JP2003275300A - 血液浄化用再生セルロース中空糸膜、その製造方法および血液浄化器 - Google Patents
血液浄化用再生セルロース中空糸膜、その製造方法および血液浄化器Info
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Abstract
つ血液浄化用再生セルロース系中空糸膜を提供する。 【解決手段】緻密層と多孔層とが連続してなる膜断面構
造を有する再生セルロース中空糸膜であって、該膜断面
において該中空糸膜の膜内壁側から膜内部中央にかけて
ある緻密層が、下記(A)〜(E)を同時に満たす均質
構造であることを特徴とする血液浄化用再生セルロース
中空糸膜。 (A)緻密層厚が全膜厚の20〜60%、(B)緻密層
の数平均孔径が10〜50nm、(C)緻密層の最大孔
径が50〜150nm、(D)緻密層内の数平均孔径変
化率が±10%未満、かつ(E)緻密層内の最大孔径変
化率が±30%未満。
Description
いる血液浄化用再生セルロース中空糸膜、その製造方法
および血液浄化器に関する。さらに詳しくは、緻密層と
多孔層とが連続してなる膜断面構造を有する、高い透水
性能と優れた分画分子量特性を有する血液浄化用再生セ
ルロース中空糸膜、その製造方法および血液浄化器に関
する。
液中から所定量の除水をするとともに、尿素等の低分子
量物質、分子量が100から5,000の尿毒性中分子
量物質およびβ2−ミクログロブリン(分子量11,8
00)に代表される低分子量タンパク質等の不要物質を
効率的に除去し、かつ生体にとって有用な低分子量タン
パク質であるアルブミン(分子量66,000)は極力
除去しないことである。そのため、血液透析療法に用い
られる、血液透析や血液透析ろ過を行うダイアライザー
(血液透析器)には、透水性能と分画分子量特性が上記
の要求に応えるように設計された中空糸膜が使用されて
いる。
せ持つ中空糸膜としては、ポリスルホン/ポリビニルピ
ロリドン、ポリメチルメタクリレート等の合成ポリマー
系、セルローストリアセテート、セルロースジアセテー
ト等のセルロース誘導体等の半合成ポリマー系中空糸膜
が挙げられる。これら中空糸膜は、乾湿式紡糸法、いわ
ゆる溶媒相転換法を利用して製造される。
二重管状紡糸口金の管状スリットより吐出させ、同時に
ポリマーの非溶媒を含む凝固溶液(芯剤)を同口金中心
部より吐出し、内部が芯剤、外部がポリマー溶液である
吐出糸状物において、芯剤とポリマー溶液とが接する部
分を凝固させつつ(中空糸膜の膜内壁部近傍となる固体
構造を形成しつつ)、糸状物全体をポリマーの非溶媒を
含む凝固浴に誘導し凝固させて(中空糸膜の膜内壁側、
膜外壁部からぞれぞれ膜内部の方向へ固体構造を形成さ
せて)得られるものである。例えば、ポリスルホン/ポ
リビニルピロリドン中空糸膜は、膜厚が30〜50μ
m、膜内壁側に厚みが数十nmのスキン層(緻密層)
と、そのスキン層に連続して膜外壁側にかけてある支持
層(多孔層)とからなる膜断面構造、いわゆる非対称構
造を有している。中空糸内控に血液を循環させることか
ら、スキン層が主として血液中の除去物質の分離に係わ
る層であり、透水性能と分画分子量特性はその構造に大
きく依存する。よって、これまでの膜製造条件の改良に
より、高度に膜構造制御技術が進歩し、現在、高性能な
合成ポリマー系、半合成ポリマー系中空糸膜が提供され
て良好な臨床成績を納め、信頼性の高い中空糸膜として
広く使用されている。
然ポリマーからなる中空糸膜、いわゆる再生セルロース
系中空糸膜は、血液浄化用中空糸膜としては初めて産業
化されたもので、これまでの長期にわたる臨床実績は多
い。しかしながら、血液透析療法の進歩とともに、除去
対象物質は、当初、主として尿素等の低分子量物質であ
ったが、近年、β2−ミクログロブリン(分子量11,
800)に代表される中分子量物質までの領域に広がっ
てきており、膜厚全体に渡って均質で密な構造を有す
る、従来の再生セルロース系中空糸膜の物質除去性能
(透水性能と分画分子量特性)では、十分な臨床効果を
得ることが困難になりつつある。
除去性能を向上させるため、従来のものと比較して薄膜
のもの、およびその製造方法が提案されている(特開昭
55−90614号公報)。具体的には、従来は膜厚が
15〜25μmであったものを8μm以下と薄膜化する
ことにより、見かけの物質透過速度を向上させ得る薄膜
タイプの中空空糸膜、および薄膜化技術の提案である。
しかしながら、薄膜化により物質除去性能は向上するも
のの、血液浄化用中空糸膜として実用に耐え得る機械的
強度を有するものが得られない。
て、紡糸溶液組成を含む凝固条件を好適に設定して、従
来のものと比較して大孔径化した再生セルロース系中空
糸膜、およびその製造方法が幾つか提案されている。
溶液)の組成を見出したものが挙げられる(特開平2−
187133号公報および特開平4−11008号公
報)。また、凝固工程において、従来からの水酸化ナト
リウム水溶液を使用したノルマン化凝固ではなく、凝固
剤として硫酸または硫酸アンモニウムを使用した凝固を
採用したものが挙げられる(特開平2−135130号
公報)。
膜構造制御技術の著しい進歩により、再生セルロース系
中空糸膜の物質除去性能は、合成ポリマー系および半合
成ポリマー系中空糸膜のそれに近づいては来ているもの
の、未だ十分な高い透水性能と優れた分画分子量特性を
併せ持つ血液浄化用再生セルロース中空糸膜は得られて
いない。また、上記性能を有しかつ水系の透水速度に対
する牛血系の透水速度の比率が高い目詰まりの少ない中
空糸膜は得られていない。
能と優れた分子量分画特性をともに有する血液浄化用再
生セルロース中空糸膜および紡糸安定性を有するその製
造方法を提供することであり、詳しくは、緻密層と多孔
層とが連続してなる膜断面構造を有する再生セルロース
中空糸膜であって、膜断面において該中空糸膜の膜内壁
側から膜内部中央にかけてある緻密層が均質構造である
血液浄化用再生セルロース中空糸膜、その製造方法およ
び血液浄化器を提供することにある。
に述べられていないその他の目的は、下記の本発明によ
り達成される。
断面構造を有する再生セルロース中空糸膜であって、該
膜断面において該中空糸膜の膜内壁側から膜内部中央に
かけてある緻密層が、下記(A)〜(E)を同時に満た
す均質構造であることを特徴とする血液浄化用再生セル
ロース中空糸膜。
ある、(B)緻密層の数平均孔径が10〜50nmであ
る、(C)緻密層の最大孔径が50〜150nmであ
る、(D)緻密層内の数平均孔径変化率が±10%未満
であり、かつ(E)緻密層内の最大孔径変化率が±30
%未満である。
内部中央から膜外壁側にかけてあることを特徴とする前
記(1)に記載の血液浄化用再生セルロース中空糸膜。
りの透水速度が20〜100ml/(m2・hr・mm
Hg)であることを特徴とする前記(1)または(2)
に記載の血液浄化用再生セルロース中空糸膜。
ンスが、15〜30ml/minであることを特徴とす
る前記(1)ないし(3)のいずれか一つに記載の血液
浄化用再生セルロース中空糸膜。
が、0.6以上であることを特徴とする前記(1)ない
し(4)のいずれか一つに記載の血液浄化用再生セルロ
ース中空糸膜。
の管状スリットより吐出し、同時に芯剤を該口金中心部
より吐出し、内部に芯剤と外部にセルロース溶液とから
なる糸状物を凝固浴に浸漬する凝固工程と、該凝固工程
より得られた糸状物を洗浄する洗浄工程と、湿潤状態の
該糸状物に孔径維持剤を添着する添着工程と、該孔径維
持剤が添着された該糸状物を加熱乾燥する乾燥工程と、
該糸状物内部にある芯剤を除去洗浄する除去洗浄工程を
有する再生セルロース中空糸膜の製造方法であって、該
凝固工程がアンモニウム塩を溶解してなる水溶液浴槽と
それに続く水浴層とに浸漬する工程であることを特徴と
する血液浄化用再生セルロース中空糸膜の製造方法。
0.1〜2.5秒間、該アンモニウム塩を溶解してなる
凝固浴中に浸漬されてなる前記(6)に記載の血液浄化
用再生セルロース中空糸膜の製造方法。
ニウムおよび塩化アンモニウムよりなる群から選ばれる
ことを特徴とする前記(6)または(7)に記載の血液
浄化用再生セルロース中空糸膜の製造方法。
溶液のアンモニウム塩濃度が、8〜30質量%であるこ
とを特徴とする前記(6)ないし(8)のいずれか一つ
に記載の血液浄化用再生セルロース中空糸膜の製造方
法。(10)前記(1)ないし(7)のいずれか一つに
記載の血液浄化用再生セルロース中空糸膜を用いた血液
浄化器。
0〜300μmである中空糸膜を有する血液浄化器であ
って、水を用いて測定した膜面積1m2当りの透水速度
が20ml/(hr・mmHg・m2)以上であり、水
を用いて測定した透水速度に対する牛血液を用いて測定
した透水速度の比が45%以上であることを特徴とする
血液浄化器。
ス中空糸膜は、緻密層と多孔層とが連続してなる膜断面
構造を有し、該膜断面において該中空糸膜の膜内壁側か
ら膜内部中央にかけてある緻密層が均質構造であるもの
である。
密層厚、緻密層の数平均孔径、緻密層の最大孔径、緻密
層内の数平均孔径変化率、緻密層内の最大孔径変化率か
らなる5つのパラメーターを同時に満たし得るものと規
定されるものである。
30〜55%であることが好ましい。すなわち、本発明
における好適な全膜厚は5〜50μm、好ましくは20
〜40μmであることから、好適な緻密層厚は1〜30
μm、より好ましくは10〜20μmである。緻密層厚
が全膜厚の20%未満では、中空糸の機械的強度が著し
く低下し、実用に耐えられないものとなってしまうため
不適である。また、それが60%を超えると、全膜厚に
緻密構造が占める割合が多く、目的の透水性能が得られ
ないため不適である。
うに、5000倍の透過電子顕微鏡写真において、マク
ロボイドを有さず、実質的に均質に見える部分とする。
特に25〜40nmであることが好ましい。数平均孔径
が10nm未満では、より透水性能が低下し、さらには
目的の分画分子量特性が得られないため不適である。ま
た、数平均孔径が50nmを超えると、透水性能は向上
するものの、目的の分画分子量特性が得られないため不
適である。
特に60〜90nmであることが好ましい。目的の分画
分子量特性を信頼性高く発現するために、予期しない設
計外である(偶発的に形成される)大きい孔径の孔が存
在することは好ましくない。よって、前記の通り、本発
明で好適な緻密層の数平均孔径は10〜50nmである
ことから、最大孔径が150nmより大きい孔が存在す
る場合は不適である。
未満、特に±5%未満であることが好ましい。さらに、
緻密層内の最大孔径変化率が±30%未満であることが
好ましい。再生セルロース中空糸膜の緻密層は、数十〜
百数十nmのセルロース粒子が凝集、融合して連続化し
た粒子構造を有する。主として物質透過に係わる部分で
ある孔は、前記セルロース粒子間隙であると考えられ
る。よって、目的の分画分子量特性を信頼性高く発現す
るためには、緻密層を形成するセルロース粒子の粒径分
布が少ない様態で、緻密層が均質構造であることが重要
である。つまり、該層内に存在する孔の孔径分布がより
少ないことが好ましい。ただし、膜断面において全膜厚
部領域を10等分割して、最膜内壁側分割部の数平均孔
径(r1/10)、最大孔径(r1max/10)を基準として、
緻密層内での別の各分割部(n=2〜10)の数平均孔
径(rn/10)、最大孔径(rnmax/10)のそれぞれにつ
いて、緻密層内の各分割部の数平均孔径変化率は|(r
n/10−r1/10)r1|×100(%)、緻密層内の各分
割部の最大孔径変化率は|(rnmax/10−r1max/10)/
r1max|×100(%)である。
前記緻密層に連続して膜内部中央から膜外壁側にかけて
あり、膜内壁側にある前記緻密層の支持体としての役割
を担う。よって、多孔層は、中空糸膜の分画分子量特性
を主として決定する層ではなく、中空糸膜の機械的強度
を向上させるための層である。ここに、多孔層とは、図
1の倍率5000倍の透過電子顕微鏡写真において、膜
下方略50%に見られるように、白色部分として明確に
確認できる孔を有する部分である。
しては、これまで長期に渡り実績のある、公知の人工腎
臓用再生セルロース系中空糸膜のそれと同じで何ら問題
ない。具体的には、膜厚は5〜50μm、内径は100
〜300μmである。より好ましくは、膜厚は10〜3
0μm、内径は150〜250μmであることが好まし
い。
去性能について、透水性としては、水を用いて測定した
膜面積1m2当りの透水速度が20〜100ml/(m2
・h・mmHg)、好ましくは20〜50ml/(m2
・h・mmHg)であること、分子量分画特性として
は、β2−ミクログロブリンのクリアランスが15〜3
0ml/min、好ましくは20〜30ml/minで
あり、かつβ2−ミクログロブリンの篩係数が0.6以
上、好ましくは0.6〜0.9、アルブミンの篩係数が
0.05以下、好ましくは0.03以下である。本発明
の再生セルロース中空糸膜は、前記性能パラメーター範
囲の透水性能と分画分子量特性を併せ持つことが好まし
い。ここで、透水速度の測定に用いる水は、イオン交換
水、逆浸透水系を用いることができる。
による水系の透水速度に比べ牛血を評価液とした血液系
の透水速度が小さく、中空糸膜が血液中の成分により目
詰まりしていると考えられているが、本発明の再生セル
ロース中空糸膜は、水を用いて測定した透水速度に対す
る牛血液を用いて測定した血液系の透水速度の比が45
%以上が好ましく、50%以上がさらに好ましい。これ
により、目詰まりの大変少ない膜を提供することができ
る。
膜の製造方法は、セルロース溶液を二重管状紡糸口金の
管状スリットより吐出し、同時に芯剤を該口金中心部よ
り吐出し、内部に芯剤と外部にセルロース溶液とからな
る糸状物を凝固浴に浸漬する凝固工程と、該凝固工程よ
り得られた糸状物を洗浄する洗浄工程と、湿潤状態の該
糸状物に孔径維持剤を添着する添着工程と、該孔径維持
剤が添着された該糸状物を加熱乾燥する乾燥工程と、該
糸状物内部にある芯剤を除去洗浄する除去洗浄工程を有
することができる。
する際に使用する溶液としては、一般に、人工腎臓用再
生セルロース中空糸膜の製造に使用されている、銅アン
モニウム溶液が使用可能である。また、銅アンモニウム
溶液を使用したセルロース溶液(紡糸溶液)は、特開平
2−187133号公報および特開平4−11008号
公報において提案されている組成のものが好ましい。
一般に人工腎臓用再生セルロース膜の製造に使用されて
いる公知のものが使用可能である。好ましくは、長期に
わたる臨床実績により安全性が確認されている精製コッ
トンリンター(α−セルロースが97質量%以上)であ
り、特開平4−11008号公報において提案されてい
るTAPPI標準法T230に従って測定した粘度が5
〜20cP、好ましくは7〜10cP、粘度平均重合度
が500〜1,500、好ましくは1000〜1400
のものである。
ロースの配合割合は、溶液総質量に対して4〜20質量
%、特に5〜8質量%であることが好ましい。セルロー
スの配合割合が4質量%未満では、実際の使用に耐えら
れる機械的強度を得ることが困難であり、また20質量
%を超えると、セルロース溶液(紡糸溶液)の粘度が非
常に高くなり、均一な紡糸溶液の調製および紡糸が困難
となるため不適である。
人工腎臓用再生セルロース膜の製造に使用されている公
知の気体、液体の芯剤流体が使用可能である。例えば、
空気、窒素などの気体、ミリスチン酸イソプロピル、酢
酸イソアミルアルコール、パルミチン酸イソプロピル等
の脂肪族エステル、パラフィンなどの液体が挙げられ
る。
る凝固工程において、セルロース粒子が形成され、これ
が凝集、融合してなる粒子構造である中空糸状物が得ら
れる。本凝固工程では、口金中心部より吐出された内部
に芯剤と外部にセルロース溶液とからなる糸状物は、ま
ずアンモニウム塩を溶解してなる水溶液浴槽に導かれ、
それに続く水浴槽に連続的に導かれる。
た糸状物が、アンモニウム塩を溶解してなる水溶液層に
浸漬される時間に関する。本発明の該浸漬時間は、0.
1秒から2.5秒であり、好ましくは0.5から2秒で
ある。下限値より短い場合、凝固が不完全となり、紡糸
することができないという問題があり、上限値より長い
場合、緻密層の形成が不充分となるという問題がある。
は、硫酸アンモニウム、塩化アンモニウム等が産業上入
手し易い点より好ましい。また、水浴槽の水は、セルロ
ース溶液と凝固液との間での溶媒交換速度を高めて凝固
を促進するために、20℃から60℃の水を使用するこ
とが好ましい。
する洗浄工程において、前記凝固により得られた糸状物
を、硫酸を使用した酸洗浄、水酸化ナトリウム水溶液を
使用したアルカリ洗浄、水洗浄を適宜組み合わせて洗浄
を行い、最終的には水洗浄で洗浄を終了することが好ま
しい。洗浄条件、洗浄装置は公知のものを使用すれば良
く、例えば、特公平8−29231号公報に提案されて
いる通り、糸状物をベルトコンベア等よりなる搬送装置
により搬送しながら、その上部よりシャワー洗浄を行う
洗浄装置が、洗浄効率が高く好適である。
膜構造を保持する、いわゆる膜孔径を維持する目的であ
る、孔径維持剤を添着する添着工程において、孔径維持
剤を溶解させた水溶液を糸状物に添着する。本発明に用
いられる孔径維持剤としては、一般に、人工腎臓用再生
セルロース中空糸膜の製造に使用されている公知のもの
が使用可能である。例えば、グリセリン、プロピレング
リコール、ポリエチレングリコールなどの多価アルコー
ルが挙げられる。特に好ましくは、長期にわたる臨床成
績により安全性が確認されているグリセリンである。ま
た、孔径保持のために必要なグリセリンを添着させるた
めには、添着液であるグリセリン水溶液のグリセリン濃
度は5〜20質量%、特に8〜15質量%が好ましい。
燥工程において、糸状物に含まれる余剰な水を加熱乾燥
により除去し、糸状物中の含水量を下記の所定量に調整
する。その好適な加熱温度は40〜150℃、より好ま
しくは100〜140℃である。さらに加熱時間は、前
記加熱温度において、紙・ダンボール水分計KG−40
型(サンコウ電子研究所製)を用いて測定した糸状物の
湿重量基準水分率が5〜20質量%、好ましくは10〜
14質量%になる様に任意に設定することができる。4
0℃未満では乾燥時間が長くかかり、また乾燥が不十分
なことが多く、150℃を超えると乾燥時間は短くなる
ものの、中空糸膜の物質除去性能が低下してしまう可能
性がある。
除去洗浄する除去洗浄工程において、前記芯剤をフッ素
系溶剤、ハロゲン系溶剤等の洗浄剤を用いて除去洗浄、
乾燥を行う。洗浄剤としては、例えば、代替フロン、塩
化メチレンが挙げられる。
る。
体的に説明する。また、本発明の評価方法については以
下に従った。
処理、孔径及び孔径変化率の算出) 十分な水洗浄により孔径維持剤を除去した中空糸膜につ
いて、まずはエタノール系列による脱水を行った。具体
的には、中空糸を30容量%、50容量%、80容量
%、90容量%および95容量%の各エタノール水溶液
に順次浸漬し、最終的にはエタノールに浸漬して中空糸
膜中の水をエタノール置換にした。なお、各エタノール
水溶液およびエタノールへの浸漬温度および時間は、そ
れぞれ25℃で30分間行った。
O4染色を行った後、エポキシ樹脂に包埋して硬化させ
た。得られた硬化物のトリミングを行い、膜厚方向(中
空糸の長さ方向と直角方向)の膜断面を含む厚さ約70
nmの超薄切片を作製した。
FA型(株式会社日立製作所製)を用いて、加速電圧1
00kVの観察条件にて、前記超薄切片の膜断面部分の
観察を行い、図1に示すTEM写真(×5,000)を
得た。
全膜厚および中空糸膜の膜内壁側から膜内部中央にかけ
てある緻密層厚を測定した。次に、膜断面の全膜厚部領
域を10等分割して、各分割部をトレース像として、画
像解析装置Image−Pro Plus Ver.
4.0(MEDIA CYBERNETICS社製)を
用いた画像解析により、孔の円相当半径(孔部分の面積
と等しい真円の半径)19nmを測定限界として、数平
均孔径および最大孔径を算出した。なお、最膜内壁側分
割部の数平均孔径(r1/10)および最大孔径(r
1max/10)を基準として、緻密層内での別の各分割部
(n=2〜10)の数平均孔径(rn/10)および最大孔
径(rnmax/10)のそれぞれについて、緻密層内の各分
割部の数平均孔径変化率は|(rn/10−r1/10)/r
1/10|×100(%)、緻密層内の各分割部の最大孔径
変化率は|(rnmax/10−r1max/10)/r1max|×10
0(%)により、それぞれ算出した。
1996「各種の血液浄化法の機能と適応−血液浄化器
の性能評価法と機能分類」の「(付記)血液浄化器の評
価法」記載方法に従い測定した。また、後述する血液調
製、下記溶質のクリアランス、篩係数の測定についても
同様にその記載方法に従った。
されている「限外濾過率」を指し、牛血液を用いた評価
においては、上記文献の表6中の「血液透析」条件で行
った。 UFR=(60×Qf)/TMP、TMP=(Pb1+
Pb0)/2−PfUFR:(ml/mmHg/h
r)、TMP:膜間圧力差(mmHg)、Pb1:血液
側入口圧(mmHg)、Pb0:血液側出口圧(mmH
g)、Pf:濾液側圧(mmHg)、Qf:濾液流量
(ml/min) (3)β2−ミクログロブリンのクリアランス測定 Ht30±3%、血漿総蛋白質6.5±0.5g/d
l、人由来β2−ミクログロブリンを0.1〜4.0m
g/dlに調整した牛血液を使用し、QB200±4m
l/min、QD500±15ml/min、Qf1
0.0±1.0ml/min/m2、血液温度37±1
℃の測定条件にて行い、サンプリングは実験開始後60
分とした。サンプル中のβ2−ミクログロブリン濃度
(C(mg/dl))測定はラッテックス凝集免疫法に
より測定した。
口流量(ml/min)、Qb0:血液出口流量(ml
/min)、Cb1:血液側入口濃度(mg/dl)、
Cb0:血液側入口濃度(mg/dl) なお、マスバランスエラー(%MBS)が50%を超え
るデータは採用しないこととした。
定 前記β2−ミクログロブリンのクリアランス測定と同じ
牛血液を、QB200±4ml/min、Qf10.0
±1.0ml/min/m2、血液温度37±1℃の測
定条件にて行った。サンプル中のβ2−ミクログロブリ
ン濃度(C(mg/dl))測定はラッテックス凝集免
疫法により測定した。
度(mg/dl)、Cbo:血液側入口濃度(mg/d
l) なお、マスバランスエラー(%MBS)が20%を超え
るデータは採用しないこととした。
は、β2−ミクログロブリンの篩係数測定と同様に測定
を行った。なお、サンプル中のアルブミン濃度測定はB
CG法により測定した。
硫酸銅を540g懸濁させて銅アンモニア水溶液を調整
し、これに10容量%亜硫酸ナトリウム水溶液1690
gを添加した。この溶液に重合度約1200(±10
0)のコットンリンターパルプを湿式粉砕し、脱水した
含水リンター(含水率69.7%)2273gを投入
し、濃度調整用RO水を添加して攪拌溶解を行い、次い
で10容量%水酸化ナトリウム水溶液1233gを添加
し、さらにRO水を添加し、6.1質量%の紡糸原液で
ある銅アンモニウムセルロース溶液(粘度300P)を
調整した。
2ml/minで吐出させた。また、芯剤として原液凝
固性の弱い溶剤である、エポキシ変性界面活性剤を含有
するミリスチン酸イソプロピル(比重0.854)を使
用し、吐出速度2.25ml/minで吐出させた。
て、紡糸原液を吐出させる管状スリットの間隔は1.0
5mm、芯剤を吐出させる管の管径は0.7mmであっ
た。
ロース溶液とからなる糸状物を、まずは13質量%濃度
の硫酸アンモニウム水溶液(25±4℃)の凝固浴中に
エアーギャップを介して落下させ、変向棒により水平方
向に進行させ、紡糸速度78m/min、走行距離2m
で走行させ、それに続く水(30±5℃)の凝固浴中に
連続的に走行距離4mで走行させた。これら凝固浴か
ら、糸状物を引き取りローラにより引き上げた後、ベル
トコンベアよりなる搬送装置上に振り落とし堆積させ、
該搬送装置上で、芯剤中のエポキシ変性界面活性剤のエ
ポキシ開環反応をさせるために、シャワーにて、2.5
N水酸化ナトリウム水溶液を使用したアルカリ洗浄、続
いて水洗浄、5質量%硫酸を使用した酸洗浄、最終的に
は水洗浄を十分に行った。
間接触させてスチーム処理を行い、続いて12質量%濃
度のグリセリン水溶液(80℃)に1秒間浸漬して、糸
状物に孔径維持剤であるグリセリンを添着させた。続い
て、ローラを平行に配列した加熱乾燥機を用いて、乾燥
温度120℃で糸状物を乾燥した。得られた糸状物の湿
重量基準水分率は10質量%であった。
糸状物内部にある芯剤を除去洗浄、乾燥を行い、図2に
示す断面を有する中空糸膜を作製した。
孔径維持剤を除去した後、膜断面構造解析を行った。
てなる膜断面構造を有し、緻密層は膜断面において該中
空糸膜の膜内壁側から膜内部中央にかけてあるものであ
った。また、全膜厚は33μm、緻密層厚は18μmで
あった。よって、緻密層厚は全膜厚の54%であった。
および最大孔径(r1max/10)、緻密層内での別の各分
割部(n=2〜5)の数平均孔径(rn/10)、最大孔径
(r nmax/10)は、次記の通りであった。 分割部n=1:r1/10=33nm、r1max/10=117
nm 分割部n=2:r2/10=32nm、r2max/10=112
nm 分割部n=3:r3/10=32nm、r3max/10=113
nm 分割部n=4:r4/10=34nm、r4max/10=108
nm 分割部n=5:r5/10=34nm、r5max/10=111
nm また、緻密層内の各分割部の数平均孔径変化率は|(r
n/10-r1/10)/r1/1 0|×100(%)、緻密層内の
各分割部の最大孔径変化率は|(rnmax/10−
r 1max/10)/r1max/10|×100(%)は、次記の通
りであった。
積1.5m2の中空糸膜型血流透析器を作成し、透水速
度、β2−ミクログロブリンクリアランス、β2−ミクロ
グロブリン篩係数およびアルブミン篩係数を測定したと
ころ、表1に示す結果が得られた。
溶液を、10質量%濃度の塩化アンモニウム水溶液に変
更した以外は、実施例1と同様にして図3に示す断面を
有する中空糸膜を作製した。
連続してなる膜断面構造を有し、緻密層は膜断面におい
て該中空糸膜の膜内壁側から膜内部中央にかけてあるも
のであった。また、全膜厚は27μm、緻密層厚は11
μmであった。よって、緻密層厚は全膜厚の41%であ
った。
および最大孔径(r1max/10)、緻密層内での別の各分
割部(n=2〜4)の数平均孔径(rn/10)、最大孔径
(r nmax/10)は、次記の通りであった。 分割部n=1:r1/10=34nm、r1max/10=83n
m 分割部n=2:r2/10=33nm、r2max/10=80n
m 分割部n=3:r3/10=32nm、r3max/10=77n
m 分割部n=4:r4/10=33nm、r4max/10=81n
m また、緻密層内の各分割部の数平均孔径変化率は|(r
n/10−r1/10)/r1/ 10|×100(%)、緻密層内の
各分割部の最大孔径変化率は|(rnmax/10−
r1max/10)/r1max/10|×100(%)は、次記の通
りであった。
なったところ、表1に示す結果が得られた。
液の凝固浴、それに続く水の凝固浴を、2.5N水酸化
ナトリウム水溶液に変更した以外は、実施例1と同様に
して図4に示す断面を有する中空糸膜を作製した。
構造であった。全膜厚は31μm、緻密層厚は31μm
であった。よって、緻密層厚は全膜厚の100%であっ
た。
および最大孔径(r1max/10)、緻密層内での別の分割
部(n=2〜10)の数平均孔径(rn/10)、最大孔径
(r nmax/10)は、次記の通りであった。 分割部n=1:r1/10=32nm、r1max/10=76n
m 分割部n=2:r2/10=33nm、r2max/10=80n
m 分割部n=3:r3/10=32nm、r3max/10=78n
m 分割部n=4:r4/10=33nm、r4max/10=81n
m 分割部n=5:r5/10=33nm、r5max/10=82n
m 分割部n=6:r6/10=34nm、r6max/10=84n
m 分割部n=7:r7/10=33nm、r7max/10=83n
m 分割部n=8:r8/10=32nm、r8max/10=78n
m 分割部n=9:r9/10=33nm、r9max/10=81n
m 分割部n=10:r10/10=31nm、r10max/10=8
0nm また、緻密層内の各分割部の数平均孔径変化率は|(r
n/10−r1/10)/r1/ 10|×100(%)、緻密層内の
各分割部の最大孔径変化率は|(rnmax/10−
r1max/10)/r1max/10|×100(%)は、次記の通
りであった。
なったところ、表1に示す結果が得られた。
液の凝固浴、それに続く水の凝固浴を、10%硫酸の凝
固浴、それに続く2.5N水酸化ナトリウム水溶液に変
更した以外は、実施例1と同様にして図5に示す断面を
有する中空糸膜を作製した。
連続してなる膜断面構造を有し、緻密層は膜断面におい
て該中空糸膜の膜内壁側から膜内部中央にかけてあるも
のであった。また、全膜厚は38μm、緻密層厚は17
μmであった。よって、緻密層厚は全膜厚の45%であ
った。
および最大孔径(r1max/10)、緻密層内での別の分割
部(n=2〜4)の数平均孔径(rn/10)、最大孔径
(rnm ax/10)は、次記の通りであった。 分割部n=1:r1/10=32nm、r1max/10=89n
m 分割部n=2:r2/10=33nm、r2max/10=151
nm 分割部n=3:r3/10=36nm、r3max/10=133
nm 分割部n=4:r4/10=31nm、r4max/10=78n
m また、緻密層内の各分割部の数平均孔径変化率は|(r
n/10−r1/10)/r1/ 10|×100(%)、緻密層内の
各分割部の最大孔径変化率は|(rnmax/10−
r1max/10)/r1max/10|×100(%)は、次記の通
りであった。
なったところ、表1に示す結果が得られた。
溶液の凝固浴、それに続く水の凝固浴を、13質量%濃
度の硫酸アンモニウム水溶液の凝固浴、それに続く2.
5N水酸化ナトリウム水溶液の凝固浴に変更した以外
は、実施例1と同様にして、中空糸膜の作製を試みた
が、2.5N水酸化ナトリウム水溶液の凝固浴におい
て、糸状物の固体構造形成が正常に起こらず、切糸が頻
繁に発生して紡糸が困難であり、中空糸膜を作製するこ
とができなかった。
により、血液浄化用再生セルロース系中空糸膜におい
て、高い透水性能と優れた分画分子量特性を併せ持つこ
とができるのである。
透過型電子顕微鏡写真(倍率5000倍)である。
Claims (11)
- 【請求項1】 緻密層と多孔層とが連続してなる膜断面
構造を有する再生セルロース中空糸膜であって、該膜断
面において該中空糸膜の膜内壁側から膜内部中央にかけ
てある緻密層が、下記(1)〜(5)を同時に満たす均
質構造であることを特徴とする血液浄化用再生セルロー
ス中空糸膜。 (1)緻密層厚が全膜厚の20〜60%である、 (2)緻密層の数平均孔径が10〜50nmである、 (3)緻密層の最大孔径が50〜150nmである、 (4)緻密層内の数平均孔径変化率が±10%未満であ
り、かつ (5)緻密層内の最大孔径変化率が±30%未満であ
る。 - 【請求項2】 該多孔層が、該緻密層に連続して膜内部
中央から膜外壁側にかけてあることを特徴とする請求項
1に記載の血液浄化用再生セルロース中空糸膜。 - 【請求項3】 水を用いて測定した膜面積1m2当りの
透水速度が20〜100ml/(m2・hr・mmH
g)であることを特徴とする請求項1または2に記載の
血液浄化用再生セルロース中空糸膜。 - 【請求項4】 β2−ミクログロブリンのクリアランス
が、15〜30ml/minであることを特徴とする請
求項1ないし3のいずれか一つに記載の血液浄化用再生
セルロース中空糸膜。 - 【請求項5】 β2−ミクログロブリンの篩係数が、
0.6以上であることを特徴とする請求項1ないし4の
いずれか一つに記載の血液浄化用再生セルロース中空糸
膜。 - 【請求項6】 セルロース溶液を二重管状紡糸口金の管
状スリットより吐出し、同時に芯剤を該口金中心部より
吐出し、内部に芯剤と外部にセルロース溶液とからなる
糸状物を凝固浴に浸漬する凝固工程と、該凝固工程より
得られた糸状物を洗浄する洗浄工程と、湿潤状態の該糸
状物に孔径維持剤を添着する添着工程と、該孔径維持剤
が添着された該糸状物を加熱乾燥する乾燥工程と、該糸
状物内部にある芯剤を除去洗浄する除去洗浄工程を有す
る再生セルロース中空糸膜の製造方法であって、該凝固
工程がアンモニウム塩を溶解してなる水溶液浴槽とそれ
に続く水浴槽とに浸漬する工程であることを特徴とする
血液浄化用再生セルロース中空糸膜の製造方法。 - 【請求項7】 該口金により吐出された糸状物が0.1
〜2.5秒間、該アンモニウム塩を溶解してなる凝固浴
中に浸漬されてなる請求項6に記載の血液浄化用再生セ
ルロース中空糸膜の製造方法。 - 【請求項8】 前記アンモニウム塩が、硫酸アンモニウ
ムおよび塩化アンモニウムよりなる群から選ばれること
を特徴とする請求項6または7に記載の血液浄化用再生
セルロース中空糸膜の製造方法。 - 【請求項9】 該アンモニウム塩を溶解してなる水溶液
のアンモニウム塩濃度が、8〜30質量%であることを
特徴とする請求項6ないし8のいずれか一つに記載の血
液浄化用再生セルロース中空糸膜の製造方法。 - 【請求項10】 請求項1ないし7のいずれか一つに記
載の血液浄化用再生セルロース中空糸膜を用いた血液浄
化器。 - 【請求項11】 膜厚が5〜50μm、内径が100〜
300μmである中空糸膜を有する血液浄化器であっ
て、水を用いて測定した膜面積1m2当りの透水速度が
20ml/(hr・mmHg・m2)以上であり、水を
用いて測定した透水速度に対する牛血液を用いて測定し
た透水速度の比が45%以上であることを特徴とする血
液浄化器。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP2002085791A JP2003275300A (ja) | 2002-03-26 | 2002-03-26 | 血液浄化用再生セルロース中空糸膜、その製造方法および血液浄化器 |
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JP2002085791A JP2003275300A (ja) | 2002-03-26 | 2002-03-26 | 血液浄化用再生セルロース中空糸膜、その製造方法および血液浄化器 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JP2003275300A true JP2003275300A (ja) | 2003-09-30 |
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JP2002085791A Withdrawn JP2003275300A (ja) | 2002-03-26 | 2002-03-26 | 血液浄化用再生セルロース中空糸膜、その製造方法および血液浄化器 |
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Country | Link |
---|---|
JP (1) | JP2003275300A (ja) |
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Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
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-
2002
- 2002-03-26 JP JP2002085791A patent/JP2003275300A/ja not_active Withdrawn
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