JP2007534307A - 分泌性白血球プロテアーゼインヒビターに対する抗体 - Google Patents

Abstract

本発明に従って、分泌性白血球プロテアーゼインヒビター（ＳＬＰＩ）に対する完全ヒトモノクローナル抗体およびその抗原結合フラグメントが、提供される。重鎖免疫グロブリン分子と軽鎖免疫グロブリン分子とを含むヌクレオチド配列およびこれらをコードするアミノ酸配列が、提供される。本発明は、抗体を提供する。そしてその抗原結合フラグメントは、ＳＬＰＩに特異的に結合し、ＳＬＰＩ活性を中和するように作用し、そしてＳＬＰＩ効果を調節し得る。

Description

（関連出願）
本出願は、２００３年１１月７日に出願された米国仮出願第６０／５１８，２７５号からの優先権の利益を主張し、その内容は、その全体が本明細書中に援用される。

（発明の分野）
本明細書中に開示される発明は、分泌性白血球プロテアーゼインヒビター（ＳＬＰＩ）に対する特異性をもつ抗体、およびこのような抗体の使用に関する。特に、ＳＬＰＩに特異的に結合する完全なヒトモノクローナル抗体が提供される。重鎖免疫グロブリン分子および軽鎖免疫グロブリン分子、特にフレームワーク領域および／または相補性決定領域（ＣＤＲ）（特に、ＦＲ１〜ＦＲ４またはＣＤＲ１〜ＣＤＲ３由来）にまたがる連続的な重鎖配列および軽鎖配列に対応する配列をコードするヌクレオチド配列、およびその配列を含むアミノ酸配列が提供される。このような免疫グロブリン分子およびモノクローナル抗体を発現するハイブリドーマまたはその他の細胞株もまた提供される。

（発明の背景）
（分泌性白血球プロテアーゼインヒビター）
分泌性白血球プロテアーゼインヒビター（ＳＬＰＩ）はまた、ヒト精液インヒビター−Ｉ（ＨＵＳＩ−Ｉ）（非特許文献１）および抗ロイコプロテアーゼ（ＡＬＰ−１）としても知られ、ｋａｚａｌ型セリンプロテアーゼインヒビターファミリーの１２ｋＤａのメンバーである。当初は、精液（非特許文献２）、頚管粘液（非特許文献３）、気管支分泌物（非特許文献４）および耳下腺分泌物（非特許文献５）、ならびにヒト血清（非特許文献６）に存在していることが示され、このインヒビターは、免疫反応性（非特許文献６；非特許文献４）またはアミノ酸配列分析（非特許文献７；非特許文献１）によって、抗ロイコプロテアーゼおよびその代謝産物と同一であることが示された。

ＳＬＰＩは、炎症性応答の間に好中球プロテアーゼに対して保護するように（非特許文献８；非特許文献９；非特許文献１０；非特許文献１１）、ならびに創傷治癒（非特許文献１２）、細胞増殖を促進するように（非特許文献１３）、ＨＩＶ感染（非特許文献１４）およびＮＦ−κＢ活性化（非特許文献１５）を阻害するように、細菌を溶解するように（非特許文献１６）およびマクロファージ機能を調節するように（非特許文献１７）作用する。

ＳＬＰＩは、呼吸上皮で（非特許文献１８；非特許文献１９；非特許文献２０）、そしてまた、肺、胸部、口腔咽頭、膀胱、卵巣、子宮内膜および結腸直腸を含む種々の癌で（非特許文献２１）発現されることが示されている。

ＳＬＰＩ発現は、腫瘍進行と関連しており（非特許文献２２；非特許文献２３；非特許文献２４；非特許文献２５；非特許文献２６）、恐らくは、ＳＬＰＩプロテアーゼ阻害活性によるか（非特許文献２７）、または細胞増殖の促進（非特許文献１３）による。

（抗体）
モノクローナル抗体の特異性は、それらを、正常組織を容赦しながら、疾患を根絶する希望とともに、インビボで癌を標的にするための魅力的な薬剤にした。初期にマウスモノクローナル抗体を利用したアプローチは、インビボにおける免疫原性；非効率的なエフェクター機能および短い半減期のような潜在的な有効性に対する制限に遭遇した。ヒト抗体の定常領域と組み合わせたマウスモノクローナル抗体の抗原結合性可変ドメインを利用することを求めたキメラ抗体（非特許文献２８；非特許文献２９）；マウス抗体由来の抗原結合性相補性決定領域（ＣＤＲ）をヒト免疫グロブリンにグラフト化したヒト化抗体（非特許文献３０；非特許文献３１；非特許文献３２；非特許文献３３）；および抗体の単鎖ｓｃＦＶまたはＦａｂフラグメントのファージディスプレイライブラリー（非特許文献３４；非特許文献３５；非特許文献３６；非特許文献３７；非特許文献３８）のための技術が開発された。さらに、ヒト免疫グロブリン遺伝子および非機能的な内因性遺伝子を有するトランスジェニック動物が、完全なヒトモノクローナル抗体の免疫化および産生のために開発された（非特許文献３９；非特許文献４０；非特許文献４１）。
Ｓｅｅｍｕｌｌｅｒ Ｕ．ら、１９８６ ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔ．１９９：４３〜４８ Ｆｉｎｋ Ｅ．ら、Ｈｏｐｐｅ−Ｓｅｙｌｅｒ’ｓ Ｚ Ｐｈｙｓｉｏｌ Ｃｈｅｍ、１９７１、３５２：１５９１〜１５９４ Ｗａｌｌｎｅｒ Ｏ．ら、Ｈｏｐｐｅ−Ｓｅｙｉｅｒ’ｓ Ｚ Ｐｈｙｓｉｏｌ Ｃｈｅｍ、１９７４、３５５：７０９〜７１５ Ｏｈｌｓｓｏｎ Ｋ．ら、Ｈｏｐｐｅ−Ｓｅｙｌｅｒ’ｓ Ｚ Ｐｈｙｓｉｏｌ Ｃｈｅｍ、１９７７、３５８：５８３〜５８９ Ｏｈｌｓｓｏｎ Ｍ．ら、Ｈｏｐｐｅ−Ｓｅｙｌｅｒ’ｓ Ｚ Ｐｈｙｓｉｏｌ Ｃｈｅｍ、１９８３、３６４：１３２３〜１３２８ Ｆｒｙｋｓｍａｒｋ Ｕ．ら、Ｈｏｐｐｅ−Ｓｅｙｌｅｒ’ｓ Ｚ Ｐｈｙｓｉｏｌ Ｃｈｅｍ、１９８１、３６２：１２７３〜１２７７ Ｔｈｏｍｐｓｏｎ Ｒ．Ｃ．ら、Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ＵＳＡ、１９８６、８３：６６９２〜６６９６ ＭｃＥｌｖａｎｅｙ ＮＧ．ら、Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔ．１９９２、９０：１２９６〜１３０１ Ｓｏｎｇ Ｘ．ら、Ｊ．Ｅｘｐ Ｍｅｄ、１９９９、１９０：５３５〜５４２ Ｌｅｎｔｓｃｈ ＡＢ．ら、Ｇａｓｒｏｅｎｔｅｒｏｌｏｇｙ、１９９９、１１７：９５３〜９６１ Ｇｉｐｓｏｎ ＴＳ．ら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏ．１９９９、１６２：３６５３〜３６２ Ａｓｈｃｒｏｆｔ ＧＳ．、Ｎａｔ．Ｍｅｄ、２０００、６：１１４７〜１１５３ Ｚｈａｎｇ Ｄ．ら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２００２、２７７：２９９９９〜３０００９ ＭｃＮｅｅｌｙ ＴＢら、Ｂｌｏｏｄ、１９９７、９０：１１４１〜１１４９ Ｌｅｎｔｓｈｃｈ ＡＢ．ら、Ａｍ．Ｊ．Ｐａｔｈｏｌ、１９９９、１５４：２３９〜２４７ Ｈｉｅｍｓｔｒａ ＰＳ．ら、Ｉｎｆｅｃｔ．Ｉｍｍｕｎ．１９９６、６４：４５２０〜４５２４ Ｚｈａｎｇ Ｙ．ら、Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔ．、１９９７、９９：８９４〜９００ Ｋｒａｍｐｓ ＪＡら、Ｐｕｌｍｏｎａｒｙ Ｅｍｐｈｓｅｍａ ａｎｄ Ｐｒｏｔｅｏｌｙｓｉｓ．Ｔａｙｌｏｒ ＪＣ ＆ Ｍｉｔｔｍａｎ、Ｃ．（編）Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ：Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ、１９８７、３２５〜３２９頁 Ｆｒａｎｋｅｎら、Ｊ Ｈｉｓｔｏｃｈｅｍ Ｃｙｔｏｃｈｅｍ、１９８９、３７：４９３〜４９８ ｄｅ Ｗａｔｅｒ Ｒ．ら、Ａｍ Ｒｅｖ Ｒｅｓｐ Ｄｉｓ、１９８６、１３３：８８２〜８９０ Ｇａｒｖｅｒ ＲＩ．ら、Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒａｐｙ、１９９４、１：４６〜５０ Ｈｏｕｇｈ ＣＤ．ら、Ｃａｎ Ｒｅｓ．、２０００、６０：６２８１〜６２８７ Ｈｏｕｇｈ ＣＤ．ら、Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．、２００１、１：３８６９〜３８７６ Ｓｈｉｇｅｍａｓａ Ｋら、Ｉｎｔ．Ｊ．Ｇｙｎｅｃｏｌ．Ｃａｎｃｅｒ、２００１、１１：４５４〜４６１ Ａｍｅｓｈｉｍａ Ｓ．ら、Ｃａｎｃｅｒ、２０００、８９：１４４８〜１４５６ Ｍｏｒｉｔａ Ｍ．ら、Ａｄ．Ｅｎｚｙｍｅ．Ｒｅｇｕｌ．、１９９９、３９：３４１〜３５５ Ｄｅｖｏｏｇｄｔ Ｎ．ら、ＰＮＡＳ、２００３、１００：５７７８〜５７８２ Ｂｏｕｌｉａｎｎｅら、Ｎａｔｕｒｅ、１９８４、３１２：６４３〜６４６ Ｍｏｒｒｉｓｏｎら、ＰＮＡＳ ＵＳＡ、１９８４、８１：６８５１〜６８５５ Ｊｏｎｅｓら、Ｎａｔｕｒｅ、１９８６、３２１：５２２〜５２５ Ｒｉｅｃｈｍａｎｎら、１９８８ Ｎａｔｕｒｅ ３３２：３２３〜３２７ Ｖｅｒｈｏｅｙｅｎら、Ｓｃｉｅｎｃｅ、１９８８、２３９：１５３４〜１５３６ Ｖａｕｇｈａｎら、Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．、１９９８、１６：５３５〜５３９ ｄｅ Ｈａａｒｄら、Ｊ Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．、１９９９、２７４：１８２１８〜１８２３０ Ｋｎａｐｐｉｋら、Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．、２０００、２９６：５７〜８６ Ｓｈｅｅｔｓら、ＰＮＡＳ ＵＳＡ、１９９８、９５：６１５７〜６１６２ Ｖａｕｇｈａｎら、Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ、１９９４、１４：３０９〜３１４ Ｇｒｉｆｆｉｔｈｓら、ＥＭＢＯ Ｊ．、１９９６、１３：３４２５〜３２６０ Ｆｉｓｈｗｉｌｄら、Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ、１９９６、１４：８４５〜８５１ Ｍｅｎｄｅｚら、Ｎａｔｕｒｅ Ｇｅｎｅｔ．、１９９７、１５：１４６〜１５６ Ｎｉｃｈｏｌｓｏｎら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ、１９９９、１６３、６８９８〜６９０６

組換え技術が利用されており、そしてインビボの効目を増大する目的とともに、抗体分子に対するさらなる改良を求めて進展することが継続されている。このような技術は、例えば、分子サイズ、親和性、特異性、原子価、エフェクター機能、直接的アーミング（ａｒｍｉｎｇ）および間接的アーミング、併用治療法、および種々のプロドラッグアプローチを最適化することを提供する。

（発明の要旨）
本発明は、分泌性白血球プロテアーゼインヒビター（ＳＬＰＩ）を特異的に結合する抗体を提供する。さらに、ＳＬＰＩの活性を調節する抗体が提供される。本発明は、抗ＳＬＰＩヒトモノクローナル抗体、その改変体および誘導体、ならびに、その抗原結合性フラグメントを提供する。さらに、ＳＬＰＩの活性を調節する抗ＳＬＰＩヒトモノクローナル抗体改変体およびその誘導体ならびにその抗原結合性フラグメントが提供される。提供されるのは、抗ＳＬＰＩヒトモノクローナル抗体改変体およびその誘導体、ならびにＳＬＰＩ活性を中和し得るその抗原結合性フラグメントである。

本発明は、ヒト抗体遺伝子セグメントの好ましい体細胞組換えを提供し、ＳＬＰＩに対する特異性、ならびに、これらの遺伝子セグメントを起源とする遺伝子操作された抗ＳＬＰＩ抗体改変体および誘導体を提供する。さらに、本発明は、ＳＬＰＩに対する結合特異性をもつ複数親和性の成熟したヒト抗体を提供する。

本発明の抗ＳＬＰＩヒトモノクローナル抗体のアミノ酸配列およびこれらをコードする核酸配列が提供される。

ヒト抗ＳＬＰＩ抗体を含む組成物、これを含む治療組成物、および使用の方法が提供される。

本開示のさらなる局面は、以下の記載に一部提示され、そして以下の記載から一部自明であるか、または本発明の実施によって学ばれ得る。本発明は、添付の請求項に提示され、そして特に指摘されており、そして本開示は、いかなる方法でも請求項の範囲を制限するとして解釈されるべきではない。以下の詳細な説明は、請求項に記載されるような本発明の種々の実施形態の例示の代表を含み、これらは本発明の制限ではない。添付の図面は、この明細書の一部を構成し、そして、明細書の記載とともに、種々の実施形態を例示するためのみに供され、そして本発明を制限しない。参考文献の引用は、これらの参考文献が本発明に対する先行技術であることの容認ではない。

（発明の詳細な説明）
（定義）
本開示で用いられるとき、用語「抗体」は、免疫グロブリン、またはそのフラグメントもしくは誘導体をいい、そしてそれがインビトロまたはインビボで産生されるか否かにかかわらず、抗原結合性部位を含む任意のポリペプチドを包含する。この用語は、制限されないで、ポリクローナル抗体、モノクローナル抗体、一特異性抗体、多特異性抗体、非特異的抗体、ヒト化抗体、単鎖抗体、キメラ抗体、合成抗体、組換え抗体、ハイブリッド抗体、変異抗体、およびグラフト化抗体を含む。本開示の目的には、「インタクト抗体」におけるように、用語「インタクト」による修飾がない限り、用語「抗体」はまた、Ｆａｂ、Ｆ（ａｂ’）_２、Ｆｖ、ｓｃＦｖ、Ｆｄ、ｄＡｂ、および抗原結合性機能、すなわち、ＳＬＰＩを特異的に結合する能力を保持するその他の抗原結合性フラグメントのような抗体フラグメントを含む。代表的には、このようなフラグメントは、抗原結合性ドメインを含む。

用語「抗原結合性ドメイン」、「抗原結合性フラグメント」、および「結合性フラグメント」は、抗体と抗原との間の特異的結合の原因となるアミノ酸を含む抗体分子の一部をいう。例えば、抗原が大きいとき、この抗原結合性ドメインは、抗原の一部のみに結合し得る。この抗原結合性ドメインとの特異的相互作用の原因である抗原分子の一部は、「エピトープ」または「抗原性決定基」と称される。

抗原結合性ドメインは、代表的には、抗体軽鎖可変領域（ＶＬ）および抗体重鎖可変領域（ＶＨ）を含むが、必ずしも両方を含まなければならない必要はない。例えば、いわゆるＦｄ抗体フラグメントは、ＶＨドメインのみからなるが、なおインタクト抗体のいくらかの抗原結合性機能を保持している。

用語「レパートリー」は、発現された免疫グロブリンをコードする配列から全部または一部が由来するヌクレオチドの遺伝子的に多様なコレクションをいう。これら配列は、例えば、Ｈ鎖についてＶセグメント、Ｄセグメント、およびＪセグメント、そしてＬ鎖についてＶセグメントおよびＪセグメントのインビボ再配置により生成される。あるいは、これら配列は、再配置が生じるインビトロ刺激に応答して細胞株から生成され得る。あるいは、ヌクレオチド合成、ランダム化変異誘発、および、例えば、米国特許第５，５６５，３３２号に開示されるようなその他の方法によって、例えば、ＤセグメントおよびＪセグメントをもつ非再配列Ｖセグメントを組み合わせることによって得られ得る。

用語「特異的相互作用」および「特異的結合」は、生理学的条件下で比較的安定である複合体を形成する２つの分子をいう。特異的結合は、通常中程度〜高容量で低親和性を有する非特異的結合から区別するとき、高親和性および低〜中程度容量よって特徴付けられる。代表的には、結合は、親和性定数Ｋ_Ａが１０^６Ｍ^−１より、またはより好ましくは１０^８Ｍ^−１より高いとき特異的であると考えられる。必要であれば、非特異的結合は、結合条件を変動することによって特異的結合に実質的に影響することなく低減され得る。抗体の濃度、溶液のイオン強度、温度、結合を許容する時間、ブロック剤（例えば、血清アルブミン、ミルクカゼイン）の濃度などのような適切な結合条件は、慣用の技法を用いて当業者によって最適化され得る。

語句「実質的に示されるように」は、本発明の関係あるＣＤＲドメイン、ＶＨドメインまたはＶＬドメインが、その配列が並べられる特定の領域（例えば、ＣＤＲ）と同じか、または実質的でない差異のみを有するかのいずれかであることを意味する。実質的でない差異は、特定の領域の配列における任意の５アミノ酸のうち１または２の置換のような、小数のアミノ酸変化を含む。

用語「ＳＬＰＩ活性」は、ＳＬＰＩにともなう１つ以上の調節活性をいう。例えば、ＳＬＰＩは、エラスターゼおよびカテプシンＧ、トリプシンならびにキモトリプシンを含むいくつかのプロテアーゼの活性を阻害する。ＳＬＰＩはまた、ヒト卵巣癌細胞株の増殖を刺激する。ＳＬＰＩ活性を「調節」することは、ＳＬＰＩとともに観察され、しかもＳＬＰＩに起因し得るベースライン結果を変更することである。ＳＬＰＩを「中和する」ことは、任意の効果、例えば、ＳＬＰＩとともに観察され、そしてＳＬＰＩに起因し得る活性をなくすことである。インビトロでＳＬＰＩ活性を評価するための手順は、例えば、実施例９、１０、１３、１５、１６および１７に記載されている。

用語「処置」および「治療方法」は、治療処置および予防（ｐｒｏｐｈｙｌａｃｔｉｃ）／予防的（ｐｒｅｖｅｎｔａｔｉｖｅ）測定の両方をいう。治療の必要な者は、特定の医療疾患をすでに有する個体、および最終的に疾患を取得し得る者（すなわち、予防手段を必要とする者）を含み得る。

用語「有効量」は、ＳＬＰＩの活性を低減し、患者における症状の回復を生じるか、または所望の生物学的結果を達成するに十分である投薬量または量をいう。

用語「単離された」は、その天然環境から実質的に離れている分子をいう。例えば、単離されたタンパク質は、それが由来する細胞または組織供給源からの細胞材料またはその他のタンパク質が実質的にない。用語「単離された」はまた、単離されたタンパク質が、薬学的組成物として投与されるに十分純粋であるか、または少なくとも７０〜８０％純粋、より好ましくは少なくとも８０〜９０％（ｗ／ｗ）純粋であり、なおより好ましくは９０〜９５％純粋であり；そして最も好ましくは、少なくとも９５％、９６％、９７％、９８％、９９％、または１００％（ｗ／ｗ）純粋である調製物をいう。

他であることが規定されない限り、本明細書に記載される発明と組み合わせて用いられる科学的および技術的用語は、当業者によって共通して理解される意味を有する。さらに、文脈によって他であることが要求されない限り、単数の用語は複数形を含み、そして複数の用語は単数形を含む。一般に、本明細書で記載される細胞培養および組織培養、分子生物学、ならびにタンパク質およびオリゴヌクレオチド化学またはポリヌクオチド化学およびハイブリダイゼーションと組み合わせて採用される命名、およびそれらの技法は、当該技術分野で周知および共通して用いられるものである。標準的な技法が、組換えＤＮＡ、オリゴヌクレオチド合成、ならびに組織培養および形質転換（例えば、エレクトロポーレーション、リポフェクション）について用いられる。酵素反応および精製技法は、製造業者の仕様に従って、または当該技術分野で共通して実施されるように、または本明細書中に記載されるように実施される。前述の技法および手順は、一般に、当該技術分野で周知の従来方法に従って、そして本明細書を通じて引用および論議される種々の一般的、およびより特定した参考文献に記載されるように実施される。（例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋら、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ、第２版、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ、Ｎ．Ｙ．１９８９を参照のこと）。本明細書に記載される分析化学、合成有機化学、ならびに医用化学および薬学的化学と組み合わせて利用される命名、ならびにこれらの実験室手順および技法は、周知であり、そして当該技術分野で共通して用いられるものである。標準的な技法が、化学的合成、化学的分析、薬学的調製物、処方物、および送達、ならびに患者の処置について用いられる。

免疫グロブリンとしてもまた知られる抗体は、代表的には、代表的には、２つの各軽（Ｌ）鎖（約２５ｋＤａ）および２つの重（Ｈ）鎖（約５０〜７０ｋＤａ）からなる４量体グリコシル化タンパク質である。各鎖のアミノ末端部分は、抗原認識を主に担う約１００〜１１０またはそれ以上のアミノ酸の可変ドメインを含む。このＬ鎖およびＨ鎖のカルボキシ末端部分は、主にエフェクター機能を担う、それぞれ、１つ、および３つまたは４つの定常ドメインを有する。κおよびλとして分類される２つのヒトＬ鎖がある。Ｈ鎖は、抗体のアイソタイプをＩｇＭ、ＩｇＤ、ＩｇＧ、ＩｇＡ、およびＩｇＥとしてそれぞれ規定する定常ドメインアミノ酸配列に基づき、μ、δ、γ、α、またはεとして分類される。アイソタイプは、さらに、サブクラス、例えば、ＩｇＧ_１、ＩｇＧ_２、ＩｇＧ_３、ＩｇＧ_４に分割され得る。

免疫グロブリンは、インビボで、自然には、Ｂリンパ球によって産生される。Ｂ細胞の各クローンは、特有の予想される抗原結合性構造をもつ抗原レセプターを有する抗体を産生する。約１０^７の可能性である抗原レセプターのレパートリーが、抗原刺激の前にインビボで存在する。この多様性は、体細胞組換え−異なる抗体遺伝子セグメントの連結によって産生される。免疫グロブリンＨ鎖、κＬ鎖およびλＬ鎖は、３つの別個の遺伝子座によってコードされ、そして各遺伝子座は、可変領域（Ｖ）、定常領域（Ｃ）および連結領域（Ｊ）をコードする少なくとも３つのタイプの遺伝子セグメントの複数コピーを有し、重鎖遺伝子はまた、多様性領域（Ｄ）を含む。利用可能な種々の遺伝子セグメント（４５ 重鎖Ｖ；３５ κＶ；２３ 重鎖Ｄ；６ 重鎖Ｊ；５ κＪ）のなかからの特定のＶ領域、Ｃ領域およびＪ領域（そして重鎖についてはＤ）の選択は、Ｂ細胞で示される生殖系列配列の約１０^１１の可能な特異性を生成する。Ｖ領域、Ｃ領域およびＪ領域の連結は、連結部における残基の損失または付加を生じ得る。ヒト抗体のＬ鎖Ｖ領域およびＨ鎖Ｖ領域は、相補性決定領域（ＣＤＲ）としてまた知られる３つの超可変領域の足場を形成する比較的保存されたフレームワーク領域（ＦＲ）からなる。重鎖または軽鎖のいずれかのアミノ末端から、Ｖドメインは次の順序でＦＲ領域およびＣＤＲ領域から形成される：ＦＲ１−ＣＤＲ１−ＦＲ２−ＣＤＲ２−ＦＲ３−ＣＤＲ３−ＦＲ４。これらのＣＤＲは、一般に、抗原結合を担う。

本発明は、生殖系列ヒト抗体重鎖のＶ、Ｄ、Ｊ組み合わせ、および軽鎖のＶ、Ｊ組み合わせを提供し、これは、ＳＬＰＩに対する特異性をもつ、ＶＨおよびＶＬドメインのＦＲ領域およびＣＤＲ領域のヌクレオチドおよびアミノ酸配列を含む。

抗原に曝される際に、生殖系列配列に基づく抗原結合特異性をもつようなＢ細胞は、活性化され、増殖し、そして分化して異なるアイソタイプの免疫グロブリンを生成し、ならびに体細胞変異および／または親和性成熟を行い、抗原に対してより高い親和性の免疫グロブリンを生成する。本発明は、ＳＬＰＩに対する特異性を有する、このような親和性成熟ＶドメインのＦＲ領域およびＣＤＲ領域のヌクレオチド配列およびアミノ酸配列を提供する。

抗体分子の抗原結合性部分を含むＦａｂ型の抗体フラグメントは、Ｖドメインおよび第１の定常領域を有するＨ鎖の一部にジスルフィド結合によって共有結合されるＬ鎖からなり得る。単鎖Ｆｖ抗体フラグメント（ｓｃＦｖ）は、ポリペプチドリンカーによりＬ可変ドメインに連結されるＨ可変ドメインを有する。本発明は、ＳＬＰＩに対して特異的に結合する抗体結合特異性の生殖系列または親和性成熟Ｖドメイン由来の配列を有するＦａｂ分子およびｓｃＦｖ分子のような抗体フラグメントを提供する。

特定の実施形態では、ヒト抗ＳＬＰＩ抗体は、４２Ｃ１，３５Ｆ１、４３Ｈ７および９Ｇ１２であり、そして表１に示されるような本出願で識別されるこれらをコードするアミノ酸配列および核酸配列を有する。

ＳＬＰＩ結合性ヒト抗体は、Ｌκもしくはλ定常領域、または任意のアイソタイプＨ定常ドメインを含むＨ定常ドメインまたはＬ定常ドメインを含み得る。本発明の１つの実施形態では、ＳＬＰＩに対する結合特異性をもつヒト抗体は、重鎖Ｖ領域ＶＨ４−３１（配列番号８１、８２）またはＶＨ３−３３（配列番号８３、８４）；重鎖Ｄ領域Ｄ２−２（配列番号８５、８６、８７、８８）、Ｄ３−１０（配列番号８９、９０、９１、９２）、Ｄ４−１７（配位列番号９３、９４、９５、９６）またはＤ３−１６（配列番号９７、９８、９９、１００）；重鎖Ｊ領域ＪＨ４ｂ（配列番号１０１、１０２）またはＪＨ６ｂ（配列番号１０３、１０４）；軽鎖Ｖκ領域Ｌ２ＶＫ３（配列番号１０５、１０６）またはＡ２ＶＫ２（配列番号１０７、１０８）；およびＪ領域ＪＫ１（配列番号１０９、１１０）のような生殖系列配列を含む（一般に、Ｋａｂａｔ Ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ｏｆ Ｐｒｏｔｅｉｎｓ ｏｆ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌ Ｉｎｔｅｒｅｓｔ、Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅｓ ｏｆ Ｈｅａｌｔｈ、Ｂｅｔｈｅｓｄａ、Ｍｄ．１９８７および１９９１を参照のこと；また、Ｃｈｏｔｈｉａ＆Ｌｅｓｋ １９８７ Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．１９６：９０１〜９１７；Ｃｈｏｔｈｉａら、１９８９ Ｎａｔｕｒｅ ３４２：８７８〜８８３を参照のこと）。特定の実施形態では、ＳＬＰＩに対する結合特異性をもつヒト抗体４２Ｃ１は、重鎖Ｖ領域ＶＨ４−３１；重鎖Ｄ領域Ｄ２−２；重鎖Ｊ領域ＪＨ４ｂ；軽鎖Ｖκ領域Ｌ２ＶＫ３；およびＪ領域ＪＫ１を有する。別の実施形態では、ＳＬＰＩに対する結合特異性をもつヒト抗体３５Ｆ１は、重鎖Ｖ領域ＶＨ４−３１；重鎖Ｄ領域Ｄ３−１０；重鎖Ｊ領域ＪＨ４ｂ；軽鎖Ｖκ領域Ｌ２ＶＫ３；およびＪ領域ＪＫ１を含む。なお別の実施形態では、ＳＬＰＩに対する結合特異性をもつ本発明のヒト抗体４３Ｈ７は、重鎖Ｖ領域ＶＨ３−３３；重鎖Ｄ領域Ｄ４−１７；重鎖Ｊ領域ＪＨ６ｂ；軽鎖Ｖκ領域Ａ２ＶＫ２；およびＪ領域ＪＫ１を含む。さらに、ＳＬＰＩに対する結合特異性をもつヒト抗体９Ｇ１２は、重鎖Ｖ領域ＶＨ３−３３；重鎖Ｄ領域Ｄ３−１６；重鎖Ｊ領域ＪＨ６ｂ；軽鎖Ｖκ領域Ａ２ＶＫ２；およびＪ領域ＪＫ１を含む。

本発明の実施形態では、単離された抗体は、配列番号２、配列番号２０、配列番号３８、配列番号５６、配列番号７３、配列番号７４、配列番号８２および配列番号８４からなる群から選択されるアミノ酸配列を含む重鎖可変領域ポリペプチドを有する。このようなアミノ酸配列は、配列番号１、配列番号１９、配列番号３７、配列番号５５、配列番号８１および配列番号８３からなる群から選択されるヌクレオチド配列によってコードされ得る。別の実施形態では、本発明は、ＳＬＰＩに特異的に結合し、そして配列番号１１、配列番号２９、配列番号４７、配列番号６５、配列番号７５、配列番号７６、配列番号１０６および配列番号１０８からなる群から選択されるアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域ポリペプチドを有する、単離された抗体を提供する。このようなアミノ酸配列は、配列番号１０、配列番号２８、配列番号４６、および配列番号６４、配列番号１０５および配列番号１０７からなる群から選択されるヌクレオチド配列によってコードされ得る。なお別の実施形態では、本発明は、ＳＬＰＩに特異的に結合し、そして配列番号２、配列番号２０、配列番号３８、配列番号５６、配列番号７３、配列番号７４、配列番号８２および配列番号８４からなる群から選択されるアミノ酸配列を含む重鎖可変領域ポリペプチド、ならびに配列番号１１、配列番号２９、配列番号４７、配列番号６５、配列番号７５、配列番号７６、配列番号１０６および配列番号１０８からなる群から選択されるアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域ポリペプチドを有する単離された抗体を提供する。本発明のなお別の実施形態では、抗ＳＬＰＩ抗体は、任意のＨ ＣＤＲポリペプチド配列またはＬ ＣＤＲポリペプチド配列、配列番号４、配列番号６、配列番号８、配列番号１３、配列番号１５、配列番号１７、配列番号２２、配列番号２４、配列番号２６、配列番号３１、配列番号３３、配列番号３５、配列番号４０、配列番号４２、配列番号４４、配列番号４９、配列番号５１、配列番号５３、配列番号５８、配列番号６０、配列番号６２、配列番号６７、配列番号６９、配列番号７１および配列番号８０のうちの少なくとも１つのＣＤＲを含む。

特定の実施形態では、生殖系列Ｖ重鎖領域ＶＨ４−３１に由来する本発明のＳＬＰＩ結合性ヒト抗体は、アミノ酸配列：

ここで：
Ｘ１はＧまたはＶであり；
Ｘ２はＳまたはＫであり；
Ｘ３はＧまたはＤであり；
Ｘ４はＩまたはＶであり；
Ｘ５はＨまたはＬであり；
Ｘ６はＶまたはＩであり；
Ｘ７はＹまたはＦであり；
Ｘ８はＥまたはＳであり；そして
Ｘ９はＥまたはＳである
（配列番号７３）
を有する。さらに、特定の実施形態では、Ｈ鎖ＣＤＲ配列は、生殖系列ＶＨ４−３１ＣＤＲアミノ酸配列

である。親和性成熟の後、ＶＨ４−３１生殖系列Ｖ領域からのＳＬＰＩ結合性ヒト抗体は、ＦＲアミノ酸配列およびＣＤＲアミノ酸配列：配列番号２１〜２６、配列番号５７〜６３（表１を参照のこと）を有する。

別の特定の実施形態では、生殖系列Ｖ重鎖領域ＶＨ３−３３に由来する本発明のＳＬＰＩ結合性ヒト抗体は、アミノ酸配列：

ここで：
Ｘ１はＳ、ＴまたはＧであり；
Ｘ２はＡまたはＴであり；
Ｘ３はＶまたはＦであり；
Ｘ４はＤまたはＮであり；
Ｘ５はＳ、ＲまたはＮであり；
Ｘ６はＮまたはＤであり；
Ｘ７はＫまたはＮであり；
Ｘ８はＡまたはＴであり；
Ｘ９はＩまたはＶであり；そして
Ｘ１０はＬまたはＭである
（配列番号７４）
を有する。さらに、特定の実施形態では、Ｈ鎖ＣＤＲ配列は、生殖系列ＶＨ３−３３ＣＤＲアミノ酸配列

である。親和性成熟の後、ＶＨ３−３３生殖系列Ｖ領域からのＳＬＰＩ結合性ヒト抗体は、ＦＲおよびＣＤＲアミノ酸配列：配列番号３〜９、配列番号３９〜４５（表１を参照のこと）を有する。

なお別の特定の実施形態では、生殖系列Ｖ軽鎖領域Ｌ２ＶＫ３に由来する本発明のＳＬＰＩ結合性ヒト抗体は、アミノ酸配列：

ここで：
Ｘ１はＡまたはＴであり；
Ｘ２はＳまたはＧであり；
Ｘ３はＳまたはＧであり；
Ｘ４はＳまたはＮであり；
Ｘ５はＫまたはＮである
（配列番号７５）
を有する。さらに、特定の実施形態では、Ｌ鎖ＣＤＲ配列は、生殖系列Ｌ２ＶＫ３ ＣＤＲアミノ酸配列

である。インビボでの親和性成熟の後、Ｌ２ＶＫ３生殖系列Ｖ領域からのＳＬＰＩ結合性ヒト抗体は、ＦＲおよびＣＤＲアミノ酸配列：配列番号３０〜３６、配列番号６６〜７２（表１を参照のこと）を有する。

特定の実施形態では、生殖系列Ｖ軽鎖領域Ａ２ＶＫ２に由来する本発明のＳＬＰＩ結合性ヒト抗体は、アミノ酸配列：

ここで：
Ｘ１はＨまたはＤであり；
Ｘ２はＶまたはＩであり；
Ｘ３はＧまたはＡであり；
Ｘ４はＶまたはＹであり；そして
Ｘ５はＭまたはＬである
（配列番号７６）
を有する。さらに、特定の実施形態では、Ｌ鎖ＣＤＲ配列は、生殖系列Ａ２ＶＫ２アミノ酸配列

である。

親和性成熟の後、Ａ２ＶＫ２生殖系列Ｖ軽重鎖領域からのＳＬＰＩ結合性ヒト抗体は、ＦＲアミノ酸配列およびＣＤＲアミノ酸配列：配列番号１２〜１８、配列番号４８〜５４（表１を参照のこと）を有する。

本発明の特定の好ましい実施形態では、抗ＳＬＰＩ抗体は、本明細書で証明されるように、ＳＬＰＩの活性を調節する。本発明のなおより好ましい実施形態では、抗ＳＬＰＩ抗体は、本明細書で証明されるように、ＳＬＰＩの活性、例えば、エラスターゼまたはカテプシンＧ酵素活性のＳＬＰＩ阻害を中和する。

本発明の抗体は、好ましくはＳＬＰＩの成熟配列（配列番号１１２のアミノ酸２５〜１３１）内でＳＬＰＩ（配列番号１１２）のエピトープに結合する。本発明の抗体は、１０^−６〜１０^−１１の親和性でＳＬＰＩを結合する。好ましくは、１０^−７以上、そしてより好ましくは１０^−８以上である。好ましい実施形態では、本明細書に記載される抗体は、非常に高い親和性（Ｋｄ）の親和性でＳＬＰＩに結合し、例えば、ヒト抗体は、制限されないで、１０^−７Ｍ、１０^−８Ｍ、１０^−９Ｍ、１０^−１０Ｍ、１０^−１１Ｍ、１０^−１２Ｍ、１０^−１３Ｍまたは１０^−１４Ｍより小さいＫｄで、またはその中の任意の範囲または任意の値でＳＬＰＩを結合し得る。親和性および／または結合力の測定は、本明細書中に記載されるように、ＫｉｎＥｘＡ（登録商標）および／またはＢＩＡＣＯＲＥ（登録商標）によって測定され得る。特定の実施形態では、本発明の抗体は、５０〜１５０ｐＭの範囲のＫｄでＳＬＰＩに結合する。

エピトープマッピングならびに二次および三次構造分析は、開示される抗体および抗原とのそれらの複合体によってとられる特定の３Ｄ構造を同定するために実施され得る（例えば、Ｅｐｉｔｏｐｅ Ｍａｐｐｉｎｇ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ、Ｍｏｒｒｉｓ編、Ｈｕｍａｎａ Ｐｒｅｓｓ、１９９６を参照のこと）。このような方法は、制限されないで、Ｘ線結晶学（Ｂｉｏｃｈｅｍ、Ｅｘｐ．Ｂｉｏｌ．、１１：７〜１３、１９７４）および現在開示される抗体の仮想的表示のコンピューターモデリングを含む（Ｆｌｅｔｔｅｒｉｃｋら（１９８６）Ｃｏｍｐｕｔｅｒ Ｇｒａｐｈｉｃｓ ａｎｄ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｍｏｄｅｌｉｎｇ、Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｃｏｍｍｕｎｉｃａｔｉｏｎｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ、Ｎ．Ｙ．）。

さらに、抗体によって認識されるタンパク質免疫原の特異的部分は、タンパク質の一部分、例えば、Ｎ末端およびＣ末端の半分体への抗体反応性をアッセイすることにより決定され得る。得られる反応性フラグメントは、次に、最小の反応性ペプチドが規定されるまで、抗体との免疫原のより小さな部分を連続的にアッセイして、さらに分析され得る。あるいは、エピトープである、本発明の抗ＳＬＰＩ抗体の結合特異性は、ＳＬＰＩ免疫原を還元剤の不在または存在いずれかでＳＤＳ−ＰＡＧＥに供し、そして免疫ブロットにより分析することによって決定され得る。エピトープマッピングはまた、ＳＥＬＤＩを用いて実施され得る。ＳＥＬＤＩ ＰｒｏｔｅｉｎＣｈｉｐ（登録商標）（ＬｕｍｉＣｙｔｅ）アレイは、タンパク質−タンパク質相互作用の部位を規定するために用いられる。ＳＬＰＩタンパク質抗原またはそのフラグメントは、上記ＰＲＯＴＥＩＮＣＨＩＰアレイ表面上に共有結合で固定化された抗体によって特異的に捕獲され得る。結合された抗原は、レーザー誘導脱離プロセスによって検出され得、そして直接分析されてそれらの質量を決定し得る。

本明細書中に記載される抗ＳＬＰＩ抗体によって認識されるエピトープは、上記ＰＲＯＴＥＩＮＣＨＩＰアレイを、糸状（Ｆｉｌａｍｅｎｔｏｕｓ）ファージ（Ｎｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ Ｂｉｏｌａｂｓ）上でディスプレイされたランダムペプチド１２マーのコンビナトリアルライブラリーに曝すことにより決定され得る。抗体結合ファージは、溶出され、そして次に増幅されてさらなる結合および増幅サイクルを経て、結合配列を指向してこのプールを富化する。３または４ラウンドの後、個々の結合クローンは、さらに、抗体でコーティングされたウェル上で実施されるファージＥＬＩＳＡアッセイによって結合について試験され、そして陽性クローンの特異的ＤＮＡ配列決定により特徴付けられる。

（誘導体）
この開示はまた、ＳＬＰＩに特異的な抗体を得るための方法を提供する。このような抗体中のＣＤＲは、表１で同定されたＨ可変ドメインおよびＬ可変ドメインの特定の配列に制限されず、そしてＳＬＰＩを特異的に結合する能力を保持する、これらの配列の改変体を含み得る。このような改変体は、当該技術分野で周知の技法を用いて当業者によって表１に列挙される配列から派生され得る。例えば、アミノ酸の置換、欠失、または付加が、ＦＲ中、および／またはＣＤＲ中に作製され得る。ＦＲにおける変化は、通常、抗体の安定性および免疫原性を改良するために設計される一方で、ＣＤＲにおける変化は、代表的には、その標的に対する抗体の親和性を増加するために設計される。ＦＲの改変体はまた、天然に存在する免疫グロブリンアロタイプを含む。このような親和性を増加する変化は、ＣＤＲを改変すること、およびその標的に対する抗体の親和性を試験することを含む慣用の技法によって実験的に決定され得る。例えば、保存的アミノ酸置換が、開示されたＣＤＲの任意の１つ内でなされ得る。種々の改変が、当該技術分野で記載された方法に従ってなされ得る（Ａｎｔｉｂｏｄｙ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ、２．ｓｕｐ．ｎｄ ｅｄ．、Ｏｘｆｏｒｄ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ Ｐｒｅｓｓ、Ｂｏｒｒｅｂａｅｃｋ編、１９９５）。これらは、制限されないで、配列内で機能的に等価なアミノ酸残基をコードする異なるコドンの置換、それ故「サイレント」変化を生成することによって改変されるヌクレオチド配列を含む。例えば、非極性アミノ酸は、アラニン、ロイシン、イソロイシン、バリン、プロリン、フェニルアラニン、トリプトファン、およびメチオニンを含む。極性中性アミノ酸は、グリシン、セリン、スレオニン、システイン、チロシン、アスパラギン、およびグルタミンを含む。正に荷電する（塩基性）アミノ酸は、アルギニン、リジン、およびヒスチジンを含む。負に荷電する（酸性）アミノ酸は、アスパラギン酸、およびグルタミン酸を含む。配列内のアミノ酸の置換は、そのアミノ酸が属するクラスのその他のメンバーから選択され得る（表２を参照のこと）。さらに、ポリペプチド中の任意のネイティブ残基はまた、アラニンで置換され得る（Ａｃｔａ Ｐｈｙｓｉｏｌ．Ｓｃａｎｄ．Ｓｕｐｐｌ．６４３：５５〜６７、１９９８：Ａｄｖ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．３５：１〜２４、１９９８）。

本発明の抗体の誘導体およびアナログは、当該技術分野で周知の種々の技法によって産生され得、これには、組換え方法および合成方法を含む（Ｍａｎｉａｔｉｓ（１９９０）Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ、Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ、２．ｓｕｐ．ｎｄ ｅｄ．、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ、Ｎ．Ｙ．およびＢｏｄａｎｓｋｙら、（１９９５）Ｔｈｅ Ｐｒａｃｔｉｃｅ ｏｆ Ｐｅｐｔｉｄｅ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ、２．ｓｕｐ．ｎｄ ｅｄ．、Ｓｐｒｉｎｇ Ｖｅｒｌａｇ、Ｂｅｒｌｉｎ、Ｇｅｒｍａｎｙ）。

好ましいアミノ酸置換は：（１）タンパク質分解に対する感受性を低減する、（２）酸化に対する感受性を低減する、（３）タンパク質複合体を形成するための結合親和性を改変する、（４）結合親和性を改変する、および（４）このようなアナログの他の物理化学的性質または機能的性質を付与または改変するようなものである。アナログは、天然に存在するペプチド配列以外の配列の種々のムテインを含み得る。例えば、単一または複数のアミノ酸置換（好ましくは保存的アミノ酸置換）が天然に存在する配列中に作製され得る（好ましくは分子間接触を形成するドメイン（単数または複数）の外側のポリペプチドの部分中に）。保存的アミノ酸置換は、親配列の構造的特徴を実質的に変更するべきではない（例えば、置換アミノ酸は、親配列中で生じるヘリックスを破壊するか、または親配列を特徴付けるその他のタイプの二次構造を破壊する傾向であるべきではない）。当該技術分野で認識されたポリペプチド二次構造および三次構造の例は、当該技術分野で説明されている（例えば、Ｐｒｏｔｅｉｎｓ、Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ａｎｄ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｐｒｉｎｃｉｐｌｅｓ、Ｃｒｅｉｇｈｔｏｎ編、Ｗ．Ｈ．Ｆｒｅｅｍａｎ ａｎｄ Ｃｏｍｐａｎｙ、Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ（１９８４））。

１つの実施形態では、本発明のＨ可変ドメインのアミノ酸配列改変体であるＨ可変ドメインを作製する方法は、現在開示されるＨ可変ドメインのアミノ酸配列において、１つ以上のアミノ酸を付加、欠失、置換または挿入する工程を包含し、必要に応じて、このように提供されたＨ可変ドメインを１つ以上のＬ可変ドメインと組み合わせ、そしてこのＨ可変ドメイン、もしくはＨ可変／Ｌ可変組み合わせ（単数または複数）をＳＬＰＩへの特異的結合について試験するか、または、そして必要に応じて、ＳＬＰＩ活性を調節するこのような抗原結合性ドメインの能力を試験することを含む。上記Ｌ可変ドメインは、表１と同じか、または列挙されたのと実質的に同一であるアミノ酸配列を有し得る。

類似の方法が採用され得、そこでは、本明細書に開示されるＬ可変ドメインの１つ以上の配列改変体が、１つ以上のＨ可変ドメインと組み合わされる。

本開示のさらなる局面は、ＳＬＰＩと特異的に結合する抗原結合性フラグメントを調製する方法が提供される。この方法は：
（ａ）置換されるべきＣＤＲ３を含むか、またはＣＤＲ３コード領域を欠くかいずれかのＨ可変ドメインをコードする核酸の開始レパートリーを提供する工程；
（ｂ）このレパートリーを、Ｈ可変ＣＤＲ３について本明細書中に実質的に示されるようなアミノ酸配列をコードするドナー核酸と、このドナー核酸がレパートリー中のＣＤＲ３領域中に、Ｈ可変ドメインをコードする核酸の産物レパートリーを提供するために挿入されるように組み合わせる工程；
（ｃ）この産物レパートリーの核酸を発現する工程；
（ｄ）ＳＬＰＩに特異的な結合性フラグメントを選択する工程；および
（ｅ）この特異的結合性フラグンメントまたはそれをコードする核酸を回収する工程、を包含する。

ここで再び、類似の方法が採用され得、そこでは、本発明のＬ可変ＣＤＲ３は、置換されるべきＣＤＲ３を含むか、またはＣＤＲ３コード領域を欠くかいずれかであるＬ可変ドメインをコードする核酸のレパートリーと組み合わされる。ドナー核酸は、実質的に配列番号４、配列番号６、配列番号８、配列番号１３、配列番号１５、配列番号１７、配列番号２２、配列番号２４、配列番号２６、配列番号３１、配列番号３３、配列番号３５、配列番号４０、配列番号４２、配列番号４４、配列番号４９、配列番号５１、配列番号５３、配列番号５８、配列番号６０、配列番号６２、配列番号６７、配列番号６９、配列番号７１、配列番号７７、配列番号７８、配列番号７９および配列番号８０に提示されるようなアミノ酸配列をコードする核酸から選択され得る。

本発明のＣＤＲ（例えば、ＣＤＲ３）をコードする配列は、組換えＤＮＡ技法を用い、例えば、Ｍａｒｋｓら（Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ（１９９２）１０：７７９〜７８３）に記載される方法を用いて、個々のＣＤＲ（例えば、ＣＤＲ３）を欠く可変ドメインのレパートリー中に導入され得る。特に、可変ドメイン領域の５’末端か、またはその近傍に向かうコンセンサスプライマーが、ヒトＨ可変遺伝子の第３のフレームワーク領域に対するコンセンサスプライマーと組み合わせて用いられ得、ＣＤＲ３を欠くＨ可変ドメインのレパートリーを提供する。このレパートリーは、特定の抗体のＣＤＲ３と組み合わせられ得る。類似の技法を用いて、このＣＤＲ３由来の配列は、ＣＤＲ３を欠くＨ可変ドメインまたはＬ可変ドメインのレパートリーと混ぜ（シャフル）され得、そしてこのシャフルされた完全Ｈ可変ドメインまたはＬ可変ドメインは、同族のＬ可変ドメインまたはＨ可変ドメインと組み合わせられ、本発明のＳＬＰＩ特異的抗体を作製する。このレパートリーは、次に、ＷＯ９２／０１０４７に記載されるようなファージディスプレイシステムのような適切な宿主システム中でディスプレイされ得、適切な抗原結合性フラグメントが選択され得る。

類似のシャフリング技法またはコンビナトリアル技法が用いられ得る（例えば、Ｓｔｅｍｍｅｒ、Ｎａｔｕｒｅ（１９９４）３７０：３８９〜３９１）。さらなる実施形態では、エラープローンＰＣＲ（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ．（１９９２）８９：３５７６〜３５８０）のような、１つ以上の選択されたＨ可変遺伝子および／またはＬ可変遺伝子のランダム変異誘発を用いて、本明細書に開示された配列由来の１つ以上の配列を保持する新規のＨ可変領域またはＬ可変領域を生成し得る。用いられ得る別の方法は、Ｈ可変遺伝子またはＬ可変遺伝子のＣＤＲに対する部位特異的変異誘発である（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ．（１９９４）９１：３８０９〜３８１３；Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．（１９９６）２６３：５５１〜５６７）。同様に、１つ以上、または３つすべてのＣＤＲが、Ｈ可変ドメインまたはＬ可変ドメインのレパートリー中にグラフト化され得、これらは、次いで、ＳＬＰＩに特異的な抗原結合性フラグメントについてスクリーニングされる。

免疫グロブリン可変ドメインの一部は、本明細書中に実質的に示されるようなＣＤＲの少なくとも１つ、および必要に応じて本明細書中に提示されるような介在フレームワーク領域を含む。この一部は、ＦＲ１およびＦＲ４のいずれかまたは両方の少なくとも約５０％、ＦＲ１のＣ末端５０％およびＦＲ４のＮ末端５０％である５０％を含み得る。可変ドメインの実質的一部のＮ末端またはＣ末端におけるさらなる残基は、天然に存在する可変ドメイン領域と通常関連しないような残基であり得る。例えば、組換えＤＮＡ技法による抗体の構築は、導入されるリンカーによってコードされるＮ末端残基またはＣ末端残基の挿入を生じて、クローニング工程またはその他の操作工程を容易にし得る。その他の操作工程は、以下にさらに詳細に論議されるように、免疫グロブリン重鎖定常領域、その他の可変ドメイン（例えば、二重特異性抗体の産生において）、またはタンパク質様ラベルを含むさらなるタンパク質配列に可変ドメインを連結するための、リンカーの導入を含む。

実施例に説明される実施形態は、Ｈ可変ドメインおよびＬ可変ドメインの「マッチする」ペアを含むが、当業者は、代替の実施形態が、Ｌ可変ドメインまたはＨ可変ドメインのいずれかからの単一のＣＤＲのみを含む抗原結合性フラグメントを含み得ることを認識する。単鎖特異的結合ドメインのいずか１つは、例えば、ＳＬＰＩに結合し得る２ドメイン特異的な抗原結合性フラグメントを形成し得る相補的ドメインをスクリーニングするために用いられ得る。このスクリーニングは、ＷＯ９２／０１０４７に開示される、いわゆる階層的二重コンビナトリアルアプローチを用いるファージディスプレイスクリーニング方法によって達成され得、そこでは、Ｈ鎖クローンまたはＬ鎖クローンのいずれかを含む個々のコロニーが他方の鎖（ＬまたはＨ）をコードするクローンの完全ライブラリーに感染するために用いられ、そして得られる２鎖特異的結合性ドメインが、記載のようなファージディスプレイ技法に従って選択される。

本明細書に記載される抗ＳＬＰＩ抗体は、別の機能的分子、例えば、別のペプチドまたはタンパク質（アルブミン、別の抗体など）、トキシン、放射線同位体、細胞傷害性薬剤または細胞増殖抑制性薬剤に連結され得る。例えば、これら抗体は、化学的架橋により、または組換え方法により連結され得る。これら抗体はまた、米国特許番号第４，６４０，８３５号；同第４，４９６，６８９号；同第４，３０１，１４４号；同第４，６７０，４１７号；同第４，７９１，１９２号；または同第４，１７９，３３７号に提示されるような様式で、種々の非タンパク質様のポリマーの１つ、例えば、ポリエチレングリコール、ポリプロピレングリコール、またはポリオキシアルキレンに連結され得る。これら抗体は、ポリマーへの共有結合によって化学的に改変され得、例えば、それらの循環半減期を増加する。それら抗体を結合する例示のポリマーおよび方法はまた、米国特許第４，７６６，１０６号；同第４，１７９，３３７号；同第４，４９５，２８５号、および同第４，６０９，５４６号に示される。

開示される抗体はまた、ネイティブパターンとは異なるグリコシル化パターンを有するように改変され得る。例えば、１つ以上の炭水化物成分が欠失され得、そして／または１つ以上のグリコシル化部位が当初の抗体に付加され得る。現在開示される抗体へのグリコシル化部位の付加は、当該技術分野で公知のグリコシル化部位コンセンサス配列を含むようにアミノ酸配列を改変することにより達成され得る。抗体上の炭水化物部分の数を増加する別の手段は、抗体のアミノ酸残基へのグリコシドの化学的結合または酵素的結合による（ＷＯ８７／０５３３０；ＣＲＣ Ｃｒｉｔ．Ｒｅｖ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．、２２：２５９〜３０６、１９８１）。抗体からの任意の炭水化物部分の除去は、化学的または酵素的に達成され得る（Ａｒｃｈ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．、２５９：５２、１９８７；Ａｎａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．、１１８：１３１、１９８１；Ｍｅｔｈ．Ｅｎｚｙｍｏｌ．、１３８：３５０、１９８７）。これら抗体はまた、検出可能な、または機能的な標識でタグ化され得る。検出可能な標識は、^１３１Ｉまたは^９９Ｔｃのような放射能標識を含み、これらはまた、従来の化学を用いて抗体に結合され得る。検出可能な標識はまた、西洋ワサビペルオキシダーゼまたはアルカリホスファターゼのような酵素標識を含む。検出可能な標識はさらに、ビオチンのような化学的成分を含み、これは、特異的な同族の検出可能な成分、例えば、標識されたアビジンへの結合を経由して検出され得る。

抗体の結合価は、結合部位における親和性および結合活性、保持時間に影響するように特注設計され得る（例えば、Ａｍ Ｈ．Ｐａｔｈｏｌ、２００２ １６０：１５９７〜１６０８；Ｊ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．２００２ ４５：２２５０〜２２５９；Ｂｒ．Ｊ．Ｃａｎｃｅｒ ２００２ ８６：１４０１〜１４１０；Ｂｉｏｍｏｌ．Ｅｎｇ．２００１ １８：９５〜１０８；Ｉｎｔ Ｊ．Ｃａｎｃｅｒ ２００２ １００：３６７〜３７４を参照のこと）。

複数特異性（二官能性）結合試薬は、本発明のＳＬＰＩ特異的配列を基に設計され得る（Ｂｉｏｍｏｌ．Ｅｎｇ．２００１ １８：３１〜４０）。例えば、２重特異的抗体または２官能性抗体は、２つの異なる重鎖／軽鎖ペアおよび２つの異なる結合部位を有する人工ハイブリッド抗体である。２重特異的抗体は、ハイブリドーマの融合またはＦａｂ’フラグメントの連結（Ｃｌｉｎ．Ｅｘｐ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１９９０、７９：３１５〜３２１；、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１９９、２１４８：１５４７〜１５５３）を含む種々の方法によって産生され得る。

このような２重特異的抗体は、周知である技法を用いて（Ｉｍｍｕｎｏｌ Ｍｅｔｈｏｄｓ １９９４、４：７２〜８１；ＷｒｉｇｈｔおよびＨａｒｒｉｓ、前述；Ｔｒａｕｎｅｃｋｅｒら、１９９２ Ｉｎｔ．Ｊ．Ｃａｎｃｅｒ（補遣）７：５１〜５２）、ＳＬＰＩに対する特異性および第２の分子に対する第２の特異性を含んで生成され得る。１つの実施形態では、第２の特異性は、重鎖活性化レセプターに対してなされ得、これには、制限されずに、ＣＤ１６またはＣＤ６４（Ｄｅｏら、１９９７ １８：１２７）またはＣＤ８９（Ｖａｌｅｒｉｕｓら、１９９７ Ｂｌｏｏｄ ９０：４４８５〜４４９２）が含まれる。このようにして調製された２重特異的抗体は、ＳＬＰＩを発現する細胞を選択的に殺傷する。

ＣＤＲ配列が、配列番号４、配列番号６、配列番号８、配列番号１３、配列番号１５、配列番号１７、配列番号２２、配列番号２４、配列番号２６、配列番号３１、配列番号３３、配列番号３５、配列番号４０、配列番号４２、配列番号４４、配列番号４９、配列番号５１、配列番号５３、配列番号５８、配列番号６０、配列番号６２、配列番号６７、配列番号６９、配列番号７１、配列番号７７、配列番号７８、配列番号７９および配列番号８０に提示される配列と実質的でない差異でのみ異なる抗体は、本発明の範囲内に包含される。代表的には、アミノ酸が、類似の電荷、疎水性、または立体化学的特徴を有する関連アミノ酸によって置換される。このような置換は、当該技術分野の当業者の技術内であり得る。ＣＤＲとは異なり、抗体の結合性質に不利に影響することなくＦＲ中でより実質的な変化がなされ得る。ＦＲへの変化は、抗原接触のためか、または結合部位を安定化するために重要である特定のフレーム残基を操作すること、定常領域のクラスまたはサブクラスを変更すること、Ｆｃレセプター結合のようなエフェクター機能を改変し得る特定のアミノ酸残基を変更すること（米国特許第５，６２４，８２１号；同第５，６４８，２６０号；Ｌｕｎｄら（１９９１）Ｊ．Ｉｍｍｕｎ．１４７：２６５７〜２６６２；Ｍｏｒｇａｎら（１９９５）Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ ８６：３１９〜３２４）、または定常領域が由来する種を変更することを含むが、これらに限定されない。

当業者は、上記に記載された誘導体および改変物がすべて排他的でなく、しかも多くのその他の改変物が、本開示の教示を考慮して当業者に自明であろうことを認識する。

（核酸、クローニングシステムおよび発現システム）
本開示は、開示される抗体をコードする単離された核酸をさらに提供する。この核酸は、ＤＮＡまたはＲＮＡを含み得、そして全部または一部が合成または組換えであり得る。本明細書で提示されるときヌクレオチド配列への参照は、文脈が他であることを要求しなければ、特定された配列をもつＤＮＡ分子を包含し、そしてＵがＴに代わって置換される特定された配列をもつＲＮＡ分子を含む。

本明細書で提供される核酸は、本明細書に開示される、ＣＤＲ、Ｈ可変ドメイン、および／またはＬ可変ドメインのコード配列を含む。

本開示はまた、本明細書に開示される、ＣＤＲをコードする核酸、Ｈ可変ドメイン、および／またはＬ可変ドメインの少なくとも１つを含む、プラスミド、ベクター、ファージミド、転写カセットまたは発現カセットの形態にある構築物を提供する。

本開示は、上記のような１つ以上の構築物を含む宿主細胞をさらに提供する。

任意のＣＤＲ（Ｈ可変ドメインまたはＬ可変ドメインのいずれかからのＣＤＲ１、ＣＤＲ２、ＣＤＲ３）、Ｈ可変またはＬ可変ドメインをコードする核酸、およびコードされた産物を作成する方法もまた提供される。この方法は、上記コードされた核酸からコードされた産物を発現する工程を包含する。発現は、上記核酸を含む組換え宿主細胞を適切な条件下で培養することによって達成され得る。発現による産生の後、Ｈ可変ドメインまたはＬ可変ドメイン、または特異的結合性メンバーが、任意の適切な技法を用いて単離そして／または精製され得、次いで適切に用いられ得る。

抗原結合性フラグメント、Ｈ可変ドメインおよび／またはＬ可変ドメインならびにコードする核酸分子およびベクターは、実質的に純粋または均一形態で、または核酸の形態の場合、必要な機能をもつポリペプチドをコードする配列以外の起源の核酸または遺伝子を含まないか、実質的に含まないで、それらの天然環境から単離そして／または精製され得る。

種々の異なる宿主細胞でポリペプチドをクローニングし、かつ発現するシステムは、当該技術分野で周知であり、抗体を産生するために適切な細胞含む（Ｇｅｎｅ Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ Ｓｙｓｔｅｍｓ、Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ、Ｆｅｒｎａｎｄｅｚら編、１９９９）。簡単に述べれば、適切な宿主細胞は、細菌、植物細胞、哺乳動物細胞、および酵母ならびにバキュロウイルスシステムを含む。異種ポリペプチドの発現のために当該技術分野で利用可能な哺乳動物細胞株は、チャイニーズハムスター卵巣細胞、ＨｅＬａ細胞、ベビーハムスター腎臓細胞、ＮＳ０マウス骨髄腫細胞、および多くのその他を含む。一般的な細菌宿主は、Ｅ．ｃｏｌｉである。本発明と適合する任意のタンパク質発現システムを用いて、開示される抗体を産生し得る。適切な発現システムはまた、トランスジェニック動物を含む（Ｇｅｎｅ Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ Ｓｙｓｔｅｍｓ、Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ、Ｆｅｒｎａｎｄｅｚら編、１９９９）。

適切なベクターは、それらが、プロモーター配列、ターミネーター配列、ポリアデニル化配列、エンハンサー配列、マーカー遺伝子を含む適切な調節配列、および必要に応じてその他の配列を含むように選択または構築され得る。ベクターは、必要に応じて、プラスミド、またはウイルス、例えば、ファージ、またはファージミドであり得る（Ｓａｍｂｒｏｏｋら、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ、２．ｓｕｐ．ｎｄ．ｅｄ．、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ、１９８９）。核酸構築物の調製における、核酸の操作のための多くの公知の技法およびプロトコール、例えば、変異誘発、配列決定、細胞中へのＤＮＡの導入および遺伝子発現、ならびにタンパク質の分析は、当該技術分野で公知である（Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ、２．ｓｕｐ．ｎｄ版、Ａｕｓｕｂｅｌら編、Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ＆Ｓｏｎｓ、１９９２）。

本発明はまた、本明細書に開示のような核酸を含む宿主細胞を提供する。なおさらなる局面は、このような核酸配列を宿主細胞中に導入する工程を包含する方法提供する。この導入は、任意の利用可能な技法を採用し得る。真核生物細胞には、適切な技法は、リン酸カルシウムトランスフェクション、ＤＥＡＥ−デキストラン、エレクトロポーレーション、リポソーム媒介トランスフェクション、およびレトロウイルスまたはその他のウイルス、例えば、ワクシニア、または昆虫細胞には、バキュロウイルスを用いる形質導入を含み得る。細菌細胞には、適切な技法は、塩化カルシウム形質転換、エレクトロポーレーションおよび細菌ファージを用いるトランスフェクションを含み得る。核酸の細胞中への導入は、例えば、遺伝子の発現のための条件下で宿主細胞を培養することにより、核酸からの発現を引き起こすか、または可能にすることが続き得る。

（使用の方法）
開示される抗ＳＬＰＩ抗体は、エラスターゼおよびカテプシンＧのような酵素のＳＬＰＩ関連阻害を調節および／または中和し得る。開示される抗体は、それらの使用の方法に依存して、ＳＬＰＩのアゴニストまたはアンタゴニストのいずれかとして作用し得る。これら抗体は、哺乳動物における、特にヒトにおける医療障害を予防、診断、または処置するために用いられ得る。本発明の抗体はまた、ＳＬＰＩまたはＳＬＰＩ発現細胞を単離するために用いられ得る。さらに、これら抗体は、異常なＳＬＰＩの発現または機能に関連する障害を罹患するリスクにあるか、それを有する被験体を処置するために用いられ得る。本発明の抗体は、このような被験体においてＳＬＰＩを検出するために用いられ得る。

本発明の抗体または抗体組成物は、治療的に有効な量で投与される。一般に、治療的に有効な量は、被験体の年齢、状態、および性別、投与の経路、ならびにこの被験体の医療状態の重篤度とともに変動し得る。抗体の治療的に有効な量は、約０．００１〜約３０ｍｇ／ｋｇ体重、好ましくは約０．０１〜約２５ｍｇ／ｋｇ体重、約０．１〜約２０ｍｇ／ｋｇ体重、または約１〜約１０ｍｇ／ｋｇ体重の範囲である。この投薬量は、必要に応じて調節され得、処置の観察される効果に適応させる。適切な用量は、処置する医師による臨床指標に基づいて選択される。これら抗体は、ボーラス用量として与えられ得、用量後に最も長い期間の間、抗体の循環レベルを最大にする。連続的注入もまた用いられ得る。

別の局面では、本発明の抗体は、ＳＬＰＩを発現する細胞への別の治療剤または細胞傷害性剤（例えば、トキシン）の送達のための標的する因子として用いられ得る。この方法は、治療剤または細胞傷害性剤に結合された、または抗体のＳＬＰＩへの結合を可能にする条件下で、抗ＳＬＰＩ抗体を投与する工程を含む。

本発明の抗体はまた、生物学的サンプル中のＳＬＰＩの存在を検出するために用いられ得る。検出されるＳＬＰＩの量は、ＳＬＰＩの発現レベルと相関し得、これは、次に、当該技術分野で公知の方法を用いて疾患、腫瘍タイプ、腫瘍量、またはステージと相関される（例えば、ＡＡＰＳ Ｌｉｇａｎｄ Ｂｉｎｄｉｎｇ Ａｓｓａｙ Ｂｉｏａｎａｌｙｔｉｃａｌ Ｆｏｃｕｓ Ｇｒｏｕｐ（ＬＢＡＢＦＧ）の勧告 Ｐｈａｒｍ Ｒｅｓ．２００３年１１月；２０（１１）：１８８５〜９００を参照のこと）。抗体を採用する検出方法は、当該技術分野で周知であり、そして、例えば、ＥＬＩＳＡ、ラジオイムノアッセイ、免疫ブロット、ウエスタンブロット、免疫蛍光、免疫沈降を含む。上記抗体は、ＳＬＰＩを検出するための１つ以上のこれら技法を取り込む診断キットで提供され得る。このようなキットは、その-他の構成要素、梱包物、指示書、またはタンパク質の検出を支援するためのその他の材料を含み得る。

これら抗体が、診断目的のために意図される場合、例えば、リガンド基（例えば、ビオチン）または検出可能なマーカー基（例えば、蛍光基、放射性同位体または酵素）でこれらを改変することが所望され得る。所望であれば、本発明の抗体は、従来技法を用いて標識され得る。適切な検出可能な標識は、例えば、蛍光発色団、発色団、放射活性原子、電子密度試薬、酵素および特異的結合パートナーを有するリガンドを含む。酵素は、代表的には、それらの活性によって検出される。例えば、西洋ワサビペルオキシダーゼは、テトラメチルベンジジン（ＴＭＢ）を、比色計で定量可能な青色色素に変換するその能力によって検出され得る。検出のために、適切な結合性パートナーは、制限されないで、ビオチンおよびアビジンまたはストレプトアビジン、ＩｇＧおよびプロテインＡ、および当該技術分野で公知の多くのレセプター−リガンドカップルを含む。その他の順列および可能性は、当業者に容易に明らかであり、そして本発明の範囲内の等価物と考えられる。

本発明の抗体は、治療薬として有効なＳＬＰＩのインヒビターを同定するためのスクリーニング方法で用いられ得る。このようなスクリーニングアッセイでは、第１の結合性混合物が、ＳＬＰＩおよび本発明の抗体を組み合わせることによって形成され；そしてこの第１の結合性混合物中の結合の量（Ｍ_０）が測定される。第２の結合性混合物がまた、ＳＬＰＩ、抗体、およびスクリーニングされるべき化合物または薬剤を組み合わせることによって形成され、そしてこの第２の結合性混合物中の結合の量（Ｍ_１）が測定される。試験されるべき化合物は、別の抗ＳＬＰＩ抗体であり得る。上記第１および第２の結合性混合物中の結合の量は、次いで、例えば、Ｍ_１／Ｍ_０比を算出することにより比較される。上記化合物または薬剤は、第１の結合性混合物と比較したとき、第２の結合性混合物中の結合における減少が観察されるとき、ＳＬＰＩ関連応答を調節し得ると考えられる。結合性混合物の処方および最適化は、当該技術分野のレベル内にあり、このような結合混合物はまた、結合を増大または最適化するために必要な緩衝液および塩を含み得、そしてさらなるコントロールアッセイが、本発明のスクリーニングアッセイ中に含められ得る。ＳＬＰＩ−抗体結合を、少なくとも約１０％（すなわち、Ｍ_１／Ｍ_{０＜０．９}）だけ、好ましくは約３０％より大きく低減することが見出された化合物が、それ故、同定され、そして次に、所望であれば、以下に記載のように、その他のアッセイまたは動物モデルで障害を改善する能力についてスクリーニングされる。ＳＬＰＩと抗体との間の結合の強度は、例えば、酵素連結免疫吸着アッセイ（ＥＬＩＳＡ）、ラジオイムノアッセイ（ＲＩＡ）、表面プラスモン共鳴を基礎にする技術（例えば、Ｂｉａｃｏｒｅ）を用いて検出され得、これらすべては当該技術分野で周知の技法である。

上記化合物は、次に、実施例に記載のようにインビトロで試験され得る。

例えば、動物試験に従って決定されたような予備的用量、およびヒト投与のための投薬量のスケーリングは、当該技術分野で受容された慣行に従って実施される。毒性および治療的効目は、細胞培養または実験動物における標準的な薬学的手順によって決定され得る。細胞培養アッセイまたは動物研究から得られたデータは、ヒトにおける使用のための投薬量の範囲を処方することで用いられ得る。１つの動物モデルで達成された治療的に有効な投薬量は、当該技術分野で公知の転換係数を用いて、ヒトを含む別の動物における使用のために変換され得る（例えば、Ｆｒｅｉｒｅｉｃｈら（１９６６）Ｃａｎｃｅｒ Ｃｈｅｍｏｔｈｅｒ．Ｒｅｐｏｒｔｓ、５０（４）；２１９〜２４４）。

（薬学的組成物および投与の方法）
本開示は、抗ＳＬＰＩ抗体を含む組成物を提供する。このような組成物は、薬学的使用および患者への投与に適切であり得る。これらの組成物は、代表的には、本発明の１つ以上の抗体および薬学的に受容可能な賦形剤を含む。語句「薬学的に受容可能な賦形剤」は、薬学的投与と適合する、任意およびすべての溶媒、分散媒体、コーティング、抗細菌剤および抗真菌剤、等張剤、および吸収遅延剤などを含む。薬学的に活性な物質のためのこのような媒体および薬剤の使用は、当該技術分野で周知である。これら組成物はまた、補助的、付加的、または増大された治療機能を提供するその他の活性化合物を含み得る。これら薬学的組成物はまた、コンテナ、パック、またはディスペンサー中に、投与のための指示書とともに含まれ得る。

本発明の薬学的組成物は、その意図される投与経路と適合されるように処方される。投与を達成するための方法は、当業者に公知である。この投与は、例えば、静脈内、腹腔内、筋肉内、腔内、皮下または経皮的であり得る。局所的または経口的に投与され得るか、または粘膜を横切って伝達し得る組成物を得ることもまた可能であり得る。

皮内または皮下適用のために用いられる溶液または懸濁液は、代表的には、以下の１つ以上の成分を含む：注射用水のような滅菌希釈剤、生理食塩水溶液、不揮発性動物油、ポリエチレングリコール、グリセリン、プロピレングリコール、またはその他の合成溶媒；ベンジルアルコールまたはメチルパラベンのような抗細菌剤；アスコルビン酸または亜硫酸ナトリウムのような抗酸化剤；エチレンジアミンテトラ酢酸のようなキレート剤；酢酸、クエン酸またはリン酸のような緩衝液；および塩化ナトリウムまたはデキストロースのような浸透圧の調節のための薬剤。ｐＨは、塩酸または水酸化ナトリウムのような酸または塩基で調節され得る。このような調製物は、ガラスまたはプラスチックで作製されるアンプル、使い捨てシリンジまたは複数用量バイアル中に封入され得る。

注射のために適切な薬学的組成物は、滅菌水溶液または分散物、および滅菌注射可能な溶液または分散物の即座の調製のための滅菌粉末を含む。静脈内投与には、適切なキャリアは、生理食塩水、静菌水、Ｃｒｅｍｏｐｈｏｒ ＥＬ（ＢＡＳＦ、Ｐａｒｓｉｐｐａｎｙ、Ｎ．Ｊ．）またはリン酸緩衝化生理食塩水（ＰＢＳ）を含む。すべての場合で、上記組成物は、滅菌されなければならず、そして容易にシリンジで扱えるような程度まで流体であるべきである。製造および貯蔵の条件下で安定であるべきであり、そして細菌およびカビのような微生物の汚染作用に対して保存されなければならない。微生物の作用の予防は、種々の抗細菌および抗真菌薬剤、例えば、パラベン、クロロブタノール、フェノール、アスコルビン酸、チメロザルなどにより達成され得る。多くの場合で、組成物中に、等張剤、例えば、糖；マンニトールのようなポリアルコール、ソルビトール、および塩化ナトリウムを含むことが好ましい。キャリアは、例えば、水、エタノール、ポリオール（例えば、グリセロール、プロピレングリコール、および液体ポリエチレングリコールなど）、およびそれらの適切な混合物を含む溶媒または分散媒体であり得る。適切な流動性は、例えば、レシチンのようなコーティングの使用によって、分散物の場合、必要な粒子サイズの維持により、および／または界面活性剤の使用により維持され得る。注射可能な組成物の延長された吸収は、吸収を遅延する薬剤、例えば、モノステアリン酸アルミニウム、およびゼラチンを組成物中に含めることによりもたらされ得る。

経口組成物は、一般に、不活性希釈剤または食用キャリアを含む。それらは、ゼラチンカプセル中に封入されるか、または錠剤中に圧縮され得る。経口投与には、上記抗体は、賦形剤と組み合わせられ得、そして錠剤、トローチ、またはカプセルの形態で用いられる。薬学的に適合する結合剤、および／またはアジュバント材料が、上記組成物の一部として含められ得る。これら錠剤、ピル、カプセル、トローチなどは、以下の成分、または類似の性質の化合物のいずれかを含み得る；微結晶セルロース、トラガントガムまたはゼラチンのようなバインダー；スターチまたはラクトースのような賦形剤、アルギン酸、Ｐｒｉｍｏｇｅｌ、またはコーンスターチのような崩壊剤；ステアリン酸マグネシウムまたはＳｔｅｒｏｔｅｓのような滑沢剤；コロイド状二酸化ケイ素のような流動剤；スクロースまたはサッカリンのような甘味剤；またはペパーミント、サリチル酸メチル、またはオレンジ香料のような香味料。

全身投与もまた、経粘膜手段または経皮手段によってであり得る。経粘膜または経皮投与には、透過されるべき障壁に適切な浸透剤が処方物中で用いられる。このような浸透剤は、当該技術分野で一般に知られ、例えば、界面活性剤、胆汁塩、およびフシジン酸誘導体を含む。経粘膜投与は、例えば、ロゼンジ、鼻スプレー、吸入器または坐薬の使用により達成され得る。例えば、Ｆｃ部分を含む抗体の場合、組成物は、腸、口、または肺（例えば、米国特許第６，０３０，６１３号に記載されるようなＦｃＲｎレセプター−媒介経路を経由して）中の粘膜を横切って伝達し得る。経皮投与には、上記活性化合物は、当該技術分野で一般に知られるように、軟膏（ｏｉｎｔｍｅｎｔ）、軟膏（ｓａｌｖｅ）、ゲル、またはクリームに処方され得る。吸入による投与には、上記抗体は、適切な推進剤、例えば、二酸化炭素のようなガスを含む加圧コンテナまたはディスペンサーあるいは噴霧器からのエアロゾルスプレーの形態で送達され得る。

特定の実施形態では、現在開示される抗体は、制御放出処方物のような身体からの急速な排出に対して上記化合物を保護するキャリアとともに調製され、これには、インプラントおよびマイクロカプセル化送達システムが含まれる。生体分解性、生体適合性ポリマーが用いられ得、例えば、エチレン酢酸ビニル、ポリ無水物、ポリグリコール酸、コラーゲン、ポリオルトエステル、およびポリ乳酸が含まれる。このような処方物の調製のための方法は、当業者に明らかである。現在開示される抗体を含むリポソーム懸濁物もまた、薬学的に受容可能なキャリアとして用いられ得る。これらは、例えば、米国特許第４，５２２，８１１号に記載のような、当業者に公知の方法に従って調製され得る。

投与の容易さ、および投薬量の均一性のために投薬量単位形態にある経口組成物または非経口組成物を処方することが有利であり得る。本明細書で用いられるとき、用語「投薬量単位形態」は、処置されるべき被験体のための単位の投薬量として適した物理的に別個の単位をいい；各単位は、必要な薬学的キャリアとともに所望の治療効果を生成するように算出された所定量の活性化合物を含む。

本発明の組成物の毒性および治療的効目は、例えば、ＬＤ_５０（集団の５０％まで致死的な用量）およびＥＤ_５０（集団の５０％で治療的に有効な用量）を決定するために、細胞培養または実験動物における標準的な薬学的手順によって決定され得る。毒性と治療的効果との間の用量比は治療指標であり、そしてそれは、比ＬＤ_５０／ＥＤ_５０として表され得る。大きな治療指標を示す組成物が好ましい。

本発明で用いられる任意の組成物について、治療的に有効な用量は、最初、細胞培養アッセイから推定され得る。適切なバイオアッセイの例は、ＤＮＡ複製アッセイ、試験管内腫瘍細胞感受性試験、および、例えば、実施例に記載されるようなその他のアッセイを含む。この細胞培養アッセイおよび動物研究から得られたデータは、ヒトにおける投薬量の範囲を処方する際に用いられ得る。用量は、ＩＣ_５０を含む循環血漿濃度範囲（すなわち、症状の最大値の半分の阻害を達成する抗体の濃度）を達成するように動物モデル中で処方され得る。血漿中の循環レベルは、例えば、高速液体クロマトグラフィーによって測定され得る。任意の特定の投薬量の効果は、適切なバイオアッセイによってモニターされ得る。この投薬量は、好ましくは、毒性がほとんどないか、またはない循環濃度の範囲内にある。この投薬量は、採用される投薬量形態、および利用される投与の経路に依存して変動し得る。

抗体は、当該技術分野で周知である技法を利用して免疫トキシンになるように改変され得る（Ｖｉｔｅｔｔａ １９９３、Ｉｍｍｕｎｏｌ Ｔｏｄａｙ １４：２５２；米国特許第５，１９４，５９４号）。細胞傷害性免疫複合体は当該技術分野で公知であり、そして治療剤として用いられている。このような免疫複合体は、例えば、メイタンシノイド（米国特許第６，４４１，１６３号）、チューブリン重合インヒビター、アウリスタチン（Ｍｏｈａｍｍａｄら、１９９９ Ｉｎｔ．Ｊ．Ｏｎｃｏｌ １５（２）：３６７〜７２；Ｄｏｒｏｎｉｎａら、２００３ Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ２１（７）：７７８〜７８４）、ドラスタチン誘導体（Ｏｇａｗａら、２００１ Ｔｏｘｉｃｏｌ Ｌｅｔｔ．１２１（２）：９７〜１０６）２１（３）７７８〜７８４）、Ｍｙｌｏｔａｒｇ（登録商標）（Ｗｙｅｔｈ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ、Ｐｈｉｌｉｄｅｌｐｈｉａ、ＰＡ）；メイタンシノイド（ＤＭ１）、タキサンまたはメルタシン（ＩｍｍｕｎｏＧｅｎ Ｉｎｃ．）を用い得る。

抗ＳＬＰＩ抗体を利用するイムノラジオ薬物は、当該技術分野で周知である技法を利用して調製され得る（Ｊｕｎｇｈａｎｓら、Ｃａｎｃｅｒ Ｃｈｅｍｏｔｈｅｒａｐｙ ａｎｄ Ｂｉｏｔｈｅｒａｐｙ ６５５〜６８６（第２版、ＣｈａｆｎｅｒおよびＬｏｎｇｏ編、Ｌｉｐｐｉｎｃｏｔｔ Ｒａｖｅｎ（１９９６）；米国特許第４，６８１，５８１号、同第４，７３５，２１０号、同第５，１０１，８２７号、同第５，１０２，９９０号（ＲＥ ３５，５００）、同第５，６４８，４７１号、および同第５，６９７，９０２号）。イムノトキシンおよび放射標識された抗体分子の各々は、ＳＬＰＩを発現する細胞を選択的に殺傷する。放射標識は、当該技術分野では公知であり、そして診断的または治療的放射性免疫複合体のために用いられている。放射性標識の例は、制限されずに以下を含む：放射線同位体または放射性核種（例えば、^３Ｈ、^１４Ｃ、^１５Ｎ、^３５Ｓ、^９０Ｙ、^９９Ｔｃ、^１１１Ｉｎ、^１２５Ｉ、^１３１Ｉ、^１７７Ｌｕ、レニウム−１８６、レニウム−１８８、サマリウム−１５３、銅−６４、スカンジウム−４７）。例えば、放射性免疫複合体で案内される臨床診断で用いられている放射性核種は、制限されないで：^１３１Ｉ、^１２５Ｉ、^１２３Ｉ、^９９Ｔｃ、^６７Ｇａ、および^１１１Ｉｎを含む。抗体はまた、標的化免疫治療における潜在的使用のために種々の放射性核種で標識されている（Ｐｅｉｒｅｒｓｚら、１９８７を参照のこと）。これらの放射性核種は、例えば、^１８８Ｒｅおよび^１８６Ｒｅならびに^９０Ｙ、そしてより少ない程度で^１９９Ａｕおよび^６７Ｃｕ．Ｉ−（１３１）を含む（例えば、米国特許第５，４６０，７８５号を参照のこと）。放射線治療キレーターおよびキレーター結合体は当該技術分野で公知である（米国特許第４，８３１，１７５号、同第５，０９９，０６９号、同第５，２４６，６９２号、同第５，２８６，８５０号、および同第５，１２４，４７１号）。

実施された実験および達成された結果を含む以下の実施例は、例示の目的のみに提供され、そして本発明を制限すると解釈されるべきではない。

（実施例１：ヒト抗体の生成）
完全なヒト抗体を生成するための好ましい方法は、ヒト重鎖遺伝子座およびκ軽鎖遺伝子座の２４５ｋｂおよび１９０ｋｂサイズの生殖系列形態フラグメントを含むように操作されているマウスのＸｅｎｏＭｏｕｓｅ（登録商標）系統を用いる（Ｇｒｅｅｎら、１９９４ Ｎａｔｕｒｅ Ｇｅｎｅｔｉｃｓ ７：１３〜２１；Ｍｅｎｄｅｚら、１９９７ Ｎａｔｕｒｅ Ｇｅｎｅｔｉｃｓ １５：１４６〜１５６；ＧｒｅｅｎおよびＪａｋｏｂｏｖｉｔｓ、１９９８ Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１８８：４８３〜４９５；米国特許第６，６１２，９６３号、同第６，１５０，５８４号、同第６，１１４，５９８号、同第６，０７５，１８１号、および同第５，９３９，５９８号）。代替のアプローチ、ミニ遺伝子座アプローチでは、異種Ｉｇ遺伝子座が、Ｉｇ遺伝子由来の断片（ｐｉｅｃｅ）（個々の遺伝子）を含めることにより模倣される。従って、１つ以上のＶ_Ｈ遺伝子、１つ以上のＤ_Ｈ遺伝子、１つ以上のＪ_Ｈ遺伝子、μ定常領域、および第２の定常領域（好ましくは、γ定常領域）が動物中への挿入のための構築物に形成される（Ｔａｙｌｅｒら、１９９２、Ｃｈｅｎら、１９９３、Ｔｕａｉｌｌｏｎら、１９９３、Ｃｈｏｉら、１９９３、Ｌｏｎｂｅｒｇら（１９９４）、Ｔａｙｌｏｒら（１９９４）、およびＴｕａｉｌｌｏｎら（１９９５）、Ｆｉｓｈｗｉｌｄら（１９９６）；米国特許第５，５４５，８０７号、同第５，５４５，８０６号、同第５，６２５，８２５号、同第５，６２５，１２６号、同第５，６３３，４２５号、同第５，６６１，０１６号、同第５，７７０，４２９号、同第５、７８９，６５０号、同第５，８１４，３１８号、同第５，８７７，３９７号、同第５，８７４，２９９号、同第６，２５５，４５８号、同第５，５９１，６６９号、同第６，０２３，０１０号、同第５，６１２，２０５号、同第５，７２１，３６７号、同第５，７８９，２１５号、同第５，６４３，７６３号、同第５，９８１，１７５号）。λκＸｅｎｏＭｏｕｓｅ（登録商標）がλのＶ領域を利用して抗ＳＬＰＩ抗体を生成するために用いられ得ることが理解される。このような抗体は本発明の範囲内である。

（実施例２：動物の免疫化および選択）
ＳＬＰＩに特異的なモノクローナル抗体を、組換えヒトＳＬＰＩ（Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ、Ｍｉｎｎｅａｐｏｌｉｓ、ＭＮ、カタログ番号２６０−ＰＩ）を用いて表３に示されるスケジュールに従って、ＸｅｎｏＭｏｕｓｅ（登録商標）マウス（ＸｅｎｏＭｏｕｓｅ（登録商標）系列ＸＭＧ２、Ａｂｇｅｎｉｘ，Ｉｎｃ．Ｆｒｅｍｏｎｔ、ＣＡ）を逐次的に免疫化することにより開発した。例えば、初回免疫処置は、ＴｉｔｅｒＭａｘ（登録商標）Ｇｏｌｄと１：１（ｖ／ｖ）で混合された１０μｇの抗原を用いた。引き続く追加免疫処置は、発熱物質を含まないＤ−ＰＢＳ中、１００μｇのミョウバンゲルと、そしてしばしば５０％のＴｉｔｅｒＭａｘ（登録商標）Ｇｏｌｄと１：１（ｖ／ｖ）で混合された１０μｇの抗原でなされ、そして次に最終の追加免疫はＰＢＳ中の１０μｇの抗原であった。特に、各マウスは、足蹠における皮下注射によって免疫化した。動物は、０日、３日、８日、１３日、１７日、１８日、２１日、２４日、および２７日に免疫化した。動物を１６日および２３日に採血し、抗ＳＬＰＩ力価を決定するために血清を得た。

抗ＳＬＰＩ抗体力価は、間接的ＥＬＩＳＡによって決定された。要約すれば、ビオチン化ＳＬＰＩ（０．５μｇ／ｍＬ）を、Ｓｉｇｍａ Ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ Ｃｌｅａｒ Ｐｏｌｙｓｔｙｒｅｎｅ ９６ウェルＥＬＩＳＡプレート上に３０分間室温（ＲＴ）でコーティングした。次いで、これらプレートを４回手動で洗浄し、そしてペーパータオル上で軽く叩いて乾燥した。ＳＬＰＩ免疫化から、または未処理のＸｅｎｏＭｏｕｓｅ（登録商標）動物のＸｅｎｏＭｏｕｓｅ（登録商標）動物血清を、１％脱脂ミルク／ＰＢＳ中、１：５００の初期希釈から二連で１：２希釈で、最後のウェルはブランクとして残し、６ウェルまで滴定した。各ウェルについては５０μｌを用いた。これらプレートを１時間インキュベートし、次いで４回洗浄した。５０μｌのヤギ抗ヒトＩｇＧ Ｆｃ特異的ＨＲＰ結合体化抗体（０．４μｇ／ｍｌ）を各ウェルに添加し、そして１時間室温でインキュベートした。これらプレートを５回蒸留水（ｄＨ_２Ｏ）で洗浄した。これらプレートを、ＴＭＢの添加で３０分間発色させ、そしてＥＬＩＳＡを１Ｍのリン酸の添加により停止した。個々のＸｅｎｏＭｏｕｓｅ（登録商標）動物の特異的力価を、４５０ｎｍでの吸光度から決定した（表２）。力価は、ＳＬＰＩまたはストレプトアビジンいずれかへの血清の相互希釈を表し、そしてそれ故、数が高いほど、体液免疫応答が大きい。リンパ節を、免疫化されたＸｅｎｏＭｏｕｓｅ（登録商標）動物からＸｅｎｏＭａｘ（登録商標）抗体生成について回収し、ＳＬＰＩ対ストレプトアビジンに対する特異的力価は表４に示されるようであった。

（実施例３：ＸｅｎｏＭａｘ（登録商標）抗体生成）
Ｂ細胞の培養および選択
回収された動物からのＢ細胞を培養し、そしてＳＬＰＩ特異的抗体を分泌するＢ細胞を以前に記載されるように単離した（Ｂａｂｃｏｏｋら、１９９６ Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ、９３：７８４３〜７８４８）。上記のように実施されたＥＬＩＳＡは、５００細胞／ウェルまたは１５０細胞／ウェルで培養した５０のプレートからの一次ＳＬＰＩ特異的ウェルを識別するために用いた。表５に示されるように、５５のウェル（ＯＤ≧０．３）が、バックグラウンド（０．１）を有意に超えるＯＤを示した。

これらのデータは、非常に低い頻度のウェルを示し、そしてこれらウェルが、すべての細胞希釈で抗原特異性についてモノクローナルであったコーティングを示した。表６に示されるように、これら５５の陽性のウェルは、ＳＬＰＩへの結合について再スクリーニングされ、そして３３のみのウェルが抗原特異的抗体を含むことが見出された。これら３３のウェルの結合は、次いで、制限抗原分析によってランク付けられた。

（実施例４：制限抗原分析）
制限抗原分析は、Ｂ細胞培養上清液中の抗原特異的抗体を親和性ランク付けする方法である。極低濃度の抗原の存在下で、最高の親和性の抗体のみが、平衡にある任意の検出可能なレベルで抗原に結合し得る（２００３年１０月２日に公開された米国特許公開２００３０１８６３２７）。ビオチン化ＳＬＰＩがストレプトアビジンプレート上に室温で３０分間コーティングされ、８００ｎｇ／ｍｌから５０ｎｇ／ｍｌまで１：２で滴定した。各プレートを、０．０５％アジ化ナトリウムを含む４６μｌ／ウェルのＰＢＳ中の１％ミルク、次いで４μｌ／ウェルのＢ細胞上清液を添加する前にｄＨ_２Ｏで５回洗浄した。シェーカー上ＲＴで２２時間後、これらプレートをｄＨ_２Ｏで再び５回洗浄した。１μｌ／ｍｌのヤギ抗ヒト（Ｆｃ）−ＨＲＰを、５０μｌ／ウェルで添加した。ＲＴで１時間後、これらプレートを再びｄＨ_２Ｏで５回洗浄し、そして５０μｌ／ウェルのＴＭＢ基質を添加した。反応は、５０μｌの１Ｍリン酸の各ウェルへの添加により停止し、そしてこれらプレートを４５０ｎｍ波長で読み取った。結果は表７に示される。４２Ｃ１、４３Ｈ７、３５Ｆ１および９Ｇ１２を、さらなる評価およびクローニングのために選択した。

（実施例５：中和および結合阻害アッセイ）
抗体を、ＳＬＰＩ活性を阻害する能力についてスクリーニングした。このアッセイは、キモトリプシンへのＳＬＰＩ結合および抗体の存在または不在下のキモトリプシン酵素活性について得られる阻害を評価することを含む。ビオチン化ウシキモトリプシン（５μｇ／ｍｌ）を、ストレプトアビジンでコーティングされたプレートとＲＴで３０分間インキュベートした。各プレートを、抗ＳＬＰＩ抗体混合物（１００ｍＭ Ｔｒｉｓ、１０ｍＭ ＣａＣｌ_２および０．１％ＨＳＡ ｐＨ７．５中に再構築されたＳＬＰＩの３０μｌを、試験されるモノクローナル抗体上清液の２０μｌと混合；最終濃度ＳＬＰＩ６０ｎｇ／ｍｌ；ＲＴで１時間インキュベート）の添加の前に、ｄＨ_２Ｏで５回洗浄し、そしてプレートを１時間インキュベートした。プレートをｄＨ_２Ｏで５回洗浄し、次いで、５０μｌのポリクローナルヤギ抗ＳＬＰＩ（Ｒ＆Ｄから購入）と１μｇ／ｍｌ／ウェルで１時間インキュベートした。洗浄後、５０μｌのウサギ抗ヤギＨＲＰ結合体化抗体／ウェルを添加し、そして１時間インキュベートした。洗浄後、５０μｌのＴＭＢ基質／ウェルを添加した。反応は、５０μｌの１Ｍリン酸／ウェルの添加により停止した。プレートを波長４５０ｎｍで読み取った。結果を表８に示す。

中和は、各ウェルのＯＤをとり、そしてそれを、添加された上清液のないコントロールウェルによって判断されるように最大の達成可能なＯＤと比較することによって算出した。

（実施例６：Ａｂの単離）
ＳＬＰＩ特異的溶血プラークアッセイ：
ヒツジ赤血球細胞（ＳＲＢＣ）のビオチン化。ＳＲＢＣを２５％ストックとしてＲＰＭＩ培地中に保存する。２５０μｌのＳＲＢＣパック化細胞ペレットを１．０ｍｌのストックからこれら細胞を遠心分離すること、および上清液を除去することによって調製した。この細胞ペレットを４．７５ｍｌのＰＢＳ ｐＨ８．６中で再懸濁した。別個の５０ｍｌチューブに、２．５ｍｇのＳｕｌｆｏ−ＮＨＳビオチンを４５ｍｌのｐＨ８．６のＰＢＳ中に完全に溶解し、そして５ｍｌのＳＲＢＣを添加し、そしてこのチューブをＲＴで１時間回転した。ＳＲＢＣを３０００ｇで５分間遠心分離し、上清液を棄て、そして細胞を３回、２５ｍｌのＰＢＳ ｐＨ７．４で洗浄し、４．７５ｍｌの免疫細胞培地（１０％ＦＣＳを補填したＲＰＭＩ １６４０）を添加し、Ｂ−ＳＲＢＣを再懸濁した（５％Ｂ−ＳＲＢＣストック）。ストックは、４℃で保存した。

Ｂ−ＳＲＢＣのストレプトアビジン（ＳＡ）コーティング。１ｍｌの５％Ｂ−ＳＲＢＣからのＢ−ＳＲＢＣ細胞をペレット化し、１．０ｍｌのＰＢＳ ｐＨ７．４中で２回洗浄し、微量遠心分離機中８０００ｒｐｍ（６８００ｒｃｆ）パルススピンで再びペレット化し、そしてｐＨ７．４のＰＢＳの１．０ｍｌ中で再懸濁し、５％（ｖ／ｖ）の最終濃度を得た。１０ｍｇ／ｍｌのストレプトアビジン（ＣａｌＢｉｏｃｈｅｍ、Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ、ＣＡ）ストック溶液の１０μｌを添加し、そしてチューブを混合し、そしてＲＴで２０分間回転した。洗浄工程を繰り返し、そしてＳＡ−ＳＲＢＣを、１ｍｌ ＰＢＳ ｐＨ７．４中に再懸濁した（５％（ｖ／ｖ））。

ＳＡ−ＳＲＢＣのＳＬＰＩコーティング。ＳＡ−ＳＲＢＣを１０μｇ／ｍｌのビオチン化ＳＬＰＩでコーティングし、混合し、そしてＲＴで２０分間回転した。このＳＲＢＣは、上記のように１．０ｍｌのｐＨ７．４のＰＢＳで２回洗浄した。ＳＬＰＩでコーティングされたＳＲＢＣは、ＲＰＭＩ（＋１０％ＦＣＳ）中に５％（ｖ／ｖ）の最終濃度に再懸濁した。

免疫蛍光（ＩＦ）によるＳＬＰＩ−ＳＲＢＣの量の決定。１０μｌの５％ＳＡ−ＳＲＢＣおよび１０μｌの５％ＳＬＰＩでコーティングされたＳＲＢＣを、各々４０μｌのＰＢＳを含む別個のチューブに添加した。コントロールのヤギ抗ＳＬＰＩ抗体を、４０μｇ／ｍｌのＳＲＢＣの各サンプルに添加した。これらチューブをＲＴで２５分間回転し、そしてこれら細胞を次いで３回１００μｌのＰＢＳで洗浄し、そして５０μｌのＰＢＳ中に再懸濁し、Ａｌｅｘａ４８８（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｐｒｏｂｅｓ、Ｅｕｇｅｎｅ、ＯＲ）に結合体化した４０μｇ／ｍＬのＲｂ抗ヤギＩｇＧ Ｆｃ抗体とインキュベートした。これらチューブをＲＴで２５分間回転し、細胞を、１００μｌのＰＢＳで洗浄し、そして１０μｌのＰＢＳ中に再懸濁した。１０μｌの染色細胞を清澄なガラス顕微鏡スライド上にスポットし、ガラスカバースリップで覆い、蛍光下で観察し、そして蛍光強度について０〜４のスケールでスコア付けした。

ブラズマ細胞の調製。目的の免疫グロブリンを分泌するＢ細胞クローンを含むとして先に同定された単一のミクロ培養ウェルを、回収し、そして新鮮チューブに移した（最終容量約５００〜７００μｌ）。細胞を、１５００ｒｐｍ（２４０ｒｃｆ）で２分間室温で遠心分離し、次いで、このチューブを１８０゜回転し、そして再び１５００ｒｐｍで２分間遠心分離した。凍結媒体を流し出し、そして免疫細胞を１００μｌのＲＰＭＩ（１０％ＦＣＳ）中に再懸濁し、次いで遠心分離した。ＲＰＭＩ（１０％ＦＣＳ）でのこの洗浄を繰り返し、そして細胞を６０μｌのＲＰＭＩ（ＦＣＳ）中に再懸濁し、そして使用直前まで氷上に保存した。

プラークアッセイ。細胞の６０μｌサンプルを、各々６０μｌのＳＬＰＩでコーティングされたＳＲＢＣ（５％ｖ／ｖストック）、ＲＰＭＩ（ＦＣＳ）中に調製された４×モルモット補体（Ｓｉｇｍａ、Ｏａｋｖｉｌｌｅ、ＯＮ）ストック、および４×増強血清ストック（ＲＰＭＩ（ＦＣＳ）中１：９００）と混合した。この混合物（３〜５μｌ）をシリコーンエッジ調製されたガラススライド（ＳｉｇｍａＣｏａｔ、Ｓｉｇｍａ、Ｏａｋｖｉｌｌｅ、ＯＮ）上にスポットし、非希釈パラフィンオイルで被覆し、そして３７℃で最低４５分間インキュベートした。

結果。ＳＲＢＣのＳＬＰＩコーティングは、免疫蛍光顕微鏡法によって定性的に決定し、そしてコーティングを検出するためのコントロールのヤギ抗ＳＬＰＩポリクローナル抗体で、二次検出試薬単独（０／４）に比較して非常に高い（４／４）ことが見出された。ストレプトアビジンでコーティングされたのみであった赤血球細胞に対し、コントロールのヤギ抗ＳＬＰＩ抗体を用いて検出される信号はなかった（０／４）。これらの赤血球細胞は、次いで、ウェル４２Ｃ１、４３Ｈ７、９Ｇ１２および３５Ｆ１から抗原特異的プラズマ細胞を識別するために用いられた。抗原特異的プラズマ細胞を救済するための顕微操作の後、可変領域遺伝子をコードする遺伝子は、単一プラズマ細胞に対するＲＴ−ＰＣＲによって救済された。

（実施例７：ＳＬＰＩ抗体の発現）
単一のプラズマ細胞の単離の後、ｍＲＮＡを抽出し、そして逆転写酵素ＰＣＲを用いてｃＤＮＡを生成した。可変重鎖および可変軽鎖をコードするｃＤＮＡを、ポリメラーゼ連鎖反応を用いて特異的に増幅した。可変重鎖領域を、ｐｃＤＮＡ３．１＋／Ｈｙｇｒｏ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、Ｂｕｒｌｉｎｇｔｏｎ、ＯＮ）の多重クローニング部位中にヒトＩｇＧ２の定常領域をクローニングすることにより生成したＩｇＧ２発現ベクター中にクローン化した。可変軽鎖領域は、ｐｃＤＮＡ３．１＋／Ｎｅｏ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、Ｂｕｒｌｉｎｇｔｏｎ、ＯＮ）の多重クローニング部位中にヒトＩｇＫの定常領域をクローニングすることにより生成したＩｇＫ発現ベクター中にクローン化した。上記重鎖発現ベクターおよび軽鎖発現ベクターを、次いで、７０％コンフルエントのヒト胎児腎臓２９３（ＨＥＫ２９３）細胞の６０ｍｍディシュに同時リポフェクションし、そしてトランスフェクトされた細胞を２４時間インキュベートし、組換え抗体を分泌した。上清液（３ｍＬ）をＨＥＫ２９３細胞から回収し、そしてインタクトな抗体の分泌およびＳＬＰＩへの結合をＥＬＩＳＡで試験した。分泌を検出するために、９６ウェルプレートを２μｇ／ｍＬのヤギ抗ヒトＩｇＧ Ｈ＋Ｌで一晩コーティングした。ＳＬＰＩバインダーの検出には、ストレプトアビジンプレートを、ビオチン化ヒトＳＬＰＩ（０．５μｇ／ｍＬ）で一晩４℃でコーティングした。これらプレートをｄＨ_２Ｏで５回洗浄した。非希釈ミニリポフェクション上清液からの７ウェルについて１：２滴定された組換え抗体を添加し、インキュベートし、そしてこれらプレートをｄＨ_２Ｏで５回洗浄した。ヤギ抗ヒトＩｇＧ Ｆｃ特異的ＨＲＰ結合体化抗体を１μｇ／ｍＬの最終濃度で添加し、ＲＴで１時間インキュベートし、そしてこれらプレートを、先のように洗浄した。プレートを、ＴＭＢの添加で３０分間発色し、そして反応は、１Ｍのリン酸の添加によって停止した。各ＥＬＩＳＡプレートを分析して、４５０ｎｍで各ウェルの光学的密度を決定した。結果は表９に示される。

（実施例８：抗ＳＬＰＩ抗体の構造分析）
表９に示された抗体について可変重鎖および可変軽鎖を配列決定し、それらのＤＮＡおよびタンパク質配列を決定した。

可変重鎖ヌクレオチド配列を分析し、ＶＨファミリー、Ｄ領域配列およびＪ領域配列を決定した。これら配列を次いで、翻訳し、一次アミノ酸配列を決定し、そして生殖系列Ｖ_Ｈ、ＤおよびＪ領域配列と比較し、体細胞過剰変異を評価した。抗ＳＬＰＩ抗体の選択された生殖系列配列を表１８に示す。

抗ＳＬＰＩ抗体重鎖Ｖ領域の一次アミノ酸配列は、上記の表１０、１２、１４および１６に示される。軽鎖Ｖ領域アミノ酸配列は、上記の表１１、１３、１５および１７に示される。

（実施例８：抗ＳＬＰＩ抗体のドメイン分析）
免疫グロブリン鎖の可変（Ｖ）領域は、複数の生殖系列ＤＮＡセグメントによってコードされ、これらは、Ｂ細胞個体発生の間に、機能的可変領域（Ｖ_ＨＤＪ_ＨまたはＶ_ＫＪ_Ｋ）に連結される。ＳＬＰＩに対する抗体応答の分子多様性および遺伝的多様性を詳細に研究した。ＳＬＰＩに特異的な４つの個々の抗体の分析は、２つの生殖系列ＶＨ遺伝子、Ｖ_Ｈ４−３１およびＶ_Ｈ３−３３について優勢を示した（表１８）。さらに、Ｖ_Ｈ４−３１生殖系列遺伝子は、Ｊ_Ｈ４ｂ生殖系列Ｊ領域と優先的に対になり、そしてＶ_Ｈ３−３３生殖系列遺伝子は、Ｊ_Ｈ６ｂ生殖系列Ｊ領域と優先的に対となった。表１８に示されるように、ＳＬＰＩに対する抗体は、Ｌ２Ｖ_Ｋ３およびＡ２Ｖ_Ｋ２軽鎖生殖系列遺伝子に対する優先度を示し、両者はＪ_Ｋ１軽鎖生殖系列遺伝子と優先的に対となった。

（エピトープビニングおよびＢｉａＣｏｒｅ（登録商標）親和性決定）
（エピトープビニング）
本明細書に記載される特定の抗体は、米国特許出願公開第２００３０１５７７３０号に記載されるプロトコールに従って、「ビニングされる（ｂｉｎｎｅｄ）」。ＭｘｈＩｇＧ結合体化ビーズが、一次抗体への結合のために調製される。必要な上清液の容量は、以下の式を用いて算出される：（ｎ＋１０）×５０μＬ（ここでｎ＝プレート上のサンプルの総数）。濃度が既知である場合、０．５μｇ／ｍＬが用いられる。ビーズストックは、穏やかにボルテックスされ、次いで、上清液中に、ウェルあたり２５００の各ビーズまたは０．５×１０５／ｍＬの濃度に希釈され、そしてＲＴで一晩、または０．５μｇ／ｍＬの既知濃度である場合２時間、暗所中のシェーカー上でインキュベートされる。吸引の後、５０μＬの各ビーズをフィルタープレートの各ウェルに添加され、次いで、１００μＬ／ウェルの洗浄緩衝液を添加し、そして吸引することにより１回洗浄される。抗原およびコントロールを、フィルタープレートに５０ｕＬ／ウェルで添加し、次いで覆い、そしてシェーカー上で１時間暗所中インキュベートさせる。洗浄ステップの後、二次未知抗体を、一次抗体について用いられるのと同じ希釈（または既知の場合同じ濃度）を用いて５０μＬ／ウェルで添加する。次いで、プレートを暗所中、２時間、ＲＴにおいてシェーカー上でインキュベートし、洗浄ステップが続く。次に、１：５００希釈した５０μＬ／ウェルビオチン化ｍｘｈＩｇＧを添加し、そして暗所でＲＴにおいてシェーカー上で１時間の間インキュベートさせる。洗浄ステップの後、５０μＬ／ウェルのストレプトアビジン−ＰＥを１：１０００で添加し、そしてＲＴにおいてシェーカー上１５分間暗所中でインキュベートさせる。洗浄ステップの後、各ウェルを８０μＬのブロッキング緩衝液中に再懸濁し、そしてＬｕｍｉｎｅｘを用いて読み取る。結果は、上記モノクローナル抗体が、別個の区分（ｂｉｎ）に属することを示す。異なる分類からの抗体による競争結合は、類似または隣接エピトープに対する抗体特異性を支持する。非競争結合は、特有のエピトープに対する抗体特異性を支持する。

（ＢｉａＣｏｒｅ（登録商標）分析を用いた抗ＳＬＰＩ ｍＡｂ親和性の決定）
ＢｉａＣｏｒｅ（登録商標）分析を、ＳＬＰＩ抗原への抗ＳＬＰＩ抗体の結合親和性を決定するために使用した。この分析を、研究グレードのＣＭ５センサチップを備えたＢｉａＣｏｒｅ（登録商標）２０００バイオセンサを用いて、２５℃で行った。ＣＭ５ ＢｉａＣｏｒｅ（登録商標）チップを覆う高密度のヤギαヒト抗体表面を、慣用的なアミンカップリングを用いて調製した。抗体を含む上清を、ＨＢＳ−Ｐ泳動様緩衝液（１００μｇ／ｍＬ ＢＳＡおよび１０ｍｇ／ｍＬカルボキシメチルデキストランを含む）で約５μｇ／ｍＬに希釈した。次いで、抗体を、２分間の接触時間で別個の表面に個々に捕捉し、そして抗体ベースラインの安定化のための５分間洗浄した。

ＳＬＰＩ抗原を、７５秒間にわたって、各表面に対して注入し、その後、３分間で解離した。二重参照結合データ（ｄｏｕｂｌｅ−ｒｅｆｅｒｅｎｃｅｄ ｂｉｎｄｉｎｇ ｄａｔａ）を、シグナルをコントロールフローセルから差し引き、ＳＬＰＩ注入の直前に緩衝液注入のベースラインドリフトを差し引くことにより得た。各ｍＡｂについてのＳＬＰＩ結合データを、各表面に捕獲されたｍＡｂの量に対して正規化した。この正規化したドリフト補正した応答もまた、測定した。２５℃での抗ＳＬＰＩ ｍＡＢ結合のこの反応速度分析結果を、以下の表１９に列挙する。

（実施例９：エラスターゼ阻害アッセイ）
組換えヒトＳＬＰＩ（Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ，Ｍｉｎｎｅｏｐａｏｌｉｓ，ＭＮ）（ストック濃度１ｍｇ／ｍｌ：１００μｇ／ｍｌ、１０μｇ／ｍｌ、１μｇ／ｍｌに希釈；４μｌ／ウェル）を、４０μｇ／ｍｌ、１０μｇ／ｍｌ、および２μｇ／ｍｌの最終ＳＬＰＩ濃度になるようにモノクローナル抗体の各々と混合し、室温で５分間インキュベートした。０．６μｌ／ウェル（１６９μｌ緩衝液（５０ｍＭ ＮａＯＡｃ（ｐＨ５．５）、２００ｍＭ ＮａＣｌ）中で５０μｇを再構成、最終濃度１０μＭ）のヒトエラスターゼ（Ｃａｌｂｉｏｃｈｅｍ，Ｌａ Ｊｏｌｌａ，ＣＡ）を、０μｌ（コントロール）または２μｌの各ＳＬＰＩ希釈物と混合するか、またはＳＬＰＩ作業用緩衝液（１００μｌの最終容量）中で抗体と混合した。コントロールを、ちょうど１００μｌの作業用緩衝液を用いて調製した。サンプルを、３７℃で１５分間インキュベートした。１００μｌのＢＯＤＩＰＹ基質を添加し、サンプルを、室温で少なくとも６０分間インキュベートし（３７℃で一晩のインキュベーションにより、検出可能なシグナルが強められ得る）、遮光した。次いで、そのサンプルを、ＣｙｔｏＦｌｕｏ蛍光測定器により読み取った（励起＝４８０±２５ｎｍ、発光＝５３０±２５ｎｍ）。結果を図１に示す。モノクローナル抗体３５Ｆ１を、＃５０として参照する；モノクローナル抗体４２Ｃ１を、＃２４として参照する；モノクローナル抗体４３Ｈ７を＃１１として参照する；モノクローナル抗体９Ｇ１２を＃３６として参照する。ＳＬＰＩ−エラスターゼ活性の用量依存性阻害を、各抗体で実証した。抗体３５Ｆ１および４２Ｃ１は、このアッセイにおいて最も強い中和活性を示した。

（実施例１０：カテプシンＧ阻害アッセイ）
１００μｇ／ｍｌ、１０μｇ／ｍｌ、１μｇ／ｍｌに希釈した、２μｌの組換えヒトＳＬＰＩを、４０μｇ／ｍｌ、１０μｇ／ｍｌ、２μｇ／ｍｌの最終濃度になるように、モノクローナル抗体の各々に添加し、室温で５分間インキュベートした。５μｌのカテプシンＧ（Ｃａｌｂｉｏｃｈｅｍ Ｌａ Ｊｏｌｌａ，ＣＡ）（１００ｍＵ カテプシンＧを、１００μｌの緩衝液（５０ｍＭ ＮａＯＡｃ（ｐＨ５．５）、１５０ｍＭ ＮａＣｌを含む）中に再構成した；最終濃度１ｍＵ／μｌ）を、０μｌ（コントロールｃｏｎｔｒｏｌ）、２μｌの希釈したＳＬＰＩと混合するか、またはＳＬＰＩを、作業用緩衝液（１００ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ８．３、０．９６Ｍ ＮａＣｌ、１％ ＢＳＡ）中の抗体（最終容量９８μｌ）と混合した。コントロールもまた、ちょうど１００μｌ 作業用緩衝液を用いて調製した。サンプルを３７℃１５分間インキュベートした。２μｌの基質を添加し、室温で少なくとも３０分間インキュベートし、遮光した。そのサンプルを、ＯＤ ４０５ｎｍで読み取った。結果を図２に示す。モノクローナル抗体３５Ｆ１を＃５０として参照する；モノクローナル抗体４２Ｃ１を＃２４として参照する；モノクローナル抗体４３Ｈ７を、＃１１として参照する；モノクローナル抗体９Ｇ１２を＃３６として参照する。ＳＬＰＩ−カテプシンＧ活性の用量依存性阻害を、抗体３５Ｆ１、抗体４２Ｃ１および抗体９Ｇ１２を用いて実証した。抗体３５Ｆ１および抗体４２Ｃ１は、最高の効果を有した。

（実施例１１：ヒト腫瘍組織マイクロアレイでのＩＨＣ評価）
モノクローナル抗体３５Ｆ１、４２Ｃ１および９Ｇ１２を、凍結および固定した陽性コントロールＯＶＣＡＲ−８卵巣癌腫細胞；ＩＧＲＯＶ−１異種移植片組織（Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ ｆｏｒ Ｄｒｕｇ Ｄｅｖｅｌｏｐｅｎｔ，Ｓａｎ Ａｎｔｏｎｉｏ，Ｔｅｘａｓ）；ヒト卵巣癌組織標本（ＮＤＲＩ）；ヒト腫瘍組織マイクロアレイ（ＴＭＡ，Ａｒｄａｉｓ製，Ｌｅｘｉｎｇｔｏｎ ＭＡ）；またはＢｉｏｇｅｎｉｘ（Ｓａｎ Ｒａｍｏｎ，ＣＡ）から入手したヒト組織アレイとの反応性について免疫組織化学（ＩＨＣ）により評価した。抗体４２Ｃ１は、固定ＯＶＣＡＲ−８細胞を染色し、この抗体を、他の組織標本に対する反応性の評価のために選択した。コントロールに、アイソタイプを合わせた抗体ＰＫ１６．３、および陽性コントロール卵巣癌種標本を含めた。

組織切片（５μｍ）を、ＩＧＲＯＶ−１異種移植片またはヒト卵巣癌組織のいずれかから得た、ホルマリン固定してパラフィン包埋した組織サンプルから切り出した。これらの切片を、その供給源物質に依存して、２つの方法のうちの１つによって、４２Ｃ１抗体で染色した。両方の場合、組織切片を、キシレンおよび勾配を緩くした一連のエタノール、最後にＰＢＳ中でインキュベートすることで再水和した。また、両方の場合において、内因性ペルオキシダーゼ活性を、メタノール中の３％過酸化水素溶液中でクエンチした。

異種移植片組織の染色を、以下のように行った：組織切片を、ブロッキング緩衝液（ＰＢＳ中、５％ ＢＳＡ（Ｓｉｇｍａ）、１％ ヤギ血清（Ｊａｃｋｓｏｎ Ｉｍｍｕｎｏｌａｂｓ，Ｗｅｓｔ Ｇｒｏｖｅ，ＰＡ））中で１時間ブロックした。切片を、ブロッキング緩衝液中に希釈した、精製４２Ｃ１抗体またはアイソタイプコントロール（ＩｇＧ２；Ｆｉｔｚｇｅｒａｌｄ Ｉｎｄｕｓｔｒｉｅｓ）とともにインキュベートした。１時間後、切片（ｅｃｔｉｏｎ）を、ＰＢＳ中で、これを３回交換して、各５〜１０分間洗浄した。次いで、その切片を、ブロッキング緩衝液中で希釈した１：２００希釈のビオチン化ヤギ抗ヒトＩｇＧ（Ｊａｃｋｓｏｎ Ｉｍｍｕｎｏｌａｂｓ）とともに、４５分間インキュベートした。切片を洗浄し、ブロッキング緩衝液中の１：２００希釈のストレプトアビジン結合体化西洋ワサビペルオキシダーゼ（Ｊａｃｋｓｏｎ Ｉｍｍｕｎｏｌａｂｓ）とともに３０分間インキュベートし、次いで、前述のように洗浄した。抗体を、ＤＡＢ試薬（Ｖｅｃｔｏｒ ｌａｂｓ，ＣＩＴＹ ＳＴＡＴＥ）を用いて検出した。切片を、ヘマトキシリン（Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）で対比染色し、アルコールおよびキシレンに通して脱水し、パーマウント（ｐｅｒｍｏｕｎｔ）（Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）を用いてカバースリップをかぶせた。

ヒト組織サンプルの染色は、一次抗体および二次抗体を、ＰＢＳ中の５％ ＢＳＡと１％ ヤギ血清の中、約１０：１の４２Ｃ１またはコントロールＩｇＧ：二次ビオチン化ヤギ抗ヒト抗体のモル比で、３７℃で１時間予め複合体形成させたこと以外は、本質的に同じプロトコルに従った。次いで、この複合体を、１：２０００希釈のヒト血清でブロックし、再び３７℃で１時間インキュベートした。上記のように、タンパク質ブロッキング工程および染色工程で処理して、上記のように完了させた組織切片に、この複合体を１時間適用した。

Ａｒｄａｉｓマイクロアレイ組織で得られたＩＨＣの結果を、表２０に示す。

０（陰性） 染色なし
１（弱い） １＋染色強度を有する特異的染色細胞が１〜１００％、または２＋染色強度を有する特異的染色細胞が１〜２０％
２（中程度） 特異的染色細胞の２１〜７９％が２＋染色強度、または特異的染色細胞の１〜４９％が３＋染色強度
３（強い）：特異的染色細胞の８０〜１００％が２＋染色強度、または特異的染色細胞の５０％以上が３＋染色強度
高発現および中程度の発現の頻度％＝（スコア３＋スコア２）／（スポット数）×１００％
低発現の頻度％＝スコア１／（スポット数）×１００％。

抗体４２Ｃ１は、癌標本を染色し、高発現および中程度の発現の頻度は、子宮内膜癌の５７．９％で観察され、卵巣癌の２７．８％で観察され、肺癌の１１．１％で観察され、腎臓癌の１０％で観察され、乳癌の５％で観察された。正常組織標本では、高発現および中程度の発現の頻度は、膵臓の６６．７％で観察され、唾液腺の５０％で観察され、肺の１１．１％で観察され、子宮内膜の１０％で観察された。弱い染色は、結腸癌、乳癌、脳の癌、黒色腫、前立腺癌およびリンパ腫で観察された。弱い染色は、多くの正常組織および正常な適合させた組織（例えば、扁桃、リンパ節、脾臓および前立腺）で観察された。

４２Ｃ１で染色した卵巣癌組織アレイ（Ｂｉｏｇｅｎｉｘ）は、患者（６名の腺腫のうち３名、４名の腺癌のうち３名および１０名のあまり分化していない腺癌のうち６名を含む）に由来するＳＬＰＩ癌組織で陽性染色を示した。６つの正常卵巣組織サンプルのいずれも、４２Ｃ１によって陽性染色されなかった。

（実施例１２：ウェスタンブロット分析）
哺乳動物腫瘍由来細胞株である、ＯＶＣＡＲ−３、ＯＶＣＡＲ−４、ＯＶＣＡＲ−５、ＯＶＣＡＲ−８、ＨＴ２９、ＩＧＲＯＶ−１、ＳＫ−ＯＶ−３、ＴＫ−１０、Ａ４９８、Ｃａｋｉ−２、ＭＤＡＭＢ２３１、７８６−０、Ｕ８７ＭＧ、Ａ５４９、ＳＷ４８０、ＳＷ６２０、ＭＣＦ７、およびＡ２７８０をＡＴＣＣ（Ｍａｎａｓｓａｓ，ＶＡ）から入手し、無血清ＤＭＥＭ培地中で３日間増殖させた。培地を回収し、本発明のヒト抗ＳＬＰＩ抗体（５μｇ／ｍｌ）（４２Ｃ１）およびプロテインセファロースＡビーズ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ Ｍｉｓｓｉｓｓａｕｇａ，Ｃａｎａｄａ）とともに４時間インキュベートすることによって免疫沈降させた。ビーズを、ＩＰ緩衝液（１５０ｍＭ ＮａＣｌ、５０ｍＭ Ｔｒｉｓ（ｐＨ７．５）、１％ ＮＰ−４０）中で５回洗浄し、続いてウェスタンブロットローディング色素（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ Ｃａｒｌｓｂａｄ，ＣＡ）中、９５℃で変性させた。溶出させたタンパク質を、ＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動により分離し、ニトロセルルース膜に転写した。ブロットを、ヒト抗ＳＬＰＩ抗体とともに４℃で２４時間インキュベートした。その膜を洗浄し、１：１０００希釈のペルオキシダーゼ結合体化ロバ抗ヒトＩｇＧ（Ｈ＋Ｌ）（Ｊａｃｋｓｏｎ Ｉｍｍｕｎｏｌａｂｓ，Ｗｅｓｔ Ｇｒｏｖｅ，ＰＡ）で、室温で１時間プローブした。タンパク質を、化学発光検出により可視化した。

免疫沈降およびウェスタンブロット分析を用いて、ＳＬＰＩタンパク質発現を、卵巣癌細胞である、ＯＶＣＡＲ−３、ＯＶＣＡＲ−４、ＯＶＣＡＲ−８およびＩＧＲＯＶ−１；腎臓癌細胞株であるＣａｋｉ−２、Ａ４９８、７８６−０；肺癌細胞株であるＡ５４９；結腸癌細胞株であるＨＴ２９、ＳＷ４８０、ＳＷ６２０；ならびに乳癌細胞株であるＭＣＦ７の馴化培地中で検出した。発現レベルは、卵巣細胞株であるＯＶＣＡＲ５、ＳＫＯＶ−３；およびＴＫ−１０（腎臓）、ＭＤＡＭＢ２３１（乳房）、Ｕ８７ＭＧ（神経膠芽細胞腫）およびＡ２７８０（肺）では検出できなかった（図３）。

（実施例１３．ＳＬＰＩ血清ＥＬＩＳＡ）
サンドイッチＥＬＩＳＡを、４２Ｃ１抗体およびヤギ抗ＳＬＰＩポリクローナル抗体（Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ，Ｍｉｎｎｅａｐｏｌｉｓ，ＭＮ）を用いて以下のプロトコルに従って、卵巣癌細胞から回収した馴化培地中で、および卵巣癌患者の血清中でＳＬＰＩレベルを定量するために開発した：
コーティング緩衝液（０．１Ｍ ＮａＨＣＯ_３、ｐＨ９．６）中の５μｇ／ｍｌ濃度の、５０μｌの捕捉抗体ヤギ抗ＳＬＰＩポリクローナル抗体を、ＥＬＩＳＡプレートにコーティングし、４℃で一晩インキュベートした。次いで、プレートを、２００μｌのブロッキング緩衝液（ＰＢＳ中、０．５％ ＢＳＡ、０．１％ Ｔｗｅｅｎ ２０、０．０１％ チメロサール）で、２５℃で１時間処理した。ＰＢＳ中０．０５％ Ｔｗｅｅｎ ２０洗浄緩衝液（ＷＢ）を用いてプレートを洗浄した（３×）。卵巣癌細胞からの馴化培地または正常患者血清もしくは卵巣癌患者血清（Ｃｌｉｎｏｍｉｃｓ，Ｂｉｏｒｅｃｌａｍａｔｉｏｎ，Ｃｏｏｐｅｒａｔｉｖｅ Ｈｕｍａｎ Ｔｉｓｓｕｅ Ｎｅｔｗｏｒｋ）を、ブロッキング緩衝液中で５０％に希釈し、２５℃で２時間、プレートの上でインキュベートした。プレートをＷＢで洗浄し、次いで、４２Ｃ１抗体（４μｇ／ｍｌ）とともに２５℃で１時間インキュベートした。洗浄後、プレートを、二次ペルオキシダーゼ結合体化ロバ抗ヒト抗体（ＳＯＵＲＣＥ）とともに１時間インキュベートし、上記のように洗浄し、次いで、１００μｌ／ウェルのＴＭＢ基質（Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ）で処理した。その反応を、２Ｍ Ｈ_２ＳＯ_４で停止させ、４５０ｎｍのＥＬＩＳＡプレートリーダーを用いて分析し、５５０ｎｍで補正した。ＳＬＰＩの濃度を、４パラメーター曲線フィッティングプログラムを用いて、ＳＬＰＩ標準曲線に対する比較により計算した。

ＯＶＣＡＲ−３細胞、ＩＧＲＯＶ−１細胞およびＳＫ−ＯＶ−３細胞において、分泌性ＳＬＰＩレベルは、それぞれ２４１ｎｇ／ｍｌ／１０^６細胞、２０２．８ｎｇ／ｍｌ／１０^６細胞および１．２ｎｇ／ｍｌ／１０^６細胞であった。これは、ウェスタンブロット分析の結果と一致する。増大したＳＬＰＩレベルがまた、正常ボランティアのもの（１８９．４ｎｇ／ｍｌ）と比較して、卵巣癌患者において検出された（２５０．１ｎｇ／ｍｌ）。

（実施例１４：ＳＬＰＩ発現のＦＡＣＳ分析）
ＯＶＣＡＲ−４細胞株、ＯＶＣＡＲ−５細胞株、ＯＶＣＡＲ−８細胞株、ＳＫ−ＯＶ−３細胞株、Ａ２７８０細胞株、ＳＦ２９４細胞株、７８６−０細胞株へ結合する抗ＳＬＰＩ抗体のＦＡＣＳ分析を、以下のように行った。

懸濁した細胞を、氷冷ＦＡＣＳ緩衝液（ＳＯＵＲＣＥ）で２回洗浄し、抗体４２Ｃ１（１７０ｎＭ／ＦＡＣＳ緩衝液）とともに１時間インキュベートし、次いで、洗浄した。細胞を、ＦＡＣＳ緩衝液中のペルオキシダーゼ結合体化ロバ抗ヒトＩｇＧ（Ｈ＋Ｌ）（Ｊａｃｋｓｏｎ Ｉｍｍｕｎｏｌａｂｓ）の１：５００希釈液とともに３０分間インキュベートした。細胞を洗浄し、次いで、ＰＢＳ中の１％ホルムアルデヒドで固定した。ＦＡＣＳＣａｌｉｂｅｒ^ＴＭフローサイトメーター（Ｂｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ，Ｆｒａｎｋｉｎ Ｌａｋｅｓ，ＮＪ）を用いて分析を行った。

４２Ｃ１抗体は、ＳＬＰＩ陰性細胞株７８６−０（Ｇｅｏ Ｍｅａｎ Ｒａｔｉｏ ３）と比較して、ＳＬＰＩ発現卵巣癌細胞株：ＯＶＣＡＲ−４（Ｇｅｏ Ｍｅａｎ Ｒａｔｉｏ ３７）、ＯＶＣＡＲ−５（Ｇｅｏ Ｍｅａｎ Ｒａｔｉｏ １０）、およびＯＶＣＡＲ−８（Ｇｅｏ Ｍｅａｎ Ｒａｔｉｏ ３５）でＳＬＰＩに結合した。

（実施例１５：卵巣癌腫細胞に対するＳＬＰＩ中和抗体の効果）
卵巣癌腫細胞増殖に対するＳＬＰＩの効果、およびＳＬＰＩ媒介性細胞増殖に対するＳＬＰＩ中和抗体の効果を、調査した。

ＯＶＣＡＲ−３卵巣癌腫細胞を、９６ウェル平底プレートにある１０％ ＦＢＳ含有ＤＭＥＭ中に、１０００細胞／ウェルにてプレートした。２４時間後、１）組換えＳＬＰＩ（１０％ ＦＢＳ含有１００μｌ ＤＭＥＭ培地において、０ｎＭ、４２．５ｎＭ、８５ｎＭ、１７０ｎＭ、３４０ｎＭおよび６８０ｎＭ）；２）０ｎＭ〜２４０ｎＭの範囲の濃度である抗ＳＬＰＩ抗体；３）ＩｇＧコントロール抗体；または４）漸増濃度の４２Ｃ１抗体と混合した組換えＳＬＰＩ（７０ｎＭ）を、上記細胞に添加した。７２時間後、培地を取り除き、５０μｌのトリプシンを、各ウェルに添加した。一旦、細胞を完全に脱離させた後、５０μｌの増殖培地を添加して混合した。その後、２０μｌの細胞混合物を、１００ｍｍ組織培養ディッシュに移した。細胞を、コロニーが形成されるまで、３７℃にて７日間インキュベートした。コロニーを、クリスタルバイオレット溶液を使用して染色し、計数した。そのデータを、未処理コントロールの％として表した。

外因性ＳＬＰＩは、ＯＶＣＡＲ−３細胞増殖を５０％増加させ、最適用量は１７０ｎＭであった（図４Ａ）。外因性ＳＬＰＩの非存在下では、抗体４２Ｃ１は、ＯＶＣＡＲ−３細胞増殖を用量依存性様式で減少させ、２４０ｎＭにて最大の効果（６０％）があった。抗体４２Ｃ１は、外部から添加されたＳＬＰＩタンパク質により誘導されるＯＶＣＡＲ−３細胞増殖をブロックした（図４Ｂ）。さらに、２４０ｎＭの抗体４２Ｃ１は、ＳＬＰＩタンパク質（１７０ｎＭ）（ＳＬＰＩ：抗体のモル比は約１：１）の刺激効果を完全に消失させた。

ＩＧＲＯＶ−１癌腫細胞を、９６ウェル平底プレートにおいて１０％ ＦＢＳ含有ＤＭＥＭ中に１０００細胞／ウェルにてプレートした。２４時間後、０ｎＭ〜２４０ｎＭの範囲の濃度の抗ＳＬＰＩ抗体、またはＩｇＧコントロール抗体を、上記細胞に添加した。７２時間後に培地を除去し、５０μｌのトリプシンを各ウェルに添加した。一旦、細胞が完全に脱離した後に、５０μｌの増殖培地を、添加して混合した。その後、２０μｌの細胞混合物を、１００ｍｍ組織培養ディッシュに移した。細胞を、コロニーが形成されるまで、３７℃にて７日間インキュベートした。コロニーを、クリスタルバイオレット溶液を使用して染色し、計数した。そのデータは、未処理コントロールの％として表した。

抗体３５Ｆ１および抗体４２Ｃ１は、ＩＧＯＶ−１細胞の増殖を、アイソタイプが一致する抗体で処理した細胞と比較して阻害した。これらのＩＣ５０は、それぞれ、１６３ｎＭおよび１２１ｎＭであった。両方の抗体はまた、同様のアッセイにおいてＳＷ４８０の増殖を阻害し、そのＩＣ５０は８５ｎＭであった。

（実施例１６：細胞に対するエラスターゼ活性のＳＬＰＩ阻害の抗ＳＬＰＩ抗体による逆転）
無細胞アッセイにおいて、エラスターゼ（３０ｎＭ）を、ＳＬＰＩ（１７０ｎＭ）と混合するかまたは混合せず、かつ種々の濃度の４２Ｃ１と混合し、３７℃にて１５分間インキュベートした。その後、その基質を上記混合物に添加し、プロテアーゼ活性を、蛍光の増加によって検出した。用量１７０ｎＭのＳＬＰＩは、エラスターゼ活性を７０％阻害し、４２Ｃ１は、ＳＬＰＩ媒介性阻害を用量依存性様式で逆転した（図５Ａ）。

ＳＬＰＩがエラスターゼ活性を直接阻害したことを観察したので、本発明者らは、ＳＬＰＩがエラスターゼ媒介性毒性からＯＶＣＡＲ−３細胞をレスキューし得るか否かを試験した。ＯＶＣＡＲ−３細胞を、９６ウェル平底プレート中に、２０００細胞／ウェルにてプレートし、２４時間後に、１）エラスターゼ（１％ ＦＢＳ含有ＤＭＥＭ培地１００μｌ中にて、１５０ｎＭ〜７５００ｎＭの範囲の濃度）；２）ＳＬＰＩ（０ｎＭ〜８５００ｎＭの範囲の濃度）と混合したエラスターゼ（７５０ｎＭ）；または３）エラスターゼ（７５０ｎＭ）とＳＬＰＩ（０ｎＭ〜８５００ｎＭ）と抗ＳＬＰＩ抗体（０ｎＭ〜２１２５ｎＭの範囲の濃度）との混合物を、上記細胞に添加した。４８時間後に、Ｔｉｔｅｒ−Ｂｌｕｅ^ＴＭ細胞生存度アッセイを、製造業者の仕様（Ｐｒｏｍｅｇａ）に従って実施した。エラスターゼは、細胞生存率を用量依存性様式で減少させた（図５Ｂ）。ＳＬＰＩは、上記細胞に対するこのエラスターゼ効果を逆転させた（図５Ｃ）。４２Ｃ１抗体は、エラスターゼ毒性からのＳＬＰＩによる細胞のレスキュー効果を阻害した（図５Ｃ）。

（実施例１７：抗ＳＬＰＩ抗体のインビボ効力）
ＳＷ４８０結腸直腸腺癌異種移植片を、雌ヌードマウスにおける３０ｍｇ〜４０ｍｇのＳＷ４８０腫瘍フラグメントの皮下移植によって確立した。投与は、確立した（約１１４ｍｍ^３の）腫瘍を保有する１０匹のマウスの群において、１日目に始めた。抗ＳＬＰＩ抗体４２Ｃ１治療を、１０ｍｇ／ｋｇ、３ｍｇ／ｋｇ、および１ｍｇ／ｋｇにて静脈内投与した。この治療は、４日間毎に１回、合計４回投与（ｑ４ｄｘ４）の間与えた。この３ｍｇ／ｋｇの４２Ｃ１レジメンをまた、毎週１回３週間（ｑｗｋｘ３）の間与える標準的な腹腔内イリノテカン（ＣＰＴ）処置１００ｍｇ／ｋｇと合わせた。参照群には、イリノテカン単独治療を与えた。

抗ＳＬＰＩ抗体治療は、１０ｍｇ／ｋｇ、３ｍｇ／ｋｇ、および１ｍｇ／ｋｇにて、それぞれ、８０％の腫瘍増殖の遅延（％ ＴＧＤ）（ビヒクル処置マウスに対する薬物処置マウスの、終点までのメジアン時間の増加パーセントとして定義される）、３３％の腫瘍増殖の遅延（％ ＴＧＤ）、および４％の腫瘍増殖の遅延（％ ＴＧＤ）を生じた。１０ｍｇ／ｋｇにて、抗体処置は、平均腫瘍体積（ＭＴＶ）２０ｍｍ^３である４匹の８９日間生存マウスを生じ、２匹の長期間無腫瘍生存マウス（ＬＴＴＦＳ）を生じた。３ｍｇ／ｋｇでは、１匹の長期間無腫瘍生存マウス（ＬＴＴＦＳ）が存在し、１ｍｇ／ｋｇでは、生存マウスは存在しなかった。イリノテカン治療は、１１８％の腫瘍増殖の遅延（ＴＧＤ）を生じ、８９日間生存マウスは生じなかった。イリノテカンと３ｍｇ／ｋｇ抗体との組み合わせは、１１３％の腫瘍増殖の遅延（ＴＧＤ）を生じ、平均腫瘍体積（ＭＴＶ）が１９８ｍｍ^３である２匹の８９日間生存マウスを生じ、そして１匹の部分退縮（ＰＲ）応答を生じた。すべての処置は、充分に許容された。結果が、図６において示される。

ＯＶＣＡＲ−３卵巣癌腫異種移植片を、雌ヌードマウスにおける３０ｍｇ〜４０ｍｇのＯＶＣＡＲ−３腫瘍フラグメントの皮下移植によって確立した。投与は、確立した（約１１５ｍｍ^３の）腫瘍を保有する１０匹のマウスの群において、１日目に始めた。抗ＳＬＰＩ抗体４２Ｃ１治療を、１０ｍｇ／ｋｇ、３ｍｇ／ｋｇ、および１ｍｇ／ｋｇにて静脈内投与した。この治療は、４日間毎に１回、合計４回投与（ｑ４ｄｘ４）の間与えた。この３ｍｇ／ｋｇのＭａｂ ４２Ｃ１レジメンをまた、静脈内パクリタキセル処置（１５ｍｇ／ｋｇ）（２日間毎に１回、合計５回（ｑ２ｄｘ５））と合わせた。参照群には、パクリタキセル単独治療（２日間毎に１回、合計５回（ｑ２ｄｘ５））を与えた。コントロールマウスには、リン酸緩衝化生理食塩水（ビヒクル）を静脈内投与した。その腫瘍測定値および体重を、研究期間全体を通して毎週２回記録した。上記の１０匹の動物群における腫瘍増殖についての終点体積は、１２００ｍｍ^３である。

結果は、Ｍａｂ ４２Ｃ１による処置が、ビヒクル処置のみを受けるコントロールマウスと比較した場合に、平均腫瘍体積（ＭＴＶ）を減少させ、この研究期間を生き抜く動物の数を増加させ、そして長期間無腫瘍生存マウス（ＬＴＴＦＳ）の数を増加することを、示す。

（実施例１８：ＳＬＰＩに対する抗体を用いる癌の診断）
卵巣癌腫瘍を有すると疑われる被験体を、同定する。その疑わしい腫瘍由来の組織サンプルを、試験のために取り出す。その後、取り出した組織を、比色標識を有する抗ＳＬＰＩ抗体と接触させる。その抗ＳＬＰＩ抗体が、取り出された組織に対して特異的に結合するか否か、決定する。結合は、癌性組織の指標である。一方、結合しないことは、非癌性組織の指標である。患者の状態を、後の試験、カウンセリング、および／または処置を容易にするために、それに従って診断する。

（実施例１９：ＳＬＰＩに対する抗体を用いる癌の処置）
ＳＬＰＩ活性を調節することは、癌に罹患する危険がある被験体または癌に罹患している被験体を処置するために有用である。そのような被験体は、本発明の抗ＳＬＰＩ抗体による処置から利益を受ける。代表的には、抗体を、外来患者の設定では、ゆっくりした静脈内（ＩＶ）注入によって約０．１ｍｇ／ｋｇ用量〜約１．０ｍｇ／ｋｇ用量にて毎週投与することによって投与する。抗体の適切な治療上有効な用量は、主治医が選択する。この用量は、およそ１μｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、１μｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、１μｇ／ｋｇ〜１ｍｇ／ｋｇ、１０μｇ／ｋｇ〜１ｍｇ／ｋｇ、１０μｇ／ｋｇ〜１００μｇ／ｋｇ、１００μｇ／ｋｇ〜１ｍｇ／ｋｇ、および５００μｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇの範囲である。

上記抗体を使用して、ＳＬＰＩ活性に関連する疾患を予防し、そして／またはＳＬＰＩ活性に関連する疾患の重篤度および／または症状を軽減する。

ヒトにおける抗体の臨床的効力を試験するために、癌（特に、卵巣癌腫、肺癌腫、または結腸癌腫であるが、これらに限定されない）を有する個体を同定し、その個体を無作為に処置群に分ける。処置群は、抗体処置を受けない群と、種々の用量の抗ＳＬＰＩ抗体で処置される群とを含む。個体を、将来追跡する。抗体処置を受ける個体は、その状態の改善を示す。

（等価物）
上記の説明および実施例は、本発明の特定の好ましい実施形態を詳述しており、本発明者らによって企図される最良の様式を記載する。しかし、上記の説明がどんなに詳細に思われ得るとしても、本発明は多くの様式で実施され得ること、そして本発明は添付の特許請求の範囲およびそのあらゆる等価物に従って解釈されるべきであることが、認識される。

図１は、エラスターゼ阻害アッセイの結果のグラフを示し、そこでは、本発明の抗体が、用量依存様式でエラスターゼの酵素活性を阻害している。さらなる詳細について実施例９を参照のこと。 図２は、カテプシンＧ阻害アッセイの結果のグラフを示し、そこでは、本発明の抗体が、用量依存様式でカテプシンＧの酵素活性を阻害している。さらなる詳細について実施例１０を参照のこと。 図３は、種々の哺乳動物腫瘍由来細胞株由来の馴化培養培地を用いた、本発明の抗ＳＬＰＩ抗体の特異的反応性を示すウェスタンブロットの画像である。さらなる詳細については、実施例１２を参照のこと。 図４は、卵巣癌細胞に対するＳＬＰＩ中和抗体の影響を示す。（Ａ）は、クローン原性アッセイにおける外から添加されたＳＬＰＩによりＯＶＣＡＲ−３細胞増殖の刺激を描写する。各プレート上のコロニーの数が計数され、そして生データは非処置サンプルに対して規準化され、そして生存％として表された。（Ｂ）は、クローン原性アッセイにおける、外から添加されたＳＬＰＩが有りまたは無しで、抗体４２Ｃ１によるＯＶＣＡＲ−３細胞増殖の阻害を描写する。無関係のＩｇＧおよび外からのＳＬＰＩ（○）；無関係のＩｇＧ（■）抗ＳＬＰＩ抗体おび外からのＳＬＰＩ（△）；抗ＳＬＰＩ抗体（◆）。さらなる詳細について実施例１５を参照のこと。 エラスターゼ活性のＳＬＰＩ阻害。（Ａ）エラスターゼ活性のＳＬＰＩ阻害は、抗ＳＬＰＩ抗体４２Ｃ１の添加により逆転されるが（■）、コントロール抗体ではそうではない（△）。さらなる詳細について実施例１６を参照のこと。 エラスターゼ活性のＳＬＰＩ阻害。（Ｂ）ＯＶＣＡＲ−３細胞生存に対する種々の濃度のエラスターゼの影響。さらなる詳細について実施例１６を参照のこと。 エラスターゼ活性のＳＬＰＩ阻害。（Ｃ）ＯＶＣＡＲ−３細胞のエラスターゼ阻害のＳＬＰＩ逆転（◆）は、抗ＳＬＰＩ抗体によってブロックされる（○）。さらなる詳細について実施例１６を参照のこと。 胸腺欠損マウスにおけるＳＷ４８０結腸癌の生育に対する抗ＳＬＰＩ抗体の影響。ビヒクル（□）；ＣＰＴ １００ｍｇ／ｋｇ ｉｐ（△）；抗ＳＬＰＩ Ｍａｂ１０ｍｇ／ｋｇ ｉｖ（▼）；抗ＳＬＰＩ Ｍａｂ３ｍｇ／ｋｇ ｉｖ（◆）；抗ＳＬＰＩ Ｍａｂ１ｍｇ／ｋｇ ｉｖ（▲）；およびＣＰＴ １００ｍｇ／ｋｇとともに抗ＳＬＰＩ Ｍａｂ３ｍｇ／ｋｇ ｉｖ（◇）。さらなる詳細について実施例１７を参照のこと。

Claims (28)

1. ＳＬＰＩに特異的に結合する、単離されたヒト抗体。
2. ＳＬＰＩの活性を調節する、請求項１に記載の抗体。
3. ＳＬＰＩの活性を中和する、請求項１に記載の抗体。
4. モノクローナル抗体である、請求項１に記載の抗体。
5. １０^７Ｍ^−１より大きな親和性定数でＳＬＰＩに特異的に結合する、請求項１に記載の抗体。
6. ＶＨ４−３１、ＶＨ３−３３、Ｌ２ＶＫ３、およびＡ２ＶＫ３を含む群より選択される領域を含む、請求項４に記載の抗体。
7. ＶＨ４−３１およびＬ２ＶＫ３に由来する領域を含む、請求項６に記載の抗体。
8. ＶＨ３−３３およびＡ２ＶＫ３に由来する領域を含む、請求項６に記載の抗体。
9. 配列番号７３、配列番号７４、配列番号７５、または配列番号７６に示されるアミノ酸配列を含む、請求項６に記載の抗体。
10. 配列番号２、配列番号２０、配列番号３８、配列番号５６、配列番号７３、配列番号７４、配列番号８２、または配列番号８４に示されるアミノ酸配列を含む、請求項６に記載の抗体。
11. 配列番号１１、配列番号２９、配列番号４７、配列番号６５、配列番号７５、配列番号７６、配列番号１０６、または配列番号１０８に示されるアミノ酸配列を含む、請求項６に記載の抗体。
12. 配列番号８、配列番号２６、配列番号４４、または配列番号６２に示されるアミノ酸配列を含む、請求項６に記載の抗体。
13. ４３Ｈ７、４２Ｃ１、９Ｇ１２、または３５Ｆ１である、請求項６に記載の抗体。
14. 請求項１に記載の抗体を含む、薬学的組成物。
15. 処置方法であって、該方法は、
    治療上有効な用量の請求項１５に記載の薬学的組成物を投与する工程、
    を包含する、方法。
16. 請求項１６に記載の方法であって、前記薬学的組成物は、癌の処置または予防を必要とする被験体に投与される、方法。
17. 請求項１６に記載の方法であって、前記被験体は、ヒトである、方法。
18. ヒトフレームワーク領域と、ＳＬＰＩに対する特異的結合のための手段と、を含む、抗体。
19. エラスターゼ活性を阻害可能である、請求項１９に記載の抗体。
20. 請求項１９に記載の抗体であって、前記手段は、４３Ｈ７由来のＣＤＲ、４２Ｃ１由来のＣＤＲ、９Ｇ１２由来のＣＤＲ、または３５Ｆ１由来のＣＤＲを含む、抗体。
21. 請求項１に記載の抗体をコードする、単離された核酸。
22. 請求項２２に記載の核酸を含む、発現ベクター。
23. 請求項２３に記載のベクターを含む、宿主細胞。
24. Ｅ．ｃｏｌｉ細菌、チャイニーズハムスター卵巣細胞、ＨｅＬａ細胞、およびＮＳＯ細胞から選択される、請求項２４に記載の宿主細胞。
25. 配列番号２、配列番号１１、配列番号２０、配列番号２９、配列番号３８、配列番号４７、配列番号６５、配列番号６５、配列番号７３、配列番号７４、配列番号７５、配列番号７６、配列番号８２、配列番号８４、配列番号１０６、または配列番号１０８において示されるアミノ酸配列をコードする、請求項２２に記載の核酸。
26. 配列番号１、配列番号１０、配列番号１９、配列番号２８、配列番号３７、配列番号４６、配列番号５５、配列番号６４、配列番号８１、配列番号８３、配列番号１０５、または配列番号１０７からなる群より選択されるヌクレオチド配列を含む、請求項２６に記載の核酸。
27. ＳＬＰＩに特異的に結合するヒトモノクローナル抗体を産生するための方法であって、該方法は、
    （ａ）置換されるべきＣＤＲ３を含むかまたはＣＤＲ３コード領域を欠失しているかのいずれかである可変ドメインをコードする核酸の出発レパートリーを提供する工程；
    （ｂ）該レパートリーを、配列番号８、配列番号２６、配列番号４４、または配列番号６２において実質的に示されるアミノ酸配列をコードするドナー核酸と、該ドナー核酸が該レパートリー中のＣＤＲ３領域中へと挿入されるように合わせて、可変ドメインをコードする核酸の生成物レパートリーを提供する工程；
    （ｃ）該生成物レパートリーの核酸を発現させる工程；
    （ｄ）ＳＬＰＩに特異的な抗原結合フラグメントを選択する工程；および
    （ｅ）該特異的抗原結合フラグメントまたは該結合フラグメントをコードする核酸を回収する工程；
    を包含する、方法。
28. 請求項２８に記載の方法によって産生された、抗体。

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