材料
赤血球に充填する手順は、Ｓｃｈｅｒｉｎｇ ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ社から入手した市販の磁性流体であるＳＨＵ ５５５Ａ（Resovist（登録商標）、０．５ｍｍｏｌ Ｆｅ／ｍｌ）を用いて行った。ＳＨＵ ５５５Ａは、カルボキシデキストランコーティングされた直径６０ｎｍの超常磁性酸化鉄ナノ粒子からなる。
この粒子懸濁液は、通常、磁気共鳴画像（ＭＲＩ）検査法からのシグナルを強化するのに用いられる。約４０〜１４０ｎｍのサイズを有する、シリカコーティングされた磁鉄鉱ナノ粒子懸濁液であるＳｉＭａｇｎ（２７ｍｇ／ｍｌ）も用いた。
ヒト赤血球内への磁性ナノ粒子の封入
ヒト血液は、健常志願者からヘパリン化チューブ内に収集した。
赤血球（ＲＢＣ）は、新規に採取した血液から、４℃、１４００ｇ、１０分間の遠心処理によって単離した。血清およびバフィーコートを除去し、沈降赤血球をＨＥＰＥＳ緩衝液（１０ｍＭ ＨＥＰＥＳ、１４０ｍＭ ＮａＣｌ、５ｍＭグルコース、ｐＨ７．４）で３回洗浄し、その後、７０％ヘマトクリットの同一緩衝液中に再懸濁した。１２〜１４ｋＤａカットオフを有するチューブを使用し、磁性ナノ粒子の存在下、２ｍＭ ＡＴＰおよび３ｍＭ還元グルタチオンを含有する５０倍体積の１０ｍＭ ＮａＨＣＯ３、１０ｍＭ ＮａＨ２ＰＯ４、２０ｍＭグルコース、４ｍＭ ＭｇＣｌ２、ｐＨ７．４中で７５分間、これらの細胞を透析した。透析緩衝液のモル浸透圧濃度は６４ｍＯｓｍであった。
これらすべての手順を、無菌条件下、４℃で行った。ＲＢＣの再封は、透析されたＲＢＣ １倍体積あたり０．１倍体積の５ｍＭアデニン、１００ｍＭイノシン、２ｍＭ ＡＴＰ、１００ｍＭグルコース、１００ｍＭピルビン酸ナトリウム、４ｍＭ ＭｇＣｌ２、１９４ｍＭ ＮａＣｌ、１．６０６Ｍ ＫＣｌ、３５ｍＭ ＮａＨ２ＰＯ４、ｐＨ７．４（ＰＩＧＰＡ）を添加することによって、そして３７℃で４５分間インキュベートすることによって得た。
再封された赤血球を４００ｇの遠心処理によって回収し、封入されなかった磁性粒子を除去するため、ＨＥＰＥＳ緩衝液で４回洗浄した。
それらを磁性体の非存在下で透析したことを除いては同一の手順に従って、非充填（unloaded）赤血球（ＵＬ−ＲＢＣ）を調製した。
その後、充填（loaded）赤血球（Ｌ−ＲＢＣ）の磁化率および他の様々なパラメータを評価した。
磁鉄鉱濃度
様々な量のＳＨＵ ５５５Ａ（０．５ｍｍｏｌ Ｆｅ／ｍｌ、すなわち２８ｍｇ／ｍｌ）を用いて、赤血球に充填した。
１ｍｌのＲＢＣを５．６ｍｇのＦｅ（２００μｌ）の存在下（Ｌ１−ＲＢＣ）、および２２．４ｍｇのＦｅ（８００μｌ）の存在下（Ｌ２−ＲＢＣ）の両方で透析した。充填効率を様々なパラメータによって評価した。
ＳＨＵ ５５５Ａ充填赤血球のｉｎ ｖｉｔｒｏでの特徴付け；
細胞回収パーセント
細胞回収パーセントは、磁鉄鉱充填の前後にインタクトな赤血球の総数を血球計算盤を用いて計数することによって測定した。
細胞完全性の評価
充填赤血球が天然赤血球の特性を保持しているかどうか判定するために、細胞完全性のいくつかの特徴を検査した。平均赤血球体積、平均ヘモグロビン濃度、および平均血球ヘモグロビン濃度を、自動化された血球計算器（型式MICROS O.T、HoribaABX Diagnostics社、イタリア国所在）で測定した。
磁気反応性
１×１０９の充填赤血球をミクロチューブ内に入れ、３０００ガウスの磁石の近傍におけるインキュベーションによって、それらの磁気反応性を評価した。磁石適用部位に局在化した磁気赤血球を、ＨＥＰＥＳ緩衝液で洗浄することによって、誘引されなかったＲＢＣから分離し、収集し、自動化された血球計算器で計数し、赤血球の初期数に対する、誘引された赤血球のパーセントを計算した。
充填赤血球懸濁液のＮＭＲ緩和測定および封入された磁鉄鉱濃度の測定
既知量のＳＨＵ ５５５Ａ造影剤をヒトおよびマウス血液試料に添加することによって作成した用量反応曲線を用いて、充填赤血球内の磁鉄鉱濃度をＮＭＲ緩和測定によって決定した。試験した濃度範囲は、０〜１５ｍＭ Ｆｅであり、少なくとも９つの濃度レベルを有していた。４４％ヘマトクリットでのこれらの試料の縦（Ｔ１）および横（Ｔ２）緩和時間を、ＡＣ−２００ ＮＭＲ−Ｂｒｕｋｅｒスペクトロメーターを用いて、４．７テスラの磁場強度、３７℃で測定した。Ｔ１は、少なくとも５×Ｔ１の固定緩和遅延を用いた１８０°−τ−９０°反転回復シークエンスを使用して測定した。反転時間（Ｔ）は、概算されたＴ１値を基礎にして選択した。Ｔ１は、Ｃａｒｒ−Ｐｕｒｃｅｌｌ−Ｍｅｉｂｏｏｍ−Ｇｉｌｌ法（ＣＰＭＧ）を用いて測定した。エコー時間は、概算されたＴ１値を基礎にして選択した。
（１／Ｔ１ ｃ−１／Ｔ１ ０）の値（式中、Ｔ１ ｃは造影剤の濃度［ｃ］における緩和時間であり、Ｔ１ ０はＳＨＵ ５５５Ａ非存在下におけるＲＢＣ試料の緩和時間である）を、ＳＨＵ ５５５Ａの濃度に対してプロットし、最小二乗法で直線に適合させた。この勾配が縦緩和度（ｒｌ）である。
２つの濃度範囲で２つの異なったｒ１値が得られた。すなわち、０．１ｍＭ＜［ｃ］＜１ｍＭの範囲ではｒ１＝２．４９ｓｅｃ−１ｍＭ−１であり、１ｍＭ＜［ｃ］＜１５ｍＭの範囲ではｒ１＝１．９５ｓｅｃ−１ｍＭ−１であった。
［ｃ］に対して（１／Ｔ２ ｃ−１／Ｔ２ ０）の値をプロットすることによって、０．１ｍＭ＜［ｃ］＜０．３ｍＭの間隔において同様な方法で横緩和度（ｒ２）を計算し、その結果、ｒ２＝１５３．６ｓｅｃ−１ｍＭ−１を得た。すべての分析をＥｘｃｅｌ（Microsoft社）で行った。
線形であると考慮されるべき相関関係に関して、以下の判定規準を定義した。すなわち、相関係数（Ｒの２乗）が０．９９０超であり、かつ回帰曲線周辺の点の分布がランダムに分布していなければならない。
結果として、逆算式である［ｃ］＝（１／Ｔ１−１／Ｔ１ ０）／ｒ１および［ｃ］＝（１／Ｔ２−１／Ｔ２ ０）／ｒ２を用いることによって、４４％のヘマトクリットにおける充填赤血球懸濁液の、測定されたＴ１値およびＴ２値に対応した、赤血球内に封入されているＳＨＵ ５５５Ａの濃度を推定することが可能であった。
本発明者らは、対照ＲＢＣ、Ｌ１−ＲＢＣの懸濁液試料において、そしてＬ１−ＲＢＣが組み入れられている同量のＳＨＵ ５５５Ａ薬剤に混合された対照ＲＢＣの試料において、３７℃で測定されたＮＭＲ ＦＩＤから得られたＴ２ ＊値も決定した。
形態
透過電子顕微鏡法（ＴＥＭ）および走査電子顕微鏡法（ＳＥＭ）によって、正常な未充填赤血球および充填赤血球を検査した。ＴＥＭ分析用には、細胞を、０．１Ｍゼーレンセンリン酸緩衝液、ｐＨ７．３中で迅速に洗浄し、６００ｇで沈降させ、直ちに２．５％グルタルアルデヒドを含有する同一緩衝液で１時間固定した。その後、細胞を、１％ＯｓＯ４を含有するリン酸緩衝液中で後固定し、エタノールで脱水し、アラルダイト中に包埋した。切片をニッケルグリッド上に収集し、酢酸ウラニルおよびクエン酸鉛で染色し、Ｐｈｉｌｉｐｓ社製ＣＭ１０電子顕微鏡で分析した。ＳＥＭ分析用には、ＲＢＣを洗浄し、２．５％グルタルアルデヒドを含有するゼーレンセン緩衝液との懸濁液中で固定し、この懸濁液の液滴をポリリジンコーティングされたカバーグラス上に沈着させた。付着を終夜、４℃の密封された湿室中で行った。その後、スライドを洗浄し、１％ＯｓＯ４を含有するリン酸緩衝液中で１時間、後固定した。
穏やかな進行性のアルコール脱水を行い、標本を臨界点乾燥させた。
従来のＳＥＭスタブ上に銀接着（silver glue）によってマウントした後、スパッタリング装置を用いてスライドに金コーティングをした。観察はＰｈｉｌｉｐｓ社製５１５走査電子顕微鏡で行った。
ｉｎ ｖｉｔｒｏ安定性
５ｍＭグルコースを含有する、リン酸緩衝食塩水すなわちＰＢＳ（１５４ｍＭ ＮａＣｌ、５ｍＭ Ｋ２ＨＰＯ４／ＮａＨ２ＰＯ４、ｐＨ７．４）中に充填赤血球を６％ヘマトクリットで再懸濁し、ペトリ皿内にプレーティングし、３７℃でインキュベートした。様々な時間間隔で試料を取り出し、６００ｇ、１０分間の遠心処理で沈殿させた。
試料上清中に放出された血色素を、５４０ｎｍで分光光度測定し、上清の吸光度を、蒸留水中での同数の細胞数の完全溶血の後に得られた吸光度と比較することによって溶血のパーセントを決定した。
さらに、ＨＥＰＥＳ緩衝液中に４４％ヘマトクリットで希釈されたこれらの試料のペレットを、緩和度ＮＭＲ測定によって特徴付けた。
ヒトマクロファージによる、磁気ナノ粒子充填ＲＢＣの認識
健常供血者の血液試料から得られたヒト単球由来のマクロファージを、Ｌｙｍｐｈｏｐｒｅｐ（商標）溶液（比密度１．０７７；Axis-Shield PoC AS社、ノルウェー国所在）中での分離によって得た。
終夜、３７℃でのプラスチック皿への付着によって、単球をリンパ球から分離した。洗浄の反復によって非付着細胞を除去した後、加湿された５％ＣＯ２雰囲気中、３７℃の、１０％（ｖ／ｖ）熱不活性化ウシ胎児血清（ＦＣＳ）、１％抗生物質（ペニシリン／ストレプトマイシン）、および２ｍＭ Ｌ−グルタミンを補充したＲＰＭＩ １６４０培地中で細胞を培養した。培地を２日毎に交換し、７日間の培養の後に、付着細胞の大部分がマクロファージに分化した。磁性ナノ粒子充填ＲＢＣは、６ｍｇのＳＨＵ ５５５ＡまたはＳｉＭａｇｎナノ粒子懸濁液の存在下における、ＲＢＣの透析によって調製した。
１マクロファージあたり１００ＲＢＣの比率で、１×１０６のマクロファージを、ＳＨＵ ５５５Ａ充填ＲＢＣもしくはＳｉＭａｇｎ充填ＲＢＣまたは未充填ＲＢＣの存在下で１６時間インキュベートした。この時間の後、洗浄の反復によってＲＢＣを慎重に除去し、メタノール中でマクロファージを固定し、Ｍａｙ−Ｇｒｕｎｗａｌｄ Ｇｉｅｍｓａ染色した後にＯｌｙｍｐｕｓ社ＩＸ５１光学顕微鏡によって観察した。
ｉｎ ｖｉｖｏ研究
動物の準備
雌のＢａｌｂ／Ｃマウス（Nossan社、イタリア国ミラノ（Milan）所在）を、１２時間の明／暗サイクルの下、２２±１℃、湿度６０±５％、１２空気交換／ｈで飼育した。
薬物動態学的な実験では、１．５μｍｏｌ常磁性鉄／ｍｌ ＲＢＣを含有する赤血球懸濁液から得られた１０％ヘマトクリットの充填ＲＢＣ懸濁液２５０μｌを各マウスに腹腔内投与した。
注入終了後、２、３、６、１０、１３日目に、眼動脈からの血液試料の採取を行い、全血のアリコートをＮＭＲ測定で分析した。
結果
図１に示す結果は、ヒト赤血球内、とりわけ４０〜６０ｎｍの平均サイズを有するものに単分散磁気ナノ材料を封入することが可能であること、およびその結果得られる細胞は、上記手順の後に正常な形態を有することを示している。実際、走査電子顕微鏡法（ＳＥＭ）で観察された細胞形態には、対照の赤血球と比較して有意な相違が観測されなかった。赤血球の大部分は、両凹の円盤形態を有しているように見え、口唇状赤血球が時々、よりまれには有棘赤血球が伴った。
電子透過顕微鏡分析を用いて、少なくとも１０フレームで、ナノ粒子の存在を評価した。各視野について、赤血球が均質的に分布して現れている、標本の中心領域を選択した。顕微鏡分析は、すべてのＲＢＣ添加試料で同様な形態学的様相を示した。すなわち、各視野は、少なくとも６０％の、細胞質中に分散した磁性ナノ粒子を含有する赤血球を示した（図１Ａ）。
充填赤血球は、未処置の赤血球より、平均的にわずかに小さく（それぞれＬ１−ＲＢＣおよびＬ２−ＲＢＣに関して、ＭＣＶが、８７ｆｌに対して７８．５および６０ｆｌ）、１細胞あたりの血色素が少ない（ＭＣＨが２８ｐｇに対して２０．１および１６ｐｇ）が、ほぼ正常な平均細胞ヘモグロビン濃度を有する（ＭＣＨＣが３３ｇ／ｄｌに対して３１および２８ｇ／ｄｌ）。上記に報告したＭＣＶの低減は、これらの充填手順で適用されたＲＢＣの希釈（すなわち、Ｌ２ ＲＢＣでは、７０％ヘマトクリットのＲＢＣ １ｍｌを８００μｌのＳＨＵ ５５５Ａで希釈）によるものであり、同一希釈を用いて未充填赤血球を調製した際に同様な値が観測されたので、ＳＨＵ ５５５Ａの使用によるものではないことに留意するべきである。
全調製手順の結果、通常、６０％から７０％の範囲にある充填赤血球の細胞回収が得られた。これは未充填赤血球のものと同様のものである。細胞回収のこのパーセントは、他の著者らによって得られた値より高い（Vyas、１９９４年；Johnson、１９９８年）。充填赤血球は、外部磁場に対して反応性であった。また、それらの磁化率を数日間維持する。
赤血球内にナノ材料を封入しようとした以前のすべての試みは、少なくとも一部のナノ粒子が外側の赤血球膜に結合する結果となったことを、従来技術は教示しているので、得られた結果は予想外である。しかし、表面に結合したナノ粒子の存在は、ＲＥＳを介した即時の免疫クリアランスをもたらす。
例えば、国際公開第２００６／０４８３２１号は、生体細胞内に導入することができる、ナノ粒子を含む診断作用物質を開示するが、これらのナノ粒子は、赤血球膜の外側表面に部分的に吸着される。これは、同一の発明者らによる、Ｎａｎｏ Ｌｅｔｔｅｒｓ ６、２００６年、２５０５〜２５０９頁に明確に記録されている。これは、ナノ材料がシリカコーティングされた超常磁性ナノ粒子から作製されている（図１Ｂ）か、ナノ粒子が単分散でない場合に起こる。
換言すれば、本発明者らは、ＳＰＩＯが細胞表面に吸着されるのではなく、赤血球サイトゾル中に存在することを確実にする方法と組み合わせたＳＰＩＯ使用のみが、赤血球のクリアランスを実質的に回避するのに十分であり、したがって、改善された保持時間をもたらすことを発見した。
細網内皮系（ＲＥＳ）に存在するマクロファージは血液循環からのそれらの迅速な除去を引き起こすため、外側の赤血球膜に結合したナノ粒子の存在は、組織マクロファージによる充填ＲＢＣの認識を活性化するので、この状態は、血管系のＭＲＩ画像化が目的である場合には重要な現象である。実際、ヒトマクロファージによる充填ＲＢＣの取込みを試験するために行われたｉｎ ｖｉｔｒｏ実験は、外側の赤血球膜に結合したナノ粒子を含有するシリカ磁鉄鉱充填ＲＢＣがマクロファージによって活発に認識され、貪食される一方で、ＳＨＵ ５５５Ａ充填ＲＢＣは貪食されないことを示す（図２）。
図２は、未充填赤血球（ａ）、ＳＨＵ ５５５Ａ充填赤血球（ｂ）、およびＳｉＭａｇｎ充填赤血球（ｃ）と３７℃で１６時間インキュベートされ、ＰＢＳで洗浄されたヒトマクロファージを示す。「材料および方法」で報告した通りに固定された細胞をＭａｙ−Ｇｒｕｎｗａｌｄ Ｇｉｅｍｓａ法で染色し、４０×の倍率で観察した。画像は、未充填赤血球との比較において、ＳｉＭａｇｎ充填ＲＢＣのマクロファージ膜相互作用および食作用を示しているが、ＳＨＵ ５５５Ａ充填ＲＢＣのものを示していない。
本発明者らは、材料および方法で記載された検量線から得られたｒ１値およびｒ２値を用いたＮＭＲ分析によって、ヒト赤血球内の磁性体の最終濃度を推算した（同上）。ＳＨＵ ５５５Ａは、１ｍｌのＲＢＣを５．６ｍｇのＦｅを用いて透析した際には、４．６４ｍＭ±２の量、そして赤血球を２２．４ｍｇのＦｅを用いて透析した際には、１５．２ｍＭ±４の量で、ヒト赤血球内に組み入れられた。
結果は、封入される磁性ナノ粒子の濃度が、ＲＢＣと共にインキュベートされた造影剤の量の増大と、透析緩衝液のミリモル浸透圧濃度の低減との両方と共に増大するが、透析時間によっては影響されないことを示している（表１および表２）。
超常磁性ナノ粒子を充填されたＲＢＣ（４４％ヘマトクリット）のＴ２ ＊値のＮＭＲ測定値は、血清から取り出された未透析（ＮＤ）同一ヘマトクリットの全血および赤血球の値（それぞれ２１．９および３０ｍｓ）より低い（０．３８ｍｓ）。
Figure 2009540844
この値（０．３８ｍｓ）が、全血（０．５ｍｓ）または未透析ＲＢＣ（０．６４ｍｓ）に添加された同濃度のＳＨＵ ５５５Ａ薬剤を含有している懸濁液のＴ２ ＊よりも極めて有意に低いという発見も、特に予想外であった（表３）。したがって、本発明は、血中でのナノ粒子の存在によって測定されるものより低いＴ２ ＊値を得ることを可能にする。この結果は、ＭＲＩ画像化における解像度の向上である。
本発明者らは、未処置血における充填ＲＢＣ試料の希釈の、Ｔ１値およびＴ２値への影響も評価した。成人身体への２０ｍｌの充填ＲＢＣの注入に相当する、試験された最大希釈（１：２５０）では、Ｔ１値が全血のＴ１より３００ミリ秒（msec）低い結果となった（表４）。さらに未処置血中に１：１２５および１：２５０で希釈された充填ＲＢＣ（Ｌ１−ＲＢＣ）のＴ２ ＊値は、封入されていない造影剤をＬ１−ＲＢＣと同一濃度で含有している全血の同一希釈時の値より低い（それぞれ１４．９２対１６．６５ｍｓ、および１７．３２対１９．７９ｍｓ）（表３）。
Figure 2009540844
Figure 2009540844
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３７℃の生理的緩衝液中で数回インキュベートされた充填赤血球のｉｎ ｖｉｔｒｏ安定性をＮＭＲ測定によって特徴付けた（図３）。得られた結果は、充填ＲＢＣのＴ１値が、対照細胞のものより低い状態で数日間維持されることを示した。
対照赤血球と比較して有意な量の血色素が充填赤血球から放出されていないことは注目に値する（未透析の対照赤血球が２．７％であるのに対して、充填赤血球は３．７％−図４）。
マウス赤血球に同一の充填手順を適用し、１．５ｍＭから３．７５ｍＭの範囲の常磁性鉄濃度に相当するＲｅｓｏｖｉｓｔの封入を得た（１００μｌのＲｅｓｏｖｉｓｔで処置された５００μｌのＲＢＣに関して）、表５。
Figure 2009540844
血管系における磁気ナノ粒子充填ＲＢＣの存在を検査するためにＢＡＬＢ／Ｃマウスでｉｎ ｖｉｖｏ実験を行った。長時間（何日も）の間隔中における採血試料をＮＭＲ分析によって評価した。
図５に示した結果は、全血の充填ＲＢＣ画分における磁性ナノ粒子の生物学的半減期は、未処置のマウス赤血球の半減期（１２日間）と同様であったが、等量の遊離Ｒｅｓｏｖｉｓｔ懸濁液をマウスに注入した場合、数時間しか、測定可能なＴ１を生じず、２４時間以内に循環血から完全に消失することを示している。
参考文献
Allkemper T., Bremer C., Matuszewski L., Ebert W., Reimer P.; 2002. Contrast-enhanced Blood-Pool MR angiography with optimized iron oxides: effect of size and dose on vascular contrast enhancement in rabbits. Radiology 223 (2): 432-438.
Araujo L., Lobenberg R., Kreuter J.; 1999. Influence of the surfactant concentration on the body distribution of nanoparticles. Journal of colloid and interface science 212: 474-482.
Babincova M., Sourivong P., Leszczynska D., Babinec P.; 2000. Blood-specific whole- body electromagnetic hyperthermia. Medical Hypotheses 55(6): 459-460.
Bacri J., Perzynski R., Salin D., Cabuil V., Massart R.; 1990. Ionic ferrofluids:A crossing of chemistry and physics. Journal of Magnetism and Magnetic Materials 85, 27.
Berry C.C., Curtis A.S.G.; 2003. Functionalisation of magnetic nanoparticles for applications in biomedicine. J. Phys. D: Appl. Phys. 36:198-206.
Bonnemain B.; 1995. Superparamagnetic agents: physicochemical characteristics and preclinical imaging evaluation for potential applications in : Contrast Media Research (CMR). Naantali 17-22: 35.
Bonnemain B.; 1998. Superparamagnetic agents in magnetic resonance imaging: physicochemical characteristics and clinical applications a review. Journal of Drug Targeting 6(3): 167-174.
Brahler M., Georgieva R., Buske N., Muller A., Muller S., Pinkernelle J., Teichgraber U., Voigt A., Baumler H.; 2006. Magnetite-loaded carrier erythrocytes as contrast agents for magnetic resonance imaging. Nano Letters 6(11): 2505-2509.
Brigger I., Dubernet C., Couvreuer P. ; 2002. Nanoparticles in cancer therapy and diagnosis.Adv. Drug Deliv. Rev. 54, 631-651.
Cornell R.M., Schertmann U.; 1991. Iron oxides in the laboratory; preparation and characterization. VCH Publishers, Weinheim.
Davis S.S.;1997. Biomedical applications of nanotechnology-implications for drug targeting and gene therapy. Trends Biotechnol. 15: 217-224.
Frank H., Weissleder R., Brady T.J.; Enhancement of MR angiography with iron oxide: preliminary studies in whole-blood phantom and in animal. AJR Am J Roentgenol 162: 209-213.
Gaur U., Sahoo S.K., De T.K., Ghosh P.C., Maitra A., Ghosh P.K.; 2000. Biodistribution of fluoresceinated dextran using novel nanoparticles evading reticuloendothelial system. Int. J. Pharm. 202: 1-10.
Halavaara J., Tervahartiala P., Isonieme H., Hockerstedt K.; 2002. Efficacy of sequential use of superparamagnetic iron oxide and gadolinium in liver MR imaging. Acta radiologica 43: 180-185.
Hilger I., Fruhauf K., Andra W., Hiergeist R., Hergt R., Kaiser W. A.; 2002. Heating potential of iron oxides for therapeutic purposes in interventional radiology. Acad. Radiol. 9: 198-202.
Ito A., shinkai M., Honda H., Kobayashi T.; 2005. Medical Application of Functionalized Magnetic Nanoparticles. Journal of Bioscience and Bioengineerin; 100(1): 1-11.
Jain S.K., Vyas S.P.; 1994. Magnetically responsive diclofenac sodium-loaded erythrocytes: Preparation and in vitro characterization. J. Microencapsulation 11(2): 141-151.
Johnson K.M., Tao J.Z., Kennan R.P., Gore J.C.; 1998. Gadolinium-bearing red cells as blood pool MRI contrast agents. Magn. Reson. Med. 40(1): 133-142.
Jung C. W., Jacobs P.; 1995. Physical and chemical properties of superparamagnetic iron oxide MR contrast agents: ferumoxides, ferumoxitran, ferumoxsil. Magnetic Resonance Imaging 13(5): 661-674.
Kreuter J. 1994. Drug targeting with nanoparticles. Eur. J. Drug. Metab.Pharmacokinet 19: 253-256.
Kubaska S., Sahani D.V., Saini S., Hahn P.F., Halpern E.; 2001. Dual contrast enhanced magnetic resonance imaging of the liver with superparamagnetic iron oxide followed by gadolinium for lesion detection and characterization. Clin. Radiol. 56: 410-415.
Low R.N.; 1997. Contrast agents for MR imaging of the liver. J. Magn. Reson. Imaging 7(1):56-67.
Lubbe A. S., Alexiou C., Bergemann C.; 2001.Clinical applications of magnetic drug targeting J. Surg. Res. 95: 200-206.
Magnani M., Rossi L., Fraternale A., Bianchi M., Antonelli A., Crinelli R., Chiarantini L.; 2002. Erythrocyte-mediated delivery of drug, peptides and modified oligonucleotides. Gene Ther. 9(11): 749-751.
Moghimi S.M., Hunter A.C., Murray J.C.; 2001. Long-circulating and target specific nanoparticles: theory to practise. Pharm. Rev. 53: 283-318.
Morais P.C., Santos J.G.., Silveira L.B., Gansau C., Buske N., Nunes W.C., Sinnecker J.P.; 2004. Susceptibility investigation of the nanoparticle coating-layer effect on the particle interaction in biocompatible magnetic fluids. Journal of Magnetism and Magnetic Materials 272-276: 2328-2329.
Petri-Fink A., Chastellain M., Juillerat-Jeanneret A. Ferrari A., Hofmann H., 2005. Development of functionalized magnetic nanoparticles for interaction with human cancer cells. Biomaterials 26: 2685-2694.
Reimer P., Tombach B.; 1998. Hepatic MRI with SPIO: detection and characterization of focal liver lesions. Eur. Radiol. 8: 1198-1204.
Sudimack J., Lee R.J.; 2000. Targeted drug delivery via the folate receptor. Adv. Drug Del. Rev.41: 147-162.
Vyas S.P., Jain S.K.; 1994. Preparation and in vitro charactezization of a magnetically responsive ibuprofen-loaded erythrocytes carrier. J. Microencapsulation 11(1): 19-29.
Wang Yi-X. J., Hussain S.M., Krestin G.P.; 2001. Superparamagnetic iron oxide contrast agents: physicochemical characteristics and applications in MR imaging. Eur. Radiol. 11: 2319-2331.
Wilhelm C., Billotey C., Roger J., Pons J.N., Bacri J.C., Gazeau F.; 2003. Intracellular uptake of anionic superparamagnetic nanoparticles as a function of their surface coating. Biomaterials 24: 1001-1011.
Zhou j., Leuschner C., Kumar C., Hormes J.F., Soboyejo W.O.;2006. Sub-cellular accumulation of magnetic nanoparticles in breast.

Claims (28)

  1. サイトゾル超常磁性ナノ粒子酸化鉄を含有する、生存可能な赤血球。
  2. 請求項１に記載の赤血球を複数含む調製物であって、前記調製物中に存在する超常磁性酸化鉄の量が、前記調製物が磁気共鳴画像法の造影剤として有用であるのに十分である、調製物。
  3. 前記赤血球のＳＰＩＯの量が約１ｍＭから４０ｍＭの間、好ましくは約３ｍＭから２０ｍＭの間である、請求項１または２に記載の赤血球またはその調製物。
  4. 平均全粒径が８０〜９０ｎｍ以下であり、好ましくは２０から６０ｎｍの間である、前記請求項のいずれかに記載の赤血球またはその調製物。
  5. 前記赤血球が１種以上の薬物を含む、前記請求項のいずれかに記載の赤血球またはその調製物。
  6. 前記薬物が、抗炎症薬および免疫抑制薬、抗ウイルス薬もしくは抗レトロウイルス薬、抗癌剤、オリゴヌクレオチド、モノクローナル抗体、ペプチドおよびペプチド核酸、光感作薬、赤外線蛍光剤、またはこれらの混合物のうちの少なくとも１種から選択される、請求項５に記載の赤血球またはその調製物。
  7. 前記ＳＰＩＯ粒子がデキストランでコーティングされている、前記請求項のいずれかに記載の赤血球またはその調製物。
  8. 前記超常磁性ナノ粒子が一般式Ｆｅ２ ３＋Ｏ３Ｍ２＋Ｏを有し、式中、Ｍ２＋が二価金属陽イオンである、前記請求項のいずれかに記載の赤血球またはその調製物。
  9. 前記ＳＰＩＯが磁鉄鉱である（Ｍ２＋が二価鉄イオンである）、請求項８に記載の赤血球またはその調製物。
  10. Ｍ２＋が、マンガン、ニッケル、コバルト、およびマグネシウムからなる群から選択される、請求項８に記載の赤血球またはその調製物。
  11. 前記請求項のいずれかに記載の１つ以上の赤血球を調製する方法であって、前記赤血球を透過性にするのに十分な低張緩衝液に対して前記赤血球の調製物を透析すること（ここで、前記調製物は単分散ＳＰＩＯを含み、前記透析は前記赤血球による前記ＳＰＩＯの少なくとも一部の取込みを可能にするのに十分な時間で行う）と、その後前記赤血球を再封することとを含む方法。
  12. 前記低張緩衝液が６０から１２０ｍＯｓｍの間、好ましくは７０から１１０ｍＯｓｍのモル浸透圧濃度を有する、請求項１１に記載の方法。
  13. 前記赤血球の浸透圧が処置後に９０ｍＯｓｍ未満に低下しない、請求項１１または１２に記載の方法。
  14. 前記低張緩衝液が、穿孔中における前記赤血球の生存性を高める成分を含む、請求項１１から１３のいずれかに記載の方法。
  15. 前記緩衝液が、平衡状態にあるｐＨ、グルコース、およびＡＴＰを有する、請求項１４に記載の方法。
  16. 前記緩衝液が約７．４のｐＨを有する、請求項１５に記載の方法。
  17. 前記低張緩衝液に前記赤血球を曝す時間が２０分から５時間の間、好ましくは３０分間から４時間の間、好ましくは１時間から３時間である、請求項８から１６のいずれかに記載の方法。
  18. 前記処置された赤血球を再封し、好ましくはその後洗浄して余分なＳＰＩＯを除去する、請求項１１から１６のいずれかに記載の方法。
  19. 磁気共鳴画像化技術における、前記請求項のいずれかに記載の調製物の使用。
  20. 状態の治療における、前記請求項のいずれかに記載の調製物の使用であって、治療される領域の近傍に前記赤血球が外部磁力によって局在化可能である使用。
  21. 生存可能な赤血球への封入によって、超常磁性酸化鉄のＴ２ ＊を低減する方法。
  22. 患者から赤血球を取り出し、前記赤血球にＳＰＩＯを充填して請求項１から１０のいずれかに記載の赤血球を産生し、前記赤血球を前記患者内に再導入する方法。
  23. 前記赤血球を他の血球から任意選択で分離することを含む、請求項２２に記載の方法。
  24. 前記赤血球にＳＰＩＯを充填した後に前記赤血球を保存する、請求項２２または２３に記載の方法。
  25. 請求項１から１０のいずれかに記載の赤血球を投与することを含む、共鳴画像化の方法。
  26. 患者から赤血球を取り出すことと、前記赤血球を他の血球から分離することと、前記赤血球にＳＰＩＯを充填して請求項１から１０のいずれかに記載の赤血球を産生することと、前記充填赤血球を前記患者に再導入することとを含む、請求項２５に記載の方法。
  27. 超常磁性酸化鉄の共鳴画像化の解像度を増大させる方法であって、前記超常磁性酸化鉄を生存可能な赤血球内に封入することと、前記赤血球をｉｎ ｖｉｖｏで共鳴画像化することとを含む方法。
  28. 共鳴画像化のために患者に投与するのに適した、請求項１から６のいずれかに記載の生存可能な赤血球に封入された超常磁性物質を含む薬理学的に活性な調製物。
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Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2016512221A (ja) * 2013-03-11 2016-04-25 エンドマグネティクス リミテッド リンパ節検出のための低浸透圧溶液

Families Citing this family (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20090024022A1 (en) * 2006-10-25 2009-01-22 Siemens Corporate Research, Inc. System and method for lymph node imaging using co-registration of ct and mr imagery
ES2605480T3 (es) * 2008-12-21 2017-03-14 Consiglio Nazionale Delle Ricerche Sistema de liberación de fármacos a base de eritrocitos, método de preparación y sus usos
GB0909754D0 (en) 2009-06-05 2009-07-22 Magnani Mauro Drug delivery systems
WO2013110828A1 (es) 2012-01-27 2013-08-01 Soluciones Nanotecnológicas, S.L. Nanopartículas su perparamagn éticas como agente de contraste para imagen por resonancia magnética (irm) de la susceptibilidad magnética (t2*)
CN104394853B (zh) 2012-02-19 2017-10-10 纳维基因股份有限公司 多孔性纳米结构在递送中的用途
WO2015021390A2 (en) 2013-08-08 2015-02-12 The Regents Of The University Of California Nanoparticles leverage biological membranes to target pathogens for disease treatment and diagnosis
CN106163504B (zh) 2014-03-20 2021-02-09 加利福尼亚大学董事会 水凝胶毒素-吸收或结合纳米颗粒
CN107530285B (zh) 2015-04-29 2021-07-27 加利福尼亚大学董事会 使用纳米粒子解毒
CN105602894A (zh) * 2016-01-12 2016-05-25 浙江大学 用于精准治疗的靶向性干细胞的制备方法
US11123441B2 (en) 2016-10-04 2021-09-21 The Trustees Of The University Of Pennsylvania Methods and compositions for drug delivery
CN111334467A (zh) * 2018-12-18 2020-06-26 北京大学 一种光磁双模态指示细胞，其制备方法，其检测方法及其在体内示踪中的应用
CN109730975B (zh) * 2018-12-19 2021-07-09 上海交通大学 一种维持载药红细胞生物活性同时提高其载药量的方法

Family Cites Families (16)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4669481A (en) 1985-12-16 1987-06-02 Vanderbilt University Method of magnetic resonance imaging using chromium-labelled red blood cells
FR2660864A1 (fr) * 1990-04-13 1991-10-18 Guerbet Sa Composition de contraste, procede de preparation de cette composition et application a l'imagerie.
IL98744A0 (en) * 1990-07-06 1992-07-15 Gen Hospital Corp Method of studying biological tissue using monocrystalline particles
WO1996003653A1 (de) * 1994-07-27 1996-02-08 Silica Gel Ges.Mbh Absorptionstechnik, Apparatebau Superparamagnetische teilchen, verfahren zur herstellung und deren verwendung
US6933331B2 (en) 1998-05-22 2005-08-23 Nanoproducts Corporation Nanotechnology for drug delivery, contrast agents and biomedical implants
DE69732225T2 (de) 1997-05-05 2005-06-23 Dideco S.R.L., Mirandola Verfahren zur Verkapselung von biologisch aktiven Stoffen in Erythrocyten und Gerät dafür
GB9716365D0 (en) * 1997-08-01 1997-10-08 Nycomed Imaging As Improvements in or relating to magnetic resonance imaging
DE10046514A1 (de) * 2000-09-15 2002-04-25 Diagnostikforschung Inst Verfahren zur bildlichen Darstellung und Diagnose von Thromben mittels Kernspintomographie unter Verwendung partikulärer Kontrastmittel
AU2002320058A1 (en) * 2001-06-06 2002-12-16 The General Hspital Corporation Magnetic-nanoparticle conjugates and methods of use
US7074175B2 (en) * 2001-07-25 2006-07-11 Erik Schroeder Handy Thermotherapy via targeted delivery of nanoscale magnetic particles
WO2003082213A2 (en) 2002-03-28 2003-10-09 Imcor Pharmaceutical Company Compositions and methods for delivering pharmaceutically active agents using nanoparticulates
US7502640B2 (en) 2004-05-18 2009-03-10 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Positive contrast MRI of magnetically tagged cells, objects, tissues
WO2006012201A1 (en) 2004-06-25 2006-02-02 The Regents Of The University Of California Nanoparticles for imaging atherosclerotic plaque
US7419654B2 (en) * 2004-10-08 2008-09-02 Mrinal K. Dewanjee Charge neutral complexes of paramagnetic metals as intracellular magnetic resonance imaging contrast agents
ATE520029T1 (de) * 2004-11-05 2011-08-15 Hoffmann La Roche Biochemisches gerät und nachweisverfahren
DE102004054536A1 (de) * 2004-11-06 2006-05-11 Capsulution Nanoscience Ag Multimodal veränderte Zellen als zellulare Darreichungsformen für aktive Substanzen und als diagnostische Zellpartikel

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2016512221A (ja) * 2013-03-11 2016-04-25 エンドマグネティクス リミテッド リンパ節検出のための低浸透圧溶液

Also Published As

Publication number Publication date
EP2043697A2 (en) 2009-04-08
DK2043697T3 (en) 2018-01-15
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PL2043697T3 (pl) 2018-04-30
GB0613183D0 (en) 2006-08-09
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GB2439747A (en) 2008-01-09
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US20100061937A1 (en) 2010-03-11

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