JP2005245390A - Method for producing glutathione - Google Patents

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道代 平野
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久時 小牧
Nobuo Masaki
信男 正木
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Abstract

<P>PROBLEM TO BE SOLVED: To provide a method for producing glutathione comprising seeding a culture medium to which ethanol is added with a glutathione-producing yeast, making it possible that the glutathione produced by the yeast itself is discharged into the culture medium, when the glutathione-producing yeast is cultured in the natural culture medium. <P>SOLUTION: This method for producing the glutathione comprises seeding the culture medium to which the ethanol is added with the glutathione-producing yeast, wherein the glutathione is produced by seeding the natural culture medium for which a collagen peptide is used as a nitrogen source with the yeast and culturing the yeast. <P>COPYRIGHT: (C)2005,JPO&NCIPI

Description

本発明は、エタノールを添加した培地にグルタチオン生産酵母を接種してグルタチオンを製造する方法に関するものである。   The present invention relates to a method for producing glutathione by inoculating a culture medium supplemented with ethanol with glutathione-producing yeast.

グルタチオンは、生体内において、酵素や補酵素としての作用、解毒作用、肝機能強化、放射線障害の防御、細胞膜の維持作用など、種々の生理作用を果たしていることが知られている。
このグルタチオンは酵母、牛の肝臓、羊の脳などに存在しているが、工業的生産方法としては、グルタチオンを多量に含有する酵母を培養し、ここからグルタチオンを抽出する方法が採用されている。
It is known that glutathione plays various physiological functions in vivo, such as an action as an enzyme or a coenzyme, a detoxification action, liver function enhancement, protection against radiation damage, and a cell membrane maintenance action.
This glutathione is present in yeast, cattle liver, sheep brain, etc., but as an industrial production method, a method of culturing yeast containing a large amount of glutathione and extracting glutathione therefrom is adopted. .

特許文献1は、γ−グルタミルシステイン合成酵素遺伝子を導入したグルタチオン高生産酵母に変異処理を行って得たアゼセリン耐性菌を好気培養することによってグルタチオン高含有酵母が得られることを開示している。
また、特許文献2は、乳酸菌発酵下でグルタチオン生産酵母菌を麦芽エキスとグルタミン酸ナトリウムを含有する培地で好気震盪培養することによってグルタチオン生産酵母が大量に生成されることを開示している。
しかしながら、いずれの方法から得た酵母菌であっても、グルタチオンは酵母菌体内に保有されているため、酵母を培地から分離して、例えば特許文献3に開示されている破砕機などを利用して酵母の細胞膜を破壊しなければグルタチオンを得ることはできない不都合がある。
Patent Document 1 discloses that a glutathione-rich yeast can be obtained by aerobic culture of azeserine-resistant bacteria obtained by performing mutation treatment on a glutathione high-producing yeast introduced with a γ-glutamylcysteine synthetase gene. .
Patent Document 2 discloses that glutathione-producing yeast is produced in a large amount by aerobic shaking culture of glutathione-producing yeast in a medium containing malt extract and sodium glutamate under lactic acid bacteria fermentation.
However, even if the yeast is obtained from any method, glutathione is retained in the yeast, so the yeast is separated from the medium and used, for example, by a crusher disclosed in Patent Document 3. Thus, glutathione cannot be obtained unless the yeast cell membrane is destroyed.

非特許文献1には、酵母の生産したグルタチオンを培地内に流出させる培養技術が開示されている。すなわち、エタノールを添加した合成培地にグルタチオン生産酵母であるCandida
tropicalis Pk233を接種した場合に、菌体が菌糸細胞に変化すると共にエタノールが酵母に働きかけてグルタチオンの流出を促進させ、菌体が生産したグルタチオンを培地内に流出させられることを明らかにしている。
酵母が培地中に生理活性物質を流出させることは極めて有意義なことであるが、グルタチオンの流出先が合成培地であるため、そのまま利用することはできない。複雑な精製方法によってグルタチオンを培地から分離させることを余儀なくされ、工業的な利用を図るためには問題が残されていた。
Non-patent document 1 discloses a culture technique for allowing glutathione produced by yeast to flow out into a medium. That is, Candida, a glutathione-producing yeast, is added to a synthetic medium supplemented with ethanol.
When tropicalis Pk233 was inoculated, the cells changed to mycelium cells and ethanol acted on the yeast to promote glutathione outflow, which revealed that glutathione produced by the cells could be discharged into the medium.
Although it is extremely significant for yeast to cause the physiologically active substance to flow out into the medium, it cannot be used as it is because glutathione is discharged from a synthetic medium. Glutathione was forced to be separated from the medium by a complicated purification method, and a problem remained for industrial use.

発明者は、非特許文献1において提案された培養技術を改良し、培地に流出したグルタチオンを精製工程を経ることなくそのまま利用できるようにするための培養方法について研究した。
最初に、表−1に示した公知の天然培地(通称YPG培地)を使用し、エタノールを添加しないものと2容積%を添加(以下エタノールの添加量について同じ。)したものについて、グルタチオン生産酵母として知られているCandida
tropicalis Pk233、Candida tropicalis IFO1400、Candida utilis及びPichia anomalaの四種の酵母を培養した。
(表−1)YPG培地100ml中の組成
ブドウ糖 5g
ポリペプトン 1g
酵母エキス 0.5g
なお、ブドウ糖及びポリペプトンは和光純薬株式会社製、酵母エキスは武田薬品工業株式会社製のものを使用した。
The inventor studied the culture method for improving the culture technique proposed in Non-Patent Document 1 so that glutathione flowing out of the medium can be used as it is without undergoing a purification step.
First, using a known natural medium (commonly known as YPG medium) shown in Table 1 and adding 2% by volume (the same is true for the amount of ethanol added), glutathione-producing yeast is used. Known as Candida
Four types of yeast were cultured: tropicalis Pk233, Candida tropicalis IFO1400, Candida utilis and Pichia anomala.
(Table-1) Composition in 100 ml of YPG medium Glucose 5 g
Polypeptone 1g
Yeast extract 0.5g
Glucose and polypeptone manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd., and yeast extract manufactured by Takeda Pharmaceutical Company Limited were used.

この培養においては、100mlのフラスコ内に培地20mlを注ぎ、培地について各酵母を10mgドライ/ml接種したものを培地内に0.1ml注ぎ入れ、30℃で100時間震盪培養した。その後、この培養液をそのまま遠心分離機に3000rpm
/15分かけて得られた上清と、培養液を一旦オートクレープによって110℃で10分間加熱した後遠心分離機に3000rpm /15分かけて得られた加熱上清とについて、グルタチオン量をDTNB法によって測定した。
このDTNB法は、非特許文献1に記載されているように、グルタチオンレラクターゼとグルタチオンの共存下において、5,5’−ジチィオビス(2ニトロ安息香酸)(DTNB)がニコチンアミドアデニンジヌクレオチドリン酸還元型(NADPH2
)で還元されるとき、その反応速度がグルタチオン存在量に比例することを利用したグルタチオン量の測定方法であり、反応開始後の412nmにおける吸収の増加を測定した。
培地中のグルタチオンの生成量は表−2に示した通りであった。
In this culture, 20 ml of the medium was poured into a 100 ml flask, 0.1 ml of each yeast inoculated with 10 mg of each yeast was poured into the medium, and cultured with shaking at 30 ° C. for 100 hours. After that, the culture solution is kept in a centrifuge at 3000 rpm.
The glutathione content of the supernatant obtained over / 15 minutes and the culture supernatant once heated at 110 ° C. for 10 minutes by autoclave and then centrifuged at 3000 rpm / 15 minutes for the amount of glutathione Measured by the method.
In this DTNB method, as described in Non-Patent Document 1, 5,5′-dithiobis (2nitrobenzoic acid) (DTNB) is converted to nicotinamide adenine dinucleotide phosphate in the presence of glutathione reluctase and glutathione. Reduced type (NADPH 2
) Is a method for measuring the amount of glutathione utilizing the fact that the reaction rate is proportional to the amount of glutathione present, and the increase in absorption at 412 nm after the start of the reaction was measured.
The amount of glutathione produced in the medium was as shown in Table 2.

(表−2)YPG培地におけるグルタチオンの生成量(単位μg /ml)

Figure 2005245390
(Table-2) Amount of glutathione produced in YPG medium (unit: μg / ml)
Figure 2005245390

上記のYPG培地では、培地へのグルタチオンの流出が極めて少なく、上清においては、エタノールを添加しないものと2%添加したものとで流出量の差はほとんど認められなかった。
この培地においては、エタノールが酵母自体は大きく増殖せず、タンパク質成分としてのポリペプトンに含まれるイノシトールが酵母の細胞膜を強化してしまうために、エタノールによるグルタチオン流出が抑制されたためと思われる。
また、上清を加熱した場合には、菌体内に滞留しているグルタチオンは加熱しない場合に比べ増加しているが、これは、酵母がその増殖に制限を受けながらもグルタチオンを生産して菌体内に蓄積していたことを意味している。
In the above YPG medium, glutathione flowed out into the medium was extremely small, and in the supernatant, there was almost no difference in the amount of flow between the one without ethanol and the one with 2% added.
In this medium, ethanol does not grow greatly in yeast itself, and inositol contained in polypeptone as a protein component strengthens the cell membrane of yeast, which is thought to suppress glutathione outflow by ethanol.
In addition, when the supernatant is heated, glutathione staying in the cells increases compared to when it is not heated. This is because the yeast produces glutathione while restricting its growth, It means that it had accumulated in the body.

特開平6−70752号公報JP-A-6-70752 特開2003−102468公報JP 2003-102468 A 特開平5−252894号公報JP-A-5-252894 聖母女学院短期大学研究紀要第12集「Candida 酵母による生理活性物質の発酵生産(第2報)−Candida tropicalis Pk233によるグルタチオンの生成」Bulletin of Seirenjo Gakuin Junior College Vol. 12 “Fermentative production of physiologically active substances by Candida yeast (Part 2)-Production of glutathione by Candida tropicalis Pk233”

本発明は、エタノールを添加した培地にグルタチオン生産酵母を接種してグルタチオンを製造する方法において、グルタチオン生産酵母を天然培地で培養する際に酵母がみずから生産したグルタチオンを培地に流出できるようにすることを課題としたものである。   The present invention relates to a method for producing glutathione by inoculating glutathione-producing yeast in a medium to which ethanol has been added, so that glutathione produced by the yeast can be discharged into the medium when the glutathione-producing yeast is cultured in a natural medium. This is an issue.

この技術的課題を解決するための第一の技術的手段は、天然培地の窒素源としてコラーゲンペプチドを使用すること、である。
天然培地の窒素源となるコラーゲンペプチドは、ゼラチン(コラーゲン)を酵素によって低分子化して高度に精製されたペプチドであり、その中にイノシトールは含有されていないから酵母は細胞膜が強化されることはない。その培地にはエタノールが添加されているから、酵母に働きかけてそれが生産したグルタチオンを細胞膜から排出させることができる。
したがって、酵母はグルタチオンを生産しながらそれを体外へ流出させることになる。このことは、同時に多糖類やタンパク質、ビタミン、ミネラル類も流出させていると推測される。
The first technical means for solving this technical problem is to use a collagen peptide as a nitrogen source of a natural medium.
Collagen peptide, which is a nitrogen source in natural media, is a highly purified peptide made by reducing the molecular weight of gelatin (collagen) with enzymes, and since it contains no inositol, yeast has a strengthened cell membrane. Absent. Since ethanol is added to the medium, glutathione produced by the yeast can be discharged from the cell membrane.
Therefore, yeast produces glutathione and causes it to flow out of the body. It is speculated that this also causes polysaccharides, proteins, vitamins and minerals to flow out at the same time.

グルタチオン生産酵母を天然培地で培養する際に酵母がみずから生産したグルタチオンを培地に流出させられる結果、酵母の接種と培養を連続させながら培養液を取り出すことができる利点がある。
酵母は、培養中にみずから生産したグルタチオンのみならず、多糖類やタンパク質をも流出するから、菌体を除去した後、そのまま、或いは適宜濃縮したり粉末化したりして食品や医療の原料として利用できる他、培養液に残存するコラーゲンを主体とした食品や化粧品の素材としても活用できる利点もある。
When glutathione-producing yeast is cultured in a natural medium, glutathione produced by the yeast is allowed to flow out into the medium. As a result, there is an advantage that the culture solution can be taken out while yeast inoculation and culture are continued.
Yeast does not only produce glutathione produced during culture, but also polysaccharides and proteins, so it can be used as a raw material for food and medical treatment after removing the cells, or by concentrating or pulverizing as appropriate. In addition, there is an advantage that it can be used as a food or cosmetic material mainly composed of collagen remaining in the culture solution.

表−3に示した組成の天然培地にエタノールを添加しないもの及び2、3、4容積%添加したものを用意し、それぞれにグルタチオン生産酵母として知られているCandida
tropicalis Pk233、Candida tropicalis
IFO1400、Candida utilis及びPichia
anomalaの培養を実施した。
100mlのフラスコ内に培地20mlを注ぎ、各培地について各酵母を10mgドライ/ml接種したものを培地内に0.1ml注ぎ入れ、30℃で100時間震盪培養させた。
(表−3)天然培地組成(100ml中)
ブドウ糖 5g
KH2 PO4 40mg
MgSO4 7H2 O 20mg
コラーゲンペプチド 4g
ビタミンB1 12μg
ビタミンB2 5μg
ビタミンB6 50μg
PABA 25μg
ニコチン酸 250μg
パントテン酸Ca 25μg
ビオチン 5μg
なお、ブドウ糖は和光純薬株式会社製、コラーゲンペプチドは新田ゼラチン株式会社製、その他はナカライテスク株式会社製である。
Candida, which is known as glutathione-producing yeast, is prepared with a natural medium having the composition shown in Table 3 with no ethanol added and with 2, 3, 4% by volume added.
tropicalis Pk233, Candida tropicalis
IFO1400, Candida utilis and Pichia
Anomala culture was performed.
20 ml of the medium was poured into a 100 ml flask, and 0.1 ml of each yeast inoculated with 10 mg of each yeast was poured into the medium and cultured with shaking at 30 ° C. for 100 hours.
(Table-3) Natural medium composition (in 100 ml)
Glucose 5g
KH 2 PO 4 40mg
MgSO 4 7H 2 O 20mg
Collagen peptide 4g
Vitamin B 1 12μg
Vitamin B 2 5μg
Vitamin B 6 50μg
PABA 25μg
Nicotinic acid 250μg
Pantothenic acid Ca 25 μg
Biotin 5μg
Glucose is manufactured by Wako Pure Chemical Industries, collagen peptide is manufactured by Nitta Gelatin Co., and others are manufactured by Nacalai Tesque.

培養後、この培養液をそのまま遠心分離機に3000rpm /15分かけ、得られた上清におけるグルタチオンを前記のDTNB法によって測定したものを表−4に示した。
表−4における0%及び3%欄における括弧内の数字は増殖した酵母量(単位:mgドライ/ml)を示している。
(表−4) 未加熱上清におけるグルタチオン量(単位μg/ml)

Figure 2005245390
After culturing, this culture solution was directly applied to a centrifugal separator at 3000 rpm / 15 minutes, and glutathione in the obtained supernatant was measured by the DTNB method.
The numbers in parentheses in the 0% and 3% columns in Table 4 indicate the amount of yeast grown (unit: mg dry / ml).
(Table-4) Amount of glutathione in unheated supernatant (unit: μg / ml)
Figure 2005245390

他方、培養後の培養液をオートクレープによって110℃で10分間加熱し、その後遠心分離機に3000rpm /15分かけ、得られた上清におけるグルタチオンを測定したものを表−5に示した。
(表−5) 加熱上清におけるグルタチオン量(単位μg/ml)

Figure 2005245390
On the other hand, the culture solution after culturing was heated at 110 ° C. for 10 minutes by autoclave, then subjected to 3000 rpm / 15 minutes in a centrifuge, and glutathione in the obtained supernatant was measured.
(Table-5) Amount of glutathione in the heated supernatant (unit: μg / ml)
Figure 2005245390

上記の表−4、5の測定結果は、同一条件で3回行った培養液に対して行った測定の平均値を示している。
表−4においても確認できるように、酵母の培養に際してエタノールを添加すると、酵母の増殖率が大きくなっていないことが理解できる。
測定結果からエタノールを添加することによってグルタチオンが培地へ多量に流出していることを認めることができるが、このことは、酵母の増殖によってグルタチオンが増加するのではなく、酵母は増殖を阻害されながらもグルタチオンを多量に生産しながらその一部を培養液に流出させていたことを意味している。
The measurement results in Tables 4 and 5 above show the average values of the measurements performed on the culture solution performed three times under the same conditions.
As can be confirmed in Table-4, it can be understood that the growth rate of yeast is not increased when ethanol is added during the culture of yeast.
It can be seen from the measurement results that a large amount of glutathione has flowed into the medium by adding ethanol, but this does not mean that glutathione increases due to the growth of the yeast, while the yeast is inhibited from growing. This also means that a large amount of glutathione was produced and part of it was discharged into the culture medium.

測定結果から、Candida tropicalis Pk233については、エタノール4%添加時の上清についての測定値が不十分ではあるが、加熱上清におけるグルタチオン量が際立って多いことを容易に理解することができる。
他方、Candida tropicalis IFO1400、Candida utilis及びPichia anomalaについては、上清、加熱上清共にエタノールを3%添加時の生産量がもっとも多く4%添加の場合には、添加しないときとほぼ同じ結果となっている。したがって、これらの三つの酵母については、エタノールを2〜3%添加するのがもっとも望ましいといえる。
From the measurement results, it can be easily understood that Candida tropicalis Pk233 has an insufficient amount of glutathione in the heated supernatant although the measured value of the supernatant when ethanol 4% is added is insufficient.
On the other hand, for Candida tropicalis IFO1400, Candida utilis and Pichia anomala, both the supernatant and the heated supernatant produced the largest amount of ethanol when 3% was added, and when 4% was added, the results were almost the same as when not added. ing. Therefore, it can be said that it is most desirable to add 2-3% of ethanol for these three yeasts.

上記の生産量が相違する原因を追求するために酵母の形態の変化を調べたところ、Candida tropicalis
Pk233だけが菌糸型で、他の酵母はいずれも酵母型のものであることが判明した。
そこで、発明者は、実施例1に示した天然培地にエタノールを無添加及び2、3、4、5、6%添加したものを作成し、100mlのフラスコ内にこの培地20mlを注ぎ、各培地にCandida
tropicalis Pk233を10mgドライ/ml接種したものを培地内に0.1ml注ぎ入れ、30℃で160時間震盪培養させた。
実施例1と同様に、3回培養を実施した培養液の上清及び加熱上清を得て測定したグルタチオン量の平均値を表−6に示す。
In order to investigate the cause of the above difference in production, we examined changes in yeast morphology and found that Candida tropicalis
Only Pk233 was a mycelium type, and all other yeasts were found to be of the yeast type.
Therefore, the inventor made a natural medium without addition of ethanol and 2, 3, 4, 5, 6% added to the natural medium shown in Example 1, and poured 20 ml of this medium into a 100 ml flask. To Candida
A 10 ml dry / ml inoculated tropicalis Pk233 was poured into the medium, and 0.1 ml was poured into the medium and cultured with shaking at 30 ° C. for 160 hours.
Similarly to Example 1, the average value of the amount of glutathione measured by obtaining the supernatant of the culture solution and the heated supernatant obtained by performing the culture three times is shown in Table-6.

(表−6)160時間培養後のCandida tropicalis Pk233のグルタチオン量

Figure 2005245390
(Table-6) Glutathione content of Candida tropicalis Pk233 after 160 hours of culture
Figure 2005245390

上記の測定結果では、酵母量はエタノールの添加量が増加するに伴って減少している。また、グルタチオンの生産量は、上清及び加熱上清のいずれにおいても、エタノールの添加量が6%に増えた段階で急激に低下しており、菌糸型となるCandida
tropicalis Pk233についてはエタノールの添加量を5%にまで増加してもグルタチオンの生産が活発に行われるが、6%になるとエタノールによる阻害作用によって菌体の生存、増殖が限界になると思われる。
なお、エタノールを添加しない場合には、未加熱の上清ではグルタチオン量が少ないため、連続培養には適しない。
In the above measurement results, the amount of yeast decreases as the amount of ethanol added increases. In addition, the amount of glutathione produced in both the supernatant and the heated supernatant decreased rapidly when the amount of ethanol added increased to 6%.
With regard to tropicalis Pk233, glutathione production is actively carried out even when the amount of ethanol added is increased to 5%. However, when 6% is reached, it is considered that the survival and growth of bacterial cells will be limited due to the inhibitory action by ethanol.
In the case where ethanol is not added, the unheated supernatant is not suitable for continuous culture because the amount of glutathione is small.

実施例1、2は、酵母の培養を完了させた後、培地を加熱した場合に菌体内に残留しているグルタチオンの細胞膜からの流出が促進され、菌体内に保有されていたグルタチオンが多量に培地内に排出されることをも明らかにしている。   In Examples 1 and 2, the flow of glutathione remaining in the cell body was promoted when the medium was heated after the yeast culture was completed, and the amount of glutathione retained in the cell body was large. It is also revealed that it is discharged into the medium.

Claims (6)

エタノールを添加した培地にグルタチオン生産酵母を接種してグルタチオンを製造する方法において、窒素源としてコラーゲンペプチドを使用した天然培地に酵母を接種して培養するグルタチオンの製造方法。 A method for producing glutathione, which comprises inoculating a culture medium to which ethanol has been added with glutathione-producing yeast to produce glutathione, wherein the culture medium is inoculated with yeast in a natural medium using a collagen peptide as a nitrogen source. 酵母がCandida tropicalis Pk233、Candida tropicalis IFO1400、Candida utilis、Pichia anomalaから選択される請求項1に記載のグルタチオンの製造方法。 The method for producing glutathione according to claim 1, wherein the yeast is selected from Candida tropicalis Pk233, Candida tropicalis IFO1400, Candida utilis, and Pichia anomala. 培地にエタノールを2〜3容積%添加して酵母を接種する請求項1又は2に記載のグルタチオンの製造方法。 The method for producing glutathione according to claim 1 or 2, wherein 2 to 3% by volume of ethanol is added to the medium and the yeast is inoculated. 培地にエタノールを2〜5容積%添加してCandida tropicalis Pk233を接種する請求項1に記載のグルタチオンの製造方法。 The method for producing glutathione according to claim 1, wherein 2 to 5% by volume of ethanol is added to the medium and inoculated with Candida tropicalis Pk233. 酵母を震盪培養する請求項1、2、3、又は4に記載のグルタチオンの製造方法。 The method for producing glutathione according to claim 1, 2, 3, or 4, wherein yeast is shaken and cultured. 請求項1乃至5のいずれかに記載の方法により培養を完了させた後、培地を加熱して酵母から培地内にグルタチオンを排出させるグルタチオンの製造方法。 A method for producing glutathione, comprising: completing culture by the method according to any one of claims 1 to 5; and heating the medium to discharge glutathione from yeast into the medium.
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