JP2005245332A - Artificial aseptic culture for orchid (yoania flava) - Google Patents
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Abstract
Description
本発明は、野生ランの人工培養、特にシナノショウキラン(腐生ラン)の無菌人工培養方法に関する。 The present invention relates to an artificial culture of wild orchids, and more particularly to a method for aseptic artificial culture of linoleum orchids (humus orchids).
シナノショウキランとは、長野県南部に生息する葉緑素を持たない腐生ランで、2002年5月に新種として記載されたものである。日本にはこれまで、ショウキラン(Yoania japonica)とキバナノショウキラン(Yoania amagiensis)の2種のショウキラン属が確認されていたが、人工増殖は成功していない。シナノショウキランについても早急な保護が必要であるが、その生態の詳細すら不明であった。 Shinanosho Kiran is a humic orchid that has no chlorophyll inhabiting the southern part of Nagano Prefecture, and was described as a new species in May 2002. Until now, two kinds of genus of Shokilan, Yoannia japonica and Yoania amagiensis, have been confirmed in Japan, but artificial growth has not been successful. Shinosho Kiran also needs immediate protection, but even its ecological details were unclear.
ラン科植物の生活史においては、一般にラン菌と呼ばれる糸状菌との共生関係を持つことがよく知られている。これら糸状菌(共生菌)は、ランの発芽・成長に重要な役割を持つことが解明されているが、特にシナノショウキランのような腐生ランは葉緑素を持たないため、共生菌への依存が大きく、発芽に際しても共生菌の存在下でないと難しいと考えられている。 In the life history of orchidaceae plants, it is well known that they have a symbiotic relationship with filamentous fungi generally called orchid fungi. These filamentous fungi (symbiotic fungi) have been elucidated to have an important role in orchid germination and growth, but especially humic orchids such as linden shrimp have no chlorophyll, so they depend on symbiotic fungi. It is considered that it is difficult to germinate without the presence of commensal bacteria.
これに対し、野生ランを無菌的に栽培する「野生ランの大量生産方法」が紹介されている(特許文献1)。この方法は、絶滅危惧種に指定されているエビネやシュンラン、ヘッカランなどの野生ランを、共生菌を利用することなく大量生産する方法で、具体的には、
人工受粉させた種子に発芽阻害物質の除去処理及び殺菌処理を施す前処理工程と、
種子を発芽促進剤が入った培地に播種し培養する第一の培養工程と、発根促進剤を入れた培地で培養する第二の培養工程とを設けて苗を生長させる培養工程と、
培養した苗を培地から培養土に移し替えて順化、育苗させる工程
からなる、野生ランの大量生産方法である。
On the other hand, “a method for mass production of wild orchids” in which wild orchids are cultivated aseptically has been introduced (Patent Document 1). This method is a method of mass-producing wild orchids such as shrimp, shung orchid, and hekkaran, which are designated as endangered species, without using symbiotic bacteria.
A pretreatment step of performing germination inhibitor removal treatment and sterilization treatment on artificially pollinated seeds;
A culture process for growing seedlings by providing a first culture process for seeding and cultivating seeds in a medium containing a germination promoter, and a second culture process for culturing the seed in a medium containing a root promoter;
This is a method for mass production of wild orchids, which includes the process of transferring cultured seedlings from the medium to the culture soil, acclimatizing and raising them.
非特許文献1によれば、無菌でのランの発芽は多くの種で可能となり、園芸植物としての発展を遂げてきた。
According to Non-Patent
一方、腐生ランを含む地生ランについても同様の試みは行われており、その詳細は非特許文献2にまとめられている。 On the other hand, similar attempts have been made for terrestrial orchids including humic orchids, and the details are summarized in Non-Patent Document 2.
しかしながら、腐生ランのなかでもショウキラン属、特にシナノショウキランについては、人工発芽や人工培養の成功例はいまだ報告されていない。
そこで本発明は、葉緑素を持たない腐生ラン、特にシナノショウキランの無菌人工培養に最適な培地を提供し、また、これを用いた無菌発芽及び無菌増殖によりシナノショウキランの保護に必要な培養苗を育成することを目的とする。さらに本発明によって増殖した苗を無菌で肥大させることにより、無菌培養下での充実した培養苗の育成方法を提供するものである。 Therefore, the present invention provides a medium optimal for aseptic artificial culture of humic orchids that do not have chlorophyll, especially linden guts, and also provides cultured seedlings necessary for protection of linden guts by sterilized germination and sterilization. It aims to nurture. Further, the present invention provides a method for growing a solid cultured seedling under aseptic culture by aseptically growing the seedling grown according to the present invention.
上記課題を解決するために、本発明者は鋭意研究を重ねた結果、以下のような無菌人工培養方法を開発した。 In order to solve the above-mentioned problems, the present inventor has developed an aseptic artificial culture method as described below as a result of intensive research.
本発明の無菌人工培養方法は、腐生ランの種子を無菌発芽培地上で無菌的に発芽させる工程と、発芽し分化したものを無菌増殖培地で増殖させる工程とを備えている。 The aseptic artificial culture method of the present invention includes a step of germinating humic orchid seeds on a sterile germination medium and a step of growing germinated and differentiated seeds on a sterile growth medium.
また、必要に応じて、無菌増殖培地で増殖させた後、さらに無菌肥大培地で肥大させることも可能である。 In addition, if necessary, after growing in a sterile growth medium, it can be further enlarged using a sterile enlargement medium.
まず、無菌人工培養をするシナノショウキランの種子を採取する。ラン科植物の種子は、さく果(朔果)と呼ばれる果実の中に入っているが、野生株では結実率が不安定であることから人工受粉によって結実させることが望ましい。人工受粉は自家受粉、他家受粉のいずれの方法も用いることができる。結実したさく果は採取後滅菌処理を行う必要がある。滅菌処理方法としては、例えば、さく果を流水下で、脱脂綿等でこすりながら表面を洗浄し、70%エタノールに30秒間浸漬・攪拌する。続いて1%次亜鉛素酸ナトリウム水溶液に10分浸漬・攪拌後滅菌水で5分×3回すすぎを行う。その後さらに70%エタノールに1分間浸漬し、ガスバーナーで表面を焼いて完全に滅菌を行うことができる。 First, the seeds of shinanoshoquiran to be aseptically cultured are collected. The seeds of orchidaceae are contained in the fruit called “fruits” (fruits). However, since the fruiting rate is unstable in wild strains, it is desirable to produce them by artificial pollination. For artificial pollination, either self-pollination or cross-pollination can be used. The fruited fruit must be sterilized after collection. As a sterilization method, for example, the surface of the sorghum is washed under running water while rubbing with absorbent cotton or the like, and immersed and stirred in 70% ethanol for 30 seconds. Then, after immersing and stirring in a 1% sodium zincate aqueous solution for 10 minutes, rinse with sterilized water for 5 minutes × 3 times. Thereafter, it is further immersed in 70% ethanol for 1 minute, and the surface is baked with a gas burner for complete sterilization.
続いてさく果の先端を切り落として縦半分に割り、中の種子を掻きだして無菌発芽培地に置床する。無菌発芽培地の成分組成は、通常、無機質の窒素・リン・カリウムを約1:1:3の割合で含有する複合肥料0.5〜8.0kgm-3、窒素源0.5〜5.0kgm-3、炭素源2.0〜60.0kgm-3、凝固剤0〜20.0kgm-3とする。望ましくは、無機質の窒素・リン・カリウムを約1:1:3の割合で含有する複合肥料1.0〜5.0kgm-3、窒素源1.0〜3.0kgm-3、炭素源5.0〜40.0kgm-3、凝固剤0〜15.0kgm-3とする。
Subsequently, the tip of the fruit is cut off and divided into half halves, and the seeds inside are scraped and placed in a sterile germination medium. The component composition of the sterile germination medium is usually 0.5 to 8.0 kgm −3 of a fertilizer containing inorganic nitrogen, phosphorus and potassium in a ratio of about 1: 1: 3, and a nitrogen source of 0.5 to 5.0 kgm. -3 , carbon source 2.0 to 60.0 kgm -3 ,
前記複合肥料として例えば微粉ハイポネックス(ハイポネックスジャパン(株)登録商標)を好適に使用することができる。 As the composite fertilizer, for example, fine powder HONEX (Hyponex Japan Co., Ltd. registered trademark) can be suitably used.
また、前記窒素源としては、例えばペプトン、プロテアーゼペプトン、プロテアーゼペプトンNo.3、トリプトン、トリプテーゼ、ネオペプトン、プロトン、カシトン、カザミノ酸又はイースト抽出物等タンパク質の加水分解物を使用することができる(非特許文献1 95頁)。特にカザミノ酸は好適に使用可能である。
Examples of the nitrogen source include peptone, protease peptone, and protease peptone no. 3, Hydrolyzate of protein such as tryptone, tryptase, neopeptone, proton, casitone, casamino acid or yeast extract can be used (Non-patent
さらに前記炭素源としては、グルコース(ブドウ糖)、フルクトース(果糖)、マン二トール等の単糖類、スクロース(蔗糖)、マルトース(麦芽糖)等の二糖類、またはオリゴ糖の群から一種または二種以上を使用可能であるが、特にグルコース(単糖)、スクロース(非還元性二糖類)を使用することが望ましい。さらには、スクロースを使用することが望ましい。本発明者らは、スクロースを使用した方がグルコースに比して発芽率が良好であることを確認している。 Further, as the carbon source, one or more kinds from the group of monosaccharides such as glucose (fructose), fructose (fructose), mannitol, disaccharides such as sucrose (sucrose) and maltose (maltose), or oligosaccharides In particular, it is desirable to use glucose (monosaccharide) and sucrose (non-reducing disaccharide). Furthermore, it is desirable to use sucrose. The present inventors have confirmed that the use of sucrose has a better germination rate than glucose.
種子を採取後無菌発芽培地に播種するが、培地としては液体培地よりも固体培地のほうが望ましい。種子が空気雰囲気下に置かれたほうが発芽率は良好だからである。そのため、凝固剤を添加し固体培地とすることが望ましい。前記凝固剤としては、寒天、ゲルライト(ジェランガム)、増粘性多糖類等凝固剤を使用することができるが、特に寒天、ゲルライトを好適に使用することができる。さらに、無菌発芽培地は通常、pH約5.3〜6.0であるが、望ましくはpH約5.5〜5.8とする。 The seed is collected and then sown in a sterile germination medium. As the medium, a solid medium is preferable to a liquid medium. This is because the germination rate is better when the seeds are placed in an air atmosphere. Therefore, it is desirable to add a coagulant to obtain a solid medium. As the coagulant, coagulants such as agar, gellite (gellan gum), thickening polysaccharides and the like can be used, and agar and gellite can be particularly preferably used. Further, the sterile germination medium usually has a pH of about 5.3 to 6.0, but preferably has a pH of about 5.5 to 5.8.
また、種子を播種する無菌発芽培地の形態としては、必ずしも固体培地である必要は無い。前記凝固剤を添加しない液体の無菌発芽培地を、例えばスポンジ、不織布、紙等の吸水性支持体に浸透させ、その表面に播種して無菌発芽培地とすることも可能である。ただしこの場合使用する吸水性支持体の滅菌を行う必要がある。 Further, the form of the sterile germination medium for seeding the seed is not necessarily a solid medium. It is also possible to infiltrate a water-absorbing support such as sponge, non-woven fabric, paper, etc. with a liquid aseptic germination medium without adding the coagulant and sow on the surface thereof to make a sterile germination medium. In this case, however, it is necessary to sterilize the water-absorbing support used.
種子を前記無菌発芽培地上に播種すると、2〜3ヶ月で発芽しプロトコーム(原塊体)が形成される。プロトコームを形成した種子は、さらにリゾーム(根茎)へと成長する。種子がプロトコーム又はリゾームへと成長した段階で次の工程である無菌増殖培地に移し代える。 When seeds are sown on the germination medium, germination occurs in 2 to 3 months, and a protocomb (original block) is formed. The seed that formed the protocomb further grows into a lysosome (rhizome). When the seed grows into a protocomb or a lysozyme, it is transferred to a sterile growth medium which is the next step.
無菌増殖培地の成分組成は、通常、無機質の窒素・リン・カリウムを約1:1:3の割合で含有する複合肥料0.5〜8.0kgm-3、窒素源0.5〜5.0kgm-3、炭素源2.0〜60.0kgm-3、凝固剤0〜20.0kgm-3とする。望ましくは、無機質の窒素・リン・カリウムを約1:1:3の割合で含有する複合肥料1.0〜5.0kgm-3、窒素源1.0〜3.0kgm-3、炭素源5.0〜40.0kgm-3、凝固剤0〜15.0kgm-3とする。
The component composition of the sterile growth medium is usually 0.5 to 8.0 kgm −3 of a fertilizer containing inorganic nitrogen, phosphorus and potassium in a ratio of about 1: 1: 3, and a nitrogen source of 0.5 to 5.0 kgm. -3 , carbon source 2.0 to 60.0 kgm -3 ,
複合肥料、窒素源、炭素源についても前記無菌発芽培地と同様の成分を使用することが可能である。さらに、無菌増殖培地は通常、pH約5.3〜6.0であるが、望ましくは、pH約5.5〜5.8とする。 It is possible to use the same components as in the sterile germination medium for the complex fertilizer, nitrogen source, and carbon source. Furthermore, the sterile growth medium usually has a pH of about 5.3 to 6.0, but preferably has a pH of about 5.5 to 5.8.
上記無菌増殖培地に移し代えたプロトコーム又はリゾームは、成長と肥大を続ける。例えば約2ヶ月後、前記プロトコーム又はリゾームを充実した培養苗にしたい場合には、無菌肥大培地に移し替える。 The protocomb or resome transferred to the sterile growth medium continues to grow and enlarge. For example, after about 2 months, if it is desired to make the protocomb or lysome a rich cultured seedling, it is transferred to a sterile hypertrophic medium.
無菌肥大培地としては、Norstog培地を使用することが望ましい。Norstog培地の主要な成分は表4に示す。 As a sterile enlargement medium, it is desirable to use a Norstog medium. The main components of Norstog medium are shown in Table 4.
<試料採取>
人工増殖のための試料として、シナノショウキランの花茎、さく果、及び地下茎を採取した。シナノショウキランの生息地では、開花・結実期の気温12〜26℃、10cm深さの地温17〜18℃、40cm深さの地温15〜17℃、湿度66〜99%、照度610〜43700lx、光子量11〜658μmolm-2s-1との測定結果を得た。シナノショウキランの好む環境は、高温になることはないが、湿度が高く直射の届きにくい環境であることが予想できる。
<Sample collection>
As samples for artificial growth, flower stems, berries, and underground stems of Shinano shokiran were collected. In the habitat of Shinanosho Kiran, the temperature of flowering and fruiting is 12-26 ° C, the soil temperature is 17-18 ° C at a depth of 10 cm, the soil temperature is 15-17 ° C at a depth of 40 cm, the humidity is 66-99%, the illumination is 610-43700 lx, Measurement results with photon amounts of 11 to 658 μmolm −2 s −1 were obtained. The environment that Shinano Shokiran prefers does not reach high temperatures, but it can be expected that it is highly humid and difficult to reach directly.
また、生息土壌の表層部は腐植が堆積している。その下部には大量の礫が存在し粘土質の土壌がその間隙を充填している。 Also, humus is deposited on the surface layer of the habitat soil. There is a large amount of gravel at the bottom, and clayey soil fills the gap.
受精した場合には、直後から花弁の褐変化が始まり、やがて花の基部が膨らみ始める。開花3週間後には、大きなさく果(朔果)となり、その後約1ヶ月で熟す。多くはこの過程で昆虫による食害を受けるため、自然状態での結実数は大変低いものである。 When fertilized, the petal begins to turn brown immediately afterwards, and eventually the base of the flower begins to swell. After 3 weeks of flowering, the fruits become large berries (fruits) and then ripen in about a month. Many of them suffer from insect damage during this process, so the number of fruits in the natural state is very low.
試料採取にあたり、結実率を向上させるため人工受粉も実施した。
<無菌発芽と無菌増殖>
1)無菌発芽
採取したさく果は、流水下で脱脂綿でこすりながら表面を洗浄し、70%エタノールに30秒間浸漬して攪拌した。つぎに1%次亜鉛素酸ナトリウム水溶液に10分浸漬・攪拌し、滅菌水で5分×3回すすいだ。さらに、70%エタノールに1分浸漬・攪拌した後、ガスバーナーで表面を焼いて完全に滅菌した。
Artificial pollination was also carried out in order to improve the fruiting rate.
<Aseptic germination and aseptic growth>
1) Aseptic germination The surface of the collected sap was washed with absorbent cotton under rubbing water, and immersed in 70% ethanol for 30 seconds and stirred. Next, it was immersed and stirred for 10 minutes in a 1% aqueous sodium zincate solution and rinsed with sterile water for 5 minutes × 3 times. Further, after being immersed and stirred in 70% ethanol for 1 minute, the surface was baked with a gas burner and completely sterilized.
さく果の先端を切り落として縦半分に割り、中の種子を掻きだして無菌発芽培地に置床した。無菌発芽培地には、複合肥料としてハイポネックスを含むものと希釈したMS培地成分を含むものを用意し、それぞれ液体及び固体の培地を使用した。無菌発芽培地の成分組成の例を表1に示す。 The tip of the fruit was cut off and split into half halves, the seeds inside were scraped and placed in a sterile germination medium. As a sterile germination medium, a compound fertilizer containing Hyponex and a diluted MS medium component were prepared, and liquid and solid media were used, respectively. An example of the component composition of the sterile germination medium is shown in Table 1.
無菌発芽培地の種類を代え、発芽状況を観察した。また、各培地で種子の熟度によって発芽数にどのような差が見られるのかについても観察した。観察結果を以下に示す。 The germination situation was observed by changing the type of sterile germination medium. In addition, the difference in the number of germination depending on the maturity of seeds in each medium was also observed. The observation results are shown below.
2)無菌増殖
無菌発芽培地で発芽後、プロトコーム状あるいはリゾームへと生長した段階で数種の無菌増殖培地へと移植し、定期的な重量測定、写真撮影など行い経過を観察した。
2) Sterile growth After germination in a sterile germination medium, the seeds were transplanted to several types of sterile growth medium at the stage of growth into a protocomb or lysosome, followed by regular weight measurement, photography, etc., and the progress was observed.
無菌増殖培地の成分組成の例を表3に示す。 Table 3 shows examples of the component composition of the sterile growth medium.
前記無菌増殖培地のうち、ハイポネックス培地(液体)、1/20MS改変培地、Norstog培地での結果を図1に示す。 FIG. 1 shows the results of Hyponex medium (liquid), 1/20 MS modified medium, and Norstog medium among the above-described sterile growth medium.
培地の違いによる最も大きな差は形態である。生育の良かったハイポネックス培地(液体)では、細いリゾームが何本もでき、ごくまれに1〜2本のリゾームがより太く生長した。一方同程度の成長量を示したNorstog培地では、最初から1〜2本のリゾームが太く成長し、6ヶ月後には節間が詰まっていたものの現地で採取したほどの太さに成長した。
<考察>
ショウキラン属は、これまで殆ど研究例がなく、ショウキランの保護対策を確立するために、人工受粉、無菌培養に取り組んできた。
The biggest difference due to the difference in culture medium is the morphology. Hyponex medium (liquid), which had good growth, produced many thin lysosomes, and very rarely 1 to 2 lysosomes grew thicker. On the other hand, in the Norstog medium showing the same amount of growth, one to two resomes grew thick from the beginning, and after six months the internodes were clogged, but grew to a thickness that was collected locally.
<Discussion>
There have been few studies on the genus Shokilan, and artificial pollination and aseptic culture have been addressed in order to establish protection measures for shokilan.
生態調査では、毎年同じ場所にシナノショウキランが見られることはまれで、特に大きな群落が見られた場所では、翌年シナノショウキランを見ることはできなかった。このため、土壌から現れるタイミングを観察したり、開花初期から虫害防除を施したりすることが殆どできなかった。自然状態で種子はつきにくく、またついても成熟まで達するものが非常に少なく、保護増殖が難しい植物である。 In the ecological survey, linden groves were rarely found in the same place every year, and especially in places where large communities were seen, we could not see linden groves the following year. For this reason, it was hardly possible to observe the timing of emergence from the soil or to carry out insect damage control from the beginning of flowering. It is a plant that is difficult to protect and proliferate because it is difficult to grow seeds in the natural state, and there are very few seeds that reach maturity.
人工授粉については、自家受粉と他家受粉のどちらが適当であるかは明言できないが、人工受粉の有効性は示されたと考えられる。 With regard to artificial pollination, it is not clear whether self-pollination or cross-pollination is appropriate, but the effectiveness of artificial pollination is considered to have been demonstrated.
無菌発芽培地を用いれば、共生菌が無くとも発芽させることができる。無菌発芽に用いる種子は比較的未熟であることが望ましく、本実施例では、受粉後1ヶ月程度のもので良い結果を得た。基本培地による差は殆ど無いが、ペプトンやカザミノ酸が添加されていることが望ましく、これらを添加していない培地では、発芽は無いか発芽しても成長はみられなかった。 If a sterile germination medium is used, germination can be achieved without symbiotic bacteria. It is desirable that the seeds used for aseptic germination are relatively immature, and in this example, good results were obtained with about one month after pollination. Although there is almost no difference depending on the basic medium, it is desirable that peptone or casamino acid is added. In the medium to which these were not added, there was no germination or growth even after germination.
また、固体培地の方が発芽数は多い。液体培地では種子が沈んでしまうことから、酸素供給量が影響しているものと考えられる。 Moreover, the number of germination is larger in the solid medium. Since seeds sink in the liquid medium, it is considered that the oxygen supply amount has an influence.
発芽後は、プロトコームからリゾームへと成長し、in Vitro(試験管内)での植物体保持は問題なく行えるようになった。細く枝分かれしたリゾームは、細かく折って増殖させることができ、実施例で用いたリゾームも同様にして増やした個体である。枝分かれしてボリュームのでたリゾームからは、ごくまれに1〜2本の太いリゾームが成長したが、Norstog培地では枝分かれすること無く、太くがっちりとしたリゾームが成長した。 After germination, the protocomb grew into a lysosome, and plant body retention in vitro (in vitro) became possible without problems. The thinly branched lysosomes can be broken and proliferated, and the lysosomes used in the examples are also increased in the same manner. Rarely, one or two thick lysosomes grew from branched and volumey lysosomes, but a thick and solid lysosome grew without branching in Norstog medium.
無菌培地の組成をさらに細かく検討し、細かく枝分かれする条件、太いリゾームを伸ばす条件を明らかにできれば、個体の保護増殖だけでなく、生態解明のうえでも新たな知見を得られる可能性がある。 If the composition of a sterile medium is examined in more detail and the conditions for fine branching and the expansion of thick lysosomes can be clarified, there is a possibility that new knowledge can be obtained not only for the protective growth of individuals but also for the elucidation of ecology.
本発明に係る無菌人工培養方法により、シナノショウキランの保護が可能となるだけでなく、ショウキラン属、さらには腐生ランに属する多くのランの野生株を保護にも適用可能であることが期待される。 It is expected that the sterile artificial culture method according to the present invention can not only protect Shinano shokiran, but can also be applied to protect wild orchid strains belonging to the genus Shokilan, and further to orchid orchids. Is done.
前述のNorstog培地の組成を以下に示す。
Claims (17)
In the aseptic artificial culture of the genus Shochiran, the method comprises the steps of germinating seeds aseptically on a sterile germination medium, and proliferating the germinated and differentiated ones in an aseptic growth medium. Artificial culture method.
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Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN114431149A (en) * | 2022-03-05 | 2022-05-06 | 南昌大学 | Non-symbiotic germination method for seeds of rare or endangered plant large yellow croaker calanthe |
CN117561982A (en) * | 2024-01-19 | 2024-02-20 | 深圳市兰科植物保护研究中心 | Culture medium group for aseptic culture of beancurd blue Mao Eshan coral, application and culture method thereof |
Families Citing this family (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN110972953A (en) * | 2019-12-30 | 2020-04-10 | 临沧市云瑞堂生物科技有限公司 | High-quality anoectochilus formosanus tissue culture method |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH1056875A (en) * | 1996-08-23 | 1998-03-03 | Nippon Mektron Ltd | Culture of orchid |
JP2002335755A (en) * | 2002-05-17 | 2002-11-26 | Iwate Prefecture | Medium for plant belonging to cypripedium macranthum |
-
2004
- 2004-03-04 JP JP2004061293A patent/JP4549698B2/en not_active Expired - Fee Related
Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH1056875A (en) * | 1996-08-23 | 1998-03-03 | Nippon Mektron Ltd | Culture of orchid |
JP2002335755A (en) * | 2002-05-17 | 2002-11-26 | Iwate Prefecture | Medium for plant belonging to cypripedium macranthum |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN114431149A (en) * | 2022-03-05 | 2022-05-06 | 南昌大学 | Non-symbiotic germination method for seeds of rare or endangered plant large yellow croaker calanthe |
CN114431149B (en) * | 2022-03-05 | 2022-11-08 | 南昌大学 | Non-symbiotic germination method for seeds of rare or endangered plant large yellow croaker calanthe |
CN117561982A (en) * | 2024-01-19 | 2024-02-20 | 深圳市兰科植物保护研究中心 | Culture medium group for aseptic culture of beancurd blue Mao Eshan coral, application and culture method thereof |
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