JP2005160596A - 生体材料の前処理方法及び用途 - Google Patents
生体材料の前処理方法及び用途 Download PDFInfo
- Publication number
- JP2005160596A JP2005160596A JP2003400924A JP2003400924A JP2005160596A JP 2005160596 A JP2005160596 A JP 2005160596A JP 2003400924 A JP2003400924 A JP 2003400924A JP 2003400924 A JP2003400924 A JP 2003400924A JP 2005160596 A JP2005160596 A JP 2005160596A
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- cells
- cell
- micromolded
- micro
- molded body
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
- 239000012620 biological material Substances 0.000 title abstract description 31
- 238000002203 pretreatment Methods 0.000 title abstract description 6
- 238000000034 method Methods 0.000 claims abstract description 59
- 239000006285 cell suspension Substances 0.000 claims abstract description 31
- 210000000988 bone and bone Anatomy 0.000 claims abstract description 24
- 238000002156 mixing Methods 0.000 claims abstract description 12
- 239000000725 suspension Substances 0.000 claims abstract description 12
- 230000024245 cell differentiation Effects 0.000 claims abstract description 4
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 claims description 179
- 239000002609 medium Substances 0.000 claims description 12
- 230000004069 differentiation Effects 0.000 claims description 9
- 230000009772 tissue formation Effects 0.000 claims description 8
- 230000010261 cell growth Effects 0.000 claims description 7
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 claims description 6
- 102000010834 Extracellular Matrix Proteins Human genes 0.000 claims description 4
- 108010037362 Extracellular Matrix Proteins Proteins 0.000 claims description 4
- 210000001612 chondrocyte Anatomy 0.000 claims description 4
- 210000002744 extracellular matrix Anatomy 0.000 claims description 4
- 210000000250 cementoblast Anatomy 0.000 claims description 3
- 210000002950 fibroblast Anatomy 0.000 claims description 3
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims description 3
- 210000000963 osteoblast Anatomy 0.000 claims description 3
- 239000011148 porous material Substances 0.000 claims description 3
- 210000001671 embryonic stem cell Anatomy 0.000 claims description 2
- 238000010899 nucleation Methods 0.000 claims description 2
- 210000004409 osteocyte Anatomy 0.000 claims description 2
- 210000000130 stem cell Anatomy 0.000 claims description 2
- 210000003556 vascular endothelial cell Anatomy 0.000 claims description 2
- 210000001053 ameloblast Anatomy 0.000 claims 1
- 239000007788 liquid Substances 0.000 abstract description 7
- 238000001053 micromoulding Methods 0.000 abstract description 7
- 238000012258 culturing Methods 0.000 abstract description 5
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 abstract description 5
- 230000008929 regeneration Effects 0.000 abstract 1
- 238000011069 regeneration method Methods 0.000 abstract 1
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 14
- 230000001225 therapeutic effect Effects 0.000 description 11
- 238000004113 cell culture Methods 0.000 description 8
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 8
- 230000006870 function Effects 0.000 description 8
- 238000003501 co-culture Methods 0.000 description 7
- 230000001172 regenerating effect Effects 0.000 description 7
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 6
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 6
- 239000000945 filler Substances 0.000 description 6
- 238000002347 injection Methods 0.000 description 6
- 239000007924 injection Substances 0.000 description 6
- 230000003915 cell function Effects 0.000 description 5
- 239000002131 composite material Substances 0.000 description 5
- 239000012737 fresh medium Substances 0.000 description 5
- 230000001954 sterilising effect Effects 0.000 description 5
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 102000004142 Trypsin Human genes 0.000 description 4
- 108090000631 Trypsin Proteins 0.000 description 4
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 description 4
- 210000004748 cultured cell Anatomy 0.000 description 4
- 230000011164 ossification Effects 0.000 description 4
- 230000008569 process Effects 0.000 description 4
- 238000004659 sterilization and disinfection Methods 0.000 description 4
- 239000012588 trypsin Substances 0.000 description 4
- 239000000463 material Substances 0.000 description 3
- VSIIXMUUUJUKCM-UHFFFAOYSA-D pentacalcium;fluoride;triphosphate Chemical compound [F-].[Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[O-]P([O-])([O-])=O.[O-]P([O-])([O-])=O.[O-]P([O-])([O-])=O VSIIXMUUUJUKCM-UHFFFAOYSA-D 0.000 description 3
- 239000012798 spherical particle Substances 0.000 description 3
- 238000010521 absorption reaction Methods 0.000 description 2
- 230000002776 aggregation Effects 0.000 description 2
- 238000004220 aggregation Methods 0.000 description 2
- 229910052586 apatite Inorganic materials 0.000 description 2
- 239000002775 capsule Substances 0.000 description 2
- 238000002659 cell therapy Methods 0.000 description 2
- 230000000536 complexating effect Effects 0.000 description 2
- 230000021615 conjugation Effects 0.000 description 2
- 230000007547 defect Effects 0.000 description 2
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 2
- 238000000635 electron micrograph Methods 0.000 description 2
- 230000012010 growth Effects 0.000 description 2
- 239000002245 particle Substances 0.000 description 2
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 2
- 238000005245 sintering Methods 0.000 description 2
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 2
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 2
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 238000009825 accumulation Methods 0.000 description 1
- 230000001464 adherent effect Effects 0.000 description 1
- 239000000853 adhesive Substances 0.000 description 1
- 230000001070 adhesive effect Effects 0.000 description 1
- 230000004931 aggregating effect Effects 0.000 description 1
- 239000003242 anti bacterial agent Substances 0.000 description 1
- 229940088710 antibiotic agent Drugs 0.000 description 1
- 210000003969 blast cell Anatomy 0.000 description 1
- 210000002449 bone cell Anatomy 0.000 description 1
- 235000010410 calcium alginate Nutrition 0.000 description 1
- 229960002681 calcium alginate Drugs 0.000 description 1
- 239000000648 calcium alginate Substances 0.000 description 1
- OKHHGHGGPDJQHR-YMOPUZKJSA-L calcium;(2s,3s,4s,5s,6r)-6-[(2r,3s,4r,5s,6r)-2-carboxy-6-[(2r,3s,4r,5s,6r)-2-carboxylato-4,5,6-trihydroxyoxan-3-yl]oxy-4,5-dihydroxyoxan-3-yl]oxy-3,4,5-trihydroxyoxane-2-carboxylate Chemical compound [Ca+2].O[C@@H]1[C@H](O)[C@H](O)O[C@@H](C([O-])=O)[C@H]1O[C@H]1[C@@H](O)[C@@H](O)[C@H](O[C@H]2[C@H]([C@@H](O)[C@H](O)[C@H](O2)C([O-])=O)O)[C@H](C(O)=O)O1 OKHHGHGGPDJQHR-YMOPUZKJSA-L 0.000 description 1
- 230000001413 cellular effect Effects 0.000 description 1
- 239000000470 constituent Substances 0.000 description 1
- 238000007796 conventional method Methods 0.000 description 1
- 238000012136 culture method Methods 0.000 description 1
- 210000003298 dental enamel Anatomy 0.000 description 1
- 238000010586 diagram Methods 0.000 description 1
- 238000007876 drug discovery Methods 0.000 description 1
- 238000005538 encapsulation Methods 0.000 description 1
- 238000011049 filling Methods 0.000 description 1
- 230000035876 healing Effects 0.000 description 1
- 238000010438 heat treatment Methods 0.000 description 1
- 238000011534 incubation Methods 0.000 description 1
- 230000002906 microbiologic effect Effects 0.000 description 1
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 1
- 238000000879 optical micrograph Methods 0.000 description 1
- 239000008188 pellet Substances 0.000 description 1
- 238000005453 pelletization Methods 0.000 description 1
- 230000000149 penetrating effect Effects 0.000 description 1
- 229920003213 poly(N-isopropyl acrylamide) Polymers 0.000 description 1
- 230000035755 proliferation Effects 0.000 description 1
- 238000001694 spray drying Methods 0.000 description 1
- 230000000638 stimulation Effects 0.000 description 1
- 238000003756 stirring Methods 0.000 description 1
- 239000000758 substrate Substances 0.000 description 1
- 230000004083 survival effect Effects 0.000 description 1
- 238000004114 suspension culture Methods 0.000 description 1
- 230000017423 tissue regeneration Effects 0.000 description 1
- 230000014616 translation Effects 0.000 description 1
- 210000000689 upper leg Anatomy 0.000 description 1
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Materials For Medical Uses (AREA)
Abstract
【課題】再生医療、細胞医療に資する、新しい生体材料の前処理方法及び用途を提供する。
【解決手段】攪拌可能に微小成形体を、硬組織形成関連機能を発現しうる細胞の懸濁液に混合することによって、生体に適用可能に前処理された細胞入り人工骨単位を調製する方法であって、（１）上記細胞を用いて、所定の細胞濃度の細胞懸濁液を調製する、（２）上記細胞懸濁液に、複数の微小成形体を混合し、懸濁液中の細胞を、微小成形体にトラップさせる、（３）細胞をトラップした微小成形体を、培養環境ないし細胞分化環境で静置する、（４）微小成形体にトラップした細胞の一部又は全部が、細胞凝集塊を形成するまで培養して、微小成形体・細胞複合体とする、（５）上記（１）〜（４）により、生体に適用可能な細胞入り人工骨単位を調製する、ことを特徴とする、細胞入り人工骨単位の調製方法、及び細胞入り人工骨単位。
【選択図】図１
【解決手段】攪拌可能に微小成形体を、硬組織形成関連機能を発現しうる細胞の懸濁液に混合することによって、生体に適用可能に前処理された細胞入り人工骨単位を調製する方法であって、（１）上記細胞を用いて、所定の細胞濃度の細胞懸濁液を調製する、（２）上記細胞懸濁液に、複数の微小成形体を混合し、懸濁液中の細胞を、微小成形体にトラップさせる、（３）細胞をトラップした微小成形体を、培養環境ないし細胞分化環境で静置する、（４）微小成形体にトラップした細胞の一部又は全部が、細胞凝集塊を形成するまで培養して、微小成形体・細胞複合体とする、（５）上記（１）〜（４）により、生体に適用可能な細胞入り人工骨単位を調製する、ことを特徴とする、細胞入り人工骨単位の調製方法、及び細胞入り人工骨単位。
【選択図】図１
Description
本発明は、生体材料の前処理方法及び用途に関するものであり、更に詳しくは、生体に適用可能に前処理された細胞入り人工骨単位を調製する方法及びその製品に関するものである。
本発明は、再生医療、細胞医療、及び細胞培養に資する新しい材料、新しい生体材料、及び細胞調製技術に係るものであり、更に詳しくは、本発明は、攪拌可能に、微小成形体を、硬組織形成関連機能を発現しうる細胞の懸濁液に混合することによって、生体に適用可能に前処理された細胞入り人工骨単位（微小成形体・細胞複合体）を調製することを特徴とする、生体材料の前処理技術に係るものである。本発明によれば、生体材料の微小成形体を、所望の治療効果が期待できる注入・充填剤に仕上げることができる、また、懸濁細胞を、生体材料上で、細胞機能発現に関して有用な形態（シート状、凝集塊状）に仕上げることができる、また、微小成形体・細胞複合体を任意の細胞育成環境に移動することにより、細胞を播種、継代することができる、また、微小成形体・細胞複合体を、直感的な操作により集積物とすることにより、３次元培養系を構築することができる、更に、複数の細胞を、それぞれ微小成形体・細胞複合体とし、同一目的地（細胞育成環境）に移動し、共培養（Ｃｏ−ｃｕｌｔｕｒｅ）することができる、等の格別の効果が得られる。本発明の生体材料の前処理技術、及び微小成形体・細胞複合体は、細胞医療、再生医療、及び細胞培養に資するツールとして好適に利用し得るものであり、これらの技術分野における新技術・新素材を提供するものとして有用である。
本発明は、再生医療、細胞医療、及び細胞培養に資する新しい材料、新しい生体材料、及び細胞調製技術に係るものであり、更に詳しくは、本発明は、攪拌可能に、微小成形体を、硬組織形成関連機能を発現しうる細胞の懸濁液に混合することによって、生体に適用可能に前処理された細胞入り人工骨単位（微小成形体・細胞複合体）を調製することを特徴とする、生体材料の前処理技術に係るものである。本発明によれば、生体材料の微小成形体を、所望の治療効果が期待できる注入・充填剤に仕上げることができる、また、懸濁細胞を、生体材料上で、細胞機能発現に関して有用な形態（シート状、凝集塊状）に仕上げることができる、また、微小成形体・細胞複合体を任意の細胞育成環境に移動することにより、細胞を播種、継代することができる、また、微小成形体・細胞複合体を、直感的な操作により集積物とすることにより、３次元培養系を構築することができる、更に、複数の細胞を、それぞれ微小成形体・細胞複合体とし、同一目的地（細胞育成環境）に移動し、共培養（Ｃｏ−ｃｕｌｔｕｒｅ）することができる、等の格別の効果が得られる。本発明の生体材料の前処理技術、及び微小成形体・細胞複合体は、細胞医療、再生医療、及び細胞培養に資するツールとして好適に利用し得るものであり、これらの技術分野における新技術・新素材を提供するものとして有用である。
従来の人工骨等の生体材料は、基本的には、いずれも生体側からの細胞活動を享受する、いわば受動的なものであり、生体材料側から能動的に骨再生等の治療効果を発揮するものではない。例えば、骨形成の期待できない骨欠損モデルに人工骨を埋入しても骨を再生することはない。あくまで人工骨が有効なのは、目的部位に骨形成に関わる細胞活動が期待できる場合のみである。生体材料がより高度な再生医療に対応してゆくためには、生体材料が能動的な治療効果を発揮するような工夫が必要不可欠であると考えられる。
バイオテクノロジーを支える基礎技術として蓄積されてきた細胞培養技術は、組織工学（Ｔｉｓｓｕｅ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ）、再生医療、及び創薬の分野における強力なツールである。今日、最も普遍的に行われている細胞培養の様式は、カルチャーディッシュやシャーレ等の培養容器上での２次元培養である。２次元培養系で培養された細胞は、トリプシン処理等により培養容器から剥離された後に、培地等に懸濁されて細胞懸濁液として適用される。上記細胞懸濁液は、細胞療法用の注入剤として期待・検討されている。例えば、骨欠損モデルに骨形成に関わる細胞を注入し、治療効果を期待する試みがある。しかし、細胞懸濁液中の細胞は、目的部位に注入された後に拡散してしまい、細胞を有用な形態で特定部位に留置しておくことがきわめて困難であるため、治療効果は低い。２次元培養系に置いては、効果的に懸濁細胞をトラップし、ハンドリング可能で、かつ有用な形態に仕上げる方法の開発が必要である。
上記生体材料と培養細胞を複合化し、「治療効果を発揮する生体材料」及び「ハンドリングできる有用形態培養細胞」とする試みがある。
懸濁細胞を多孔質生体材料と複合化して用いることが、主にＴｉｓｓｕｅ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ領域で検討されている。しかし、しばしば、既存の多孔質生体材料と懸濁細胞を複合化するためには、特殊な作業（例えば、引圧チャンバー内における、多孔体生体材料と細胞の複合化、細胞懸濁液のオシレーション）が必要である（例えば、特許文献１）。また、既存の多孔質生体材料は、懸濁細胞を有用な形態に仕上げ、安全に保持するための意図的な構造を持たず、表面近傍に細胞を保持するため、複合化された細胞の多くはハンドリングの際に物理的なダメージを受ける。
懸濁細胞を多孔質生体材料と複合化して用いることが、主にＴｉｓｓｕｅ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ領域で検討されている。しかし、しばしば、既存の多孔質生体材料と懸濁細胞を複合化するためには、特殊な作業（例えば、引圧チャンバー内における、多孔体生体材料と細胞の複合化、細胞懸濁液のオシレーション）が必要である（例えば、特許文献１）。また、既存の多孔質生体材料は、懸濁細胞を有用な形態に仕上げ、安全に保持するための意図的な構造を持たず、表面近傍に細胞を保持するため、複合化された細胞の多くはハンドリングの際に物理的なダメージを受ける。
懸濁細胞のハンドリング方法として、懸濁細胞をマイクロキャリアー表面に付着させ培養する方法がある（例えば、非特許文献１、特許文献２）。しかし、上記方法においては、細胞は物理的刺激（例えば、容器との衝突や、ハンドリング）を免れることがないため、多くの細胞が死に至る。また、上記方法を治療方法として利用するためには、マイクロキャリアーの生体適合性に関して考慮する必要がある。更に、マイクロキャリアー表面は凸面であるため、細胞を高密度凝集塊に仕上げることが困難である。
細胞をアルギン酸カルシウム等のゲルでカプセル化して培養する方法も報告されている（例えば、特許文献３）。しかし、上記方法においても、何段階にも及ぶ複雑なカプセル化作業の際に多くの細胞が死に至る。また、ゲルカプセルが細胞を完全に被覆してしまうため、細胞生存に必要なガス交換が阻害される。更に、ゲルカプセルの強度不足のため、ハンドリングが困難である。
細胞非接着物質上で浮遊培養した細胞、もしくは細胞弱接着基材上から自然剥離した細胞を凝集させる方法が報告されている。また、上記方法に関連して、３２℃以上の温度で収縮するＰｏｌｙ（Ｎ−ｉｓｏｐｒｏｐｙｌ ａｃｒｙｌａｍｉｄｅ）薄層上で細胞を培養し、コンフルエントになったところで加熱し、シート状細胞を回収する方法が注目されている（例えば、非特許文献２）。また、遠心による細胞ペレット化と、ペレット化細胞の浮遊培養を繰り返すことにより、高密度細胞凝集塊を得る方法が研究されている（例えば、非特許文献３）。しかし、上記方法により作製された細胞シート及び細胞凝集塊は、非常にデリケートであり、ピンセット等によるハンドリングを要求される臨床応用に耐えない。
このような状況の中で、本発明者は、上記従来技術に鑑みて、上記従来技術における諸問題を確実に解消することができる新しい生体材料・細胞調製技術とその新しい利用形態及びその製品を、多角的な視点から検討し、鋭意研究を積み重ねた結果、攪拌可能な微小成形体を、硬組織形成関連機能を発現しうる細胞の懸濁液に混合することによって、生体に適用可能に前処理された細胞入り人工骨単位（微小成形体・細胞複合体）を調製し得ることを見出し、本発明を完成するに至った。
すなわち、本発明は、生体材料微小成形体を、所望の治療効果が期待できる注入・充填剤に仕上げることを目的とするものである。
また、本発明は、懸濁細胞を、生体材料上で、細胞機能発現に関して有用な形態（シート状、凝集塊状）に仕上げる方法を提供することを目的とするものである。
また、本発明は、微小成形体・細胞複合体を任意の細胞育成環境に移動することにより、細胞を播種、継代する方法を提供することを目的とするものである。
また、本発明は、微小成形体・細胞複合体を、簡便な操作により集積物とすることにより、３次元培養系を構築する方法を提供することを目的とするものである。
また、本発明は、複数の細胞を、それぞれ微小成形体・細胞複合体とし、同一目的地に移動することによる、共培養（Ｃｏ−ｃｕｌｔｕｒｅ）方法を提供することを目的とするものである。
更に、本発明は、生体材料の前処理技術、細胞医療、再生医療、細胞培養に好適に利用し得るツールを提供することを目的とするものである。
すなわち、本発明は、生体材料微小成形体を、所望の治療効果が期待できる注入・充填剤に仕上げることを目的とするものである。
また、本発明は、懸濁細胞を、生体材料上で、細胞機能発現に関して有用な形態（シート状、凝集塊状）に仕上げる方法を提供することを目的とするものである。
また、本発明は、微小成形体・細胞複合体を任意の細胞育成環境に移動することにより、細胞を播種、継代する方法を提供することを目的とするものである。
また、本発明は、微小成形体・細胞複合体を、簡便な操作により集積物とすることにより、３次元培養系を構築する方法を提供することを目的とするものである。
また、本発明は、複数の細胞を、それぞれ微小成形体・細胞複合体とし、同一目的地に移動することによる、共培養（Ｃｏ−ｃｕｌｔｕｒｅ）方法を提供することを目的とするものである。
更に、本発明は、生体材料の前処理技術、細胞医療、再生医療、細胞培養に好適に利用し得るツールを提供することを目的とするものである。
上記課題を解決する本発明は、以下の技術的手段から構成される。
（１）攪拌可能に、微小成形体を、硬組織形成関連機能を発現しうる細胞の懸濁液に混合することによって、生体に適用可能に前処理された細胞入り人工骨単位を調製する方法であって、
１）上記細胞を用いて、所定の細胞濃度の細胞懸濁液を調製する、
２）上記細胞懸濁液に、複数の微小成形体を混合し、懸濁液中の細胞を、微小成形体にトラップさせる、
３）細胞をトラップした微小成形体を、培養環境ないし細胞分化環境で静置する、
４）微小成形体にトラップした細胞の一部又は全部が、細胞凝集塊を形成するまで培養して、微小成形体・細胞複合体とする、
５）上記１）〜４）により、生体に適用可能な細胞入り人工骨単位を調製する、
ことを特徴とする、細胞入り人工骨単位の調製方法。
（２）微小成形体の体積が、５×１０-4から１×１０3 ｍｍ3 である、前記（１）記載の方法。
（３）微小成形体が、微小成形体の最長寸法の７０％以下の貫通孔、ディンプル、及び／又は気孔を有する多孔体である、前記（１）記載の方法。
（４）硬組織形成関連機能を発現しうる細胞が、骨細胞（ｏｓｔｅｏｃｙｔｅ）、骨芽細胞（ｏｓｔｅｏｂｌａｓｔ）、軟骨細胞（ｃｈｏｎｄｒｏｃｙｔｅ）、軟骨細胞（ｃｈｏｎｄｒｏｂｌａｓｔ）、繊維芽細胞（ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔ）、セメント芽細胞（ｃｅｍｅｎｔｏｂｌａｓｔ）、エナメル芽細胞（ａｍｅｌｏｂｌａｓｔ）、血管内皮細胞（ｅｎｄｏｔｈｒｉａｌ ｃｅｌｌｓ）、幹細胞（ｓｔｅｍ ｃｅｌｌｓ）、未分化間葉系細胞（ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌｓ）、ＥＳ細胞（ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌｓ）の群から選択された１種、あるいは２種以上の混合物である、前記（１）記載の方法。
（５）細胞濃度が、１×１０2 〜１×１０8 ｃｅｌｌｓ／ｍｌである、前記（１）記載の方法。
（６）培養環境が、ＣＯ2 インキュベータ内に置かれた、増殖培地もしくは分化培地の入った滅菌容器内である、前記（１）記載の方法。
（７）細胞凝集塊が、複数の細胞が細胞外基質を介して結合した状態のシート状又は塊状の細胞集団である、前記（１）記載の方法。
（８）微小成形体・細胞複合体を媒体として、細胞播種、継代することを特徴とする、前記（１）記載の方法。
（９）２種類以上の細胞をそれぞれ微小成形体・細胞複合体とし、同一目的地（細胞育成環境）に移動し、共培養（Ｃｏ−ｃｕｌｔｕｒｅ）することを特徴とする、前記（１）記載の方法。
（１０）微小成形体・細胞複合体を、２次元的もしくは３次元的集積物とし、３次元細胞集合体とすることを特徴とする、前記（１）記載の方法。
（１１）前記（１）から（１０）のいずれかに記載の方法で作製した、生体に適用可能に前処理された生体移入用細胞入り人工骨単位。
（１）攪拌可能に、微小成形体を、硬組織形成関連機能を発現しうる細胞の懸濁液に混合することによって、生体に適用可能に前処理された細胞入り人工骨単位を調製する方法であって、
１）上記細胞を用いて、所定の細胞濃度の細胞懸濁液を調製する、
２）上記細胞懸濁液に、複数の微小成形体を混合し、懸濁液中の細胞を、微小成形体にトラップさせる、
３）細胞をトラップした微小成形体を、培養環境ないし細胞分化環境で静置する、
４）微小成形体にトラップした細胞の一部又は全部が、細胞凝集塊を形成するまで培養して、微小成形体・細胞複合体とする、
５）上記１）〜４）により、生体に適用可能な細胞入り人工骨単位を調製する、
ことを特徴とする、細胞入り人工骨単位の調製方法。
（２）微小成形体の体積が、５×１０-4から１×１０3 ｍｍ3 である、前記（１）記載の方法。
（３）微小成形体が、微小成形体の最長寸法の７０％以下の貫通孔、ディンプル、及び／又は気孔を有する多孔体である、前記（１）記載の方法。
（４）硬組織形成関連機能を発現しうる細胞が、骨細胞（ｏｓｔｅｏｃｙｔｅ）、骨芽細胞（ｏｓｔｅｏｂｌａｓｔ）、軟骨細胞（ｃｈｏｎｄｒｏｃｙｔｅ）、軟骨細胞（ｃｈｏｎｄｒｏｂｌａｓｔ）、繊維芽細胞（ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔ）、セメント芽細胞（ｃｅｍｅｎｔｏｂｌａｓｔ）、エナメル芽細胞（ａｍｅｌｏｂｌａｓｔ）、血管内皮細胞（ｅｎｄｏｔｈｒｉａｌ ｃｅｌｌｓ）、幹細胞（ｓｔｅｍ ｃｅｌｌｓ）、未分化間葉系細胞（ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌｓ）、ＥＳ細胞（ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌｓ）の群から選択された１種、あるいは２種以上の混合物である、前記（１）記載の方法。
（５）細胞濃度が、１×１０2 〜１×１０8 ｃｅｌｌｓ／ｍｌである、前記（１）記載の方法。
（６）培養環境が、ＣＯ2 インキュベータ内に置かれた、増殖培地もしくは分化培地の入った滅菌容器内である、前記（１）記載の方法。
（７）細胞凝集塊が、複数の細胞が細胞外基質を介して結合した状態のシート状又は塊状の細胞集団である、前記（１）記載の方法。
（８）微小成形体・細胞複合体を媒体として、細胞播種、継代することを特徴とする、前記（１）記載の方法。
（９）２種類以上の細胞をそれぞれ微小成形体・細胞複合体とし、同一目的地（細胞育成環境）に移動し、共培養（Ｃｏ−ｃｕｌｔｕｒｅ）することを特徴とする、前記（１）記載の方法。
（１０）微小成形体・細胞複合体を、２次元的もしくは３次元的集積物とし、３次元細胞集合体とすることを特徴とする、前記（１）記載の方法。
（１１）前記（１）から（１０）のいずれかに記載の方法で作製した、生体に適用可能に前処理された生体移入用細胞入り人工骨単位。
次に、本発明について更に詳細に説明する。
本発明においては、細胞懸濁液は、好適には、カルチャーディッシュ内で培養された細胞を、トリプシン等の細胞剥離剤により剥離、懸濁し、遠心分離によりペレット化し、上記細胞ペレットを新鮮培地に再懸濁することにより調製する。細胞懸濁液の細胞濃度は、１×１０3 〜１×１０7 ｃｅｌｌｓ／ｍｌであることが、微小成形体と細胞の複合化の点で好適である。上記細胞懸濁液は、当該細胞に適した増殖培地で調製しても良いし、分化培地で調製しても良い。しかし、これらに制限されるものではなく、これらと実質的に同効のもの、あるいはこれらと類似のものであれば同様に使用することができる。
本発明においては、細胞懸濁液は、好適には、カルチャーディッシュ内で培養された細胞を、トリプシン等の細胞剥離剤により剥離、懸濁し、遠心分離によりペレット化し、上記細胞ペレットを新鮮培地に再懸濁することにより調製する。細胞懸濁液の細胞濃度は、１×１０3 〜１×１０7 ｃｅｌｌｓ／ｍｌであることが、微小成形体と細胞の複合化の点で好適である。上記細胞懸濁液は、当該細胞に適した増殖培地で調製しても良いし、分化培地で調製しても良い。しかし、これらに制限されるものではなく、これらと実質的に同効のもの、あるいはこれらと類似のものであれば同様に使用することができる。
本発明において、微小成形体は、細胞懸濁液中でピペット攪拌可能な程度に微小、かつシンメトリカルな形状の多孔体であることが望ましい。微小成形体としては、例えば、好適には、直径１ミリ程度の球体で、数十ミクロンのミクロポアと、数百ミクロンの貫通孔又は凹構造を持つものを用いる。上記微小成形体においては、細胞を効果的にトラップすることができる。また、数百ミクロンの貫通孔又は凹構造には、胞細凝集塊を形成することができる。更に、上記の貫通孔内に仕上げられた細胞凝集塊は、ハンドリング等の際にもダメージを受けない。しかし、これらに制限されるものではなく、これらと実質的に同効のもの、あるいはこれらと類似のものであれば同様に使用することができる。
微小成形体と細胞の複合化は、上記細胞懸濁液と、微小成形体を混合することにより行われる。滅菌した微小成形体を細胞懸濁液と混合すると、微小成形体のミクロポア及び貫通孔は液性成分を取り込むが、このとき同時に、懸濁細胞が微小成形体にトラップされる。微小成形体の滅菌方法としては、オートクレーブ滅菌、ガス滅菌、乾熱滅菌、紫外線滅菌が例示されるが、これらに制限されるものではなく、これらと実質的に同効のもの、あるいはこれらと類似のものであれば同様に使用することができる。微小成形体を混合した細胞懸濁液は、必要に応じて、ピペットやボルテックス等により攪拌しても良いし、静置して置いても良い。微小成形体と細胞懸濁液の混合は、１．５〜５０ｍｌの遠心管もしくはクライオチューブのような管状容器で行うことが、上記攪拌方法実施の観点から好適である。しかし、これらに制限されるものではなく、これらと実質的に同効のもの、あるいはこれらと類似のものであれば同様に使用することができる。
上記のように微小成形体と混合した細胞懸濁液を、インキュベータ内に、適宜の期間静置することにより、微小成形体・細胞複合体を得ることができる。この際、混合を行った容器及び培地のままインキュベートを行っても良いし、適宜のタイミングに、微小生体・細胞複合体を新鮮培地の入ったカルチャーディッシュ等に移しても良い。例えば、容量１５mlの遠心管内で、微小成形体と細胞懸濁溶液をピペット混合した後、そのままインキュベータ内で２４時間静置して、新鮮培地の入ったカルチャーディッシュに移動し、適宜の期間インキュベートすることが、微小成形体への細胞定着の観点から好適である（図１）。
上記のように仕上げられた、微小成形体・細胞複合体中の細胞は増殖を続け、微小成形体上でｃｏｎｆｌｕｅｎｔに達する。特に、微小成形体の貫通孔もしくは凹構造においては、細胞は上記構造を充填するように増殖し、細胞凝集塊を形成するに至る。
すなわち、本発明による微小成形体・細胞複合化方法は、好適には、例えば、滅菌した微小成形体を、細胞懸濁液と混合する行程、懸濁細胞を微小成形体に取り込ませる行程、細胞が微小成形体上で増殖する行程、により実施される。これにより、懸濁細胞は、微小成形体上で有用な形態（シート状、凝集塊状）となり、かつハンドリング可能な状態に仕上げられる。しかし、本発明は、これらの方法に制限されるものではない。
すなわち、本発明による微小成形体・細胞複合化方法は、好適には、例えば、滅菌した微小成形体を、細胞懸濁液と混合する行程、懸濁細胞を微小成形体に取り込ませる行程、細胞が微小成形体上で増殖する行程、により実施される。これにより、懸濁細胞は、微小成形体上で有用な形態（シート状、凝集塊状）となり、かつハンドリング可能な状態に仕上げられる。しかし、本発明は、これらの方法に制限されるものではない。
本発明は、適宜の生体材料微小成形体を、所望の治療効果が期待できる注入・充填剤に仕上げる方法を提供するものである。また、本発明は、適宜の方法、例えば、増殖に関して有利なカルチャーディッシュを用いた２次元培養方法、で培養された細胞を、効率的、かつ有効に運用する方法を提供するものである。従来方法によれば、培養細胞は、細胞懸濁液に調整され、様々な用途に適用される。しかし、細胞剥離剤で回収された培養細胞は、特定部位に有効な細胞濃度で留置することができないだけでなく、細胞増殖・分化等に寄与する細胞外マトリックス（ＥＣＭ）をほぼ失っており、例えば、細胞療法、ティッシューエンジニアリング等への適用に適さない。一方、本発明によれば、細胞懸濁液中の細胞を微小成形体に採取することができ、かつＣＰＣ微小成形体上で細胞を有用な形態に仕上げることができる。懸濁細胞を、生体材料微小成形体上で、細胞機能発現に関して有用な形態（シート状、凝集塊状）に仕上げることができる。
微小成形体はハンドリング可能である。従って、微小成形体に採取された細胞は、微小成形体ごと移動することができる。この際、微小成形体の貫通孔もしくは凹構造に採取された細胞は、ピンセット等によるハンドリングに伴うダメージがない。また、微小成形体・細胞複合体を、直感的な操作により集積物とすることにより、三次元培養系を構築することができる。また、複数の細胞を、それぞれ微小成形体・細胞複合体とし、同一目的地に移動し、共培養（Ｃｏ−ｃｕｌｔｕｒｅ）系とすることができる。更に、本発明によれば、治療対象組織に関して治療効果を発揮する細胞を、微小成形体・細胞複合体として、治療対象領域に確実に留置することができるため、効果的な細胞医療、再生医療のツールとして好適に利用し得る。例えば、骨形成に骨への分化を促進した未分化間葉系細胞を、アパタイト微小セラミックスと複合化するこのより、硬組織再生用注入剤とすることができる。
本発明の微小生体・細胞複合化方法は、それを簡便に実施可能な組み合わせ、例えば、管状容器に適宜の量の微小成形体を滅菌梱包したキットとして製品化される。この場合、微小成形体を、適宜の細胞培養環境、例えば、培地や分化培地、と混合して充填物とすることができる。また、本発明では、上記微小成形体に任意の薬剤成分を担持させて充填物とすることができる。これらの任意の薬剤成分として、例えば、抗生物質、ＢＭＰなどが例示される。しかし、これらに制限されるものではなく、適宜の薬剤成分を担持させることができる。
本発明は、攪拌可能に、微小成形体を、硬組織形成関連機能を発現しうる細胞の懸濁液に混合することによって、細胞入り人工骨単位（微小成形体・細胞複合体）に調製することを特徴とする、新しい生体材料の前処理方法に係るものであり、本発明により、（１）生体材料の微小成形体を、所望の治療効果が期待できる注入・充填剤に仕上げることができる、（２）懸濁細胞を、生体材料上で、細胞機能発現に関して有用な形態（シート状、凝集塊状）に仕上げることができる、（３）本発明により形成される微小成形体・細胞複合体を、任意の細胞育成環境に移動することにより、細胞を播種、継代を簡便に行うことができる、（４）本発明により形成される微小成形体・細胞複合体を、直感的な操作により集積物とすることにより、３次元培養系を構築することができる、（５）複数の細胞を、それぞれ微小成形体・細胞複合体とし、同一目的地（細胞育成環境）に移動することにより、共培養（ｃｏ−ｃｕｌｔｕｒｅ）系を構築することができる、（６）本発明は、生体材料の前処理方法、細胞医療、再生医療、細胞培養に好適に利用し得るツールとして有用である、という格別の作用効果が奏される。
次に、実施例に基づいて本発明を具体的に説明するが、本発明は、以下の実施例によって何ら限定されるものではない。
直径５００μｍの貫通孔を設けた直径１．８ｍｍのアパタイト（ＨＡ）ゲル球を、１２００℃で９０分焼結することにより、直径３００μｍの貫通孔を持つ直径１ｍｍのＨＡ微小成形体を得た。焼結後、ＨＡ微小成形体は、９９．５％エタノール中にて１０分間超音波洗浄した。上記の用に製造された、ＨＡ微小成形体においては、貫通孔が毛管凝集現象による吸水機能を発揮する。
骨芽細胞様細胞株（ＭＣ３Ｔ３−Ｅ１）を、α−ＭＥＭベースの増殖培地を用いてカルチャーディッシュ内で５日間培養し、コンフルエントの状態とした。
上記ＭＣ３Ｔ３−Ｅ１を、トリプシン処理によりカルチャーディッシュから剥離し、新鮮培地に懸濁した後に、遠心分離によりペレット化した。遠心分離後の液体部分を除去後、ペレット化したＭＣ３Ｔ３−Ｅ１を１２ｍｌの新鮮分化培地に再懸濁し、細胞濃度１×１０6 ｃｅｌｌｓ／ｍｌの細胞懸濁液とした。
骨芽細胞様細胞株（ＭＣ３Ｔ３−Ｅ１）を、α−ＭＥＭベースの増殖培地を用いてカルチャーディッシュ内で５日間培養し、コンフルエントの状態とした。
上記ＭＣ３Ｔ３−Ｅ１を、トリプシン処理によりカルチャーディッシュから剥離し、新鮮培地に懸濁した後に、遠心分離によりペレット化した。遠心分離後の液体部分を除去後、ペレット化したＭＣ３Ｔ３−Ｅ１を１２ｍｌの新鮮分化培地に再懸濁し、細胞濃度１×１０6 ｃｅｌｌｓ／ｍｌの細胞懸濁液とした。
上記のように調製した細胞懸濁液１ｍｌと、２００℃で２時間乾熱滅菌したＨＡ微小成形体３０個を、容量１．５ｍｌの遠心チューブに入れ、ピペットにより混合し、３７℃、５％ＣＯ2 のインキュベータ内に２４時間静置した。上記作業により、細胞懸濁液中のＭＣ３Ｔ３−Ｅ１を、ＨＡ微小成形体に採取することができた。
上記作業後、遠心チューブ内のＨＡ微小成形体をカルチャーディッシュ内に移動し、増殖培地を用いて、３７℃、５％ＣＯ2 のインキュベータ内に１４４時間静置することにより、ＨＡ微小成形体貫通孔内に、ＭＣ３Ｔ３−Ｅ１凝集塊を形成することができた（図２）。ＨＡ微小成形体上のＭＣ３Ｔ３−Ｅ１量は経時的に増加しており、細胞複合化作業後１６８時間の複合化細胞量は、細胞複合化作業後２４時間の複合化細胞量の１．６倍であった（図３）。ＨＡ微小成形体へのＭＣ３Ｔ３−Ｅ１複合化量は、ＨＡ微小成形体中のＤＮＡ量により比較した。
上記作業後、遠心チューブ内のＨＡ微小成形体をカルチャーディッシュ内に移動し、増殖培地を用いて、３７℃、５％ＣＯ2 のインキュベータ内に１４４時間静置することにより、ＨＡ微小成形体貫通孔内に、ＭＣ３Ｔ３−Ｅ１凝集塊を形成することができた（図２）。ＨＡ微小成形体上のＭＣ３Ｔ３−Ｅ１量は経時的に増加しており、細胞複合化作業後１６８時間の複合化細胞量は、細胞複合化作業後２４時間の複合化細胞量の１．６倍であった（図３）。ＨＡ微小成形体へのＭＣ３Ｔ３−Ｅ１複合化量は、ＨＡ微小成形体中のＤＮＡ量により比較した。
マウス大腿骨から採取した間葉細胞（ＭＳＣ）を、分化培地を用いてカルチャーディッシュ内で７日間培養し、コンフルエントの状態とした。
上記ＭＳＣを、トリプシン処理によりカルチャーディッシュから剥離し、新鮮培地に懸濁した後に、遠心分離によりペレット化した。遠心分離後の液体部分を除去後、ペレット化したＭＳＣを１２ｍｌの新鮮分化培地に再懸濁し、細胞濃度１×１０6 ｃｅｌｌｓ／ｍｌの細胞懸濁液とした。
上記のように調製した細胞懸濁液１ｍｌと、実施例１で作製した滅菌済みＨＡ微小成形体３０個を、容量１．５ｍｌの遠心チューブに入れ、ピペットにより混合し、３７℃、５％ＣＯ2 のインキュベータ内に２４時間静置した。上記作業により、細胞懸濁液中のＭＳＣを、ＨＡ微小成形体に採取することができた。
上記作業後、遠心チューブ内のＨＡ微小成形体をカルチャーディッシュ内に移動し、分化培地を用いて、３７℃、５％ＣＯ2 のインキュベータ内に７２時間静置することにより、ＨＡ微小成形体表面及び貫通孔内に、ＭＳＣレイヤーを形成することができた（図４）。
上記ＭＳＣを、トリプシン処理によりカルチャーディッシュから剥離し、新鮮培地に懸濁した後に、遠心分離によりペレット化した。遠心分離後の液体部分を除去後、ペレット化したＭＳＣを１２ｍｌの新鮮分化培地に再懸濁し、細胞濃度１×１０6 ｃｅｌｌｓ／ｍｌの細胞懸濁液とした。
上記のように調製した細胞懸濁液１ｍｌと、実施例１で作製した滅菌済みＨＡ微小成形体３０個を、容量１．５ｍｌの遠心チューブに入れ、ピペットにより混合し、３７℃、５％ＣＯ2 のインキュベータ内に２４時間静置した。上記作業により、細胞懸濁液中のＭＳＣを、ＨＡ微小成形体に採取することができた。
上記作業後、遠心チューブ内のＨＡ微小成形体をカルチャーディッシュ内に移動し、分化培地を用いて、３７℃、５％ＣＯ2 のインキュベータ内に７２時間静置することにより、ＨＡ微小成形体表面及び貫通孔内に、ＭＳＣレイヤーを形成することができた（図４）。
スプレードライ法により、粒径３０μｍ程度の球状粒子に造粒したＨＡを、直径５００μｍの貫通孔を設けた直径１．８ｍｍのＨＡゲル球に成形し、１２００℃で９０分焼結した。上記作業により、直径３００μｍの貫通孔を持つ直径１ｍｍの多孔質ＨＡ微小成形体を得た。焼結後、多孔質ＨＡ微小成形体は、９９．５％エタノール中にて１０分間超音波洗浄した。上記のように製造された、多孔質ＨＡ微小成形体においては、構成ＨＡ粒子間隙、及び貫通孔が毛管凝集現象による吸水機能を発揮する。
上記のように作製した多孔質ＨＡ微小成形体を、実施例２と同様のプロトコルにより、ＭＳＣと複合化し、３７℃、５％ＣＯ2 のインキュベータ内に７２時間静置することにより、多孔質ＨＡ微小成形体表面及び貫通孔内に、ＭＳＣレイヤーを形成することができた（図５）。更に、ＨＡ球状粒子間隙にＭＳＣをトラップすることができた（図５）。
上記のように作製した多孔質ＨＡ微小成形体を、実施例２と同様のプロトコルにより、ＭＳＣと複合化し、３７℃、５％ＣＯ2 のインキュベータ内に７２時間静置することにより、多孔質ＨＡ微小成形体表面及び貫通孔内に、ＭＳＣレイヤーを形成することができた（図５）。更に、ＨＡ球状粒子間隙にＭＳＣをトラップすることができた（図５）。
実施例１で作製したＨＡ・ＭＣ３Ｔ３−Ｅ１複合体と、実施例２で作製したＨＡ・ＭＳＣ複合体それぞれ８個を交互配置になるようにカルチャーディッシュ上に配置した。その結果、ＭＣ３Ｔ３−Ｅ１とＭＳＣが交互配置に播種された共培養系を作製することができた。
実施例１で作製したＨＡ・ＭＣ３Ｔ３−Ｅ１複合体を、容量１．５ｍｌの遠心チューブ内で２４時間培養することによって、ＨＡ微小成形体がＭＣ３Ｔ３−Ｅ１で架橋されたＨＡ・ＭＣ３Ｔ３−Ｅ１複合体凝集塊に仕上げることができた。上記凝集塊は、ＭＣ３Ｔ３−Ｅ１の３次元培養系として効果的に機能した。
本発明は、攪拌可能に、微小成形体を、硬組織形成関連機能を発現しうる細胞の懸濁液に混合することによって、細胞入り人工骨単位（微小成形体・細胞複合体）に調製することを特徴とする生体材料の前処理方法に係るものであり、本発明により、生体材料の微小成形体を、所望の治療効果が期待できる注入・充填剤に仕上げることができる。また、適宜の方法で培養された細胞を、生体材料と複合化し、細胞機能発現に関して有用な形態（シート状、凝集塊状）に仕上げることができる。また、微小成形体・細胞複合体を任意の細胞育成環境に移動することにより、細胞を播種、継代することができる。また、微小成形体・細胞複合体を、直感的な操作により集積物とすることにより、３次元培養系を構築することができる。更に、本発明によれば、複数の細胞を、それぞれ微小成形体・細胞複合体とし、同一目的地に移動し、共培養（Ｃｏ−ｃｕｌｔｕｒｅ）することができる。本発明は、細胞医療、再生医療、細胞培養に資するツールとして好適に利用し得るものであり、これらの技術分野における新技術の提供・新産業の創出を可能とするものとして有用である。
Claims (11)
- 攪拌可能に、微小成形体を、硬組織形成関連機能を発現しうる細胞の懸濁液に混合することによって、生体に適用可能に前処理された細胞入り人工骨単位を調製する方法であって、
（１）上記細胞を用いて、所定の細胞濃度の細胞懸濁液を調製する、
（２）上記細胞懸濁液に、複数の微小成形体を混合し、懸濁液中の細胞を、微小成形体にトラップさせる、
（３）細胞をトラップした微小成形体を、培養環境ないし細胞分化環境で静置する、
（４）微小成形体にトラップした細胞の一部又は全部が、細胞凝集塊を形成するまで培養して、微小成形体・細胞複合体とする、
（５）上記（１）〜（４）により、生体に適用可能な細胞入り人工骨単位を調製する、
ことを特徴とする、細胞入り人工骨単位の調製方法。 - 微小成形体の体積が、５×１０-4から１×１０3 ｍｍ3 である、請求項１記載の方法。
- 微小成形体が、微小成形体の最長寸法の７０％以下の貫通孔、ディンプル、及び／又は気孔を有する多孔体である、請求項１記載の方法。
- 硬組織形成関連機能を発現しうる細胞が、骨細胞（ｏｓｔｅｏｃｙｔｅ）、骨芽細胞（ｏｓｔｅｏｂｌａｓｔ）、軟骨細胞（ｃｈｏｎｄｒｏｃｙｔｅ）、軟骨細胞（ｃｈｏｎｄｒｏｂｌａｓｔ）、繊維芽細胞（ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔ）、セメント芽細胞（ｃｅｍｅｎｔｏｂｌａｓｔ）、エナメル芽細胞（ａｍｅｌｏｂｌａｓｔ）、血管内皮細胞（ｅｎｄｏｔｈｒｉａｌ ｃｅｌｌｓ）、幹細胞（ｓｔｅｍ ｃｅｌｌｓ）、未分化間葉系細胞（ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌｓ）、ＥＳ細胞（ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌｓ）の群から選択された１種、あるいは２種以上の混合物である、請求項１記載の方法。
- 細胞濃度が、１×１０2 〜１×１０8 ｃｅｌｌｓ／ｍｌである、請求項１記載の方法。
- 培養環境が、ＣＯ2 インキュベータ内に置かれた、増殖培地もしくは分化培地の入った滅菌容器内である、請求項１記載の方法。
- 細胞凝集塊が、複数の細胞が細胞外基質を介して結合した状態のシート状又は塊状の細胞集団である、請求項１記載の方法。
- 微小成形体・細胞複合体を媒体として、細胞播種、継代することを特徴とする、請求項１記載の方法。
- ２種類以上の細胞をそれぞれ微小成形体・細胞複合体とし、同一目的地（細胞育成環境）に移動し、共培養（Ｃｏ−ｃｕｌｔｕｒｅ）することを特徴とする、請求項１記載の方法。
- 微小成形体・細胞複合体を、２次元的もしくは３次元的集積物とし、３次元細胞集合体とすることを特徴とする、請求項１記載の方法。
- 請求項１から１０のいずれかに記載の方法で作製した、生体に適用可能に前処理された生体移入用細胞入り人工骨単位。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2003400924A JP4310433B2 (ja) | 2003-11-28 | 2003-11-28 | 生体材料の前処理方法及び用途 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2003400924A JP4310433B2 (ja) | 2003-11-28 | 2003-11-28 | 生体材料の前処理方法及び用途 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JP2005160596A true JP2005160596A (ja) | 2005-06-23 |
| JP4310433B2 JP4310433B2 (ja) | 2009-08-12 |
Family
ID=34725000
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP2003400924A Expired - Lifetime JP4310433B2 (ja) | 2003-11-28 | 2003-11-28 | 生体材料の前処理方法及び用途 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP4310433B2 (ja) |
Cited By (7)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EP1976972A2 (en) * | 2006-01-24 | 2008-10-08 | Brown University | Cell aggregation and encapsulation device and method |
| EP2080800A1 (en) | 2008-01-21 | 2009-07-22 | GC Corporation | Porous cell scaffold and production method thereof |
| JP2010130929A (ja) * | 2008-12-03 | 2010-06-17 | Univ Of Tokyo | 顆粒型培養骨用培養容器 |
| US8501476B2 (en) | 2009-10-07 | 2013-08-06 | Brown University | Assays and methods for fusing cell aggregates to form proto-tissues |
| US9243278B2 (en) | 2011-09-22 | 2016-01-26 | Brown University | Mechanotransduction by the synergistic action of heterotypic cell interactions |
| US9468680B2 (en) | 2011-09-22 | 2016-10-18 | Brown University | Differential effects of drugs on transport in a multi-layer 3D spheroid model |
| JP2023109846A (ja) * | 2020-03-31 | 2023-08-08 | Ｃｅｌｌ Ｅｘｏｓｏｍｅ Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ株式会社 | 細胞の保存方法 |
-
2003
- 2003-11-28 JP JP2003400924A patent/JP4310433B2/ja not_active Expired - Lifetime
Cited By (11)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EP1976972A2 (en) * | 2006-01-24 | 2008-10-08 | Brown University | Cell aggregation and encapsulation device and method |
| EP1976972A4 (en) * | 2006-01-24 | 2009-10-21 | Univ Brown | APPARATUS AND METHOD FOR CELL AGGREGATION AND SEPARATION |
| US8361781B2 (en) | 2006-01-24 | 2013-01-29 | Brown University | Cell aggregation and encapsulation device and method |
| US9587213B2 (en) | 2006-01-24 | 2017-03-07 | Brown University | Methods and devices for encapsulating cells |
| EP2080800A1 (en) | 2008-01-21 | 2009-07-22 | GC Corporation | Porous cell scaffold and production method thereof |
| JP2010130929A (ja) * | 2008-12-03 | 2010-06-17 | Univ Of Tokyo | 顆粒型培養骨用培養容器 |
| US8501476B2 (en) | 2009-10-07 | 2013-08-06 | Brown University | Assays and methods for fusing cell aggregates to form proto-tissues |
| US9243278B2 (en) | 2011-09-22 | 2016-01-26 | Brown University | Mechanotransduction by the synergistic action of heterotypic cell interactions |
| US9468680B2 (en) | 2011-09-22 | 2016-10-18 | Brown University | Differential effects of drugs on transport in a multi-layer 3D spheroid model |
| JP2023109846A (ja) * | 2020-03-31 | 2023-08-08 | Ｃｅｌｌ Ｅｘｏｓｏｍｅ Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ株式会社 | 細胞の保存方法 |
| JP7546968B2 (ja) | 2020-03-31 | 2024-09-09 | Ｃｅｌｌ Ｅｘｏｓｏｍｅ Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ株式会社 | 細胞の保存方法 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JP4310433B2 (ja) | 2009-08-12 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Ashammakhi et al. | Highlights on advancing frontiers in tissue engineering | |
| Ozbolat et al. | Current advances and future perspectives in extrusion-based bioprinting | |
| Gionet-Gonzales et al. | Engineering principles for guiding spheroid function in the regeneration of bone, cartilage, and skin | |
| Steffens et al. | Update on the main use of biomaterials and techniques associated with tissue engineering | |
| Yin et al. | Hydrogels for large-scale expansion of stem cells | |
| Yuste et al. | Mimicking bone microenvironment: 2D and 3D in vitro models of human osteoblasts | |
| Chiu et al. | Cardiac tissue engineering: current state and perspectives | |
| JP6628416B2 (ja) | 細胞培養方法 | |
| CN102319449B (zh) | 一种基于聚乳酸-羟基乙酸共聚物的生长因子梯度释放微球支架及其制备方法和应用 | |
| Yao et al. | Injectable cell/hydrogel microspheres induce the formation of fat lobule-like microtissues and vascularized adipose tissue regeneration | |
| KR102102153B1 (ko) | 탈세포 조직 기반 세포 봉입 및 배양용 비드, 및 이의 용도 | |
| Feng et al. | Three-dimensional printing of hydrogel scaffolds with hierarchical structure for scalable stem cell culture | |
| Ingavle et al. | Constructing three-dimensional microenvironments using engineered biomaterials for hematopoietic stem cell expansion | |
| JP2014512232A (ja) | 細胞合成粒子 | |
| CN106397819A (zh) | 一种用于调控细胞三维微图案化生长的水凝胶及其制备方法 | |
| Veiga et al. | Silk‐based microcarriers: current developments and future perspectives | |
| JP4310433B2 (ja) | 生体材料の前処理方法及び用途 | |
| Liu et al. | Engineering strategies to achieve efficient in vitro expansion of haematopoietic stem cells: development and improvement | |
| Thangadurai et al. | Emerging perspectives on 3D printed bioreactors for clinical translation of engineered and bioprinted tissue constructs | |
| KR101909328B1 (ko) | 조직 재생 컨스트럭트 및 조직 재생 컨스트럭트의 제조 방법 | |
| Wang et al. | Highly Permeable Gelatin/Poly (lactic acid) Fibrous Scaffolds with a Three-Dimensional Spatial Structure for Efficient Cell Infiltration, Mineralization and Bone Regeneration | |
| Obregón et al. | Bioreactors in tissue engineering | |
| Odedra et al. | Cardiac tissue engineering | |
| Kumar Bokara et al. | Modulation of stem cell differentiation by the influence of nanobiomaterials/carriers | |
| Krishnan et al. | The integration of nanotechnology and biology for cell engineering: promises and challenges |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| A621 | Written request for application examination |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621 Effective date: 20061115 |
|
| A711 | Notification of change in applicant |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A711 Effective date: 20061115 |
|
| A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A821 Effective date: 20061115 |
|
| A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20071002 |
|
| A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20071127 |
|
| A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20080311 |
|
| A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20080509 |
|
| A02 | Decision of refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A02 Effective date: 20080715 |
|
| A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20080912 |
|
| A911 | Transfer to examiner for re-examination before appeal (zenchi) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A911 Effective date: 20081027 |
|
| TRDD | Decision of grant or rejection written | ||
| A01 | Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01 Effective date: 20090413 |
|
| A01 | Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01 |
|
| R150 | Certificate of patent or registration of utility model |
Ref document number: 4310433 Country of ref document: JP Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150 Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150 |
|
| S533 | Written request for registration of change of name |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R313533 |
|
| R350 | Written notification of registration of transfer |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R350 |
|
| EXPY | Cancellation because of completion of term |