JP2004517817A - 胸腺を再活性化することによる疾患の予防 - Google Patents
胸腺を再活性化することによる疾患の予防 Download PDFInfo
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Abstract
本願開示内容は、造血幹細胞、リンパ球前駆細胞および／または骨髄前駆細胞を利用する、遺伝子療法の方法を提供するものである。これらの細胞を遺伝的に改変し、これらの細胞ならびに分化後にその子孫で発現される遺伝子を得る。好ましい実施形態では、これらの細胞は、ＨＩＶ感染および／または複製に対する耐性を細胞に与える遺伝子または遺伝子断片を含む。この場合、患者の胸腺を再活性化する処置と併用して細胞を患者に投与する。これらの細胞は、胸腺の再活性化時に患者において外来細胞に対する寛容が作られるように、自家、同系、同種または異種とすることができる。好ましい実施形態では、造血幹細胞がＣＤ３４＋である。患者の胸腺を再活性化するには、胸腺への性ステロイドによるシグナル伝達を破壊する。好ましい実施形態では、ＬＨＲＨアゴニスト、ＬＨＲＨアンタゴニスト、抗ＬＨＲＨレセプター抗体、抗ＬＨＲＨワクチンまたはこれらの組み合わせを投与することで破壊を行う。
Description
【０００１】
技術分野
本願開示内容は、疾患予防の分野のものである。特に、本発明は、胸腺を再活性化して患者の免疫系を刺激し、任意に、造血幹細胞（ＨＳＣ）、造血前駆細胞、上皮幹細胞または骨髄の遺伝子療法を利用する分野のものである。
【０００２】
発明の背景
免疫系
免疫系の主な機能は、「外来」抗原を「自己」と区別し、これに応じて応答して生体を感染から保護することである。通常の免疫応答における一連のイベントでは、特定の抗原提示細胞（ＡＰＣ）によって外来抗原が小さなペプチド断片へと貪食分解され、ＡＰＣ表面の主要組織適合遺伝子複合体（ＭＨＣ）分子の溝に提示される。ＭＨＣ分子には、すべての有核細胞上に発現するクラスＩ分子（細胞障害性Ｔ細胞（Ｔｃ）によって認識される）と、主に免疫系の細胞によって発現されるクラスＩＩ分子（ヘルパーＴ細胞（Ｔｈ）によって認識される）とがある。Ｔｈ細胞はＡＰＣ上のＭＨＣ ＩＩ／ペプチド複合体を認識し、応答する。続いて、これらの細胞によって放出される因子が両方のＴｃ細胞または特定の抗原に特異な抗体産生Ｂ細胞活性化のいずれかを促進する。事実上すべての免疫応答においてＴｈ細胞がいかに重要かを最もよく示しているのがＨＩＶ／ＡＩＤＳである。この疾患ではＴｈ細胞がウイルスに破壊されることで死滅して重篤な免疫不全が起こり、最終的には死につながる。Ｔｈ（ならびに程度は低いがＴｃ）が不適切な形で発達すると、アレルギーや癌、自己免疫疾患などのさまざまな他の疾患につながる可能性がある。
【０００３】
抗原を認識する能力はＴリンパ球およびＢリンパ球の細胞膜レセプターにある。これらのレセプターは、個々のＴ細胞またはＢ細胞が各々独特な抗原レセプターを持つような形で、可能性のある多くの遺伝子が複雑な再配列を繰り返して無作為に生成される。実際に起こり得る多様性がこのように桁外れに多いことはすなわち、生体が遭遇するかもしれないあらゆる抗原に対して複数のリンパ球がさまざまな結合強度（親和性）でこれを認識し、さまざまな度合いで応答できるようになることを意味する。抗原レセプターの特異性は偶然に生じるものであるため、自己の抗原と反応するリンパ球によって生体が「自滅」しないのは何故なのかという問題が生じる。幸いにも、Ｔ細胞およびＢ細胞がそうするのを防ぐ機序がいくつかある。これらの細胞が集まると、免疫系が自己に対して寛容となる状況が生じるのである。
【０００４】
自己寛容の最も効率的な形態は、これらの細胞が生成される部位（Ｔ細胞であれば胸腺、Ｂ細胞であれば骨髄）において反応する可能性のあるリンパ球をすべて物理的に除去する（殺す）ことである。これは中枢寛容（ｃｅｎｔｒａｌ ｔｏｌｅｒａｎｃｅ）と呼ばれている。もうひとつの重要な寛容方法として、直接的またはさらに高い可能性としてサイトカインによって自己反応性細胞を阻害する調節Ｔｈ細胞によるものがある。事実上すべての免疫応答でＴヘルパー細胞による開始および調節が必要だとすれば、あらゆる寛容導入療法の主な目的はこれらの細胞を標的することであろう。同様に、Ｔｃは極めて重要な効果器細胞であるため、これらの細胞を生成することが抗癌療法や抗ウイルス療法などの方策の主な目的のひとつにある。
【０００５】
胸腺
胸腺はＴリンパ球産生の中心となる部位であるため、免疫系における重要な臓器だと言えるだろう。胸腺の役割として、骨髄由来の適当な前駆細胞を血液中から取り込み、この前駆細胞をＴ細胞抗原受容体（ＴＣＲ）の産生に必要な遺伝子再配列などのＴ細胞系譜に関与させることがあげられる。これに関連しているのが、Ｔ細胞数を増すことであらゆる外来抗原を認識して排除できる機会を増やす、驚くべき細胞分裂である。しかしながら、Ｔ細胞による抗原認識の奇妙な特徴のひとつに、Ｂ細胞とは異なり、ＴＣＲはＭＨＣ分子に物理的に結合したペプチド断片しか認識しない点がある。通常、これは自己ＭＨＣであり、この機能は胸腺で選択される。この過程は正の選択と呼ばれ、皮質上皮細胞だけにみられる特徴である。ＴＣＲが自己ＭＨＣ／ペプチド複合体との結合に失敗すると、Ｔ細胞は「無視」されて死滅する。Ｔ細胞が成熟していくためには、ＴＣＲによるシグナル伝達が多少なりとも必要なのである。
【０００６】
胸腺は、内部のＴ細胞のうち〜１％を毎日血流中に放出する、機能的免疫系には欠かせないものであるが、哺乳動物だけが持つ明らかな特異点のひとつに、性ステロイドが産生されると胸腺に重篤な萎縮が起こることがあげられる。これは幼い子どもにも起こり得るものであるが、思春期頃からが深刻である。健常な個体であれば、新たなＴ細胞が産生・放出されなくなっても常に臨床的な結果が出てくるとは限らない（ただし、免疫による障害は年齢を重ねるにつれて出現率と重篤度が高くなる）。ＡＩＤＳおよびこれに伴う化学療法や放射線療法でＴ細胞が大量に失われると、患者は免疫抑制された状態になるため、極めて疾患にかかりやすくなる。
【０００７】
しかしながら、多くのＴ細胞は発達して自己ＭＨＣ／ペプチド複合体を高い親和性で偶然に認識することができる。したがって、このようなＴ細胞は潜在的には自己反応性であり、多発性硬化症、関節炎、糖尿病、甲状腺炎、全身性エリテマトーデス（ＳＬＥ）などの重篤な自己免疫疾患の原因となりかねない。幸いなことに、胸腺では自己ＭＨＣ／ペプチド複合体に対するＴＣＲの親和性が高くなりすぎると、発達中の胸腺細胞の自殺的な活性化が惹起され、胸腺細胞がアポトーシスで死滅する負の選択と呼ばれるプロセスが発生する。これは中枢寛容と呼ばれている。このようなＴ細胞は胸腺ではまだ未成熟であるため、応答することなく死滅する。胸腺でこうした負の選択を引き起こし得る可能性が最も高いインデューサに、樹状細胞（ＤＣ）と呼ばれるＡＰＣがある。ＡＰＣの状態では、細胞は最も強いシグナルをＴ細胞に送達する。胸腺では、これによってＴ細胞がさらに成熟する末梢のリンパ系器官で欠失が生じ、ＤＣが活性化を引き起こす。
【０００８】
胸腺の萎縮
胸腺は神経内分泌系（Ｋｅｎｄａｌｌ、１９８８）との間における双方向の情報伝達に大きく影響される。胸腺の機能にとって特に重要なのが、栄養効果（甲状腺刺激ホルモンすなわちＴＳＨ、成長ホルモンすなわちＧＨ）と萎縮効果（黄体形成ホルモンすなわちＬＨ、卵胞刺激ホルモンすなわちＦＳＨの両方ならびに副腎皮質刺激ホルモンすなわちＡＣＴＨ）（Ｋｅｎｄａｌｌ、１９８８；Ｈｏｍｏ−Ｄｅｌａｒｃｈｅ、１９９１）を含む、脳下垂体、副腎、性腺の相互関係である。特に、胸腺生理学の特性のひとつに、思春期前後に体内を循環する性ステロイドの産生量が増えるのに比例して構造と機能とが徐々に衰えることがあげられる（ＨｉｒｏｋａｗａおよびＭａｋｉｎｏｄａｎ、１９７５；Ｔｏｓｉら、１９８２；Ｈｉｒｏｋａｗａら、１９９４）。ホルモンの正確な標的とホルモンが胸腺の萎縮を誘導する機序については、今のところ明らかになっていない。胸腺は末梢Ｔ細胞プールを産生して維持する中心となる部位であるため、免疫による障害の出現率が高齢者で増加している主な原因が上記の萎縮にあるのではないかと考えられてきた。特に、Ｔ細胞の細胞溶解活性や細胞分裂応答などのＴ細胞依存性免疫機能が低下することで明らかになる免疫系の欠如が認められると、これが以後の生涯で免疫不全や自己免疫疾患、腫瘍荷重の出現率が増える形で表れてくる（Ｈｉｒｏｋａｗａ、１９９８）。
【０００９】
胸腺の萎縮による影響は末梢においてもＴ細胞プールへの胸腺からの入力の減少という形で表れ、結果としてＴ細胞受容体（ＴＣＲ）レパートリーが少なくなる。また、サイトカインプロファイルの変動（Ｈｏｂｂｓら、１９９３；Ｋｕｒａｓｈｉｍａら、１９９５）、ＣＤ４＋サブセットおよびＣＤ８＋サブセットの変化、ナイーブＴ細胞ではなく記憶細胞への偏り（Ｍａｃｋａｌｌら、１９９５）も認められる。さらに、加齢に伴って、Ｔ細胞の枯渇後に免疫系が正常なＴ細胞数まで再生する能力が最終的に失われてしまうほど胸腺形成（ｔｈｙｍｏｐｏｉｅｓｉｓ）の効率が悪くなる（Ｍａｃｋａｌｌら、１９９５）。しかしながら、Ｄｏｕｅｋら（１９９８）による近年の研究で、胸腺の出力はヒトではおそらく老齢期でも起こるであろうことが明らかになった。すなわち、ＴＣＲ遺伝子再構成の摘出（ｅｘｃｉｓｉｏｎａｌ）ＤＮＡ産物を用いて、高齢患者でＨＩＶ感染後に新たに生成されて循環しているナイーブＴ細胞を示したのである。化学療法の経験のある患者では、思春期前の患者に比べて思春期後の患者で、Ｔ細胞プール、特にＣＤ４＋Ｔ細胞の再生速度が大幅に減少することから、上記出力の速度と以後の末梢Ｔ細胞プールの再生についてはさらに検討する必要がある（Ｍａｃｋａｌｌら、１９９５）。これは、ＴｉｍｍおよびＴｈｏｍａｎによる近年の研究（１９９９）でさらに実証されている。彼らは、骨髄移植（ＢＭＴ）後の老齢マウスではＣＤ４＋Ｔ細胞の再生が認められるが、胸腺でのナイーブＴ細胞の産生量が減ることと相まって、末梢の微小環境が老化することで記憶細胞に偏るのではないかということを示した。
【００１０】
胸腺は基本的に、さまざまな支質細胞（主に上皮細胞サブセット）の間に点在する発達中の胸腺細胞からなるものであり、この支質細胞によって微小環境が構成され、Ｔ細胞が最適な状態で発達するのに必要な成長因子と細胞間相互作用とが得られる。胸腺細胞と上皮サブセットとの間にその分化および成熟を左右する共生発達の関係（Ｂｏｙｄら、１９９３）があるということは、他方の状態に影響するかもしれない何らかの細胞型のレベルで性ステロイドの阻害が起こり得ることを意味する。放射線キメラを利用した過去の研究で、骨髄（ＢＭ）幹細胞は年齢に影響されず（Ｈｉｒｏｋａｗａ、１９９８；ＭａｃｋａｌｌおよびＧｒｅｓｓ、１９９７）、若いＢＭ細胞と同程度に胸腺再増殖の可能性があることが明らかになっているため、胸腺細胞自体の内部に固有の問題があるということは考えにくい。さらに、高齢動物の胸腺細胞にも少なくとも若干は分化能力が残っている（ＭａｃｋａｌｌおよびＧｒｅｓｓ、１９９７；ＧｅｏｒｇｅおよびＲｉｔｔｅｒ、１９９６；Ｈｉｒｏｋａｗａら、１９９４）。しかしながら、Ａｓｐｉｎａｌｌによる近年の研究（１９９７）で、ＴＣＲγ鎖の遺伝子再構成の段階で起こった前駆ＣＤ３−ＣＤ４−ＣＤ８−トリプルネガティブ（ＴＮ）集団に欠陥があることが明らかになった。
【００１１】
発明の開示
本願開示内容は、患者の胸腺を再活性化させ、末梢Ｔ細胞の機能面での状態を改善し、感染または免疫系での負荷誘発をより一層防御できるようにすることで、患者の病気を防ぐための方法を教示するものである。本願明細書において使用する「予防」、「予防の」は、感染因子によって引き起こされる疾患から患者を完璧に保護するならびにある程度保護することを意味する。遺伝子組換えＨＳＣ、リンパ球前駆細胞、骨髄前駆細胞または上皮幹細胞あるいはこれらの組み合わせ（本願明細書では、グループと各メンバを「ＧＭ細胞」と呼ぶ）を利用した任意の遺伝子療法を再活性化している胸腺に施し、特定の免疫性を作り出す。好ましい実施形態では、年齢の高い（思春期後）患者の萎縮胸腺を再活性化させる。この再活性化された胸腺はＨＳＣおよび骨髄細胞を血液から取り込み、胸腺でこれを新たなＴ細胞とＤＣの両方に変換できるようになる。
【００１２】
一態様において、本願開示内容は、患者の胸腺への性ステロイドによるシグナル伝達を破壊することを含む、患者において疾患の危険をなくすまたは減らすための方法を提供するものである。
【００１３】
一実施形態では、骨髄またはＨＳＣも患者に移植する。
【００１４】
一実施形態では、疾患が、定義された遺伝的な根拠を持つものである。
【００１５】
好ましい実施形態では、疾患は、ヒト免疫不全ウイルス（ＨＩＶ）などによるウイルス感染と、Ｔ細胞機能障害と、Ｔ細胞が直接的または間接的に数字上で減少するまたは機能的に弱くなる他の疾患または健康状態からなる群から選択されるＴ細胞障害である。
【００１６】
別の態様では、本願開示内容は、感染因子による感染を防止するための方法を提供するものである。感染因子の感染、活性、複製などやこれらの組み合わせに対して耐えるまたはこれを防ぐように遺伝的に改変されたＧＭ細胞を、胸腺の再活性化と同時に患者に注射する。
【００１７】
好ましい実施形態では、ＨＳＣを遺伝的に改変し、胸腺の再活性化時とその後で形成されるＴ細胞でＨＩＶに対する耐性を生む。たとえば、ＨＳＣを改変し、その産物が、ＨＩＶの感染、機能および／または複製にＴ細胞で干渉する遺伝子を含むようにする。これによって、ウイルスに対してある程度の耐性が付与されるため、ウイルスが引き起こす疾患が防止される。
【００１８】
別の態様では、本願開示内容は、性ステロイドによるシグナル伝達を破壊することによって胸腺を再活性化させるものである。一実施形態では、性腺摘除を用いて性ステロイドによるシグナル伝達を破壊する。好ましい実施形態では化学的な性腺摘除を用いる。別の実施形態では外科的な性腺摘除を用いる。性腺摘除によって、胸腺の状態が逆行して思春期前での状態に戻るため、胸腺が活性化されることになる。
【００１９】
特定の実施形態では、ＬＨＲＨのアゴニストまたはアンタゴニスト、抗エストロゲン抗体、抗アンドロゲン抗体を投与すること、受動（抗体）または能動（抗原）抗ＬＨＲＨワクチン接種またはこれらの組み合わせ（「ブロッカー」）によって、胸腺への性ステロイドによるシグナル伝達を遮断する。
【００２０】
好ましい実施形態では、徐放性ペプチド放出製剤によってブロッカー（単数または複数）を投与する。徐放性ペプチド放出製剤については一例がＷＯ９８／０８５３３号に開示されており、その内容を本願明細書に援用する。
【００２１】
本発明では、好ましい実施形態では、胸腺の再活性化の直前、胸腺の再活性化時または胸腺の再活性化の直後に、遺伝子組換えＨＳＣを患者に移植し、遺伝子組換えＴ細胞の新たな集団を作り出す。
【００２２】
発明の詳細な説明
本願開示内容は、患者の疾患を予防するための方法を含むものである。上述したように、年齢が高くなると（思春期後になると）胸腺が原因で生体の免疫系はピークよりも低いレベルで機能する。本願開示内容では、胸腺の再活性化を利用して免疫系の機能を改善することで、さまざまな外来因子での感染に対する耐性を高め、感染を予防する。場合によっては、感染を予防できないが、このような場合は、さらに強く回復の早い免疫系が生体を助けて感染の程度を抑え、その期間を短縮する。
【００２３】
場合によっては、本発明の方法で、遺伝的に改変した造血幹細胞、リンパ球前駆細胞、骨髄前駆細胞、上皮幹細胞またはこれらの組み合わせ（ＧＭ細胞）を利用し、特定の抗原による攻撃に対する耐性のある免疫系を作り出す。この実施形態が係属中の米国特許出願第０９／７５８，９１０号に記載されている。１種またはそれ以上の感染因子に対する耐性を作り出すまたは惹起する適切な遺伝子またはポリヌクレオチドを遺伝子操作し、幹細胞および／または前駆細胞にする。本発明の方法によって胸腺が再活性化中の患者に改変細胞を注射する。改変された幹細胞および前駆細胞が胸腺に取り込まれて変換され、Ｔ細胞や樹状細胞、胸腺で生成される他の細胞になる。これらの新しい細胞は各々親の幹細胞／前駆細胞の遺伝的改変体を含んでいるため、単数または複数の因子による感染に対する耐性がある。骨髄、血液、脾臓やリンパ節などの末梢リンパ系器官のＢ細胞も、性腺摘除から２週間以内に数が増加する。
【００２４】
レシピエントの胸腺を再活性化するには、胸腺への性ステロイドによるシグナル伝達を破壊すればよい。この破壊によって、レシピエントのホルモンの状態が逆行する。破壊を達成するための好ましい方法のひとつが性腺摘除によるものである。性腺摘除方法としては、化学的な性腺摘除と外科的な性腺摘除とがあげられるが、これに限定されるものではない。性腺摘除ステップの間または後でＧＭ細胞を患者に移植する。これらの細胞は胸腺によって患者に属するものとして受容され、胸腺が産生する新たなＴ細胞およびＤＣの一部となる。このようにして得られるＴ細胞集団には、幹細胞／前駆細胞に挿入された遺伝的改変体が含まれることになる。
【００２５】
胸腺を再活性化するための好ましい方法のひとつに、脳下垂体に対するＬＨＲＨの直接的および／または間接的な刺激作用を遮断することがあげられる。これはゴナドトロフィンＦＳＨおよびＬＨの喪失につながる。これらのゴナドトロフィンは通常、性腺に作用して性ホルモンを放出させ、特に女性の場合はエストロゲンを、男性の場合はテストステロンを放出させる。ＦＳＨおよびＬＨの喪失によって上記の放出が遮断されるのである。これによって生じる直接的な作用に性ステロイドの血漿濃度の瞬時降下があり、結果として胸腺に阻害信号が放出され続けることになる。そこで、（理想的には自家の）ＣＤ３４＋造血細胞を注射することで胸腺再成長の度合いを高め、動態を強めることができる。
【００２６】
本発明は、性ステロイドによって成熟して免疫系を持つ動物であればどのような種の動物にも（ヒトを含む）使用できるものであり、たとえば哺乳動物や有袋動物など、好ましくは大型の哺乳動物、最も好ましくはヒトがあげられる。
【００２７】
「再生」「再活性化」「再構築」という用語ならびにその派生語は、本願明細書では同義に用いられるものであり、萎縮した胸腺が活性状態に回復することを意味する。
【００２８】
本願明細書において使用する「性腺摘除」とは、生体での性ステロイドの産生と運搬を顕著に低減または排除することを意味する。これによって患者は胸腺が十分に機能している思春期前の状態に効率よく戻る。外科的な性腺摘除では患者の性腺を摘出する。
【００２９】
外科的な方法ほどの永続性はない性腺摘除方法のひとつに、一定期間のあいだ化学薬品を投与する方法があり、本願明細書ではこれを「化学的な性腺摘除」と呼ぶ。さまざまな化学薬品をこのように機能させることができる。化学薬品の送達時ならびにその後の一定期間のあいだ、患者のホルモン産生が停止する。好ましくは、化学薬品の送達終了時に性腺摘除を無効にする。
【００３０】
胸腺への性ステロイドによるシグナル伝達の破壊
容易に理解できるように、胸腺への性ステロイドによるシグナル伝達を当業者間で周知のいろいろな方法で破壊することができるため、そのうちいくつかを本願明細書で説明する。たとえば、胸腺での性ステロイド産生を阻害するか、あるいは１種またはそれ以上の性ステロイド受容体を遮断することで、性ステロイドアゴニストまたはアンタゴニスト、あるいは能動（抗原）または受動（抗体）抗性ステロイドワクチン接種を施す場合のように所望の破壊が達成される。性ステロイドの産生については、１種またはそれ以上の性ステロイド類縁体を投与して阻害することも可能である。臨床例の中には、物理的な性腺摘除によって性腺を永久的に除去する方がよいこともある。
【００３１】
好ましい実施形態では、性ステロイド類縁体、好ましくは黄体形成ホルモン放出ホルモン（ＬＨＲＨ）の類縁体を投与することによって、胸腺への性ステロイドによるシグナル伝達を破壊する。性ステロイド類縁体とこれを治療や化学的な性腺摘除に利用することについては周知である。このような類縁体としては、ブセレリン（ヘキスト）、シストレリン（ヘキスト）、デカペプチル（商品名デビオファーム；ボーフール・イプセン）、デスロレリン（バランスファーマシューティカルズ）、ゴナドレリン（エアスト）、ゴセレリン（商品名ゾラデックス；ゼネカ）、ヒストレリン（オルト）、リュープロライド（商品名ルプロン；アボット／ＴＡＰ）、リュープロレリン（Ｐｌｏｓｋｅｒら）、ルトレリン（ワイエス）、メテレリン（ＷＯ９１１８０１６）、ナファレリン（シンテックス）、トリプトレリン（米国特許第４，０１０，１２５号）などのＬＨＲＨ受容体（ＬＨＲＨ−Ｒ）アゴニストがあげられるが、これに限定されるものではない。また、ＬＨＲＨ類縁体としては、アバレリックス（Ａｂａｒｅｌｉｘ）（商品名プレナクシス；プラエシス）およびセトロレリックス（商品名；ゼンタリス）などのＬＨＲＨ−Ｒアンタゴニストもあげられるが、これに限定されるものではない。アゴニストの組み合わせ、アンタゴニストの組み合わせ、アゴニストとアンタゴニストとの組み合わせも含まれる。なお、上述した各参考文献の開示内容を本願明細書に援用する。現時点では上記類縁体がデスロレリン（米国特許第４４，２１８，４３９号に記載）であると好ましい。さらに包括的な一覧については、Ｖｉｃｋｅｒｙら、１９８４を参照のこと。
【００３２】
好ましい実施形態では、ＬＨＲＨ−Ｒアンタゴニストを患者に送達した後、ＬＨＲＨ−Ｒアゴニストを送達する。このプロトコールを用いると、性ステロイドの産生を抑える前に、アゴニストを投与することで発生し得る性ステロイド産生のスパイクが排除または制限される。別の実施形態では、ＬＨＲＨ−Ｒアンタゴニストを事前に投与するかまたは投与せずに、性ステロイド産生のスパイクをほとんど発生させないか全く発生させないＬＨＲＨ−Ｒアゴニストを使用する。
【００３３】
胸腺の再活性化を刺激することについては、基本的には性ステロイドの作用および／またはＬＨＲＨ類縁体の直接的な作用を阻害して行うものであるが、相互に作用して胸腺の作用を高めることのできる別の物質を含むと有用な場合もある。このような化合物としては、インターロイキン２（ＩＬ２）、インターロイキン７（ＩＬ７）、インターロイキン１５（ＩＬ１５）、上皮成長因子ファミリおよび線維芽細胞成長因子ファミリのメンバ、幹細胞成長因子、顆粒球コロニー刺激因子（ＧＣＳＦ）、ケラチノサイト成長因子（ＫＧＦ）があげられるが、これに限定されるものではない。これらの別の化合物（単数または複数）についてはＬＨＲＨ類縁体を最初に適用するときに１回だけ与えることを前提にしている。しかしながら、これらの物質１種類または２種類以上の組み合わせからなる投与量をさらに適当な時期に与え、胸腺をさらに刺激するようにしてもよい。また、胸腺特異性になるように標的してもよいステロイド受容体ベースのモジュレータを開発して使用してもよい。
【００３４】
胸腺改善ならびに免疫系全般の重要な特徴のひとつに、性ステロイドの破壊後に骨髄の機能も亢進する点がある。これには、ＨＳＣの産生および／または放出量の増加を含むがこれに限定されるものではない。これらのＨＳＣは、胸腺に移行し、胸腺形成の亢進の一助となることができる。
【００３５】
製薬組成物
本発明において用いる化合物は、薬学的に許容される何らかの担体に含有させて供給してもよいし、担体なしで供給してもよいものである。一例として、生理的に適合するコーティング、溶剤、希釈剤があげられる。非経口投与、皮下投与、静脈内投与、筋肉内投与では、カプセル化などによって組成物を保護してもよい。あるいは、活性成分の徐放を可能にしつつこれらの活性成分（単数または複数）を保護する担体と一緒に組成物を供給してもよい。さまざまなバージョンの乳酸／グリコール酸コポリマーなどの持続放出薬剤を調製するための多数のポリマーおよびコポリマーが従来技術において周知である。たとえば、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）の変性ポリマーを生分解性コーティングとして用いる米国特許第５，４１０，０１６号を参照のこと。
【００３６】
経口送達を意図した製剤であれば、液体、カプセル、錠剤などとして調製することが可能である。これらの組成物には、活性成分が分解されないように保護する、賦形剤、希釈剤および／または被膜などを含むことが可能である。これらの製剤は周知である。
【００３７】
どのような製剤であっても、ＬＨＲＨ類縁体の活性に悪影響をおよぼすことのない他の化合物を含むようにしてもよい。一例として、本願明細書にて説明するさまざまな成長因子および他のサイトカインがあげられる。
【００３８】
用量
このＬＨＲＨ類縁体は、一定の期間持続する単回用量で投与することが可能なものである。好ましくは製剤の薬効が１〜２ヶ月間であり、より好ましくは１〜３ヶ月である。血液中の性ステロイドを最低値まで減らすには、アゴニストを使う場合で約３週間、アンタゴニストを使う場合で１日要する。好ましい実施形態では、周期的な流行が続いている間は維持される用量にする。たとえば、通常は冬季が「インフルエンザシーズン」になる。本願明細書に記載のようにしてＬＨＲＨ類縁体の製剤を製造および送達し、インフルエンザシーズンの最初から２ヶ月以上患者を保護することができる。この場合、感染の危険性が小さくなるかなくなるまで２ヶ月に１回程度かそれ以上の期間をあけて追加投与するようにする。
【００３９】
標準用量は使用する類縁体のタイプによって決まる。通常、この用量は約０．０１μｇ／ｋｇから約１０ｍｇ／ｋｇであり、好ましくは約０．０１ｍｇ／ｋｇから約５ｍｇ／ｋｇである。用量は使用するＬＨＲＨ類縁体またはワクチンによって変わる。たとえば、男性では、現行の投薬条件下で、２１日目（胸腺亢進日の前）に一用量としてのゴセレリン１０．８ｍｇ（３ヶ月有効）を投与し、６３日目（胸腺亢進日の後）に３．６ｍｇをさらに注射し、これがさらに２８日間有効であるといった具合である。女性の場合、３／６ｍｇ（２８日間有効）を、１日目、７日目、３５日目、６３日目に投与する。
【００４０】
免疫系を強化するための製剤を製造することが可能である。あるいは、免疫系を強化する一方でインフルエンザウイルスによる感染を特異的に防止するための製剤を調製することが可能である。後者の製剤には、インフルエンザウイルスに対する耐性を生むべく作られてきたＧＭ細胞が含まれるであろう（下記参照）。ＧＭ細胞については、ＬＨＲＨ類縁体製剤との併用で投与することもできるし、あるいは空間的および／または時間的に別々に投与することもできる。非ＧＭ細胞の場合と同様に、長期にわたって複数回用量を患者に投与し、インフルエンザシーズンの最初から最後までインフルエンザウイルスによる感染から患者を保護し、感染を妨害することができる。
【００４１】
化学的な性腺摘除用薬剤の送達
本発明による化合物の送達は、当業者間で周知の多くの方法で達成可能なものである。化学的なインヒビターを投与して胸腺への性ステロイドによるシグナル伝達を阻害する標準的なやり方のひとつに、３ヶ月間有効なＬＨＲＨアゴニストを単回用量で用いる方法がある。この方法では、３ヶ月が経過するずっと前にアゴニストが患者の体から排泄されてしまうため、単純に１回のｉ．ｖ．（静脈内）またはｉ．ｍ．（筋肉内）注射を行うだけでは不十分なことがある。代わりにデポ注射またはインプラントを利用してもよいし、あるいは、インヒビターの徐放が可能な他のインヒビター送達手段。同様に、ここで必要な機能を保ちつつ、たとえば化学薬品を変性させるなどの方法で体内におけるインヒビターの半減期を延ばすための方法を利用してもよい。
【００４２】
さらに有用な送達機序の一例として、皮膚にレーザを照射する方法や皮膚表面で高圧神経衝撃トランジェント（ｈｉｇｈ ｐｒｅｓｓｕｒｅ ｉｍｐｕｌｓｅ ｔｒａｎｓｉｅｎｔ）（応力波または神経衝撃トランジェントとも呼ばれる）を発生させる方法があげられるが、これに限定されるものではない。いずれの方法でも、同じ場所に担体を併用または併用せずに、化合物（単数または複数）を接触させる処理を同時にまたは後から行う。好ましい接触方法のひとつに、処置を行っている間は皮膚の上にパッチを載せたままにしておく方法がある。
【００４３】
ひとつの送達手段では、適切な波長が維持され、厳密に焦点の合ったレーザ光線を利用して、患者の皮膚に小さなパーフォレーションを作るか、皮膚を変質させる。米国特許第４，７７５，３６１号、米国特許第５，６４３，２５２号、米国特許第５，８３９，４４６号、米国特許第６，０５６，７３８号を参照のこと（いずれも本願明細書に援用する）。好ましい実施形態では、レーザ光線の波長は０．２から１０ミクロンである。より好ましくは、波長は約１．５から３．０ミクロンである。最も好ましくは、波長は約２．９４ミクロンである。一実施形態では、レンズを用いてレーザ光線の焦点を合わせ、皮膚の表皮をとおして皮膚表面に照射スポットを形成する。別の実施形態では、レーザ光線の焦点を合わせ、皮膚の表皮細胞のみをとおして照射スポットを形成する。
【００４４】
本願明細書において使用する「アブレーション」および「パーフォレーション」とは、皮膚に形成された穴を意味する。このような穴については深さを変えることが可能である。たとえば表皮細胞のみを貫通するようにしてもよいし、皮膚の毛細管層まで全体を貫通するようにしてもよく、あるいはその間のいずれかの場所で終端してもよい。本願明細書において使用する「変質」とは、穴を形成することなく皮膚の透過性を高める、皮膚構造の変化を意味する。パーフォレーションと同様に、皮膚をどのような深さで変質させてもよい。
【００４５】
レーザ光線を規定するにあたって、波長、エネルギフルエンス、パルス時間幅および照射スポットサイズをはじめとする、いくつかの要素が考慮されることがある。好ましい実施形態では、エネルギフルエンスは０．０３〜１００，０００Ｊ／ｃｍ２の範囲である。より好ましくは、エネルギフルエンスは、０．０３〜９．６Ｊ／ｃｍ２の範囲である。光線の波長は、Ｅｒ：ＹＡＧなどのレーザ材料にある程度は左右される。パルス時間幅は、コンデンサ群、フラッシュランプ、レーザロッドの材料などによって生成されるパルス幅から必然的に得られる。パルス幅は１ｆｓ（フェムト秒）から１，０００μｓの間であると最適である。
【００４６】
この方法によれば、レーザで形成するパーフォレーションまたは変質を必ずしも１回のレーザパルスで形成しなくてもよい。好ましい実施形態では、表皮細胞をとおしてのパーフォレーションまたは変質を、各々が標的組織厚の一部のみを貫通または変化させる複数のレーザパルスを用いて形成する。
【００４７】
この目的を達成するために、パルス１回分のエネルギを求めて所望のパルス数で割ることで、複数のパルスで表皮細胞を貫通または変化させるのに必要なエネルギをおおざっぱに見積もることができる。たとえば、あるサイズのスポットで表皮細胞全体をとおしてパーフォレーションまたは変質を形成するのに１Ｊのエネルギが必要な場合、各々がそのエネルギの１／１０である１０のパルスを用いて定性的に同様のパーフォレーションまたは変質を形成することができる。放射線照射の間は患者が標的組織を動かさず、各パルスの間に生成される熱が有意に拡散しないことが望ましい（ヒトの反応時間は１００ｍｓ程度）ため、好ましい実施形態では、レーザからのパルスの繰り返し数を１００ｍｓ未満の時間で完全なパーフォレーションを形成できるような数にしなければならない。あるいは、標的組織とレーザの向きを機械的に固定し、これよりも長い放射線照射時間のあいだ標的位置の変化が起こらないようにすることも可能である。
【００４８】
血流をほとんど発生させないか全く発生させない形で皮膚を貫通するには、表皮細胞層などの外側の表面を介するが毛細管層ほど深部ではない位置で皮膚を穿孔または変質すればよい。このとき、皮膚での光線直径が約０．５ミクロン〜５．０ｃｍの範囲になるようにレーザ光線の焦点を皮膚に正確に合わせる。任意に、スポットを幅約０．０５〜０．５ｍｍで長さ最大２．５ｍｍのスリット形にしてもよい。幅はどのようなサイズであってもよく、除去対象となる流体または適用対象となる医薬品の所望の透過率と照射部分の組織構造とによって制御される。焦点レンズの焦点距離はどのような長さであってもよいが、一実施形態では３０ｍｍである。
【００４９】
波長、パルス長、エネルギフルエンス（レーザエネルギ出力（ジュール）および焦点での光線サイズ（ｃｍ２）の関数）、照射スポットサイズを調節することで、表皮細胞への影響をアブレーション（パーフォレーション）と非焼灼性の変性（変質）との間で変えることが可能である。表皮細胞のアブレーションと非焼灼性の変質はいずれもその後に適用される製剤の透過性を高めるものである。
【００５０】
たとえば、パルスエネルギ以外の変数を一定に維持したままパルスエネルギを小さくすると、組織への作用を焼灼性と非焼灼性との間で変化させることができる。パルス長約３００μｓのＥｒ：ＹＡＧレーザを用いて、パルスまたは輻射エネルギ１回分で２ｍｍのスポットを皮膚に照射する場合、パルスエネルギが約１００ｍＪを超えると部分的または完全なアブレーションが形成され、パルスエネルギが約１００ｍＪ未満であると部分的なアブレーションまたは非焼灼性の変質が表皮細胞に形成される。任意に、複数のパルスを利用して、体液の透過性を高めるのに必要または医薬品送達用の閾値パルスエネルギをパルス数にほぼ等しい分だけ減少させてもよい。
【００５１】
あるいは、スポットサイズ以外の変数を一定に維持したままスポットサイズを小さくしても、組織への作用を焼灼性と非焼灼性との間で変化させることができる。たとえば、スポット面積を半分にすることで同じ効果を得るのに必要なエネルギも半分になる。レーザの輻射出力を顕微鏡対物レンズ（ｍｉｃｒｏｓｃｏｐｅ ｏｂｊｅｃｔｉｖｅ）の対物レンズ（たとえばニューヨーク州メルビルのニコン社から入手可能なものなど）に結合することで、０．５ミクロンまで抑えて照射を行うことができる。このような場合、おおよそ顕微鏡の解像限界までのスポットに光線の焦点を合わせることができるが、これはおそらく約０．５ミクロン程度である。実際、光線のプロファイルがガウスであれば、対象となる照射部分のサイズを実測光線サイズよりも小さくすることができ、顕微鏡の画像解像度を超えることが可能なのである。この場合、組織を非焼灼的に変質させるには、エネルギフルエンスを３．２Ｊ／ｃｍ２にすると良いであろうと思われるが、この場合に二分の一ミクロンのスポットサイズであれば必要なパルスエネルギは約５ｎＪになる。このように低いパルスエネルギはダイオードレーザで容易に得ることができ、ガラスなどの吸収用フィルタを用いて光線を減衰させれば、Ｅｒ：ＹＡＧレーザなどでも得ることができるものである。
【００５２】
任意に、輻射エネルギの波長以外の変数を一定に維持したまま輻射エネルギの波長を変えることで、組織への作用を焼灼性と非焼灼性との間で変化させるようにしてもよい。たとえば、Ｅｒ：ＹＡＧ（エルビウム：ＹＡＧ；２．９４ミクロン）レーザの代わりにＨｏ：ＹＡＧ（ホルミウム：ＹＡＧ；２．１２７ミクロン）を使用すると組織によるエネルギの吸収量が小さくなり、少な目のパーフォレーションまたは変質が形成される。
【００５３】
レーザによって生成されるピコ秒およびフェムト秒のパルスを利用し、皮膚に変質またはアブレーションを形成するようにしてもよい。これは、時間幅１フェムト秒から１ｍｓの範囲で１回のパルスを送達する調節済みのダイオードまたは関連のマイクロチップレーザで達成可能なものである（パルス長を１フェムト秒まで抑えて用いることについて開示した、本願明細書に援用するＤ．Ｓｔｅｒｎらの「Ｃｏｒｎｅａｌ Ａｂｌａｔｉｏｎ ｂｙ Ｎａｎｏｓｅｃｏｎｄ，Ｐｉｃｏｓｅｃｏｎｄ， ａｎｄ Ｆｅｍｔｏｓｅｃｏｎｄ Ｌａｓｅｒｓ ａｔ ５３２ ａｎｄ ６２５ ｎｍ」、Ｃｏｒｎｅａｌ Ｌａｓｅｒ Ａｂｌａｔｉｏｎ、第１０７巻、第５８７〜５９２頁（１９８９）を参照のこと）。
【００５４】
もうひとつの送達方法では、皮膚での高圧神経衝撃トランジェントを利用して透過性を得る。本願明細書に援用する米国特許第５，６１４，５０２号および米国特許第５，６５８，８９２号を参照のこと。立ち上がり時間と最大応力（または圧力）とを定めた応力波（たとえばレーザで生成する場合はレーザ応力波（ＬＳＷ））などの高圧神経衝撃トランジェントを用いて、表皮細胞や粘膜などの上皮組織の層をとおして本願開示内容にあるものなどの化合物を安全かつ効率的に移動させることができる。これらの方法を利用すれば、正味電荷とは関係なく広範囲にわたるサイズの化合物を送達することができる。また、本方法で用いる神経衝撃トランジェントでは組織の損傷が回避される。
【００５５】
神経衝撃トランジェントに曝露する前は、表皮細胞などの上皮組織層は外来化合物を通さないことが多い。このため、上皮層よりも下にある細胞に化合物を拡散させることができない。上皮層を神経衝撃トランジェントに曝露すると、上皮層をとおして化合物を拡散させることができる。拡散速度は通常、神経衝撃トランジェントの性質と送達対象となる化合物のサイズとによって決まる。
【００５６】
皮膚の表皮細胞などの特定の上皮組織層をとおしての貫通速度も、ｐＨ、皮膚支持体組織の代謝、表皮細胞外の領域と表皮細胞内の領域との圧差ならびに皮膚の解剖組織上の部位および生理状態をはじめとする、ほかのいくつかの要因に左右される。さらに、皮膚の生理状態は、健康状態、年齢、性別、人種、スキンケア、病歴に左右される。たとえば、事前に有機溶剤または界面活性剤に触れると皮膚の生理状態に影響する。
【００５７】
また、上皮組織層をとおして送達される化合物の量も上皮層が透過性である時間と透過性にされる上皮層の表面積の大きさとに左右されることになる。
【００５８】
神経衝撃トランジェントの特性と特徴を、神経衝撃トランジェントを生成するエネルギ源によって制御する。本願明細書に援用するＷＯ９８／２３３２５号を参照のこと。しかしながら、この特徴は、神経衝撃トランジェントが伝播する接触媒質の線形特性と非線形特性とによって変わってくる。接触媒質によって生じる線形の減衰は主に神経衝撃トランジェントの高周波成分を減衰する。これによって帯域幅が小さくなり、これに伴って神経衝撃トランジェントの立ち上がり時間が長くなる。一方、接触媒質の非線形特性は立ち上がり時間を短くする。立ち上がり時間が短くなるのは、音と粒子の速度が応力（圧力）に依存するためである。応力が大きくなると、音と粒子の速度も上昇する。これによって神経衝撃トランジェントの立ち上がりが急勾配になる。立ち上がり時間の急勾配の増加を実質的なものとするのに波をどのくらいの時間伝搬させることになるかは、線形の減衰、非線形係数、最大応力の相対強度によって決まる。
【００５９】
神経衝撃トランジェントの立ち上がり時間、規模、持続時間については、一時的に上皮組織層の透過性を高める非破壊的な（すなわち非衝撃波）神経衝撃トランジェントが得られるように選択する。通常、立ち上がり時間は少なくとも１ｎｓであり、より好ましくは約１０ｎｓである。
【００６０】
神経衝撃トランジェントの最大応力または圧力は上皮組織または細胞層によって異なる。たとえば、表皮細胞をとおして化合物を移動させる場合、神経衝撃トランジェントの最大応力または圧力を少なくとも４００バール、より好ましくは少なくとも１，０００バールに設定しなければならないが、約２，０００バールを超えないようにする。
【００６１】
上皮粘膜層では最大圧力を３００バールから８００バール、好ましくは３００バールから６００バールの間に設定するものとする。神経衝撃トランジェントは、持続時間が数十ｎｓ前後で上皮組織と互いに影響しあうのが短時間しかないと好ましい。神経衝撃トランジェントとの相互作用後、上皮組織が永久的に損傷されることはなく、最大約３分間透過性を維持するだけである。
【００６２】
また、これらの方法では、高振幅の別個のパルスを数回患者に印加するだけである。患者に施される神経衝撃トランジェントの数は一般に１００未満であり、より好ましくは５０未満、最も好ましくは１０未満である。複数の光学パルスを用いて神経衝撃トランジェントを生成する場合、連続したパルス間の時間は１０から１２０秒であるが、これは上皮組織の永久的な損傷を防ぐには十分な長さである。
【００６３】
神経衝撃トランジェントの特性については、従来技術において標準の方法を用いて測定することが可能である。たとえば、Ｄｏｕｋａｓら、Ｕｌｔｒａｓｏｕｎｄ Ｍｅｄ．Ｂｉｏｌ．、２１：９６１（１９９５）に記載されているようなポリフッ化ビニリデン（ＰＶＤＦ）トランスデューサ法を用いて、最大応力または圧力、立ち上がり時間を測定することができる。
【００６４】
神経衝撃トランジェントは、さまざまなエネルギ源によって生成可能なものである。神経衝撃トランジェントの発射を担う物理現象は、通常、（１）熱弾性生成、（２）光破壊または（３）アブレーションという３通りの機序から選択される。
【００６５】
たとえば、高エネルギのレーザ源を適用して標的材料を焼灼することで神経衝撃トランジェントを開始することができ、その後この神経衝撃トランジェントを接触媒質によって上皮組織または細胞層に結合する。接触媒質は、たとえば、非線形である限りは液体またはゲルである。よって、水、ひまし油などの油、ホスフェート緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）などの等張媒質またはコラーゲンゲルなどのゲルを接触媒質として用いることができる。
【００６６】
また、たとえば神経衝撃トランジェントの生成後に化合物に対して表皮細胞が透過性である時間を引き延ばすことによって移動性を高める界面活性剤を接触媒質に含むようにしてもよい。界面活性剤には、たとえばイオン性洗剤または非イオン性洗剤が考えられ、よって、たとえばラウリル硫酸ナトリウム、臭化セチルトリメチルアンモニウム、ラウリルジメチルアミンオキシドを含むことができる。
【００６７】
吸収する標的材料は光学的に誘発されるトランスデューサとして作用する。光を吸収すると標的材料には急激な熱膨張が起こって焼灼され、神経衝撃トランジェントが起こる。一般に、金属およびポリマーのフィルムは可視スペクトル領域および紫外スペクトル領域での吸収係数が大きい。
【００６８】
使用するレーザの波長で光を完全に吸収する限り、多くのタイプの材料をレーザ光線と併用の標的材料として用いることができる。標的材料については、アルミニウムまたは銅などの金属、黒いポリスチレンなどのポリスチレンなどのプラスチック、セラミック、高濃縮染料溶液で構成することが可能である。標的材料は印加するレーザエネルギの断面積よりも寸法の大きなものでなければならない。また、光が皮膚表面に衝突しないように、標的材料は光学的貫通深さよりも厚くなければならない。さらに、標的材料は機械的に支持できるだけの十分な厚さのものでなければならない。標的材料が金属製の場合、一般的な厚さは１／３２から１／１６インチである。プラスチックの標的材料では、厚さは１／１６から１／８インチである。
【００６９】
また、限られた狭い範囲の（ｃｏｎｆｉｎｅｄ）アブレーションによって神経衝撃トランジェントを強めることもできる。限られた狭い範囲のアブレーションでは、石英の光学ウィンドウなどのレーザ光線透過材料を標的材料と密着させて配置する。この透明材料を用いて標的材料を焼灼してプラズマを限局すると、結合係数が桁違いに大きくなる（Ｆａｂｒｏら、Ｊ．Ａｐｐｌ．Ｐｈｙｓ．、６８：７７５、１９９０）。透明材料には、石英、ガラスまたは透明プラスチックを用いることが可能である。
【００７０】
標的材料と限局用の透明材料との間に空間ができるとプラズマが膨張する余裕ができ、標的に加わる運動量が小さくなってしまうため、炭素含有エポキシなどの最初は液体状である接着剤を用いて透明材料を標的材料に接着し、このような空間をなくすようにすると好ましい。
【００７１】
たとえば電気光学的装置または音響光学的装置を用いてＱスイッチレーザまたはモード同期レーザを利用するなどの従来技術において周知の標準的な光学的変調技法によってレーザ光線を生成することができる。赤外スペクトル、可視スペクトルおよび／または赤外スペクトルにおいてパルスモードで動作できる標準的な市販レーザとしては、Ｎｄ：ＹＡＧ、Ｎｄ：ＹＬＦ、ＣＯ２、エキシマ、染料、Ｔｉ：サファイア、ダイオード、ホルミウム（および他の希土材料）、金属蒸気レーザがあげられる。これらの光源はパルス幅が調節可能であり、数十ピコ秒（ｐｓ）から数百マイクロ秒まで可変である。本願開示内容で使用する光学パルス幅は１００ｐｓから約２００ｎｓで可変であり、好ましくは約５００ｐｓから４０ｎｓの間である。
【００７２】
また、体外砕石機によって神経衝撃トランジェントを生成することも可能である（一例が、Ｃｏｌｅｍａｎら、Ｕｌｔｒａｓｏｕｎｄ Ｍｅｄ．Ｂｉｏｌ．、１５：２１３〜２２７、１９８９に記載されている）。これらの神経衝撃トランジェントは立ち上がり時間が３０から４５０ｎｓであり、レーザで生成する神経衝撃トランジェントの場合よりも長い。この新たな方法用に体外砕石機を用いて適切な立ち上がり時間の神経衝撃トランジェントを形成するために、上記の式（１）によって求められる距離だけ非線形の接触媒質（水など）中で神経衝撃トランジェントを伝播させる。たとえば、立ち上がり時間１００ｎｓでピーク圧力が５００バールの神経衝撃トランジェントを生成する砕石機を用いる場合、上皮細胞層と接触する前に神経衝撃トランジェントが接触媒質を介して移動しなければならない距離は約５ｍｍである。
【００７３】
砕石機によって生成される神経衝撃トランジェントを加工する方法のもうひとつの利点として、波の引張成分（ｔｅｎｓｉｌｅ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ）が広がり、非線形の接触媒質中を伝播することで減衰される点があげられる。この伝播距離を調整し、圧力が波の圧縮成分の最大圧力のわずか約５から１０％の引張成分を持つ神経衝撃トランジェントを生成する必要がある。したがって、加工された（ｓｈａｐｅｄ）神経衝撃トランジェントが組織を損傷することはない。
【００７４】
使用する砕石機のタイプは重要ではない。電気水力学式砕石機、電磁式砕石機または圧電式砕石機のいずれかを用いることができる。
【００７５】
また、圧電トランスデューサなどのトランスデューサを用いて神経衝撃トランジェントを生成することも可能である。好ましくは、トランスデューサが接触媒質と直接接触し、光学的、熱的または電気的に場を印加して神経衝撃トランジェントを生成した後に急激に変位する。たとえば、絶縁破壊を利用することができ、この絶縁破壊は一般に高電圧スパークまたは圧電トランスデューサによって誘導される（特定の体外砕石機で用いられているものと同様である。Ｃｏｌｅｍａｎら、Ｕｌｔｒａｓｏｕｎｄ Ｍｅｄ．Ｂｉｏｌ．、１５：２１３〜２２７、１９８９）。圧電トランスデューサの場合、電界を印加した後にトランスデューサが急激に膨張して接触媒質の急激な変位を発生させる。
【００７６】
また、光ファイバを用いて神経衝撃トランジェントを生成することも可能である。光ファイバ送達系は特に扱いやすく、上皮組織層に隣接して位置する標的材料に光線を照射し、到達しにくい場所で神経衝撃トランジェントを生成するのに利用できるものである。これらのタイプの送達系は、カテーテルおよび関連の可撓性装置に統合し、人体のほとんどの器官への照射に利用できるため、レーザと光学的に結合させる場合に好ましいものである。また、所望の立ち上がり時間と最大応力の神経衝撃トランジェントを得るには、これに光学源（ｏｐｔｉｃａｌ ｓｏｕｒｃｅ）の波長を合わせて特定の標的材料で適切な吸収を生成する方法が簡単である。
【００７７】
あるいは、爆発的に生じる神経衝撃に応答して強力な（ｅｎｅｒｇｅｔｉｃ）材料で神経衝撃トランジェントを生成することもできる。放電またはスパークを発生させることで、この強力な材料を起爆装置で爆発させる。
【００７８】
神経衝撃トランジェントと併せて静水圧を利用し、上皮組織層を介しての化合物の移動性を高めることができる。神経衝撃トランジェントによって誘発される作用は数分間持続するため、神経衝撃トランジェントの印加後に皮膚の表皮細胞などの上皮組織層の表面に静水圧を加えることで、濃度勾配に沿って上皮細胞層を介して受動的に拡散していく薬剤の移動速度を増すことができる。
【００７９】
幹細胞または前駆細胞の遺伝的改変体
遺伝子
本発明に有用な遺伝子および遺伝子断片（ポリヌクレオチド）としては、特定の単数または複数の感染因子によるＴ細胞の感染に対する耐性をコードするものがあげられる。このような感染因子としては、ＨＩＶ、Ｔ細胞白血病ウイルス、リンパ増殖疾患を引き起こす他のウイルスがあげられるが、これに限定されるものではない。ＨＩＶ／ＡＩＤＳについて言えば、ｎｅｆ転写因子と、ｔａｔおよびｒｅｖなどのＨＩＶ遺伝子を特異的に切断するリボザイムをコードする遺伝子（Ｂａｕｅｒ Ｇ．ら（１９９７）と、ＨＩＶの複製を阻害することが明らかになっている（Ｂｏｎｙｈａｄｉら １９９７）ＨＩＶ−１のｒｅｖ遺伝子のトランスドミナント変異体形態であるＲｅｖＭ１０と、ＨＩＶ−１のｒｅｖ−応答配列（ＲＲＥ）の過発現コンストラクト（Ｋｏｈｎら、１９９９）と、発現が細胞のＨＩＶ感染または複製に対して阻害性であるＲＮＡまたはタンパク質をコードする遺伝子と、これらの断片および組み合わせとを含むが、これに限定されるものではない、多数の遺伝子および遺伝子断片を利用することができる。
【００８０】
これらの遺伝子または遺伝子断片は安定して発現可能な形態で用いられる。本願明細書で使用する「安定して発現可能な形態」という表現は、遺伝子または遺伝子断片を宿主細胞に導入した後で宿主細胞にて、さらには分割および／または分化後にその細胞の子孫で、少なくとも半永久的に遺伝子または遺伝子断片（「機能的断片）の産物（ＲＮＡおよび／またはタンパク質）が発現され得ることを意味する。このためには、上記の遺伝子または遺伝子断片が、ベクターに含まれるか否かを問わず、ＤＮＡをＲＮＡに転写するための適切なシグナル配列を持つものでなければならない。さらに、この遺伝子または遺伝子断片によってコードされるタンパク質が患者の健康状態に影響する活性分子である場合、ＤＮＡも翻訳シグナルをコードする。
【００８１】
ほとんどの場合、遺伝子または遺伝子断片はベクターに含まれることになる。当業者であれば、所望のＲＮＡまたはタンパク質を発現させるのに使用できる発現ベクターを知っている。発現ベクターとは、そこに含まれるＤＮＡ配列の転写と、これによって得られるＲＮＡの翻訳とを指示することができるベクターである。発現ベクターは、遺伝的改変の対象となる細胞で複製でき、プラスミド、バクテリオファージ、ウイルス、ミニ染色体を含む。あるいは、遺伝子または遺伝子断片が細胞の染色体ＤＮＡの不可欠な部分になることもある。組換えベクターならびに方法論についてはおおむね周知である。
【００８２】
本願開示内容のタンパク質を発現させるのに有用な発現ベクターは複製起点を含む。適切に作出された発現ベクターは、細胞での自律複製の複製起点を含むか、あるいは宿主細胞の染色体と結合することができる。このようなベクターには、選択マーカー、限られた数の有用な制限酵素部位、強い高コピー数プロモーターも含まれることがある。プロモーターとは、ＤＮＡと結合してＲＮＡの合成を開始するようＲＮＡポリメラーゼに指令するＤＮＡ配列である。強いプロモーターはこのような開始を高い頻度で引き起こす。本願開示内容の発現ベクターは、本発明で使用されるＲＮＡまたはタンパク質をコードするＤＮＡと作動的に結合されている。すなわち、このベクターは、結合されたＤＮＡ分子の複製とこのＤＮＡ分子にコードされるＲＮＡまたはタンパク質の発現の両方を指令することができる。したがって、タンパク質について言えば、発現ベクターは、制御配列による制御下でのＤＮＡ分子の発現とこのＤＮＡ分子にコードされる所望のタンパク質の産生とを可能にする正しいリーディングフレームを維持しつつ、結合されたＤＮＡ分子の上流に適切な転写開始シグナルを持つものでなければならない。発現ベクターは、クローニングベクター、修飾（ｍｏｄｉｆｉｅｄ）クローニングベクター、特別に設計されたプラスミドまたはウイルスを含むがこれに限定されるものではない。好ましくは、挿入された遺伝子またはポリヌクレオチドの発現の量とタイミングとを制御できるように誘導性プロモーターを使用する。
【００８３】
細胞
遺伝的改変体に好ましい細胞に造血幹細胞（ＨＳＣ）がある。これらの細胞は、骨髄、末梢血または臍帯から得られるものであってもよいし、あるいは他のＨＳＣ源に由来するものであってもよく、自己由来であっても非自己由来であってもよい。また、自己由来であっても非自己由来であってもよい、リンパ球細胞、骨髄前駆細胞、上皮幹細胞も有用である。
【００８４】
非自己由来の（ドナー）細胞を用いる場合、胸腺再活性化のステップの間にこれらの細胞に対する寛容を作り出す。胸腺への性ステロイドによるシグナル伝達の遮断開始時または開始後に、遺伝的に改変された関連のドナー細胞をレシピエントに移植する。これらの細胞は胸腺によってレシピエントに属するものとして受容され、胸腺が産生する新たなＴ細胞およびＤＣの一部となる。このようにして得られるＴ細胞集団はレシピエントとドナーの両方を自己として認識するため、ドナーからの移植片に対する寛容が作られる。本願明細書に援用する、係属中の米国特許出願第０９／号を参照のこと。
【００８５】
遺伝的改変の方法
遺伝子療法に用いる細胞に、標準的な組換え方法を用いて遺伝的改変体を導入することができる。たとえば、培養したＨＳＣのレトロウイルスベクターによる形質導入が、功を奏する方法のひとつである（ＢｅｌｍｏｎｔおよびＪｕｒｅｃｉｃ、１９９７、Ｂａｈｎｓｏｎ，Ａ．Ｂ．ら、１９９７）。付加的なベクターとしては、アデノウイルス由来のベクターまたはレンチウイルス由来のベクター、モロニーマウス白血病ウイルス由来のベクターがあげられるが、これに限定されるものではない。
【００８６】
また、遺伝子銃を用いるなどの粒子による遺伝子導入（ＹａｎｇおよびＺｉｅｇｅｌｈｏｆｆｅｒ、１９９４）、リポソームによる遺伝子導入（Ｎａｂｅｌら、１９９２）、遺伝子組換えベクターとリン酸カルシウムとの共沈（ＧｒａｈａｍおよびＶａｎ Ｄｅｒ Ｅｂ、１９７３）、電気穿孔（Ｐｏｔｔｅｒら、１９８４）、マイクロインジェクション（Ｃａｐｅｃｃｈｉ、１９８０）ならびに、遺伝子が少なくともその時間の一部（ａｔ ｌｅａｓｔ ｐａｒｔ ｏｆ ｔｈｅ ｔｉｍｅ）に発現されるように好ましくはベクターの遺伝子またはオリゴヌクレオチドをＨＳＣに安定して導入できる他の方法も有用である。
【００８７】
予防
本願開示内容は、患者の胸腺を再活性化することで患者の感染を予防する、あるいは感染に対する耐性を高める方法を提供するものである。これは、胸腺への性ステロイドによるシグナル伝達を破壊することで達成される。この段階で、患者の免疫系を若返らせ、ウイルスおよびバクテリアなどの外来抗原に対するその応答を高める。これについては、たとえば図１０〜図１５に示す。同図には、胸腺の再活性化がマウスの免疫系に対してどのような影響をおよぼすかをウイルス（ＨＳＶ）負荷の形で示してある。事前に胸腺を再活性化させたマウスはＨＳＶ感染に対する耐性を示したが、胸腺を再活性化していない（老化胸腺）マウスではＨＳＶ感染レベルが高い。マウスの免疫系はヒトの免疫系に極めて似ていることは周知であり、マウスで得られた結果からヒトでの応答を推測することができる。これは、ヒトでの胸腺再活性化の影響についての上記に示したデータによって一層説得力のあるものとなる。
【００８８】
胸腺再活性化の間に未変性の造血細胞を患者に供給する、さらに別のステップでは、患者の体が持つ免疫能が高くなる。特に、遺伝子組換え細胞をレシピエントに投与することで、免疫系をさまざまな抗原に対して特異的に反応させることができる。遺伝子組換え細胞としては、造血幹細胞（ＨＳＣ）、上皮幹細胞または造血前駆細胞がありうる。好ましくは、遺伝子組換え細胞は、ＣＤ３４＋ ＨＳＣ、リンパ球前駆細胞または骨髄前駆細胞である。最も好ましくは、遺伝子組換え細胞はＣＤ３４＋ ＨＳＣである。遺伝子組換え細胞を患者に投与し、末梢血系を介して胸腺まで移行させる。このような造血前駆細胞の胸腺への取り込みは、性ステロイドの非存在下で実質的に増大する。これらの細胞は胸腺に受け入れられ、変化した細胞から遺伝的改変体を持つ樹状細胞およびＴ細胞を産生する。結果として、レシピエントの末梢血中を循環する所望の遺伝子変化のあるＴ細胞集団が得られ、これに伴って、患者の胸腺の再活性化によって生じる細胞、組織、臓器の集団が大きくなり、抗原に対して迅速かつ特異的に応答することができる。
【００８９】
骨髄およびＨＳＣへの影響
本願開示内容は、ＨＳＣの産生を増やすことを含む、患者で骨髄の産生を増やすための方法を提供するものである。これは、多数の用途で有用である。たとえば、癌に対するものであろうと他の目的であろうと、化学療法による厄介な副作用のひとつに、患者の骨髄に悪影響がおよぶ可能性がある。化学療法の線量次第では、骨髄が切除され、血球の産生が妨害されることがある。化学療法による処置の後で本発明によるＬＨＲＨ類縁体を一定の用量で投与すると、化学療法によって骨髄および血球に起こった損傷を元に戻す助けになる。あるいは、化学療法を施す前にＬＨＲＨ類縁体を投与すると、ＨＳＣおよび他の血球の集団が増えるため、化学療法による衝撃が緩和されることになる。
【００９０】
血液の癌を治療するための高線量化学療法などの化学療法の計画によっては、骨髄のアブレーションが所望の効果のひとつである。アブレーションが起こった直後に本発明の方法を使用し、骨髄を刺激すると同時にＨＳＣおよびその子孫の血球の産生量を増やし、患者の回復時間を短縮することができる。化学療法を施した後、通常はこの化学療法の作用が１日またはそれ以上の日数で患者の体から抜けるように、本願明細書で説明する方法による一定用量のＬＨＲＨ類縁体を患者に投与する。これを自家または異種起源の骨髄または造血幹細胞または前駆細胞ならびに幹細胞成長因子などの他の因子の投与と併用してもよい。
【００９１】
あるいは、患者の骨髄が「疲れて」おり、正常な量になるほどの十分な数のＨＳＣおよび他の血球を産生できないこともある。これは、通常の老化、感染の長期化、化学療法後、放射線療法後、癌を含む慢性疾患状態、遺伝子異常、移植によって誘導される免疫抑制などのさまざまな状態によって生じ得るものである。さらに、全身照射などの照射が骨髄の生産性に大きな影響を持つこともある。これらの条件については、事前に治療して負の作用を最小限に抑える（化学療法および／または放射線療法の場合など）か、作用が逆になる出来事の後に治療するかのいずれでも可能である。
【００９２】
小動物での研究
材料および方法
動物
モナッシュ大学のＣｅｎｔｒａｌ Ａｎｉｍａｌ ＳｅｒｖｉｃｅｓからオスのＣＢＡ／ＣＡＨマウスおよびＣ５７Ｂ１６／Ｊマウスを入手し、従来の条件下で飼育した。週齢は４〜６週間から２６ヶ月までの範囲であり、関連がある場合はこれを明記する。
【００９３】
性腺摘除
キシラジン（ロンプン；オーストラリアのニューサウスウェールズ州ボタニーのバイエルオーストラリアリミテッド）０．３ｍｇと塩酸ケタミン（ケタラール；オーストラリアのニューサウスウェールズ州Ｃａｒｉｎｇｂａｈのパークデービス）１．５ｍｇとを生理食塩水に入れた溶液０．３ｍｌを腹腔内注射し、動物を麻酔した。陰嚢を切開して精巣を露出させ、縫合糸で結紮した後、周囲の脂肪組織と一緒に摘出して外科的な性腺摘除を行った。
【００９４】
ブロモデオキシウリジン（ＢｒｄＵ）の取り込み
ＢｒｄＵ（ミズーリ州セントルイスのシグマケミカルコーポレーション）（ＰＢＳ１００μｌ中１００ｍｇ／体重ｋｇ）を４時間の間隔でマウスに２回腹腔内注射した。対照のマウスにはビヒクル単独の注射を行った。２回目の注射の１時間後、胸腺を切断解剖し、ＦＡＣＳ解析用に細胞浮遊液を生成するか、あるいはすみやかにＴｉｓｓｕｅ Ｔｅｋ（インディアナ州Ｏ．Ｃ．Ｔ．ｃｏｍｐｏｕｎｄ，Ｍｉｌｅｓ ＩＮＣ）に埋め込み、液体窒素中でスナップ凍結させ（ｓｎａｐ−ｆｒｏｚｅｎ）、使用するまで−７０℃で保管した。
【００９５】
フローサイトメトリーによる分析
マウスをＣＯ２窒息で屠殺し、胸腺、脾臓、腸間膜リンパ節を摘出した。器官を冷たいＰＢＳ／１％ＦＣＳ／０．０２％アジド中にて２００μｍの篩で静かに押しつぶし、遠心分離（６５０ｇ、５分、４℃）し、ＰＢＳ／ＦＣＳ／Ａｚのいずれか一方に再懸濁させた。赤血球溶解液（８．９ｇ／リットル塩化アンモニウム）中にて１０分間４℃で脾臓細胞をインキュベートし、洗浄し、ＰＢＳ／ＦＣＳ／Ａｚに再懸濁させた。血球計算盤と臭化エチジウム／アクリジンオレンジとを用いて細胞濃度および生存度を２回重複して求め、蛍光顕微鏡（Ａｘｉｏｓｋｏｐ；ドイツのオーバーコッヘンのカールツアイス）下で観察した。
【００９６】
３色免疫蛍光法では、抗αβＴＣＲ−ＦＩＴＣまたは抗γδＴＣＲ−ＦＩＴＣ、抗−ＣＤ４−ＰＥおよび抗−ＣＤ８−ＡＰＣ（いずれもカリフォルニア州サンディエゴのファーミンジェンから入手）を用いて常法に従って胸腺細胞を標識し、続いてフローサイトメトリー分析を行った。αβＴＣＲ−ＦＩＴＣ／ＣＤ４−ＰＥ／ＣＤ８−ＡＰＣまたはＢ２２０−Ｂ（シグマ）とＣＤ４−ＰＥおよびＣＤ８−ＡＰＣとのいずれかで脾臓およびリンパ節の懸濁液を標識した。カリフォルニア州バーリンゲームのカルタグラボラトリーズインコーポレイテッドから購入したストレプトアビジンＴｒｉ−ｃｏｌｏｒ複合体でＢ２２０−Ｂを発色させた。
【００９７】
ＢｒｄＵ検出では、ＣＤ４−ＰＥおよびＣＤ８−ＡＰＣで細胞を表面標識し、続いて、従来すでに説明されている（ＣａｒａｙｏｎおよびＢｏｒｄ、１９８９）ようにして固定および膜透過処理を行った。簡単に説明すると、染色した細胞を１％ＰＦＡ／０．０１％Ｔｗｅｅｎ−２０中にて４℃でＯ／Ｎに固定した。洗浄後の細胞を、ＤＮａｓｅ（１００Ｋｕｎｉｔｚ単位、西ドイツのベーリンガー・マンハイム）５００μｌ中にて３０分間３７℃でインキュベートし、ＤＮＡを変性させた。最後に、抗ＢｒｄＵ ＦＩＴＣ（ベクトン・ディッキンソン）を用いて細胞をインキュベートした。
【００９８】
４色免疫蛍光法では、抗ラットＩｇ−Ｃｙ５（英国、アマシャム）によって共通に検出される、ＣＤ３、ＣＤ４、ＣＤ８、Ｂ２２０およびＭａｃ−１で胸腺細胞を標識し、ネガティブ細胞（ＴＮ）を解析用に選び出した。これをさらにＣＤ２５−ＰＥ（ファーミンジェン）およびＣＤ４４−Ｂ（ファーミンジェン）で染色し、続いて、従来すでに説明されている（ＧｏｄｆｒｅｙおよびＺｌｏｔｎｉｋ、１９９３）ようにしてストレプトアビジンＴｒｉ−ｃｏｌｏｕｒ（カリフォルニア州、カルタグ）での染色を行った。次に、上述したようにしてＢｒｄＵ検出を行った。
【００９９】
ＦａｃｓＣａｌｉｂｕｒ（ベクトン・ディッキンソン）にて試料を分析した。０°および９０°の光散乱プロファイルに基づいて生存可能なリンパ球を選び出し、Ｃｅｌｌ ｑｕｅｓｔソフトウェア（ベクトン・ディッキンソン）を用いてデータを分析した。
【０１００】
免疫組織学
凍結保存した胸腺切片（４μｍ）を、クライオスタット（レイカ）を用いて切断し、１００％アセトン中にてすみやかに固定した。
【０１０１】
２色免疫蛍光法では、この実験室で生成したモノクローナル抗体のパネルである、ＭＴＳ ６、１０、１２、１５、１６、２０、２４、３２、３３、３５および４４（Ｇｏｄｆｒｅｙら、１９９０、表１）で切片を二重標識し、多価ウサギ抗サイトケラチンＡｂ（カリフォルニア州カーピンテリアのダコ）を用いて上皮細胞決定基の同時発現を評価した。結合したｍＡｂをＦＩＴＣ標識ヒツジ抗ラットＩｇ（Ｓｉｌｅｎｕｓ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ）と反応させ、抗サイトケラチンをＴＲＩＴＣ標識ヤギ抗ウサギＩｇ（Ｓｉｌｅｎｕｓ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ）と反応させた。
【０１０２】
ＢｒｄＵ検出では、切片を抗サイトケラチンに続いて抗ウサギＴＲＩＴＣで染色するか、あるいは特定のｍＡｂで染色し、これを抗ラットＩｇ−Ｃγ３（アマシャム）と反応させた。続いて、従来すでに説明されている（Ｐｅｎｉｔら、１９９６）ようにしてＢｒｄＵ検出を行った。簡単に説明すると、７０％エタノール中にて３０分間切片を固定した。半乾燥させた切片を４ＭのＨＣｌ中にてインキュベートし、ホウ酸緩衝液（シグマ）中で洗浄して中和し、続いてＰＢＳ中で２回洗浄した。抗ＢｒｄＵ−ＦＩＴＣ（ベクトン・ディッキンソン）を用いてＢｒｄＵを検出した。
【０１０３】
３色免疫蛍光法では、抗サイトケラチンと一緒に特定のＭＴＳ ｍＡｂで切片を標識した。次に、上述したようにしてＢｒｄＵ検出を実施した。
【０１０４】
レイカの蛍光顕微鏡とニコンの共焦点顕微鏡とを用いて切片を分析した。
【０１０５】
移行についての検討
キシラジン（ロンプン；オーストラリアのニューサウスウェールズ州ボタニーのバイエルオーストラリアリミテッド）０．３ｍｇと塩酸ケタミン（ケタラール；オーストラリアのニューサウスウェールズ州Ｃａｒｉｎｇｂａｈのパークデービス）１．５ｍｇとを生理食塩水に入れた溶液０．３ｍｌを腹腔内注射し、動物を麻酔した。
【０１０６】
胸腺細胞手法のＦＩＴＣ標識の詳細は他の資料に記載されているものと同様である（Ｓｃｏｌｌａｙら、１９８０；Ｂｅｒｚｉｎｓら、１９９８）。簡単に説明すると、胸腺の葉を露出させ、各葉に３５０μｇ／ｍｌＦＩＴＣ（ＰＢＳ中）約１０μｍを注射した。創傷を外科用ステープルで縫合し、完全に麻酔からさめるまでマウスを温めた。注射の約２４時間後にＣＯ２窒息によってマウスを屠殺し、リンパ系器官を分析用に摘出した。
【０１０７】
細胞数を計数した後、抗ＣＤ４−ＰＥおよび抗ＣＤ８−ＡＰＣで試料を染色し、続いてフローサイトメトリーで分析した。（自己蛍光細胞および重複物（ｄｏｕｂｌｅｔｓ）を排除するために）移行細胞をＣＤ４またはＣＤ８のいずれかを発現しているｌｉｖｅ−ｇａｔｅｄ ＦＩＴＣ＋細胞として同定した。ＦＩＴＣ＋ ＣＤ４細胞およびＣＤ８細胞のパーセンテージを加え、リンパ節と脾臓のそれぞれについて総移行率を求めた。また、Ｂｅｒｚｉｎｓら（１９９８）に説明されているようにして１日あたりの輸出速度を算出した。
【０１０８】
対応のないスチューデントのｔ検定またはノンパラメトリックなＭａｎｎ−Ｗｈｉｔｎｅｙ検定を用いて分析したデータを利用し、少なくとも３回重複して行った実験について対照と試験結果との間の統計的有意性を判定した。対照値とは有意に異なっている実験値を、＊ｐ≦０．０５、＊＊ｐ≦０．０１、＊＊＊ｐ≦０．００１として示す。
【０１０９】
結果
胸腺細胞個体群に対して年月がおよぼす影響
（ｉ）胸腺の重量および胸腺細胞数
時が経過するにつれて胸腺の重量（図１Ａ）と胸腺細胞の総数（図１Ｂ）がいずれも極めて有意に（ｐ≦０．０００１）減少する。若い成体での相対胸腺重量（胸腺ｍｇ／体重ｇ）は平均値で３．３４であり、これが１８〜２４月齢で０．６６まで減少する（脂肪が蓄積するため正確な計算には限度がある）。胸腺の重量が減少するのは胸腺細胞の総数が減少することによる可能性がある。１〜２月齢では胸腺の胸腺細胞数は〜６．７×１０７個であり、これが２４月齢までに細胞数〜４．５×１０６個まで減少する。性腺を摘除して胸腺に対する性ステロイドの影響を排除すると、再生が起こり、性腺摘除後４週間が経過するまでに胸腺は重量と細胞充実性のいずれも若い成体の場合と等しくなる（図１Ａおよび図１Ｂ）。興味深いことに、性腺摘除後２週間で胸腺細胞数は有意に（ｐ≦０．００１）増加（〜１．２×１０８）し、これが性腺摘除後４週間が経過するまでに正常な若い成体のレベルまで回復する（図１Ｂ）。
【０１１０】
胸腺で生成されるＴ細胞数が減少してもこれが末梢に反映されることはなく、末梢では時が経過しても脾臓細胞数は一定のままである（図２Ａ）。時が経過して末梢に到達するＴ細胞数が減少しても脾臓とリンパ節でのＢ細胞とＴ細胞との比には何ら影響がない（図２Ｂ）ため、末梢に恒常性の機序が働いていることは明らかであった。しかしながら、ＣＤ４＋Ｔ細胞とＣＤ８＋Ｔ細胞との比は時の経過に伴って２月齢の２：１から２年の時点での比１：１（図２Ｃ）まで有意に減少（ｐ≦０．００１）した。性腺摘除後に末梢に到達するＴ細胞数が増えても末梢のＴ細胞数には何ら変化は観察されなかった。性腺摘除後、脾臓のＴ細胞数は変化せず、Ｂ細胞：Ｔ細胞の比も脾臓とリンパ節のいずれにおいても変化しなかった（図２Ａおよび図２Ｂ）。性腺摘除後２週間が経過した時点で末梢のＣＤ４：ＣＤ８比の経時的な減少は依然として顕著であったが、これは性腺摘除後４週間が経過するまでに完全に反転した（図２Ｃ）。
【０１１１】
（ｉｉ）αβＴＣＲ、γδＴＣＲ、ＣＤ４およびＣＤ８の発現
時の経過に伴って見られる胸腺細胞数の減少が特定の細胞個体群が枯渇した結果として生じたものであるか否かを判定するために、特徴のあるマーカーで胸腺細胞を標識して別々の部分母集団を分析できるようにした。また、これによって性腺摘除後の胸腺再増殖の動力学を分析できるようになった。主な胸腺細胞部分母集団の割合を正常な若い胸腺の割合と比較した（図３）ところ、時が経過しても均一のままであることが明らかになった。また、αβＴＣＲおよびγδＴＣＲの発現によって胸腺細胞がさらに分割されてもこれらの個体群の割合には経時的に何ら変化がないことが明らかになった（データ図示せず）。性腺摘除後２週間および４週間の時点で、胸腺細胞の部分母集団は同じ割合のままであり、胸腺細胞数が性腺摘除後に最大１００倍まで増加するため、すべての胸腺細胞サブセットが徐々に増えるのではなく同期的に増えることが分かる。
【０１１２】
したがって、高齢動物の胸腺で細胞数の減少が認められるのは、Ｔ細胞個体群に有意な変化が検出されることなくあらゆる細胞表現型がバランスよく減少した結果であるように思われる。胸腺の再生は、すべてのＴ細胞部分母集団を逐次的ではなく同時に補充しながら同期的に行われる。
【０１１３】
胸腺細胞の増殖
図４に示されるように、４〜６週齢で胸腺細胞の１５〜２０％が増殖している。このうちの大半（〜８０％）はＤＰであり、ＴＮサブセットが〜６％（図５Ａ）で二番目に大きい個体群を構成している。したがって、免疫組織学的には大半の分裂が被膜下および皮質に見られる（データ図示せず）。髄領域にも若干の分裂が見られ、ＦＡＣＳ分析によって分裂しているＳＰ細胞の割合（ＣＤ４Ｔ細胞９％とＣＤ８Ｔ細胞２５％）が明らかになっている（図５Ｂ）。
【０１１４】
老化胸腺では細胞数が有意に減少するが、胸腺細胞の増殖は一定のままであり、２年で１２〜１５％まで減少（図４）し、増殖中の個体群の表現型は２ヶ月の胸腺（図５Ａ）に似ている。１歳での分裂が若い成体に見られる分裂を反映していることが免疫組織学的に明らかになったが、２年の時点では、増殖は主に外皮質で見られ、脈管系を囲んでいる（データ図示せず）。性腺摘除後２週間の時点で、胸腺細胞数は有意に増加するが、増殖している胸腺細胞の割合には変化がないことから、ここでも細胞が同期増殖していることが分かる（図４）。性腺摘除後２週間が経過するまでに、胸腺細胞増殖の局在位置と分裂している細胞が２月齢の胸腺の状況を真似る度合いとが免疫組織学的に明らかになった（データ図示せず）。増殖中の個体群を示す各部分母集団の割合を分析すると、増殖中の個体群に含まれるＣＤ８Ｔ細胞のパーセンテージに有意な（ｐ＜０．００１）増加が認められた（２月齢および２歳で１％、性腺摘除後２週間で〜６％まで増加）（図５Ａ）。
【０１１５】
図５Ｂは、若いマウス、高齢マウス、性腺摘除を行ったマウスの各サブセットでの増殖の度合いを示している。ＤＮサブセットでは増殖の有意な（ｐ≦０．００１）崩壊がある（２ヶ月の時点で３５％であったものが２年までに４％へ）。ＣＤ８＋Ｔ細胞の増殖も有意に（ｐ≦０．００１）減少し、老化胸腺の髄では分裂の痕跡が認められないという免疫組織学による所見（データ図示せず）が反映されていた。性腺摘除後４週間が経過するまでにＤＮ増殖の減少が正常な若いレベルに戻ることはない。しかしながら、ＣＤ８＋Ｔ細胞サブセットでの増殖は性腺摘除後２週間の時点で有意に（ｐ≦０．００１）増加し、性腺摘除後４週間の時点で正常な若いレベルに戻っている。
【０１１６】
ＤＮサブセットでの増殖の減少について、マーカーＣＤ４４およびＣＤ２５を用いてさらに分析した。胸腺細胞の前駆細胞だけでなくＤＮ部分母集団にもαβＴＣＲ＋ＣＤ４−ＣＤ８胸腺細胞が含まれており、これがＳＰ細胞への遷移時に両方のコレセプターを下方制御していたと思われる（ＧｏｄｆｒｅｙおよびＺｌｏｔｎｉｋ、１９９３）。これらの成熟細胞を選び出すことで、真のＴＮコンパートメント（ＣＤ３−ＣＤ４−ＣＤ８−）を分析することができ、この分析によって時の経過に伴う増殖率または性腺摘除後における増殖率に何ら違いはないことが分かった（図５Ｃ）。しかしながら、ＣＤ４４およびＣＤ２５を発現している部分母集団を分析したところ、ＴＮ１サブセット（ＣＤ４４＋ＣＤ２５−）の増殖に正常な若い頃の２０％から１８月齢の時点での約６％への有意な（ｐ＜０．００１）減少が認められ（図５Ｄ）、これが性腺摘除後４週間が経過するまでに回復した。ＴＮ１サブセットで増殖が減少した分だけＴＮ２部分母集団（ＣＤ４４＋ＣＤ２５＋）では増殖が有意に（ｐ≦０．００１）増えたが、これも性腺摘除後２週間が経過するまでに正常な若いレベルに戻った（図５Ｄ）。
【０１１７】
胸腺の微小環境に対して年月がおよぼす影響
ポリクローナル抗サイトケラチンＡｂで二重標識した、ＭＴＳシリーズからのＭＡｂの包括的なパネルを用いる免疫蛍光法によって、時の経過に伴う胸腺の微小環境の変化について検討した。
【０１１８】
これらのＭＡｂによって認識される抗原については、胸腺の上皮サブセット、脈管関連（ｖａｓｃｕｌａｒ−ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ）抗原、支質細胞と胸腺細胞の両方に存在するものという３つのグループに細分化することができる。
【０１１９】
（ｉ）上皮細胞抗原
２年齢のマウス胸腺を抗ケラチン染色（ｐａｎ−上皮）したところ、上皮細胞の重篤な組織破壊が認められると共にはっきりと識別できる皮髄境界領域が欠如し、通常の胸腺アーキテクチャが失われていることが明らかになった。ＭＡｂ、ＭＴＳ １０（髄）、ＭＴＳ ４４（皮質）を用いてさらに分析を行ったところ、皮質のサイズが時の経過に伴って明らかに減少し、髄上皮にはそれほど大きな減少が見られない（データ図示せず）ことが分かった。上皮細胞のない領域またはケラチンネガティブエリア（ＫＮＡ、ｖａｎ Ｅｗｉｊｋら、１９８０；Ｇｏｄｆｒｅｙら、１９９０；Ｂｒｕｉｊｎｔｊｅｓら、１９９３．）が一層はっきりとしており、抗サイトケラチン標識で明らかなように老化胸腺のサイズが大きくなった。また、老化胸腺の見た目には胸腺上皮の「嚢胞状」構造があり、これは髄領域で特に顕著（データ図示せず）である。抗サイトケラチン染色によって、脂肪蓄積、胸腺サイズの激しい減少、皮髄境界領域の完全性の低下が疑う余地なく明らかに認められる（データ図示せず）。胸腺は性腺摘除後２週間が経過するまでに再生しはじめる。これは、胸腺の葉のサイズ、ＭＴＳ ４４によって明らかになる皮質上皮の増加、髄上皮の局在において明白である。髄上皮はＭＴＳ １０によって検出され、２週間の時点で皮質全体に散在したＭＴＳ １０で染色された上皮のサブポケットが依然として残っている。性腺摘除後４週間が経過するまでに、明確な髄および皮質があり、識別できる皮髄境界領域がある（データ図示せず）。
【０１２０】
ＭＴＳ ２０マーカーおよび２４マーカーで原始上皮細胞を検出（Ｇｏｄｆｒｅｙら、１９９０）し、老化胸腺の退化をさらに示すことができるのではないかと思われる。いずれもＥ１４に豊富に存在し、単離された髄上皮細胞クラスターを４〜６週間で検出するが、老化胸腺の強度を再度高める（データ図示せず）。性腺摘除後、これらの抗原はいずれも若い成体の胸腺でのレベルと同じレベルで発現され（データ図示せず）、ＭＴＳ ２０およびＭＴＳ ２４が皮髄境界領域に位置する上皮の不連続なサブポケットに逆戻りしている。
【０１２１】
（ｉｉ）脈管関連抗原
Ｔ細胞前駆細胞の胸腺への移行と成熟Ｔ細胞の胸腺から末梢への移出を血液胸腺障壁（ｂｌｏｏｄ−ｔｈｙｍｕｓ ｂａｒｒｉｅｒ）が担っているのではないかと考えられる。
【０１２２】
ＭＡｂ ＭＴＳ １５は胸腺の血管内皮に特異的であり、粒状の拡散染色パターン（Ｇｏｄｆｒｅｙら、１９９０）が得られる。老化胸腺では、ＭＴＳ １５の発現量が大幅に増え、脈拍数と血管・末梢脈管系スペースのサイズの増大を反映している（データ図示せず）。
【０１２３】
コラーゲン、ラミニン、フィブリノゲンなどの重要な構造・細胞接着分子を含む胸腺の細胞外マトリックスをｍＡｂ ＭＴＳ １６によって検出する。正常な若い胸腺全体に散在させると、ＭＴＳ １６の発現の性質が老化胸腺で一層広範囲かつ相関性のあるものになる。ＭＴＳ １６の発現は性腺摘除の２週間後にさらに亢進されるが、性腺摘除の４週間後には発現は２月齢の胸腺で見られる状況を表している（データ図示せず）。
【０１２４】
（ｉｉｉ）共有抗原
ＭＡｂ ＭＴＳ ６によって検出される、正常な若い胸腺でのＭＨＣ ＩＩの発現は、皮質上皮で強い陽性（粒状）であり（Ｇｏｄｆｒｅｙら、１９９０）、髄上皮では染色が弱い。老化胸腺ではＭＨＣ ＩＩの発現の減少が認められ、性腺摘除後２週間の時点で発現が実質的に増加する。性腺摘除後４週間が経過するまでに発現は再度減少し、２月齢の胸腺に類似して見える（データ図示せず）。
【０１２５】
胸腺細胞の移出
幼齢マウスではＴ細胞の約１％が毎日胸腺から移行する（Ｓｃｏｌｌａｙら、１９８０）。本願発明者らは、数は有意に（ｐ≦０．０００１）減少したが、１４月齢、さらには２年齢ですら、正常な幼齢マウスに匹敵する比例率で移行が起こっている（図５）ことを見出した。後から胸腺を出てきた細胞のＣＤ４：ＣＤ８比は２ヶ月の時点での〜３：１から２６ヶ月の時点での〜７：１に増大した。性腺摘除後１週間が経過するまでに、末梢に移出している細胞の数は実質的に増加し、全体としての移行率は１〜１．５％のままであった。
【０１２６】
実施例
以下の実施例は本発明による方法の具体的な例を示すものであり、実施例の記載内容に本発明を限定するものと解釈すべきではない。便宜上、これらの実施例では、胸腺への性ステロイドによるシグナル伝達を遮断するためのＬＨＲＨアゴニストの送達ならびにこれによって得られるＨＳＶ感染の予防について説明する。
【０１２７】
実施例１
性ステロイドアブレーション療法
異系のドナーが関与する場合、シクロスポリン療法などの免疫抑制療法を患者に施し、ドナー細胞の拒絶を防ぐ。
【０１２８】
ＬＨＲＨアゴニストを送達する形で患者に性ステロイドアブレーション療法を施した。これについては、Ｌｅｕｃｒｉｎ（デポ注射；２２．５ｍｇ）またはゾラデックス（インプラント；１０．８ｍｇ）のいずれかの形で、どちらも３ヶ月効果のある単回用量で与えた。この方法は、胸腺を再活性化できる程度まで性ステロイドレベルを低下させる上で有効であった。場合によっては、性ステロイドアブレーション療法を行っている間、性ステロイドの副腎での産生を抑える、Ｃｏｓｕｄｅｘ（５ｍｇ／日）などのサプレッサも１日１錠の量で送達する必要がある。副腎で産生される性ステロイドはヒトのステロイドの１０〜１５％前後を占めている。
【０１２９】
血液中の性ステロイドを最低値まで減少させるには約１〜３週間を要した。これと一致していたのは、胸腺の再活性化であった。場合によっては、さらに３ヶ月間にわたる注射／インプラントまで処置を延長する必要がある。
【０１３０】
実施例２
別の送達方法
ＬＨＲＨアゴニストを３ヶ月間デポまたはインプラント投与する代わりに、別の方法を用いてもよい。一例として、Ｅｒ：ＹＡＧレーザなどのレーザを患者の皮膚に照射し、表皮細胞の妨害作用が低減するように皮膚を焼灼または変質させることができる。
【０１３１】
Ａ．レーザアブレーションまたは変質：２枚の平らな共振器ミラーと、活性媒質としてのＥｒ：ＹＡＧ結晶と、電源と、レーザ光線の焦点を合わせるための手段とで構成される固体パルスＥｒ：ＹＡＧレーザを用いて、赤外線レーザ光パルスを形成した。レーザ光線の波長は２．９４ミクロンとした。シングルパルスを用いた。
【０１３２】
動作パラメータについては以下のとおりとした。１パルスあたりのエネルギを４０、８０または１２０ｍＪ、焦点での光線サイズを２ｍｍとし、１．２７、２．５５または３．８２Ｊ／ｃｍ２のエネルギフルエンスを得た。パルス時間幅を３００μｓとして、エネルギフルエンス率０．４２、０．８５または１．２７×１０４Ｗ／ｃｍ２を得た。
【０１３３】
続いて、一定量のＬＨＲＨアゴニストを皮膚に適用し、放射線照射部位に塗り拡げた。ＬＨＲＨアゴニストを放射線照射部位に保持できるようにこれを軟膏の形にしてもよい。任意に、アゴニストを閉塞パッチし、放射線照射部位上の適所にこれを保持するようにしてもよい。
【０１３４】
任意に、光線スプリッタを用いてレーザ光線を分岐させ、複数のアブレーションまたは変質部位を得るようにしてもよい。このようにすることで、皮膚をとおしてＬＨＲＨアゴニストを一層短時間で血流まで流動させることができる。部位数をあらかじめ決定し、所望の約３０日間のあいだ患者の系内にアゴニストを維持できるようにすればよい。
【０１３５】
Ｂ．圧力波：一定用量のＬＨＲＨアゴニストをプラスチック製の可撓性ワッシャ（直径約１インチ、厚さ約１／１６インチ）などの適当な容器に入れ、圧力波を作り出す予定の部位の皮膚にのせる。次に、この部位を厚さ約１ｍｍの黒いポリスチレンシートなどの標的材料で被覆する。Ｑスイッチ式固体ルビーレーザ（パルス持続時間は２０ｎｓであり、１パルスあたり最大２ジュールを生成可能）を用いてレーザ光線を生成し、これを標的材料に衝突させて１回の神経衝撃トランジェントを発生させる。黒いポリスチレンの標的はレーザ光を完全に吸収するため、皮膚はレーザ光に曝露されずに神経衝撃トランジェントにのみ曝露されることになる。このやり方では痛みは発生しない。アゴニストの循環血液濃度を維持すべく、上記の手順を毎日繰返してもよいし、必要に応じて行うようにしてもよい。
【０１３６】
実施例３
胸腺の再活性化を亢進するためのＨＳＣの投与
患者あるいは好ましくはドナーからＨＳＣを採取する。幹細胞成長因子（ＳＣＦ）の存在下におけるｅｘ ｖｉｖｏ培養によってこれらの細胞の数を任意に増やす。ＬＨＲＨアゴニスト送達の約１〜３週間後、胸腺が再活性化を開始する直前または再活性化を開始した時点で、最適には細胞約２〜４×１０６個／ｋｇの用量にて患者にＨＳＣを注射する。任意に、患者にＧ−ＣＳＦも注射し、ＨＳＣの増加を助けるようにしてもよい。再活性化された胸腺はＨＳＣを取り込み、ドナーＨＳＣをドナータイプのＴ細胞と樹状細胞とに変換し、患者のＨＳＣを患者タイプのＴ細胞と樹状細胞とに変換する。細胞死による排除を誘導する、あるいは免疫調節細胞による寛容を誘導することで、ドナーの樹状細胞は、レシピエントと反応する可能性のあるすべてのＴ細胞に寛容になる。
【０１３７】
実施例４
ＨＩＶ感染を防止するためのＨＳＣの遺伝的改変体
実用的であれば、細胞を採取する前にドナーに顆粒球コロニー刺激因子（Ｇ−ＣＳＦ）を１０μｇ／ｋｇの量で２〜５日間注射し、患者またはドナーの血液中のＨＳＣレベルを増やす。ドナーまたは患者の血液または骨髄から、好ましくはフローサイトメータまたは免疫磁気ビーズを用いてＣＤ３４＋ドナー細胞を精製する。フローサイトメトリーでドナー由来のＨＳＣをＣＤ３４＋として同定する。任意に、これらのＨＳＣをＳＣＦでｅｘ ｖｉｖｏにて増やしてもよい。
【０１３８】
ＨＩＶの複製を阻害することが明らかになっている（Ｂｏｎｙｈａｄｉら １９９７）ＨＩＶ−１のｒｅｖ遺伝子のトランスドミナント変異体形態であるＲｅｖＭ１０を含むようにレトロウイルスベクターを作出する。このベクターでトランスフェクトしたエコトロピックプロデューサー細胞を濾過し、得られた濾過上清に感染させることでアンフォトロピックベクター含有上清を生成する。回収されたＣＤ３４＋細胞を、ＩＬ−３、ＩＬ−６、ＳＣＦ（それぞれ１０ｎｇ／ｍｌ）を加えたＬＣＴＭ培地にて事前に２４時間刺激し、細胞が細胞サイクルに入るようにする。次に、ベクターを含有する上清を２〜３日間繰返し細胞に加え、ベクターを細胞に形質導入できるようにする。
【０１３９】
ＬＨＲＨアゴニスト送達の約１〜３週間後、胸腺が再活性化を開始する直前または胸腺が再活性化を開始した時点で、最適には細胞約２〜４×１０６個／ｋｇの用量で、患者に遺伝的に修飾したＨＳＣを注射する。任意に、レシピエントにＧ−ＣＳＦも注射し、ＨＳＣの増加を助けるようにしてもよい。再活性化された胸腺は遺伝子組換えＨＳＣを取り込み、これをドナータイプのＴ細胞と樹状細胞とに変換する一方で、レシピエントのＨＳＣをレシピエントタイプのＴ細胞と樹状細胞とに変換する。細胞死によって欠失を誘導するか、あるいは免疫調節細胞によって寛容を誘導することによって、ドナーの樹状細胞は潜在的にレシピエントに対して反応性であるＴ細胞に寛容になる。
【０１４０】
実施例５
ドナー細胞を用いる場合の免疫抑制の終了
胸腺のキメラが構築されて胸腺に成熟Ｔ細胞の新たなコホートが現れ始めたら、患者から血液を採取し、標準的な混合リンパ球反応で、ドナー細胞に対する応答性がＴ細胞に欠けているかどうかをｉｎ ｖｉｔｒｏにて確認する。応答がなければ、免疫抑制療法を徐々に縮小し、感染に対して防御できるようにする。血液中に活性化Ｔ細胞が存在することである程度は分かる拒絶の徴候が認められなければ、最終的には免疫抑制療法を完全に中止する。ＨＳＣには強い自己更新能力があるため、このように形成される造血キメラは、（健常で移植を行っていない、寛容を誘導していない人々の場合のように）理論的には患者の生涯をとおして安定することになる。
【０１４１】
実施例６
ＬＨＲＨアゴニストを用いてヒト胸腺を再活性化
本発明による方法でヒトの胸腺を再活性化できることを示すために、前立腺癌に対する化学療法での治療を受けてきた患者でこれらの方法を用いた。性ステロイドアブレーション療法を施す前と４ヶ月後とにこの前立腺癌患者を評価した。結果を図２３〜図２７にまとめておく。全体的にみて、これらのデータから、多くの患者でＴ細胞の状態が定量的かつ定性的に改善されることがわかる。
【０１４２】
ＬＨＲＨ療法がリンパ球とそのＴ細胞のサブセットの総数に対しておよぼす影響 前立腺癌のＬＨＲＨアゴニスト処置を受けている患者（全体＞６０歳）にて末梢血リンパ球の表現型組成（ｐｈｅｎｏｔｙｐｉｃ ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎ）を分析した（図２３）。処置前とＬＨＲＨアゴニスト処置開始の４ヶ月後に患者の試料を分析した。処置前には患者全員で血液１ｍｌあたりのリンパ球細胞の総数が対照値の下端であった。処置後、９名中６名の患者に総リンパ球数の実質的な増加が認められた（事例によっては総細胞数の倍増が観察された）。これと相関しているのが、９名中６名の患者における総Ｔ細胞数の増加であった。ＣＤ４＋サブセットでは、この上昇が９名中８名の患者でさらに目立っていることから、ＣＤ４＋Ｔ細胞のレベルが上昇していることが分かった。ＣＤ８＋サブセットでは、全体的にＣＤ４＋Ｔ細胞の場合よりも程度が低いとはいえ、９名中４名の患者でレベルが上昇するという、それほど特徴的ではない傾向が認められた。
【０１４３】
ＬＨＲＨ療法がＴ細胞サブセットの割合におよぼす影響
ＬＨＲＨアゴニスト処置の前後に患者の血液を分析したところ、処置後に、Ｔ細胞、ＣＤ４＋Ｔ細胞またはＣＤ８＋Ｔ細胞の全体的な割合には実質的な変化が認められず、ＣＤ４＋：ＣＤ８＋比にはさまざまな変化があった（図２４）。このことから、処置後に総Ｔ細胞数が実質的に増加するにもかかわらず、処置を行ってもＴ細胞サブセットの恒常性維持にはほとんど影響しないことが分かる。値はいずれも対照値に対する相対的なものとした。
【０１４４】
ＬＨＲＨ療法がＢ細胞および骨髄細胞の割合におよぼす影響
ＬＨＲＨアゴニスト処置を受けている患者の末梢血に含まれるＢ細胞および骨髄細胞（ＮＫ、ＮＫＴおよびマクロファージ）の割合を分析したところ、サブセットごとにさまざまな度合いで変化することが分かった（図２５）。ＮＫ、ＮＫＴ、マクロファージの割合は処置後も比較的一定のままであったが、Ｂ細胞の割合は９名中４名の患者で減少した。
【０１４５】
ＬＨＲＨアゴニスト療法がＢ細胞および骨髄細胞の総数におよぼす影響
処置後に末梢血に含まれるＢ細胞と骨髄細胞の総細胞数を分析したところ、処置後に、ＮＫ（９名中５名の患者）、ＮＫＴ（９名中４名の患者）、マクロファージ（９名中３名の患者）で細胞数に明らかなレベルの上昇が認められた（図２６）。Ｂ細胞数については、９名中２名の患者でレベルが上昇し、９名中４名の患者では変化なし、９名中３名の患者ではレベルが低下するといった具合で、顕著な傾向は特に認められなかった。
【０１４６】
ＬＨＲＨ療法が記憶細胞に対するナイーブ細胞のレベルにおよぼす影響
ＬＨＲＨアゴニスト処置後に見られた主な変化は末梢血のＴ細胞個体群でのものであった。特に、ＣＤ４＋Ｔ細胞サブセットでのナイーブ（ＣＤ４５ＲＡ＋）と記憶（ＣＤ４５ＲＯ＋）との比が患者９名中６名で増加する、ナイーブ（ＣＤ４５ＲＡ＋）ＣＤ４＋細胞の割合の選択的な増加が認められた（図２７）。
【０１４７】
結論
このように、胸腺が萎縮したヒトなどの動物にＬＨＲＨアゴニスト処置を施すことによって、胸腺の再活性化を惹起することが可能だと結論付けることができる。性ステロイドアブレーション療法を受けた前立腺癌患者では血液のＴリンパ球の状態に全般的な改善が認められた。このような細胞が胸腺由来のものだけであるか否かを正確に判定するのは極めて困難であるが、主流の（ＣＤ８ αβ鎖）Ｔ細胞については他の起源が全く説明されていないため、これは極めて論理的な結論であろう。胃腸管Ｔ細胞は大部分がＴＣＲγδまたはＣＤ８αα鎖である。
【図面の簡単な説明】
【図１】
性腺摘除前後の胸腺細胞数の変化を示す図である。胸腺が萎縮した結果、時の経過に伴って胸腺細胞数が有意に減少する。細胞数は性腺摘除後２週間が経過するまでに若い成体のレベルまで増加した。性腺摘除後３週間が経過するまでに細胞数は若い成体の値から有意に増加し、性腺摘除後４週間が経過するまでに安定している。＊＊＊＝若い成体（２ヶ月）の胸腺とは有意に異なっている。ｐ＜０．００１。
【図２】
（Ａ）脾臓の数値は時が経過したり性腺を摘除したりしても一定のまま維持される。末梢のＢ：Ｔ細胞比も一定のままである（Ｂ）が、ＣＤ４：ＣＤ８比は時の経過に伴って有意に（ｐ＜０．００１）小さくなり、性腺摘除後４週間が経過するまでに正常な若い成体のレベルまで回復する。
【図３】
ＣＤ４対ＣＤ８胸腺細胞個体群の蛍光標示式細胞分取器（ＦＡＣＳ）の経時および性腺摘除後のプロファイルを示す図である。それぞれのプロットの上に各象限のパーセンテージを示してある。胸腺細胞の部分母集団は時が経過しても一定のままであり、性腺摘除後に胸腺細胞が同期的に増加する。
【図４】
ＢｒｄＵパルスを取り込ませて検出した場合の胸腺細胞の増殖を示す図である。増殖中の胸腺細胞の割合は時が経過したり性腺を摘除したりしても一定のままである。
【図５】
齢と性腺摘除とが胸腺細胞サブセットの増殖に対してどのような影響をおよぼすかを示す図である。（Ａ）増殖中の個体群全体を構成する各サブセットの割合――増殖中の個体群のうちＣＤ８＋Ｔ細胞の割合が有意に増加している。（Ｂ）増殖している各部分母集団のパーセンテージ――ＴＮサブセットとＣＤ８サブセットは２ヶ月目よりも２年の時点での増殖が有意に少ない。性腺摘除後２週間の時点で、ＴＮ個体群は若い頃の正常な増殖レベルに戻ったがＣＤ８個体群では増殖の有意な増加が認められる。このレベルは性腺摘除後４週間までに若い頃の正常なレベルと等しくなる。（Ｃ）ＴＮの増殖量は時が経過したり性腺を摘除したりしても全体として一定のままである。しかしながら、（Ｄ）ＴＮ１部分母集団では増殖が経時的に有意に減少し、性腺摘除後４週間が経過するまでには正常なレベルに戻らない。＊＊＊＝極めて有意、ｐ＜０．００１、＊＊＝有意、ｐ＜０．０１。
【図６】
マウスにＦＩＴＣを胸腺内注射した。２４時間後に末梢におけるＦＩＴＣ＋細胞の数を算出した。できたばかりの胸腺移行物（ＲＴＥ）の割合は一貫して胸腺細胞数年齢（ｔｈｙｍｕｓ ｃｅｌｌ ｎｕｍｂｅｒ ａｇｅ）の約１％に保たれて性腺摘除後２週間で有意に減少したが、ＲＴＥ細胞数は時の経過に伴って有意に（ｐ＜０．０１）減少した。性腺摘除後、これらの値は増加しているが、性腺摘除後２週間の時点で依然として若いマウスの場合よりも有意に低かった。時の経過に伴ってＣＤ４＋とＣＤ８＋ＲＴＥとの比の有意な増大が認められたが、これは性腺摘除後１週間が経過するまでに正常になった。
【図７】
化学療法剤であるシクロホスファミドで処置した後の胸腺（Ａ）、脾臓（Ｂ）、リンパ節（Ｃ）での細胞数の変化を示す図である。処置後１週間および２週間の時点で、非性腺摘除（シクロホスファミド単独）群と比較して性腺摘除を行った動物の方が胸腺で急激な増加が認められる点に注意されたい。また、シクロホスファミド単独の群よりも摘除群の脾臓およびリンパ節での数値がかなり増加した。細胞数は４週間が経過するまでに正常になる（処置群ごとにそれぞれの時点でｎ＝３〜４）。
【図８】
外科的な性腺摘除後１週間で放射線照射（６２５ラド）した後の胸腺（Ａ）、脾臓（Ｂ）、リンパ節（Ｃ）での細胞数の変化を示す図である。処置後１週間および２週間の時点で、非性腺摘除（放射線照射単独）群と比較して性腺摘除を行った動物の方が胸腺で急激な増加が認められる点に注意されたい。（処置群ごとにそれぞれの時点でｎ＝３〜４）。
【図９】
放射線照射と性腺摘除とを同日に行った後の胸腺（Ａ）、脾臓（Ｂ）、リンパ節（Ｃ）での細胞数の変化を示す図である。処置後２週間の時点で、非性腺摘除群と比較して性腺摘除を行った動物の方が胸腺で急激な増加が認められる点に注意されたい。しかしながら、観察された差異は処置の１週間前にマウスに性腺摘除を施した場合（図７）ほど顕著ではない。（処置群ごとにそれぞれの時点でｎ＝３〜４）。
【図１０】
化学療法剤であるシクロホスファミドと外科的な性腺摘除または化学的な性腺摘除とを同日に行う処置後の胸腺（Ａ）、脾臓（Ｂ）、リンパ節（Ｃ）での細胞数の変化を示す図である。処置後１週間および２週間の時点で、非性腺摘除（シクロホスファミド単独）群と比較して性腺摘除を行った動物の方が胸腺で急激な増加が認められる点に注意されたい。また、シクロホスファミド単独の群よりも摘除群の脾臓およびリンパ節での数値がかなり増加した。（処置群ごとにそれぞれの時点でｎ＝３〜４）。化学的な性腺摘除は、シクロホスファミド処置後の免疫系の再生という点では外科的な性腺摘除に匹敵する。
【図１１】
単純ヘルペスウイルス１型（ＨＳＶ−１）でのフットパッド免疫付与後のリンパ節の細胞充実性を示す図である。高齢の非性腺摘除群よりも高齢の性腺摘除後の方が細胞充実性が高くなった点に注意されたい。一番下のグラフは、ＣＤ２５対ＣＤ８細胞についてＦＡＣＳで選び出した活性化細胞の総数を示している。
【図１２】
ＨＳＶ−１接種後に活性化されたＬＮ（リンパ節）のＣＴＬ（細胞障害性Ｔ細胞）におけるＶβ１０の発現について示す図である。高齢マウスでクローン反応が減少し、予想した応答が性腺摘除後に元通りになる点に注意されたい。
【図１３】
性腺摘除によってＨＳＶ−１免疫付与に対する応答性が回復する。（ａ）高齢マウスでは、若いマウスおよび性腺摘除後のマウスと比較して感染後にリンパ節の細胞充実性全体の有意な減少が認められた。（ｂ）ＨＳＶ−１感染マウスのＬＮにおける活性化（ＣＤ８＋ＣＤ２５＋）細胞の代表的なＦＡＣＳプロファイルである。時が経過するにつれ、あるいは性腺摘除によって、活性化ＣＴＬの割合には何ら差異は認められなかった。（ｃ）高齢マウスのリンパ節での細胞充実性低下が活性化ＣＴＬ数の有意な減少という形で表れてきた。高齢マウスでは性腺摘除によってＨＳＶ−１に対する免疫応答が回復し、ＣＴＬ数は若いマウスの場合に匹敵していた。結果については８〜１２体のマウスの平均±１ＳＤで示す。＊＊＝若い（２月齢）マウスに対してｐ≦０．０１、＾＝高齢（非性腺摘除）マウスに対してｐ≦０．０１。
【図１４】
ＨＳＶ−１で免疫付与したマウスから膝窩リンパ節を取り出し、３日間培養した。バックグラウンドレベルの溶解（５１Ｃｒ放出量で判定）について免疫付与していないマウスを対照として用いてＣＴＬアッセイを実施した。結果を８体のマウスの平均として±１ＳＤで３組（ｉｎ ｔｒｉｐｒｉｃａｔｅ）示す。高齢マウスではＥ：Ｔ比１０：１および３：１のどちらでもＣＴＬ活性の有意な（ｐ≦０．０１，＊）低減が認められたことから、リンパ節内に存在する特定のＣＴＬのパーセンテージが減少したことが分かる。高齢マウスでは、性腺摘除によってＣＴＬ応答が若い成体のレベルまで回復した。
【図１５】
ＨＳＶ−１感染に対するＣＤ４＋Ｔ細胞の助けとＶβＴＣＲ応答とについての分析内容を示す図である。ＨＳＶ−１感染後にＤ５で膝窩リンパ節を取り出し、（ａ）ＣＤ２５、ＣＤ８および特定のＴＣＲＶβマーカーおよび（ｂ）ＣＤ４／ＣＤ８Ｔ細胞の発現をｅｘ−ｖｉｖｏにて分析した。（ａ）Ｖβ１０またはＶβ８．１を発現している活性化（ＣＤ２５＋）ＣＤ８＋Ｔ細胞のパーセンテージを１群あたり８体のマウスの平均±１ＳＤとして示す。時が経過するにつれ、あるいは性腺摘除によって、何ら差異は認められなかった。（ｂ）休眠状態のＬＮ個体群では時が経過するにつれてＣＤ４／ＣＤ８比の減少が認められた。これは性腺摘除後に回復した。結果を１群あたり８体のマウスの平均±１ＳＤとして示す。＊＊＊＝若いマウスおよび性腺摘除マウスに対してｐ≦０．００１。
【図１６】
Ｌｙ５近交系マウスの骨髄移植後の胸腺（Ａ）、脾臓（Ｂ）、リンパ節（Ｃ）、骨髄（Ｄ）での細胞数の変化を示す図である。処置後のすべての時点で、非性腺摘除群と比較して性腺摘除を行った動物の方が胸腺で急激な増加が認められる点に注意されたい。また、シクロホスファミド単独の群よりも摘除群の方が脾臓およびリンパ節での数値がかなり増加した（処置群ごとにそれぞれの時点でｎ＝３〜４）。性腺摘除を行ったマウスでは、非性腺摘除動物の場合（データ図示せず）よりも近交系の（Ｌｙ５．２）細胞が有意に増加した。
【図１７】
胎仔肝臓再構築後に性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスの胸腺細胞数の変化を示す図である。（各被験群についてｎ＝３〜４）。（Ａ）２週間の時点で、性腺摘除を行ったマウスの胸腺細胞数は正常なレベルであり、性腺摘除を行っていないマウスの場合よりも有意に（＊ｐ≦０．０５）高かった。４週間後に性腺摘除を行ったマウスで胸腺の肥大が観察された。性腺摘除を行っていない方の細胞数は対照レベル未満のままである。（Ｂ）ＣＤ４５．２＋細胞――ＣＤ４５．２＋はドナー由来を示すマーカーである。再構築の２週間後、性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスの両方にドナー由来の細胞が存在した。処置の４週間後、性腺摘除を行った方の胸腺細胞の約８５％がドナー由来であった。性腺摘除を行っていない方の胸腺にはドナー由来の細胞がなかった。
【図１８】
致死量放射線照射および胎仔肝臓再構築後に外科的な性腺摘除を行った後のＣＤ４対ＣＤ８ドナー由来の胸腺細胞個体群のＦＡＣＳプロファイルを示す図である。それぞれのプロットの右側に各象限のパーセンテージを示してある。同年齢の対照プロファイルは８月齢のＬｙ５．１近交系マウス胸腺のものである。性腺摘除を行ったマウスおよび性腺摘除を行っていないマウスのプロファイルをＣＤ４５．２＋細胞について選び出し、ドナー由来の細胞のみを示す。再構築の２週間後、性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスとで胸腺細胞の部分母集団に違いはない。
【図１９】
致死量放射線照射、胎仔肝臓再構築および性腺摘除後の骨髄およびリンパ球の樹状細胞（ＤＣ）数を示す図である。（各被験群についてｎ＝３〜４体のマウス）。以下の（ｆｏｌｌｏｗｉｎｇ）グラフにおける対照の（斜線）バーは同年齢の未処置マウスにおける樹状細胞の正常数を表している。（Ａ）ドナー由来の骨髄樹状細胞――再構築の２週間後、性腺摘除を行っていないマウスでＤＣが正常なレベルで存在した。同じ時点でＤＣは性腺摘除を行ったマウスの方が有意に（＊ｐ≦０．０５）多かった。４週間の時点で、性腺摘除を行ったマウスではＤＣ数が対照レベルより高いままだった。（Ｂ）ドナー由来のリンパ球樹状細胞――再構築の２週間後、性腺摘除を行ったマウスのＤＣ数が性腺摘除を行っていないマウスの２倍であった。処置の４週間後、ＤＣ数は対照レベルより高いままだった。
【図２０】
性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスとについて、胎仔肝臓再構築後の骨髄での総細胞数と骨髄のＣＤ４５．２＋細胞数の変化を示す図である。各被験群についてｎ＝３〜４体のマウス。（Ａ）総細胞数――再構築の２週間後、骨髄細胞の数が正常になり、性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスとで細胞数に有意な差は認められなかった。再構築の４週間後、性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスとで細胞数に有意な（＊ｐ≦０．０５）差が認められた。（Ｂ）ＣＤ４５．２＋細胞数。再構築の２週間後、性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスとで骨髄中のＣＤ４５．２＋細胞数に有意な差は認められなかった。性腺摘除を行ったマウスでは、４週間の時点でＣＤ４５．２＋細胞数が多いままであった。同じ時点で性腺摘除を行っていないマウスにドナー由来の細胞はなかった。
【図２１】
性腺摘除を行ったマウスおよび性腺摘除を行っていないマウスの胎仔肝臓再構築後における骨髄中のＴ細胞、骨髄由来の樹状細胞、リンパ球由来の樹状細胞（ＤＣ）を示す図である。（各被験群についてｎ＝３〜４体のマウス）。以下のグラフにおける対照の（斜線）バーは同年齢の未処置マウスにおけるＴ細胞と樹状細胞の正常な数を表している。（Ａ）Ｔ細胞数――性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスのいずれも再構築の２週間後および４週間後に数値が減少した。（Ｂ）ドナー由来の骨髄樹状細胞――性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスのいずれも再構築の２週間後にＤＣ細胞数は正常であった。この時点で、性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスとで有意な数値差は認められなかった。（Ｃ）ドナー由来のリンパ球樹状細胞――再構築の２週間後および４週間後に数値は正常なレベルであった。２週間の時点で、性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスとで有意な数値差は認められなかった。
【図２２】
性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスの胎仔肝臓再構築後における脾臓での総細胞数と脾臓のドナー（ＣＤ４５．２＋）細胞数の変化を示す図である。（各被験群についてｎ＝３〜４体のマウス）。（Ａ）総細胞数――再構築の２週間後、細胞数は減少したが、性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスとで細胞数に有意な差は認められなかった。再構築の４週間後、細胞数は性腺摘除を行ったマウスで正常なレベルに近づいていた。（Ｂ）ＣＤ４５．２＋細胞数――再構築の２週間後、性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスとで脾臓のＣＤ４５．２＋細胞数に関して有意な差は認められなかった。性腺摘除を行ったマウスでは、４週間の時点でＣＤ４５．２＋細胞数が多いままであった。同じ時点で性腺摘除を行っていないマウスにドナー由来の細胞はなかった。
【図２３】
胎仔肝臓再構築後における脾臓のＴ細胞、骨髄由来の樹状細胞およびリンパ球由来の樹状細胞（ＤＣ）を示す図である。（各被験群についてｎ＝３〜４体のマウス）。以下のグラフにおける対照の（斜線）バーは同年齢の未処置マウスにおけるＴ細胞と樹状細胞の正常な数を表している。（Ａ）Ｔ細胞数――性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスのいずれも再構築の２週間後および４週間後に数値が減少した。（Ｂ）ドナー由来の（ＣＤ４５．２＋）骨髄樹状細胞――性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスのいずれも再構築の２週間後および４週間後にＤＣ細胞数は正常であった。２週間の時点で、性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスとで有意な数値差はなかった。（Ｃ）ドナー由来の（ＣＤ４５．２＋）リンパ球樹状細胞――再構築の２週間後および４週間後に数値は正常なレベルであった。２週間の時点で、性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスとで有意な数値差はなかった。
【図２４】
性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスの胎仔肝臓再構築後におけるリンパ節での総細胞数とリンパ節のドナー（ＣＤ４５．２＋）細胞数の変化を示す図である。（各被験群についてｎ＝３〜４）。（Ａ）総細胞数――再構築の２週間後、細胞数は正常なレベルであり、性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスとで有意な差はなかった。再構築の４週間後、性腺摘除を行ったマウスでは細胞数が正常なレベルであった。（Ｂ）ＣＤ４５．２＋細胞数――性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスとで再構築の２週間後にリンパ節のドナーＣＤ４５．２＋細胞数に有意な差はなかった。性腺摘除を行ったマウスでは、４週間の時点でＣＤ４５．２細胞数が多いままであった。同じ時点で性腺摘除を行っていないマウスにドナー由来の細胞はなかった。
【図２５】
性腺摘除を行ったマウスおよび性腺摘除を行っていないマウスの胎仔肝臓再構築後における腸間膜リンパ節のＴ細胞、骨髄由来の樹状細胞、リンパ球由来の樹状細胞（ＤＣ）を示す図である。（各被験群についてｎ＝３〜４体のマウス）。対照の（斜線）バーは同年齢の未処置マウスにおけるＴ細胞数と樹状細胞数である。（Ａ）性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスのいずれも再構築の２週間後および４週間後にＴ細胞数が減少した。（Ｂ）性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスのいずれもドナー由来の骨髄樹状細胞は正常であった。４週間の時点でこれらの細胞が減少した。２週間の時点で、性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスとで有意な数値差はなかった。（Ｃ）ドナー由来のリンパ球樹状細胞――再構築の２週間後および４週間後に数値は正常なレベルであった。２週間の時点で、性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスとで有意な数値差はなかった。
【図２６】
前立腺癌のＬＨＲＨアゴニスト処置を受けているヒトの患者（全体＞６０歳）にて末梢血リンパ球の表現型組成を分析した。処置前とＬＨＲＨアゴニスト処置開始の４ヶ月後に患者の試料を分析した。処置前には患者全員で血液１ｍｌあたりのリンパ球細胞の総数が対照値の下端であった。処置後、９名中６名の患者に総リンパ球数の実質的な増加が認められた（事例によっては総細胞数の倍増が観察された）。これと相関しているのが、９名中６名の患者における総Ｔ細胞数の増加であった。ＣＤ４＋サブセットでは、この上昇が９名中８名の患者でさらに目立っていることから、ＣＤ４Ｔ細胞のレベルが上昇していることが分かった。ＣＤ８＋サブセットでは、全体的にＣＤ４＋Ｔ細胞の場合よりも程度が低いとはいえ、９名中４名の患者でレベルが上昇するという、それほど特徴的ではない傾向が認められた。
【図２７】
ＬＨＲＨアゴニスト処置の前後にヒトの患者の血液を分析したところ、処置後に、Ｔ細胞、ＣＤ４Ｔ細胞またはＣＤ８Ｔ細胞の全体的な割合には実質的な変化が認められず、ＣＤ４：ＣＤ８比にはさまざまな変化があった。このことから、処置後に総Ｔ細胞数が実質的に増加するにもかかわらず、処置を行ってもＴ細胞サブセットの恒常性維持に対しては最小限の影響しかおよばないことが分かる。値はいずれも対照値に対する相対的なものとした。
【図２８】
ＬＨＲＨアゴニスト処置を受けているヒトの患者の末梢血に含まれるＢ細胞および骨髄細胞（ＮＫ、ＮＫＴおよびマクロファージ）の割合を分析したところ、サブセットごとにさまざまな度合いで変化することが分かった。ＮＫ、ＮＫＴ、マクロファージの割合は処置後も比較的一定のままであったが、Ｂ細胞の割合は９名中４名の患者で減少した。
【図２９】
処置後にヒトの患者の末梢血に含まれるＢ細胞と骨髄細胞の総細胞数を分析したところ、処置後に、ＮＫ（９名中５名の患者）、ＮＫＴ（９名中４名の患者）、マクロファージ（９名中３名の患者）で細胞数に明らかなレベルの上昇が認められた。Ｂ細胞数については、９名中２名の患者でレベルが上昇し、９名中４名の患者では変化なし、９名中３名の患者ではレベルが低下するといった具合で、顕著な傾向は特に認められなかった。
【図３０】
ＬＨＲＨアゴニスト処置後に見られた主な変化は末梢血のＴ細胞個体群でのものであった。特に、ＣＤ４＋Ｔ細胞サブセットでのナイーブ（ＣＤ４５ＲＡ＋）と記憶（ＣＤ４５ＲＯ＋）との比がヒトの患者９名中６名で増加する、ナイーブ（ＣＤ４５ＲＡ＋）ＣＤ４＋細胞の割合の選択的な増加が認められた。
【図３１】
さまざまなレーザパルスエネルギを用いた場合における皮膚のインピーダンスの低下について示す図である。フィット曲線を用いてデータを補間すると、１０ｍＪという低いエネルギを照射した皮膚で皮膚インピーダンスが低下する。
【図３２】
皮膚の医薬品透過について示す図である。インスリンを試料医薬品として用いた場合の皮膚の透過性は放射線照射によって大幅に亢進された。
【図３３】
皮膚に５−アミノレブリン酸（ＡＬＡ）を加え、１回の神経衝撃トランジェント後の皮膚の経時蛍光変化を示す図である。強度のピークは約６４０ｎｍに見られ、処置後２１０分経過すると（点線）高くなる。
【図３４】
神経衝撃トランジェントなしで５−アミノレブリン酸（ＡＬＡ）を加えた後の皮膚の経時蛍光変化を示す図である。どの時点をみても強度がわずかに変化するだけである。
【図３５】
５−アミノレブリン酸（ＡＬＡ）を加え、さまざまなピーク応力下での神経衝撃トランジェント後の皮膚の蛍光変化を比較した図である。表皮細胞の膜透過は最大応力に左右される。
技術分野
本願開示内容は、疾患予防の分野のものである。特に、本発明は、胸腺を再活性化して患者の免疫系を刺激し、任意に、造血幹細胞（ＨＳＣ）、造血前駆細胞、上皮幹細胞または骨髄の遺伝子療法を利用する分野のものである。
【０００２】
発明の背景
免疫系
免疫系の主な機能は、「外来」抗原を「自己」と区別し、これに応じて応答して生体を感染から保護することである。通常の免疫応答における一連のイベントでは、特定の抗原提示細胞（ＡＰＣ）によって外来抗原が小さなペプチド断片へと貪食分解され、ＡＰＣ表面の主要組織適合遺伝子複合体（ＭＨＣ）分子の溝に提示される。ＭＨＣ分子には、すべての有核細胞上に発現するクラスＩ分子（細胞障害性Ｔ細胞（Ｔｃ）によって認識される）と、主に免疫系の細胞によって発現されるクラスＩＩ分子（ヘルパーＴ細胞（Ｔｈ）によって認識される）とがある。Ｔｈ細胞はＡＰＣ上のＭＨＣ ＩＩ／ペプチド複合体を認識し、応答する。続いて、これらの細胞によって放出される因子が両方のＴｃ細胞または特定の抗原に特異な抗体産生Ｂ細胞活性化のいずれかを促進する。事実上すべての免疫応答においてＴｈ細胞がいかに重要かを最もよく示しているのがＨＩＶ／ＡＩＤＳである。この疾患ではＴｈ細胞がウイルスに破壊されることで死滅して重篤な免疫不全が起こり、最終的には死につながる。Ｔｈ（ならびに程度は低いがＴｃ）が不適切な形で発達すると、アレルギーや癌、自己免疫疾患などのさまざまな他の疾患につながる可能性がある。
【０００３】
抗原を認識する能力はＴリンパ球およびＢリンパ球の細胞膜レセプターにある。これらのレセプターは、個々のＴ細胞またはＢ細胞が各々独特な抗原レセプターを持つような形で、可能性のある多くの遺伝子が複雑な再配列を繰り返して無作為に生成される。実際に起こり得る多様性がこのように桁外れに多いことはすなわち、生体が遭遇するかもしれないあらゆる抗原に対して複数のリンパ球がさまざまな結合強度（親和性）でこれを認識し、さまざまな度合いで応答できるようになることを意味する。抗原レセプターの特異性は偶然に生じるものであるため、自己の抗原と反応するリンパ球によって生体が「自滅」しないのは何故なのかという問題が生じる。幸いにも、Ｔ細胞およびＢ細胞がそうするのを防ぐ機序がいくつかある。これらの細胞が集まると、免疫系が自己に対して寛容となる状況が生じるのである。
【０００４】
自己寛容の最も効率的な形態は、これらの細胞が生成される部位（Ｔ細胞であれば胸腺、Ｂ細胞であれば骨髄）において反応する可能性のあるリンパ球をすべて物理的に除去する（殺す）ことである。これは中枢寛容（ｃｅｎｔｒａｌ ｔｏｌｅｒａｎｃｅ）と呼ばれている。もうひとつの重要な寛容方法として、直接的またはさらに高い可能性としてサイトカインによって自己反応性細胞を阻害する調節Ｔｈ細胞によるものがある。事実上すべての免疫応答でＴヘルパー細胞による開始および調節が必要だとすれば、あらゆる寛容導入療法の主な目的はこれらの細胞を標的することであろう。同様に、Ｔｃは極めて重要な効果器細胞であるため、これらの細胞を生成することが抗癌療法や抗ウイルス療法などの方策の主な目的のひとつにある。
【０００５】
胸腺
胸腺はＴリンパ球産生の中心となる部位であるため、免疫系における重要な臓器だと言えるだろう。胸腺の役割として、骨髄由来の適当な前駆細胞を血液中から取り込み、この前駆細胞をＴ細胞抗原受容体（ＴＣＲ）の産生に必要な遺伝子再配列などのＴ細胞系譜に関与させることがあげられる。これに関連しているのが、Ｔ細胞数を増すことであらゆる外来抗原を認識して排除できる機会を増やす、驚くべき細胞分裂である。しかしながら、Ｔ細胞による抗原認識の奇妙な特徴のひとつに、Ｂ細胞とは異なり、ＴＣＲはＭＨＣ分子に物理的に結合したペプチド断片しか認識しない点がある。通常、これは自己ＭＨＣであり、この機能は胸腺で選択される。この過程は正の選択と呼ばれ、皮質上皮細胞だけにみられる特徴である。ＴＣＲが自己ＭＨＣ／ペプチド複合体との結合に失敗すると、Ｔ細胞は「無視」されて死滅する。Ｔ細胞が成熟していくためには、ＴＣＲによるシグナル伝達が多少なりとも必要なのである。
【０００６】
胸腺は、内部のＴ細胞のうち〜１％を毎日血流中に放出する、機能的免疫系には欠かせないものであるが、哺乳動物だけが持つ明らかな特異点のひとつに、性ステロイドが産生されると胸腺に重篤な萎縮が起こることがあげられる。これは幼い子どもにも起こり得るものであるが、思春期頃からが深刻である。健常な個体であれば、新たなＴ細胞が産生・放出されなくなっても常に臨床的な結果が出てくるとは限らない（ただし、免疫による障害は年齢を重ねるにつれて出現率と重篤度が高くなる）。ＡＩＤＳおよびこれに伴う化学療法や放射線療法でＴ細胞が大量に失われると、患者は免疫抑制された状態になるため、極めて疾患にかかりやすくなる。
【０００７】
しかしながら、多くのＴ細胞は発達して自己ＭＨＣ／ペプチド複合体を高い親和性で偶然に認識することができる。したがって、このようなＴ細胞は潜在的には自己反応性であり、多発性硬化症、関節炎、糖尿病、甲状腺炎、全身性エリテマトーデス（ＳＬＥ）などの重篤な自己免疫疾患の原因となりかねない。幸いなことに、胸腺では自己ＭＨＣ／ペプチド複合体に対するＴＣＲの親和性が高くなりすぎると、発達中の胸腺細胞の自殺的な活性化が惹起され、胸腺細胞がアポトーシスで死滅する負の選択と呼ばれるプロセスが発生する。これは中枢寛容と呼ばれている。このようなＴ細胞は胸腺ではまだ未成熟であるため、応答することなく死滅する。胸腺でこうした負の選択を引き起こし得る可能性が最も高いインデューサに、樹状細胞（ＤＣ）と呼ばれるＡＰＣがある。ＡＰＣの状態では、細胞は最も強いシグナルをＴ細胞に送達する。胸腺では、これによってＴ細胞がさらに成熟する末梢のリンパ系器官で欠失が生じ、ＤＣが活性化を引き起こす。
【０００８】
胸腺の萎縮
胸腺は神経内分泌系（Ｋｅｎｄａｌｌ、１９８８）との間における双方向の情報伝達に大きく影響される。胸腺の機能にとって特に重要なのが、栄養効果（甲状腺刺激ホルモンすなわちＴＳＨ、成長ホルモンすなわちＧＨ）と萎縮効果（黄体形成ホルモンすなわちＬＨ、卵胞刺激ホルモンすなわちＦＳＨの両方ならびに副腎皮質刺激ホルモンすなわちＡＣＴＨ）（Ｋｅｎｄａｌｌ、１９８８；Ｈｏｍｏ−Ｄｅｌａｒｃｈｅ、１９９１）を含む、脳下垂体、副腎、性腺の相互関係である。特に、胸腺生理学の特性のひとつに、思春期前後に体内を循環する性ステロイドの産生量が増えるのに比例して構造と機能とが徐々に衰えることがあげられる（ＨｉｒｏｋａｗａおよびＭａｋｉｎｏｄａｎ、１９７５；Ｔｏｓｉら、１９８２；Ｈｉｒｏｋａｗａら、１９９４）。ホルモンの正確な標的とホルモンが胸腺の萎縮を誘導する機序については、今のところ明らかになっていない。胸腺は末梢Ｔ細胞プールを産生して維持する中心となる部位であるため、免疫による障害の出現率が高齢者で増加している主な原因が上記の萎縮にあるのではないかと考えられてきた。特に、Ｔ細胞の細胞溶解活性や細胞分裂応答などのＴ細胞依存性免疫機能が低下することで明らかになる免疫系の欠如が認められると、これが以後の生涯で免疫不全や自己免疫疾患、腫瘍荷重の出現率が増える形で表れてくる（Ｈｉｒｏｋａｗａ、１９９８）。
【０００９】
胸腺の萎縮による影響は末梢においてもＴ細胞プールへの胸腺からの入力の減少という形で表れ、結果としてＴ細胞受容体（ＴＣＲ）レパートリーが少なくなる。また、サイトカインプロファイルの変動（Ｈｏｂｂｓら、１９９３；Ｋｕｒａｓｈｉｍａら、１９９５）、ＣＤ４＋サブセットおよびＣＤ８＋サブセットの変化、ナイーブＴ細胞ではなく記憶細胞への偏り（Ｍａｃｋａｌｌら、１９９５）も認められる。さらに、加齢に伴って、Ｔ細胞の枯渇後に免疫系が正常なＴ細胞数まで再生する能力が最終的に失われてしまうほど胸腺形成（ｔｈｙｍｏｐｏｉｅｓｉｓ）の効率が悪くなる（Ｍａｃｋａｌｌら、１９９５）。しかしながら、Ｄｏｕｅｋら（１９９８）による近年の研究で、胸腺の出力はヒトではおそらく老齢期でも起こるであろうことが明らかになった。すなわち、ＴＣＲ遺伝子再構成の摘出（ｅｘｃｉｓｉｏｎａｌ）ＤＮＡ産物を用いて、高齢患者でＨＩＶ感染後に新たに生成されて循環しているナイーブＴ細胞を示したのである。化学療法の経験のある患者では、思春期前の患者に比べて思春期後の患者で、Ｔ細胞プール、特にＣＤ４＋Ｔ細胞の再生速度が大幅に減少することから、上記出力の速度と以後の末梢Ｔ細胞プールの再生についてはさらに検討する必要がある（Ｍａｃｋａｌｌら、１９９５）。これは、ＴｉｍｍおよびＴｈｏｍａｎによる近年の研究（１９９９）でさらに実証されている。彼らは、骨髄移植（ＢＭＴ）後の老齢マウスではＣＤ４＋Ｔ細胞の再生が認められるが、胸腺でのナイーブＴ細胞の産生量が減ることと相まって、末梢の微小環境が老化することで記憶細胞に偏るのではないかということを示した。
【００１０】
胸腺は基本的に、さまざまな支質細胞（主に上皮細胞サブセット）の間に点在する発達中の胸腺細胞からなるものであり、この支質細胞によって微小環境が構成され、Ｔ細胞が最適な状態で発達するのに必要な成長因子と細胞間相互作用とが得られる。胸腺細胞と上皮サブセットとの間にその分化および成熟を左右する共生発達の関係（Ｂｏｙｄら、１９９３）があるということは、他方の状態に影響するかもしれない何らかの細胞型のレベルで性ステロイドの阻害が起こり得ることを意味する。放射線キメラを利用した過去の研究で、骨髄（ＢＭ）幹細胞は年齢に影響されず（Ｈｉｒｏｋａｗａ、１９９８；ＭａｃｋａｌｌおよびＧｒｅｓｓ、１９９７）、若いＢＭ細胞と同程度に胸腺再増殖の可能性があることが明らかになっているため、胸腺細胞自体の内部に固有の問題があるということは考えにくい。さらに、高齢動物の胸腺細胞にも少なくとも若干は分化能力が残っている（ＭａｃｋａｌｌおよびＧｒｅｓｓ、１９９７；ＧｅｏｒｇｅおよびＲｉｔｔｅｒ、１９９６；Ｈｉｒｏｋａｗａら、１９９４）。しかしながら、Ａｓｐｉｎａｌｌによる近年の研究（１９９７）で、ＴＣＲγ鎖の遺伝子再構成の段階で起こった前駆ＣＤ３−ＣＤ４−ＣＤ８−トリプルネガティブ（ＴＮ）集団に欠陥があることが明らかになった。
【００１１】
発明の開示
本願開示内容は、患者の胸腺を再活性化させ、末梢Ｔ細胞の機能面での状態を改善し、感染または免疫系での負荷誘発をより一層防御できるようにすることで、患者の病気を防ぐための方法を教示するものである。本願明細書において使用する「予防」、「予防の」は、感染因子によって引き起こされる疾患から患者を完璧に保護するならびにある程度保護することを意味する。遺伝子組換えＨＳＣ、リンパ球前駆細胞、骨髄前駆細胞または上皮幹細胞あるいはこれらの組み合わせ（本願明細書では、グループと各メンバを「ＧＭ細胞」と呼ぶ）を利用した任意の遺伝子療法を再活性化している胸腺に施し、特定の免疫性を作り出す。好ましい実施形態では、年齢の高い（思春期後）患者の萎縮胸腺を再活性化させる。この再活性化された胸腺はＨＳＣおよび骨髄細胞を血液から取り込み、胸腺でこれを新たなＴ細胞とＤＣの両方に変換できるようになる。
【００１２】
一態様において、本願開示内容は、患者の胸腺への性ステロイドによるシグナル伝達を破壊することを含む、患者において疾患の危険をなくすまたは減らすための方法を提供するものである。
【００１３】
一実施形態では、骨髄またはＨＳＣも患者に移植する。
【００１４】
一実施形態では、疾患が、定義された遺伝的な根拠を持つものである。
【００１５】
好ましい実施形態では、疾患は、ヒト免疫不全ウイルス（ＨＩＶ）などによるウイルス感染と、Ｔ細胞機能障害と、Ｔ細胞が直接的または間接的に数字上で減少するまたは機能的に弱くなる他の疾患または健康状態からなる群から選択されるＴ細胞障害である。
【００１６】
別の態様では、本願開示内容は、感染因子による感染を防止するための方法を提供するものである。感染因子の感染、活性、複製などやこれらの組み合わせに対して耐えるまたはこれを防ぐように遺伝的に改変されたＧＭ細胞を、胸腺の再活性化と同時に患者に注射する。
【００１７】
好ましい実施形態では、ＨＳＣを遺伝的に改変し、胸腺の再活性化時とその後で形成されるＴ細胞でＨＩＶに対する耐性を生む。たとえば、ＨＳＣを改変し、その産物が、ＨＩＶの感染、機能および／または複製にＴ細胞で干渉する遺伝子を含むようにする。これによって、ウイルスに対してある程度の耐性が付与されるため、ウイルスが引き起こす疾患が防止される。
【００１８】
別の態様では、本願開示内容は、性ステロイドによるシグナル伝達を破壊することによって胸腺を再活性化させるものである。一実施形態では、性腺摘除を用いて性ステロイドによるシグナル伝達を破壊する。好ましい実施形態では化学的な性腺摘除を用いる。別の実施形態では外科的な性腺摘除を用いる。性腺摘除によって、胸腺の状態が逆行して思春期前での状態に戻るため、胸腺が活性化されることになる。
【００１９】
特定の実施形態では、ＬＨＲＨのアゴニストまたはアンタゴニスト、抗エストロゲン抗体、抗アンドロゲン抗体を投与すること、受動（抗体）または能動（抗原）抗ＬＨＲＨワクチン接種またはこれらの組み合わせ（「ブロッカー」）によって、胸腺への性ステロイドによるシグナル伝達を遮断する。
【００２０】
好ましい実施形態では、徐放性ペプチド放出製剤によってブロッカー（単数または複数）を投与する。徐放性ペプチド放出製剤については一例がＷＯ９８／０８５３３号に開示されており、その内容を本願明細書に援用する。
【００２１】
本発明では、好ましい実施形態では、胸腺の再活性化の直前、胸腺の再活性化時または胸腺の再活性化の直後に、遺伝子組換えＨＳＣを患者に移植し、遺伝子組換えＴ細胞の新たな集団を作り出す。
【００２２】
発明の詳細な説明
本願開示内容は、患者の疾患を予防するための方法を含むものである。上述したように、年齢が高くなると（思春期後になると）胸腺が原因で生体の免疫系はピークよりも低いレベルで機能する。本願開示内容では、胸腺の再活性化を利用して免疫系の機能を改善することで、さまざまな外来因子での感染に対する耐性を高め、感染を予防する。場合によっては、感染を予防できないが、このような場合は、さらに強く回復の早い免疫系が生体を助けて感染の程度を抑え、その期間を短縮する。
【００２３】
場合によっては、本発明の方法で、遺伝的に改変した造血幹細胞、リンパ球前駆細胞、骨髄前駆細胞、上皮幹細胞またはこれらの組み合わせ（ＧＭ細胞）を利用し、特定の抗原による攻撃に対する耐性のある免疫系を作り出す。この実施形態が係属中の米国特許出願第０９／７５８，９１０号に記載されている。１種またはそれ以上の感染因子に対する耐性を作り出すまたは惹起する適切な遺伝子またはポリヌクレオチドを遺伝子操作し、幹細胞および／または前駆細胞にする。本発明の方法によって胸腺が再活性化中の患者に改変細胞を注射する。改変された幹細胞および前駆細胞が胸腺に取り込まれて変換され、Ｔ細胞や樹状細胞、胸腺で生成される他の細胞になる。これらの新しい細胞は各々親の幹細胞／前駆細胞の遺伝的改変体を含んでいるため、単数または複数の因子による感染に対する耐性がある。骨髄、血液、脾臓やリンパ節などの末梢リンパ系器官のＢ細胞も、性腺摘除から２週間以内に数が増加する。
【００２４】
レシピエントの胸腺を再活性化するには、胸腺への性ステロイドによるシグナル伝達を破壊すればよい。この破壊によって、レシピエントのホルモンの状態が逆行する。破壊を達成するための好ましい方法のひとつが性腺摘除によるものである。性腺摘除方法としては、化学的な性腺摘除と外科的な性腺摘除とがあげられるが、これに限定されるものではない。性腺摘除ステップの間または後でＧＭ細胞を患者に移植する。これらの細胞は胸腺によって患者に属するものとして受容され、胸腺が産生する新たなＴ細胞およびＤＣの一部となる。このようにして得られるＴ細胞集団には、幹細胞／前駆細胞に挿入された遺伝的改変体が含まれることになる。
【００２５】
胸腺を再活性化するための好ましい方法のひとつに、脳下垂体に対するＬＨＲＨの直接的および／または間接的な刺激作用を遮断することがあげられる。これはゴナドトロフィンＦＳＨおよびＬＨの喪失につながる。これらのゴナドトロフィンは通常、性腺に作用して性ホルモンを放出させ、特に女性の場合はエストロゲンを、男性の場合はテストステロンを放出させる。ＦＳＨおよびＬＨの喪失によって上記の放出が遮断されるのである。これによって生じる直接的な作用に性ステロイドの血漿濃度の瞬時降下があり、結果として胸腺に阻害信号が放出され続けることになる。そこで、（理想的には自家の）ＣＤ３４＋造血細胞を注射することで胸腺再成長の度合いを高め、動態を強めることができる。
【００２６】
本発明は、性ステロイドによって成熟して免疫系を持つ動物であればどのような種の動物にも（ヒトを含む）使用できるものであり、たとえば哺乳動物や有袋動物など、好ましくは大型の哺乳動物、最も好ましくはヒトがあげられる。
【００２７】
「再生」「再活性化」「再構築」という用語ならびにその派生語は、本願明細書では同義に用いられるものであり、萎縮した胸腺が活性状態に回復することを意味する。
【００２８】
本願明細書において使用する「性腺摘除」とは、生体での性ステロイドの産生と運搬を顕著に低減または排除することを意味する。これによって患者は胸腺が十分に機能している思春期前の状態に効率よく戻る。外科的な性腺摘除では患者の性腺を摘出する。
【００２９】
外科的な方法ほどの永続性はない性腺摘除方法のひとつに、一定期間のあいだ化学薬品を投与する方法があり、本願明細書ではこれを「化学的な性腺摘除」と呼ぶ。さまざまな化学薬品をこのように機能させることができる。化学薬品の送達時ならびにその後の一定期間のあいだ、患者のホルモン産生が停止する。好ましくは、化学薬品の送達終了時に性腺摘除を無効にする。
【００３０】
胸腺への性ステロイドによるシグナル伝達の破壊
容易に理解できるように、胸腺への性ステロイドによるシグナル伝達を当業者間で周知のいろいろな方法で破壊することができるため、そのうちいくつかを本願明細書で説明する。たとえば、胸腺での性ステロイド産生を阻害するか、あるいは１種またはそれ以上の性ステロイド受容体を遮断することで、性ステロイドアゴニストまたはアンタゴニスト、あるいは能動（抗原）または受動（抗体）抗性ステロイドワクチン接種を施す場合のように所望の破壊が達成される。性ステロイドの産生については、１種またはそれ以上の性ステロイド類縁体を投与して阻害することも可能である。臨床例の中には、物理的な性腺摘除によって性腺を永久的に除去する方がよいこともある。
【００３１】
好ましい実施形態では、性ステロイド類縁体、好ましくは黄体形成ホルモン放出ホルモン（ＬＨＲＨ）の類縁体を投与することによって、胸腺への性ステロイドによるシグナル伝達を破壊する。性ステロイド類縁体とこれを治療や化学的な性腺摘除に利用することについては周知である。このような類縁体としては、ブセレリン（ヘキスト）、シストレリン（ヘキスト）、デカペプチル（商品名デビオファーム；ボーフール・イプセン）、デスロレリン（バランスファーマシューティカルズ）、ゴナドレリン（エアスト）、ゴセレリン（商品名ゾラデックス；ゼネカ）、ヒストレリン（オルト）、リュープロライド（商品名ルプロン；アボット／ＴＡＰ）、リュープロレリン（Ｐｌｏｓｋｅｒら）、ルトレリン（ワイエス）、メテレリン（ＷＯ９１１８０１６）、ナファレリン（シンテックス）、トリプトレリン（米国特許第４，０１０，１２５号）などのＬＨＲＨ受容体（ＬＨＲＨ−Ｒ）アゴニストがあげられるが、これに限定されるものではない。また、ＬＨＲＨ類縁体としては、アバレリックス（Ａｂａｒｅｌｉｘ）（商品名プレナクシス；プラエシス）およびセトロレリックス（商品名；ゼンタリス）などのＬＨＲＨ−Ｒアンタゴニストもあげられるが、これに限定されるものではない。アゴニストの組み合わせ、アンタゴニストの組み合わせ、アゴニストとアンタゴニストとの組み合わせも含まれる。なお、上述した各参考文献の開示内容を本願明細書に援用する。現時点では上記類縁体がデスロレリン（米国特許第４４，２１８，４３９号に記載）であると好ましい。さらに包括的な一覧については、Ｖｉｃｋｅｒｙら、１９８４を参照のこと。
【００３２】
好ましい実施形態では、ＬＨＲＨ−Ｒアンタゴニストを患者に送達した後、ＬＨＲＨ−Ｒアゴニストを送達する。このプロトコールを用いると、性ステロイドの産生を抑える前に、アゴニストを投与することで発生し得る性ステロイド産生のスパイクが排除または制限される。別の実施形態では、ＬＨＲＨ−Ｒアンタゴニストを事前に投与するかまたは投与せずに、性ステロイド産生のスパイクをほとんど発生させないか全く発生させないＬＨＲＨ−Ｒアゴニストを使用する。
【００３３】
胸腺の再活性化を刺激することについては、基本的には性ステロイドの作用および／またはＬＨＲＨ類縁体の直接的な作用を阻害して行うものであるが、相互に作用して胸腺の作用を高めることのできる別の物質を含むと有用な場合もある。このような化合物としては、インターロイキン２（ＩＬ２）、インターロイキン７（ＩＬ７）、インターロイキン１５（ＩＬ１５）、上皮成長因子ファミリおよび線維芽細胞成長因子ファミリのメンバ、幹細胞成長因子、顆粒球コロニー刺激因子（ＧＣＳＦ）、ケラチノサイト成長因子（ＫＧＦ）があげられるが、これに限定されるものではない。これらの別の化合物（単数または複数）についてはＬＨＲＨ類縁体を最初に適用するときに１回だけ与えることを前提にしている。しかしながら、これらの物質１種類または２種類以上の組み合わせからなる投与量をさらに適当な時期に与え、胸腺をさらに刺激するようにしてもよい。また、胸腺特異性になるように標的してもよいステロイド受容体ベースのモジュレータを開発して使用してもよい。
【００３４】
胸腺改善ならびに免疫系全般の重要な特徴のひとつに、性ステロイドの破壊後に骨髄の機能も亢進する点がある。これには、ＨＳＣの産生および／または放出量の増加を含むがこれに限定されるものではない。これらのＨＳＣは、胸腺に移行し、胸腺形成の亢進の一助となることができる。
【００３５】
製薬組成物
本発明において用いる化合物は、薬学的に許容される何らかの担体に含有させて供給してもよいし、担体なしで供給してもよいものである。一例として、生理的に適合するコーティング、溶剤、希釈剤があげられる。非経口投与、皮下投与、静脈内投与、筋肉内投与では、カプセル化などによって組成物を保護してもよい。あるいは、活性成分の徐放を可能にしつつこれらの活性成分（単数または複数）を保護する担体と一緒に組成物を供給してもよい。さまざまなバージョンの乳酸／グリコール酸コポリマーなどの持続放出薬剤を調製するための多数のポリマーおよびコポリマーが従来技術において周知である。たとえば、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）の変性ポリマーを生分解性コーティングとして用いる米国特許第５，４１０，０１６号を参照のこと。
【００３６】
経口送達を意図した製剤であれば、液体、カプセル、錠剤などとして調製することが可能である。これらの組成物には、活性成分が分解されないように保護する、賦形剤、希釈剤および／または被膜などを含むことが可能である。これらの製剤は周知である。
【００３７】
どのような製剤であっても、ＬＨＲＨ類縁体の活性に悪影響をおよぼすことのない他の化合物を含むようにしてもよい。一例として、本願明細書にて説明するさまざまな成長因子および他のサイトカインがあげられる。
【００３８】
用量
このＬＨＲＨ類縁体は、一定の期間持続する単回用量で投与することが可能なものである。好ましくは製剤の薬効が１〜２ヶ月間であり、より好ましくは１〜３ヶ月である。血液中の性ステロイドを最低値まで減らすには、アゴニストを使う場合で約３週間、アンタゴニストを使う場合で１日要する。好ましい実施形態では、周期的な流行が続いている間は維持される用量にする。たとえば、通常は冬季が「インフルエンザシーズン」になる。本願明細書に記載のようにしてＬＨＲＨ類縁体の製剤を製造および送達し、インフルエンザシーズンの最初から２ヶ月以上患者を保護することができる。この場合、感染の危険性が小さくなるかなくなるまで２ヶ月に１回程度かそれ以上の期間をあけて追加投与するようにする。
【００３９】
標準用量は使用する類縁体のタイプによって決まる。通常、この用量は約０．０１μｇ／ｋｇから約１０ｍｇ／ｋｇであり、好ましくは約０．０１ｍｇ／ｋｇから約５ｍｇ／ｋｇである。用量は使用するＬＨＲＨ類縁体またはワクチンによって変わる。たとえば、男性では、現行の投薬条件下で、２１日目（胸腺亢進日の前）に一用量としてのゴセレリン１０．８ｍｇ（３ヶ月有効）を投与し、６３日目（胸腺亢進日の後）に３．６ｍｇをさらに注射し、これがさらに２８日間有効であるといった具合である。女性の場合、３／６ｍｇ（２８日間有効）を、１日目、７日目、３５日目、６３日目に投与する。
【００４０】
免疫系を強化するための製剤を製造することが可能である。あるいは、免疫系を強化する一方でインフルエンザウイルスによる感染を特異的に防止するための製剤を調製することが可能である。後者の製剤には、インフルエンザウイルスに対する耐性を生むべく作られてきたＧＭ細胞が含まれるであろう（下記参照）。ＧＭ細胞については、ＬＨＲＨ類縁体製剤との併用で投与することもできるし、あるいは空間的および／または時間的に別々に投与することもできる。非ＧＭ細胞の場合と同様に、長期にわたって複数回用量を患者に投与し、インフルエンザシーズンの最初から最後までインフルエンザウイルスによる感染から患者を保護し、感染を妨害することができる。
【００４１】
化学的な性腺摘除用薬剤の送達
本発明による化合物の送達は、当業者間で周知の多くの方法で達成可能なものである。化学的なインヒビターを投与して胸腺への性ステロイドによるシグナル伝達を阻害する標準的なやり方のひとつに、３ヶ月間有効なＬＨＲＨアゴニストを単回用量で用いる方法がある。この方法では、３ヶ月が経過するずっと前にアゴニストが患者の体から排泄されてしまうため、単純に１回のｉ．ｖ．（静脈内）またはｉ．ｍ．（筋肉内）注射を行うだけでは不十分なことがある。代わりにデポ注射またはインプラントを利用してもよいし、あるいは、インヒビターの徐放が可能な他のインヒビター送達手段。同様に、ここで必要な機能を保ちつつ、たとえば化学薬品を変性させるなどの方法で体内におけるインヒビターの半減期を延ばすための方法を利用してもよい。
【００４２】
さらに有用な送達機序の一例として、皮膚にレーザを照射する方法や皮膚表面で高圧神経衝撃トランジェント（ｈｉｇｈ ｐｒｅｓｓｕｒｅ ｉｍｐｕｌｓｅ ｔｒａｎｓｉｅｎｔ）（応力波または神経衝撃トランジェントとも呼ばれる）を発生させる方法があげられるが、これに限定されるものではない。いずれの方法でも、同じ場所に担体を併用または併用せずに、化合物（単数または複数）を接触させる処理を同時にまたは後から行う。好ましい接触方法のひとつに、処置を行っている間は皮膚の上にパッチを載せたままにしておく方法がある。
【００４３】
ひとつの送達手段では、適切な波長が維持され、厳密に焦点の合ったレーザ光線を利用して、患者の皮膚に小さなパーフォレーションを作るか、皮膚を変質させる。米国特許第４，７７５，３６１号、米国特許第５，６４３，２５２号、米国特許第５，８３９，４４６号、米国特許第６，０５６，７３８号を参照のこと（いずれも本願明細書に援用する）。好ましい実施形態では、レーザ光線の波長は０．２から１０ミクロンである。より好ましくは、波長は約１．５から３．０ミクロンである。最も好ましくは、波長は約２．９４ミクロンである。一実施形態では、レンズを用いてレーザ光線の焦点を合わせ、皮膚の表皮をとおして皮膚表面に照射スポットを形成する。別の実施形態では、レーザ光線の焦点を合わせ、皮膚の表皮細胞のみをとおして照射スポットを形成する。
【００４４】
本願明細書において使用する「アブレーション」および「パーフォレーション」とは、皮膚に形成された穴を意味する。このような穴については深さを変えることが可能である。たとえば表皮細胞のみを貫通するようにしてもよいし、皮膚の毛細管層まで全体を貫通するようにしてもよく、あるいはその間のいずれかの場所で終端してもよい。本願明細書において使用する「変質」とは、穴を形成することなく皮膚の透過性を高める、皮膚構造の変化を意味する。パーフォレーションと同様に、皮膚をどのような深さで変質させてもよい。
【００４５】
レーザ光線を規定するにあたって、波長、エネルギフルエンス、パルス時間幅および照射スポットサイズをはじめとする、いくつかの要素が考慮されることがある。好ましい実施形態では、エネルギフルエンスは０．０３〜１００，０００Ｊ／ｃｍ２の範囲である。より好ましくは、エネルギフルエンスは、０．０３〜９．６Ｊ／ｃｍ２の範囲である。光線の波長は、Ｅｒ：ＹＡＧなどのレーザ材料にある程度は左右される。パルス時間幅は、コンデンサ群、フラッシュランプ、レーザロッドの材料などによって生成されるパルス幅から必然的に得られる。パルス幅は１ｆｓ（フェムト秒）から１，０００μｓの間であると最適である。
【００４６】
この方法によれば、レーザで形成するパーフォレーションまたは変質を必ずしも１回のレーザパルスで形成しなくてもよい。好ましい実施形態では、表皮細胞をとおしてのパーフォレーションまたは変質を、各々が標的組織厚の一部のみを貫通または変化させる複数のレーザパルスを用いて形成する。
【００４７】
この目的を達成するために、パルス１回分のエネルギを求めて所望のパルス数で割ることで、複数のパルスで表皮細胞を貫通または変化させるのに必要なエネルギをおおざっぱに見積もることができる。たとえば、あるサイズのスポットで表皮細胞全体をとおしてパーフォレーションまたは変質を形成するのに１Ｊのエネルギが必要な場合、各々がそのエネルギの１／１０である１０のパルスを用いて定性的に同様のパーフォレーションまたは変質を形成することができる。放射線照射の間は患者が標的組織を動かさず、各パルスの間に生成される熱が有意に拡散しないことが望ましい（ヒトの反応時間は１００ｍｓ程度）ため、好ましい実施形態では、レーザからのパルスの繰り返し数を１００ｍｓ未満の時間で完全なパーフォレーションを形成できるような数にしなければならない。あるいは、標的組織とレーザの向きを機械的に固定し、これよりも長い放射線照射時間のあいだ標的位置の変化が起こらないようにすることも可能である。
【００４８】
血流をほとんど発生させないか全く発生させない形で皮膚を貫通するには、表皮細胞層などの外側の表面を介するが毛細管層ほど深部ではない位置で皮膚を穿孔または変質すればよい。このとき、皮膚での光線直径が約０．５ミクロン〜５．０ｃｍの範囲になるようにレーザ光線の焦点を皮膚に正確に合わせる。任意に、スポットを幅約０．０５〜０．５ｍｍで長さ最大２．５ｍｍのスリット形にしてもよい。幅はどのようなサイズであってもよく、除去対象となる流体または適用対象となる医薬品の所望の透過率と照射部分の組織構造とによって制御される。焦点レンズの焦点距離はどのような長さであってもよいが、一実施形態では３０ｍｍである。
【００４９】
波長、パルス長、エネルギフルエンス（レーザエネルギ出力（ジュール）および焦点での光線サイズ（ｃｍ２）の関数）、照射スポットサイズを調節することで、表皮細胞への影響をアブレーション（パーフォレーション）と非焼灼性の変性（変質）との間で変えることが可能である。表皮細胞のアブレーションと非焼灼性の変質はいずれもその後に適用される製剤の透過性を高めるものである。
【００５０】
たとえば、パルスエネルギ以外の変数を一定に維持したままパルスエネルギを小さくすると、組織への作用を焼灼性と非焼灼性との間で変化させることができる。パルス長約３００μｓのＥｒ：ＹＡＧレーザを用いて、パルスまたは輻射エネルギ１回分で２ｍｍのスポットを皮膚に照射する場合、パルスエネルギが約１００ｍＪを超えると部分的または完全なアブレーションが形成され、パルスエネルギが約１００ｍＪ未満であると部分的なアブレーションまたは非焼灼性の変質が表皮細胞に形成される。任意に、複数のパルスを利用して、体液の透過性を高めるのに必要または医薬品送達用の閾値パルスエネルギをパルス数にほぼ等しい分だけ減少させてもよい。
【００５１】
あるいは、スポットサイズ以外の変数を一定に維持したままスポットサイズを小さくしても、組織への作用を焼灼性と非焼灼性との間で変化させることができる。たとえば、スポット面積を半分にすることで同じ効果を得るのに必要なエネルギも半分になる。レーザの輻射出力を顕微鏡対物レンズ（ｍｉｃｒｏｓｃｏｐｅ ｏｂｊｅｃｔｉｖｅ）の対物レンズ（たとえばニューヨーク州メルビルのニコン社から入手可能なものなど）に結合することで、０．５ミクロンまで抑えて照射を行うことができる。このような場合、おおよそ顕微鏡の解像限界までのスポットに光線の焦点を合わせることができるが、これはおそらく約０．５ミクロン程度である。実際、光線のプロファイルがガウスであれば、対象となる照射部分のサイズを実測光線サイズよりも小さくすることができ、顕微鏡の画像解像度を超えることが可能なのである。この場合、組織を非焼灼的に変質させるには、エネルギフルエンスを３．２Ｊ／ｃｍ２にすると良いであろうと思われるが、この場合に二分の一ミクロンのスポットサイズであれば必要なパルスエネルギは約５ｎＪになる。このように低いパルスエネルギはダイオードレーザで容易に得ることができ、ガラスなどの吸収用フィルタを用いて光線を減衰させれば、Ｅｒ：ＹＡＧレーザなどでも得ることができるものである。
【００５２】
任意に、輻射エネルギの波長以外の変数を一定に維持したまま輻射エネルギの波長を変えることで、組織への作用を焼灼性と非焼灼性との間で変化させるようにしてもよい。たとえば、Ｅｒ：ＹＡＧ（エルビウム：ＹＡＧ；２．９４ミクロン）レーザの代わりにＨｏ：ＹＡＧ（ホルミウム：ＹＡＧ；２．１２７ミクロン）を使用すると組織によるエネルギの吸収量が小さくなり、少な目のパーフォレーションまたは変質が形成される。
【００５３】
レーザによって生成されるピコ秒およびフェムト秒のパルスを利用し、皮膚に変質またはアブレーションを形成するようにしてもよい。これは、時間幅１フェムト秒から１ｍｓの範囲で１回のパルスを送達する調節済みのダイオードまたは関連のマイクロチップレーザで達成可能なものである（パルス長を１フェムト秒まで抑えて用いることについて開示した、本願明細書に援用するＤ．Ｓｔｅｒｎらの「Ｃｏｒｎｅａｌ Ａｂｌａｔｉｏｎ ｂｙ Ｎａｎｏｓｅｃｏｎｄ，Ｐｉｃｏｓｅｃｏｎｄ， ａｎｄ Ｆｅｍｔｏｓｅｃｏｎｄ Ｌａｓｅｒｓ ａｔ ５３２ ａｎｄ ６２５ ｎｍ」、Ｃｏｒｎｅａｌ Ｌａｓｅｒ Ａｂｌａｔｉｏｎ、第１０７巻、第５８７〜５９２頁（１９８９）を参照のこと）。
【００５４】
もうひとつの送達方法では、皮膚での高圧神経衝撃トランジェントを利用して透過性を得る。本願明細書に援用する米国特許第５，６１４，５０２号および米国特許第５，６５８，８９２号を参照のこと。立ち上がり時間と最大応力（または圧力）とを定めた応力波（たとえばレーザで生成する場合はレーザ応力波（ＬＳＷ））などの高圧神経衝撃トランジェントを用いて、表皮細胞や粘膜などの上皮組織の層をとおして本願開示内容にあるものなどの化合物を安全かつ効率的に移動させることができる。これらの方法を利用すれば、正味電荷とは関係なく広範囲にわたるサイズの化合物を送達することができる。また、本方法で用いる神経衝撃トランジェントでは組織の損傷が回避される。
【００５５】
神経衝撃トランジェントに曝露する前は、表皮細胞などの上皮組織層は外来化合物を通さないことが多い。このため、上皮層よりも下にある細胞に化合物を拡散させることができない。上皮層を神経衝撃トランジェントに曝露すると、上皮層をとおして化合物を拡散させることができる。拡散速度は通常、神経衝撃トランジェントの性質と送達対象となる化合物のサイズとによって決まる。
【００５６】
皮膚の表皮細胞などの特定の上皮組織層をとおしての貫通速度も、ｐＨ、皮膚支持体組織の代謝、表皮細胞外の領域と表皮細胞内の領域との圧差ならびに皮膚の解剖組織上の部位および生理状態をはじめとする、ほかのいくつかの要因に左右される。さらに、皮膚の生理状態は、健康状態、年齢、性別、人種、スキンケア、病歴に左右される。たとえば、事前に有機溶剤または界面活性剤に触れると皮膚の生理状態に影響する。
【００５７】
また、上皮組織層をとおして送達される化合物の量も上皮層が透過性である時間と透過性にされる上皮層の表面積の大きさとに左右されることになる。
【００５８】
神経衝撃トランジェントの特性と特徴を、神経衝撃トランジェントを生成するエネルギ源によって制御する。本願明細書に援用するＷＯ９８／２３３２５号を参照のこと。しかしながら、この特徴は、神経衝撃トランジェントが伝播する接触媒質の線形特性と非線形特性とによって変わってくる。接触媒質によって生じる線形の減衰は主に神経衝撃トランジェントの高周波成分を減衰する。これによって帯域幅が小さくなり、これに伴って神経衝撃トランジェントの立ち上がり時間が長くなる。一方、接触媒質の非線形特性は立ち上がり時間を短くする。立ち上がり時間が短くなるのは、音と粒子の速度が応力（圧力）に依存するためである。応力が大きくなると、音と粒子の速度も上昇する。これによって神経衝撃トランジェントの立ち上がりが急勾配になる。立ち上がり時間の急勾配の増加を実質的なものとするのに波をどのくらいの時間伝搬させることになるかは、線形の減衰、非線形係数、最大応力の相対強度によって決まる。
【００５９】
神経衝撃トランジェントの立ち上がり時間、規模、持続時間については、一時的に上皮組織層の透過性を高める非破壊的な（すなわち非衝撃波）神経衝撃トランジェントが得られるように選択する。通常、立ち上がり時間は少なくとも１ｎｓであり、より好ましくは約１０ｎｓである。
【００６０】
神経衝撃トランジェントの最大応力または圧力は上皮組織または細胞層によって異なる。たとえば、表皮細胞をとおして化合物を移動させる場合、神経衝撃トランジェントの最大応力または圧力を少なくとも４００バール、より好ましくは少なくとも１，０００バールに設定しなければならないが、約２，０００バールを超えないようにする。
【００６１】
上皮粘膜層では最大圧力を３００バールから８００バール、好ましくは３００バールから６００バールの間に設定するものとする。神経衝撃トランジェントは、持続時間が数十ｎｓ前後で上皮組織と互いに影響しあうのが短時間しかないと好ましい。神経衝撃トランジェントとの相互作用後、上皮組織が永久的に損傷されることはなく、最大約３分間透過性を維持するだけである。
【００６２】
また、これらの方法では、高振幅の別個のパルスを数回患者に印加するだけである。患者に施される神経衝撃トランジェントの数は一般に１００未満であり、より好ましくは５０未満、最も好ましくは１０未満である。複数の光学パルスを用いて神経衝撃トランジェントを生成する場合、連続したパルス間の時間は１０から１２０秒であるが、これは上皮組織の永久的な損傷を防ぐには十分な長さである。
【００６３】
神経衝撃トランジェントの特性については、従来技術において標準の方法を用いて測定することが可能である。たとえば、Ｄｏｕｋａｓら、Ｕｌｔｒａｓｏｕｎｄ Ｍｅｄ．Ｂｉｏｌ．、２１：９６１（１９９５）に記載されているようなポリフッ化ビニリデン（ＰＶＤＦ）トランスデューサ法を用いて、最大応力または圧力、立ち上がり時間を測定することができる。
【００６４】
神経衝撃トランジェントは、さまざまなエネルギ源によって生成可能なものである。神経衝撃トランジェントの発射を担う物理現象は、通常、（１）熱弾性生成、（２）光破壊または（３）アブレーションという３通りの機序から選択される。
【００６５】
たとえば、高エネルギのレーザ源を適用して標的材料を焼灼することで神経衝撃トランジェントを開始することができ、その後この神経衝撃トランジェントを接触媒質によって上皮組織または細胞層に結合する。接触媒質は、たとえば、非線形である限りは液体またはゲルである。よって、水、ひまし油などの油、ホスフェート緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）などの等張媒質またはコラーゲンゲルなどのゲルを接触媒質として用いることができる。
【００６６】
また、たとえば神経衝撃トランジェントの生成後に化合物に対して表皮細胞が透過性である時間を引き延ばすことによって移動性を高める界面活性剤を接触媒質に含むようにしてもよい。界面活性剤には、たとえばイオン性洗剤または非イオン性洗剤が考えられ、よって、たとえばラウリル硫酸ナトリウム、臭化セチルトリメチルアンモニウム、ラウリルジメチルアミンオキシドを含むことができる。
【００６７】
吸収する標的材料は光学的に誘発されるトランスデューサとして作用する。光を吸収すると標的材料には急激な熱膨張が起こって焼灼され、神経衝撃トランジェントが起こる。一般に、金属およびポリマーのフィルムは可視スペクトル領域および紫外スペクトル領域での吸収係数が大きい。
【００６８】
使用するレーザの波長で光を完全に吸収する限り、多くのタイプの材料をレーザ光線と併用の標的材料として用いることができる。標的材料については、アルミニウムまたは銅などの金属、黒いポリスチレンなどのポリスチレンなどのプラスチック、セラミック、高濃縮染料溶液で構成することが可能である。標的材料は印加するレーザエネルギの断面積よりも寸法の大きなものでなければならない。また、光が皮膚表面に衝突しないように、標的材料は光学的貫通深さよりも厚くなければならない。さらに、標的材料は機械的に支持できるだけの十分な厚さのものでなければならない。標的材料が金属製の場合、一般的な厚さは１／３２から１／１６インチである。プラスチックの標的材料では、厚さは１／１６から１／８インチである。
【００６９】
また、限られた狭い範囲の（ｃｏｎｆｉｎｅｄ）アブレーションによって神経衝撃トランジェントを強めることもできる。限られた狭い範囲のアブレーションでは、石英の光学ウィンドウなどのレーザ光線透過材料を標的材料と密着させて配置する。この透明材料を用いて標的材料を焼灼してプラズマを限局すると、結合係数が桁違いに大きくなる（Ｆａｂｒｏら、Ｊ．Ａｐｐｌ．Ｐｈｙｓ．、６８：７７５、１９９０）。透明材料には、石英、ガラスまたは透明プラスチックを用いることが可能である。
【００７０】
標的材料と限局用の透明材料との間に空間ができるとプラズマが膨張する余裕ができ、標的に加わる運動量が小さくなってしまうため、炭素含有エポキシなどの最初は液体状である接着剤を用いて透明材料を標的材料に接着し、このような空間をなくすようにすると好ましい。
【００７１】
たとえば電気光学的装置または音響光学的装置を用いてＱスイッチレーザまたはモード同期レーザを利用するなどの従来技術において周知の標準的な光学的変調技法によってレーザ光線を生成することができる。赤外スペクトル、可視スペクトルおよび／または赤外スペクトルにおいてパルスモードで動作できる標準的な市販レーザとしては、Ｎｄ：ＹＡＧ、Ｎｄ：ＹＬＦ、ＣＯ２、エキシマ、染料、Ｔｉ：サファイア、ダイオード、ホルミウム（および他の希土材料）、金属蒸気レーザがあげられる。これらの光源はパルス幅が調節可能であり、数十ピコ秒（ｐｓ）から数百マイクロ秒まで可変である。本願開示内容で使用する光学パルス幅は１００ｐｓから約２００ｎｓで可変であり、好ましくは約５００ｐｓから４０ｎｓの間である。
【００７２】
また、体外砕石機によって神経衝撃トランジェントを生成することも可能である（一例が、Ｃｏｌｅｍａｎら、Ｕｌｔｒａｓｏｕｎｄ Ｍｅｄ．Ｂｉｏｌ．、１５：２１３〜２２７、１９８９に記載されている）。これらの神経衝撃トランジェントは立ち上がり時間が３０から４５０ｎｓであり、レーザで生成する神経衝撃トランジェントの場合よりも長い。この新たな方法用に体外砕石機を用いて適切な立ち上がり時間の神経衝撃トランジェントを形成するために、上記の式（１）によって求められる距離だけ非線形の接触媒質（水など）中で神経衝撃トランジェントを伝播させる。たとえば、立ち上がり時間１００ｎｓでピーク圧力が５００バールの神経衝撃トランジェントを生成する砕石機を用いる場合、上皮細胞層と接触する前に神経衝撃トランジェントが接触媒質を介して移動しなければならない距離は約５ｍｍである。
【００７３】
砕石機によって生成される神経衝撃トランジェントを加工する方法のもうひとつの利点として、波の引張成分（ｔｅｎｓｉｌｅ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ）が広がり、非線形の接触媒質中を伝播することで減衰される点があげられる。この伝播距離を調整し、圧力が波の圧縮成分の最大圧力のわずか約５から１０％の引張成分を持つ神経衝撃トランジェントを生成する必要がある。したがって、加工された（ｓｈａｐｅｄ）神経衝撃トランジェントが組織を損傷することはない。
【００７４】
使用する砕石機のタイプは重要ではない。電気水力学式砕石機、電磁式砕石機または圧電式砕石機のいずれかを用いることができる。
【００７５】
また、圧電トランスデューサなどのトランスデューサを用いて神経衝撃トランジェントを生成することも可能である。好ましくは、トランスデューサが接触媒質と直接接触し、光学的、熱的または電気的に場を印加して神経衝撃トランジェントを生成した後に急激に変位する。たとえば、絶縁破壊を利用することができ、この絶縁破壊は一般に高電圧スパークまたは圧電トランスデューサによって誘導される（特定の体外砕石機で用いられているものと同様である。Ｃｏｌｅｍａｎら、Ｕｌｔｒａｓｏｕｎｄ Ｍｅｄ．Ｂｉｏｌ．、１５：２１３〜２２７、１９８９）。圧電トランスデューサの場合、電界を印加した後にトランスデューサが急激に膨張して接触媒質の急激な変位を発生させる。
【００７６】
また、光ファイバを用いて神経衝撃トランジェントを生成することも可能である。光ファイバ送達系は特に扱いやすく、上皮組織層に隣接して位置する標的材料に光線を照射し、到達しにくい場所で神経衝撃トランジェントを生成するのに利用できるものである。これらのタイプの送達系は、カテーテルおよび関連の可撓性装置に統合し、人体のほとんどの器官への照射に利用できるため、レーザと光学的に結合させる場合に好ましいものである。また、所望の立ち上がり時間と最大応力の神経衝撃トランジェントを得るには、これに光学源（ｏｐｔｉｃａｌ ｓｏｕｒｃｅ）の波長を合わせて特定の標的材料で適切な吸収を生成する方法が簡単である。
【００７７】
あるいは、爆発的に生じる神経衝撃に応答して強力な（ｅｎｅｒｇｅｔｉｃ）材料で神経衝撃トランジェントを生成することもできる。放電またはスパークを発生させることで、この強力な材料を起爆装置で爆発させる。
【００７８】
神経衝撃トランジェントと併せて静水圧を利用し、上皮組織層を介しての化合物の移動性を高めることができる。神経衝撃トランジェントによって誘発される作用は数分間持続するため、神経衝撃トランジェントの印加後に皮膚の表皮細胞などの上皮組織層の表面に静水圧を加えることで、濃度勾配に沿って上皮細胞層を介して受動的に拡散していく薬剤の移動速度を増すことができる。
【００７９】
幹細胞または前駆細胞の遺伝的改変体
遺伝子
本発明に有用な遺伝子および遺伝子断片（ポリヌクレオチド）としては、特定の単数または複数の感染因子によるＴ細胞の感染に対する耐性をコードするものがあげられる。このような感染因子としては、ＨＩＶ、Ｔ細胞白血病ウイルス、リンパ増殖疾患を引き起こす他のウイルスがあげられるが、これに限定されるものではない。ＨＩＶ／ＡＩＤＳについて言えば、ｎｅｆ転写因子と、ｔａｔおよびｒｅｖなどのＨＩＶ遺伝子を特異的に切断するリボザイムをコードする遺伝子（Ｂａｕｅｒ Ｇ．ら（１９９７）と、ＨＩＶの複製を阻害することが明らかになっている（Ｂｏｎｙｈａｄｉら １９９７）ＨＩＶ−１のｒｅｖ遺伝子のトランスドミナント変異体形態であるＲｅｖＭ１０と、ＨＩＶ−１のｒｅｖ−応答配列（ＲＲＥ）の過発現コンストラクト（Ｋｏｈｎら、１９９９）と、発現が細胞のＨＩＶ感染または複製に対して阻害性であるＲＮＡまたはタンパク質をコードする遺伝子と、これらの断片および組み合わせとを含むが、これに限定されるものではない、多数の遺伝子および遺伝子断片を利用することができる。
【００８０】
これらの遺伝子または遺伝子断片は安定して発現可能な形態で用いられる。本願明細書で使用する「安定して発現可能な形態」という表現は、遺伝子または遺伝子断片を宿主細胞に導入した後で宿主細胞にて、さらには分割および／または分化後にその細胞の子孫で、少なくとも半永久的に遺伝子または遺伝子断片（「機能的断片）の産物（ＲＮＡおよび／またはタンパク質）が発現され得ることを意味する。このためには、上記の遺伝子または遺伝子断片が、ベクターに含まれるか否かを問わず、ＤＮＡをＲＮＡに転写するための適切なシグナル配列を持つものでなければならない。さらに、この遺伝子または遺伝子断片によってコードされるタンパク質が患者の健康状態に影響する活性分子である場合、ＤＮＡも翻訳シグナルをコードする。
【００８１】
ほとんどの場合、遺伝子または遺伝子断片はベクターに含まれることになる。当業者であれば、所望のＲＮＡまたはタンパク質を発現させるのに使用できる発現ベクターを知っている。発現ベクターとは、そこに含まれるＤＮＡ配列の転写と、これによって得られるＲＮＡの翻訳とを指示することができるベクターである。発現ベクターは、遺伝的改変の対象となる細胞で複製でき、プラスミド、バクテリオファージ、ウイルス、ミニ染色体を含む。あるいは、遺伝子または遺伝子断片が細胞の染色体ＤＮＡの不可欠な部分になることもある。組換えベクターならびに方法論についてはおおむね周知である。
【００８２】
本願開示内容のタンパク質を発現させるのに有用な発現ベクターは複製起点を含む。適切に作出された発現ベクターは、細胞での自律複製の複製起点を含むか、あるいは宿主細胞の染色体と結合することができる。このようなベクターには、選択マーカー、限られた数の有用な制限酵素部位、強い高コピー数プロモーターも含まれることがある。プロモーターとは、ＤＮＡと結合してＲＮＡの合成を開始するようＲＮＡポリメラーゼに指令するＤＮＡ配列である。強いプロモーターはこのような開始を高い頻度で引き起こす。本願開示内容の発現ベクターは、本発明で使用されるＲＮＡまたはタンパク質をコードするＤＮＡと作動的に結合されている。すなわち、このベクターは、結合されたＤＮＡ分子の複製とこのＤＮＡ分子にコードされるＲＮＡまたはタンパク質の発現の両方を指令することができる。したがって、タンパク質について言えば、発現ベクターは、制御配列による制御下でのＤＮＡ分子の発現とこのＤＮＡ分子にコードされる所望のタンパク質の産生とを可能にする正しいリーディングフレームを維持しつつ、結合されたＤＮＡ分子の上流に適切な転写開始シグナルを持つものでなければならない。発現ベクターは、クローニングベクター、修飾（ｍｏｄｉｆｉｅｄ）クローニングベクター、特別に設計されたプラスミドまたはウイルスを含むがこれに限定されるものではない。好ましくは、挿入された遺伝子またはポリヌクレオチドの発現の量とタイミングとを制御できるように誘導性プロモーターを使用する。
【００８３】
細胞
遺伝的改変体に好ましい細胞に造血幹細胞（ＨＳＣ）がある。これらの細胞は、骨髄、末梢血または臍帯から得られるものであってもよいし、あるいは他のＨＳＣ源に由来するものであってもよく、自己由来であっても非自己由来であってもよい。また、自己由来であっても非自己由来であってもよい、リンパ球細胞、骨髄前駆細胞、上皮幹細胞も有用である。
【００８４】
非自己由来の（ドナー）細胞を用いる場合、胸腺再活性化のステップの間にこれらの細胞に対する寛容を作り出す。胸腺への性ステロイドによるシグナル伝達の遮断開始時または開始後に、遺伝的に改変された関連のドナー細胞をレシピエントに移植する。これらの細胞は胸腺によってレシピエントに属するものとして受容され、胸腺が産生する新たなＴ細胞およびＤＣの一部となる。このようにして得られるＴ細胞集団はレシピエントとドナーの両方を自己として認識するため、ドナーからの移植片に対する寛容が作られる。本願明細書に援用する、係属中の米国特許出願第０９／号を参照のこと。
【００８５】
遺伝的改変の方法
遺伝子療法に用いる細胞に、標準的な組換え方法を用いて遺伝的改変体を導入することができる。たとえば、培養したＨＳＣのレトロウイルスベクターによる形質導入が、功を奏する方法のひとつである（ＢｅｌｍｏｎｔおよびＪｕｒｅｃｉｃ、１９９７、Ｂａｈｎｓｏｎ，Ａ．Ｂ．ら、１９９７）。付加的なベクターとしては、アデノウイルス由来のベクターまたはレンチウイルス由来のベクター、モロニーマウス白血病ウイルス由来のベクターがあげられるが、これに限定されるものではない。
【００８６】
また、遺伝子銃を用いるなどの粒子による遺伝子導入（ＹａｎｇおよびＺｉｅｇｅｌｈｏｆｆｅｒ、１９９４）、リポソームによる遺伝子導入（Ｎａｂｅｌら、１９９２）、遺伝子組換えベクターとリン酸カルシウムとの共沈（ＧｒａｈａｍおよびＶａｎ Ｄｅｒ Ｅｂ、１９７３）、電気穿孔（Ｐｏｔｔｅｒら、１９８４）、マイクロインジェクション（Ｃａｐｅｃｃｈｉ、１９８０）ならびに、遺伝子が少なくともその時間の一部（ａｔ ｌｅａｓｔ ｐａｒｔ ｏｆ ｔｈｅ ｔｉｍｅ）に発現されるように好ましくはベクターの遺伝子またはオリゴヌクレオチドをＨＳＣに安定して導入できる他の方法も有用である。
【００８７】
予防
本願開示内容は、患者の胸腺を再活性化することで患者の感染を予防する、あるいは感染に対する耐性を高める方法を提供するものである。これは、胸腺への性ステロイドによるシグナル伝達を破壊することで達成される。この段階で、患者の免疫系を若返らせ、ウイルスおよびバクテリアなどの外来抗原に対するその応答を高める。これについては、たとえば図１０〜図１５に示す。同図には、胸腺の再活性化がマウスの免疫系に対してどのような影響をおよぼすかをウイルス（ＨＳＶ）負荷の形で示してある。事前に胸腺を再活性化させたマウスはＨＳＶ感染に対する耐性を示したが、胸腺を再活性化していない（老化胸腺）マウスではＨＳＶ感染レベルが高い。マウスの免疫系はヒトの免疫系に極めて似ていることは周知であり、マウスで得られた結果からヒトでの応答を推測することができる。これは、ヒトでの胸腺再活性化の影響についての上記に示したデータによって一層説得力のあるものとなる。
【００８８】
胸腺再活性化の間に未変性の造血細胞を患者に供給する、さらに別のステップでは、患者の体が持つ免疫能が高くなる。特に、遺伝子組換え細胞をレシピエントに投与することで、免疫系をさまざまな抗原に対して特異的に反応させることができる。遺伝子組換え細胞としては、造血幹細胞（ＨＳＣ）、上皮幹細胞または造血前駆細胞がありうる。好ましくは、遺伝子組換え細胞は、ＣＤ３４＋ ＨＳＣ、リンパ球前駆細胞または骨髄前駆細胞である。最も好ましくは、遺伝子組換え細胞はＣＤ３４＋ ＨＳＣである。遺伝子組換え細胞を患者に投与し、末梢血系を介して胸腺まで移行させる。このような造血前駆細胞の胸腺への取り込みは、性ステロイドの非存在下で実質的に増大する。これらの細胞は胸腺に受け入れられ、変化した細胞から遺伝的改変体を持つ樹状細胞およびＴ細胞を産生する。結果として、レシピエントの末梢血中を循環する所望の遺伝子変化のあるＴ細胞集団が得られ、これに伴って、患者の胸腺の再活性化によって生じる細胞、組織、臓器の集団が大きくなり、抗原に対して迅速かつ特異的に応答することができる。
【００８９】
骨髄およびＨＳＣへの影響
本願開示内容は、ＨＳＣの産生を増やすことを含む、患者で骨髄の産生を増やすための方法を提供するものである。これは、多数の用途で有用である。たとえば、癌に対するものであろうと他の目的であろうと、化学療法による厄介な副作用のひとつに、患者の骨髄に悪影響がおよぶ可能性がある。化学療法の線量次第では、骨髄が切除され、血球の産生が妨害されることがある。化学療法による処置の後で本発明によるＬＨＲＨ類縁体を一定の用量で投与すると、化学療法によって骨髄および血球に起こった損傷を元に戻す助けになる。あるいは、化学療法を施す前にＬＨＲＨ類縁体を投与すると、ＨＳＣおよび他の血球の集団が増えるため、化学療法による衝撃が緩和されることになる。
【００９０】
血液の癌を治療するための高線量化学療法などの化学療法の計画によっては、骨髄のアブレーションが所望の効果のひとつである。アブレーションが起こった直後に本発明の方法を使用し、骨髄を刺激すると同時にＨＳＣおよびその子孫の血球の産生量を増やし、患者の回復時間を短縮することができる。化学療法を施した後、通常はこの化学療法の作用が１日またはそれ以上の日数で患者の体から抜けるように、本願明細書で説明する方法による一定用量のＬＨＲＨ類縁体を患者に投与する。これを自家または異種起源の骨髄または造血幹細胞または前駆細胞ならびに幹細胞成長因子などの他の因子の投与と併用してもよい。
【００９１】
あるいは、患者の骨髄が「疲れて」おり、正常な量になるほどの十分な数のＨＳＣおよび他の血球を産生できないこともある。これは、通常の老化、感染の長期化、化学療法後、放射線療法後、癌を含む慢性疾患状態、遺伝子異常、移植によって誘導される免疫抑制などのさまざまな状態によって生じ得るものである。さらに、全身照射などの照射が骨髄の生産性に大きな影響を持つこともある。これらの条件については、事前に治療して負の作用を最小限に抑える（化学療法および／または放射線療法の場合など）か、作用が逆になる出来事の後に治療するかのいずれでも可能である。
【００９２】
小動物での研究
材料および方法
動物
モナッシュ大学のＣｅｎｔｒａｌ Ａｎｉｍａｌ ＳｅｒｖｉｃｅｓからオスのＣＢＡ／ＣＡＨマウスおよびＣ５７Ｂ１６／Ｊマウスを入手し、従来の条件下で飼育した。週齢は４〜６週間から２６ヶ月までの範囲であり、関連がある場合はこれを明記する。
【００９３】
性腺摘除
キシラジン（ロンプン；オーストラリアのニューサウスウェールズ州ボタニーのバイエルオーストラリアリミテッド）０．３ｍｇと塩酸ケタミン（ケタラール；オーストラリアのニューサウスウェールズ州Ｃａｒｉｎｇｂａｈのパークデービス）１．５ｍｇとを生理食塩水に入れた溶液０．３ｍｌを腹腔内注射し、動物を麻酔した。陰嚢を切開して精巣を露出させ、縫合糸で結紮した後、周囲の脂肪組織と一緒に摘出して外科的な性腺摘除を行った。
【００９４】
ブロモデオキシウリジン（ＢｒｄＵ）の取り込み
ＢｒｄＵ（ミズーリ州セントルイスのシグマケミカルコーポレーション）（ＰＢＳ１００μｌ中１００ｍｇ／体重ｋｇ）を４時間の間隔でマウスに２回腹腔内注射した。対照のマウスにはビヒクル単独の注射を行った。２回目の注射の１時間後、胸腺を切断解剖し、ＦＡＣＳ解析用に細胞浮遊液を生成するか、あるいはすみやかにＴｉｓｓｕｅ Ｔｅｋ（インディアナ州Ｏ．Ｃ．Ｔ．ｃｏｍｐｏｕｎｄ，Ｍｉｌｅｓ ＩＮＣ）に埋め込み、液体窒素中でスナップ凍結させ（ｓｎａｐ−ｆｒｏｚｅｎ）、使用するまで−７０℃で保管した。
【００９５】
フローサイトメトリーによる分析
マウスをＣＯ２窒息で屠殺し、胸腺、脾臓、腸間膜リンパ節を摘出した。器官を冷たいＰＢＳ／１％ＦＣＳ／０．０２％アジド中にて２００μｍの篩で静かに押しつぶし、遠心分離（６５０ｇ、５分、４℃）し、ＰＢＳ／ＦＣＳ／Ａｚのいずれか一方に再懸濁させた。赤血球溶解液（８．９ｇ／リットル塩化アンモニウム）中にて１０分間４℃で脾臓細胞をインキュベートし、洗浄し、ＰＢＳ／ＦＣＳ／Ａｚに再懸濁させた。血球計算盤と臭化エチジウム／アクリジンオレンジとを用いて細胞濃度および生存度を２回重複して求め、蛍光顕微鏡（Ａｘｉｏｓｋｏｐ；ドイツのオーバーコッヘンのカールツアイス）下で観察した。
【００９６】
３色免疫蛍光法では、抗αβＴＣＲ−ＦＩＴＣまたは抗γδＴＣＲ−ＦＩＴＣ、抗−ＣＤ４−ＰＥおよび抗−ＣＤ８−ＡＰＣ（いずれもカリフォルニア州サンディエゴのファーミンジェンから入手）を用いて常法に従って胸腺細胞を標識し、続いてフローサイトメトリー分析を行った。αβＴＣＲ−ＦＩＴＣ／ＣＤ４−ＰＥ／ＣＤ８−ＡＰＣまたはＢ２２０−Ｂ（シグマ）とＣＤ４−ＰＥおよびＣＤ８−ＡＰＣとのいずれかで脾臓およびリンパ節の懸濁液を標識した。カリフォルニア州バーリンゲームのカルタグラボラトリーズインコーポレイテッドから購入したストレプトアビジンＴｒｉ−ｃｏｌｏｒ複合体でＢ２２０−Ｂを発色させた。
【００９７】
ＢｒｄＵ検出では、ＣＤ４−ＰＥおよびＣＤ８−ＡＰＣで細胞を表面標識し、続いて、従来すでに説明されている（ＣａｒａｙｏｎおよびＢｏｒｄ、１９８９）ようにして固定および膜透過処理を行った。簡単に説明すると、染色した細胞を１％ＰＦＡ／０．０１％Ｔｗｅｅｎ−２０中にて４℃でＯ／Ｎに固定した。洗浄後の細胞を、ＤＮａｓｅ（１００Ｋｕｎｉｔｚ単位、西ドイツのベーリンガー・マンハイム）５００μｌ中にて３０分間３７℃でインキュベートし、ＤＮＡを変性させた。最後に、抗ＢｒｄＵ ＦＩＴＣ（ベクトン・ディッキンソン）を用いて細胞をインキュベートした。
【００９８】
４色免疫蛍光法では、抗ラットＩｇ−Ｃｙ５（英国、アマシャム）によって共通に検出される、ＣＤ３、ＣＤ４、ＣＤ８、Ｂ２２０およびＭａｃ−１で胸腺細胞を標識し、ネガティブ細胞（ＴＮ）を解析用に選び出した。これをさらにＣＤ２５−ＰＥ（ファーミンジェン）およびＣＤ４４−Ｂ（ファーミンジェン）で染色し、続いて、従来すでに説明されている（ＧｏｄｆｒｅｙおよびＺｌｏｔｎｉｋ、１９９３）ようにしてストレプトアビジンＴｒｉ−ｃｏｌｏｕｒ（カリフォルニア州、カルタグ）での染色を行った。次に、上述したようにしてＢｒｄＵ検出を行った。
【００９９】
ＦａｃｓＣａｌｉｂｕｒ（ベクトン・ディッキンソン）にて試料を分析した。０°および９０°の光散乱プロファイルに基づいて生存可能なリンパ球を選び出し、Ｃｅｌｌ ｑｕｅｓｔソフトウェア（ベクトン・ディッキンソン）を用いてデータを分析した。
【０１００】
免疫組織学
凍結保存した胸腺切片（４μｍ）を、クライオスタット（レイカ）を用いて切断し、１００％アセトン中にてすみやかに固定した。
【０１０１】
２色免疫蛍光法では、この実験室で生成したモノクローナル抗体のパネルである、ＭＴＳ ６、１０、１２、１５、１６、２０、２４、３２、３３、３５および４４（Ｇｏｄｆｒｅｙら、１９９０、表１）で切片を二重標識し、多価ウサギ抗サイトケラチンＡｂ（カリフォルニア州カーピンテリアのダコ）を用いて上皮細胞決定基の同時発現を評価した。結合したｍＡｂをＦＩＴＣ標識ヒツジ抗ラットＩｇ（Ｓｉｌｅｎｕｓ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ）と反応させ、抗サイトケラチンをＴＲＩＴＣ標識ヤギ抗ウサギＩｇ（Ｓｉｌｅｎｕｓ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ）と反応させた。
【０１０２】
ＢｒｄＵ検出では、切片を抗サイトケラチンに続いて抗ウサギＴＲＩＴＣで染色するか、あるいは特定のｍＡｂで染色し、これを抗ラットＩｇ−Ｃγ３（アマシャム）と反応させた。続いて、従来すでに説明されている（Ｐｅｎｉｔら、１９９６）ようにしてＢｒｄＵ検出を行った。簡単に説明すると、７０％エタノール中にて３０分間切片を固定した。半乾燥させた切片を４ＭのＨＣｌ中にてインキュベートし、ホウ酸緩衝液（シグマ）中で洗浄して中和し、続いてＰＢＳ中で２回洗浄した。抗ＢｒｄＵ−ＦＩＴＣ（ベクトン・ディッキンソン）を用いてＢｒｄＵを検出した。
【０１０３】
３色免疫蛍光法では、抗サイトケラチンと一緒に特定のＭＴＳ ｍＡｂで切片を標識した。次に、上述したようにしてＢｒｄＵ検出を実施した。
【０１０４】
レイカの蛍光顕微鏡とニコンの共焦点顕微鏡とを用いて切片を分析した。
【０１０５】
移行についての検討
キシラジン（ロンプン；オーストラリアのニューサウスウェールズ州ボタニーのバイエルオーストラリアリミテッド）０．３ｍｇと塩酸ケタミン（ケタラール；オーストラリアのニューサウスウェールズ州Ｃａｒｉｎｇｂａｈのパークデービス）１．５ｍｇとを生理食塩水に入れた溶液０．３ｍｌを腹腔内注射し、動物を麻酔した。
【０１０６】
胸腺細胞手法のＦＩＴＣ標識の詳細は他の資料に記載されているものと同様である（Ｓｃｏｌｌａｙら、１９８０；Ｂｅｒｚｉｎｓら、１９９８）。簡単に説明すると、胸腺の葉を露出させ、各葉に３５０μｇ／ｍｌＦＩＴＣ（ＰＢＳ中）約１０μｍを注射した。創傷を外科用ステープルで縫合し、完全に麻酔からさめるまでマウスを温めた。注射の約２４時間後にＣＯ２窒息によってマウスを屠殺し、リンパ系器官を分析用に摘出した。
【０１０７】
細胞数を計数した後、抗ＣＤ４−ＰＥおよび抗ＣＤ８−ＡＰＣで試料を染色し、続いてフローサイトメトリーで分析した。（自己蛍光細胞および重複物（ｄｏｕｂｌｅｔｓ）を排除するために）移行細胞をＣＤ４またはＣＤ８のいずれかを発現しているｌｉｖｅ−ｇａｔｅｄ ＦＩＴＣ＋細胞として同定した。ＦＩＴＣ＋ ＣＤ４細胞およびＣＤ８細胞のパーセンテージを加え、リンパ節と脾臓のそれぞれについて総移行率を求めた。また、Ｂｅｒｚｉｎｓら（１９９８）に説明されているようにして１日あたりの輸出速度を算出した。
【０１０８】
対応のないスチューデントのｔ検定またはノンパラメトリックなＭａｎｎ−Ｗｈｉｔｎｅｙ検定を用いて分析したデータを利用し、少なくとも３回重複して行った実験について対照と試験結果との間の統計的有意性を判定した。対照値とは有意に異なっている実験値を、＊ｐ≦０．０５、＊＊ｐ≦０．０１、＊＊＊ｐ≦０．００１として示す。
【０１０９】
結果
胸腺細胞個体群に対して年月がおよぼす影響
（ｉ）胸腺の重量および胸腺細胞数
時が経過するにつれて胸腺の重量（図１Ａ）と胸腺細胞の総数（図１Ｂ）がいずれも極めて有意に（ｐ≦０．０００１）減少する。若い成体での相対胸腺重量（胸腺ｍｇ／体重ｇ）は平均値で３．３４であり、これが１８〜２４月齢で０．６６まで減少する（脂肪が蓄積するため正確な計算には限度がある）。胸腺の重量が減少するのは胸腺細胞の総数が減少することによる可能性がある。１〜２月齢では胸腺の胸腺細胞数は〜６．７×１０７個であり、これが２４月齢までに細胞数〜４．５×１０６個まで減少する。性腺を摘除して胸腺に対する性ステロイドの影響を排除すると、再生が起こり、性腺摘除後４週間が経過するまでに胸腺は重量と細胞充実性のいずれも若い成体の場合と等しくなる（図１Ａおよび図１Ｂ）。興味深いことに、性腺摘除後２週間で胸腺細胞数は有意に（ｐ≦０．００１）増加（〜１．２×１０８）し、これが性腺摘除後４週間が経過するまでに正常な若い成体のレベルまで回復する（図１Ｂ）。
【０１１０】
胸腺で生成されるＴ細胞数が減少してもこれが末梢に反映されることはなく、末梢では時が経過しても脾臓細胞数は一定のままである（図２Ａ）。時が経過して末梢に到達するＴ細胞数が減少しても脾臓とリンパ節でのＢ細胞とＴ細胞との比には何ら影響がない（図２Ｂ）ため、末梢に恒常性の機序が働いていることは明らかであった。しかしながら、ＣＤ４＋Ｔ細胞とＣＤ８＋Ｔ細胞との比は時の経過に伴って２月齢の２：１から２年の時点での比１：１（図２Ｃ）まで有意に減少（ｐ≦０．００１）した。性腺摘除後に末梢に到達するＴ細胞数が増えても末梢のＴ細胞数には何ら変化は観察されなかった。性腺摘除後、脾臓のＴ細胞数は変化せず、Ｂ細胞：Ｔ細胞の比も脾臓とリンパ節のいずれにおいても変化しなかった（図２Ａおよび図２Ｂ）。性腺摘除後２週間が経過した時点で末梢のＣＤ４：ＣＤ８比の経時的な減少は依然として顕著であったが、これは性腺摘除後４週間が経過するまでに完全に反転した（図２Ｃ）。
【０１１１】
（ｉｉ）αβＴＣＲ、γδＴＣＲ、ＣＤ４およびＣＤ８の発現
時の経過に伴って見られる胸腺細胞数の減少が特定の細胞個体群が枯渇した結果として生じたものであるか否かを判定するために、特徴のあるマーカーで胸腺細胞を標識して別々の部分母集団を分析できるようにした。また、これによって性腺摘除後の胸腺再増殖の動力学を分析できるようになった。主な胸腺細胞部分母集団の割合を正常な若い胸腺の割合と比較した（図３）ところ、時が経過しても均一のままであることが明らかになった。また、αβＴＣＲおよびγδＴＣＲの発現によって胸腺細胞がさらに分割されてもこれらの個体群の割合には経時的に何ら変化がないことが明らかになった（データ図示せず）。性腺摘除後２週間および４週間の時点で、胸腺細胞の部分母集団は同じ割合のままであり、胸腺細胞数が性腺摘除後に最大１００倍まで増加するため、すべての胸腺細胞サブセットが徐々に増えるのではなく同期的に増えることが分かる。
【０１１２】
したがって、高齢動物の胸腺で細胞数の減少が認められるのは、Ｔ細胞個体群に有意な変化が検出されることなくあらゆる細胞表現型がバランスよく減少した結果であるように思われる。胸腺の再生は、すべてのＴ細胞部分母集団を逐次的ではなく同時に補充しながら同期的に行われる。
【０１１３】
胸腺細胞の増殖
図４に示されるように、４〜６週齢で胸腺細胞の１５〜２０％が増殖している。このうちの大半（〜８０％）はＤＰであり、ＴＮサブセットが〜６％（図５Ａ）で二番目に大きい個体群を構成している。したがって、免疫組織学的には大半の分裂が被膜下および皮質に見られる（データ図示せず）。髄領域にも若干の分裂が見られ、ＦＡＣＳ分析によって分裂しているＳＰ細胞の割合（ＣＤ４Ｔ細胞９％とＣＤ８Ｔ細胞２５％）が明らかになっている（図５Ｂ）。
【０１１４】
老化胸腺では細胞数が有意に減少するが、胸腺細胞の増殖は一定のままであり、２年で１２〜１５％まで減少（図４）し、増殖中の個体群の表現型は２ヶ月の胸腺（図５Ａ）に似ている。１歳での分裂が若い成体に見られる分裂を反映していることが免疫組織学的に明らかになったが、２年の時点では、増殖は主に外皮質で見られ、脈管系を囲んでいる（データ図示せず）。性腺摘除後２週間の時点で、胸腺細胞数は有意に増加するが、増殖している胸腺細胞の割合には変化がないことから、ここでも細胞が同期増殖していることが分かる（図４）。性腺摘除後２週間が経過するまでに、胸腺細胞増殖の局在位置と分裂している細胞が２月齢の胸腺の状況を真似る度合いとが免疫組織学的に明らかになった（データ図示せず）。増殖中の個体群を示す各部分母集団の割合を分析すると、増殖中の個体群に含まれるＣＤ８Ｔ細胞のパーセンテージに有意な（ｐ＜０．００１）増加が認められた（２月齢および２歳で１％、性腺摘除後２週間で〜６％まで増加）（図５Ａ）。
【０１１５】
図５Ｂは、若いマウス、高齢マウス、性腺摘除を行ったマウスの各サブセットでの増殖の度合いを示している。ＤＮサブセットでは増殖の有意な（ｐ≦０．００１）崩壊がある（２ヶ月の時点で３５％であったものが２年までに４％へ）。ＣＤ８＋Ｔ細胞の増殖も有意に（ｐ≦０．００１）減少し、老化胸腺の髄では分裂の痕跡が認められないという免疫組織学による所見（データ図示せず）が反映されていた。性腺摘除後４週間が経過するまでにＤＮ増殖の減少が正常な若いレベルに戻ることはない。しかしながら、ＣＤ８＋Ｔ細胞サブセットでの増殖は性腺摘除後２週間の時点で有意に（ｐ≦０．００１）増加し、性腺摘除後４週間の時点で正常な若いレベルに戻っている。
【０１１６】
ＤＮサブセットでの増殖の減少について、マーカーＣＤ４４およびＣＤ２５を用いてさらに分析した。胸腺細胞の前駆細胞だけでなくＤＮ部分母集団にもαβＴＣＲ＋ＣＤ４−ＣＤ８胸腺細胞が含まれており、これがＳＰ細胞への遷移時に両方のコレセプターを下方制御していたと思われる（ＧｏｄｆｒｅｙおよびＺｌｏｔｎｉｋ、１９９３）。これらの成熟細胞を選び出すことで、真のＴＮコンパートメント（ＣＤ３−ＣＤ４−ＣＤ８−）を分析することができ、この分析によって時の経過に伴う増殖率または性腺摘除後における増殖率に何ら違いはないことが分かった（図５Ｃ）。しかしながら、ＣＤ４４およびＣＤ２５を発現している部分母集団を分析したところ、ＴＮ１サブセット（ＣＤ４４＋ＣＤ２５−）の増殖に正常な若い頃の２０％から１８月齢の時点での約６％への有意な（ｐ＜０．００１）減少が認められ（図５Ｄ）、これが性腺摘除後４週間が経過するまでに回復した。ＴＮ１サブセットで増殖が減少した分だけＴＮ２部分母集団（ＣＤ４４＋ＣＤ２５＋）では増殖が有意に（ｐ≦０．００１）増えたが、これも性腺摘除後２週間が経過するまでに正常な若いレベルに戻った（図５Ｄ）。
【０１１７】
胸腺の微小環境に対して年月がおよぼす影響
ポリクローナル抗サイトケラチンＡｂで二重標識した、ＭＴＳシリーズからのＭＡｂの包括的なパネルを用いる免疫蛍光法によって、時の経過に伴う胸腺の微小環境の変化について検討した。
【０１１８】
これらのＭＡｂによって認識される抗原については、胸腺の上皮サブセット、脈管関連（ｖａｓｃｕｌａｒ−ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ）抗原、支質細胞と胸腺細胞の両方に存在するものという３つのグループに細分化することができる。
【０１１９】
（ｉ）上皮細胞抗原
２年齢のマウス胸腺を抗ケラチン染色（ｐａｎ−上皮）したところ、上皮細胞の重篤な組織破壊が認められると共にはっきりと識別できる皮髄境界領域が欠如し、通常の胸腺アーキテクチャが失われていることが明らかになった。ＭＡｂ、ＭＴＳ １０（髄）、ＭＴＳ ４４（皮質）を用いてさらに分析を行ったところ、皮質のサイズが時の経過に伴って明らかに減少し、髄上皮にはそれほど大きな減少が見られない（データ図示せず）ことが分かった。上皮細胞のない領域またはケラチンネガティブエリア（ＫＮＡ、ｖａｎ Ｅｗｉｊｋら、１９８０；Ｇｏｄｆｒｅｙら、１９９０；Ｂｒｕｉｊｎｔｊｅｓら、１９９３．）が一層はっきりとしており、抗サイトケラチン標識で明らかなように老化胸腺のサイズが大きくなった。また、老化胸腺の見た目には胸腺上皮の「嚢胞状」構造があり、これは髄領域で特に顕著（データ図示せず）である。抗サイトケラチン染色によって、脂肪蓄積、胸腺サイズの激しい減少、皮髄境界領域の完全性の低下が疑う余地なく明らかに認められる（データ図示せず）。胸腺は性腺摘除後２週間が経過するまでに再生しはじめる。これは、胸腺の葉のサイズ、ＭＴＳ ４４によって明らかになる皮質上皮の増加、髄上皮の局在において明白である。髄上皮はＭＴＳ １０によって検出され、２週間の時点で皮質全体に散在したＭＴＳ １０で染色された上皮のサブポケットが依然として残っている。性腺摘除後４週間が経過するまでに、明確な髄および皮質があり、識別できる皮髄境界領域がある（データ図示せず）。
【０１２０】
ＭＴＳ ２０マーカーおよび２４マーカーで原始上皮細胞を検出（Ｇｏｄｆｒｅｙら、１９９０）し、老化胸腺の退化をさらに示すことができるのではないかと思われる。いずれもＥ１４に豊富に存在し、単離された髄上皮細胞クラスターを４〜６週間で検出するが、老化胸腺の強度を再度高める（データ図示せず）。性腺摘除後、これらの抗原はいずれも若い成体の胸腺でのレベルと同じレベルで発現され（データ図示せず）、ＭＴＳ ２０およびＭＴＳ ２４が皮髄境界領域に位置する上皮の不連続なサブポケットに逆戻りしている。
【０１２１】
（ｉｉ）脈管関連抗原
Ｔ細胞前駆細胞の胸腺への移行と成熟Ｔ細胞の胸腺から末梢への移出を血液胸腺障壁（ｂｌｏｏｄ−ｔｈｙｍｕｓ ｂａｒｒｉｅｒ）が担っているのではないかと考えられる。
【０１２２】
ＭＡｂ ＭＴＳ １５は胸腺の血管内皮に特異的であり、粒状の拡散染色パターン（Ｇｏｄｆｒｅｙら、１９９０）が得られる。老化胸腺では、ＭＴＳ １５の発現量が大幅に増え、脈拍数と血管・末梢脈管系スペースのサイズの増大を反映している（データ図示せず）。
【０１２３】
コラーゲン、ラミニン、フィブリノゲンなどの重要な構造・細胞接着分子を含む胸腺の細胞外マトリックスをｍＡｂ ＭＴＳ １６によって検出する。正常な若い胸腺全体に散在させると、ＭＴＳ １６の発現の性質が老化胸腺で一層広範囲かつ相関性のあるものになる。ＭＴＳ １６の発現は性腺摘除の２週間後にさらに亢進されるが、性腺摘除の４週間後には発現は２月齢の胸腺で見られる状況を表している（データ図示せず）。
【０１２４】
（ｉｉｉ）共有抗原
ＭＡｂ ＭＴＳ ６によって検出される、正常な若い胸腺でのＭＨＣ ＩＩの発現は、皮質上皮で強い陽性（粒状）であり（Ｇｏｄｆｒｅｙら、１９９０）、髄上皮では染色が弱い。老化胸腺ではＭＨＣ ＩＩの発現の減少が認められ、性腺摘除後２週間の時点で発現が実質的に増加する。性腺摘除後４週間が経過するまでに発現は再度減少し、２月齢の胸腺に類似して見える（データ図示せず）。
【０１２５】
胸腺細胞の移出
幼齢マウスではＴ細胞の約１％が毎日胸腺から移行する（Ｓｃｏｌｌａｙら、１９８０）。本願発明者らは、数は有意に（ｐ≦０．０００１）減少したが、１４月齢、さらには２年齢ですら、正常な幼齢マウスに匹敵する比例率で移行が起こっている（図５）ことを見出した。後から胸腺を出てきた細胞のＣＤ４：ＣＤ８比は２ヶ月の時点での〜３：１から２６ヶ月の時点での〜７：１に増大した。性腺摘除後１週間が経過するまでに、末梢に移出している細胞の数は実質的に増加し、全体としての移行率は１〜１．５％のままであった。
【０１２６】
実施例
以下の実施例は本発明による方法の具体的な例を示すものであり、実施例の記載内容に本発明を限定するものと解釈すべきではない。便宜上、これらの実施例では、胸腺への性ステロイドによるシグナル伝達を遮断するためのＬＨＲＨアゴニストの送達ならびにこれによって得られるＨＳＶ感染の予防について説明する。
【０１２７】
実施例１
性ステロイドアブレーション療法
異系のドナーが関与する場合、シクロスポリン療法などの免疫抑制療法を患者に施し、ドナー細胞の拒絶を防ぐ。
【０１２８】
ＬＨＲＨアゴニストを送達する形で患者に性ステロイドアブレーション療法を施した。これについては、Ｌｅｕｃｒｉｎ（デポ注射；２２．５ｍｇ）またはゾラデックス（インプラント；１０．８ｍｇ）のいずれかの形で、どちらも３ヶ月効果のある単回用量で与えた。この方法は、胸腺を再活性化できる程度まで性ステロイドレベルを低下させる上で有効であった。場合によっては、性ステロイドアブレーション療法を行っている間、性ステロイドの副腎での産生を抑える、Ｃｏｓｕｄｅｘ（５ｍｇ／日）などのサプレッサも１日１錠の量で送達する必要がある。副腎で産生される性ステロイドはヒトのステロイドの１０〜１５％前後を占めている。
【０１２９】
血液中の性ステロイドを最低値まで減少させるには約１〜３週間を要した。これと一致していたのは、胸腺の再活性化であった。場合によっては、さらに３ヶ月間にわたる注射／インプラントまで処置を延長する必要がある。
【０１３０】
実施例２
別の送達方法
ＬＨＲＨアゴニストを３ヶ月間デポまたはインプラント投与する代わりに、別の方法を用いてもよい。一例として、Ｅｒ：ＹＡＧレーザなどのレーザを患者の皮膚に照射し、表皮細胞の妨害作用が低減するように皮膚を焼灼または変質させることができる。
【０１３１】
Ａ．レーザアブレーションまたは変質：２枚の平らな共振器ミラーと、活性媒質としてのＥｒ：ＹＡＧ結晶と、電源と、レーザ光線の焦点を合わせるための手段とで構成される固体パルスＥｒ：ＹＡＧレーザを用いて、赤外線レーザ光パルスを形成した。レーザ光線の波長は２．９４ミクロンとした。シングルパルスを用いた。
【０１３２】
動作パラメータについては以下のとおりとした。１パルスあたりのエネルギを４０、８０または１２０ｍＪ、焦点での光線サイズを２ｍｍとし、１．２７、２．５５または３．８２Ｊ／ｃｍ２のエネルギフルエンスを得た。パルス時間幅を３００μｓとして、エネルギフルエンス率０．４２、０．８５または１．２７×１０４Ｗ／ｃｍ２を得た。
【０１３３】
続いて、一定量のＬＨＲＨアゴニストを皮膚に適用し、放射線照射部位に塗り拡げた。ＬＨＲＨアゴニストを放射線照射部位に保持できるようにこれを軟膏の形にしてもよい。任意に、アゴニストを閉塞パッチし、放射線照射部位上の適所にこれを保持するようにしてもよい。
【０１３４】
任意に、光線スプリッタを用いてレーザ光線を分岐させ、複数のアブレーションまたは変質部位を得るようにしてもよい。このようにすることで、皮膚をとおしてＬＨＲＨアゴニストを一層短時間で血流まで流動させることができる。部位数をあらかじめ決定し、所望の約３０日間のあいだ患者の系内にアゴニストを維持できるようにすればよい。
【０１３５】
Ｂ．圧力波：一定用量のＬＨＲＨアゴニストをプラスチック製の可撓性ワッシャ（直径約１インチ、厚さ約１／１６インチ）などの適当な容器に入れ、圧力波を作り出す予定の部位の皮膚にのせる。次に、この部位を厚さ約１ｍｍの黒いポリスチレンシートなどの標的材料で被覆する。Ｑスイッチ式固体ルビーレーザ（パルス持続時間は２０ｎｓであり、１パルスあたり最大２ジュールを生成可能）を用いてレーザ光線を生成し、これを標的材料に衝突させて１回の神経衝撃トランジェントを発生させる。黒いポリスチレンの標的はレーザ光を完全に吸収するため、皮膚はレーザ光に曝露されずに神経衝撃トランジェントにのみ曝露されることになる。このやり方では痛みは発生しない。アゴニストの循環血液濃度を維持すべく、上記の手順を毎日繰返してもよいし、必要に応じて行うようにしてもよい。
【０１３６】
実施例３
胸腺の再活性化を亢進するためのＨＳＣの投与
患者あるいは好ましくはドナーからＨＳＣを採取する。幹細胞成長因子（ＳＣＦ）の存在下におけるｅｘ ｖｉｖｏ培養によってこれらの細胞の数を任意に増やす。ＬＨＲＨアゴニスト送達の約１〜３週間後、胸腺が再活性化を開始する直前または再活性化を開始した時点で、最適には細胞約２〜４×１０６個／ｋｇの用量にて患者にＨＳＣを注射する。任意に、患者にＧ−ＣＳＦも注射し、ＨＳＣの増加を助けるようにしてもよい。再活性化された胸腺はＨＳＣを取り込み、ドナーＨＳＣをドナータイプのＴ細胞と樹状細胞とに変換し、患者のＨＳＣを患者タイプのＴ細胞と樹状細胞とに変換する。細胞死による排除を誘導する、あるいは免疫調節細胞による寛容を誘導することで、ドナーの樹状細胞は、レシピエントと反応する可能性のあるすべてのＴ細胞に寛容になる。
【０１３７】
実施例４
ＨＩＶ感染を防止するためのＨＳＣの遺伝的改変体
実用的であれば、細胞を採取する前にドナーに顆粒球コロニー刺激因子（Ｇ−ＣＳＦ）を１０μｇ／ｋｇの量で２〜５日間注射し、患者またはドナーの血液中のＨＳＣレベルを増やす。ドナーまたは患者の血液または骨髄から、好ましくはフローサイトメータまたは免疫磁気ビーズを用いてＣＤ３４＋ドナー細胞を精製する。フローサイトメトリーでドナー由来のＨＳＣをＣＤ３４＋として同定する。任意に、これらのＨＳＣをＳＣＦでｅｘ ｖｉｖｏにて増やしてもよい。
【０１３８】
ＨＩＶの複製を阻害することが明らかになっている（Ｂｏｎｙｈａｄｉら １９９７）ＨＩＶ−１のｒｅｖ遺伝子のトランスドミナント変異体形態であるＲｅｖＭ１０を含むようにレトロウイルスベクターを作出する。このベクターでトランスフェクトしたエコトロピックプロデューサー細胞を濾過し、得られた濾過上清に感染させることでアンフォトロピックベクター含有上清を生成する。回収されたＣＤ３４＋細胞を、ＩＬ−３、ＩＬ−６、ＳＣＦ（それぞれ１０ｎｇ／ｍｌ）を加えたＬＣＴＭ培地にて事前に２４時間刺激し、細胞が細胞サイクルに入るようにする。次に、ベクターを含有する上清を２〜３日間繰返し細胞に加え、ベクターを細胞に形質導入できるようにする。
【０１３９】
ＬＨＲＨアゴニスト送達の約１〜３週間後、胸腺が再活性化を開始する直前または胸腺が再活性化を開始した時点で、最適には細胞約２〜４×１０６個／ｋｇの用量で、患者に遺伝的に修飾したＨＳＣを注射する。任意に、レシピエントにＧ−ＣＳＦも注射し、ＨＳＣの増加を助けるようにしてもよい。再活性化された胸腺は遺伝子組換えＨＳＣを取り込み、これをドナータイプのＴ細胞と樹状細胞とに変換する一方で、レシピエントのＨＳＣをレシピエントタイプのＴ細胞と樹状細胞とに変換する。細胞死によって欠失を誘導するか、あるいは免疫調節細胞によって寛容を誘導することによって、ドナーの樹状細胞は潜在的にレシピエントに対して反応性であるＴ細胞に寛容になる。
【０１４０】
実施例５
ドナー細胞を用いる場合の免疫抑制の終了
胸腺のキメラが構築されて胸腺に成熟Ｔ細胞の新たなコホートが現れ始めたら、患者から血液を採取し、標準的な混合リンパ球反応で、ドナー細胞に対する応答性がＴ細胞に欠けているかどうかをｉｎ ｖｉｔｒｏにて確認する。応答がなければ、免疫抑制療法を徐々に縮小し、感染に対して防御できるようにする。血液中に活性化Ｔ細胞が存在することである程度は分かる拒絶の徴候が認められなければ、最終的には免疫抑制療法を完全に中止する。ＨＳＣには強い自己更新能力があるため、このように形成される造血キメラは、（健常で移植を行っていない、寛容を誘導していない人々の場合のように）理論的には患者の生涯をとおして安定することになる。
【０１４１】
実施例６
ＬＨＲＨアゴニストを用いてヒト胸腺を再活性化
本発明による方法でヒトの胸腺を再活性化できることを示すために、前立腺癌に対する化学療法での治療を受けてきた患者でこれらの方法を用いた。性ステロイドアブレーション療法を施す前と４ヶ月後とにこの前立腺癌患者を評価した。結果を図２３〜図２７にまとめておく。全体的にみて、これらのデータから、多くの患者でＴ細胞の状態が定量的かつ定性的に改善されることがわかる。
【０１４２】
ＬＨＲＨ療法がリンパ球とそのＴ細胞のサブセットの総数に対しておよぼす影響 前立腺癌のＬＨＲＨアゴニスト処置を受けている患者（全体＞６０歳）にて末梢血リンパ球の表現型組成（ｐｈｅｎｏｔｙｐｉｃ ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎ）を分析した（図２３）。処置前とＬＨＲＨアゴニスト処置開始の４ヶ月後に患者の試料を分析した。処置前には患者全員で血液１ｍｌあたりのリンパ球細胞の総数が対照値の下端であった。処置後、９名中６名の患者に総リンパ球数の実質的な増加が認められた（事例によっては総細胞数の倍増が観察された）。これと相関しているのが、９名中６名の患者における総Ｔ細胞数の増加であった。ＣＤ４＋サブセットでは、この上昇が９名中８名の患者でさらに目立っていることから、ＣＤ４＋Ｔ細胞のレベルが上昇していることが分かった。ＣＤ８＋サブセットでは、全体的にＣＤ４＋Ｔ細胞の場合よりも程度が低いとはいえ、９名中４名の患者でレベルが上昇するという、それほど特徴的ではない傾向が認められた。
【０１４３】
ＬＨＲＨ療法がＴ細胞サブセットの割合におよぼす影響
ＬＨＲＨアゴニスト処置の前後に患者の血液を分析したところ、処置後に、Ｔ細胞、ＣＤ４＋Ｔ細胞またはＣＤ８＋Ｔ細胞の全体的な割合には実質的な変化が認められず、ＣＤ４＋：ＣＤ８＋比にはさまざまな変化があった（図２４）。このことから、処置後に総Ｔ細胞数が実質的に増加するにもかかわらず、処置を行ってもＴ細胞サブセットの恒常性維持にはほとんど影響しないことが分かる。値はいずれも対照値に対する相対的なものとした。
【０１４４】
ＬＨＲＨ療法がＢ細胞および骨髄細胞の割合におよぼす影響
ＬＨＲＨアゴニスト処置を受けている患者の末梢血に含まれるＢ細胞および骨髄細胞（ＮＫ、ＮＫＴおよびマクロファージ）の割合を分析したところ、サブセットごとにさまざまな度合いで変化することが分かった（図２５）。ＮＫ、ＮＫＴ、マクロファージの割合は処置後も比較的一定のままであったが、Ｂ細胞の割合は９名中４名の患者で減少した。
【０１４５】
ＬＨＲＨアゴニスト療法がＢ細胞および骨髄細胞の総数におよぼす影響
処置後に末梢血に含まれるＢ細胞と骨髄細胞の総細胞数を分析したところ、処置後に、ＮＫ（９名中５名の患者）、ＮＫＴ（９名中４名の患者）、マクロファージ（９名中３名の患者）で細胞数に明らかなレベルの上昇が認められた（図２６）。Ｂ細胞数については、９名中２名の患者でレベルが上昇し、９名中４名の患者では変化なし、９名中３名の患者ではレベルが低下するといった具合で、顕著な傾向は特に認められなかった。
【０１４６】
ＬＨＲＨ療法が記憶細胞に対するナイーブ細胞のレベルにおよぼす影響
ＬＨＲＨアゴニスト処置後に見られた主な変化は末梢血のＴ細胞個体群でのものであった。特に、ＣＤ４＋Ｔ細胞サブセットでのナイーブ（ＣＤ４５ＲＡ＋）と記憶（ＣＤ４５ＲＯ＋）との比が患者９名中６名で増加する、ナイーブ（ＣＤ４５ＲＡ＋）ＣＤ４＋細胞の割合の選択的な増加が認められた（図２７）。
【０１４７】
結論
このように、胸腺が萎縮したヒトなどの動物にＬＨＲＨアゴニスト処置を施すことによって、胸腺の再活性化を惹起することが可能だと結論付けることができる。性ステロイドアブレーション療法を受けた前立腺癌患者では血液のＴリンパ球の状態に全般的な改善が認められた。このような細胞が胸腺由来のものだけであるか否かを正確に判定するのは極めて困難であるが、主流の（ＣＤ８ αβ鎖）Ｔ細胞については他の起源が全く説明されていないため、これは極めて論理的な結論であろう。胃腸管Ｔ細胞は大部分がＴＣＲγδまたはＣＤ８αα鎖である。
【図面の簡単な説明】
【図１】
性腺摘除前後の胸腺細胞数の変化を示す図である。胸腺が萎縮した結果、時の経過に伴って胸腺細胞数が有意に減少する。細胞数は性腺摘除後２週間が経過するまでに若い成体のレベルまで増加した。性腺摘除後３週間が経過するまでに細胞数は若い成体の値から有意に増加し、性腺摘除後４週間が経過するまでに安定している。＊＊＊＝若い成体（２ヶ月）の胸腺とは有意に異なっている。ｐ＜０．００１。
【図２】
（Ａ）脾臓の数値は時が経過したり性腺を摘除したりしても一定のまま維持される。末梢のＢ：Ｔ細胞比も一定のままである（Ｂ）が、ＣＤ４：ＣＤ８比は時の経過に伴って有意に（ｐ＜０．００１）小さくなり、性腺摘除後４週間が経過するまでに正常な若い成体のレベルまで回復する。
【図３】
ＣＤ４対ＣＤ８胸腺細胞個体群の蛍光標示式細胞分取器（ＦＡＣＳ）の経時および性腺摘除後のプロファイルを示す図である。それぞれのプロットの上に各象限のパーセンテージを示してある。胸腺細胞の部分母集団は時が経過しても一定のままであり、性腺摘除後に胸腺細胞が同期的に増加する。
【図４】
ＢｒｄＵパルスを取り込ませて検出した場合の胸腺細胞の増殖を示す図である。増殖中の胸腺細胞の割合は時が経過したり性腺を摘除したりしても一定のままである。
【図５】
齢と性腺摘除とが胸腺細胞サブセットの増殖に対してどのような影響をおよぼすかを示す図である。（Ａ）増殖中の個体群全体を構成する各サブセットの割合――増殖中の個体群のうちＣＤ８＋Ｔ細胞の割合が有意に増加している。（Ｂ）増殖している各部分母集団のパーセンテージ――ＴＮサブセットとＣＤ８サブセットは２ヶ月目よりも２年の時点での増殖が有意に少ない。性腺摘除後２週間の時点で、ＴＮ個体群は若い頃の正常な増殖レベルに戻ったがＣＤ８個体群では増殖の有意な増加が認められる。このレベルは性腺摘除後４週間までに若い頃の正常なレベルと等しくなる。（Ｃ）ＴＮの増殖量は時が経過したり性腺を摘除したりしても全体として一定のままである。しかしながら、（Ｄ）ＴＮ１部分母集団では増殖が経時的に有意に減少し、性腺摘除後４週間が経過するまでには正常なレベルに戻らない。＊＊＊＝極めて有意、ｐ＜０．００１、＊＊＝有意、ｐ＜０．０１。
【図６】
マウスにＦＩＴＣを胸腺内注射した。２４時間後に末梢におけるＦＩＴＣ＋細胞の数を算出した。できたばかりの胸腺移行物（ＲＴＥ）の割合は一貫して胸腺細胞数年齢（ｔｈｙｍｕｓ ｃｅｌｌ ｎｕｍｂｅｒ ａｇｅ）の約１％に保たれて性腺摘除後２週間で有意に減少したが、ＲＴＥ細胞数は時の経過に伴って有意に（ｐ＜０．０１）減少した。性腺摘除後、これらの値は増加しているが、性腺摘除後２週間の時点で依然として若いマウスの場合よりも有意に低かった。時の経過に伴ってＣＤ４＋とＣＤ８＋ＲＴＥとの比の有意な増大が認められたが、これは性腺摘除後１週間が経過するまでに正常になった。
【図７】
化学療法剤であるシクロホスファミドで処置した後の胸腺（Ａ）、脾臓（Ｂ）、リンパ節（Ｃ）での細胞数の変化を示す図である。処置後１週間および２週間の時点で、非性腺摘除（シクロホスファミド単独）群と比較して性腺摘除を行った動物の方が胸腺で急激な増加が認められる点に注意されたい。また、シクロホスファミド単独の群よりも摘除群の脾臓およびリンパ節での数値がかなり増加した。細胞数は４週間が経過するまでに正常になる（処置群ごとにそれぞれの時点でｎ＝３〜４）。
【図８】
外科的な性腺摘除後１週間で放射線照射（６２５ラド）した後の胸腺（Ａ）、脾臓（Ｂ）、リンパ節（Ｃ）での細胞数の変化を示す図である。処置後１週間および２週間の時点で、非性腺摘除（放射線照射単独）群と比較して性腺摘除を行った動物の方が胸腺で急激な増加が認められる点に注意されたい。（処置群ごとにそれぞれの時点でｎ＝３〜４）。
【図９】
放射線照射と性腺摘除とを同日に行った後の胸腺（Ａ）、脾臓（Ｂ）、リンパ節（Ｃ）での細胞数の変化を示す図である。処置後２週間の時点で、非性腺摘除群と比較して性腺摘除を行った動物の方が胸腺で急激な増加が認められる点に注意されたい。しかしながら、観察された差異は処置の１週間前にマウスに性腺摘除を施した場合（図７）ほど顕著ではない。（処置群ごとにそれぞれの時点でｎ＝３〜４）。
【図１０】
化学療法剤であるシクロホスファミドと外科的な性腺摘除または化学的な性腺摘除とを同日に行う処置後の胸腺（Ａ）、脾臓（Ｂ）、リンパ節（Ｃ）での細胞数の変化を示す図である。処置後１週間および２週間の時点で、非性腺摘除（シクロホスファミド単独）群と比較して性腺摘除を行った動物の方が胸腺で急激な増加が認められる点に注意されたい。また、シクロホスファミド単独の群よりも摘除群の脾臓およびリンパ節での数値がかなり増加した。（処置群ごとにそれぞれの時点でｎ＝３〜４）。化学的な性腺摘除は、シクロホスファミド処置後の免疫系の再生という点では外科的な性腺摘除に匹敵する。
【図１１】
単純ヘルペスウイルス１型（ＨＳＶ−１）でのフットパッド免疫付与後のリンパ節の細胞充実性を示す図である。高齢の非性腺摘除群よりも高齢の性腺摘除後の方が細胞充実性が高くなった点に注意されたい。一番下のグラフは、ＣＤ２５対ＣＤ８細胞についてＦＡＣＳで選び出した活性化細胞の総数を示している。
【図１２】
ＨＳＶ−１接種後に活性化されたＬＮ（リンパ節）のＣＴＬ（細胞障害性Ｔ細胞）におけるＶβ１０の発現について示す図である。高齢マウスでクローン反応が減少し、予想した応答が性腺摘除後に元通りになる点に注意されたい。
【図１３】
性腺摘除によってＨＳＶ−１免疫付与に対する応答性が回復する。（ａ）高齢マウスでは、若いマウスおよび性腺摘除後のマウスと比較して感染後にリンパ節の細胞充実性全体の有意な減少が認められた。（ｂ）ＨＳＶ−１感染マウスのＬＮにおける活性化（ＣＤ８＋ＣＤ２５＋）細胞の代表的なＦＡＣＳプロファイルである。時が経過するにつれ、あるいは性腺摘除によって、活性化ＣＴＬの割合には何ら差異は認められなかった。（ｃ）高齢マウスのリンパ節での細胞充実性低下が活性化ＣＴＬ数の有意な減少という形で表れてきた。高齢マウスでは性腺摘除によってＨＳＶ−１に対する免疫応答が回復し、ＣＴＬ数は若いマウスの場合に匹敵していた。結果については８〜１２体のマウスの平均±１ＳＤで示す。＊＊＝若い（２月齢）マウスに対してｐ≦０．０１、＾＝高齢（非性腺摘除）マウスに対してｐ≦０．０１。
【図１４】
ＨＳＶ−１で免疫付与したマウスから膝窩リンパ節を取り出し、３日間培養した。バックグラウンドレベルの溶解（５１Ｃｒ放出量で判定）について免疫付与していないマウスを対照として用いてＣＴＬアッセイを実施した。結果を８体のマウスの平均として±１ＳＤで３組（ｉｎ ｔｒｉｐｒｉｃａｔｅ）示す。高齢マウスではＥ：Ｔ比１０：１および３：１のどちらでもＣＴＬ活性の有意な（ｐ≦０．０１，＊）低減が認められたことから、リンパ節内に存在する特定のＣＴＬのパーセンテージが減少したことが分かる。高齢マウスでは、性腺摘除によってＣＴＬ応答が若い成体のレベルまで回復した。
【図１５】
ＨＳＶ−１感染に対するＣＤ４＋Ｔ細胞の助けとＶβＴＣＲ応答とについての分析内容を示す図である。ＨＳＶ−１感染後にＤ５で膝窩リンパ節を取り出し、（ａ）ＣＤ２５、ＣＤ８および特定のＴＣＲＶβマーカーおよび（ｂ）ＣＤ４／ＣＤ８Ｔ細胞の発現をｅｘ−ｖｉｖｏにて分析した。（ａ）Ｖβ１０またはＶβ８．１を発現している活性化（ＣＤ２５＋）ＣＤ８＋Ｔ細胞のパーセンテージを１群あたり８体のマウスの平均±１ＳＤとして示す。時が経過するにつれ、あるいは性腺摘除によって、何ら差異は認められなかった。（ｂ）休眠状態のＬＮ個体群では時が経過するにつれてＣＤ４／ＣＤ８比の減少が認められた。これは性腺摘除後に回復した。結果を１群あたり８体のマウスの平均±１ＳＤとして示す。＊＊＊＝若いマウスおよび性腺摘除マウスに対してｐ≦０．００１。
【図１６】
Ｌｙ５近交系マウスの骨髄移植後の胸腺（Ａ）、脾臓（Ｂ）、リンパ節（Ｃ）、骨髄（Ｄ）での細胞数の変化を示す図である。処置後のすべての時点で、非性腺摘除群と比較して性腺摘除を行った動物の方が胸腺で急激な増加が認められる点に注意されたい。また、シクロホスファミド単独の群よりも摘除群の方が脾臓およびリンパ節での数値がかなり増加した（処置群ごとにそれぞれの時点でｎ＝３〜４）。性腺摘除を行ったマウスでは、非性腺摘除動物の場合（データ図示せず）よりも近交系の（Ｌｙ５．２）細胞が有意に増加した。
【図１７】
胎仔肝臓再構築後に性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスの胸腺細胞数の変化を示す図である。（各被験群についてｎ＝３〜４）。（Ａ）２週間の時点で、性腺摘除を行ったマウスの胸腺細胞数は正常なレベルであり、性腺摘除を行っていないマウスの場合よりも有意に（＊ｐ≦０．０５）高かった。４週間後に性腺摘除を行ったマウスで胸腺の肥大が観察された。性腺摘除を行っていない方の細胞数は対照レベル未満のままである。（Ｂ）ＣＤ４５．２＋細胞――ＣＤ４５．２＋はドナー由来を示すマーカーである。再構築の２週間後、性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスの両方にドナー由来の細胞が存在した。処置の４週間後、性腺摘除を行った方の胸腺細胞の約８５％がドナー由来であった。性腺摘除を行っていない方の胸腺にはドナー由来の細胞がなかった。
【図１８】
致死量放射線照射および胎仔肝臓再構築後に外科的な性腺摘除を行った後のＣＤ４対ＣＤ８ドナー由来の胸腺細胞個体群のＦＡＣＳプロファイルを示す図である。それぞれのプロットの右側に各象限のパーセンテージを示してある。同年齢の対照プロファイルは８月齢のＬｙ５．１近交系マウス胸腺のものである。性腺摘除を行ったマウスおよび性腺摘除を行っていないマウスのプロファイルをＣＤ４５．２＋細胞について選び出し、ドナー由来の細胞のみを示す。再構築の２週間後、性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスとで胸腺細胞の部分母集団に違いはない。
【図１９】
致死量放射線照射、胎仔肝臓再構築および性腺摘除後の骨髄およびリンパ球の樹状細胞（ＤＣ）数を示す図である。（各被験群についてｎ＝３〜４体のマウス）。以下の（ｆｏｌｌｏｗｉｎｇ）グラフにおける対照の（斜線）バーは同年齢の未処置マウスにおける樹状細胞の正常数を表している。（Ａ）ドナー由来の骨髄樹状細胞――再構築の２週間後、性腺摘除を行っていないマウスでＤＣが正常なレベルで存在した。同じ時点でＤＣは性腺摘除を行ったマウスの方が有意に（＊ｐ≦０．０５）多かった。４週間の時点で、性腺摘除を行ったマウスではＤＣ数が対照レベルより高いままだった。（Ｂ）ドナー由来のリンパ球樹状細胞――再構築の２週間後、性腺摘除を行ったマウスのＤＣ数が性腺摘除を行っていないマウスの２倍であった。処置の４週間後、ＤＣ数は対照レベルより高いままだった。
【図２０】
性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスとについて、胎仔肝臓再構築後の骨髄での総細胞数と骨髄のＣＤ４５．２＋細胞数の変化を示す図である。各被験群についてｎ＝３〜４体のマウス。（Ａ）総細胞数――再構築の２週間後、骨髄細胞の数が正常になり、性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスとで細胞数に有意な差は認められなかった。再構築の４週間後、性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスとで細胞数に有意な（＊ｐ≦０．０５）差が認められた。（Ｂ）ＣＤ４５．２＋細胞数。再構築の２週間後、性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスとで骨髄中のＣＤ４５．２＋細胞数に有意な差は認められなかった。性腺摘除を行ったマウスでは、４週間の時点でＣＤ４５．２＋細胞数が多いままであった。同じ時点で性腺摘除を行っていないマウスにドナー由来の細胞はなかった。
【図２１】
性腺摘除を行ったマウスおよび性腺摘除を行っていないマウスの胎仔肝臓再構築後における骨髄中のＴ細胞、骨髄由来の樹状細胞、リンパ球由来の樹状細胞（ＤＣ）を示す図である。（各被験群についてｎ＝３〜４体のマウス）。以下のグラフにおける対照の（斜線）バーは同年齢の未処置マウスにおけるＴ細胞と樹状細胞の正常な数を表している。（Ａ）Ｔ細胞数――性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスのいずれも再構築の２週間後および４週間後に数値が減少した。（Ｂ）ドナー由来の骨髄樹状細胞――性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスのいずれも再構築の２週間後にＤＣ細胞数は正常であった。この時点で、性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスとで有意な数値差は認められなかった。（Ｃ）ドナー由来のリンパ球樹状細胞――再構築の２週間後および４週間後に数値は正常なレベルであった。２週間の時点で、性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスとで有意な数値差は認められなかった。
【図２２】
性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスの胎仔肝臓再構築後における脾臓での総細胞数と脾臓のドナー（ＣＤ４５．２＋）細胞数の変化を示す図である。（各被験群についてｎ＝３〜４体のマウス）。（Ａ）総細胞数――再構築の２週間後、細胞数は減少したが、性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスとで細胞数に有意な差は認められなかった。再構築の４週間後、細胞数は性腺摘除を行ったマウスで正常なレベルに近づいていた。（Ｂ）ＣＤ４５．２＋細胞数――再構築の２週間後、性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスとで脾臓のＣＤ４５．２＋細胞数に関して有意な差は認められなかった。性腺摘除を行ったマウスでは、４週間の時点でＣＤ４５．２＋細胞数が多いままであった。同じ時点で性腺摘除を行っていないマウスにドナー由来の細胞はなかった。
【図２３】
胎仔肝臓再構築後における脾臓のＴ細胞、骨髄由来の樹状細胞およびリンパ球由来の樹状細胞（ＤＣ）を示す図である。（各被験群についてｎ＝３〜４体のマウス）。以下のグラフにおける対照の（斜線）バーは同年齢の未処置マウスにおけるＴ細胞と樹状細胞の正常な数を表している。（Ａ）Ｔ細胞数――性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスのいずれも再構築の２週間後および４週間後に数値が減少した。（Ｂ）ドナー由来の（ＣＤ４５．２＋）骨髄樹状細胞――性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスのいずれも再構築の２週間後および４週間後にＤＣ細胞数は正常であった。２週間の時点で、性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスとで有意な数値差はなかった。（Ｃ）ドナー由来の（ＣＤ４５．２＋）リンパ球樹状細胞――再構築の２週間後および４週間後に数値は正常なレベルであった。２週間の時点で、性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスとで有意な数値差はなかった。
【図２４】
性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスの胎仔肝臓再構築後におけるリンパ節での総細胞数とリンパ節のドナー（ＣＤ４５．２＋）細胞数の変化を示す図である。（各被験群についてｎ＝３〜４）。（Ａ）総細胞数――再構築の２週間後、細胞数は正常なレベルであり、性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスとで有意な差はなかった。再構築の４週間後、性腺摘除を行ったマウスでは細胞数が正常なレベルであった。（Ｂ）ＣＤ４５．２＋細胞数――性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスとで再構築の２週間後にリンパ節のドナーＣＤ４５．２＋細胞数に有意な差はなかった。性腺摘除を行ったマウスでは、４週間の時点でＣＤ４５．２細胞数が多いままであった。同じ時点で性腺摘除を行っていないマウスにドナー由来の細胞はなかった。
【図２５】
性腺摘除を行ったマウスおよび性腺摘除を行っていないマウスの胎仔肝臓再構築後における腸間膜リンパ節のＴ細胞、骨髄由来の樹状細胞、リンパ球由来の樹状細胞（ＤＣ）を示す図である。（各被験群についてｎ＝３〜４体のマウス）。対照の（斜線）バーは同年齢の未処置マウスにおけるＴ細胞数と樹状細胞数である。（Ａ）性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスのいずれも再構築の２週間後および４週間後にＴ細胞数が減少した。（Ｂ）性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスのいずれもドナー由来の骨髄樹状細胞は正常であった。４週間の時点でこれらの細胞が減少した。２週間の時点で、性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスとで有意な数値差はなかった。（Ｃ）ドナー由来のリンパ球樹状細胞――再構築の２週間後および４週間後に数値は正常なレベルであった。２週間の時点で、性腺摘除を行ったマウスと性腺摘除を行っていないマウスとで有意な数値差はなかった。
【図２６】
前立腺癌のＬＨＲＨアゴニスト処置を受けているヒトの患者（全体＞６０歳）にて末梢血リンパ球の表現型組成を分析した。処置前とＬＨＲＨアゴニスト処置開始の４ヶ月後に患者の試料を分析した。処置前には患者全員で血液１ｍｌあたりのリンパ球細胞の総数が対照値の下端であった。処置後、９名中６名の患者に総リンパ球数の実質的な増加が認められた（事例によっては総細胞数の倍増が観察された）。これと相関しているのが、９名中６名の患者における総Ｔ細胞数の増加であった。ＣＤ４＋サブセットでは、この上昇が９名中８名の患者でさらに目立っていることから、ＣＤ４Ｔ細胞のレベルが上昇していることが分かった。ＣＤ８＋サブセットでは、全体的にＣＤ４＋Ｔ細胞の場合よりも程度が低いとはいえ、９名中４名の患者でレベルが上昇するという、それほど特徴的ではない傾向が認められた。
【図２７】
ＬＨＲＨアゴニスト処置の前後にヒトの患者の血液を分析したところ、処置後に、Ｔ細胞、ＣＤ４Ｔ細胞またはＣＤ８Ｔ細胞の全体的な割合には実質的な変化が認められず、ＣＤ４：ＣＤ８比にはさまざまな変化があった。このことから、処置後に総Ｔ細胞数が実質的に増加するにもかかわらず、処置を行ってもＴ細胞サブセットの恒常性維持に対しては最小限の影響しかおよばないことが分かる。値はいずれも対照値に対する相対的なものとした。
【図２８】
ＬＨＲＨアゴニスト処置を受けているヒトの患者の末梢血に含まれるＢ細胞および骨髄細胞（ＮＫ、ＮＫＴおよびマクロファージ）の割合を分析したところ、サブセットごとにさまざまな度合いで変化することが分かった。ＮＫ、ＮＫＴ、マクロファージの割合は処置後も比較的一定のままであったが、Ｂ細胞の割合は９名中４名の患者で減少した。
【図２９】
処置後にヒトの患者の末梢血に含まれるＢ細胞と骨髄細胞の総細胞数を分析したところ、処置後に、ＮＫ（９名中５名の患者）、ＮＫＴ（９名中４名の患者）、マクロファージ（９名中３名の患者）で細胞数に明らかなレベルの上昇が認められた。Ｂ細胞数については、９名中２名の患者でレベルが上昇し、９名中４名の患者では変化なし、９名中３名の患者ではレベルが低下するといった具合で、顕著な傾向は特に認められなかった。
【図３０】
ＬＨＲＨアゴニスト処置後に見られた主な変化は末梢血のＴ細胞個体群でのものであった。特に、ＣＤ４＋Ｔ細胞サブセットでのナイーブ（ＣＤ４５ＲＡ＋）と記憶（ＣＤ４５ＲＯ＋）との比がヒトの患者９名中６名で増加する、ナイーブ（ＣＤ４５ＲＡ＋）ＣＤ４＋細胞の割合の選択的な増加が認められた。
【図３１】
さまざまなレーザパルスエネルギを用いた場合における皮膚のインピーダンスの低下について示す図である。フィット曲線を用いてデータを補間すると、１０ｍＪという低いエネルギを照射した皮膚で皮膚インピーダンスが低下する。
【図３２】
皮膚の医薬品透過について示す図である。インスリンを試料医薬品として用いた場合の皮膚の透過性は放射線照射によって大幅に亢進された。
【図３３】
皮膚に５−アミノレブリン酸（ＡＬＡ）を加え、１回の神経衝撃トランジェント後の皮膚の経時蛍光変化を示す図である。強度のピークは約６４０ｎｍに見られ、処置後２１０分経過すると（点線）高くなる。
【図３４】
神経衝撃トランジェントなしで５−アミノレブリン酸（ＡＬＡ）を加えた後の皮膚の経時蛍光変化を示す図である。どの時点をみても強度がわずかに変化するだけである。
【図３５】
５−アミノレブリン酸（ＡＬＡ）を加え、さまざまなピーク応力下での神経衝撃トランジェント後の皮膚の蛍光変化を比較した図である。表皮細胞の膜透過は最大応力に左右される。
Claims (25)
- 患者の胸腺を再活性化することを含む、起炎因子による前記患者の感染を予防するための方法。
- 前記患者の胸腺が、少なくとも部分的に不活性化されたものである、請求項１に記載の方法。
- 前記患者が思春期後である、請求項２に記載の方法。
- 前記患者が、該患者の胸腺を少なくとも部分的に不活性化させる疾患を持っているまたは持っていた、あるいはこのような疾患の処置を受けているまたは受けていた、請求項２に記載の方法。
- 前記患者が最初に起炎因子に曝露される前または直後に再活性化を誘導する、請求項１に記載の方法。
- 前記胸腺への性ステロイドによるシグナル伝達を破壊することで前記患者の胸腺を再活性化する、請求項１に記載の方法。
- 前記胸腺への性ステロイドによるシグナル伝達を破壊する方法が、患者で性ステロイドの濃度を下げる１種またはそれ以上の製薬の投与によるものである、請求項６に記載の方法。
- 前記製薬が、ＬＨＲＨ類縁体と、抗ＬＨＲＨワクチンと、これらの組み合わせと、からなる群から選択される、請求項７に記載の方法。
- 前記ＬＨＲＨ類縁体が、ＬＨＲＨアゴニストまたはＬＨＲＨアンタゴニストである、請求項８に記載の方法。
- 前記ＬＨＲＨアゴニストが、ブセレリンと、シストレリンと、デカペプチルと、デスロレリンと、ゴナドレリンと、ゴセレリンと、ヒストレリンと、リュープロライドと、リュープロレリンと、ルトレリンと、メテレリンと、ナファレリンと、トリプトレリンと、からなる群から選択される、請求項９に記載の方法。
- 前記ＬＨＲＨアンタゴニストが、ユーレキシン（Ｅｕｌｅｘｉｎ）とアバレリックス（Ａｂａｒｅｌｉｘ）とからなる群から選択される、請求項９に記載の方法。
- 前記胸腺への性ステロイドによるシグナル伝達を破壊する方法が、前記患者の外科的な性腺摘除によるものである、請求項６に記載の方法。
- 少なくとも１種のサイトカイン、少なくとも１種の成長因子、あるいは、少なくとも１種のサイトカインと少なくとも１種の成長因子との組み合わせを、前記患者に送達するステップをさらに含む、請求項７に記載の方法。
- 前記サイトカインが、インターロイキン２（ＩＬ２）と、インターロイキン７（ＩＬ７）と、インターロイキン１５（ＩＬ１５）と、これらの組み合わせと、からなる群から選択される、請求項１３に記載の方法。
- 前記成長因子が、上皮成長因子ファミリのメンバと、線維芽細胞成長因子ファミリのメンバと、幹細胞成長因子と、顆粒球コロニー刺激因子（ＧＣＳＦ）と、ケラチノサイト成長因子（ＫＧＦ）と、これらの組み合わせと、からなる群から選択される、請求項１３に記載の方法。
- 前記ＬＨＲＨ類縁体、前記抗ＬＨＲＨワクチンまたはこれらの組み合わせの送達前に、前記サイトカインおよび／または成長因子を送達する、請求項１３に記載の方法。
- 前記ＬＨＲＨ類縁体、前記抗ＬＨＲＨワクチンまたはこれらの組み合わせの送達時または送達後に、前記サイトカインおよび／または成長因子を送達する、請求項１３に記載の方法。
- ＨＳＣと、骨髄前駆細胞と、リンパ球前駆細胞と、上皮幹細胞と、からなる群から選択される細胞を前記患者に送達するステップをさらに含む、請求項６に記載の方法。
- 前記胸腺への性ステロイドによるシグナル伝達の破壊後約１から３週間の間に前記細胞を前記患者に送達する、請求項１８に記載の方法。
- 前記胸腺が再活性化を開始した時点で前記細胞を送達する、請求項１８に記載の方法。
- 前記細胞を遺伝的に改変する、請求項１８に記載の方法。
- 遺伝的改変体が、外部因子によって細胞およびその子孫で感染に対する耐性を作り出す、請求項２１に記載の方法。
- 前記外部因子がウイルスである、請求項２２に記載の方法。
- 前記ウイルスが、ＨＩＶと、インフルエンザウイルスと、Ａ型肝炎ウイルスと、Ｂ型肝炎ウイルスと、Ｃ型肝炎ウイルスと、からなる群から選択される、請求項２３に記載の方法。
- ＬＨＲＨ類縁体を患者に投与するステップを含む、患者の骨髄の産生力を高めるための方法。
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