JP2003500070A - 核酸分子を標識するための組成物および方法 - Google Patents
核酸分子を標識するための組成物および方法Info
- Publication number
- JP2003500070A JP2003500070A JP2000620134A JP2000620134A JP2003500070A JP 2003500070 A JP2003500070 A JP 2003500070A JP 2000620134 A JP2000620134 A JP 2000620134A JP 2000620134 A JP2000620134 A JP 2000620134A JP 2003500070 A JP2003500070 A JP 2003500070A
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- nucleic acid
- reverse transcriptase
- acid molecules
- enzyme
- composition
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Withdrawn
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P19/00—Preparation of compounds containing saccharide radicals
- C12P19/26—Preparation of nitrogen-containing carbohydrates
- C12P19/28—N-glycosides
- C12P19/30—Nucleotides
- C12P19/34—Polynucleotides, e.g. nucleic acids, oligoribonucleotides
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
- C12Q1/6813—Hybridisation assays
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
- C12Q1/6813—Hybridisation assays
- C12Q1/6816—Hybridisation assays characterised by the detection means
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
- C12Q1/6844—Nucleic acid amplification reactions
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
- C12Q1/6844—Nucleic acid amplification reactions
- C12Q1/6862—Ligase chain reaction [LCR]
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N27/00—Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means
- G01N27/26—Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means by investigating electrochemical variables; by using electrolysis or electrophoresis
- G01N27/416—Systems
- G01N27/447—Systems using electrophoresis
- G01N27/44704—Details; Accessories
- G01N27/44717—Arrangements for investigating the separated zones, e.g. localising zones
- G01N27/44721—Arrangements for investigating the separated zones, e.g. localising zones by optical means
- G01N27/44726—Arrangements for investigating the separated zones, e.g. localising zones by optical means using specific dyes, markers or binding molecules
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Zoology (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Immunology (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Spectroscopy & Molecular Physics (AREA)
- Electrochemistry (AREA)
- General Physics & Mathematics (AREA)
- Pathology (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】
本発明は、一般的には、逆転写酵素(好ましくは、多サブユニット逆転写酵素(例えば、ASLV逆転写酵素))を使用して核酸分子を標識するための組成物、キット、および方法に関する。詳細には、本発明は、核酸合成の間に核酸分子をローダミン、フルオレセイン、Cy3、およびCy5からなる群より選択される蛍光分子またはマーカーで蛍光標識するための、方法、キット、および組成物に関する。本発明に従って産生された標識された核酸分子は、核酸の検出および診断のための標識されたプローブとして特に適切である。
Description
【0001】
(発明の分野)
本発明は、分子生物学および細胞生物学の分野にある。本発明は一般的には、
逆転写(RT)酵素の使用に関し、そして特に、標識された(例えば、蛍光標識
された)核酸分子を合成するための核酸分子(特に、メッセンジャーRNA分子
)の逆転写のための方法に関する。本発明はまた、これらの方法によって産生さ
れた核酸分子、および検出プローブとしてのこのような標識された核酸分子の使
用に関する。本発明はまた、このような標識された核酸分子を作製するためのキ
ットおよび組成物にも関連する。
逆転写(RT)酵素の使用に関し、そして特に、標識された(例えば、蛍光標識
された)核酸分子を合成するための核酸分子(特に、メッセンジャーRNA分子
)の逆転写のための方法に関する。本発明はまた、これらの方法によって産生さ
れた核酸分子、および検出プローブとしてのこのような標識された核酸分子の使
用に関する。本発明はまた、このような標識された核酸分子を作製するためのキ
ットおよび組成物にも関連する。
【0002】
(発明の背景)
cDNAおよびcDNAライブラリー
生物体、組織、または細胞の構造および生理学を試験することにおいては、そ
の遺伝的な内容物を決定することがしばしば所望される。生物体の遺伝的な枠組
は、生物体の体細胞および生殖細胞中に含まれるデオキシリボ核酸(DNA)中
のヌクレオチド塩基の二本鎖の配列においてコードされる。DNAまたは遺伝子
の特定のセグメントの遺伝的な内容物は、遺伝子がコードするタンパク質の産生
の際にのみ明らかになる。タンパク質を産生するためには、DNAの二重ヘリッ
クスの1本鎖(「コード鎖」)の相補的なコピーが、ポリメラーゼ酵素によって
産生され、それによってリボ核酸(RNA)の特異的な配列を生じる。この特異
的な型のRNAは、それがタンパク質の産生のためのDNAからの遺伝的なメッ
セージを含むので、メッセンジャーRNA(mRNA)と呼ばれる。
の遺伝的な内容物を決定することがしばしば所望される。生物体の遺伝的な枠組
は、生物体の体細胞および生殖細胞中に含まれるデオキシリボ核酸(DNA)中
のヌクレオチド塩基の二本鎖の配列においてコードされる。DNAまたは遺伝子
の特定のセグメントの遺伝的な内容物は、遺伝子がコードするタンパク質の産生
の際にのみ明らかになる。タンパク質を産生するためには、DNAの二重ヘリッ
クスの1本鎖(「コード鎖」)の相補的なコピーが、ポリメラーゼ酵素によって
産生され、それによってリボ核酸(RNA)の特異的な配列を生じる。この特異
的な型のRNAは、それがタンパク質の産生のためのDNAからの遺伝的なメッ
セージを含むので、メッセンジャーRNA(mRNA)と呼ばれる。
【0003】
所定の細胞、組織、または生物体の中には、無数のmRNA種が存在し、それ
ぞれが、別個の、かつ特異的なタンパク質をコードしている。この事実は、組織
または細胞中での遺伝子の発現を研究することにおいて興味を示す研究者らに対
して、強力なツールを提供する−−mRNA分子は、種々の分子生物学的技術に
よって単離され得、そしてさらに操作され得、それによって、細胞、組織、また
は器官の全ての機能的な遺伝的な内容物の解明を可能にする。
ぞれが、別個の、かつ特異的なタンパク質をコードしている。この事実は、組織
または細胞中での遺伝子の発現を研究することにおいて興味を示す研究者らに対
して、強力なツールを提供する−−mRNA分子は、種々の分子生物学的技術に
よって単離され得、そしてさらに操作され得、それによって、細胞、組織、また
は器官の全ての機能的な遺伝的な内容物の解明を可能にする。
【0004】
遺伝子の発現の研究のための1つの共通のアプローチは、相補DNA(cDN
A)クローンの産生である。この技術においては、生物体に由来するmRNA分
子が、生物体の細胞または組織の抽出物から単離される。この単離はしばしば、
チミジン(T)のオリゴマーが複合体化されている、セルロールまたはアガロー
スのような固体のクロマトグラフィーマトリックスを使用する。ほとんどの真核
生物のmRNA分子上の3’末端がアデノシン(A)塩基の記号列を含むので、
そしてAがTに結合するので、mRNA分子は、組織または細胞の抽出物中の他
の分子および物質から迅速に精製され得る。これらの精製されたmRNA分子か
ら、cDNAのコピーが、酵素逆転写酵素(RT)を使用して作製され得、これ
によって、一本鎖のcDNA分子の産生を生じる。一本鎖のcDNAは、次いで
、元のmRNAの完全な二本鎖のDNA(従って、生物体のゲノム中に含まれる
、このmRNAをコードしている、元の二本鎖のDNA配列)のコピー(すなわ
ち、二本鎖のcDNA)に、DNAポリメラーゼの作用によってに転換され得る
。次いで、タンパク質特異的な二本鎖のcDNAが、プラスミドまたはウイルス
ベクター中に挿入され得る。これは次いで、宿主である細菌、酵母、動物、また
は植物の細胞中に導入される。次いで、この宿主細胞は、培養培地中で増殖させ
られ、それによって目的の遺伝子を含有している(または多くの場合、それを発
現している)宿主細胞の集団を生じる。
A)クローンの産生である。この技術においては、生物体に由来するmRNA分
子が、生物体の細胞または組織の抽出物から単離される。この単離はしばしば、
チミジン(T)のオリゴマーが複合体化されている、セルロールまたはアガロー
スのような固体のクロマトグラフィーマトリックスを使用する。ほとんどの真核
生物のmRNA分子上の3’末端がアデノシン(A)塩基の記号列を含むので、
そしてAがTに結合するので、mRNA分子は、組織または細胞の抽出物中の他
の分子および物質から迅速に精製され得る。これらの精製されたmRNA分子か
ら、cDNAのコピーが、酵素逆転写酵素(RT)を使用して作製され得、これ
によって、一本鎖のcDNA分子の産生を生じる。一本鎖のcDNAは、次いで
、元のmRNAの完全な二本鎖のDNA(従って、生物体のゲノム中に含まれる
、このmRNAをコードしている、元の二本鎖のDNA配列)のコピー(すなわ
ち、二本鎖のcDNA)に、DNAポリメラーゼの作用によってに転換され得る
。次いで、タンパク質特異的な二本鎖のcDNAが、プラスミドまたはウイルス
ベクター中に挿入され得る。これは次いで、宿主である細菌、酵母、動物、また
は植物の細胞中に導入される。次いで、この宿主細胞は、培養培地中で増殖させ
られ、それによって目的の遺伝子を含有している(または多くの場合、それを発
現している)宿主細胞の集団を生じる。
【0005】
mRNAの単離から、単離された遺伝子を含有している宿主細胞の集団の増殖
のためのプラスミドまたはベクター中へのcDNAの挿入までの、この全体的な
プロセスは、「cDNAクローニング」と呼ばれる。cDNAが多数の異なるm
RNAから調製される場合は、得られるcDNAのセットは、「cDNAライブ
ラリー」と呼ばれ、これは、このcDNAのセットが、供給源である細胞、組織
、または生物体中に存在する機能的な遺伝的な情報を含有している遺伝子の「集
団」を示すので、適切な用語である。これらのcDNAライブラリーの遺伝子型
の分析によって、それらが由来する生物体の構造および機能についての多くの情
報を得ることができる。
のためのプラスミドまたはベクター中へのcDNAの挿入までの、この全体的な
プロセスは、「cDNAクローニング」と呼ばれる。cDNAが多数の異なるm
RNAから調製される場合は、得られるcDNAのセットは、「cDNAライブ
ラリー」と呼ばれ、これは、このcDNAのセットが、供給源である細胞、組織
、または生物体中に存在する機能的な遺伝的な情報を含有している遺伝子の「集
団」を示すので、適切な用語である。これらのcDNAライブラリーの遺伝子型
の分析によって、それらが由来する生物体の構造および機能についての多くの情
報を得ることができる。
【0006】
(レトロウイルス転写酵素)
レトロウイルスRTの3つの原型の形態が、完全に研究されている。モロニー
マウス白血病ウイルス(M−MLV)RTは、RNA依存性のDNAポリメラー
ゼおよびRNase H活性を有する78kDaの単一のサブユニットを含む。
この酵素は、クローン化されており、そしてE.coli中で完全に活性な形態
で発現されている(Prasad,V.R.,Reverse Transcr
iptase、Cold Spring Harbor,New York:C
old Spring Harbor Laboratory Press、1
35頁(1993)に概説されている)。ヒト免疫不全ウイルス(HIV)RT
は、p66サブユニットとp51サブユニットとのヘテロ二量体であり、ここで
は、小さいサブユニットは、タンパク質分解性の切断によって大きなサブユニッ
トから誘導される。このp66サブユニットはRNA依存性DNAポリメラーゼ
およびRNase Hドメインの両方を有し、一方、このp51サブユニットは
、DNAポリメラーゼドメインのみを有する。活性なHIV p66/p51R
Tがクローン化されており、そしてE.coliを含む多数の発現宿主中で良好
に発現されている(Le Grice,S.F.J.、Reverse Tra
nscriptase、Cold Spring Harbor,New Yo
rk:Cold Spring Harbor Laboratory Pre
ss、163頁(1993)に概説されている)。HIVのp66/p51へテ
ロ二量体中では、51kDのサブユニットが触媒的に不活化され、そして66k
Dのサブユニットは、DNAポリメラーゼ活性およびRNase H活性の両方
を有する(Le Grice,S.F.J.ら、EMBO Journal 1
0:3905(1991);Hostomsky,Z.ら、J.Virol.6
6:3179(1992))。鳥類肉腫−白血病ウイルス(ASLV)RT(こ
れは、ラウス肉腫ウイルス(RSV)RT、鳥類骨髄芽球症ウイルス(AMV)
RT、鳥類赤芽球症ウイルス(AEV)ヘルパーウイルスMCAV RT、鳥類
骨髄球腫症ウイルスMC29ヘルパーウイルスMCAV RT、鳥類細網内皮症
ウイルス(REV−T)ヘルパーウイルスREV−A RT、鳥類肉腫ウイルス
UR2ヘルパーウイルスUR2AV RT、鳥類肉腫ウイルスY73ヘルパーウ
イルスYAV RT、ラウス関連ウイルス(RAV)RT、および骨髄芽球症関
連ウイルス(MAV)RTを含むがこれに限定されない)もまた、2つのサブユ
ニット(α(約62kDa)およびβ(約94kDa))のヘテロ二量体である
。ここでは、αは、タンパク質分解性の切断によりβから誘導される(Pras
ad,V.R.、Reverse Transcriptase,Cold S
pring Harbor、New York:Cold Spring Ha
rbor Laboratory Press(1993)、135頁に概説さ
れている)。ASLV RTは、2つのさらなる触媒的に活性な構造の形態(β
βおよびα)で存在し得る(Hizi,A.およびJoklik,W.K.,J
.Biol.Chem.252:2281(1977))。沈降分析は、αβお
よびββが二量体であり、そしてそのαの形態が、単量体の形態と二量体の形態
との間で平衡して存在することを示唆する(Grandgenett,D.P.
ら、Proc.Natl.Acad.Sci.USA 70:230(1973
);Hizi,A.およびJoklik、W.K.、J.Biol.Chem.
252:2281(1977);およびSoltis,D.A.およびSkal
ka、A.M.,Proc.Natl.Acad.Sci.USA 85:33
72(1988))。このASLV αβ RTおよびββ RTは、同じタン
パク質複合体中で3つの異なる活性を含むレトロウイルスRTの唯一の公知の例
である:DNAポリメラーゼ、RNase H、およびDNAエンドヌクレアー
ゼ(インテグラーゼ)活性(Skalka,A.M.、Reverse Tra
nscriptase、Cold Spring Harbor、New Yo
rk:Cold Spring Harbor Laboratory Pre
ss(1993)、193頁)。このα形態は、インテグラーゼドメインおよび
活性を欠失している。
マウス白血病ウイルス(M−MLV)RTは、RNA依存性のDNAポリメラー
ゼおよびRNase H活性を有する78kDaの単一のサブユニットを含む。
この酵素は、クローン化されており、そしてE.coli中で完全に活性な形態
で発現されている(Prasad,V.R.,Reverse Transcr
iptase、Cold Spring Harbor,New York:C
old Spring Harbor Laboratory Press、1
35頁(1993)に概説されている)。ヒト免疫不全ウイルス(HIV)RT
は、p66サブユニットとp51サブユニットとのヘテロ二量体であり、ここで
は、小さいサブユニットは、タンパク質分解性の切断によって大きなサブユニッ
トから誘導される。このp66サブユニットはRNA依存性DNAポリメラーゼ
およびRNase Hドメインの両方を有し、一方、このp51サブユニットは
、DNAポリメラーゼドメインのみを有する。活性なHIV p66/p51R
Tがクローン化されており、そしてE.coliを含む多数の発現宿主中で良好
に発現されている(Le Grice,S.F.J.、Reverse Tra
nscriptase、Cold Spring Harbor,New Yo
rk:Cold Spring Harbor Laboratory Pre
ss、163頁(1993)に概説されている)。HIVのp66/p51へテ
ロ二量体中では、51kDのサブユニットが触媒的に不活化され、そして66k
Dのサブユニットは、DNAポリメラーゼ活性およびRNase H活性の両方
を有する(Le Grice,S.F.J.ら、EMBO Journal 1
0:3905(1991);Hostomsky,Z.ら、J.Virol.6
6:3179(1992))。鳥類肉腫−白血病ウイルス(ASLV)RT(こ
れは、ラウス肉腫ウイルス(RSV)RT、鳥類骨髄芽球症ウイルス(AMV)
RT、鳥類赤芽球症ウイルス(AEV)ヘルパーウイルスMCAV RT、鳥類
骨髄球腫症ウイルスMC29ヘルパーウイルスMCAV RT、鳥類細網内皮症
ウイルス(REV−T)ヘルパーウイルスREV−A RT、鳥類肉腫ウイルス
UR2ヘルパーウイルスUR2AV RT、鳥類肉腫ウイルスY73ヘルパーウ
イルスYAV RT、ラウス関連ウイルス(RAV)RT、および骨髄芽球症関
連ウイルス(MAV)RTを含むがこれに限定されない)もまた、2つのサブユ
ニット(α(約62kDa)およびβ(約94kDa))のヘテロ二量体である
。ここでは、αは、タンパク質分解性の切断によりβから誘導される(Pras
ad,V.R.、Reverse Transcriptase,Cold S
pring Harbor、New York:Cold Spring Ha
rbor Laboratory Press(1993)、135頁に概説さ
れている)。ASLV RTは、2つのさらなる触媒的に活性な構造の形態(β
βおよびα)で存在し得る(Hizi,A.およびJoklik,W.K.,J
.Biol.Chem.252:2281(1977))。沈降分析は、αβお
よびββが二量体であり、そしてそのαの形態が、単量体の形態と二量体の形態
との間で平衡して存在することを示唆する(Grandgenett,D.P.
ら、Proc.Natl.Acad.Sci.USA 70:230(1973
);Hizi,A.およびJoklik、W.K.、J.Biol.Chem.
252:2281(1977);およびSoltis,D.A.およびSkal
ka、A.M.,Proc.Natl.Acad.Sci.USA 85:33
72(1988))。このASLV αβ RTおよびββ RTは、同じタン
パク質複合体中で3つの異なる活性を含むレトロウイルスRTの唯一の公知の例
である:DNAポリメラーゼ、RNase H、およびDNAエンドヌクレアー
ゼ(インテグラーゼ)活性(Skalka,A.M.、Reverse Tra
nscriptase、Cold Spring Harbor、New Yo
rk:Cold Spring Harbor Laboratory Pre
ss(1993)、193頁)。このα形態は、インテグラーゼドメインおよび
活性を欠失している。
【0007】
ASLV RTの個々のサブユニットの種々の形態がクローン化され、そして
発現されている。これらとして、98kDaの前駆体ポリペプチド(これらは、
βαに正常にタンパク質分解的にプロセシングされ、そして4kDaのポリペプ
チドがβカルボキシ末端から除去される(Alexander,F.ら、J.V
irol.61:534(1987)およびAnderson,D.ら、Foc
us 17:53(1995))、ならびに成熟βサブユニット(Weis,J
.H.およびSalstrom,J.S.、米国特許第4,663,290号(
1987);ならびにSoltis,D.A.およびSkalka,A.M.、
Proc.Natl.Acad.Sci.USA 85:3372(1988)
)。ヘテロ二量体のRSV αβ RTもまた、クローン化されたRSV β遺
伝子を発現するE.coli細胞から精製されている(Chernov,A.P
.ら、Biomed.Sci.2:49(1991))。公開されているPCT
公開 WO98/47912もまた参照のこと。
発現されている。これらとして、98kDaの前駆体ポリペプチド(これらは、
βαに正常にタンパク質分解的にプロセシングされ、そして4kDaのポリペプ
チドがβカルボキシ末端から除去される(Alexander,F.ら、J.V
irol.61:534(1987)およびAnderson,D.ら、Foc
us 17:53(1995))、ならびに成熟βサブユニット(Weis,J
.H.およびSalstrom,J.S.、米国特許第4,663,290号(
1987);ならびにSoltis,D.A.およびSkalka,A.M.、
Proc.Natl.Acad.Sci.USA 85:3372(1988)
)。ヘテロ二量体のRSV αβ RTもまた、クローン化されたRSV β遺
伝子を発現するE.coli細胞から精製されている(Chernov,A.P
.ら、Biomed.Sci.2:49(1991))。公開されているPCT
公開 WO98/47912もまた参照のこと。
【0008】
(核酸分子の標識)
上記のように、RTによって媒介される逆転写によるmRNAのcDNAへの
変換は、クローン化された遺伝子から発現されるタンパク質の研究において必須
の工程である。標識された核酸分子(例えば、標識されたcDNA)を作製する
ための核酸分子(特に、mRNA)の逆転写もまた、検出および診断における使
用のための標識されたプローブの作成において重要である。代表的には、蛍光標
識が、このようなプローブの作成において使用される。今日までは、Super
ScriptTMII(Life Technologies,Inc.から入手
可能なMMLV RTのRNase Hマイナス誘導体)が、mRNAの鋳型か
らの蛍光標識されたプローブの作成に使用されている(DeRisiら、Sci
ence 278:680−686(1997))。しかし、合成の間の蛍光ヌ
クレオチドの取り込み率は比較的低く(2%未満)、おそらく、MMLV RT
が、核酸合成の間、基質として蛍光標識されたヌクレオチドを効率的に使用する
ことができないことに起因する。従って、核酸鋳型の逆転写の間、標識されたヌ
クレオチド(特に、蛍光標識されたヌクレオチド)のより効率的な取り込みの必
要性が存在する。このようなヌクレオチドの効率的な取り込みは、研究の分野お
よび診断の分野において使用され得る、標識されたプローブの改善された合成を
可能にする。
変換は、クローン化された遺伝子から発現されるタンパク質の研究において必須
の工程である。標識された核酸分子(例えば、標識されたcDNA)を作製する
ための核酸分子(特に、mRNA)の逆転写もまた、検出および診断における使
用のための標識されたプローブの作成において重要である。代表的には、蛍光標
識が、このようなプローブの作成において使用される。今日までは、Super
ScriptTMII(Life Technologies,Inc.から入手
可能なMMLV RTのRNase Hマイナス誘導体)が、mRNAの鋳型か
らの蛍光標識されたプローブの作成に使用されている(DeRisiら、Sci
ence 278:680−686(1997))。しかし、合成の間の蛍光ヌ
クレオチドの取り込み率は比較的低く(2%未満)、おそらく、MMLV RT
が、核酸合成の間、基質として蛍光標識されたヌクレオチドを効率的に使用する
ことができないことに起因する。従って、核酸鋳型の逆転写の間、標識されたヌ
クレオチド(特に、蛍光標識されたヌクレオチド)のより効率的な取り込みの必
要性が存在する。このようなヌクレオチドの効率的な取り込みは、研究の分野お
よび診断の分野において使用され得る、標識されたプローブの改善された合成を
可能にする。
【0009】
(発明の要旨)
本発明は、上記の核酸標識の限界を克服することにおいて有用である、逆転写
酵素、そのような酵素を含有している組成物およびキット、ならびに方法を提供
する。一般的には、本発明は、合成された核酸分子を標識するための多サブユニ
ットRT(特に、ヘテロ二量体、およびより詳細には、HIV RTおよびAS
LV RTのような2サブユニットの酵素(例えば、二量体))の使用に関する
。好ましくは、このような標識は、標識されたヌクレオチド(特に、蛍光標識さ
れたヌクレオチド)および1つ以上の核酸鋳型(好ましくは、RNA、そして最
も好ましくは、mRNA)の使用を含む。本発明に従って、1つ以上の鋳型の全
てまたは一部に対して相補的である、1つ以上の標識された核酸分子が合成され
る。この標識された核酸分子は、好ましくは、合成された分子に取り込まれた1
つ以上の標識されたヌクレオチドを有し、そして好ましい局面においては、この
標識は、1つ以上の蛍光標識である(これは、同じであり得るかまたは異なり得
る)。
酵素、そのような酵素を含有している組成物およびキット、ならびに方法を提供
する。一般的には、本発明は、合成された核酸分子を標識するための多サブユニ
ットRT(特に、ヘテロ二量体、およびより詳細には、HIV RTおよびAS
LV RTのような2サブユニットの酵素(例えば、二量体))の使用に関する
。好ましくは、このような標識は、標識されたヌクレオチド(特に、蛍光標識さ
れたヌクレオチド)および1つ以上の核酸鋳型(好ましくは、RNA、そして最
も好ましくは、mRNA)の使用を含む。本発明に従って、1つ以上の鋳型の全
てまたは一部に対して相補的である、1つ以上の標識された核酸分子が合成され
る。この標識された核酸分子は、好ましくは、合成された分子に取り込まれた1
つ以上の標識されたヌクレオチドを有し、そして好ましい局面においては、この
標識は、1つ以上の蛍光標識である(これは、同じであり得るかまたは異なり得
る)。
【0010】
本発明はまた、本発明での使用のための組成物に関し、そしてこのような組成
物は、1つ以上の多サブユニットRT(特に、HIVおよびASLV RT)を
含み得る。このような組成物はさらに、1つ以上のヌクレオチド、適切な緩衝液
、および/または1つ以上のDNAポリメラーゼを含み得る。本発明の組成物は
また、1つ以上のプライマーを含み得る。これらの組成物中の逆転写酵素は、好
ましくは、RNase H活性を有するか、またはRNase H活性が減少し
ているか、もしくは実質的に減少しており、そして最も好ましくは、ラウス肉腫
ウイルス(RSV)逆転写酵素、鳥類骨髄芽球症ウイルス(AMV)逆転写酵素
、ラウス関連ウイルス(RAV)逆転写酵素、骨髄芽球症関連ウイルス(MAV
)逆転写酵素、およびヒト免疫不全ウイルス(HIV)逆転写酵素、または他の
ASLV逆転写酵素からなる群より選択される酵素である。2サブユニットのR
Tが、本発明の使用に好ましく、そしてこのような酵素は、種々の形態、および
αβ、αα、ββなどのようなこのようなサブユニットの組合せ、ならびにそれ
らの変異体、改変体、または誘導体を含み得る。好ましい組成物においては、逆
転写酵素は、作業濃度で存在する。
物は、1つ以上の多サブユニットRT(特に、HIVおよびASLV RT)を
含み得る。このような組成物はさらに、1つ以上のヌクレオチド、適切な緩衝液
、および/または1つ以上のDNAポリメラーゼを含み得る。本発明の組成物は
また、1つ以上のプライマーを含み得る。これらの組成物中の逆転写酵素は、好
ましくは、RNase H活性を有するか、またはRNase H活性が減少し
ているか、もしくは実質的に減少しており、そして最も好ましくは、ラウス肉腫
ウイルス(RSV)逆転写酵素、鳥類骨髄芽球症ウイルス(AMV)逆転写酵素
、ラウス関連ウイルス(RAV)逆転写酵素、骨髄芽球症関連ウイルス(MAV
)逆転写酵素、およびヒト免疫不全ウイルス(HIV)逆転写酵素、または他の
ASLV逆転写酵素からなる群より選択される酵素である。2サブユニットのR
Tが、本発明の使用に好ましく、そしてこのような酵素は、種々の形態、および
αβ、αα、ββなどのようなこのようなサブユニットの組合せ、ならびにそれ
らの変異体、改変体、または誘導体を含み得る。好ましい組成物においては、逆
転写酵素は、作業濃度で存在する。
【0011】
本発明はまた、1つ以上の標識された核酸分子を作製するための方法に関する
。この方法は、1つ以上の核酸鋳型(好ましくは、1つ以上のRNA鋳型、およ
び最も好ましくは1つ以上のメッセンジャーRNA鋳型)を、逆転写酵素活性を
有している1つ以上のポリペプチドまたは酵素(好ましくは、1つ以上の多サブ
ユニットRT)と混合する工程、ならびに1つ以上の核酸鋳型の全てまたは一部
に対して相補的である1つ以上の第1の核酸分子を合成するために十分な条件下
でこの混合物をインキュベートする工程を包含する。ここでは、この少なくとも
1つの上記の合成された分子が標識され、そして/または1つ以上の標識された
ヌクレオチドを含む。好ましい実施形態においては、この1つ以上の第1の核酸
分子は一本鎖のcDNA分子である。本発明のこの局面に従う逆転写酵に適切な
核酸鋳型としては、任意の核酸分子または核酸分子(好ましくは、RNA、そし
て最も好ましくは、mRNA)の集団、特に、細胞または組織に由来するものが
挙げられる。好ましい局面においては、mRNA分子の集団(代表的には、細胞
または組織から得られる、多数の異なるmRNA分子)が、本発明に従って標識
されたcDNAライブラリーを作製するために使用される。核酸鋳型の好ましい
細胞の供給源として、細菌細胞、真菌細胞、植物細胞、および動物細胞が挙げら
れる。
。この方法は、1つ以上の核酸鋳型(好ましくは、1つ以上のRNA鋳型、およ
び最も好ましくは1つ以上のメッセンジャーRNA鋳型)を、逆転写酵素活性を
有している1つ以上のポリペプチドまたは酵素(好ましくは、1つ以上の多サブ
ユニットRT)と混合する工程、ならびに1つ以上の核酸鋳型の全てまたは一部
に対して相補的である1つ以上の第1の核酸分子を合成するために十分な条件下
でこの混合物をインキュベートする工程を包含する。ここでは、この少なくとも
1つの上記の合成された分子が標識され、そして/または1つ以上の標識された
ヌクレオチドを含む。好ましい実施形態においては、この1つ以上の第1の核酸
分子は一本鎖のcDNA分子である。本発明のこの局面に従う逆転写酵に適切な
核酸鋳型としては、任意の核酸分子または核酸分子(好ましくは、RNA、そし
て最も好ましくは、mRNA)の集団、特に、細胞または組織に由来するものが
挙げられる。好ましい局面においては、mRNA分子の集団(代表的には、細胞
または組織から得られる、多数の異なるmRNA分子)が、本発明に従って標識
されたcDNAライブラリーを作製するために使用される。核酸鋳型の好ましい
細胞の供給源として、細菌細胞、真菌細胞、植物細胞、および動物細胞が挙げら
れる。
【0012】
本発明はまた、1つ以上の二本鎖の核酸分子を作製するための方法に関する。
このような方法は以下の工程を包含する:(a)1つ以上の核酸鋳型(好ましく
は、RNAまたはmRNA、そしてより好ましくは、mRNA鋳型の集団)を、
逆転写酵素活性を有している1つ以上の本発明のポリペプチド(好ましくは、1
つ以上の多サブユニットRT)と混合する工程;(b)1つ以上の鋳型の全てま
たは一部に対して相補的である1つ以上の第1の核酸分子を作製するのに十分な
条件下で混合物をインキュベートする工程;ならびに(c)1つ以上の第1の核
酸分子の全てまたは一部に対して相補的である1つ以上の第2の核酸分子を作製
するのに十分な条件下で、1つ以上の第1の核酸分子をインキュベートする工程
、それによって第1および第2の核酸分子を含有している1つ以上の二本鎖の核
酸分子を形成させる工程。本発明に従うと、この第1および/第2の核酸分子が
標識される(例えば、1つ以上の同じまたは異なる標識されたヌクレオチドを含
み得る)。従って、標識されたヌクレオチドは、1つまたは両方の合成工程で使
用され得る。このような方法は、1つ以上の二本鎖の核酸分子を作製するプロセ
スの一部としての、1つ以上のDNAポリメラーゼの使用を含み得る。本発明は
また、このような二本鎖の核酸分子を作製するために有用な組成物に関する。こ
のような組成物は、本発明の1つ以上の逆転写酵素を含み、そして必要に応じて
、1つ以上のDNAポリメラーゼ、適切な緩衝液、および/または1つ以上のヌ
クレオチド(好ましくは、標識されたヌクレオチドを含む)を含む。
このような方法は以下の工程を包含する:(a)1つ以上の核酸鋳型(好ましく
は、RNAまたはmRNA、そしてより好ましくは、mRNA鋳型の集団)を、
逆転写酵素活性を有している1つ以上の本発明のポリペプチド(好ましくは、1
つ以上の多サブユニットRT)と混合する工程;(b)1つ以上の鋳型の全てま
たは一部に対して相補的である1つ以上の第1の核酸分子を作製するのに十分な
条件下で混合物をインキュベートする工程;ならびに(c)1つ以上の第1の核
酸分子の全てまたは一部に対して相補的である1つ以上の第2の核酸分子を作製
するのに十分な条件下で、1つ以上の第1の核酸分子をインキュベートする工程
、それによって第1および第2の核酸分子を含有している1つ以上の二本鎖の核
酸分子を形成させる工程。本発明に従うと、この第1および/第2の核酸分子が
標識される(例えば、1つ以上の同じまたは異なる標識されたヌクレオチドを含
み得る)。従って、標識されたヌクレオチドは、1つまたは両方の合成工程で使
用され得る。このような方法は、1つ以上の二本鎖の核酸分子を作製するプロセ
スの一部としての、1つ以上のDNAポリメラーゼの使用を含み得る。本発明は
また、このような二本鎖の核酸分子を作製するために有用な組成物に関する。こ
のような組成物は、本発明の1つ以上の逆転写酵素を含み、そして必要に応じて
、1つ以上のDNAポリメラーゼ、適切な緩衝液、および/または1つ以上のヌ
クレオチド(好ましくは、標識されたヌクレオチドを含む)を含む。
【0013】
本発明はまた、上記の方法に従って産生された標識された核酸分子(特に、一
本鎖または二本鎖のcDNA分子)、およびこれらの核酸分子を含有しているキ
ットに関する。このような分子またはキットは、核酸分子を検出するため(例え
ば、ハイブリダイゼーションによって)、または診断目的のために、使用され得
る。
本鎖または二本鎖のcDNA分子)、およびこれらの核酸分子を含有しているキ
ットに関する。このような分子またはキットは、核酸分子を検出するため(例え
ば、ハイブリダイゼーションによって)、または診断目的のために、使用され得
る。
【0014】
本発明はまた、本発明の方法における使用のためのキットに関する。このよう
なキットは、標識された核酸分子(一本鎖または日二本鎖)を作製するために使
用され得る。本発明のキットは、その中に厳重に閉じ込められた状態で、1つ以
上の容器(例えば、バイアル、チューブ、ボトルなど)を有している、キャリア
(例えば、箱またはカートン)を含む。本発明のキットの中では、第1の容器は
、本発明の1つ以上の逆転写酵素(好ましくは、ヘテロ二量体酵素または2サブ
ユニット酵素のような1つ以上のこのような多サブユニット酵素、あるいはそれ
らの改変体、誘導体、または変異体)、または本発明の1つ以上の組成物を含む
。本発明のキットはまた、1つ以上のDNAポリメラーゼ(好ましくは、熱安定
性DNAポリメラーゼ)から選択される少なくとも1つの成分、核酸の合成に適
切な緩衝液、および1つ以上のヌクレオチドを、同じまたは異なる容器中に含み
得る。あるいは、キットの成分は、別の容器に分けられ得る。1つの局面におい
ては、本発明のキットは、RNase H活性を有するか、またはRNase
H活性が減少しているか、もしくは実質的に減少している逆転写酵素を含む。こ
のようなRTは、好ましくは、RSV逆転写酵素、AMV逆転写酵素、RAV逆
転写酵素、MAV逆転写酵素、およびHIV逆転写酵素からなる群より選択され
る。本発明のさらに好ましいキットにおいては、容器中の酵素(逆転写酵素およ
び/またはDNAポリメラーゼ)は、作業の濃度で存在する。
なキットは、標識された核酸分子(一本鎖または日二本鎖)を作製するために使
用され得る。本発明のキットは、その中に厳重に閉じ込められた状態で、1つ以
上の容器(例えば、バイアル、チューブ、ボトルなど)を有している、キャリア
(例えば、箱またはカートン)を含む。本発明のキットの中では、第1の容器は
、本発明の1つ以上の逆転写酵素(好ましくは、ヘテロ二量体酵素または2サブ
ユニット酵素のような1つ以上のこのような多サブユニット酵素、あるいはそれ
らの改変体、誘導体、または変異体)、または本発明の1つ以上の組成物を含む
。本発明のキットはまた、1つ以上のDNAポリメラーゼ(好ましくは、熱安定
性DNAポリメラーゼ)から選択される少なくとも1つの成分、核酸の合成に適
切な緩衝液、および1つ以上のヌクレオチドを、同じまたは異なる容器中に含み
得る。あるいは、キットの成分は、別の容器に分けられ得る。1つの局面におい
ては、本発明のキットは、RNase H活性を有するか、またはRNase
H活性が減少しているか、もしくは実質的に減少している逆転写酵素を含む。こ
のようなRTは、好ましくは、RSV逆転写酵素、AMV逆転写酵素、RAV逆
転写酵素、MAV逆転写酵素、およびHIV逆転写酵素からなる群より選択され
る。本発明のさらに好ましいキットにおいては、容器中の酵素(逆転写酵素およ
び/またはDNAポリメラーゼ)は、作業の濃度で存在する。
【0015】
本発明の他の好ましい実施形態が、本発明の以下の説明および特許請求の範囲
を考慮して当業者に明らかである。
を考慮して当業者に明らかである。
【0016】
(発明の詳細な説明)
(定義)
以下の説明においては、組換えDNA技術において使用される多数の用語は、
広く利用される。明細書および特許請求の範囲(このような用語を与えられた範
囲を含む)の明らかでありそしてより一貫した理解を提供するために、以下の定
義が提供される。
広く利用される。明細書および特許請求の範囲(このような用語を与えられた範
囲を含む)の明らかでありそしてより一貫した理解を提供するために、以下の定
義が提供される。
【0017】
プライマー。本明細書中で使用される場合、「プライマー」は、一本鎖のオリ
ゴヌクレオチドをいう。これは、核酸分子の増幅または重合の間にヌクレオチド
の単量体の共有結合によって伸張される。
ゴヌクレオチドをいう。これは、核酸分子の増幅または重合の間にヌクレオチド
の単量体の共有結合によって伸張される。
【0018】
鋳型。用語「鋳型」は、本明細書中で使用される場合は、増幅されるか、合成
されるか、または配列決定される、二本鎖または一本鎖の核酸分子をいう。二本
鎖の分子の場合においては、第1および第2鎖を形成するためのその鎖の変性が
、好ましくは、これらの分子が増幅され得るか、合成され得るか、または配列決
定され得る前に行われるか、あるいは、二本鎖の分子が、鋳型として直接使用さ
れ得る。一本鎖の鋳型については、鋳型の一部に対して相補的である少なくとも
1つのプライマーが、適切な条件下でハイブリダイズされ、そして1つ以上のポ
リメラーゼまたは逆転写酵素が、次いで、上記の鋳型の全てまたは一部に対して
相補的である核酸分子を合成し得る。本発明に従って新しく合成された分子は、
もとの鋳型と同じであり得るか、またはそれよりも短い長さであり得る。
されるか、または配列決定される、二本鎖または一本鎖の核酸分子をいう。二本
鎖の分子の場合においては、第1および第2鎖を形成するためのその鎖の変性が
、好ましくは、これらの分子が増幅され得るか、合成され得るか、または配列決
定され得る前に行われるか、あるいは、二本鎖の分子が、鋳型として直接使用さ
れ得る。一本鎖の鋳型については、鋳型の一部に対して相補的である少なくとも
1つのプライマーが、適切な条件下でハイブリダイズされ、そして1つ以上のポ
リメラーゼまたは逆転写酵素が、次いで、上記の鋳型の全てまたは一部に対して
相補的である核酸分子を合成し得る。本発明に従って新しく合成された分子は、
もとの鋳型と同じであり得るか、またはそれよりも短い長さであり得る。
【0019】
取り込み。用語「取り込み」は、本明細書中で使用される場合は、DNAおよ
び/またはRNA分子、あるいはプライマーの一部となることを意味する。
び/またはRNA分子、あるいはプライマーの一部となることを意味する。
【0020】
ヌクレオチド。本明細書中で使用される場合は、「ヌクレオチド」は、塩基−
糖−リン酸の組合せをいう。ヌクレオチドは、核酸配列(DNAおよびRNA)
の単量体のユニットである。用語ヌクレオチドは、リボヌクレオシド三リン酸で
あるATP、UTP、CTG、GTP、およびデオキシリボヌクレオシド三リン
酸(例えば、dATP、dCTP、dITP、dUTP、dGTP、dTTP、
またはそれらの誘導体)を含む。このような誘導体として、例えば、[αS]d
ATP、7−デアザ−dGTP、および7−デアザ−dATP、ならびにその中
に含有している核酸分子に対してヌクレアーゼ耐性を付与するヌクレオチド誘導
体が挙げられる。用語ヌクレオチドは、本明細書中で使用される場合は、また、
ジデオキシリボヌクレオシド三リン酸(ddNTP)およびそれらの誘導体をい
う。ジデオキシリボヌクレオシド三リン酸の説明的な例として、ddATP、d
dCTP、ddGTP、ddITP、およびddTTPが挙げられるが、これら
に限定されない。本発明に従うと、「ヌクレオチド」は、標識されないか、また
は周知の技術によって検出可能に標識され得る。検出可能な標識として、例えば
、放射性同位元素、蛍光標識、化学発光標識、生体発光標識、および酵素標識が
挙げられる。ヌクレオチドの蛍光標識として、フルオレセイン、5−カルボキシ
フルオレセイン(FAM)、2’7’−ジメトキシ−4’5−ジクロロ−6−カ
ルボキシフルオレセイン(JOE)、ローダミン、6−カルボキシローダミン(
R6G)、N,N,N’,N’−テトラメチル−6−カルボキシローダミン(T
AMRA)、6−カルボキシ−X−ローダミン(ROX)、4−(4’ジメチル
アミノフェニルアゾ)安息香酸(DABCYL)、カスケードブルー(Casc
ade Blue)、オレゴングリーン(Oregon Green)、テキサ
スレッド(Texas Red)、シアニン(Cyanine)、および5−(
2’−アミノエチル)アミノナフタレン−1−スルホン酸(EDANS)が挙げ
られ得るが、これらに限定されない。蛍光標識されたヌクレオチドの特異的な例
として、以下が挙げられる:Perkin Elmer,Foster Cit
y,CA.から入手可能な、[R6G]dUTP、[TAMRA]dUTP、[
R110]dCTP、[R6G]dCTP、[TAMRA]dCTP、[JOE
]ddATP、[R6G]ddATP、[FAM]ddCTP、[R110]d
dCTP、[TAMRA]ddGTP、[ROX]ddTTP、[dR6G]d
dATP、[dR110]ddCTP、[dTAMRA]ddGTP、および[
dROX]ddTTP;Amersham Arligton Heights
,ILから入手可能な、FluoroLink DeoxyNucleotid
es,FluoroLink Cy3−dCTP、FluoroLink Cy
5−dCTP、FluoroLink FluorX−dCTP、Fluoro
Link Cy3−dUTP、およびFluoroLink Cy5−dUTP
;Boehringer Mannheim Indianapolis,IN
から入手可能な、フルオレセイン−15−dATP、フルオレセイン−12−d
UTP、テトラメチルローダミン−6−dUTP、IR770−9−dATP、フ
ルオレセイン−12−ddUTP、フルオレセイン−12−UTP、およびフル
オレセイン−15−2’−dATP;ならびに、Molecular Prob
es,Eugene,ORから入手可能な、ChromaTide標識ヌクレオ
チド、BODIPY−FL−14−UTP、BODIPY−FL−4−UTP、
BODIPY−TMR−14−UTP、BODIPY−TMR−14−dUTP
、BODIPY−TR−14−UTP、BODIPY−TR−14−dUTP、
カスケードブルー−7−UTP、カスケードブルー−7−dUTP、フルオレセ
イン−12−UTP、フルオレセイン−12−dUTP、オレゴングリーン48
8−5−dUTP、ローダミングリーン−5−UTP、ローダミングリーン−5
dUTP、テトラメチルローダミン−6−UTP、テトラメチルローダミン−6
−dUTP、テキサスレッド−5−UTP、テキサスレッド−5−dUTP、お
よびテキサスレッド−12−dUTP。
糖−リン酸の組合せをいう。ヌクレオチドは、核酸配列(DNAおよびRNA)
の単量体のユニットである。用語ヌクレオチドは、リボヌクレオシド三リン酸で
あるATP、UTP、CTG、GTP、およびデオキシリボヌクレオシド三リン
酸(例えば、dATP、dCTP、dITP、dUTP、dGTP、dTTP、
またはそれらの誘導体)を含む。このような誘導体として、例えば、[αS]d
ATP、7−デアザ−dGTP、および7−デアザ−dATP、ならびにその中
に含有している核酸分子に対してヌクレアーゼ耐性を付与するヌクレオチド誘導
体が挙げられる。用語ヌクレオチドは、本明細書中で使用される場合は、また、
ジデオキシリボヌクレオシド三リン酸(ddNTP)およびそれらの誘導体をい
う。ジデオキシリボヌクレオシド三リン酸の説明的な例として、ddATP、d
dCTP、ddGTP、ddITP、およびddTTPが挙げられるが、これら
に限定されない。本発明に従うと、「ヌクレオチド」は、標識されないか、また
は周知の技術によって検出可能に標識され得る。検出可能な標識として、例えば
、放射性同位元素、蛍光標識、化学発光標識、生体発光標識、および酵素標識が
挙げられる。ヌクレオチドの蛍光標識として、フルオレセイン、5−カルボキシ
フルオレセイン(FAM)、2’7’−ジメトキシ−4’5−ジクロロ−6−カ
ルボキシフルオレセイン(JOE)、ローダミン、6−カルボキシローダミン(
R6G)、N,N,N’,N’−テトラメチル−6−カルボキシローダミン(T
AMRA)、6−カルボキシ−X−ローダミン(ROX)、4−(4’ジメチル
アミノフェニルアゾ)安息香酸(DABCYL)、カスケードブルー(Casc
ade Blue)、オレゴングリーン(Oregon Green)、テキサ
スレッド(Texas Red)、シアニン(Cyanine)、および5−(
2’−アミノエチル)アミノナフタレン−1−スルホン酸(EDANS)が挙げ
られ得るが、これらに限定されない。蛍光標識されたヌクレオチドの特異的な例
として、以下が挙げられる:Perkin Elmer,Foster Cit
y,CA.から入手可能な、[R6G]dUTP、[TAMRA]dUTP、[
R110]dCTP、[R6G]dCTP、[TAMRA]dCTP、[JOE
]ddATP、[R6G]ddATP、[FAM]ddCTP、[R110]d
dCTP、[TAMRA]ddGTP、[ROX]ddTTP、[dR6G]d
dATP、[dR110]ddCTP、[dTAMRA]ddGTP、および[
dROX]ddTTP;Amersham Arligton Heights
,ILから入手可能な、FluoroLink DeoxyNucleotid
es,FluoroLink Cy3−dCTP、FluoroLink Cy
5−dCTP、FluoroLink FluorX−dCTP、Fluoro
Link Cy3−dUTP、およびFluoroLink Cy5−dUTP
;Boehringer Mannheim Indianapolis,IN
から入手可能な、フルオレセイン−15−dATP、フルオレセイン−12−d
UTP、テトラメチルローダミン−6−dUTP、IR770−9−dATP、フ
ルオレセイン−12−ddUTP、フルオレセイン−12−UTP、およびフル
オレセイン−15−2’−dATP;ならびに、Molecular Prob
es,Eugene,ORから入手可能な、ChromaTide標識ヌクレオ
チド、BODIPY−FL−14−UTP、BODIPY−FL−4−UTP、
BODIPY−TMR−14−UTP、BODIPY−TMR−14−dUTP
、BODIPY−TR−14−UTP、BODIPY−TR−14−dUTP、
カスケードブルー−7−UTP、カスケードブルー−7−dUTP、フルオレセ
イン−12−UTP、フルオレセイン−12−dUTP、オレゴングリーン48
8−5−dUTP、ローダミングリーン−5−UTP、ローダミングリーン−5
dUTP、テトラメチルローダミン−6−UTP、テトラメチルローダミン−6
−dUTP、テキサスレッド−5−UTP、テキサスレッド−5−dUTP、お
よびテキサスレッド−12−dUTP。
【0021】
オリゴヌクレオチド。「オリゴヌクレオチド」は、1つのヌクレオチドのデオ
キシリボースまたはリボースの3’位置と隣接しているヌクレオチドのデオキシ
リボースまたはリボースの5’位置との間でのホスホジエステル結合によって連
結されている、ヌクレオチドの共有結合された配列を含有している、合成または
天然の分子をいう。
キシリボースまたはリボースの3’位置と隣接しているヌクレオチドのデオキシ
リボースまたはリボースの5’位置との間でのホスホジエステル結合によって連
結されている、ヌクレオチドの共有結合された配列を含有している、合成または
天然の分子をいう。
【0022】
ハイブリダイゼーション。用語「ハイブリダイゼーション」および「ハイブリ
ダイズする」は、二本鎖の分子を生じるような2つの相補的な一本鎖の核酸分子
(RNAおよび/またはDNA)の塩基対合をいう。本明細書中で使用される場
合は、2つの核酸分子がハイブリダイズされ得るが、塩基対合は、完全には相補
的ではない。従って、不適合である塩基は、当該分野で周知である適切な条件が
使用される限りにおいては、2つの核酸分子のハイブリダイゼーションを妨げな
い。
ダイズする」は、二本鎖の分子を生じるような2つの相補的な一本鎖の核酸分子
(RNAおよび/またはDNA)の塩基対合をいう。本明細書中で使用される場
合は、2つの核酸分子がハイブリダイズされ得るが、塩基対合は、完全には相補
的ではない。従って、不適合である塩基は、当該分野で周知である適切な条件が
使用される限りにおいては、2つの核酸分子のハイブリダイゼーションを妨げな
い。
【0023】
プローブ。用語プローブは、1つ以上の検出可能なマーカーまたは標識によっ
て検出可能に標識される、一本鎖または二本鎖の核酸分子またはオリゴヌクレオ
チドをいう。このような標識またはマーカーは、同じであり得るかまたは異なり
得、そして放射性標識、蛍光標識、化学発光標識、生体発光標識、および酵素標
識を含み得るが、1つ以上の蛍光標識(これは同じであるか、または異なる)が
本発明に従うと好ましい。プローブは、ハイブリダイゼーションによる核酸分子
の検出において特異的な有用性を有し、そして従って、診断アッセイにおいて使
用され得る。
て検出可能に標識される、一本鎖または二本鎖の核酸分子またはオリゴヌクレオ
チドをいう。このような標識またはマーカーは、同じであり得るかまたは異なり
得、そして放射性標識、蛍光標識、化学発光標識、生体発光標識、および酵素標
識を含み得るが、1つ以上の蛍光標識(これは同じであるか、または異なる)が
本発明に従うと好ましい。プローブは、ハイブリダイゼーションによる核酸分子
の検出において特異的な有用性を有し、そして従って、診断アッセイにおいて使
用され得る。
【0024】
概説
本発明は、核酸分子の逆転写の間にしばしば観察される、標識限界を克服する
ことにおいて有用である、キット、組成物、および方法を提供する。従って、本
発明は、これまでは可能ではなかった標識された核酸分子(詳細には、cDNA
分子)の産生を容易にする。
ことにおいて有用である、キット、組成物、および方法を提供する。従って、本
発明は、これまでは可能ではなかった標識された核酸分子(詳細には、cDNA
分子)の産生を容易にする。
【0025】
一般的には、本発明は、標識された核酸分子を産生するための核酸分子の逆転
写における使用のための組成物を提供する。このような組成物は、1つ以上の逆
転写酵素(好ましくは、1つ以上の多サブユニットRT)を含み得る。これらの
組成物中の酵素は、好ましくは、作業濃度で存在し、そしてRNase H活性
を有するかまたはRNase H活性が減少しているか、もしくは実質的に減少
している。しかし、酵素(そのいくつかはRNase H活性を有しており、そ
していくつかはRNase H活性が減少しているか、または実質的に減少して
いる)の混合物が、本発明の組成物において使用され得る。好ましい逆転写酵素
として、RSV逆転写酵素、AMV逆転写酵素、RAV逆転写酵素、MAV逆転
写酵素、およびHIV逆転写酵素、または他のASLV逆転写酵素が挙げられる
。
写における使用のための組成物を提供する。このような組成物は、1つ以上の逆
転写酵素(好ましくは、1つ以上の多サブユニットRT)を含み得る。これらの
組成物中の酵素は、好ましくは、作業濃度で存在し、そしてRNase H活性
を有するかまたはRNase H活性が減少しているか、もしくは実質的に減少
している。しかし、酵素(そのいくつかはRNase H活性を有しており、そ
していくつかはRNase H活性が減少しているか、または実質的に減少して
いる)の混合物が、本発明の組成物において使用され得る。好ましい逆転写酵素
として、RSV逆転写酵素、AMV逆転写酵素、RAV逆転写酵素、MAV逆転
写酵素、およびHIV逆転写酵素、または他のASLV逆転写酵素が挙げられる
。
【0026】
本発明はまた、1つ以上の核酸分子の逆転写のための方法にも関する。この方
法は、1つ以上の核酸鋳型(これは、好ましくは、RNAであるかまたはメッセ
ンジャーRNA(mRNA)であり、そしてより好ましくは、mRNA分子の集
団である)を、逆転写酵素活性を有している1つ以上のポリペプチド(好ましく
は、多サブユニットRT)と混合する工程、ならびに1つ以上の鋳型の全てまた
は一部に対して相補的である1つ以上の標識された核酸分子を作成するために十
分な条件下で混合物をインキュベーションする工程を包含する。1つ以上の鋳型
に対して相補的である核酸分子(単数または複数)を作成するために、少なくと
も1つのプライマー(例えば、オリゴ(dT)プライマー)および1つ以上のヌ
クレオチド(好ましくは標識された部分、最も好ましくは蛍光標識された部分)
が、3’から5’方向での核酸の合成のために使用される。本発明のこの局面に
従う逆転写に適切な核酸鋳型として、任意の核酸分子、特に、原核生物細胞また
は真核生物細胞に由来するものが挙げられる。このような細胞として、正常な細
胞、疾患の細胞、形質転換された細胞、樹立細胞、先祖細胞、前駆体細胞、胎児
の細胞、胚性の細胞、細菌細胞、酵母細胞、動物細胞(ヒトの細胞を含む)、鳥
類細胞、植物細胞など、または植物もしくは動物(例えば、ヒト、ウシ、ブタ、
マウス、ヒツジ、ウマ、サル、イヌ、ネコ、ラット、ウサギ、鳥類、魚、昆虫な
ど)から単離された組織が挙げられ得る。このような核酸分子はまた、ウイルス
から単離され得る。
法は、1つ以上の核酸鋳型(これは、好ましくは、RNAであるかまたはメッセ
ンジャーRNA(mRNA)であり、そしてより好ましくは、mRNA分子の集
団である)を、逆転写酵素活性を有している1つ以上のポリペプチド(好ましく
は、多サブユニットRT)と混合する工程、ならびに1つ以上の鋳型の全てまた
は一部に対して相補的である1つ以上の標識された核酸分子を作成するために十
分な条件下で混合物をインキュベーションする工程を包含する。1つ以上の鋳型
に対して相補的である核酸分子(単数または複数)を作成するために、少なくと
も1つのプライマー(例えば、オリゴ(dT)プライマー)および1つ以上のヌ
クレオチド(好ましくは標識された部分、最も好ましくは蛍光標識された部分)
が、3’から5’方向での核酸の合成のために使用される。本発明のこの局面に
従う逆転写に適切な核酸鋳型として、任意の核酸分子、特に、原核生物細胞また
は真核生物細胞に由来するものが挙げられる。このような細胞として、正常な細
胞、疾患の細胞、形質転換された細胞、樹立細胞、先祖細胞、前駆体細胞、胎児
の細胞、胚性の細胞、細菌細胞、酵母細胞、動物細胞(ヒトの細胞を含む)、鳥
類細胞、植物細胞など、または植物もしくは動物(例えば、ヒト、ウシ、ブタ、
マウス、ヒツジ、ウマ、サル、イヌ、ネコ、ラット、ウサギ、鳥類、魚、昆虫な
ど)から単離された組織が挙げられ得る。このような核酸分子はまた、ウイルス
から単離され得る。
【0027】
本発明はまた、上記の方法に従って産生された標識された核酸分子を提供する
。このような標識された核酸分子は、一本鎖または二本鎖であり得、そして検出
プローブとして有用である。合成の間に使用される標識されたヌクレオチド(単
数または複数)に依存して、標識された分子は、1つまたは多数の標識を含み得
る。複数の標識が使用される場合は、分子は、多数の同じまたは異なる標識を含
み得る。従って、1つの型または多数の異なる標識されたヌクレオチドが、本発
明の標識された核酸分子を提供するために、核酸分子の合成の間に使用され得る
。このような標識された核酸分子は、従って、1つ以上の標識されたヌクレオチ
ドを含む(これは、同じであり得るかまたは異なり得る)。
。このような標識された核酸分子は、一本鎖または二本鎖であり得、そして検出
プローブとして有用である。合成の間に使用される標識されたヌクレオチド(単
数または複数)に依存して、標識された分子は、1つまたは多数の標識を含み得
る。複数の標識が使用される場合は、分子は、多数の同じまたは異なる標識を含
み得る。従って、1つの型または多数の異なる標識されたヌクレオチドが、本発
明の標識された核酸分子を提供するために、核酸分子の合成の間に使用され得る
。このような標識された核酸分子は、従って、1つ以上の標識されたヌクレオチ
ドを含む(これは、同じであり得るかまたは異なり得る)。
【0028】
本発明はまた、本発明に従う使用のためのキットを提供する。このようなキッ
トは、その中の閉じられた制限の中に1つ以上の容器手段(例えば、バイアル、
チューブ、ボトルなど)を有している、キャリア手段(例えば、箱またはカート
ン)を含む。ここでは、キットは、同じまたは異なる容器中に、1つ以上の逆転
写酵素を含む。本発明のキットは、同じまたは異なる容器中に、1つ以上のDN
Aポリメラーゼ、1つ以上のプライマー、1つ以上の適切な緩衝液、および/ま
たは1つ以上のヌクレオチド(例えば、デオキシヌクレオシド三リン酸(dNT
P)、そして好ましくは、蛍光標識されたdNTP)を含み得る。
トは、その中の閉じられた制限の中に1つ以上の容器手段(例えば、バイアル、
チューブ、ボトルなど)を有している、キャリア手段(例えば、箱またはカート
ン)を含む。ここでは、キットは、同じまたは異なる容器中に、1つ以上の逆転
写酵素を含む。本発明のキットは、同じまたは異なる容器中に、1つ以上のDN
Aポリメラーゼ、1つ以上のプライマー、1つ以上の適切な緩衝液、および/ま
たは1つ以上のヌクレオチド(例えば、デオキシヌクレオシド三リン酸(dNT
P)、そして好ましくは、蛍光標識されたdNTP)を含み得る。
【0029】
好ましい局面においては、本発明において使用されるRTは、2つ以上のサブ
ユニット(またはそれらの誘導体、改変体、フラグメント、もしくは変異体)を
含み、そして好ましくは、2つのサブユニット(例えば、二量体またはヘテロニ
量体)を含む。2サブユニットの逆転写酵素は、代表的には、二量体を形成する
αおよびβサブユニットを有するが、サブユニット(およびそのようなサブユニ
ットの誘導体、改変体、または変異体)の任意の形態または組み合わせが使用さ
れ得る。このような組合せとして、αβ、ββ、ααなどが挙げられ得る。本発
明での使用に好ましい2サブユニットのRTとして、HIV RT、RSV R
T、AMV RT、AEV RT、RAV RT、HIV RT、およびMAV
RT、または他のASLV RT、あるいはそれらの変異体、改変体、または
誘導体が挙げられる。好ましい局面においては、AMV RTおよび/またはR
SV RTが、本発明に従って使用される。本発明での使用のための逆転写酵素
は、天然の供給源または組換えの供給源から得ることができる。例えば、公開さ
れているPCT出願番号第WO98/47912号を参照のこと。あるいは、本
発明での使用のための逆転写酵素は、商業的に、すなわち例えば、Life T
echnologies,Inc.(Rockville,MD)、Pharm
acia(Piscataway,NJ)、Sigma(St.Louis,M
O)、またはBoehringer Mannheim Biochemica
ls(Indianapolis,IN)から入手することができる。関連する
局面においては、本発明のRTの少なくとも1つのサブユニットが、RNase
H活性を減少させるか、実質的に減少させるか、または排除するように、酵素
の活性に影響を与えるように改変され得るかまたは突然変異させられ得る。本発
明での使用のための好ましいRTとして、Life Technologies
,Inc.から入手可能であるThermoScriptTMおよびThermo
ScriptTMII、ならびに第WO98/47912号(その全体において本
明細書中で参考として援用されている)に記載されている他のものが、挙げられ
る。
ユニット(またはそれらの誘導体、改変体、フラグメント、もしくは変異体)を
含み、そして好ましくは、2つのサブユニット(例えば、二量体またはヘテロニ
量体)を含む。2サブユニットの逆転写酵素は、代表的には、二量体を形成する
αおよびβサブユニットを有するが、サブユニット(およびそのようなサブユニ
ットの誘導体、改変体、または変異体)の任意の形態または組み合わせが使用さ
れ得る。このような組合せとして、αβ、ββ、ααなどが挙げられ得る。本発
明での使用に好ましい2サブユニットのRTとして、HIV RT、RSV R
T、AMV RT、AEV RT、RAV RT、HIV RT、およびMAV
RT、または他のASLV RT、あるいはそれらの変異体、改変体、または
誘導体が挙げられる。好ましい局面においては、AMV RTおよび/またはR
SV RTが、本発明に従って使用される。本発明での使用のための逆転写酵素
は、天然の供給源または組換えの供給源から得ることができる。例えば、公開さ
れているPCT出願番号第WO98/47912号を参照のこと。あるいは、本
発明での使用のための逆転写酵素は、商業的に、すなわち例えば、Life T
echnologies,Inc.(Rockville,MD)、Pharm
acia(Piscataway,NJ)、Sigma(St.Louis,M
O)、またはBoehringer Mannheim Biochemica
ls(Indianapolis,IN)から入手することができる。関連する
局面においては、本発明のRTの少なくとも1つのサブユニットが、RNase
H活性を減少させるか、実質的に減少させるか、または排除するように、酵素
の活性に影響を与えるように改変され得るかまたは突然変異させられ得る。本発
明での使用のための好ましいRTとして、Life Technologies
,Inc.から入手可能であるThermoScriptTMおよびThermo
ScriptTMII、ならびに第WO98/47912号(その全体において本
明細書中で参考として援用されている)に記載されている他のものが、挙げられ
る。
【0030】
本発明に従うと、標識された生成物の量は、好ましくは、当業者によって決定
され得、そして実施例において議論されるような、合成された生成物中への目的
の標識の取り込みの割合に基づいて測定される。しかし、生成物の標識の量また
は効率を測定する他の手段が、当業者によって認識される。本発明は、鋳型から
の核酸分子の合成の間の、好ましくは、RNAからの1つ以上のcDNA分子の
合成の間の、標識ヌクレオチドの取り込みの割合の増強または増大を提供する。
本発明に従うと、取り込みの割合におけるこのような増強または増大は、好まし
くは、MMLV RTおよび好ましくは、Life Technologies
,Inc.から入手可能なSuperScriptTMまたはSuperScri
ptTMIIのような標準的な逆転写酵素と比較して、取り込みの割合において2
倍、5倍、10倍、15倍、20倍、25倍、30倍、40倍、もしくは50倍
以上増大または増強される。別の局面においては、合成の間の標識ヌクレオチド
(好ましくは蛍光ヌクレオチド)の取り込みの割合は、約5%以上大きい、約7
.5%以上大きい、約10%以上大きい、約15%以上大きい、約20%以上大
きい、約25%以上大きい、約30%以上大きい、約40%以上大きい、あるい
は、約50%以上大きい。
され得、そして実施例において議論されるような、合成された生成物中への目的
の標識の取り込みの割合に基づいて測定される。しかし、生成物の標識の量また
は効率を測定する他の手段が、当業者によって認識される。本発明は、鋳型から
の核酸分子の合成の間の、好ましくは、RNAからの1つ以上のcDNA分子の
合成の間の、標識ヌクレオチドの取り込みの割合の増強または増大を提供する。
本発明に従うと、取り込みの割合におけるこのような増強または増大は、好まし
くは、MMLV RTおよび好ましくは、Life Technologies
,Inc.から入手可能なSuperScriptTMまたはSuperScri
ptTMIIのような標準的な逆転写酵素と比較して、取り込みの割合において2
倍、5倍、10倍、15倍、20倍、25倍、30倍、40倍、もしくは50倍
以上増大または増強される。別の局面においては、合成の間の標識ヌクレオチド
(好ましくは蛍光ヌクレオチド)の取り込みの割合は、約5%以上大きい、約7
.5%以上大きい、約10%以上大きい、約15%以上大きい、約20%以上大
きい、約25%以上大きい、約30%以上大きい、約40%以上大きい、あるい
は、約50%以上大きい。
【0031】
本発明で使用するための酵素として、RNase H活性が減少しているかま
たは実質的に減少している酵素が挙げられ得る。RNase H活性が減少して
いるかまたは実質的に減少しているこのような酵素は、目的の逆転写酵素中のR
Nase Hドメインを変異させることによって、好ましくは、上記のような1
つ以上の点変異、1つ以上の欠失変異、および/または1つ以上の挿入変異によ
って獲得し得る。一般的には、米国特許第5,668,005号、および公開さ
れているPCT出願第WO98/47912号を参照のこと。「RNase H
活性が実質的に減少した」酵素は、野生型のモロニーマウス白血病ウイルス(M
−MLV)、鳥類骨髄芽球症ウイルス(AMV)、またはラウス肉腫ウイルス(
RSV)逆転写酵素のような対応する野生型酵素またはRNase H+酵素の
RNase H活性の、約30%未満、約25%未満、約20%未満、より好ま
しくは、約15%未満、約10%未満、約7.5%未満、または約5%未満、そ
して最も好ましくは、約5%未満または約2%未満を有する酵素を意味する。任
意の酵素のRNase H活性は、例えば、米国特許第5,244,797号、
Kotewicz,M.L.ら、Nucl.Acids Res.16:265
(1988)、Gerard,G.F.ら、FOCUS 14(5):91(1
992)、および米国特許第5,668,005号(それらの全ての開示は、本
明細書中で完全に参考として援用されている)に記載されているアッセイのよう
な種々のアッセイによって決定され得る。
たは実質的に減少している酵素が挙げられ得る。RNase H活性が減少して
いるかまたは実質的に減少しているこのような酵素は、目的の逆転写酵素中のR
Nase Hドメインを変異させることによって、好ましくは、上記のような1
つ以上の点変異、1つ以上の欠失変異、および/または1つ以上の挿入変異によ
って獲得し得る。一般的には、米国特許第5,668,005号、および公開さ
れているPCT出願第WO98/47912号を参照のこと。「RNase H
活性が実質的に減少した」酵素は、野生型のモロニーマウス白血病ウイルス(M
−MLV)、鳥類骨髄芽球症ウイルス(AMV)、またはラウス肉腫ウイルス(
RSV)逆転写酵素のような対応する野生型酵素またはRNase H+酵素の
RNase H活性の、約30%未満、約25%未満、約20%未満、より好ま
しくは、約15%未満、約10%未満、約7.5%未満、または約5%未満、そ
して最も好ましくは、約5%未満または約2%未満を有する酵素を意味する。任
意の酵素のRNase H活性は、例えば、米国特許第5,244,797号、
Kotewicz,M.L.ら、Nucl.Acids Res.16:265
(1988)、Gerard,G.F.ら、FOCUS 14(5):91(1
992)、および米国特許第5,668,005号(それらの全ての開示は、本
明細書中で完全に参考として援用されている)に記載されているアッセイのよう
な種々のアッセイによって決定され得る。
【0032】
本発明における使用に好ましい酵素として、RSV H-逆転写酵素、AMV
H-逆転写酵素、RAV H-逆転写酵素、MAV H-逆転写酵素、およびH
IV H-逆転写酵素が挙げられるが、これらに限定されない(一般的には、第
WO98/47912号を参照のこと)。本発明において使用される特に好まし
い酵素として、Life Technologies,Inc.から入手可能な
ThermoScriptTM、およびThermoScriptTMIIが挙げら
れる。しかし、RNase H活性が実質的に減少している、リボ核酸分子から
DNA分子を産生し得る(すなわち、逆転写酵素活性を有している)任意の酵素
が、本発明の組成物、方法、およびキットにおいて同等に使用され得ることが、
当業者によって理解される。
H-逆転写酵素、RAV H-逆転写酵素、MAV H-逆転写酵素、およびH
IV H-逆転写酵素が挙げられるが、これらに限定されない(一般的には、第
WO98/47912号を参照のこと)。本発明において使用される特に好まし
い酵素として、Life Technologies,Inc.から入手可能な
ThermoScriptTM、およびThermoScriptTMIIが挙げら
れる。しかし、RNase H活性が実質的に減少している、リボ核酸分子から
DNA分子を産生し得る(すなわち、逆転写酵素活性を有している)任意の酵素
が、本発明の組成物、方法、およびキットにおいて同等に使用され得ることが、
当業者によって理解される。
【0033】
種々のDNAポリメラーゼが、本発明に従って有用である。このようなポリメ
ラーゼとして、以下が挙げられるが、これらに限定されない:Thermus
thermophilus(Tth)DNAポリメラーゼ、Thermus a
quaticus(Taq)DNAポリメラーゼ、Thermotoga ne
apolitana(Tne)DNAポリメラーゼ、Thermotoga m
aritima(Tma)DNAポリメラーゼ、Thermococcus l
itoralis(TliまたはVENTTM)DNAポリメラーゼ、Pyroc
occus furiosis(Pfu)DNAポリメラーゼ、DEEPVEN
TTMDNAポリメラーゼ、Pyrococcus woosii(Pwo)DN
Aポリメラーゼ、Bacillus sterothermophilus(B
st)DNAポリメラーゼ、Bacillus caldophilus(Bc
a)DNAポリメラーゼ、Sulfolobus acidocaldariu
s(Sac)DNAポリメラーゼ、Thermoplasma acidoph
ilum(Tac)DNAポリメラーゼ、Thermus flavus(Tf
l/Tub)DNAポリメラーゼ、Thermus ruber(Tru)DN
Aポリメラーゼ、Thermus brockianus(DYNAZYMETM )DNAポリメラーゼ、Methanobacterium thermoau
totrophicum(Mth)DNAポリメラーゼ、Mycobacter
ium spp.DNAポリメラーゼ(Mtb,Mlep)、ならびにそれらの
変異体、改変体、および誘導体。
ラーゼとして、以下が挙げられるが、これらに限定されない:Thermus
thermophilus(Tth)DNAポリメラーゼ、Thermus a
quaticus(Taq)DNAポリメラーゼ、Thermotoga ne
apolitana(Tne)DNAポリメラーゼ、Thermotoga m
aritima(Tma)DNAポリメラーゼ、Thermococcus l
itoralis(TliまたはVENTTM)DNAポリメラーゼ、Pyroc
occus furiosis(Pfu)DNAポリメラーゼ、DEEPVEN
TTMDNAポリメラーゼ、Pyrococcus woosii(Pwo)DN
Aポリメラーゼ、Bacillus sterothermophilus(B
st)DNAポリメラーゼ、Bacillus caldophilus(Bc
a)DNAポリメラーゼ、Sulfolobus acidocaldariu
s(Sac)DNAポリメラーゼ、Thermoplasma acidoph
ilum(Tac)DNAポリメラーゼ、Thermus flavus(Tf
l/Tub)DNAポリメラーゼ、Thermus ruber(Tru)DN
Aポリメラーゼ、Thermus brockianus(DYNAZYMETM )DNAポリメラーゼ、Methanobacterium thermoau
totrophicum(Mth)DNAポリメラーゼ、Mycobacter
ium spp.DNAポリメラーゼ(Mtb,Mlep)、ならびにそれらの
変異体、改変体、および誘導体。
【0034】
本発明に従って使用されるDNAポリメラーゼは、核酸鋳型からDNA分子を
合成し得る(代表的には、5’から3’の方向で)任意の酵素であり得る。この
ようなポリメラーゼは、中温性(mesophilic)であり得るかまたは高
温性であり得るが、好ましくは、高熱性である。中温性のポリメラーゼとして、
T5 DNAポリメラーゼ、T7 DNAポリメラーゼ(Wiemann,S.
ら、BioTechnique 18:688(1995)およびVoss,H
.ら、BioTechnique 23:312(1997))、Klenow
フラグメントDNAポリメラーゼ、DNAポリメラーゼIIIなどが挙げられる
。好ましいDNAポリメラーゼは、熱安定性のDNAポリメラーゼ(例えば、T
aq(Voss,H.ら、BioTechnique 23:312(1997
))、Tne、Tma、Pfu、VENTTM、DEEPVENTTMTth(Ch
ang,H.ら、Immuno.Methods 176:235(1994)
)、ならびにそれらの変異体、改変体、および誘導体である(米国特許第5,4
36,149号;米国特許第5,512,462号;WO92/06188号;
WO92/06200号;WO96/10640号;Barnes,W.M.、
Gene 112:29−35(1992);Lawyer,F.C.ら、PC
R Meth.Appl.2:275−287(1993);Flaman,J
.−M.ら、Nucl.Acids Res.22(15):3259−326
0(1994))。長い核酸分子(例えば、3〜5Kbより長い長さの核酸分子
)の増幅については、少なくとも2つのDNAポリメラーゼ(1つは3’エキソ
ヌクレアーゼ活性を実質的に欠失しており、そして他方は3’エキソヌクレアー
ゼ活性を有している)が、代表的には使用される。米国特許第5,436,14
9号;米国特許第5,512,462号;およびBarnes,W.M.,Ge
ne 112:29−35(1992)を参照のこと。これらの全ての開示が、
それらの全体において本明細書中で参考として援用されている。
合成し得る(代表的には、5’から3’の方向で)任意の酵素であり得る。この
ようなポリメラーゼは、中温性(mesophilic)であり得るかまたは高
温性であり得るが、好ましくは、高熱性である。中温性のポリメラーゼとして、
T5 DNAポリメラーゼ、T7 DNAポリメラーゼ(Wiemann,S.
ら、BioTechnique 18:688(1995)およびVoss,H
.ら、BioTechnique 23:312(1997))、Klenow
フラグメントDNAポリメラーゼ、DNAポリメラーゼIIIなどが挙げられる
。好ましいDNAポリメラーゼは、熱安定性のDNAポリメラーゼ(例えば、T
aq(Voss,H.ら、BioTechnique 23:312(1997
))、Tne、Tma、Pfu、VENTTM、DEEPVENTTMTth(Ch
ang,H.ら、Immuno.Methods 176:235(1994)
)、ならびにそれらの変異体、改変体、および誘導体である(米国特許第5,4
36,149号;米国特許第5,512,462号;WO92/06188号;
WO92/06200号;WO96/10640号;Barnes,W.M.、
Gene 112:29−35(1992);Lawyer,F.C.ら、PC
R Meth.Appl.2:275−287(1993);Flaman,J
.−M.ら、Nucl.Acids Res.22(15):3259−326
0(1994))。長い核酸分子(例えば、3〜5Kbより長い長さの核酸分子
)の増幅については、少なくとも2つのDNAポリメラーゼ(1つは3’エキソ
ヌクレアーゼ活性を実質的に欠失しており、そして他方は3’エキソヌクレアー
ゼ活性を有している)が、代表的には使用される。米国特許第5,436,14
9号;米国特許第5,512,462号;およびBarnes,W.M.,Ge
ne 112:29−35(1992)を参照のこと。これらの全ての開示が、
それらの全体において本明細書中で参考として援用されている。
【0035】
(酵素組成物の処方)
本発明の組成物を形成するために、1つ以上の逆転写酵素が、好ましくは緩衝
化食塩水中で混合される。1つ以上のDNAポリメラーゼおよび/または1つ以
上のヌクレオチド(好ましくは、1つ以上の蛍光ヌクレオチド(これらは、同じ
であっても異なっても良い)を含む)が、必要に応じて、本発明の組成物を作製
するために添加され得る。本発明の組成物はまた、1つ以上の核酸鋳型および/
または1つ以上のプライマーを含み得る。より好ましくは、酵素は、安定な緩衝
化食塩水中で作業濃度で提供される。用語「安定(な)」および「安定性」は、
本明細書中で使用される場合は、一般的には、酵素または酵素を含有している組
成物が、約4℃の温度で約1週間、約−20℃の温度で約2〜6ヶ月間、そして
約−80℃の温度で約6ヶ月以上保存された後に、もとの酵素活性(ユニットで
)の、少なくとも70%、好ましくは少なくとも80%、そして最も好ましくは
少なくとも90%が、組成物(例えば、酵素組成物)によって保持されることを
意味する。本明細書中で使用される場合は、用語「作業濃度」は、特定の機能(
例えば、核酸の逆転写)を実行するために溶液中で使用される最適な濃度、また
はその最適濃度付近の、酵素の濃度を意味する。
化食塩水中で混合される。1つ以上のDNAポリメラーゼおよび/または1つ以
上のヌクレオチド(好ましくは、1つ以上の蛍光ヌクレオチド(これらは、同じ
であっても異なっても良い)を含む)が、必要に応じて、本発明の組成物を作製
するために添加され得る。本発明の組成物はまた、1つ以上の核酸鋳型および/
または1つ以上のプライマーを含み得る。より好ましくは、酵素は、安定な緩衝
化食塩水中で作業濃度で提供される。用語「安定(な)」および「安定性」は、
本明細書中で使用される場合は、一般的には、酵素または酵素を含有している組
成物が、約4℃の温度で約1週間、約−20℃の温度で約2〜6ヶ月間、そして
約−80℃の温度で約6ヶ月以上保存された後に、もとの酵素活性(ユニットで
)の、少なくとも70%、好ましくは少なくとも80%、そして最も好ましくは
少なくとも90%が、組成物(例えば、酵素組成物)によって保持されることを
意味する。本明細書中で使用される場合は、用語「作業濃度」は、特定の機能(
例えば、核酸の逆転写)を実行するために溶液中で使用される最適な濃度、また
はその最適濃度付近の、酵素の濃度を意味する。
【0036】
本発明の組成物を形成する際に使用される水は、好ましくは、蒸留され、脱イ
オン化され、そして滅菌濾過され(0.1〜0.2μmのフィルターを通して)
、そしてDNaseおよびRNase酵素の夾雑物を含まない。このような水は
、例えば、Sigma Chemical Company(Saint Lo
uis,Missouri)から市販されているか、または必要とされるように
当業者に周知の方法に従って作製され得る。
オン化され、そして滅菌濾過され(0.1〜0.2μmのフィルターを通して)
、そしてDNaseおよびRNase酵素の夾雑物を含まない。このような水は
、例えば、Sigma Chemical Company(Saint Lo
uis,Missouri)から市販されているか、または必要とされるように
当業者に周知の方法に従って作製され得る。
【0037】
酵素成分に加えて、本発明の組成物は好ましくは、cDNA分子のような標識
された核酸分子の合成のために必須の、1つ以上の緩衝液および補因子を含む。
本発明の組成物を形成する際の使用に特に好ましい緩衝液は、酢酸塩、硫酸塩、
塩酸塩、リン酸塩、またはTris−(ヒドロキシメチル)アミノメタン(TR
IS(登録商標))の遊離の酸の形態であるが、TRIS(登録商標)とほぼ同
じイオン強度およびpKaの別の緩衝液が、同等の結果を伴って使用され得る。
緩衝塩に加えて、補因子の塩(例えば、カリウムの塩(好ましくは、塩化カリウ
ムまたは酢酸カリウム)およびマグネシウムの塩(好ましくは、塩化マグネシウ
ムまたは酢酸マグネシウム))が、組成物中に含まれる。組成物および/または
合成反応混合物への1つ以上の炭水化物および/または糖の添加もまた、保存の
際の組成物および/または反応混合物の増強された安定性を支持するために有利
であり得る。本発明の組成物および/または合成反応混合物中への包含に好まし
いこのような炭水化物または糖として、スクロース、トレハロースなどが挙げら
れるが、これらに限定されない。さらに、このような炭水化物および/または糖
は、本発明の酵素組成物およびキットの作製において使用される酵素についての
保存緩衝液に添加され得る。このような炭水化物および/または糖は、多数の供
給源(Sigma(St.Louis,MO)を含む)から市販されている。
された核酸分子の合成のために必須の、1つ以上の緩衝液および補因子を含む。
本発明の組成物を形成する際の使用に特に好ましい緩衝液は、酢酸塩、硫酸塩、
塩酸塩、リン酸塩、またはTris−(ヒドロキシメチル)アミノメタン(TR
IS(登録商標))の遊離の酸の形態であるが、TRIS(登録商標)とほぼ同
じイオン強度およびpKaの別の緩衝液が、同等の結果を伴って使用され得る。
緩衝塩に加えて、補因子の塩(例えば、カリウムの塩(好ましくは、塩化カリウ
ムまたは酢酸カリウム)およびマグネシウムの塩(好ましくは、塩化マグネシウ
ムまたは酢酸マグネシウム))が、組成物中に含まれる。組成物および/または
合成反応混合物への1つ以上の炭水化物および/または糖の添加もまた、保存の
際の組成物および/または反応混合物の増強された安定性を支持するために有利
であり得る。本発明の組成物および/または合成反応混合物中への包含に好まし
いこのような炭水化物または糖として、スクロース、トレハロースなどが挙げら
れるが、これらに限定されない。さらに、このような炭水化物および/または糖
は、本発明の酵素組成物およびキットの作製において使用される酵素についての
保存緩衝液に添加され得る。このような炭水化物および/または糖は、多数の供
給源(Sigma(St.Louis,MO)を含む)から市販されている。
【0038】
最初に緩衝塩、補因子の塩、および炭水化物、または糖を、水中に作業濃度で
溶解し、そして酵素の添加の前に溶液のpHを調整することが、しばしば好まし
い。この方法においては、pH−感受性の酵素は、本発明の組成物の処方の間に
、酸によって媒介される不活化またはアルカリによって媒介される不活化にあま
り供されない。
溶解し、そして酵素の添加の前に溶液のpHを調整することが、しばしば好まし
い。この方法においては、pH−感受性の酵素は、本発明の組成物の処方の間に
、酸によって媒介される不活化またはアルカリによって媒介される不活化にあま
り供されない。
【0039】
本発明の組成物中のRTの濃度は、使用される逆転写酵素の型に依存して変化
し得る。例えば、AMV RT、MAV RT、RSV RT、およびRAV
RTは、好ましくは、約100から約5000ユニット/ml、約125から約
4000ユニット/ml、約150から約3000ユニット/ml、約200か
ら約2500ユニット/ml、約225から約2000ユニット/mlの溶液中
での作業濃度で、そして最も好ましくは、約250から約1000ユニット/m
lの作業濃度で添加される。高温性のDNAポリメラーゼのグループの酵素、な
らびにそれらの変異体、改変体、および誘導体は、好ましくは、約100から約
1000ユニット/ml、約125から約750ユニット/ml、約150から
約700ユニット/ml、約200から約650ユニット/ml、約225から
約550ユニット/mlの溶液中での作業濃度で、そして最も好ましくは、約2
50から約500ユニット/mlの作業濃度で添加される。酵素は、任意の順序
で溶液に添加され得るか、または同時に添加され得る。
し得る。例えば、AMV RT、MAV RT、RSV RT、およびRAV
RTは、好ましくは、約100から約5000ユニット/ml、約125から約
4000ユニット/ml、約150から約3000ユニット/ml、約200か
ら約2500ユニット/ml、約225から約2000ユニット/mlの溶液中
での作業濃度で、そして最も好ましくは、約250から約1000ユニット/m
lの作業濃度で添加される。高温性のDNAポリメラーゼのグループの酵素、な
らびにそれらの変異体、改変体、および誘導体は、好ましくは、約100から約
1000ユニット/ml、約125から約750ユニット/ml、約150から
約700ユニット/ml、約200から約650ユニット/ml、約225から
約550ユニット/mlの溶液中での作業濃度で、そして最も好ましくは、約2
50から約500ユニット/mlの作業濃度で添加される。酵素は、任意の順序
で溶液に添加され得るか、または同時に添加され得る。
【0040】
本発明の組成物はさらに、1つ以上のヌクレオチド(好ましくは、蛍光ヌクレ
オチドで部分)を含み得る。これは、好ましくは、デオキシヌクレオシド三リン
酸(dNTP)である。本発明の組成物のdNTP成分は、新しく合成された核
酸の「成形(building)」ブロックとして作用し、ポリメラーゼまたは
逆転写酵素の作用によってその中に取り込まれる。
オチドで部分)を含み得る。これは、好ましくは、デオキシヌクレオシド三リン
酸(dNTP)である。本発明の組成物のdNTP成分は、新しく合成された核
酸の「成形(building)」ブロックとして作用し、ポリメラーゼまたは
逆転写酵素の作用によってその中に取り込まれる。
【0041】
(核酸またはcDNA分子の産生)
本発明に従って、核酸またはcDNA分子(一本鎖または二本鎖)が、種々の
核酸鋳型分子から調製され得る。本発明における使用に好ましい鋳型としては、
一本鎖または二本鎖のDNAおよびRNA分子、ならびに二本鎖のDNA:RN
Aハイブリッドが挙げられる。より好ましい鋳型としては、メッセンジャーRN
A(mRNA)分子、トランスファーRNA(tRNA)分子、およびリボソー
マルRNA(rRNA)分子が挙げられるが、mRNA分子が、本発明に従うと
好ましい鋳型である。
核酸鋳型分子から調製され得る。本発明における使用に好ましい鋳型としては、
一本鎖または二本鎖のDNAおよびRNA分子、ならびに二本鎖のDNA:RN
Aハイブリッドが挙げられる。より好ましい鋳型としては、メッセンジャーRN
A(mRNA)分子、トランスファーRNA(tRNA)分子、およびリボソー
マルRNA(rRNA)分子が挙げられるが、mRNA分子が、本発明に従うと
好ましい鋳型である。
【0042】
好ましくは、核酸鋳型は、種々の細胞、組織、器官、または生物体のような、
天然の供給源から得ることができる。核酸分子の供給源として使用され得る細胞
は、原核生物(Escherichia、Bacillus、Serratia
、Salmonella、Staphylococcus、Streptoco
ccus、Clostridium、Chlamydia、Neisseria
、Treponema、Mycoplasma、Borrelia、Legio
nella、Pseudomonas、Mycobacterium、Heli
cobacter、Erwinia、Agrobacterium、Rhizo
bium、Xanthomonas、およびStreptomyces属の種を
含むがこれらに限定されない、細菌細胞)、あるいは、真核生物(真菌(特に、
酵母)、植物、原生動物および他の寄生虫、ならびに動物(昆虫(特に、Dro
sophila種の細胞)、線虫(特に、Caenorhabditis el
egans細胞)、および哺乳動物(特に、ヒトの細胞)を含む)を含む)であ
り得る。
天然の供給源から得ることができる。核酸分子の供給源として使用され得る細胞
は、原核生物(Escherichia、Bacillus、Serratia
、Salmonella、Staphylococcus、Streptoco
ccus、Clostridium、Chlamydia、Neisseria
、Treponema、Mycoplasma、Borrelia、Legio
nella、Pseudomonas、Mycobacterium、Heli
cobacter、Erwinia、Agrobacterium、Rhizo
bium、Xanthomonas、およびStreptomyces属の種を
含むがこれらに限定されない、細菌細胞)、あるいは、真核生物(真菌(特に、
酵母)、植物、原生動物および他の寄生虫、ならびに動物(昆虫(特に、Dro
sophila種の細胞)、線虫(特に、Caenorhabditis el
egans細胞)、および哺乳動物(特に、ヒトの細胞)を含む)を含む)であ
り得る。
【0043】
核酸の供給源として使用され得る哺乳動物の体細胞としては、血球(網状赤血
球および白血球)、内皮細胞、上皮細胞、神経細胞(中枢神経系または抹消神経
系に由来する)、筋肉細胞(骨格筋、平滑筋、心筋に由来する筋細胞および筋芽
細胞を含む)、結合組織の細胞(繊維芽細胞、脂肪細胞、軟骨細胞、軟骨芽細胞
、骨細胞、および骨芽細胞を含む)、ならびに他の間質細胞(例えば、マクロフ
ァージ、樹状細胞、Schwann細胞)が挙げられる。哺乳動物の生殖細胞(
精母細胞および卵母細胞)もまた、上記の体細胞および生殖細胞を生じる先祖細
胞、前駆細胞、および幹細胞であり得る場合には、本発明での使用のための核酸
の供給源として使用され得る。脳、腎臓、肝臓、膵臓、血液、骨髄、筋肉、神経
、皮膚、尿生殖器、循環器、リンパ系、胃腸系、および結合組織の供給源に由来
する組織または器官、ならびに哺乳動物(ヒトを含む)の胚または胎児に由来す
る組織または器官のような、哺乳動物の組織または器官もまた核酸の供給源とし
ての使用に適切である。
球および白血球)、内皮細胞、上皮細胞、神経細胞(中枢神経系または抹消神経
系に由来する)、筋肉細胞(骨格筋、平滑筋、心筋に由来する筋細胞および筋芽
細胞を含む)、結合組織の細胞(繊維芽細胞、脂肪細胞、軟骨細胞、軟骨芽細胞
、骨細胞、および骨芽細胞を含む)、ならびに他の間質細胞(例えば、マクロフ
ァージ、樹状細胞、Schwann細胞)が挙げられる。哺乳動物の生殖細胞(
精母細胞および卵母細胞)もまた、上記の体細胞および生殖細胞を生じる先祖細
胞、前駆細胞、および幹細胞であり得る場合には、本発明での使用のための核酸
の供給源として使用され得る。脳、腎臓、肝臓、膵臓、血液、骨髄、筋肉、神経
、皮膚、尿生殖器、循環器、リンパ系、胃腸系、および結合組織の供給源に由来
する組織または器官、ならびに哺乳動物(ヒトを含む)の胚または胎児に由来す
る組織または器官のような、哺乳動物の組織または器官もまた核酸の供給源とし
ての使用に適切である。
【0044】
任意の上記の原核生物または真核生物の、細胞、組織、および器官は、正常な
もの、疾患のもの、形質転換されたもの、確立されたもの、先祖のもの、前駆体
のもの、胎児のもの、または胚性のものであり得る。疾患の細胞として、例えば
、感染性の疾患(細菌、真菌、または酵母、ウイルス(AIDS、HIV、HT
LV、ヘルペス、肝炎などを含む)または寄生虫によって引き起こされる)、遺
伝的または生化学的な病理(例えば、嚢胞性繊維症、血友病、アルツハイマー病
、筋ジストロフィー、または多発性硬化症)、あるいは癌性のプロセスに関連す
るものが挙げられ得る。形質転換された動物細胞株または確立された動物細胞株
として、例えば、COS細胞、CHO細胞、VERO細胞、BHK細胞、HeL
a細胞、HepG2細胞、K562細胞、293細胞、L929細胞、F9細胞
などが挙げられ得る。本発明での使用のための核酸の供給源として適した他の細
胞、細胞株、組織、器官、および生物体が、当業者に明らかである。
もの、疾患のもの、形質転換されたもの、確立されたもの、先祖のもの、前駆体
のもの、胎児のもの、または胚性のものであり得る。疾患の細胞として、例えば
、感染性の疾患(細菌、真菌、または酵母、ウイルス(AIDS、HIV、HT
LV、ヘルペス、肝炎などを含む)または寄生虫によって引き起こされる)、遺
伝的または生化学的な病理(例えば、嚢胞性繊維症、血友病、アルツハイマー病
、筋ジストロフィー、または多発性硬化症)、あるいは癌性のプロセスに関連す
るものが挙げられ得る。形質転換された動物細胞株または確立された動物細胞株
として、例えば、COS細胞、CHO細胞、VERO細胞、BHK細胞、HeL
a細胞、HepG2細胞、K562細胞、293細胞、L929細胞、F9細胞
などが挙げられ得る。本発明での使用のための核酸の供給源として適した他の細
胞、細胞株、組織、器官、および生物体が、当業者に明らかである。
【0045】
一旦、出発細胞、組織、器官、または他のサンプルが得られると、核酸鋳型(
例えば、mRNA)は、当該分野で周知の方法によってそれらから単離され得る
(例えば、Maniatis,T.ら、Cell 15:687−701(19
78);Okayama,H.およびBerg,P.Mol.Cell.Bio
l.2:161−170(1982);Gubler,U.およびHoffma
n,B.J.,Gene 25:263−269(1983)を参照のこと)。
このように単離された核酸分子は、次いで、本発明に従ってcDNA分子および
cDNAライブラリーを調製するために使用され得る。
例えば、mRNA)は、当該分野で周知の方法によってそれらから単離され得る
(例えば、Maniatis,T.ら、Cell 15:687−701(19
78);Okayama,H.およびBerg,P.Mol.Cell.Bio
l.2:161−170(1982);Gubler,U.およびHoffma
n,B.J.,Gene 25:263−269(1983)を参照のこと)。
このように単離された核酸分子は、次いで、本発明に従ってcDNA分子および
cDNAライブラリーを調製するために使用され得る。
【0046】
本発明の実施においては、標識されたcDNA分子または標識されたcDNA
ライブラリーが、上記のように得られた1つ以上の核酸分子(好ましくは、mR
NA分子の集団のような1つ以上のmRNA分子である)を、本発明の逆転写酵
素活性を有している1つ以上のポリペプチドと、または本発明の1つ以上の組成
物と、そして好ましくは、本発明の1つ以上のRSV RTおよび/またはAM
V RTおよび/または他のASLV RTと、1つ以上の標識されたcDNA
分子(一本鎖または二本鎖)を形成するような酵素または組成物の作用による核
酸分子の逆転写に好ましい条件下で混合することによって産生される。従って、
本発明の方法は、以下の工程を包含する:(a)1つ以上の核酸鋳型(好ましく
は、1つ以上のRNAまたはmRNA鋳型(例えば、mRNA分子の集団))を
、1つ以上の本発明の逆転写酵素と混合する工程、および(b)1つ以上の鋳型
の全てまたは一部に対して相補的である1つ以上の標識された核酸分子を作成す
るために十分な条件下で混合物をインキュベートする工程。本発明は、cDNA
分子またはライブラリーを産生するために、以下の実施例に記載されているよう
なcDNAの合成の方法と、または当該分野で周知である他の方法と組合せて使
用され得る(例えば、Gubler,U.およびHoffman,B.J.,G
ene 25:263−269(1983);Krug,M.S.およびBer
ger,S.L.,Meth.Enzymol.152:316−325(19
87);Sambrook,J.ら、Molecular Cloning:A
Laboratory Manual、第2版、Cold Spring H
arbor,NY:Cold Spring Harbor Laborato
ry Press、8.60−8.63頁(1989)を参照のこと)。
ライブラリーが、上記のように得られた1つ以上の核酸分子(好ましくは、mR
NA分子の集団のような1つ以上のmRNA分子である)を、本発明の逆転写酵
素活性を有している1つ以上のポリペプチドと、または本発明の1つ以上の組成
物と、そして好ましくは、本発明の1つ以上のRSV RTおよび/またはAM
V RTおよび/または他のASLV RTと、1つ以上の標識されたcDNA
分子(一本鎖または二本鎖)を形成するような酵素または組成物の作用による核
酸分子の逆転写に好ましい条件下で混合することによって産生される。従って、
本発明の方法は、以下の工程を包含する:(a)1つ以上の核酸鋳型(好ましく
は、1つ以上のRNAまたはmRNA鋳型(例えば、mRNA分子の集団))を
、1つ以上の本発明の逆転写酵素と混合する工程、および(b)1つ以上の鋳型
の全てまたは一部に対して相補的である1つ以上の標識された核酸分子を作成す
るために十分な条件下で混合物をインキュベートする工程。本発明は、cDNA
分子またはライブラリーを産生するために、以下の実施例に記載されているよう
なcDNAの合成の方法と、または当該分野で周知である他の方法と組合せて使
用され得る(例えば、Gubler,U.およびHoffman,B.J.,G
ene 25:263−269(1983);Krug,M.S.およびBer
ger,S.L.,Meth.Enzymol.152:316−325(19
87);Sambrook,J.ら、Molecular Cloning:A
Laboratory Manual、第2版、Cold Spring H
arbor,NY:Cold Spring Harbor Laborato
ry Press、8.60−8.63頁(1989)を参照のこと)。
【0047】
他の局面においては、本発明は、核酸分子を増幅するための方法において使用
され得る。本発明のこの局面に従う核酸の増幅方法は、1工程(例えば、1工程
のRT−PCR)反応であり得るかまたは2工程(例えば、2工程のRT−PC
R)反応であり得る。本発明に従うと、1工程のRT−PCR型の反応は1つの
チューブ中で達成され得、それによって混入の可能性を低くする。このような1
工程の反応は、以下の工程を包含する:(a)核酸鋳型(例えば、mRNA)を
、本発明の逆転写酵素活性を有している1つ以上のポリペプチド、および1つ以
上のDNAポリメラーゼと混合する工程、ならびに(b)鋳型の全てまたは一部
に相補的である標識された核酸分子を増幅するために十分な条件下で混合物をイ
ンキュベートする工程。あるいは、増幅は、鋳型を、本発明の逆転写酵素活性を
有している1つ以上のポリペプチドと混合することによって達成され得る。この
ような反応混合物の、適切な条件下でのインキュベーションは、鋳型の全てまた
は一部に対して相補的である標識された核酸分子の増幅を可能にする。このよう
な増幅は、逆転写酵素活性のみによって、またはDNAポリメラーゼと組合せて
達成され得る。2工程のRT−PCR反応は、2つの異なる工程において達成さ
れ得る。このような方法は、以下の工程を包含する:(a)核酸鋳型(例えば、
mRNA)を、本発明の1つ以上の逆転写酵素と混合する工程、(b)鋳型の全
てまたは一部に相補的である標識された核酸分子(例えば、DNA分子)を作成
するために十分な条件下でこの混合物をインキュベートする工程、(c)標識さ
れた核酸分子と1つ以上のDNAポリメラーゼを混合する工程、ならびに(d)
標識された核酸分子を増幅するために十分な条件下で工程(c)の混合物をイン
キュベートする工程。長い核酸分子(例えば、約3〜5Kbの長さよりも長い)
の増幅のためには、DNAポリメラーゼの組合せ(例えば、3’エキソヌクレア
ーゼ活性を有している1つのDNAポリメラーゼおよび3’エキソヌクレアーゼ
活性が実質的に減少している別のDNAポリメラーゼ)が、使用され得る。
され得る。本発明のこの局面に従う核酸の増幅方法は、1工程(例えば、1工程
のRT−PCR)反応であり得るかまたは2工程(例えば、2工程のRT−PC
R)反応であり得る。本発明に従うと、1工程のRT−PCR型の反応は1つの
チューブ中で達成され得、それによって混入の可能性を低くする。このような1
工程の反応は、以下の工程を包含する:(a)核酸鋳型(例えば、mRNA)を
、本発明の逆転写酵素活性を有している1つ以上のポリペプチド、および1つ以
上のDNAポリメラーゼと混合する工程、ならびに(b)鋳型の全てまたは一部
に相補的である標識された核酸分子を増幅するために十分な条件下で混合物をイ
ンキュベートする工程。あるいは、増幅は、鋳型を、本発明の逆転写酵素活性を
有している1つ以上のポリペプチドと混合することによって達成され得る。この
ような反応混合物の、適切な条件下でのインキュベーションは、鋳型の全てまた
は一部に対して相補的である標識された核酸分子の増幅を可能にする。このよう
な増幅は、逆転写酵素活性のみによって、またはDNAポリメラーゼと組合せて
達成され得る。2工程のRT−PCR反応は、2つの異なる工程において達成さ
れ得る。このような方法は、以下の工程を包含する:(a)核酸鋳型(例えば、
mRNA)を、本発明の1つ以上の逆転写酵素と混合する工程、(b)鋳型の全
てまたは一部に相補的である標識された核酸分子(例えば、DNA分子)を作成
するために十分な条件下でこの混合物をインキュベートする工程、(c)標識さ
れた核酸分子と1つ以上のDNAポリメラーゼを混合する工程、ならびに(d)
標識された核酸分子を増幅するために十分な条件下で工程(c)の混合物をイン
キュベートする工程。長い核酸分子(例えば、約3〜5Kbの長さよりも長い)
の増幅のためには、DNAポリメラーゼの組合せ(例えば、3’エキソヌクレア
ーゼ活性を有している1つのDNAポリメラーゼおよび3’エキソヌクレアーゼ
活性が実質的に減少している別のDNAポリメラーゼ)が、使用され得る。
【0048】
本発明に従って使用され得る増幅方法として、PCR(米国特許第4,683
,195号および同第4,683,202号)、鎖置換増幅(Strand D
isplacement Amplification)(SDA;米国特許第
5,455,166号;第EP 0 684 315号)、および核酸配列に基
づく増幅(NASBA;米国特許第5,409,818号;第EP 0 329
822号)が挙げられる。
,195号および同第4,683,202号)、鎖置換増幅(Strand D
isplacement Amplification)(SDA;米国特許第
5,455,166号;第EP 0 684 315号)、および核酸配列に基
づく増幅(NASBA;米国特許第5,409,818号;第EP 0 329
822号)が挙げられる。
【0049】
(キット)
別の実施形態においては、本発明は、核酸分子の逆転写または増幅における使
用のためのキットに組み立てられ得る。本発明のこの局面に従うキットは、その
中の閉じられた制限の中に1つ以上の容器手段(例えば、バイアル、チューブ、
アンプル、ボトルなど)を有している、キャリア手段(例えば、箱、カートン、
チューブなど)を含む。ここでは、第1の容器手段は、逆転写酵素活性を有して
いる本発明の1つ以上のポリペプチドを含む。本発明のキットはまた、(同じ容
器中または異なる容器中に)1つ以上のDNAポリメラーゼ、適切な緩衝液、1
つ以上のヌクレオチド(好ましくは、同じであり得るかまたは異なり得る1つ以
上の蛍光ヌクレオチドを含む)、および/または1つ以上のプライマーを含み得
る。
用のためのキットに組み立てられ得る。本発明のこの局面に従うキットは、その
中の閉じられた制限の中に1つ以上の容器手段(例えば、バイアル、チューブ、
アンプル、ボトルなど)を有している、キャリア手段(例えば、箱、カートン、
チューブなど)を含む。ここでは、第1の容器手段は、逆転写酵素活性を有して
いる本発明の1つ以上のポリペプチドを含む。本発明のキットはまた、(同じ容
器中または異なる容器中に)1つ以上のDNAポリメラーゼ、適切な緩衝液、1
つ以上のヌクレオチド(好ましくは、同じであり得るかまたは異なり得る1つ以
上の蛍光ヌクレオチドを含む)、および/または1つ以上のプライマーを含み得
る。
【0050】
本発明の特異的な局面においては、逆転写および増幅のキットは、本発明の逆
転写酵素活性を有している1つ以上のポリペプチドを含有している1つ以上の成
分(混合物中または別々に)、標識された核酸分子の合成に必要とされる1つ以
上のヌクレオチド、および/または1つ以上のプライマー(例えば、逆転写のた
めのオリゴ(dT))を含み得る。このような逆転写および増幅のキットはさら
に、1つ以上のDNAポリメラーゼを含み得る。本発明の逆転写および増幅のキ
ットでの使用に適切である、逆転写酵素活性、DNAポリメラーゼ、ヌクレオチ
ド、プライマー、および他の成分を有している好ましいポリペプチドとしては、
本明細書中に記載されているものが挙げられる。本発明のこの局面によって含ま
れるキットはさらに、標準的な核酸の逆転写または増幅プロトコールを実行する
ために必須のさらなる試薬および化合物を含み得る。このようなキットはまた、
本発明に従う核酸分子を標識するための説明書を含み得る。
転写酵素活性を有している1つ以上のポリペプチドを含有している1つ以上の成
分(混合物中または別々に)、標識された核酸分子の合成に必要とされる1つ以
上のヌクレオチド、および/または1つ以上のプライマー(例えば、逆転写のた
めのオリゴ(dT))を含み得る。このような逆転写および増幅のキットはさら
に、1つ以上のDNAポリメラーゼを含み得る。本発明の逆転写および増幅のキ
ットでの使用に適切である、逆転写酵素活性、DNAポリメラーゼ、ヌクレオチ
ド、プライマー、および他の成分を有している好ましいポリペプチドとしては、
本明細書中に記載されているものが挙げられる。本発明のこの局面によって含ま
れるキットはさらに、標準的な核酸の逆転写または増幅プロトコールを実行する
ために必須のさらなる試薬および化合物を含み得る。このようなキットはまた、
本発明に従う核酸分子を標識するための説明書を含み得る。
【0051】
本明細書中に記載されている方法および適用に対する他の適切な改変および適
応が、明らかであり、そして本発明の範囲またはその任意の実施形態の範囲を逸
脱することなく行われ得ることが、当業者に容易に明らかである。ここでは本発
明が詳細に記載されるが、同じものが、以下の実施例を参照してさらに明らかに
理解される。以下の実施例は、本発明を説明する目的のみのために本明細書中に
含まれ、そして本発明を限定するようには意図されない。
応が、明らかであり、そして本発明の範囲またはその任意の実施形態の範囲を逸
脱することなく行われ得ることが、当業者に容易に明らかである。ここでは本発
明が詳細に記載されるが、同じものが、以下の実施例を参照してさらに明らかに
理解される。以下の実施例は、本発明を説明する目的のみのために本明細書中に
含まれ、そして本発明を限定するようには意図されない。
【0052】
(実施例)
(蛍光ヌクレオチドを使用する第1鎖のcDNAの合成。)
SuperScriptTMII反応については、Cy3−dUTPまたはR1
10−dUTPを、1μgのオリゴd(T)25マーでプライムした1μgのH
ela mRNAを使用してcDNA中に取り込んだ。しかし、AMV RTお
よびThermoScriptTM反応については、0.5μgのオリゴd(T)
25マーを、1μgのHela mRNAをプライムするために使用した。この
混合物を、70℃で10分間加熱し、次いで10分間氷上に移した。反応条件を
、逆転写酵素間で変化した。SuperScriptIITM反応の緩衝液は、5
0mMのTris−HCl(pH8.3)、75mMのKCl、3mMのMgC
l2、10mMのDTT、1μCiのP32α−dCTP、500μMのdNTP
、および100μMの蛍光dUTPを含んだ。ThermoScriptTM反応
の緩衝液は、50mMのTris−HCl(pH8.4)、75mMのKCl、
7.5mMのMgCl2、10mMのDTT、2μCiのP32α−dCTP、1
mMのdNTP、および200μMの蛍光dUTPを含んだ。AMV RT反応
の緩衝液は、100mMのTris−HCl(pH8.3)、100mMのKC
l、10mMのMgCl2、10mMのDTT、0.5μCiのP32α−dCT
P、250μMのdNTP、および100μMの蛍光dUTPを含んだ。反応緩
衝液を、Hela mRNAおよびオリゴd(T)25マーの混合物に対して添
加した。200ユニットのSuperScript IITM、15ユニットのT
hermo ScriptTM、または7.5ユニットのAMV RTを、この反
応において使用した。次いで、この反応物を、RTの最適な反応温度(Supe
rScriptTMIIについては45℃、Thermo ScriptTMについ
ては55℃、そしてAMV RTについては42℃)で1時間、インキュベート
した。2μlの反応混合物をピペッティングし、そして最終50μlの20mM
のEDTA溶液中で5μgの酵母のtRNAと混合した。このEDTA溶液を、
第1鎖のcDNAの収量の計算に使用した。
10−dUTPを、1μgのオリゴd(T)25マーでプライムした1μgのH
ela mRNAを使用してcDNA中に取り込んだ。しかし、AMV RTお
よびThermoScriptTM反応については、0.5μgのオリゴd(T)
25マーを、1μgのHela mRNAをプライムするために使用した。この
混合物を、70℃で10分間加熱し、次いで10分間氷上に移した。反応条件を
、逆転写酵素間で変化した。SuperScriptIITM反応の緩衝液は、5
0mMのTris−HCl(pH8.3)、75mMのKCl、3mMのMgC
l2、10mMのDTT、1μCiのP32α−dCTP、500μMのdNTP
、および100μMの蛍光dUTPを含んだ。ThermoScriptTM反応
の緩衝液は、50mMのTris−HCl(pH8.4)、75mMのKCl、
7.5mMのMgCl2、10mMのDTT、2μCiのP32α−dCTP、1
mMのdNTP、および200μMの蛍光dUTPを含んだ。AMV RT反応
の緩衝液は、100mMのTris−HCl(pH8.3)、100mMのKC
l、10mMのMgCl2、10mMのDTT、0.5μCiのP32α−dCT
P、250μMのdNTP、および100μMの蛍光dUTPを含んだ。反応緩
衝液を、Hela mRNAおよびオリゴd(T)25マーの混合物に対して添
加した。200ユニットのSuperScript IITM、15ユニットのT
hermo ScriptTM、または7.5ユニットのAMV RTを、この反
応において使用した。次いで、この反応物を、RTの最適な反応温度(Supe
rScriptTMIIについては45℃、Thermo ScriptTMについ
ては55℃、そしてAMV RTについては42℃)で1時間、インキュベート
した。2μlの反応混合物をピペッティングし、そして最終50μlの20mM
のEDTA溶液中で5μgの酵母のtRNAと混合した。このEDTA溶液を、
第1鎖のcDNAの収量の計算に使用した。
【0053】
(TCA沈降および第1鎖のcDNA合成の収量の計算)
二連の10μlのサンプル(20mMのEDTA溶液から)を、ガラスファイ
バーフィルター上にスポットし、そして15分間熱ランプ上で乾燥した。1セッ
トのフィルターを、氷冷した10%(w/v)のTCA溶液で1回、そして5%
のTCA溶液(10分、予備洗浄)で2回、室温で洗浄した。洗浄後、フィルタ
ーを、95%のエタノールで5分間洗浄し、次いで熱ランプ上で乾燥した。洗浄
したフィルターおよび洗浄していないフィルターを、反応物中のP32の量、およ
び取り込まれたP32の量を決定するために、標準的なシンチレーション(sci
ntillant)において計数した。第1鎖の合成の収量の計算のために使用
した式は以下のとおりである:
バーフィルター上にスポットし、そして15分間熱ランプ上で乾燥した。1セッ
トのフィルターを、氷冷した10%(w/v)のTCA溶液で1回、そして5%
のTCA溶液(10分、予備洗浄)で2回、室温で洗浄した。洗浄後、フィルタ
ーを、95%のエタノールで5分間洗浄し、次いで熱ランプ上で乾燥した。洗浄
したフィルターおよび洗浄していないフィルターを、反応物中のP32の量、およ
び取り込まれたP32の量を決定するために、標準的なシンチレーション(sci
ntillant)において計数した。第1鎖の合成の収量の計算のために使用
した式は以下のとおりである:
【0054】
【数1】
(蛍光ヌクレオチドの取り込みの吸光度)
2〜4μlの第1鎖の反応混合物を取っておき、これを、「標準」として使用
し、そして残りの16〜18μlの第1鎖の反応混合物を、2分の1の容量のN
H4Ac、および2.5倍の容量のエタノール、およびキャリアとしての5μg
の酵母のtRNAを用いて、沈殿した。沈殿後、ペレットを、バックグラウンド
の蛍光を下げるために70%のエタノールで2回洗浄した。沈殿物を、50mM
のTris緩衝液(pH7.5)中に再懸濁し、そして蛍光ヌクレオチドの取り
込みを決定した。「標準」を、50mMのTris緩衝液中に稀釈し、そして吸
光度を決定した。Cy3−dUTPおよびR110−dUTPについての励起ス
ペクトルは、550nmおよび503nmである。発光スペクトルの範囲は、C
y3−dUTPについては560〜600nmであり、そしてR110−dUT
Pについては508〜560nmである。「標準」とエタノールで沈殿したサン
プルとの間の差異が、蛍光ヌクレオチドの取り込みである。
し、そして残りの16〜18μlの第1鎖の反応混合物を、2分の1の容量のN
H4Ac、および2.5倍の容量のエタノール、およびキャリアとしての5μg
の酵母のtRNAを用いて、沈殿した。沈殿後、ペレットを、バックグラウンド
の蛍光を下げるために70%のエタノールで2回洗浄した。沈殿物を、50mM
のTris緩衝液(pH7.5)中に再懸濁し、そして蛍光ヌクレオチドの取り
込みを決定した。「標準」を、50mMのTris緩衝液中に稀釈し、そして吸
光度を決定した。Cy3−dUTPおよびR110−dUTPについての励起ス
ペクトルは、550nmおよび503nmである。発光スペクトルの範囲は、C
y3−dUTPについては560〜600nmであり、そしてR110−dUT
Pについては508〜560nmである。「標準」とエタノールで沈殿したサン
プルとの間の差異が、蛍光ヌクレオチドの取り込みである。
【0055】
(Cy3−dUTP/HeLa mRNAを用いた、SS II、TS Iか
らのパーセント取り込みサンプルの計算) (A.標準曲線。これは、200μMのCy3−dUTPを含有している標準
的なサンプルの段階稀釈である。)
らのパーセント取り込みサンプルの計算) (A.標準曲線。これは、200μMのCy3−dUTPを含有している標準
的なサンプルの段階稀釈である。)
【0056】
【表1】
(B.Cy3−dUTP/Hela mRNAを用いたSS IIのサンプル
) 沈殿していない反応サンプルは、100pモル/μlのCy3−dUTPを含
んだ。これは、1μl中の100μMのCy3−dUTPの濃度から計算した。
) 沈殿していない反応サンプルは、100pモル/μlのCy3−dUTPを含
んだ。これは、1μl中の100μMのCy3−dUTPの濃度から計算した。
【0057】
沈殿した反応サンプル(14μlの全量)(これは、Cy3−dUTPを取り
込んだcDNAを含んだ)を、発光において測定した(14μl)。光学単位を
、標準曲線によってnMに転換する。
込んだcDNAを含んだ)を、発光において測定した(14μl)。光学単位を
、標準曲線によってnMに転換する。
【0058】
14μlのSS IIw/Cy3−dUTP(反応物中の100μM)
=97,347光学単位
=13nM(2mlの容量中)
pモルの転換:13nM×(2/1000リットル)
=26pモル(14μl中)
=1.86pモル/μl
1.86/100=1.86%(取り込み)
(C.Cy3−dUTP/Hela mRNAを用いたTS Iのサンプル)
沈殿していない反応サンプルは、200pモル/μlのCy3−dUTPを含
んだ。
んだ。
【0059】
沈殿した反応サンプル(2μl)を、発光において測定した。
【0060】
2μlのTSIw/Cy3−dUTP(反応物中の200μM)
=282,729光学単位
=34nM(2mlの容量中)
pモルの転換:34nM×(2/1000リットル)
=68pモル(2μl中)
=34pモル/μl
34/200=17%(取り込み)
2.3KbのコントロールRNAおよびMAP4 RNA(5.0Kb)にお
けるCy3−dUTPの取り込みにおける、SuperScriptTMII(S
S II)およびThermoScriptTM(TS I)の比較
けるCy3−dUTPの取り込みにおける、SuperScriptTMII(S
S II)およびThermoScriptTM(TS I)の比較
【0061】
【表2】
注:正常なdNTPを用いたcDNA合成の収率は、SS IIについては2
8.8%であり、そしてTS Iについては33.3%である。
8.8%であり、そしてTS Iについては33.3%である。
【0062】
HeLa m−RNA中におけるCy3−dUTPおよびRh110−dUT
Pの取り込みにおけるSS II、TS I、ThermoScriptTMII
(TS 2)およびAMV RTの比較
Pの取り込みにおけるSS II、TS I、ThermoScriptTMII
(TS 2)およびAMV RTの比較
【0063】
【表3】
注:正常なdNTPを用いたcDNA合成の収率は、SS IIについては3
0.7%であり、TS Iについては26.1%であり、TS IIについては
26.9%であり、そしてAMV RTについては22.1%である。
0.7%であり、TS Iについては26.1%であり、TS IIについては
26.9%であり、そしてAMV RTについては22.1%である。
【0064】
ところで、本発明を、いくらか詳細に理解の明確化の目的のために例示および
実施例によって完全に記載してきたが、これらが、本発明の範囲または本発明の
任意の特定の実施形態に影響を与えることなく、条件、処方、および他のパラメ
ーターの幅および等価な範囲内で本発明を改変または変更することによって実施
され得ること、そして、そのような改変または変更が、添付の特許請求の範囲の
範囲内に含まれることが意図されることは、当業者に明らかである。
実施例によって完全に記載してきたが、これらが、本発明の範囲または本発明の
任意の特定の実施形態に影響を与えることなく、条件、処方、および他のパラメ
ーターの幅および等価な範囲内で本発明を改変または変更することによって実施
され得ること、そして、そのような改変または変更が、添付の特許請求の範囲の
範囲内に含まれることが意図されることは、当業者に明らかである。
【0065】
本明細書中に記載されている全ての刊行物、特許、および特許出願が、本発明
が属する当業者のレベルを示し、そして各個々の刊行物、特許、または特許出願
が特異的にそして個々に参考として援用されているように、同じ程度で参考とし
て本明細書中で援用されている。
が属する当業者のレベルを示し、そして各個々の刊行物、特許、または特許出願
が特異的にそして個々に参考として援用されているように、同じ程度で参考とし
て本明細書中で援用されている。
─────────────────────────────────────────────────────
フロントページの続き
(81)指定国 EP(AT,BE,CH,CY,
DE,DK,ES,FI,FR,GB,GR,IE,I
T,LU,MC,NL,PT,SE),OA(BF,BJ
,CF,CG,CI,CM,GA,GN,GW,ML,
MR,NE,SN,TD,TG),AP(GH,GM,K
E,LS,MW,MZ,SD,SL,SZ,TZ,UG
,ZW),EA(AM,AZ,BY,KG,KZ,MD,
RU,TJ,TM),AE,AG,AL,AM,AT,
AU,AZ,BA,BB,BG,BR,BY,CA,C
H,CN,CR,CU,CZ,DE,DK,DM,DZ
,EE,ES,FI,GB,GD,GE,GH,GM,
HR,HU,ID,IL,IN,IS,JP,KE,K
G,KP,KR,KZ,LC,LK,LR,LS,LT
,LU,LV,MA,MD,MG,MK,MN,MW,
MX,MZ,NO,NZ,PL,PT,RO,RU,S
D,SE,SG,SI,SK,SL,TJ,TM,TR
,TT,TZ,UA,UG,UZ,VN,YU,ZA,
ZW
Fターム(参考) 4B024 AA11 CA04 CA09 CA12 HA08
HA14
4B063 QA01 QA18 QQ42 QQ52 QR08
QR20 QR36 QR56 QR62 QR66
QS25 QS34 QX02
Claims (23)
- 【請求項1】 1つ以上の核酸分子を標識することにおける使用のための、
組成物であって、該組成物が、逆転写酵素活性を有している1つ以上の酵素を含
有しており、ここで、該酵素が多サブユニット酵素である、組成物。 - 【請求項2】 前記酵素がヘテロニ量体である、請求項1に記載の組成物。
- 【請求項3】 前記酵素が、ASLV逆転写酵素からなる群より選択される
、請求項1に記載の組成物。 - 【請求項4】 前記酵素が、RNaseH活性が減少しているか、またはそ
れが実質的に減少している、請求項1に記載の組成物。 - 【請求項5】 前記酵素が、RSV逆転写酵素、AMV逆転写酵素、RAV
逆転写酵素、MAV逆転写酵素、およびHIV逆転写酵素、ならびにそれらの誘
導体、改変体、フラグメント、または変異体からなる群より選択される、請求項
1に記載の組成物。 - 【請求項6】 前記組成物がさらに、1つ以上の蛍光標識されたヌクレオチ
ドを含む、請求項1に記載の組成物。 - 【請求項7】 前記ヌクレオチドが、ローダミン、フルオレセイン、Cy3
、およびCy5からなる群より選択される蛍光分子またはマーカーで標識される
、請求項6に記載の組成物。 - 【請求項8】 前記組成物がさらに、1つ以上のDNAポリメラーゼ、なら
びにその変異体、フラグメント、改変体、および誘導体を含む、請求項1に記載
の組成物。 - 【請求項9】 前記組成物がさらに、逆転写緩衝液および/または核酸鋳型
を含む、請求項1に記載の組成物。 - 【請求項10】 1つ以上の核酸分子を逆転写するための方法であって、該
方法は、以下の工程: (a)1つ以上の核酸鋳型を、逆転写酵素活性を有している1つ以上の酵素と
混合する工程であって、ここで、該酵素が多サブユニット酵素である、工程;お
よび (b)該混合物を、該1つ以上の鋳型の全てまたは一部に対して相補的である
1つ以上の第1の核酸分子を作製するのに十分な条件下でインキュベートする工
程であって、ここで、該第1の核酸分子の少なくとも1つが、検出可能に標識さ
れる、工程、 を包含する、方法。 - 【請求項11】 前記核酸鋳型が、メッセンジャーRNA(mRNA)分子
またはmRNA分子の集団である、請求項10に記載の方法。 - 【請求項12】 前記1つ以上の第1の核酸分子を、該1つ以上の第1の核
酸分子の全てまたは一部に対して相補的である1つ以上の第2の核酸分子を作製
するのに十分な条件下で、インキュベートする工程をさらに包含する、請求項1
0に記載の方法。 - 【請求項13】 前記酵素が、ASLV逆転写酵素からなる群より選択され
る、請求項10に記載の方法。 - 【請求項14】 前記酵素が、RSV、RT、AMV、RT、Thermo
ScriptTM、およびThermoScriptTMIIからなる群より選択さ
れる、請求項10に記載の方法。 - 【請求項15】 前記検出可能な標識が蛍光標識である、請求項10に記載
の方法。 - 【請求項16】 前記蛍光標識が、フルオレセイン、ローダミン、Cy3、
およびCy5からなる群より選択される、請求項10に記載の方法。 - 【請求項17】 前記検出可能に標識された第1の核酸分子が、1つ以上の
蛍光標識されたヌクレオチドを含む、請求項10に記載の方法。 - 【請求項18】 前記検出可能な標識が同じであるかまたは異なる、請求項
10に記載の方法。 - 【請求項19】 前記検出可能な標識が蛍光標識である、請求項18に記載
の方法。 - 【請求項20】 請求項10に記載の方法に従って調製された、標識された
核酸分子。 - 【請求項21】 1つ以上の核酸分子を標識することにおける使用のための
キットであって、該キットが、逆転写酵素活性を有している1つ以上の酵素を含
有しており、ここで、該酵素が多サブユニット酵素である、キット。 - 【請求項22】 1つ以上のヌクレオチド、1つ以上のDNAポリメラーゼ
、適切な緩衝液、および1つ以上のプライマーからなる群より選択される1つ以
上の成分をさらに含有している、請求項21に記載のキット。 - 【請求項23】 少なくとも1つのヌクレオチドまたは前記ヌクレオチドが
、蛍光ヌクレオチドである、請求項22に記載のキット。
Applications Claiming Priority (3)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US13542599P | 1999-05-21 | 1999-05-21 | |
US60/135,425 | 1999-05-21 | ||
PCT/US2000/013744 WO2000071757A1 (en) | 1999-05-21 | 2000-05-19 | Compositions and methods for labeling of nucleic acid molecules |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JP2003500070A true JP2003500070A (ja) | 2003-01-07 |
Family
ID=22468052
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP2000620134A Withdrawn JP2003500070A (ja) | 1999-05-21 | 2000-05-19 | 核酸分子を標識するための組成物および方法 |
Country Status (7)
Country | Link |
---|---|
US (7) | US6589737B1 (ja) |
EP (1) | EP1185711A4 (ja) |
JP (1) | JP2003500070A (ja) |
AU (1) | AU776129B2 (ja) |
CA (1) | CA2374515A1 (ja) |
NZ (1) | NZ515673A (ja) |
WO (1) | WO2000071757A1 (ja) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2005185183A (ja) * | 2003-12-25 | 2005-07-14 | Canon Inc | 核酸標識方法及び液組成物 |
Families Citing this family (24)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2003062783A2 (en) * | 2001-07-20 | 2003-07-31 | North Carolina State University | Light addressable electrochemical detection of duplex structures |
US20070020622A1 (en) * | 2001-09-14 | 2007-01-25 | Invitrogen Corporation | DNA Polymerases and mutants thereof |
US20040023220A1 (en) * | 2002-07-23 | 2004-02-05 | Lawrence Greenfield | Integrated method for PCR cleanup and oligonucleotide removal |
US20040152072A1 (en) * | 2002-07-30 | 2004-08-05 | Invitrogen Corporation | Reverse transcription |
US20040180369A1 (en) * | 2003-01-16 | 2004-09-16 | North Carolina State University | Photothermal detection of nucleic acid hybridization |
DE10342373A1 (de) * | 2003-09-14 | 2005-04-07 | Noxxon Pharma Ag | Verfahren zur Synthese von Nukleinsäuren und deren Anwendung |
WO2005042785A1 (en) * | 2003-10-30 | 2005-05-12 | North Carolina State University | Electrochemical detection of nucleic acid hybridization |
US20050191651A1 (en) * | 2003-10-30 | 2005-09-01 | North Carolina State University | Temperature-jump enhanced electrochemical detection of nucleic acid hybridization |
WO2005097817A2 (en) | 2004-04-05 | 2005-10-20 | Alnylam Pharmaceuticals, Inc. | Process and reagents for oligonucleotide synthesis and purification |
EP1768998A2 (en) | 2004-04-27 | 2007-04-04 | Alnylam Pharmaceuticals Inc. | Single-stranded and double-stranded oligonucleotides comprising a 2-arylpropyl moiety |
EP3034510A1 (en) | 2004-04-30 | 2016-06-22 | Alnylam Pharmaceuticals Inc. | Oligonucleotides comprising a c5-modified pyrimidine |
CA2572151A1 (en) | 2004-06-30 | 2006-08-24 | Alnylam Pharmaceuticals, Inc. | Oligonucleotides comprising a non-phosphate backbone linkage |
WO2006093526A2 (en) | 2004-07-21 | 2006-09-08 | Alnylam Pharmaceuticals, Inc. | Oligonucleotides comprising a modified or non-natural nucleobase |
EP1913011B1 (en) | 2004-08-04 | 2016-11-02 | Alnylam Pharmaceuticals Inc. | Oligonucleotides comprising a ligand tethered to a modified or non-natural nucleobase |
US7541144B2 (en) * | 2005-01-31 | 2009-06-02 | Agilent Technologies, Inc. | RNA labeling method |
WO2006116010A2 (en) * | 2005-04-21 | 2006-11-02 | Advandx, Inc. | Detection of virulence markers of staphylococci |
US8076064B2 (en) | 2005-07-09 | 2011-12-13 | Agilent Technologies, Inc. | Method of treatment of RNA sample |
US7718365B2 (en) * | 2005-07-09 | 2010-05-18 | Agilent Technologies, Inc. | Microarray analysis of RNA |
US7544471B2 (en) * | 2005-07-30 | 2009-06-09 | Agilent Technologies, Inc. | Preparing RNA from a wax-embedded tissue specimen |
US7700289B2 (en) * | 2006-04-03 | 2010-04-20 | Agilent Technologies, Inc. | Method for labeling RNA |
JP5616066B2 (ja) * | 2006-12-08 | 2014-10-29 | プロラクタ バイオサイエンス,インコーポレイテッド | ヒト脂質組成物ならびにその製造および使用方法 |
WO2010091142A1 (en) | 2009-02-04 | 2010-08-12 | President And Fellows Of Harvard College | Compositions and methods for labeling and imaging phospholipids |
KR101818126B1 (ko) | 2011-02-09 | 2018-01-15 | (주)바이오니아 | 열안정성이 증가된 역전사효소 |
WO2022020259A1 (en) * | 2020-07-19 | 2022-01-27 | Centrillion Technologies, Inc. | Methods and devices for detecting and sequencing sars-cov-2 |
Family Cites Families (45)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4663290A (en) | 1982-01-21 | 1987-05-05 | Molecular Genetics, Inc. | Production of reverse transcriptase |
US4828979A (en) | 1984-11-08 | 1989-05-09 | Life Technologies, Inc. | Nucleotide analogs for nucleic acid labeling and detection |
US4683195A (en) | 1986-01-30 | 1987-07-28 | Cetus Corporation | Process for amplifying, detecting, and/or-cloning nucleic acid sequences |
US4683202A (en) | 1985-03-28 | 1987-07-28 | Cetus Corporation | Process for amplifying nucleic acid sequences |
US5244797B1 (en) | 1988-01-13 | 1998-08-25 | Life Technologies Inc | Cloned genes encoding reverse transcriptase lacking rnase h activity |
CA1340807C (en) | 1988-02-24 | 1999-11-02 | Lawrence T. Malek | Nucleic acid amplification process |
US5700637A (en) | 1988-05-03 | 1997-12-23 | Isis Innovation Limited | Apparatus and method for analyzing polynucleotide sequences and method of generating oligonucleotide arrays |
GB8822228D0 (en) | 1988-09-21 | 1988-10-26 | Southern E M | Support-bound oligonucleotides |
US5800992A (en) | 1989-06-07 | 1998-09-01 | Fodor; Stephen P.A. | Method of detecting nucleic acids |
US5744101A (en) | 1989-06-07 | 1998-04-28 | Affymax Technologies N.V. | Photolabile nucleoside protecting groups |
US5143854A (en) | 1989-06-07 | 1992-09-01 | Affymax Technologies N.V. | Large scale photolithographic solid phase synthesis of polypeptides and receptor binding screening thereof |
DE69131321T2 (de) | 1990-09-28 | 1999-12-16 | F. Hoffmann-La Roche Ag, Basel | Mutationen in der 5'-3'-exonukleaseaktivität thermostabiler dna-polymerasen |
AU8906091A (en) | 1990-10-05 | 1992-04-28 | Wayne M. Barnes | Thermostable dna polymerase |
JP3011987B2 (ja) | 1990-10-11 | 2000-02-21 | 旭化成工業株式会社 | 固相化プライマーを用いる逆転写酵素の測定法 |
US5455166A (en) | 1991-01-31 | 1995-10-03 | Becton, Dickinson And Company | Strand displacement amplification |
US5229283A (en) | 1991-06-14 | 1993-07-20 | Life Technologies, Inc. | Use of exo-sample nucleotides in gene cloning |
US5137814A (en) | 1991-06-14 | 1992-08-11 | Life Technologies, Inc. | Use of exo-sample nucleotides in gene cloning |
US5436149A (en) | 1993-02-19 | 1995-07-25 | Barnes; Wayne M. | Thermostable DNA polymerase with enhanced thermostability and enhanced length and efficiency of primer extension |
US5837832A (en) | 1993-06-25 | 1998-11-17 | Affymetrix, Inc. | Arrays of nucleic acid probes on biological chips |
US5512462A (en) | 1994-02-25 | 1996-04-30 | Hoffmann-La Roche Inc. | Methods and reagents for the polymerase chain reaction amplification of long DNA sequences |
US5648211A (en) | 1994-04-18 | 1997-07-15 | Becton, Dickinson And Company | Strand displacement amplification using thermophilic enzymes |
US5807522A (en) | 1994-06-17 | 1998-09-15 | The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University | Methods for fabricating microarrays of biological samples |
US5512431A (en) | 1994-06-29 | 1996-04-30 | Darwin Molecular Corporation | Methods of screening for nucleoside analogs that are incorporated by HIV reverse transcriptase and cause incorrect base pairing |
US5912155A (en) | 1994-09-30 | 1999-06-15 | Life Technologies, Inc. | Cloned DNA polymerases from Thermotoga neapolitana |
US6015668A (en) | 1994-09-30 | 2000-01-18 | Life Technologies, Inc. | Cloned DNA polymerases from thermotoga and mutants thereof |
US5948614A (en) | 1995-09-08 | 1999-09-07 | Life Technologies, Inc. | Cloned DNA polymerases from thermotoga maritima and mutants thereof |
US20030027296A1 (en) | 1995-09-08 | 2003-02-06 | Deb K. Chatterjee | Cloned dna polymerases from thermotoga maritima and mutants thereof |
US6072043A (en) * | 1996-06-04 | 2000-06-06 | Polyprobe, Inc. | Optimally fluorescent oligonucleotides |
EP2264045B1 (en) | 1996-08-14 | 2015-10-21 | Life Technologies Corporation | Stable compositions for nucleic acid amplification and sequencing |
EP1007730A4 (en) | 1996-08-30 | 2004-04-28 | Invitrogen Corp | METHODS OF IDENTIFYING AND ISOLATING SPECIFIC NUCLEOTIDE SEQUENCES IN cDNA AND GENOMIC DNA |
AU7100198A (en) | 1997-04-03 | 1998-10-22 | Life Technologies, Inc. | Compositions and methods for reverse transcriptase-polymerase chain reaction (rt-pcr) |
ATE445630T1 (de) | 1997-04-22 | 2009-10-15 | Life Technologies Corp | Verfahren zur herstellung von aslv reverser transkriptase zusammengestellt aus mehreren untereinheiten |
WO1998053103A1 (en) * | 1997-05-21 | 1998-11-26 | Clontech Laboratories, Inc. | Nucleic acid arrays |
US5994076A (en) | 1997-05-21 | 1999-11-30 | Clontech Laboratories, Inc. | Methods of assaying differential expression |
US6140086A (en) | 1997-08-15 | 2000-10-31 | Fox; Donna K. | Methods and compositions for cloning nucleic acid molecules |
US6064038A (en) * | 1998-08-12 | 2000-05-16 | Welcome Company, Ltd. | Hand-held electric sealer with detachable heat resistant cover sheet |
US6399334B1 (en) | 1997-09-24 | 2002-06-04 | Invitrogen Corporation | Normalized nucleic acid libraries and methods of production thereof |
US6511803B1 (en) * | 1997-10-10 | 2003-01-28 | President And Fellows Of Harvard College | Replica amplification of nucleic acid arrays |
US6787305B1 (en) * | 1998-03-13 | 2004-09-07 | Invitrogen Corporation | Compositions and methods for enhanced synthesis of nucleic acid molecules |
US7074556B2 (en) | 1999-03-02 | 2006-07-11 | Invitrogen Corporation | cDNA synthesis improvements |
US6630333B1 (en) * | 1999-03-23 | 2003-10-07 | Invitrogen Corporation | Substantially pure reverse transriptases and methods of production thereof |
EP1185544B1 (en) | 1999-05-24 | 2008-11-26 | Invitrogen Corporation | Method for deblocking of labeled oligonucleotides |
US6830902B1 (en) * | 1999-07-02 | 2004-12-14 | Invitrogen Corporation | Compositions and methods for enhanced sensitivity and specificity of nucleic acid synthesis |
NZ520908A (en) | 2000-03-15 | 2005-02-25 | Invitrogen Corp | High fidelity reverse transcriptases and uses thereof |
US7078208B2 (en) | 2000-05-26 | 2006-07-18 | Invitrogen Corporation | Thermostable reverse transcriptases and uses thereof |
-
2000
- 2000-05-19 CA CA002374515A patent/CA2374515A1/en not_active Abandoned
- 2000-05-19 WO PCT/US2000/013744 patent/WO2000071757A1/en not_active Application Discontinuation
- 2000-05-19 US US09/574,111 patent/US6589737B1/en not_active Expired - Lifetime
- 2000-05-19 EP EP00932596A patent/EP1185711A4/en not_active Ceased
- 2000-05-19 NZ NZ515673A patent/NZ515673A/xx unknown
- 2000-05-19 AU AU50294/00A patent/AU776129B2/en not_active Ceased
- 2000-05-19 JP JP2000620134A patent/JP2003500070A/ja not_active Withdrawn
-
2003
- 2003-04-03 US US10/405,608 patent/US7037661B2/en not_active Expired - Lifetime
-
2006
- 2006-01-12 US US11/330,358 patent/US20060127936A1/en not_active Abandoned
-
2007
- 2007-05-01 US US11/743,083 patent/US20070202529A1/en not_active Abandoned
-
2008
- 2008-04-29 US US12/111,834 patent/US20080227107A1/en not_active Abandoned
-
2009
- 2009-03-16 US US12/405,127 patent/US20090176242A1/en not_active Abandoned
- 2009-12-30 US US12/649,662 patent/US20100168408A1/en not_active Abandoned
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2005185183A (ja) * | 2003-12-25 | 2005-07-14 | Canon Inc | 核酸標識方法及び液組成物 |
JP4508632B2 (ja) * | 2003-12-25 | 2010-07-21 | キヤノン株式会社 | 核酸検出方法及び液組成物 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
EP1185711A4 (en) | 2002-09-18 |
AU5029400A (en) | 2000-12-12 |
US20080227107A1 (en) | 2008-09-18 |
EP1185711A1 (en) | 2002-03-13 |
US20100168408A1 (en) | 2010-07-01 |
NZ515673A (en) | 2004-03-26 |
US20090176242A1 (en) | 2009-07-09 |
US20070202529A1 (en) | 2007-08-30 |
WO2000071757A1 (en) | 2000-11-30 |
US6589737B1 (en) | 2003-07-08 |
US20030190661A1 (en) | 2003-10-09 |
CA2374515A1 (en) | 2000-11-30 |
US20060127936A1 (en) | 2006-06-15 |
AU776129B2 (en) | 2004-08-26 |
US7037661B2 (en) | 2006-05-02 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US20070202529A1 (en) | Compositions and methods for labeling of nucleic acid molecules | |
JP4493330B2 (ja) | 核酸を増幅するため、核酸配列のための終結後標識プロセス、および減少した熱力学安定性を有する核酸を生成するための新規の方法 | |
JP6382189B2 (ja) | Rnaテンプレートから開始する等温dna増幅用のキット | |
US9376698B2 (en) | Mutant DNA polymerases | |
EP2521795B1 (en) | Materials and methods for isothermal nucleic acid amplification | |
US7514212B2 (en) | Nucleic acid amplification using non-standard bases | |
KR102293402B1 (ko) | 회전환 증폭을 이용한 표적핵산 검출 방법 및 표적핵산 검출용 조성물 | |
US20180371008A1 (en) | Methods of synthesizing and labeling nucleic acid molecules | |
US20100035303A1 (en) | Method of Amplifying Target Nucleic Acid Sequence By Multiple Displacement Amplification Including Thermal Cycling | |
US20140004509A1 (en) | Kit for isothermal dna amplification starting from an rna template | |
US20020064837A1 (en) | Method for synthesizing a nucleic acid molecule using a ribonuclease | |
US9777319B2 (en) | Method for isothermal DNA amplification starting from an RNA template |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
A300 | Application deemed to be withdrawn because no request for examination was validly filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A300 Effective date: 20070807 |