JP2007527209A - Copdキナーゼ(rcキナーゼ)において制御される、キナーゼの制御 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】ヒトRCキナーゼ活性を制御する試薬、及びヒトRCキナーゼ遺伝子産物と結合する試薬を用いて、治療効果を得るためにこのタンパク質を制御することができる。そのような制御は、慢性閉塞性肺疾患、喘息、癌、及び細胞のシグナル伝達に欠陥がある疾患の治療に特に有用である。
【選択図】なし
Description
本発明は、キナーゼ活性の制御の分野に関する。さらに詳細には、本発明は、COPDキナーゼ(RCキナーゼ)において制御される新規ヒトキナーゼに関する。本発明は、RCキナーゼの遺伝子がCOPD患者で過剰発現し、診断マーカ、及び治療の標的として有用であることを開示するものである。RCキナーゼを用いた、COPDの予測、診断、及び予後診断、ならびに予防、及び治療の方法を開示する。RCキナーゼが無調節である、あるいはRCキナーゼの活性の調節、又は増強によって疾患の進行を改変することができる他の疾患の予測、診断、及び予後診断、ならびに予防、及び治療の方法も開示する。RCキナーゼ活性の調節は、COPD、喘息、癌、アルツハイマー病(Alzheimer's
disease)、炎症性疾患や心血管疾患などの疾患の状態に影響を及ぼすことができる。
細胞内シグナル伝達(signaling)は、種々の重要な生物学的機能を制御する。シグナルを伝導するために細胞によって使用される共通の1つの方法は、タンパク質リン酸化(protein
phosphorylation)である。シグナルを伝達するために、タンパク質キナーゼと呼ばれる活性化した酵素が、シグナル伝達系中で下流の分子にリン酸基を結合させ、それによって、分子の型に応じて、その酵素活性、その細胞内局在、他の分子とのその相互作用、その形状、又はその半減期を制御する。この型のシグナル伝達に関与するタンパク質キナーゼの重要なファミリーは、分裂促進因子活性化タンパク質キナーゼ(MAPK)である(Widmann,
C.らの論文(Physiol Rev 79 (1): 143-80, 1999))。MAPKはそれ自体リン酸化によって制御されているので、それはしばしば、他のキナーゼを含む細胞内での複雑なリン酸中継系の構成要素となる。例えば、MAPKは、MAPKキナーゼ(MKK)によってリン酸化することができ、そのキナーゼは順にMAPKキナーゼキナーゼ(MKKK)によってリン酸化することができる。そのようなリン酸中継系を使用して、シグナルを増幅し、シグナルの特異性を決定し、シグナル伝達系中の異なる点での制御を可能にすることができる。MAPK、MKK、及びMKKKは、遺伝子発現、有糸分裂、増殖、細胞運動、代謝、及びプログラム細胞死を含めた細胞活動に多種多様に役割を果たすことが認められている。MAPK、MKKやMKKKなどのタンパク質キナーゼファミリー酵素が重要な機能を有するので、新たなMAPK経路のキナーゼ、及び治療効果を得るためにその新たなキナーゼを制御する方法を同定することが当技術分野で必要とされている。
本発明の目的は、ヒトRCキナーゼを制御する試薬、及び方法を提供することである。本発明のこれらの、及び他の目的を、下記に記載する1以上の実施態様によって提供する。
a)配列番号7、8、9、10、11、又は12で示されるアミノ酸配列と少なくとも約50%同一であるアミノ酸配列;及び配列番号7、8、9、10、11、又は12で示されるアミノ酸配列からなる群から選択されるアミノ酸配列を含むRCキナーゼポリペプチドをコードするポリヌクレオチド、
b)配列番号1、2、3、4、5、又は6の配列を含むポリヌクレオチド、
c)ストリンジェントな条件下で、(a)、及び(b)で特定されるポリヌクレオチドとハイブリダイズするポリヌクレオチド、
d)遺伝コード(genetic code)の縮重により、その配列が、(a)〜(c)で特定されるポリヌクレオチド配列から逸脱しているポリヌクレオチド、並びに
e)(a)〜(d)で特定されるポリヌクレオチド配列の断片、誘導体、又は対立遺伝子変種に相当するポリヌクレオチド、からなる群から選択される単離ポリヌクレオチドである。
本発明はさらに、COPDについての予防、予測、診断、予後診断、及び治療用の新規の組成物、及び使用に関する。疾患状態でRCキナーゼ発現レベルが上昇するので、その遺伝子産物は、治療方法、ならびに診断的にかつ臨床的にモニターする方法に特に有用な標的である。
本発明はさらに、DNA、及びmRNAレベルでの、COPDにおけるRCキナーゼの調節障害を検出する方法に関する。
本発明はさらに、COPDで変化しているRCキナーゼ遺伝子、又はRCキナーゼのゲノム核酸配列の検出による、COPDの予測、診断、又は予後診断の方法に関する。
一実施態様では、RCキナーゼ遺伝子の発現をアレイで検出することができる。
さらなる実施態様では、Luminex社(米国特許第6,268,222号)によって提供されるような、ビーズに基づく直接蛍光読み取り技術で遺伝子の発現を検出することができる。
一実施態様では、本発明は、細胞、又は組織の表現型を決定する方法に関し、正常、又は非処理細胞と比較した、配列番号1、2、3、4、5、又は6を含むポリヌクレオチドの発現の差を検出する段階を含み、そのポリヌクレオチドは、少なくとも約1.5倍、少なくとも約2倍、又は少なくとも約3倍の発現の差がある。
本発明の他の実施態様は、配列番号7、8、9、10、11、又は12のポリペプチドを含み、あるいは配列番号1、2、3、4、5、又は6のポリヌクレオチドを含むポリヌクレオチドによってコードされるポリペプチドを含む医薬組成物である。
本発明のさらなる実施態様は、配列番号1、2、3、4、5、又は6のポリヌクレオチドを含むポリヌクレオチドと、ストリンジェントな条件下でハイブリダイズする配列を含み、かつRCキナーゼと同じ生物学的機能を示すポリペプチドをコードしあるいは配列番号7、8、9、10、11、又は12のポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含む医薬組成物である。本発明に有用な医薬組成物はさらに、配列番号1、2、3、4、5、又は6のポリヌクレオチド、又はその断片を含むポリペプチド、抗体、あるいは抗体断片を含む融合タンパク質を含んでよい。
本明細書において使用される「RCキナーゼ」とは、配列番号7、8、9、10、11、又は12のポリペプチド、ならびにその誘導体、断片、アナログ、及び相同体、あるいは配列番号1のポリヌクレオチドによってコードされるポリペプチド、ならびにその誘導体、断片、アナログ、及び相同体を指す。
reading frame)がその配列の塩基1〜3679に及ぶ。配列番号2は、RCキナーゼポリペプチドをコードするDNA配列の変異体2を示す。この変異体は、長さが3338
bpであり、オープンリーディングフレームがその配列の塩基1〜3243に及ぶ。配列番号3は、RCキナーゼポリペプチドをコードするDNA配列の変異体3を示す。この変異体は、長さが3510
bpであり、オープンリーディングフレームがその配列の塩基1〜3415に及ぶ。配列番号4は、RCキナーゼポリペプチドをコードするDNA配列の変異体4を示す。この変異体は、長さが4058
bpであり、オープンリーディングフレームがその配列の塩基1〜4018に及ぶ。配列番号5は、RCキナーゼポリペプチドをコードするDNA配列の変異体5を示す。この変異体は、長さが1460
bpであり、オープンリーディングフレームがその配列の塩基1〜1420に及ぶ。配列番号6は、RCキナーゼポリペプチドをコードするDNA配列の変異体6を示す。この変異体は、長さが1604
bpであり、オープンリーディングフレームがその配列の塩基1〜1564に及ぶ。配列番号7は、配列番号1のDNA配列から推定されるアミノ酸配列を示す。配列番号8は、配列番号2のDNA配列から推定されるアミノ酸配列を示す。
discoideum)タンパク質と287アミノ酸(キナーゼドメイン)にわたって44%同一であり、67%類似する。同様に、配列番号7、8、10、又は12で示されるヒトRCキナーゼは、ジーンバンク受入番号A48084で識別され、「STE11タンパク質キナーゼ相同体NPK1」と注釈付けられる一般的な煙草であるタバコ(Nicotiana
tabacum)タンパク質と276アミノ酸(キナーゼドメイン)にわたって47%同一であり、67%類似し、ジーンバンク受入番号NP_002392で識別され、「MAP/ERKキナーゼキナーゼ3;MAPKKK3」と注釈付けられるヒトタンパク質と291アミノ酸(キナーゼドメイン)にわたって46%同一であり、63%類似する。
RCキナーゼは、他のRCキナーゼポリペプチド、MKK4、及びMKK6をリン酸化する能力を有する。MAPKシグナル伝達が重要であることと併せて考慮すると、RCキナーゼ活性の改変から、COPD、喘息、癌、アルツハイマー病、炎症性疾患、及び心血管疾患に対する治療の機会が与えられる可能性がある。
下記で定義するように、本発明に従ったRCキナーゼポリペプチドは、配列番号7、8、9、10、11、又は12で示されるアミノ酸配列、あるいは生物学的に活性なその変異体を含む。したがって、本発明のRCキナーゼポリペプチドは、RCキナーゼ分子の一部、完全長RCキナーゼ分子、あるいはRCキナーゼ分子のすべて、又は一部を含む融合タンパク質でもよい。
生物学的に活性である、すなわちRCキナーゼ活性を保持するRCキナーゼ変異体も、RCキナーゼポリペプチドである。好ましくは、天然に存在する、又は天然に存在しないRCキナーゼ変異体は、配列番号7、8、9、10、11、又は12で示されるアミノ酸配列と少なくとも約50、好ましくは約70、75、90、96、又は98%同一であるアミノ酸配列を有する。推定されるRCキナーゼと配列番号7、8、9、10、11、又は12のアミノ酸配列との間の%同一性は、従来の方法によって決定する。例えば、Altschulらの論文(Bull.
Math. Bio. 48: 603 (1986))、及びHenikoff及びHenikoffの論文(Proc. Natl. Acad. Sci. USA
89: 10915 (1992))を参照されたい。簡潔に述べると、2つのアミノ酸配列を、ギャップ開始ペナルティー(gap opening penalty)に10を、ギャップ伸長ペナルティー(gap
extension penalty)に1を、Henikoff、及びHenikoff(1992)の「BLOSUM62」スコア行列(scoring matrix)を用いて、アラインメントスコア(alignment
score)が最適となるように整列させる。
Nat'l Acad. Sci. USA 85: 2444 (1988))、並びにPearsonの論文(Meth. Enzymol. 183: 63
(1990))に記載されている。簡潔に述べると、FASTAは最初に、保存的なアミノ酸置換、挿入、又は欠失を考慮せずに、最も高い密度の一致部分(ktup変数が1である場合)、又は一致部分の対(ktup=2の場合)を有する、クエリー配列(例えば、配列番号2)と試験配列によって共有される領域を同定することにより、配列類似性を特徴付ける。次いで、最も高い密度の一致部分を有する10個の領域について、アミノ酸置換行列を用いて対となるアミノ酸すべての類似性を比較することによりスコアを再計算し、領域の末端を「切り取って」、最も高いスコアに寄与するその残基のみを含める。「カットオフ(cutoff)」値(配列の長さ、ktup値に基づいた所定の式によって計算される)より大きいスコアを有するいくつかの領域がある場合、切り取った最初の領域を調べて、その領域を結合してギャップを含めたおよそのアラインメントを形成することができるかどうか判定する。最後に、2つのアミノ酸配列の最も高いスコアの領域を、アミノ酸の挿入、及び欠失を考慮する改変したNeedleman、Wunsch、Sellersのアルゴリズム(Needleman、及びWunschの論文(J.
Mol. Biol.48: 444 (1970));Sellersの論文(SIAM J. Appl. Math.26: 787 (1974)))を用いて整列させる。FASTA分析の好ましいパラメーター(parameter)は:ktup=1、ギャップ開始ペナルティー=10、ギャップ伸長ペナルティー=1、及び置換行列=BLOSUM62である。Pearsonの論文(Meth.
Enzymol. 183: 63 (1990))の付録2で説明されているように、スコア行列ファイル(「SMATRIX」)を改変することにより、これらのパラメーターをFASTAプログラムに導入することができる。
%同一性の変動は、例えば、アミノ酸の置換、挿入、又は欠失に起因する可能性がある。アミノ酸置換は、1対1のアミノ酸の取替えと定義される。置換アミノ酸が、類似した構造的かつ/、又は化学的特性を有するとき、それは事実上保存的である。保存的な取替えの例は、ロイシンのイソロイシン、又はバリンとの置換、アスパラギン酸のグルタミン酸との置換、あるいはスレオニンのセリンとの置換である。
融合タンパク質は、RCキナーゼのアミノ酸配列に対する抗体の生成、及び様々なアッセイ系での使用に有用である。例えば、融合タンパク質を使用して、その活性部位を含めたRCキナーゼポリペプチドの一部分と相互作用するタンパク質を同定することができる。タンパク質アフィニティークロマトグラフィーなどの方法、又は酵母2ハイブリッド系やファージディスプレイ系など、タンパク質とタンパク質の相互作用に関する、ライブラリーに基づくアッセイをこの目的で使用することができる。そのような方法は当技術分野で周知であり、薬物スクリーニングとして使用することもできる。
aDNA結合ドメイン(DBD)融合体、GAL4DNA結合ドメイン融合体、単純ヘルペスウイルス(HSV)BP16タンパク質融合体を含むことができる。RCキナーゼポリペプチドが異種の部分から離れて切断され精製されるように、RCキナーゼポリペプチドをコードする配列と、異種のタンパク質の配列との間に位置する切断部位を含むように融合タンパク質を設計することもできる。
Corporation(Madison, WI)、Stratagene(La Jolla, CA)、CLONTECH(Mountain View, CA)、Santa
Cruz Biotechnology(Santa Cruz, CA)、MBL International Corporation(MIC;
Watertown, MA)やQuantum Biotechnologies(Montreal, Canada; 1-888-DNA-KITS)などの会社から入手可能である。
ヒトRCキナーゼの種相同体は、RCキナーゼポリヌクレオチド(下記に記載する)を用いて適切なプローブ、又はプライマーを調製し、マウス、サルや酵母など他の種由来のcDNA発現ライブラリーをスクリーニングし、RCキナーゼの相同体をコードするcDNAを同定し、当技術分野で知られているようにcDNAを発現させて得ることができる。
RCキナーゼポリヌクレオチドは、一本鎖でもよく、あるいは二本鎖でもよく、RCキナーゼポリペプチドのコード配列、又はコード配列の相補体を含む。RCキナーゼポリヌクレオチドの部分的なコード配列を、配列番号1、2、3、4、5、又は6で示す;RCキナーゼのコード配列は、ヌクレオチド11885〜12023、及びヌクレオチド10564〜10693の配列番号3で示されるゲノム配列内にも含まれる。
gap)検索を用いてFASTAアルゴリズムを使用するALIGNなどのコンピュータプログラムを用いて決定する。生物学的に活性なRCキナーゼポリペプチドをコードするRCキナーゼポリヌクレオチドの相補的DNA(cDNA)分子、種相同体、及び変異体も、RCキナーゼポリヌクレオチドである。
先に開示したRCキナーゼポリヌクレオチドの変異体、及び相同体も、RCキナーゼポリヌクレオチドである。通常、当技術分野で知られているように、ストリンジェントな条件下での、既知のRCキナーゼポリヌクレオチドとの候補ポリヌクレオチドのハイブリダイゼーションにより、相同なRCキナーゼポリヌクレオチドの配列を同定することができる。例えば、2×SSC(0.3
M NaCl、0.03 Mクエン酸ナトリウム、pH 7.0)、0.1%SDS、室温で2回、それぞれ30分;次いで、2×SSC、0.1%SDS、50℃で1回、30分;次いで、2×SSC、室温で2回、それぞれ10分という洗浄条件を用いて、塩基対の不整合を最大で約25〜30%含む相同な配列を同定することができる。より好ましくは、相同な核酸の鎖は、塩基対の不整合を15〜25%、さらに好ましくは塩基対の不整合を5〜15%含む。
Mol. Biol. 81, 123 (1973))。したがって、例えば、推定される相同なRCキナーゼポリヌクレオチドを、配列番号1、2、3、4、5、又は6のヌクレオチド配列を含むポリヌクレオチド、あるいは配列番号3のエフリン(ephrin)様セリンプロテアーゼコード配列とハイブリダイズさせて、試験ハイブリッドを形成させることにより、ヒトRCキナーゼポリヌクレオチドの変異体、又は他の種のRCキナーゼポリヌクレオチドを同定することができる。試験ハイブリッドの融解温度を、完全に相補的なヌクレオチド配列を有するRCキナーゼポリヌクレオチドを含むハイブリッドの融解温度と比較し、試験ハイブリッド内での塩基対の不整合の数、又は百分率を算出する。
Natl. Acad. Sci. U.S.A. 48, 1390 (1962))の方程式:
Tm=81.5℃−16.6(log10[Na+])+0.41(%G+C)−0.63(%ホルムアミド)−600/l)
上式で、l=塩基対単位のハイブリッドの長さを用いて算出することができる。
(ポリヌクレオチドの調製)
天然に存在するRCキナーゼポリヌクレオチドを、膜構成成分、タンパク質や脂質など他の細胞構成成分を含まない状態で単離することができる。ポリヌクレオチドを、細胞で調製し、標準的な核酸精製技術を用いて単離し、ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)などの増幅技術を用いて合成することもでき、あるいは自動合成装置を用いて合成することもできる。ポリヌクレオチドを単離する方法は、当技術分野で日常的であり既知である。ポリヌクレオチドを得る任意のそのような技術を用いて、単離RCキナーゼポリヌクレオチドを得ることができる。例えば、制限酵素、及びプローブを用いて、RCキナーゼのヌクレオチド配列を含むポリヌクレオチド断片を単離することができる。単離ポリヌクレオチドは、他の分子を含まない、あるいは少なくとも70、80、又は90%含まない調製物中にある。
配列番号1、2、3、4、5、又は6の部分配列、あるいはその相補体を使用して、それらが由来していた、対応する全長の遺伝子を同定することができる。部分配列について、当業者に知られている標識法を使用して、ポリヌクレオチドキナーゼを用いて32Pでニックトランスレーションを行う、又は末端標識することができる(「分子生物学の基本方法」Davisら編(Elsevier
Press, N.Y., 1986))。ヒト組織から調製されたλライブラリーを、対象とする標識配列を用いて直接スクリーニングすることもでき、あるいはそのライブラリーを全部まとめてpBluescript(Stratagene
Cloning Systems, La Jolla, Calif. 92037)に転換して、細菌コロニー(colony)スクリーニングを促進することもできる(Sambrookらの著書(1989)ページ1.20を参照)。
3, 33-40, 1991))。一連の欠失クローンを生成し、そのそれぞれを配列決定する。得られた重複配列を組み合わせて、高度な重複性がある単一の隣接配列(通常は各ヌクレオチド位置に3〜5つの重複配列)にし、その結果高度に正確な最終配列が得られる。
Methods Applic. 2, 318-322, 1993))。リンカー配列に対するプライマーと、既知の領域に特異的なプライマーの存在下で、ゲノムDNAを最初に増幅する。次いで増幅した配列に、同じリンカープライマーと、最初のものより内部にある別の特異的なプライマーを用いた第2回のPCRを施す。適当なRNAポリメラーゼで各回のPCRの産物を転写し、逆転写酵素を用いて配列決定する。
Acids Res. 16, 8186, 1988))。OLIGO 4.06 Primer Analysisソフトウェア(National
Biosciences Inc., Plymouth, Minn.)など市販されているソフトウェアを用いて、長さ22〜30ヌクレオチドであり、GC含量が50%以上であり、温度約68〜72℃で標的配列とアニールするプライマーを設計することができる。その方法は、いくつかの制限酵素を使用して、遺伝子の既知の領域中に適切な断片を生成する。次いで、分子内連結によりその断片を環状化し、それをPCR鋳型として使用する。
Methods Applic. 1, 111-119, 1991))。この方法では、PCRを行う前に、複数の制限酵素消化、及び連結を使用して、設計した二本鎖配列をDNA分子の未知の断片中に入れる。
Palo Alto, Calif.)を使用して、ゲノムDNA歩行を行うことができる。このプロセスは、ライブラリーをスクリーニングする必要を回避するものであり、イントロン/エキソン結合を発見する際に有用である。
NAVIGATOR、Perkin Elmer)を用いて出力/光の強度を電気信号に転換することができ、試料の添加からコンピュータ分析、及び電子データ表示までのプロセス全体をコンピュータ制御することができる。キャピラリー電気泳動は、特定の資料中に限られた量しか存在しない可能性があるDNAの小片の配列決定に特に好ましい。
例えば、ヒト細胞からの精製により、RCキナーゼポリヌクレオチドの発現により、又は直接の化学合成により、RCキナーゼポリペプチドを得ることができる。
(タンパク質精製)
RCキナーゼ発現構築物をトランスフェクトした細胞を含めて、細胞からRCキナーゼポリペプチドを精製することができる。腎、胎児肺、精巣、B細胞、成体肺上皮、及び慢性リンパ性白血病の細胞は、RCキナーゼポリペプチドの特に有用な供給源である。精製RCキナーゼポリペプチドを、当技術分野で周知の方法を用いて、特定のタンパク質、炭水化物や脂質など細胞中で通常RCキナーゼポリペプチドと結合している他の化合物から分離する。そのような方法には、それだけに限らないが、サイズ排除クロマトグラフィー、硫酸アンモニウム分画化、イオン交換クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー、及び調製ゲル電気泳動がある。精製RCキナーゼポリペプチドの調製物は、少なくとも80%純粋である;好ましくは、調製物は90%、95%、又は99%純粋である。SDSポリアクリルアミドゲル電気泳動など、当技術分野で知られている任意の手段によって調製物の純度を評価することができる。精製調製物の酵素活性について、例えば実施例2で記載するようにアッセイすることができる。
RCキナーゼポリペプチドを発現させるために、挿入コード配列の転写、及び翻訳に必要なエレメントを含む発現ベクター中にRCキナーゼポリヌクレオチドを挿入することができる。当業者に周知の方法を使用して、RCキナーゼポリペプチドをコードする配列、ならびに適当な転写、及び翻訳調節エレメントを含む発現ベクターを構築することができる。この方法には、in
vitro組換えDNA技術、合成技術、及びin vivo遺伝子組換えがある。そのような技術は、例えば、Sambrookらの著書(1989)、及びAusubelらの著書「分子生物学における現在のプロトコル」(John
Wiley & Sons, New York, N.Y, 1989)に記載されている。
LaJolla, Calif.)、又はpSPORT1プラスミド(Life Technologies)のハイブリッドlacZプロモーターなどの誘導性プロモーターなどを使用することができる。昆虫細胞で、バキュロウイルスのポリヘドリンプロモーターを使用することができる。植物細胞のゲノムに由来する(例えば、熱ショック、RUBISCO、及び貯蔵タンパク質遺伝子)、又は植物ウイルスに由来する(例えば、ウイルスプロモーター、又はリーダー配列)プロモーター、又はエンハンサーをベクター中にクローン化することができる。哺乳動物細胞系では、哺乳動物遺伝子、又は哺乳動物ウイルス由来のプロモーターが好ましい。RCキナーゼポリペプチドをコードする複数コピーのヌクレオチド配列を含む細胞系統を調製する必要がある場合、SV40、又はEBVを基礎とするベクターを、適当な選択マーカーとともに使用することができる。
細菌系では、RCキナーゼポリペプチドについて予定する使用に応じて、いくつかの発現ベクターを選択することができる。例えば、大量のRCキナーゼポリペプチドが、抗体の誘導に必要である場合、容易に精製される融合タンパク質の高レベルの発現を誘導するベクターを使用することができる。そのようなベクターには、それだけに限らないが、RCキナーゼポリペプチドをコードする配列を、ハイブリッドタンパクが生成されるように、アミノ末端がMetの配列、その後のβガラクトシダーゼの7残基とインフレームでベクター中に連結することができるBLUESCRIPT(Stratagene)などの多機能な大腸菌(E.
coli)のクローン化、及び発現ベクターがある。pINベクター(Van Heeke、及びSchusterの論文(J. Biol. Chem. 264,
5503-5509, 1989))、又はpGEXベクター(Promega, Madison, Wis.)を使用して、グルタチオン-S-トランスフェラーゼ(GST)との融合タンパク質として外来ポリペプチドを発現させることができる。一般に、そのような融合タンパク質は、可溶性であり、グルタチオンアガロースビーズへの吸着、その後の遊離グルタチオンの存在下での溶出によって溶解細胞から容易に精製することができる。そのような系で調製されたタンパク質を、対象とするクローン化ポリペプチドを自由にGST部分から放出できるように、ヘパリン、トロンビン、又は第Xa因子プロテアーゼ切断部位を含むように設計することができる。
Enzymol. 153, 516-544, 1987)を参照されたい。
植物発現ベクターを使用する場合、RCキナーゼポリペプチドをコードする配列の発現を、いくつかのプロモーターのうちいずれかで駆動させることができる。例えば、CaMVの35S、及び19Sプロモーターなどのウイルスプロモーターを、単独で、又はTMV由来のωリーダー配列と組み合わせて使用することができる(Takamatsuの論文(EMBO
J. 6, 307-311, 1987))。あるいは、RUBISCOの小サブユニットや熱ショックプロモーターなどの植物プロモーターを使用することもできる(Coruzziらの論文(EMBO
J. 3, 1671-1680, 1984);Broglieらの論文(Science 224, 838-843, 1984);Winterらの論文(Results
Probl. Cell Differ. 17, 85-105, 1991))。直接のDNA形質転換、又は病原体が媒介するトランスフェクションによって、これらの構築物を植物細胞中に導入することができる。そのような技術は、一般に入手可能ないくつかの総説に記載されている(例えば、「McGraw
Hill科学技術年鑑」のHobbs、又はMurray(McGraw Hill, New York, N.Y., pp. 191-196, 1992)を参照)。
californica)核多角体病ウイルス(AcNPV)をベクターとして使用して、スポドプテラフルギベルタ(Spodoptera frugiperda)細胞内で、又はトリコプルシアラバエ(Trichoplusia
larvae)内で外来遺伝子を発現させる。RCキナーゼポリペプチドをコードする配列を、ポリヘドリン遺伝子などウイルスの非必須領域中にクローン化し、ポリヘドリンプロモーターの調節下に置くことができる。RCキナーゼポリペプチドの挿入に成功すると、ポリヘドリン遺伝子が不活性となり、被覆タンパク質を欠く組換えウイルスが生成される。次いで、その組換えウイルスを使用して、例えば、RCキナーゼポリペプチドを発現することができるS.フルギベルタ細胞、又はトリコプルシアラバエに感染させることができる(Engelhardらの論文(Proc.
Nat. Acad. Sci. 91, 3224-3227, 1994))。
哺乳動物宿主細胞で、ウイルスを基礎とするいくつかの発現系を利用することができる。例えば、アデノウイルスを発現ベクターとして使用する場合、RCキナーゼポリペプチドをコードする配列を、後期プロモーター、及び三連リーダー配列からなるアデノウイルス転写/翻訳複合体と連結することができる。ウイルスゲノムの非必須なE1、又はE3領域での挿入を使用して、感染した宿主細胞中でRCキナーゼポリペプチドを発現することができる生存可能なウイルスを得ることができる(Logan、及びShenkの論文(Proc.
Natl. Acad. Sci. 81, 3655-3659, 1984))。さらに、ラウス肉腫ウイルス(RSV)エンハンサーなどの転写エンハンサーを使用して、哺乳動物宿主細胞中での発現を高めることができる。
Probl. Cell Differ. 20, 125-162, 1994)を参照)。
挿入した配列の発現を調節し、又は発現したRCキナーゼポリペプチドに所望の形でプロセシングを行うことができるかどうかで、宿主細胞株を選択することができる。ポリペプチドのそのような修飾には、それだけに限らないが、アセチル化、カルボキシル化、糖鎖付加、リン酸化、脂質化、及びアシル化がある。「プレプロ(prepro)」型のポリペプチドを切断する翻訳後プロセシングを使用して、正確な挿入、折畳み、及び/又は機能を促進することもできる。翻訳後活性に特定の細胞機構、及び特徴的な機序を有する様々な宿主細胞(例えば、CHO、HeLa、MDCK、HEK293、及びWI38)は、米国基準菌株保存機構(American
Type Culture Collection)(ATCC; 10801 University Boulevard, Manassas, VA
20110-2209)から入手可能であり、外来タンパク質の正確な修飾、及びプロセシングを確実に行うものを選択することができる。
11, 223-32, 1977))、及びアデニンホスホリボシルトランスフェラーゼ(Lowyらの論文(Cell 22, 817-23, 1980))がある。それぞれtk-、又はaprt-細胞で、遺伝子を使用することができる。また、代謝拮抗物質、抗生物質、又は除草剤耐性を、選択の基礎として使用することもできる。例えば、dhfrは、メトトレキセート(methotrexate)に対する耐性を与える(Wiglerらの論文(Proc.
Natl. Acad. Sci. 77, 3567-70, 1980));nptは、アミノグリコシド系のネオマイシン、及びG-418に対する耐性を与える(Colbere-Garapinらの論文(J.
Mol. Biol. 150, 1-14, 1981));als、及びpatは、それぞれクロルスルフロン(chlorsulfuron)、及びホスフィノトリシン(phosphinotricin)アセチルトランスフェラーゼに対する耐性を与える(Murrayの論文(1992、上記))。さらなる選択遺伝子、例えば細胞がトリプトファンの代わりにインドールを利用することを可能にするtrpB、又は細胞がヒスチジンの代わりにヒスチノールを利用することを可能にするhisDについても記載されている(Hartman、及びMulliganの論文(Proc.
Natl. Acad. Sci. 85, 8047-51, 1988))。アントシアニン、β-グルクロニダーゼ、及びその基質GUS、ルシフェラーゼ、及びその基質ルシフェリンなどの可視マーカーを使用して、形質転換体を同定し、特定のベクター系に起因する一過性の、又は安定なタンパク質発現の量を定量することができる(Rhodesらの論文(Methods
Mol. Biol. 55, 121-131, 1995))。
マーカー遺伝子発現の存在から、RCキナーゼポリヌクレオチドも存在することが示唆されるが、その存在、及び発現を確認することを必要としないことがある。例えば、RCキナーゼポリペプチドをコードする配列をマーカー遺伝子配列内に挿入する場合、マーカー遺伝子の機能が存在しないことによって、RCキナーゼポリペプチドをコードする配列を含む形質転換細胞を同定することができる。あるいは、マーカー遺伝子を、RCキナーゼポリペプチドをコードする配列と並行して、単一のプロモーターの調節下に置くことができる。誘導、又は選択に反応してマーカー遺伝子が発現すると、通常はRCキナーゼポリヌクレオチドが発現したことが示唆される。
Press, St. Paul, Minn., 1990)、及びMaddoxらの論文(J. Exp. Med. 158, 1211-1216, 1983)に記載されている。
vitroでRNAプローブを合成することができる。種々の市販されているキット(Amersham Pharmacia Biotech、Promega、及びUS
Biochemical)を用いて、これらの手順を実施することができる。検出を容易にするのに使用することができる適切なレポーター分子、又は標識には、放射性核種、酵素、蛍光、化学発光、又は色素産生性作用物質、ならびに基質、補助因子、抑制因子、磁性粒子などがある。
細胞培養からのタンパク質の発現、及び回収に適した条件下で、RCキナーゼポリペプチドをコードするヌクレオチド配列で形質転換した宿主細胞を培養することができる。使用する配列、及び/又はベクターに応じて、形質転換細胞によって産生されたポリペプチドを分泌させ、又は細胞内に含有させることができる。当業者には理解されるであろうが、RCキナーゼポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含む発現ベクターを、原核細胞膜、又は真核細胞膜を介したRCキナーゼポリペプチドの分泌を誘導するシグナル配列を含むように設計することができる。
Corp., Seattle, Wash.)で利用するドメインがある。精製ドメインとRCキナーゼポリペプチドの間に第Xa因子、又はエンテロキナーゼに特異的な配列(Invitrogen,
San Diego, CA)などの切断可能なリンカー配列を含めることを用いて、精製を促進することができる。1つのそのような発現ベクターは、チオレドキシン、又はエンテロキナーゼ切断部位の前にRCキナーゼポリペプチド、及び6ヒスチジン残基を含む融合タンパク質の発現をもたらす。ヒスチジン残基は、IMAC(固定化金属イオンアフィニティークロマトグラフィー、Porathらの論文(Prot.
Exp. Purif 3, 263-281, 1992)に記載)上での精製を促進するが、エンテロキナーゼ切断部位は、融合タンパク質からRCキナーゼポリペプチドを精製する手段をもたらす。融合タンパク質を含むベクターは、Krollらの論文(DNA
Cell Biol. 12, 441-453, 1993)に開示されている。
当技術分野で周知の化学的方法を用いて、RCキナーゼポリペプチドをコードする配列の全部、又は一部を合成することができる(Caruthersらの論文(Nucl.
Acids Res. Symp. Ser. 215-223, 1980);Hornらの論文(Nucl. Acids Res. Symp. Ser.
225-232, 1980)を参照)。あるいは、そのアミノ酸配列を合成する化学的方法を用いて、RCキナーゼポリペプチド自体を調製することもできる。例えば、固相技術を使用する直接のペプチド合成によって、RCキナーゼポリペプチドを調製することができる(Merrifieldの論文(J.
Am. Chem. Soc. 85, 2149-2154, 1963);Robergeらの論文(Science 269, 202-204, 1995))。手動の技術を用いて、又は自動でタンパク質合成を行うことができる。自動合成は、例えば、Applied
Biosystems 431A Peptide Synthesizer(Perkin Elmer)を用いて行うことができる。化学的方法を用いてRCキナーゼポリペプチドの様々な断片を別々に合成し結合して、全長分子を調製することができる。
Freeman and Co., New York, N.Y., 1983))。アミノ酸分析、又は配列決定によって、合成RCキナーゼポリペプチドの組成を確認することができる(例えば、エドマン(Edman)分解の手順;上記のCreightonの著書を参照)。さらに、RCキナーゼポリペプチドのアミノ酸配列の任意の部分を直接の合成の間に変化させ、かつ/、又は化学的方法を用いて他のタンパク質由来の配列と結合して、変異ポリペプチド、又は融合タンパク質を調製することができる。
当業者には理解されるであろうが、天然に存在しないコドンを有した、RCキナーゼポリペプチドをコードするヌクレオチド配列を調製すると有利となることがある。例えば、特定の原核生物、又は真核生物の宿主に好まれるコドンを選択して、タンパク質発現の速度を高め、又は天然に存在する配列から生じる転写物より長い半減期など、所望の特性を有するRNA転写物を調製することができる。
RCキナーゼポリペプチドのエピトープと特異的に結合する、当技術分野で知られている任意の型の抗体を生成することができる。本明細書において「抗体」には、完全なイムノグロブリン分子、ならびにFab、F(ab’)2やFvなど、RCキナーゼポリペプチドのエピトープと結合することができるその断片が含まれる。通常、エピトープの形成には少なくとも6、8、10、又は12個の隣接アミノ酸を必要とする。しかし、隣接しないアミノ酸を含むエピトープは、より多数の、例えば少なくとも15、25、又は50個のアミノ酸を必要とすることがある。
limpet hemocyanin)などの担体タンパク質と結合させることができる。宿主の種に応じて、様々なアジュバントを使用して、免疫応答を増大させることができる。そのようなアジュバントには、それだけに限らないが、フロイントアジュバント、無機ゲル(例えば、水酸化アルミニウム)、及び表面活性物質(例えば、リゾレシチン、プルロニックポリオール(pluronic
polyol)、ポリアニオン、ペプチド、油性乳剤、及びスカシガイヘモシアニン、及びジニトロフェノール)がある。ヒトで使用されるアジュバントの中で、BCG(カルメット-ゲラン桿菌(bacilli
Calmette-Guerin))、及びコリネバクテリウムパルブム(Corynebacterium parvum)は特に有用である。
256, 495-497, 1985);Kozborらの論文(J. Immunol. Methods 81, 31-42, 1985);Coteらの論文(Proc.
Natl. Acad. Sci. 80, 2026-2030, 1983);Coleらの論文(Mol. Cell Biol. 62, 109-120,
1984))。
Natl. Acad. Sci. 81, 6851-6855, 1984);Neubergerらの論文(Nature 312, 604-608, 1984);Takedaらの論文(Nature
314, 452-454, 1985))。モノクローナル抗体、及び他の抗体を「ヒト化(humanized)」して、それを治療に使用したとき、抗体に対する患者の免疫応答の増大を防止することもできる。そのような抗体は、治療で使用されるほどヒト抗体と配列が十分に類似していることもあり、あるいはいくつかの鍵となる残基の変更を必要とすることもある。個々の残基の部位特異的突然変異生成によってヒト配列と異なる残基を置換することにより、又は相補性決定領域全体をすり合わせることにより、げっ歯類抗体とヒト配列の間の配列の違いを最小限にすることができる。あるいは、GB2188638Bに記載のように、組換えの方法を用いて、ヒト化抗体を調製することもできる。米国特許第5,565,332号で開示されているように、RCキナーゼポリペプチドと特異的に結合する抗体は、部分的に、又は完全にヒト化された抗原結合部位を含むことができる。
Natl. Acad. Sci. 88, 11120-23, 1991))。
J. Cancer Prev. 5, 507-11))。単鎖抗体は、単特異性でも二重特異性でもよく、二価でも四価でもよい。四価の二重特異性単鎖抗体の構築は、例えば、Coloma、及びMorrisonの論文(1997,
Nat. Biotechnol. 15, 159-63)で教示される。二価の二重特異性単鎖抗体の構築は、Mallender、及びVossの論文(1994,
J. Biol. Chem. 269, 199-206)で教示される。
Int. J. Cancer 61, 497-501);Nichollsらの論文(1993, J. Immunol. Meth. 165, 81-91)。
Natl. Acad. Sci. 86, 3833-3837, 1989);Winterらの論文(Nature 349, 293-299, 1991))。
アンチセンスオリゴヌクレオチドとは、特定のDNA、又はRNA配列に相補的なヌクレオチド配列である。細胞内に導入した後、相補的なヌクレオチドは、細胞によって生成された天然の配列と結合して複合体を形成し、転写、又は翻訳を遮断する。好ましくは、アンチセンスオリゴヌクレオチドは、長さが少なくとも11ヌクレオチドであるが、少なくとも12、15、20、25、30、35、40、45、又は50以上のヌクレオチド長でもよい。それより長い配列を使用することもできる。アンチセンスオリゴヌクレオチド分子をDNA構築物内に供給し、上記に記載のように細胞内に導入して、細胞内のRCキナーゼ遺伝子産物のレベルを低下させることができる。
Mol. Biol. 20, 1-8, 1994);Sonveauxの論文(Meth. Mol. Biol. 26, 1-72, 1994);Uhlmannらの論文(Chem.
Rev. 90, 543-583, 1990)を参照されたい。
Publishing Co., Mt. Kisco, N.Y., 1994)中のGeeらの記載)。リボソームとの転写物の結合を妨げることによってmRNAの翻訳を遮断するように、アンチセンスオリゴヌクレオチドを設計することもできる。
Biotechnol. 10, 152-158, 1992);Uhlmannらの論文(Chem. Rev. 90, 543-584, 1990);Uhlmannらの論文(Tetrahedron.
Lett. 215, 3539-3542, 1987)を参照されたい。
リボザイムとは、触媒活性を有するRNA分子である。例えば、Cechの論文(Science 236, 1532-1539; 1987);Cechの論文(Ann.
Rev. Biochem. 59, 543-568; 1990)、Cechの論文(Curr. Opin. Struct. Biol. 2, 605-609;
1992)、Couture、及びStinchcombの論文(Trends Genet. 12, 510-515, 1996)を参照されたい。当技術分野で知られているように、リボザイムを使用して、RNA配列を切断することにより遺伝子機能を抑制することができる(例えば、Haseloffらの米国特許第5,641,673号)。リボザイム作用の機序では、リボザイム分子が相補的な標的RNAと配列特異的なハイブリダイゼーションを起こし、その後核酸鎖内部分解が生じる。例として、特定のヌクレオチド配列の核酸鎖内部分解を特異的にかつ効率よく触媒することができる、工学的に調製されたハンマーヘッド型モチーフのリボザイム分子がある。
334, 585-591, 1988)を参照)。例えば、リボザイムの切断活性は、リボザイム中に別個の「ハイブリダイゼーション」領域を工学的に調製することによって、特定のRNAを標的とすることができる。ハイブリダイゼーション領域は、標的RNAと相補的な配列を含み、したがって標的と特異的にハイブリダイズする(例えば、GerlachらのEP321,201を参照)。
本発明は、MAPキナーゼのリン酸中継系を介するシグナル伝達を制御し、炎症伝達物質の産生を制御し、細胞外マトリックスの分解を制御するために、調節因子、すなわち、RCキナーゼポリペプチドもしくはポリヌクレオチドと結合し、かつ/、又は、例えばRCキナーゼポリペプチドもしくはポリヌクレオチドの発現もしくは活性に対する刺激性もしくは抑制性の効果を有する候補、又は試験化合物を同定する方法を提供する。MAPキナーゼのリン酸中継系を介するシグナル伝達の低下、及び炎症伝達物質の産生の低下は、望ましくない炎症、細胞増殖、細胞分化、サイトカイン産生、又はアポトーシスの防止に有用である。MAPキナーゼのリン酸中継系を介するシグナル伝達の増大、及び炎症伝達物質の産生の増大は、損傷組織の修復の促進、刺激物質、又は毒素に対する耐性の増強、又は感染に対する耐性の増大に有用である。細胞外マトリックスの分解の低下は、肺の微小構造に対する損傷、又は不可逆的な変化の防止、及び悪性細胞の転移の防止、又は抑止に有用である。例えば、不適当に低いレベルの細胞外マトリックスの分解を特徴とする発生障害で、又は再生で、細胞外マトリックスの分解の増大が望ましいことがある。
試験化合物は、当技術分野ですでに知られている薬剤作用物質でもよく、あるいは、以前にどんな薬剤活性を有することも知られていない化合物でもよい。化合物は、天然に存在するものでもよく、あるいは、実験室で設計することもできる。それを微生物、動物、又は植物から単離することもでき、組換えによって生成することもでき、あるいは、当技術分野で知られている化学的な方法で合成することもできる。所望の場合、それだけに限らないが、生物学的なライブラリー、空間的にアドレス指定可能な並列固相、又は溶液相ライブラリー、逆重畳積分を必要とする合成ライブラリーの方法、「1ビーズ1化合物」のライブラリーの方法、及びアフィニティークロマトグラフィー選択を使用する合成ライブラリーの方法を含めて、当技術分野で知られている多数のコンビナトリアルライブラリーの方法のいずれかを用いて試験化合物を得ることができる。生物学的なライブラリーの手法は、ポリペプチドライブラリーに限られるが、他の4つの手法は、ポリペプチド、非ペプチド性オリゴマー、又は化合物の小分子ライブラリーに適用可能である。Lamの論文(Anticancer
Drug Des. 12, 145, 1997)を参照されたい。
6909, 1993);Erbらの論文(Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 91, 11422, 1994);Zuckermannらの論文(J.
Med. Chem. 37, 2678, 1994);Choらの論文(Science 261, 1303, 1993);Carellらの論文(Angew.
Chem. Int. Ed. Engl. 33, 2059, 1994);Carellらの論文(Angew. Chem. Int. Ed. Engl. 33,
2061);Gallopらの論文(J. Med. Chem. 37, 1233, 1994)を参照)。化合物のライブラリーは、溶液で(例えば、Houghtenの論文(BioTechniques
13, 412-421, 1992)を参照)、あるいはビーズ上で(Lamの論文(Nature 354, 82-84, 1991))、チップ上で(Fodorの論文(Nature
364, 555-556, 1993))、細菌もしくは胞子上で(Ladnerの米国特許第5,223,409号)、プラスミド上で(Cullらの論文(Proc.
Natl. Acad. Sci. U.S.A. 89, 1865-1869, 1992))、又はファージ上で(Scott、及びSmithの論文(Science
249, 386-390, 1990);Devlinの論文(Science 249, 404- 406, 1990);Cwirlaらの論文(Proc.
Natl. Acad. Sci. 97, 6378-6382, 1990);Feliciの論文(J. Mol. Biol. 222, 301-310,
1991);、及びLadnerの米国特許第5,223,409号)提示することができる。
高処理能スクリーニングを用いて、RCキナーゼポリペプチド、又はポリヌクレオチドと結合できるかどうか、あるいはRCキナーゼ活性、又はRCキナーゼ遺伝子発現に影響を及ぼすことができるかどうかについて試験化合物をスクリーニングすることができる。高処理能スクリーニングを用いると、多くの別個の化合物を並行して試験することができ、その結果、多数の試験化合物を迅速にスクリーニングすることができる。最も広く確立されている技術は、96穴マイクロタイタープレート(microtiter
plate)を利用するものである。マイクロタイタープレートの穴は、通常50〜500μlのアッセイ体積を必要とする。プレートに加えて、96穴の形式に適合する多数の器具、材料、ピペッター、ロボット装置、プレート洗浄器、及びプレート読取器が市販されている。
Natl. Acad. Sci. U.S.A. 19, 1614-18 (1994))に記載されている。細胞をペトリ皿中のアガロース下に置き、次いでコンビナトリアル化合物を運搬するビーズをアガロースの表面上に置く。コンビナトリアル化合物は、ビーズから部分的に遊離する。化合物がゲル基質中に局所的に拡散するにつれて、活性な化合物が細胞に色の変化を引き起こすので、活性な化合物を暗色素領域として視覚化することができる。
Biomolecular Screening)でのChelskyの報告「コンビナトリアルライブラリーのスクリーニングの戦略:新規、及び旧来の手法」(Philadelphia,
Pa. (Nov. 7-10, 1995))で述べられている。Chelskyは、ゲル内の酵素がゲル全体にわたって色の変化を引き起こすように、単一の相同な酵素アッセイで炭酸脱水酵素をアガロースゲルの内部に入れた。その後、光分解性リンカーを介してコンビナトリアル化合物を運搬するビーズをゲルの内部に入れ、UV光によって化合物を部分的に遊離させた。酵素を抑制する化合物は、色の変化が少ない局所抑制域として観察された。
他の高処理能スクリーニングの方法は、Beutelらの米国特許第5,976,813号に記載されている。この方法では、試験試料を、多孔性基質内に入れる。次いで、1種、又は複数種のアッセイ構成成分を、ゲル、プラスチックシート、フィルターや他の型の取扱いが容易な固体支持体などの基質の中、上、又は下に置く。試料を多孔性基質に導入したとき、それらは十分ゆっくりと拡散し、その結果試験試料が一緒に動くことなくアッセイを行うことができる。
結合アッセイでは、試験化合物は、RCキナーゼポリペプチドの活性部位、又はフィブロネクチンドメインと結合しそれを占有し、それによって活性部位、又はフィブロネクチンドメインが基質に到達できなくなり、その結果正常な生物学的活性が妨げられる小さな分子であることが好ましい。そのような小さな分子の例には、それだけに限らないが、小さなペプチド、又はペプチド様分子がある。結合アッセイでは、試験化合物、又はRCキナーゼポリペプチドは、蛍光、放射性同位体、化学発光や、西洋ワサビペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼやルシフェラーゼなどの酵素標識など、検出可能な標識を含むことができる。次いで、例えば、放射線放出を直接カウントし、シンチレーションカウントを行い、又は検出可能な産物への適当な基質の転換を判定することにより、RCキナーゼポリペプチドと結合した試験化合物の検出を行うことができる。
addressable potentiometric sensor)(LAPS)を用いて細胞がその周囲環境を酸性化する速度を測定する分析機器である。この酸性化速度の変化を、試験化合物とRCキナーゼポリペプチドの相互作用を示す指標として使用することができる(McConnellらの論文(Science
257, 1906-1912, 1992))。
Chem. 63, 2338-2345, 1991)、及びSzaboらの論文(Curr. Opin. Struct. Biol. 5, 699-705,
1995)。BIAとは、相互作用物質のいずれも標識せずに、実時間で生体特異的な相互作用を研究する技術である(例えば、BIAcore(商標))。光学的な現象の表面プラズモン共鳴(SPR)の変化を、生体分子間の実時間反応を示す指標として使用することができる。
72, 223-232, 1993);Maduraらの論文(J. Biol. Chem. 268, 12046-12054, 1993);Bartelらの論文(BioTechniques
14, 920-924, 1993);Iwabuchiらの論文(Oncogene 8, 1693-1696, 1993);、及びBrentのWO94/10300を参照)、RCキナーゼポリペプチドと結合し、又は相互作用し、その活性を調節する他のタンパク質を同定することができる。
vivoで相互作用してタンパク質依存性複合体を形成することができる場合、転写因子のDNA結合ドメインと活性化ドメインは非常に近接する。この近接によって、その転写因子に反応する転写制御部位に作動的に連結したレポーター遺伝子(例えば、LacZ)の転写が可能となる。レポーター遺伝子の発現を検出することができ、機能的な転写因子を含む細胞コロニーを単離し、それを使用してRCキナーゼポリペプチドと相互作用するタンパク質をコードするDNA配列を得ることができる。
Chemical, St. Louis, Mo.)、又はグルタチオン誘導体化マイクロタイタープレート上に吸着させることができ、次いでそれを試験化合物、又は試験化合物、及び非吸着RCキナーゼポリペプチドと混合する;次いで、複合体形成をもたらす条件下で(例えば、塩、及びpHの生理的な条件で)、その混合物をインキュベートする。インキュベーション後、ビーズ、又はマイクロタイタープレートの穴を洗浄して、任意の非結合構成成分を除去する。上記に記載のように、相互作用物質の結合を直接的に、又は間接的に判定することができる。あるいは、複合体を固体支持体から解離した後、結合を判定することもできる。
Chemicals, Rockford, Ill.)を用いて、ビオチン-NHS(N-ヒドロキシスクシンイミド)からビオチン化RCキナーゼポリペプチド、又は試験化合物を調製し、ストレプトアビジン被覆96穴プレート(Pierce
Chemical)の穴中に固定化することができる。あるいは、RCキナーゼポリペプチド、ポリヌクレオチド、又は試験化合物と特異的に結合するが、RCキナーゼポリペプチドの活性部位やフィブロネクチンドメインなどの所望の結合部位に干渉しない抗体を、プレートの穴に誘導体化することができる。非結合標的、又はタンパク質を、抗体結合により穴中で捕捉することができる。
RCキナーゼポリペプチドのRCキナーゼ活性を増大、又は低下させることができるかどうか、試験化合物を試験することができる。例えば、実施例1で参照する方法を用いて、RCキナーゼ活性を測定することができる。精製したRCキナーゼポリペプチド、細胞抽出物、又は細胞そのものと試験化合物を接触させた後に、RCキナーゼ活性を測定することができる。RCキナーゼ活性を少なくとも約10、好ましくは約50、より好ましくは約75、90、又は100%低下させる試験化合物を、MAPキナーゼのリン酸中継系を介するシグナル伝達、炎症伝達物質の産生、又は細胞外マトリックスの分解を低下させる潜在的な作用物質として同定する。RCキナーゼ活性を少なくとも約10、好ましくは約50、より好ましくは約75、90、又は100%増大させる試験化合物を、MAPキナーゼのリン酸中継系を介するシグナル伝達、炎症伝達物質の産生、又は細胞外マトリックスの分解を増大させる潜在的な作用物質として同定する。
他の実施態様では、RCキナーゼ遺伝子発現を増大、又は低下させる試験化合物を同定する。RCキナーゼポリヌクレオチドを試験化合物と接触させ、RCキナーゼポリヌクレオチドのRNA、又はポリペプチド産物の発現を決定する。試験化合物の存在下でのRCキナーゼのmRNA、又はポリペプチドの発現レベルを、試験化合物の不在下でのRCキナーゼのmRNA、又はポリペプチドの発現レベルと比較する。次いで、この比較に基づいて、試験化合物を発現の調節因子として同定することができる。例えば、RCキナーゼのmRNA、又はポリペプチドの発現が試験化合物の存在下でその不在下より高いとき、その試験化合物を、RCキナーゼのmRNA、又はポリペプチドの発現の刺激因子、又は促進因子として同定する。あるいは、mRNA、又はタンパク質の発現が試験化合物の存在下でその不在下より低いとき、その試験化合物を、RCキナーゼのmRNA、又はポリペプチドの発現の抑制因子として同定する。
vivoで、細胞培養物中で、又はin vitro翻訳系でポリペプチドが合成されているかどうかを判定することができる。
本発明は、患者に投与されることで治療効果を発揮できる医薬組成物をさらに提供する。本発明の医薬組成物は、RCキナーゼポリペプチド、RCキナーゼポリヌクレオチド、RCキナーゼポリペプチドに特異的に結合する抗体、又はRCキナーゼポリペプチドにおけるミメティックス(mimetics)、作動薬、拮抗薬、又は阻害薬を含む。組成物は、単独、又は安定化化合物などの少なくとも1種の他の作用物質と併用して投与でき、食塩水、緩衝食塩水、デキストロース、水を含むがこれらに限定されない、任意の生体適合性の無菌医薬担体中で投与できる。組成物は、単独で、又は他の作用物質、薬物、ホルモンのいずれかと併用して患者に投与できる。
mMのヒスチジン、0.1%〜2%のショ糖、及び2〜7%のマンニトールのいずれかもしくはすべてを含有可能な凍結乾燥された粉末であってもよい。
Publishing Co., Easton, Pa.)に見出すことができる。医薬組成物は、調製された後に、適切な容器内に配置し、指示した状態の治療のためにラベルを貼ることができる。かかるラベル表示には、投与の量、頻度、方法などを含むものと考えられる。
本発明は、開示されているバイオマーカー、すなわち開示されている配列番号1、2、3、4、5、6のいずれかのポリヌクレオチド配列を含むポリヌクレオチドマーカー、及び/又はそれによってコードされるポリペプチドマーカー、又は配列番号7、8、9、10、11、12のいずれかのポリペプチド配列を含むポリペプチドマーカーを検出することによって被験者がCOPDや他の疾患を発症するリスクがあるか否かを決定するための方法を提供する。
1つの実施態様では、COPD、特にCOPDの予測、診断、又は予後のための方法は、生物学的試料において、
(a)配列番号1、2、3、4、5、6のいずれかのポリヌクレオチド;
(b)(a)に特定されるポリヌクレオチドにストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、RCキナーゼと同じ生物学的機能を示すポリペプチドをコードするポリヌクレオチド;
(c)遺伝子コードの縮重のために(a)、及び(b)に特定されるポリヌクレオチドから逸脱した配列を有し、RCキナーゼと同じ生物学的機能を示すポリペプチドをコードするポリヌクレオチド;
(d)(a)から(c)に特定されるポリヌクレオチド配列の特異的な断片、誘導体、対立遺伝子変種のいずれかを表し、RCキナーゼと同じ生物学的機能を示すポリペプチドをコードするポリヌクレオチド;
のいずれかの検出によって実施され、かつ、(a)から(d)に特定される任意のポリヌクレオチドもしくは類似のオリゴマーを生物学的試料のポリヌクレオチド材料にハイブリダイズすることによってハイブリダイゼーション複合体を形成するステップと、該ハイブリダイゼーション複合体を検出するステップとを含む。
別の実施態様では、COPDの診断、又は予後に対する方法は、特に、
(a)配列番号1、2、3、4、5、6のいずれかのポリヌクレオチドから選択されるポリヌクレオチド;
(b)(a)に特定されるポリヌクレオチドにストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、RCキナーゼと同じ生物学的機能を示すポリペプチドをコードするポリヌクレオチド;
(c)遺伝子コードの縮重のために(a)、及び(b)に特定されるポリヌクレオチドから逸脱した配列を有し、RCキナーゼと同じ生物学的機能を示すポリペプチドをコードするポリヌクレオチド;
(d)(a)から(c)に特定されるポリヌクレオチド配列の特異的な断片、誘導体、対立遺伝子変種のいずれかを表し、RCキナーゼと同じ生物学的機能を示すポリペプチドをコードするポリヌクレオチド;
(e)(a)から(d)に特定されるポリヌクレオチド配列によってコードされるポリペプチド;
(f)配列番号7、8、9、10、11、12のいずれかのポリペプチドを含むポリペプチド;のいずれかの検出によって実施され、かつ、(a)から(d)において特定されるポリヌクレオチド、又は(e)もしくは(f)において特定されるポリペプチドと特異的に相互作用する試薬を有する生物学的試料と接触するステップを含む。
1つの実施態様では、本発明は、ポリヌクレオチドプローブが組織化されたアレイ中のDNAチップ内に固定される方法をさらに提供する。オリゴヌクレオチドは、リソグラフィーを含む種々の処理によって固体支持体に結合できる。例えば、チップは、オリゴヌクレオチド(GeneChip,
Affymetrix)を41,000個まで支持できる。本発明は、単一のチップ上にアレイ状のポリヌクレオチドマーカーを提供することによって試験の信頼度を向上させることから、COPDなどCOPDに対する利用可能な試験に比べて相当な利点を発揮する。
No.0799897;PCT No.WO97/29212;PCT No.WO97/27317;EP No.0785280;PCT No.WO97/02357;米国特許第5593839号;米国特許第5578832号;EP
No.0728520;米国特許第5599695号;EP No.0721016;米国特許第5556752号;PCT No.WO95/22058;、及び米国特許第5631734号に記載されている。さらに、アレイを用いることで遺伝子の差次的発現を検査でき、また遺伝子の機能が判定できる。例えば、本ポリヌクレオチド配列のアレイを用いることで、例えば正常細胞と異常細胞の間の発現量がいずれのポリヌクレオチド配列で異なるかが判定できる。対応する正常な試料では認められない、異常な試料における特定のメッセージの高度な発現は、COPDに特異的なタンパク質を示す可能性がある。
1つの実施態様では、本方法は、ポリヌクレオチドプローブを用いることで特に患者由来の組織における悪性細胞あるいはCOPD細胞の存在が判定されることを含む。特に、本方法は、
1)長さが少なくとも12ヌクレオチド、好ましくは少なくとも15ヌクレオチド、より好ましくは25ヌクレオチド、及び最も好ましくは少なくとも40ヌクレオチドのヌクレオチド配列と、配列番号1、2、3、4、5、6のいずれかのポリヌクレオチドのコード配列もしくはこれらに相補的な配列の一部に相補的なコード配列のすべて、又はほぼすべてとを含むポリヌクレオチドプローブを提供することと、
2)COPDにおいて差次的に発現されることと、
3)COPD患者由来の組織試料を得ることと、
4)COPDに罹患していない患者由来の第2の組織試料を提供することと、
5)ストリンジェントな条件下でポリヌクレオチドプローブを該第1、及び第2の組織試料のそれぞれのRNAと接触させることと(例えば、ノーザンブロットもしくはin
situハイブリダイゼーションアッセイ)、
6)(a)第1の組織試料のRNAとのプローブのハイブリダイゼーション量を(b)第2の組織試料のRNAとのプローブのハイブリダイゼーション量と比較することとを含む。この場合、第2の組織試料のRNAとのハイブリダイゼーション量と比較した場合の第1の組織試料のRNAとのハイブリダイゼーション量の統計的有意差は、第1の組織試料におけるCOPD、特にCOPDを示唆している。
例えばCOPDの異常細胞もしくは対応する正常細胞における発現レベルといった1種、又は複数種の「RCキナーゼ」の発現レベルと参照発現レベルとの比較は、好ましくはコンピュータシステムを利用して実施される。1つの実施態様では、発現レベルは2種の細胞において得られ、これら2組の発現レベルは、比較のためにコンピュータシステムに導入される。好ましい実施態様では、1組の発現レベルは、コンピュータシステムにおいて既存である値と比較するために、又はコンピュータシステムに入力される際にコンピュータで読み取り可能な形式で、コンピュータシステムに入力される。
vitro、又はin vivoで薬物治療を受けた被験者の細胞の発現データを入力する際、コンピュータは、入力データをコンピュータ内のデータと比較し、コンピュータ内に入力された発現データが薬物に反応性を示す被験者の細胞のデータにより類似しているか、又は薬物に反応性を示さない被験者の細胞のデータにより類似しているかを示す結果を提供するように命令される。したがって、この結果は、被験者が薬物による治療に反応性を示す傾向があるか、又はそれに反応性を示す傾向がないかを示す。
vitro、又はin vivoで薬物とともにインキュベートした細胞であってもよい。
稼動する場合、本発明のシステムに関する状況の範囲内で、遺伝子発現データを受信する手段、遺伝子発現データを比較するための手段、表示するための手段、規格化するための手段、及びクラスタリングするための手段は、本明細書において記載され、ハードウェア、又はハードウェア、及びソフトウェア内に実装された個々の機能性;本明細書において特定され、コンピュータプログラムによって命令される機能を実行するプログラム化されたコンピュータの論理回路などの部品;あるいは本明細書で記載される特定の形式においてコンピュータの機能を実行させることが可能なコンピュータプログラムを意味する実行可能な命令でコード化されたコンピュータメモリを備えたプログラム化されたコンピュータを必要とする可能性がある。
コンピュータは、外部部品に接続された内部部品を含んでもよい。内部部品は、メインメモリと相互接続されたプロセッサ要素を含んでもよい。コンピュータシステムは、200
MHz以上のクロック速度を有するIntel Pentium(登録商標)ベースのプロセッサに加え、32 MB以上のメインメモリを備えうる。外部部品は、大容量記憶装置を含んでもよく、これは1以上のハードディスク(これらは通常はプロセッサやメモリとともにパッケージ化される)であり得る。上記のハードディスクは、通常は1
GB以上の記憶容量を有する。他の外部部品として、「マウス」を例とする入力装置、又は他のグラフィック入力装置、及び/又はキーボードに加えて、モニタを例とするユーザインタフェース装置が挙げられる。さらに、プリンタ装置がコンピュータに結合できる。
95、Windows 98、Windows NTもしくはWindows XPなどのMicrosoft Windowsファミリーである。ソフトウェア部品とは、本発明に特異的な方法を実現するプログラムを補助するためにこのシステム上で利便性を発揮する共通の言語、及び機能を意味する。多くの高級、又は低級コンピュータ言語は、本発明の解析方法をプログラムするのに使用できる。命令は、稼働時間中もしくはコンパイル中に解釈可能である。好ましい言語として、C/C++、JAVA(登録商標)などが挙げられる。最も好ましくは、本発明の方法は、使用対象のアルゴリズムを含む、方程式のシンボリック入力、及び処理の高級仕様を可能にする数学的ソフトウェアパッケージ内でプログラムされ、これにより利用者が個々の方程式もしくはアルゴリズムの手続き的プログラムを作成する必要がなくなる。上記パッケージには、Mathworks(Natick,
Mass.)製Matlab、Wolfram Research(Champaign, III.)製Mathematica、又はMath Soft(Cambridge,
Mass.)製S-Plusなどが含まれる。したがって、ソフトウェア部品とは、手続き型言語、又はシンボリックパッケージにおけるプログラムとしての本発明の解析方法を意味する。好ましい実施態様では、コンピュータシステムは、COPDの1種、又は複数種の遺伝子特性の発現レベルを示す値を含むデータベースをさらに含む。データベースは、種々の細胞におけるCOPDの遺伝子特性の1種、又は複数種の発現プロファイルを含んでもよい。
さらに別の実施態様では、本発明は、例えばCOPDといった配列番号1の任意のポリヌクレオチドによってコードされた任意の1種のポリペプチドの異常な活性に関連したCOPDを発症する素因など、被験者が疾患の発症に対してリスクがあるか否かを判定するための方法を提供する。この場合、ポリペプチドの異常な活性は、
(i)マーカーポリペプチドをコードする遺伝子の完全性に影響を与える改変、又は
(ii)コードするポリヌクレオチドの誤発現の少なくとも1つを特徴とする遺伝的病変の有無を検出することによって特徴付けられる。
I.ポリヌクレオチド配列からの1種、又は複数種のヌクレオチドの欠失、
II.ポリヌクレオチド配列に対する1種、又は複数種のヌクレオチドの付加、
III.ポリヌクレオチド配列における1種、又は複数種のヌクレオチドの置換、
IV.ポリヌクレオチド配列における染色体全体の再配列、
V.ポリヌクレオチド配列の伝令RNA転写物のレベルにおける全体的改変、
VI.ゲノムDNAのメチル化パターンなどのポリヌクレオチド配列における異常な修飾、
VII.遺伝子の伝令RNA転写物の非野生型スプライシングパターンの存在、
VIII.マーカーポリペプチドの非野生型レベル、
IX.遺伝子における対立遺伝子の欠失、
X.マーカーポリペプチドの不適切な翻訳後修飾、
の少なくとも1種の存在を確認することによって検出できる。
(120))、及びNakazawaらの論文、(1994 (121))、後者は遺伝子における点突然変異の検出にとって特に有用となり得る;Abravayaらの論文、(1995,
(122))]においてプローブ/プライマーの利用を含む。単に図示される実施態様では、この方法は、(i)患者から細胞の試料を収集するステップと、(ii)ポリヌクレオチド(例えば、ゲノム、mRNA、又はその両方)を試料の細胞から単離するステップと、(iii)ポリヌクレオチド試料をポリヌクレオチド配列と特異的にハイブリダイズする1種もしくは複数種のプライマーに、ポリヌクレオチド(存在する場合)のハイブリダイゼーション、及び増幅が生じるような条件下で接触させるステップと、(iv)増幅産物の有無を検出するか、又は増幅産物の大きさを検出し、かつその長さを参照試料と比較するステップとを含む。PCR、及び/又はLCRは、本明細書において記載される突然変異の検出に用いられる技術のいずれかと組み合わせて予備増幅ステップとして利用するのが望ましいと予想される。
(124))]、Qβレプリカーゼ[Lizardi, P. M.らの論文、(1988, (125))]、又は任意の他のポリヌクレオチド増幅方法に続き、当分野の技術者に周知の技術を用いた増幅分子の検出が挙げられる。ポリヌクレオチド分子が極めて少ない数で存在する場合、これらの検出スキームは同分子の検出に特に有用である。
一態様では、本発明は、配列番号1、2、3、4、5、6のいずれかのポリヌクレオチド配列、又はこれらに相補的な配列のいずれかから選択される所定のマーカーのポリヌクレオチド由来のプローブによるin
situハイブリダイゼーションを含む。この方法は、標識されたハイブリダイゼーションプローブを、COPD、特にCOPDに罹患した可能性がある患者から得られた所定の組織型の試料、及びCOPDに罹患していない患者から得られた正常組織と接触させることと、プローブが正常組織を標識する程度よりも有意に異なる程度(例えば、少なくとも2の係数、少なくとも5の係数、少なくとも20の係数、少なくとも50の係数のいずれか)で患者の組織を標識するか否かを判定することを含む。
本明細書において開示されたヒトRCキナーゼは、先に同定されたセリン/トレオニンキナーゼと同一の目的で、又はより特異的には先に同定されたMAPKキナーゼキナーゼと同一の目的で有用でありそうである。例えば、腫瘍増殖因子ベータ(TGF-β)は、セリン/トレオニンキナーゼ活性を支配する細胞表面受容体に結合し、かつそれを活性化する種々の細胞型の増殖、及び分化を調節する。Atfiらの論文(Proc.
Natl. Acad. Sci. U.S.A. 92, 12110-04, 1995)は、TGF-βが78-kDaタンパク質(p78)セリン/トレオニンキナーゼを活性化すること;p78キナーゼがTGF-βが成長阻害因子として働く対象の細胞内に限って活性化されたことを示している。別の例はMAPKKK3であり、これはRCキナーゼと極めて密接に関連するヒトキナーゼである。MAPKKK3は、SEK、及びMEK1/2を個々に活性化することによってストレス活性化タンパク質キナーゼ(SAPK)、及び細胞外シグナル調節性タンパク質キナーゼ(ERK)経路を直接調節することで知られている。それは核因子カッパ-B(NFκ-B)依存性レポーター遺伝子からの転写をさらに増加することができる。その他の先に同定されたMAPKキナーゼキナーゼとして、c-Raf、Mos、MEKK1、B-Raf、TAK1、A-Raf、Tpl-2、MEKK2、MUK、SPRK、MAPKKK5、MEKK4、MSTなどが挙げられる。本明細書において開示されるヒトRCキナーゼは、さらに上記シグナル伝達に関与する可能性がある。したがって、その活性の調節を用いることで、上記シグナル伝達が不完全、又は無調節である障害が治療できる。
Shapiroの論文「肺の疾患、及び障害」(3d ed., New York, McGraw-Hill, 1998, pp. 659-681, 1998);Barnesの論文(Chest
117, 10S-14S, 2000)。気腫は、肺の空隙の異常な拡張を起こす肺胞壁の破壊を特徴とする。慢性気管支炎は、2年連続で各年3カ月間、慢性の喀痰を伴う咳を呈するものとして臨床上定義される。COPDでは、気道閉塞は通常、進行性であり、可逆性であるのは部分的にすぎない。COPDの進展にとって群を抜いて最も重要なリスク因子は喫煙であるが、この疾患は非喫煙者において発症する。
CHらの論文、(Am Rev Respir Dis., 145 (4 Pt 1): 911-7, 1992))。B細胞は、COPD患者の肺において抗原提示、炎症性サイトカインの産生、ならびに免疫応答を標的化し、促進し、かつ維持するIgEやIgAなどの抗体の産生において役割を担う場合がある。気道壁の肥厚、界面活性機能の障害、粘液などの分泌過多とともにマトリックス分解、及び気腫のすべては、気道やガス交換の障害を招くこの炎症性応答の続発症である可能性がある。
nodoa)(PN);混合結合組織病(MCTD);シェーグレン症候群;痛風などが挙げられる。
vitroにおいて特徴付け、そしてハイスループットな分子スクリーニングプログラムにおけるツールとして使用することで、それらの生化学的活性の化学調節物質が同定される。標的タンパク質活性の作動薬、及び/又は拮抗薬は、この方法で同定でき、ひいては抗癌活性を目的とした細胞モデル、及びin
vivoにおける疾患モデルにおいて試験可能である。生物モデルにおける反復試験によるリード化合物の最適化ならびに詳細な薬物動態分析、及び毒性分析は、薬剤開発やそれに続くヒトにおける試験のための基盤を形成する。
vivoにおける治療のために、抗体は、身体から取り出された幹細胞の調製物に添加できる。次いで細胞は、当分野に技術者に既知のようにクローン増殖の有無にかかわらず、同一もしくは別の人体において置き換え可能である。
nmolのリポソーム当たり約0.5μgのDNA、より好ましくは約106個の細胞に送達される16 nmolのリポソーム当たり約1.0μgのDNA、そしてさらにより好ましくは約106個の細胞に送達される16
nmolのリポソーム当たり約2.0μgのDNAである。好ましくは、リポソームの直径は、約100から500 nmの間、より好ましくは約150から450 nmの間、そしてさらにより好ましくは約200から400
nmの間である。
nmolのリポソームと結合され、より好ましくは約0.5μgから約5μgのポリヌクレオチドが約8 nmolのリポソームと結合され、さらにより好ましくは約1.0μgのポリヌクレオチドが約8
nmolのリポソームと結合される。
(1993));Chiouらの論文、「遺伝子治療学:直接遺伝子導入の方法、及び応用」((J. A. Wolff, ed.) (1994));Wu &
Wuの論文、(J. Biol. Chem. 263, 621-24 (1988));Wuらの論文、(J. Biol. Chem. 269, 542-46
(1994));Zenkeらの論文、(Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 87, 3655-59 (1990));Wuらの論文、(J.
Biol. Chem. 266, 338-42 (1991))に教示されている。
vivoかもしくはin vivoにおいて、抗体をコードするポリヌクレオチドが構成でき、細胞内に導入できる。
治療有効量は、当分野の技術者の能力の範囲内で十分に決定される。治療有効量の不在下の場合と比較して、治療有効量といえば細胞外マトリックスの分解を増減させる活性成分量が着目される。
vivoにおける用量は、約100 ngから約200 ng、500 ngから約50 mg、約1μgから約2 mg、約5μgから約500μg、約20μgから約100μgのDNA範囲である。
好ましくは、試薬は、試薬が存在しない場合と比較して、少なくとも約10%、好ましくは約50%、より好ましくは約75%、90%、100%のいずれかに見合う分、RCキナーゼポリヌクレオチドの発現、又はRCキナーゼポリペプチドの活性を低下させる。RCキナーゼポリヌクレオチドの発現レベル、又はRCキナーゼポリペプチドの活性を低下させるのに選択された機序の有効性は、RCキナーゼに特異的なmRNAに対するヌクレオチドプローブのハイブリダイゼーション、定量的RT-PCR、RCキナーゼポリペプチドの免疫学的検出、又はRCキナーゼ活性の測定などの当分野の技術者に周知の方法を用いて評価できる。
上記の開示は一般に本発明について記載し、本開示において列挙したすべての特許、及び出願特許は、本明細書において明確に援用される。例示目的のみで提供され、かつ本発明の範囲を限定することを意図するものではない、以下の特定の実施例を参照することによってより完全な理解を得ることができる。
(RCキナーゼ活性の検出)
FLAGタグ付きRCキナーゼポリペプチドの高レベルの発現のために、トランスフェクション試薬Polyfect(Qiagen)を用いてHEK293細胞を発現ベクターpcDNA3.1-RCキナーゼポリペプチド(FLAGエピトープ配列をそのアミノ末端に有するIDNO:1のDNA配列の発現)によってトランスフェクトした。感染の48時間後に細胞を採取し、50
mM トリス、pH 7.4、150 mM NaCI、1 mM EDTA、1% TrironX、1 mM NAF、1 mM Na3VO4、及びプロテイナーゼ阻害剤カクテル(Roche)の中に溶解した。次いで抗FLAG抗体を用いてRCキナーゼポリペプチドを溶解物から免疫沈降させた。50
mMのトリス-HCI、pH 8.0、50 mMのNaCI、5 mMのMgCl2、1 mMのジチオトレイトールの中で免疫沈降させたFLAG-RCキナーゼポリペプチドとともに、40μlの容量でin
vitroにおけるキナーゼアッセイを実施した。5μCiの(-32P)ATPで補給された1 mMのATPを4μl添加することによって反応を開始し、37℃で30分間インキュベートした。その後、試料をSDS-PAGEに施し、リン酸化タンパク質をオートラジオグラフィーによって検出した。ヒストンH1、ミエリン塩基性タンパク質であるMEK2、MKK4、及びMKK6を基質として試験した。配列番号7のアミノ酸配列を有するポリペプチドは、RCキナーゼ活性を有し、特異的に他のRCキナーゼポリペプチドであるMKK4、及びMKK6のリン酸化能を有することが示された(図8)。
(RCキナーゼポリペプチドに結合する試験化合物の同定)
グルタチオン-S-トランスフェラーゼタンパク質を含有し、かつグルタチオンが誘導化された96ウェルマイクロタイタープレートのウェル上に吸収された精製されたRCキナーゼポリペプチドを生理緩衝溶液中でpH
7.0で小分子ライブラリー由来の試験化合物と接触させる。RCキナーゼポリペプチドは、配列番号2、5、6、7のいずれかに示されるアミノ酸配列を含む。試験化合物は蛍光タグを含む。試料を5分から1時間にかけてインキュベートする。試験化合物の不在下で参照試料をインキュベートする。
(RCキナーゼ活性を低下させる試験化合物の同定)
実施例1に記載のように精製されたRCキナーゼポリペプチドを小分子ライブラリー由来の試験化合物と接触させ、そして実施例1で述べた基質、又はRCキナーゼの他の基質のいずれかを用いてRCキナーゼ活性に対してアッセイする。参照として試験化合物の不在下でRCキナーゼポリペプチドのアッセイをさらに実施する。実施例1に記載されるように、又はTrostらの論文、(J.
Biol. Chem. 275, 7373-77, 2000);Hayashiらの論文、(Biochem. Bioplzys. Res. Commun.
264, 449-56, 1999);Masureらの論文、(Eur. J. Biochem. 265, 353-60, 1999);Mukhopadhyayらの論文、(J.
Bacteriol. 181, 6615-22, 1999)に教示されるように、キナーゼ活性を測定する。
Pathway Profiling Luciferase System 2(CLONTECH)レポーター遺伝子、ならびにRCキナーゼ発現ベクターは、細胞にトランスフェクトすることによって使用できる。トランスフェクトされた細胞内のAP-1もしくはNFκBレポーター、及びRCキナーゼの存在下で強いルシフェラーゼ活性を呈するため、これらの細胞は、化合物がそのレポーター活性の間接的な測定によってRCキナーゼを阻害するか否か、その有効性を監視できる。RCキナーゼ発現細胞を小分子ライブラリー由来の試験化合物に接触させ、インターロイキン-8の産生に対してアッセイすることによって、さらにRCキナーゼ活性が間接的に監視できる。参照として、アッセイ化合物の不在下で同じアッセイを実施した。
(実施例4)
(RCキナーゼ遺伝子の発現を低下させる試験化合物の同定)
RCキナーゼを発現する発現構築物でトランスフェクトされた培養細胞に試験化合物を投与し、37℃で10から45分間インキュベートする。試験化合物の不在下で同じ時間インキュベートされた同種の培養細胞は、負の制御をもたらす。
(RCキナーゼ遺伝子産物に特異的に結合する試薬による慢性閉塞性肺疾患の治療)
ホスホロアミダイト法(Uhlmannらの論文、(Chem. Rev. 90, 534-83, 1990))を用いたPharmacia Gene
Assemblerシリーズシンセサイザ上で、配列番号1、2、3、4、5、6のいずれかの相補体から選択された少なくとも11個の隣接ヌクレオチドを含むアンチセンスRCキナーゼオリゴヌクレオチドの合成を実施する。アセンブリ、及び脱保護の後に、オリゴヌクレオチドを2回エタノール沈殿し、乾燥し、そして所望の濃度でリン酸塩で緩衝食塩水(PBS)中で懸濁する。これらのオリゴヌクレオチドの純度をキャピラリーゲル電気泳動、及びイオン交換HPLCによって試験する。Limulus
Amebocyte Assay(Bang, Biol. Bull. (Woods Hole, Mass.) 105, 361-362, 1953)を用いてオリゴヌクレオチド調製物中のエンドトクシン濃度を決定する。
(実施例6)
(マイクロアレイ解析によって検出されるRCキナーゼの疾患特異的な発現)
(標的調製)
4名の健常な個人、及び慢性閉塞性肺疾患と診断された3名の個人(Analytical Biological Services Inc. Wilmington,
DE, USA)から採取した凍結された肺組織由来のヒト全RNAをTrizol(商標)(InvitrogenCorp., Carlsbad, CA, USA)を用いて調製した。細菌制御mRNA(2.5pg/μl
AraB/entF、8.33pg/μl fixB/gnd、及び25pg/μl hisB/leuB)、及び1.0μlの0.5pモル/μl T7-(dT)24オリゴヌクレオチドプライマーを含有する最終容量12μl中の反応混合物に全RNAから各5μgずつを添加した。混合物を70℃で10分間インキュベートし、氷上で冷却した。氷上に維持した混合物とともに4μlの5×第1鎖用バッファー、2μlの0.1
M DTT、1μlの10 mM dNTP混合物、及び1μlのSuperscript(商標)IIRNアーゼH-逆転写酵素(200U/μl)を添加して最終容量20μlを調製し、混合物を42℃の水槽内で1時間インキュベートした。30μlの5×第2鎖用バッファー、3μlの10
mM dNTP混合物、4μlの大腸菌(Escherichia coli)DNAポリメラーゼI(10U/μl)、及び1μlのRNアーゼH(2U/μl)を含有する混合物内、最終容量150μl中で、16℃で2時間にわたり二本鎖cDNAを合成した。Qiagen
QIAquick精製キットを用いてcDNAを精製し、乾燥し、そして3.0μlのヌクレアーゼを含まない水、4.0μlの10倍反応用緩衝液、4.0μlの75 mM
ATP、4.0μlの75 mM GTP、3.0μlの75 mM CTP、3.0μlの75mM UTP、7.5μlの10 mMビオチン11-CTP、7.5μlの10
mMビオチン11-UTP(PerkinElmer Life Sciences Inc. Boston, MA, USA)、及び4.0μlの酵素混合物を含有するIVT反応混合物中で再懸濁した。反応混合物を37℃で14時間インキュベートし、RNeasy(登録商標)キット(Qiagen)を用いてcRNA標的を精製した。260
nmでUV吸光度を測定することによってcRNA収量を定量し、40 mMのトリス-酢酸塩(TrisOAc)pH 7.9、100 mMのKOAc、及び31.5
mMのMgOAc中で94℃で20分間にわたり断片化した。これにより、典型的には100から200塩基の大きさの範囲を有する断片化された標的が生成する。
78μlのAmershamHyb緩衝液成分A、及び130μlのAmershamHyb緩衝液成分Bを含有する260μlのハイブリダイゼーション溶液中で各UniSet
Human I Expression Bioarrayチップ(AmershamBiosciences)のハイブリダイゼーション用に10μgの断片化された標的cRNAを用いた。cRNAを変性させるために、90℃で5分間ハイブリダイゼーション溶液を加熱し、氷上で冷却した。試料を最大速度で5秒間ボルテックスし、ハイブリダイゼーションチャンバーの入口内に250μlを注入した。ハイブリダイゼーションチャンバーを擦り合わせし、スライドをISF-4-W振とう培養機(Kuhner,
Birsfelden, Switzerland)内に導入した。300 r.p.m.で振動させながら、スライドを37℃で24時間インキュベートした。
スライドをISF-4-Wシェーカーから取り出し、ハイブリダイゼーションチャンバーを各スライドから取り出した。各スライドをTNT緩衝液(0.1 M トリス-HCl
pH 7.6、0.15 M NaCl、0.05% Tween-20)中で室温ですすぎ、次いでTNT緩衝液中で42℃で60分間洗浄した。ストレプトアビジン-Cy5(AmershamBiosciences)の1:500希釈を用いて、室温で30分間シグナルを生成させた。TNT緩衝液を用いて室温で4回、各回5分間洗浄することにより、余分な色素を除去した。0.05%のTween-20中でスライドをすすぎ、窒素ガス下で乾燥させた。レーザーを635
nmに、光電子増倍管(PMT)電圧を600に、そして走査解像度を10μmに設定したAxon GenePix 4000B Scannerを用い、処理されたスライドをスキャンした。Axon
GenePixPro v4.0 Scanning Software(AmershamBiosciences)によって画像を取得し、CodeLink(商標)Expression
Analysis Software(AmershamBiosciences)を用いて解析した。
CodeLink(商標)Expression Analysis Software(AmershamBiosciences)は、Microsoft Excelでフォーマットされたスプレッドシートとして各スポットされたドットに対して自動的にシグナルデータを生成する。次いでコンピュータプログラムSpotfire
Decision Site 7.0(Spotfire Japan K.K., Tokyo, Japan)を用いてデータを比較し、正常、及びCOPDの肺における各遺伝子間の倍数差を測定した。この解析の結果、RCキナーゼ遺伝子の転写が正常な肺よりもCOPDの場合においてより高度に発現されることを認めた(図1、2)。
(RCキナーゼの組織特異的な発現)
様々な組織におけるRCキナーゼの量的発現パターンを逆転写ポリメラーゼ連鎖反応(RT-PCR)によって決定する。
Laboratories, Palo Alto, CA, USA)、正常ヒト肺一次細胞系(BioWhittaker Clonetics,
Walkersville, MD, USA)、ヒト臍帯静脈内皮細胞(HUVEC)(Kurabo, Osaka, Japan)、数種の共通の細胞系(ATCC,
Washington, DC)、及び末梢血から精製された様々な細胞における供給源から得た25μgの全RNAを一本鎖cDNAの合成に反応する鋳型として用いた。製造業者のプロトコルに準じ、オリゴ(dT)(Nippon
Gene Research Laboratories, Sendai, Japan)、及びRT-PCR用SUPERSCRIPT(商標)First-Strand
Synthesis System(Life Technologies, Rockville, MD)を用いて、一本鎖cDNAを合成した。次いでこれらの試料において、合成された一本鎖cDNAの1/1250thを定量的PCRに対する鋳型として用いた。合成済みのcDNA(Human
Immune System MTC Panel、及びHuman Blood Fractions MTC Panel、Clontech Laboratories)として追加的に試料を購入し、これらにおいては10μgのcDNAを定量的PCRに対する鋳型として用いた。
Molecular Biochemicals, Indianapolis, IN)内で定量的PCRを実施した。次いで標準曲線に適合させることによって結果を鋳型cDNAのng当たりの遺伝子転写のコピー数に変換した。標的遺伝子から予め増幅された既知の濃度のPCR産物上で定量的PCR反応を同時に実施することによって標準曲線を導出した。
1993、Adamsら, 1995、Liewら, 1994)、故にcDNA鋳型のng当たりの細胞のおおよその相対数に対する基準として利用できる。LightCycler、及び一定量(25
ug)の開始RNAを用いて遺伝子ごとの3つの別々の反応においてすべての組織試料における5種のハウスキーピング遺伝子の発現レベルを測定した。同時に反応させた既知の濃度を有する標準との比較から派生した各遺伝子に対する計算されたコピー数を記録し、すべての組織試料における遺伝子のコピー合計数のパーセンテージに変換した。各組織試料において、各遺伝子に対する合計のパーセンテージ値を計算し、標準として適宜選択された1種の組織の合計パーセンテージ値により、合計パーセンテージ値を各組織に対して分割することによって規格化係数を計算した。組織試料において特定の遺伝子の発現に対して実験によって得た値を規格化するために、取得値に試験された組織に対する規格化係数を掛けた。単一のハウスキーピング遺伝子、すなわちβ-2-低分子グロブリンに対して規格化されたヒト血液分画MTCパネル由来の組織以外の全組織に対してこの規格化方法を使用した。このことは、これらの組織における他のハウスキーピング遺伝子の発現には活性化状態に依存して幅広い変動があることに起因している。これは試験される各試料中の一本鎖cDNAの10
ng当たりのmRNAのコピー数に対する規格化値を示す。この発現プロファイリングの結果を図4、及び図5に示す。
CA, USA)を用いて全RNAを4名の健常な個人、及び慢性閉塞性肺疾患と診断された2名の個人(Analytical Biological Services
Inc.Wilmington, DE, USA)から得た凍結肺組織から調製した。次いで上記のようにcDNAを合成し、上記のように定量的PCRに対する鋳型として用いた。単一のハウスキーピング遺伝子GAPDHを用いて規格化を実施した。正常、及びCOPDの肺組織試料の間におけるRCキナーゼ遺伝子転写物の異なる発現レベルを図3に示す。これは試験対象の各試料中で測定されるGAPDH転写に対するRCキナーゼ転写の比率について示す。
(RCキナーゼcDNAのクローニング)
公的データベース(ジーンバンク受入番号NM_025052、2022塩基長)内で利用可能なRCキナーゼのヌクレオチド配列とこの遺伝子座にマッチするESTとの間の差異に起因して、RACE(cDNA両末端の迅速な増幅)を用いて正確な完全長配列を得るための試みを行った。GeneRacer(商標)キット(Invitrogen
Corp., Carlsbad, CA, USA)を用いてこの目的のためのRACE用鋳型をヒト肺組織から合成した。次いで遺伝子に特異的なオリゴヌクレオチドプライマー5’-CCCTCGGTGTGCTCCGATGTAAAA-3’(配列番号14)、及びキットに含まれるGeneRacer5’プライマーを用いてRCキナーゼcDNAのPCR増幅を実施した。PCR増幅によって約5千塩基長の産物を産生した。これはジーンバンクデータベース内に登録された転写物よりも有意に長いことを示す。
Cycle Sequencing Reaction Kit(Applied Biosystems, Foster City, CA)を用いてサイクルシークエンスを実施し、さらにABIPrism377シークエンシングシステム(Applied
Biosystems)上で解析した。
COPDの発症がタバコの煙に含有される刺激物質の長期にわたる反復吸入と強い相関があることから、本出願人らはRCキナーゼの発現に関する化合物を含む様々な細胞ストレスの影響を判定するための解析を行った。図6、及び7に示すように、95
mM塩化カリウム(KCl)を用いて細胞を高浸透圧ストレス下に置く処理を細胞に施した後、細胞系のHEK293、Jurkat、及びDaudiにおけるRCキナーゼの発現はかなり増加した。さらに、Jurkat細胞系(及び程度は低下するがDaudi細胞系)は、500μmの過酸化水素(H2O2)、すなわち細胞を酸化ストレス下に置き、B細胞の特異的なT細胞に対する刺激能を傷害する点が報告されている処理に反応してそのRCキナーゼの発現を増加させた。高浸透圧、及び酸化ストレスに反応した細胞系におけるRCキナーゼの上記アップレギュレーションは、COPD患者の肺におけるRCキナーゼのより高度な発現がタバコの煙中の刺激物質によって誘発される細胞ストレス、又はこれらの刺激物質に対する炎症性反応によって誘発されるストレスの結果である可能性があることを示唆している。
RCキナーゼの過剰発現が転写因子に対する活性化能を有しているかどうか判定するために、本出願人らはルシフェラーゼレポーター遺伝子アッセイを用いて特定の転写因子の活性化を測定した。図9に示すように、RCキナーゼのトランスフェクション、及び過剰発現は、転写因子であるAP-1、及びNFκBの活性化を招く。転写因子NFATの活性化はほとんど検出できなかった。次いで本出願人らは、マイクロアレイを用いて転写因子活性化のこの結果について検討することにより、RCキナーゼが過剰発現する場合にどの遺伝子が転写の増加を示すかを解析した。その結果、ケモカインインターロイキン-8の発現はRCキナーゼでトランスフェクトされた細胞内で著しく増加することを認めた。この結果を確認するために、酵素結合免疫吸着アッセイによって、RCキナーゼ発現ベクターでトランスフェクトされた細胞由来、及び空ベクターでトランスフェクトされた細胞由来の培地内におけるインターロイキン-8の量を比較した。図10に示すように、RCキナーゼの過剰発現は、これらの細胞によるインターロイキン-8の産生において約35倍の増加を引き起こす。したがって、図11に図示するように、RCキナーゼは、細胞ストレスによってアップレギュレートされ、活性化されるものとみられ、それからMKK4(及び程度は低下するがMKK6)をリン酸化し、転写因子であるAP-1、及びNFκBの活性化を引き起こす。このシグナル伝達系の活性化の結果として、インターロイキン-8の産生が増加し、COPDの病変における役割を担う好中球などの炎症性細胞の動員を招く。
RCキナーゼを発現する細胞によるインターロイキン-8産生の測定
ヒトIL-8に対するDuoset ELISA Development System(Genzyme Diagnostics, Cambridge, MA)を用い、MAXISORP
96ウェル平底プレート(Nunc, Roskilde, Denmark)を用いてRCキナーゼを発現するHEK293細胞の培地内のh-IL-8レベルを測定した。
BSA-PBSとともに室温で1時間ブロッキングした。次いでプレートを室温で2時間インキュベートした。300μlのPBS-0.05% Tweenによってプレートを2回洗浄後、PBS-0.1%
BSA-0.05% Tweenによって希釈した100μlの二次抗体0.25μg/mlをウェルに添加し、プレートを室温でさらに1時間インキュベートした。次いで300μlのPBS-0.05%
Tweenによってプレートを3回洗浄した。PBS-0.1% BSA-0.05% Tweenによって希釈された100μlの検出抗体(ストレプトアビジン-HRP)0.25μg/mlを添加し、プレートを室温で1時間インキュベートした。300μlのPBS-0.05%
Tweenによってプレートを4回洗浄後、ペルオキシターゼ介在色(Sumitomo Bakelite, Tokyo, Japan)を用いてプレートを発色させ、OD
450 nmで吸光度を測定した。次いで測定された吸光度を同時に調製したIL-8の連続希釈標準液の吸光度と比較することによって、インターロイキン-8の濃度を算出した。
Claims (26)
- RCキナーゼポリペプチドをコードする単離ポリヌクレオチドであって、
a)配列番号7、8、9、10、11、又は12で示されるアミノ酸配列と少なくとも約50%同一である各アミノ酸配列、及び配列番号7、8、9、10、11、又は12で示されるアミノ酸配列からなる群から選択されるアミノ酸配列を含むRCキナーゼポリペプチドをコードするポリヌクレオチド;
b)配列番号1、2、3、4、5、又は6の配列を含むポリヌクレオチド;
c)ストリンジェントな条件下で、(a)、及び(b)で特定されるポリヌクレオチドとハイブリダイズするポリヌクレオチド;
d)遺伝コードの縮重により、その配列が、(a)〜(c)で特定されるポリヌクレオチド配列から逸脱しているポリヌクレオチド;並びに
e)(a)〜(d)で特定されるポリヌクレオチド配列の断片、誘導体、又は対立遺伝子変種に相当するポリヌクレオチド、からなる群から選択される、前記単離ポリヌクレオチド。 - 請求項1に記載のいずれかのポリヌクレオチドを含む発現ベクター。
- 請求項2に記載の発現ベクターを含む宿主細胞。
- 請求項1に記載のポリヌクレオチドによってコードされる実質的に精製されたRCキナーゼポリペプチド。
- RCキナーゼポリペプチドを製造する方法であって:
a)前記RCキナーゼポリペプチドの発現に適した条件下で請求項3に記載の宿主細胞を培養するステップ;及び
b)前記宿主細胞培養物から前記RCキナーゼポリペプチドを回収するステップを含む、前記方法。 - 生体試料中でRCキナーゼポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを検出する方法であって:
a)請求項1に記載のいずれかのポリヌクレオチドを生体試料の核酸物質とハイブリダイズさせ、それによってハイブリダイゼーション複合体を形成するステップ;及び
b)前記ハイブリダイゼーション複合体を検出するステップを含む、前記方法。 - ハイブリダイゼーションの前に、前記生体試料の核酸物質を増幅する、請求項6に記載の方法。
- 請求項1に記載のポリヌクレオチド、又は請求項4に記載のRCキナーゼポリペプチドを検出する方法であって:
生体試料を、前記ポリヌクレオチド、又は前記RCキナーゼポリペプチドと特異的に相互作用する試薬と接触させるステップを含む、前記方法。 - 請求項6から8のいずれか一項に記載の方法を行うための診断キット。
- RCキナーゼの活性を低下させる作用物質をスクリーニングする方法であって:
試験化合物を、請求項1に記載のいずれかのポリヌクレオチドによってコードされている、いずれかのRCキナーゼポリペプチドと接触させるステップと;
前記試験化合物と前記RCキナーゼポリペプチドの結合を検出するステップとを含み、前記ポリペプチドと結合する試験化合物を、RCキナーゼの活性を低下させる潜在的な治療用作用物質として同定する、前記方法。 - RCキナーゼの活性を制御する作用物質をスクリーニングする方法であって:
試験化合物を、請求項1に記載のいずれかのポリヌクレオチドによってコードされているRCキナーゼポリペプチドと接触させるステップと;
前記ポリペプチドのRCキナーゼ活性を検出するステップとを含み、前記RCキナーゼ活性を増大させる試験化合物を、前記RCキナーゼの活性を増大させる潜在的な治療用作用物質として同定し、かつ前記ポリペプチドのRCキナーゼ活性を低下させる試験化合物を、前記RCキナーゼの活性を低下させる潜在的な治療用作用物質として同定する、前記方法。 - RCキナーゼの活性を制御する作用物質をスクリーニングする方法であって:
試験化合物を、請求項1に記載のいずれかのポリヌクレオチドによってコードされるRCキナーゼポリペプチド、及びMKK4と接触させるステップと;及び
MKK4をリン酸化する前記ポリペプチドのRCキナーゼ活性を検出するステップを含み、前記RCキナーゼ活性を増大させる試験化合物を、前記RCキナーゼの活性を増大させる潜在的な治療用作用物質として同定し、かつ前記ポリペプチドのRCキナーゼ活性を低下させる試験化合物を、前記RCキナーゼの活性を低下させる潜在的な治療用作用物質として同定する、前記方法。 - RCキナーゼの活性を低下させる作用物質をスクリーニングする方法であって:
試験化合物を、請求項1に記載のいずれかのポリヌクレオチドと接触させるステップ、及び前記試験化合物と前記ポリヌクレオチドの結合を検出するステップとを含み、前記ポリヌクレオチドと結合する試験化合物を、RCキナーゼの活性を低下させる潜在的な治療用作用物質として同定する、前記方法。 - RCキナーゼの活性を低下させる方法であって:
細胞を、請求項1に記載のいずれかのポリヌクレオチド、又は請求項4に記載のいずれかのRCキナーゼポリペプチドと特異的に結合する試薬と接触させるステップを含み、それによってRCキナーゼの活性を低下させる、前記方法。 - RCキナーゼポリペプチド、又はポリヌクレオチドの活性を調節する試薬であって、請求項10から12のいずれか一項に記載の方法によって同定される、前記試薬。
- 請求項2に記載の発現ベクター、又は請求項14に記載の試薬、及び医薬として許容し得る担体を含む、医薬組成物。
- 疾患においてRCキナーゼの活性を調節するための、請求項15に記載の医薬組成物の使用。
- 前記疾患が慢性閉塞性肺疾患、癌、又は細胞のシグナル伝達に欠陥がある疾患である、請求項17に記載の使用。
- RCキナーゼ遺伝子の発現レベル、又はゲノム核酸配列の検出による、呼吸器疾患の予測、診断、又は予後診断の方法。
- 前記呼吸器疾患が慢性閉塞性肺疾患、癌、又は細胞のシグナル伝達に欠陥がある疾患である、請求項19に記載の方法。
- 前記検出の方法が、PCR、アレイ、又はビーズの使用を含む、請求項19、又は20に記載の方法。
- 少なくとも1種のマーカーの検出によるCOPDの予測、診断、又は予後診断の方法であって:
a)配列番号1、2、3、4、5、又は6の配列を含むポリヌクレオチド、又はポリヌクレオチドアナログ;
b)ストリンジェントな条件下で、(a)で特定されるポリヌクレオチドとハイブリダイズし、RCキナーゼと同じ生物学的機能を示すポリペプチドをコードするポリヌクレオチド、又はポリヌクレオチドアナログ;
c)遺伝コードの縮重により、その配列が、(a)、及び(b)で特定されるポリヌクレオチドから逸脱し、RCキナーゼと同じ生物学的機能を示すポリペプチドをコードする、ポリヌクレオチド、又はポリヌクレオチドアナログ;
d)(a)〜(c)で特定されるポリヌクレオチド配列の特定の断片、誘導体、又は対立遺伝子変種に相当し、RCキナーゼと同じ生物学的機能を示すポリペプチドをコードするポリヌクレオチド、又はポリヌクレオチドアナログ;
e)(a)〜(d)で特定されるポリヌクレオチド、又はポリヌクレオチドアナログの配列によってコードされる精製ポリペプチド;及び
f)配列番号7、8、9、10、11、又は12の配列の少なくとも1つを含む精製ポリペプチド、から選択される少なくとも1種のマーカーを検出することを特徴とする、前記方法。 - 少なくとも2種のマーカーの検出によるCOPDの予測、診断、又は予後診断の方法であって:
a)配列番号1、2、3、4、5、又は6の配列を含むポリヌクレオチド、又はポリヌクレオチドアナログ;
b)ストリンジェントな条件下で、(a)で特定されるポリヌクレオチドとハイブリダイズし、かつRCキナーゼと同じ生物学的機能を示すポリペプチドをコードする、ポリヌクレオチド、又はポリヌクレオチドアナログ;
c)遺伝コードの発生により、その配列が、(a)、及び(b)で特定されるポリヌクレオチドから逸脱し、RCキナーゼと同じ生物学的機能を示すポリペプチドをコードするポリヌクレオチド、又はポリヌクレオチドアナログ;
d)(a)〜(c)で特定されるポリヌクレオチド配列の特定の断片、誘導体、又は対立遺伝子変種に相当し、RCキナーゼと同じ生物学的機能を示すポリペプチドをコードするポリヌクレオチド、又はポリヌクレオチドアナログ;
e)(a)〜(d)で特定されるポリヌクレオチドの配列、又はポリヌクレオチドアナログによってコードされる精製ポリペプチド;及び
f)配列番号7、8、9、10、11、又は12の配列を含む精製ポリペプチド、から選択される少なくとも2種のマーカーを検出することを特徴とする、前記方法。 - 請求項19から23のいずれか一項に記載の方法を行うための診断キット。
- COPDの予測、診断、又は予後診断のための組成物であって:
a)i.配列番号1、2、3、4、5、又は6の配列の少なくとも1つを含むポリヌクレオチド、又はポリヌクレオチドアナログ;
ii.ストリンジェントな条件下で、(i)で特定されるポリヌクレオチドとハイブリダイズし、RCキナーゼと同じ生物学的機能を示すポリペプチドをコードするいずれかのポリヌクレオチド、又はポリヌクレオチドアナログ;
iii.遺伝コードの縮重により、その配列が、(i)、及び(ii)で特定されるポリヌクレオチドから逸脱し、RCキナーゼと同じ生物学的機能を示すポリペプチドをコードするポリヌクレオチド、又はポリヌクレオチドアナログ;
iv.(i)〜(iii)で特定されるポリヌクレオチド配列の特定の断片、誘導体、又は対立遺伝子変種に相当し、RCキナーゼと同じ生物学的機能を示すポリペプチドをコードするポリヌクレオチド、又はポリヌクレオチドアナログ;
v.(i)〜(iv)で特定されるポリヌクレオチド、又はポリヌクレオチドアナログの配列によってコードされるポリペプチド;及び
vi.配列番号7、8、9、10、11、又は12の配列の少なくとも1つを含むポリペプチド、
についての検出作用物質、あるいは
b)i.配列番号1、2、3、4、5、又は6の配列の少なくとも1つを含むいずれかのポリヌクレオチド;
ii.ストリンジェントな条件下で、(i)で特定されるポリヌクレオチドとハイブリダイズし、RCキナーゼと同じ生物学的機能を示すポリペプチドをコードするいずれかのポリヌクレオチド;
iii.遺伝コードの縮重により、その配列が、(i)、及び(ii)で特定されるポリヌクレオチドから逸脱し、RCキナーゼと同じ生物学的機能を示すポリペプチドをコードするポリヌクレオチド;
iv.(i)〜(iii)で特定されるポリヌクレオチド配列の特定の断片、誘導体、又は対立遺伝子変種に相当し、RCキナーゼと同じ生物学的機能を示すポリペプチドをコードするポリヌクレオチド;
v.(i)〜(iv)で特定されるポリヌクレオチドの配列によってコードされるポリペプチド;及び
vi.配列番号7、8、9、10、11、又は12の配列の少なくとも1つを含むポリペプチド、から選択される少なくとも2種のマーカーについての少なくとも2種の検出作用物質を含む、前記組成物。 - 複数のポリヌクレオチド、又はポリヌクレオチドアナログを含むアレイであって:それぞれのポリヌクレオチドが、
a)配列番号1の該配列の少なくとも1つを含むポリヌクレオチド、又はポリヌクレオチドアナログ;
b)ストリンジェントな条件下で、(a)で特定されるポリヌクレオチドとハイブリダイズし、RCキナーゼと同じ生物学的機能を示すポリペプチドをコードするポリヌクレオチド、又はポリヌクレオチドアナログ;
c)遺伝コードの縮重により、その配列が、(a)、及び(b)で特定されるポリヌクレオチドから逸脱し、RCキナーゼと同じ生物学的機能を示すポリペプチドをコードするポリヌクレオチド、又はポリヌクレオチドアナログ;及び
d)(a)〜(c)で特定されるポリヌクレオチド配列の特定の断片、誘導体、又は対立遺伝子変種に相当し、RCキナーゼと同じ生物学的機能を示すポリペプチドをコードするポリヌクレオチド、又はポリヌクレオチドアナログ、から選択され、固体支持体と結合している、前記アレイ。
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