JP2005187472A - 抗tnf治療と組み合わせた体外フォトフェレーシス - Google Patents
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Abstract
【解決手段】自己免疫疾患、アトピー性疾患、移植拒絶反応又はGVHDを治療し、或いはその1以上の症状を改善させる方法では、組合せ治療を利用する。この治療では、被験者に体外フォトフェレーシスを施すと共にTNFα拮抗薬を投与する。
【選択図】なし
Description
以下の非限定的な実験例は、本発明を更に説明している。
新たに分離したCD14+細胞及び単核細胞誘導樹状細胞(5×105細胞/ウェル)をECP処理CD15+細胞(2.5×106細胞/ウェル)と共に24ウェル組織培養プレート中で同時培養した。2時間後、0.5mg/mlLPSをこれら培養物に添加した。24時間の刺激後、上澄み液をサイトカイン測定のためにこれら培養物から収集した。ECP処理細胞は、LPS活性化抗原提示細胞からのTNFα生成を阻害することが判明した。
単核細胞誘導樹状細胞(1×105細胞/ウェル)を次第に増量したLPSだけ又はECP処理CD15+細胞(5×105細胞/ウェル)、200ng/ml Remicade mAbだけ、或いはmAbとECP処理CD15+細胞の組合せとの存在下で培養した。培養物上澄み液をTNFα生成の測定のために48時間でこれら培養物から取り出した。Remicade mAb単独で処理した細胞は、約100pg/mlTNFαを有することが判明した。ECPだけで処理した細胞は、約1,000pg/mlを有することが判明した。これら治療の各々は1,000pg/mlを超えるベースライン値からの減少を示すが、レベルは、本発明の方法を用いた場合、平均が50pg/ml未満に低下した。
単核細胞誘導樹状細胞(1×105細胞/ウェル)を0.1mg/mlのLPSだけ又はECP処理CD15+細胞(5×105細胞/ウェル)、200ng/ml Remicade mAbだけ、或いはmAbとECP処理CD15+細胞の組合せとの存在下で培養した。培養物上澄み液をTNFα生成の測定のために48時間でこれら培養物から取り出した。Remicade mAb単独で処理した細胞は、約500pg/mlTNFαを有することが判明した。ECPだけで処理した細胞は、約1,700pg/mlを有することが判明した。これら治療の各々は2,300pg/mlを超えるベースライン値からの減少を示すが、レベルは、本発明の方法を用いた場合、約100pg/ml未満に低下した。
単核細胞誘導樹状細胞(1×105細胞/ウェル)を次第に増量したLPSだけ又はECP処理CD15+細胞(5×105細胞/ウェル)、200ng/ml Remicade mAbだけ、或いはmAbとECP処理CD15+細胞の組合せとの存在下で培養した。培養物上澄み液をTNFα生成の測定のために48時間でこれら培養物から取り出した。別のグループの樹状細胞を同様に処理し、培養物上澄み液をTNFα生成の定量化のため48時間でこれら培養物から取り出した。約2ng/mlのRemicade mAb単独で処理した細胞は、約1,000pg/mlTNFαを有することが判明した。この同一用量のRemicade mAbを投与しECPを行うと、レベルは、約1,500pg/mlに低下した。8ng/mlのRemicade mAbを単独で投与すると、レベルは、1,300pg/ml以上であり、ECP治療追加により、これは約100pg/mlに低下した。ECPの組合せを用い又は用いないで40ng/ml以上のRemicade mAbの用量は、このレベルを100pg/ml未満に減少させた。組合せ療法の効果は、低レベルのRemicade mAb投与(例えば、2ng/ml)で最も顕著であった。かかる用量は通常、治療的であるとは考えられず、副作用が通常は見込まれないレベルでの効能を実証している。
単核細胞誘導樹状細胞(1×105細胞/ウェル)を次第に増量したRemicade mAbだけ又はECP処理CD15+細胞(5×105細胞/ウェル)、200ng/ml Remicade mAbだけ、或いはmAbとECP処理CD15+細胞の組合せの存在下で培養した。次に、細胞を0.8ng/mlLPSで刺激した。培養物上澄み液をIL−12生成の測定のため48時間でこれら培養物から取り出した。IL−12レベルをECPを用いることにより約150pg/mlのベースライン値から約125pg/mlに減少させた。ECPと2ng/ml Remicade mAbの組合せの結果として、IL−12レベルが約10pg/mlに減少した。200ng/mlのRemicade mAbをECPと組み合わせて採用した場合、IL−12レベルがほぼ検出不能であった。かくして、ECP処理細胞とRemicade mAbの組合せは、樹状細胞によるIL−12生成を著しく減少させた。
マウス
オスのC3H/HeJ(C3H;H2k)、(B6×C3H)F1(H2b×k)、(B6×DBA/2)F1(H2b×d)、C57BL/6(B6;H2b)およびCBA/JCr(CBA;H2k)マウスを、米国国立癌研究所研究開発センター(フレデリック医学博士)から購入する。B10.BR(H2k)マウスを、ジャクソン・ラボラトリーズ(バー・ハーバー工学修士)から購入する。実験に使用されるマウスは、週齢6〜10週で、特定病原体未感染施設内の滅菌マイクロアイソレータ・ケージに収容され、加圧滅菌餌および水を無制限に与える。
リン酸緩衝生理食塩水(PBS)にウシ血清アルブミン(BSA;シグマ・ケミカル・カンパニー、ミズーリ州セントルイス)を0.1%補って、ドナー骨髄およびリンパ球のすべての管内操作に使用する。細胞を注入直前に洗浄し、PBSのみの中に再浮遊させる。細胞系を維持するため、また、管内検定用に、RPMI1640培地(メディアテク、バージニア州ハーンドン)にウシ胎仔血清(FBS;ジブコ、ニューヨーク州グランドアイランド)を10%、Lグルタミンを2mモル/L、ペニシリンを50IU/mL、さらにストレプトマイシンを50μg/mL補って使用する。
ネズミTNFα向け特定ラット(Fab)2単位の付いたラット/マウスFcキマラIgG2a構造であるcV1q(別称CNTO2213)mAbと、ヒト抗CD4 mAbであるそのアイソタイプ対照MT412とは、ペンシルバニア州マルヴァーンのセントコーによって提供される。mAbを含む腹水を、Thy1.2(J1j;ATTC TIB−184)、CD4(RL172)またはCD8(3.168)蛋白質向け特定ハイブリドーマ系から生成して、細胞移植片の調製に使用する。アフィニティー・精製ヤギ抗マウスIgG(カペル、カルフォルニア州カーサ・メサ)を使用してB細胞を瀉出する。モルモット補体を、ロックランド・イミュノケニカルズ(ペンシルバニア州ギルバーツビル)から購入する。抗CD3、抗CD4、抗CD8、抗B220およびアイソタイプ対照mAbで、どれもがフィコエリトリン(PE)に結合したものを、すべて、BDバイオサイエンシーズ(カルフォルニア州パロアルト)から購入する。
同系同腹子の健康ネズミから脾臓細胞を採取し、PBS中においてシリンジ後部で摩砕することによって単個細胞浮遊液にする。これらの細胞を再浮遊させ、細胞をPBSで2回洗浄した後、12.5×106細胞/mL PBSで再浮遊させる。細胞の洗浄が済み次第、細胞を氷温培地中に再浮遊させ、およそ106細胞/mLでT75フラスコに接種する。Therakos社から提供される原液の100倍希釈である終末濃度200ng/mLに、ソラレン(UVADEX溶液)を加える。UVA照射室内にフラスコを倒して置き、およそ1.5J/cm2の光を照射する。これは、トレーが光源から6cmの位置にある場合、1.5分間の底面光に相当する。細胞をフラスコから速やかに取り除いて付着を避け、注入に適した濃度にしておく。付着した場合には、フラスコをそっとこするかまたはたたいて、細胞の大部分を取り除く。
BSAを0.01%を含むPBS(PBS/BSA)で流水洗浄することによって、ドナー・マウスの脛骨および大腿骨から骨髄を採取する。1:100希釈の抗Thy1.2 mAb(J1j;アメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション、メリーランド州ロックビル)と1:6希釈のモルモット補体(ロックランド・イミュノケニカルズ、ペンシルバニア州ギルバーツビル)とを45分間37°Cで用いて、T細胞から骨髄細胞を瀉出する。ドナー・マウスの脾臓およびリンパ節からリンパ球を単離する。塩化アンモニウム(NH4CL)を0.7%含むゲイ平衡塩類溶液でリンパ球を処理して、赤血球(RBC)を除去する。RBCの瀉出後、脾臓およびリンパ節細胞をプールして、5mg/mL希釈のヤギ抗マウスIgGで事前被覆したプラスチック・シャーレ上で4°Cで1時間パンニングすることによって、B細胞から瀉出する。これらの処理の結果、蛍光フロー・サイトメトリーによって計量されたように、ドナー母集団のおよそ90%〜95%がCD3+細胞になることが期待される。その後、抗CD8(3.168)または抗CD4 mAb(RL172)および補体を用いた陰性選択によって、T細胞サブセットを単離する。これらの処理によって、フロー・サイトメトリー分析によって測定されたように、目標T細胞サブセット母集団が背景レベルまで減少することが期待される。各6.5Gyの分割線量で3時間間隔をあけて照射される、セシウム137源からの13Gyの全身照射に、レシピエント・マウスを1.43Gy/分で曝露する。その後、尾静脈を通じてこれらのマウスの静脈内に(i.v.)、2×106個の抗Thy1.2処理骨髄細胞(ATBM;T細胞瀉出済み)を、指示された数の適切なT細胞(ドナーCD4またはCD8強化T細胞)とともに移植する。cV1q抗TNFαまたはアイソタイプ対照MT412 mAbで、マウスを移植1日前(1mg;腹膜内)と再度0、4、8および12日目(すべて0.5mg;腹膜内)とに処理する。GVL実験のために、抗TNFα mAb処理とほぼ同じ日程で、ドナーATBMおよびT細胞の移植1日前にB6レシピエント・マウスの免疫性をMMB3.19細胞の注射(1×105個/0.5mL PBS;腹膜内)によりテストする。GVHD実験でもGVL実験でも、マウスの疾病率および死亡率を完了まで毎日検査する。独立したいくつかの実験のデータをプールして、メディアン生存時間(MST)を、0を含めた全死亡日データポイントを通じた直線回帰の補間50%生存点として算出する。ノンパラメトリック・ウィルコクソン符号付き順位検定により、実験群間において統計的に生存率を比較する。重量比較の有意性を、個別時点でT検定により割り出す。
25μLの容量の適切なmAbを2〜5×105個の細胞とともに、96ウェルU底マイクロプレートのウェル中で4°Cで30分間培養し、1500rpmで3分間遠心分離して、BSAを0.1%とアジ化ナトリウム(洗浄緩衝液)を0.01%含むPBSで洗浄する。各検体ごとに、パーセント陽性細胞および相加平均蛍光強度を計算する。
様々な処理群の各マウスから十分な厚さの耳生検材料(3×2mm)を試料採取して、直ちに、4%グルタルアルデヒド中に1晩固定し、その後、0.1Mのカコジル酸ナトリウム緩衝液(pH7.4)ですすぐ。組織を2%四酸化オスミウムで2時間事後固定し、段階的エタノール中で脱水し、エポン812中に包埋する。ポーター・ブルームMT2Bウルトラマクロトームで1ミクロン厚の切片を切断し、トルイジンブルーで着色し、最後に、光学顕微鏡分析向けに95%エタノールにさっと浸す。あらかじめ決められた通りの異角化性表皮細胞/リニアmmの数を、光学顕微鏡対物レンズ100倍×接眼レンズ10倍下で計数する。各動物個体ごと、各時点ごとに、10リニアmmを超える表皮を評価する。処理群に関するブラインド条件下で分析を行う。
抗TNFα mAb処理がCD8+T細胞媒介GVHDの発症に影響を与え得るかどうかを判断するために、MHC適合miHA異種のB10.BRaCBA GVHDモデルを利用するが、その理由は、同モデルが十分に確立した病因を有するためである。CBAマウスに致死量の放射線を照射し(13Gy、分割線量)、B10.BR ATBM細胞(2×106個)を、単独でか、または、高度強化母集団(95%)のCD8+T細胞(3×106個)に加えて、移植する。マウスをアイソタイプ適合対照MT412 mAbまたは抗TNFα mAb(cV1q)mAbで未処理のままとするか、または移植日の−1日目(1mg;腹膜内)と0、4、8および12日目(0.5mg;腹膜内)とに処理する。ATBM細胞のみのレシピエントがすべて、少なくとも70日間は生存するのに対して、ドナーT細胞を移植され、かつ、対照MT412 mAbで未処理のままとされたかまたは処理されたマウスは、GVHDで死亡し、その両者のMST値はほぼ同じで、およそ20日間である。対照的に、ドナーT細胞を移植されたものの、cV1q mAbを投与されたCBAマウスは、およそ40%の生存率を示し、そのMSTはおよそ50日間で、MT412対照群のMSTとは大幅に異なる。加えて、生存する抗TNFα mAb処理マウスは、明白なGVHD症状(例えば毛並みの乱れ、皮膚損傷、猫背姿勢または下痢)を示さず、その体重は、対照ATBM移植群の体重を5〜12%下回る範囲の比較的一定したレベルに留まる。CV1qの存在下で致命的GVHDを発症するマウスは、未処理またはMT412処理群よりもゆっくりとした反応速度で発症する。cV1qを0.1mg腹膜内投与した場合、GVHDの発現に顕著な低下は見られない。BMT当日とその3日後に、同腹子対照マウス由来の107個の同系脾臓細胞を静脈注射することによって、実験的ECPを施す。ドナーT細胞を移植されたものの、ECP処理細胞を投与されたCBAマウスは、およそ20%の生存率を示し、そのMSTはおよそ30日間で、対照群のMSTとは大幅に異なる。加えて、生存するECP処理マウスは、GVHD症状(例えば毛並みの乱れ、皮膚損傷、猫背姿勢または下痢)徴候の緩和を示し、その体重は、対照ATBM移植群の体重を5〜20%下回る範囲の比較的一定したレベルに留まる。ECP処理細胞の存在下で致命的GVHDを発症するマウスは、未処理群よりもゆっくりとした反応速度で発症する。
cV1q処理によるTNFαの中和が、MHC関門全体のGVHDの経過に影響を与え得るかどうかを、半数体(haploidentical)C3Ha(B6×C3H)F1マウス・モデルを利用して判断する。致死量の放射線を照射された(13Gy、分割線量)(B6×C3H)F1マウスの静脈内に、C3H T細胞(CD4+とCD8+との両方;5×106個)およびATBM細胞(2×106個)を移植する。これは、激しい体重減少と早期死亡(およそ5日間のMST)とを特徴とする急速な急性GVHD反応を引き起こす。ほぼ同じ結果が、対照MT412 mAbで処理されたレシピエントで得られるが、cV1qで処理された(−1日目に1mg腹膜内と0、4、8および12日目に0.5mg)マウスは、およそ40%の長期生存率を示し、そのMSTは約40日間で、未処置またはMT412対照群のMSTに比べて大幅に異なる。0.1mgの cV1qによる処理は、GVHDの発現に対して非有意ではあるが注目に値する効果を示す。
ドナーCDR4+T細胞反応がC3Ha(B6×C3H)F1モデルのGVHD発症を左右する傾向があるので、また、ドナーT細胞移植片全体を移植した時、抗TNFα mAb処理の効果が中程度であるという当初の観察を踏まえて、出願人は、CD4媒介GVHDの構成要素に注目する。放射線を照射された(13Gy、分割線量)(B6×C3H)F1マウスに3×106個のC3H CD4+T細胞を2×106個のATBM細胞とともに注入する結果として、大半の未処理(約75%;10〜30日間のMST)および対照MT412処理(約80%;10〜30日間のMST)マウスが重症急性GVHDで死亡する。対照的に、cV1q抗TNFα mAbで処理された(−1日目に1mg腹膜内と0、4、8および12日目に0.5mg)マウスは100%、60日より長い期間生存する。これらのマウスは、目に見えるGVHD症状を示さず、放射線照射後の初期体重減少から急速に回復し、ATBM対照群と平行して実験が終了するまで体重を増し続ける。CD4媒介GVHDの生存率に対するcV1q処理の非常に顕著な効果によって、ドナーT細胞移植片全体の移植に伴い先に観察された効果の低さが、CD8媒介抗MHC 1級反応の抑制の低さのためであるらしいことが示唆される。しかしながら、精製C3H CD8+T細胞はCD4+T細胞の存在なしに単独で致命的GVHDを媒介することができないので、このことを同モデルで直接試験することはできない。
実施例の要約
本実施例は、ECPと並んだ抗TNFαの強度管理が、文献中で提案されているものよりも大幅に優れた毒性特徴を持つことを実証する。最初は、1mg/kgのインフリキシマブ抗TNFαを使用する。しかしながら、有効用量の範囲は、0.1mg/kgから10mg/kgまでの範囲に及ぶ場合がある。
患者は、部位および合意プロトコルによって必然的に決まる標準的方式での移植によって、同種異系造血幹細胞(HSC)移植を受け、次の薬物療法に限定されない。すなわち、経口および静脈内コルチコステロイド、シクロスポリン、タクロリムス、シロリムス、ミコフェノレ−ト・モフェチル(MMF)など。非骨髄機能廃絶HSC移植を受ける患者は、ブスルファンおよびフルダラビンによる状態調節化学療法と、様々なすべてのGVHD予防管理とを施される。ドナー・レシピエント・ペアのCMV血清状態および培地追跡調査期間は、ほぼ同じである。HSCに先立ち、また、ことによるとHSCよりも後の様々な時期に、標準的手技を用いてECPを施す。HSCに続きインフリキシマブを0.5mg/kgの用量で投与する。患者を追跡調査し、修正グリュックスベルク尺度のような標準的手順を用いて評価し、GYHD予防管理、発現日および最大総括器官固有等級に関するデータを収集する。
基線特徴の比較に適する通り、両側フィッシャー精密検定、ウィルコクソン検定またはT検定を用いる。IFI発生率および発生率比を、HSCTコーホートの移植日から、また、重症GVHDを発症した患者のGVHD発現日から、様々な曝露範疇に従って計算し、死亡時または追跡調査終了前の最終診察時で患者を打ち切る。発生率および発生率比に関する信頼区間を、それぞれ、Haenszeおよびバイアーズ法を用いて計算する。カプラン・マイヤー曲線を、生存に関して、また、移植日からIFIまでの期間に関して、計算する。重症GVHD患者については、急性GVHDの発現からIFIまでの期間もまた計算する。事象までの期間を、ログ・ランク検定を用いることによって比較する。GVHD発現からIFIまでの期間に関する時間依存コックス回帰分析を行って、重症GVHD患者の変量間で起こり得る交絡または相互作用を管理する。単変量コックス・モデルを、重症GVHD患者間で見込まれるすべての危険因子について計算する。IFIの単変量コックス解析でP値が0.2未満のすべての共変量については、多変量コックス・モデルにおいて検討する。インフリキシマブを時間依存変量としてモデル化し、いったん、週1回の点滴が開始された後は、その曝露を一定と仮定する。かなりの交絡が認められない限り、最終モデルにおいてIFIと統計的に有意に関連する(P<0.05)変量候補のみを、残しておく。上記分析には、ウィンドウズ(登録商標)用SASシステム、バージョン8.01(SASインスティチュート、ノースカロライナ州ケアリー)を使用する。
急性GVHDの発生および治療
HSCに先立ちほぼ2回、HSCよりも10〜4日前に、ECPを施す。加えて、移植に続く最初の100日間の急性GVHDの発症をさらに防止するために、ほぼ毎週ECP治療を施す。予備分析によって、GVHDでない患者と1〜2等級GVHD患者との間のほぼ等しい生存率およびIFI率が明らかとなる。よって、これらの群をまとめて非または非重症GVHD中にプールする。3または4等級全般を重症GVHDとして定義する。コーホート中のおよそ20%が、急性重症GVHDを発症する。重症GVHD患者の方が、コーホートの残り部分に比べ、非関連ドナーの割合は高く、その他の点では、基線特徴はほぼ同じである。骨髄機能廃絶および非骨髄機能廃絶HSCレシピエント間では、GVHDまたは重症GVHDのいずれの程度の割合も、ほぼ同じである。
重症GVHDと診断された患者は、反応に合わせて漸減される少なくとも2mg/kg/日の初回用量のMMFおよびコルチコステロイドと、カルシニューリン抑制剤またはシロリムス用量の追加または増加とを含む、複数の薬物療法を受けることができる。
観察期間中、カンジダ菌種が原因でないことが確定しているかまたは推定されるIFI(アスペルギルス症、接合菌症など)を、コーホート中で診断する。
重症GVHD患者間の総IFI IRは、およそ1事例/1000 GVHD患者日である。基線特徴間において、非骨髄機能廃絶HSCTは、およそ3事例/1000 GVHD患者日というIFI IRの大幅な増加に関係するのに対して、重症GVHDを発症した骨髄機能廃絶HSC移植レシピエントは、1事例/1000 GVHD患者日よりも低いIFI IRを示す。状態調整管理、末梢血管細胞の受容、および、GVHD予防のためのシクロスポリン使用のような、非骨髄機能廃絶HSCTプロトコルの特徴もまた、わずかに高いIFI危険に関係する。
重症GVHD患者のIFI発症に関する、時間依存コックス回帰分析モデルを策定する。見込まれるすべてのIFI危険因子について、単変量危険率(HR)を計算する。未修正HR P値が0.20未満の特徴のみを、多変量モデルにおいて検討する。
追跡調査終了時におけるコーホート全体のメディアン生存期間は、およそ250〜400日間である。GVHD重症度に従って階層化する場合、重症GVHD患者のメディアン生存期間は、非または非重症GVHD患者よりもかなり低い。重症GVHD患者間では、10mg/kgインフリキシマブ・レシピエントのメディアン生存期間は、非レシピエントよりもかなり低い場合がある。ECP処理患者は、標準的管理の患者または低用量インフリキシマブのみを投与された患者を上回る顕著な生存パターンを示す。標準的ECP管理と並んでインフリキシマブ用量を1mg/kgまで削減することによって、GVHDスコアが大幅に改善されるにもかかわらず、より高いレベルのインフリキシマブに関係するIFIは、劇的かつ統計的に低下する。
(1)自己免疫疾患を治療し又はその1以上の症状を改善する方法であって、
a)患者にアポトーシス誘発処置を施した細胞の集団を投与する段階と、
b)被験者に有効量のTNF拮抗薬を投与する段階とを有していることを特徴とする方法。
(2)細胞は、自己白血球であることを特徴とする上記実施態様(1)記載の方法。
(3)アポトーシス誘発処置は、光活性化化合物を前記光活性化化合物を活性化させる波長の光と共に用いるECP手技であることを特徴とする上記実施態様(1)記載の方法。
(4)光活性化化合物は、ソラレンであり、光は、UVAであることを特徴とする上記実施態様(2)記載の方法。
(5)ソラレンは、8−MOPであることを特徴とする上記実施態様(4)記載の方法。
(7)全身性エリテマトーデス(SLE)慢性関節リウマチ、甲状腺炎、移植片対宿主病、強皮症、糖尿病、グレーヴス病、サルコイドーシス、慢性炎症性腸疾患、潰瘍性大腸炎、播種性血管内凝固症候群、アテローム硬化症、川崎病、多発性硬化症、急性横断性脊髄炎、皮質脊髄系の病変、脳幹神経節障害又は小脳障害、ハンティングトン舞踏病、老年舞踏病、薬剤誘発性運動障害、パーキンソン病、進行性核上麻痺、小脳及び脊髄小脳障害、脊髄小脳変性、脊髄性運動失調、フリートライヒ運動失調、小脳皮質変性、多系統変性(メンシェル病、デジェリーヌ−トーマス病、シャイ−ドレーガー症候群、マチャド−ジョセフ病)、及び全身性疾患(レフサム病、無β−リポ蛋白血症、運動失調、毛細血管拡張症、ミトコンドリア多系統疾患)、多発性硬化症、急性横断性脊髄炎、神経原性筋硬化症、筋萎縮性塞索硬化症、小児性脊髄性筋萎縮症、若年性脊髄性筋萎縮症、アルツハイマー病、中年のダウン症候群、びまん性レヴィー小体病、レヴィー小体型老人性痴呆症、ヴェルニッケ−コルサコフ症候群、慢性アルコール中毒、クロイツフェルト−ヤーコブ病、亜急性硬化性汎脳炎、ハレルフォルデン−シュバッツ症候群、ピュージリスティカ型痴呆(Dementia pugilistica)、白血病、ホジキンリンパ腫及び非ホジキンリンパ腫及びアルコール誘発性肝炎を治療する方法であって、
a)前記方法を必要としている被験者に、UVA光及び8−MOPを用いるECP手技を施した被験者の血液の一部から得た細胞集団を投与する段階と、
b)被験者に有効量のTNF−α拮抗薬を投与する段階とを有していることを特徴とする方法。
(8)TNF−α拮抗薬は、レミケイド(REMICADE(登録商標))、ヒュミラ(HUMIRA(登録商標))及びエンブレル(ENBREL(登録商標))治療薬であることを特徴とする上記実施態様(7)記載の方法。
(9)TNF−α拮抗薬は、レミケイド(REMICADE(登録商標))治療薬であることを特徴とする上記実施態様(7)記載の方法。
(10)慢性関節リウマチを治療し又はその1以上の症状を改善する方法であって、
a)前記方法を必要としている被験者に、UVA光及び8−MOPを用いるECP手技を施した被験者の血液の一部から得た細胞集団を投与する段階と、
b)被験者にレミケイド(REMICADE(登録商標))、ヒュミラ(HUMIRA(登録商標))及びエンブレル(ENBREL(登録商標))から選択されたTNF−α拮抗薬を投与する段階とを有していることを特徴とする方法。
(12)アトピー性疾患を治療し又はその1以上の症状を改善する方法であって、a)前記方法を必要としている患者にアポトーシス誘発処置を施した患者の血液の一部から得た細胞の集団を投与する段階と、b)患者に有効量のTNFα拮抗薬を投与する段階とを有していることを特徴とする方法。
(13)a)移植組織レシピエントに移植前に移植組織レシピエントの血液の一部から得た細胞の集団を投与する段階を有し、前記細胞集団は、アポトーシス誘発処置が施されており、前記方法は、b)前記移植組織レシピエントに有効量のTNFα拮抗薬を投与する段階を更に有していることを特徴とする方法。
(14)段階a)及びb)は、移植前の1週間と2日、前記移植組織の摘出前の1週間と3日、移植前の2週間の間の1週間と2日、移植前の3週間の間の1週間と3日から成る群から選択されたスケジュールに従って実施されることを特徴とする上記実施態様(13)記載の方法。
(15)光活性化化合物は、ソラレンであり、光は、UVAであることを特徴とする上記実施態様(13)記載の方法。
b)前記移植片レシピエントに有効量のTNFα拮抗薬を投与する段階を有し、
c)前記レシピエントに、前記レシピエントが前記移植組織を受け入れた後、前記レシピエントの血液の一部から得た細胞の集団を投与する段階を更に有し、前記細胞集団は、アポトーシス誘発処置が施されていることを特徴とする方法。
(17)段階a)及びb)は、前記レシピエントが前記移植片を受け入れるのに先立つ1週間と2日、前記レシピエントが前記移植片を受け入れるのに先立つ1週間と3日、前記レシピエントが前記移植片を受け入れるのに先立つ2週間の間の1週間と2日、前記レシピエントが前記移植片を受け入れるのに先立つ3週間の間の1週間と3日から成る群から選択されたスケジュールに従って実施され、段階c)は、週に1回、月に1回、1月に2回、1月に3回、1ヶ月おき、3ヶ月おき、6ヶ月おき及び1年に1回から成る群から選択されたスケジュールに従って実施されることを特徴とする上記実施態様(15)記載の方法。
(18)疾患又は疾患の素因のある患者を治療する方法であって、患者を試験して患者が疾患を持っているかどうかを判定する段階と、かかる患者が疾患を持っているか又はかかる疾患の素因を持っていれば、TNFα拮抗薬及びECPを投与する段階とを有することを特徴とする方法。
Claims (18)
- 自己免疫疾患を治療し又はその1以上の症状を改善する方法であって、
a)患者にアポトーシス誘発処置を施した細胞の集団を投与する段階と、
b)被験者に有効量のTNF拮抗薬を投与する段階とを有していることを特徴とする方法。 - 細胞は、自己白血球であることを特徴とする請求項1記載の方法。
- アポトーシス誘発処置は、光活性化化合物を前記光活性化化合物を活性化させる波長の光と共に用いるECP手技であることを特徴とする請求項1記載の方法。
- 光活性化化合物は、ソラレンであり、光は、UVAであることを特徴とする請求項2記載の方法。
- ソラレンは、8−MOPであることを特徴とする請求項4記載の方法。
- TNF−α拮抗薬は、レミケイド(REMICADE(登録商標))、ヒュミラ(HUMIRA(登録商標))及エンブレル(ENBREL(登録商標))治療薬から成る群から選択されていることを特徴とする請求項1記載の方法。
- 全身性エリテマトーデス(SLE)慢性関節リウマチ、甲状腺炎、移植片対宿主病、強皮症、糖尿病、グレーヴス病、サルコイドーシス、慢性炎症性腸疾患、潰瘍性大腸炎、播種性血管内凝固症候群、アテローム硬化症、川崎病、多発性硬化症、急性横断性脊髄炎、皮質脊髄系の病変、脳幹神経節障害又は小脳障害、ハンティングトン舞踏病、老年舞踏病、薬剤誘発性運動障害、パーキンソン病、進行性核上麻痺、小脳及び脊髄小脳障害、脊髄小脳変性、脊髄性運動失調、フリートライヒ運動失調、小脳皮質変性、多系統変性(メンシェル病、デジェリーヌ−トーマス病、シャイ−ドレーガー症候群、マチャド−ジョセフ病)、及び全身性疾患(レフサム病、無β−リポ蛋白血症、運動失調、毛細血管拡張症、ミトコンドリア多系統疾患)、多発性硬化症、急性横断性脊髄炎、神経原性筋硬化症、筋萎縮性塞索硬化症、小児性脊髄性筋萎縮症、若年性脊髄性筋萎縮症、アルツハイマー病、中年のダウン症候群、びまん性レヴィー小体病、レヴィー小体型老人性痴呆症、ヴェルニッケ−コルサコフ症候群、慢性アルコール中毒、クロイツフェルト−ヤーコブ病、亜急性硬化性汎脳炎、ハレルフォルデン−シュバッツ症候群、ピュージリスティカ型痴呆(Dementia pugilistica)、白血病、ホジキンリンパ腫及び非ホジキンリンパ腫及びアルコール誘発性肝炎を治療する方法であって、
a)前記方法を必要としている被験者に、UVA光及び8−MOPを用いるECP手技を施した被験者の血液の一部から得た細胞集団を投与する段階と、
b)被験者に有効量のTNF−α拮抗薬を投与する段階とを有していることを特徴とする方法。 - TNF−α拮抗薬は、レミケイド(REMICADE(登録商標))、ヒュミラ(HUMIRA(登録商標))及びエンブレル(ENBREL(登録商標))治療薬であることを特徴とする請求項7記載の方法。
- TNF−α拮抗薬は、レミケイド(REMICADE(登録商標))治療薬であることを特徴とする請求項7記載の方法。
- 慢性関節リウマチを治療し又はその1以上の症状を改善する方法であって、
a)前記方法を必要としている被験者に、UVA光及び8−MOPを用いるECP手技を施した被験者の血液の一部から得た細胞集団を投与する段階と、
b)被験者にレミケイド(REMICADE(登録商標))、ヒュミラ(HUMIRA(登録商標))及びエンブレル(ENBREL(登録商標))から選択されたTNF−α拮抗薬を投与する段階とを有していることを特徴とする方法。 - TNF−α拮抗薬は、レミケイド(REMICADE(登録商標))であることを特徴とする請求項10記載の方法。
- アトピー性疾患を治療し又はその1以上の症状を改善する方法であって、a)前記方法を必要としている患者にアポトーシス誘発処置を施した患者の血液の一部から得た細胞の集団を投与する段階と、b)患者に有効量のTNFα拮抗薬を投与する段階とを有していることを特徴とする方法。
- a)移植組織レシピエントに移植前に移植組織レシピエントの血液の一部から得た細胞の集団を投与する段階を有し、前記細胞集団は、アポトーシス誘発処置が施されており、前記方法は、b)前記移植組織レシピエントに有効量のTNFα拮抗薬を投与する段階を更に有していることを特徴とする方法。
- 段階a)及びb)は、移植前の1週間と2日、前記移植組織の摘出前の1週間と3日、移植前の2週間の間の1週間と2日、移植前の3週間の間の1週間と3日から成る群から選択されたスケジュールに従って実施されることを特徴とする請求項13記載の方法。
- 光活性化化合物は、ソラレンであり、光は、UVAであることを特徴とする請求項13記載の方法。
- a)移植片レシピエントに、前記レシピエントが前記移植片を受け入れる前に移植片レシピエントの血液の一部から得た細胞の集団を投与する段階を有し、前記細胞集団は、アポトーシス誘発処置が施されており、
b)前記移植片レシピエントに有効量のTNFα拮抗薬を投与する段階を有し、
c)前記レシピエントに、前記レシピエントが前記移植組織を受け入れた後、前記レシピエントの血液の一部から得た細胞の集団を投与する段階を更に有し、前記細胞集団は、アポトーシス誘発処置が施されていることを特徴とする方法。 - 段階a)及びb)は、前記レシピエントが前記移植片を受け入れるのに先立つ1週間と2日、前記レシピエントが前記移植片を受け入れるのに先立つ1週間と3日、前記レシピエントが前記移植片を受け入れるのに先立つ2週間の間の1週間と2日、前記レシピエントが前記移植片を受け入れるのに先立つ3週間の間の1週間と3日から成る群から選択されたスケジュールに従って実施され、段階c)は、週に1回、月に1回、1月に2回、1月に3回、1ヶ月おき、3ヶ月おき、6ヶ月おき及び1年に1回から成る群から選択されたスケジュールに従って実施されることを特徴とする請求項15記載の方法。
- 疾患又は疾患の素因のある患者を治療する方法であって、患者を試験して患者が疾患を持っているかどうかを判定する段階と、かかる患者が疾患を持っているか又はかかる疾患の素因を持っていれば、TNFα拮抗薬及びECPを投与する段階とを有することを特徴とする方法。
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