JP2006507817A - 細胞表面タンパク質のシグナル伝達活性を活性化する分子の存在および／またはレベルを決定するための遺伝子レポーターアッセイ、キット、および細胞 - Google Patents

Abstract

本発明は、商品化できる細胞、並びに遺伝子レポーターアッセイ方法および、細胞表面タンパク質のシグナル伝達活性を活性化する分子の存在および／またはレベルを決定するためにこの細胞を使用するキットに関する。この細胞はその意図される目的のために十分に長い寿命を有し、その有用な寿命の終わりに、またはその使用すなわちアッセイの終わりに、すぐに細胞は細胞死を起こすようにこの細胞を処理する。

Description

関連出願のクロスリファレンス
本出願は、２００２年１０月４日に出願された米国仮特許第６０／４１５，８１８号の優先権を主張し、その内容の全体が参照として本明細書に組み入れられる。

発明の背景
発明の分野
本発明は、細胞表面タンパク質のシグナル伝達活性を活性化する分子のサンプル中の存在および／またはレベルを決定するための遺伝子レポーターアッセイおよびキットに関する。本発明は、更に該アッセイで用いることができる細胞および該細胞を調製するための方法に関する。

従来技術の説明
細胞表面タンパク質により細胞外シグナルの細胞内伝達が可能になる。細胞表面タンパク質は真核および原核細胞に細胞外シグナルを検出し、そして最終的に細胞応答または協調する組織もしくは器官応答に至る様式で細胞内にこのようなシグナルを伝達するための手段を細胞に提供する。細胞表面タンパク質は、特異的細胞内経路を介して細胞外環境に関する情報を細胞内伝達することにより特定の刺激に対する適切な応答を誘起する。応答は即時的および一過性であり、緩慢でおよび持続性であり、またはその混合型でもよい。多様な膜表面タンパク質の配置のために、真核細胞はその環境に対して極めて鋭敏である

細胞外シグナル分子、例えばサイトカイン、成長因子、ホルモン、血管拡張物質、および神経伝達物質は、少なくとも部分的には細胞表面タンパク質との相互作用を介してその効果を奏する。例えばいくつかの細胞外シグナル分子は２次メッセンジャー、例えばｃＡＭＰのレベルの変化を介して標的遺伝子の転写に変化を引き起こす。その他のシグナルは遺伝子、例えば制御タンパク質をコードする前初期遺伝子の発現を活性化することにより遺伝子発現を間接的に変化させ、これが今度は転写制御タンパク質をコードするその他の遺伝子の発現を活性化する。その他の細胞外シグナル分子は、遺伝子の特定のセットの転写を増強する潜在的な細胞質性の転写のシグナルトランスデューサーおよびアクチベーター（ＳＴＡＴ）タンパク質の活性化を引き起こす。

細胞表面レセプターおよびイオンチャネルは、細胞外シグナルに応答し、そしてこの多様な遺伝子発現および応答を導く事象を開始する細胞表面タンパク質に含まれる。イオンチャネルおよび表面局在レセプターは、偏在性で、そして生理学的に重要な細胞表面膜タンパク質である。これらは種々のイオンおよび化学物質の細胞内レベルの制御において中心的な役割を果たし、その多くは細胞生存性および機能に重要である。

細胞表面レセプター
細胞表面局在レセプターは、細胞外シグナリング分子に結合するか、または細胞外環境を変化させ、そしてシグナル伝達経路を介してシグナルを伝達して細胞応答を起こす膜貫通タンパク質である。多くの細胞内経路の誘導の開始工程として、細胞表面レセプターは循環シグナル分子、例えばサイトカイン、成長因子、およびホルモン等に結合する。レセプターは、構造基盤で、または誘導される経路の特定の型に基づいて分類される。これらのレセプターのクラスの中で、サイトカインレセプターのクラスには成長因子に結合し、そして固有のチロシンキナーゼ活性を有するもの、例えばヘパリン結合成長因子（ＨＢＧＦ）レセプター、免疫グロブリンレセプタースーパーファミリー、ヘマトポエチン／サイトカインレセプタースーパーファミリー、神経成長因子レセプタースーパーファミリー、その他のレセプターチロシンまたはセリンキナーゼおよび、各々Ｇタンパク質結合レセプターおよびＧタンパク質と称されるグアニンヌクレオチド結合制御タンパク質を介してエフェクタータンパク質に結合するものなどがある。

サイトカインは、特定の組織内の細胞間コミュニケーション、例えば抗体およびＴ細胞免疫系相互作用を調整し、そして生物学的応答を変調または修飾するために提供される細胞内メッセンジャーである。これらは多面的であり、そして１つ以上の型の細胞または組織に及ぼす広範な生物学的影響を有している。サイトカインのレセプターは、概して２つのクラスにグループ分けされており、ここでクラスＩサイトカインレセプターには種々のインターロイキン（ＩＬ−２、ＩＬ−３、ＩＬ−４、ＩＬ−６、ＩＬ−７、ＩＬ−９、ＩＬ−１１、ＩＬ−１２、ＩＬ−１５）、エリスロポエチン（ＥＰＯ）、成長ホルモン（ＧＨ）、顆粒球コロニー刺激因子（Ｇ−ＣＳＦ）、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子（ＧＭ−ＣＳＦ）、白血病阻止因子（ＬＩＦ）、および毛様体神経栄養因子（ＣＮＴＦ）などがあり、そしてクラスIIサイトカインレセプターにはインターフェロン（ＩＦＮ）α／β、ＩＦＮγ、およびＩＬ−１０に結合するレセプター、などがある。

インターフェロンレセプター
ヒトインターフェロン（ＩＦＮ）は、ヌクレオチドおよびアミノ酸配列相同性に基づいて４つの異なる種：α、β、γ、およびωからなる相同ならせん状のサイトカインのファミリーである。Ｉ型ＩＦＮ、α、β、およびωは、少なくとも１２個の機能的なＩＦＮα遺伝子、ＩＦＮω遺伝子、および更に遠縁のＩＦＮβ遺伝子によりコードされる。II型ＩＦＮまたはＩＦＮγは、非関連遺伝子によりコードされ、そして異なる細胞表面レセプター）に結合する（De Maeyerら(1988); Pestkaら、(1987); およびDiazら(1993）。

Ｉ型ＩＦＮは、レセプター結合の交差競合に対するその能力により示されるように、共通のレセプターに結合する（Pestkaら(1987); Brancaら(1981）；およびMerlinら(1985)）。Ｉ型インターフェロンレセプターは、すべての既知のサイトカインレセプターの中で、全部で１４もの最大数の天然リガンドを有している。インターフェロンのその細胞表面レセプターへの結合は、ＩＦＮシグナリング経路で最初の、そして恐らく最も特異的な工程に相当する。

Ｉ型ＩＦＮレセプターは、２つの膜貫通糖タンパク質、ＩＦＮＡＲ１およびＩＦＮＡＲ２からなり（Uzeら(1990); Novickら(1994); Lutfallaら(1995); Domanskiら(1995)）、これはＩＦＮ結合の後に急速にチロシンリン酸化される（Plataniasら(1994); Constantinescuら(1994); およびAbramovichら(1994)）。双方のサブユニットは、クラスIIサイトカインレセプタースーパーファミリーに属し（Bazeanら(1990); およびThoreauら(1990)）、そして高親和性リガンド結合および生物学的活性の確立を必要とする（Langerら(1996)およびDomanskiら(1996)）。クラスIIサイトカインレセプターは、ジスルフィド結合を形成すると考えられる保存されたシステン残基対のパターンに基づいてクラスＩサイトカインレセプターから区別される。

その他のサイトカインレセプターとは対照的に、ＩＦＮＡＲ１でもＩＦＮＡＲ２でもない、ＩＦＮ−γレセプターは、特に単独でヘテロ二量体に匹敵する親和性でＩＦＮαまたはＩＦＮβに結合する。ＩＦＮＡＲ２が、リガンド結合において顕著な役割を果たすという事実に関わらず、ＩＦＮＡＲ１は、ＩＦＮＡＲ２単独の親和性に相対してレセプター複合体の親和性を増加させることにより（４〜１０倍）ＩＦＮ結合に寄与する。ＩＦＮＡＲ１はまた、ＩＦＮＡＲ２単独で観察されるものに相対してリガンド結合の特性をも調節する（Cohenら(1995); Russell-Hardeら(1995); Cutroneら(1997); およびCookら(1996)）。ＩＦＮＡＲ１は、大抵その他のクラスIIサイトカインレセプターよりも大きな、２つのタンデムリピートに分けることができるジ−またはトリ−プロリンモチーフにより分けられた４個の免疫グロブリン様サブドメインからなる細胞外ドメインを有している（Novickら(1994); Lutfallaら(1992); およびUzeら(1995)）。

ヒト、マウスおよびウシＩＦＮＡＲ１は、クローン化され、そしてヒトおよびマウス細胞において発現されている。トランスフェクトされた細胞で実施された研究により、ＩＦＮＡＲ１はリガンド結合、ＩＦＮに対する細胞応答、およびＩ型インターフェロンの生物学的活性の誘起において中心的な役割を果たすことが示されている（Novickら(1994); Abramovichら(1994); Uzeら(1992); Mouchel-Vielhら(1992); Limら(1993); Clearyら(1994); Constantinescuら(1995); Hwangら(1995); Vandenbroekら(1995); およびColamoniciら(1994)）。更にＩＦＮＡＲ１の細胞内ドメインはＩ型インターフェロンの核への結合により細胞表面で開始されるシグナルの伝達において重要な役割を果たすことが示されている（Basuら(1998)）。ＩＦＮＡＲ１遺伝子の標的化された破壊の結果、Ｉ型ＩＦＮに対する抗ウイルス応答の喪失に至り、これはこのレセプターポリペプチドがレセプター複合体の必須成分であり、そしてＩＦＮＡＲ１およびＩＦＮＡＲ２サブユニットの双方がＩＦＮαおよびＩＦＮβシグナリングに必要であることを実証している（Vandenbroekら(1995); Mullerら(1994); Fietteら(1995); Steinhoffら(1995); およびvan den Broekら(1995)）。

Ｉ型インターフェロンのレセプター複合体への結合は、２つのヤヌスキナーゼ、Ｔｙｋ２、ＪＡＫ１を活性化し、これはチロシンリン酸化およびｐ４８ ＤＮＡ結合タンパク質であるインターフェロン応答性タンパク質９（ＩＲＦ ９）と複合体を形成する２つの潜在する細胞質転写因子、ＳＴＡＴ１およびＳＴＡＴ２の活性化を媒介し、これは核に移行して特定の遺伝子転写を促進する（Fuら(1992); Schindlerら(1992); Darnellら(1994); Ihleら(1995); およびTaniguchi(1995)）。Ｔｙｋ２およびＳＴＡＴ２の双方は、ＩＦＮＡＲ１鎖の膜近位領域に構成的に会合するが、ＪＡＫ１およびＳＴＡＴ１は、ＩＦＮＡＲ２に物理学的に会合し、そして４つすべての因子が、ＩＦＮα刺激の間に急速に活性化される（Lutfallaら(1995); Bazan(1990); Basuら(1998); Barbieriら(1994); Velazquezら(1995); Uddinら(1995); Yanら(1996a)および(1996b)）。

Ｇ−結合レセプター
Ｇタンパク質膜貫通シグナリング経路は、３つのタンパク質：レセプター、Ｇタンパク質およびエフェクターからなる。Ｇタンパク質は、膜貫通シグナリング経路の中間物質であり、ヘテロ二量体であり、そしてα、β、およびγサブユニットからなる。Ｇタンパク質のファミリーの膜の中で、αサブユニットは異なっている。Ｇタンパク質の機能は、αサブユニットとＧＴＰのサイクルとの関係により制御され、続いてＧＴＰがＧＤＰに加水分解され、そしてＧＤＰが解離する。

Ｇタンパク質結合レセプターは、Ｇタンパク質への結合によりシグナル伝達が媒介されるレセプターの多様なクラスである。シグナル伝達は、細胞膜レセプターへのリガンド結合により開始され、これはレセプターのＧタンパク質への結合を刺激する。レセプターＧタンパク質相互作用は、ＧＤＰを放出し、これは特異的にＧタンパク質に結合し、そしてＧＴＰの結合を可能にし、これはＧタンパク質を活性化する。活性化されたＧタンパク質は、レセプターから解離し、そしてエフェクタータンパク質を活性化し、これは特異的２次メッセンジャーの細胞内レベルを制御する。このようなエフェクタータンパク質の実例には、アデニルシクラーゼ、グアニルシクラーゼ、ホスホリパーゼＣ他がある。

成長因子および成長因子レセプター
ポリペプチド成長因子は、その生物学的機能が成長因子と細胞表面レセプターとの相互作用および続く遺伝子発現における変化により媒介される、細胞増殖および分化のモデュレーターである。成長因子は、特定のレセプターに結合し、そしてチロシンリン酸化およびｃ−ｆｏｓ ｍＲＮＡ合成を誘起するようである。加えて、少なくともいくつかの成長因子、例えば血小板誘導成長因子（Yehら(1987)）およびヘパリン結合成長因子−２または塩基性線維芽細胞成長因子（Boucheら(1987)）は核へ移行する。

特定の成長因子との、または作用物質、例えばホルボールミリスチン酸アセタート（ＰＭＡ）との相互作用による成長因子レセプターの活性化は、リン脂質−およびカルシウム活性化タンパク質キナーゼのファミリーであるタンパク質キナーゼＣを活性化する。この活性化の結果、一連のプロトオンコジーン転写因子コード化遺伝子、ｃ−ｆｏｓ、ｃ−ｍｙｃ、およびｃ−ｊｕｎなど、プロテアーゼ、プロテアーゼインヒビター、Ｉ型コラゲナーゼおよびプラスミノーゲンアクチベーターインヒビターなど、並びに付着分子、細胞内付着分子Ｉなどの転写に至る。タンパク質キナーゼＣ活性化は、成長因子レセプターの急速なリン酸化により成長因子活性に拮抗し、それによりこれはチロシンキナーゼ活性を低下させる。成長因子および、細胞増殖および細胞成長を誘起するその他のマイトジェンは、腫瘍成長において役割を果たすと考えられており、これはしばしば成長因子およびその他の細胞外シグナルに識別可能な細胞表面レセプターを担持する。

神経成長因子（ＮＧＦ）とそのレセプターとの相互作用は、例えば細胞外シグナル誘起するような一連の応答の典型である。ＮＧＦは神経堤由来知覚ニューロンの分化および成長に必要なポリペプチド成長ホルモンである。ＮＧＦはその特異的細胞表面レセプターに結合し、そして細胞体に逆輸送される（Changelianら(1989)）。これは細胞内事象のカスケードを開始し、結果的に分化した表現型になる。ＰＣ１２細胞は、ラット褐色細胞腫細胞系であり、ＮＧＦ媒介の分化の研究にモデルとして用いられる。ＮＧＦで処理した場合、ＰＣ１２細胞は、複製性の副腎クロム親和様細胞から非複製性の電気的に興奮した副交感神経ニューロン様細胞に変化する。

表現型変化と付随して、特定の遺伝子の誘導および発現がある。ＮＧＦのＰＣ１２細胞への結合は、即時的および急速な特定の遺伝子、ｃ−ｆｏｓ、ＮＧＦ１−ＡおよびＮＧＦ１−Ｂ遺伝子などの発現を誘起し、これは初期遺伝子と称される。このような初期遺伝子は転写レギュレーターをコードすると考えられている。ＮＧＦ−１Ａ遺伝子生成物は、ＤＮＡ結合タンパク質に特徴的なタンデムリピートした「ジンクフィンガー」ドメインを含有し、そしてＮＧＦ１−Ｂタンパク質は、糖質コルチコイドレセプターファミリーのメンバーに相同であり、したがって転写のリガンド依存的モデュレーターとして機能することができる。ｃ−ｆｏｓ遺伝子生成物であるＦＯＳは、転写制御分子として機能するようである。

ｃ−ｆｏｓ遺伝子および関連遺伝子
先で論じたように、ｃ−ｆｏｓ遺伝子の発現の誘導は、種々の細胞表面タンパク質の活性により開始される多くの応答経路に共通な事象である。

ｃ−ｆｏｓ遺伝子生成物であるＦＯＳは、ｃ−ｊｕｎ遺伝子の生成物である転写アクチベーターＪＵＮと付随し、転写活性化複合体ＡＰ−１を形成する複合体を形成する。ｃ−ｆｏｓおよびｃ−ｊｕｎの双方の転写は、刺激後急速に、そして一過性に誘導される。誘導されたｍＲＮＡは、１〜２時間細胞質に蓄積され、ここで短命なＦＯＳおよびＪＵＮタンパク質が、翻訳され、そして次に核に移行して、ＤＮＡ制御エレメントであるＡＰ−１結合部位に結合するヘテロ二量体タンパク質複合体を形成する。

ｃ−ｆｏｓおよびｃ−ｊｕｎ遺伝子は、ＡＰ−１結合部位と相互作用するヘテロ二量体複合体の形成に参加するタンパク質をコードする遺伝子ファミリーのメンバーである。転写因子ＡＰ−１は、その濃度が細胞刺激で変化するいくつかのタンパク質複合体からなる。これらの複合体は７塩基コアヌクレオチド配列モチーフと特異的に相互作用し、これは正および負両方の転写制御エレメントの比較的共通した成分であることが既知であり、そしてこれは遺伝子発現の基底および誘起レベルの双方で必要とされる。

遺伝子生成物であるＦＯＳおよびＪＵＮは、多くの細胞性応答および環境への適応応答の根底にある標的遺伝子の制御において協働する。これらは多くの神経生理学的過程に関与する。

したがって、ｃ−ｆｏｓ誘導は、別個の制御エレメントを介して作用し、そして異なって修飾する異なる第２のメッセンジャー経路に関係し、得られた遺伝子生成物であるＦＯＳは、今度は異なって修飾されたＪＵＮタンパク質と種々の方法で相互作用する。したがって、多数の細胞外事象はＡＰ−１結合部位を含有するＤＮＡ制御エレメントと異なって結合できる一連のタンパク質複合体を形成する少数の誘導タンパク質の発現を誘起する。したがって、非常に多くの細胞表面タンパク質が、重複伝達経路を介して作用し、そして採集的に種々の応答を誘起する細胞外シグナルを伝達することができる。

生存細胞系においてインビボ活性に頼ることができる多くのアッセイがある。一例は、細胞系が細胞外シグナルとしてインターフェロンの存在に付された場合に、内因性インターフェロン細胞表面レセプターのシグナル伝達活性がインターフェロン刺激応答エレメント（ＩＳＲＥ）を活性化するシグナルを生み出し、これが次にルシフェラーゼ遺伝子の転写を引き起こすように、ルシフェラーゼ遺伝子または別のレポーター遺伝子に連結されたインターフェロン刺激応答エレメント（ＩＳＲＥ）を有する細胞系である。したがって、光の発生でルシフェラーゼの活性を測定でき、そしてサンプル中に存在するインターフェロンの量に関係し、そして特定の範囲にわたってインターフェロンの量に比例する（Lallemandら(1996)）。

Lleonartら(1990)は、レポーター遺伝子としてヒト成長ホルモン（ｈＧＨ）遺伝子に連結されたＩ型インターフェロン誘導マウスＭｘプロモーターでトランスフェクトされたサルベロ細胞に基づくＩ型インターフェロンに対するレポーター遺伝子アッセイについて記載した。このＩ型インターフェロンアッセイは、Ｉ型インターフェロン誘導マウスＭｘ１プロモーターの調節下でルシフェラーゼレポーター遺伝子を担持するプラスミドでサルベロ細胞をトランスフェクトすることにより更に発展した（Canosiら(1996)）。

別の型のインターフェロンレポーター遺伝子アッセイが、グリア原線維酸性タンパク質（ＧＥＡＰ）プロモーターおよび大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）β−ガラクトシダーゼ（ｌａｃＺ）レポーター遺伝子のレポーター遺伝子構築物でトランスフェクトされたヒトグリア芽細胞腫細胞系を用いたHammerlingら(1998）により開発された。この特定のアッセイでは、選択的および用量依存的にヒトＩ型またはII型のいずれかのインターフェロンによるβ−ガラクトシダーゼ発現の低下／阻止が測定される。

このようなアッセイで用いることができる細胞系の型では、一度細胞系が単一のアッセイで使用するために出荷されると、末端使用者は細胞を成長させることができ、そして次に将来のアッセイのために供給者から更なる細胞を注文する必要なく、このような細胞の独自の貯蔵品を使用するという点で、それを商品化するのに問題がある。

本明細書におけるいずれの文献の引用も、このような文献が関連する先行技術であるという承認として、または本出願のいずれかの請求の範囲の特許性に対して考慮された題材として意図されるものではない。内容に関するいかなる記載も、またはいかなる文献の日付も、出願時に出願者に利用可能な情報に基づいており、そしてこのような記載の正確性に関する承認を構成するものではない。

発明の概要
本発明の目的は、所望の細胞系を、意図される目的のために十分長い寿命を有する実質的に「１回使用」用の商業用細胞系にし、そして使用者がこの商業用細胞系を例えばアッセイにおいて使用するときはいつも、この使用者はこの商業用細胞系を供給者から購入しなければならないようにする方法を開発することである。

課題を解決するための手段
したがって、本発明は、レポーター遺伝子生成物の発現が、細胞外シグナルに応答して細胞表面タンパク質のシグナル伝達活性により制御される、レポーター遺伝子構築物で形質転換された細胞を提供する。この本発明による細胞は、凍結温度を越える温度ではその能力を喪失する前にシグナル伝達活性を少なくとも約１時間維持するが、約３０日を超えないように処理されている。このような処理された細胞は、細胞をある状態に維持することにより、または細胞分割を阻止することにより、その目的のために十分長い寿命を有する商業用の利点を獲得しており、その有用な寿命の終わりに、またはその使用の終わりにはすぐに、細胞は、例えばアポトーシスにより細胞死を起こす。

本発明は、また細胞表面タンパク質のシグナル伝達活性を活性化する分子のサンプル中のレベルを決定するための細胞基盤のアッセイキットを提供する。このようなキットは本発明の複数の細胞が入ったマルチプルウェルおよび試薬を伴う試験装置を含む。

更に本発明は、シグナル伝達を３０日以内に喪失する本発明の細胞を調製するための方法を提供する。この方法は、宿主細胞を本発明の細胞に関して前記したレポーター遺伝子構築物で形質転換し、そして次に、処理された形質転換された細胞が、凍結温度を越える温度ではシグナル伝達活性を少なくとも約１時間維持するが、約３０日を超えず、その後シグナル伝達活性を喪失するように形質転換された細胞を処理することに関係する。

本発明の別の態様は、細胞表面タンパク質のシグナル伝達活性を活性化する分子のサンプル中の存在および／またはレベルを決定するための方法に向けられている。

本発明は、細胞外シグナルに応答する細胞表面タンパク質のシグナル伝達活性により制御される１つ以上の転写調節エレメントに作動可能に連結されたレポーター遺伝子生成物をコードするヌクレオチド配列を含むレポーター遺伝子構築物で形質転換された細胞に向けられている。本発明のこの細胞は、凍結温度を越える温度では細胞表面タンパク質のシグナル伝達活性を少なくとも約１時間維持するが、約３０日を超えず、その後シグナル伝達活性を喪失するように処理されている。したがって、本発明の細胞は末端使用者により望まれる目的、例えばアッセイを実施するために細胞分割を阻止することにより、または細胞を凍結状態に維持することにより十分な寿命を有するのみならず、凍結状態で、または室温で長期間の保存および輸送を可能にするために、細胞を凍結できるか、または室温でさえ維持できるように処理されている。本発明の細胞はまた、末端使用者が更に使用できるように増殖させることができない１回使用細胞であるという供給者に対する商業上の利点を有している。その代わり、好ましくは、細胞は、キットの一部として供給者から各単回使用のために購入しなければならない。

本発明による細胞は、いかなる真核または原核細胞であってもよい。しかしながら哺乳動物および鳥類細胞が、好ましく、ヒト細胞が、最も好ましい。その他の適切な細胞には、非限定例としてはその他の脊椎動物細胞、植物プロトプラスト、真菌、および酵母細胞、並びに細菌細胞などがある。

そのシグナル伝達活性が細胞外シグナルに応答してレポーター遺伝子生成物の発現を制御する細胞表面タンパク質は、当業者に既知であるか、または当業者により同定できるいかなる細胞表面タンパク質であってもよい。細胞表面タンパク質を例示すると、非限定例としては細胞表面レセプターおよびイオンチャネルなどがある。細胞表面レセプターの非限定例には、サイトカインレセプター（例えばＩ型インターフェロン、II型インターフェロン、インターロイキン、成長ホルモン、エリスロポエチン（ＥＰＯ）、顆粒球コロニー刺激因子（Ｇ−ＣＳＦ）、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子（ＧＭ−ＣＳＦ）、白血病阻止因子（ＬＩＦ）、毛様体神経栄養因子（ＣＮＴＦ）等のレセプター）、成長因子レセプター、ホルモンレセプター、Ｔ細胞レセプター、抗原レセプター、補体レセプター、および神経レセプターなどがある。参照文献：J.M.CruseおよびRobert, E. Lewis、Atlas of Immunology, CRC Press, Washington, DC (1999）、これは免疫応答および免疫系相互作用に関与する多くのレセプターを開示しており、その全体が参照として本明細書に組み入れられる。細胞表面レセプターはまた非限定例としては、ムスカリン様レセプター（例えばヒトＭ２（Gen Bankアクセッション番号＃Ｍ１６４０４）；ラットＭ３（Gen Bankアクセッション番号＃Ｍ１６４０７）；ヒトＭ４（Gen Bankアクセッション番号＃Ｍ１６４０５）；ヒトＭ５（Bonnerら(1988)）；等）；神経ニコチンアセチルコリンレセプター（例えばα２、α３、およびβ２サブタイプ）；ラットα２サブユニット（Wadaら(1988)）；ラットα３サブユニット（Boulterら(1986)）；ラットα４サブユニット（Goldmanら(1987)）；ラットα５サブユニット（Boulterら(1990)）；ラットβ２サブユニット（Denerisら(1988)）；ラットβ３サブユニット（Denerisら(1989)）；ラットβ４サブユニット（Duvoisinら(1989)）；ラットαサブユニット、βサブユニット並びにαおよびβサブユニットの組み合わせ；ＧＡＢＡレセプター（例えばウシα１およびβ１サブユニット（Schofieldら(1987)）；ウシα２およびα３サブユニット（Levitanら(1988)）；γサブユニット（Pritchettら(1989)）；β２およびβ３サブユニット（Ymerら(1989)）；δサブユニット（Shivers, B.D.(1989)）；等）；グルタマートレセプター（例えばラット脳から単離されたレセプター（Hollmannら(1989)）；等）；アドレナリン作動性レセプター（例えばヒトβ１（Frielleら(1987)）；ヒトα２（Kobilkaら(1987)）；ハムスターβ２（Dixonら(1986)）；等）；ドーパミンレセプター（例えばヒトＤ２（Stormannら(1990)）；ラット（Bunzowら(1988)）；等）；ＮＧＦレセプター（例えばヒトＮＧＦレセプター（Johnsonら(1986)）；等）；セロトニンレセプター（例えばヒト５ＨＴ１ａ（Kobilkaら(1987)）；ラット５ＨＴ２（Juliusら(1990))；ラット５ＨＴｌｃ（Juliusら(1988)）；等）などがある。

イオンチャネルには、非限定例としてはカルシウムイオンチャネル（例えばヒト神経細胞α２サブユニット（国際公開公報第８９／０９８３４号参照）；ウサギ骨格筋α１サブユニット（Tanabeら(1987)）；ウサギ骨格筋α２サブユニット（Ellisら(1988)）；ウサギ骨格筋βサブユニット（Ruthら(1989)）；ウサギ骨格筋γサブユニット（Jayら(1990)）；等）；カリウムイオンチャネル（例えばラット脳（ＢＫ２）（McKinnon, D.(1989)）；マウス脳（ＢＫ１）（Templeら(1988)）；等）；ナトリウムイオンチャネル（例えばラット脳ＩおよびII（Nodaら(1986)）；ラット脳III（Kayanoら(1988)）；その他）などがある。

先で論じた細胞表面タンパク質が、本発明の細胞に対して内因性であるのが好ましいことは当業者には理解される。しかしながら、例えば細胞の表面で細胞表面タンパク質の数を補うために、細胞表面タンパク質をクローン化されたＤＮＡから発現させることができるか、または細胞表面タンパク質をクローン化されたＤＮＡから発現させることができるが、宿主細胞に対して異種性である細胞表面タンパク質であることもまた当業者には理解される。

シグナル伝達に関して、伝達される細胞内シグナルは、細胞外シグナル、すなわち分子または環境の変化の、細胞表面に存在するレセプターまたはイオンチャネルとの特異的相互作用により阻止される。この相互作用は、細胞内事象のカスケードを始動させ、そしてその最終結果は、遺伝子生成物の発現における急速で、そして検出可能な変化であり、そしてこれは本発明の細胞においてはレポーター遺伝子生成物である。細胞外シグナルまたはエフェクター分子は、何らかの様式で特異的に細胞表面タンパク質の活性を変化させるいずれかの化合物または物質である。このようなシグナルの実例には、非限定例としてはサイトカイン（すなわちインターフェロン）、成長因子、ホルモン、エンドルフィン、神経伝達物質、アセチルコリン、および細胞分裂誘発物質、例えばホルボールミリスチン酸アセタート（ＰＭＡ）ののような、細胞表面レセプターおよびイオンチャネルに結合し、そしてこのようなレセプターおよびチャネルの活性を変調させる分子などがある。例えば、アンタゴニストは、細胞表面タンパク質の活性を遮断または低下させる細胞外シグナルであり、そしてアゴニストは、細胞表面タンパク質の活性を有効化、誘起、またはそうでなければ増強する細胞外シグナルの実例である。

本発明の細胞が担持するレセプター遺伝子構築物は、転写調節エレメント／配列に作動可能に連結されたレポーター遺伝子生成物をコードするヌクレオチド配列を含むＤＮＡ分子である。レポーター遺伝子の転写は、これらの配列により調節される。少なくとも１つ以上のこれらの調節配列の活性は、直接的または間接的に細胞表面タンパク質により制御される。転写調節配列には、非限定例としてはプロモーターおよびプロモーターの活性を変調するその他の制御領域、例えばエンハンサー配列並びにレプレッサーおよびアクチベーター結合部位、またはプロモーターを認識するＲＮＡポリメラーゼの活性もしくは効率を変調する調節配列、またはエフェクター分子により認識される調節配列などがあり、細胞外シグナルと細胞表面タンパク質との相互作用により特異的に誘起されるものを含む。例えば、プロモーターの活性の変調を、プロモーター領域に結合するＲＮＡポリメラーゼを変化させることにより、あるいは、転写の開始もしくはｍＲＮＡの伸長に干渉することにより生じさせることができる。本明細書ではこのような配列を転写調節エレメントまたは配列と称する。加えて、構築物は、得られたｍＲＮＡの翻訳を変化させ、それにより発現されるレポーター遺伝子生成物の量を変化させるヌクレオチドの配列を含むことができる。

細胞表面タンパク質の活性により制御または媒介されるプロモーターは、細胞が、特定の細胞外シグナルに暴露されたときに、その作用が細胞外シグナルにより影響を受ける細胞表面タンパク質の存在のために、その活性が変化するプロモーターである。例えば、ｃ−ｆｏｓプロモーターは、特定の細胞外シグナル、例えば成長ホルモンと細胞表面タンパク質、例えば成長ホルモンレセプターとの特異的相互作用で特異的に活性化される。特に、細胞表面タンパク質によるこのようなプロモーターの制御は間接的であるが、細胞表面タンパク質の細胞外シグナルとの相互作用後数分で生じる。本明細書で用いる、作動可能な連結とは、転写調節エレメント、すなわちプロモーターが結合ＲＮＡポリメラーゼを結合し、そしてヌクレオチドコード化配列の転写を開始するその活性のために適切に位置する転写調節エレメントのヌクレオチドコード化配列への連結を意味する。したがって、プロモーターと作動可能に連結されたヌクレオチドコード化配列は、転写の方向に関してプロモーターから下流にあり、転写開始部位に関して正確な読み枠内にあり、そして転写の伸長がヌクレオチドコード化配列を介して進行するように挿入される。

その発現が迅速に、概して細胞表面タンパク質と細胞表面タンパク質の活性を変調するエフェクタータンパク質との接触後数分以内に誘起される、遺伝子の転写制御領域から適切な転写調節エレメントを得るまたは誘導することができる。このような遺伝子の実例には、非限定例としては前初期遺伝子（Shengら(1990)）、例えばｃ−ｆｏｓなどがある。前初期遺伝子は、リガンドの細胞表面タンパク質への結合時に迅速に誘起される遺伝子である。レポーター遺伝子構築物での使用に好ましい転写調節エレメントには、前初期遺伝子に由来する転写調節エレメント、前初期遺伝子のいくつかもしくはすべての特徴を呈するその他の遺伝子から誘導されるエレメント、またはそれと作動可能に連結された遺伝子がこのような特徴を呈するように構築された合成エレメントなどがある。それから転写調節エレメントが誘導される好ましい遺伝子の特徴には、非限定例としては静止細胞における低量のまたは検出不能な発現、細胞外刺激後数分以内の転写レベルでの迅速な誘起、新たなタンパク質合成の一過性および独立した誘起、続く転写の遮断が新たなタンパク質合成を必要とする、並びにこれらの遺伝子から転写されるｍＲＮＡの半減期が短いなどがある。これらの特性のすべてが存在する必要はない。

適切なプロモーターおよび転写調節エレメントには、非限定例としては血管活性腸管ペプチド（ＶＩＰ）遺伝子プロモーター（ｃＡＭＰ応答性；Finkら(1988)）；ソマトスタチン遺伝子プロモーター（ｃＡＭＰ応答性；Montiminyら(1986)）；プロペンケファリンプロモーター（ｃＡＭＰ応答性；ニコチンアゴニスト、およびホルボールエステル；Combら(1986)）；ホスホエノールピルビン酸カルボキシキナーゼ遺伝子プロモーター（ｃＡＭＰ応答性；Shortら(1986)）；ＮＧＦＩ−Ａ遺伝子プロモーター（ＮＧＦ、ｃＡＭＰ、および血清応答性；Changelianら(1989)）；ｃ−ｆｏｓ遺伝子から得られたまたは誘導された転写調節エレメント；並びに当業者により既知であるか、または調製され得るその他ものなどがある。

ｃ−ｆｏｓプロトオンコジーンは、ＦＢＪ骨肉種ウイルスの形質転換遺伝子の細胞性相同体である。これは正常な細胞成長および分化に関与している可能性が最も高い核タンパク質をコードする。ｃ−ｆｏｓの転写は一過性であり、成長因子により、並びにホルモン、分化特異的物質、ストレス、マイトジェン、およびその他の既知の細胞表面タンパク質のインデューサーなどのその他の細胞表面タンパク質のインデューサーにより急速に活性化される。活性化は、タンパク質合成非依存的である。ｃ−ｆｏｓ制御エレメントは、転写の開始に必要なＴＡＴＡボックス、基本転写のための２個の上流エレメント、並びに対称な２つの部分を有するエレメントを含み、そしてＴＰＡ、血清、ＥＧＦ、およびＰＭＡによる誘導に必要なエンハンサーを含む。ｃ−ｆｏｓ ｍＲＮＡキャップ部位から上流の、−３１７および−２９８の間に位置する２０ｂｐの転写エンハンサーエレメントは、血清飢餓ＮＩＨ ３Ｔ３細胞における血清誘導に必須である。２個の上流のエレメントのうちの１つは−６３から−５７に位置し、そしてｃＡＭＰ制御のためのコンセンサス配列に類似している。

特にＩ型および／またはII型インターフェロンが細胞外シグナルである場合の本発明の好ましい態様に関連するので、転写調節エレメントは、インターフェロン刺激応答エレメント（ＩＳＲＥ）および／またはガンマ活性化配列（ＧＡＳ）であるのが好ましい。Ｉ型インターフェロンに応答する異なるヒト遺伝子から特徴付けされた多くのＩＳＲＥがあり、そしてＩＳＲＥ に関してＳＴＡＴ１／ＳＴＡＴ２／ＩＲＦ９複合体が結合するコンセンサス配列、ｇｇｒａａａｇｗＧＡＡＡｃｔｇ（配列番号６；大文字はコア配列を示し；下線は高度な保存を示す）が同定された（Levyら(1988)）。好ましいＩＳＲＥは、ヒトＩＳＧ１５遺伝子に由来し、そしてヌクレオチド４１−５５がコンセンサスＩＳＲＥ配列に相当する配列番号５として示される。ＩＳＲＥはまた種間で高度に保存されている。例えばインターフェロン誘導ニワトリＭｘ遺伝子のプロモーター領域に存在する配列は（Schumacherら(1994)）霊長類において見出されたものに類似しており、そしてげっ歯類およびウシを含む哺乳動物インターフェロン応答性遺伝子のＩＳＲＥコンセンサス配列と一致する（Perryら(1999)の図２参照）。

II型インターフェロンに応答する遺伝子においてＳＴＡＴ１ホモ二量体が結合するＧＡＳに関して、多くの選択された結合配列からコンセンサス配列、ｎｎｎｓａｎｔｔｃｃｇＧＧＡＡｎｔｇｎｓｎ（配列番号７；大文字はコア配列を示し；下線は高度な保存を示す）が同定された（Horvathら(1995)）。

Ｉ型インターフェロン（本明細書に後記で提示する実施例参照）および／またはII型インターフェロンが細胞外シグナルである本発明の実施態様では、転写調節エレメントの好ましい組み合わせは、ＩＳＲＥおよび／またはＧＡＳがレポーター遺伝子生成物をコードするヌクレオチド配列に作動可能に連結されたＳＶ４０最小プロモーターを調節するインターフェロン応答性キメラプロモーターである。

そのレベルが細胞表面タンパク質のシグナル伝達活性を活性化する分子の存在および／またはレベルの測定値であるレポーター遺伝子生成物は、容易に検出できる限りＲＮＡまたはタンパク質であってもよい。例えば、ホタルルシフェラーゼ、強化グリーン蛍光タンパク質（ＥＧＦＰ）、およびクラゲエクオリンは、本発明にしたがって用いられるレポーター遺伝子生成物の最も好ましい態様である。ホタルルシフェラーゼ酵素（deWetら(1987)）およびクラゲエクオリン（Riderら(2003)）の場合、その酵素活性の結果である光が検出され、そしてルミノメーターを用いて測定されるが、ＥＧＦＰの場合、蛍光活性化細胞ソーターまたは分析器（ＦＡＣＳ）を適切な波長で用いて、細胞において発現されたＥＧＦＰの量を検出および定量することがきる。細胞のサンプルにおいて発現されたルシフェラーゼ、エクオリン、またはＥＧＦＰの量の分布曲線は細胞が、暴露されるリガンドの量（規定の範囲内）により決定される。その他の適切なレポーター遺伝子生成物の非限定例としては、ｄｓＲＥＤ、クロラムフェニコールアセチルトランスフェラーゼ（ＣＡＴ）（Altonら(1979)）その他の酵素検出系、例えばβ−ガラクトシダーゼ、細菌性ルシフェラーゼ（Engebrechtら(1984)）およびBaldwinら(1984)）、アルカリ性ホスファターゼ（Tohら(1989)およびHallら(1983)）、および細菌性またはヒト化β−ラクタマーゼ（Zlokarnikら(1998)）などがある。

更に使用するために増殖できない１回使用細胞である本発明の細胞を提供するために、凍結温度を越える温度では、細胞表面タンパク質のシグナル伝達活性を少なくとも約１時間維持するが、約３０日を超えず、その後シグナル伝達活性を喪失するような方法でレポーター遺伝子構築物で形質転換した細胞を処理する。したがって、約３０日以内にシグナル伝達活性を喪失するレポーター遺伝子構築物で形質転換された細胞を調製するための方法である本発明の１つの態様によれば、細胞外シグナルに応答して細胞表面タンパク質のシグナル伝達活性により制御される１つ以上の転写調節エレメントに作動可能に連結されたレポーター遺伝子生成物をコードするヌクレオチド配列を含有するレポーター遺伝子構築物で細胞を形質転換する。次いで凍結温度を越える温度では細胞表面タンパク質のシグナル伝達活性を少なくとも１時間維持するが約３０日を超えず、その後この作用を喪失するように形質転換された細胞を処理する。

本発明の１つの好ましい実施態様は、照射後、照射された細胞が、凍結温度を越える温度では細胞表面タンパク質のシグナル伝達活性を少なくとも約７日間維持するが、約３０日を超えず、その期間の後、照射された細胞は即座に細胞死を起こす（すなわちアポトーシス）ような強度および十分な時間、γ線で照射することにより形質転換された細胞を処理する。

高用量でのγ線照射は、細胞にそのシグナル伝達活性を喪失させることが既知である。幾分低い用量での照射は、細胞に複製を停止させ、そして細胞死を被らせる。本発明者は現在、複製を阻止するが、細胞死を起こす前の期間は、細胞がそのシグナル伝達活性を依然維持することを可能にする用量を決定することが可能であることを見出した。例えば、約９グレイのγ線照射により細胞が、１４日間シグナル伝達活性を保持することが可能になるが、その後細胞は細胞死を起こす。しかしながら、これらの１４日間は例えば、検定されるＩ型インターフェロンに応答するシグナル伝達活性は、非照射対照と同様に機能する。これは本明細書後記の実施例において提示するＩ型インターフェロンに対するルシフェラーゼ遺伝子レポーターアッセイを用いる実験で示されている。したがって、細胞をγ線で照射することにより、本発明は、１４日間の寿命を有するが、約１４日の期間の後に不活性になり（細胞死を起こす）、そして末端使用者が維持し、そして繁殖させることができない、処理された細胞を提供する。

本発明の照射の実施態様にしたがって、形質転換された細胞が処理されるγ線の用量（強度および期間）は、約６〜１２グレイ（Ｇｙ）であるのが好ましい。本明細書後記で提示する実施例の実験により実証されるように、細胞が、保持または貯蔵される凍結温度を超える温度が細胞の寿命に影響する。好ましくは、この温度は、室温であり、これはインターフェロン最大感受性を維持するが、本発明の商業用の１回使用細胞の貯蔵および輸送の簡略化に備えているので有利である。

本発明の第２の好ましい実施態様は、作用物質での処理後、処理された細胞が、凍結温度を越える温度では細胞表面タンパク質のシグナル伝達活性を少なくとも約１時間維持するが、約３０日を超えず、その期間の後、処理された細胞は即座に細胞死を起こすように、形質転換された細胞を抗有糸分裂およびプロアポトーシス剤、例えばビンブラスチン、５−フルオロウラシル（５−Ｆｕ）、またはシスプラスチンで十分な量および十分な時間で処理する。抗有糸分裂およびプロアポトーシス剤は、処理された細胞が分裂を開始するとき、処理された細胞に影響を与え、それによりアポトーシスが誘導され、そして細胞を死滅させる。したがって、抗有糸分裂およびプロアポトーシス剤で処理した細胞、例えば本明細書後記の実施例で例示するルシフェラーザレポーター遺伝子構築物で形質転換されたヒト前単球細胞は、約２４時間の寿命を有し、その間にシグナル伝達アッセイを実施することができ、そしてその期間の後、細胞が死亡する。２４時間しか寿命を有さない細胞は、商業用という観点から望ましくないことが理解される。寿命を延長させるために、処理された細胞を即座に凍結し、その状態では、凍結および解凍の様式に依存して寿命はより長くなる。しかしながら一度解凍すると、これを２４時間以内に使用しなければならず、その後これは細胞死（すなわちアポトーシス）を起こす。

細胞の凍結保存には、細胞を−８０℃または約−２００℃の液体窒素温度に到達するまで分あたり１℃の率で凍結する特別な凍結および解凍過程（および装置）が必要とされ、ここでは細胞を無期限に保存でき、そしてその後非常に急速に解凍しなければならないということが一般通例であることを理解すべきである。細胞の保護を助けるために、ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）または別の凍結保存剤もまたしばしば用いられる。細胞を抗有糸分裂およびプロアポトーシス剤で処理する場合、この扱いにくい凍結保存技術で無制限の期間細胞を凍結することができ、そして次に目的、例えばシグナル伝達活性に対する遺伝子レポーターアッセイのために、解凍後２４時間使用することができる。しかしながら、これは製造／加工費用が大いに上昇するので、あまり商業用に貴重な技術ではないと考えられる。

ほとんどの研究室では、−２００℃の貯蔵設備、または−８０℃の貯蔵設備さえも有していないので、細胞の凍結を−２０℃で行うことを可能にするのは有用である。しかしながら、細胞を−２０℃で凍結し、そして次に解凍する場合、細胞生存性がよくないことは既知である。本発明に至る実験の経過で、本発明者は、何ら特別な凍結もしくは解凍技術または設備を用いずに、−２０℃で凍結したときでさえ、ＤＭＳＯが細胞を保護することを予想外に見出した。既知の凍結保存化合物であるグリセロールは−２０℃で細胞を保護するが、凍結保存に従来のグリセロールの高パーセンテージ（５０％）でタンパク質リガンドが表面レセプターと相互作用するのを防御する可能性がある。しかしながら、低パーセンテージ（従来の５０％よりもかなり少ない）のグリセロールを用いることができる。ＤＭＳＯは、この不都合を有していない。ＤＭＳＯが何ら特別な凍結もしくは解凍技術または設備を必要とせず、そして本明細書後記の実施例にて実証されるように（図１１参照）、ＩＦＮに対するその感受性に不利に影響することなく、−２０℃での細胞凍結を保護するというのが本発明の発見である。したがって、更にＤＭＳＯで処理すれば、抗有糸分裂およびプレアポトーシス剤で処理した後、−２０℃の標準的なフリーザー温度でさえ細胞は長い寿命を達成することができ、そして一度解凍されるとこのような細胞は、すなわちシグナル伝達アッセイで、抗有糸分裂およびプロアポトーシス剤で処理した結果としてそれがアポトーシスを被るまでおよそ２４時間活性を維持するということが本発明の別の驚くべき発明の態様である。静止期の間および処理された細胞が、死亡し始める時間まで、細胞は生物学的活性を維持すると予測されるので、アポトーシスを誘起することにより複製の過程の間に細胞を死滅させる抗有糸分裂およびプロアポトーシス剤、例えばビンブラスチン、５−ＦＵおよびシスプラチンをこの目的で用いることができる。

したがって、本発明の第２の好ましい実施態様にしたがって、解凍後にシグナル伝達を再開するような温度および条件下で処理された形質転換された細胞を凍結する。細胞は、好ましくは−２０℃と−２００℃との間の温度で、更に好ましくは−８０℃で凍結し、そして続いてほとんどすべての研究室で、一般に利用可能なフリーザー温度である−２０℃で保存するが、細胞の凍結保存に適したその他の温度、例えば約−２００℃の液体窒素温度は本発明に包含されると解釈される。細胞を凍結する前に、処理された形質転換された細胞を、凍結保存剤を含有する溶液中に再懸濁するのが更に好ましい。ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）は、好ましい凍結保存剤であるが、解凍後の細胞の使用に干渉しない限り、水に対して高い結合親和性を有するその他の適切な凍結保存剤、例えばエチレングリコール、ポリエチレングリコール、プロピレングリコール、グリセロール、ブタンジオール、プロパンジオール、およびホルムアミドを用いることができる。ＤＭＳＯを単独で凍結保存剤として用いる場合、ＤＭＳＯを含有する溶液は約１０％ ＤＭＳＯを含有するのが好ましい。更に好ましくは、凍結保存剤として２．５％ ＤＭＳＯを１０％ グリセロールと組み合わせて用いる。

本発明の別の態様は、細胞表面タンパク質のシグナル伝達活性を活性化する分子のサンプル中のレベルを決定するためのアッセイキットに関する。このアッセイキットは、複数の本発明の細胞（試薬として）および複数のウェルを有する試験装置を含む。好ましくは、試験装置は、マルチウェルマイクロタイタープレートであるが、サンプル中の分子のレベルを決定するためにアッセイを行うことができる複数のウェルを有するいかなる型の容器、例えばペトリ皿であってもよい。アッセイキットの構成要素または試薬として細胞が、試験装置のウェルに配置されているのが好ましいが、このような細胞は、代わりに末端使用者によりアッセイを行う直前に試験装置のウェルに分注されてもよいことは理解される。更に、キットは、サンプル中のシグナル伝達活性を活性化する分子のレベルを決定するための、意図されたアッセイを行うためのキットを用いるための指示書のセットを含むことができる。

本発明は、更にアッセイに含まれる標準物質を参照して、細胞表面タンパク質、好ましくは細胞表面レセプターのシグナル伝達活性を活性化する分子のサンプル中の存在および／またはレベルを決定するためのアッセイ方法を提供する。このアッセイ方法は、本発明の細胞を使用し、そしてその最初の工程または複数の工程として本発明によりこのような細胞を調製する方法を含むことができる。調製された細胞を本発明の好ましい実施態様にしたがって凍結する場合、次に、細胞表面タンパク質のシグナル伝達活性を活性化する分子の存在および／またはレベルを決定すべきと考えられるサンプルと細胞とのインキュベーションに進む前に細胞を解凍しなければならない。細胞をγ線で照射する１つの好ましい実施態様では、細胞を使用まで室温で維持および保存するのが好ましい。細胞は、凍結されていないので、解凍工程は不要である。インキュベーションの後、サンプル中の、調製された細胞が、担持するレポーター遺伝子構築物でコードされるレポーター遺伝子生成物の発現のレベルを決定する。本発明の方法により決定されるこの発現レベルを用いて、次に細胞表面タンパク質のシグナル伝達活性を活性化する分子のサンプル中の存在を定性的に決定する、および／またはレベルを定量的に決定する。

Ｉ型インターフェロンに対する遺伝子レポーターアッセイは、本発明の最も好ましい実施態様である。レポーター遺伝子生成物は、ホタルルシフェラーゼ、クラゲエクオリン、または強化グリーン蛍光タンパク質（ＥＧＦＰ）であるのが好ましく、そしてＩＳＧ１５およびＳＶ４０プロモーターに由来するＩＳＲＥを含有するインターフェロン感受性キメラプロモーターの調節下にあるのが好ましい。このようなレポーター遺伝子構築物の実例を図１および２に示す。図１は、ＩＳＲＥ−ｌｕｃベクターのルシフェラーゼ遺伝子レポーター構築物の略図であり（配列番号１）、ここでＩＳＧ１５に由来するＩＳＲＥ（配列番号５）は、配列番号１のヌクレオチド３８−９７に位置し、ＳＶ４０最小プロモーターは、配列番号１のヌクレオチド１０３−２８８に位置し、そして配列番号２のアミノ酸配列を有するルシフェラーゼレポーター遺伝子のコード化配列は、配列番号１のヌクレオチド３２８−１９８０に位置する。同様に、図２は、ＩＳＲＥ−ＥＧＦＰベクターのＥＧＦＰ遺伝子レポーター構築物の略図であり（配列番号３）、ここでＩＳＧ１５に由来するＩＳＲＥは、配列番号３のヌクレオチド３０−８９に位置し、ＳＶ４０最小プロモーターは、配列番号３のヌクレオチド９５−２９０に位置し、そして配列番号４のアミノ酸配列を有するＥＧＦＰレポーター遺伝子のコード化配列は配列番号３のヌクレオチド３５８−１０７７に位置する。

本発明のＩ型インターフェロン実施態様に対する好ましい遺伝子レポーターアッセイで用いる細胞に関しては、細胞は、好ましくは哺乳動物または鳥類細胞、更に好ましくはヒト細胞、そして最も好ましくはヒト前単球細胞である。ルシフェラーゼ遺伝子レポーター構築物を含有するＩＳＲＥ−ｌｕｃベクターを担持する好ましいヒト前単球細胞は、ＰＩＬ５細胞である。アッセイの目的のための十分な寿命、および更に使用できるように増殖させることができない１回使用用であるという、商業用に所望の特性を有する商業用の細胞系を作製するために細胞を処理する。好ましくは、１）６〜１２Ｇｙ、更に好ましくは約９Ｇｙのγ放射性で照射し、そして照射後１４日まで室温で保存するか、または２）抗有糸分裂およびプロアポトーシス剤、例えばビンブラスチン、または５−フルオロウラシル、最も好ましくはビンブラスチンに３７℃で１０分間暴露し、その後４０％ ウシ胎児血清（ＦＢＳ）および２．５％ ＤＭＳＯ＋１０％ グリセロールを含有する溶液に再懸濁し、そして−８０℃で凍結する、のいずれかで細胞を処理する。

凍結保存中に無期限の寿命を有するが、解凍後およそ２４時間で死亡する細胞を得る方法を最適化するために（しかしながら一度解凍すると、生成物は卓越した感受性、および精度、並びに選択性を有する）、このような最適化の経過において変動し得るパラメーターには：
１）ＦＢＳの濃度。例えば解凍中または抗有糸分裂およびプロアポトーシス剤での処理の間、細胞を毒素から保護するための毒素吸収系として作用するので、ＦＢＳに加えて、大抵いずれの血清を用いることもできる。ＦＢＳの濃度が結果を変動させる可能性がある；
２）時間は可変である。細胞を遠心し、そして洗浄してビンブラスチンを除去する前のビンブラスチンへの暴露時間；
３）ビンブラスチンの処方は差異を生み出す。現在、Ｅｌｉ ＬｌｌｙによりＶｅｌｂｅのいう名称でフランスにおいて専売されている予め緩衝化された処方の可溶性ビンブラスチンを用いるのが好ましい。異なる処方は、わずかに異なるパラメーターの組み合わせが必要かもしれない；
４）ビンブラスチンの濃度；
５）ビンブラスチン処理の間の細胞濃度；
６）凍結保存剤の量または凍結保存剤の組み合わせ；
などがある。

これらのパラメーターのすべてを経験的に変動させることができ、そして凍結後に感受性および精度に関して試験した結果、解凍した後およそ２４時間細胞が、生存し続けると想定される。特にＰＩＬ５細胞に関して図１１〜２４で示す実験で提供されるガイダンスを特に鑑みて、解凍後少なくとも１時間、好ましくは８時間の間、未処理の生存細胞と実質的に同一の感受異性を有するが、３０日を越える生存性を有さない生成物に到達するために、過度な実験を行なうことなく、当業者が容易にこれを決定することができる。

本発明の最も好ましい実施態様を、アッセイを行う目的で−２０℃での凍結保存およびその後の解凍に先立って、抗有糸分裂およびプロアポトーシス剤である１μg／ml ビンブラスチンで３７℃で１０分間処理したＰＩＬ５細胞を用いるＩ型インターフェロンに対するルシフェラーゼ遺伝子レポーターアッセイを実施するための手順の形態で以下に例示する。
処理されたＰＩＬ５細胞を用いるＩ型インターフェロンに対するルシフェラーゼ遺伝子レポーターアッセイのプロトコール
マイクロタイターアッセイプレートの調製
１．１０％ ウシ胎児血清（ＦＢＳ）含有ＲＰＭＩ １６４０培地中約２×１０^５〜７×１０^５セル／mlの濃度でＰＩＬ５細胞を水中１ｍｇ／mlから希釈した１μg／ml ビンブラスチン（Ｅｌｉ Ｌｌｌｙより予め緩衝化された処方ＶＥＬＢＥとして市販）の新鮮溶液で３７℃で１０分間、空気中５％ ＣＯ_２の環境下で処理する。便宜的にＣＯ_２インキュベーターを使用することができる。
２．ＰＩＬ５細胞を８００×ｇで、４℃で１０分間遠心し、そして同一容量の１０％ ＦＢＳ含有ＲＰＭＩ １６４０培地で１回洗浄してビンブラスチンを除去する。
３．ＰＩＬ５細胞を２×１０^７セル／mlの濃度で４０％ ウシ胎児血清（ＦＢＳ）および２．５％ ジメチルスルホキシド＋１０％ グリセロール含有ＲＰＭＩ １６４０培地に再懸濁する。
４．細胞懸濁液を平底マイクロタイタープレートのウェルに分注してウェルあたり３００，０００セルにする（ウェルあたり細胞懸濁液２５μｌに等価）。
５．マイクロプレートを−８０℃で凍結し、真空下、最上部カバーを用いてシールした。
６．続いてマイクロプレートを用時まで−２０℃で保存することができる。
凍結保存アンプル／バイアルの調製
１．１０％ ウシ胎児血清（ＦＢＳ）含有ＲＰＭＩ １６４０培地中ＰＩＬ５細胞を約２×１０^５〜７×１０^５セル／mlの濃度で水中１ｍｇ／mlから希釈した１μg／ml ビンブラスチン（Ｅｌｉ Ｌｌｌｙより予め緩衝化された処方ＶＥＬＢＥとして市販）の新鮮溶液で３７℃で１０分間、空気中５％ ＣＯ_２の環境下で処理する。便宜的にＣＯ_２インキュベーターを使用することができる。
２．ＰＩＬ５細胞を８０×ｇで、４℃で１０分間遠心し、そして同一容量の１０％ ＦＢＳ含有ＲＰＭＩ １６４０培地で１回洗浄してビンブラスチンを除去する。
３．ＰＩＬ５細胞を２×１０^７セル／mlの濃度で４０％ ウシ胎児血清（ＦＢＳ）および２．５％ ジメチルスルホキシド＋１０％ グリセロール含有ＲＰＭＩ １６４０培地に再懸濁する。
４．細胞懸濁液（１ml）を凍結保存バイアルに分注して−８０％で凍結する。
５．続いて凍結保存バイアルを用時まで−２０℃で保存することができる。

後記するアッセイ手順は、上記のように調製したマイクロタイターアッセイプレートの使用に向けられる。しかしながら末端使用者が予め分注されたアリコートとしてマイクロタイタープレートの代わりに凍結保存バイアル中の処理されたＰＩＬ５細胞を得ることを選択する場合、末端使用者は、１０％ ＦＢＳ含有ＲＰＭＩ １６４０で１：６に細胞を希釈した後に、処理されたＰＩＬ５細胞７５μｌを末端使用者が選択したマイクロタイタープレートの各ウェルに、またはその他のいくつかの容器、すなわちエッペンドルフ遠心管に分注することができ、そして以下に記載したものに類似の様式でアッセイを行う。
アッセイ手順
標準曲線の調製
１．サンプル調製物マイクロプレート（プレートＡ）から保護カバーを取り除く。
２．希釈物（血清不含ＲＰＭＩ １６４０）１００μｌをサンプル調製物プレート（プレートＡ）のウェルＡ１〜Ａ６およびＢ１〜Ｂ６に加える。
３．インターフェロン（ＩＦＮ）参照調製物１００μｌを希釈物１００μｌの入ったプレートＡのウェルのＡ１およびＢ１に加える。
４．マルチチャネルマイクロピペットを用いて、プレートＡのウェルＡ１およびＢ１〜Ａ６およびＢ６でＩＦＮ参照調製物の連続２倍希釈を行う。
サンプル調製
１．必要な場合、サンプル調製物プレート（プレートＡ）のウェルに希釈物１００μｌを加える。
２．サンプルの推定されるＩＦＮ力価が１００ ＩＵ／ml以上である場合、希釈サンプルを試験すべきである。
３．サンプル調製物マイクロプレート（プレートＡ）のサンプルを適切に希釈する
アッセイ手順
１．最上部カバーを有する平らな表面で９６ウェルＰＩＬ５アッセイマイクロプレート（プレートＢ）を急速に解凍する。便宜的に３７℃の水浴設定を用いることができる。
２．最上部ラベルをそのままにするように注意して、保護カバーをハンドタオルペーパーで乾燥する。
３．ＰＩＬ５アッセイマイクロプレート（プレートＢ）から保護カバーを注意深く取り外すが、最上部カバーはそのままにする。
４．マルチチャネルマイクロピペットを用いて、参照調製物の連続２倍希釈の各７５μｌをＰＩＬ５アッセイマイクロプレート（プレートＢ）のウェルＡ１およびＢ１からＡ６およびＢ６に加える。
５．希釈していない、または適切に希釈したサンプル各７５μｌをＰＩＬアッセイマイクロプレート（プレートＡ）に加える。
６．ＰＩＬ５アッセイマイクロプレート（プレートＢ）を３７℃で一晩、空気中５％ ＣＯ_２の環境下でインキュベートする。便宜的にＣＯ_２インキュベーターを使用することができる。
７．マルチチャネルマイクロピペットを用いて、ＬＵＣＩＴ ＰＬＵＳ（Ｐａｃｋａｒｄ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｉｎｃ．、現在は、ＰｅｒｋｉｎＥｌｍｅｒ Ｌｉｆｅ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｂｏｓｔｏｎ，マサチューセッツ州に統合されている、カタログ番号＃６０１６９６１）１００μｌをＰＩＬ５アッセイマイクロプレート（プレートＢ）の各ウェルに加える。
８．マイクロプレート・ルミノメーター（ＬＵＭＩＣＯＵＮＴ，Ｐａｃｋａｒｄ）を用いてサンプルの発光を測定する。
国際単位の計算
１．マイクロソフト（登録商標）・エクセルを用いてＨｕＩＦＮ−α（Ｇ−０２３−９０１−５２７）のＮＩＨ国際標準品ＩＦＮ参照調製物の各希釈物に対する発光の読みの平均から標準曲線をプロットする。
２．標準曲線を表す方程式は、エクセル関数「曲線の補間」を用い、オプション「指数曲線」を用いて得られる。次いでこの方程式を用いて国際単位（ＩＵ）で表される各サンプルのＩＦＮ力価を計算する。

本発明は、シグナル伝達アッセイのために操作されたいかなる細胞、例えば米国特許第５，４３６，１２８号および第５，４０１，６２９号（その全体が参照として本明細書に組み入れられる）に記載されるものを商品化することに向けられているが、Ｉ型インターフェロンのための遺伝子レポーターアッセイおよびこのようなアッセイで用いられる細胞の最も好ましい実施態様のために特定のおよび重要な有用性がある。例えばインターフェロン遺伝子レポーターアッセイの細胞をウイルス感染のための代理マーカーとして提供することができる。循環インターフェロンがウイルス感染の指標であることが既知であるが、循環インターフェロンは、通常細菌感染を有するヒトでは現れない。このように、ヒトが感染を有していると疑われ、そして処理が有効におよび特異的にウイルスまたは細菌感染のいずれかを標的化することができるので、感染がウイルス性または細菌性かどうかを決定したい場合、このインターフェロン遺伝子レポーターアッセイが非常に有用である。ＨＩＶの患者では、循環インターフェロンレベルが無症状期の終わりにつれて検出可能になることは既知である。したがって、疾患の進行の指標をモニター観察するインターフェロンがもう１つの有用性である。

インターフェロン遺伝子レポーターアッセイの細胞をバイオテロリズムにより引き起こされるウイルス感染を感染の可能性がある集団において検出するための代理マーカーとして用いることもできる。感染の可能性がある集団でランダム血液サンプルを採取する場合、この単純な遺伝子レポーターアッセイにより比較的早く、そして費用がかからずに、起こり得るバイオテロリズム攻撃の徴候である偏在するウイルス感染を決定することが可能になる。

更に、動物がウイルスに感染しているかを決定するために、例えばラットの腺ペスト、鳥（すなわちカラス）の西ナイルウイルス、ネコの手足口病等を検出するために、ＩＳＲＥの調節下でレポーター遺伝子を有するラット細胞系、ウシ細胞系、鳥類細胞系等を作製することができる。ヒトにおける西ナイルウイルスの存在を大抵のその他のウイルス感染から容易に区別することができるが、それはヒトにおいてＩ型インターフェロンの力価を数万または数十万単位まで容易に到達させる極わずかのウイルス感染のうちの１つだからである。

もう１つの有用性は、どれくらいの量のインターフェロンが実際に血流（すなわち舌下投与から）に入るかを知り、そしてインターフェロンの投与が自己投与である場合には、患者のコンプライアンスを決定するために、患者におけるインターフェロン治療をモニター観察することである。

別の有用性としては、細胞およびインターフェロンレポーターアッセイを用いて、末梢循環中の、もしくは別の体液、例えばＲＡの場合は滑液中のインターフェロンの存在により特徴付けられる自己免疫疾患、例えば全身性エリテマトーデス（ＳＬＥ）、Ｉ型糖尿病、多発性硬化症、乾癬、もしくはリウマチ性関節炎（ＲＡ）を検出する、または自己免疫疾患の段階を決定することができる。これらの疾患はしばしば、悪化および寛解の段階を有し、これは悪化相の直前に疾患組織内で循環インターフェロンの増加を伴って現れる。したがって、患者が悪化段階に入ろうとし、そして悪化段階を防御または改善する処理の機会を提供することができるときを、このアッセイを用いて検出することができる。

本インターフェロンレポーターアッセイは、Ｉ型インターフェロンレセプターに結合するいずれのＩ型インターフェロンをも認識する。しかしながら、パラレルモノクローナル抗体処理を用いることによりインターフェロンの（複数の）どのアイソタイプが検出されるかを決定することが可能である。したがって、インターフェロンの特定のアイソタイプのモノクローナル抗体は、そのインターフェロンのアイソタイプがシグナル伝達を引き起こすのを防御する。抗体の存在でシグナルが消失する場合、次いで検出される特定のインターフェロンが、その抗体が特異的であるアイソタイプであることが解る。インターフェロンの様々なアイソタイプに対する標準活性曲線は、いかなる規定のレポーター細胞系において、例えば図３で示すＰＩＬ５細胞系に関して異なる。このような標準活性曲線を規定のレポーター細胞系の各型のインターフェロンに対して作製することができる。一度インターフェロンのアイソタイプが検出されたことが解ると、このような標準曲線を用いて、サンプル中に存在するインターフェロンのレベルを正確に定量することができる。

最終的に、本発明は、概して所望の生物学的活性を有する細胞を商品化するための方法
提供する。この商品化方法は、凍結温度以上で３０日を越えずに細胞が、所望の生物学的活性を維持するように細胞を処理すること、そして次に処理された細胞を、解凍後に必要とされる生物学的活性を再開するような温度および条件下で凍結することに関係する。限定された時間利用可能であるが、多重使用のために増殖および無期限に維持することはできない凍結されて処理された細胞は、続いて販売されるかまたは分注される。処理された細胞が、凍結温度を越える温度で所望の生物学的活性を少なくとも８時間維持するが約３０日を越えないような十分な量および十分な時間細胞を抗有糸分裂およびプロアポトーシス剤で処理するのが好ましい。細胞が凍結する温度が約−８０℃であり、そして凍結に先立って、細胞を、凍結保存剤、好ましくは２．５％ ＤＭＳＯ＋１０％ グリセロールを含有する４０％ ＦＢＳ含有ＲＰＭＩ １６４０培地に再懸濁するのが好ましい。

ここで本発明を一般的に記載してきたが、説明のために提供され、そして本発明の限定を意図するものではない以下の実施例を参照することにより同一物が更に容易に理解される。

本発明者は、ＩＦＮ応答性キメラプロモーターの調節下に置かれたルシフェラーゼレポーター遺伝子でトランスフェクトされたヒト細胞系の確立に基づいて、ＩＦＮ活性を同定するための高度に鋭敏で、そして再現性のある方法を開発することにより、インターフェロンを定量する現行の方法の不利な点を打破した。本発明のこの方法により、バイオアッセイに必要な３〜４日ではなく、数時間内でＩＦＮ活性を決定することが可能になる。簡潔に言うと、ＩＳＧ１５遺伝子調節ＳＶ４０最小プロモーターに由来するインターフェロン刺激応答エレメント（ＩＳＲＥ）を５８４９ｂｐのＩＳＲＥ−ｌｕｃベクターのルシフェラーゼレポーター遺伝子の上流にクローン化した（図１；配列番号１）。あるいは、ＩＳＧ１５遺伝子調節ＳＶ４０最小プロモーターに由来するＩＳＲＥを４４１２ ｂｐのＩＳＲＥ− ＥＧＦＰベクターの強化グリーン蛍光タンパク質（ＥＧＦＰ−１）レポーター遺伝子の上流にクローン化した（図２；配列番号３）。ヒト前単球Ｕ９３７細胞をＩＦＮ制御遺伝子レポーター構築物でトランスフェクトし、そして安定したトランスフェクト体を単離し、そしてクローン化した。このようにＩＦＮ応答性キメラプロモーターの調節下でルシフェラーゼレポーター遺伝子を担持するヒト細胞系ＰＩＬ５を確立し、そしてＩＦＮ活性を標準的な抗ウイルスバイオアッセイ（Lallemandら(1996)）よりもより迅速に、そしてより正確に決定することを可能にするアッセイの基礎を提供する。表１は標準的な抗ウイルスバイオアッセイを超える、ＰＩＬ５細胞を用いるインターフェロンに対するルシフェラーゼ遺伝子レポーターアッセイの利点を表し、そして表２はＰＩＬ５細胞を用いるインターフェロンに対するルシフェラーゼ遺伝子レポーターアッセイと、標準的な抗ウイルスバイオアッセイとの間の、種々ウイルスによる感染の結果として生成されたインターフェロンに対する感受性に関しての比較を提示する。

ＰＩＬ５細胞を用いる遺伝子レポーターアッセイは、高度に鋭敏であり（通常１．０ ＩＵ／ml未満のＩＦＮαまたはＩＦＮβを検出することができる）、再現性があり（標準誤差＋／−１０％）、そして広範囲の濃度にわたって（０．１〜１００ ＩＵ／ml）ＩＦＮ活性を検出することができる。方法はまた高度に特異的であり、そして例えば、従来の抗ウイルスバイオアッセイを用いることができない高レベルのＩＦＮγの存在下で低レベルのＩ型ＩＦＮ（ＩＦＮαまたはＩＦＮβ）さえ検出することができる。方法は、低希釈では従来の抗ウイルスバイオアッセイほどに非特異的干渉に付されないので、生物学的液体、例えばヒト血清、脳脊髄液、または尿中のＩＦＮ活性の決定に理想的に適している。ヒト血清およびその他の生物学的液体はしばしば、低希釈でウイルス複製に影響して擬陽性を生じ得るＩＦＮに無関係のウイルス複製の非特異的インヒビターを含有する。

ＰＩＬ５遺伝子レポーターＩＦＮアッセイは、Ｉ型インターフェロンレセプターに結合するいずれのＩ型インターフェロンも認識する。これはまた個々のＩＦＮαサブタイプに特徴的な用量応答（標準）曲線における差異を検出する能力により、あるＩＦＮαサブタイプと別のタイプとを区別する手段をも提供する。これは異なるウイルス感染間の区別にかなり貴重である。パラミクソウイルス、例えばセンダイは、主のＩＦＮα１、ＩＦＮα２、およびＩＦＮβを誘導するが、レンチウイルス、例えばＨＩＶ−１は、主にＩＦＮα５を誘導する（Lallemandら(1996)）。インターフェロンの種々のアイソタイプの各々異なる量の存在下でのＰＩＬ５細胞におけるルシフェラーゼ活性の標準曲線を図３に提示する。

したがって、ウイルス感染した個体からの非常に多くの臨床サンプルを分析するために実験的に用いられている生物学的液体中のＩＦＮレベルを決定するための方法が開発されている。方法は迅速で、費用がかからず、着実であり、専門化または設備を必要とせず、そして容易に自動化される。しかしながら、厳しく限定された寿命および、それにより更なるキットを購入する必要性を失くす、顧客がＰＩＬ５細胞系を保持し、そして培養する能力のために、ＰＩＬ５遺伝子レポーターアッセイは現行様式での商品化が限定される生存細胞の使用に基づく。キットの形式で商品化し易い修飾された形態のＰＩＬ５遺伝子レポーターアッセイを開発するために後記で提示する実験を行ない、ここで市販のアッセイの一部として十分長い寿命を有し、そしてその有用な寿命の終わりに、またはＰＩＬ５遺伝子レポーターアッセイにおけるその使用の終わりにすぐに処理されたＰＩＬ５細胞が、例えばアポトーシスにより細胞死を起こすようにＰＩＬ５細胞を処理する。後記のように適用された実験的アプローチは、γ線の分割照射の使用または、機能的なＩＦＮシグナル伝達経路を保持しながら、細胞増殖を防御するため、および遅延した細胞死（すなわちアポトーシス）を誘起するための抗有糸分裂およびプロアポトーシス剤の使用に基づく。

ＩＦＮ感受性に及ぼすγ線照射の影響
ＰＩＬ５細胞を漸増量のγ線照射（０．３２〜２５Ｇｙ）に付し、そして次に、その後種々の時間でＩ型インターフェロンの漸増量を検出するその能力に関して試験した。予備実験の結果により、０．３２〜１２Ｇｙまでのγ線照射の４日後まで３７℃でインキュベーションした場合、ＰＩＬ５細胞は完全なＩＦＮ活性を保持し（図４）、そして６〜２５ Ｇｙまでのγ線照射に暴露された細胞集団の１００％でアポトーシスが誘起される（図３）ことが示された。したがって、これらの結果により適用された実験アプローチが確認され、そして細胞を６〜１２Ｇｙの範囲内のγ線分割照射に暴露することによりＰＩＬ５遺伝子レポーターアッセイの可能性のある寿命が４日を越えて有意に延長されるが、細胞集団の１００％（または６Ｇｙでほぼ１００％）アポトーシスが誘起されることが示唆された（図５および表３）。

ＩＦＮ感受性に及ぼす温度の影響
ＰＩＬ５細胞を実際に、６Ｇｙのγ線照射に暴露後、１０％ ウシ胎児血清含有ＲＰＭＩ １６４０培地中、室温で１３日まで保存でき、そして依然完全なＩＦＮ感受性を保持することが一連の実験の結果により確立された（図６）。ルシフェラーゼ活性を検定する前に、ＰＩＬ５細胞を続いて被験サンプルまたはＩＦＮ標準物質と共に３７℃でインキュベートすることが条件である。対照的に、１０％ ウシ胎児血清含有ＲＰＭＩ １６４０培地中４℃でＰＩＬ５細胞をインキュベートし、続いて細胞を６Ｇｙのγ線照射に暴露することにより細胞死を誘起したことが予想外に見出された。これは４℃で８日間だけインキュベートした後に、ＩＦＮ感受性の著明な喪失を招いた（図７）。

ＩＦＮ感受性に及ぼす血清濃度の影響
更なる一連の実験では、そのシグナリングがγ線照射によるアポトーシスの誘起に対抗することが既知である血清成長因子への細胞の暴露を変調させるために培養培地の血清含量を１〜１０％の間で変動させた。これらの実験の結果により、ＰＩＬ５細胞を１％ ウシ胎児血清（図８でＦＢＳとして示す）含有培養培地中でインキュベートする場合、１０％ 血清含有培養培地中よりもＰＩＬ５細胞におけるアポトーシスの誘起が更に迅速であることが示された（図８）。更に、１０〜２０％までの血清濃度の上昇は細胞生存性には有意に影響しなかった。

ＩＦＮ感受性に及ぼす細胞濃度の影響
このＰＩＬ５ ＩＦＮ遺伝子レポーターアッセイの感受性は、単純にアッセイに用いるＰＩＬ５細胞数を増やすことにより有意に上昇させることができると予測された。このようなＰＩＬ５遺伝子レポーターアッセイの超高感度（ＳＨＳ）版には、生物学的液体、例えば脳脊髄液中の非常に低レベルのＩＦＮを決定するための広範な適用が見出される。したがって、１０％ ウシ胎児血清含有培養培地中室温で、０．１〜１．０×１０^６セル／mlの濃度でＰＩＬ５細胞をインキュベートした後、６Ｇｙのγ線照射に暴露し、そして次に、その後種々の時間でＩＦＮαの漸増量を検出するその能力に関して試験した。これらの実験の結果により、インターフェロン感受性は実際に最初は増加したが、高細胞密度でのＰＩＬ５細胞のインキュベーションにより、０．１×１０^６セル／mlの濃度におけるよりも更に急速に、最も好ましくは培養培地中の成長因子の枯渇または毒性代謝物の生成のために、細胞死が誘起されることが示された（図９）。

ＩＦＮ感受性に及ぼすアポトーシスインヒビター、酸化フェニルアルシン、およびアウリントリカルボン酸の影響
ＰＩＬ５ ＩＦＮアッセイの寿命を延長させる試みにおいて、ＰＩＬ５細胞を６Ｇｙのγ線照射に付し、そして次に、アポトーシスの誘起を変調させるために漸増濃度（０、０．１、１．０、１０、および１００μＭ）のアウリントリカルボン酸またはフェニルアルシンで処理した。次いで、その後（０、５、１０、１５、２０日等）様々な時間でＩＦＮ感受性に関して細胞を試験した。

これらの研究の結果により、漸増濃度のアウリントリカルボン酸の添加は、細胞を６Ｇｙのγ線照射に暴露した後、ＰＩＬ５遺伝子レポーターの寿命を延長しなかったことが示された（図１０）。

ＩＦＮ感受性に及ぼす抗有糸分裂剤での処理および続く凍結の影響
１０％ ウシ胎児血清（ＦＢＳ）含有ＲＰＭＩ １６４０培地中、２×１０^６セル／mlの濃度でＰＩＬ５細胞を懸濁し、そして１００μＭ ビンブラスチンの存在下、３７℃で１．０時間インキュベートした。次いで細胞を８００ｘｇで１０分間遠心し、同一容量の１０％ ＦＢＳ含有ＲＰＭＩ １６４０培地で１回洗浄してビンブラスチンを除去し、そして４０％ ウシ胎児血清、１０％ グリセロールおよび２．５％ ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）含有ＲＰＭＩ １６４０培地に再懸濁した。次いで細胞懸濁液（２５μｌの容量中１０^５セル）をマイクロタイタープレート（CulturePlate-96、Packard Biosciences, Inc.、現在はPerkinElmer Life Sciences, Boston、マサチューセッツ州に統合されている）のウェルに分注し、そして用時まで−２０℃で保存した。次いで凍結細胞の入ったマイクロタイタープレートを−２０℃のフリーザーから取り出し、好ましくは事前に３７℃に設定された水浴を用いて急速に解凍し、そして試験されるサンプル７５μｌ、または血清不含のＩＦＮ標準物質、または血清不含の陰性対照サンプルをマイクロタイタープレートのウェルに添加し、そして３７℃で一晩インキュベートした。ＬＵＣＬＩＴ ＰＬＵＳ（Packard Biosciences, Inc.、カタログ番号＃６０１６９６１、米国特許第５，２８３，１７９号；第５，６４１，６４１号；第５，６５０，２８９号；および第５，８１４，４７１号）またはルシフェリン（Ｄ−（−）−２−（６′−ヒドロキシ−２′−ベンゾチアゾリル）−Δ^２−チアゾリン−４−カルボン酸）を含有する類似の試薬１００μｌ、ＡＴＰ、バッファー、Ｍｇ^＋２、および好ましくはルシフェラーゼの活性を増強するコエンザイムＡ ｆｒおよびルシフェラーゼを安定化するチオール試薬／スルフヒドリル化合物をマイクロタイタープレートの各ウェルに加え、そしてプレート・リーディング・ルミノメーター（LUMICOUNT、Packard Biosciences, Inc.）でサンプルを読んだ。１００μＭビンブラスチンでの処理および−２０℃での凍結の１か月後、ＰＩＬ５細胞が、完全なＩＦＮ活性を保持することが見出された（図１１）。この研究の結果により、ＩＦＮ感受性を喪失せずに−２０℃で少なくとも１か月の一般的な寿命を有する商業用の生存キット形式のＰＩＬ５ ＩＦＮ遺伝子レポーターアッセイの開発のための方法が確立された。

最適条件を決定するために、種々のパラメーター、すなわちビンブラスチン濃度、ビンブラスチンでの処理時間、ウシ胎児血清（ＦＢＳ）濃度、ＤＭＳＯの存在下または不在下でのグリセロール濃度、ＳＭＳＯ濃度、細胞密度の凍結細胞のインターフェロン感受性に及ぼす影響に関する研究を行った。図１２〜２０参照。なぜ凍結に先立ってＰＩＬ５細胞を処理するために、より好ましい抗有糸分裂およびプロアポトーシス剤として５−ＦＵの代わりにビンブラスチンが選択されたかは、図１２で示される結果からは明らかにできない。理由は、インターフェロン感受性を維持するという観点では、５−ＦＵはビンブラスチンに優っているが、５−ＦＵは試験した用量で細胞複製を防御するのに十分に有効であるとは見出されなかったためである。

図２１および２２は、処理されたＰＩＬ５細胞の凍結後のインターフェロン感受性に及ぼす細胞数の影響を示し、そして図２３は解凍された処理されたＰＩＬ５細胞のインターフェロン感受性に及ぼす、マイクロタイタープレートまたは凍結保存アンプル／バイアル中のいずれかの凍結の影響に関する研究である。凍結後の処理されたＰＩＬ５細胞に対する標準インターフェロン調製物の力価測定曲線を図２４で提示する。

本発明を十分に説明したので、本発明の精神および範囲から逸脱することなく、そして過度な実験を行なわずに、広範囲の等価のパラメーター、濃度、および条件内で同一物を実施することができることは当業者に理解される。

本発明をその具体的な実施態様に関連して記載してきたが、更なる修飾を行うことができることは理解される。本出願は、概して本発明の原理にしたがって、そして本発明が関係する当技術分野において既知になるかまたは慣例になるような、および添付の請求の範囲で後記するように実質的な特徴に適用させることができるような本開示からのこのような逸脱を含んで、本発明のいずれの変種、使用、または適用をも網羅することを意図する。

雑誌記事もしくは要約、公開されたもしくは対応する米国特許もしくは外国特許出願、発行された米国特許もしくは外国特許、またはいずれかその他の参照文献を含む、本明細書に引用したすべての参照文献は、実質的に、引用された参照文献に示されたすべてのデータ、表、図面、および本文を含むその全体が参照として本明細書に組み入れられる。加えて、本明細書に引用された参照文献内で引用された参照文献の全内容も、その全体が参照として本明細書に組み入れられる。

既知の方法の工程、従来の方法の工程、既知の方法または従来の方法への言及は、本発明のいかなる態様、記載、または実施態様が関連する当技術分野において開示、教示、または示唆されているという承認では決してない。

特定の実施態様の先の記載は、本発明の一般的な特性を十分に表しているので、当技術分野の技術内で知識を適用することにより（本明細書に引用された参照文献の内容を含む）、過度な実験を行なわずに、本発明の一般概念から逸脱することなく、このような特定の実施態様を種々の適用に関して容易に修飾および／または適用させることができる。したがって、このような適用および修飾は、本明細書に提示する教示および指導に基づいて、開示された実施態様の等価物の意味および範囲に含まれると意図される。当業者の知識と組み合わせて、本明細書に提示される教示および指導を考慮して当業者により解釈されるように、本明細書の表現および用語が、本明細書の表現および用語は説明目的のためであり、そして限定ではないと理解されるべきである。

ルシフェラーゼ発現が、ＩＳＧ１５遺伝子および最小ＳＶ４０プロモーターに由来するインターフェロン感受性応答エレメント（ＩＲＳＥ）を含有するキメラプロモーターの調節下にあるルシフェラーゼレポーター遺伝子構築物の略図を示す。 強化グリーン蛍光タンパク質（ＥＧＦＰ−１）の発現がＩＳＧ１５遺伝子および最小ＳＶ４０プロモーターに由来するＩＲＳＥを含有するキメラプロモーターの調節下にある強化グリーン蛍光タンパク質（ＥＧＦＰ−１）レポーター遺伝子構築物の略図を示す。 各々種々の量のヒトＩ型インターフェロンの多様なアイソタイプの存在下でのＰＩＬ５細胞におけるルシフェラーゼ活性の標準曲線を示す。 種々の量のγ線照射および３７℃でのインキュベーションの４日後のＰＩＬ５細胞におけるルシフェラーゼ活性を示すグラフである。 ６グレイ（Ｇｙ）のγ線照射および３７℃でのインキュベーションの後、種々の時間での生存ＰＩＬ５細胞のパーセンテージを示すグラフである。 ６（Ｇｙ）のγ線照射および室温でのインキュベーションの後、種々の時間でのＰＩＬ５細胞におけるルシフェラーゼ活性を示すグラフである。 ６（Ｇｙ）のγ線照射および４℃または室温でのインキュベーションの８日後のＰＩＬ５細胞におけるルシフェラーゼ活性を示すグラフである。 ０％、１％、または１０％ウシ胎児血清（ＦＢＳ）含有培養培地中、６（Ｇｙ）のγ線照射および３７℃でのインキュベーションの５日後のＰＩＬ５細胞におけるルシフェラーゼ活性を示すグラフである。 １０％または２０％ウシ胎児血清（ＦＢＳ）含有培養培地中、６（Ｇｙ）のγ線照射および３７℃でのインキュベーションの１３日後、種々の細胞濃度のＰＩＬ５細胞におけるルシフェラーゼ活性を示すグラフである。 ６（Ｇｙ）のγ線照射および室温でアウリントリカルボン酸での処理の１４日後のＰＩＬ５細胞におけるルシフェラーゼ活性を示すグラフである。 １０％ ＤＭＳＯ中−２０℃で１か月保存からの解凍の２４時間後のＰＩＬ５細胞におけるルシフェラーゼ活性を示すグラフである。−２０℃での凍結および保存の前にＰＩＬ５を種々の濃度の抗有糸分裂およびプロアポトーシス剤、ビンブラスチン（Ｖｉｎ）または５−フルオロウラシル（５Ｆｕ）で１時間処理した。 凍結細胞のインターフェロン感受性に及ぼすビンブラスチンまたは５−フルオロウラシルの影響を示すグラフである。ＰＩＬ５細胞を１．０、１０、または１００μＭ ビンブラスチンで、または１０、１００μＭ、または１．０ｍＭ ５−フルオロウラシルで ３７℃で１時間処理し、遠心し、そして２０％ ウシ胎児血清（ＦＢＳ）および１０％ ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）を含有するＲＰＭＩ１６４０培地５０μｌに懸濁し、並びに２×１０^５セルをマイクロタイター培養プレートの各ウェルに分注し、そして−８０℃で凍結した。−８０℃で保存し、そして続いて−２０℃で保存した後、プレートを急速に解凍し、そしてヒトＩＦＮαの標準調製物を前記したルシフェラーゼ遺伝子レポーターアッセイ手順で力価測定した。 凍結細胞のインターフェロン感受性に及ぼすビンブラスチンの影響を示すグラフである。ＰＩＬ５細胞を０．１または１．０μg／ml ビンブラスチンで３７℃で１０分間処理し、遠心し、そして４０％ ＦＢＳおよび１０％ グリセロールを含有するＲＰＭＩ１６４０培地２５μｌに懸濁し、並びに２×１０^５セルをマイクロタイター培養プレートの各ウェルに分注し、そして−８０℃で凍結した。−８０℃で保存し、そして続いて−２０℃で保存した後、プレートを急速に解凍し、そしてヒトＩＦＮαの標準調製物を前記したルシフェラーゼ遺伝子レポーターアッセイ手順で力価測定した。 凍結細胞のインターフェロン感受性に及ぼすビンブラスチン処理の時間の影響を示すグラフである。ＰＩＬ５細胞を１．０μg／ml ビンブラスチンで、３７℃で１０、２０、３０、または４０分間処理し、遠心し、そして２０％ ＦＢＳおよび１０％ ＤＭＳＯを含有するＲＰＭＩ１６４０培地５０μｌに懸濁し、並びに２×１０^５セルをマイクロタイター培養プレートの各ウェルに分注し、そして−８０℃で凍結した。−８０℃で保存し、そして続いて−２０℃で保存した後、プレートを急速に解凍し、そしてヒトＩＦＮαの標準調製物を前記したルシフェラーゼ遺伝子レポーターアッセイ手順で力価測定した。 凍結細胞のインターフェロン感受性に及ぼすグリセロール濃度の影響を示すグラフである。ＰＩＬ５細胞を１００μＭ ビンブラスチンで、３７℃で１０分間処理し、遠心し、そして４０％ ＦＢＳおよび５または１０％ グリセロールを含有するＲＰＭＩ１６４０培地２５μｌに懸濁し、並びに２×１０^５セルをマイクロタイター培養プレートの各ウェルに分注し、そして−８０℃で凍結した。−８０℃で保存し、そして続いて−２０℃で保存した後、プレートを急速に解凍し、そしてヒトＩＦＮαの標準調製物を前記したルシフェラーゼ遺伝子レポーターアッセイ手順で力価測定した。 凍結細胞のインターフェロン感受性に及ぼすグリセロール濃度の影響を示すグラフである。ＰＩＬ５細胞を１００μＭ ビンブラスチンで、３７℃で１０分間処理し、遠心し、そして４０％ ＦＢＳおよび５、１０、１５、２０％ グリセロール、または５％ グリセロールおよび５％ ＤＭＳＯを含有するＲＰＭＩ１６４０培地２５μｌに懸濁し、並びに２×１０^５セルをマイクロタイター培養プレートの各ウェルに分注し、そして−８０℃で凍結した。−８０℃で保存し、そして続いて−２０℃で保存した後、プレートを急速に解凍し、そしてヒトＩＦＮαの標準調製物を前記したルシフェラーゼ遺伝子レポーターアッセイ手順で力価測定した。 凍結細胞のインターフェロン感受性に及ぼす、ＤＭＳＯ存在下または不在下のグリセロールの影響を示すグラフである。ＰＩＬ５細胞を１００μＭ ビンブラスチンで、３７℃で１０分間処理し、遠心し、そして２．５％ ＤＭＳＯを伴うかまたは伴わずに、 ４０％ ＦＢＳおよび１０％ グリセロールを含有するＲＰＭＩ１６４０培地２５μｌに懸濁し、並びに２×１０^５セルをマイクロタイター培養プレートの各ウェルに分注し、そして−８０℃で凍結した。−８０℃で保存し、そして続いて−２０℃で保存した後、プレートを急速に解凍し、そしてヒトＩＦＮαの標準調製物を前記したルシフェラーゼ遺伝子レポーターアッセイ手順で力価測定した。 凍結細胞のインターフェロン感受性に及ぼす細胞密度の影響を示すグラフである。ＰＩＬ５細胞を１００μＭ ビンブラスチンで、３７℃で１０分間処理し、遠心し、並びに２×１０^５セルを４０％ ＦＢＳおよび１０％ ＤＭＳＯを含有するＲＰＭＩ１６４０培地１０、２５または５０μｌに懸濁し、そしてマイクロタイター培養プレートのウェルに分注し、そして−８０℃で凍結した。−８０℃で保存し、そして続いて−２０℃で保存した後、プレートを急速に解凍し、そしてヒトＩＦＮαの標準調製物を前記したルシフェラーゼ遺伝子レポーターアッセイ手順で力価測定した。 凍結細胞のインターフェロン感受性に及ぼす細胞密度の影響を示すグラフである。ＰＩＬ５細胞を１００μＭ ビンブラスチンで、３７℃で１０分間処理し、遠心し、並びに２×１０^５セルを４０％ ＦＢＳおよび１０％ ＤＭＳＯを含有するＲＰＭＩ１６４０培地２５または５０μｌに懸濁し、そしてマイクロタイター培養プレートのウェルに分注し、そして−８０℃で凍結した。−８０℃で保存し、そして続いて−２０℃で保存した後、プレートを急速に解凍し、そしてヒトＩＦＮαの標準調製物を前記したルシフェラーゼ遺伝子レポーターアッセイ手順で力価測定した。 凍結細胞のインターフェロン感受性に及ぼす細胞密度の影響を示すグラフである。ＰＩＬ５細胞を１００μＭ ビンブラスチンで、３７℃で１０分間処理し、遠心し、並びに２×１０^５セルを４０％ ＦＢＳおよび１０％ グリセロールを含有するＲＰＭＩ１６４０培地１０、２５、または５０μｌに懸濁し、そしてマイクロタイター培養プレートのウェルに分注し、そして−８０℃で凍結した。−８０℃で保存し、そして続いて−２０℃で保存した後、プレートを急速に解凍し、そしてヒトＩＦＮαの標準調製物を前記したルシフェラーゼ遺伝子レポーターアッセイ手順で力価測定した。 凍結後のインターフェロン感受性に及ぼす細胞数の影響を示すグラフである。ＰＩＬ５細胞を１００μＭ ビンブラスチンで、３７℃で１０分間処理し、遠心し、並びに０．５、１．０、または２×１０^５セルを４０％ ＦＢＳおよび１０％ グリセロールを含有するＲＰＭＩ１６４０培地１０μｌに懸濁し、そしてマイクロタイター培養プレートのウェルに分注し、そして−８０℃で凍結した。−８０℃で保存し、そして続いて−２０℃で保存した後、プレートを急速に解凍し、そしてヒトＩＦＮαの標準調製物を前記したルシフェラーゼ遺伝子レポーターアッセイ手順で力価測定した。 凍結後のインターフェロン感受性に及ぼす細胞数の影響を示すグラフである。ＰＩＬ５細胞を１００μＭ ビンブラスチンで、３７℃で１０分間処理し、遠心し、並びに０．５、１．０、または２×１０^５セルを４０％ ＦＢＳ １０μｌに懸濁し、そしてマイクロタイター培養プレートのウェルに分注し、そして−８０℃で凍結した。−８０℃で保存し、そして続いて−２０℃で保存した後、プレートを急速に解凍し、そしてヒトＩＦＮαの標準調製物を前記したルシフェラーゼ遺伝子レポーターアッセイ手順で力価測定した。 インターフェロン感受性に及ぼす凍結保存アンプルまたはマイクロタイタープレート中の凍結の影響を示すグラフである。ＰＩＬ５細胞を１．０μg／ml ビンブラスチンで、３７℃で１０分間処理し、遠心し、そして４０％ ＦＢＳ、１０％ グリセロールおよび２．５％ ＤＭＳＯを含有するＲＰＭＩ１６４０培地に懸濁した。次いで細胞をマイクロタイター培養プレートの各ウェル（２５μｌ／ウェル中２×１０^５セル）に分注するか、または凍結保存アンプル（１．０ml中２×１０^７セル）に加え、そして−８０℃で凍結した。−８０℃で保存し、そして続いて−２０℃で保存した後、マイクロタイタープレートおよび凍結保存アンプルを急速に解凍し、そしてヒトＩＦＮαの標準調製物をマイクロタイタープレート中で力価測定するか、または凍結保存アンプルの内容物（１．０ml中２×１０^７セル）をＲＰＭＩ１６４０培地６．５mlに希釈し、そして次に細胞懸濁液 ７５μｌをマイクロタイター培養プレートの各ウェルに分注し、そしてヒトＩＦＮαの標準調製物を前記したルシフェラーゼ遺伝子レポーターアッセイ手順で力価測定した。 凍結後のＰＩＬ５細胞におけるインターフェロン標準調製物の力価測定を示すグラフである。ＰＩＬ５細胞を１．０μg／ml ビンブラスチンで、３７℃で１０分間処理し、遠心し、そして４０％ ＦＢＳ、１０％ グリセロールおよび２．５％ ＤＭＳＯを含有するＲＰＭＩ １６４０培地２５μｌあたり２×１０^５セルの濃度で懸濁し、そしてマイクロタイター培養プレートの各ウェルに分注し、そして−８０℃で凍結した。−８０℃、そして続いて−２０℃で保存した後、プレートを急速に解凍し、そしてヒトＩＦＮαの標準調製物を前記したルシフェラーゼ遺伝子レポーターアッセイ手順で力価測定した。

【配列表】

Claims (69)

1. 細胞外シグナルに応答して細胞表面タンパク質のシグナル伝達活性により制御される、１つ以上の転写調節エレメントに作動可能に連結されたレポーター遺伝子産物をコードするヌクレオチド配列を含むレポーター遺伝子構築物で形質転換された細胞であって、上記シグナル伝達活性を喪失する前に凍結温度を越える温度で上記シグナル伝達活性を少なくとも約１時間維持するが、約３０日を超えず維持するように、処理されている細胞。
2. 細胞が凍結される実質直前に、前記処理が行われている、凍結状態にある請求項１記載の細胞。
3. 前記細胞が、前記シグナル伝達活性を喪失する前に凍結温度を越える温度では前記シグナル伝達活性を少なくとも約１時間維持するが、約３０日を超えず維持するように、抗有糸分裂およびプロアポトーシス剤で処理され、そして次に凍結保存剤を含有する溶液中に再懸濁されている、請求項２記載の細胞。
4. 前記処理された細胞が、処理され、そして次に凍結保存剤を含有する溶液中に再懸濁された実質的に直後に約−８０℃で凍結されている、請求項３記載の細胞。
5. 前記凍結保存剤が、ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）であり、そして前記溶液が１０％ ＤＭＳＯを含有する、請求項４記載の細胞。
6. 前記凍結保存剤が、２．５％ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）および１０％ グリセロールの組み合わせである、請求項４記載の細胞。
7. 前記抗有糸分裂およびプロアポトーシス剤が、ビンブラスチンである、請求項３記載の細胞。
8. 前記抗有糸分裂およびプロアポトーシス剤が、５−フルオロウラシルである、請求項３記載の細胞。
9. 前記細胞が、前記該シグナル伝達活性を喪失する前に凍結温度を越える温度では前記シグナル伝達活性を少なくとも約１時間維持するが、約３０日を超えず維持するように、強度および十分な時間γ線で照射されている、請求項１記載の細胞。
10. 前記凍結温度を越える温度が、室温である、請求項９記載の細胞。
11. γ線の前記強度および時間が、６〜１２Ｇｙである、請求項９記載の細胞。
12. 前記細胞表面タンパク質が、細胞表面レセプターである、請求項１記載の細胞。
13. 前記細胞表面レセプターが、サイトカインレセプター、成長因子レセプター、ホルモンレセプター、神経レセプター、Ｔ細胞レセプター、抗原レセプター、および補体レセプターから選択される、請求項１２記載の細胞。
14. 前記細胞表面レセプターが、Ｉ型インターフェロンレセプターであり、そして前記細胞外シグナルが、Ｉ型インターフェロンにより提供される、請求項１２記載の細胞。
15. 前記１つ以上の転写調節エレメントが、インターフェロン刺激応答エレメント（ＩＳＲＥ）を含む、請求項１４記載の細胞。
16. 前記ＩＳＲＥが、配列番号５のヌクレオチド配列を含む、請求項１５記載の細胞。
17. 前記細胞表面レセプターが、II型インターフェロンレセプターであり、そして前記細胞外シグナルがII型インターフェロンにより提供される、請求項１２記載の細胞。
18. 前記１つ以上の転写調節エレメントが、ガンマ活性化配列（ＧＡＳ）を含む、請求項１７記載の細胞。
19. 前記細胞表面レセプターが、インターフェロンレセプターであり、そして前記細胞外シグナルが、Ｉ型インターフェロンおよび／またはII型インターフェロンにより提供される、請求項１２記載の細胞。
20. 前記１つ以上の転写調節エレメントが、インターフェロン刺激応答エレメント（ＩＳＲＥ）およびガンマ活性化配列（ＧＡＳ）を含む、請求項１９記載の細胞。
21. 前記レポーター遺伝子産物が、ホタルルシフェラーゼ、細菌性ルシフェラーゼ、クラゲエクオリン、強化グリーン蛍光タンパク質（ＥＧＦＰ）、クロラムフェニコールアセチルトランスフェラーゼ（ＣＡＴ）、ｄｓＲＥＤ、β−ガラクトシダーゼ、およびアルカリホスファターゼからなる群より選択される、請求項１記載の細胞。
22. 前記レポーター遺伝子産物が、ホタルルシフェラーゼである、請求項１記載の細胞。
23. 前記レポーター遺伝子産物が、強化グリーン蛍光タンパク質（ＥＧＦＰ）である、請求項１記載の細胞。
24. 前記レポーター遺伝子産物が、クラゲエクオリンである、請求項１記載の細胞。
25. 哺乳動物または鳥類細胞である、請求項１記載の細胞。
26. ヒト細胞である、請求項２５記載の細胞。
27. ヒト前単球細胞である、請求項２６記載の細胞。
28. ＰＩＬ５細胞である、請求項２７記載の細胞。
29. 細胞表面タンパク質のシグナル伝達活性を活性化する分子のサンプルのレベルを決定するためのキットであって、
    複数のウェルを有する試験装置と；
    請求項１記載の複数の細胞を含有する試薬と；
    を含むキット。
30. 前記試験装置が、マイクロタイタープレートである、請求項２９記載のキット。
31. 前記試薬が、前記試験装置のウェルに分注されている、請求項２９記載のキット。
32. 細胞表面タンパク質のシグナル伝達活性を活性化する分子のサンプル中のレベルを決定するためのキットを使用するための指示書のセットを更に含む、請求項２９記載のキット。
33. 細胞表面タンパク質のシグナル伝達活性を活性化する分子が、Ｉ型インターフェロン、II型インターフェロン、または両者である、請求項２９記載のキット。
34. 細胞外シグナルに応答して細胞表面タンパク質のシグナル伝達活性により制御される、１つ以上の転写調節エレメントに作動可能に連結されたレポーター遺伝子産物をコードするヌクレオチド配列を含むレポーター遺伝子構築物で形質転換された凍結細胞であって、実質的に凍結の直前に、細胞死を起こす前に凍結温度を越える温度では上記細胞シグナル伝達活性を少なくとも約１時間維持するが、約３０日を超えず維持する、ように処理されている凍結細胞。
35. レポーター遺伝子構築物で形質転換され、そして約３０日以内にシグナル伝達活性を喪失する細胞を調製するための方法であって、下記：
    細胞外シグナルに応答して細胞表面タンパク質のシグナル伝達活性により制御される、１つ以上の転写調節エレメントに作動可能に連結されたレポーター遺伝子産物をコードするヌクレオチド配列を含むレポーター遺伝子構築物で細胞を形質転換する工程と；
    該シグナル伝達活性を喪失前に凍結温度を越える温度では該シグナル伝達活性を少なくとも約１時間維持するが、約３０日を超えず維持するように上記形質転換された細胞を処理する工程と；
    を含む方法。
36. 該細胞が、哺乳動物または鳥類細胞である、請求項３５記載の方法。
37. 該細胞が、ヒト細胞である、請求項３５記載の方法。
38. 該ヒト細胞が、ヒト前単球細胞である、請求項３７記載の方法。
39. 該細胞表面タンパク質が、細胞表面レセプターである、請求項３５記載の方法。
40. 該細胞表面レセプターが、Ｉ型インターフェロンレセプターであり、そして該細胞外シグナルがＩ型インターフェロンである、請求項３９記載の方法。
41. 該レポーター遺伝子生産物が、ホタルルシフェラーゼ、細菌性ルシフェラーゼ、クラゲエクオリン、強化グリーン蛍光タンパク質（ＥＧＦＰ）、クロラムフェニコールアセチルトランスフェラーゼ（ＣＡＴ）、ｄｓＲＥＤ、β−ガラクトシダーゼ、およびアルカリホスファターゼからなる群より選択される、請求項３５記載の方法。
42. 解凍後にシグナル伝達を再開するような温度および条件下で、該処理された細胞を凍結する工程を更に含む、請求項３５記載の方法。
43. 前記処理する工程が、照射された細胞が凍結温度を越える温度では細胞表面タンパク質のシグナル伝達活性を少なくとも７日間維持するが、約３０日を超えず維持し、この期間の後、照射された細胞が即座に細胞死を起こすような強度および十分な時間形質転換された細胞をγ線で照射する工程を含む、請求項３５記載の方法。
44. 前記照射する工程で、形質転換された細胞を約６〜１２Ｇｙのγ線で照射する、請求項４３記載の方法。
45. 凍結温度を越える温度が、室温である、請求項４３記載の方法。
46. 細胞表面タンパク質のシグナル伝達活性を活性化する分子のサンプル中の存在および／またはレベルを決定するための方法であって、下記：
    請求項４３記載の方法にしたがって細胞を調製する工程と；
    細胞表面タンパク質のシグナル伝達活性を活性化し、そして細胞外シグナルとして提供される分子の存在および／またはレベルを決定しようとするサンプルと共に調製された細胞をインキュベーションする工程と；
    レポーター遺伝子産物の発現のレベルを決定し、それにより細胞表面タンパク質のシグナル伝達活性を活性化する分子のサンプル中の存在および／またはレベルを決定する工程と；
    を含む方法。
47. 該細胞表面タンパク質が、細胞表面レセプターである、請求項４６記載の方法。
48. 該細胞表面レセプターが、Ｉ型インターフェロンレセプターであり、そして該細胞外シグナルが、Ｉ型インターフェロンである、請求項４７記載の方法。
49. 前記処理する工程が、作用物質で処理した後、処理された細胞が、凍結温度を越える温度では少なくとも１時間細胞表面タンパク質のシグナル伝達活性を維持するが約３０日を超えず維持し、その期間の後処理された細胞が即座に細胞死を起こすように、形質転換された細胞を十分な量および十分な時間抗有糸分裂およびプロアポトーシス性の上記作用物質で処理する工程を含む、請求項３５記載の方法。
50. 解凍後にシグナル伝達を再開するような温度および条件下で、該処理された細胞を凍結する工程を更に含む、請求項４９記載の方法。
51. 前記凍結する工程を約−２０℃〜約−２００℃の範囲の温度で実施し、続いて細胞を約−２０℃の温度で保存する、請求項５０記載の方法。
52. 前記凍結する工程を約−８０℃の温度で実施する、請求項５０記載の方法。
53. 前記凍結する工程の前に、凍結保存剤を含有する溶液中に、該処理された細胞を再懸濁する工程を更に含む、請求項５０記載の方法。
54. 該凍結保存剤が、ＤＭＳＯおよびグリセロールの組み合わせであり、そして溶液が２．５％ ＤＭＳＯおよび１０％ グリセロールを含有する、請求項５３記載の方法。
55. 該溶液が、ＲＰＭＩ培地および４０％ ウシ胎児血清を含む、請求項５３記載の方法。
56. 該抗有糸分裂およびプロアポトーシス剤が、ビンブラスチンである、請求項４９記載の方法。
57. 該抗有糸分裂およびプロアポトーシス剤が、５−フルオロウラシルである、請求項４９記載の方法。
58. 細胞表面タンパク質のシグナル伝達活性を活性化する分子のサンプル中の存在および／またはレベルを決定するための方法であって、
    請求項５０記載の方法にしたがって凍結細胞を調製する工程と；
    凍結細胞を解凍する工程と；
    細胞表面タンパク質のシグナル伝達活性を活性化し、そして細胞外シグナルとして提供される分子の存在および／またはレベルを決定しようとするサンプルと共に解凍した細胞をインキュベートする工程と；
    レポーター遺伝子産物の発現のレベルを決定し、それにより細胞表面タンパク質のシグナル伝達活性を活性化する分子のサンプル中の存在および／またはレベルを決定する工程と；
    を含む方法。
59. 該細胞表面タンパク質が、細胞表面レセプターである、請求項５８記載の方法。
60. 該細胞表面レセプターが、Ｉ型インターフェロンレセプターであり、そして該細胞外シグナルがＩ型インターフェロンである、請求項５９記載の方法。
61. 所望の生物学的活性を有する細胞を商品化するための方法であって、
    細胞が凍結温度を越える温度で約３０日を越えずに所望の生物学的活性を維持するように細胞を処理する工程と；
    解凍後に必要な生物学的活性を再開するような温度および条件下で、該処理された細胞を凍結する工程と；
    該凍結され、処理された細胞を販売または流通させ、それにより該細胞が、限定された時間利用可能であるが、多回使用のために無期限に増殖および維持することができない工程と；
    を含む方法。
62. 前記処理する工程が、凍結温度を越える温度では細胞が所望の生物学的活性を少なくとも８時間維持するが、約３０日を越えないように細胞を処理する工程とを含む、請求項６１記載の方法。
63. 該処理された細胞を、該凍結する工程の前に、凍結保存剤の入った溶液中に懸濁する工程を更に含む、請求項６２記載の方法。
64. 該凍結保存剤が、ＤＭＳＯおよびグリセロールの組み合わせであり、そして該溶液が２．５％ ＤＭＳＯおよび１０％ グリセロールを含有する、請求項６３記載の方法。
65. 該溶液が、ＲＰＭＩ培地および４０％ ウシ胎児血清を含む、請求項６３記載の方法。
66. 前記処理する工程で、細胞を、抗有糸分裂およびプロアポトーシス性である作用物質で、細胞が凍結温度を越える温度では所望の生物学的活性を少なくとも８時間維持するが、約３０日を越えず維持するような十分な量および十分な時間処理する、請求項６２記載の方法。
67. 前記凍結する工程で、温度が約−８０℃である、請求項６１記載の方法。
68. 該抗有糸分裂およびプロアポトーシス剤が、ビンブラスチンである、請求項６６記載の方法。
69. 該抗有糸分裂およびプロアポトーシス剤が、５−フルオロウラシルである、請求項６６記載の方法。

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