JP2005114468A - Manufacturing method of substrate for bioassay using lyophilic processing and substrate for bioassay - Google Patents

Manufacturing method of substrate for bioassay using lyophilic processing and substrate for bioassay Download PDF

Info

Publication number
JP2005114468A
JP2005114468A JP2003346925A JP2003346925A JP2005114468A JP 2005114468 A JP2005114468 A JP 2005114468A JP 2003346925 A JP2003346925 A JP 2003346925A JP 2003346925 A JP2003346925 A JP 2003346925A JP 2005114468 A JP2005114468 A JP 2005114468A
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
substrate
reaction region
bioassay
detection
detection surface
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
JP2003346925A
Other languages
Japanese (ja)
Other versions
JP4617654B2 (en
Inventor
Michihiro Onishi
通博 大西
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Sony Corp
Original Assignee
Sony Corp
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Sony Corp filed Critical Sony Corp
Priority to JP2003346925A priority Critical patent/JP4617654B2/en
Publication of JP2005114468A publication Critical patent/JP2005114468A/en
Application granted granted Critical
Publication of JP4617654B2 publication Critical patent/JP4617654B2/en
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Fee Related legal-status Critical Current

Links

Abstract

<P>PROBLEM TO BE SOLVED: To provide a manufacturing method of a substrate for bioassay capable of reducing the loss of a sample, capable of efficiently performing interaction such as hybridization or the like, and to provide the substrate for bioassay enhanced in the detection precission of interation by efficiently bringing about interaction such as hybridization or the like. <P>SOLUTION: The substrate for bioassay for detecting interaction such as hybridization or the like is manufactured by processing a substrate having a reaction region, which can provide an interaction field between substances, formed thereto by combining (1) a hydrophobicity imparting process for treating the surface of the substrate with a hydrophobic substance to form a hydrophobic surface, (2) a hydrophilizing process for converting a part of the hydrophobic surface to a hydrophilic surface, and (3) a detecting surface forming process for fixing a detection substance to the hydrophilic or hydrophobic surface to form a detection surface in the reaction region. <P>COPYRIGHT: (C)2005,JPO&NCIPI

Description

本発明は、DNAチップ、プロテインチップ等のバイオアッセイ基板に関する。より詳細には、親媒性(親水性、疎水性等)加工を行ったバイオアッセイ用基板に関する。   The present invention relates to a bioassay substrate such as a DNA chip and a protein chip. More specifically, the present invention relates to a bioassay substrate subjected to amphiphilic processing (hydrophilicity, hydrophobicity, etc.).

本発明の主たる従来技術を以下説明する。現在、マイクロアレイ技術によって所定のDNAが微細配列された、いわゆるDNAチップ又はDNAマイクロアレイ(以下、「DNAチップ」と総称。)と呼ばれるバイオアッセイ用の集積基板が、遺伝子の変異解析、SNPs(一塩基多型)分析、遺伝子発現頻度解析等に利用されており、創薬、臨床診断、薬理ジェノミクス、法医学その他の分野において広範囲に活用され始めている。   The main prior art of the present invention will be described below. Currently, integrated substrates for bioassays called DNA chips or DNA microarrays (hereinafter collectively referred to as “DNA chips”), in which predetermined DNA is finely arranged by microarray technology, are used for gene mutation analysis, SNPs (single nucleotides). Polymorphism) analysis, gene expression frequency analysis, etc., and has begun to be widely used in drug discovery, clinical diagnosis, pharmacogenomics, forensic medicine and other fields.

このDNAチップは、ガラス基板やシリコン基板上に多種・多数のDNAオリゴ鎖やcDNA(complementary DNA)等が集積されていることから、ハイブリダイゼーション等の分子間相互反応の網羅的解析が可能となる点が特徴とされている。   Since this DNA chip has a large number of DNA oligo chains and cDNA (complementary DNA) integrated on a glass substrate or silicon substrate, comprehensive analysis of intermolecular interactions such as hybridization becomes possible. It is characterized by dots.

DNAチップによる解析手法の一例を簡潔に説明すれば、ガラス基板やシリコン基板上に固相化されたDNAプローブに対して、細胞、組織等から抽出したmRNAを逆転写PCR反応等によって蛍光プローブdNTPを組み込みながらPCR増幅し、前記基板上においてハイブリダイゼーションを行い、所定の検出器で蛍光測定を行うという手法である。   To briefly explain an analysis method using a DNA chip, a fluorescent probe dNTP is obtained by reverse transcription PCR reaction or the like by extracting mRNA extracted from cells, tissues, etc. with respect to a DNA probe solid-phased on a glass substrate or a silicon substrate. In this method, PCR amplification is carried out while incorporating, hybridization is performed on the substrate, and fluorescence is measured with a predetermined detector.

ここで、DNAチップは二つのタイプに分類できる。第1のタイプは、半導体露光技術を応用したフォトリソグラフィーの技術を用いて、所定の基板上に直接オリゴヌクレオチドを合成していくものであり、アフィメトリクス社(Affymetrix社)によるものが代表的である(例えば、特許文献1参照)。この種のチップは、集積度は高いが、基板上でのDNA合成には限界があって、数十塩基程度の長さである。   Here, DNA chips can be classified into two types. The first type is one in which oligonucleotides are directly synthesized on a predetermined substrate using a photolithographic technique applying a semiconductor exposure technique, and a typical one is by Affymetrix (Affymetrix). (For example, refer to Patent Document 1). Although this type of chip has a high degree of integration, there is a limit to DNA synthesis on the substrate, and the length is about several tens of bases.

第2のタイプは、「スタンフォード方式」とも称されるもので、先割れピンを
用いて、予め用意されたDNAを基板上に分注・固相化していくことによって作製されるものである(例えば、特許文献2参照)。この種のチップは、集積度は前者に比べて低いが、1kb程度のDNA断片を固相化できるという利点がある。
特表平4−505763号報 特表平10−503841号公報
The second type is also referred to as “Stanford method”, and is prepared by dispensing and solidifying a prepared DNA on a substrate using a tip-breaking pin ( For example, see Patent Document 2). This type of chip is less integrated than the former, but has the advantage that a DNA fragment of about 1 kb can be immobilized.
Special table hei 4-505633 report Japanese National Patent Publication No. 10-503841

しかしながら、従来の技術には、以下のような解決すべき課題があった。   However, the conventional techniques have the following problems to be solved.

上記した従来のDNAチップ技術やバイオセンサー技術では、二次元である基板の狭小な反応部において、DNAプローブ等の検出用ヌクレオチド鎖やタンパク質等を固相化(固定化)し、ハイブリダイゼーション反応や抗原抗体反応等の物質間の相互作用を進行させるという技術であることから、空間的に反応生成物の自由度が制限され、専ら標的ヌクレオチド鎖等のブラウン運動に基づいてハイブリダイゼーション等の相互作用をさせていた。このため、従来のDNAチップ技術又はバイオセンサー技術では、相互作用の効率が悪く、反応時間が長いという技術的課題があった。   In the above-described conventional DNA chip technology and biosensor technology, in a narrow reaction part of a two-dimensional substrate, a detection nucleotide chain such as a DNA probe or protein is immobilized (immobilized), and a hybridization reaction or Because it is a technology that promotes interactions between substances such as antigen-antibody reactions, the degree of freedom of reaction products is limited spatially, and interactions such as hybridization are based solely on Brownian motion of the target nucleotide chain, etc. I was letting. For this reason, the conventional DNA chip technology or biosensor technology has a technical problem that the interaction efficiency is low and the reaction time is long.

また、DNAチップ等では、平面上に、検出用ヌクレオチド鎖等を固相化しているため、DNAチップ等のバイオアッセイ用基板を製造する際に、固定化する試料(ヌクレオチド鎖等)の液滴を、基板上の目的の位置にとどまらせておくことが困難であるという問題があった。そのため、バイオアッセイ用基板の製造作業を、短い時間で効率的に行うことは難しく、また、固定化する試料をロスしやすいという課題が生じていた。   In addition, in a DNA chip or the like, since a detection nucleotide chain or the like is solid-phased on a flat surface, a droplet of a sample (nucleotide chain or the like) to be immobilized when a bioassay substrate such as a DNA chip is manufactured. There is a problem that it is difficult to keep the substrate at the target position on the substrate. For this reason, it has been difficult to efficiently perform the production work of the bioassay substrate in a short time, and there has been a problem that it is easy to lose the sample to be immobilized.

さらに、ターゲットとなるヌクレオチド鎖等が含まれた液滴を、相互作用が起こる基板上の反応領域に供給する際においても、ターゲットとなるヌクレオチド鎖等が含まれた液滴を目的の位置(反応領域)にとどまらせておくことが困難であり、ターゲット試料のロスが大きく、効率を悪くする一因ともなっていた。その他、核酸等のターゲット試料を、少ない量しかDNAチップ等に供給できないため、目的の相互作用を検出する精度を上げることが難しかった。   Furthermore, when supplying a droplet containing a target nucleotide chain or the like to a reaction region on a substrate where the interaction occurs, the droplet containing the target nucleotide chain or the like is moved to a target position (reaction). It is difficult to keep it in the region), and the loss of the target sample is large, which is one of the causes of poor efficiency. In addition, since only a small amount of a target sample such as a nucleic acid can be supplied to a DNA chip or the like, it has been difficult to increase the accuracy of detecting a target interaction.

そこで、本発明は、試料のロスが少なく、ハイブリダイゼーション等の相互作用を効率的に行うことができるバイオアッセイ用基板を製造する方法を提供することを主な目的とする。また、ハイブリダイゼーション等の相互作用を効率的に起こし、相互作用の検出精度を高めたバイオアッセイ用基板を提供することを目的とする。   Accordingly, the main object of the present invention is to provide a method for producing a substrate for bioassay that can cause an interaction such as hybridization efficiently with little loss of a sample. It is another object of the present invention to provide a bioassay substrate that efficiently raises interactions such as hybridization and has improved interaction detection accuracy.

上記の技術的課題を解決するために、本発明では、以下の手段を提供する。   In order to solve the above technical problem, the present invention provides the following means.

まず、物質間の相互作用の場を提供できる反応領域が形成された基板に、次の(1)から(3)の工程を組み合わせて加工することによって、相互作用を検出するバイオアッセイ用基板を製造する方法を提供する。   First, a bioassay substrate for detecting an interaction is formed by processing a substrate on which a reaction region capable of providing an interaction field between substances is formed by combining the following steps (1) to (3). A method of manufacturing is provided.

(1)基板表面を疎水性物質で処理して疎水面を形成する疎水化工程。   (1) A hydrophobization step of forming a hydrophobic surface by treating the substrate surface with a hydrophobic substance.

(2)疎水面の一部を親水面に変換する親水化工程。   (2) A hydrophilization step in which part of the hydrophobic surface is converted to a hydrophilic surface.

(3)親水面又は疎水面に検出用物質を固定化して、反応領域中に検出用表面を形成する検出用表面形成工程。   (3) A detection surface forming step in which a detection substance is immobilized on a hydrophilic surface or a hydrophobic surface to form a detection surface in the reaction region.

この三つの工程を適宜組み合わせることにより、バイオアッセイ用基板上の各領域を、目的に応じて、親水面にしたり、疎水面にしたりすることができる。   By appropriately combining these three steps, each region on the bioassay substrate can be made a hydrophilic surface or a hydrophobic surface depending on the purpose.

例えば、(2)の親水化工程により、反応領域の全域を親水面に変換することにより、反応領域が親水面になり、基板上のそれ以外の部分(非反応領域)が疎水面になるように、バイオアッセイ用基板を製造することができる。   For example, by converting the entire reaction region to a hydrophilic surface by the hydrophilization process of (2), the reaction region becomes a hydrophilic surface, and the other part (non-reactive region) on the substrate becomes a hydrophobic surface. Furthermore, a bioassay substrate can be manufactured.

バイオアッセイに用いるヌクレオチド鎖、タンパク質等の生体物質は、親水性である場合がほとんどであるため、これらの生体物質は、水溶液等として、基板に滴下・供給される。従って、基板上の反応領域が親水面に、非反応領域が疎水面になるように、バイオアッセイ用基板を製造することにより、生体物質を溶解した水溶液等を基板上に滴下・供給する際に、この水溶液等を、反応領域内にとどまらせ、基板上の非反応領域にこぼれないようにすることができる。   Since biological materials such as nucleotide chains and proteins used in bioassays are mostly hydrophilic, these biological materials are dropped and supplied to the substrate as an aqueous solution or the like. Therefore, by manufacturing a bioassay substrate so that the reaction region on the substrate is a hydrophilic surface and the non-reaction region is a hydrophobic surface, when an aqueous solution or the like in which a biological material is dissolved is dropped and supplied onto the substrate. The aqueous solution or the like can remain in the reaction region so that it does not spill into the non-reaction region on the substrate.

また、上記の方法は、基板上の反応領域内の各部分を、目的に応じて、適宜、親水面にしたり、疎水面にしたりすることもできる。例えば、(2)の親水化工程により、反応領域中の検出用表面部分のみを親水面に変換したり、逆に、反応領域中の検出用表面以外の部分(非検出用表面)のみを親水面に変換したりすることもできる。このように、反応領域内に、親水面と疎水面を設けることにより、バイオアッセイ用基板製造段階において使用する親水性又は疎水性の溶液を目的の場所に維持させたり、反応領域内の目的の場所にヌクレオチド鎖等の検出用物質を固定化したり、等が可能になる。   In the above method, each part in the reaction region on the substrate can be appropriately made a hydrophilic surface or a hydrophobic surface depending on the purpose. For example, in the hydrophilization step (2), only the detection surface portion in the reaction region is converted to a hydrophilic surface, or conversely, only the portion other than the detection surface (non-detection surface) in the reaction region is parented. It can also be converted to the water surface. Thus, by providing a hydrophilic surface and a hydrophobic surface in the reaction region, the hydrophilic or hydrophobic solution used in the bioassay substrate manufacturing stage can be maintained at the target location, or the target region in the reaction region can be maintained. It becomes possible to immobilize a detection substance such as a nucleotide chain at a location.

(1)の基板表面を疎水性物質で処理して疎水面を形成する疎水化工程は、例えば、疎水性物質であるアルキルシラン(R−Si−X1,X2,X3、R:アルキル基(不飽和基を含んでいてもよい)、Xn:Cl,OR)を、基板の表面に固定化することにより、行うことができる。   The hydrophobization step of forming the hydrophobic surface by treating the substrate surface of (1) with a hydrophobic substance is, for example, an alkylsilane (R—Si—X1, X2, X3, R: alkyl group (non-hydrophobic) that is a hydrophobic substance. (Which may contain a saturated group), Xn: Cl, OR) may be immobilized on the surface of the substrate.

(2)の疎水面の一部を親水面に変換する親水化工程は、疎水面に水酸基を形成する反応により、簡易に、行うことができる。例えば、疎水面が、前記したアルキルシランで形成されている場合、アルキルシランに、酸素存在下で紫外線を照射することにより、アルキルシランのアルキル基又はケイ素に、水酸基を付加することができる。   The hydrophilizing step (2) for converting a part of the hydrophobic surface into a hydrophilic surface can be easily performed by a reaction for forming a hydroxyl group on the hydrophobic surface. For example, when the hydrophobic surface is formed of the above-described alkylsilane, a hydroxyl group can be added to the alkyl group or silicon of the alkylsilane by irradiating the alkylsilane with ultraviolet light in the presence of oxygen.

(3)の親水面又は疎水面に検出用物質を固定化して、反応領域中に検出用表面を形成する検出用表面形成工程は、検出用物質(ヌクレオチド鎖、タンパク質等)に応じて、適宜、目的に応じた反応を用いることにより行うことができる。   The detection surface forming step of immobilizing the detection substance on the hydrophilic surface or the hydrophobic surface in (3) to form a detection surface in the reaction region is appropriately performed according to the detection substance (nucleotide chain, protein, etc.). The reaction can be performed according to the purpose.

例えば、反応領域内の検出用表面部位が、アルキルシランに水酸基が付加して親水面になっている場合、水酸基に親水性溶媒中のメルカプトアルキルシラン(HS−R−Si−X1,X2,X3)を接触させ、メルカプト基に、予めメルカプト基を末端に付加した検出用物質(ヌクレオチド鎖等)を反応させてジスルフィド結合を形成し、ジスルフィド結合を介して検出用物質を固定化することにより、検出用物質を固定化したバイオアッセイ用基板を製造することができる。   For example, when the surface region for detection in the reaction region has a hydrophilic surface by adding a hydroxyl group to alkylsilane, a mercaptoalkylsilane (HS-R-Si-X1, X2, X3 in a hydrophilic solvent is added to the hydroxyl group. ), And reacting a mercapto group with a detection substance (such as a nucleotide chain) previously added with a mercapto group at the end to form a disulfide bond, and immobilizing the detection substance via the disulfide bond, A bioassay substrate having a detection substance immobilized thereon can be produced.

また、疎水面に疎水性溶媒中のメルカプトアルキルシランを接触させてメルカプト基を付加し、そのメルカプト基と、予めメルカプト基を備える検出用物質を反応させてジスルフィド結合を形成し、ジスルフィド結合を介して検出用物質を固定化することにより、検出用物質を固定化したバイオアッセイ用基板を製造することもできる。   Further, a mercaptoalkylsilane in a hydrophobic solvent is brought into contact with the hydrophobic surface to add a mercapto group, and the mercapto group is reacted with a detection substance having a mercapto group in advance to form a disulfide bond, via a disulfide bond. By immobilizing the detection substance, a bioassay substrate on which the detection substance is immobilized can be produced.

以上の方法により、バイオアッセイ用基板の反応領域内に、ヌクレオチド鎖等の検出用物質を固定化することができる。このバイオアッセイ用基板の反応領域内に、ターゲットとなる物質(ヌクレオチド鎖等)を滴下・供給することにより、相互作用(ハイブリダイゼーション等)が起き、目的の物質を検出・測定することができる。   By the above method, a detection substance such as a nucleotide chain can be immobilized in the reaction region of the bioassay substrate. By dropping and supplying a target substance (such as a nucleotide chain) into the reaction region of the bioassay substrate, an interaction (such as hybridization) occurs, and the target substance can be detected and measured.

続いて、前記方法を、適宜用いて製造されたバイオアッセイ用基板を提供する。   Then, the board | substrate for bioassay manufactured using the said method suitably is provided.

まず、物質間の相互作用の場を提供できる反応領域と、反応領域中に形成された検出用表面と、を少なくとも備える基板であって、検出用表面を含む反応領域の全域が親水性であるバイオアッセイ用基板を提供する。このバイオアッセイ用基板は、検出用表面を含む反応領域が親水性で、それ以外の部分(非反応領域)が疎水性であるため、親水性である試料溶液(ヌクレオチド鎖等を溶解した水溶液)を反応領域内に滴下・供給した際に、試料溶液が反応領域内にとどまり、非反応領域にこぼれないという作用を有する。従って、試料のロスを少なくすることができ、相互作用の効率を高めることができる。   First, a substrate having at least a reaction region capable of providing an interaction field between substances and a detection surface formed in the reaction region, and the entire reaction region including the detection surface is hydrophilic. A substrate for bioassay is provided. This bioassay substrate has a hydrophilic sample solution (an aqueous solution in which nucleotide chains and the like are dissolved) because the reaction region including the detection surface is hydrophilic and the other part (non-reaction region) is hydrophobic. When the sample solution is dropped and supplied into the reaction region, the sample solution stays in the reaction region and does not spill into the non-reaction region. Therefore, the loss of the sample can be reduced, and the interaction efficiency can be increased.

また、物質間の相互作用の場を提供できる反応領域と、反応領域中に形成された検出用表面と、を少なくとも備える基板であって、反応領域の検出用表面を除く領域が親水性であるバイオアッセイ用基板を提供する。このバイオアッセイ用基板は、反応領域内の検出用表面を除く領域(非検出用表面)が親水性であるため、相互作用(ハイブリダイゼーション等)を起こした後、不要物質(遊離物質又は/及び誤相互作用物質等)を、非検出用表面に吸着させる作用を持つ。従って、不要物質等が、再び、検出用表面の周辺領域に戻ってしまうことを防止し、相互作用の検出効率を高めることができる。   Further, the substrate includes at least a reaction region capable of providing an interaction field between substances and a detection surface formed in the reaction region, and the region excluding the detection surface of the reaction region is hydrophilic. A substrate for bioassay is provided. In this bioassay substrate, since the region (non-detection surface) except for the detection surface in the reaction region is hydrophilic, after causing an interaction (hybridization etc.), an unnecessary substance (free substance or / and It acts to adsorb misinteracting substances, etc.) to the non-detection surface. Therefore, unnecessary substances and the like can be prevented from returning again to the peripheral region of the detection surface, and the interaction detection efficiency can be increased.

前記の基板は、さらに、反応領域の中央位置に設けられた検出用表面と、検出用表面の両脇に形成された親水面と、それぞれが各親水面の外側に配置され、反応領域を挟むように対向する少なくとも一対の電極と、を有する構成とすることができる。この電極を設置することにより、検出用表面の近傍に存在する不要物質を誘電泳動によって親水面側に引き寄せることができる。検出用表面の両脇に形成された親水面は、前記のとおり、相互作用しなかった不要物質(遊離物質又は/及び誤相互作用物質等)を吸着する作用があるため、誘電泳動によって親水面側に引き寄せられた遊離物質等を親水面に吸着させることにより、さらに効率的に、不要物質等が、再び、検出用表面の周辺領域に戻ってしまうことを防止し、相互作用の検出効率を高めることができる。   The substrate is further provided with a detection surface provided at a central position of the reaction region, a hydrophilic surface formed on both sides of the detection surface, and each of which is disposed outside each hydrophilic surface and sandwiches the reaction region. Thus, it can be configured to have at least a pair of electrodes facing each other. By installing this electrode, unnecessary substances existing in the vicinity of the detection surface can be attracted to the hydrophilic surface side by dielectrophoresis. As described above, the hydrophilic surfaces formed on both sides of the detection surface have an action of adsorbing unnecessary substances that have not interacted (such as free substances and / or erroneously interacting substances). By adsorbing free substances drawn to the side to the hydrophilic surface, it is possible to more efficiently prevent unnecessary substances from returning to the peripheral area of the detection surface again, thereby improving the interaction detection efficiency. Can be increased.

さらに、物質間の相互作用の場を提供できる反応領域と、反応領域中に形成された検出用表面と、を少なくとも備える基板であって、反応領域の検出用表面部分のみが親水性であり、他の反応領域部分は疎水性であるバイオアッセイ用基板を提供する。反応領域内の検出用表面が親水性であり、反応領域内のその他の部分(非検出用表面)は疎水性であるため、ヌクレオチド鎖等の試料を溶解した水溶液は、検出用表面にのみとどまり、非検出用表面には移動しない。従って、ヌクレオチド鎖等の物質が検出用表面の周辺にとどまるため、相互作用(ハイブリダイゼーション等)を促進し、相互作用の検出効率を高めることができる。   Furthermore, the substrate comprises at least a reaction region capable of providing an interaction field between substances and a detection surface formed in the reaction region, and only the detection surface portion of the reaction region is hydrophilic, The other reaction region portion provides a bioassay substrate that is hydrophobic. Since the detection surface in the reaction region is hydrophilic and the other part (non-detection surface) in the reaction region is hydrophobic, the aqueous solution in which the sample such as nucleotide chain is dissolved stays only on the detection surface. It does not move to the non-detection surface. Therefore, since substances such as nucleotide chains remain around the detection surface, interaction (hybridization or the like) can be promoted and the detection efficiency of the interaction can be increased.

その他、物質間の相互作用の場を提供できる反応領域と、反応領域中に形成された検出用表面と、を少なくとも備える第1基板と、第1基板に重ね合わされる第2基板と、を備え、第2基板の反応領域に臨む内面領域が親水性であるバイオアッセイ用基板を提供する。第2基板を第1基板上に重ね合わせることにより、第1基板表面から裏面方向に窪んだ形状をしている反応領域に蓋をすることができるため、反応領域内の試料等を融解した緩衝液等の水溶液を、反応領域内に確実に保持することが可能になる。相互作用等の反応時には、反応領域内には、試料等を溶解した水溶液を容れる場合が多いので、第2基板の反応領域に臨む内面領域は、親水性であるほうがよい。   In addition, a first substrate including at least a reaction region capable of providing an interaction field between substances, a detection surface formed in the reaction region, and a second substrate superimposed on the first substrate. Provided is a bioassay substrate in which the inner surface region facing the reaction region of the second substrate is hydrophilic. By superposing the second substrate on the first substrate, it is possible to cover the reaction region that is recessed from the front surface of the first substrate to the back surface, so that the buffer in which the sample in the reaction region is melted An aqueous solution such as a liquid can be reliably held in the reaction region. At the time of reaction such as interaction, since an aqueous solution in which a sample or the like is dissolved is often contained in the reaction region, the inner surface region facing the reaction region of the second substrate should be hydrophilic.

続いて、物質間の相互作用の場を提供できる反応領域と、反応領域中に形成された検出用表面と、を少なくとも備える基板であって、反応領域の検出用表面部分のみが親水性であり、他の反応領域部分は疎水性であるバイオアッセイ用基板を用いるバイオアッセイ方法であって、反応領域の疎水性領域に対して、検出用表面に固定化された検出用物質と相互作用を示す標的物質を含有する水溶液を滴下することを特徴とするバイオアッセイ方法を提供する。このバイオアッセイ方法の場合、基板表面の反応領域の検出用表面が親水性で、反応領域内のその他の部分(非検出用表面)が疎水性であるため、標的物質を含有する水溶液を非検出用表面に滴下しても、すぐに親水性である検出用表面に移動し集まる。従って、標的物質を含有する水溶液が、検出用物質が固定化された検出用表面に保持されやすくなるため、相互作用を効率的に検出・測定することができる。また、検出用物質が固定化された検出用表面に、直接、標的物質を含有する水溶液を滴下しなくてもよいため、滴下による物理的力によって、検出用物質が傷んだり、固定化がはずれて流されてしまったり等の、弊害を除去することができる。   Subsequently, the substrate includes at least a reaction region capable of providing an interaction field between substances and a detection surface formed in the reaction region, and only the detection surface portion of the reaction region is hydrophilic. The bioassay method using the bioassay substrate in which the other reaction region portion is hydrophobic, and exhibits an interaction with the detection substance immobilized on the detection surface with respect to the hydrophobic region of the reaction region. There is provided a bioassay method characterized by dripping an aqueous solution containing a target substance. In the case of this bioassay method, the detection surface of the reaction region on the substrate surface is hydrophilic and the other part (non-detection surface) in the reaction region is hydrophobic, so the aqueous solution containing the target substance is not detected. Even if it is dropped on the surface for detection, it immediately moves to the surface for detection and is collected. Therefore, since the aqueous solution containing the target substance is easily held on the detection surface on which the detection substance is immobilized, the interaction can be efficiently detected and measured. In addition, since it is not necessary to drop the aqueous solution containing the target substance directly on the detection surface on which the detection substance is immobilized, the detection substance is damaged or the fixation is lost due to the physical force of the dropping. It is possible to eliminate harmful effects such as being washed away.

なお、本発明において、相互作用とは、ハイブリダイゼーション、抗原抗体反応、酵素反応等、検出用物質と標的物質が何らかの反応を引き起こすことをいう。検出用物質とは、DNA等のヌクレオチド鎖、タンパク質等の相互作用する複数の物質のうち、バイオアッセイ基板の反応領域内に固定化したほうの物質をいう。標的物質とは、DNA等のヌクレオチド鎖、タンパク質等の相互作用する複数の物質のうち、検出用物質が固定化されたバイオアッセイ基板の反応領域内に、滴下・供給するほうの物質をいう。   In the present invention, the interaction means that the detection substance and the target substance cause some kind of reaction such as hybridization, antigen-antibody reaction, enzyme reaction and the like. The substance for detection refers to a substance immobilized in a reaction region of a bioassay substrate among a plurality of interacting substances such as a nucleotide chain such as DNA and a protein. A target substance refers to a substance that is dropped and supplied into a reaction region of a bioassay substrate on which a detection substance is immobilized, among a plurality of interacting substances such as a nucleotide chain such as DNA and a protein.

本発明によって奏される効果は、以下の通りである。   The effects produced by the present invention are as follows.

本発明により、基板表面の親媒性(親水性、疎水性)を制御することができる。   According to the present invention, the amphiphilicity (hydrophilicity and hydrophobicity) of the substrate surface can be controlled.

バイオアッセイ用基板の製造工程において、目的に応じて、適宜、基板の各領域の親媒性を設定、変更することができる。このことによって、バイオアッセイ用基板の製造工程の際に、親水性、疎水性の溶液を両方とも使用することができ、また、目的の領域のみに反応を起こさせることが可能となる。   In the manufacturing process of the bioassay substrate, the amphiphilicity of each region of the substrate can be appropriately set and changed according to the purpose. This makes it possible to use both hydrophilic and hydrophobic solutions in the manufacturing process of the bioassay substrate, and to cause a reaction only in the target region.

疎水性物質であるアルキルシラン等の表面処理剤と紫外線照射等の親水化手段を、適宜、調節して用いることにより、基板の反応領域内の検出用表面を任意に設定でき、また、簡単な工程で、検出用物質を固定化することができる。   By appropriately adjusting the surface treatment agent such as alkylsilane, which is a hydrophobic substance, and hydrophilic means such as ultraviolet irradiation, the surface for detection in the reaction region of the substrate can be arbitrarily set, and simple In the process, the detection substance can be immobilized.

各領域の親媒性を制御することにより、生体分子等を融解した水溶液を、目的の場所に移動して保持させることができる。   By controlling the amphiphilicity of each region, an aqueous solution in which biomolecules and the like are melted can be moved and held at a target location.

本発明に係るバイオアッセイ用基板は、目的の相互作用を、少ない試料で、高精度に検出・測定することができる。   The bioassay substrate according to the present invention can detect and measure a target interaction with a small number of samples with high accuracy.

以下、本発明を実施するための好適な形態について、添付図面を参照にしながら説明する。   DESCRIPTION OF EXEMPLARY EMBODIMENTS Hereinafter, preferred embodiments for carrying out the invention will be described with reference to the accompanying drawings.

図1は、基板1の反応領域12にヌクレオチド鎖Nを固定化するまでの一連の工程を示した図である。図1Aに示すとおり、基板1の表面11には、表面11から基板1の裏面方向(図面下方向)に窪んだ反応領域12が集積している。そして、反応領域12内には、ヌクレオチド鎖Nを固定化する検出用表面13と、それ以外の部分14(非検出用表面)がある。検出用表面13は、反応領域12の中央に位置する必要はなく、反応領域12内であれば、目的に応じて、適宜、場所を設定することができる。基板1の表面11の反応領域12以外の部分は、非反応領域15とする。なお、基板1は、シリカ又は酸化シリコン、酸化物表面を持つ金属等よりなる表面を有するものを用いることができる。   FIG. 1 is a diagram showing a series of steps until the nucleotide chain N is immobilized on the reaction region 12 of the substrate 1. As shown in FIG. 1A, reaction regions 12 that are recessed from the front surface 11 toward the back surface of the substrate 1 (downward in the drawing) are accumulated on the front surface 11 of the substrate 1. In the reaction region 12, there are a detection surface 13 for immobilizing the nucleotide chain N and another portion 14 (non-detection surface). The detection surface 13 does not need to be located at the center of the reaction region 12, and can be appropriately set according to the purpose as long as it is within the reaction region 12. A portion other than the reaction region 12 on the surface 11 of the substrate 1 is defined as a non-reaction region 15. As the substrate 1, a substrate having a surface made of silica, silicon oxide, metal having an oxide surface, or the like can be used.

まず、図1Aに示すとおり、基板1の表面11全体に、アルキルシラン(符号Aで示す)等のアルキル基を持つカップリング剤の溶液を用いて、アルキルシランAを固定化する。アルキルシランAは疎水性物質であるので、基板1の表面11は、全て疎水面を形成する(疎水性化)。   First, as shown in FIG. 1A, alkylsilane A is immobilized on the entire surface 11 of the substrate 1 using a solution of a coupling agent having an alkyl group such as alkylsilane (indicated by symbol A). Since alkylsilane A is a hydrophobic substance, the surface 11 of the substrate 1 forms a hydrophobic surface (hydrophobization).

次に、ヌクレオチド鎖Nを固定化したくない領域(非検出用表面14及び非反応領域15)を、紫外線Uを吸収又は反射する材質のマスク2で覆った後、大気中又は酸素雰囲気下で紫外線Uを照射し、基板1表面11のマスク2で覆われていない部分(検出用表面13)のみを、水酸化する。これにより、アルキルシランAのR基又はケイ素に水酸基(−OH)が付加されるため、図1Bに示すとおり、紫外線U照射された部分(検出用表面13)だけ、親水面に変換される(親水性化)。   Next, after covering the region (the non-detection surface 14 and the non-reactive region 15) where the nucleotide chain N is not to be immobilized with the mask 2 made of a material that absorbs or reflects the ultraviolet ray U, the ultraviolet ray is exposed in the air or in an oxygen atmosphere U is irradiated, and only the portion of the surface 11 of the substrate 1 that is not covered with the mask 2 (detection surface 13) is hydroxylated. As a result, a hydroxyl group (—OH) is added to the R group or silicon of alkylsilane A, so that only the portion irradiated with ultraviolet U (detection surface 13) is converted to a hydrophilic surface as shown in FIG. 1B ( Hydrophilization).

なお、以上の工程を用いることにより、基板1の表面11に集積された全ての反応領域12内に、適宜、疎水面又は/及び親水面を形成することが出来る。例えば、マスクで覆う部分を適宜変更して紫外線U照射を行うことにより、反応領域12の全域を親水面に変換して、非反応領域15を疎水面としたり(図示せず)、反応領域12内の非検出用表面14のみを、親水面に変換し、検出用表面13は、疎水面とする構成にしたり(図示せず)、することもできる。   In addition, by using the above steps, a hydrophobic surface and / or a hydrophilic surface can be appropriately formed in all the reaction regions 12 accumulated on the surface 11 of the substrate 1. For example, by appropriately changing the portion covered with the mask and performing ultraviolet ray U irradiation, the entire reaction region 12 is converted to a hydrophilic surface, and the non-reactive region 15 is made a hydrophobic surface (not shown). Only the non-detection surface 14 can be converted into a hydrophilic surface, and the detection surface 13 can be configured as a hydrophobic surface (not shown).

次に、上記の工程により表面の一部が水酸化された基板1を、メルカプトアルキルシラン水溶液に浸漬し、検出用表面13にある水酸基(−OH)をメルカプト基(−SH)に結合させる。これにより、基板1表面11の中で、水酸基(−OH)が付加した領域(親水面)のみに、メルカプト基(−SH)が付加される(図1C参照)。   Next, the substrate 1 whose surface has been partially hydroxylated by the above-described step is immersed in an aqueous mercaptoalkylsilane solution to bond the hydroxyl group (—OH) on the detection surface 13 to the mercapto group (—SH). Thereby, a mercapto group (-SH) is added only to the area | region (hydrophilic surface) to which the hydroxyl group (-OH) was added in the board | substrate 1 surface 11 (refer FIG. 1C).

そして、予め片側の末端にメルカプト基(−SH)を結合させたヌクレオチド鎖Nの溶液に、表面11にメルカプト基の付加した基板1を浸漬すると、メルカプト基同士のジスルフィド結合により、目的のヌクレオチド鎖Nが、基板1表面11の検出用表面13に固定される(図1D参照)。   Then, when the substrate 1 with the mercapto group added to the surface 11 is immersed in a solution of the nucleotide chain N in which a mercapto group (—SH) is previously bonded to one end, a target nucleotide chain is obtained by disulfide bonding between the mercapto groups. N is fixed to the detection surface 13 of the substrate 1 surface 11 (see FIG. 1D).

図2及び図3は、バイオアッセイ用基板の製造工程を示した断面模式図である。基板1の表面11には、裏面方向(図面下方向)に窪んだ反応領域12が集積している。   2 and 3 are schematic cross-sectional views showing the manufacturing process of the bioassay substrate. On the front surface 11 of the substrate 1, reaction regions 12 that are recessed in the rear surface direction (downward in the drawing) are accumulated.

以下、図2を用いて、まず、メルカプトアルキルシランの水系溶液を用いたバイオアッセイ用基板の製造工程について説明する。図1と同様に、反応領域12内にある、ヌクレオチド鎖Nを固定化する領域を検出用表面13と、それ以外の領域を非検出用表面14とし、また、基板1の表面11の反応領域12以外の部分を非反応領域15とする。   Hereinafter, a manufacturing process of a bioassay substrate using an aqueous solution of mercaptoalkylsilane will be described with reference to FIG. As in FIG. 1, the region in the reaction region 12 where the nucleotide chain N is immobilized is the detection surface 13, and the other region is the non-detection surface 14, and the reaction region on the surface 11 of the substrate 1. A portion other than 12 is defined as a non-reactive region 15.

基板1の全面をアルキルシランで疎水化したのち、非検出用表面14及び非反応領域15を、前記と同様にマスクで覆って、紫外線Uを照射することにより、検出用表面13のみに水酸基(−OH)が付加し、親水化する。これにより、検出用表面13が親水性となり、非検出用表面14と非反応領域15は疎水性となる(図2A参照)。   After the entire surface of the substrate 1 is hydrophobized with alkylsilane, the non-detection surface 14 and the non-reactive region 15 are covered with a mask in the same manner as described above, and irradiated with ultraviolet rays U, so that only the detection surface 13 has a hydroxyl group ( -OH) is added to make it hydrophilic. Thereby, the detection surface 13 becomes hydrophilic, and the non-detection surface 14 and the non-reactive region 15 become hydrophobic (see FIG. 2A).

次に、エタノールと水系の溶媒に溶解したメルカプトアルキルシランを、反応領域12中に滴下すると、検出用表面13に付加した水酸基(−OH)に、メルカプトアルキルシランが結合する。   Next, when mercaptoalkylsilane dissolved in ethanol and an aqueous solvent is dropped into the reaction region 12, the mercaptoalkylsilane is bonded to the hydroxyl group (—OH) added to the detection surface 13.

次に、メルカプトアルキルシラン溶液を洗浄して除去したのち、検出用表面13及び非反応領域15にマスクをして、紫外線Uを照射することにより、非検出用表面14に水酸基(−OH)が付加して親水性化する。以上の工程により、検出用表面13は、メルカプト基(−SH)が付加し、非検出用表面14は、親水性となり、非反応領域15は、疎水性となる(図2B)。   Next, after washing and removing the mercaptoalkylsilane solution, the detection surface 13 and the non-reactive region 15 are masked and irradiated with ultraviolet rays U, whereby hydroxyl groups (—OH) are formed on the non-detection surface 14. Add to make it hydrophilic. Through the above steps, the detection surface 13 is added with a mercapto group (-SH), the non-detection surface 14 becomes hydrophilic, and the non-reactive region 15 becomes hydrophobic (FIG. 2B).

次に、予め片側の末端にメルカプト基(−SH)を結合させたヌクレオチド鎖Nの溶液を、反応領域12に滴下する。これにより、検出用表面13のメルカプト基(−SH)とヌクレオチド鎖Nに付加されたメルカプト基がジスルフィド結合し、ヌクレオチド鎖Nが、検出用表面13に固定化される(図2C)。   Next, a solution of a nucleotide chain N in which a mercapto group (—SH) is bonded to one end in advance is dropped into the reaction region 12. Thereby, the mercapto group (-SH) on the detection surface 13 and the mercapto group added to the nucleotide chain N are disulfide-bonded, and the nucleotide chain N is immobilized on the detection surface 13 (FIG. 2C).

以上により、基板1の表面12上に集積した反応領域12に、ヌクレオチド鎖Nが固定化され、バイオアッセイ用基板(DNAチップ)の製造工程が終了する。そして、そのバイオアッセイ用基板1の反応領域12に、ターゲットとなるヌクレオチド鎖N’を溶解した水溶液を滴下、供給することにより、検出用表面13に固定化されたヌクレオチド鎖Nと、ターゲットとなるヌクレオチド鎖N’が相互作用(ハイブリダイゼーション)し、目的のターゲットとなるヌクレオチド鎖N’を検出、測定することができる。   Thus, the nucleotide chain N is immobilized on the reaction region 12 accumulated on the surface 12 of the substrate 1, and the manufacturing process of the bioassay substrate (DNA chip) is completed. Then, by dropping and supplying an aqueous solution in which the target nucleotide chain N ′ is dissolved to the reaction region 12 of the bioassay substrate 1, the target becomes the nucleotide chain N immobilized on the detection surface 13 and the target. The nucleotide chain N ′ interacts (hybridizes), and the target nucleotide chain N ′ can be detected and measured.

なお、非反応領域15が疎水性になっているので、ヌクレオチド鎖N又はN’を溶解した水溶液は、滴下・供給した際に、親水性である反応領域12内にとどまり、疎水性の非反応領域15にこぼれない。従って、本発明により、より少ない量の核酸水溶液で、十分かつ確実に、核酸を固定化したり、相互作用を検出・測定したりすることができる。また、基板1又は反応領域12内に、適宜、目的に応じて、親水性の領域と疎水性の領域を設けることにより、各種溶液を、供給したい領域に誘導することが可能となる。その他、反応領域12の親水性を維持するために、中性の界面活性剤を用いてもよい。   Since the non-reactive region 15 is hydrophobic, the aqueous solution in which the nucleotide chain N or N ′ is dissolved stays in the hydrophilic reaction region 12 when dropped or supplied, and the hydrophobic non-reactive region Do not spill into area 15. Therefore, according to the present invention, it is possible to immobilize a nucleic acid and to detect and measure an interaction sufficiently and reliably with a smaller amount of a nucleic acid aqueous solution. In addition, by appropriately providing a hydrophilic region and a hydrophobic region in the substrate 1 or the reaction region 12 according to the purpose, various solutions can be guided to the region to be supplied. In addition, in order to maintain the hydrophilicity of the reaction region 12, a neutral surfactant may be used.

続いて、図3を用いて、メルカプトアルキルシランの、トルエン等の疎水性溶液を用いたバイオアッセイ用基板の製造工程について、以下に説明する。   Subsequently, a manufacturing process of a bioassay substrate using a hydrophobic solution of mercaptoalkylsilane such as toluene will be described below with reference to FIG.

まず、基板1の全面を、アルキルシランで疎水化したのち、検出用表面13をマスクし、非検出用表面14と非反応領域15に、紫外線Uを照射して、水酸基(−OH)を付加し、非検出用表面14と非反応領域15を親水性化する(図3A)。   First, the entire surface of the substrate 1 is hydrophobized with alkylsilane, the detection surface 13 is masked, and the non-detection surface 14 and the non-reactive region 15 are irradiated with ultraviolet rays U to add a hydroxyl group (—OH). Then, the non-detection surface 14 and the non-reactive region 15 are made hydrophilic (FIG. 3A).

次に、メルカプトアルキルシランのトルエン溶液を反応領域12に滴下し、検出用表面13のアルキルシランに、メルカプト基(−SH)に付加させる(図3B)。なお、トルエン溶液は、疎水性であるので、親水性である非検出用表面14及び非反応領域15とは反発し、疎水性である検出用表面13にとどまろうとする。そのため、メルカプトアルキルシランは、検出表面13のアルキルシランと接触し、メルカプト基を付加する。   Next, a toluene solution of mercaptoalkylsilane is dropped onto the reaction region 12, and the mercapto group (—SH) is added to the alkylsilane on the detection surface 13 (FIG. 3B). Since the toluene solution is hydrophobic, it repels the hydrophilic non-detection surface 14 and the non-reactive region 15 and tries to stay on the hydrophobic detection surface 13. Therefore, the mercaptoalkylsilane contacts the alkylsilane on the detection surface 13 and adds a mercapto group.

次に、メルカプトアルキルシランのトルエン溶液を洗浄・除去したのち、基板1全体を、再び、アルキルシランで処理し、非反応領域15を、アルキルシランで、再びコーティングする(図3C)。これにより、検出用表面13はメルカプト基が結合した状態、非検出用表面14は疎水性、非反応領域15も疎水性となる。   Next, after the toluene solution of mercaptoalkylsilane is washed and removed, the entire substrate 1 is again treated with alkylsilane, and the non-reactive region 15 is coated again with alkylsilane (FIG. 3C). Thereby, the detection surface 13 is in a state where a mercapto group is bonded, the non-detection surface 14 is hydrophobic, and the non-reactive region 15 is also hydrophobic.

次に、上記と同様の方法により、非検出用表面14にのみ、紫外線Uを照射し、水酸基を付加して、親水性化する。これにより、上記したメルカプトアルキルシランの水系溶液を用いた場合と同様に、検出用表面13はメルカプト基が結合した状態、非検出用表面14は親水性、非反応領域15は疎水性となる(図3D)。   Next, by the same method as described above, only the non-detection surface 14 is irradiated with ultraviolet rays U to add a hydroxyl group to make it hydrophilic. As a result, as in the case of using the aqueous solution of mercaptoalkylsilane described above, the detection surface 13 is in a state where mercapto groups are bonded, the non-detection surface 14 is hydrophilic, and the non-reactive region 15 is hydrophobic ( FIG. 3D).

以下の工程は、上記したメルカプトアルキルシランの水系溶液を用いた場合と同様である。すなわち、予め片側の末端にメルカプト基(−SH)を結合させたヌクレオチド鎖Nの溶液を、反応領域12に滴下する。これにより、検出用表面13のメルカプト基(−SH)とヌクレオチド鎖Nに付加されたメルカプト基がジスルフィド結合し、ヌクレオチド鎖Nが、検出用表面13に固定化される(図2C参照)。   The following steps are the same as when the above-described aqueous solution of mercaptoalkylsilane is used. That is, a solution of a nucleotide chain N in which a mercapto group (—SH) is bonded to one end in advance is dropped into the reaction region 12. As a result, the mercapto group (—SH) on the detection surface 13 and the mercapto group added to the nucleotide chain N are disulfide-bonded, and the nucleotide chain N is immobilized on the detection surface 13 (see FIG. 2C).

以上により、基板1の表面12上に集積した反応領域12に、ヌクレオチド鎖Nが固定化され、バイオアッセイ用基板(DNAチップ)の製造工程が終了する。そして、そのバイオアッセイ用基板1の反応領域12に、ターゲットとなるヌクレオチド鎖N’を溶解した水溶液を滴下、供給することにより、検出用表面13に固定化されたヌクレオチド鎖Nと、ターゲットとなるヌクレオチド鎖N’が相互作用(ハイブリダイゼーション)し、目的のターゲットとなるヌクレオチド鎖N’を検出、測定することができる。   Thus, the nucleotide chain N is immobilized on the reaction region 12 accumulated on the surface 12 of the substrate 1, and the manufacturing process of the bioassay substrate (DNA chip) is completed. Then, by dropping and supplying an aqueous solution in which the target nucleotide chain N ′ is dissolved to the reaction region 12 of the bioassay substrate 1, the target becomes the nucleotide chain N immobilized on the detection surface 13 and the target. The nucleotide chain N ′ interacts (hybridizes), and the target nucleotide chain N ′ can be detected and measured.

なお、上記のメルカプトアルキルシランの水系溶液を用いた場合と同様に、非反応領域15が疎水性になっているので、ヌクレオチド鎖N又はN’を溶解した水溶液は、滴下・供給した際に、親水性である反応領域12内にとどまり、疎水性の非反応領域15にこぼれない。従って、本発明により、より少ない量の核酸水溶液で、十分かつ確実に、核酸を固定化したり、相互作用を検出・測定したりすることができる。また、基板1又は反応領域12内に、適宜、目的に応じて、親水性の領域と疎水性の領域を設けることにより、各種溶液を、供給したい領域に誘導することが可能となる。その他、反応領域12の親水性を維持するために、中性の界面活性剤を用いてもよい。   As in the case of using the aqueous solution of mercaptoalkylsilane, the non-reactive region 15 is hydrophobic. Therefore, when the aqueous solution in which the nucleotide chain N or N ′ is dissolved is dropped and supplied, It stays in the reaction region 12 that is hydrophilic and does not spill into the hydrophobic non-reaction region 15. Therefore, according to the present invention, it is possible to immobilize a nucleic acid and to detect and measure an interaction sufficiently and reliably with a smaller amount of a nucleic acid aqueous solution. In addition, by appropriately providing a hydrophilic region and a hydrophobic region in the substrate 1 or the reaction region 12 according to the purpose, various solutions can be guided to the region to be supplied. In addition, in order to maintain the hydrophilicity of the reaction region 12, a neutral surfactant may be used.

図4は、反応領域12を挟むように対向した電極3、3が設けられた、基板1の反応領域12周辺の断面模式図である。   FIG. 4 is a schematic cross-sectional view of the periphery of the reaction region 12 of the substrate 1 provided with the electrodes 3 and 3 facing each other so as to sandwich the reaction region 12.

この基板1は、上記したバイオアッセイ用基板の製造工程により製造されたものであり、検出用表面13にはヌクレオチド鎖Nが固定化され、非検出用表面14は親水性、非反応領域15は、疎水性である。そして、図4に示すとおり、反応領域12に、ターゲットのヌクレオチド鎖N’が溶解した水溶液を、滴下・供給すると、固定化されたヌクレオチド鎖Nとターゲットのヌクレオチド鎖N’が相互作用(ハイブリダイゼーション)し、目的のヌクレオチド鎖N’を検出・測定することができる。   This substrate 1 is manufactured by the above-described manufacturing process of the bioassay substrate. The nucleotide surface N is immobilized on the detection surface 13, the non-detection surface 14 is hydrophilic, and the non-reactive region 15 is Is hydrophobic. As shown in FIG. 4, when an aqueous solution in which the target nucleotide chain N ′ is dissolved is dropped and supplied to the reaction region 12, the immobilized nucleotide chain N and the target nucleotide chain N ′ interact with each other (hybridization). The target nucleotide chain N ′ can be detected and measured.

その際、上記のとおり、非検出用表面14は、水酸基(−OH)が付加して親水性になっているので、相互作用を起こさなかったヌクレオチド鎖N’を、非検出用表面14の水酸基に吸着させ、検出用表面13の領域からある程度除去することができる。   At that time, as described above, since the non-detection surface 14 is hydrophilic by adding a hydroxyl group (—OH), the nucleotide chain N ′ that has not caused the interaction is removed from the hydroxyl group of the non-detection surface 14. And can be removed to some extent from the region of the detection surface 13.

図4に示した反応領域12は、前記のとおり、電極3、3を備えている。ターゲットのヌクレオチド鎖N’を滴下・供給して、相互作用(ハイブリダイゼーション)を起こした後で、電極3に交流電界を印加することによって、相互作用しなかったヌクレオチド鎖N’やミスハイブリした(結合の弱い)ヌクレオチド鎖N’を電極3の方向(図中矢印)に誘電泳動し、そのヌクレオチド鎖N’を親水性の非検出用表面14の水酸基(−OH)に吸着させることができる。従って、電極5を設けることにより、電界によって、検出用表面13の周辺領域から、相互作用しなかったヌクレオチド鎖N’等を除去することができるとともに、電界によって誘導されたそのヌクレオチド鎖N’を非検出用表面14に吸着させ、再び、検出用表面13の周辺領域に拡散することを防止することができる。   The reaction region 12 shown in FIG. 4 includes the electrodes 3 and 3 as described above. After dripping and supplying the target nucleotide chain N ′ to cause an interaction (hybridization), an alternating electric field was applied to the electrode 3 to cause a non-interacting nucleotide chain N ′ or mishybridization ( The nucleotide chain N ′ (weakly bonded) can be dielectrophoresed in the direction of the electrode 3 (arrow in the figure), and the nucleotide chain N ′ can be adsorbed to the hydroxyl group (—OH) of the hydrophilic non-detection surface 14. Therefore, by providing the electrode 5, the nucleotide chain N ′ and the like that did not interact can be removed from the peripheral region of the detection surface 13 by an electric field, and the nucleotide chain N ′ induced by the electric field can be removed. It can be adsorbed on the non-detection surface 14 and prevented from diffusing again into the peripheral region of the detection surface 13.

本発明は、親媒性(親水性、疎水性)を制御してバイオアッセイ用基板を製造する方法であり、簡易な工程で、基板の反応領域内に検出用物質を固定かできる点で、産業上有用である。   The present invention is a method for producing a substrate for bioassay by controlling the amphiphilicity (hydrophilicity, hydrophobicity), in that the detection substance can be fixed in the reaction region of the substrate by a simple process. Industrially useful.

本発明により、より少ない量の検出用物質で、効率的に、バイオアッセイ用基板を製造することができるので、産業上有用である。   According to the present invention, a bioassay substrate can be efficiently produced with a smaller amount of a detection substance, which is industrially useful.

本発明に係るバイオアッセイ用基板及びバイオアッセイ方法は、より少ない量の標的物質で、高精度に相互作用を検出測定できる点で、産業上の利用可能性がある。   The bioassay substrate and bioassay method according to the present invention have industrial applicability in that the interaction can be detected and measured with high accuracy with a smaller amount of the target substance.

基板(1)の反応領域(12)にヌクレオチド鎖(N)を固定化するまでの一連の工程を示した、基板(1)の反応領域(12)及びその周辺の断面模式図であり、基板表面を疎水化した工程を示す図である。It is a cross-sectional schematic diagram of the reaction region (12) of the substrate (1) and its periphery, showing a series of steps until the nucleotide chain (N) is immobilized on the reaction region (12) of the substrate (1). It is a figure which shows the process which hydrophobized the surface. 前記工程において、紫外線U照射により、検出用表面(13)を親水化した工程を示す図である。In the said process, it is a figure which shows the process which hydrophilized the detection surface (13) by ultraviolet-ray U irradiation. 前記工程において、水酸基(−OH)をメルカプト基(−SH)に置換した工程を示す図である。It is a figure which shows the process which substituted the hydroxyl group (-OH) by the mercapto group (-SH) in the said process. 前記工程において、ヌクレオチド鎖Nを固定化した工程を示す図である。It is a figure which shows the process which fix | immobilized the nucleotide chain N in the said process. バイオアッセイ用基板の製造工程を示した、基板(1)の反応領域(12)及びその周辺の断面模式図(メルカプトアルキルシランの水系溶液を用いた場合)。検出用表面(13)を親水化した工程を示す図である。The reaction area (12) of a board | substrate (1) which showed the manufacturing process of the board | substrate for bioassays, and the cross-sectional schematic diagram of the periphery (when using the aqueous solution of a mercaptoalkylsilane). It is a figure which shows the process of hydrophilizing the detection surface (13). 前記工程において、水酸基(−OH)をメルカプト基(−SH)に置換し、非検出用表面(14)を親水化した工程を示す図である。It is a figure which shows the process which substituted the hydroxyl group (-OH) by the mercapto group (-SH) in the said process, and hydrophilized the non-detection surface (14). 前記工程において、ヌクレオチド鎖Nを固定化した工程を示す図である。It is a figure which shows the process which fix | immobilized the nucleotide chain N in the said process. バイオアッセイ用基板の製造工程を示した、基板(1)の反応領域(12)及びその周辺の断面模式図(メルカプトアルキルシランの、トルエン等の疎水性溶液を用いた場合)。非検出用表面(14)及び非反応領域(15)を親水化した工程を示す図である。The reaction area | region (12) of a board | substrate (1) which showed the manufacturing process of the board | substrate for bioassay, and the cross-sectional schematic diagram of the periphery (when using hydrophobic solutions, such as toluene of a mercaptoalkylsilane). It is a figure which shows the process which hydrophilized the non-detection surface (14) and the non-reaction area | region (15). 前記工程において、検出用表面(13)にメルカプト基(−SH)を付加した工程を示す図である。It is a figure which shows the process which added the mercapto group (-SH) to the surface for detection (13) in the said process. 前記工程において、非検出用表面(14)及び非反応領域(15)を疎水化した工程を示す図である。It is a figure which shows the process which hydrophobized the non-detection surface (14) and the non-reaction area | region (15) in the said process. 前記工程において、非検出用表面(14)を親水化した工程を示す図である。It is a figure which shows the process which hydrophilized the surface for non-detection (14) in the said process. 反応領域(12)を挟むように対向した電極(3、3)が設けられた、基板(1)の反応領域(12)周辺の断面模式図である。It is a cross-sectional schematic diagram of the periphery of the reaction region (12) of the substrate (1) provided with the electrodes (3, 3) opposed so as to sandwich the reaction region (12).

符号の説明Explanation of symbols

1 基板
12 反応領域
13 検出用表面
14 非検出用表面
15 非反応領域
2 マスク
3 電極
A アルキルシラン
DESCRIPTION OF SYMBOLS 1 Substrate 12 Reaction area 13 Detection surface 14 Non-detection surface 15 Non-reaction area 2 Mask 3 Electrode A Alkylsilane

Claims (16)

物質間の相互作用の場を提供できる反応領域が形成された基板に、次の(1)から(3)の工程を組み合わせて加工することによって、前記相互作用を検出するバイオアッセイ用基板を製造する方法。
(1)基板表面を疎水性物質で処理して疎水面を形成する疎水化工程。
(2)疎水面の一部を親水面に変換する親水化工程。
(3)前記親水面又は前記疎水面に検出用物質を固定化して、前記反応領域中に検出用表面を形成する検出用表面形成工程。
A substrate having a reaction region capable of providing a field of interaction between substances is manufactured by combining the following steps (1) to (3) to produce a bioassay substrate for detecting the interaction. how to.
(1) A hydrophobization process in which the substrate surface is treated with a hydrophobic substance to form a hydrophobic surface.
(2) A hydrophilization step in which part of the hydrophobic surface is converted to a hydrophilic surface.
(3) A detection surface forming step of forming a detection surface in the reaction region by immobilizing a detection substance on the hydrophilic surface or the hydrophobic surface.
前記親水化工程は、前記反応領域の全域に対して行われることを特徴とする請求項1記載のバイオアッセイ用基板の製造方法。 The method for producing a bioassay substrate according to claim 1, wherein the hydrophilization step is performed on the entire reaction region. 前記親水化工程は、前記反応領域中の検出用表面部分に対してのみ行われることを特徴とする請求項1記載のバイオアッセイ用基板の製造方法。 The method for producing a bioassay substrate according to claim 1, wherein the hydrophilization step is performed only on a detection surface portion in the reaction region. 前記親水化工程は、前記検出用表面以外の反応領域部分に対してのみ行われることを特徴とする請求項1記載のバイオアッセイ用基板の製造方法。 The method for producing a bioassay substrate according to claim 1, wherein the hydrophilization step is performed only on a reaction region portion other than the detection surface. 前記親水化工程は、前記疎水面に水酸基を形成する工程であることを特徴とする請求項1記載のバイオアッセイ用基板の製造方法。 The method for producing a bioassay substrate according to claim 1, wherein the hydrophilization step is a step of forming a hydroxyl group on the hydrophobic surface. 前記親水化工程は、前記疎水性物質であるアルキルシランに酸素存在下で紫外線照射して前記アルキルシランのアルキル基を酸化して水酸基を形成する工程であることを特徴とする請求項1記載のバイオアッセイ用基板の製造方法。 The hydrophilization step is a step of forming a hydroxyl group by oxidizing the alkylsilane, which is the hydrophobic substance, with ultraviolet irradiation in the presence of oxygen to oxidize an alkyl group of the alkylsilane. A method for producing a substrate for bioassay. 前記水酸基に親水性溶媒中のメルカプトアルキルシランを接触させ、該メルカプト基に同メルカプト基を備える検出用物質を反応させてジスルフィド結合を形成し、該ジスルフィド結合を介して前記検出用物質を固定化することを特徴とする請求項6記載のバイオアッセイ用基板の製造方法。 A mercaptoalkylsilane in a hydrophilic solvent is brought into contact with the hydroxyl group, a detection substance having the same mercapto group is reacted with the mercapto group to form a disulfide bond, and the detection substance is immobilized through the disulfide bond. The method for producing a bioassay substrate according to claim 6. 疎水面に疎水性溶媒中のメルカプトアルキルシランを接触させ、該メルカプト基に同メルカプト基を備える検出用物質を反応させてジスルフィド結合を形成し、該ジスルフィド結合を介して前記検出用物質を固定化することを特徴とする請求項6記載のバイオアッセイ用基板の製造方法。 A mercaptoalkylsilane in a hydrophobic solvent is brought into contact with the hydrophobic surface, a detection substance having the same mercapto group is reacted with the mercapto group to form a disulfide bond, and the detection substance is immobilized through the disulfide bond. The method for producing a bioassay substrate according to claim 6. 前記検出用物質は、ヌクレオチド鎖であることを特徴とする請求項1記載のバイオアッセイ用基板の製造方法。 The method for producing a bioassay substrate according to claim 1, wherein the detection substance is a nucleotide chain. 前記相互作用は、ハイブリダイゼーションであることを特徴とする請求項1記載のバイオアッセイ用基板の製造方法。 The method for producing a bioassay substrate according to claim 1, wherein the interaction is hybridization. 物質間の相互作用の場を提供できる反応領域と、該反応領域中に形成された検出用表面と、を少なくとも備える基板であって、
前記検出用表面を含む反応領域の全域が親水性であることを特徴とするバイオアッセイ用基板。
A substrate comprising at least a reaction region capable of providing an interaction field between substances, and a detection surface formed in the reaction region,
A bioassay substrate, wherein the entire reaction region including the detection surface is hydrophilic.
物質間の相互作用の場を提供できる反応領域と、該反応領域中に形成された検出用表面と、を少なくとも備える基板であって、
前記反応領域の検出用表面を除く領域が親水性であることを特徴とするバイオアッセイ用基板。
A substrate comprising at least a reaction region capable of providing an interaction field between substances, and a detection surface formed in the reaction region,
A bioassay substrate, wherein a region excluding the detection surface of the reaction region is hydrophilic.
前記反応領域の中央位置に設けられた前記検出用表面と、該検出用表面の両脇に形成された親水面と、それぞれが各親水面の外側に配置され、前記反応領域を挟むように対向する少なくとも一対の電極が設けられており、前記電極は、前記検出用表面の近傍に存在する遊離物質又は/及び誤相互作用物質を誘電泳動によって前記親水面側に引き寄せる手段であることを特徴とする請求項12記載のバイオアッセイ用基板。 The detection surface provided at the central position of the reaction region and the hydrophilic surfaces formed on both sides of the detection surface are arranged outside the hydrophilic surfaces and face each other so as to sandwich the reaction region. At least a pair of electrodes, and the electrodes are means for attracting free substances and / or misinteracting substances present in the vicinity of the detection surface to the hydrophilic surface side by dielectrophoresis. The bioassay substrate according to claim 12. 物質間の相互作用の場を提供できる反応領域と、該反応領域中に形成された検出用表面と、を少なくとも備える基板であって、
反応領域の検出用表面部分のみが親水性であり、他の反応領域部分は疎水性であることを特徴とするバイオアッセイ用基板。
A substrate comprising at least a reaction region capable of providing an interaction field between substances, and a detection surface formed in the reaction region,
A bioassay substrate, wherein only the detection surface portion of the reaction region is hydrophilic, and the other reaction region portion is hydrophobic.
物質間の相互作用の場を提供できる反応領域と、該反応領域中に形成された検出用表面と、を少なくとも備える第1基板と、
前記第1基板に重ね合わされる第2基板と、を備え、
前記第2基板の前記反応領域に臨む内面領域が親水性であることを特徴とするバイオアッセイ用基板。
A first substrate comprising at least a reaction region capable of providing an interaction field between substances, and a detection surface formed in the reaction region;
A second substrate overlaid on the first substrate,
A bioassay substrate, wherein an inner surface region facing the reaction region of the second substrate is hydrophilic.
物質間の相互作用の場を提供できる反応領域と、該反応領域中に形成された検出用表面と、を少なくとも備える基板であって、反応領域の検出用表面部分のみが親水性であり、他の反応領域部分は疎水性であるバイオアッセイ用基板を用いるバイオアッセイ方法であって、
前記反応領域の疎水性領域に対して、前記検出用表面に固定化された検出用物質と相互作用を示す標的物質を含有する水溶液を滴下することを特徴とするバイオアッセイ方法。
A substrate having at least a reaction region capable of providing an interaction field between substances and a detection surface formed in the reaction region, wherein only the detection surface portion of the reaction region is hydrophilic; A reaction region portion of the bioassay method using a bioassay substrate that is hydrophobic,
A bioassay method, wherein an aqueous solution containing a target substance that interacts with a detection substance immobilized on the detection surface is dropped onto the hydrophobic area of the reaction area.
JP2003346925A 2003-10-06 2003-10-06 Bioassay substrate manufacturing method using amphiphilic processing and bioassay substrate Expired - Fee Related JP4617654B2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2003346925A JP4617654B2 (en) 2003-10-06 2003-10-06 Bioassay substrate manufacturing method using amphiphilic processing and bioassay substrate

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2003346925A JP4617654B2 (en) 2003-10-06 2003-10-06 Bioassay substrate manufacturing method using amphiphilic processing and bioassay substrate

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JP2005114468A true JP2005114468A (en) 2005-04-28
JP4617654B2 JP4617654B2 (en) 2011-01-26

Family

ID=34539687

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2003346925A Expired - Fee Related JP4617654B2 (en) 2003-10-06 2003-10-06 Bioassay substrate manufacturing method using amphiphilic processing and bioassay substrate

Country Status (1)

Country Link
JP (1) JP4617654B2 (en)

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2007033090A (en) * 2005-07-22 2007-02-08 Asahi Glass Co Ltd Optical detecting substrate and its manufacturing method
JP2009098039A (en) * 2007-10-18 2009-05-07 Panasonic Corp Analysis vessel and analysis device
KR101213972B1 (en) * 2010-10-05 2012-12-20 서울대학교산학협력단 Electrode Device for Cell Manipulation, Fabrication Method of Electrode Device for Cell Manipulation and Method for Cell Manipulation
US8415140B2 (en) 2007-10-04 2013-04-09 Panasonic Corporation Analysis device, and analysis apparatus and method using the same

Citations (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH0784371A (en) * 1993-09-17 1995-03-31 Res Dev Corp Of Japan Organic sulfur-contained silane modified oxide and modified surface light patterning oxide
JPH09500568A (en) * 1993-05-27 1997-01-21 プロトジーン・ラボラトリーズ・インコーポレーテッド Method and apparatus for introducing an array of chemical reactions on a support surface
JPH11502617A (en) * 1995-03-10 1999-03-02 メソ スケール テクノロジーズ,エルエルシー Multi-array multispecific electrochemiluminescence test
JP2000060554A (en) * 1998-08-27 2000-02-29 Hitachi Ltd Polynucleotide probe chip and polynucleotide detection
JP2000510710A (en) * 1997-03-05 2000-08-22 モレキュラー・トゥール・インコーポレイテッド Immobilization of nucleic acid molecule to solid phase by disulfide bond by covalent bond
JP2002122610A (en) * 2000-08-09 2002-04-26 Fuji Photo Film Co Ltd Method of manufacturing micro array for dna analysis
JP2002525573A (en) * 1998-09-16 2002-08-13 コミツサリア タ レネルジー アトミーク Apparatus for chemical or biological analysis having a plurality of analysis sites on a carrier and method of manufacturing the same
JP2003066046A (en) * 2001-08-22 2003-03-05 Takara Bio Inc Ligand immobilized base
JP2003121442A (en) * 2001-10-17 2003-04-23 Osaka Gas Co Ltd Substrate for bio-chip and bio-chip
JP2003156504A (en) * 2001-11-22 2003-05-30 Japan Advanced Inst Of Science & Technology Hokuriku Biochip, biochip array and screening method using the same
WO2003056337A1 (en) * 2001-12-21 2003-07-10 Biacore Ab Immobilization of binding agents

Patent Citations (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH09500568A (en) * 1993-05-27 1997-01-21 プロトジーン・ラボラトリーズ・インコーポレーテッド Method and apparatus for introducing an array of chemical reactions on a support surface
JPH0784371A (en) * 1993-09-17 1995-03-31 Res Dev Corp Of Japan Organic sulfur-contained silane modified oxide and modified surface light patterning oxide
JPH11502617A (en) * 1995-03-10 1999-03-02 メソ スケール テクノロジーズ,エルエルシー Multi-array multispecific electrochemiluminescence test
JP2000510710A (en) * 1997-03-05 2000-08-22 モレキュラー・トゥール・インコーポレイテッド Immobilization of nucleic acid molecule to solid phase by disulfide bond by covalent bond
JP2000060554A (en) * 1998-08-27 2000-02-29 Hitachi Ltd Polynucleotide probe chip and polynucleotide detection
JP2002525573A (en) * 1998-09-16 2002-08-13 コミツサリア タ レネルジー アトミーク Apparatus for chemical or biological analysis having a plurality of analysis sites on a carrier and method of manufacturing the same
JP2002122610A (en) * 2000-08-09 2002-04-26 Fuji Photo Film Co Ltd Method of manufacturing micro array for dna analysis
JP2003066046A (en) * 2001-08-22 2003-03-05 Takara Bio Inc Ligand immobilized base
JP2003121442A (en) * 2001-10-17 2003-04-23 Osaka Gas Co Ltd Substrate for bio-chip and bio-chip
JP2003156504A (en) * 2001-11-22 2003-05-30 Japan Advanced Inst Of Science & Technology Hokuriku Biochip, biochip array and screening method using the same
WO2003056337A1 (en) * 2001-12-21 2003-07-10 Biacore Ab Immobilization of binding agents

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2007033090A (en) * 2005-07-22 2007-02-08 Asahi Glass Co Ltd Optical detecting substrate and its manufacturing method
US8415140B2 (en) 2007-10-04 2013-04-09 Panasonic Corporation Analysis device, and analysis apparatus and method using the same
US8956879B2 (en) 2007-10-04 2015-02-17 Panasonic Healthcare Co., Ltd. Analysis device and method using the same
JP2009098039A (en) * 2007-10-18 2009-05-07 Panasonic Corp Analysis vessel and analysis device
KR101213972B1 (en) * 2010-10-05 2012-12-20 서울대학교산학협력단 Electrode Device for Cell Manipulation, Fabrication Method of Electrode Device for Cell Manipulation and Method for Cell Manipulation

Also Published As

Publication number Publication date
JP4617654B2 (en) 2011-01-26

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US11016088B2 (en) Chemically-sensitive field effect transistors, systems, and methods for manufacturing and using the same
CA2169852C (en) Self-addressable self-assembling microelectronic systems and devices for molecular biological analysis and diagnostics
JP5001019B2 (en) Biomolecule detection element, method for producing biomolecule detection element, and biomolecule detection method
JP2001525193A (en) Self-addressable self-assembled microelectronic integrated systems, component devices, mechanisms, methods and methods for molecular biological analysis and diagnostics
JPH09504910A (en) Self-addressable, self-assembled miniature electronic systems and devices for molecular biological analysis and diagnostics
WO2017041056A1 (en) Chemically-sensitive field effect transistors, systems, and methods for manufacturing and using the same
JP2002153272A (en) Biomolecule microarray
JP2008537679A (en) Microwell array coated with thin film coating and method of manufacturing the same
US9957562B2 (en) Nucleic acid analysis device and nucleic acid analyzer
CN1331800A (en) Method for gold deposition
CN110554177A (en) Biological field effect transistor device, microfluidic system and methods of use thereof
WO2018026830A1 (en) Chemically-sensitive field effect transistors, systems, and methods for manufacturing and using the same
US8067249B2 (en) Method for functionalizing biosensor chips
JP4617654B2 (en) Bioassay substrate manufacturing method using amphiphilic processing and bioassay substrate
US8808519B2 (en) Microfluidic device
EP3344980B1 (en) Chemically-sensitive field effect transistors, systems and methods for using the same
JP5412207B2 (en) Biomolecule-immobilized substrate and method for producing the same
JP5097495B2 (en) Biomolecule detection element and method for producing biomolecule detection element
WO2013095303A1 (en) A microarray and method for forming the same
EP3978913A1 (en) Chemically-sensitive field effect transistor array on ic chip with multiple reference electrodes
JP2005274368A (en) Substrate for biochip
KR101165860B1 (en) Apparatus and methods for detecting nucleic acid in biological samples
Ventimiglia et al. The biophysics of nucleic acids sensing by hybridization on a lab-on-chip device
US20050014291A1 (en) Assay method using biochemical analysis units and cleaning apparatus for the same
JP2005091246A (en) Device and its manufacturing method

Legal Events

Date Code Title Description
A621 Written request for application examination

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621

Effective date: 20061005

A977 Report on retrieval

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A971007

Effective date: 20081128

A131 Notification of reasons for refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131

Effective date: 20090602

A521 Written amendment

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20090730

A131 Notification of reasons for refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131

Effective date: 20091013

A521 Written amendment

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20091210

A131 Notification of reasons for refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131

Effective date: 20100427

A521 Written amendment

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20100628

TRDD Decision of grant or rejection written
A01 Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01

Effective date: 20100928

A01 Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01

A61 First payment of annual fees (during grant procedure)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61

Effective date: 20101011

FPAY Renewal fee payment (event date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20131105

Year of fee payment: 3

FPAY Renewal fee payment (event date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20131105

Year of fee payment: 3

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

LAPS Cancellation because of no payment of annual fees