JP2006513171A - オートクライン成長因子受容体抗体および方法 - Google Patents
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Abstract
Description
抗PCDGF受容体抗体は、インビトロ、インビボいずれでも細胞に供給することが可能である。インビトロ応用では、抗PCDGF受容体抗体は、通常、約0.01 ngから約500 μg/ml、好ましくは約10 ngから約100 μg/mlの範囲の濃度で細胞培養液に添加することが可能である。抗体は、単独で、または、同じ病気に向けられた他の治療薬と共に投与されてもよい。細胞は、抗PCDGF受容体抗体または抗体断片をコードするDNAまたはRNA、あるいは、そのようなDNAまたはRNA配列を含むベクターでトランスフェクトすることも可能である。トランスフェクト細胞は、任意の適当な技術を用いて(例えば、誘導性プロモーター、および多数プラスミドコピー)、抗PCDGF受容体抗体または抗体断片を製造するように誘導することが可能である。
一つの実施態様において、PCDGF受容体抗体は、PCDGF誘発性サイクリンD1発現を特異的に阻止する。図4に示すように、PCDGFとエストラジオールはいずれも、MCF-7細胞においてサクリンD1発現を刺激する。抗PCDGF受容体抗体6G8は、PCDGF誘発性サイクリンD1発現を特異的に阻止するが、エストラジオール誘発性サイクリンD1発現は阻止しない。図4のレーン4と5を比較されたい。図5は、抗PCDGF受容体抗体5B4が、MCF-7細胞において、PCDGF誘発性サイクリンD1発現を特異的に阻止するところを示す。抗PCDGF受容体抗体はまた、MAPKのPCDGF誘発性リン酸化をも阻止する。図6に示すように、抗フォスフォp44/p42抗体によるウェスタンブロット分析により、PCDGFはMAPKのリン酸化を誘発する(レーン2)。抗PCDGF受容体抗体(例えば6G8)の添加は、MAPKのPCDGF誘発性リン酸化を阻止する(レーン4)。抗PCDGF抗体単独では、MAPKのリン酸化を誘発しない。
1x105個/ウェルのMCF-7細胞を96ウェルプレートに撒き、5%CO2中にて37℃で一晩インキュベートした。精製抗id-PCDGFmAb 6G8, 2F8, 1E1, 2C1、および3B2を、DMEM, 5%FBSにて50 μg/mlに希釈した。200 μl/ウェルの各モノクロナール抗体(mAb)を、二重ウェルに加え、室温で1時間インキュベートした。次に、細胞をPBSにて3回洗浄し、1:2000希釈率の、西洋ワサビペルオキシダーゼ(”HRP”)に接合したヤギ抗マウスIgGまたはIgM(6G8に対してのみ)とインキュベートした。さらにPBSによる3回の洗浄後、TMBマイクロウェル成分ペルオキシダーゼ基質を各ウェルに加えた。プレートは、620ナノメータの波長に設定されたプレートリーダーにて読み取った。抗PCDGF受容体抗体はMCF-7細胞表面を染めた(図1)。
固定MCF-7細胞を3%BSA/PBSにてブロックし、10 μg/mlの抗PCDGF受容体抗体6G8と、3%BSA/PBS中で25℃で1時間インキュベートした。3回の洗浄後、細胞を、HRP接合ヤギ抗マウスIgMと25℃で1時間インキュベートした。さらに1回の洗浄後、細胞をHRP基質とインキュベートした。MCF-7細胞は6G8によって特異的に染められた(図2)。
正常乳房の組織切片(左下パネル)と乳ガンの組織切片(右上と右下パネル)を、前述の免疫組織化学的技術を用いて、10 μg/mlの6G8 mAbによって染色した。ヒトの正常乳房組織では目立った染色は観察されなかった。一方、抗PCDGF受容体抗体6G8は、図7に示すように、ガン組織を特異的に染色した。
精製PCDGFタンパクをPBSで希釈し、100 ng/ウェルおよび50 ng/ウェルの濃度で96ウェルELISAプレートにコートした。この処置されたプレートを4℃で一晩インキュベートした。PBSで3回洗浄した後、プレートを、室温で1時間5%脂肪無添加ミルクPBSでブロックした。PCDGF受容体mAbの2 μg/ml精製、または1:10希釈のBioRx液を各ウェルに加え、室温で1時間インキュベートした。このプレートをPBSで3回洗浄し、さらに1時間、HRP接合ヤギ抗マウスIgG二次抗体とインキュベートした。PBSによるさらに3回の洗浄後、TMBマイクロウェル1成分ペルオキシダーゼ基質を各ウェルに加えた。プレートは、620ナノメータの波長に設定されたプレートリーダーにて読み取った。図3に示すように、抗PCDGF受容体抗体はPCDGFには結合しなかった。
DME/F12培養液プラス5%FBSにおいて、2x105個/mlのMCF-7細胞を6ウェルプレートに撒き一晩インキュベートした。この細胞培養液を、5%木炭除去処理FBSを添加したフェノールレッド無添加DMEM/F12によって置換し、1 μMタモキシフェンで48時間処理することにより同期化した。次に、この細胞培養液を、血清無添加、フェノールレッド無添加のDME/F12によって置換し、10-9Mエストラジオール(E2)、200 ng/ml PCDGF、または6G8 (50 μg/ml)単独、またはE2またはPCDGFにて5時間処理した。処理後、細胞を、RIPAバッファープラスプロテアーゼ阻害剤によって溶解した。60 μgの全体細胞溶解物を10%SDS-PAGEゲルで展開し、タンパクをニトロセルロース膜に電気転送した。サイクリンD1発現のブロット検出を、抗サイクリンD1/2クローン5D4モノクロナール抗体を用いて実行した(図4)。図4に示されるように、PCDGFまたはE2はMCF-7細胞においてサイクリンD1発現を誘発した。抗PCDGF受容体抗体単独では、サイクリンD1発現に対して目立った作用をもたらさない。しかしながら、6G8の添加は、E2またはPCDGFいずれによって誘発されるサイクリンD1発現も抑制する。
DME/F12培養液プラス5%FBSにおいて、2x105個/mlのMCF-7細胞を6ウェルプレートに撒き一晩インキュベートした。この細胞培養液を、5%木炭除去処理FBSを添加したフェノールレッド無添加DMEM/F12によって置換し、1 μMタモキシフェンで48時間処理することにより同期化した。次に、この細胞培養液を、血清無添加、フェノールレッド無添加のDME/F12によって置換し、200 ng/ml PCDGF、または5B4 (100 μg/ml)および5B4とPCDGFにて5時間処理した。処理後、細胞を、RIPAバッファープラスプロテアーゼ阻害剤によって溶解した。60 μgの全体細胞溶解物を10%SDS-PAGEゲルで展開し、タンパクをニトロセルロース膜に電気転送した。サイクリンD1発現のウェスタンブロット検出は、抗サイクリンD1/2クローン5D4モノクロナール抗体を用いて実行した。抗PCDGF抗体は、PCDGF誘発性サイクリンD1発現を阻止する(図5)。
DME/F12培養液プラス5%FBSにおいて、2x105個/mlのMCF-7細胞を6ウェルプレートに撒き一晩インキュベートした。この細胞培養液を、5%木炭除去処理FBSを添加したフェノールレッド無添加DMEM/F12によって置換し、1日培養した。次に、この細胞培養液を、血清無添加、フェノールレッド無添加の培養液によって置換しさらに1日培養した。PCDGF(200 ng/ml)、6G8(50 μg/ml)、または6G8付きPCDGFによって10分処理後、細胞を、RIPAバッファープラスプロテアーゼ阻害剤によって溶解した。60 μgの全体細胞溶解物を10%SDS-PAGEゲルで展開し、タンパクをニトロセルロース膜に電気転送した。フォスフォ-MAPK発現のウェスタンブロット検出は、抗フォスフォ-p44/42MAPK(Thr202/Thr204)E10モノクロナール抗体を用いて実行した(図6)。コントロールレーンでは、フォスフォリル化MAPKは検出されなかった。PCDGFは、細胞における最重要シグナルタンパクであるMAPKのリン酸化を刺激した。6G8抗体単独は作用を及ぼさなかった。しかしながら、6G8の添加は、PCDGF誘発によるMAPKのリン酸化を阻止した。
DME/F12培養液プラス5%FBSにおいて、MCF-7細胞を105個/ウェルで24ウェルプレートに撒いた。2日後、この培養液を、5%木炭除去処理FBSを添加したフェノールレッド無添加DMEM/F12によって置換した。さらに24時間のインキュベーション後、この培養液を、血清無添加、フェノールレッド無添加のDME/F12培養液によって置換した。200 ng/mlのPCDGF、または50 μg/mlの6G8、4H11、または50 μg/ml の非免疫IgGを、3重にウェルに加えた。24時間後、3Hチミジンを加え、5時間の標識処理後、細胞を溶解し、放射活性を、液体シンチレーションカウンターにてカウントした。図8に示すように、抗PCDGF受容体抗体は、MCF-7細胞の増殖を有意に減少させた。
PCDGFまたはPCDGF受容体抗体のいずれかに結合する細胞のパーセンテージを定量するために、各種腫瘍細胞系統をテストした。細胞は、2 mM EDTAと0.5%ウシ血清アルブミンを含むPBSに懸濁し、精製PCDGF、またはPCDGF受容体抗体6G8のいずれかと、室温で1時間インキュベートした。精製PCDGFはビオチンで標識した。PCDGF受容体抗体6G8はビオチンで標識した。下の表1に示すように、PCDGF受容体抗体6G8は、MCG-7(乳ガン)、O4EM(乳ガン)、HL60(ヒト急性前骨髄球白血病)、ARP-1(ヒト多発性骨髄腫)、およびRPMI9226(ヒト多発性骨髄腫)を含む各種細胞系統において、高いパーセンテージの細胞に顕著に結合することが可能であった。この結果は、これらの細胞表面におけるPCDGF受容体の存在を示す。さらに、ビオチニル化6G8に結合した同じ細胞が、ビオチニル化PCDGFに結合することが可能であった。
Claims (11)
- PCDGF受容体を発現する細胞の表面に結合し、そのPCDGF受容体に対するPCDGFの結合を妨害することが可能な抗体、または抗体断片を含む組成物。
- 抗PCDGF受容体抗体または抗体断片、および細胞傷害性分子を含む組成物であって、前記抗PCDGF受容体抗体または抗体断片は、前記細胞傷害性分子に付着している、または結合が可能であることを特徴とする組成物。
- PCDGFの生物活性を抑制する方法であって、抗PCDGF受容体抗体または抗体断片を、PCDGF受容体を発現する細胞と接触させることを含み、それによって前記抗体または断片がPCDGFの生物活性を抑制することを特徴とする方法。
- 腫瘍細胞増殖を抑制する方法であって、腫瘍形成細胞を、抗PCDGF受容体抗体または抗体断片と接触させることを含み、それによって前記抗体または断片が腫瘍細胞増殖を抑制することを特徴とする方法。
- PCDGF受容体を発現する腫瘍形成細胞の増殖を抑制する方法であって、前記腫瘍形成細胞に抗PCDGF受容体抗体または抗体断片を、前記腫瘍形成細胞の増殖を少なくとも約60%低下させるのに十分な量において接触させることを含む方法。
- 6G8(ATCCアクセス番号PTA-5263)および5A8(ATCCアクセス番号PTA-5594)から成るグループから選ばれるハイブリドーマ細胞系統によって生産される、モノクロナール抗PCDGF受容体抗体または抗体断片。
- 抗イディオタイプ抗体または抗体断片を製造する方法であって、6B3(ATCCアクセス番号PTA-5262)、6B2(ATCCアクセス番号PTA-5261)、6C12(ATCCアクセス番号PTA-5597)、5B4(ATCCアクセス番号PTA-5260)、5G6(ATCCアクセス番号PTA-5595)、4D1(ATCCアクセス番号PTA-5593)、3F8(ATCCアクセス番号PTA-5591)、3F5(ATCCアクセス番号PTA-5259)、3F4(ATCCアクセス番号PTA-5590)、3G2(ATCCアクセス番号PTA-5592)、および2A5(ATCCアクセス番号PTA-5589)から成るグループから選ばれるハイブリドーマ細胞系統によって生産されるモノクロナール抗PCDGF抗体または抗体断片によって動物を免疫化すること、前記免疫化された動物から脾臓細胞を単離すること、前記脾臓細胞からハイブリドーマを生産すること、および、前記ハイブリドーマをスクリーニングし、PCDGF受容体を発現する細胞の表面に結合し、そのPCDGF受容体に対するPCDGFの結合を妨害することが可能な抗イディオタイプ抗体または抗体断片を特定することを含む方法。
- 抗イディオタイプ抗体または抗体断片を製造する方法であって、PCDGFによって動物を免疫化すること、前記免疫化された動物から脾臓細胞を単離すること、前記脾臓細胞からハイブリドーマを生産すること、および、前記ハイブリドーマをスクリーニングし、PCDGF受容体を発現する細胞の表面に結合することが可能な、抗イディオタイプ抗体または抗体断片を特定することを含む方法。
- 抗PCDGF受容体抗体または抗体断片を製造する方法であって、PCDGF受容体を過剰発現する細胞、またはPCDGF受容体を過剰発現する細胞から得られた細胞断片によって動物を免疫化すること、前記免疫化された動物から脾臓細胞を単離すること、前記脾臓細胞からハイブリドーマを生産すること、および、前記ハイブリドーマをスクリーニングし、PCDGF受容体を発現する細胞の表面に結合することが可能な、抗PCDGF受容体抗体または抗体断片を特定することを含む方法。
- PCDGF受容体を有する腫瘍形成細胞、その細胞の表面およびPCDGF受容体に結合する抗体または抗体断片とを含む組成物。
- 腫瘍形成傾向を診断する方法であって、腫瘍形成組織標本または生物液におけるPCDGF受容体のレベルを測定すること、対応する正常または末梢組織におけるPCDGF受容体のレベルを測定すること、および、前記腫瘍形成組織標本または生物液におけるPCDGF受容体の測定レベルが、対応する正常または末梢組織におけるレベルと比較して、腫瘍形成傾向を示すに十分なほどの量よりも高いかどうかを判定することによって腫瘍形成傾向を診断することを含む方法。
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