JP2009171934A - Gene mutation involved in growth of black-haired japanese cattle - Google Patents

Gene mutation involved in growth of black-haired japanese cattle Download PDF

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Abstract

<P>PROBLEM TO BE SOLVED: To provide a method for judging the meat character of bovine black-haired Japanese cattle, characterized by detecting the mutation of a bovine ghrelin receptor gene. <P>SOLUTION: The relationship between the mutation of a ghrelin receptor gene at its base level and a gain character such as carcass weight is statistically examined using 1,285 heads of black-haired Japanese cattle indirect test bovine population with environmental effect considered. As a result, it has been found that the combination of a single-base substitution site (the seventh site from a translation initiation point) present in the 5'-nontranslation domain and double-base replication (microsatellite) number mutation, i.e. haplotype, is significantly related to pre-slaughtered weight, body weight at the end of test, body weight increment per day on average, ribs meat thickness and subcutaneous fat thickness character. <P>COPYRIGHT: (C)2009,JPO&INPIT

Description

本発明は、ウシについて、グレリン受容体遺伝子上の変異を検出することを特徴とする、ウシ黒毛和種の産肉形質を判定する方法に関する。   The present invention relates to a method for determining a meat trait of Japanese bovine black cattle characterized by detecting a mutation on a ghrelin receptor gene in cattle.

黒毛和種は、日本が世界に誇る貴重な遺伝資源の一つであり、また優良・高品質な動物タンパク質資源である。将来、世界的規模での食料危機が危惧される中で、日本の食料自給率向上のために黒毛和種の産肉量の一層の向上が求められている。さらに、近年の分子生物学的解析手法とウシゲノム研究の進展により増体に関わる遺伝子の同定とその変異解析は進展しているものの、黒毛和種における増体に関わる有効な遺伝子とその変異の同定並びにその遺伝的変異の生産現場での利用は極めて限られている。   Japanese black hair is one of the precious genetic resources that Japan is proud of in the world, and is an excellent and high quality animal protein resource. In the future, the global food crisis is feared, and in order to improve the food self-sufficiency ratio in Japan, further improvements in the production of Japanese black meat are required. Furthermore, although identification of genes related to gain and its mutation analysis have progressed due to recent advances in molecular biological analysis techniques and bovine genome research, identification of effective genes related to gain and their mutations in Japanese black cattle In addition, the use of the genetic variation at the production site is extremely limited.

黒毛和種において枝肉重量等増体形質に影響を及ぼす遺伝子とその変異に関しては、成長ホルモン遺伝子の変異(GH1:c.457C>G、c.593C>T、第19染色体)についての報告がある(特許文献1)。また、マイクロサテライトDNA多型を用い、黒毛和種での枝肉重量等増体形質に影響を及ぼす遺伝子座の染色体上での領域決定の研究が行われているが(染色体番号:4,5,14)、未だ遺伝子の特定やその変異の解明までには至っていない(非特許文献1、2)。   There are reports on growth hormone gene mutations (GH1: c.457C> G, c.593C> T, chromosome 19) regarding genes and their mutations affecting carcass weight gain traits in Japanese black cattle (Patent Document 1). In addition, the microsatellite DNA polymorphism is used to study the region determination on the chromosome of the locus that affects the carcass weight and other gain traits in Japanese black cattle (chromosome number: 4, 5, 14) The gene has not yet been identified and its mutation has not been elucidated (Non-Patent Documents 1 and 2).

一方、胃で生産され摂食促進と成長ホルモン放出作用をもつ新規ホルモン「グレリン」は、視床下部弓状核や脳下垂体成長ホルモン放出細胞等で発現するグレリン受容体を通してその機能を発揮する。このグレリン受容体の遺伝子発現が抑制されたラットは成長が明らかに抑制される。さらに、ヒトでは、グレリン受容体遺伝子の変異と肥満等摂食調節形質との間に関連性が指摘されている(非特許文献3、4)。また、ニワトリでは成長ホルモン多型(SNPs)と脂肪蓄積との関連性が指摘されている(非特許文献5)。   On the other hand, the new hormone “ghrelin” produced in the stomach and has the effects of promoting feeding and releasing growth hormone exerts its function through the ghrelin receptor expressed in the hypothalamic arcuate nucleus, pituitary growth hormone-releasing cells, and the like. Rats in which gene expression of the ghrelin receptor is suppressed are clearly suppressed in growth. Furthermore, in humans, a relationship has been pointed out between mutations in the ghrelin receptor gene and feeding regulation traits such as obesity (Non-Patent Documents 3 and 4). In chickens, the relationship between growth hormone polymorphisms (SNPs) and fat accumulation has been pointed out (Non-patent Document 5).

なお、本出願の発明に関連する先行技術文献情報を以下に示す。
千国・三橋、特許申請番号CA2441938 Journal of Animal Science, 82, 3415-3420, 2004 Animal Genetics, 37,51-54, 2006 Miyasaka K., et al. J Neural Transm. 113(9):1279-85, 2006 Baessler A., et al. Diabetes. 54(1):259-67, 2005 Lei M., et al., Poult Sci. 86(5):835-42, 2007
Prior art document information related to the invention of the present application is shown below.
Senkoku, Mitsuhashi, patent application number CA2441938 Journal of Animal Science, 82, 3415-3420, 2004 Animal Genetics, 37,51-54, 2006 Miyasaka K., et al. J Neural Transm. 113 (9): 1279-85, 2006 Baessler A., et al. Diabetes. 54 (1): 259-67, 2005 Lei M., et al., Poult Sci. 86 (5): 835-42, 2007

本発明は、このような状況に鑑みてなされたものであり、その目的は、ウシについて、グレリン受容体遺伝子上の変異を検出することを特徴とする、ウシ黒毛和種の産肉形質を判定する方法を提供することにある。
上述のように、ラットの成長やヒトの肥満とのグレリン受容体遺伝子との関連が指摘されてきた一方で、ウシにおいてのグレリン受容体遺伝子の変異の解明、並びにその変異と枝肉重量等増体形質との関連に関する研究や技術開発はこれまでに報告されていない。
そこで本発明は、黒毛和種においてグレリン受容体遺伝子の変異を明らかにし、黒毛和種の枝肉重量等増体形質との関連性を統計学的に行い、黒毛和種の増体が良い効果をもつ遺伝子タイプを明らかにすることを目的とする。なお、本遺伝子のタイピングに際しては、容易に遺伝子型が判別できる技術であることが要求される。
The present invention has been made in view of such circumstances, and its purpose is to determine meat production traits of Japanese bovine black cattle characterized by detecting mutations in the ghrelin receptor gene in cattle. It is to provide a way to do.
As described above, the relationship between the growth of rats and human obesity with the ghrelin receptor gene has been pointed out. No research or technical development related to traits has been reported so far.
Therefore, the present invention clarifies the mutation of the ghrelin receptor gene in Japanese black hair, statistically relates to the carcass weight weight gain trait of Japanese black hair, etc. The purpose is to clarify the gene type. In addition, when typing this gene, it is required to be a technique that can easily determine the genotype.

本発明者らは、上記の課題を解決するために鋭意研究を行った。
まず、黒毛和種におけるグレリン受容体遺伝子のプロモーター領域、5’非翻訳領域、エキソン1領域、エキソン2領域、イントロン1領域、3’非翻訳領域の塩基置換変異並びに5’非翻訳領域の2塩基反復(マイクロサテライト)数の変異を解析し、5’非翻訳領域、エキソン1領域、並びに5’非翻訳領域の2塩基反復(マイクロサテライト)数の変異を見いだした。このような例はこれまでに報告されていない。また、本遺伝子座は第1染色体上にあり従来報告されている成長ホルモン遺伝子座位等とは異なる。
The inventors of the present invention have intensively studied to solve the above problems.
First, the promoter region of the ghrelin receptor gene, 5 'untranslated region, exon 1 region, exon 2 region, intron 1 region, 3' untranslated region base substitution mutation and 5 'untranslated region 2 bases in Japanese black hair Mutations in the number of repeats (microsatellite) were analyzed, and mutations in the number of double base repeats (microsatellite) in the 5 ′ untranslated region, exon 1 region, and 5 ′ untranslated region were found. Such an example has not been reported so far. This locus is on the first chromosome and is different from the conventionally reported growth hormone locus.

さらに、グレリン受容体遺伝子の塩基レベルでの変異と枝肉重量等増体形質との関連性について、環境効果を考慮した黒毛和種間接検定牛集団1,285頭を用いて統計学的に検討したところ、5’非翻訳領域に存在する1塩基置換部位(翻訳開始点から-7位)と2塩基反復(マイクロサテライト)数変異の組み合わせ、すなわちハプロタイプが枝肉重量、屠殺前重量、検定終了時体重、1日平均増体重、バラ厚、皮下脂肪厚の形質に有意に関連していることを見いだした。
本発明の黒毛和種におけるグレリン受容体遺伝子の塩基レベルでの変異は、増体形質に影響を及ぼすものである。枝肉重量に良い効果のハプロタイプをヘテロ型に持つ個体は、通常の効果のハプロタイプをホモ型に持つ個体より約3%枝肉重量が増加し、枝肉重量に良い効果のハプロタイプをホモ型に持つ個体は、通常の効果のハプロタイプをホモ型に持つ個体より約5%枝肉重量が増加することが期待できる。
増体形質に良い影響をもつグレリン受容体遺伝子の頻度は、黒毛和種個体集団において約0.2と推定される。したがってこの優良遺伝子の頻度を増加させる余地は大きい。
In addition, when the relationship between the mutation at the base level of the ghrelin receptor gene and the carcass weight isotope trait was statistically examined using 1,285 black-haired Japanese indirect test cattle population considering environmental effects, A combination of a single base substitution site (position -7 from the translation start point) present in the 5 ′ untranslated region and a double base repeat (microsatellite) number mutation, ie, haplotype is carcass weight, pre-slaughter weight, body weight at the end of the test, 1 We found significant associations with traits of daily mean weight gain, rose thickness, and subcutaneous fat thickness.
The mutation at the base level of the ghrelin receptor gene in the Japanese black cattle of the present invention affects the gain trait. Individuals with heterozygous haplotypes for carcass weight have a 3% increase in carcass weight compared to homozygous haplotypes for normal effects. Individuals with homozygous haplotypes for carcass weight The carcass weight can be expected to increase by about 5% compared to individuals with homozygous haplotypes with normal effects.
The frequency of ghrelin receptor genes that have a positive effect on gain traits is estimated to be about 0.2 in the Japanese black population. Therefore, there is much room for increasing the frequency of this excellent gene.

本発明は、より具体的には以下の〔1〕〜〔20〕を提供するものである。
〔1〕 被検ウシについて、グレリン受容体遺伝子上の変異を検出することを特徴とする、ウシ黒毛和種の産肉形質を判定する方法であって、以下の工程(a)から(d)の工程を含む方法。
(a)被検対象となるウシから、DNAを抽出する工程
(b)抽出したDNAにおいて、多型部位を含むDNA断片を増幅する工程
(c)増幅したDNA断片を解析し、多型を検出する工程
(d)(c)の工程において、検出された変異に基づき、産肉形質を決定する工程
〔2〕 産肉形質が、産肉量であることを特徴とする〔1〕に記載の方法。
〔3〕 産肉形質を決定するための対象形質が、枝肉重量、屠殺前重量、検定終了時体重、1日平均増体重、バラ厚、皮下脂肪厚、推定歩留のいずれかである、〔1〕または〔2〕に記載の判定方法。
〔4〕 多型がマイクロサテライト多型である、〔1〕から〔3〕のいずれかに記載の方法。
〔5〕 配列番号:1に記載の塩基配列における2,429位から2,472位に相当する多型部位において、マイクロサテライト多型を検出することを特徴とする、〔4〕に記載の方法。
〔6〕 〔1〕に記載の工程(d)において、相同染色体のうち少なくとも一つのアリル反復数が、19、21、22、23、24、26、29または33である場合に、産肉量が多いと決定することを特徴とする、〔4〕に記載の方法。
〔7〕 〔1〕に記載の工程(b)において、塩基配列の増幅がPCR法によって行なわれることを特徴とする、〔4〕に記載の方法。
〔8〕 〔1〕に記載の工程(c)において、増幅されたDNA断片の長さを決定することにより、マイクロサテライト多型を検出することを特徴とする〔4〕に記載の方法。
〔9〕 〔1〕に記載の工程(c)において、増幅されたDNA断片の塩基配列を決定することにより、マイクロサテライト多型を検出することを特徴とする〔4〕に記載の方法。
〔10〕 多型が一塩基多型である、〔1〕から〔3〕のいずれかに記載の方法。
〔11〕 多型部位において、ウシグレリン受容体遺伝子の翻訳開始点から-7位(配列番号:1に記載の塩基配列における2,697位)の塩基種がCである場合と比較してAである場合に、産肉量が多いと決定する〔10〕に記載の方法。
〔12〕 多型部位において、ウシグレリン受容体遺伝子の翻訳開始点から-7位(配列番号:1に記載の塩基配列における2,697位)の塩基種がAである場合と比較してCである場合に、産肉量が少ないと決定する〔10〕に記載の方法。
〔13〕 〔1〕に記載の工程(b)において、塩基配列の増幅がPCR法によって行なわれることを特徴とする、〔10〕に記載の方法。
〔14〕 〔1〕に記載の工程(c)において、制限断片長多型(RFLP)を検出することにより、一塩基多型の存在を検出することを特徴とする〔10〕に記載の方法。
〔15〕 制限酵素Msp Iを用いて、-7位(配列番号:1に記載の塩基配列における2,697位)の一塩基多型を検出することを特徴とする、〔14〕に記載の方法。
〔16〕 〔1〕に記載の工程(c)において、増幅されたDNA断片の塩基配列を決定することにより、一塩基多型を検出することを特徴とする〔10〕に記載の方法。
〔17〕 〔1〕に記載の工程(c)において、一塩基多型部位を含むDNAに特異的にハイブリダイズするプローブにより、一塩基多型を検出することを特徴とする、〔10〕に記載の方法。
〔18〕 ウシグレリン受容体遺伝子の翻訳開始点から-7位(配列番号:1に記載の塩基配列における2,697位)の多型部位を含むDNAに特異的にハイブリダイズし、少なくとも15ヌクレオチドの鎖長を有するプローブ。
〔19〕 以下の(a)または(b)に記載の多型部位を含むDNAを増幅するためのプライマーオリゴヌクレオチド。
(a)配列番号:1に記載の塩基配列における2,697位の多型部位
(b)配列番号:1に記載の塩基配列における2,429位から2,472位の配列に相当する多型部位
〔20〕 〔18〕に記載のプローブ、または、〔19〕に記載のプライマーを含む、ウシ黒毛和種の産肉形質を判定するためのキット。
More specifically, the present invention provides the following [1] to [20].
[1] A method for determining a meat trait of Japanese bovine black cattle characterized by detecting a mutation on a ghrelin receptor gene in a test cow, comprising the following steps (a) to (d) Comprising the steps of:
(A) a step of extracting DNA from a cow to be tested (b) a step of amplifying a DNA fragment containing a polymorphic site in the extracted DNA (c) analyzing the amplified DNA fragment and detecting a polymorphism The step of determining the meat trait based on the detected mutation in the steps (d) and (c) [2] The meat trait is the amount of meat produced, Method.
[3] The target trait for determining a meat trait is any of carcass weight, weight before slaughter, body weight at the end of the test, average daily weight gain, rose thickness, subcutaneous fat thickness, estimated yield, 1] or the determination method according to [2].
[4] The method according to any one of [1] to [3], wherein the polymorph is a microsatellite polymorph.
[5] The method according to [4], wherein a microsatellite polymorphism is detected at a polymorphic site corresponding to positions 2,429 to 2,472 in the base sequence described in SEQ ID NO: 1.
[6] When the number of allele repeats of at least one of homologous chromosomes is 19, 21, 22, 23, 24, 26, 29 or 33 in the step (d) according to [1], the amount of meat produced The method according to [4], wherein it is determined that there is a large amount.
[7] The method according to [4], wherein in the step (b) according to [1], the base sequence is amplified by a PCR method.
[8] The method according to [4], wherein in the step (c) according to [1], the microsatellite polymorphism is detected by determining the length of the amplified DNA fragment.
[9] The method according to [4], wherein in the step (c) according to [1], the microsatellite polymorphism is detected by determining a base sequence of the amplified DNA fragment.
[10] The method according to any one of [1] to [3], wherein the polymorphism is a single nucleotide polymorphism.
[11] When the base type at position -7 from the translation start point of the bovine ghrelin receptor gene in the polymorphic site is A compared to the case where C is C The method according to [10], wherein it is determined that the amount of meat produced is large.
[12] When the base type at position -7 from the translation start point of the bovine ghrelin receptor gene at the polymorphic site is C (compared to the case where the base type is A at position 2,697) is A The method according to [10], wherein it is determined that the amount of meat produced is small.
[13] The method according to [10], wherein in the step (b) according to [1], the base sequence is amplified by a PCR method.
[14] The method according to [10], wherein the presence of a single nucleotide polymorphism is detected by detecting a restriction fragment length polymorphism (RFLP) in the step (c) according to [1]. .
[15] The method according to [14], wherein a single nucleotide polymorphism at position -7 (position 2,697 in the nucleotide sequence described in SEQ ID NO: 1) is detected using the restriction enzyme MspI.
[16] The method according to [10], wherein in the step (c) according to [1], a single nucleotide polymorphism is detected by determining a base sequence of the amplified DNA fragment.
[17] In the step (c) according to [1], the single nucleotide polymorphism is detected with a probe that specifically hybridizes to DNA containing the single nucleotide polymorphism site. The method described.
[18] It specifically hybridizes to DNA containing a polymorphic site at position -7 (position 2,697 in the nucleotide sequence described in SEQ ID NO: 1) from the start of translation of the bovine ghrelin receptor gene, and has a chain length of at least 15 nucleotides Having a probe.
[19] A primer oligonucleotide for amplifying DNA containing the polymorphic site described in (a) or (b) below.
(A) Polymorphic site at position 2,697 in the base sequence described in SEQ ID NO: 1 (b) Polymorphic site corresponding to the sequence from positions 2,429 to 2,472 in the base sequence described in SEQ ID NO: 1 [20] [18 ] A kit for determining the meat traits of Japanese bovine black hair, comprising the probe according to [19] or the primer according to [19].

本発明により、黒毛和種の産肉形質に関連する遺伝子上の領域が明らかとなり、当業者に過度の負担を強いることなく、黒毛和種の産肉形質を決定することができる。
本発明は、黒毛和種における枝肉重量等の増体形質の遺伝的な改良のための候補種雄牛の選抜、生産現場での肥育子牛の選抜において、有効な遺伝子マーカーとして畜産分野で広範な利用が期待される。また、候補種雄牛の選抜にあっては、直接検定の効果をさらに上げることができる特色を有している。
本発明により見出された、ウシグレリン受容体遺伝子の5'非翻訳領域における、増体形質に関連するマイクロサテライト領域は、他の生物種の当該領域には見られない。したがって、本発明のマイクロサテライト多型および一塩基多型を組み合わせることにより、他の生物種と比較しても、黒毛和種の増体形質をより効率的に判定することが可能となった。
According to the present invention, a region on a gene related to the meat traits of Japanese black varieties is clarified, and the meat traits of Japanese black cultivars can be determined without imposing an excessive burden on those skilled in the art.
The present invention is widely used in the field of animal husbandry as an effective genetic marker in selection of candidate bulls for genetic improvement of gain traits such as carcass weight in Japanese black cattle, and selection of fattening calves on the production site. Expected to be used. Further, the selection of candidate bulls has a feature that can further enhance the effect of the direct test.
The microsatellite region associated with gain trait in the 5 ′ untranslated region of the bovine ghrelin receptor gene found by the present invention is not found in this region of other species. Therefore, by combining the microsatellite polymorphism and the single nucleotide polymorphism of the present invention, it has become possible to more efficiently determine the increased trait of Japanese black species even when compared with other species.

〔発明の実施の形態〕
本発明者らは、黒毛和種においてグレリン受容体遺伝子の変異を明らかにし、黒毛和種の枝肉重量等増体形質との関連性を統計学的に行い、黒毛和種の増体に良い効果をもたらす遺伝子タイプを明らかにした。本発明は、これらの知見に基づくものである。
[Embodiment of the Invention]
The present inventors have clarified the mutation of the ghrelin receptor gene in Japanese black hair, statistically correlated with the carcass weight isoenzyme of Japanese black hair, and have a good effect on the growth of Japanese black hair The genotype that brings about The present invention is based on these findings.

本発明は(a)被検対象となるウシから、DNAを抽出する工程、(b)抽出したDNAにおいて、多型部位を含むDNA断片を増幅する工程、(c)増幅したDNA断片を解析し、多型を検出する工程、(d)(c)の工程において、検出された変異に基づき、産肉形質を決定する工程を含む、被検ウシについて、グレリン受容体遺伝子上の変異を検出することを特徴とする、ウシ黒毛和種の産肉形質を判定する方法に関する。   The present invention includes (a) a step of extracting DNA from a cow to be examined, (b) a step of amplifying a DNA fragment containing a polymorphic site in the extracted DNA, and (c) analyzing the amplified DNA fragment. Detecting a mutation on the ghrelin receptor gene for a test cow, comprising a step of determining a meat trait based on the detected mutation in the steps of (d) and (c). It is related with the method of determining the meat production character of Japanese black cattle characterized by this.

本発明におけるウシグレリン受容体遺伝子は、7回膜貫通構造を持つGタンパク質共役型受容体をコードしており、主に視床下部弓状核や脳下垂体成長ホルモン放出細胞等に発現して、胃から分泌するグレリンシグナルの伝達に必要な受容体遺伝子である。上記ウシグレリン受容体遺伝子およびその周辺配列の塩基配列を配列番号:1に示す。   The bovine ghrelin receptor gene in the present invention encodes a G protein-coupled receptor having a seven-transmembrane structure, and is expressed mainly in the hypothalamic arcuate nucleus, pituitary growth hormone-releasing cells, etc. It is a receptor gene necessary for the transmission of ghrelin signal secreted from. The base sequence of the bovine ghrelin receptor gene and its peripheral sequence is shown in SEQ ID NO: 1.

当該配列は、当業者においては、公共の遺伝子データバンク、例えば、NCBIアクセッション番号NW_001493715によって取得することが可能である。NW_001493715に開示された塩基配列において、本願に係るウシグレリン受容体遺伝子およびその周辺配列(配列番号:1)は756,821位〜763,282位に相当する部分である。   Such sequences can be obtained by those skilled in the art by public genetic data banks, for example, NCBI accession number NW — 001493715. In the base sequence disclosed in NW — 001493715, the bovine ghrelin receptor gene according to the present application and its peripheral sequence (SEQ ID NO: 1) are portions corresponding to positions 756,821 to 763,282.

本発明における産肉形質の判定が適用されるウシは、肉用牛であり、好ましくは黒毛和種である。
本発明において、「産肉形質」とは肉用牛における産肉量または肉質等を客観的に評価する基準を示す。産肉形質を決定するための対象形質としては、検定開始日齢、検定開始体重、検定開始体高、検定終了体重、検定終了体高、1日平均増体重、屠殺前体重、枝肉重量、ロース芯面積、バラ厚、皮下脂肪厚、推定歩留、筋間脂肪厚、BMS番号(脂肪交雑番号)などが挙げられるが、本発明で見出された遺伝子変異で優劣を判定できる産肉形質として、好ましくは、枝肉重量、屠殺前重量、検定終了時体重、1日平均増体重、バラ厚、皮下脂肪厚、推定歩留が挙げられる。
産肉形質は当業者であれば、公知の方法、文献などを参照して、容易に測定することができる。例えば、和牛登録実務必携(平成17年度版、社団法人 全国和牛登録会編、第7章 種雄牛の産肉能力検定、第2編定款・規程類 III種雄牛の検定方法)などを参照することができる。
The cow to which the determination of meat production traits in the present invention is applied is a beef cattle, preferably a Japanese black breed.
In the present invention, “meat traits” refers to a criterion for objectively evaluating the amount of meat produced or the quality of meat in beef cattle. The target traits for determining the meat production traits are: test start age, test start body weight, test start body height, test end body weight, test end body height, average daily weight gain, pre-slaughter body weight, carcass weight, loin core area , Rose thickness, subcutaneous fat thickness, estimated yield, intermuscular fat thickness, BMS number (fat crossing number), etc. are preferred as meat traits that can determine superiority or inferiority by the gene mutation found in the present invention. Includes carcass weight, weight before slaughter, body weight at the end of the test, average daily weight gain, rose thickness, subcutaneous fat thickness, and estimated yield.
A person skilled in the art can easily measure meat production traits with reference to known methods and literature. For example, refer to Wagyu Registration Practical Indispensable (2005 edition, National Wagyu Registration Committee, Chapter 7 Meat Production Capacity Test of Bulls, Part 2 Articles of Incorporation, Regulations Class III bulls test method) Can do.

また、本発明において「産肉形質を判定する」とは、被検対象となる肉用牛の産肉形質が、ウシグレリン受容体遺伝子に変異を持たない個体の産肉形質と比較して、有意に優れた形質を有するか否かを判定することをいう。本発明におけるウシグレリン受容体遺伝子の変異を有する個体は、変異を持たない個体の産肉形質と比較して、上記産肉形質を決定するための各対象形質において2〜10%、好ましくは2〜5%、さらに好ましくは2〜4%程度の産肉量の増加を示す。   Further, in the present invention, “determining meat traits” means that the meat traits of the beef cattle to be tested are significant compared to the meat traits of individuals not having a mutation in the bovine ghrelin receptor gene. Is to determine whether or not it has an excellent trait. The individual having a mutation in the bovine ghrelin receptor gene in the present invention is 2 to 10%, preferably 2 to 2 in each target trait for determining the meat trait compared to the meat trait of the individual not having the mutation. It shows an increase in meat production of about 5%, more preferably about 2-4%.

本発明における「多型」の第一の態様としては、マイクロサテライト多型を挙げることができる。
マイクロサテライト配列とは、ゲノム上に存在する短い単位配列の繰り返しからなる繰り返し配列をいう。ゲノム上の特定の位置にあるマイクロサテライト配列は個体により繰り返し数が異なる場合があり、多型が存在する。
本発明のマイクロサテライト多型としては、例えば、配列番号:1に記載の塩基配列における2,429位から2,472位に相当する多型部位における多型を挙げることができる。
本発明のマイクロサテライト配列の繰り返し配列の種類および単位数は個体によって異なるが、好ましくは相同染色体のうち少なくとも一つの染色体における、マイクロサテライトの2塩基(TGまたはTC)反復数が、各15、19、21、22、23、24、26、29または33、より好ましくは反復数が19の場合に、産肉形質が優れていると決定することができる。
The first aspect of the “polymorph” in the present invention includes a microsatellite polymorph.
A microsatellite sequence refers to a repetitive sequence composed of repeating short unit sequences existing on the genome. The microsatellite sequence at a specific position on the genome may have a different number of repeats depending on the individual, and there are polymorphisms.
Examples of the microsatellite polymorphism of the present invention include polymorphisms at polymorphic sites corresponding to positions 2,429 to 2,472 in the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 1.
The type and the number of units of the repetitive sequence of the microsatellite sequence of the present invention vary depending on the individual. Preferably, the number of microsatellite 2 base (TG or TC) repeats in at least one chromosome among homologous chromosomes is 15, 19 respectively. , 21, 22, 23, 24, 26, 29, or 33, more preferably, when the number of repeats is 19, it can be determined that the meat trait is excellent.

本発明の方法は、(a)被検対象となるウシから、DNAを抽出する工程、を含む。DNAの抽出は、当業者においては公知の方法によって行なうことができる。まず、ウシからDNA試料を調製する。DNA試料の調製は、例えば、ウシ各種組織、血液、精液サンプルより行うことができるが、これらに特に限定されない。これらのサンプルは市販のものを用いてもよいし、自ら採取して得てもよい。ウシからのDNAの抽出は、当業者においては一般的に公知の方法、例えば、フェノール・クロロホルム法または市販のゲノムDNA抽出キットを用いて行うことができる。   The method of the present invention includes (a) a step of extracting DNA from a cow to be examined. DNA extraction can be performed by those skilled in the art by a known method. First, a DNA sample is prepared from a cow. The DNA sample can be prepared from, for example, various bovine tissues, blood, and semen samples, but is not particularly limited thereto. These samples may be commercially available or may be collected by themselves. Extraction of DNA from cattle can be performed by those skilled in the art using generally known methods such as the phenol / chloroform method or a commercially available genomic DNA extraction kit.

本発明の方法においては次いで、(b)抽出したDNAにおいて、多型部位を含むDNA断片を増幅する工程、を行なう。該DNAの増幅は、例えば、本発明の多型部位を含むDNA断片にハイブリダイズするプライマーを用いて、DNA試料を鋳型としたPCRを実施することにより行うことが可能である。PCRは、当業者においては、その反応条件等について実験または経験によって最適な条件を適宜選択して実施することが可能である。通常、PCRは、反応液および耐熱性ポリメラーゼを含む市販の試薬キット、および市販のPCR装置等を利用して、簡便に実施することができる。PCRにより増幅するDNA領域としては、本発明の多型部位を含むDNA領域であれば特に制限はないが、配列番号:1に記載の塩基配列における2,429位から2,472位に相当する部分を含むDNA領域であることが好ましい。   Next, in the method of the present invention, (b) a step of amplifying a DNA fragment containing a polymorphic site in the extracted DNA is performed. The amplification of the DNA can be performed, for example, by performing PCR using a DNA sample as a template, using a primer that hybridizes to the DNA fragment containing the polymorphic site of the present invention. For those skilled in the art, PCR can be performed by appropriately selecting optimal conditions for the reaction conditions and the like based on experiments or experience. Usually, PCR can be easily carried out using a commercially available reagent kit containing a reaction solution and a heat-resistant polymerase, a commercially available PCR device, and the like. The DNA region to be amplified by PCR is not particularly limited as long as it is a DNA region containing the polymorphic site of the present invention, but is a DNA containing a portion corresponding to positions 2,429 to 2,472 in the base sequence described in SEQ ID NO: 1. A region is preferred.

本発明のPCRに用いるプライマーとしては、配列番号:1に記載の塩基配列における2,429位から2,472位に相当する部分を含む塩基配列とストリンジェントな条件で特異的にハイブリダイズするオリゴヌクレオチドであれば特に限定されない。ここで「特異的にハイブリダイズする」とは、通常のハイブリダイゼーション条件下、好ましくはストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下(例えば、サムブルックら,Molecular Cloning,Cold Spring Harbour Laboratory Press,New York,USA,第2版1989に記載の条件)において、他のタンパク質をコードするDNAとクロスハイブリダイゼーションを有意に生じないことを意味する。   The primer used in the PCR of the present invention is an oligonucleotide that specifically hybridizes under stringent conditions with a base sequence containing a portion corresponding to positions 2,429 to 2,472 in the base sequence set forth in SEQ ID NO: 1. There is no particular limitation. Here, “specifically hybridize” means normal hybridization conditions, preferably stringent hybridization conditions (for example, Sambrook et al., Molecular Cloning, Cold Spring Harbor Laboratory Press, New York, USA, In the condition described in the second edition 1989), it means that cross-hybridization does not occur significantly with DNA encoding other proteins.

ハイブリダイゼーションの条件は、当業者であれば適宜選択することができる。一例を示せば、25%ホルムアミド、より厳しい条件では50%ホルムアミド、4×SSC、50mM Hepes pH7.0、10×デンハルト溶液、20μg/ml変性サケ精子DNAを含むハイブリダイゼーション溶液中、42℃で一晩プレハイブリダイゼーションを行った後、標識したプローブを添加し、42℃で一晩保温することによりハイブリダイゼーションを行う。その後の洗浄における洗浄液および温度条件は、「1xSSC、0.1% SDS、37℃」程度で、より厳しい条件としては「0.5xSSC、0.1% SDS、42℃」程度で、さらに厳しい条件としては「0.2xSSC、0.1% SDS、65℃」程度で実施することができる。このようにハイブリダイゼーションの洗浄の条件が厳しくなるほどプローブ配列と高い相同性を有するDNAの単離を期待しうる。但し、上記SSC、SDSおよび温度の条件の組み合わせは例示であり、当業者であれば、ハイブリダイゼーションのストリンジェンシーを決定する上記若しくは他の要素(例えば、プローブ濃度、プローブの長さ、ハイブリダイゼーション反応時間など)を適宜組み合わせることにより、上記と同様のストリンジェンシーを実現することが可能である。   Hybridization conditions can be appropriately selected by those skilled in the art. An example is 25% formamide, 50% formamide under more severe conditions, 4 × SSC, 50 mM Hepes pH 7.0, 10 × Denhardt's solution, 20 μg / ml denatured in a hybridization solution containing denatured salmon sperm DNA at 42 ° C. After overnight prehybridization, a labeled probe is added and hybridization is performed by incubating overnight at 42 ° C. The cleaning solution and temperature conditions for the subsequent cleaning are about 1xSSC, 0.1% SDS, 37 ° C, more severe conditions are about 0.5xSSC, 0.1% SDS, 42 ° C, and more severe conditions are about 0.2xSSC. , 0.1% SDS, about 65 ° C. ”. Thus, isolation of DNA having high homology with the probe sequence can be expected as the conditions for washing hybridization are more severe. However, combinations of the above SSC, SDS, and temperature conditions are exemplary, and those skilled in the art will understand the above or other factors that determine the stringency of hybridization (eg, probe concentration, probe length, hybridization reaction). It is possible to achieve the same stringency as above by appropriately combining the time and the like.

本発明において使用されるマイクロサテライト配列を増幅し得るプライマーオリゴヌクレオチドの配列は、当業者においては、鋳型となるDNAの配列情報に基づいて、適宜、設計することが可能である。好ましくは、配列番号:1に記載の塩基配列における2,429位から2,472位に相当する部分を含むDNAまたはその相補鎖であるDNAに相補的な連続する15塩基を含むオリゴヌクレオチドである。PCRにおいて、上記マイクロサテライト配列を含むDNA領域を増幅する場合には、通常、上記マイクロサテライト配列を挟み込むように設定されたオリゴヌクレオチドのペアが用いられる。配列番号:2、3、22および23(図1〜3)に記載の塩基配列からなるオリゴヌクレオチドは、最も好ましい本発明のオリゴヌクレオチドの例である。
本発明のオリゴヌクレオチドは、上記マイクロサテライト配列を含むDNA領域を増幅しうる限り、該DNA領域に完全に相補的である必要はない。例えば、5'末端側に数ベース程度の他の塩基への置換変異を有する、もしくは5'末端側に任意の塩基が付加されたオリゴヌクレオチドであっても、本発明のオリゴヌクレオチドとして利用することが可能であるものと考えられる。
本発明の上記オリゴヌクレオチドは、当業者においては、通常、市販されたオリゴヌクレオチド合成機もしくは合成オリゴヌクレオチド受託サービスを利用して容易に取得することが可能である。
A primer oligonucleotide sequence capable of amplifying the microsatellite sequence used in the present invention can be appropriately designed by those skilled in the art based on the sequence information of DNA serving as a template. Preferred is an oligonucleotide comprising 15 consecutive bases complementary to DNA comprising a portion corresponding to positions 2,429 to 2,472 in the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 1 or DNA which is the complementary strand thereof. In PCR, when a DNA region containing the microsatellite sequence is amplified, a pair of oligonucleotides set so as to sandwich the microsatellite sequence is usually used. Oligonucleotides comprising the nucleotide sequences set forth in SEQ ID NOs: 2, 3, 22, and 23 (FIGS. 1 to 3) are the most preferred examples of the oligonucleotide of the present invention.
The oligonucleotide of the present invention does not need to be completely complementary to the DNA region as long as the DNA region containing the microsatellite sequence can be amplified. For example, even an oligonucleotide having a substitution mutation to other bases on the 5 'end side or about several bases, or an arbitrary base added to the 5' end side, can be used as the oligonucleotide of the present invention. Is considered possible.
The above-mentioned oligonucleotides of the present invention can be easily obtained by those skilled in the art by using a commercially available oligonucleotide synthesizer or a synthetic oligonucleotide contract service.

本発明のプライマーは、さらに修飾することができる。たとえば、蛍光物質や、ビオチンまたはジゴキシンのような結合親和性物質で標識したプライマーも本発明の方法に使用することができる。   The primer of the present invention can be further modified. For example, a fluorescent substance or a primer labeled with a binding affinity substance such as biotin or digoxin can also be used in the method of the present invention.

本発明においては次いで、(c)増幅したDNA断片を解析し、多型を検出する工程を行なう。増幅されたDNA断片の解析は、当業者においては種々の方法によって行なうことができる。
例えば、増幅されたDNA断片の塩基配列を決定することにより、当該DNA断片を解析することができる。増幅したDNA断片の塩基配列の決定は、当業者においては、DNAシークエンサー等を用いて容易に実施することができる。また、塩基配列の決定により、増幅されたDNA断片において、マイクロサテライト配列に含まれる対立遺伝子の種類および数を決定することもできる。
Next, in the present invention, (c) a step of analyzing the amplified DNA fragment and detecting a polymorphism is performed. Those skilled in the art can analyze the amplified DNA fragment by various methods.
For example, the DNA fragment can be analyzed by determining the base sequence of the amplified DNA fragment. Those skilled in the art can easily determine the base sequence of the amplified DNA fragment using a DNA sequencer or the like. Further, by determining the base sequence, the kind and number of alleles contained in the microsatellite sequence can be determined in the amplified DNA fragment.

マイクロサテライト配列の検出においては、上記のように塩基配列の決定により直接的に検出する方法以外に、塩基配列の決定なしに間接的に検出する方法を利用することもできる。間接的な方法としては、代表的には、SSLP(Simple Sequence Length Polymorphism)法が挙げられる(Nucleic Acids Res. 1989; 17: 6463、Genomics. 1994; 19: 137)。本方法は、ゲノム中に存在するマイクロサテライトの長さ(構成する塩基数)がウシのタイプによって相違することを利用して、マイクロサテライトを挟むようなプライマーを設定してPCRを行い、増幅されたDNA断片の長さの差を検出する方法である。   In the detection of the microsatellite sequence, a method of detecting indirectly without determining the base sequence can be used in addition to the method of detecting directly by determining the base sequence as described above. A typical example of the indirect method is SSLP (Simple Sequence Length Polymorphism) method (Nucleic Acids Res. 1989; 17: 6463, Genomics. 1994; 19: 137). This method is based on the fact that the length (number of bases) of microsatellite present in the genome differs depending on the type of cattle, and PCR is performed by setting primers that sandwich the microsatellite. This is a method for detecting the difference in length of DNA fragments.

本方法においては、まず、ウシからDNA試料を調製し、次いで、本発明のマイクロサテライト部位を含むDNAにハイブリダイズするプライマーを用いて、DNA試料を鋳型としたPCRを実施する。次いで、PCRにより増幅されたDNAをゲル上で分離し、分離されたDNAの鎖長を解析する。ゲル上で分離されたDNAの鎖長の差は、DNA断片を電気泳動した後のバンドパターンの違いとして検出することができる。PCRに用いるプライマーの片方を蛍光ラベルしておけば、ソフトウェア(例えば、GeneScanソフトウェア、Genotyperソフトウェア(Applied Biosystems))を用いて、電気泳動後のDNA断片の解析を行うことができる。   In this method, first, a DNA sample is prepared from cattle, and then PCR is performed using the DNA sample as a template, using a primer that hybridizes to DNA containing the microsatellite site of the present invention. Next, the DNA amplified by PCR is separated on a gel, and the chain length of the separated DNA is analyzed. The difference in the chain length of the DNA separated on the gel can be detected as a difference in band pattern after electrophoresis of the DNA fragment. If one of the primers used for PCR is fluorescently labeled, the DNA fragment after electrophoresis can be analyzed using software (eg, GeneScan software, Genotyper software (Applied Biosystems)).

上記DNA断片の解析を行なった後、被検対象となるウシの該解析結果を比較する。増幅されたDNA断片の解析結果とは、具体的には被検対象となるウシの増幅されたDNA断片において、決定された塩基配列、決定されたマイクロサテライト配列に含まれる対立遺伝子の種類および数、またはDNA断片の長さ等をいう。   After analyzing the DNA fragment, the analysis results of the cows to be tested are compared. The analysis result of the amplified DNA fragment specifically refers to the determined base sequence, the type and number of alleles contained in the determined microsatellite sequence in the amplified DNA fragment of the bovine subject to be tested. Or the length of a DNA fragment.

本発明は、次いで(d)(c)の工程において、検出された変異に基づき、産肉形質を決定する工程を含む。具体的には、相同遺伝子のうち少なくとも片方の遺伝子において、マイクロサテライト配列に含まれる対立遺伝子の反復数が15、19、21、22、23、24、26、29または33、好ましくは19である場合には、産肉形質が優れていると判定することができる。   Next, the present invention includes a step of determining meat traits based on the detected mutation in the steps (d) and (c). Specifically, in at least one of the homologous genes, the number of allele repeats contained in the microsatellite sequence is 15, 19, 21, 22, 23, 24, 26, 29 or 33, preferably 19. In this case, it can be determined that the meat traits are excellent.

本発明における「多型」の第二の態様として、一塩基多型を挙げることができる。
本発明の「一塩基多型部位」は、ウシグレリン受容体遺伝子もしくは該遺伝子の近傍DNA領域に存在する多型であれば、特に限定されない。具体的には、本発明の方法に用いる多型部位として、ウシグレリン受容体遺伝子の翻訳開始点から-7位(配列番号:1に記載の塩基配列における2,697位)または+70位(配列番号:1に記載の塩基配列における2,773位)の多型部位に相当する多型部位を挙げることができる。
As the second aspect of the “polymorphism” in the present invention, a single nucleotide polymorphism can be mentioned.
The “single nucleotide polymorphic site” of the present invention is not particularly limited as long as it is a polymorphism present in the bovine ghrelin receptor gene or a DNA region in the vicinity of the gene. Specifically, as a polymorphic site used in the method of the present invention, position -7 (position 2,697 in the base sequence described in SEQ ID NO: 1) or position +70 (SEQ ID NO :) from the translation start point of the bovine ghrelin receptor gene. And a polymorphic site corresponding to the polymorphic site at position 2,773 in the base sequence described in FIG.

本発明の好ましい態様においては、上述した多型部位における塩基種の変異が、-7位(配列番号:1に記載の塩基配列における2,697位)の塩基種がCである場合と比較してAである場合に、産肉形質が多いと決定することができる。反対に、-7位(配列番号:1に記載の塩基配列における2,697位)の塩基種がAである場合と比較してCである場合に、産肉量が少ないと決定することができる。   In a preferred embodiment of the present invention, the mutation of the base species at the polymorphic site described above is A compared with the case where the base species at position -7 (position 2,697 in the base sequence described in SEQ ID NO: 1) is C. When it is, it can be determined that there are many meat traits. On the other hand, when the base species at position -7 (position 2,697 in the base sequence described in SEQ ID NO: 1) is C, it can be determined that the amount of meat produced is small.

上記に示した一塩基多型部位の塩基種は配列表に示した配列に対して相補鎖側にある塩基種を示している場合があるが、本明細書において記載された前後配列を用いれば異同を確認することは当業者にとって容易であり、検出を行うにあたってはプラス鎖とマイナス鎖のどちらを調べても必然的にもう一方の結果を決定することができる。   The base type of the single nucleotide polymorphism site shown above may indicate a base type on the complementary strand side with respect to the sequence shown in the sequence listing, but if the sequence before and after described in this specification is used, It is easy for those skilled in the art to confirm the difference, and when performing detection, the other result can be determined inevitably by examining either the plus strand or the minus strand.

本発明の一塩基多型部位における塩基種の決定は、当業者においては種々の方法によって行うことができる。一例を示せば、本発明の一塩基多型部位を含むDNAの塩基配列を直接決定することによって行うことができる。   A person skilled in the art can determine the base type in the single nucleotide polymorphic site of the present invention by various methods. For example, it can be carried out by directly determining the base sequence of DNA containing the single nucleotide polymorphic site of the present invention.

本方法においては、上述のマイクロサテライト多型を検出する場合と同様、(a)被検対象となるウシから、DNAを抽出する工程、(b)抽出したDNAにおいて、多型部位を含むDNA断片を増幅する工程を行う。   In this method, as in the case of detecting the above-described microsatellite polymorphism, (a) a step of extracting DNA from the cow to be examined, (b) a DNA fragment containing the polymorphic site in the extracted DNA A step of amplifying the signal is performed.

本方法において、次いで、(c)増幅したDNA断片を解析し、多型を検出する方法を行う。単離したDNAの塩基配列の決定は、当業者においては、DNAシークエンサー等を用いて容易に実施することができる。   Next, in this method, (c) the amplified DNA fragment is analyzed to detect a polymorphism. Those skilled in the art can easily determine the base sequence of the isolated DNA using a DNA sequencer or the like.

予め塩基のバリエーションが明らかにされている多型部位について、その塩基種を決定するための様々な方法が公知である。本発明の塩基種の決定方法は、特に限定されない。例えば、PCR法を応用した解析方法として、TaqMan PCR法、AcycloPrime法、およびMALDI-TOF/MS法等が実用化されている。またPCRに依存しない塩基種の決定法としてInvader法やRCA法が知られている。更にDNAアレイを使って塩基種を決定することもできる。ここに述べた方法は、いずれも本発明における多型部位の塩基種の決定に応用できる。   Various methods for determining the base type of a polymorphic site whose base variation has been clarified in advance are known. The method for determining the base species of the present invention is not particularly limited. For example, TaqMan PCR method, AcycloPrime method, MALDI-TOF / MS method and the like have been put to practical use as analysis methods applying the PCR method. Invader and RCA methods are known as methods for determining base types that do not depend on PCR. Furthermore, the base species can be determined using a DNA array. Any of the methods described herein can be applied to the determination of the base type of the polymorphic site in the present invention.

また、PCR-SSP法を用いて塩基種を決定することもできる。PCR-SSP法とは、PCR産物にアレル特異的プライマーを用いて伸張反応を行い、SNP型を判定する方法である。本発明の配列番号:1に記載の塩基配列における2,697位の一塩基多型解析の場合には、2,697位の一塩基多型部分を含む198塩基対部分を第一回のPCRでまず増幅する。次に、この第1回PCR産物を鋳型にして、その内側に2,697位の一塩基多型部分がプライマーの3’末端に位置するように5’FAM 蛍光色素標識したリバースプライマーをアリルごとにサイズを変えて(Aアリル:14塩基;Cアリル:17塩基)作製する。フォワードプライマーは第一回のPCRと同様のプライマーを使用できる(図5)。これら3種類(フォワードプライマープライマー:1種類;リバースプライマープライマー:2種類)を用いて、第二回目のPCR(PCR-SSP)を行う。判定は、シークエンサーでPCR産物のピークパターンを判別することで簡単に遺伝子型を決定できる。   In addition, the base species can be determined using the PCR-SSP method. The PCR-SSP method is a method for determining an SNP type by performing an extension reaction using an allele-specific primer on a PCR product. In the case of single nucleotide polymorphism analysis at position 2,697 in the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 1 of the present invention, a 198 base pair portion including the single nucleotide polymorphism portion at position 2,697 is first amplified by the first PCR. . Next, using this first PCR product as a template, reverse primer labeled with 5'FAM fluorescent dye is sized for each allele so that the single nucleotide polymorphism at position 2,697 is located at the 3 'end of the primer. (A allyl: 14 bases; C allyl: 17 bases). As the forward primer, the same primer as in the first PCR can be used (FIG. 5). Using these three types (forward primer primer: 1 type; reverse primer primer: 2 types), the second PCR (PCR-SSP) is performed. The genotype can be easily determined by discriminating the peak pattern of the PCR product with a sequencer.

これらの方法はいずれも多量のサンプルを高速にジェノタイピングするために開発された方法である。MALDI-TOF/MSを除けば、通常、いずれの方法にも何らかの形で標識プローブなどを用意する必要がある。これに対して、標識プローブなどに頼らない塩基種決定法も古くから行われている。このような方法の一つとして、例えば、制限酵素断片長多型(Restriction Fragment Length Polymorphism/RFLP)を利用した方法やPCR-RFLP法等が挙げられる。   All of these methods have been developed for genotyping a large amount of samples at high speed. With the exception of MALDI-TOF / MS, it is usually necessary to prepare a labeled probe or the like in any way for either method. On the other hand, a method for determining a base type that does not rely on a labeled probe has been performed for a long time. As one of such methods, for example, a method using restriction fragment length polymorphism (RFLP), a PCR-RFLP method and the like can be mentioned.

RFLPは、制限酵素の認識部位の変異、あるいは制限酵素処理によって生じるDNA断片内における塩基の挿入または欠失が、制限酵素処理後に生じる断片の大きさの変化として検出できることを利用している。検出対象となる多型を含む塩基配列を認識する制限酵素が存在すれば、RFLPの原理によって多型部位の塩基を知ることができる。   RFLP utilizes the fact that a restriction enzyme recognition site mutation or a base insertion or deletion in a DNA fragment caused by restriction enzyme treatment can be detected as a change in the size of the fragment produced after the restriction enzyme treatment. If there is a restriction enzyme that recognizes the base sequence containing the polymorphism to be detected, the base of the polymorphic site can be known by the principle of RFLP.

本発明においては、制限酵素Msp Iを用いて、-7位(配列番号:1に記載の塩基配列における2,697位)の一塩基多型を検出することができる(図6)。また、同様に制限酵素Tth111 Iを用いて、+70位(配列番号:1に記載の塩基配列における2,773位)の一塩基多型を検出することができる。   In the present invention, a single nucleotide polymorphism at position -7 (position 2,697 in the nucleotide sequence described in SEQ ID NO: 1) can be detected using the restriction enzyme Msp I (FIG. 6). Similarly, a single nucleotide polymorphism at position +70 (position 2,773 in the base sequence described in SEQ ID NO: 1) can be detected using the restriction enzyme Tth111 I.

また、CAPS (Cleaved Amplifeid Polymorphic Sequence)マーカーあるいはプライマーに変異を導入し、制限酵素サイトを作り出すdCAPS (derived CAPS)マーカーを使用することもできる。dCAPSマーカーは、PCRのプライマーにテンプレートのDNAとミスマッチを起こして、PCR産物上に制限酵素サイトを作り出すという手法である(特開2003-259898)。   Alternatively, a CAPS (Cleaved Amplifeid Polymorphic Sequence) marker or a primer can be used to introduce a mutation and a dCAPS (derived CAPS) marker that creates a restriction enzyme site. The dCAPS marker is a technique of creating a restriction enzyme site on a PCR product by causing a mismatch between a PCR primer and DNA of a template (Japanese Patent Laid-Open No. 2003-259898).

標識プローブを必要としない方法として、DNAの二次構造の変化を指標として塩基の違いを検出する方法も公知である。PCR-SSCPでは、1本鎖DNAの二次構造がその塩基配列の相違を反映することを利用している(Cloning and polymerase chain reaction-single-strand conformation polymorphism analysis of anonymous Alu repeats on chromosome 11. Genomics. 1992 Jan 1; 12(1): 139-146.、Detection of p53 gene mutations in human brain tumors by single-strand conformation polymorphism analysis of polymerase chain reaction products. Oncogene. 1991 Aug 1; 6(8): 1313-1318.、Multiple fluorescence-based PCR-SSCP analysis with postlabeling.、PCR Methods Appl. 1995 Apr 1; 4(5): 275-282.)。PCR-SSCP法は、PCR産物を1本鎖DNAに解離させ、非変性ゲル上で分離する工程により実施される。ゲル上の移動度は、1本鎖DNAの二次構造によって変動するので、もしも多型部位における塩基の相違があれば、移動度の違いとして検出することができる。   As a method that does not require a labeled probe, a method for detecting a difference in base using a change in the secondary structure of DNA as an index is also known. PCR-SSCP utilizes the fact that the secondary structure of single-stranded DNA reflects the difference in its nucleotide sequence (Cloning and polymerase chain reaction-single-strand conformation polymorphism analysis of anonymous Alu repeats on chromosome 11. Genomics 1992 Jan 1; 12 (1): 139-146., Detection of p53 gene mutations in human brain tumors by single-strand conformation polymorphism analysis of polymerase chain reaction products. Oncogene. 1991 Aug 1; 6 (8): 1313- 1318., Multiple fluorescence-based PCR-SSCP analysis with postlabeling., PCR Methods Appl. 1995 Apr 1; 4 (5): 275-282.). The PCR-SSCP method is performed by dissociating the PCR product into single-stranded DNA and separating it on a non-denaturing gel. Since the mobility on the gel varies depending on the secondary structure of the single-stranded DNA, if there is a difference in base at the polymorphic site, it can be detected as a difference in mobility.

その他、標識プローブを必要としない方法として、例えば、変性剤濃度勾配ゲル(denaturant gradient gel electrophoresis: DGGE法)等を例示することができる。DGGE法は、変性剤の濃度勾配のあるポリアクリルアミドゲル中で、DNA断片の混合物を泳動し、それぞれの不安定性の違いによってDNA断片を分離する方法である。ミスマッチのある不安定なDNA断片が、ゲル中のある変性剤濃度の部分まで移動すると、ミスマッチ周辺のDNA配列はその不安定さのために、部分的に1本鎖へと解離する。部分的に解離したDNA断片の移動度は、非常に遅くなり、解離部分のない完全な二本鎖DNAの移動度と差がつくことから、両者を分離することができる。   Other examples of methods that do not require a labeled probe include denaturant gradient gel electrophoresis (DGGE method). The DGGE method is a method in which a mixture of DNA fragments is run in a polyacrylamide gel having a concentration gradient of a denaturing agent, and the DNA fragments are separated depending on the instability of each. When a mismatched unstable DNA fragment migrates to a certain denaturant concentration in the gel, the DNA sequence around the mismatch is partially dissociated into single strands due to its instability. The mobility of a partially dissociated DNA fragment becomes very slow and can be separated from the mobility of a complete double-stranded DNA without a dissociated portion.

更にDNAアレイを使って塩基種を決定することもできる(細胞工学別冊「DNAマイクロアレイと最新PCR法」,秀潤社,2000.4/20発行,pp97-103「オリゴDNAチップによるSNPの解析」,梶江慎一)。DNAアレイは、同一平面上に配置した多数のプローブに対してサンプルDNA(あるいはRNA)をハイブリダイズさせ、当該平面をスキャンすることによって、各プローブに対するハイブリダイズが検出される。多くのプローブに対する反応を同時に観察することができることから、例えば、多数の多型部位について同時に解析するには、DNAアレイは有用である。   In addition, the DNA species can be used to determine the base species (Cell engineering separate volume “DNA microarray and the latest PCR method”, Shujunsha, published 2000.4 / 20, pp97-103 “SNP analysis using oligo DNA chip”, Sabae. Shinichi). In the DNA array, sample DNA (or RNA) is hybridized to a large number of probes arranged on the same plane, and the hybridization to each probe is detected by scanning the plane. Since responses to many probes can be observed simultaneously, for example, a DNA array is useful for analyzing a large number of polymorphic sites simultaneously.

上記の方法以外にも、特定部位の塩基を検出するために、アリル特異的オリゴヌクレオチド(Allele Specific Oligonucleotide/ASO)ハイブリダイゼーション法が利用できる。アリル特異的オリゴヌクレオチド(ASO)は、検出すべき多型部位が存在する領域にハイブリダイズする塩基配列で構成される。ASOを試料DNAにハイブリダイズさせるとき、多型によって多型部位にミスマッチが生じるとハイブリッド形成の効率が低下する。ミスマッチは、サザンブロット法や、特殊な蛍光試薬がハイブリッドのギャップにインターカレーションすることにより消光する性質を利用した方法等によって検出することができる。また、リボヌクレアーゼAミスマッチ切断法によって、ミスマッチを検出することもできる。本発明においては、配列番号:1に記載の塩基配列における、2,697位または2,773位の多型部位に相当する多型部位のいずれかに記載の多型部位を含むDNAにハイブリダイズし、少なくとも15ヌクレオチドの鎖長を有するオリゴヌクレオチドは、ハイブリダイゼーション法に用いるプローブとして使用することができる。   In addition to the above method, an allele specific oligonucleotide (ASO) hybridization method can be used to detect a base at a specific site. An allyl-specific oligonucleotide (ASO) is composed of a base sequence that hybridizes to a region where a polymorphic site to be detected is present. When ASO is hybridized to sample DNA, the hybridization efficiency decreases if a mismatch occurs at the polymorphic site due to the polymorphism. Mismatches can be detected by Southern blotting or a method that uses the property of quenching by intercalating a special fluorescent reagent into the hybrid gap. Mismatches can also be detected by the ribonuclease A mismatch cleavage method. In the present invention, in the base sequence set forth in SEQ ID NO: 1, it hybridizes to DNA containing the polymorphic site described in either the polymorphic site corresponding to the polymorphic site at position 2,697 or 2,773, and at least 15 Oligonucleotides having a nucleotide chain length can be used as probes used in hybridization methods.

該オリゴヌクレオチドは、本発明の上記多型部位のいずれかの多型部位を含むDNAに特異的にハイブリダイズするものである。ここで「特異的にハイブリダイズする」とは、通常のハイブリダイゼーション条件下、好ましくはストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下(例えば、サムブルックら,Molecular Cloning,Cold Spring Harbour Laboratory Press,New York,USA,第2版1989に記載の条件)において、他のタンパク質をコードするDNAとクロスハイブリダイゼーションを有意に生じないことを意味する。特異的なハイブリダイズが可能であれば、該オリゴヌクレオチドは、検出する遺伝子もしくは該遺伝子の近傍DNA領域における、上記植物の種子休眠を制御する機能を有する植物由来のタンパク質をコードするDNA塩基配列に対し、完全に相補的である必要はない。   The oligonucleotide specifically hybridizes to DNA containing any one of the polymorphic sites of the present invention. Here, “specifically hybridize” means normal hybridization conditions, preferably stringent hybridization conditions (for example, Sambrook et al., Molecular Cloning, Cold Spring Harbor Laboratory Press, New York, USA, In the condition described in the second edition 1989), it means that cross-hybridization does not occur significantly with DNA encoding other proteins. If the specific hybridization is possible, the oligonucleotide is added to a DNA base sequence encoding a plant-derived protein having a function of controlling seed dormancy of the plant in a gene to be detected or a DNA region in the vicinity of the gene. On the other hand, it need not be completely complementary.

本発明は、次いで(d)(c)の工程において、検出された変異に基づき、産肉形質を決定する工程を含む。本発明においては、上述のとおり、多型部位における塩基種の変異が、-7位(配列番号:1に記載の塩基配列における2,697位)の塩基種がCである場合と比較してAである場合に、産肉形質が多いと決定することができる。反対に、-7位(配列番号:1に記載の塩基配列における2,697位)の塩基種がAである場合と比較してCである場合に、産肉量が少ないと決定することができる。   Next, the present invention includes a step of determining meat traits based on the detected mutation in the steps (d) and (c). In the present invention, as described above, the mutation of the base species at the polymorphic site is A in comparison with the case where the base species at position -7 (position 2,697 in the base sequence described in SEQ ID NO: 1) is C. In some cases, it can be determined that there are many meat traits. On the other hand, when the base species at position -7 (position 2,697 in the base sequence described in SEQ ID NO: 1) is C, it can be determined that the amount of meat produced is small.

本発明は、本発明のマイクロサテライト多型および本発明の一塩基多型を複数同時に検出することにより、ウシ黒毛和種の産肉形質を判定する方法もまた含む。変異の組み合わせは特に限定されるものではないが、本発明の好ましい態様の一例として、相同遺伝子のうち少なくとも片方の遺伝子において、マイクロサテライト配列に含まれる対立遺伝子の反復数が19であり、本発明の一塩基多型のいずれかまたは全てを有する場合に、産肉形質が優れていると判定することができる。   The present invention also includes a method for determining the meat traits of Japanese black cattle by simultaneously detecting a plurality of the microsatellite polymorphisms of the present invention and the single nucleotide polymorphisms of the present invention. The combination of mutations is not particularly limited, but as an example of a preferred embodiment of the present invention, the number of allele repeats contained in the microsatellite sequence is 19 in at least one of the homologous genes. It is possible to determine that the meat trait is excellent when it has any or all of the single nucleotide polymorphisms.

本発明は、本発明の多型部位を含む領域を増幅するためのプライマー、および多型部位を含むDNA領域にハイブリダイズするプローブを提供する。
本発明において、多型部位を含む領域を増幅するためのプライマーには、多型部位を含むDNAを鋳型として、多型部位に向かって相補鎖合成を開始することができるプライマーも含まれる。該プライマーは、多型部位を含むDNAにおける、多型部位の3'側に複製開始点を与えるためのプライマーと表現することもできる。プライマーがハイブリダイズする領域と多型部位との間隔は任意である。両者の間隔は、多型部位の塩基の解析手法に応じて、好適な塩基数を選択することができる。たとえば、DNAチップによる解析のためのプライマーであれば、多型部位を含む領域として、20〜500、通常50〜200塩基の長さの増幅産物が得られるようにプライマーをデザインすることができる。当業者においては、多型部位を含む周辺DNA領域についての塩基配列情報を基に、解析手法に応じたプライマーをデザインすることができる。本発明のプライマーを構成する塩基配列は、ゲノムの塩基配列に対して完全に相補的な塩基配列のみならず、適宜改変することができる。
The present invention provides a primer for amplifying a region containing the polymorphic site of the present invention, and a probe that hybridizes to a DNA region containing the polymorphic site.
In the present invention, the primer for amplifying a region containing a polymorphic site also includes a primer that can initiate complementary strand synthesis toward the polymorphic site using DNA containing the polymorphic site as a template. The primer can also be expressed as a primer for providing a replication origin on the 3 ′ side of the polymorphic site in DNA containing the polymorphic site. The interval between the region where the primer hybridizes and the polymorphic site is arbitrary. For the interval between the two, a suitable number of bases can be selected according to the analysis method of the base at the polymorphic site. For example, in the case of a primer for analysis using a DNA chip, the primer can be designed so as to obtain an amplification product having a length of 20 to 500, usually 50 to 200 bases, as a region containing a polymorphic site. A person skilled in the art can design a primer according to the analysis method based on the base sequence information about the surrounding DNA region including the polymorphic site. The base sequence constituting the primer of the present invention can be appropriately modified as well as a base sequence completely complementary to the genomic base sequence.

本発明のプライマーには、ゲノムの塩基配列に相補的な塩基配列に加え、任意の塩基配列を付加することができる。例えば、IIs型の制限酵素を利用した多型の解析方法のためのプライマーにおいては、IIs型制限酵素の認識配列を付加したプライマーが利用される。このような、塩基配列を修飾したプライマーは、本発明のプライマーに含まれる。更に、本発明のプライマーは、修飾することができる。例えば、蛍光物質や、ビオチンまたはジゴキシンのような結合親和性物質で標識したプライマーが各種のジェノタイピング方法において利用される。これらの修飾を有するプライマーも本発明に含まれる。   In addition to the base sequence complementary to the genomic base sequence, an arbitrary base sequence can be added to the primer of the present invention. For example, in a primer for a polymorphism analysis method using a type IIs restriction enzyme, a primer to which a recognition sequence for a type IIs restriction enzyme is added is used. Such a primer with a modified base sequence is included in the primer of the present invention. Furthermore, the primer of the present invention can be modified. For example, a fluorescent substance or a primer labeled with a binding affinity substance such as biotin or digoxin is used in various genotyping methods. Primers having these modifications are also included in the present invention.

本発明のプライマーの具体的な例としては、(a)配列番号:1に記載の塩基配列における2,697位の多型部位、または2,773位の多型部位、または(b)配列番号:1に記載の塩基配列における2,429位から2,472位の配列に相当する多型部位を含むDNAを増幅するためのプライマーオリゴヌクレオチドが挙げられるが、本発明のプライマーはこれに限定されるものではない。このようなプライマーの一例として、配列番号:2〜31に記載のプライマーが挙げられる。   Specific examples of the primer of the present invention include (a) the polymorphic site at position 2,697, or the polymorphic site at position 2,773 in the base sequence described in SEQ ID NO: 1, or (b) described in SEQ ID NO: 1. Primer oligonucleotides for amplifying a DNA containing a polymorphic site corresponding to the sequence from position 2,429 to position 2,472 in the nucleotide sequence are included, but the primer of the present invention is not limited thereto. An example of such a primer is the primer set forth in SEQ ID NOs: 2-31.

一方本発明において、多型部位を含む領域にハイブリダイズするプローブとは、多型部位を含む領域の塩基配列を有するポリヌクレオチドとハイブリダイズすることができるプローブを言う。より具体的には、プローブの塩基配列中に多型部位を含むプローブは本発明のプローブとして好ましい。あるいは、多型部位における塩基の解析方法によっては、プローブの末端が多型部位に隣接する塩基に対応するように、デザインされる場合もある。従って、プローブ自身の塩基配列には多型部位が含まれないが、多型部位に隣接する領域に相補的な塩基配列を含むプローブも、本発明における望ましいプローブとして示すことができる。   On the other hand, in the present invention, a probe that hybridizes to a region containing a polymorphic site refers to a probe that can hybridize to a polynucleotide having a base sequence of a region containing a polymorphic site. More specifically, a probe containing a polymorphic site in the base sequence of the probe is preferable as the probe of the present invention. Alternatively, depending on the base analysis method at the polymorphic site, the probe may be designed so that the end of the probe corresponds to a base adjacent to the polymorphic site. Therefore, although the polymorphic site is not included in the base sequence of the probe itself, a probe including a base sequence complementary to the region adjacent to the polymorphic site can also be shown as a desirable probe in the present invention.

言いかえれば、ゲノムDNA上の本発明の多型部位、または多型部位に隣接する部位にハイブリダイズすることができるプローブは、本発明のプローブとして好ましい。本発明のプローブには、プライマーと同様に、塩基配列の改変、塩基配列の付加、あるいは修飾が許される。例えば、Invader法に用いるプローブは、フラップを構成するゲノムとは無関係な塩基配列が付加される。このようなプローブも、多型部位を含む領域にハイブリダイズする限り、本発明のプローブに含まれる。本発明のプローブを構成する塩基配列は、ゲノムにおける本発明の多型部位の周辺DNA領域の塩基配列をもとに、解析方法に応じてデザインすることができる。   In other words, a probe capable of hybridizing to the polymorphic site of the present invention on genomic DNA or a site adjacent to the polymorphic site is preferred as the probe of the present invention. In the probe of the present invention, modification of the base sequence, addition of the base sequence, or modification is allowed in the same manner as the primer. For example, a probe used for the Invader method is added with a base sequence unrelated to the genome constituting the flap. Such a probe is also included in the probe of the present invention as long as it hybridizes to a region containing a polymorphic site. The base sequence constituting the probe of the present invention can be designed according to the analysis method based on the base sequence of the DNA region surrounding the polymorphic site of the present invention in the genome.

本発明のプライマーまたはプローブは、それを構成する塩基配列をもとに、任意の方法によって合成することができる。本発明のプライマーまたはプローブの、ゲノムDNAに相補的な塩基配列の長さは、通常15〜100、一般に15〜50、好ましくは15〜30である。与えられた塩基配列に基づいて、当該塩基配列を有するオリゴヌクレオチドを合成する手法は公知である。更に、オリゴヌクレオチドの合成において、蛍光色素やビオチンなどで修飾されたヌクレオチド誘導体を利用して、オリゴヌクレオチドに任意の修飾を導入することもできる。あるいは、合成されたオリゴヌクレオチドに、蛍光色素などを結合する方法も公知である。   The primer or probe of the present invention can be synthesized by any method based on the base sequence constituting it. The length of the base sequence complementary to the genomic DNA of the primer or probe of the present invention is usually 15 to 100, generally 15 to 50, preferably 15 to 30. A technique for synthesizing an oligonucleotide having the base sequence based on the given base sequence is known. Furthermore, in the synthesis of the oligonucleotide, any modification can be introduced into the oligonucleotide using a nucleotide derivative modified with a fluorescent dye or biotin. Alternatively, a method of binding a fluorescent dye or the like to a synthesized oligonucleotide is also known.

本発明のプローブの具体的な例としては、上述のように、配列番号:1に記載の塩基配列における、2,697位または2,773位の多型部位に相当する多型部位のいずれかに記載の多型部位を含む領域にハイブリダイズするプローブであって、少なくとも15ヌクレオチドの鎖長を有するプローブが挙げられる。   As a specific example of the probe of the present invention, as described above, the polymorphism described in any of the polymorphic sites corresponding to the polymorphic site at position 2,697 or 2,773 in the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 1. A probe that hybridizes to a region containing a type site and has a chain length of at least 15 nucleotides.

さらに本発明は、配列番号:1に記載の塩基配列における2,773位の塩基種がGである、ウシグレリン受容体変異タンパク質もまた提供する。
本発明の検査薬の他の一つの態様は、ウシグレリン受容体変異タンパク質を特異的に認識する抗体を含む、識別用試薬である。該抗体は、本発明の方法に用いることが可能な抗体であれば、特に制限されないが、例えばポリクローナル抗体やモノクローナル抗体が挙げられる。抗体は必要に応じて標識されていてもよい。
Furthermore, the present invention also provides a bovine ghrelin receptor mutant protein in which the base species at position 2,773 in the base sequence set forth in SEQ ID NO: 1 is G.
Another embodiment of the test agent of the present invention is an identification reagent containing an antibody that specifically recognizes bovine ghrelin receptor mutant protein. The antibody is not particularly limited as long as it can be used in the method of the present invention, and examples thereof include a polyclonal antibody and a monoclonal antibody. The antibody may be labeled as necessary.

ウシグレリン受容体変異タンパク質を認識する抗体は、当業者に公知の方法により調製することが可能である。ポリクローナル抗体であれば、例えば、次のようにして取得することができる。ウシグレリン受容体変異タンパク質、あるいはGSTとの融合タンパク質として大腸菌等の微生物において発現させたリコンビナントウシグレリン受容体変異タンパク質、またはその部分ペプチドをウサギ等の小動物に免疫し血清を得る。これを、例えば、硫安沈殿、プロテインA、プロテインGカラム、DEAEイオン交換クロマトグラフィー、ウシグレリン受容体変異タンパク質や合成ペプチドをカップリングしたアフィニティーカラム等により精製することにより調製する。また、モノクローナル抗体であれば、例えば、ウシグレリン受容体変異タンパク質若しくはその部分ペプチドをマウスなどの小動物に免疫を行い、同マウスより脾臓を摘出し、これをすりつぶして細胞を分離し、該細胞とマウスミエローマ細胞とをポリエチレングリコールなどの試薬を用いて融合させ、これによりできた融合細胞(ハイブリドーマ)の中から、ウシグレリン受容体変異タンパク質に結合する抗体を産生するクローンを選択する。次いで、得られたハイブリドーマをマウス腹腔内に移植し、同マウスより腹水を回収し、得られたモノクローナル抗体を、例えば、硫安沈殿、プロテインA、プロテインGカラム、DEAEイオン交換クロマトグラフィー、ウシグレリン受容体変異タンパク質や合成ペプチドをカップリングしたアフィニティーカラム等により精製することで、調製することが可能である。   Antibodies that recognize bovine ghrelin receptor mutant proteins can be prepared by methods known to those skilled in the art. For example, a polyclonal antibody can be obtained as follows. A serum is obtained by immunizing a small animal such as a rabbit with a recombinant bovine ghrelin receptor mutant protein expressed in a microorganism such as Escherichia coli or a partial peptide thereof as a bovine ghrelin receptor mutant protein or a fusion protein with GST. This is prepared by, for example, purification using ammonium sulfate precipitation, protein A, protein G column, DEAE ion exchange chromatography, an affinity column coupled with bovine ghrelin receptor mutant protein or synthetic peptide, or the like. In the case of a monoclonal antibody, for example, a bovine ghrelin receptor mutant protein or a partial peptide thereof is immunized to a small animal such as a mouse, and the spleen is removed from the mouse and ground to separate the cells. A myeloma cell is fused with a reagent such as polyethylene glycol, and a clone producing an antibody that binds to a bovine ghrelin receptor mutant protein is selected from the resulting fused cells (hybridoma). Subsequently, the obtained hybridoma is transplanted into the abdominal cavity of the mouse, and ascites is collected from the mouse, and the obtained monoclonal antibody is obtained by, for example, ammonium sulfate precipitation, protein A, protein G column, DEAE ion exchange chromatography, bovine ghrelin receptor. It can be prepared by purification using an affinity column coupled with a mutant protein or a synthetic peptide.

本発明はまた、本発明のウシ黒毛和種の産肉形質を判定する方法に使用するための試薬(検査薬)を提供する。本発明の試薬は、前記本発明のプライマー、プローブおよび/または抗体を含む。ウシ黒毛和種の産肉形質の判定においては上記、本発明の多型部位のいずれかに記載の多型部位を含むDNAを増幅するためのプライマー、プローブおよび/または抗体を用いる。   The present invention also provides a reagent (test agent) for use in the method for determining the meat traits of the Japanese bovine Japanese black cattle of the present invention. The reagent of the present invention includes the primer, probe and / or antibody of the present invention. In the determination of meat traits of Japanese bovine Japanese black cattle, primers, probes and / or antibodies for amplifying DNA containing the polymorphic site described in any of the polymorphic sites of the present invention are used.

本発明の試薬には、塩基種の決定方法に応じて、有効成分であるプライマー、プローブおよび/または抗体以外に、例えば、各種の酵素、酵素基質、緩衝液、滅菌水、生理食塩水、植物油、界面活性剤、脂質、溶解補助剤、タンパク質安定剤(BSAやゼラチンなど)および保存剤などを組み合わせることができる。酵素としては、DNAポリメラーゼ、DNAリガーゼ、あるいはIIs制限酵素などの、上記の塩基種決定方法として例示した各種の解析方法に必要な酵素を示すことができる。緩衝液は、これらの解析に用いる酵素の活性の維持に好適な緩衝液が、適宜選択される。更に、酵素基質としては、例えば、相補鎖合成用の基質等が用いられる。   The reagent of the present invention includes, for example, various enzymes, enzyme substrates, buffers, sterilized water, physiological saline, vegetable oil, in addition to primers, probes and / or antibodies which are active ingredients, depending on the method for determining the base species. , Surfactants, lipids, solubilizers, protein stabilizers (such as BSA and gelatin) and preservatives can be combined. As the enzyme, enzymes necessary for various analysis methods exemplified as the above-mentioned base species determination method such as DNA polymerase, DNA ligase, or IIs restriction enzyme can be shown. As the buffer solution, a buffer solution suitable for maintaining the activity of the enzyme used for these analyzes is appropriately selected. Furthermore, as the enzyme substrate, for example, a substrate for complementary strand synthesis is used.

さらに、本発明における試薬の別の態様は、本発明の多型部位を含むDNAとハイブリダイズするヌクレオチドプローブが固定された固相からなる、ウシ黒毛和種の産肉形質を判定するための試薬である。
これらは本発明の多型部位を指標とする検査に使用される。これらの調製方法に関しては、当業者に公知の方法で行なうことができる。
Furthermore, another embodiment of the reagent of the present invention is a reagent for determining a meat trait of Japanese bovine black cattle comprising a solid phase on which a nucleotide probe that hybridizes with the DNA containing the polymorphic site of the present invention is immobilized. It is.
These are used for examinations using the polymorphic site of the present invention as an index. These preparation methods can be carried out by methods known to those skilled in the art.

また、本発明の試薬を少なくとも1つ含有するウシ黒毛和種の産肉形質判定用キットもまた、本発明に含まれる。該キットには、上記プライマー、プローブまたは抗体のいずれかに記載の物質の他に、例えば、本発明の方法に用いるための各種試薬類、反応液、対照標品、反応容器、操作器具等を含めることができる。   A kit for determining meat traits of Japanese bovine black hair containing at least one reagent of the present invention is also included in the present invention. In addition to the substances described in any of the primers, probes or antibodies, the kit contains, for example, various reagents, reaction solutions, control samples, reaction vessels, operating instruments, etc. for use in the method of the present invention. Can be included.

以下、本発明を実施例によりさらに具体的に説明するが本発明はこれら実施例に制限されるものではない。
〔実施例1〕 成長と枝肉重量等産肉形質に優れる個体に確認されているマイクロサテライトアリルの検出
(1)グレリン受容体遺伝子のゲノムDNA配列の5’-flanking領域の中で翻訳開始点から上流−275塩基(図2中2,429位)から−232塩基(図2中2,472位)の範囲に存在するマイクロサテライトに注目し(図1、図2)、このマイクロサテライトに変異が存在するか、黒毛和種1,285頭のゲノムDNAを用いて検討した。その検討に当たってはマイクロサテライト領域を増幅できるように塩基配列情報からPCRプライマーを作製した(図1)。なお、PCRの条件等は以下のように行った。
1)プライマー
・F-プライマー:F:1320(Fam 修飾)
配列番号:2:5’-gggCTgTgggTCACTCTgTC-3’
・R-プライマー:R:1449
配列番号:3:5’-gAggATgCTTggAAAggAAA-3’
増幅産物:180塩基対
2)PCR溶液
(使用したDNAポリメラーゼ: TOYOBO KOD Plus)
1サンプル当たり:
10 X Buffer 2μl
dNTP 2μl
MgSO4 1μl
プライマー(F)(10pmol/μl) 1μl
プライマー(R)(10pmol/μl) 1μl
KOD Plus(酵素) 0.3μl (0.3U)
蒸留水 11.7μl
DNA サンプル 1μl
計 20μl
3)PCR条件
(1) 94℃ 2 min
(2) 94℃ 30 sec
62℃ 45 sec
68℃ 30 sec
35 サイクル
(3) 68℃ 1 min
(4) 4℃ 保持
1×TAE bufferによる2.5%アガロースゲルで増幅を確認する。
PCR増幅を確認後、ABI社のシークエンサーで増幅サイズを決定する。
EXAMPLES Hereinafter, the present invention will be described more specifically with reference to examples, but the present invention is not limited to these examples.
[Example 1] Detection of microsatellite allele confirmed in individuals excellent in meat traits such as growth and carcass weight (1) From translation start point in 5'-flanking region of genomic DNA sequence of ghrelin receptor gene Pay attention to the microsatellite in the range from upstream -275 bases (position 2,429 in FIG. 2) to -232 bases (position 2,472 in FIG. 2) (FIGS. 1 and 2). We examined 1,285 Japanese black cat genomic DNA. In the examination, a PCR primer was prepared from the base sequence information so that the microsatellite region could be amplified (FIG. 1). The PCR conditions were as follows.
1) Primer / F-Primer: F: 1320 (Fam modification)
SEQ ID NO: 2: 5'-gggCTgTgggTCACTCTgTC-3 '
・ R-primer: R: 1449
SEQ ID NO: 3: 5'-gAggATgCTTggAAAggAAA-3 '
Amplification product: 180 base pairs 2) PCR solution
(DNA polymerase used: TOYOBO KOD Plus)
Per sample:
10 X Buffer 2 μl
dNTP 2μl
MgSO4 1μl
Primer (F) (10 pmol/μl) 1μl
Primer (R) (10 pmol/μl) 1μl
KOD Plus (enzyme) 0.3μl (0.3U)
Distilled water 11.7μl
DNA sample 1 μl
20 μl total
3) PCR conditions
(1) 94 ℃ 2 min
(2) 94 ℃ 30 sec
62 ° C 45 sec
68 ℃ 30 sec
35 cycles
(3) 68 ℃ 1 min
(4) Hold at 4 ℃
Confirm amplification on 2.5% agarose gel with 1x TAE buffer.
After confirming PCR amplification, determine the amplification size with a sequencer from ABI.

(2)増幅PCR産物のサイズをDNAシークエンサーで決定すると、そのサイズには、164、172、176、178、180、182、186、192、200塩基対の9種類の変異、すなわちアリルが認められた。プライマー領域の配列から、これらアリルのマイクロサテライトの2塩基(TGまたはTC)反復数は、各15、19、21、22、23、24、26、29、33回である(表1)。また、アリル頻度は、0.04%〜32%までの差異がある。また、頻度が10%以上の主要なアリルは、172 (14.5%)、178(15.0%)、180(26.5%)、182(32%)の4種類であった(表1) (2) When the size of the amplified PCR product is determined by a DNA sequencer, nine types of mutations, ie, 164, 172, 176, 178, 180, 182, 186, 192, and 200 base pairs, that is, alleles are observed in the size. It was. From the sequence of the primer region, the number of 2-base (TG or TC) repeats of these allele microsatellite is 15, 19, 21, 22, 23, 24, 26, 29, and 33 times (Table 1). In addition, the allele frequency varies from 0.04% to 32%. The main alleles with a frequency of 10% or more were 172 (14.5%), 178 (15.0%), 180 (26.5%), and 182 (32%) (Table 1).

(3)解析した黒毛和種1,285頭は、家畜改良事業団が実施した後代検定事業で使われた種雄牛117頭の息牛であり、全て産肉・肉質形質データを持つものである。形質データは、検定開始日齢、検定開始体重、検定開始体高、検定終了体重、検定終了体高、1日平均増体重、屠殺前体重、枝肉重量、ロース芯面積、バラ厚、皮下脂肪厚、推定歩留、筋間脂肪厚、BMS No (脂肪交雑番号)の14形質である(表2)。 (3) The analyzed 1,285 Japanese black breeds are 117 breeding bulls used in the progeny verification project conducted by the Livestock Improvement Agency, and all have meat and meat quality traits data. Trait data are the age at the start of the test, the body weight at the start of the test, the body height at the end of the test, the body weight at the end of the test, the average weight gain per day, the body weight before slaughter, the carcass weight, the loin core area, the rose thickness, the subcutaneous fat thickness, the estimation The 14 traits are yield, intermuscular fat thickness, and BMS No (fat crossing number) (Table 2).

(4)マイクロサテライトDNAのアリルの組み合わせアリル型は、1,285頭で34種類が認められ、うち164/172型, 176/186型および 176/200型の3種類では、各1個体のみが観察された(表3)。したがって、マイクロサテライトDNAのアリル型と形質との関連性に関する統計解析に際しては、1個体のみアリル型は除外し、31種類のアリル型1,282個体のデータを用いて行った(表3)。 (4) Allele combination of microsatellite DNA Allele types of 34 types were recognized in 1,285 heads, of which only one individual was observed in three types of 164/172, 176/186 and 176/200 types. (Table 3). Therefore, in the statistical analysis of the relationship between the allele type of microsatellite DNA and the trait, only one individual was excluded from the allele type, and data of 31 types of allyl type 1,282 individuals were used (Table 3).

(5)統計モデルを、形質データ値=平均値+マイクロサテライトDNA型+誤差の一元配置として分散分析を行った。その結果、検定終了時体重(有意水準:P=0.001267、0.5%以下)、1日平均増体重(有意水準:P=0.003953、0.5%以下)、屠殺前重量(有意水準:P=0.002256、0.5%以下)、枝肉重量(有意水準:P=0.000456、0.1%以下)で統計的に極めて有意な結果が得られた(表4)。また、皮下脂肪厚(P=0.011427、5%以下)およびバラ厚(P=0.014564、5%以下)、推定歩留(P=0.041535、5%以下)でも統計学的に有意な結果が得られた。しかし、BMS.Noなど他の形質には統計学的有意差は認められなかった。したがって、本マイクロサテライトDNA型は枝肉重量、終了時体重、屠殺前重量、一日平均増体重の産肉形質に強い影響を与えていることが判明した(表4)。 (5) Analysis of variance was performed using the statistical model as one-way arrangement of trait data value = average value + microsatellite DNA type + error. As a result, body weight at the end of the test (significance level: P = 0.001267, 0.5% or less), daily average weight gain (significance level: P = 0.003953, 0.5% or less), weight before slaughter (significance level: P = 0.002256, 0.5 %) And carcass weight (significance level: P = 0.000456, 0.1% or less), statistically significant results were obtained (Table 4). Statistically significant results were also obtained for subcutaneous fat thickness (P = 0.011427, 5% or less), rose thickness (P = 0.014564, 5% or less), and estimated yield (P = 0.041535, 5% or less). It was. However, there was no statistically significant difference in other traits such as BMS.No. Therefore, it was found that this microsatellite DNA type has a strong influence on carcass weight, carcass weight at termination, weight before slaughter, and daily average weight gain (Table 4).

(6)マイクロサテライトDNA型ごとの枝肉重量と一日平均増体重の平均値を検討すると、アリル172をヘテロ型またはホモ型もつ個体の平均値は常に全体の平均値を上回っていた(表5)。また、アリル192をヘテロ型またはホモ型もつ個体の枝肉重量と一日平均増体重の平均値は全体の平均値を上回る傾向が認められた(表5)。したがってアリル172とアリル192、特にアリル172は産肉性を高める効果をもち、特にアリル172でその効果は顕著であることが明らかになった。 (6) When the average value of carcass weight and average daily weight gain for each microsatellite DNA type was examined, the average value of individuals having heterozygous or homozygous allele 172 was always higher than the overall average value (Table 5). ). In addition, the average value of the carcass weight and the average daily weight gain of the individual having the heterozygous or homozygous allele 192 tended to exceed the overall average value (Table 5). Therefore, it has been clarified that allyl 172 and allyl 192, especially allyl 172, have an effect of improving meat productivity, and particularly allyl 172 has a remarkable effect.

(7)この結果を明確にするために、「アリル172」と「アリル172以外」に便宜的にわけ、統計学的モデルを、形質データ値=平均値+マイクロサテライトDNA型(「アリル172/アリル172」,「アリル172/アリル172以外」と「アリル172以外/アリル172以外」) + 誤差の一元配置として分散分析を行った。この解析では形質データとして、各種マイクロサテライトDNA型との分散分析で有意差が出た「枝肉重量」、「終了時体重」、「屠殺前重量」、「一日平均増体重」について解析した。その結果、上記4形質の全てにおいて有意確率0.005%以下で、明らかに3種類マイクロサテライトDNA型間で統計的に差異の有ることが判明した(表6)。 (7) In order to clarify this result, it is conveniently divided into “allele 172” and “other than allele 172”, and the statistical model is expressed as: trait data value = mean value + microsatellite DNA type (“allyl172 / Allyl 172 ”,“ Allyl 172 / Allyl 172 ”and“ Allyl 172 / Allyl 172 ”) + Analysis of variance was performed as a one-way configuration of error. In this analysis, “carcass weight”, “body weight at the end”, “weight before slaughter”, and “daily average weight gain”, which were significantly different from each other by analysis of variance with various microsatellite DNA types, were analyzed. As a result, it was found that all of the above four traits had a significant probability of 0.005% or less, and that there was clearly a statistical difference between the three types of microsatellite DNA types (Table 6).

(8)「アリル172」を持たない個体935頭の「枝肉重量」、「一日平均増体重」、「検定終了時体重」、「屠殺前重量」の平均値は、各349.2kg、0.90kg、593.4kg、589.0kg、「アリル172」をヘテロ型に持つ個体323頭の各平均値は、360.6kg、0.94kg、610.6kg、605.2kg、また「アリル172」をホモ型に持つ個体24頭の各平均値は、366.8kg、0.96kg、618.7kg、614.0kgであった(表7)。 (8) The average values of “carcass weight”, “daily average weight gain”, “body weight at the end of test”, and “weight before slaughter” of 935 individuals without “Allyl 172” were 349.2 kg and 0.90 kg, respectively. , 593.4kg, 589.0kg, 323 individuals with heterozygous "Allyl 172" average values of 36 individuals, 360.6kg, 0.94kg, 610.6kg, 605.2kg, and 24 individuals with "Allyl 172" homozygous The average values of were 366.8 kg, 0.96 kg, 618.7 kg, and 614.0 kg (Table 7).

各形質の平均値の差異は、「アリル172」を持たない個体(表7中アリル型:0)と「アリル172」をヘテロ型に持つ個体(表7中アリル型:1)間で各11.4kg(3.3%)、0.035(3.9%)、17.1kg(2.9%)、16.2kg(2.8%)であった。また、「アリル172」を持たない個体(表7中アリル型:0)と「アリル172」をホモ型に持つ個体(表7中アリル型:2)間で各17.6kg(4.9%)、0.058(6.2%)、25.2kg(4.1%)、25.0kg(4.1%)であった。さらに、「アリル172」をヘテロ個体にもつ個体(表7中アリル型:1)と「アリル172」をホモ型に持つ個体間で各6.2kg(1.7%)、0.023(2.4%)、8.1kg(1.3%)、8.8kg(1.4%)であった。   The difference in the average value of each trait was 11.4 each between an individual not having “Allyl 172” (Allyl type: 0 in Table 7) and an individual having “Allyl 172” in a hetero type (Allyl type: 1 in Table 7). kg (3.3%), 0.035 (3.9%), 17.1 kg (2.9%), 16.2 kg (2.8%). In addition, 17.6 kg (4.9%), 0.058 each between individuals who do not have “Allyl 172” (Allyl type: 0 in Table 7) and those who have “Allyl 172” in homotype (Allyl type: 2 in Table 7) (6.2%), 25.2 kg (4.1%), and 25.0 kg (4.1%). Furthermore, 6.2 kg (1.7%), 0.023 (2.4%), 8.1 kg each between individuals having “Allyl 172” as heterozygous individuals (Allyl type in Table 7: 1) and those having “Allyl 172” as homozygous (1.3%) and 8.8 kg (1.4%).

したがって、「アリル172」をヘテロ型に持つ個体の平均値は、「アリル172」をもたない個体の平均値より、枝肉重量で11.4kg(3.3%)、1日平均増体重で0.035kg(3.9%)、検定終了時体重で17.1kg(2.9%)、屠殺前体重16.2kg(2.9%)多かった。また「アリル172」をホモ型に持つ個体の平均値は、「アリル172」をもたない個体の平均値より、枝肉重量で17.6kg(4.9%)、1日平均増体重で0.058kg(6.2%)、検定終了時体重で25.2kg(4.1%)、屠殺前体重25.0kg(4.1%)多かった。「アリル172」をホモ型に持つ個体の平均値は、「アリル172」をヘテロ型にもつ個体の平均値より、枝肉重量で6.2kg(1.7%)、1日平均増体重で0.023kg(2.4%)、検定終了時体重で8.1kg(1.3%)、屠殺前体重8.8kg(1.4%)多かった。これらの結果から、枝肉重量、1日平均増体重、検定終了時体重、屠殺前体重における「アリル172」のプラス効果は相加的であることが明らかになった(表7)。   Therefore, the average value of individuals having “Allyl 172” in a hetero form is 11.4 kg (3.3%) in carcass weight and 0.035 kg in daily average weight gain from the average value of individuals without “Allyl 172” ( 3.9%), the weight at the end of the test was 17.1 kg (2.9%), and the body weight before sacrifice was 16.2 kg (2.9%). In addition, the average value of individuals having “Allyl 172” in homo form is 17.6 kg (4.9%) in carcass weight, 0.058 kg (6.2% in average daily weight), compared with the average value of individuals having no “Allyl 172”. %), The body weight at the end of the test was 25.2 kg (4.1%), and the weight before sacrifice was 25.0 kg (4.1%). The average value of individuals with “Allyl 172” in the homozygous form is 6.2 kg (1.7%) in carcass weight and 0.023 kg (2.4% in average daily weight) than the average value of individuals with “Allyl 172” in the heterozygous form. %), The body weight at the end of the test was 8.1 kg (1.3%), and the body weight before slaughter was 8.8 kg (1.4%). These results revealed that the positive effect of “Allyl 172” on carcass weight, average daily weight gain, body weight at the end of the test, and body weight before slaughter was additive (Table 7).

(9)3種類のアリル組み合わせ型、すなわち(1)「アリル172」/「アリル172」(2)「アリル172」/「アリル172以外」(3)「アリル172以外」/「アリル172以外」のどの間で統計学的に差異が有るのか、アリル型間で平均値の差の検定をScheffe法により行った(表8)。その結果、「枝肉重量」、「一日平均増体重」、「終了時体重」、「屠殺前重量」の4形質全てにおいて、「アリル172」/「アリル172以外」と「アリル172以外」/「アリル172以外」間で常に0.01%有意水準以下で統計学的有意差が認められた。また、「アリル172」/「アリル172」と「アリル172以外」/「アリル172以外」間では、「一日平均増体重」は5%有意水準で統計的有意であり、「枝肉重量」では5%有意水準に近く、また「終了時体重」、「屠殺前重量」では10%水準で統計的に有意に近い値であった。したがって、「アリル172」を1個以上持つ個体と1個も持たない個体間では、持つ個体が明らかに4形質全てで優れることが明確になった。 (9) Three types of allyl combinations, namely (1) "Allyl 172" / "Allyl 172" (2) "Allyl 172" / "Other than Allyl 172" (3) "Other than Allyl 172" / "Other than Allyl 172" The difference in the average value between allyl types was tested by the Scheffe method to determine which of the samples had a statistical difference (Table 8). As a result, in all four traits of “carcass weight”, “daily average weight gain”, “weight at end”, and “weight before slaughter”, “Allyl 172” / “Except allele 172” and “Except allele 172” / There was always a statistically significant difference between “other than Allyl 172” at a level of 0.01% or less. Also, between “Allyl 172” / “Allyl 172” and “Except Allyl 172” / “Except Allyl 172”, “Average daily weight gain” is statistically significant at 5% significance level, and “Carcass weight” is The values were close to the 5% significance level, and the “body weight at the end” and “weight before slaughter” were statistically significant at the 10% level. Therefore, it was clarified that the individuals having one or more “allyl 172” and the individuals not having any “allyl 172” are clearly superior in all four traits.

〔実施例2〕 一塩基多型(SNP)解析と産肉形質との関連性
(1)マイクロサテライト領域以外のグレリン受容体遺伝子領域に一塩基置換(SNP)等の変異が存在し、ハプロタイプを形成し、このSNPの変異が肉質形質の影響を及ぼしている可能性が考えられる。そこで、グレリン受容体遺伝子中でマイクロサテライト部分以外に塩基レベルでの変異が存在するのかを検討した。
塩基レベルでの変異を検討するため、マイクロサテライト領域以外の5’UTR部分を含む5’フランキング領域、5’非翻訳領域、エキソン1部分、イントロン領域、エキソン2部分、3’フランキング領域(3’UTR部分)の塩基配列、約6.4キロベースペアーをカバーするプライマーセット9組を作製し、PCR法により増幅、塩基配列を決定した(図2および図3)。 遺伝子領域全体の塩基置換変異の検討に当たっては、9領域の全てにつき形質データをもつ全頭のサンプルで行うのは時間、費用と労力の点で現実的ではない。そこで、マイクロサテライトを変異マーカーとして捉え、黒毛和種で主要なマイクロサテライトのアリルであるアリル172、アリル180およびアリル182のホモ型(各1個体、2個体、2個体計5個体)並びに優良なアリルである172のヘテロ型3個体(アリル型:172/180,172/192,172/200)の計8個体を用いて、グレリン受容体遺伝子の塩基配列約6.4kbを決定した。
PCRの条件はいずれのプライマーセットにおいても、以下のように行った。
1)プライマー
各プライマーセットのF-プライマーとRプライマーの位置および配列は、それぞれ図2と図3および配列番号:4〜23に示した。
2)PCR溶液
(使用したDNAポリメラーゼ: Takara LA Taq)
1サンプル当たり:
2 X GC Buffer I 10μl
dNTP Mixture (2.5mM each) 3.2μl
プライマー(F)(10pmol/μl) 1μl
プライマー(R)(10pmol/μl) 1μl
Takara LA Taq (5U/μl) 0.2μl (1U)
蒸留水 3.6μl
ゲノムDNA サンプル(10ng/μl) 1μl
計 20μl
3)PCR条件
(1) 94℃ 4 min
(2) 94℃ 30 sec
60℃ 45 sec
72℃ 60 sec
35 サイクル
(3) 72℃ 2 min
(4) 4℃ 保持
1×TAE bufferによる2.5%アガロースゲルで増幅を確認した。
PCR増幅を確認後、PCR増幅産物をSephadex plateで精製後、これを鋳型としてBigDye Terminator v3.1 Cycle sequencing Kit (Applied Biosystems 社)を用い、Dye Terminator 法により行った。使用したプライマーはPCR増幅を行ったものと同一のプライマーを用いて両側から塩基配列を決定した。
多型塩基はシークエンス波形データを用いてPhred/phrap/PolyPhredソフトウエアおよびSEQUENCHER(Genecodes)ソフトウエアを用いて各塩基の精度(クオリティー値)の算出、アセンブルおよび多型塩基の検出を行った。ソフトウエアが検出した多型塩基については必ず目視確認し、明らかに多型波形のものを多型塩基として採用した。
[Example 2] Relationship between single nucleotide polymorphism (SNP) analysis and meat traits (1) Mutations such as single nucleotide substitution (SNP) exist in ghrelin receptor gene regions other than microsatellite regions, and haplotypes It is possible that this SNP mutation has an influence on meat quality traits. Therefore, it was examined whether a mutation at the base level exists in the ghrelin receptor gene other than the microsatellite portion.
To examine mutations at the base level, 5 'flanking region including 5' UTR region other than microsatellite region, 5 'untranslated region, exon 1 portion, intron region, exon 2 portion, 3' flanking region ( Nine primer sets covering the base sequence of the 3′UTR portion) and about 6.4 kilobase pairs were prepared, amplified by PCR, and the base sequence was determined (FIGS. 2 and 3). In examining base substitution mutations in the entire gene region, it is not realistic in terms of time, cost and labor to carry out with all the head samples having trait data for all nine regions. Therefore, microsatellite is regarded as a mutation marker, and alleles 172, allyl 180 and allyl 182 which are the major microsatellite alleles of Japanese black hair are homozygous (1 individual, 2 individuals, 2 individuals total 5 individuals) and excellent A base sequence of about 6.4 kb of the ghrelin receptor gene was determined using a total of 8 individuals of 3 heterozygous 172 individuals (allylic: 172/180, 172/192, 172/200).
The PCR conditions were as follows for all primer sets.
1) Primer The positions and sequences of the F-primer and R primer of each primer set are shown in FIGS. 2 and 3 and SEQ ID NOs: 4 to 23, respectively.
2) PCR solution
(DNA polymerase used: Takara LA Taq)
Per sample:
2 X GC Buffer I 10μl
dNTP Mixture (2.5mM each) 3.2μl
Primer (F) (10 pmol/μl) 1μl
Primer (R) (10 pmol/μl) 1μl
Takara LA Taq (5U / μl) 0.2μl (1U)
Distilled water 3.6μl
Genomic DNA sample (10ng / μl) 1μl
20 μl total
3) PCR conditions
(1) 94 ℃ 4 min
(2) 94 ℃ 30 sec
60 ℃ 45 sec
72 ℃ 60 sec
35 cycles
(3) 72 ℃ 2 min
(4) Hold at 4 ℃
Amplification was confirmed on a 2.5% agarose gel with 1 × TAE buffer.
After confirming PCR amplification, the PCR amplification product was purified on a Sephadex plate, and this was used as a template for BigDye Terminator v3.1 Cycle sequencing Kit (Applied Biosystems) by the Dye Terminator method. The primer used was the same primer as that used for PCR amplification, and the nucleotide sequence was determined from both sides.
For polymorphic bases, the sequence waveform data was used to calculate the accuracy (quality value) of each base, assemble and detect polymorphic bases using Phred / phrap / PolyPhred software and SEQUENCHER (Genecodes) software. The polymorphic base detected by the software was always checked visually, and the polymorphic waveform was clearly adopted as the polymorphic base.

(2)グレリン受容体遺伝子領域における多型塩基の検出:
黒毛和種8個体のマイクロサテライト型とグレリン受容体遺伝子約6.4kbの全塩基配列決定結果を表9に示した。この遺伝子領域には8個体間で20箇所の多型塩基を見出した。多型塩基が認められた領域の内訳は、5’フランキング領域が2箇所、5’非翻訳領域が1箇所、エキソン1領域が3箇所、イントロン1領域は14箇所であった。エキソン2および3’非翻訳領域には多型塩基は認められなかった。また、20箇所の多型塩基のうち1箇所(4,689位)は4塩基の挿入/欠損であった。
(2) Detection of polymorphic bases in the ghrelin receptor gene region:
Table 9 shows the results of determination of the total nucleotide sequence of the microsatellite type and the ghrelin receptor gene of about 6.4 kb for eight Japanese black breeds. In this gene region, 20 polymorphic bases were found among 8 individuals. The breakdown of the region in which the polymorphic base was recognized was 2 5 ′ flanking regions, 1 5 ′ untranslated region, 3 exon 1 regions, and 14 intron 1 regions. No polymorphic bases were found in exons 2 and 3 ′ untranslated regions. In addition, one of 20 polymorphic bases (position 4,689) was an insertion / deletion of 4 bases.

これら20箇所の多型塩基の中でマイクロサテライトのタイプと連鎖不平衡のハプロタイプを形成し、かつマイクロサテライトアリルの効果と一致する多型塩基は、5’非翻訳領域内にありマクロサテライト座位の近傍にある、配列番号:1における2,697位の一塩基多型(アリル:A,C)であった。なお、この位置は、翻訳開始点の上流7位(−7位)である(図4)。また、この結果から、主要なマイクロサテライトのアリルは、それぞれ、172-A, 180-C,182-C,192-A,200-Cのハプロタイプを形成していることが推定された。 Among these 20 polymorphic bases, polymorphic bases that form linkage disequilibrium haplotypes with the microsatellite type and are consistent with the effects of microsatellite alleles are located in the 5 'untranslated region and are located at the macrosatellite locus. It was a single nucleotide polymorphism at position 2,697 in SEQ ID NO: 1 (allyl: A, C) in the vicinity. This position is the seventh position (-7th position) upstream of the translation start point (FIG. 4). From these results, it was inferred that the major microsatellite alleles formed haplotypes 172-2, 180-C, 182-C, 192-A, and 200-C, respectively.

(3)グレリン受容体遺伝子領域におけるマイクロサテライトとのハプロタイプ構築:
次に、これらの結果は解析したサンプル1,285個体全体としていえるのか、2,697位の一塩基多型をサンプル1,285個体で解析した。
解析方法は、多数検体のタイピングに適したPCR-SSP法によった(SSP:Sequence Specific Primer:配列特異的プライマー)。なお、別にRFLP法でも2,697位の一塩基多型解析を行える。
(A)PCR-SSP法の条件:
PCR-SSP法とは、PCR産物にアレル特異的プライマーを用いて伸張反応を行い、SNP型を判定する。本一塩基多型解析の場合には、2,697位の一塩基多型部分を含む198塩基対部分を第一回のPCRでまず増幅する。次に、この第1回PCR産物を鋳型にして、その内側に2,697位の一塩基多型部分がプライマーの3’末端に位置するように5’FAM 蛍光色素標識したR-プライマーをアリルごとにサイズを変えて(Aアリル:14塩基;Cアリル:17塩基)
作製する。F-プライマーは第一回のPCRと同様のプライマーある。
これら3種類(F-プライマー:2種類;R-プライマー:1種類)を用いて、第二回目のPCR(PCR-SSP)を行う。判定は、図5および7に示すようにAアリルは106塩基対産物、Cアリルは109塩基対産物となり、シークエンサーでPCR産物のピークパターンを判別することで簡単に遺伝子型を判定できる。
(1) 第1PCR用プライマー
F-プライマー:ACTCTTTTGCGCCTAACTAAGGA(配列番号:24)
R-プライマー:CTCGTCAGTCAGCGAGTCATT(配列番号:25)
PCR産物サイズ: 198 bp
(2) PCR反応溶液
QIAGEN multi Kit 5.0μl
10μM GhrelinR_F3 0.5μl
10μM GhrelinR_R3 0.5μl
減菌蒸留水 3.0μl
DNA 2.0μl
計 11.0μl
(3) PCR条件
(℃) Time Cycle(s)
94 15min 1
94 15sec 35
60 30sec
72 90sec
72 30min 1
10 ∞
PCR産物に減菌蒸留水70μlを加え、PCR-SSP反応用のPCR 反応の鋳型とする。
(4) PCR-SSP反応プライマー
2,697位の一塩基多型のCアリルのR-プライマー
(FAM) CATTCCACATGCTGCCG(配列番号:26)
PCR産物サイズ:109bp
2,697位の一塩基多型のAアリルのR-プライマー
(FAM) TCCACATGCTGCCT(配列番号:27)
PCR産物サイズ:106bp
(5) PCR反応溶液
QIAGEN multi Kit 5.0μl
1μM GhrelinR_SNP-7_C_3 0.4μl
1μM GhrelinR_SNP-7_A_3 1.2μl
減菌蒸留水 2.4μl
PCR Product 1.0μl
計 10.0μl
(6) PCR条件
(℃) Time Cycle(s)
94 15min 1
94 15sec 35
60 30sec
72 90sec
72 30min 1
10 ∞
PCR-SSPによる産物を、常法によりABI社のシーケンサーで増幅サイズを確認する。結果は波形データとして現れ、フラグメントの長さにより多型を判定する。例として2,697位のSNPを判定した結果を図7に示す。
(3) Haplotype construction with microsatellite in the ghrelin receptor gene region:
Next, whether these results can be said for the analyzed sample 1,285 individuals as a whole, the single nucleotide polymorphism at position 2,697 was analyzed in 1,285 individuals.
The analysis method was based on the PCR-SSP method suitable for typing a large number of samples (SSP: Sequence Specific Primer). Separately, single nucleotide polymorphism analysis at position 2,697 can also be performed by the RFLP method.
(A) PCR-SSP method conditions:
In the PCR-SSP method, an extension reaction is performed on an PCR product using an allele-specific primer to determine the SNP type. In the case of this single nucleotide polymorphism analysis, a 198 base pair portion including the single nucleotide polymorphism portion at position 2,697 is first amplified by the first PCR. Next, using this first PCR product as a template, 5'FAM fluorescent dye-labeled R-primer is placed for each allele so that the single nucleotide polymorphism at position 2,697 is located at the 3 'end of the primer. Change size (A allele: 14 bases; C allyl: 17 bases)
Make it. The F-primer is the same primer as the first PCR.
Using these three types (F-primer: 2 types; R-primer: 1 type), the second PCR (PCR-SSP) is performed. As shown in FIGS. 5 and 7, the A allele is a 106 base pair product and the C allele is a 109 base pair product, and the genotype can be easily determined by discriminating the peak pattern of the PCR product with a sequencer.
(1) First PCR primer
F-primer: ACTCTTTTGCGCCTAACTAAGGA (SEQ ID NO: 24)
R-primer: CTCGTCAGTCAGCGAGTCATT (SEQ ID NO: 25)
PCR product size: 198 bp
(2) PCR reaction solution
QIAGEN multi Kit 5.0μl
10μM GhrelinR_F3 0.5μl
10μM GhrelinR_R3 0.5μl
Sterile distilled water 3.0 μl
DNA 2.0 μl
11.0μl total
(3) PCR conditions
(℃) Time Cycle (s)
94 15min 1
94 15sec 35
60 30sec
72 90sec
72 30min 1
10 ∞
Add 70 μl of sterile distilled water to the PCR product, and use it as a template for PCR reaction for PCR-SSP reaction.
(4) PCR-SSP reaction primer
C-allyl R-primer of single nucleotide polymorphism at position 2,697
(FAM) CATTCCACATGCTGCCG (SEQ ID NO: 26)
PCR product size: 109 bp
Single nucleotide polymorphism A allyl R-primer at position 2,697
(FAM) TCCACATGCTGCCT (SEQ ID NO: 27)
PCR product size: 106bp
(5) PCR reaction solution
QIAGEN multi Kit 5.0μl
1μM GhrelinR_SNP-7_C_3 0.4μl
1μM GhrelinR_SNP-7_A_3 1.2μl
Sterile distilled water 2.4μl
PCR Product 1.0μl
Total 10.0μl
(6) PCR conditions
(℃) Time Cycle (s)
94 15min 1
94 15sec 35
60 30sec
72 90sec
72 30min 1
10 ∞
Confirm the amplification size of the PCR-SSP product using an ABI sequencer in the usual way. The result appears as waveform data, and the polymorphism is determined by the length of the fragment. As an example, the result of determining the SNP at position 2,697 is shown in FIG.

(B)RFLP法
2回(ネステッド)PCRを行い、制限酵素MspI(認識部位:C!CGG)で消化し、その切断DNA断片パターンからSNP型を判定する。
(1) 第1PCRプライマー(PCR産物:583bp)
F-プライマーbGhrR/FP(1484)/OD1:CTTTCCAAgCATCCTCCCTgAg(配列番号:28)
R-プライマーbGhrR/RP(2067)/OD1:gAAgCAgATggCgAAgTAgCg(配列番号:29)
(2) PCR溶液
使用するDNAポリメラーゼ:KOD plus
1サンプル当たり(全量 20μl)
10X KOD バッファー 2μl
dNTP(2.5mM) 2μl
MgSO4 (25mM) 1μl
F-プライマー (10pmol/μl) 1μl
R-Primer (10pmol/μl) 1μl
KOD Plus(酵素) 0.3μl
減菌蒸留水 11.7μl
DNA サンプル(10-50μg/ml) 1μl
計 20μl
(3) 第1PCR条件
(i) 94℃ 2 min. 1 cycle
(ii) 94℃ 30 sec 30 cycles
60℃ 45 sec
68℃ 30 sec
(iii) 68℃ 60 sec 1 cycle
(iv) 4℃ keep (1) 94℃ 4 min
(4) 第2PCR(PCR産物:191bp)
プライマー:
FP(2SNRF2666)-01: CAgTCgCgTCCCTgAACC(配列番号:30)
RP(2SNRF2856)-02: CACgCAggTggCTgTgAC(配列番号:31)
DNA サンプルは第1PCR産物減菌蒸留水で100希釈したもの1μl
(5) PCR溶液
使用するDNAポリメラーゼ:KOD plus
1サンプル当たり(全量 20μl)
10X KOD バッファー 2μl
dNTP(2.5mM) 2μl
MgSO4 (25mM) 1μl
F-プライマー(10pmol/μl) 1μl
R-プライマー(10pmol/μl) 1μl
KOD Plμs(酵素) 0.3μl
減菌蒸留水 11.7μl
DNA サンプル(第1PCRの100倍希釈) 1μl
計 20μl
(6) 第2PCR
(i) 94℃ 2 min. 1 cycle
(ii) 94℃ 30 sec 35 cycles
61.5℃ 45 sec
68℃ 30 sec
(iii) 68℃ 60 sec 1 cycle
(iv) 4℃ keep
(7) MspIによるRFLP:1サンプル当たり
第2 PCR 産物 5μl
10XTブッファー 2μl
0.1%BSA 2μl
MspI(制限酵素)10U/μl 0.5μl
減菌蒸留水 10.5μl
計 20μl
37℃ 1時間消化する。
(B) RFLP method Perform twice (nested) PCR, digest with restriction enzyme MspI (recognition site: C! CGG), and determine the SNP type from the cut DNA fragment pattern.
(1) First PCR primer (PCR product: 583 bp)
F-primer bGhrR / FP (1484) / OD1: CTTTCCAAgCATCCTCCCTgAg (SEQ ID NO: 28)
R-primer bGhrR / RP (2067) / OD1: gAAgCAgATggCgAAgTAgCg (SEQ ID NO: 29)
(2) DNA polymerase used in PCR solution: KOD plus
Per sample (total 20μl)
2 μl of 10X KOD buffer
dNTP (2.5 mM) 2 μl
MgSO4 (25mM) 1μl
F-primer (10 pmol/μl) 1μl
R-Primer (10 pmol/μl) 1μl
KOD Plus (enzyme) 0.3μl
Sterile distilled water 11.7 μl
DNA sample (10-50μg / ml) 1μl
20 μl total
(3) First PCR conditions
(i) 94 ℃ 2 min. 1 cycle
(ii) 94 ℃ 30 sec 30 cycles
60 ℃ 45 sec
68 ℃ 30 sec
(iii) 68 ℃ 60 sec 1 cycle
(iv) 4 ℃ keep (1) 94 ℃ 4 min
(4) Second PCR (PCR product: 191 bp)
Primer:
FP (2SNRF2666) -01: CAgTCgCgTCCCTgAACC (SEQ ID NO: 30)
RP (2SNRF2856) -02: CACgCAggTggCTgTgAC (SEQ ID NO: 31)
1 μl of DNA sample diluted 100 with distilled water from the first PCR product
(5) PCR solution DNA polymerase used: KOD plus
Per sample (total 20μl)
2 μl of 10X KOD buffer
dNTP (2.5 mM) 2 μl
MgSO4 (25mM) 1μl
F-primer (10 pmol/μl) 1μl
R-primer (10 pmol/μl) 1μl
KOD Plμs (enzyme) 0.3μl
Sterile distilled water 11.7 μl
DNA sample (100-fold dilution of the first PCR) 1μl
20 μl total
(6) Second PCR
(i) 94 ℃ 2 min. 1 cycle
(ii) 94 ℃ 30 sec 35 cycles
61.5 ℃ 45 sec
68 ℃ 30 sec
(iii) 68 ℃ 60 sec 1 cycle
(iv) 4 ℃ keep
(7) RFLP with MspI: 5 μl of second PCR product per sample
10XT buffer 2μl
0.1% BSA 2μl
MspI (restriction enzyme) 10 U / μl 0.5 μl
Sterile distilled water 10.5μl
20 μl total
Digest at 37 ° C for 1 hour.

(C)結果
15%アクリルアミドゲル電気泳動でバンドパターンを判定する。SNPのAアリルは112, 49, 21, 17 bpのバンドパターンとなる。また。SNPのCアリルは112, 35,21,17,14 bpバンドパターンとなる(図6および8)。
(C) Results
The band pattern is determined by 15% acrylamide gel electrophoresis. The ANP of SNP has a band pattern of 112, 49, 21, 17 bp. Also. The C allele of SNP has a 112, 35, 21, 17, 14 bp band pattern (FIGS. 6 and 8).

2,697位の一塩基多型をサンプル1,285個体で解析した結果を表10に示した。34種類のマイクロサテライト型のうち32種類は2,697位一塩基多型と1対1の対応であったが、178/180型はA/CとC/C型、180/182型はA/CとC/C型に対応していた。さらに、これらの遺伝子型の組み合わせから、マイクロサテライトと2,697位一塩基多型のハプロタイプを構築した(表11)。表11に示すように、アリル172はアリルAと主要なハプロタイプ(172-A)を形成していた。他の主要なハプロタイプとしては、178-A、180-C,182-Cが存在し、マイナーなハプロタイプとして176-A, 186-A, 192-A、200-Cが存在していた。さらに非常にマイナーなハプロタイプとして164-A, 178-C, 182-Aが存在し、178-Cと 182-Aはそれぞれ主要ハプロタイプである178-Aと182-Cの組換え型と推定された。また、2,697位一塩基多型のアリルAの頻度は37.2%,アリルCの頻度は、62.8%であった(表11)。   Table 10 shows the results of analyzing the 1,697 single nucleotide polymorphism in 1,285 samples. Of the 34 types of microsatellite types, 32 types had a one-to-one correspondence with the 2,697 position single nucleotide polymorphism, but 178/180 types were A / C and C / C types, and 180/182 types were A / C. And C / C type. Furthermore, from these genotype combinations, haplotypes of microsatellite and single nucleotide polymorphism at position 2,697 were constructed (Table 11). As shown in Table 11, allyl 172 formed a major haplotype (172-A) with allyl A. Other major haplotypes included 178-A, 180-C, and 182-C, and minor haplotypes included 176-A, 186-A, 192-A, and 200-C. In addition, 164-A, 178-C, and 182-A exist as very minor haplotypes, and 178-C and 182-A were presumed to be recombinants of 178-A and 182-C, which are the major haplotypes, respectively. . In addition, the frequency of allele A of the 2,697 single nucleotide polymorphism was 37.2%, and the frequency of allyl C was 62.8% (Table 11).

表11に示したように、2,697位一塩基多型のアリルAはマイクロサテライトのアリル172およびアリル178と出現頻度が高い主要なハプロタイプを形成し、マイクロサテライトのアリル192, アリル186,アリル176 とは出現頻度が低いマイナーなハプロタイプを形成していた。そこで、2,697位一塩基多型(SNP)が産肉形質に影響を及ぼし、アリルAがアリルCより望ましい効果を与えている可能性について、マイクロサテライト型の効果を検討したと同様のサンプルを用いて統計学的に検討した。   As shown in Table 11, allyl A having a single nucleotide polymorphism at position 2,697 forms a major haplotype with microsatellite allyl 172 and allyl 178, and microsatellite allyl 192, allyl 186, allyl 176 and Formed a minor haplotype with a low frequency of appearance. Therefore, we used the same sample as the microsatellite type effect on the possibility that the 2,697 position single nucleotide polymorphism (SNP) affects meat traits and that allyl A has a more desirable effect than allyl C. Statistically examined.

(4)2,697位SNPと産肉形質との関連性に関する統計学的検討:
2,697位SNPと産肉形質との関連性に関する統計学的検討に関しては、統計モデルを、形質データ値=平均値 + 2,697位SNP型 + 誤差の一元配置として統計解析と分散分析を行った(表12、表13)。
統計解析の結果、AA型個体174頭の「枝肉重量」、「一日平均増体重」、「検定終了時体重」、「屠殺前重量」の平均値は、各355.4kg、0.924kg、604.25kg、598.97kg、AC型609頭の各平均値は、355.24kg、0.917kg、602.50kg、597.84kg、またCC型個体502頭の各平均値は、347.80kg、0.902kg、590.76kg、586.27kgであり、4形質全てにおいてAA型>AC型>CC型であった(表12)。また、これら3遺伝子型の平均値分散分析により、枝肉重量、1日平均増体重、検定終了時体重、屠殺前体重間の4形質ともF値は各6.466(有意水準:0.5%以下)、3.967(有意水準:5%以下)、7.056(有意水準:0.5%以下)、6.700(有意水準:0.5%以下)となり、AA型、AC型およびCC型の3アリル型間の平均値の差の効果は統計的に有意であった(表13)。
(4) Statistical study on the relationship between SNP 2,697 and meat traits:
Statistical analysis and analysis of variance were performed for statistical analysis of the relationship between SNP 2,697 and meat traits, with the statistical model as one-way arrangement of trait data value = mean value + SNP type 2,697 + error (Table 12, Table 13).
As a result of statistical analysis, the average values of `` carcass weight '', `` average daily weight gain '', `` body weight at the end of test '', `` weight before slaughter '' of 174 AA individuals are 355.4 kg, 0.924 kg, 604.25 kg, respectively , 598.97kg, the average value of 609 AC type is 355.24kg, 0.917kg, 602.50kg, 597.84kg, and the average value of 502 CC type individuals is 347.80kg, 0.902kg, 590.76kg, 586.27kg Yes, AA type> AC type> CC type in all four traits (Table 12). In addition, according to the mean variance analysis of these three genotypes, the F values for each of the four traits between carcass weight, average daily weight gain, body weight at the end of the test, and body weight before slaughter were 6.466 (significant level: 0.5% or less), 3.967. (Significance level: 5% or less), 7.056 (significance level: 0.5% or less), 6.700 (significance level: 0.5% or less), and the effect of the difference in average values among the three alleles of AA, AC and CC types Was statistically significant (Table 13).

(5)さらにこのSNPの遺伝子型、AA型、AC型、CC型間で4形質の平均値差の検定をScheffe法で行ったところ、枝肉重量、検定終了時体重、屠殺前体重の3形質全てにおいて、AC型とCC型間(有意確率0.5%以下)およびAA型とCC型間(有意確率5%以下)では統計的に有意であった。また、1日平均増体重ではAC型とCC型間およびAA型とCC型間では統計的に有意に近い値であった(有意確率5〜8%)(表14)。 (5) Further, when the SNP genotype, AA type, AC type, and CC type were tested for differences in mean values of the four traits using the Scheffe method, the three traits were carcass weight, body weight at the end of the test, and body weight before slaughter. All were statistically significant between AC type and CC type (significance 0.5% or less) and between AA type and CC (significance 5% or less). Further, the average daily weight gain was statistically close between AC type and CC type and between AA type and CC type (significance probability 5-8%) (Table 14).

以上のことから、これら4形質に及ぼす2,697位のSNPの効果(AA型>AC型>CC型)は統計的に有意であるが、有意確率値はマイクロサテライトをアリル172とアリル172以外に分けた3アリル型間の検定結果の有意確率値(表6)より小さな値であるため、このSNPの産肉4形質に及ぼす効果は、マイクロサテライトより小さいものと推定された。   From the above, the effect of SNP at position 2,697 on these four traits (AA type> AC type> CC type) is statistically significant, but the significance value is divided into microsatellite other than allyl 172 and allyl 172. Therefore, the effect of this SNP on the four meat characteristics was estimated to be smaller than that of the microsatellite.

(6)次に、枝肉重量、1日平均増体重、検定終了時体重、屠殺前体重の4形質に及ぼす効果は、マイクロサテライト(アリル172とそれ以外のアリル)と2,697位のSNP(アリルAとアリルC)とでどちらが大きいかを明確にするために、両遺伝子型に注目したハプロタイプの組み合わせ型に基づく統計解析と分散分析を行った。すなわち、マイクロサテライト型は、アリル172とそれ以外のアリル、2,697位SNPではアリルAとアリルCに分けてハプロタイプを構築し、1,285頭形質データについて統計解析および分散分析を行った(表15、表16)。なお、統計モデルは、形質データ値=平均値 + ハプロタイプ型 + 誤差の一元配置として分散分析を行った。 (6) Next, the effects on the 4 traits of carcass weight, average daily weight gain, body weight at the end of the test, and body weight before sacrifice were as follows: microsatellite (Allyl 172 and other alleles) and SNP (Allyl A) at position 2,697 And allele C), statistical analysis and analysis of variance based on a combination of haplotypes focusing on both genotypes were performed. That is, the microsatellite type was divided into allele 172 and other alleles, and the 2,697-position SNP was divided into allele A and allele C, and statistical analysis and analysis of variance were performed on 1,285 head trait data (Table 15, Table 15). 16). In the statistical model, analysis of variance was performed by using one-way arrangement of character data value = average value + haplotype type + error.

(7)統計解析の結果、6種類のハプロタイプの組み合わせ型頻度は、1,285頭中172-A/172-A型24頭、172-A/172以外-A96頭、172-A/172以外-C228頭、172以外-A/172以外-A54頭、172以外-A/172以外-C381頭、172以外-C/172以外-C502頭となり、ハプロタイプ頻度は172-A:0.144、172以外-A:0.228、172以外-C:0.628となった(表15)。ハプロタイプ172-Aの頻度は0.144であり、マイクロサテライトに注目した場合のアリル172の頻度:0.1449(表1)とほぼ同じであった。 (7) As a result of statistical analysis, the combined frequency of the six haplotypes is 24 out of 1,285 172-A / 172-A types, 172-A / 172 other than -A96, other than 172-A / 172-C228 Head, other than 172 -A / 172 other -A54, other than 172 -A / 172 other -C381 and other than 172 -C / 172 other -C502 head, haplotype frequency is 172-A: other than 0.144, 172 -A: Except 0.228 and 172 -C: 0.628 (Table 15). The frequency of haplotype 172-A was 0.144, which was almost the same as the frequency of allyl 172 when focusing on microsatellite: 0.1449 (Table 1).

6種類のハプロタイプの組み合わせ型の「枝肉重量」、「一日平均増体重」、「検定終了時体重」、「屠殺前重量」の平均値は、常に172-A/172-A>172-A/172以外-A>172-A/172以外-C>172以外-A/172以外-C>172以外-C/172以外-C>172以外-A/172以外-Aの傾向、すなわち「172-A」のハプロタイプを持つ場合が常に形質の平均値が高い傾向が認められた(表16)。   The average values of “carcass weight”, “daily weight gain”, “body weight at the end of test”, and “weight before slaughter” of the six haplotype combinations are always 172-A / 172-A> 172-A / Other than -A> 172-A / Other than 172 -C> Other than 172 -A / Other than 172 -C> Other than 172 -C / Other than 172 -C> Other than 172 -A / Other than 172- When the haplotype was “A”, there was always a tendency that the average value of the trait was high (Table 16).

また、これら6種類のハプロタイプの組み合わせ型の平均値の分散分析により(表17)、枝肉重量、1日平均増体重、検定終了時体重、屠殺前体重間の4形質ともF値は各6.694(有意水準:0.001%以下)、6.242(有意水準:0.001%以下)、6.596(有意水準:0.001%以下)、6.129(有意水準:0.005%以下)となり、6種類のハプロタイプの組み合わせ型間の平均値の差の効果は統計的に極めて有意であった(表17)。これらの有意確率は、マイクロサテライトに注目した解析(表4)および2,697位SNPに注目した解析(表13)より明らかに小さかった。また、アリル172とアリル172以外に分けた3マイクロサテライト型の分けた分散分析の有意確率(表6)とほぼ同一であった。したがってマイクロサテライト型単独あるいは2,697位SNP型より、マイクロサテライトと2,697位SNPハプロタイプの組み合わせ型が、これら肉質の4形質に大きな効果を与えていることが判明した。   In addition, according to the analysis of variance of the average value of the combined type of these six haplotypes (Table 17), the F value for each of the four traits among the carcass weight, the average daily weight gain, the body weight at the end of the test, and the body weight before slaughter is 6.694 Significance level: 0.001% or less), 6.242 (significance level: 0.001% or less), 6.596 (significance level: 0.001% or less), 6.129 (significance level: 0.005% or less), the average value among the combination types of the six haplotypes The effect of the difference was statistically very significant (Table 17). These significant probabilities were clearly smaller than the analysis focusing on microsatellite (Table 4) and the analysis focusing on the 2,697 SNP (Table 13). Moreover, it was almost the same as the significance (Table 6) of the analysis of variance of the 3 microsatellite type divided into allele 172 and allele 172. Therefore, it was found that the microsatellite type and the 2,697-position SNP haplotype combined type had a greater effect on these four traits of meat than the microsatellite type alone or the 2,697-position SNP type.

(8)次に、この6種類のハプロタイプ型間で平均値の差の検定をScheffe法で行い、どのハプロタイプ型間で統計的に有意な差があるのか検討した。その結果、表18に示すように、枝肉重量、1日平均増体重、検定終了時体重、屠殺前体重間の4形質において、172-A/172以外-A、172-A/172以外-Cのグループと172以外-A/172以外-A、172以外-C/172以外-Cのグループ間で統計的に有意な差異が認められた(有意水準:0.5%〜10%水準)。すなわち、「172-A」ハプロタイプをヘテロ型にもつ個体は、「172-A」ハプロタイプをもたない個体よりこれら4形質に優れることが示された。なお、「172-A」ハプロタイプ・ホモ型は例数が24頭と少ないため、統計的には他のどのタイプとも有意差とはならなかったと思われる。したがって、マイクロサテライトで172アリルを持たない場合、SNPがAAホモ型であっても肉質4形質は低下することが判明した。以上のことから、これら4形質に及ぼす効果はマイクロサテライト型が基本的に最も重要であり、アリル172のもとで2,697位SNPアリルAの優れた効果が発現すると推察された。 (8) Next, the test of the difference of the average value among these 6 types of haplotypes was performed by the Scheffe method, and it was examined which haplotype type had a statistically significant difference. As a result, as shown in Table 18, in the four traits between carcass weight, average daily weight gain, body weight at the end of the test, and body weight before slaughter, other than 172-A / 172-A, except 172-A / 172-C There was a statistically significant difference between this group and those other than 172-A / except 172-A, other than 172-C / other than 172-C (significance level: 0.5% to 10% level). That is, it was shown that an individual having the “172-A” haplotype in a hetero form is superior to those having no “172-A” haplotype in these four traits. Since the “172-A” haplotype / homotype has a small number of 24 cases, it seems statistically not significantly different from any other type. Therefore, it was found that when the microsatellite does not have 172 alleles, the meat quality 4 trait decreases even if the SNP is AA homotype. From the above, it was speculated that the microsatellite type is the most important for the effect on these four traits, and that the excellent effect of SNP allyl A at position 2,697 is expressed under allyl 172.

(9)以上のことから、グレリン受容体遺伝子のマイクロサテライト−2,697位SNP位のハプロタイプは、「枝肉重量」、「一日平均増体重」、「検定終了時体重」、「屠殺前重量」に統計学的にも有意な影響を与え、「172−A」ハプロタイプは他のハプロタイプより統計学的に明らかに優れた効果を持つことが判明した。 (9) Based on the above, the microsatellite-2,697 SNP haplotypes of the ghrelin receptor gene are “carcass weight”, “average daily weight gain”, “weight at the end of assay”, “weight before slaughter”. It was also statistically significant, and it was found that the “172-A” haplotype had a statistically clearly superior effect over the other haplotypes.

(10)なぜマイクロサテライト172アリルが他のアリルより枝肉重量等の4形質に優れた効果を示すかについては、以下の仮説が考えられる。
すなわち、核内でグレリン受容体遺伝子は5’UTR内にあるマイクロサテライトTGリピート部位を含めmRNAに転写され、イントロン1のスプラスアウト、成熟mRNAとなった後、成熟mRNAは細胞質へと移行し、タンパク質合成の場であるリボソームRNAに翻訳開始コドン部位が結合する。成熟mRNAとリボソームRNAの結合にさらに翻訳に関わる翻訳因子が結合し翻訳が開始する。その翻訳効率は、mRNAの5’UTRとしてコドンの上流にあるマイクロサテライト配列がコードしていたTGリピート反復構造によってmRNAの3次元構造は影響を受け、TGリピート数が19回であるアリル172のmRNAは、TGリピート数が各22回、23回、24回、29回、33回であるアリル178、アリル180、アリル182、アリル192、アリル200より転写効率が高く、合成されるグレリン受容体タンパク質生産量が多くなると推察される。
(10) The following hypothesis can be considered as to why microsatellite 172 alleles have superior effects on four traits such as carcass weight than other alleles.
That is, in the nucleus, the ghrelin receptor gene is transcribed into mRNA including the microsatellite TG repeat site in the 5 'UTR, becomes splice out of intron 1 and becomes mature mRNA, and then the mature mRNA moves into the cytoplasm. The translation initiation codon site binds to ribosomal RNA, which is the site of protein synthesis. Translation factors involved in translation bind to the binding between mature mRNA and ribosomal RNA, and translation begins. The translation efficiency is affected by the TG repeat repeat structure encoded by the microsatellite sequence upstream of the codon as the 5'UTR of mRNA, and the three-dimensional structure of mRNA is affected, and allele 172 has 19 TG repeats. mRNA is synthesized ghrelin receptor with higher transcription efficiency than allyl 178, allyl 180, allyl 182, allyl 192, allyl 200 with TG repeat number of 22, 23, 24, 29, and 33 each. It is assumed that protein production will increase.

(11)また、2,697位のSNPのアリルAは、アリルCより枝肉重量等の4形質に優れた効果を示すかについては、以下のように考えられる。
2,697位SNP位は5’非翻訳領域として必ずmRNAに転写される領域である。翻訳開始点-3位から+4位はKozak配列とよばれ、コンセンサス配列は(-3位)ACCAUGC(+4位)である(AUGはメチオニンの翻訳開始コドン)。このKozak配列は翻訳の際、mRNAとリボソームRNAが相互作用を行い、翻訳を開始する重要な配列である。この配列の中で、特に-3位のA(アデニン)と+4位のC(シトシン)が特に重要でこの部位の塩基の置換がおこると翻訳の効率が変化することが知られている。翻訳開始点2,697位は、Kozak配列で特に重要な-3位に近接しており、2,697位SNP位のアリルA(アデニン)とアリルC(シトシン)は塩基構造上、プリンとピリミジンで異なる。したがって、このアリルAとアリルCの置換により、グレリン受容体遺伝子から転写されたmRNAの翻訳効率は、先に述べたマイクロサテライトコード部分の19回のTGリピート数をもつ「172−A」ハプロタイプのmRNAの3次元構造はアリルAによって、さらに翻訳効率が向上すると推察される。したがって、本「172−A」ハプロタイプをもつ個体の脳下垂体等成長ホルモン放出細胞では、発現するグレリン受容体の分子数が多くなり、結果としてグレリンに対する感受性が高くなり、同一のグレリンの刺激でも、成長ホルモン分泌量は、172-A/172-A、172-A/172以外-A>172-A/172以外-Cのグループ>172以外-A/172以外-C>172以外-C/172以外-C>172以外-A/172以外-Aのグループになると考えられる。したがって、172-Aハプロタイプを持つ個体はもたない個体より成長ホルモンの分泌量が高く、これが枝肉重量等増体形質に良い影響を与えることが考えられる。
(11) Whether or not allyl A of the SNP at position 2,697 shows an effect superior to allele C in four traits such as carcass weight is considered as follows.
The SNP position at positions 2,697 is a region that is always transcribed into mRNA as a 5 'untranslated region. The translation start point from -3 to +4 is called Kozak sequence, and the consensus sequence is (-3) ACC AUG C (+4) (AUG is the translation start codon of methionine). This Kozak sequence is an important sequence that initiates translation through the interaction of mRNA and ribosomal RNA during translation. Among these sequences, A (adenine) at position -3 and C (cytosine) at position +4 are particularly important, and it is known that the efficiency of translation changes when base substitution occurs at this site. The translation start position 2,697 is close to the -3 position, which is particularly important in the Kozak sequence, and allyl A (adenine) and allyl C (cytosine) at the 2,697 SNP position differ in purine and pyrimidine due to their base structures. Therefore, the translation efficiency of mRNA transcribed from the ghrelin receptor gene by this substitution of allyl A and allyl C is that of the “172-A” haplotype having 19 TG repeats of the microsatellite coding portion described above. It is speculated that translation efficiency is further improved by allyl A in the three-dimensional structure of mRNA. Therefore, growth hormone-releasing cells such as the pituitary gland of individuals with this “172-A” haplotype have an increased number of ghrelin receptor molecules, resulting in increased sensitivity to ghrelin, and the same ghrelin stimulation. The growth hormone secretion amount is 172-A / 172-A, except 172-A / 172-A> 172-A / 172-C group> other than 172-A / 172-C-other than 172-C / Other than 172-C> Other than 172-A / Other than 172-A group is considered. Therefore, individuals with 172-A haplotype have higher growth hormone secretion than those without, which may have a positive effect on gain traits such as carcass weight.

(12)172-Aハプロタイプの頻度は、黒毛和種集団で約0.144であり、このハプロタイプに注目し、交配に際して利用すれば、「一日平均増体重」、「検定終了時体重」、「屠殺前重量」の産肉形質の向上がみこめる。その程度は、172-Aハプロタイプ1個当たり約3%と推定できる。 (12) The frequency of the 172-A haplotype is about 0.144 in the Japanese black population, and if we focus on this haplotype and use it for mating, it will be “average daily weight gain”, “weight at the end of the test”, “sacrifice” The improvement of meat production traits of "pre-weight" can be seen. The extent can be estimated at about 3% per 172-A haplotype.

(13)ウシグレリン受容体遺伝子の5'非翻訳領域における、増体形質に関連するマイクロサテライト領域は、他の生物種の当該領域には見られない(図9)。したがって、このマイクロサテライト多型および一塩基多型を組み合わせることにより、他の生物種と比較しても、黒毛和種の増体形質をより効率的に判定することが可能となる。 (13) The microsatellite region associated with the gain trait in the 5 ′ untranslated region of the bovine ghrelin receptor gene is not found in this region of other species (FIG. 9). Therefore, by combining the microsatellite polymorphism and the single nucleotide polymorphism, it becomes possible to more efficiently determine the increased traits of Japanese black species even when compared with other species.

ウシグレリン受容体遺伝子5’フランキング領域(配列番号:1、2,204位〜2,703位)におけるマイクロサテライトとプライマーの位置を示す図である。It is a figure which shows the position of a microsatellite and a primer in a bovine ghrelin receptor gene 5 'flanking region (SEQ ID NO: 1, 2,204 to 2,703). グレリン受容体遺伝子塩基配列(配列番号:1)および本発明の変異部位を示す図である。It is a figure which shows the ghrelin receptor gene base sequence (SEQ ID NO: 1) and the mutation site of the present invention. 図2−1の続きである。It is a continuation of FIG. 2-1. 図2−2の続きである。It is a continuation of FIG. 図2−3の続きである。It is a continuation of FIG. 図2−4の続きである。It is a continuation of FIG. 図2−5の続きである。It is a continuation of FIG. グレリン受容体遺伝子のゲノム構造とプライマーセットの位置を示す図である。It is a figure which shows the genomic structure of a ghrelin receptor gene, and the position of a primer set. プライマーセット04(配列番号:10および11)で増幅した5’フランキング領域とエキソン1の大部分の領域(584塩基対、配列番号:1、2,561位〜3,144位)に検出した翻訳開始店から上流7塩基(-7位)と下流(+70位)エキソン1内にある一塩基多型(SNPs)を示す図である。From the 5 'flanking region amplified by primer set 04 (SEQ ID NOs: 10 and 11) and from the translation initiation store detected in most of exon 1 (584 base pairs, SEQ ID NOs: 1, 2,561 to 3,144) It is a figure which shows the single nucleotide polymorphism (SNPs) in the upstream 7 base (-7th position) and the downstream (+70 position) exon 1. PCR-SSP法で用いたプライマーの位置を示す図である。It is a figure which shows the position of the primer used by PCR-SSP method. 配列番号:1の2,679位におけるSNPs(下向き矢印)と制限酵素MspIの認識部位を示す図である。It is a figure which shows the recognition site | part of SNPs (downward arrow) and restriction enzyme MspI in 2,679 position of sequence number 1. PCR-SSP法により、配列番号:1の2,679位におけるSNPsを判定した結果を示す図である。It is a figure which shows the result of having determined SNPs in the 2,679 position of sequence number 1 by PCR-SSP method. RFLP法により、配列番号:1の2,679位におけるSNPsを判定した結果を示す写真である。It is a photograph which shows the result of having determined SNPs in 2,679 position of sequence number 1 by RFLP method. ウシ、ヒト、ラットおよびマウスのグレリン受容体遺伝子5'フランキング領域中の翻訳開始点から上流へ900塩基の配列(ウシ)および856塩基の配列(ヒト、ラットおよびマウス)を示す図である。ウシ(配列番号:1の1,804位〜2,703位部分)、ヒト(AF369786の1,799位〜2,667位部分、配列番号:32)、ラット(NW_047621.1の18,254,417位〜18,255,272位、配列番号:33)、マウス(NT_162143.3の11,609,174位〜11,610,029位、配列番号:34)。黒線はマイクロサテライト配列を示す。It is a figure which shows the sequence of 900 bases (bovine) and 856 bases (human, rat, and mouse) upstream from the translation start point in the 5 'flanking region of bovine, human, rat, and mouse ghrelin receptor genes. Cattle (parts from positions 1,804 to 2,703 of SEQ ID NO: 1), human (parts from positions 1,799 to 2,667 of AF369786, SEQ ID NO: 32), rat (positions 18,254,417 to 18,255,272 of NW_047621.1, SEQ ID NO: 33), Mouse (positions 11,609,174 to 11,610,029 of NT — 162143.3, SEQ ID NO: 34). The black line indicates the microsatellite array.

Claims (20)

被検ウシについて、グレリン受容体遺伝子上の変異を検出することを特徴とする、ウシ黒毛和種の産肉形質を判定する方法であって、以下の工程(a)から(d)の工程を含む方法。
(a)被検対象となるウシから、DNAを抽出する工程
(b)抽出したDNAにおいて、多型部位を含むDNA断片を増幅する工程
(c)増幅したDNA断片を解析し、多型を検出する工程
(d)(c)の工程において、検出された変異に基づき、産肉形質を決定する工程
A method for determining meat traits of Japanese bovine Japanese black cattle characterized by detecting a mutation on a ghrelin receptor gene for a test cow, comprising the following steps (a) to (d): Including methods.
(A) a step of extracting DNA from a cow to be tested (b) a step of amplifying a DNA fragment containing a polymorphic site in the extracted DNA (c) analyzing the amplified DNA fragment and detecting a polymorphism The step of determining the meat traits based on the detected mutation in the steps (d) and (c)
産肉形質が、産肉量であることを特徴とする請求項1に記載の方法。   The method according to claim 1, wherein the meat trait is the amount of meat produced. 産肉形質を決定するための対象形質が、枝肉重量、屠殺前重量、検定終了時体重、1日平均増体重、バラ厚、皮下脂肪厚、推定歩留のいずれかである、請求項1または2に記載の判定方法。   The target trait for determining a meat production trait is any one of carcass weight, weight before slaughter, body weight at the end of the test, daily average weight gain, rose thickness, subcutaneous fat thickness, and estimated yield. 2. The determination method according to 2. 多型がマイクロサテライト多型である、請求項1から3のいずれかに記載の方法。   The method according to claim 1, wherein the polymorph is a microsatellite polymorph. ウシグレリン受容体遺伝子の翻訳開始点から−275塩基から−232塩基(配列番号:1に記載の塩基配列における2,429位から2,472位)に相当する多型部位において、マイクロサテライト多型を検出することを特徴とする、請求項4に記載の方法。   Detecting a microsatellite polymorphism at a polymorphic site corresponding to -275 bases to -232 bases from the translation start point of the bovine ghrelin receptor gene (positions 2,429 to 2,472 in the base sequence described in SEQ ID NO: 1). The method according to claim 4, characterized in that: 請求項1に記載の工程(d)において、相同染色体のうち少なくとも一つのアリル反復数が、19、21、22、23、24、26、29または33である場合に、産肉量が多いと決定することを特徴とする、請求項4に記載の方法。   In the step (d) according to claim 1, when the number of allele repeats of at least one of homologous chromosomes is 19, 21, 22, 23, 24, 26, 29 or 33, The method according to claim 4, characterized in that it is determined. 請求項1に記載の工程(b)において、塩基配列の増幅がPCR法によって行なわれることを特徴とする、請求項4に記載の方法。   The method according to claim 4, wherein in step (b) according to claim 1, the amplification of the base sequence is performed by a PCR method. 請求項1に記載の工程(c)において、増幅されたDNA断片の長さを決定することにより、マイクロサテライト多型を検出することを特徴とする請求項4に記載の方法。   5. The method according to claim 4, wherein in step (c) according to claim 1, the microsatellite polymorphism is detected by determining the length of the amplified DNA fragment. 請求項1に記載の工程(c)において、増幅されたDNA断片の塩基配列を決定することにより、マイクロサテライト多型を検出することを特徴とする請求項4に記載の方法。   The method according to claim 4, wherein the microsatellite polymorphism is detected by determining the base sequence of the amplified DNA fragment in the step (c) according to claim 1. 多型が一塩基多型である、請求項1から3のいずれかに記載の方法。   The method according to any one of claims 1 to 3, wherein the polymorphism is a single nucleotide polymorphism. 多型部位において、ウシグレリン受容体遺伝子の翻訳開始点から-7位(配列番号:1に記載の塩基配列における2,697位)の塩基種がCである場合と比較してAである場合に、産肉量が多いと決定する請求項10に記載の方法。   In the polymorphic site, when the base species at position -7 from the translation start point of the bovine ghrelin receptor gene (position 2,697 in the base sequence described in SEQ ID NO: 1) is A compared to C, The method according to claim 10, wherein it is determined that the amount of meat is large. 多型部位において、ウシグレリン受容体遺伝子の翻訳開始点から-7位(配列番号:1に記載の塩基配列における2,697位)の塩基種がAである場合と比較してCである場合に、産肉量が少ないと決定する請求項10に記載の方法。   In the polymorphic site, when the base species at position -7 from the translation start point of the bovine ghrelin receptor gene (position 2,697 in the base sequence described in SEQ ID NO: 1) is C compared to when it is A, The method according to claim 10, wherein the amount of meat is determined to be small. 請求項1に記載の工程(b)において、塩基配列の増幅がPCR法によって行なわれることを特徴とする、請求項10に記載の方法。   The method according to claim 10, wherein in step (b) according to claim 1, amplification of the base sequence is performed by PCR. 請求項1に記載の工程(c)において、制限断片長多型(RFLP)を検出することにより、一塩基多型の存在を検出することを特徴とする請求項10に記載の方法。   The method according to claim 10, wherein the presence of a single nucleotide polymorphism is detected by detecting a restriction fragment length polymorphism (RFLP) in the step (c) according to claim 1. 制限酵素Msp Iを用いて、-7位(配列番号:1に記載の塩基配列における2,697位)の一塩基多型を検出することを特徴とする、請求項14に記載の方法。   The method according to claim 14, wherein a single nucleotide polymorphism at position -7 (position 2,697 in the nucleotide sequence described in SEQ ID NO: 1) is detected using a restriction enzyme MspI. 請求項1に記載の工程(c)において、増幅されたDNA断片の塩基配列を決定することにより、一塩基多型を検出することを特徴とする請求項10に記載の方法。   The method according to claim 10, wherein in step (c) according to claim 1, single nucleotide polymorphism is detected by determining the base sequence of the amplified DNA fragment. 請求項1に記載の工程(c)において、一塩基多型部位を含むDNAに特異的にハイブリダイズするプローブにより、一塩基多型を検出することを特徴とする、請求項10に記載の方法。   The method according to claim 10, wherein in the step (c) according to claim 1, the single nucleotide polymorphism is detected by a probe that specifically hybridizes to DNA containing the single nucleotide polymorphism site. . ウシグレリン受容体遺伝子の翻訳開始点から-7位(配列番号:1に記載の塩基配列における2,697位)の多型部位を含むDNAに特異的にハイブリダイズし、少なくとも15ヌクレオチドの鎖長を有するプローブ。   A probe that specifically hybridizes to DNA containing a polymorphic site at position -7 (position 2,697 in the nucleotide sequence described in SEQ ID NO: 1) from the translation start point of the bovine ghrelin receptor gene and has a chain length of at least 15 nucleotides . 以下の(a)または(b)に記載の多型部位を含むDNAを増幅するためのプライマーオリゴヌクレオチド。
(a)配列番号:1に記載の塩基配列における2,697位の多型部位
(b)配列番号:1に記載の塩基配列における2,429位から2,472位の配列に相当する多型部位
Primer oligonucleotide for amplifying DNA containing the polymorphic site described in the following (a) or (b).
(A) a polymorphic site at position 2,697 in the base sequence described in SEQ ID NO: 1 (b) a polymorphic site corresponding to the sequence from positions 2,429 to 2,472 in the base sequence described in SEQ ID NO: 1
請求項18に記載のプローブ、または、請求項19に記載のプライマーを含む、ウシ黒毛和種の産肉形質を判定するためのキット。   A kit for determining the meat traits of Japanese bovine Japanese black cattle comprising the probe according to claim 18 or the primer according to claim 19.
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