JP2004069489A - Probe carrier and its manufacturing method - Google Patents

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JP2004069489A
JP2004069489A JP2002228972A JP2002228972A JP2004069489A JP 2004069489 A JP2004069489 A JP 2004069489A JP 2002228972 A JP2002228972 A JP 2002228972A JP 2002228972 A JP2002228972 A JP 2002228972A JP 2004069489 A JP2004069489 A JP 2004069489A
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nucleic acid
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Nobuko Yamamoto
山本 伸子
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Abstract

<P>PROBLEM TO BE SOLVED: To immobilize a sequence for forming a hybrid with the target nucleic acid of a nucleic acid probe with a specific distance from the surface of a carrier via 5' end, and to provide a probe carrier which excludes influence on the sequence for forming the hybrid due to a reaction, when manufacturing the probe carrier and to provide a manufacturing method of the probe carrier. <P>SOLUTION: The probe is formed as a one-stranded nucleic acid having 5' end having an amino group for combining with the surface of the carrier, a part made of the continuous sequence of a thymine base, and a part for forming a hybrid made of a base sequence for forming a hybrid with a target nucleic acid, in this order from 5' side to 3' side. An epoxy group, provided on the carrier surface and an amino group at 5' end are commonly combined and immobilized on the carrier. In that case, the part for forming the hybrid is protected by the single-stranded nucleic acid for protection, thus excluding the influence to the part for forming the hybrid due to immobilization reaction. <P>COPYRIGHT: (C)2004,JPO

Description

【0001】
【発明の属する技術分野】
本発明は、核酸プローブ結合微粒子担体、その製造方法に関する。更に詳しくは、ハイブリダイゼーション法を基本とする遺伝子検出法等において、そのプローブを固定化する場合に、プローブの配列に含まれる反応性に富む官能基の保護に有効な方法に関する。また、リンカー部分の官能基の保護が不要であり、操作が簡便な核酸プローブ結合用担体の製造方法に関する。また、非特異的な吸着が少ないハイブリッド形成用塩基配列を結合した核酸プローブ結合用担体に関する。
【0002】
【従来の技術】
検査試料中の目的とする特定塩基配列を有する核酸を抽出、分離或いは検出する手段として、核酸のハイブリッド形成が利用されている。このハイブリダイゼーション法における反応では、標識化された、或いは固体担体表面上に固定化されたオリゴヌクレオチド、またはポリヌクレオチド(すなわちプローブ)が、標的核酸と塩基対を形成する。
【0003】
このハイブリダイゼーション法は一本鎖に変性されたDNAまたはRNAの核酸が適当な条件下で相補的な塩基配列を含む別の一本鎖核酸と塩基間の水素結合を介してハイブリッドを形成する事を利用するものである。
【0004】
従来はこれらのハイブリダイゼーション反応では、ニトロセルロース製やナイロン性のメンブランフィルターを支持体としてプローブを結合させ、ハイブリッド形成反応を行う事が一般的であったが、最近、プローブである一本鎖核酸をラテックス等不溶性固体微粒子表面に結合させ、ハイブリッド形成反応後プローブに結合した標識剤等の蛍光で検出する方法が行われるようになった。
【0005】
このような一本鎖核酸を固体表面に結合する方法として示されている特開昭63−27000号公報では、一本鎖核酸の粒子表面への固定はあらかじめコントロールする事はできず、固定部位を選択する事ができないという問題がある。そのためにハイブリッド形成効率が極めて低く、実用に適さないという問題があった。
【0006】
上記核酸固定化法の欠点を解消するために種々の核酸固定化支持体及びその製造方法が提案されている。例えば、核酸を構成するヌクレオチドの配列部分と固定化支持体との間に、炭素原子数4〜20の炭素鎖を介在させ間接的に核酸を固定化する方法が知られている。
【0007】
また、支持体への固定化の際、固定化に伴う化学反応によりプローブとして重要なヌクレオチド部分の反応性に富む第1級アミノ基が変化してしまう事を避けるため、これらのアミノ基を保護する事が必要となる。
【0008】
これらの問題点を解決すべく特開平6−335380号公報では、反応性に富む第1級アミノ基をもつヌクレオチド部分を相補鎖により二本鎖を形成させる事により保護する事が開示されている。そしてハイブリッド形成性塩基配列と固定化支持体との結合には、第1級アミノ基をもつデオキシアデニル酸、或いはデオキシシチジル酸の連続配列を配置し、該塩基が有する第1級アミノ基の反応性を利用して固定化担体に結合させる方法が示されている。つまり、この方法では固体表面上のカルボキシル基とデオキシアデニル酸、或いはデオキシシチジル酸のアミノ基がアミド結合する事により固定される。
【0009】
しかしこの方法では、連続したデオキシアデニル酸、或いはデオキシシチジル酸のどの部分が固定化担体に結合したのか特定できないために、ハイブリッド形成性塩基配列と固定化支持体との距離が一定にはならず、ハイブリッド形成反応において反応効率に差が生じる場合があるという問題がある。更に、固体表面上のカルボキシル基はハイブリッド形成反応時にターゲットDNA中の第1級アミノ基と反応したり、あるいはまたターゲットDNAの非特異的な吸着を誘導する場合があるという問題点を有する。
【0010】
【発明が解決しようとする課題】
このように定量的にハイブリッド形成反応を評価しようとすると、固定化支持体とハイブリッド形成性塩基配列の距離を一定に制御する事が必要になる。さらに、これらの反応を行う際にハイブリッド形成性塩基配列中の反応性に富む第1級アミノ基などの結合用の官能基を保護する必要がある。
【0011】
【課題を解決するための手段】
本発明によれば、固定化担体とハイブリッド形成性塩基配列との間にチミジン塩基からなるオリゴヌクレオチド(オリゴT)をリンカーとして用いる事により、簡便なプローブ結合固定化担体を得る方法を提供することができる。また、本発明の好ましい態様によれば、固体担体の表面をポリグリシジルメタアクリレートで覆う事により非特異吸着を避け、更にポリグリシジルメタアクリレート中のエポキシ基とプローブ核酸末端にあるアミノ基とを反応させる事により安定なプローブ結合固定化担体を得ることができる。
【0012】
すなわち、本発明にかかるプローブ担体は、核酸プローブを担体の表面に固定化したプローブ担体であって、前記核酸プローブが、前記担体の表面と結合している5’末端と、チミン塩基の連続配列からなる部分と、標的核酸とハイブリッドを形成し得る塩基配列からなるハイブリッド形成用部分とを、前記担体側からこの順に有する一本鎖核酸であることを特徴とするプローブ担体である。
【0013】
また、本発明にかかるプローブ担体の製造方法は、担体と、該担体の表面に結合した核酸プローブとを有し、該核酸プローブが、前記担体の表面と結合している5’末端と、チミン塩基の連続配列からなる部分と、標的核酸とハイブリッドを形成し得る塩基配列からなるハイブリッド形成用部分とを、前記担体側からこの順に有する一本鎖核酸であるプローブ担体の製造方法であって、
(1)結合用の官能基を有する5’末端と、チミン塩基の連続配列と、核酸プローブとハイブリッドを形成し得る塩基配列からなるハイブリッド形成用部分とがこの順に配列された一本鎖核酸プローブを調製する工程と、
(2)前記一本鎖核酸プローブに、該一本鎖核酸プローブのハイブリッド形成用配列と相補的な部分を有する配列を有する保護用一本鎖核酸をハイブリダイズさせて、二本鎖部分を有する核酸を形成し、前記ハイブリッド形成用部分にある結合用官能基を保護する工程と、
(3)表面に前記5’末端と結合する官能基を有する担体を用意する工程と、
(4)前記二本鎖部分を有する核酸の一本鎖核酸プローブ側の5’末端の官能基と前記担体表面にある官能基とを反応させることでこれらを結合させる工程と、
(5)前記二本鎖部分を有する核酸が結合している担体の表面にある未反応の官能基の反応性を消失させる工程と、
(6)前記担体に結合した二本鎖部分を有する核酸から、保護用一本鎖核酸を除去してプローブ担体を得る工程と
を有することを特徴とするプローブ結合用担体の製造方法である。
【0014】
本発明によれば、核酸プローブの標的核酸とのハイブリッド形成用配列を5’末端を介して担体表面からの所定の距離を持って固定化し、また、プローブ担体製造時における反応によるハイブリッド形成用配列への影響を排除したプローブ担体及びその製造方法を提供することが可能となる。
【0015】
【発明の実施の形態】
本明細書において、担体上に固定されたプローブは、特定の標的物質に対して特異的に結合可能なものである。本発明ではこのプローブとして核酸、すなわちオリゴヌクレオチドやポリヌクレオチドから構成される。用語「プローブ」は、個々のポリヌクレオチド分子などのプローブ機能を有する分子、および分散した位置に表面固定された同じ配列のポリヌクレオチドなどの同じプローブ機能を有する分子の集団の両方をいい、しばしばリガンドと呼ばれる分子も含まれる。また、プローブ及び標的は、しばしば交換可能に使用され、プローブは、リガンド−抗リガンド(レセプターと呼ぶこともある)対の一部として標的と結合し得るか、または結合するようになり得るものである。本発明におけるプローブ及び標的は、天然において見出されるような塩基、またはその類似物を含み得る。
【0016】
本発明で用いられるプローブは、その使用目的に応じて、適宜選択されるものであるが、本発明の方法を好適に実施する上では、プローブとしては、DNA、RNA、cDNA(コンプリメンタリーDNA)、PNA、オリゴヌクレオチド、ポリヌクレオチド、その他の核酸の少なくとも1種であることが好ましい。
【0017】
本発明においては、これらのプローブの複数種を、それぞれ独立した領域、例えばドット状スポットとして担体表面に固定したものをプローブ担体といい、所定の間隔で配列されたものをプローブ・アレイという。また、高密度にスポットを配列したものにマイクロアレイがある。
【0018】
本発明におけるプローブは、一本鎖核酸からなり、5’末端から3’末端方向に、担体との結合に利用される官能基を有する5’末端、チミンの連続配列からなるリンカー部分と、標的核酸とハイブリッドを形成し得る塩基配列からなるハイブリッド形成用部分と、を有する。
【0019】
これらの各部分は、本発明の効果が得られる範囲内で複数個、例えば数個の塩基を介して接続していることができるが、これらの各部分が直接結合している構成がより好ましい。プローブ全体の長さとしては、10〜70塩基長の範囲とすることが好ましい。
【0020】
チミンの連続配列からなる部分は、担体表面とハイブリッド形成用部分の距離を一定化させるリンカーとしての機能を有し、チミン塩基数は3〜10が好ましく、3がより好ましい。
【0021】
5’末端の結合用の官能基は担体表面に設けた結合用の官能基と結合することで5’末端から正確に核酸プローブを担体に結合させる機能を有する。このような結合用の官能基の組合せとしては、固定のための結合、好ましくは共有結合を形成する固定化用の官能基の各種組合せが利用でき、例えば、プローブ側にアミノ基(第1級)を、担体側にエポキシ基を用いた組合せが特に好ましい。このようなアミノ基を5’末端に有する構造は、アミノ基を有するヌクレオチドを利用して形成することができる。
【0022】
担体表面へのエポキシ基の導入は、担体全体あるいは担体の所定部分をポリグリシジルメタアクリレートで形成する方法が好適である。
【0023】
また、例えば、プレート状の担体の表面に、ハイブリッド形成用部分の配列が異なる複数の核酸プローブのそれぞれの固定化領域を互いに隔離して配置して、複数の標的核酸を分析するためのプローブ担体を得ることができ、また、多数の固定化領域を所定の配列で配置してプローブアレイを作製することができる。更に、固定化領域を高密度で配置することでマイクロアレイを作製することができる。
【0024】
本発明にかかるプローブ担体の好ましい一態様は、以下の工程:
(1)アミノ基を有する5’末端と、チミン塩基の連続配列と、核酸プローブとハイブリッドを形成し得る塩基配列からなるハイブリッド形成用部分とがこの順に配列された一本鎖核酸プローブを調製する工程と、
(2)前記一本鎖核酸プローブに、該一本鎖核酸プローブのハイブリッド形成用配列と補的な部分を有する配列を有する保護用一本鎖核酸をハイブリダイズさせて、二本鎖部分を有する核酸を形成し、前記ハイブリッド形成用部分にあるアミノ基を保護する工程と、
(3)表面に前記5’末端と結合するエポキシ基を有する担体を用意する工程と、
(4)前記二本鎖部分を有する核酸の一本鎖核酸プローブ側の5’末端のアミノ基と前記担体表面にあるエポキシ基とを反応させることでこれらを共有結合させる工程と、
(5)前記二本鎖部分を有する核酸が結合している担体の表面にある未反応のエポキシ基の反応性を消失させる工程と、
(6)前記担体に結合した二本鎖部分を有する核酸から、保護用一本鎖核酸を除去してプローブ担体を得る工程と
を有する製造方法により製造することができる。
【0025】
各工程を行う際の具体的な操作については公知の方法ができようできる。例えば、二本鎖部分の一本鎖化には、加熱や反応媒体のイオン強度の変化による処理などが利用できる。
【0026】
上記保護用一本鎖核酸は、核酸プローブの標的核酸とのハイブリッド形成用部分と二本鎖を形成してこれを保護するものであればよい。核酸プローブのハイブリッド形成用部分が保護されることで、ハイブリッド形成用部分中にあるアミノ基(第1級)が担体側のエポキシ基と反応することが防止され、アミノ基とエポキシ基との強固かつ選択的な結合を利用しつつ、プローブ核酸のハイブリッド形成用部分の標的核酸との反応において必要なかつ良好な状態を保ちつつプローブ核酸の担体への固定が可能となる。
【0027】
担体としては、固体平板状のものや固体粒子状のものなど各種の形状のものが利用できる。粒子状のものを利用する場合は、その平均粒径が0.8μmであるものが好ましい。
【0028】
なお、固体粒子状の担体を用いた場合は、粒子状に特有な簡便な取扱い性や用途においてプローブ担体を利用することができる。固体微粒子状の担体にプローブ分子を密に配置した場合、プローブと相補的な配列の有無が検査される検体遺伝子などの検体が、プローブ分子間に入り込めない場合があるという問題があり、本発明では、このような問題の発生を、チミン塩基の連続配列によるリンカーによってプローブ側のハイブリッド形成部分を担体表面から良好な間隔で離した位置に配置することで防止し、より効率よいハイブリダイゼーションを可能とするという効果を得ることができる。更に、本発明では、あらかじめ保護用の一本鎖核酸を用いて核酸プローブとの二本鎖を形成させて(二本鎖形成はアミノ基などの官能基のブロック機能を有する)、検体との有効なプローブ結合が行なわれるように核酸プローブの担体上の配置や密度などのコントロールして、過密なプローブ結合による検体反応の阻害の可能性を排除あるいは低減させるという効果を得ることもできる。
【0029】
【実施例】
以下、実施例により本発明をより詳細に説明する。
1.エポキシ基導入固定化担体の作製
極低カルボン酸変性ポリスチレン粒子Immutex G−1701(粒子系0.789μm)10gにエマルジット49(第一工業製薬)を2g(重量比20%)加えた。次に、グリシジルメタアクリレートをスチレン樹脂の9倍量(重量比)加え、重合開始剤としてPotassium Persulfate2%水溶液を加えた。72℃で1時間加熱後、30分毎に再度グリシジルメタアクリレートを0.1gずつ6回加えた。その後75℃で2時間加熱し、冷却し洗浄を行った。洗浄は200メッシュでろ過後、純粋を用いた遠心洗浄を2回行った。得られたスチレン樹脂はフローサイトメーターの解析により1.096μmの径であることが確認された。
2.アミノ基リンクDNAの合成
18量体オリゴヌクレオチドの5‘末端にチミジンのオリゴヌクレオチドがn個結合し、さらにその5’末端に5’−Amino−Modifier C6 ( Glen Research社製)が結合した下図のような構成のプローブをABI社製381A DNA自動合成機を用いてホスホロアミダイド法にて固相合成した。5’ジメトキシトリチル基は自動合成機上で除去した(配列1)。
【0030】
配列1(配列番号:1):
5’−X―(T)n−ACTGGCCGTCGTTTTACA−3’
(n = 0, 3, 7または20)
【0031】
【化1】

Figure 2004069489
【0032】
3.FITCが結合した配列1の相補鎖(配列2)の合成
以下の配列の標識オリゴヌクレオチドを常法により合成した。
配列2(配列番号:2):
5’−F−TGTAAAACGACGGCCAGT−3’
(F=FITC)
4.配列1の相補鎖(配列番号:3)の合成
以下の配列の標識オリゴヌクレオチドを常法により合成した。
配列3(配列番号:3):
5’−TGTAAAACGACGGCCAGT−3’
5.ハイブリッド形成によるプローブ配列の保護
配列1からなるアミノリンクオリゴヌクレオチド200μM、配列2からなるFITC標識相補鎖20μMを含む50mMNaCl/50mMりん酸ナトリウム緩衝液(pH8.0)溶液を用意し、65℃にて10分加温する。その後35℃まで徐冷する。次に配列3からなるFITCの結合していない相補鎖を180μMになるように加え、NaCl、及びりん酸ナトリウム緩衝液をそれぞれ最終濃度50mMになるように調製し、そのまま室温以下になるまで冷却しアニールする(一晩)。この反応により、二本鎖オリゴヌクレオチドが形成される。このとき、その後の反応のモニターのために、蛍光標識されたオリゴヌクレオチドを混入させている。
6.プローブの粒子への結合反応
上記1項で合成したエポキシ基導入粒子溶液1μl(約10個)に上記5項で作製したDNA溶液を40μMになるように加え、回転攪拌装置を用いて室温で4時間反応させた。それに5倍量の10mMりん酸緩衝液を加え、遠心により粒子を回収した。上清の蛍光を日立蛍光分光光度計で測定し(励起波長498nm、蛍光522nm),反応前に比べ、蛍光強度が十分減少していることを確認した。再度りん酸緩衝液で、次に蒸留水にて洗浄を行った後、1Mエタノールアミンを加え室温にて一晩反応させることにより未反応のエポキシ基のブロッキングを行った。
【0033】
反応後の粒子を100μlのシース液に懸濁し、そのうちの20μlを1mlのシース液で希釈して、フローサイトメーターにより評価した。85%以上の粒子に蛍光が導入されており、二本鎖オリゴヌクレオチドが粒子表面に結合したことが確認できた。
7.プローブ保護用相補鎖の除去(熱変性による方法)
ハイブリダイゼーション反応を行うためには、直接粒子に結合しているオリゴヌクレオチド以外の相補鎖の部分をはずす作業が必要である。
【0034】
反応させた粒子を100μlの純水に懸濁し、80℃で2分間加熱した。その後遠心操作を行って粒子を回収し、相補鎖が外れ一本鎖のプローブのみが結合したプローブ結合担体を得た。
8.プローブ保護用相補鎖の除去(アルカリ変性による方法)
熱変性以外の方法として、上記反応溶液20μlに1Mエタノールアミン50μl加え、室温で5時間攪拌した。遠心により粒子を回収し、純水で数回遠心洗浄して、相補鎖を外した。フローサイトメーターで測定した結果、熱変性の場合も、アルカリ変性の場合も蛍光は完全に消失し、相補鎖が外れていることが確認された。
9.ハイブリダイゼーション反応
配列2のFITC標識オリゴヌクレオチド0.2ナノモルを0.5M NaClを含む0.5M リン酸バッファーに溶解し、その中に7或いは8で作製したプローブ結合粒子を懸濁して37℃一晩反応させた。反応後の懸濁液を遠心処理し、粒子を回収してその蛍光量をフローサイトメーターにより測定した。結果を以下の表1に示す。
【0035】
【表1】
Figure 2004069489
【0036】
表1に示すとおり、Tの長さによりハイブリダイゼーションの効率が異なり、Tの長さが3の時に最大のハイブリッド効率を示した。
【0037】
【発明の効果】
ビーズ等、粒子表面にオリゴヌクレオチドを固定する方法を提案した。通常のDNA合成の際に導入されるリンカー長に加えて、Tの三量体程度の長さのリンカーを連結し、リンカー長を長くすることが、ハイブリダイゼーション反応の効率をあげる上で重要であることを示した。
【0038】
【配列表】
Figure 2004069489
[0001]
TECHNICAL FIELD OF THE INVENTION
The present invention relates to a nucleic acid probe-bound fine particle carrier and a method for producing the same. More specifically, the present invention relates to a method effective for protecting a reactive functional group contained in a probe sequence when immobilizing a probe in a gene detection method based on a hybridization method or the like. The present invention also relates to a method for producing a carrier for binding a nucleic acid probe, which does not require protection of a functional group of a linker portion and is easy to operate. In addition, the present invention relates to a carrier for binding a nucleic acid probe to which a base sequence for hybrid formation with less nonspecific adsorption is bound.
[0002]
[Prior art]
Hybridization of nucleic acids is used as a means for extracting, separating or detecting a nucleic acid having a specific base sequence of interest in a test sample. In the reaction in this hybridization method, an oligonucleotide or a polynucleotide (ie, a probe) that is labeled or immobilized on a solid support surface forms a base pair with a target nucleic acid.
[0003]
In this hybridization method, a single-stranded DNA or RNA nucleic acid forms a hybrid under appropriate conditions with another single-stranded nucleic acid containing a complementary base sequence through hydrogen bonding between bases. Is used.
[0004]
Conventionally, in these hybridization reactions, a probe was bound using a nitrocellulose or nylon membrane filter as a support, and a hybridization reaction was generally performed. Is bonded to the surface of insoluble solid fine particles such as latex, and after the hybridization reaction, a method of detecting by fluorescence of a labeling agent or the like bound to the probe has been used.
[0005]
In Japanese Patent Application Laid-Open No. 63-27000, which discloses a method for binding a single-stranded nucleic acid to a solid surface, the fixation of the single-stranded nucleic acid to the particle surface cannot be controlled in advance, and There is a problem that can not be selected. Therefore, there was a problem that the hybridization efficiency was extremely low and was not suitable for practical use.
[0006]
In order to solve the above-mentioned drawbacks of the nucleic acid immobilization method, various nucleic acid immobilization supports and methods for producing the same have been proposed. For example, a method of indirectly immobilizing a nucleic acid by interposing a carbon chain having 4 to 20 carbon atoms between a sequence portion of nucleotides constituting the nucleic acid and an immobilization support is known.
[0007]
In addition, when immobilizing on a support, these amino groups are protected to prevent the reactive primary amino group of the nucleotide portion important as a probe from being changed by a chemical reaction accompanying the immobilization. It is necessary to do.
[0008]
To solve these problems, JP-A-6-335380 discloses that a nucleotide portion having a primary amino group having high reactivity is protected by forming a double strand with a complementary strand. . Then, a continuous sequence of deoxyadenylic acid or deoxycytidylic acid having a primary amino group is arranged in the bond between the hybridizable base sequence and the immobilized support, and the primary amino group of the base is A method of binding to an immobilized carrier using reactivity is disclosed. That is, in this method, the carboxyl group on the solid surface and the amino group of deoxyadenylic acid or deoxycytidylic acid are fixed by an amide bond.
[0009]
However, in this method, since it is not possible to specify which portion of continuous deoxyadenylic acid or deoxycytidylic acid is bound to the immobilization support, the distance between the hybridizable base sequence and the immobilization support is not constant. However, there is a problem that a difference may occur in the reaction efficiency in the hybridization reaction. Further, there is a problem that the carboxyl group on the solid surface may react with a primary amino group in the target DNA during the hybridization reaction or induce non-specific adsorption of the target DNA.
[0010]
[Problems to be solved by the invention]
In order to quantitatively evaluate the hybridization reaction in this way, it is necessary to control the distance between the immobilized support and the hybridization base sequence to be constant. Furthermore, when performing these reactions, it is necessary to protect functional groups for binding, such as highly reactive primary amino groups, in the hybridizable base sequence.
[0011]
[Means for Solving the Problems]
According to the present invention, there is provided a method for obtaining a simple probe-bound immobilized carrier by using an oligonucleotide (oligo T) comprising a thymidine base as a linker between the immobilized carrier and the hybridizable base sequence. Can be. According to a preferred embodiment of the present invention, non-specific adsorption is avoided by covering the surface of the solid support with polyglycidyl methacrylate, and the epoxy group in the polyglycidyl methacrylate further reacts with the amino group at the terminal of the probe nucleic acid. By doing so, a stable probe-bound and immobilized carrier can be obtained.
[0012]
That is, the probe carrier according to the present invention is a probe carrier in which a nucleic acid probe is immobilized on the surface of a carrier, wherein the nucleic acid probe has a 5 ′ end bonded to the surface of the carrier and a continuous sequence of thymine bases. And a hybrid-forming portion comprising a base sequence capable of forming a hybrid with a target nucleic acid in this order from the carrier side.
[0013]
Further, the method for producing a probe carrier according to the present invention includes a carrier, and a nucleic acid probe bound to the surface of the carrier, wherein the nucleic acid probe has a 5 ′ end bound to the surface of the carrier, and thymine. A method for producing a probe carrier which is a single-stranded nucleic acid having a portion consisting of a continuous sequence of bases and a portion for hybrid formation consisting of a base sequence capable of forming a hybrid with a target nucleic acid in this order from the carrier side,
(1) A single-stranded nucleic acid probe in which a 5 'end having a functional group for binding, a continuous sequence of thymine bases, and a hybrid-forming portion comprising a base sequence capable of forming a hybrid with the nucleic acid probe are arranged in this order. Preparing a;
(2) The single-stranded nucleic acid probe is hybridized with a single-stranded nucleic acid for protection having a sequence having a portion complementary to the sequence for hybridization of the single-stranded nucleic acid probe to have a double-stranded portion. Forming a nucleic acid and protecting the binding functional group on the hybridization moiety;
(3) a step of preparing a carrier having on its surface a functional group that binds to the 5 ′ end;
(4) reacting a functional group on the single-stranded nucleic acid probe side of the nucleic acid having the double-stranded portion with a 5′-terminal functional group and a functional group on the surface of the carrier to bond them;
(5) eliminating the reactivity of unreacted functional groups on the surface of the carrier to which the nucleic acid having the double-stranded portion is bound;
(6) a step of obtaining a probe carrier by removing a single-stranded nucleic acid for protection from the nucleic acid having a double-stranded portion bound to the carrier to obtain a probe carrier.
[0014]
According to the present invention, the sequence for hybridization of a nucleic acid probe with a target nucleic acid is immobilized at a predetermined distance from the carrier surface via the 5 'end, and the sequence for hybridization by reaction during the production of a probe carrier is immobilized. It is possible to provide a probe carrier and a method for producing the probe carrier, the influence of which is eliminated.
[0015]
BEST MODE FOR CARRYING OUT THE INVENTION
In the present specification, a probe immobilized on a carrier is one that can specifically bind to a specific target substance. In the present invention, the probe is composed of a nucleic acid, that is, an oligonucleotide or a polynucleotide. The term "probe" refers to both a molecule having a probe function, such as an individual polynucleotide molecule, and a population of molecules having the same probe function, such as polynucleotides of the same sequence surface-immobilized at dispersed locations, often a ligand. Also included are molecules called. Also, probes and targets are often used interchangeably, where the probe is capable of binding to or becoming capable of binding to the target as part of a ligand-antiligand (sometimes referred to as a receptor) pair. is there. Probes and targets in the present invention can include bases as found in nature, or analogs thereof.
[0016]
The probe used in the present invention is appropriately selected according to the purpose of use, but in order to suitably carry out the method of the present invention, the probe may be DNA, RNA, cDNA (complementary DNA). , PNA, oligonucleotides, polynucleotides, and other nucleic acids.
[0017]
In the present invention, a probe carrier in which a plurality of types of these probes are fixed on the carrier surface as independent regions, for example, as dot spots, is called a probe carrier, and those arranged at predetermined intervals are called a probe array. In addition, there is a microarray in which spots are arranged at high density.
[0018]
The probe according to the present invention comprises a single-stranded nucleic acid, a 5′-terminal having a functional group used for binding to a carrier, a 5′-terminal, a linker portion composed of a thymine continuous sequence, A hybrid-forming portion comprising a base sequence capable of forming a hybrid with a nucleic acid.
[0019]
Each of these portions can be connected via a plurality of, for example, several bases within a range where the effects of the present invention can be obtained, but a configuration in which these portions are directly bonded is more preferable. . The length of the entire probe is preferably in the range of 10 to 70 bases.
[0020]
The portion consisting of a continuous thymine sequence has a function as a linker for keeping the distance between the surface of the carrier and the portion for forming a hybrid constant. The number of thymine bases is preferably 3 to 10, and more preferably 3.
[0021]
The binding functional group at the 5 'end has a function of binding the nucleic acid probe to the carrier accurately from the 5' end by binding to the binding functional group provided on the carrier surface. As such a combination of functional groups for binding, various combinations of functional groups for immobilization that form a bond for immobilization, preferably a covalent bond can be used. For example, an amino group (primary group) ) Is particularly preferred in combination with an epoxy group on the carrier side. Such a structure having an amino group at the 5 ′ end can be formed using a nucleotide having an amino group.
[0022]
For the introduction of the epoxy group to the surface of the carrier, a method of forming the entire carrier or a predetermined portion of the carrier with polyglycidyl methacrylate is preferable.
[0023]
Further, for example, a probe carrier for analyzing a plurality of target nucleic acids by arranging immobilized regions of a plurality of nucleic acid probes having different sequences of hybridization portions separately from each other on the surface of a plate-shaped carrier, for example. Can be obtained, and a plurality of immobilized regions can be arranged in a predetermined sequence to prepare a probe array. Furthermore, a microarray can be manufactured by arranging the immobilization regions at a high density.
[0024]
One preferred embodiment of the probe carrier according to the present invention comprises the following steps:
(1) A single-stranded nucleic acid probe is prepared in which a 5 ′ end having an amino group, a continuous sequence of thymine bases, and a portion for forming a hybrid comprising a base sequence capable of forming a hybrid with the nucleic acid probe are arranged in this order. Process and
(2) The single-stranded nucleic acid probe is hybridized with a single-stranded nucleic acid for protection having a sequence having a portion complementary to the sequence for hybridization of the single-stranded nucleic acid probe to have a double-stranded portion. Forming a nucleic acid and protecting the amino group in the hybridization moiety;
(3) providing a carrier having an epoxy group bonded to the 5 ′ end on the surface;
(4) reacting an amino group at the 5 ′ end of the nucleic acid having a double-stranded portion on the single-stranded nucleic acid probe side with an epoxy group on the surface of the carrier to covalently bond them;
(5) eliminating the reactivity of unreacted epoxy groups on the surface of the carrier to which the nucleic acid having the double-stranded portion is bound;
(6) a step of removing a single-stranded nucleic acid for protection from a nucleic acid having a double-stranded portion bound to the carrier to obtain a probe carrier;
[0025]
A known method can be used for a specific operation in performing each step. For example, heating or treatment by a change in the ionic strength of the reaction medium can be used to convert the double-stranded portion into a single strand.
[0026]
The single-stranded nucleic acid for protection may be any as long as it forms a double-stranded structure with a portion of the nucleic acid probe for hybridization with the target nucleic acid and protects it. By protecting the hybridizing portion of the nucleic acid probe, the amino group (primary) in the hybridizing portion is prevented from reacting with the epoxy group on the carrier side, and the amino group and the epoxy group are strongly bonded. Further, the probe nucleic acid can be immobilized on the carrier while maintaining a necessary and favorable state in the reaction of the portion for forming the probe nucleic acid with the target nucleic acid while utilizing the selective binding.
[0027]
As the carrier, those having various shapes such as a solid flat plate and a solid particle can be used. When a particulate material is used, it is preferable that the average particle size is 0.8 μm.
[0028]
When a solid particulate carrier is used, the probe carrier can be used for easy handling and use peculiar to the particulate form. When probe molecules are densely arranged on a solid particulate carrier, there is a problem that a sample such as a sample gene, which is tested for the presence of a sequence complementary to the probe, may not be able to enter between probe molecules. In the present invention, the occurrence of such a problem is prevented by arranging the probe-side hybridization portion at a good distance from the carrier surface by a linker composed of a continuous sequence of thymine bases, thereby achieving more efficient hybridization. The effect of making it possible can be obtained. Further, in the present invention, a double-strand with a nucleic acid probe is formed in advance using a single-stranded nucleic acid for protection (the double-strand formation has a function of blocking a functional group such as an amino group) to form a double strand with the specimen. By controlling the arrangement and density of the nucleic acid probes on the carrier so that effective probe binding is performed, it is possible to obtain an effect of eliminating or reducing the possibility of inhibiting the sample reaction due to tight probe binding.
[0029]
【Example】
Hereinafter, the present invention will be described in more detail with reference to examples.
1. Preparation of Epoxy Group-Introduced Immobilized Carrier Emulgit 49 (Daiichi Kogyo Seiyaku Co., Ltd.) (2 g, 20% by weight) was added to 10 g of ultra-low carboxylic acid-modified polystyrene particles Immutex G-1701 (0.789 μm in particle system). Next, glycidyl methacrylate was added in an amount 9 times the weight of the styrene resin (weight ratio), and a 2% aqueous solution of Potassium Persulfate was added as a polymerization initiator. After heating at 72 ° C. for 1 hour, 0.1 g of glycidyl methacrylate was added again every 30 minutes six times. Thereafter, it was heated at 75 ° C. for 2 hours, cooled, and washed. After washing with a 200 mesh, centrifugal washing using pure was performed twice. The obtained styrene resin was confirmed to have a diameter of 1.096 μm by flow cytometer analysis.
2. Synthesis of Amino Group Linked DNA n thymidine oligonucleotides were linked to the 5 ′ end of the 18-mer oligonucleotide, and 5′-Amino-Modifier C6 (Glen Research) was linked to the 5 ′ end of the oligonucleotide. The probe having the above configuration was synthesized by a phosphoramidite method using an ABI 381A DNA automatic synthesizer. The 5 'dimethoxytrityl group was removed on an automatic synthesizer (sequence 1).
[0030]
Sequence 1 (SEQ ID NO: 1):
5'-X- (T) n-ACTGGCCGTCGTTTTTACA-3 '
(N = 0, 3, 7, or 20)
[0031]
Embedded image
Figure 2004069489
[0032]
3. Synthesis of Complementary Strand of Sequence 1 (Sequence 2) to which FITC was Bound A labeled oligonucleotide having the following sequence was synthesized by a conventional method.
Sequence 2 (SEQ ID NO: 2):
5'-F-TGTAAAACGACGGCCAGT-3 '
(F = FITC)
4. Synthesis of complementary strand of sequence 1 (SEQ ID NO: 3) A labeled oligonucleotide having the following sequence was synthesized by a conventional method.
Sequence 3 (SEQ ID NO: 3):
5'-TGTAAAACGACGGCCAGT-3 '
5. Protection of Probe Sequence by Hybridization A 50 mM NaCl / 50 mM sodium phosphate buffer (pH 8.0) solution containing 200 μM of amino link oligonucleotide consisting of sequence 1 and 20 μM of FITC-labeled complementary strand consisting of sequence 2 was prepared, and was heated at 65 ° C. Heat for 10 minutes. Thereafter, it is gradually cooled to 35 ° C. Next, a complementary strand of sequence 3 to which no FITC is bound is added to a concentration of 180 μM, and NaCl and a sodium phosphate buffer are each adjusted to a final concentration of 50 mM, and cooled to room temperature or lower. Anneal (overnight). This reaction forms a double-stranded oligonucleotide. At this time, a fluorescently labeled oligonucleotide is mixed in to monitor the subsequent reaction.
6. Probe Binding Reaction to Particles The DNA solution prepared in the above item 5 was added to 1 μl (about 10 8 ) of the epoxy group-introduced particle solution synthesized in the above item 1 to a concentration of 40 μM, and the mixture was stirred at room temperature using a rotary stirring device. The reaction was performed for 4 hours. A 5-fold volume of 10 mM phosphate buffer was added thereto, and the particles were collected by centrifugation. The fluorescence of the supernatant was measured with a Hitachi fluorescence spectrophotometer (excitation wavelength 498 nm, fluorescence 522 nm), and it was confirmed that the fluorescence intensity was sufficiently reduced as compared with before the reaction. After washing again with a phosphate buffer and then with distilled water, unreacted epoxy groups were blocked by adding 1 M ethanolamine and reacting at room temperature overnight.
[0033]
The particles after the reaction were suspended in 100 μl of the sheath liquid, 20 μl of which was diluted with 1 ml of the sheath liquid, and evaluated by a flow cytometer. Fluorescence was introduced into 85% or more of the particles, confirming that the double-stranded oligonucleotide had bound to the particle surface.
7. Removal of complementary strand for probe protection (method by thermal denaturation)
In order to carry out the hybridization reaction, it is necessary to remove the complementary strand other than the oligonucleotide directly bound to the particles.
[0034]
The reacted particles were suspended in 100 μl of pure water and heated at 80 ° C. for 2 minutes. Thereafter, the particles were recovered by centrifugation to obtain a probe-bound carrier to which the complementary strand was removed and only a single-stranded probe was bound.
8. Removal of complementary strand for protecting probe (method by alkali denaturation)
As a method other than heat denaturation, 50 μl of 1 M ethanolamine was added to 20 μl of the above reaction solution, and the mixture was stirred at room temperature for 5 hours. The particles were collected by centrifugation and washed several times with pure water to remove the complementary strand. As a result of measurement with a flow cytometer, it was confirmed that the fluorescence completely disappeared in both the case of heat denaturation and the case of alkali denaturation, and that the complementary strand was removed.
9. 0.2 nmol of the FITC-labeled oligonucleotide of the hybridization reaction sequence 2 is dissolved in 0.5 M phosphate buffer containing 0.5 M NaCl, and the probe-bound particles prepared in 7 or 8 are suspended therein, and The reaction was performed overnight. The suspension after the reaction was centrifuged to collect particles, and the amount of fluorescence was measured by a flow cytometer. The results are shown in Table 1 below.
[0035]
[Table 1]
Figure 2004069489
[0036]
As shown in Table 1, the hybridization efficiency was different depending on the length of T, and the maximum hybrid efficiency was exhibited when the length of T was 3.
[0037]
【The invention's effect】
A method for immobilizing oligonucleotides on the surface of particles such as beads was proposed. In order to increase the efficiency of the hybridization reaction, it is important to increase the linker length by linking a linker having a length of about T trimer in addition to the linker length introduced during normal DNA synthesis. Showed that there is.
[0038]
[Sequence list]
Figure 2004069489

Claims (18)

核酸プローブを担体の表面に固定化したプローブ担体であって、
前記核酸プローブが、前記担体の表面と結合している5’末端と、チミン塩基の連続配列からなる部分と、標的核酸とハイブリッドを形成し得る塩基配列からなるハイブリッド形成用部分とを、前記担体側からこの順に有する一本鎖核酸である
ことを特徴とするプローブ担体。
A probe carrier having a nucleic acid probe immobilized on the surface of the carrier,
The nucleic acid probe has a 5 ′ end bonded to the surface of the carrier, a portion consisting of a continuous sequence of thymine bases, and a portion for forming a hybrid consisting of a base sequence capable of forming a hybrid with a target nucleic acid, A probe carrier, which is a single-stranded nucleic acid having this order from the side.
前記核酸プローブと前記担体表面が前記リンカーの5’末端の有するアミノ基と該担体の表面が有するエポキシ基との反応により形成された共有結合により結合している請求項1に記載のプローブ担体。The probe carrier according to claim 1, wherein the nucleic acid probe and the carrier surface are bonded by a covalent bond formed by a reaction between an amino group at the 5 'end of the linker and an epoxy group on the surface of the carrier. 前記エポキシ基が前記担体の表面に存在するポリグリシジルメタクリレートの有するものである請求項2記載のプローブ担体。3. The probe carrier according to claim 2, wherein the epoxy group has polyglycidyl methacrylate present on the surface of the carrier. 前記チミン塩基の連続配列の長さが3〜10塩基である請求項1〜3のいずれかに記載のプローブ担体。The probe carrier according to any one of claims 1 to 3, wherein the length of the continuous sequence of the thymine base is 3 to 10 bases. 前記チミン塩基の連続配列の長さが3塩基である請求項4記載のプローブ担体。The probe carrier according to claim 4, wherein the length of the continuous sequence of thymine bases is 3 bases. 前記担体が不溶性固体微粒子である請求項1〜5のいずれかに記載のプローブ担体。The probe carrier according to any one of claims 1 to 5, wherein the carrier is insoluble solid fine particles. 前記不溶性固体微粒子の平均径が0.8μmである請求項6に記載のプローブ担体。The probe carrier according to claim 6, wherein the insoluble solid fine particles have an average diameter of 0.8 µm. 前記担体が、核酸プローブ固定用の平面を有する請求項1〜5のいずれかに記載のプローブ担体。The probe carrier according to any one of claims 1 to 5, wherein the carrier has a flat surface for immobilizing a nucleic acid probe. 担体と、該担体の表面に結合した核酸プローブとを有し、該核酸プローブが、前記担体の表面と結合している5’末端と、チミン塩基の連続配列からなる部分と、標的核酸とハイブリッドを形成し得る塩基配列からなるハイブリッド形成用部分とを、前記担体側からこの順に有する一本鎖核酸であるプローブ担体の製造方法であって、
(1)結合用の官能基を有する5’末端と、チミン塩基の連続配列と、核酸プローブとハイブリッドを形成し得る塩基配列からなるハイブリッド形成用部分とがこの順に配列された一本鎖核酸プローブを調製する工程と、
(2)前記一本鎖核酸プローブに、該一本鎖核酸プローブのハイブリッド形成用配列と相補的な部分を有する配列を有する保護用一本鎖核酸をハイブリダイズさせて、二本鎖部分を有する核酸を形成し、前記ハイブリッド形成用部分にある結合用官能基を保護する工程と、
(3)表面に前記5’末端と結合する官能基を有する担体を用意する工程と、
(4)前記二本鎖部分を有する核酸の一本鎖核酸プローブ側の5’末端の官能基と前記担体表面にある官能基とを反応させることでこれらを結合させる工程と、(5)前記二本鎖部分を有する核酸が結合している担体の表面にある未反応の官能基の反応性を消失させる工程と、
(6)前記担体に結合した二本鎖部分を有する核酸から、保護用一本鎖核酸を除去してプローブ担体を得る工程と
を有することを特徴とするプローブ結合用担体の製造方法。
A carrier and a nucleic acid probe bound to the surface of the carrier, wherein the nucleic acid probe is hybridized with a target nucleic acid, a 5 ′ end bound to the surface of the carrier, a portion consisting of a continuous sequence of thymine bases, and a target nucleic acid. And a hybrid-forming portion consisting of a base sequence capable of forming a probe carrier, which is a single-stranded nucleic acid having in this order from the carrier side,
(1) A single-stranded nucleic acid probe in which a 5 'end having a functional group for binding, a continuous sequence of thymine bases, and a hybrid-forming portion comprising a base sequence capable of forming a hybrid with the nucleic acid probe are arranged in this order. Preparing a;
(2) The single-stranded nucleic acid probe is hybridized with a single-stranded nucleic acid for protection having a sequence having a portion complementary to the sequence for hybridization of the single-stranded nucleic acid probe to have a double-stranded portion. Forming a nucleic acid and protecting the binding functional group on the hybridization moiety;
(3) a step of preparing a carrier having on its surface a functional group that binds to the 5 ′ end;
(4) reacting a 5′-terminal functional group on the single-stranded nucleic acid probe side of the nucleic acid having the double-stranded portion with a functional group on the surface of the carrier to bond them; A step of eliminating the reactivity of unreacted functional groups on the surface of the carrier to which the nucleic acid having a double-stranded portion is bound,
(6) a step of obtaining a probe carrier by removing a single-stranded nucleic acid for protection from the nucleic acid having a double-stranded portion bound to the carrier, to obtain a probe carrier.
前記核酸プローブ側の結合用官能基がアミノ基であり、前記担体側の官能基がエポキシキ基である請求項9に記載の製造方法。The method according to claim 9, wherein the functional group for binding on the nucleic acid probe side is an amino group, and the functional group on the carrier side is an epoxy group. 前記エポキシ基が、ポリグリシジルメタクリレートの有するエポキシ基である請求項10に記載の製造方法。The method according to claim 10, wherein the epoxy group is an epoxy group of polyglycidyl methacrylate. 前記チミン塩基の連続配列の長さが3〜10塩基である請求項9〜11のいずれかに記載の製造方法。The method according to any one of claims 9 to 11, wherein the length of the continuous sequence of the thymine base is 3 to 10 bases. 前記チミン塩基の連続配列の長さが3塩基である請求項12に記載の製造方法。The method according to claim 12, wherein the length of the continuous sequence of thymine bases is 3 bases. 前記担体が不溶性固体微粒子である請求項9〜13のいずれかに記載の製造方法。The method according to any one of claims 9 to 13, wherein the carrier is insoluble solid fine particles. 前記不溶性固体微粒子の平均径が0.8μmである請求項16に記載の製造方法。The method according to claim 16, wherein the insoluble solid fine particles have an average diameter of 0.8 µm. 該担体が、核酸プローブ固定用の平面を有する請求項9〜13のいずれかに記載の製造方法。The method according to any one of claims 9 to 13, wherein the carrier has a flat surface for immobilizing a nucleic acid probe. 前記エポキシ基の反応性の消失処理が、該エポキシ基の加水分解による請求項10に記載の製造方法。The production method according to claim 10, wherein the treatment for eliminating the reactivity of the epoxy group is performed by hydrolysis of the epoxy group. 前記エポキシ基の加水分解が0.1Mエタノールアミンにより行われる請求項17記載の製造方法。18. The production method according to claim 17, wherein the hydrolysis of the epoxy group is performed with 0.1 M ethanolamine.
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