JP2002532057A - ヒトｔｂｃ−１タンパク質をコードする核酸およびその多型マーカー - Google Patents

ヒトｔｂｃ−１タンパク質をコードする核酸およびその多型マーカー

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Abstract

(57)【要約】 本発明は、ヒトＴＢＣ−１遺伝子のゲノムおよびｃＤＮＡ配列に関する。本発明はまた、ＴＢＣ−１遺伝子によってコードされるポリペプチドに関する。本発明はまた、診断薬として有用である前記ポリペプチドに対して特異的な抗体を扱う。本発明はさらに、遺伝子解析に有用なＴＢＣ−１遺伝子のバイアレリックマーカーを含む。

Description

【発明の詳細な説明】
【０００１】 発明の分野 本発明は、ヒトＴＢＣ−１遺伝子のゲノムおよびｃＤＮＡ配列に関する。本発
明はまた、ＴＢＣ−１遺伝子によってコードされるポリペプチドに関する。本発
明はまた、診断薬として有用である前記ポリペプチドに対して特異的な抗体を扱
う。本発明は、遺伝子解析に有用なＴＢＣ−１遺伝子のバイアレリックマーカー
をさらに含む。
【０００２】 発明の背景 前立腺ガンの発症率は、最近１０年間の間に劇的に増加した。該発症率は、西
欧諸国および米国白人男性集団において、平均で男性３０〜５０人／１００，０
００人である。これらの国において、前立腺ガンは、最も多く診断される悪性疾
患であり、米国男性において診断されるガンの４例のうち１例に認められる。前
立腺ガンの発症率は、中国の２人／１００，０００人からアフリカ系米国人男性
の８０人以上／１００，０００人に間で及び、極めて多くの集団特異性を示す。
【０００３】 仏国では、前立腺ガンの発症率は、男性３５人／１００，０００人であり、１
０年あたり１０人／１００，０００人で増加している。それに伴い、前立腺ガン
による死亡率も増加している。前立腺ガンは仏国男性のガン死亡原因の第２位で
あり、７０歳以上の仏国男性では第１位である。このため、前立腺ガンは公衆衛
生の深刻な負担になっている。
【０００４】 前立腺ガンは潜伏性疾患である。多くの男性は、疾患の明白な徴候を呈するこ
となく前立腺癌細胞を担持する。他の原因で死亡した個体の剖検では、５０歳男
性の３０％、８０歳男性の６０％に前立腺ガン細胞が認められる。さらに、前立
腺ガンでは、初診後１０年までに患者が死亡し得る。
【０００５】 該疾患は、明確に規定された隗から前立腺の外側縁の破壊および浸潤へと進行
し、続いて局所リンパ節への転移が生じる。ガンの骨への転移は、よく起こるこ
とであり、制御不能な痛みを伴うことが多い。
【０００６】 不幸なことに、症例の８０％において、前立腺ガンの診断が確定した場合には
、該疾患は既に骨に転移している。多くの場合、前立腺ガンは前立腺自体内より
も転移部位においてより迅速に増殖することが観察されていることは特に興味深
い。
【０００７】 現在、前立腺ガンの早期診断は主に前立腺特異抗原（ＰＳＡ）量に依存し、臨
床症状が明確になる７年前に前立腺ガンの検出が可能になる。しかし、ＰＳＡ量
診断では臓器の悪性作用と非悪性作用との区別ができず、また全ての前立腺ガン
が高血清ＰＳＡ濃度に上昇するとは限らないため、該ＰＳＡ量診断の効果には限
度がある。さらに、ＰＳＡ量ならびに健康診断、組織生検および骨スキャンなど
の現在利用可能な他のアプローチは、疾患の進行を予測する場合に有用性が限ら
れている。
【０００８】 従って、より系統的な早期前立腺ガンの予後を可能にする信頼できる診断法が
強く望まれている。
【０００９】 早期前立腺ガンの予後は重要であるが、治療を遅らせることができる期間を測
定する可能性も興味深い。何故なら、現在利用可能な薬剤は効果であり、重要な
有害作用を生じるからである。しかし、前立腺腫瘍の攻撃性は広範に変動する。
比較的攻撃的で６ヶ月ごとに２倍になる腫瘍もあれば、増殖が遅く５年で２倍に
なる腫瘍もある。事実、前立腺ガンの大部分は比較的ゆっくりと増殖するため、
臨床的に認められない。極めて多くの場合、罹患患者は高齢者であり、前立腺ガ
ンが実際に発症する前に別の疾患で死亡する。従って、前立腺ガンの治療におい
て重要な問題は、いかにして患者の余命中に進行する腫瘍と進行しない腫瘍とを
区別するかである。
【００１０】 従って、一旦診断された前立腺ガン腫瘍の攻撃性または発症可能性を評価する
ために使用され得る検出手段も強く望まれている。
【００１１】 さらに、現在のところ、前立腺ガンの罹病性を予測する手段はない。また、前
立腺ガンに対する個体の罹病性を検出することも非常に有益である。このことは
、腫瘍発症の予防処置および注意深い経過診断を可能にし得る。
【００１２】 さらに前立腺ガンは増殖速度が遅いため、その結果、ガン細胞が任意の時間に
積極的に分裂することは稀で、そのため前立腺ガンは一般に放射線および化学療
法に耐性である。手術は治療の主要部であるが、主な効果はなく、射精管が除去
されるため、その結果、インポテンスとなる。経口エストロゲン類および黄体形
成ホルモン放出ホルモン（ｌｕｔｅｉｎｉｚｉｎｇ ｒｅｌｅａｓｉｎｇ ｈｏ
ｒｍｏｎｅ）類似体も前立腺ガンの治療に使用される。これらのホルモン治療は
多くの患者に改善をもたらすが、それらは一時的な課緩和をもたらすに過ぎない
。実際に、これらのガンのほとんどは、ホルモン耐性腫瘍細胞の発生に伴い直ち
に再発し、エストロゲン治療により重度の心血管合併症を生じ得る。従って、前
立腺ガンの予防的および治療的処置が強く望まれている。
【００１３】 有効性／忍容性予後は、前立腺ガン療法において貴重である。実際に、ホルモ
ン療法は現在利用可能な主用治療であるが、重要な副作用を示す。化学療法の使
用は、化学的感受性腫瘍を有する患者が小数であるため、制限されている。さら
に、前立腺がん患者の年齢プロファイルおよび化学療法に対する非忍容性のため
、このような治療の系統的使用が極めて困難である。
【００１４】 従って、前立腺ガン患者に投与しようとする薬剤の終局的有効性および薬剤に
対する患者の終局的忍容性についての価値を有する評価は、前立腺ガン治療の有
益性／リスク比を高めることが可能である。
【００１５】 前立腺ガンの家族性リスクが存在することは、現在公知である。１９５０年代
の臨床研究では、既に前立腺ガンの家族性集成が実証されている。より最近、該
疾患の遺伝的危険因子の発生率を評価することを試みるために、比較症例臨床研
究が行われている。これにより、Ｓｔｅｉｎｂｅｒｇら、１９９０、およびＭｃ
Ｗｈｏｒｔｅｒら、１９９２は、血縁者の早期診断の形態が存在する場合に、既
に該疾患に罹患した１名以上の血縁者を有する被験体では前立腺ガンのリスクが
高まることを確認している。
【００１６】 現在では、ガンは特定の遺伝子の発現の脱調節によって生じる疾患であること
が明確に確立されている。事実、腫瘍の発症には、重要な連続的段階を必要とす
る。これらの段階のそれぞれは、細胞の正常な代謝に介在する重要な遺伝子の脱
調節および増殖に有利であるために他の細胞タイプを圧倒する異常細胞サブクロ
ーンの出現を含む。この概念に基づく遺伝子の起源は、原因となり得る遺伝子を
単離および特徴づけすることによって確認されている。これらの遺伝子は一般に
「ガン遺伝子」と呼ばれ、細胞の正常な代謝において重要な役割を果たしている
が、これが変化すると発ガンを介在する可能性がある。
【００１７】 最近の研究では、ガンにおいて頻繁に変異する３つのグループの遺伝子が同定
されている。第１のグループの遺伝子はオンコジーンと呼ばれ、その産物が細胞
の増殖を活性化する遺伝子である。該変異型は細胞の増殖において過度または不
適切に活性であり、単一の変異対立遺伝子が細胞表現型に影響を及ぼすのに十分
であるように優性様式で細胞において作用する。活性化されたオンコジーンは、
全ての細胞において発現される場合おそらく致死的であるため、生殖系列変異と
して伝達されることはめったにない。従って、オンコジーンは腫瘍組織において
のみ研究することができる。
【００１８】 ガンにおいて頻繁に変異する第２のグループの遺伝子はガン抑制遺伝子と呼ば
れ、その産物が細胞の増殖を阻害する遺伝子である。ガン細胞の変異バージョン
はそれらの正常な機能を消失し、細胞表現型を変化するためには遺伝子の両コピ
ーを不活化しなければならないような劣性様式で細胞において作用する。最も重
要なことに、腫瘍の表現型は、野生型の対立遺伝子によってレスキューすること
ができ、これは、Ｈａｒｒｉｓら（１９６９）によって最初に記載された細胞融
合実験によって明らかにされている。腫瘍抑制遺伝子の生殖系列変異は伝達する
ことができ、従って、家族性または散在性症例由来の構成性および腫瘍ＤＮＡの
両方において研究することができる。腫瘍サプレッサーの現在のファミリーとし
ては、中でもＤＮＡ結合転写因子（即ち、ｐ５３、ＷＴ１）、転写調節因子（即
ち、ＰＢ、ＡＰＣ、おそらくＢＲＣＡ１）、プロテインキナーゼインヒビター（
即ち、ｐ１６）が挙げられる（論評についてはＨａｂｅｒ Ｄ ＆ Ｈａｒｌｏ
ｗ Ｅ，１９９７を参照のこと）。
【００１９】 ガンにおいて頻繁に変異する第３のグループの遺伝子はミューテーター遺伝子
と呼ばれ、ゲノム完全性および／または低変異率の維持の原因である。両対立遺
伝子の機能が消失すると、細胞変異率が上昇し、その結果として、プロトオンコ
ジーンおよび抑制遺伝子は変異され得る。ミューテーター遺伝子も腫瘍抑制遺伝
子として分類することができるが、但し、このクラスの遺伝子によって生じる腫
瘍発生は、上記のように、野生型対立遺伝子の再生によって簡単に抑制できるも
のではないという事実は例外である。不活化によりミューテーター表現型が生じ
得る遺伝子としては、ミスマッチ修復遺伝子（即ち、ＭＬＨ１、ＭＳＨ２）、Ｄ
ＮＡヘリカーゼ（即ち、ＢＬＭ、ＷＲＮ）またはＤＮＡ修復およびゲノムの安定
性に関与する他の遺伝子（即ち、ｐ５３、おそらくはＢＲＣＡ１およびＢＲＣＡ
２）が挙げられる（論評についてはＨａｂｅｒ Ｄ ＆ Ｈａｒｌｏｗ Ｅ，１
９９７；Ｆｉｓｈｅｌ Ｒ ＆ Ｗｉｌｓｏｎ Ｔ．１９９７；Ｅｌｌｉｓ Ｎ
Ａ，１９９７を参照のこと）
【００２０】 腫瘍細胞の非転移から転移表現型への進行における重要な事象は転移−抑制遺
伝子の機能の消失であるという証拠が増加している。これらの遺伝子は、細胞が
転移する能力を特異的に抑制する。いくつかのグループによる研究により、ヒト
第８、１０、１１および１７染色体が前立腺ガン転移抑制活性をコードすること
が実証されている。しかし、第１、７、１３、１６、および１８染色体などの他
のヒト染色体も前立腺ガンに関与し得る。
【００２１】 このように、遺伝および非遺伝形態の遺伝子解析から始まる前立腺ガンの発症
および進行に特異的に関与する遺伝子の位置決定および同定ならびに予後および
治療革新に対するそれらの臨床への関与を規定することはまだなされていない。
【００２２】 発明の概要 本発明は、ＴＢＣ−１タンパク質をコードする新規のヒト遺伝子のゲノム配列
を含む核酸分子に関する。ＴＢＣ−１ゲノム配列は、前記遺伝子の転写された部
分の上流（５’末端）および下流（３’末端）に位置する調節配列を含み、これ
らの調節配列もまた本発明の一部である。ヒトＴＢＣ−１ゲノム配列は、第4染
色体に位置する前立腺ガンのこれまでに知られていない候補領域に含まれる。
【００２３】 本発明はまた、ＴＢＣ−１タンパク質をコードする２つの全ｃＤＮＡ配列、お
よび対応する翻訳産物を扱う。
【００２４】 ＴＢＣ−１ゲノムまたはｃＤＮＡ配列に特異的にハイブリダイズするオリゴヌ
クレオチドプローブまたはプライマーも本発明の一部であり、前記プライマーお
よびプローブを使用するＤＮＡ増幅および検出法も本発明の一部である。
【００２５】 本発明のさらなる目的は、上記の任意の核酸配列を含む組換えベクター、およ
び特にＴＢＣ−１調節配列またはＴＢＣ−１タンパク質をコードする配列を含む
組換えベクター、ならびに前記核酸配列または組換えベクターを含む細胞宿主お
よび非ヒトトランスジェニック動物から成る。
【００２６】 本発明はまた、ＴＢＣ−１関連バイアレリックマーカーおよびその使用に関す
る。
【００２７】 最後に、本発明は、ＴＢＣ−１の発現を阻害する物質または分子のスクリーニ
ング方法、ＴＢＣ−１ポリペプチドと相互作用する物質または分子をスクリーニ
ングする方法に関する。
【００２８】 配列表に記載の配列の簡単な説明 配列番号１は、５’調節配列ならびにエキソン１、１ビス、および２を含むＴ
ＢＣ−１ゲノム配列の第１の部分を含有する。
【００２９】 配列番号２は、ＴＢＣ−１遺伝子の最後の１２個のエキソンおよび３’調節配
列を含むＴＢＣ−１ゲノム配列の第２の部分を含有する。
【００３０】 配列番号３は、ＴＢＣ−１遺伝子の第１のｃＤＮＡ配列を含有する。
【００３１】 配列番号４は、ＴＢＣ−１遺伝子の第２のｃＤＮＡ配列を含有する。
【００３２】 配列番号５は、配列番号３および４のｃＤＮＡによってコードされるアミノ酸
配列を含有する。
【００３３】 配列番号６は、実施例３にさらに記載の付加ＰＵ５’配列を含有するプライマ
ーを含有する。
【００３４】 配列番号７は、実施例３にさらに記載の付加ＲＰ５’配列を含有するプライマ
ーを含有する。
【００３５】 配列表に関連する調節に従い、配列内のバイアレリックマーカーの位置を示し
、多型塩基に存在するそれぞれの対立遺伝子を同定するために、以下のコードを
配列表に使用している。配列内のコード「ｒ」は、多型塩基の一方の対立遺伝子
がグアニンであり、他方の対立遺伝子がアデニンであることを示す。配列内のコ
ード「ｙ」は、多型塩基の一方の対立遺伝子がチミンであり、他方の対立遺伝子
がシトシンであることを示す。配列内のコード「ｍ」は、多型塩基の一方の対立
遺伝子がアデニンであり、他方の対立遺伝子がシトシンであることを示す。配列
内のコード「ｋ」は、多型塩基の一方の対立遺伝子がグアニンであり、他方の対
立遺伝子がチミンであることを示す。配列内のコード「ｓ」は、多型塩基の一方
の対立遺伝子がグアニンであり、他方の対立遺伝子がシトシンであることを示す
。配列内のコード「ｗ」は、多型塩基の一方の対立遺伝子がアデニンであり、他
方の対立遺伝子がチミンであることを示す。それぞれのバイアレリックマーカー
について、本来の対立遺伝子のヌクレオチドコードは以下のとおりである。 バイアレリックマーカー 本来の対立遺伝子 ９９−４３０−３５２ Ｇ ９９−２０５０８−４５６ Ｃ ９９−２０４６９−２１３ Ｃ ５−２５４−２２７ Ａ ５−２５７−３５３ Ｃ ９９−２０５１１−３２ Ｔ ９９−２０５１１−２２１ Ａ ９９−２０５０４−９０ Ｇ ９９−２０４９３−２３８ Ａ ９９−２０４９９−２２１ Ｇ ９９−２０４９９−３６４ Ａ ９９−２０４９９−３９９ Ａ ５−２４９−３０４ Ｇ ９９−２０４８５−２６９ Ａ ９９−２０４８１−１３１ Ｇ ９９−２０４８１−４１９ Ｔ ９９−２０４８０−２３３ Ａ
【００３６】 発明の詳細な説明 本発明は、哺乳動物における様々な細胞タイプの分化の調節に潜在的に関与す
るヒトＴＢＣ−１遺伝子（本明細書を通して「ＴＢＣ−１遺伝子」ともいう）に
関連するポリヌクレオチドおよびポリペプチドに関する。ＴＢＣ−１発現の脱調
節または変化、あるいはＴＢＣ−１タンパク質のアミノ酸配列の変化は、患者の
細胞分化、より詳細には前立腺ガンなどのガン状態をもたらす異常細胞増殖に関
与する病理学的状態の発生に関与し得る。
【００３７】 定義 本発明をさらに詳細に記載する前に、以下の定義を記載し、本明細書において
本発明を記載するために使用される用語の意味および範囲を例示ならびに規定す
る。
【００３８】 用語「ＴＢＣ−１遺伝子」は、本明細書において使用する場合、ＴＢＣ−１タ
ンパク質をコードするｍＲＮＡおよびｃＤＮＡ配列を含む。ゲノム配列の場合、
ＴＢＣ−１遺伝子は、ＴＢＣ−１遺伝子のコード配列の発現を制御する天然の調
節領域をも含む。
【００３９】 ＴＢＣ−１タンパク質の用語「機能的に活性なフラグメント」は、ＴＢＣ−１
タンパク質の生物学的機能および／または活性の少なくとも１つに関与するＴＢ
Ｃ−１タンパク質の構造的特徴の少なくとも１つを担持するポリペプチドを表す
ことを意図する。
【００４０】 「異種」または「外因性」ポリヌクレオチドは、遺伝子操作技法により、最終
ポリヌクレオチド構築物が天然に存在しないような非関連ヌクレオチド配列の環
境に配置されている精製されたまたは単離された核酸を表す。そのようなポリヌ
クレトチド構築物の例示的実施態様は、（１）ＴＢＣ−１遺伝子配列から誘導さ
れる調節ポリヌクレオチドおよび（２）サイトカイン、例えば、ＧＭ−ＣＳＦを
コードするポリヌクレオチドを含むポリヌクレオチドによって表され得るが、こ
れに限定されるわけではない。異種ポリヌクレオチドによってコードされるポリ
ペプチドは、本発明の目的のために異種ポリペプチドと呼ばれる。
【００４１】 本発明の調節ポリヌクレオチドの「生物学的に活性なフラグメントまたは変異
体」は、組換え宿主細胞において組換えポリペプチドまたは組換えポリヌクレオ
チドを発現するための調節領域として機能的である前記ポリヌクレオチドのフラ
グメントを含むあるいはそれより成るポリヌクレオチドを意図する。
【００４２】 本発明の目的のために、前記調節ポリヌクレオチドが転写および翻訳調節情報
を含有するヌクレオチド配列を含有し、そのような配列が所望のポリペプチドま
たは所望のポリヌクレオチドをコードするヌクレオチド配列に「作動可能に」連
結される場合、核酸またはポリヌクレオチドは、組換えポリペプチドまたは組換
えポリヌクレオチドを発現するための調節領域として「機能的」である。作動可
能な連結とは、調節核酸と発現されることが求められるＤＮＡ配列とが遺伝子発
現を可能にするような方法で連結される連結である。
【００４３】 「プロモーター」は、遺伝子の特異的転写を開始することが求められる細胞の
合成機構によって認識されるＤＮＡ配列を指す。
【００４４】 プロモーターなどの調節領域に「作動可能に連結される」配列は、前記調節エ
レメントが、ＲＮＡポリメラーゼ開始および目的の核酸の発現を制御するための
核酸に対し正確な位置および方向にあることを意味する。
【００４５】 本明細書において使用される用語「作動可能に連結される」とは、機能的な関
係におけるポリヌクレオチドエレメントの連結をいう。例えば、プロモーターま
たはエンハンサーがコード配列の転写に影響を及ぼす場合、該プロモーターまた
はエンハンサーはコード配列に作動可能に連結される。より正確には、（プロモ
ーター領域および所望のポリペプチドをコードするポリヌクレオチドまたはポリ
ヌクレオチドなどの）２つのＤＮＡ分子は、該２つのポリヌクレオチド間の連結
の性質により（１）フレームシフト変異の導入を生じず、（２）プロモーターを
含有するポリヌクレオチドがコードポリヌクレオチドの転写を指令する能力を妨
害しない場合に、「作動可能に連結される」という。プロモーターポリヌクレオ
チドは、プロモーターが目的のポリヌクレオチドの転写を生じ得る場合に、所望
のポリペプチドをコードするポリヌクレオチドまたは所望のポリヌクレオチドに
作動可能に連結され得る。
【００４６】 用語「プライマー」は、標的ヌクレオチド配列に相補的であり、標的ヌクレオ
チド配列にハイブリダイズするために使用される特異的なオリゴヌクレオチド配
列を示す。プライマーは、ＤＮＡポリメラーゼ、ＲＮＡポリメラーゼ、または逆
転写酵素のいずれか一方によって触媒されるヌクレオチド重合の開始点としての
役割を果たす。
【００４７】 用語「プローブ」は、サンプル中に存在する特異的ポリヌクレオチド配列を同
定するために使用することができる規定された核酸セグメント（またはヌクレオ
チド類似体セグメント、例えば、下記に規定されるポリヌクレオチド）を示し、
前記核酸セグメントは、同定しようとする特異的ポリヌクレオチドに相補的なヌ
クレオチド配列を含む。
【００４８】 用語「サンプル」または「材料サンプル」は、本明細書において、本発明のポ
リヌクレオチドもしくはポリペプチドを含有する疑いがある固体または液体材料
を表すために使用される。固体材料は、例えば、ＴＢＣ−１タンパク質をコード
するポリヌクレオチド、ＤＮＡもしくはＲＮＡ分子のいずれかの存在が調査され
るか、または天然もしくは変異型ＴＢＣ−１タンパク質の存在、または発現がＴ
ＢＣ−１調節ポリヌクレオチドの制御下に置かれている目的の所望されるタンパ
ク質の存在が調査される組織スライスまたは生検であってもよい。液体材料は、
例えば、血清、尿などの任意の体液、あるいは細胞懸濁液または組織スライスも
しくは生検中の細胞由来の目的の核酸またはタンパク質材料の抽出から生じる液
体溶液であってもよい。用語「生物学的サンプル」も使用され、ＤＮＡ抽出を取
り扱うセクションにおいてより正確に規定される。
【００４９】 本明細書において使用される用語「精製された」は絶対的な純度を必要とせず
、むしろ、相対的定義であることを意図する。出発材料または天然材料からの純
度が少なくとも１桁の大きさ、好ましくは２または３桁の大きさ、およびより好
ましくは４または５桁の大きさであることが特に意図される。例えば、０．１％
濃度から１０％濃度の純度は２桁の大きさである。
【００５０】 用語「単離された」は、材料が本来の環境から取り出されることを必要とする
（例えば、該材料が天然に存在する場合は天然環境）。例えば、動物生体中に存
在する天然に存在するポリヌクレオチドまたはポリペプチドは単離されないが、
自然系において共存する材料の一部または全部から分離される同ポリヌクレオチ
ドもしくはＤＮＡまたはポリペプチドは単離される。そのようなポリヌクレオチ
ドはベクターの一部であり得、および／またはそのようなポリヌクレオチドもし
くはポリペプチドは、組成物の一部であり得、さらにベクターもしくは組成物は
天然環境の一部ではないという点で単離される。
【００５１】 用語「ポリペプチド」は、ポリマーの長さにかかわらずアミノ酸のポリマーを
指し、従って、ペプチド、オリゴペプチド、タンパク質は、ポリペプチドの定義
内に含まれる。この用語はまた、ポリペプチドの発現後修飾を指定するものでも
除外するものでもなく、例えば、グリコシル基、アセチル基、リン酸基、脂質基
などの共有結合を含むポリペプチドが、用語ポリペプチドによって特に意図され
る。（例えば、非天然のアミノ酸、関連のない生物学的系において天然にのみ存
在するアミノ酸、哺乳動物系由来の修飾されたアミノ酸などを含む）アミノ酸の
１以上の類似体、置換された連結、および天然および非天然の両方に存在する当
該分野において公知の他の修飾を有するポリペプチドも定義内に含まれる。
【００５２】 用語「組換えポリペプチド」は、人工的に設計されており、それらの最初の天
然環境において連続ポリペプチド配列として見出されていない少なくとも２つの
ポリペプチド配列を含むポリペプチドを指すか、または組換えポリヌクレオチド
から発現されているポリペプチドを指すために本明細書において使用される。
【００５３】 用語「精製された」は、核酸、脂質、炭水化物および他のタンパク質を含むが
それらに限定されない他の化合物から分離されている本発明のポリペプチドを記
載するために本明細書において使用される。サンプルの少なくとも約５０％、好
ましくは６０〜７５％が単一ポリペプチド配列を示す場合、ポリペプチドは実質
的に純粋である。実質的に純粋なポリペプチドは、典型的に約５０％、好ましく
は６０〜９０％重量／タンパク質サンプルの重量を含み、より通常的には約９５
％、好ましくは約９９％以上が純粋である。ポリペプチドの純度または等質性は
、サンプルのポリアクリルアミドゲル電気泳動、続くゲルの染色に基づく単一ポ
リペプチドバンドの可視化などの当該分野において周知の多くの手段によって示
される。特定の目的のために、ＨＰＬＣまたは当該分野において周知の他の手段
を用いることによって、より高い分離度を提供することができる。
【００５４】 本明細書において使用される用語「非ヒト動物」は、任意の非ヒト脊椎動物、
トリおよびより通常的には哺乳動物、好ましくは、霊長類、ブタ、ヤギ、ヒツジ
、ロバおよびウマなどの家畜、ウサギまたはげっ歯類、より好ましくはラットま
たはマウスを指す。本明細書において使用される用語「動物」は、任意の脊椎動
物、好ましくは哺乳動物を指すために使用される。両用語「動物」および「哺乳
動物」は、用語「非ヒト」の前置きがない限りヒト被験者を特に含む。
【００５５】 本明細書において使用される用語「抗体」は、少なくとも１つの結合ドメイン
を含むポリペプチドまたはポリペプチドの群を指し、ここで、抗体結合ドメイン
は、抗原との免疫学的反応を可能にする抗原の抗原決定基の特徴に相補的な内部
表面形状および電荷分布を有する３次元結合空間を形成するための抗体分子の可
変ドメインの折り畳みから形成される。抗体は、結合ドメイン、およびＦａｂ、
Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ）2、およびＦ（ａｂ’）2フラグメントを含むフラグメント
を含む組換えタンパク質を含む。
【００５６】 本明細書において使用される「抗原決定基」は、抗原分子の一部（この場合、
抗原−抗体反応の特異性を決定するＴＢＣ−１ポリペプチド）である。「エピト
ープ」は、ポリペプチドの抗原決定基を指す。エピトープはエピトープに特有な
空間コンホメーションにおける僅か３アミノ酸を含み得る。一般的に、エピトー
プは、少なくとも６アミノ酸、より通常的には少なくとも８〜１０のそのような
アミノ酸から成る。エピトープを構成するアミノ酸を決定する方法としては、Ｘ
線結晶学、２次元核磁気共鳴、およびエピトープマッピング（例えば、Ｇｅｙｓ
ｅｎら、１９８４に記載のペプスカン法；ＰＣＴ公開Ｎｏ．ＷＯ８４／０３５６
４；およびＰＣＴ公開Ｎｏ．ＷＯ８４／０３５０６）などが挙げられる。
【００５７】 本明細書を通して、表現「ヌクレオチド配列」は、ポリヌクレオチドもしくは
オリゴヌクレオチドまたは核酸を無差別に表すために用いられ得る。より正確に
は、表現「ヌクレオチド配列」は核酸材料自体を含み、従って、特定のＤＮＡま
たはＲＮＡ分子を生化学的に特徴づける配列情報（即ち、４塩基文字の間から選
択される文字の連続）を制限するものではない。
【００５８】 本明細書において交換可能に使用される用語「オリゴヌクレオチド」、および
「ポリヌクレオチド」は、一本鎖または二本鎖の形での１ヌクレオチド以上のＲ
ＮＡ、ＤＮＡ、またはＲＮＡ／ＤＮＡハイブリッド配列を含む。本明細書におい
て形容詞として使用される用語「ヌクレオチド」は、一本鎖または二本鎖の形の
任意の鎖長のＲＮＡ、ＤＮＡ、またはＲＮＡ／ＤＮＡハイブリッド配列を含む分
子を記載する。用語「ヌクレオチド」も本明細書において名詞として使用され、
個々のヌクレオチド、またはプリンもしくはピリミジン、リボースもしくはデオ
キシリボース糖部分、およびリン酸基、またはオリゴヌクレオチドもしくはポリ
ヌクレオチド内のヌクレオチドの場合はホスホジエステル結合を含む分子、また
は大きな核酸分子の個々の単位を意味する多様なヌクレオチドを指す。用語「ヌ
クレオチド」も本明細書において使用され、少なくとも１個の修飾（ａ）代替的
連結基、（ｂ）プリンの類似形態、（ｃ）ピリミジンの類似形態、または（ｄ）
類似糖、例えば、類似連結基、プリン、ピリミジン、および糖を含む「修飾され
たヌクレオチド」を含む（例えば、ＰＣＴ公開Ｎｏ．ＷＯ９５／０４０６４を参
照のこと）。しかし、本発明のポリヌクレオチドは、好ましくは、５０％を超え
る従来のデオキシリボースヌクレオチド、最も好ましくは９０％を超える従来の
デオキシリボースヌクレオチドを含む。本発明のポリヌクレオチド配列は、合成
、組換え、ｅｘ ｖｉｖｏ作製、またはそれらの組み合わせを含む任意の既知の
方法によって、ならびに当該分野において公知の任意の精製方法を利用して、調
製され得る。
【００５９】 用語「ヘテロ接合性率」は、特定の対立遺伝子においてヘテロ接合性である集
団における個体の発症率を指すために本明細書において使用される。バイアレリ
ック系において、ヘテロ接合性率は、平均で２Ｐa（１−Ｐa）に等しい。式中、
Ｐaは少なくとも一般の対立遺伝子の頻度である。遺伝子研究において有用であ
るためには、遺伝子マーカーは、適切なレベルのヘテロ接合性を有し、無作為に
選択されたヒトがヘテロ接合性である合理的な確率を可能にするべきである。
【００６０】 本明細書で使用される用語「遺伝子型」は、個体またはサンプル中に存在する対
立遺伝子の正体を指す。本明細書において、遺伝子型は、好ましくは個体または
サンプル中に存在するバイアレリックマーカーの説明を指す。用語バイアレリッ
クマーカーについてサンプルまたは個体の「遺伝子型を判定する」は、バイアレ
リックマーカーにおいて個体に担持される特異的対立遺伝子または特異的ヌクレ
オチドを決定することから成る。
【００６１】 本明細書において使用される用語「多型」は、２種以上の代替的ゲノム配列あ
るいは異なるゲノムもしくは個体間またはその間の対立遺伝子の発生を指す。「
多型性」は、特異的ゲノム配列の２種以上の変異体が集団において見出され得る
条件を指す。「多型性部位」は、変異が生じる遺伝子座である。単一のヌクレオ
チドの多型は、単一の塩基対の変化である。典型的に、単一のヌクレオチドの多
型は、多型性部位で１つのヌクレオチドがもう１つのヌクレオチドに置き換わる
ことである。単一のヌクレオチドの欠失または単一のヌクレオチドの挿入も、単
一のヌクレオチド多型を生じる。本発明において、「単一のヌクレオチド多型」
は、好ましくは、単一のヌクレオチドの置換を指す。しかし、多型はまた、少な
くとも１ヌクレオチド、好ましくは１〜５ヌクレオチドの挿入または欠失を含み
得る。典型的に、異なるゲノム間または異なる個体間では、多型性部位は異なる
２ヌクレオチドに占有され得る。
【００６２】 用語「バイアレリック多型」および「バイアレリックマーカー」は、本明細書
において交換可能に使用され、集団において極めて高頻度で２つの対立遺伝子を
有する単一のヌクレオチド多型を指す。「バイアレリックマーカー対立遺伝子」
は、バイアレリックマーカー部位に存在するヌクレオチド変異体を指す。典型的
に、本発明のバイアレリックマーカーのそれ程一般的ではない対立遺伝子の頻度
は、１％を超えることが確認されており、好ましくは、頻度は１０％を超え、よ
り好ましくは、頻度は少なくとも２０％（即ち、少なくとも０．３２のヘテロ接
合性率）であり、さらにより好ましくは、頻度は少なくとも３０％（少なくとも
０．４２のヘテロ接合性率）である。それ程一般的ではない対立遺伝子の頻度が
３０％以上であるバイアレリックマーカーを「高品質バイアレリックマーカー」
と呼ぶ。
【００６３】 ポリヌクレオチドの中央部について、ポリヌクレオチドにおけるヌクレオチド
の位置決定については、以下の方法で本明細書に記載する。ポリヌクレオチドが
奇数のヌクレオチドを有する場合、ポリヌクレオチドの３’および５’末端から
等距離のヌクレオチドをポリヌクレオチドの「中央部」とし、中央部のヌクレオ
チドの直ぐ隣の任意のヌクレオチド、または中央部自体のヌクレオチドを「中央
部の１ヌクレオチド内」とする。ポリヌクレオチドにおいて奇数のヌクレオチド
を伴う場合、ポリヌクレオチドの中間の５ヌクレオチド位置のいずれかを中央部
の２ヌクレオチド内にあるなどとする。ポリヌクレオチドが偶数のヌクレオチド
を有する場合、ポリヌクレオチドの中央部には結合が存在し、ヌクレオチドは存
在しない。従って、２つの中央ヌクレオチドのいずれか一方は「中央部の１ヌク
レオチド内」にあるとし、ポリヌクレオチドの中間の４ヌクレオチドのいずれか
を「中央部の２ヌクレオチド内」にあるなどとする。１ヌクレオチド以上の置換
、挿入または欠失を含む多型では、多型の置換された、挿入された、または欠失
されたポリヌクレオチドおよびポリヌクレオチドの３’末端からの距離と、多型
の置換された、挿入された、または欠失されたポリヌクレオチドおよびポリヌク
レオチドの５’末端からの距離との間の差異が０もしくは１ヌクレオチドである
場合、多型、対立遺伝子またはバイアレリックマーカーは、ポリヌクレオチドの
「中央部」にある。この差異が０〜３である場合、多型は「中央部の１ヌクレオ
チド内」にあるとする。差異が０〜５である場合、多型は「中央部の２ヌクレオ
チド内」にあるとする。差異が０〜７である場合、多型は「中央部の３ヌクレオ
チド内」にあるとする、などとする。
【００６４】 本明細書で使用される用語「バイアレリックマーカーを規定するとは」、配列
がバイアレリックマーカー由来の多型性塩基を含むことを意味する。バイアレリ
ックマーカーを規定する配列は、それらの意図される用途に一致する任意の長さ
であり得る。但し、それらはバイアレリックマーカー由来の多型性塩基を含有す
る。配列は、１〜５００ヌクレオチド長、好ましくは５、１０、１５、２０、２
５、または４０〜２００ヌクレオチド長、より好ましくは３０〜５０ヌクレオチ
ド長を有する。従って、それぞれのバイアレリックマーカーは、相互に比較した
場合、１つの位置でヌクレオチド修飾が存在する遺伝子に含まれる２つの形のポ
リヌクレオチド配列に対応する。好ましくは、バイアレリックマーカーを規定す
る配列は、バイアレリックマーカーＡ１〜Ａ１９およびその相補体から成る群よ
り選択される多型性塩基を含む。いくつかの実施態様において、バイアレリック
マーカーを規定する配列は、Ｐ１〜Ｐ７、Ｐ９〜Ｐ１３、Ｐ１５〜Ｐ１９および
その相補体から成る群より選択される配列の１つを含む。同様に、用語「マーカ
ー」または「バイアレリックマーカー」は、多型性対立遺伝子を実際的に（しか
し必ずしも不明瞭ではない）同定するために配列が十分な長さであることを必要
とし、通常、少なくとも４、５、６、１０、１５、２０、２５、または４０ヌク
レオチドの長さであることを意味する。
【００６５】 用語「上流」は、特定の参照点からポリヌクレオチドの５’末端方向への位置
を指すために使用される。
【００６６】 用語「塩基対」および「ワトソンとクリックの塩基対」は、本明細書において
交換可能に使用され、２つの水素結合によってアデニンに結合するチミンまたは
ウラシル残基および３つの水素結合によって結合するシトシンおよびグアニン残
基を有する二重らせんＤＮＡに見出されるような方法（Ｓｔｒｙｅｒ，Ｌ．，Ｂ
ｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ、第４版、１９９５）で、それらの配列の同一性により
相互に水素結合し得るヌクレオチドを指す。
【００６７】 用語「相補的」または「その相補体」は、相補領域全体を通して、もう１つの
特定されたポリヌクレオチドにワトソンとクッリクの塩基対を形成し得るポリヌ
クレオチドの配列を指す。本発明の目的のために、第１のポリヌクレオチドのそ
れぞれの塩基がその相補塩基と対を形成する場合、第１のポリヌクレオチドは第
２のポリヌクレオチドに相補的であると見なす。相補的塩基とは、一般にＡとＴ
（もしくはＡとＵ）、またはＣとＧである。「相補体」は「相補的ポリヌクレオ
チド」、「相補的核酸」および「相補的ヌクレオチド配列」の同義語として本明
細書において使用される。これらの用語は単にそれらの配列に基づき、２つのポ
リヌクレオチドが実際に結合する任意の特定の組の条件によらないポリヌクレオ
チドの対に適用される。
【００６８】 変異体およびフラグメント １．ポリヌクレオチド 本発明はまた、本明細書に記載のポリヌクレオチド、特に本発明の１以上のバ
イアレリックマーカーを含有するＴＢＣ−１遺伝子の変異体またはフラグメント
に関する。
【００６９】 本明細書において使用される用語ポリヌクレオチドの変異体は、参照ポリヌク
レオチドとは異なるポリヌクレオチドである。ポリヌクレオチドの変異体は、天
然に存在する対立遺伝子変異体などの天然に存在する変異体であり得るか、また
は該変異体は、天然に存在することが知られていない変異体であり得る。ポリヌ
クレオチド、細胞または生物に適用される変異誘発技法を含む変異誘発技法によ
って、ポリヌクレオチドのそのような天然に存在しない変異体を作製し得る。一
般に、参照および変異体のヌクレオチド配列が全体的に極めて類似しており、多
くの領域において同一であるように、差異が制限される。
【００７０】 本発明のポリヌクレオチドの変異体としては、配列番号１〜４のいずれかの配
列もしくはそれに相補的な配列または配列番号１〜４のいずれかの配列の少なく
とも８連続ヌクレオチドの任意のポリヌクレオチドフラグメントもしくはそれに
相補的な配列に対して少なくとも９５％同一であるヌクレオチド配列、好ましく
は少なくとも９８％同一、より詳細には少なくとも９９．５％同一、最も好まし
くは、配列番号１〜４のいずれかの配列もしくはそれに相補的な配列または配列
番号１〜４のいずれかの配列の少なくとも８連続ヌクレオチドの任意のポリヌク
レオチドフラグメントもしくはそれに相補的な配列に対して少なくとも９９．９
％同一であるヌクレオチド配列が挙げられるが、それらに限定されない。
【００７１】 変異体のヌクレオチドの変化はサイレントであってもよく、これは、それらが
ポリヌクレオチドによってコードされるアミノ酸を変化しないことを意味する。
【００７２】 しかし、ヌクレオチドの変化はまた、参照配列によってコードされるポリペプ
チドのアミノ酸置換、付加、欠失、融合および切断をもたらし得る。置換、欠失
または付加は１以上のヌクレオチドを含み得る。変異体はコードまたは非コード
領域または両方において変化され得る。コード領域の変化は、保存的または非保
存的アミノ酸置換、欠失または付加を産生し得る。
【００７３】 本発明について、特に好ましい実施態様は、ポリヌクレオチドが、成熟ＴＢＣ
−１タンパク質と実質的に同一の生物学的機能または活性を保持するポリペプチ
ドをコードする実施態様である。
【００７４】 ポリヌクレオチドフラグメントは、全体的に所定のヌクレオチド配列、好まし
くはＴＢＣ−１遺伝子、およびその変異体のヌクレオチド配列の全てではないが
一部と同一である配列を有するポリヌクレオチドである。フラグメントは、ＴＢ
Ｃ−１遺伝子のエキソンまたはイントロンの一部であり得る。該フラグメントは
また、ＴＢＣ−１遺伝子の調節配列の一部であり得る。好ましくは、そのような
フラグメントは、バイアレリックマーカーＡ１〜Ａ１９およびその相補体から成
る群より選択されるバイアレリックマーカーの多型性塩基を含む。
【００７５】 そのようなフラグメントは、「遊離状態（ｆｒｅｅ−ｓｔａｎｄｉｎｇ）」、
即ち、他のポリヌクレオチドの一部ではなく、他のポリヌクレオチドに融合して
いないか、または該フラグメントは、それらが一部または領域を形成する単一の
より大きなポリヌクレオチド内に含まれ得る。しかし、いくつかのフラグメント
は、単一のより大きなポリヌクレオチド内に含まれ得る。
【００７６】 本発明のポリヌクレオチドフラグメントの代表的例として、約４、６、８、１
５、２０、２５、４０、１０〜２０、１０〜３０、３０〜５５、５０〜１００、
７５〜１００または１００〜２００ヌクレオチド長を有する上記のポリヌクレオ
チドフラグメントが存在し得る。Ｐ１〜Ｐ７、Ｐ９〜Ｐ１３、Ｐ１５〜Ｐ１９の
ラグメントなどの約４９ヌクレオチド長を有するフラグメントまたはそれらに相
補的な配列を有し、本明細書に記載のＴＢＣ−１遺伝子のバイアレリックマーカ
ーの少なくとも１つを含有するそれらのフラグメントが好ましい。
【００７７】 ２．ポリペプチド 本発明はまた、変異型ＴＢＣ−１タンパク質を含む本明細書に記載のポリペプ
チドの変異体、フラグメント、類似体および誘導体に関する。
【００７８】 変異体は、１）１以上のアミノ酸残基が保存的または非保存的アミノ酸残基（
好ましくは保存的アミノ酸残基）で置換されている変異体であり、そのような置
換されたアミノ酸残基は遺伝子コードによってコードされるアミノ酸残基であっ
てもそうでなくてもよいか、あるいは２）１以上のアミノ酸残基が置換基を含む
変異体であるか、あるいは３）変異型ＴＢＣ−１が、ポリペプチドの半減期を増
加する化合物（例えば、ポリエチレングリコール）などのもう１つの化合物に融
合している変異体であるか、あるいは４）付加アミノ酸が、リーダーもしくは分
泌配列または変異型ＴＢＣ−１もしくはプレタンパク質の精製に用いられる配列
などの変異型ＴＢＣ−１に融合した変異体であり得る。そのような変異体は、当
業者の範囲内にあると見なす。
【００７９】 より詳細には、変異体ＴＢＣ−１ポリペプチドは、１アミノ酸の１、２、３、
４、５、１０〜２０の範囲の置換、付加または欠失のアミノ酸の変化、好ましく
は、１〜１０、より好ましくは１〜５、最も好ましくは１アミノ酸の１〜３の置
換、付加または欠失を含む。好ましいアミノ酸の変化は、天然のＴＢＣ−１タン
パク質に対して惹起される抗体によって認識されるべき変異体ＴＢＣ−１ポリペ
プチドの生物学的活性もしくは能力にほとんどまたはまったく影響を及ぼさない
アミノ酸の変化である。
【００８０】 本発明の相同的ペプチドとは、ＴＢＣ−１ポリペプチドのアミノ酸配列中に１
またはいくつかのアミノ酸付加、欠失および／または置換を含有するポリペプチ
ドを意味する。アミノ酸置換の場合、１またはいくつかの連続もしくは非連続ア
ミノ酸が「等価な」アミノ酸によって置き換わる。
【００８１】 表現「等価な」アミノ酸は、本明細書において使用され、ペプチド化学の分野に
おける当業者がポリペプチドの２次構造および水治療性質（ｈｙｄｒｏｐａｔｈ
ｉｃ ｎａｔｕｒｅ）を予測するような類似の特性を有するアミノ酸の１つの代
わりに置換され得る任意のアミノ酸を表す。一般に、アミノ酸の以下の群は、等
価な変化を表す：（１）Ａｌａ、Ｐｒｏ、Ｇｌｙ、Ｇｌｕ、Ａｓｐ、Ｇｌｎ、Ａ
ｓｎ、Ｓｅｒ、Ｔｈｒ；（２）Ｃｙｓ、Ｓｅｒ、Ｔｙｒ、Ｔｈｒ；（３）Ｖａｌ
、Ｉｌｅ、Ｌｅｕ、Ｍｅｔ、Ａｌａ、Ｐｈｅ；（４）Ｌｙｓ、Ａｒｇ、Ｈｉｓ；
（５）Ｐｈｅ、Ｔｙｒ、Ｔｒｐ、Ｈｉｓ。
【００８２】 本発明の等価なアミノ酸はまた、Ｄ型残基によるＬ型残基の置換またはピログ
ルタミン酸化合物によるグルタミン酸（Ｅ）残基の置換を意味する。少なくとも
１つのＤ型残基を含有するペプチドの合成については、例えば、Ｋｏｃｈ（１９
７７）に記載されている。
【００８３】 本発明の目的の修飾されたペプチド分子の特定の（しかし制限的ではない）実
施態様は、タンパク質分解に対して耐性であるペプチド分子にあり、−ＣＯＮＨ
−ペプチド結合が修飾され、（ＣＨ2ＮＨ）還元型結合、（ＮＨＣＯ）逆向き（
ｒｅｔｒｏ ｉｎｖｅｒｓｏ）結合、（ＣＨ2−Ｏ）メチレンオキシ結合、（Ｃ
Ｈ2−Ｓ）チオメチレン結合、（ＣＨ2ＣＨ2）炭素（ｃａｒｂａ）結合、（ＣＯ
−ＣＨ2）セトメチレン（ｃｅｔｏｍｅｔｈｙｌｅｎｅ）結合、（ＣＨＯＨ−Ｃ
Ｈ2）ヒドロキシエチレン結合、（Ｎ−Ｎ）結合、Ｅ−アルセン（ａｌｃｅｎｅ
）結合または−ＣＨ＝ＣＨ−結合によって置き換えられるペプチドである。
【００８４】 本発明のポリペプチドは翻訳後修飾であってもよい。例えば、該ポリペプチド
は、以下の修飾：アセチレン、ジスルフィド結合形成、プレニル化、カルボキシ
メチル化およびリン酸化を表し得る。
【００８５】 ポリペプチドフラグメントは、全体的に所定のポリペプチド配列、好ましくは
ＴＢＣ−１遺伝子およびその変異体によってコードされるポリペプチドの全てで
はないが一部と同一である配列を有するポリペプチドである。好ましいフラグメ
ントは抗原特性を有するそれらの領域を含み、ＴＢＣ−１タンパク質に対する抗
原を惹起するのに使用することができる。
【００８６】 そのようなフラグメントは、「遊離状態」、即ち、他のポリペプチドの一部で
はなく、他のポリヌクレオチドに融合していないか、または該フラグメントは、
それらが一部または領域を形成する単一のより大きなポリヌクレオチド内に含ま
れ得る。しかし、いくつかのフラグメントは、単一のより大きなポリヌクレオチ
ド内に含まれ得る。
【００８７】 本発明のポリペプチドフラグメントの代表的例として、ＴＢＣ−１の少なくと
も約５、６、７、８、９または１０〜１５、１０〜２０、１５〜４０、または３
０〜５５アミノ酸を含む上記のポリペプチドフラグメントが存在し得る。いくつ
かの実施態様において、フラグメントは、ＴＢＣ−１タンパク質において少なく
とも１つのアミノ酸変異を含有する。
【００８８】 核酸またはポリペプチド間の同一性 用語「配列同一性の％」および「相同性％」は、本明細書に交換可能に使用さ
れ、ポリヌクレオチドおよびポリペプチド間の比較を指し、２つの随意的に整合
された（ａｌｉｇｎｅｄ）配列を比較ウインドウと比較することによって決定さ
れる。ここで、比較ウインドウのポリヌクレオチドまたはポリペプチド配列の一
部は、２つの配列の最適アラインメントに対する対照配列（付加または欠失を含
まない）と比較して付加または欠失（即ち、ギャップ）を含み得る。百分率は、
両配列において同一核酸塩基またはアミノ酸残基が生じる位置の数を決定して一
致した位置の数を得、一致した位置の数を比較のウインドウにおける位置の総数
で割り、その結果に１００を乗じて配列同一性の百分率を得ることにより算出さ
れる。相同性は、当該分野において公知の様々な配列比較アルゴリズムおよびプ
ログラムのいずれかを使用して評価される。そのようなアルゴリズムおよびプロ
グラムとしては、ＴＢＬＡＳＴＮ、ＢＬＡＳＴＰ、ＦＡＳＴＡ、ＴＦＡＳＴＡ、
およびＣＬＵＳＴＡＬＷ（ＰｅａｒｓｏｎおよびＬｉｐｍａｎ，１９８８；Ａｌ
ｔｃｈｕｌら、１９９０；Ｔｈｏｍｐｓｏｎら、１９９４；Ｈｉｇｇｉｎｓら、
１９９６；Ａｌｔｓｃｈｕｌら、１９９３）が挙げられるが、これらに限定され
ない。特に好ましい実施態様では、タンパク質および核酸配列相同性は、当該分
野において周知のＢａｓｉｃ Ｌｏｃａｌ Ａｌｉｇｎｍｅｎｔ Ｓｅａｒｃｈ
Ｔｏｏｌ（「ＢＬＡＳＴ」）（例えば、ＫａｒｌｉｎおよびＡｌｔｓｃｈｕｌ
、１９９０；Ａｌｔｓｈｕｌら、１９９０、１９９３、１９９７を参照のこと）
を使用して評価される。特に、５つの特異的ＢＬＡＳＴプログラムを使用して以
下の仕事が実施される。 （１）ＢＬＡＳＴＰおよびＢＬＡＳＴ３は、タンパク質配列データベースに対
してアミノ酸疑問（ｑｕｅｒｙ）配列を比較する； （２）ＢＬＡＳＴＮは、ヌクレオチド配列データベースに対してヌクレオチド
疑問配列を比較する； （３）ＢＬＡＳＴＸは、タンパク質配列データベースに対して疑問ヌクレオチ
ド配列（両鎖）の６フレーム概念翻訳産物を比較する； （４）ＴＢＬＡＳＴＮは、全ての６つのリーディングフレーム（両鎖）におい
て翻訳されるヌクレオチド配列データベースに対して疑問タンパク質配列を比較
する；および （５）ＴＢＬＡＳＴＸは、ヌクレオチド配列データベースの６フレーム翻訳に
対してヌクレオチド疑問配列の６フレーム翻訳を比較する。 ＢＬＡＳＴプログラムは、本明細書において疑問アミノ酸または核酸配列と試験
配列（好ましくはタンパク質もしくは核酸配列データベースから得られる）との
間の「高スコアセグメント対」と呼ばれる同様のセグメントを同定することによ
って、相同配列を同定する。高スコアセグメント対は、好ましくはスコアマトリ
ックスの手段によって同定（即ち、整合）され、これらの多くは当該分野におい
て公知である。好ましくは、使用されるスコアマトリックスはＢＬＯＳＵＭ６２
マトリックス（Ｇｏｎｎｅｔら、１９９２；ＨｅｎｉｋｏｆｆおよびＨｅｎｉｋ
ｏｆｆ、１９９３）である。それほど好ましくはないが、ＰＡＭまたはＰＡＭ２
５０マトリックスを使用してもよい（例えば、ＳｃｈｗａｒｔｚおよびＤａｙｈ
ｏｆｆ編、１９７８を参照のこと）。ＢＬＡＳＴプログラムは、同定される全て
の高スコアセグメント対の統計的有意性を評価し、好ましくは、使用者に指定さ
れた相同性％などの使用者に指定された有意性の閾値を満たすそれらのセグメン
トを選択する。好ましくは、高スコアセグメント対の統計的有意性は、Ｋａｒｌ
ｉｎ（例えば、ＫａｒｌｉｎおよびＡｌｔｓｃｈｕｌ、１９９０を参照のこと）
の統計的有意性の式を使用して評価される。
【００８９】 ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件 高ストリンジェンシーの条件を使用する方法を例示的かつ非制限的に以下に示す
。ＤＮＡを含有するフィルターのプレハイブリダイゼーションを、６×ＳＳＣ、
５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．５）、１ｍＭ ＥＤＴＡ、０．０２％Ｐ
ＶＰ、０．０２％フィコール、０．０２％ＢＳＡ、および５００μｇ／ｍｌ変性
サケ精子ＤＮＡを含む緩衝液中、６５℃で８時間〜１晩行う。フィルターを、１
００μｇ／ｍｌ変性サケ精子ＤＮＡおよび５〜２０×１０6ｃｐｍの32Ｐ標識プ
ローブを含有するプレハイブリダイゼーション混合物中、６５℃（好ましいハイ
ブリダイゼーション温度）で４８時間ハイブリダイズする。あるいは、ＳＳＣ緩
衝液、０．１５Ｍ ＮａＣｌおよび０．０５Ｍ クエン酸Ｎａに対応する１×Ｓ
ＳＣの存在下、ハイブリダイゼーション工程を６５℃で実施することができる。
続いて、フィルターを２×ＳＳＣ、０．０１％ＰＶＰ、０．０１％フィコール、
および０．０１％ＢＳＡを含有する溶液中、３７℃で１時間洗浄し、続いて、０
．１×ＳＳＣ中５０℃で４５分間洗浄することができる。あるいは、フィルター
を２×ＳＳＣおよび０．１％ＳＤＳ、または０．５×ＳＳＣおよび０．１％ＳＤ
Ｓ、または０．１×ＳＳＣおよび０．１％ＳＤＳを含有する溶液中６８℃で１５
分間隔で洗浄することができる。洗浄工程後、ハイブリダイズされたプローブは
、オートラジオグラフィーによって検出可能である。使用されえる高ストリンジ
ェンシーの他の条件は当該分野において周知であり、Ｓａｍｂｒｏｏｋら、１９
８９；およびＡｕｓｕｂｅｌら、１９８９において引用され、その全体が本明細
書に援用される。これらのハイブリダイゼーション条件は、約２０ヌクレオチド
長の核酸分子に適切である。上記のハイブリダイゼーション条件は、所望の核酸
の長さに従い、当業者に周知の技法に従って適応されるべきである。適切なハイ
ブリダイゼーション条件は、例えば、ＨａｍｅｓおよびＨｉｇｇｉｎｓ（１９８
５）またはＳａｍｂｒｏｏｋら（１９８９）において開示されている技法に従っ
て適応され得る。
【００９０】 第４染色体上の候補領域（連結分析） 家族から開始する前立腺ガン遺伝子の位置を決定するために、Ｊｅａｎ Ｗｅ
ｉｓｓｅｎｂａｃｈチーム（Ｄｉｂら、１９９６）によりＧｅｎｅｔｈｏｎ研究
所において記載のマイクロサテライトタイプのマーカーを使用する遺伝的系統調
査の系統的家族研究を行う。
【００９１】 遺伝的系統または「連結」の研究は、染色体上の２つの隣接する配列は、減数
分裂中に交差によって組換えを起こさない（稀に起こす）という原理に基づく。
本研究を行うために、研究対象である疾患と共に定常的に同時遺伝するマイクロ
サテライトＤＮＡ配列（染色体マーカー）をこの疾患の素因を有する家族につい
て調査する。ジ−、トリ−またはテトラヌクレオチドの反復の形態で組織化され
るこれらのＤＮＡ配列は、ゲノムに沿って系統的に存在し、それらを有する染色
体フラグメントの同定を可能にする。Ｊｅａｎ Ｗｅｉｓｓｅｎｂａｃｈの監督
下でＧｅｎｅｔｈｏｎにおいて作成された遺伝子地図、および物理地図（「酵母
人工染色体」を使用する）（Ｃ．Ｅ．Ｐ．Ｈ．においてＤａｎｉｅｌ Ｃｏｈｅ
ｎによりおよびＧｅｎｅｔｈｏｎ（Ｃｈｕｍａｋｏｖら、１９９５）において行
われた研究）上での最初の研究の結果として、５０００を超えるマイクロサテラ
イトマーカーのゲノム上の正確な位置が決定されている。遺伝子系統分析では、
家系図、疾患の伝達、およびマーカーの伝達に従い標的遺伝子と使用する染色体
マーカーとの組換えの確率を計算する。従って、所定のマーカーの特定の対立遺
伝子が、それを有する確率（０〜０．５の組換えレベル）よりも高い頻度で疾患
と共に伝達される場合、問題の標的遺伝子はマーカーの付近に見出されることを
推定することが可能である。この技法を使用して、家族性ガンの遺伝的素因のい
くつかの遺伝子の位置を決定することが可能である。遺伝子系統研究に含まれ得
るためには、疾患の遺伝形態の影響を受けた家族が「情報」基準：世代あたりに
影響を受けた（およびその構成性ＤＮＡが利用可能である）被験体が数名いるこ
と、および最も望ましくは兄弟が多いことを満たさなければならない。
【００９２】 連結分析により、本発明者らは第４染色体上の前立腺ガンに対する候補領域を
同定した。実際に、マーカーＤ４Ｓ３９８に対して２．４９の値（このマーカー
と遺伝的関連がある可能性を示す）を示す約５０家族の全集団における該疾患と
マーカーとの間のＬＯＤスコアは２ポイントである。５マーカーの地図上におけ
るＬＯＤスコアの変動曲線はＤ４Ｓ３９８に集中し、数値が３．３を超える場合
は、家族性前立腺ガンに関与する遺伝子がおそらくマーカーＤ４Ｓ２９７８とＤ
４Ｓ３０１８との間にある領域、または約９．７ｃＭの空間に見出されることを
示す。
【００９３】 新規のヒト遺伝子翻訳産物と既知のマウスタンパク質との相同性 この候補領域において新規のヒト遺伝子を見出した。該遺伝子はガンへの関与
について高い確率を示す。データベース相同性調査により、本発明者らはこの新
規のヒト遺伝子の翻訳産物が、ｔｂｃ１と呼ばれるマウスのタンパク質に有意に
同一性を有することを決定することができた。従って、本発明の新規のヒト遺伝
子は、本明細書を通してＴＢＣ−１と呼んでいる。ＴＢＣ−１は、新規のタンパ
ク質、ＴＢＣ−１タンパク質をコードするオープンリーディングフレームを含む
。配列の相同性、ＴＢＣ−１アミノ酸配列の一部と既知のｔｂｃ１マウスタンパ
ク質とのアラインメントに基づき、ＴＢＣ−１タンパク質は、細胞周期および様
々な組織の分化において役割を果たし得ることが予測される。実際に、ＴＢＣ−
１タンパク質は、ｔｒｅ２ガン遺伝子ならびに有糸分裂のＢＵＢ２およびｃｄｃ
１６の酵母調節因子における領域に相同であるＴＢＣドメインと呼ばれる２００
アミノ酸ドメインを含有する。
【００９４】 マウスｔｂｃ１遺伝子のｃＤＮＡについては、米国特許第５，７００，９２７
号に記載されており、該ｃＤＮＡは１１４１アミノ酸は推定タンパク質産物をコ
ードする。マウスｔｂｃ１タンパク質のＮ末端は、成熟ポリペプチドにおいて亜
鉛フィンガー構造を形成し得るシステインおよびヒスチジンのストレッチを含有
する。該Ｎ末端はまた、核局在化シグナルに関与し得る塩基性アミノ酸の短いス
トレッチを含む。マウスｔｂｃ１タンパク質のＴＢＣドメインは、ＢＵＢ２およ
びｃｄｃ１６において保存されるいくつかのチロシン残基を含有する。マウスｔ
ｂｃ１タンパク質のＣ末端は、ロイシンジッパーを形成しやすい偶数個に配置さ
れたロイシン残基の長いストレッチを含有する。
【００９５】 マウスｔｂｃ１遺伝子は、精巣および腎臓において高度に発現されることが明
らかにされている。しかし、肺、脾臓、脳、および心臓においてより低いレベル
の発現も同定されている。さらに、マウスｔｂｃ１は、細胞および段階特異的様
式で発現される核タンパク質である。
【００９６】 マウス骨髄の研究により、赤血球系細胞および巨核球は、実質的レベルのマウ
スｔｂｃ１タンパク質を発現するが、成熟好中球では検出されないことが実証さ
れている。同様に、精原細胞はマウスｔｂｃ１を発現しないが、第一および第二
精母細胞は大量のｔｂｃ１を発現する。生殖細胞の分化の後半では、ｔｂｃ１レ
ベルは精子細胞および活性精液において減少するようである。従って、精原細胞
の精母細胞への分化プログラムは、マウスｔｂｃ１の発現の重要なアップレギュ
レーションを含む。
【００９７】 マウスｔｂｃ１の一般的分布は組織特異的ではなく、個体組織内の細胞特異的
であり、組織の分化に密接に関連する。特に造血および生殖細胞におけるマウス
ｔｂｃ１の発達段階の発現は、この遺伝子がいくつかの組織の最終的分化プログ
ラムにおいて役割を果たすことを示唆する。
【００９８】 従って、ＴＢＣ−１タンパク質の生物学的活性に変化をもたらすＴＢＣ−１遺
伝子の発現またはＴＢＣ−１タンパク質のアミノ酸配列の変化は、直接的または
間接的に細胞増殖異常およびそれによるガン、特に前立腺ガンなどの異常細胞増
殖に関連する疾患を引き起こす可能性がある。
【００９９】 ＴＢＣ−１のゲノム配列 本発明はＴＢＣ−１のゲノム配列に関する。本発明は、ＴＢＣ−１遺伝子、ま
たは配列番号１および２、それに相補的な配列、ならびにそのフラグメントおよ
び変異体から成る群より選択される配列から成る、本質的に成るもしくは含むＴ
ＢＣ−１ゲノム配列を包含する。これらのポリヌクレオチドは精製されるか、単
離されるか、または組換え体であり得る。
【０１００】 本発明者らは、ＴＢＣ−１のゲノム配列の２つの部分の配列を決定した。ＴＢ
Ｃ−１遺伝子配列の第１の部分は、エキソン１、エキソン１ｂｉｓおよびエキソ
ン２と呼ばれるＴＢＣ−１遺伝子の３つの第１エキソン、ならびに転写される配
列の上流に位置する５’調節配列を含有する。ゲノム配列の第１の部分の配列を
配列番号１に開示する。第２の部分は、エキソンＡ、Ｂ、Ｃ、Ｄ、Ｅ、Ｆ、Ｇ、
Ｈ、Ｉ、Ｊ、Ｋ、およびＬと呼ばれるＴＢＣ−１遺伝子の最後の１２個のエキソ
ン、ならびに転写される配列の下流に位置する３’調節配列を含有する。
【０１０１】 配列番号１および２におけるエキソンの位置の詳細を表Ａに示す。
【０１０２】
【表１】
【０１０３】 イントロン１は、エキソン１とエキソン２との間に位置するヌクレオチド配列
を指す。イントロンｂｉｓは、エキソンｂｉｓとエキソン２との間に位置するヌ
クレオチド配列を指す。イントロンＡは、エキソンＡとエキソンＢとの間に位置
するヌクレオチド配列を指し、以下同様である。イントロンの位置の詳細につい
ては表Ａに示す。
【０１０４】 本発明の目的のために以後で規定するＴＢＣ−１イントロンは、一般に当業者
が「イントロン」として理解するものとは正確には異なるため、従って、以下に
さらに規定する。
【０１０５】 一般に、イントロンは、ゲノムＤＮＡおよび非スプライシング化ｍＲＮＡ分子
の両方に存在するヌクレオチド配列として規定され、既にスプライシング事象を
経ているｍＲＮＡには存在しない。ＴＢＣ−１遺伝子の場合、本発明者らは、こ
の遺伝子が転写される場合、少なくとも２つの異なるスプライシング化ｍＲＮＡ
分子が産生されることを見出した。これについては本明細書のさらなるセクショ
ンにおいて詳細に記載する。第１のスプライシング化ｍＲＮＡ分子はエキソン１
および２を含む。従って、エキソン１と２との間に含まれるゲノムヌクレオチド
配列は、このイントロン配列がエキソン１ｂｉｓを含有するという事実にもかか
わらず第１のｍＲＮＡ分子に関するイントロン配列である。もちろん、これとは
対照的に、エキソン１ｂｉｓは第２のＴＢＣ−１ｍＲＮＡ分子に関するエキソン
ヌクレオチド配列である。
【０１０６】 本発明の目的のためにならびに異なる核酸の明確および明白な命名が包含され
るために、配列番号１または２のヌクレオチド配列のいずれかおよび配列番号３
または４のヌクレオチド配列のいずれかの両方に含有されるポリヌクレオチドは
、エキソン配列と見なされる。対照的に、配列番号１または２のヌクレオチド配
列のいずれかに含有される配列であるが、配列番号３のヌクレオチド配列および
配列番号４のヌクレオチド配列には両者とも存在しないヌクレオチド配列に含有
されるポリヌクレオチドは、イントロン配列とする。
【０１０７】 上記のＴＢＣ−１イントロンを規定する核酸は、試験サンプル中のＴＢＣ−１
遺伝子の１コピーの存在を検出するため、あるいはＴＢＣ−１イントロン配列内
の標的ヌクレオチド配列を増幅するためのオリゴヌクレオチドプライマーまたは
プローブとして使用することができる。
【０１０８】 従って、本発明は、本発明に記載のＴＢＣ−１遺伝子の１５個のエキソンから
成る群より選択されるヌクレオチド配列、もしくはそれに相補的な配列を含む精
製された、単離された、または組換体ポリヌクレオチドを包含する。本発明はま
た、ＴＢＣ−１遺伝子の少なくとも２つのエキソンの組み合わせを含む精製され
た、単離された、または組換えられた核酸であって、ここで、該ポリヌクレオチ
ドは、配列番号１および２と同一の順で前記核酸の５’末端から３’末端へ核酸
内に配列される、上記核酸を扱う。
【０１０９】 従って、本発明は、ＴＢＣ−１遺伝子のイントロンから成る群より選択される
ヌクレオチド配列、もしくはそれに相補的な配列を含む、精製された、単離され
た、または組換体ポリヌクレオチドを包含する。
【０１１０】 本発明はまた、配列番号１および２から成る群より選択される配列もしくはそ
れに相補的な配列またはそのフラグメントに少なくとも７０、７５、８０、８５
、９０、または９５％のヌクレオチド同一性を有するヌクレオチド配列を含む、
精製された、単離された、または組換体ポリヌクレオチドを包含する。配列番号
１または２のヌクレオチド配列に関するヌクレオチドの差異は、一般に核酸全体
を通して無作為に分布し得る。それにもかかわらず、好ましい核酸は、配列番号
１または２のヌクレオチド配列に関するヌクレオチドの差異がエキソンに含有さ
れるコード配列の外側に優位に位置する核酸である。核酸、ならびにそれらのフ
ラグメントおよび変異体は、試験サンプル中のＴＢＣ−１遺伝子の１コピーの存
在を検出するため、あるいはＴＢＣ−１配列内の標的ヌクレオチド配列を増幅す
るためのオリゴヌクレオチドプライマーまたはプローブとして使用することがで
きる。
【０１１１】 本発明のもう１つの目的は、上記で既定されたストリンジェントなハイブリダ
イゼーション条件下で、配列番号１および２から成る群より選択される配列もし
くはそれに相補的な配列またはそのフラグメントにハイブリダイズする、精製さ
れた、単離された、または組換えられた核酸から成る。
【０１１２】 本発明の特に好ましい核酸は、配列番号１および２から成る群より選択される
配列またはそれに相補的なヌクレオチド配列の少なくとも１２、１５、１８、２
０、２５、３０、３５、４０、５０、６０、７０、８０、９０、１００、１５０
、２００、５００、または１０００ヌクレオチドの連続スパンを含む単離された
、精製された、もしくは組換体ポリヌクレオチドを含む。本発明のさらに好まし
い核酸は、配列番号１の少なくとも１２、１５、１８、２０、２５、３０、３５
、４０、５０、６０、７０、８０、９０、１００、１５０、２００、５００、も
しくは１０００ヌクレオチドの連続スパンを含む、単離された、精製された、も
しくは組換体ポリヌクレオチドまたはその相補体を含み、ここで前記連続スパン
は、配列番号１の以下のヌクレオチド位置：１〜１０００、１００１〜２０００
、２００１〜３０００、３００１〜４０００、４００１〜５０００、５００１〜
６０００、６００１〜７０００、７００１〜８０００、８００１〜９０００、９
００１〜１００００、１０００１〜１１０００、１１００１〜１２０００、１２
００１〜１３０００、１３００１〜１４０００、１４００１〜１５０００、１５
００１〜１６０００、１６００１〜１７０００、および１７００１〜１７５９０
の少なくとも１、２、３、５、または１０を含む。本発明の他の好ましい核酸は
、配列番号２の少なくとも１２、１５、１８、２０、２５、３０、３５、４０、
５０、６０、７０、８０、９０、１００、１５０、２００、５００、もしくは１
０００ヌクレオチドの連続スパンを含む、単離された、精製された、もしくは組
換体ポリヌクレオチドまたはその相補体を含み、ここで前記連続スパンは、配列
番号２の以下のヌクレオチド位置：１〜５０００、５００１〜１００００、１０
００１〜１５０００、１５００１〜２００００、２０００１〜２５０００、２５
００１〜３００００、３０００１〜３５０００、３５００１〜４００００、４０
００１〜４５０００、４５００１〜５００００、５０００１〜５５０００、５５
００１〜６００００、６０００１〜６５０００、６５００１〜７００００、７０
００１〜７５０００、７５００１〜８００００、８０００１〜８５０００、８５
００１〜９００００、９０００１〜９５０００、および９５００１〜９９９６０
の少なくとも１、２、３、５、または１０を含む。
【０１１３】 本セクションの題目は「ＴＢＣ−１のゲノム配列」であるが、任意のサイズお
よび配列の核酸フラグメントも本セクションに記載のポリヌクレオチドに含まれ
得、２つ以上のそのようなゲノム配列の側面または間上のＴＢＣ−１のゲノム配
列をフランキングしている。
【０１１４】 ＴＢＣ−１ｃＤＮＡ配列 本発明者らは、ＴＢＣ−１遺伝子の発現により、少なくとも２つのｍＲＮＡ分
子の産物、それぞれ代替的スプライシング事象としての第１および第２のＴＢＣ
−１転写産物を生じることを発見した。それらは、２つの異なる第１エキソン、
即ち、エキソン１およびエキソン１ｂｉｓから生じる。
【０１１５】 第１の転写産物は、エキソン１、２、Ａ、Ｂ、Ｃ、Ｄ、Ｅ、Ｆ、Ｇ、Ｈ、Ｉ、
Ｊ、Ｋ、およびＬを含む。配列番号３のこのｃＤＮＡは、５’−ＵＴＲ領域を含
み、エキソン１の全体およびエキソン２の一部に及ぶ。この５’−ＵＴＲ領域は
、配列番号３のヌクレオチド配列の１位のヌクレオチドから開始し、１７０位の
ヌクレオチドで終止する。配列番号３のｃＤＮＡ配列は、配列番号３のヌクレオ
チド配列の３７２６位のヌクレオチドから開始し、３９８３位のヌクレオチドで
終止する。この第１の転写産物は、配列番号３のヌクレオチド配列の３９４２位
のヌクレオチドと３９４７位のヌクレオチドとの間に位置するポリアデニル化シ
グナルを有する。
【０１１６】 第２の転写産物は、エキソン１ｂｉｓ、２、Ａ、Ｂ、Ｃ、Ｄ、Ｅ、Ｆ、Ｇ、Ｈ
、Ｉ、Ｊ、Ｋ、およびＬを含む。配列番号４のこのｃＤＮＡは、配列番号４のヌ
クレオチド配列の１位のヌクレオチドから開始し、１７５位のヌクレオチドで終
止する５’−ＵＴＲ領域を含む。この第２のｃＤＮＡはまた、配列番号４のヌク
レオチド配列の３７３１位のヌクレオチドから開始し、３９８８位のヌクレオチ
ドで終止する３’−ＵＴＲ領域を含む。この第２の転写産物は、配列番号４のヌ
クレオチド配列の３９４７位のヌクレオチドと３９５２位のヌクレオチドとの間
に位置するポリアデニル化シグナルを有する。
【０１１７】 この第２のＴＢＣ−１ｍＲＮＡの５’末端配列、より詳細には配列番号４の分
子の核酸の１位のヌクレオチドと４５８位のヌクレオチドとの間に含まれるヌク
レオチド配列は、ヒト膵臓ｃＤＮＡライブラリーから得られており、ＰＣＴ出願
ＷＯ９６／３４９８１の教義に従って特徴づけられている５’−ＥＳＴのヌクレ
オチド配列に対応する。この５’−ＥＳＴも本発明の一部である。
【０１１８】 本発明のもう１つの目的は、配列番号３および４のヌクレオチド配列およびそ
の核酸フラグメントから成る群より選択されるポリヌクレオチドを含む精製され
たまたは単離された核酸から成る。
【０１１９】 配列番号３および４のヌクレオチド配列の好ましい核酸フラグメントは、ＴＢ
Ｃ−１タンパク質をコードするそれらのそれぞれのオープンリーディングフレー
ムを含むポリヌクレオチドにある。
【０１２０】 配列番号３および４のヌクレオチド配列の好ましい他の核酸フラグメントは、
それらのそれぞれの５’−ＵＴＲまたは３’−ＵＴＲ領域の少なくとも一部を含
むポリヌクレオチドにある。
【０１２１】 本発明はまた、配列番号３および４のヌクレオチド配列のいずれか１つ、また
はそのフラグメントに少なくとも９５％のヌクレオチド同一性を有する精製され
たまたは単離された核酸に関する。
【０１２２】 本発明のもう１つの目的は、本明細書に規定されたストリンジェントなハイブ
リダイゼーション条件下で配列番号３および４のヌクレオチド配列のいずれか１
つ、もしくはそれに相補的な配列またはそのフラグメントにハイブリダイズする
ポリヌクレオチドを含む、精製された、単離されたまたは組換えられた核酸から
成る。
【０１２３】 本発明はまた、配列番号３および４から成る群より選択される配列またはその
相補体の少なくとも１２、１５、１８、２０、２５、３０、３５、４０、５０、
６０、７０、８０、９０、１００、１５０、２００、５００、または１０００ヌ
クレオチドの連続スパンを含む単離された、精製された、もしくは組換体ポリヌ
クレオチドに関する。本発明のさらに好ましい核酸は、配列番号３の少なくとも
１２、１５、１８、２０、２５、３０、３５、４０、５０、６０、７０、８０、
９０、１００、１５０、２００、５００、もしくは１０００ヌクレオチドの連続
スパンを含む、単離された、精製された、もしくは組換体ポリヌクレオチドまた
はその相補体を含み、ここで、前記連続スパンは、配列番号３の以下のヌクレオ
チド位置：１〜５００、５０１〜１０００、１００１〜１５００、１５０１〜２
０００、２００１〜２５００、２５０１〜３０００、３００１〜３５００、およ
び３５０１〜３９８３の少なくとも１、２、３、５、または１０を含む。本発明
のさらに好ましい核酸は、配列番号４の少なくとも１２、１５、１８、２０、２
５、３０、３５、４０、５０、６０、７０、８０、９０、１００、１５０、２０
０、５００、もしくは１０００ヌクレオチドの連続スパンを含む、単離された、
精製された、もしくは組換体ポリヌクレオチドまたはその相補体を含み、ここで
、前記連続スパンは、配列番号４の以下のヌクレオチド位置：１〜５００、５０
１〜１０００、１００１〜１５００、１５０１〜２０００、２００１〜２５００
、２５０１〜３０００、３００１〜３５００、および３５０１〜３９８８の少な
くとも１、２、３、５、または１０を含む。そのような核酸は、ＴＢＣ−１遺伝
子もしくはＴＢＣ−１ｍＲＮＡおよびｃＤＮＡに特異的なポリヌクレオチドプロ
ーブまたはプライマーとしてとりわけ有用である。
【０１２４】 本セクションの題目は「ＴＢＣ−１ｃＤＮＡ配列」であるが、任意のサイズお
よび配列の核酸フラグメントも本セクションに記載のポリヌクレオチドに含まれ
得、２つ以上のそのようなゲノム配列の側面または間上のＴＢＣ−１のゲノム配
列をフランキングしている。
【０１２５】 コード領域 ＴＢＣ−１オープンリーディングフレームは、本発明者らによって単離された
約４キロベースの２つのＴＢＣ−１ｍＲＮＡ分子に含まれる。
【０１２６】 より正確には、有効なＴＢＣ−１コード配列は配列番号３の１７１位のヌクレ
オチドと３７２５位のヌクレオチドとの間、および配列番号４の１７６位のヌク
レオチドと３７３０位のヌクレオチドとの間に含まれる。
【０１２７】 本発明はさらに、配列番号３の１７１位のヌクレオチドと３７２５位のヌクレ
オチドとの間に位置する核酸配列を含むポリヌクレオチド、および配列番号４の
１７６位のヌクレオチドと３７３０位のヌクレオチドとの間に位置する核酸配列
を含むポリヌクレオチドから成る群より選択されるポリヌクレオチドを含む精製
されたまたは単離された核酸またはその変異体もしくはフラグメントあるいはそ
れに相補的な配列を提供する。
【０１２８】 本発明は、ヒトＴＢＣ−１タンパク質をコードする精製されたまたは単離され
た核酸であって、ここで、前記ＴＢＣ−１タンパク質は、配列番号5のアミノ酸
配列、それに相補的なヌクレオチド配列、そのフラグメントもしくは変異体を含
む、上記核酸に関する。本発明はまた、配列番号５の少なくとも６アミノ酸、好
ましくは８または１０アミノ酸、より好ましくは少なくとも１２、１５、２０、
２５、３０、４０、５０、または１００アミノ酸の連続スパンを含むポリペプチ
ドをコードする、単離された、精製された、および組換体ポリヌクレオチドを包
含する。好ましい実施態様において、本発明は、配列番号５の少なくとも６アミ
ノ酸、好ましくは８または１０アミノ酸、より好ましくは少なくとも１２、１５
、２０、２５、３０、４０、５０、または１００アミノ酸の連続スパンを含むポ
リペプチドをコードする、単離された、精製された、および組換体ポリヌクレオ
チドを包含し、ここで、前記連続スパンは、配列番号５の以下のヌクレオチド位
置：１〜３００、３０１〜６００、６０１〜９００、および９０１〜１１６８の
少なくとも１、２、３、５、または１０を含む。
【０１２９】 ＴＢＣ−１ＯＲＦから誘導されるただ１つのコード配列を含有する上記で開示
されたポリヌクレオチドは、前記ポリヌクレオチドが適切な発現シグナルの制御
下に配置される場合、所望の宿主細胞または所望の宿主生物において発現され得
る。そのようなポリヌクレオチドは、適切な発現シグナルの制御下に配置される
場合、その発現のためにベクターに挿入され得る。
【０１３０】 ＴＢＣ−１の調節配列 本発明はさらに、ＴＢＣ−１遺伝子の第１エキソンの上流に位置し、配列番号
１のＴＢＣ−１ゲノム配列に含有されるか、またはＴＢＣ−１遺伝子の最後のエ
キソンの下流に位置し、配列番号２のＴＢＣ−１ゲノム配列に含有される調節領
域のヌクレオチド配列を含む精製され得たまたは単離された核酸を扱う。
【０１３１】 ＴＢＣ−１遺伝子の５’−調節配列は、配列番号１のヌクレオチド配列の１位の
ヌクレオチド配列と２０００位のヌクレオチド配列との間に位置する。ＴＢＣ−
１遺伝子の３’−調節配列は、配列番号２のヌクレオチド配列の９７９６１位の
ヌクレオチド配列と９９９６０位のヌクレオチド配列との間に位置する。
【０１３２】 ５’および３’調節領域から誘導されるポリヌクレオチドは、試験サンプルに
おける配列番号１もしくは２のヌクレオチド配列またはそのフラグメントの少な
くとも１コピーの存在を検出するために有用である。
【０１３３】 ＴＢＣ−１に含有される５’調節領域のプロモーター活性を、下記のように評
価することができる。
【０１３４】 ＴＢＣ−１遺伝子の上流に存在するゲノム配列を、Ｃｌｏｎｔｅｃｈより市販
されているｐＳＥＡＰ−Ｂａｓｉｃ、ｐＳＥＡＰ−Ｅｎｈａｎｃｅｒ、ｐβｇａ
ｌ−Ｂａｓｉｃ、ｐβｇａｌ−Ｅｎｈａｎｃｅｒ、またはｐＥＧＦＰ−１Ｐｒｏ
ｍｏｔｅｒ Ｒｅｐｏｒｔｅｒベクターなどの適切なプロモーターレポートベク
ターにクローニングする。簡単に説明すると、これらのプロモーターレポーター
ベクターのそれぞれは、分泌されたアルカリホスファターゼ、βガラクトシダー
ゼ、またはグリーン蛍光タンパク質などの容易にアッセイ可能なタンパク質をコ
ードするレポーター遺伝子の上流に位置する複数のクローニング部位を含む。Ｔ
ＢＣ−１コード領域の上流の配列を、両方向にレポーター遺伝子の上流のクロー
ニング部位に挿入し、適切な宿主細胞に誘導する。レポータータンパク質のレベ
ルをアッセイして、クローニング部位の挿入物を欠くベクターから得られるレベ
ルと比較する。コントロールのベクターについて、挿入物を含有するベクターの
発現レベルの上昇が認められれば、挿入物にプロモーターが存在することを示す
。必要であれば、弱いプロモーター配列由来の転写レベルを上昇するエンハンサ
ーを含有するベクターに、上流配列をクローニングすることができる。挿入物を
欠くベクターによって観察される上記の発現の有意なレベルは、挿入された上流
配列にプロモーター配列が存在することを示す。
【０１３５】 エキソヌクレアーゼＩＩＩ消化などの従来の技法を使用し、上流ＤＮＡの入れ子
型欠失を構築することによって、上流ゲノムＤＮＡ内のプロモーター配列をさら
に規定してもよい。得られる欠失フラグメントをプロモーターレポーターベクタ
ーに挿入して、欠失がプロモーター活性を減少するかまたは消失するかどうかを
決定することができる。この方法で、プロモーターの境界を規定し得る。所望で
あれば、部位特異的変異またはリンカースキャニングを使用して、プロモーター
内の潜在的転写因子結合部位を個々にもしくは組み合わせて消去し、プロモータ
ー内の潜在的な個々の調節部位を同定し得る。転写レベルに対するこれらの変異
の影響は、プロモーターレポーターベクターのクローニング部位に変異を挿入す
ることによって、決定され得る。
【０１３６】 従って、ＴＢＣ−１発現レベルの測定により、ＴＢＣ−１遺伝子の最小サイズ
を決定することができる。このアッセイのために、一般に２ｋｂ〜１００ｂｐの
範囲にサイズが縮小され、ＴＢＣ−１コード配列またはレポーター遺伝子に作動
可能に連結されているプロモーター（３’末端は一定である）を使用する。細胞
（好ましくは、前立腺細胞、より好ましくは、前立腺ガン細胞）をこのベクター
でトランスフェクトし、遺伝子の発現レベルを評価する。
【０１３７】 異なるタイプの細胞および組織においてこのプロモーターに作動可能に連結され
た遺伝子の発現レベルによって、ＴＢＣ−１遺伝子のプロモーターの強度および
特異性を評価することができる。１つの実施態様において、正常およびガン細胞
におけるＴＢＣ−１遺伝子のプロモーターの有効性が評価される。１つの好まし
い実施態様において、正常前立腺細胞および様々な悪性度を示し得る前立腺ガン
細胞におけるＴＢＣ−１遺伝子のプロモーターの有効性が評価される。
【０１３８】 ＴＢＣ−１ｃＤＮＡの５’末端および３’末端の両方に位置する調節エレメン
トを担持するポリヌクレオチドは、目的の異種ポリヌクレオチドの転写および翻
訳活性を制御するために有利に使用される。
【０１３９】 従って、本発明はまた、５’および３’調節領域から成る群より選択されるポ
リヌクレオチド、またははそれに相補的な配列あるいはその生物学的に活性なフ
ラグメントもしくは変異体を含む、精製されたまたは単離された核酸に関する。
「５’調節領域」は、配列番号１の１位〜２０００位に位置するヌクレオチド配
列を指す。「３’調節領域」は、配列番号２の９７９６１位〜９９９６０位に位
置するヌクレオチド配列を指す。
【０１４０】 本発明はまた、５’および３’調節領域から成る群より選択されるポリヌクレ
オチドに少なくとも９５％ヌクレオチド同一性、有利には９９％ヌクレオチド同
一性、好ましくは９９．５％ヌクレオチド同一性、最も好ましくは、５’および
３’調節領域から成る群より選択されるポリヌクレオチド、もしくはそれに相補
的な配列またはその変異体あるいはその生物学的な活性なフラグメントに少なく
とも９９．８％ヌクレオチド同一性で有するポリヌクレオチドにある。
【０１４１】 本発明のもう１つの目的は、本明細書において規定されるストリンジェントな
ハイブリダイゼーション条件下で５’および３’調節領域のヌクレオチド配列か
ら成る群より選択されるポリヌクレオチド、もしくはそれに相補的な配列または
その変異体あるいはその生物学的な活性なフラグメントにハイブリダイズするポ
リヌクレオチドを含む、精製された、単離されたまたは組換えられた核酸から成
る。
【０１４２】 遺伝子の５’ＵＴＲおよび３’ＵＴＲ調節領域は、それらが特にｍＲＮＡ安定
性の制御を介して適切な発現レベルを提供するのに役割を果たし得る調節エレメ
ントをしばしば含む点で特に重要である。
【０１４３】 本発明の５’調節ポリヌクレオチドは、配列番号３の１位のヌクレオチド〜１
７０位のヌクレオチドの間に位置する５’−ＵＴＲ、またはその生物学的に活性
なフラグメントもしくは変異体を含んでもよい。
【０１４４】 あるいは、本発明の５’調節ポリヌクレオチドは、配列番号４の１位のヌクレ
オチド〜１７５位のヌクレオチドの間に位置する５’−ＵＴＲ、またはその生物
学的に活性なフラグメントもしくは変異体を含んでもよい。
【０１４５】 本発明の３’調節ポリヌクレオチドは、配列番号４の３７２６位のヌクレオチ
ド〜３９８３位のヌクレオチドの間に位置する３’−ＵＴＲ、またはその生物学
的に活性なフラグメントもしくは変異体を含んでもよい。
【０１４６】 従って、本発明はまた、以下から成る群より選択される精製されたまたは単離
された核酸に関する。 ａ）５’調節領域のヌクレオチド配列を含む核酸； ｂ）５’調節領域の核酸の生物学的に活性なフラグメントまたは変異体を含む
核酸。
【０１４７】 ５’調節領域の核酸の好ましいフラグメントは、約１０００ヌクレオチド長、
より詳細には約４００ヌクレオチド長、より好ましくは約２００ヌクレオチド長
、最も好ましくは約１００ヌクレオチド長を有する。より詳細には、本発明はさ
らに、この調節領域内において特定のエレメントを含み、これらのエレメントは
、好ましくはプロモーター領域を含む。
【０１４８】 ５’調節領域の好ましいフラグメントは少なくとも５０、１００、１５０、２０
０、３００または４００塩基の長さである。
【０１４９】 本発明のＴＢＣ−１調節ポリヌクレオチドの「生物学的に活性なフラグメント
または変異体」は、組換え宿主細胞において組換えポリペプチドまたは組換えポ
リヌクレオチドを発現するための調節領域として機能的である前記ポリヌクレオ
チドのフラグメントを含むあるいはそれより成るポリヌクレオチドを意図する。
【０１５０】 本発明の目的のために、前記調節ポリヌクレオチドが転写および翻訳調節情報
を含有するヌクレオチド配列を含有し、そのような配列が所望のポリペプチドま
たは所望のポリヌクレオチドをコードするヌクレオチド配列に「作動可能に」連
結される場合、核酸またはポリヌクレオチドは、組換えポリペプチドまたは組換
えポリヌクレオチドを発現するための調節領域として「機能的」である。作動可
能な連結とは、調節核酸と発現されることが求められるＤＮＡ配列とが遺伝子発
現を可能にするような方法で連結される連結である。
【０１５１】 ５’または３’調節領域の関連する生物学的に活性なポリヌクレオチド誘導体
を同定するために、当業者であれば、５’または３’調節領域の生物学的に活性
な誘導体ポリヌクレオチドの制御下に配置される場合に発現が検出されるマーカ
ー遺伝子（即ち、βガラクトシダーゼ、クロラムフェニコールアセチルトランス
フェラーゼなど）を担持する組換えベクターの使用に関するＳａｍｂｒｏｏｋら
に記載の方法（Ｓａｍｂｒｏｏｋ、１９８９）を参考にするであろう。
【０１５２】 本発明の調節ポリヌクレオチドは、適切な制限酵素を使用する切断によって、
配列番号１または２のヌクレオチド配列のいずれかから調製してもよく、当業者
の手引書としてＳａｍｂｒｏｏｋら（１９８９）の本がある。調節ポリヌクレオ
チドはまた、Ｂａｌ３１（Ｗａｂｉｋｏら、１９８６）などのエキソヌクレアー
ゼ酵素によっても、配列番号１または記載のヌクレオチド配列から調製してもよ
い。これらの調節ポリヌクレオチドは、オリゴヌクレオチドプローブまたはプラ
イマーの合成が開示されている場合、本明細書において他に記載のように、化学
合成によって調製することができる。
【０１５３】 本発明の調節ポリヌクレオチドは、有利に、所望の宿主細胞または宿主生物に
おいてコード配列を発現するために使用され得る組換え発現ベクターの一部であ
り得る。本発明の組換え発現ベクターは、本明細書において他に記載の通りであ
る。
【０１５４】 本発明はまた、以下から成るポリヌクレオチドを包含する。 ａ）５’調節領域の調節ヌクレオチド配列、またはその生物学的に活性なフラ
グメントもしくは変異体を含む核酸。 ｂ）５’調節領域の調節ヌクレオチド配列、またはその生物学的に活性なフラ
グメントもしくは変異体を含む核酸に作動可能に連結された所望のポリペプチド
または核酸をコードするポリヌクレオチド。 ｃ）さらに必要であれば、３’調節ポリヌクレオチド、好ましくは、本発明の
３’調節ポリヌクレオチドを含む核酸。
【０１５５】 上記の核酸によってコードされる所望のポリペプチドは、原核生物または真核
生物由来のタンパク質を包含するさまざまな天然もしくは起源であり得る。ＴＢ
Ｃ−１調節領域の制御下で発現されるポリペプチドのうち、それは、引用された
細菌、菌類またはウイルス抗原であってもよい。「ハウスキーピング」タンパク
質のような細胞内タンパク質、レセプターのような膜結合タンパク質、およびサ
イトカインなどの多くの内因性メディエーターのような分泌タンパク質などの真
核細胞タンパク質も包含される。
【０１５６】 上記のポリヌクレオチドによってコードされる所望の核酸は、通常、ＲＮＡ分
子であるが、ＴＢＣ−１コード配列に相補的であってもよく、従って、アンチセ
ンスポリヌクレオチドとして有用である。
【０１５７】 そのようなポリヌクレオチドは、宿主細胞または宿主生物において所望のポリ
ペプチドまたは所望のポリヌクレオチドを発現するために、組換え発現ベクター
に含まれ得る。上記に記載のようなポリヌクレオチドを含有する適切な組換えベ
クターは、本明細書において他の個所で開示されている。
【０１５８】 ＴＢＣ−１ポリペプチドおよびそのペプチドフラグメント 現在では、プラスミド、ファージまたはファージミドなどの発現ベクターを介
する遺伝子操作技法によって、タンパク質を大量に産生させることが容易にでき
る。目的のポリペプチドをｉｎ ｖｉｔｒｏで産生させるために、本発明のポリ
ペプチドの１つをコードするポリヌクレオチドを適切な発現ベクターに挿入する
。
【０１５９】 従って、本発明はまた、本明細書に記載のポリペプチドの１つ、具体的には配
列番号５のポリペプチドまたはそのフラグメントもしくは変異体を産生するため
の方法に関し、前記方法は、以下の工程を含む。 ａ）ＴＢＣ−１ポリペプチド、またはそのフラグメントもしくは変異体をコー
ドする核酸を含む組換えベクターで予め形質転換またはトランスフェクトされた
細胞宿主を適切な培養培地中で培養すること； ｂ）そのようして馴化された培養培地を回収するか、または例えば、超音波処
理もしくは浸透圧ショックによって細胞宿主を溶解すること； ｃ）前記培養培地、もしくは得られる宿主細胞溶解物のペレットから、そのよ
うにして産生される目的のポリペプチドを分離または精製すること； ｄ）随意的に、産生された目的のポリペプチドを特徴づけること。
【０１６０】 上記の方法の特定の実施態様では、工程ａ）の前に、ＴＢＣ−１ポリペプチド、
またはそのフラグメントもしくは変異体をコードする核酸を、随意的に、この増
幅された核酸を１つまたはいくつかの制限エンドヌクレアーセで適切に切断後、
適切なベクターに挿入する。ＴＢＣ−１ポリペプチド、またはそのフラグメント
もしくは変異体をコードする核酸は、本発明の１対のプライマーを使用する（Ｓ
ＤＡ、ＴＡＳ、３ＳＲ、ＮＡＳＢＡ、ＴＭＡなどにより）増幅反応の得られる産
物であってもよい。
【０１６１】 本発明のポリペプチドは、配列番号５のポリペプチド、またはそのフラグメン
トもしくは変異体に対するポリクローナルまたはモノクローナル抗体が予め固定
化されているイムノアフィニティークロマトグラフィーカラム上に結合させるこ
とによって、本発明のポリペプチドを特徴づけることができる。
【０１６２】 本発明の組換えタンパク質またはペプチドの精製は、ニッケルまたは銅アフィ
ニティークロマトグラフィーカラムを通過させることによって行ってもよい。ニ
ッケルクロマトグラフィーカラムは、Ｎｉ−ＮＴＡ樹脂を含有し得る（Ｐｏｒａ
ｔｈら、１９７５）。
【０１６３】 そのようにして得られるポリペプチドまたはペプチドは、Ｒｏｕｇｅｏｔら（
１９９４）に記載のように、例えば、逆相および／または陽イオン交換ＨＰＬＣ
などの高速液体クロマトグラフィーによって精製することができる。この種のペ
プチドまたはタンパク質精製が好まれる理由は、得られる精製されたタンパク質
またはペプチドが治療用途により適切である溶出サンプルにおいて、副産物が認
められないことである。
【０１６４】 本発明のもう１つの目的は、精製されたあるいは単離されたＴＢＣ−１ポリペ
プチドまたはそのフラグメントもしくは変異体にある。
【０１６５】 好ましい実施態様では、ＴＢＣ−１ポリペプチドは、配列番号５のアミノ酸配
列またはそのフラグメントもしくは変異体を含む。本発明はまた、配列番号５の
少なくとも６アミノ酸、好ましくは少なくとも８〜１０アミノ酸、より好ましく
は少なくとも１２、１５、２０、２５、３０、４０、５０、１００、１５０また
は２００アミノ酸の連続スパンを含む単離された、精製された組換えポリペプチ
ドを包含する。本発明はまた、配列番号５の少なくとも６アミノ酸、好ましくは
少なくとも８〜１０アミノ酸、より好ましくは少なくとも１２、１５、２０、２
５、３０、４０、５０、１００、１５０または２００アミノ酸の連続スパンを含
む単離された、精製された組換えポリペプチドを包含し、ここで、前記連続スパ
ンは、以下のアミノ酸位置：１〜２００、２０１〜４００、４０１〜６００、６
０１〜８００、８０１〜１０００、１００１〜１１６８を含む。
【０１６６】 本発明はまた、配列番号５のアミノ酸配列またはそのフラグメントに少なくと
も９０、９５、９８または９９％アミノ酸同一性を有するアミノ酸配列を含む、
精製された、単離された、または組換体ポリペプチドを包含する。
【０１６７】 本発明のＴＢＣ−１ポリペプチドは、米国特許第５，７００，９２７号に記載
の１１４１アミノ酸長のマウスＴＢＣ−１タンパク質に関するアミノ酸相同性を
有する。本発明のＴＢＣ−１タンパク質はまた、他の２つのタンパク質：Ｐｏｌ
ｌｕｘ ｄｒｏｓｏｐｈｉｌａタンパク質（Ｚｈａｎｇら、１９９６）およびＣ
ａｅｎｏｒｈａｂｄｉｔｉｓ ｅｌｅｇａｎｓ（Ｗｉｌｓｏｎら、１９９４）由
来のＣＤＣ１６タンパク質にいくつかの相同性を有する。図１は、配列番号５の
ＴＢＣ−１タンパク質のアミノ酸配列の一部とＴＢＣ−１にアミノ酸相同性を示
す他のタンパク質とのアミノ酸配列アラインメントを示す。一番上のラインは、
米国特許第５，７００，９２７号に記載のマウスｔｂｃ−１タンパク質の全アミ
ノ酸配列を示す。２番目のラインは、配列番号５のＴＢＣ−１タンパク質のアミ
ノ酸配列の一部を示す。３番目のライン（Ｇｅｎｂａｎｋ受託番号ｄｍｕ５０５
４２）は、上記のＰｏｌｌｕｘタンパク質のアミノ酸配列を示す。４番目のライ
ン（Ｇｅｎｂａｎｋ受託番号ｃｅｌｆ３５ｈ１２）は、上記のＣ．ｅｌｅｇａｎ
ｓタンパク質のアミノ酸配列を示す。５番目のラインは、コンセンサスアミノ酸
が同定される位置で、存在すれば、上の４つのラインに示す配列に共通するアミ
ノ酸を示す。
【０１６８】 配列番号５のアミノ酸配列のＴＢＣ−１ポリペプチドは、１１６８アミノ酸長
を有する。ＴＢＣ−１ポリペプチドは、配列番号５のアミノ酸配列の７８６位の
アミノ酸から９７４位のアミノ酸に及ぶ「ＴＢＣドメイン」を含む。このＴＢＣ
ドメインは図１に示され、アミノ酸番号７５８からアミノ酸番号９４９に及ぶ灰
色の領域として示される。このＴＢＣドメインはタンパク質−タンパク質相互作
用を調節するようである。さらに、ＴＢＣ−１ ＴＢＣドメインは、配列番号５
のアミノ酸配列の８８６位のアミノ酸から８９３位のアミノ酸に及ぶアミノ酸配
列ＥＶＧＹＣＱＧＬを含む。ＥＶＧＹＣＱＧＬアミノ酸配列は、図１のアミノ酸
番号８６１からアミノ酸番号８６８に及ぶ。この部位は、キナーゼと相互作用し
得る。ｃｄｃ１６に対する構造類似性に基づき、有糸分裂の酵母調節因子、ＴＢ
Ｃ−１は、有糸分裂、細胞質分裂および隔壁形成の調節に参加する他のタンパク
質と相互作用することによって、有糸分裂および細胞質分裂を調節するようであ
る。
【０１６９】 本発明の好ましいポリペプチドは、ＴＢＣ−１のＴＢＣドメイン、または少な
くともＥＶＧＹＣＱＧＬアミノ酸配列モチーフを含む。
【０１７０】 本発明のさらなる目的は、配列番号１、２、３、および４の配列から成る群よ
り選択されるヌクレオチド配列またはそのフラグメントもしくは変異体を含む核
酸によってコードされる精製されえたまたは単離されたポリペプチドに関する。
【０１７１】 米国特許第５，７００，９２７号に記載の成熟ｔｂｃ−１タンパク質と同じ配
列を有するＴＢＣ−１タンパク質の単一の変異体分子は、明白に本発明の範囲外
である。
【０１７２】 ＴＢＣ−１タンパク質におけるアミノ酸の欠失、付加または置換は、好ましく
は上記で規定されたＴＢＣドメイン外に位置する。より好ましくは、変異型ＴＢ
Ｃ−１タンパク質は、無傷の「ＥＶＧＹＣＱＧＬ」アミノ酸モチーフを有する。
【０１７３】 そのような変異型ＴＢＣ−１タンパク質は、サンプル中の変異型ＴＢＣ−１タ
ンパク質を検出するのに有用な特異的モノクローナルまたはポリクローナル抗体
などの診断ツールの標的であり得る。
【０１７４】 本発明はまた、セクション「定義」に記載されるように、少なくとも１つのペ
プチド結合が修飾されているＴＢＣ−１ポリペプチドまたはフラグメントもしく
は変異体を包含する。
【０１７５】 本発明のＴＢＣ−１ポリペプチドに結合する抗体 任意のＴＢＣ−１ポリペプチドまたはタンパク質全体は、発現されたＴＢＣ−
１タンパク質またはそのフラグメントに特異的に結合し得る抗体を作製するため
に使用され得る。
【０１７６】 本発明の１つの抗体組成物は、配列番号５のＴＢＣ−１タンパク質の変異体に
特異的に結合することができる。抗体組成物がＴＢＣ−１に特異的に結合するた
めには、該抗体組成物は、ＥＬＩＳＡ、ＲＩＡ、または他の抗体に基づく結合ア
ッセイにおいて、別のタンパク質よりも少なくとも５％、１０％、１５％、２０
％、２５％、５０％、または１００％以上の結合親和性を示さなければならない
。
【０１７７】 好ましい実施態様において、本発明は、配列番号５の少なくとも６アミノ酸、
好ましくは少なくとも８〜１０アミノ酸、より好ましくは少なくとも１２、１５
、２０、２５、３０、４０、５０、１００、１５０または２００アミノ酸の連続
スパンを含むポリペプチドを含有するエピトープに選択的に結合するか、または
特異的に結合することができる抗体組成物、モノクローナルまたはポリクローナ
ル抗体のいずれかに関する。随意的に、前記エピトープは、以下のアミノ酸位置
：１〜２００、２０１〜４００、４０１〜６００、６０１〜８００、８０１〜１
０００、１００１〜１１６８の少なくとも１、２、３、５または１０を含む。
【０１７８】 本発明は、変異型ＴＢＣ−１タンパク質または変異型ＴＢＣ−１タンパク質の
エピトープを含むそのフラグメントもしくは変異体に特異的に結合可能な精製さ
れたまたは単離された抗体に関する。もう1つの好ましい実施態様において、本
発明は、ＴＢＣ−１タンパクの少なくとも１０連続アミノ酸を含み、形質を生じ
る変異によってコードされ得るアミノ酸の少なくとも1つを含むポリペプチドに
結合可能な抗体に関する。
【０１７９】 好ましい実施態様において、本発明は、配列番号５の少なくとも６アミノ酸、
好ましくは少なくとも８〜１０アミノ酸、より好ましくは少なくとも１２、１５
、２０、２５、３０、４０、５０、１００、１５０または２００アミノ酸の連続
スパンを含むポリペプチドの抗体の製造における使用に関する。随意的に、前記
ポリペプチドは、以下のアミノ酸位置：１〜２００、２０１〜４００、４０１〜
６００、６０１〜８００、８０１〜１０００、１００１〜１１６８の少なくとも
１、２、３、５または１０を含む。
【０１８０】 本発明の抗体は、当該分野において公知の放射性、蛍光または酵素標識のいず
れか1つによって標識することができる。
【０１８１】 配列番号５のＴＢＣ−１ポリペプチドまたはそのフラグメントは、ポリクロー
ナルまたはモノクローナル抗体の調製のために使用することができる。
【０１８２】 配列番号１、２、３および４の核酸配列の少なくとも１つを含むＤＮＡ配列か
ら発現されるＴＢＣ−１ポリペプチドを使用して、配列番号５のＴＢＣ−１ポリ
ペプチドまたはそのフラグメントに特異的に結合可能な抗体を作製してもよい。
【０１８３】 本発明の好ましい抗体は、ＥＶＧＹＣＱＧＬアミノ酸モチーフを含まないＴＢ
Ｃ−１ペプチドフラグメントを使用して調製される。
【０１８４】 本発明の他の好ましい抗体は、本明細書において他の個所で規定されるＴＢＣ
ドメインを含まないＴＢＣ−１ペプチドフラグメントを使用して調製される。
【０１８５】 抗体は、ＫｏｈｌｅｒおよびＭｉｌｓｔｅｉｎ、１９７５に記載の技法に従っ
てハイブリドーマから調製することができる。ポリクローナル抗体は、哺乳動物
、具体的にはマウスまたはウサギを、免疫のアジュバントと組み合わせた本発明
のポリペプチドで免疫化し、次いで、免疫化した動物の血清中に含有される特異
的抗体を、抗原として使用されているポリペプチドが予め固定化されているアフ
ィニティークロマトグラフィーカラム上で精製することによって、調製すること
ができる。
【０１８６】 本発明はまた、キメラ単一鎖Ｆｖ抗体フラグメント（Ｍａｒｔｉｎｅａｕら、
１９９８）、ファージディスプレイライブラリー（Ｒｉｄｄｅｒら、１９９５；
Ｖａｕｇｈａｎら、１９９５）およびヒト化抗体（Ｒｅｉｎｍａｎｎら、１９９
７；Ｌｅｇｅｒら、１９９７）を含む。
【０１８７】 いずれかのプロトコルに従って調製される抗体調製物は、生物学的サンプル中
の抗原を有する物質の濃度を決定する定量的イムノアッセイにおいて有用である
。それらはまた、生物学的サンプル中の抗原の存在を同定するために、半定量的
または定量的に使用される。抗体はまた、タンパク質を発現する細胞を死滅させ
るためまたは身体内のタンパク質のレベルを減少するための治療用組成物にも使
用することができる。
【０１８８】 従って、本発明はまた、生物学的サンプルにおいて本発明のＴＢＣ−１ポリペ
プチドの存在を特異的に検出する方法に関し、前記方法は以下の工程を含む。 ａ）生物学的サンプルと、配列番号5のアミノ酸配列を含むＴＢＣ−１ポリペ
プチド、またはそのペプチドフラグメントもしくは変異体に特異的に結合するポ
リクローナルあるいはモノクローナル抗体とを接触させること； ｂ）形成された抗原−抗体複合体を検出すること。
【０１８９】 本発明はまた、生物学的サンプルにおいて本発明のＴＢＣ−１ポリペプチドの
存在をｉｎ ｖｉｔｒｏで検出する診断キットに関し、ここで、前記キットは以
下のものを含む。 ａ）必要に応じて標識される、配列番号5のアミノ酸配列を含むＴＢＣ−１ポ
リペプチド、またはそのペプチドフラグメントもしくは変異体に特異的に結合す
るポリクローナルあるいはモノクローナル抗体； ｂ）形成された抗原−抗体複合体の検出を可能にする試薬であって、特に、上
記のモノクローナルまたはポリクローナル抗体がそれ自体標識されていない場合
、前記試薬は随意的に標識を担持するか、または標識された試薬によってそれ自
体が認識され得る。
【０１９０】 ＴＢＣ−１関連バイアレリックマーカー 本発明者らは、ＴＢＣ−１遺伝子を含有するゲノムＤＮＡ内に存在するヌクレ
オチド多型を発見し、それらの間にバイアレリックマーカーとも呼ばれるＳＮＰ
を見出した。本発明のバイアレリックマーカーは、例えば、遺伝子地図、連結分
析、関連研究に使用することができる。
【０１９１】 Ａ−ＴＢＣ−１関連バイアレリックマーカーの同定 本発明のバイアレリックマーカーを作製し得る２つの好ましい方法がある。
第１の方法では、関連のない個体由来のＤＮＡサンプルをともにプールし、その
後目的のゲノムＤＮＡを増幅し、配列を決定する。このようにして得られるヌク
レオチド配列を分析して、重要な多型を同定する。
【０１９２】 本方法の主な利点の１つは、ＤＮＡサンプルをプールすることによって、行わ
なければならないＤＮＡ増幅反応および配列決定反応の数が実質的に減少するこ
とである。さらに、本方法は、十分に感度が高く、得られるバイアレリックマー
カーは、通常、関連研究を行うのに十分な程度の情報を示す。
【０１９３】 バイアレリックマーカーを作製するための第２の方法では、ＤＮＡサンプルを
プールせず、従って個々に分析および配列決定を行う。次いで、結果として得ら
れるヌクレオチド配列を分析して、重要な多型を同定する。
【０１９４】 この第２の方法を使用すれば、実質的により多くのＤＮＡ増幅反応および配列
決定反応を行わなければならないことが容易に理解されるであろう。形質との潜
在的遺伝的関連を同定するための関連研究においてそのように情報の少ないバイ
アレリックマーカーを含めると、場合により、それらの浸透度に依存し、まれな
変異であり得る原因となる変異を直接同定することが可能になることもさらに理
解されるであろう。本方法は、通常、候補遺伝子内の関連研究を実施するために
バイアレリックマーカーを同定する必要がある場合に好ましい。
【０１９５】 両方法において、本発明のバイアレリックマーカーが作製されるゲノムＤＮＡ
サンプルは、好ましくは公知の人種背景異種集団に対応する関連のない個体、ま
たは家族症例から得られる。
【０１９６】 ＤＮＡサンプルが得られる個体数は、実質的に約１０〜約１００、好ましくは
約５０〜約２００個体で変動し得る。通常、できるだけ多くのマーカーを作製し
、統計的に有意な結果を得るために所定の集団において十分な多型多様性を有す
るためには、少なくとも約１００個体からＤＮＡサンプルを回収するのが好まし
い。
【０１９７】 分析に供すべきゲノムＤＮＡの供給源については、特に制限を加えることなく
任意の試験サンプルを想定することができる。本明細書において使用されるゲノ
ムＤＮＡの好ましい供給源は、それぞれの供給者の末梢静脈血である。
【０１９８】 ＤＮＡ抽出の技法は、当業者に周知である。好ましい実施態様の詳細について
は実施例２に記載している。
【０１９９】 増幅工程のために、ＤＮＡサンプルをプールしてもプールしなくてもよい。Ｄ
ＮＡ増幅技法は、当業者に周知である。
【０２００】 本明細書において使用され得る増幅技法としては、ＥＰ−Ａ−３２０ ３０８
、ＷＯ９３２０２２７およびＥＰ−Ａ−４３９ １８２に記載のリガーゼ連鎖反
応（ＬＣＲ）、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ、ＲＴ−ＰＣＲ）ならびにＧｕａ
ｔｅｌｌｉ Ｊ．Ｃ．ら（１９９０）およびＣｏｍｐｔｏｎ Ｊ．（１９９１）
により記載の核酸配列に基づく増幅（ＮＡＳＢＡ）などの技法、欧州特許出願Ｎ
ｏ．４５４４６１０に記載のＱ−β増幅、Ｗａｌｋｅｒら（１９９６）およびＥ
Ｐ Ａ６８４３１５に記載の鎖置換増幅ならびにＰＣＴ公開ＷＯ９３２２４６１
に記載の標的介在増幅（ｔａｒｇｅｔ ｍｅｄｉｃａｔｅｄ ａｍｐｌｉｆｉｃ
ａｔｉｏｎ）が挙げられるが、これらに限定されない。
【０２０１】 ＬＣＲおよびＧａｐ ＬＣＲは指数的増幅技法であり、両者ともＤＮＡ分子に
アニールした隣接プライマーに接続するＤＮＡリガーゼに依存する。リガーゼ連
鎖反応（ＬＣＲ）では、２つの１次（第１および第２）ならびに２つの２次（第
３および第４）プローブを含むプローブ対が使用され、それらの全ては標的に対
してモル過剰の状態で用いられる。第１のプローブは標的鎖の第１セグメントに
ハイブリダイズし、第２のプローブは標的鎖の第２のセグメントにハイブリダイ
ズする。１次プローブが５’リン酸−３’ヒドロキシルの関係で相互に隣接し、
リガーゼが２つのプローブに共有的に融合または連結して融合産物となるように
、第１および第２のセグメントは連続である。さらに、同様の隣接様式で、第３
（２次）のプローブは第１のプローブの一部にハイブリダイズすることができ、
第４（２次）のプローブは第２のプローブの一部にハイブリダイズすることがで
きる。もちろん、標的がはじめに二本鎖である場合は、２次プローブもはじめに
標的相補体にハイブリダイズする。一旦、１次プローブの連結された鎖が標的鎖
から分離されると、該鎖は、第３および第４のプローブにハイブリダイズする。
これらは連結して相補的な２次連結産物を形成することができる。連結産物は、
標的またはその相補体のいずれかに機能的に等価であることを認識することが重
要である。ハイブリダイゼーションおよび連結のサイクルを繰り返すことによっ
て、標的配列の増幅が達成される。複合的ＬＣＲの方法についても記載されてい
る（ＷＯ９３２０２２７）。Ｇａｐ ＬＣＲ（ＧＬＣＲ）は、プローブが隣接し
ていないが２〜３塩基だけ離れているＬＣＲのバージョンである。
【０２０２】 ｍＲＮＡの増幅のために、ｍＲＮＡをｃＤＮＡに逆転写し、続いてポリメラー
ゼ連鎖反応（ＲＴ−ＰＣＲ）を行うか；または米国特許第５，３２２，７７０号
の両工程のために単一の酵素を使用するか、またはＭａｒｓｈａｌｌら（１９９
４）の非対称Ｇａｐ ＬＣＲ（ＲＴ−ＡＧＬＣＲ）を使用することは、本発明の
範囲内である。ＡＧＬＣＲはＲＮＡの増幅を可能にするＧＬＣＲの改変である。
【０２０３】 ＰＣＲ技法は本発明において使用される好ましい増幅技法である。様々なＰＣ
Ｒ技法が当業者に知られている。ＰＣＲ技法について検討するためには、Ｗｈｉ
ｔｅ（１９９７）および表題「ＰＣＲの方法と応用」の出版物（１９９１、Ｃｏ
ｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ）を参
照のこと。これらのＰＣＲ方法のそれぞれについて、増幅しようとする核酸配列
のそれぞれの側に対するＰＣＲプライマーを、ｄＮＴＰ、およびＴａｑポリメラ
ーゼなどの耐熱性ポリメラーゼ、Ｐｆｕポリメラーゼ、またはＶｅｎｔポリメラ
ーゼを伴う適切に調製された核酸サンプルに添加する。サンプル中の核酸を変性
し、ＰＣＲプライマーを、サンプル中の相補的核酸配列に特異的にハイブリダイ
ズさせる。ハイブリダイズしたプライマーを伸長する。その後、変性、ハイブリ
ダイゼーション、および伸長のサイクルをもう１回行う。このサイクルを複数回
繰り返し、プライマー部位間の核酸配列を含有する増幅されたフラグメントを産
生する。ＰＣＲについては、米国特許第４，６８３，１９５号、同第４，６８３
，２０２号および同第４，９６５，１８８号を含むいくつかの特許に記載されて
いる。
【０２０４】 ＰＣＲ技法は、新規のバイアレリックマーカーを同定するために使用される好ま
しい増幅技法である。本発明の目的に適切なＰＣＲ反応の典型的な例については
、実施例３に記載している。
【０２０５】 本発明の局面の１つは、好ましくはＰＣＲ技法を使用する試験サンプル中のＴ
ＢＣ−１遺伝子、特に配列番号１および２のゲノム配列もしくは配列番号３また
は４のｃＤＮＡ配列またはそのフラグメントもしくは変異体の増幅方法である。
該方法は、標的ＴＢＣ−１コード配列またはその一部を含有する疑いがある試験
サンプルを、１対の増幅プライマーを含む増幅反応試薬に接触させる工程を含む
。
【０２０６】 従って、本発明はまた、試験サンプル中のＴＢＣ−１遺伝子、特に配列番号１
のゲノム配列もしくは配列番号２または３のｃＤＮＡ配列あるいはそのフラグメ
ントもしくは変異体の増幅方法に関し、前記方法は以下の工程を含む。 ａ）標的されたＴＢＣ−１遺伝子配列またはその一部フラグメントを含有する
疑いがある試験サンプルを、増幅しようとするポリヌクレオチド領域のいずれか
一方の側に位置する１対の増幅プライマーを含む増幅反応試薬と接触させ、そし
て ｂ）随意的に増幅産物を検出する。
【０２０７】 本発明はまた、試験サンプル中のＴＢＣ−１遺伝子配列、特に配列番号１また
は２のゲノム配列の一部もしくは配列番号３または４のｃＤＮＡ配列、またはそ
の変異体の増幅方法に関し、前記キットは以下のものを含む。 ａ）増幅しようとするＴＢＣ−１領域のいずれか一方の側に存在するオリゴヌ
クレオチドプライマーの対； ｂ）随意的に、増殖反応を実施するのに必要な試薬。
【０２０８】 上記の増幅方法およびキットの１つの実施態様では、増幅産物は、増幅された
領域に相補的である配列を有する標識プローブとのハイブリダイゼーションによ
って検出される。上記の増幅方法およびキットのもう１つの実施態様では、プラ
イマーは、Ｂ１〜Ｂ１５、Ｃ１〜Ｃ１５、Ｄ１〜Ｄ１９、およびＥ１〜Ｅ１９か
ら成る群より選択される配列を含む。
【０２０９】 本発明の第１の実施態様では、本発明者らによって作製されるゲノム配列情報
を使用して、バイアレリックマーカーが同定される。配列決定されたゲノムＤＮ
Ａフラグメントを使用して、５００ｂｐフラグメントの増幅のためのプライマー
を設計する。これらの５００ｂｐフラグメントをゲノムＤＮＡから増幅し、バイ
アレリックマーカーについて走査する。プライマーは、ＯＳＰソフトウェア（Ｈ
ｉｌｌｉｅｒ Ｌ．およびＧｒｅｅｎ Ｐ．、１９９１）を使用して設計する。
全てのプライマーは、特異的標的塩基の上流で、シークエンシングプライマーと
して役割を果たす共通のオリゴヌクレオチドテイルを含有する。当業者であれば
、これらの目的のために使用され得るプライマー伸長について精通している。
【０２１０】 候補遺伝子をコードするゲノム配列の増幅に有用な好ましいプライマーは、遺
伝子のプライマー、エキソンおよびスプライス部位に局在する。バイアレリック
マーカーが該遺伝子のこれらの機能的領域に位置する場合、該バイアレリックマ
ーカーは終局的原因変異である確率がより高いからである。本発明の好ましい増
幅プライマーは、実施例３においてさらに詳述されるＢ１〜Ｂ１５およびＣ１〜
Ｃ１５のヌクレオチド配列を含む。
【０２１１】 次いで、本発明のプライマーにより上記のように作製された増幅産物を、当業
者に公知かつ利用可能な方法で配列決定する。好ましくは、ダイプライマーサイ
クル配列決定プロトコルを使用して、増幅されたＤＮＡを自動化ジデオキシター
ミネーター配列決定反応に供する。ゲル画像分析およびＤＮＡ配列抽出後、配列
の質を評価するために、適切なソフトウェアで配列データを自動的に処理する。
【０２１２】 多型分析ソフトウェアを使用して、個体のまたはプールされた増幅フラグメン
ト配列間のバイアレリック部位の存在を検出する。多型の調査は、電気泳動パタ
ーンにおいて重畳されたピークの存在に基づく。２つの異なる色を示すこれらの
ピークは、配列上の同じ位置で２つの異なるヌクレオチドに対応する。確認のた
めに両鎖上で多型が検出されなければならない。
【０２１３】 ＴＢＣ−１遺伝子において、１９個のバイアレリックマーカーを見出した。そ
れらの詳細を表２に示す。それらはイントロン領域に位置する。
【０２１４】 Ｂ−ＴＢＣ−１関連バイアレリックマーカーの遺伝子型判定 上記で同定された多型は、さらに確認することができ、それらのそれぞれの頻度
は、先に記載したプライマーおよびプローブを使用する様々な方法を介して決定
することができる。所定の形質に関連することが公知であるバイアレリックマー
カーの対立遺伝子の検出には、これらの方法は、関連研究もしくは連結分析にお
ける新規の集団または個体のいずれかの遺伝子型を判定するのに有用である。バ
イアレリックマーカーの遺伝子型判定もマッピングに重要である。当業者は、個
体またはプールしたＤＮＡサンプルに対して以下に記載の方法を同等に実施する
ことができる。
【０２１５】 一旦、所定の多型性部位が見出され、上記のようにバイトして特徴づけされる
と、所定の多型性塩基において個体が担持する特異的対立遺伝子を決定するため
に、いくつかの方法を使用することができる。
【０２１６】 先に記載のバイアレリックマーカーの同定は、目的の多型性部位を含有するＴ
ＢＣ−１遺伝子を増幅するために、およびそのような多型の検出のために、プロ
ーブおよびプライマーとして使用することができる適切なオリゴヌクレオチドの
設計を可能にする。
【０２１７】 本発明のバイアレリックマーカーは、ＴＢＣ−１遺伝子の１つまたは複数のバ
イアレリックマーカーに対する対立遺伝子と形質との間の関係の同定および特徴
づけに使用することができる。
【０２１８】 同定された多型、および従って本発明のバイアレリックマーカーは、形質、よ
り詳細には、細胞分化または異常細胞増殖障害に関連する形質、最も詳細には、
ガン疾患、具体的には前立腺ガンに関連する形質に関連する個々のＴＢＣ−１対
立遺伝子の検出方法に使用することができる。
【０２１９】 １つの実施態様では、本発明は、生物学的サンプル中のＴＢＣ−１関連バイア
レリックマーカーのヌクレオチドまたはその相補体の正体を決定することを含む
遺伝子型判定方法を包含する。随意的に、ここで、前記ＴＢＣ−１関連バイアレ
リックマーカーは、Ａ１〜Ａ１９、およびその相補体から成る群より選択される
か、または随意的に、バイアレリックマーカーはそれと連鎖不均衡である。随意
的に、ここで、前記生物学的サンプルは、単一の被験体に由来するものである。
随意的に、ここで、前記バイアレリックマーカーにおけるヌクレオチドの正体は
、前記個体のゲノムに存在する前記バイアレリックマーカーの両コピーについて
決定される。随意的に、ここで、前記生物学的サンプルは、複数のサンプルに由
来するものである。随意的に、本発明の遺伝型決定方法は、本開示物に記載の任
意のさらなる制限事項を有する方法、または単独または任意の組み合わせで明記
される以下の方法を包含する。随意的に、前記方法はｉｎ ｖｉｔｒｏで達成さ
れる。随意的に、前記決定工程の前に、バイアレリックマーカーを含む前記配列
の一部を増殖することをさらに含む。随意的に、ここで、前記増幅工程は、ＰＣ
Ｒ、ＬＣＲ、または宿主細胞における複製開始点および前記フラグメントを含む
組換えベクターの複製によって達成される。随意的に、ここで、前記決定工程は
、ハイブリダイゼーションアッセイ、シークエンシングアッセイ、マイクロシー
クエンシングアッセイ、または酵素に基づく（ｅｎｚｙｍｅ−ｂａｓｅｄ）ミス
マッチ検出アッセイによって達成される。
【０２２０】 遺伝子型判定のための核酸の供給源 精製されたまたは精製されていない形の核酸の任意の供給源は、出発核酸とし
て利用することができる。但し、該核酸は、所望される特定の核酸配列を含有す
るかまたは含有することが疑われる。ＤＮＡまたはＲＮＡは、上記の細胞、組織
、体液などから抽出してもよい。本発明の遺伝子型判定方法に使用するための核
酸は任意の哺乳動物供給源から誘導することができるが、核酸サンプルを採取す
る試験被験者および個体は、一般にヒトであることが理解される。
【０２２１】 バイアレリックマーカーを含むＤＮＡフラグメントの増幅 方法およびポリヌクレオチドは、本発明の１以上のバイアレリックマーカーを
含むヌクレオチドのセグメントを増幅するために提供される。バイアレリックマ
ーカーを含むＤＮＡフラグメントの増幅は、様々な方法においておよび様々な目
的のために使用することができ、遺伝子型判定に限定されない。それにもかかわ
らず、多くの遺伝子型判定方法では、全てではないにしても、目的のバイアレリ
ックマーカーを担持するＤＮＡ領域を予め増幅する必要がある。そのような方法
は、バイアレリックマーカーに及ぶかまたはその部位およびそれに遠位もしくは
近位のいずれかに位置する配列を含む配列の濃度あるいは合計数を特異的に増加
する。診断アッセイも、本発明のバイアレリックマーカーを担持するＤＮＡセグ
メントの増幅に依存し得る。増幅技法については、上記の題目「ＴＢＣ−１関連
バイアレリックマーカーの同定」に記載されている。
【０２２２】 これらの増幅方法のいくつかは、単一のヌクレオチド多型の検出に特に適して
おり、標的配列の同時増幅および多型性ヌクレオチドの同定を可能にする。これ
については以下でさらに説明する。
【０２２３】 上記のバイアレリックマーカーの同定は、本発明のバイアレリックマーカーを
含むＤＮＡフラグメントを増幅するためのプライマーとして使用することができ
る適切なオリゴヌクレオチドの設計を可能にする。本明細書に記載の新規のバイ
アレリックマーカーを発見するためにはじめに使用されるプライマーまたは本発
明のバイアレリックマーカーを含むＤＮＡフラグメントの増幅を可能にする任意
の組のプライマーを使用して、増幅を実施することができる。
【０２２４】 いくつかの実施態様において、本発明は本発明の１以上のバイアレリックマー
カーを含有するＤＮＡフラグメントを増幅するためのプライマーを提供する。好
ましい増幅プライマーを実施例２に列挙する。列挙したプライマーは単なる例示
であること、および本発明の１以上のバイアレリックマーカーを含有する増幅産
物を産生する他の任意の組のプライマーも使用されることは理解されよう。
【０２２５】 プライマーの間隔配置は、増幅しようとするセグメントの長さを決定する。本
発明では、バイアレリックマーカーを担持する増幅されるセグメントは、少なく
とも約２５ｂｐ〜３５ｋｂｐのサイズの範囲にあり得る。２５〜３０００ｂｐの
増幅フラグメントが典型的であり、５０〜１０００ｂｐのフラグメントは好まし
く、１００〜６００ｂｐのフラグメントはさらに好ましい。バイアレリックマー
カーの増幅プライマーは、マーカーを担持する任意のＤＮＡフラグメントの特定
の増幅を可能にする任意の配列であり得ることが理解されよう。増幅プライマー
は、題目「オリゴヌクレオチドプローブおよびプライマー」に記載のように、標
識するかまたは固相支持体上に固定化することができる。
【０２２６】 バイアレリックマーカーに対するＤＮＡサンプルの遺伝子型判定方法 当該分野において任意の公知の方法を使用して、バイアレリックマーカー部位
に存在するヌクレオチドを同定することができる。検出しようとするバイアレリ
ックマーカー対立遺伝子は同定され、本発明において明確にされているため、任
意の多くの技法を用いることによって、検出は当業者にとって簡素である。多く
の遺伝子型判定方法では、目的のバイアレリックマーカーを担持するＤＮＡ領域
を予め増幅することが必要である。標的またはシグナルの増幅は現時点でしばし
ば好ましいが、増幅を必要としない超高感度検出方法も本発明の遺伝子型判定方
法に包含される。バイアレリック多型を検出するために使用され得る当業者に周
知の方法は、従来のドットブロット分析、Ｏｒｉｔａら（１９８９）らにより記
載の一本鎖高次構造多型分析（ＳＳＣＰ）、変性剤濃度勾配ゲル電気泳動（ＤＧ
ＧＥ）、へテロ二本鎖分析、ミスマッチ切断検出、およびＳｈｅｆｆｉｅｌｄら
（１９９１）、Ｗｈｉｔｅら（１９９２）、Ｇｒｏｍｐｅら（１９８９および１
９９３）に記載のような他の従来の技法などの方法を含む。特定の多型性部位に
存在するヌクレオチドの正体を決定するためのもう１つの方法は、米国特許第４
，６５６，１２７号に記載のような特定化されたエキソヌクレアーゼ耐性ヌクレ
オチドを使用する。
【０２２７】 好ましい方法は、シークエンシングアッセイ、酵素に基づくミスマッチ検出ア
ッセイ、またはハイブリダイゼーションによってバイオアベイラビリティー部位
に存在するヌクレオチドの正体を直接決定することを含む。さらに好ましい方法
は、マイクロシークエンシング技法である。用語「配列決定」は、二本鎖プライ
マー／テンプレート複合体のポリメラーゼ伸長を指すために本明細書において一
般的に使用され、従来のシークエンシングおよびマイクロシークエンシングの両
方を含む。
【０２２８】 １）シークエンシングアッセイ 多型性部位に存在するヌクレオチドは、配列決定方法によって決定することが
できる。好ましい実施態様では、上記のような配列決定前に、ＤＮＡサンプルを
ＰＣＲ増幅に供する。ＤＮＡ配列決定方法は、題目「増幅されたゲノムＤＮＡの
配列決定および単一ヌクレオチド多型の同定」に記載されている。
【０２２９】 好ましくは、ダイプライマーサイクル配列決定プロトコルを使用して、増幅さ
れたＤＮＡを自動化ジデオキシターミネーター配列決定反応に供する。配列分析
は、バイアレリックマーカー部位に存在する塩基の同定を可能にする。
【０２３０】 マイクロシークエンシングアッセイ マイクロシークエンシング方法では、単一ヌクレオチドプライマー伸長反応に
よって標的ＤＮＡの多型性部位のヌクレオチドが検出される。本方法は、標的核
酸の目的の多型性塩基の直ぐ上流にハイブリダイズする適切なマイクロシークエ
ンシングプライマーを含む。ポリメラーゼを使用して、多型性部位のヌクレオチ
ドに相補的な単一のｄｄＮＴＰ（チェインターミネーター）によりプライマーの
３’末端を特異的に伸長させる。次に、適切な任意の方法で、組み入れられたヌ
クレオチドの正体を決定する。
【０２３１】 典型的に、蛍光ｄｄＮＴＰを使用してマイクロシークエンシング反応を行い、
ＡＢＩ３７７配列決定用機械上での電気泳動によって伸長されたマイクロシーク
エンシングプライマーを分析し、ＥＰ４１２８８３（その開示内容は、その全体
が参考として本明細書に援用される）に記載のような組み入れられたヌクレオチ
ドの正体を決定する。あるいは、より多くのアッセイを同時に処理するためには
、キャピラリー電気泳動を使用することもできる。本発明において使用され得る
典型的なマイクロシークエンシング方法の例については、実施例４に記載する。
【０２３２】 ｄｄＮＴＰの標識および検出については異なるアプローチを使用することがで
きる。蛍光共鳴エネルギー転移（ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ ｒｅｓｏｎａｎｃ
ｅ ｅｎｅｒｇｙ ｔｒａｎｓｆｅｒ）に基づく相同的相検出方法については、
ＣｈｅｎおよびＫｗｏｋ（１９９７）ならびにＣｈｅｎら（１９９７）により記
載されている。本方法では、多型性部位を含有する増幅されたゲノムＤＮＡフラ
グメントを、対立遺伝子の色素標識ジデオキシリボヌクレオシド三リン酸および
修飾されたＴａｑポリメラーゼの存在下で５’−フルオレセイン標識プライマー
と共にインキュベートする。テンプレート上に存在する対立遺伝子に特異的な色
素ターミネーターによって色素標識プライマーを１塩基伸長させる。遺伝子型判
定反応の終了時に、分離または精製することなく、反応混合物の２つの色素の蛍
光強度を分析する。これらの全ての工程を同一の試験管内で実施することができ
、蛍光の変化を実時間で監視することができる。あるいは、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ
質量分析によって、伸長した多型性部位を分析することもできる。多型性部位の
塩基は、マイクロシークエンシングプライマー上に添加された質量によって同定
される（ＨａｆｆおよびＳｍｉｒｎｏｖ、１９９７を参照のこと）。
【０２３３】 確立されたマイクロシークエンシング方法またはその開発もしくは誘導体によ
ってマイクロシークエンシングを達成してもよい。代替的方法は、いくつかの固
相マイクロシークエンシング技法を含む。塩基マイクロシークエンシングプロト
コルは、プライマーまたは標的分子が固相支持体に固定化もしくは捕獲される異
種相アッセイとして方法が行われることを除いて、先に記載のプロトコルと同一
である。プライマーの分離および末端ヌクレオチド付加分析を簡単にするために
、オリゴヌクレオチドを固相支持体に結合させるか、またはアフィニティー分離
およびポリメラーゼ伸長を可能にするような方法で修飾する。合成オリゴヌクレ
オチドの５’末端および内部ヌクレオチドは、多くの異なる方法で修飾すること
ができ、異なるアフィニティー分離、例えば、ビオチン化を可能にすることがで
きる。単一の親和性基をオリゴヌクレオチド上で使用する場合、オリゴヌクレオ
チドを組み入れられたターミネーター試薬から分離することができる。これによ
り物理的分離またはサイズ分離が省かれる。ターミネーター試薬から１以上のオ
リゴヌクレオチドを分離し、１以上の親和性基を使用する場合は同時に分析する
ことができる。これにより、伸長反応あたりのいくつかの核酸種またはより多く
の核酸配列情報の分析を行うことができる。親和性基は、プライマー用オリゴヌ
クレオチド上にある必要はないが、その代わりにテンプレート上に存在してもよ
い。例えば、ビオチン化ＤＮＡとストレプトアビジン被覆化マイクロタイターウ
ェルまたはアビジン被覆化ポリスチレン粒子との間の相互作用を介して、固定化
を行うことができる。同方法で、オリゴヌクレオチドまたはテンプレートを、高
密度形式で固相支持体に結合してもよい。そのような固相マイクロシークエンシ
ング反応では、組み入れられたｄｄＮＴＰを放射性標識（Ｓｙｖａｎｅｎ、１９
９４）するかまたはフルオレセイン（ＬｉｖａｋおよびＨａｉｎｅｒ、１９９４
）に結合することができる。シンチレーションに基づく技法により、放射性標識
されたｄｄＮＴＰの検出を達成することができる。フルオレセイン結合ｄｄＮＴ
Ｐの検出は、アルカリホスファターゼにコンジュゲートした抗フルオレセイン抗
体の結合、その後の発色基質（ｐ−ニトロフェニルホスフェートなど）とのイン
キュベーションに基づき得る。他の可能なレポーター検出対としては、ジニトロ
フェニル（ＤＮＰ）に結合したｄｄＮＴＰおよび抗ＤＮＰアルカリホスファター
ゼコンジュゲート（Ｈａｒｊｕら、１９９３）またはビオチン化ｄｄＮＴＰおよ
び基質としてｏ−フェニレンジアミンを伴う西洋ワサビペルオキシダーゼコンジ
ュゲートストレプトアビジン（ＷＯ９２／１５７１２）が挙げられる。さらにも
う１つの代替的固相マイクロシークエンシング方法として、Ｎｙｒｅｎら（１９
９３）は、酵素発光測定無機ピロリン酸検出アッセイ（ＥＬＩＤＡ）によるＤＮ
Ａポリメラーゼ活性の検出に基づく方法を記載した。
【０２３４】 Ｐａｓｔｉｎｅｎら（１９９７）は、固相マイクロシークエンシング原理がオ
リゴヌクレオチドアレイ形式に適用される単一ヌクレオチド多型の複合検出の方
法を記載している。固相支持体に結合したＤＮＡプローブの高密度アレイ（ＤＮ
Ａチップ）については、さらに以下に記載する。
【０２３５】 １つの局面において、本発明は、マイクロシークエンシングアッセイを実施す
ることによって１以上の本発明のバイアレリックマーカーの遺伝子型を判定する
ためのポリヌクレオチドおよび方法を提供する。好ましいマイクロシークエンシ
ングプライマーは、ヌクレオチド配列Ｄ１〜Ｄ１５およびＥ１〜Ｅ１５を含む。
実施例５に列挙されたマイクロシークエンシングプライマーは単なる例示であり
、多型性ヌクレオチドの直ぐ隣に接する３’末端を有する任意のプライマーを使
用し得ることが理解できるであろう。同様に、マイクロシークエンシングアッセ
イは、本発明の任意のバイアレリックマーカーのために、またはバイアレリック
マーカーの任意の組合せのために実施され得る。本発明の１つの局面は、バイア
レリックマーカー部位のヌクレオチドの正体を決定するための実施例５に列挙さ
れる１以上のマイクロシークエンシングプライマー、またはその少なくとも８、
１２、１５、２０、２５、３０、４０、または５０連続ヌクレオチドを、そのよ
うな長さが記載のプライマーに一致する程度で含み、対応するバイアレリックマ
ーカーの直ぐ上流の３’末端を有するフラグメントを含む固相支持体である。
【０２３６】 ３）ポリメラーゼおよびリガーゼに基づくミスマッチ検出アッセイ １つの局面において、本発明は、ポリメラーゼおよびリガーゼに基づくミスマ
ッチ検出アッセイによって、生物学的サンプルにおいて本発明の１以上のバイア
レリックマーカーの対立遺伝子を決定するためのポリヌクレオチドおよび方法を
提供する。重合反応は、増幅プライマーの３’末端の正確な塩基対形成に特にス
トリンジェントな要件を配置し、標的ＤＮＡ配列にハイブリダイズした２つのオ
リゴヌクレオチドの結合は、連結部位、具体的には３’末端に近いミスマッチに
十分感受性である。本発明のバイアレリックマーカーを含むＤＮＡフラグメント
を増幅するための方法、プライマーおよび様々なパラメータについては、「バイ
アレリックマーカーを含むＤＮＡフラグメントの増幅」において上記にさらに記
載している。
【０２３７】 対立遺伝子特異的増幅プライマー バイアレリックマーカーの２つの対立遺伝子間の識別は、対立遺伝子特異的増
幅、選択的ストラテジーによって達成することができ、それによって対立遺伝子
のうちの一方が、他方の対立遺伝子の増幅を伴うことなく増幅される。対立遺伝
子特異的増幅については、プライマーの対の少なくとも１つのメンバーは、本発
明のバイアレリックマーカーの多型性塩基を含むＴＢＣ−１遺伝子の領域に十分
相補的であり、それにハイブリダイズして増幅を開始する。そのようなプライマ
ーは、バイアレリックマーカーの２つの対立遺伝子間を識別することができる。
【０２３８】 これは、増幅プライマーの１つの３’末端に多型性塩基を配置することによっ
て達成することができる。伸長はプライマーの３’末端から形成するため、この
位置または付近のミスマッチは増幅に対して阻害効果を有する。従って、適切な
増幅条件下では、これらのプライマーは、それらの相補的対立遺伝子にのみ増幅
を指令する。ミスマッチの正確な位置の決定および対応するアッセイ条件は当業
者に周知である。
【０２３９】 連結／増幅に基づく方法 「オリゴヌクレオチド連結アッセイ」（ＯＬＡ）では、標的分子の一本鎖の隣
接配列にハイブリダイズし得るように設計された２つのオリゴヌクレオチドを使
用する。オリゴヌクレオチドのうちの一方をビオチン化し、他方を検出可能に標
識する。標的分子中に正確な相補配列を見出す場合、オリゴヌクレオチドは、そ
れらの末端が隣接して、捕獲および検出され得る連結支持体を作製するようにハ
イブリダイズする。ＯＬＡは、単一のヌクレオチド多型を検出し得、Ｎｉｃｋｅ
ｒｓｏｎら（１９９０）により記載のようにＰＣＲに有利に組み合わせられ得る
。この方法では、ＰＣＲを使用して標的ＤＮＡを指数的に増幅させ、次いで、Ｏ
ＬＡを使用して検出する。
【０２４０】 単一ヌクレオチド多型の検出に特に適切である他の増幅方法は、上記の「ＤＮ
Ａ増幅」に記載のＬＣＲ（リガーゼ連鎖反応）、Ｇａｐ ＬＣＲ（ＧＬＣＲ）を
含む。ＬＣＲは、２対のプローブを使用して、特異的標的を指数的に増幅する。
オリゴヌクレオチドのそれぞれの対の配列を選択して、該対が、標的の同鎖の隣
接配列にハイブリダイズすることを可能にする。そのようなハイブリダイゼーシ
ョンは、テンプレート依存性リガーゼの基質を形成する。本発明に従えば、バイ
アレリックマーカー部位の同鎖の近位および遠位の配列を有するオリゴヌクレオ
チドによりＬＣＲを実施することができる。１つの実施態様において、いずれか
のオリゴヌクレオチドは、バイアレリックマーカー部位を含むように設計される
。そのような実施態様では、標的分子が、オリゴヌクレオチド上のバイアレリッ
クマーカーに相補的である特異的ヌクレオチドを含有するかまたは欠くかのいず
れかの場合にのみ、オリゴヌクレオチドが共に連結され得るように選択される。
代替的実施態様において、オリゴヌクレオチドはバイアレリックマーカーを含ま
ないため、該オリゴヌクレオチドが標的分子にハイブリダイズする場合、「ギャ
ップ」はＷＯ９０／０１０６９に記載のように作製される。次いで、相補的ｄＮ
ＴＰ（ＤＮＡポリメラーゼによって仲介される）によるかまたはオリゴヌクレオ
チドのさらなる対によって、このギャップが「充填」される。従って、それぞれ
のサイクルの終了時に、それぞれの一本鎖は、次のサイクル中に標的として作用
し得る相補体を有し、所望の配列の指数的対立遺伝子特異的増幅が得られる。
【０２４１】 リガーゼ／ポリメラーゼ介在Ｇｅｎｅｔｉｃ Ｂｉｔ Ａｎａｌｙｓｉｓ（登
録商標）は、核酸分子において予め選択された部位のヌクレオチドの正体を決定
するもう１つの方法である（ＷＯ９５／２１２７１）。この方法は、プライマー
分子の末端に、予め選択された部位に存在するヌクレオチドに相補的であるヌク
レオチド三リン酸を組み入れ、その後第２のオリゴヌクレオチドに連結すること
を含む。反応固相に結合した特異的標識を検出することによって、または溶液中
の検出によって該反応を監視する。
【０２４２】 ４）ハイブリダイゼーションアッセイ方法 バイアレリックマーカー部位に存在するヌクレオチドの正体を決定する好まし
い方法は、核酸のハイブリダイゼーションを含む。そのような反応において簡便
に使用することができるハイブリダイゼーションプローブは、好ましくは、本明
細書に規定されるプローブを含む。サザンハイブリダイゼーション、ノーザンハ
イブリダイゼーション、ドットブロットハイブリダイゼーションおよび固相ハイ
ブリダイゼーションを含む任意のハイブリダイゼーションアッセイを使用するこ
とができる（Ｓａｍｂｒｏｏｋら、１９８９を参照のこと）。
【０２４３】 ハイブリダイゼーションは、相補的塩基の対形成による二本の一本鎖核酸の二
本鎖構造の形成を指す。ハイブリダイゼーションは、正確に相補的な核酸鎖間ま
たはミスマッチの少数領域を含有する核酸鎖間で生じ得る。バイアレリックマー
カーの一方の形態にハイブリダイズし、他方にはハイブリダイズせず、従って、
異なる対立遺伝子形態間を識別し得る特異的プローブを設計することができる。
対立遺伝子特異的プローブは、しばしば対（本来の対立遺伝子を含有する標的配
列に完全に一致する対の一方のメンバーおよび代替的対立遺伝子を含有する標的
配列に完全に一致する他方のメンバー）で使用される。ハイブリダイゼーション
条件は、対立遺伝子間のハイブリダイゼーション強度に有意差、好ましくは本質
的な二元応答が存在し、それによってプローブが対立遺伝子の一方のみにハイブ
リダイズする程度に十分にストリンジェントであるべきである。プローブが、正
確に相補的な標的配列にのみハイブリダイズするストリンジェントな配列特異的
ハイブリダイゼーション条件は、当該分野において周知である（Ｓａｍｂｒｏｏ
ｋら、１９８９）。ストリンジェント条件は配列依存性であり、異なる環境下で
異なる。一般に、ストリンジェント条件は、規定されたイオン強度およびｐＨで
特異的配列に対する融解点（Ｔｍ）より約５℃低く選択される。そのようなハイ
ブリダイゼーションを溶液中で実施することもができるが、固相ハイブリダイゼ
ーションアッセイを用いるのが好ましい。ハイブリダイゼーション反応の前に、
本発明のバイアレリックマーカーを含む標的ＤＮＡを増幅してもよい。プローブ
と標的ＤＮＡとの間に形成される安定なハイブリッド二本鎖の有無を検出するこ
とによって、サンプル中の特異的対立遺伝子の存在が検出される。多くの方法に
よって、ハイブリッド二本鎖の検出を行うことができる。標的またはプローブの
いずれかに結合した検出可能な標識を利用してハイブリッド二本鎖の検出を可能
にする様々な検出アッセイ方式が周知である。代表的に、ハイブリダイゼーショ
ン二本鎖を非ハイブリダイズ二本鎖から分離し、次いで二本鎖に結合した標識を
検出する。当業者であれば、洗浄工程を用いて過剰の標的ＤＮＡまたはプローブ
および非結合コンジュゲートを洗浄除去し得ることを理解するであろう。さらに
、標準的な異種アッセイ形式は、プライマーおよびプローブ上に存在する標識を
用いてハイブリッドを検出するのに適切である。
【０２４４】 最近開発された２つのアッセイは、分離および洗浄を必要としないハイブリダ
イゼーションに基づく対立遺伝子識別を可能にする（Ｌａｎｄｅｇｒｅｎ Ｕ．
ら、１９９８）。ＴａｑＭａｎアッセイは、蓄積する増幅産物に特異的にアニー
ルするＤＮＡプローブを消化するためのＴａｑ ＤＮＡポリメラーゼの５’ヌク
レアーゼ活性を利用する。ＴａｑＭａｎプローブを、蛍光エネルギー移動を介し
て相互作用するドナー−アクセプター色素対で標識する。増幅中にポリメラーゼ
を進行することによってＴａｑＭａｎプローブを切断すると、クエンチングアク
セプター色素からドナー色素が解離し、穏やかにドナーの蛍光が増加する。２つ
の対立遺伝子変異体を検出するのに必要な全ての試薬は、反応の開始時に組み立
てることができ、結果は実時間で監視される（Ｌｉｖａｋら、１９９５を参照の
こと）。代替的な均質なハイブリダイゼーションに基づく方法において、分子ビ
ーコン（ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｂｅａｃｏｎ）は対立遺伝子の識別に有用である
。分子ビーコンは、均質な溶液において特異的核酸の存在を報告するヘアピン形
状のオリゴヌクレオチドプローブである。該分子ビーコンがそれらの標的に結合
すると、それらは、内部でクエンチングした発蛍光団の蛍光を保存するコンホメ
ーションの再編成を行う（Ｔｙａｇｉら、１９９８）。
【０２４５】 本明細書に記載のポリヌクレオチドを使用して、生物学的サンプル中のバイア
レリックマーカー対立遺伝子の検出のためのハイブリダイゼーションアッセイに
使用することができるプローブを産生することができる。これらのプローブは、
好ましくは、８〜５０ヌクレオチドを有することを特徴とし、それらは、ハイブ
リダイズするために本発明のバイアレリックマーカーを含む配列に十分に相補的
であり、好ましくは、ただ１つのヌクレオチドバリエーションに対して標的化さ
れた配列を識別し得るのに十分に特異的であることを特徴とする。特に好ましい
プローブは、２５ヌクレオチド長である。好ましくは、バイアレリックマーカー
は、ポリヌクレオチドプローブの中央部の４ヌクレオチド内にある。特に好まし
いプローブでは、バイアレリックマーカーは前記ポリヌクレオチドの中央部にあ
る。好ましいプローブは、表１に列挙されるアンプリコンおよびそれに相補的な
配列から成る群より選択されるヌクレオチド配列、またはそのフラグメントを含
み、前記フラグメントは少なくとも約８連続ヌクレオチド、好ましくは、１０、
１５、２０、より好ましくは、２５、３０、４０、４７、または５０連続ヌクレ
オチドを含み、多型性塩基を含有する。好ましいプローブは、Ｐ１〜Ｐ７、Ｐ９
〜Ｐ１３、Ｐ１５〜Ｐ１９およびそれに相補的な配列から成る群より選択される
ヌクレオチド配列を含む。好ましい実施態様では、多型性塩基は、前記ポリヌク
レオチドの中央部の５、４、３、２、１ヌクレオチド内、より好ましくは、前記
ポリヌクレオチドの中央部にある。
【０２４６】 好ましくは、本発明のプローブは、固相支持体上に標識または固定化される。
標識および固相支持体については、「オリゴヌクレオチドプローブおよびプライ
マー」にさらに説明している。プローブは、「オリゴヌクレオチドプローブおよ
びプライマー」に記載のように、非伸長性であり得る。
【０２４７】 対立遺伝子の特異的プローブに対するハイブリダイゼーションをアッセイする
ことによって、所定のサンプルにおけるバイアレリックマーカー対立遺伝子の有
無を検出することができる。「ハイブリダイゼーションアッセイ」には、アレイ
形式の高スループットパラレルハイブリダイゼーションが特に包含され、以下に
記載されている。
【０２４８】 ５）オリゴヌクレオチドのアドレス指定可能なアレイに対するハイブリダイゼー
ション オリゴヌクレオチドアレイに基づくハイブリダイゼーションアッセイは、標的
配列変異体に好ましく一致またはミスマッチするための短いオリゴヌクレオチド
のハイブリダイゼーション安定性の差異に依存する。選択された位置での固相支
持体（例えば、チップ）に結合したオリゴヌクレオチドプローブの高密度アレイ
を含む基本構造を介して、多型情報への効率的なアクセスが得られる。それぞれ
のＤＮＡチップは、格子様パターンに配列され、１０セント硬貨大にミニチュア
化した数千〜数百万の個々の合成ＤＮＡプローブを含有し得る。
【０２４９】 チップ技法は、既に多くの場合に適用することが成功している。例えば、変異
のスクリーニングが、Ｓ．ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ変異株のＢＲＣＡ１遺伝子、お
よびＨＩＶ−１ウイルスのプロテアーゼ遺伝子において行われている（Ｈａｃｉ
ａら、１９９６；Ｓｈｏｅｍａｋｅｒら、１９９６；Ｋｏｚａｌら、１９９６）
。バイアレリック多型を検出するのに使用するための様々な形式のチップを、注
文に基づいてＡｆｆｙｍｅｔｒｉｘ（ＧｅｎｅＣｈｉｐ（登録商標））、Ｈｙｓ
ｅｑ（ＨｙＣｈｉｐ ａｎｄ ＨｙＧｎｏｓｔｉｃｓ）、およびＰｒｏｔｏｇｅ
ｎｅ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓによって製造することができる。
【０２５０】 一般に、これらの方法は、個体由来の標的核酸配列セグメントに相補的なオリ
ゴヌクレオチドプローブのアレイを使用する。該標的配列は、多型性マーカーを
含む。ＥＰ７８５２８０は、単一のヌクレオチド多型の検出のためのタイル張り
ストラテジーについて記載している。簡単に説明すると、アレイは、一般に多数
の特異的多型について「タイル張り」され得る。「タイル張り」とは、一般に、
目的の標的配列に相補的な配列、および該配列の予め選択された変異体（例えば
、ヌクレオチドの基本的組の１以上のメンバーによる１以上の所定の位置の置換
）から作製される規定された組のオリゴヌクレオチドプローブの合成を意味する
。タイル張りストラテジーについては、ＰＣＴ出願ＷＯ９５／１１９９５にさら
に記載されている。特定の局面において、アレイは、多量の特異的な同定された
バイアレリックマーカー配列を対象にタイル張りされている。特に、多くの検出
ブロックを含むためにアレイがタイル張りされ、それぞれの検出ブロックは、特
異的バイアレリックマーカーまたはバイアレリックマーカーの組に特異的である
。例えば、検出ブロックは、特異的な多型を含む配列セグメントに及ぶ多くのプ
ローブを含むためにタイル張りされ得る。それぞれの対立遺伝子に相補的なプロ
ーブを確実にするために、バイアレリックマーカーで異なる対でプローブを合成
する。多型性塩基で異なるプローブに加えて、単置換されたプローブも一般に検
出ブロック内でタイル張りされる。これらの単置換されたプローブは、残りのヌ
クレオチド（Ａ、Ｔ、Ｇ、ＣおよびＵから選択される）で置換される多型からい
ずれかの方向で特定の塩基数でおよび特定の塩基数までの塩基を有する。典型的
に、タイル張りされた検出ブロックにおけるプローブは、バイアレリックマーカ
ーの多型性部位から５塩基離れている配列位置までおよび配列位置を含む配列位
置の置換を含む。単置換されたプローブは、タイル張りアレイの内部制御を提供
して、実際のハイブリダイゼーションを人為構造的クロスハイブリダイゼーショ
ンから区別する。標的配列とのハイブリダイゼーションおよびアレイ洗浄の終了
時に、アレイを走査して、標的配列がハイブリダイズするアレイ上の位置を決定
する。次いで、走査されたアレイから得られるハイブリダイゼーションデータを
解析して、バイアレリックマーカーのどの対立遺伝子がサンプルに存在するかを
同定する。ＰＣＴ出願ＷＯ９２／１００９２および同ＷＯ９５／１１９９５なら
びに米国特許第５，４２４，１８６号に記載のように、ハイブリダイゼーション
および走査を行ってもよい。
【０２５１】 従って、いくつかの実施態様において、チップは約１５ヌクレオチド長のフラ
グメントの核酸配列のアレイを含んでもよい。さらなる実施態様において、チッ
プは、表１に列挙されるアンプリコンおよびそれに相補的な配列から成る群より
選択される配列、またはそのフラグメントの少なくとも１つを含み、該フラグメ
ントは、少なくとも約８連続ヌクレオチド長、好ましくは１０、１５、２０、よ
り好ましくは２５、３０、４０、４７、もしくは５０連続ヌクレオチドを含み、
多型性塩基を含有する。好ましい実施態様では、多型性塩基は、前記ポリヌクレ
オチドの中央部の５、４、３、２、１ヌクレオチド内、より好ましくは、前記ポ
リヌクレオチドの中央部にある。いくつかの実施態様において、チップは少なく
とも２、３、４、５、６、７、８以上の本発明のこれらのポリヌクレオチドを含
み得る。固相支持体に結合している本発明の固相支持体およびポリヌクレオチド
については、「オリゴヌクレオチドプローおよびプライマーブ」にさらに記載さ
れている。
【０２５２】 ６）組み込み型システム 多型を分析するために使用され得るもう１つの技法は、単一機能デバイスにお
いてＰＣＲおよびキャピラリー電気泳動反応などのプロセスをミニチュア化およ
び区画分けする多成分組込み型システムを含む。そのような技法の例については
米国特許第５，５８９，１３６号に開示されており、チップ内でのＰＣＲ増幅お
よびキャピラリー電気泳動の組込みについて記載している。
【０２５３】 組み込み型システムは、主に微小流動システムを使用する場合に想定すること
ができる。これらのシステムは、マイクロチップに含まれるガラス、シリコン、
石英、またはプラスチックウェーハ上に設計されたマイクロチャネルのパターン
を含む。サンプルの移動は、マイクロチップの異なる領域に適用される電気、電
気浸透または静水力によって制御され、機能的顕微鏡的バルブおよび駆動部を伴
わないポンプを作製する。
【０２５４】 バイアレリックマーカーの遺伝子型を判定するために、微小流動システムは、
核酸の増幅、マイクロシークエンシング、キャピラリー電気泳動およびレーザー
誘導性蛍光検出などの検出方法を組み込んでもよい。
【０２５５】 ＴＢＣ−１遺伝子のバイアレリックマーカーによる関連研究 遺伝子マッピングのために現在使用されている２つの主なストラテジー、連結
分析および関連研究を介して、疑わしい異種性、ポリジーン性およびガンなどの
多因子性形質に関与する遺伝子の同定を行うことができる。関連研究は、形質陰
性（Ｔ−）対照に比較して、非関連形質陽性（Ｔ＋）個体のマーカー対立遺伝子
の頻度を検討し、一般に、ポリジーン遺伝の検出に用いられる。遺伝子形質のマ
ッピングの方法としての関連研究は、以下に記載の連鎖不均衡の現象に依存する
。
【０２５６】 ２つの遺伝子座が同一染色体にある場合、同一染色体セグメント上のこれらの
遺伝子座の対立遺伝子の組（ハプロタイプと呼ばれる）は、世代から世代へのブ
ロックとして伝達される傾向がある。再組換えによって破壊されない場合、ハプ
ロタイプは、系統だけではなく集団によっても追跡され得る。集団レベルで得ら
れる現象は、同一染色体上の異なる遺伝子座での特異的対立遺伝子の対の発生が
無作為であり、無作為による偏差を連鎖不均衡（ＬＤ）という。
【０２５７】 所定の遺伝子の特異的対立遺伝子が特定の形質Ｔの発生に関与する場合、その
頻度は、形質陰性集団における頻度と比較すると、形質陽性集団において統計的
に増加する。連鎖不均衡の存在の結果として、形質を生じる対立遺伝子（ＴＣＡ
）を担持するハプロタイプに存在する他の全ての対立遺伝子の頻度も、形質陰性
個体に比べると形質陽性個体において増加する。従って、形質と形質を生じる対
立遺伝子による連鎖不均衡における任意の対立遺伝子との間の関連は、その特定
の対立遺伝子領域における形質関連遺伝子の存在を示唆するに十分である。連鎖
不均衡は、形質を生じる対立遺伝子を見出すために、全ての可能な機能的多型を
スクリーニングする方法の代替法として、制限された数の遺伝子多型（具体的に
はバイアレリックマーカー）の形質陽性と形質陰性集団の相対的頻度を分析する
ことを可能にする。
【０２５８】 候補領域から誘導されるバイアレリックマーカーを用いる関連研究を実施する
ための一般的ストラテジーは、２つの個体群（形質陽性および形質陰性（以下に
記載の良好に規定された表現型を特徴とする対照個体））を走査し、両群におけ
るそのようなバイアレリックマーカーの対立遺伝子の頻度を測定し、統計的に比
較することである。
【０２５９】 少なくとも１以上の分析されたバイアレリックマーカーについて形質と統計的
に有意な関連が同定される場合、関連対立遺伝子は該形質（関連対立遺伝子はＴ
ＣＡである）を生じる直接的原因であるか、または関連対立遺伝子は形質を生じ
る対立遺伝子との連鎖不均衡であるかのいずれかであると仮定することができる
。候補領域内の関連対立遺伝子が形質を生じる対立遺伝子でない確率が最も高く
、真の形質を生じる対立遺伝子と連鎖不均衡であることを示す証拠がある場合は
、形質を生じる対立遺伝子、および結果として形質を生じる対立遺伝子を担持す
る遺伝子が関連マーカーの付近を配列決定することによって見出され得る。
【０２６０】 形質陽性（形質＋）および形質陰性（形質−）からのＤＮＡサンプルの回収（形
質−個体）（包含基準） 本明細書に記載のような効率的かつ有意な関連研究を実施するために、研究下
の形質は、好ましくは、研究下の集団における二峰分布に従い、２つの明確な非
重複表現型、形質陽性および形質陰性を示す。
【０２６１】 それにもかかわらず、そのような二峰分布（実際には、より複雑な遺伝子形質
の場合であり得る）が認められない場合であっても、任意の遺伝子形質は、形質
陽性および形質陰性表現型グループに包含すべき個体を注意深く選択することに
よって、ここで目的とする関連方法によって分析される。選択方法は、これらの
形質陽性および形質陰性集団に、極度、好ましくは非重複表現型を示す個体を包
含するように、研究下にある形質の非二峰表現型スペクトルの対向末端において
個体を選択する必要がある。
【０２６２】 形質陽性および形質陰性集団の包含基準の定義は、本発明の重要な局面である
。極めて顕著に異なるが比較的均一な表現型の選択は、関連研究の効率的な比較
および遺伝子レベルの顕著な差異の可能な検出を可能にする。但し、研究下の集
団のサンプルのサイズは有意に十分な量とする。
【０２６３】 一般に、本発明の目的のための関連研究に包含すべき形質陽性および形質陰性
集団は、形質分布が二峰である場合、それぞれが１００％の対応する形質を示す
個体の表現型が均質な集団から成る。
【０２６４】 ５０〜３０の形質陽性個体、好ましくは約１００個体の第１の集団が、臨床包
含基準に従って補充され得る。
【０２６５】 それぞれの場合、同様の数の形質陰性個体、好ましくは１００を超える個体が
、人種および年齢の両方が形質陽性症例に一致する研究に包含される。それらは
、上記で規定された臨床基準が認められないことが確認される。形質陽性および
形質陰性個体の両方とも、関連のない症例に対応するべきである。
【０２６６】 形質陽性および形質陰性個体の遺伝子型判定 上記の集団のそれぞれにおけるバイアレリックマーカーの対立遺伝子頻度は、
題目「バイアレリックマーカーに対するＤＮＡサンプルの遺伝子型判定方法」に
おける上記の方法の１つを使用して決定することができる。分析は、バイアレリ
ックマーカーの作製についての上記の条件と同様の条件で、それぞれの個体由来
のＤＮＡサンプルに対して実施されるゲノムＰＣＲにより得られる増幅されたフ
ラグメントに対して好ましく実施される。
【０２６７】 好ましい実施態様において、増幅されたＤＮＡサンプルは、蛍光ｄｄＮＴＰ（
それぞれのｄｄＮＴＰについて特定の蛍光）および多型性塩基の直ぐ上流にハイ
ブリダイズする適切なマイクロシークエンシングオリゴヌクレオチドを使用する
自動化マイクロシークエンシング反応に供される。
【０２６８】 遺伝子型判定については、実施例５にさらに記載している。
【０２６９】 異なる形質陽性および形質陰性集団に関する上記で規定される本発明のバイア
レリックマーカーを使用し、当業者によって関連研究を行うことができる。バイ
アレリックマーカーＡ１〜Ａ１９を含むＴＢＣ−１遺伝子のバイアレリックマー
カーを使用する関連研究の適切な例は、以下の集団に関する研究を含む。 ガン、好ましくは前立腺ガンを患う形質陽性集団および健康な非罹患集団、ま
たは 前立腺ガンに対して作用する薬剤で治療される前立腺を患う、およびこの治療
の結果副作用を患う形質陽性集団ならびに実質的な副作用を何ら伴うことなく同
薬剤で治療される前立腺ガンを患う形質陰性集団、または 有益な奏効を示す前立腺ガンに対して作用する薬剤で治療される前立腺を患う
形質陽性集団および有益な奏効を何ら伴うことなく同薬剤で治療される前立腺ガ
ンを患う形質陰性集団、または 高度に攻撃的な前立腺ガン腫瘍を呈する前立腺ガンを患う形質陽性集団および
攻撃性を欠く前立腺ガン腫瘍を伴う前立腺ガンを患う形質陰性集団。
【０２７０】 本発明のもう１つ目的は、ＴＢＣ−１遺伝子の１以上のバイアレリックマーカ
ーの対立遺伝子と形質との間の関連を同定および特徴づけする方法を提供する。
本方法は、以下の工程を含む。 形質陽性において、本発明のマーカーまたはバイアレリックマーカーのグルー
プの遺伝子型を判定すること、 形質陰性個体において、本発明のマーカーまたはバイアレリックマーカーのグル
ープの遺伝子型を判定すること、および 少なくとも１つのマーカーの１つの対立遺伝子と形質との間の統計的に有意な関
連を確立すること。
【０２７１】 好ましくは、形質陽性および形質陰性個体は、研究下の形質について非重複表
現型から選択される。１つの実施態様において、バイアレリックマーカーはバイ
アレリックマーカーＡ１〜Ａ１９から成る群より選択される。
【０２７２】 好ましい実施態様において、形質はガン、前立腺ガン、早期前立腺ガン、前立
腺ガンの感受性、前立腺ガン腫瘍の攻撃性のレベル、ＴＢＣ−１遺伝子の改変さ
れた発現、ＴＢＣ−１タンパク質の改変された産生、または改変されたＴＢＣ−
１タンパク質の産生である。
【０２７３】 さらなる実施態様において、形質陰性集団は、関連研究においてランダム比較
集団に置き換えることができる。
【０２７４】 本発明のバイアレリックマーカーまたはバイアレリックマーカーのグループの特
異的対立遺伝子を含むＤＮＡの存在について試験し、検出する工程は、さらに以
下に記載のように行うことができる。
【０２７５】 オリゴヌクレオチドプローブおよびプライマー 本発明はまた、プローブおよびプライマーとして有用なオリゴヌクレオチド分
子に関する。ここで、前記オリゴヌクレオチド分子は、ＴＢＣ−１遺伝子、特に
配列番号１および２のＴＢＣ−１ゲノム配列または配列番号３および４のＴＢＣ
−１ｃＤＮＡ配列に特異的にハイブリダイズする。より詳細には、本発明はまた
、ＴＢＣ−１遺伝子のバイアレリックマーカーの検出のためのオリゴヌクレオチ
ドに関する。これらのオリゴヌクレオチドは、ＤＮＡ増幅およびマイクロシーク
エンシングなどの様々なプロセスにおいて使用されるプライマーまたはハイブリ
ダイゼーション分析におけるＤＮＡ認識のためのプローブのいずれかとして有用
である。ＴＢＣ−１遺伝子から誘導されるポリヌクレオチドは、試験サンプルに
おいて、配列番号１〜４のヌクレオチド配列、もしくはフラグメント、相補体、
または変異体の少なくとも１コピーの存在を検出するために有用である。
【０２７６】 本発明の特に好ましいプローブおよびプライマーは、配列番号１および２の少
なくとも１２、１５、１８、２０、２５、３０、３５、４０、５０、６０、７０
、８０、９０、１００、１５０、２００，５００、または１０００ヌクレオチド
の連続スパンを含む単離された、精製された、もしくは組換体ポリヌクレオチド
またはその相補体を含む。本発明のさらに好ましいプローブおよびプライマーは
、配列番号１の少なくとも１２、１５、１８、２０、２５、３０、３５、４０、
５０、６０、７０、８０、９０、１００、１５０、２００，５００、または１０
００ヌクレオチドの連続スパンを含む単離された、精製された、もしくは組換体
ポリヌクレオチドまたはその相補体であって、ここで、前記連続スパンは、配列
番号１の以下のヌクレオチド位置：１〜１０００、１００１〜２０００、２００
１〜３０００、３００１〜４０００、４００１〜５０００、５００１〜６０００
、６００１〜７０００、７００１〜８０００、８００１〜９０００、９００１〜
１００００、１０００１〜１１０００、１１００１〜１２０００、１２００１〜
１３０００、１３００１〜１４０００、１４００１〜１５０００、１５００１〜
１６０００、１６００１〜１７０００、および１７００１〜１７５９０の少なく
とも１、２、３、５、または１０を含む。本発明の他の好ましいプローブおよび
プライマーは、配列番号２の少なくとも１２、１５、１８、２０、２５、３０、
３５、４０、５０、６０、７０、８０、９０、１００、１５０、２００、５００
、もしくは１０００ヌクレオチドの連続スパンを含む、単離された、精製された
、もしくは組換体ポリヌクレオチドまたはその相補体を含み、ここで前記連続ス
パンは、配列番号２の以下のヌクレオチド位置：１〜５０００、５００１〜１０
０００、１０００１〜１５０００、１５００１〜２００００、２０００１〜２５
０００、２５００１〜３００００、３０００１〜３５０００、３５００１〜４０
０００、４０００１〜４５０００、４５００１〜５００００、５０００１〜５５
０００、５５００１〜６００００、６０００１〜６５０００、６５００１〜７０
０００、７０００１〜７５０００、７５００１〜８００００、８０００１〜８５
０００、８５００１〜９００００、９０００１〜９５０００、および９５００１
〜９９９６０の少なくとも１、２、３、５、または１０を含む。
【０２７７】 本発明のさらに好ましいプローブおよびプライマーは、配列番号３および４の
少なくとも１２、１５、１８、２０、２５、３０、３５、４０、５０、６０、７
０、８０、９０、１００、１５０、２００、５００、もしくは１０００ヌクレオ
チドの連続スパンを含む、単離された、精製された、もしくは組換体ポリヌクレ
オチドまたはその相補体を含む。本発明の特に好ましいプローブおよびプライマ
ーは、配列番号３の少なくとも１２、１５、１８、２０、２５、３０、３５、４
０、５０、６０、７０、８０、９０、１００、１５０、２００、５００、もしく
は１０００ヌクレオチドの連続スパンを含む、単離された、精製された、もしく
は組換体ポリヌクレオチドまたはその相補体を含み、ここで、前記連続スパンは
、配列番号３の以下のヌクレオチド位置：１〜５００、５０１〜１０００、１０
０１〜１５００、１５０１〜２０００、２００１〜２５００、２５０１〜３００
０、３００１〜３５００、および３５０１〜３９８３の少なくとも１、２、３、
５、または１０を含む。本発明のさらに好ましいプローブおよびプライマーは、
配列番号４の少なくとも１２、１５、１８、２０、２５、３０、３５、４０、５
０、６０、７０、８０、９０、１００、１５０、２００、５００、もしくは１０
００ヌクレオチドの連続スパンを含む、単離された、精製された、もしくは組換
体ポリヌクレオチドまたはその相補体を含み、ここで、前記連続スパンは、配列
番号４の以下のヌクレオチド位置：１〜５００、５０１〜１０００、１００１〜
１５００、１５０１〜２０００、２００１〜２５００、２５０１〜３０００、３
００１〜３５００、および３５０１〜３９８８の少なくとも１、２、３、５、ま
たは１０を含む。
【０２７８】 従って、本発明はまた、上記で規定されるストリンジェントなハイブリダイゼ
ーション条件下で、配列番号１〜４のヌクレオチド配列から成る群から選択され
る核酸もしくはその変異体またはそれに相補的な配列に特異的にハイブリダイズ
することを特徴とする核酸プローブに関する。
【０２７９】 １つの実施態様において、本発明は、配列番号１および２のいずれか１つの８
〜５０ヌクレオチドの連続スパンから成るまたは本質的に成る単離された、精製
された、および組換体ポリヌクレオチドおよびその相補体であって、ここで、前
記スパンは前記配列中にＴＢＣ−１関連バイアレリックマーカーを含み；随意的
に、ここで、ＴＢＣ−１の前記バイアレリックマーカーはＡ１〜Ａ１９、および
その相補体から成る群より選択されるか、または随意的にそれとの連結が不均衡
であるバイアレリックマーカーであり；随意的に、ここで、前記連続スパンは１
８〜３５ヌクレオチド長であり、前記バイアレリックマーカーは前記ポリヌクレ
オチドの中央部の４ヌクレオチド内にあり；随意的に、ここで、前記ポリヌクレ
オチドは前記連続スパンからなり、前記連続スパンは２５ヌクレオチド長であり
、前記バイアレリックマーカーは前記ポリヌクレオチドの中央部にあり；随意的
に、ここで、前記連続スパンの３’末端は前記ポリヌクレオチドの３’末端に存
在し；そして随意的に、ここで、前記連続スパンの３’末端は前記ポリヌクレオ
チドの３’末端に位置し、前記バイアレリックマーカーは前記ポリヌクレオチド
の３’末端にある、上記単離された、精製された、および組換体ポリヌクレオチ
ドを包含する。好ましい実施態様では、前記プローブは、次の配列：Ｐ１〜Ｐ７
、Ｐ９〜Ｐ１３、Ｐ１５〜Ｐ１９から選択される配列およびそれらに相補的な配
列を含むか、から成るか、または本質的に成る。
【０２８０】 もう１つの実施態様において、本発明は、配列番号１および２の８〜５０ヌク
レオチドの連続スパンを含むか、から成るか、またはから本質的に成る単離され
た、精製された、および組換体ポリヌクレオチドおよびその相補体であって、前
記連続スパンの３’末端は前記ポリヌクレオチドの３’末端に位置し、前記ポリ
ヌクレオチドの３’末端は、前記配列中のＴＢＣ−１関連バイアレリックマーカ
ーの２０ヌクレオチド上流内に位置し；随意的に、ここで、ＴＢＣ−１関連バイ
アレリックマーカーはＡ１〜Ａ１９、およびその相補体から成る群より選択され
るか、または随意的にそれとの連結が不均衡であるバイアレリックマーカーであ
り；随意的に、ここで、前記ポリヌクレオチドの３’末端は前記配列内のＴＢＣ
−１関連バイアレリックマーカーの１ヌクレオチド上流に位置し；そして随意的
に、ここで、前記ポリヌクレオチドは次の配列Ｄ１〜Ｄ１９およびＥ１〜Ｅ１９
から選択される配列から本質的に成る、上記単離された、精製された、および組
換体ポリヌクレオチドを包含する。
【０２８１】 さらなる実施態様において、本発明は、次の配列：Ｂ１〜Ｂ１５およびＣ１〜
Ｃ１５から選択される配列を含むか、から成るか、またはから本質的に成る単離
された、精製された、もしくは組換体ポリヌクレオチドを包含する。
【０２８２】 さらなる実施態様において、本発明は、配列番号１および２のＴＢＣ−１関連
バイアレリックマーカー、またはそれに相補的な配列の正体を決定するためのハ
イブリダイゼーションアッセイ、シークエンシングアッセイ、および酵素に基づ
くミスマッチ検出アッセイに使用するためのポリヌクレオチド、ならびに配列番
号１および２のＴＢＣ−１関連バイアレリックマーカー、またはそれに相補的な
配列を含むヌクレオチドのセグメントを増幅するのに使用するためのポリヌクレ
オチドを包含し；随意的に、ここで、前記ＴＢＣ−１関連バイアレリックマーカ
ーはＡ１〜Ａ１９、およびその相補体から成る群より選択されるか、または随意
的にそれとの連結が不均衡であるバイアレリックマーカーである。
【０２８３】 これらのプローブおよびプライマーの長さは８〜１００ヌクレオチド長であり
、少なくとも１２、１５、１８、２０、２５、３０、３５、４０、５０、６０、
７０、８０、９０、１００、１５０、２００、５００、もしくは１０００ヌクレ
オチド長であることが明確にされている。より詳細には、これらのプローブおよ
びプライマーの長さは、８、１０、１５、２０、または３０〜１００ヌクレオチ
ド、好ましくは１０〜５０、より好ましくは１５〜３０ヌクレオチドの範囲であ
り得る。より短いプローブおよびプライマーは標的核酸配列への特異性を欠く傾
向があり、一般にテンプレートとの十分に安定なハイブリッド複合体を形成する
ためにより低い温度を必要とする。より長いプローブおよびプライマーは生成費
用が高く、時々自己ハイブリダイズしてヘアピン構造を形成し得る。アッセイ条
件の特定の組の下でのプライマーおよびプローブの適切な長さは、当業者によっ
て経験的に決定され得る。好ましいプローブまたはプライマーは、Ｐ１〜Ｐ７、
Ｐ９〜Ｐ１３、Ｐ１５〜Ｐ１９のヌクレオチド配列およびそれに相補的な配列、
Ｂ１〜Ｂ１５、Ｃ１〜Ｃ１５、Ｄ１〜Ｄ１９、Ｅ１〜Ｅ１９の群より選択される
ポリヌクレオチドを含む核酸から成り、配列表中のそれぞれの位置は、表２、３
および４に記載されている。
【０２８４】 安定なハイブリッドの形成はＤＮＡの融解温度（Ｔｍ）に依存する。Ｔｍはプ
ライマーまたはプローブの長さ、溶液のイオン強度およびＧ＋Ｃ含量に依存する
。プライマーまたはプローブのＧ＋Ｃ含量が高い程、融解温度が高い。何故なら
、Ｇ：Ｃ対は３つのＨ結合に保持されるのに対し、Ａ：Ｔ対は僅か２つしか有さ
ないからである。本発明のプローブのＧＣ含量は、通常１０〜７５％、好ましく
は３５〜６０％、より好ましくは４０〜５５％である。
【０２８５】 プライマーおよびプローブは、例えば、適切な配列のクローニングおよび制限
ならびにＮａｒａｎｇら（１９７９）のホスホジエステル法、Ｂｒｏｗｎら（１
９７９）のホスホジエステル法、Ｂｅａｕｃａｇｅら（１９８１）のジエチルホ
スホロアミダイト法およびＥＰ０７０７５９２に記載の固体支持法などの方法に
よる直接化学合成を含む任意の適切な方法によって調製され得る。
【０２８６】 検出プローブは、一般に、例えば、国際特許出願ＷＯ９２／２０７０２に開示
されているペプチド核酸、米国特許第５，１８５，４４４号；同第５，０３４，
５０６号および同第５，１４２，０４７号に記載のモルホリン類似体などの核酸
配列または電荷を有さない核酸類似体である。プローブは、さらなるｄＮＴＰが
プローブに付加され得ないという点で、「非伸長性」であるといえる。それら自
体におけるまたはそれら自体の類似体は通常非伸長性であり、核酸プローブは、
水酸基がもはや伸長に参加し得ないようにプローブの３’末端を修飾することに
よって、非伸長性であるということができる。例えば、プローブの３’末端を、
捕捉または検出標識で官能基化し、それによって水酸基を消費、そうでなければ
遮断することができる。あるいは、３’水酸基は、簡単に切断、置き換えまたは
修飾することができる。米国特許出願第０７／０４９，０６１号（１９９３年、
４月１９日出願）は、プローブを非伸長性にするために使用することができる修
飾について記載している。
【０２８７】 所望であれば、分光光度的、光化学的、生化学的、免疫化学的、または化学的
手段により検出可能な当該分野において公知の任意の標識を組み入れるによって
本発明の任意のポリヌクレオチドを標識することができる。例えば、有用な標識
としては、放射性物質（32Ｐ、35Ｓ、3Ｈ、125Ｉ）、蛍光色素（５−ブロモデオ
キシウリジン、フルオレセイン、アセチルアミノフルオレン、ジゴキシゲニン）
またはビオチンが挙げられる。好ましくは、ポリヌクレオチドはそれらの３’お
よび５’末端で標識される。核酸フラグメントの非放射性標識の例については、
仏国特許Ｎｏ．ＦＲ−７８１０９７５においてまたはＵｒｄｅａら（１９８８）
またはＳａｎｃｈｅｚ−Ｐｅｓｃａｄｏｒら（１９８８）により記載されている
。さらに、本発明のプローブは、それらがシグナル増幅可能であるという構造的
特徴を有する。そのような構造的特徴については、例えば、Ｕｒｄｅａら、１９
９１により記載されたかまたは欧州特許Ｎｏ．ＥＰ−０２２５，８０７（Ｃｈｉ
ｒｏｎ）におけるプローブなどの分岐ＤＮＡプローブである。
【０２８８】 標識は、プライマーまたは増幅されたＤＮＡなどのプライマー伸長産物のいず
れかの固相支持体上への固定化を容易にするように、プライマーを捕捉するため
にも使用され得る。捕捉標識はプライマーまたはプローブに結合し、固体相の試
薬特異的結合メンバー（例えば、ビオチンおよびストレプトアビジン）との結合
対を形成する特異的結合メンバーであり得る。従って、ポリヌクレオチドまたは
プローブに担持される標識のタイプに依存して、標識ＤＮＡを捕捉または検出す
るために標識が用いられ得る。さらに、本明細書において提供されるポリヌクレ
オチド、プライマーまたはプローブは、それ自体で捕捉標識として作用し得る。
例えば、固相試薬結合メンバーが核酸配列である場合、それがプライマーまたは
プローブの相補部分に結合して、それによってプライマーまたはプローブを固相
に固定化するようにそれを選択することができる。ポリヌクレオチドプローブが
それ自体で結合メンバーとして作用する場合、当業者は、プローブが配列または
標的に相補的ではない「テイル」を含有することを認識するであろう。ポリヌク
レオチドプライマーがそれ自体で捕捉標識として作用する場合、プライマーの少
なくとも一部は自由に固相上の核酸にハイブリダイズする。ＤＮＡ標識技法は当
業者に周知である。
【０２８９】 本発明のプローブは多くの目的に有用である。該プローブは、ゲノムＤＮＡへ
のサザンハイブリダイゼーションに顕著に使用され得る。プローブはまた、ＰＣ
Ｒ増幅産物を検出するためにも使用することができる。他の技法を用い、ＴＢＣ
−１遺伝子またはｍＲＮＡのミスマッチを検出するために該プローブを使用して
もよい。
【０２９０】 本発明の任意のポリヌクレオチド、プライマーおよびプローブは、固体支持上
に簡便に固定化することができる。固相支持体は当業者に公知であり、反応トレ
イのウェルの壁、試験管、ポリスチレンビーズ、磁気ビーズ、ニトロセルロース
片、膜、ラテックス粒子、ヒツジ（または他の動物の）赤血球、ｄｕｒａｃｙｔ
ｅなどの微小粒子が挙げられる。固相支持体は重要ではなく、当業者が選択する
ことができる。従って、ラテックス粒子、微小粒子、磁気または非磁気ビーズ、
膜、プラスチックチューブ、マイクロタイターウェルの壁、ガラスまたはシリコ
ンチップ、ヒツジ（または他の適切な動物の）赤血球およびｄｕｒａｃｙｔｅは
、全て適切な例である。核酸を固相上に固定化する適切な方法としては、イオン
、疎水、共有相互作用などが挙げられる。本明細書で使用する固相支持体は、不
溶性であるか、または以後の反応で不溶性になり得る任意の材料を指す。固相支
持体は、該固相支持体が捕捉試薬に吸着し固定化するその固有の能力について固
相支持体を選択することができる。あるいは、固相支持体は、捕捉試薬に吸着し
固定化する能力を有するさらなるレセプターを保持することができる。さらなる
レセプターは、捕捉試薬自体または捕捉試薬に複合した荷電した物質に対して反
対の電荷を有する荷電した物質を含む。さらにもう１つの代替的レセプター分子
は、固相支持体に固定化（結合）されている任意の特異的結合メンバーであり得
、特異的結合反応を介して捕捉試薬を固定化する能力を有する。レセプター分子
は、アッセイの実施前またはアッセイの実施中に捕捉試薬を固相支持体材料に間
接的に結合させることができる。従って、固相はプラスチック、誘導されたプラ
スチック、磁気または非磁気金属、試験管のガラスまたはシリコン表面、マイク
ロタイターウェル、シート、ビーズ、微小粒子、チップ、ヒツジ（または他の適
切な動物の）赤血球、ｄｕｒａｃｙｔｅ（登録商標）および当業者に公知の他の
形態であり得る。本発明のポリヌクレオチドは、個々にまたは単一の固相支持体
に対して少なくとも２、５、８、１０、１２、１５、２０、または２５の異なる
本発明のポリヌクレオチドの群で固相支持体上に結合または固定化され得る。さ
らに、本発明のポリヌクレオチド以外のポリヌクレオチドを、本発明の１以上の
ポリヌクレオチドとして同一の固相支持体に結合させてもよい。
【０２９１】 従って、本発明はまた、サンプル中の配列番号１〜４、そのフラグメントもし
くは変異体およびそれに相補的な配列から成る群より選択されるヌクレオチド配
列を含む核酸の存在を検出する方法を扱い、該方法は以下の工程を含む。 ａ）配列番号１〜４、そのフラグメントもしくは変異体およびそれに相補的な
配列から成る群より選択される核酸に含まれるヌクレオチド配列にハイブリダイ
ズすることができる核酸プローブまたは複数の核酸プローブとアッセイしようと
するサンプルとを接触させること；および ｂ）該プローブとサンプル中の核酸との間に形成されるハイブリッド複合体を
検出すること。
【０２９２】 本発明はさらに、サンプル中の配列番号１〜４、そのフラグメントもしくは変
異体およびそれに相補的な配列から成る群より選択されるヌクレオチド配列を含
む核酸の存在を検出するキットに関し、前記キットは以下のものを含む。 ａ）配列番号１〜４、そのフラグメントもしくは変異体およびそれに相補的な
配列から成る群より選択される核酸に含まれるヌクレオチド配列にハイブリダイ
ズすることができる核酸プローブまたは複数の核酸プローブ；および ｂ）必要に応じて、ハイブリダイゼーション反応を実施するのに必要な試薬。
【０２９３】 本検出方法およびキットの第１の好ましい実施態様では、前記核酸プローブま
たは複数の核酸プローブが検出可能な分子で標識される。前記方法およびキット
の第２の好ましい実施態様では、前記核酸プローブまたは複数の核酸プローブは
支持体上に固定化されている。第３の好ましい実施態様では、核酸プローブまた
は複数の核酸プローブは、Ｐ１〜Ｐ７、Ｐ９〜Ｐ１３、Ｐ１５〜Ｐ１９のヌクレ
オチド配列およびそれに相補的な配列、Ｂ１〜Ｂ１５、Ｃ１〜Ｃ１５、Ｄ１〜Ｄ
１９、Ｅ１〜Ｅ１９から成る群より選択される配列またはＡ１〜Ａ１９およびそ
れに相補的な配列から成る群より選択されるバイアレリックマーカーのいずれか
を含む。
【０２９４】 オリゴヌクレオチドアレイ 本発明の複数のオリゴヌクレオチドプライマーまたはプローブを含む支持体は
、ＴＢＣ−１遺伝子の標的化された配列を検出するかまたは増幅するかいずれか
のために使用され得、ＴＢＣ−１遺伝子のコードまたは非コード配列の変異を検
出するために使用され得る。
【０２９５】 本明細書において提供される任意のポリヌクレオチドは、支持体上の重複領域
または無作為位置において結合し得る。あるいは、本発明のポリヌクレオチドは
順序づけられたアレイに結合し得る。ここで、それぞれのポリヌクレオチドは、
他の任意のポリヌクレオチドの結合部位に重複しない固相支持体上の異なる領域
に結合する。好ましくは、ポリヌクレオチドのそのような順序づけられたアレイ
を「アドレス指定可能」といい、ここで、異なる位置は記憶され、アッセイ方法
の一部としてアクセスすることができる。アドレス指定可能なポリヌクレオチド
アレイは、典型的に、異なる既知の位置において支持体の表面に結合している複
数の異なるオリゴヌクレオチドプローブを含む。それぞれのポリヌクレオチド位
置の正確な位置が分かれば、ハイブリダイゼーションアッセイにおいてこれらの
「アドレス指定可能」アレイは特に有用になる。当該分野において公知の任意の
アドレス指定可能なアレイ技法を本発明のポリヌクレオチドと共に用いることが
できる。これらのポリヌクレオチドアレイの１つの特定の実施態様は、Ｇｅｎｅ
ｃｈｉｐ（登録商標）として知られており、米国特許第５，１４３，８５４号；
ＰＣＴ公開ＷＯ９０／１５０７０および同９２／１００９２にその概要が記載さ
れている。これらのアレイは、一般に、フォトリソグラフィー法および固相オリ
ゴヌクレオチド合成（Ｆｏｄｏｒら、Ｓｃｉｅｎｃｅ、２５１：７６７−７７７
，１９９１）の組み合わせを組み入れる機械的合成方法または光直接型（ｌｉｇ
ｈｔ ｄｉｒｅｃｔｅｄ）合成方法を用いて作製され得る。固相支持体上にオリ
ゴヌクレオチドのアレイを固体化することは、典型的に、チップの固相表面に高
密度アレイでプローブが固定化される「Ｖｅｒｙ Ｌａｒｇｅ Ｓｃａｌｅ Ｉ
ｍｍｏｂｉｌｉｚｅｄ Ｐｏｌｙｍｅｒ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ」（ＶＬＳＩＰＳ
（登録商標））として一般に認識されている技法の開発によって可能になってい
る。ＶＬＳＩＰＳ（登録商標）技法の例は、米国特許第５，１４３，８５４号、
および同第５，４１２，０８７号ならびにＰＣＴ公開ＷＯ９０／１５０７０、同
ＷＯ９２／１００９２および同ＷＯ９５／１１９９５において提供されており、
光直接型合成技法などの技法を介してオリゴヌクレオチドアレイを形成する方法
が記載されている。固相支持体上に固定化されたヌクレオチドのアレイを提供す
ることを目的とした設計戦略では、さらなる表示戦略が開発され、ハイブリダイ
ゼーションパターンおよび配列情報を最大にすることを試みてチップ上にオリゴ
ヌクレオチドアレイを順序づけ、ディスプレーされた。そのような表示戦略の例
は、ＰＣＴ公開ＷＯ９４／１２３０５、同ＷＯ９４／１１５３０、同ＷＯ９７／
２９２１２および同ＷＯ９７／３１２５６に開示されている。
【０２９６】 本発明のオリゴヌクレオチドアレイのもう１つの実施態様では、オリゴヌクレ
オチドプローブマトリックスが有利に使用され、ＴＢＣ−１遺伝子およびその調
節領域に生じる変異を検出することができる。この特定の目的のために、（欠失
、挿入、または１つもしくはいくつかのヌクレオチドの置換のいずれかによる）
既知の変異を担持する遺伝子へのハイブリダイゼーションを可能にするヌクレオ
チド配列を有するようにプローブが指定されて設計される。既知の変異は、例え
ば、Ｈｕａｎｇら（１９９６）またはＳａｍｓｏｎら（１９９６）によって使用
された技法に従って同定されているＴＢＣ−１遺伝子の変異を意味する。
【０２９７】 ＴＢＣ−１遺伝子の変異を検出するために使用されるもう１つの技法は、高密
度ＤＮＡアレイの使用である。高密度ＤＮＡアレイの単位エレメントを構成する
それぞれのオリゴヌクレオチドプローブは、ＴＢＣ−１ゲノムＤＮＡまたはｃＤ
ＮＡの特異的結果に一致するように設計される。従って、標的遺伝子配列の結果
に相補的なオリゴヌクレオチドから成るアレイを使用して、標的配列と野生型遺
伝子配列との同一性を決定し、その量を測定し、標的配列とＴＢＣ−１遺伝子の
参照野生型遺伝子配列との間の差異を検出する。１つのそのような設計において
、用語４Ｌタイル張り（ｔｉｌｅｄ）アレイは、１組の４種のプローブ（Ａ、Ｃ
、Ｇ、Ｔ）、好ましくは１５ヌクレオチドオリゴマーを意味する。それぞれの組
の４種のプローブにおいて、完全相補体は、ミスマッチしたプローブよりも強力
にハイブリダイズする。従って、長さＬの核酸標的を、４Ｌプローブを含有する
タイル張りアレイにより変異について走査する。全プローブの組は、公知の野生
型参照配列の全ての可能な変異を含有している。１５マーのプローブ組のタイル
張りアレイのハイブリダイゼーションシグナルは、標的配列の１つの塩基の変更
によって撹乱される。結果として、シグナルの特徴的消失かまたは変異位置にフ
ランキングするプローブの「フットプリント」が認められる。この技法はＣｈｅ
ｅら、１９９１に記載された。
【０２９８】 従って、本発明はプローブおよびプライマーとして上記の少なくとも１つのポ
リヌクレオチドを含む核酸分子のアレイに関する。好ましくは、本発明は、プロ
ーブおよびプライマーとして上記の少なくとも２つのポリヌクレオチドを含む核
酸のアレイに関する。
【０２９９】 本発明のさらなる目的は、Ｐ１〜Ｐ７、Ｐ９〜Ｐ１３、Ｐ１５〜Ｐ１９、Ｂ１
〜Ｂ１５、Ｃ１〜Ｃ１５、Ｄ１〜Ｄ１９、Ｅ１〜Ｅ１９、それに相補的な配列、
その少なくとも８、１０、１２、１５、１８、２０、２５、３０、または４０連
続ヌクレオチドのフラグメントから成る群より選択される少なくとも１つの配列
、ならびにＡ１〜Ａ１９およびそれに相補的な配列から成る群より選択されるバ
イアレリックマーカーを含む少なくとも１つの配列のいずれかを含む核酸配列の
アレイから成る。
【０３００】 本発明はまた、Ｐ１〜Ｐ７、Ｐ９〜Ｐ１３、Ｐ１５〜Ｐ１９、Ｂ１〜Ｂ１５、
Ｃ１〜Ｃ１５、Ｄ１〜Ｄ１９、Ｅ１〜Ｅ１９、それに相補的な配列、その少なく
とも８連続ヌクレオチドのフラグメントから成る群より選択される少なくとも２
つの配列、ならびにＡ１〜Ａ１９およびそれに相補的な配列から成る群より選択
されるバイアレリックマーカーを含む少なくとも２つの配列のいずれかを含む核
酸配列のアレイに関する。
【０３０１】 ＴＢＣ−１の調節またはコードポリヌクレオチドの発現のためのベクター 本発明の調節ポリヌクレオチドまたはコードポリヌクレオチドを、組換え宿主
細胞または組換え宿主生物における発現用組換えベクターに挿入してもよい。
【０３０２】 従って、本発明は、配列番号１および２のＴＢＣ−１ゲノム配列から誘導され
る調節ポリヌクレオチドのいずれか１つから成る群より選択される調節ポリヌク
レオチド、またはＴＢＣ−１コード配列を含むポリヌクレオチドのいずれか一方
あるいはそれらの両方を含有する組換えベクターのファミリーも包含する。
【０３０３】 第１の実施態様において、本発明の組換えベクターは、発現ベクターとして使
用され、（ａ）内部に含まれるＴＢＣ−１調節配列は、それに作動可能に連結さ
れたコードポリヌクレオチドの発現を誘導し；（ｂ）ＴＢＣ−１コード配列は、
適切な細胞宿主および／または宿主生物におけるその発現を可能にする調節配列
に作動可能に連結される。
【０３０４】 第２の実施態様において、本発明の組換えベクターは、配列番号１および２の
ＴＢＣ−１ゲノム配列から誘導される挿入されたポリヌクレオチドまたは適切な
細胞宿主においてＴＢＣ−１ ｃＤＮＡを増幅するために使用され、このポリヌ
クレオチドは、組換えベクターが複製するごとに増幅される。
【０３０５】 より詳細には、本発明は、ＴＢＣ−１調節ポリヌクレオチドから選択された調
節配列の制御下、あるいは外因性調節配列の制御下にあるＴＢＣ−１タンパク質
、好ましくは、本明細書における配列番号５のアミノ酸配列のＴＢＣ−１タンパ
ク質をコードする核酸を含む発現ベクターに関する。
【０３０６】 ５’および３’調節領域から成る群より選択される核酸、またはその生物学的に
活性なフラグメントもしくは変異体を含む組換え発現ベクターも本発明の一部で
ある。
【０３０７】 本発明はまた、以下を含む組換え発現ベクターを包含する。 ａ）配列番号１のヌクレオチド配列の５’調節ポリヌクレオチド、またはその
生物学的に活性なフラグメントもしくは変異体を含む核酸； ｂ）ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドまたは前記核酸に作動可能に
連結された目的のポリヌクレオチド。 ｃ）さらに必要であれば、３’調節ポリヌクレオチド、好ましくは本発明の３
’調節ポリヌクレオチド、またはその生物学的に活性なフラグメントもしくは変
異体を含む核酸。
【０３０８】 ５’調節ポリヌクレオチドまたはその生物学的に活性なフラグメントもしくは変
異体は、本発明の２つのｃＤＮＡのいずれか由来の５’−ＵＴＲ配列またはその
生物学的に活性なフラグメントもしくは変異体を含んでもよい。
【０３０９】 本発明はまた、ＴＢＣ−１コード配列の発現に有用な組換え発現ベクターに関
し、ここで、前記ベクターは、配列番号３および４の配列から成る群より選択さ
れる核酸または配列番号３および４のヌクレオチド配列から成る群より選択され
るポリヌクレオチドに少なくとも９５％ヌクレオチド同一性を有する核酸を含む
。
【０３１０】 本発明のもう１つの組換え発現ベクターは、配列番号４のポリヌクレオチドの
ヌクレオチド位置１７６から開始し、３７３０位で終止するヌクレオチド配列を
含む核酸を含む組換えベクターにある。
【０３１１】 一般に、本発明の組換えベクターは、本明細書に記載のポリヌクレオチドのい
ずれかを含み、調節配列、およびコード配列、ならびに上記で規定された任意の
ＴＢＣ−１プライマーまたはプローブを含む。より詳細には、本発明の組換えベ
クターは、「ＴＢＣ−１ ｃＤＮＡ配列」のセクション、「コード領域」のセク
ション、「ＴＢＣ−１のゲノム配列」のセクションならびに「オリゴヌクレオチ
ドプローブおよびプライマー」のセクションに記載の任意のポリヌクレオチドを
含み得る。
【０３１２】 本はつめのベクターにおいて見出され得るエレメントのいくつかは、以下のセ
クションにおいてさらに詳細に記載されている。
【０３１３】 ａ）ベクター 本発明の組換えベクターは、ＹＡＣ（酵母人工染色体）、ＢＡＣ（細菌人工染
色体）、ファージ、ファージミド、コスミド、プラスミドまたは染色体、非染色
体および合成ＤＮＡから成り得る線状ＤＮＡ分子を含むが、これらに限定されな
い。そのような組換えベクターは、以下のものの組立体を含む転写単位を含むこ
とができる。 （１）遺伝子発現において調節的役割を有する遺伝子エレメント（例えば、プロ
モーターまたはエンハンサー）。エンハンサーは、通常約１０〜３００ｂｐの長
さのＤＮＡのシス作用性エレメントであって、プロモーターに作用して転写を増
大する。 （２）ｍＲＮＡに転写され、終局的にポリペプチドに翻訳される構造およびコー
ド配列、ならびに （３）適切な転写開始および終止配列。酵母または真核生物発現系での使用を意
図する構造単位は、好ましくは、翻訳されたタンパク質の宿主細胞による細胞外
分泌を可能にするリーダー配列を含む。あるいは、リーダーまたは輸送配列を伴
わずに組換えタンパク質が発現される場合、組換えタンパク質はＮ末端残基を含
み得る。この残基は、最終産物を提供するために、その後発現された組換えタン
パク質から切断されても切断されなくてもよい。
【０３１４】 一般に、組換え発現ベクターは、複製開始点、宿主細胞の形質転換を可能にす
る選択マーカー、および高度に発現される遺伝子から誘導されるプロモーターを
含み、下流の構造遺伝子の転写を指令する。異種構造配列は、翻訳開始および終
止配列、好ましくはペリプラズム空間または細胞外培地への翻訳されたタンパク
質の分泌を指令し得るリーダー配列を有する適切なファージにおいて組み立てら
れる。
【０３１５】 形質転換された宿主細胞の選択のための選択マーカー遺伝子は、好ましくは、
真核細胞培養のためのジヒドロ葉酸還元酵素もしくはネオマイシン耐性、Ｓ．ｃ
ｅｒｅｖｉｓｉａｅのためのＴＲＰ１またはＥ．ｃｏｌｉのテトラサイクリン、
リファマイシンもしくはアンピシリン耐性、またはマイコバクテリアのためのレ
バンサッカラーゼである。
【０３１６】 代表的な、しかし非制限的な例として、細菌用途に有用な発現ベクターは、選
択マーカーおよびｐＢＲ３２２（ＡＴＣＣ３７０１７）の遺伝子エレメントを含
む市販のプラスミドから誘導される細菌の複製開始点を含むことができる。その
ような市販のベクターとしては、例えば、ｐＫＫ２２３−３（Ｐｈａｒｍａｃｉ
ａ，Ｕｐｐｓａｌａ，Ｓｗｅｄｅｎ）、およびＧＥＭ１（Ｐｒｏｍｅｇａ Ｂｉ
ｏｔｅｃ，Ｍａｄｉｓｏｎ，ＷＩ，ＵＳＡ）が挙げられる。
【０３１７】 大量の適切なベクターおよびプロモーターが当業者に公知であり、市販されて
いるものでは、細菌ベクター：ｐＱＥ７０、ｐＱＥ６０、ｐＱＥ−９（Ｑｉａｇ
ｅｎ）、ｐｂｓ、ｐＤ１０、ｐｈａｇｅｓｃｒｉｐｔ、ｐｓｉＸ１７４、ｐｂｌ
ｕｅｓｃｒｉｐｔ ＳＫ、ｐｂｓｋｓ、ｐＮＨ８Ａ、ｐＮＨ１６Ａ、ｐＮＨ１８
Ａ、ｐＮＨ４６Ａ（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ）；ｐｔｒｃ９９ａ、ｐＫＫ２２３−
３、ｐＫＫ２３３−３、ｐＤＲ５４０、ｐＲＩＴ５（Ｐｈａｒｍａｃｉａ）；ま
たは真核細胞ベクター：ｐＷＬＮＥＯ、ｐＳＶ２ＣＡＴ、ｐＯＧ４４、ｐＸＴ１
、ｐＳＧ（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ）；ｐＳＶＫ３、ｐＢＰＶ、ｐＭＳＧ、ｐＳＶ
Ｌ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ）；バキュロウイルス伝達ベクターｐＶＬ１３９２／１
３９３（Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ）；ｐＱＥ−３０（ＱＩＡｅｘｐｒｅｓｓ）など
がある。
【０３１８】 配列番号５のＴＢＣ−１ポリペプチドの発現のための適切なベクターは、昆虫
細胞および昆虫細胞株において繁殖可能なバキュロウイルスベクターである。特
に適切な宿主ベクター系は、ｐＶＬ１３９２／１３９３バキュロウイルス伝達ベ
クター（Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ）であり、Ｓｐｏｄｏｐｔｅｒａ ｆｒｕｇｉｐ
ｅｒｄａより誘導されるＳＦ９細胞株（ＡＴＣＣ Ｎｏ．ＣＲＬ１７１１）にト
ランスフェクトするために使用される。
【０３１９】 バキュロウイルス発現系における配列番号５のＴＢＣ−１ポリペプチドの発現
のための他の適切なベクターは、Ｃｈａｉら（１９９３）、Ｖｌａｓａｋら（１
９８３）およびＬｅｎｈａｒｄｔら（１９９６）により記載のベクターを含む。
【０３２０】 哺乳動物の発現ベクターは、複製開始点、適切なプロモーターおよびエンハン
サー、またさらに、任意の必要なリボソーム結合部位、ポリアデニル化部位、ス
プライスドナーおよびアクセプター部位、転写末端配列、ならびに５’フランキ
ング非転写配列を含む。ＳＶ４０ウイルスゲノムから誘導されるＤＮＡ配列、例
えば、ＳＶ４０由来、初期プロモーター、エンハンサー、スプライスおよびポリ
アデニル化部位を使用して、必要とされる非転写遺伝子エレメントを提供しても
よい。
【０３２１】 ｂ）プロモーター 本発明の発現ベクターにおいて使用される適切なプロモーター領域は、異種遺
伝子を発現しなければならない宿主細胞を考慮して選択する。
【０３２２】 適切なプロモーターは、発現を制御する核酸に関して異種であってもよく、あ
るいは、発現されるべきコード配列を含有する天然のポリヌクレオチドに対して
内因性であり得る。さらに、プロモーターは、挿入されている構築プロモーター
／コード配列内の組換えベクター配列について、一般に異種である。
【０３２３】 好ましい細菌プロモーターは、ＬａｃＩ、ＬａｃＺ、Ｔ３またはＴ７バクテリ
オファージＲＮＡポリメラーゼプロモーター、ポリヘドリン（ｐｏｌｙｈｅｄｏ
ｒｉｎ）プロモーター、またはバキュロウイルス由来のｐ１０タンパク質プロモ
ーター（Ｋｉｔ Ｎｏｖａｇｅｎ）（Ｓｍｉｔｈら、１９８３；Ｏ’Ｒｅｉｌｌ
ｙら、１９９２）、λＰRプロモーターまたはｔｒｃプロモーターである。
【０３２４】 プロモーター領域は、例えば、ＣＡＴ（クロラムフェニコールトランスフェラ
ーゼ）ベクター、より好ましくはｐＫＫ２３２−８およびｐＣＭ７ベクターを使
用して、所望する任意の遺伝子から選択することができる。特に好ましい細菌プ
ロモーターとしては、ｌａｃＩ、ｌａｃＺ、Ｔ３、Ｔ７、ｇｐｔ、λＰＲ、ＰＬ
およびｔｒｐが挙げられる。真核生物プロモーターとしては、ＣＭＶ極初期、Ｈ
ＳＶチミジンキナーゼ、初期および後期ＳＶ４０、レトロウイルス由来のＬＴＲ
、マウスメタロチオネインＬが挙げられる。簡便なベクターおよびプロモーター
の選択は、十分に当業者のレベルの範囲内にある。
【０３２５】 プロモーターの選択は、遺伝子操作技法分野における当業者の能力内にある。
例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋら（１９８９）の書物、またはＦｕｌｌｅｒら（１９
９６）に記載の方法に言及することができる。
【０３２６】 上記の適切なＤＮＡ配列、より好ましくはＴＢＣ−１遺伝子調節ポリヌクレオ
チド、配列番号５のＴＢＣ−１ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドまた
はその両方を含有するベクターは、適切な宿主に形質転換するのに利用すること
ができ、所望のポリペプチドまたはポリヌクレオチドの発現を可能にする。
【０３２７】 ｃ）他のタイプのベクター 配列番号５のＴＢＣ−１ポリペプチドのｉｎ ｖｉｖｏ発現は、宿主生物にお
ける天然の遺伝子の発現または生物学的に不活性なＴＢＣ−１タンパク質に関連
する遺伝子欠損を補正するのに有用であり得る。
【０３２８】 従って、本発明はまた、治療すべき患者の有機体への適切な遺伝子物質の導入
によって配列番号５のＴＢＣ−１ポリペプチドがｉｎ ｖｉｖｏで産生されるた
めに主に設計される組換え発現ベクターに関する。この遺伝子物質は、生物より
予め抽出した細胞にｉｎ ｖｉｔｒｏで導入することができ、改変された細胞は
、その後前記生物に、直接ｉｎ ｖｉｖｏで適切な組織に再導入される。
【０３２９】 本発明の特定の実施態様による「ベクター」によれば、環状または線状ＤＮＡ
のいずれかが意図される。
【０３３０】 タンパク質またはペプチドを、ｉｎ ｖｉｖｏで脊椎動物の細胞内部に送達す
る方法は、生理学的に受容可能なキャリアおよびポリペプチドを作動的にコード
する裸のポリヌクレオチドを含む調製物を、細胞を含む組織の間隙空間へ導入し
、それによって、裸のポリヌクレオチドが細胞内に取り込まれ、生理学的効果を
有する、工程を含む。
【０３３１】 特定の実施態様において、本発明は、本明細書に記載のＴＢＣ−１タンパク質
またはポリペプチドのｉｎ ｖｉｖｏ産生のための組成物を提供する。該組成物
は、生理学的に受容可能なキャリア中の溶液で、このポリペプチドを作動的にコ
ードする裸のポリヌクレオチドを含み、組織の細胞に前記タンパク質またはポリ
ペプチドを発現させるために組織への導入に適切である。
【０３３２】 ポリヌクレオチドを含む組成物については、ＰＣＴ出願ＷＯ９０／１１０９２
（Ｖｉｃａｌ Ｉｎｃ．）およびＰＣＴ出願ＷＯ９５／１１３０７（Ｉｎｓｔｉ
ｔｕｔ Ｐａｓｔｅｕｒ，ＩＮＳＥＲＭ，Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｅ ｄ’Ｏｔｔａ
ｗａ）ならびにＴａｃｓｏｎら（１９９６）およびＨｕｙｇｅｎら（１９９６）
において記載されている。
【０３３３】 所望の宿主動物に注入すべきベクターの量は、注入部位によって変動する。指
示用量として、動物身体、好ましくは哺乳動物身体、例えば、マウス身体に０．
１〜１００μｇのベクターを注入する。
【０３３４】 本発明のベクターのもう１つの実施態様では、前記ベクターは、宿主細胞、好
ましくは治療すべき動物より予め回収した宿主細胞、より好ましくは筋肉細胞な
どの体細胞にｉｎ ｖｉｔｒｏで導入し得る。以後の工程では、組換えタンパク
質を身体内に局所的または全身的に送達するために、ＴＢＣ−１ポリペプチドま
たはその所望されるフラグメントをコードするベクターで形質転換されている細
胞を該動物身体に再導入する。
【０３３５】 １つの特定の実施態様において、ベクターはアデノウイルスから誘導される。
本発明の好ましいアデノウイルスベクターは、ＦｅｌｄｍａｎおよびＳｔｅｇ（
１９９６）またはＯｈｎｏら（１９９４）に記載のアデノウイルスベクターであ
る。本発明の特定の実施態様によるもう１つの好ましい組換えアデノウイルスは
、２または５型ヒトアデノウイルス（Ａｄ２もしくはＡｄ５）あるいは動物由来
のアデノウイルス（仏国特許出願ＦＲ−９３．０５９５４）である。
【０３３６】 レトロウイルスベクターおよびアデノ随伴ウイルスベクターは、一般に、外因
性ポリヌクレオチドをｉｎ ｖｉｖｏで、特にヒトを含む哺乳動物に伝達するた
めに選択される組換え遺伝子送達系であることが理解される。これらのベクター
は、細胞への遺伝子の効率的な送達を提供し、伝達された核酸は、宿主の染色体
ＤＮＡに安定に組み込まれる。
【０３３７】 本発明のレトロウイルスｉｎ ｖｉｔｒｏまたはｉｎ ｖｉｔｒｏ遺伝子送達
ビヒクルの調製もしくは構築に特に好ましいレトロウイルスとしては、ミンク細
胞病巣誘発ウイルス（Ｍｉｎｋ−Ｃｅｌｌ Ｆｏｃｕｓ Ｉｎｄｕｃｉｎｇ Ｖ
ｉｒｕｓ）、マウス肉腫ウイルス、網内症ウイルスおよびラウス肉腫ウイルスが
挙げられる。特に好ましいマウス白血病ウイルスとしては、４０７０Ａおよび１
５０４Ａウイルス、エーベルソン（ＡＴＣＣ Ｎｏ．ＶＲ−９９９）、フレンド
（ＡＴＣＣ Ｎｏ．ＶＲ−２４５）、グロス（ＡＴＣＣ Ｎｏ．ＶＲ−５９０）
、ローシャー（ＡＴＣＣ Ｎｏ．ＶＲ−９９８）およびモロニーマウス白血病ウ
イルス（ＡＴＣＣ Ｎｏ．ＶＲ−１９０；ＰＣＴ出願ＷＯ９４／２４２９８）が
挙げられる。特に好ましいラウス肉腫ウイルスとしては、Ｂｒｙａｎ高力価（Ａ
ＴＣＣ Ｎｏ．ＶＲ−３３４、ＶＲ−６５７、ＶＲ−７２６、ＶＲ−６５９およ
びＶＲ−７２８）が挙げられる。他の好ましいレトロウイルスベクターは、Ｒｏ
ｔｈら（Ｒｏｔｈ Ｊ．Ａ．ら、１９９６）、ＰＣＴ出願ＷＯ９３／２５２３４
、ＰＣＴ出願ＷＯ９４／０６９２０、Ｒｏｕｘら、１９８９、Ｊｕｌｉａｎら、
１９９２およびＮｅｄａら、１９９１に記載されているレトロウイルスである。
【０３３８】 本発明によって考慮されるさらにもう１つのウイルスベクター系は、アデノ随
伴ウイルス（ＡＡＶ）にある。アデノ随伴ウイルスは、効率的な複製および生産
的生活環のためのヘルパーウイルスとしてアデノウイルスまたはヘルペスウイル
スなどの別のウイルスを必要とする天然に存在する欠損ウイルスである（Ｍｕｚ
ｙｃｚｋａら、１９９２）。該アデノ随伴ウイルスは、そのＤＮＡを非分裂細胞
に組み込み得る少ないウイルスの１つでもあり、高い頻度で安定な組込みを示す
（Ｆｌｏｔｔｅら、１９９２；Ｓａｍｕｌｓｋｉら、１９８９；ＭｃＬａｕｇｈ
ｌｉｍら、１９８９）。ＡＡＶの有利な特徴の１つは、形質転換された細胞に比
べて、一次細胞を形質導入する効率が低いことから引き出される。
【０３３９】 本発明のベクターを含む他の組成物は、対応するＴＢＣ−１遺伝子の発現を阻
害するアンチセンス手段として配列番号３または４から成るヌクレオチド配列の
オリゴヌクレオチドフラグメントを有利に含む。本発明のアンチセンスポリヌク
レオチドを使用する好ましい方法は、Ｓｃｚａｋｉｅｌら（１９９５）により記
載の方法またはＰＣＴ出願ＷＯ９５／２４２２３に記載の方法である。
【０３４０】 宿主細胞 本発明のもう１つの目的は、本明細書に記載のポリヌクレオチドの１つ、より
正確には、ＴＢＣ−１調節ポリヌクレオチドもしくは配列番号５のアミノ酸配列
を有するＴＢＣ−１ポリペプチドのコード配列のいずれかで形質転換またはトラ
ンスフェクトされる宿主細胞にある。上記の組換えベクターの１つのような組換
えベクターで形質転換（原核細胞）またはトランスフェクト（真核細胞）される
宿主細胞も含まれる。
【０３４１】 本発明の組換え細胞宿主は、本明細書に記載のポリヌクレオチドまたは組換え
ベクターのいずれか１つを含む。より詳細には、本発明の細胞宿主は、「ＴＢＣ
−１ ｃＤＮＡ配列」のセクション、「コード領域」のセクション、「ＴＢＣ−
１のゲノム配列」のセクションおよび「オリゴヌクレオチドプローブおよびプラ
イマー」のセクションに記載の任意のポリヌクレオチドを含む。
【０３４２】 本発明のもう１つの好ましい細胞宿主は、そのゲノムまたは遺伝的背景（染色
体、プラスミドを含む）が配列番号５のＴＢＣ−１ポリペプチドをコードする核
酸によって修飾されることを特徴とする。
【０３４３】 本発明の発現ベクターのレシピエントとして使用される好ましい細胞宿主は以
下のものである。 ａ）原核細胞：Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ株（Ｉ．Ｅ．ＤＨ５−α株）
またはＢａｃｉｌｌｕｓ ｓｕｂｔｉｌｉｓ。 ｂ）真核細胞宿主：ＨｅＬａ細胞（ＡＴＣＣ Ｎｏ．ＣＣＬ２；Ｎｏ．ＣＣＬ２
．１；Ｎｏ．ＣＣＬ２．２）、Ｃｖ１細胞（ＡＴＣＣ Ｎｏ．ＣＣＬ７０）、Ｃ
ＯＳ細胞（ＡＴＣＣ Ｎｏ．ＣＲＬ１６５０；Ｎｏ．ＣＲＬ１６５１）、Ｓｆ−
９細胞（ＡＴＣＣ Ｎｏ．ＣＲＬ１７１１）。
【０３４４】 宿主細胞中の構築物は、組換え配列によってコードされる遺伝子産物を産生す
るために従来の方法で使用することができる。
【０３４５】 適切な宿主を形質転換し、宿主を適切な細胞密度に増殖させた後、温度シフト
または化学誘導などの適切な手段によって選択されたプロモーターを誘導し、適
切な期間、細胞を培養する。
【０３４６】 典型的に、細胞は遠心分離によって回収され、物理的または化学的手段によっ
て破砕され、得られる粗抽出物は、さらなる精製のために保持される。
【０３４７】 タンパク質の発現において用いられる微生物細胞は、凍結融解サイクル、音波
処理、機械的破砕、または細胞溶解剤の使用を含む任意の簡便な方法によって破
砕することができる。このような方法は当業者に周知である。
【０３４８】 トランスジェニック動物 本明細書で使用する用語「トランスジェニック動物」または「宿主動物」は、
本発明の核酸の１つを含むようにそれらのゲノムが遺伝的および人工的に操作さ
れている動物を表す。好ましい動物は非ヒト哺乳動物であり、Ｍｕｓ（例えば、
マウス）、Ｒａｔｔｕｓ（例えば、ラット）およびＯｒｙｃｔｏｇａｌｕｓ（例
えば、ウサギ）から選択される属に属する動物を含み、それらのゲノムは本発明
の核酸の挿入によって人工的および遺伝的に変更される。
【０３４９】 本発明のトランスジェニック動物は、全てそれらの複数の細胞内に、クローニ
ングされた組換えまたは合成ＤＮＡ配列、より具体的には、ＴＢＣ−１コード配
列を含む精製されたもしくは単離された核酸の１つ、ＴＢＣ−１調節ポリヌクレ
オチドまたは本明細書に記載のようなアンチセンスポリヌクレオチドをコードす
るＤＮＡ配列を含む。
【０３５０】 より詳細には、本発明のトランスジェニック動物は、それらの体細胞および／
またはそれらの生殖系列細胞内に、本発明において記載されるいずれか１つのポ
リヌクレオチド、組換えベクターおよび細胞宿主を含有する。「ＴＢＣ−１ ｃ
ＤＮＡ配列」のセクション、「コード領域」のセクション、「ＴＢＣ−１のゲノ
ム配列」のセクション、「オリゴヌクレオチドプローブおよびプライマー」のセ
クション、および「ＴＢＣ−１の調節またはコードポリヌクレオチド発現のため
のベクター」のセクションに記載の任意のポリヌクレオチドを含むことができる
。
【０３５１】 従って、本発明のトランスジェニック動物は、上記で詳述されているヌクレオ
チド配列のような外因性遺伝物質の特定の配列を含有する。
【０３５２】 第１の好ましい実施態様では、トランスジェニック動物は、細胞分化に関連す
る多様な病理を研究するための良好な実験モデルであり得る。該動物は、特に、
ゲノム内に天然のＴＢＣ−１タンパク質、あるいは変異ＴＢＣ−１タンパク質を
コードするポリヌクレオチドの１またはいくつかのコピーが挿入されているトラ
ンスジェニック動物に関する。
【０３５３】 第２の好ましい実施態様では、これらのトランスジェニック動物は、ＴＢＣ−
１遺伝子の調節ポリヌクレオチドの制御下で目的の所望されるポリペプチドを発
現し得、目的のこのタンパク質の合成において良好な収量、および終局的にはこ
の目的のタンパク質の組織特異的発現をもたらす。
【０３５４】 本発明のトランスジェニック動物のデザインは様々な異なる配列を使用して産
生することができるため、一般に外因性遺伝物質を指すことによってトランスジ
ェニック動物の産生に関する一般的説明を記載する。この一般的説明は、当業者
がＤＮＡ配列を動物に組み込むために適応され得る。トランスジェニック動物、
具体的にトランスジェニックマウス産生のさらなる詳細については、Ｓａｎｄｏ
ｕら（１９９４）および米国特許第４，８７３，１９１号（１９８９年１０月１
０日出願）、同第５，９６８，７６６号（１９９７年１２月１６日出願）および
同第５，３８７，７４２号（１９９５年２月２８日出願）に言及されており、こ
れらの書面は、トランスジェニックマウス産生方法を開示するための参考として
本明細書において援用される。
【０３５５】 本発明のトランスジェニック動物は、ゲノムに組み込まれている外因性遺伝物
質が組み入れているゲノムを有する動物を生じる方法を適用することによって産
生される。該方法は、本明細書に記載のようなＴＢＣ−１コード配列、ＴＢＣ−
１調節ポリヌクレオチドもしくはアンチセンスポリヌクレオチドをコードするＤ
ＮＡ配列のいずれかをコードする遺伝物質、またはその一部を取得することを含
む。
【０３５６】 本発明の組換えポリヌクレオチドは、胚性またはＥＳ幹細胞株に挿入される。
挿入はエレクトロポレーションを使用して行われる。エレクトロポレーションに
供される細胞をスクリーニング（例えば、サザンブロット分析）して、ゲノムに
外因性組換えポリヌクレオチドが組み込まれている陽性細胞を見出す。本発明に
従って使用され得る例示的な陽性−陰性選択方法については、Ｍａｎｓｏｕｒら
（１９８８）により記載されている。次いで、陽性細胞を単離し、クローニング
し、マウス由来の３．５日齢繊維芽細胞に注入する。次いで、繊維芽細胞を雌性
宿主動物に挿入し、分娩日まで成長させる。雌性宿主の子孫を試験して、どの動
物が、例えば、挿入された外因性ＤＮＡ配列を含むトランスジェニックであるか
およびどの動物が野生型であるかを決定する。
【０３５７】 ＴＢＣ−１に相互作用する物質をスクリーニングする方法 さらなる実施態様において、本発明はまた、新規の薬剤、またはＴＢＣ−１に
相互作用する候補物質をスクリーニングする方法に関する。これらの新規の薬剤
は、ガンに対して有用であり得る。
【０３５８】 好ましい実施態様において、本発明は、以下の工程を含む候補物質のスクリー
ニング方法に関する。 細胞株、器官、またはＴＢＣ−１遺伝子またはそのフラグメントを発現する哺
乳動物、好ましくは、ＴＢＣ−１遺伝子の調節領域またはプロモーターを提供す
ること。 候補物質、好ましくは、転写因子のＴＢＣ−１調節領域への結合を阻害し得る
候補物質を取得すること、 前立腺ガンの症状を軽減するおよび／またはＴＢＣ−１の発現レベルを変調す
る候補物質の能力を試験すること。
【０３５９】 いくつかの実施態様において、細胞株、器官または哺乳動物は異種タンパク質
を発現し、該タンパク質のコード配列は、ＴＢＣ−１調節またはプロモーター配
列に作動可能に連結する。他の実施態様では、それらは、１以上のＴＢＣ−１関
連バイアレリックマーカーの対立遺伝子を含むＴＢＣ−１遺伝子を発現する。
【０３６０】 候補物質は、結合もしくは他の分子内相互作用によって、ＴＢＣ−１の発現、
安定性、および機能に相互作用するかまたは調節することができる物質である。
そのような物質は、既存の薬物に応答性でないかまたは既存の薬物に対して副作
用を発症する患者に対して潜在的に関心を示し得る。スクリーニングは、ｉｎ
ｖｉｔｒｏ方法またはｉｎ ｖｉｖｏ方法のいずれかで行うことができる。
【０３６１】 そのような方法は、ＴＢＣ−１遺伝子の配慮された対立遺伝子を発現する形質
転換された細胞、例えばマウスにおいて、前記形質転換された細胞により誘導さ
れる腫瘍、またはＴＢＣ−１の配慮された対立遺伝子変異体によってコードされ
るＴＢＣ−１タンパク質などにおいて、多くの方法で行うことができる。
【０３６２】 本発明のスクリーニングアッセイは、一般に、候補物質が細胞傷害性作用を示
すか、形質転換された細胞の性質を変更するか、ＴＢＣ−１の発現レベルを修飾
する能力を決定することを含む。
【０３６３】 典型的に、本方法は、１以上のバイアレリックマーカーおよび／または上記の
変異を生じる形質特定の対立遺伝子を含有する様々な形態のＴＢＣ−１配列を有
する形質転換された細胞を調製することを含む。これに続き、細胞障害性作用を
示すか、形質転換された細胞の性質、腫瘍の増殖に影響を与えるか、ＴＢＣ−１
の発現レベルを修飾する能力を決定するために、ＴＢＣ−１を発現する細胞を候
補物質で試験する。
【０３６４】 そのような薬物スクリーニングアッセイの典型的な例を以下に示す。当業者で
あれば過度の実験を行うことなく、これらの例に記載のパラメータに変更を加え
ることができるであろう。
【０３６５】 ＴＢＣ−１ポリペプチドに相互作用する物質をスクリーニングする方法 本発明の候補物質をスクリーニングするための方法は、以下の工程を含む。 ａ）配列番号５のアミノ酸配列を含むポリペプチド、またはそのペプチドフラ
グメントもしくは変異体を提供すること； ｂ）候補物質を取得すること； ｃ）前記ポリペプチドと前記候補物質とを接触させること； ｄ）前記ポリペチドと前記候補物質との間で形成される複合体を検出すること
。
【０３６６】 本発明の目的のために、リガンドは、ＴＢＣ−１タンパク質またはそのフラグ
メントもしくは変異体の１つに結合するか、またはＴＢＣ−１またはそのフラグ
メントもしくは変異体をコードするポリヌクレオチドの発現を変調し得るタンパ
ク質、ペプチド、抗体または任意の合成的化学物質などの分子を意味する。
【０３６７】 本発明のリガンドスクリーニング方法では、ＴＢＣ−１タンパク質の推定リガ
ンドとして試験すべき生物学的サンプルまたは規定された分子を、精製されたＴ
ＢＣ−１タンパク質、例えば、上記の組換え細胞宿主によって産生される精製さ
れた組換えＴＢＣ−１タンパク質に接触させ、ＴＢＣ−１タンパク質と試験すべ
き推定リガンド分子との間に複合体を形成させる。
【０３６８】 Ａ．ランダムペプチドライブラリーから得られる候補リガンド スクリーニング方法の特定の実施態様において、推定リガンドは、ファージベ
クターに含有されるＤＮＡ挿入物の発現産物である（ＰａｒｍｌｅｙおよびＳｍ
ｉｔｈ、１９８８）。具体的には、ランダムペプチドファージライブラリーを使
用する。ランダムＤＮＡ挿入物は、８〜２０アミノ酸長のペプチドをコードする
（Ｏｌｄｅｎｂｕｒｇ Ｋ．Ｒ．ら、１９９２；Ｖａｌａｄｏｎ Ｐ．ら、１９
９６；Ｌｕｃａｓ Ａ．Ｈ．、１９９４；Ｗｅｓｔｅｒｉｎｋ Ｍ．Ａ．Ｊ．、
１９９５；Ｃａｓｔａｇｎｏｌｉ Ｌ．ら、１９９１）。この特定の実施態様に
従えば、固定化されたＴＢＣ−１タンパク質に結合するタンパク質を発現する組
換えファージは保持され、その後ＴＢＣ−１タンパク質と組換えファージとの間
で形成される複合体は、ＴＢＣ−１タンパク質に対するポリクローナルまたはモ
ノクローナル抗体によって免疫沈降され得る。
【０３６９】 一旦、組換えファージ内のリガンドライブラリーが構築されたら、固定化され
たＴＢＣ−１タンパク質に該ファージ集団を接触させる。次いで、非特異的結合
組換えファージを除去するために、複合体の調製物を洗浄する。次いで、ＴＢＣ
−１タンパク質に特異的に結合するファージを緩衝液（酸性ｐＨ）により溶出さ
せるか、またはハイブリドーマにより産生される抗ＴＢＣ−１モノクローナル抗
体によって免疫沈降させ、その後このファージ集団を細菌（例えば、Ｅ．ｃｏｌ
ｉ）の過感染（ｏｖｅｒ−ｉｎｆｅｃｔｉｏｎ）によって増幅させる。選択工程
は、より特異的な組換えファージクローンを選択するために、数回、好ましくは
、２〜４回反復してもよい。最後の工程は、感染された細菌における発現および
単離、もう１つの宿主−ベクター系におけるファージ挿入物の発現、または選択
された組換えファージに含有される挿入物の配列決定のいずれかによって、選択
される組換えファージクローンによって産生されるペプチドを特徴づけることに
ある。
【０３７０】 Ｂ．２ハイブリッドスクリーニングアッセイを介して得られる候補リガンド 酵母２ハイブリッド系は、ｉｎ ｖｉｖｏでのタンパク質−タンパク質相互作
用（ＦｉｅｌｄおよびＳｏｎｇ、１９８９）を研究するために設計され、酵母Ｇ
ａｌ４タンパク質のＤＮＡ結合ドメインへのベイト（ｂａｉｔ）タンパク質の融
合に依存する。この技法はまた、米国特許第５，６６７，９７３号および同第５
，２８３，１７３号（Ｆｉｅｌｄｓら）に記載されている。両特許の技術的教示
内容については、本明細書において参考として援用される。
【０３７１】 ２ハイブリッドアッセイによるライブラリースクリーニングの一般プロトコル
は、Ｈａｒｐｅｒら（Ｈａｒｐｅｒ ＪＷら、１９９３）もしくはＣｈｏら（１
９９８）またはＦｒｏｍｏｎｔ−Ｒａｃｉｎｅら（１９９７）により記載のよう
に実施することができる。
【０３７２】 ベイトタンパク質またはポリペプチドは、ＴＢＣ−１ポリペプチドまたはその
フラグメントもしくは変異体から成る。
【０３７３】 より正確には、ＴＢＣ−１ポリペプチドをコードするヌクレオチド配列または
そのフラグメントもしくは変異体を、ＧＡＬ４タンパク質のＤＮＡ結合ドメイン
をコードするポリヌクレオチドに融合させる。該融合されたヌクレオチド配列は
、適切な発現ベクター、例えば、ｐＡＳ２またはｐＭ３に挿入される。
【０３７４】 次いで、ヒトｃＤＮＡ挿入物が、ＧＡＬ４タンパク質の転写ドメインをコード
するベクターのヌクレオチド配列に融合されるように、特別に設計されたベクタ
ーにおいてヒトｃＤＮＡライブラリーを構築する。好ましくは、使用されるベク
ターはｐＡＣＴベクターである。ヒトｃＤＮＡライブラリーのヌクレオチド挿入
物によってコードされるポリペプチドは、「プレイ（ｐｒａｙ）」ポリペプチド
と呼ばれる。
【０３７５】 第３のベクターは、転写活性化ドメインおよびＤＮＡ結合ドメインの両方を含
有する全Ｇａｌ４タンパク質の結合に応答性である調節配列の制御下に配置され
るβガラクトシダーゼ遺伝子またはＣＡＴ遺伝子などの検出マーカーを含有する
。例えば、ベクターｐＧ５ＥＣを使用することができる。
【０３７６】 異なる２種の酵母株も使用される。例示的かつ非制限的例として、異なる２種
の酵母株は以下のもであってもよい。 表現型が（ＭＡＴａ、Ｌｅｕ２−３、１１２ ｕｒａ３−１２、ｔｒｐ１−９
０１、ｈｉｓ３−Ｄ２００、ａｄｅ２−１０１、ｇａｌ４Ｄｇａｌ１８０Ｄ Ｕ
ＲＡ３ ＧＡＬ−ＬａｃＺ、ＬＹＳ ＧＡＬ−ＨＩＳ３、ｃｙｈr）であるＹ１
９０； 表現型が（ＭＡＴａ ｇａｌ４ ｇａｌ８０ ｈｉｓ３ ｔｒｐ１−９０１
ａｄｅ２−１０１ ｕｒａ３−５２ ｌｅｕ２−３、−１１２ ＵＲＡ３ ＧＡ
Ｌ−ｌａｃＺｍｅｔ-）であるＹ１８７であり、Ｙ１９０に対向する接合型であ
る。
【０３７７】 簡単に説明すると、２０μｇのｐＡＳ２／ＴＢＣ−１および２０μｇのｐＡＣ
Ｔ−ｃＤＮＡライブラリーを、酵母株Ｙ１９０に同時形質転換する。ヒスチジン
、ロイシンおよびトリプトファンを欠くがヒスチジン合成阻害剤３−ＡＴ（５０
ｍＭ）を含有する最小培地上での増殖について、形質転換体を選択する。フィル
ターリフト（ｆｉｌｔｅｒ ｌｉｆｔ）アッセイにより、βガラクトシダーゼに
ついて陽性コロニーを選択する。次いで、ｐＡＳ２／ＴＢＣ−１プラスミドを消
失したがｐＡＣＴ−ｃＤＮＡライブラリープラスミドを保持するものを選択する
ために、二重陽性コロニー（Ｈｉｓ+、β−ｇａｌ+）を、ヒスチジン、ロイシン
を欠くがトリプトファンおよびシクロヘキシミド（１０ｍｇ／ｍｌ）を含有する
プレート上で増殖させる。得られるＹ１９０株を、ＴＢＣ−１または非関対照連
タンパク質（例えば、シクロフィリンＢ、ラミン、またはＧａｌ４融合物として
Ｈａｒｐｅｒら（１９９３）およびＢｒａｍら（１９９３）に記載のＳＮＦ１）
を発現するＹ１８７株に接合させ、フィルターシフトアッセイによりβガラクト
シダーゼについてスクリーニングする。対照Ｇａｌ４融合物との接合後にβｇａ
ｌ−を呈する酵母クローンを擬陽性とする。
【０３７８】 本発明の２ハイブリッド方法のもう１つの実施態様では、Ｍａｔｃｈｍａｋｅ
ｒ Ｔｗｏ Ｈｙｂｒｉｄ Ｓｙｓｔｅｍ２（カタログ番号Ｋ１６０４−１、Ｃ
ｌｏｎｔｅｃｈ）を用いて、ＴＢＣ−１またはそのフラグメントもしくは変異体
と細胞タンパク質との間の相互作用を評価することができる。Ｍａｔｃｈｍａｋ
ｅｒ Ｔｗｏ Ｈｙｂｒｉｄ Ｓｙｓｔｅｍ２（カタログ番号Ｋ１６０４−１、
Ｃｌｏｎｔｅｃｈ）に添付の手引書（開示内容は本明細書において参考として援
用される）に記載のように、ＴＢＣ−１タンパク質またはその一部をコードする
核酸を、それらが酵母転写アクチベーターＧＡＬ４のＤＮＡ結合ドメインをコー
ドするＤＮＡと共にインフレームで存在するように、発現ベクターに挿入する。
所望のｃＤＮＡ、好ましくは、ヒトｃＤＮＡを、それらがＧＡＬ４の活性化ドメ
インをコードするＤＮＡと共にインフレームで存在するように、第２の発現ベク
ターに挿入する。２つの発現プラスミドを酵母に形質転換し、該酵母を発現ベク
ターのそれぞれに対する選択マーカーの発現およびＨＩＳ３遺伝子のＧＡＬ４依
存性発現について選択する選択培地上に配置する。ヒスチジンを欠く培地上で増
殖可能な形質転換体を、ＧＡＬ４依存性ｌａｃＺ発現についてスクリーニングす
る。ヒスチジン選択およびｌａｃＺアッセイの両方について陽性であるそれらの
細胞は、ＴＢＣ−１と最初に選択されたｃＤＮＡ挿入物によってコードされるタ
ンパク質またはペプチドとの間で相互作用が生じる細胞である。
【０３７９】 ＴＢＣ−１遺伝子の発現を変調するリガンドのスクリーニング方法 本発明のもう１つの主題は、ＴＢＣ−１タンパク質の発現を変調する分子をス
クリーニングする方法である。そのようなスクリーニング方法は、以下の工程を
含む。 ａ）ＴＢＣ−１ ５’調節配列に作動可能に連結されたＴＢＣ−１タンパク質
をコードするヌクレオチド配列でトランスフェクトされている原核または真核細
胞を培養すること； ｂ）培養細胞と試験しようとする分子とを接触させること； ｃ）ＴＢＣ−１タンパク質の発現を定量すること。
【０３８０】 当業者に周知のＤＮＡ組換え技法を使用して、ＴＢＣ−１タンパク質をコード
するＤＮＡ配列を、ＴＢＣ−１プロモーター配列を含有するＴＢＣ−１ ５’調
節配列より下流で発現ベクターに挿入する。
【０３８１】 ＴＢＣ−１タンパク質発現の定量は、ｍＲＮＡレベルまたはタンパク質レベル
のいずれかで実現され得る。後者の場合、ポリクローナルまたはモノクローナル
抗体を使用して、例えば、ＥＬＩＳＡまたはＲＩＡアッセイにおいて産生されて
いるＴＢＣ−１タンパク質の量を定量することができる。
【０３８２】 好ましい実施態様において、ＴＢＣ−１ ｍＲＮＡの定量は、ＴＢＣ−１に特
異的な１対のプライマーを使用して、培養されたＴＢＣ−１トランスフェクト宿
主細胞の総ｍＲＮＡの逆転写によって得られるｃＤＮＡの定量的ＰＣＲ増幅によ
って実現される。
【０３８３】 ＴＢＣ−１発現のレベルおよびパターンは、国際特許出願ＷＯ９７／０５２７
７（内容全体は本明細書において参考として援用される）に記載の長プローブに
よる溶液ハイブリダイゼーションによって分析することができる。簡単に説明す
ると、上記のＴＢＣ−１ ｃＤＮＡもしくはＴＢＣ−１ゲノムＤＮＡまたはその
フラグメントを、バクテリオファージ（Ｔ３、Ｔ７またはＳＰ６）ＲＮＡポリメ
ラーゼプロモーターの直ぐ下流のクローニング部位に挿入して、アンチセンスＲ
ＮＡを産生させる。好ましくは、ＴＢＣ−１挿入物は、ゲノムＤＮＡ配列または
ｃＤＮＡ配列の少なくとも１００以上の連続ヌクレオチドを含み、特にそれらは
、配列番号３、４および６〜８の１つまたは変異型ＴＢＣ−１をコードする配列
を含む。プラスミドを線状化し、修飾されたリボヌクレオチド（即ち、ビオチン
ＵＴＰおよびＤＩＧ−ＵＴＰ）を含むリボヌクレオチドの存在下で転写する。過
剰量のこの二重標識されたＲＮＡを、目的の細胞または組織から単離されたｍＲ
ＮＡと溶液中でハイブリダイズさせる。ハイブリダイゼーションは、標準的なス
トリンジェント条件（８０％ホルムアミド、０．４Ｍ ＮａＣｌ緩衝液、ｐＨ７
〜８中４０〜５０℃、１６時間）下で実施する。ハイブリダイズしなかったプロ
ーブを、一本鎖ＲＮＡに特異的なリボヌクレアーゼ（即ち、ＲＮａｓｅＣＬ３、
Ｔ１、Ｐｈｙ Ｍ、Ｕ２またはＡ）による消化によって除去する。ビオチンＵＴ
Ｐ修飾が存在すると、ストレプトアビジンで被覆されたマイクロタイタープレー
ト上でのハイブリッドの捕獲が可能である。ＤＩＧ修飾が存在すれば、アルカリ
ホスファターゼに結合した抗ＤＩＧ抗体を使用して、ＥＬＩＳＡによるハイブリ
ッドの検出および定量が可能である。
【０３８４】 アレイを使用して、ＴＢＣ−１遺伝子発現の定量分析を実施することもできる
。本明細書で使用される用語アレイは、ハイブリダイズ可能なｍＲＮＡの発現の
特異的検出を可能にするのに十分な長さの複数の核酸の１次元、２次元、または
多次元配列を意味する。例えば、アレイは、評価すべき発現レベルの遺伝から誘
導される複数の核酸を含有する。アレイは、ＴＢＣ−１ゲノムＤＮＡ、ＴＢＣ−
１ ｃＤＮＡ配列もしくはそれに相補的な配列またはそのフラグメント、特に、
本発明のバイアレリックマーカーの少なくとも１つを含む配列を含み得る。好ま
しくは、該フラグメントは少なくとも１５ヌクレオチド長である。他の実施態様
において、該フラグメントは少なくとも２５ヌクレオチド長である。いくつかの
実施態様において、該フラグメントは少なくとも５０ヌクレオチド長である。よ
り好ましくは、該フラグメントは少なくとも１００ヌクレオチド長である。もう
１つの好ましい実施態様において、該フラグメントは１００ヌクレオチドを超え
る。いくつかの実施態様において、該フラグメントは５００ヌクレオチドを超え
る。
【０３８５】 例えば、ＴＢＣ−１遺伝子発現の定量分析は、Ｓｃｈｅｎａら（１９９５）に
より記載の相補的ＤＮＡマイクロアレイにより実施することができる。全長ＴＢ
Ｃ−１ ｃＤＮＡまたはそのフラグメントをＰＣＲによって増幅し、高速ロボッ
ト学を使用して、シリル化された顕微鏡用スライド上に配置された９６ウェルマ
イクロタイタープレートより整列（ａｒｒａｙｅｄ）する。焼き付けられたアレ
イを湿チャンバ内でインキュベートし、アレイエレメントの再水化を可能にし、
０．２％ＳＤＳ中で１分間、１回、水中で１分間、２回およびホウ水素化ナトリ
ウム溶液中で５分間、５回濯ぐ。アレイを水中に２分間、９５℃で浸没させ、０
．２％ＳＤＳ中に１分間移し、水で２回すすぎ、空気乾燥し、暗所２５℃で保存
する。
【０３８６】 細胞または組織ｍＲＮＡは単離するかまたは購入し、１ラウンドの逆転写によ
ってプローブを調製する。プローブを、６〜１２時間、６０℃で１４×１４ｍｍ
カバーガラス下の１ｃｍ2のマイクロアレイにハイブリダイズさせる。アレイを
、５分間、２５℃、低ストリンジェンシー洗浄緩衝液（１×ＳＳＣ／０．２％Ｓ
ＤＳ）中で洗浄し、１０分間、室温、高ストリンジェンシー洗浄緩衝液（０．１
×ＳＳＣ／０．２％ＳＤＳ）中で洗浄する。専用フィルターセットを備えた蛍光
レーザー走査装置を用い、アレイを０．１×ＳＳＣ中で走査する。２つの独立し
たハイブリダイゼーションの比の平均を求めることによって、正確な差異発現測
定を得る。
【０３８７】 Ｐｉｅｔｕら（１９９６）により記載の相補的ＤＮＡアレイにおける全長ＴＢ
Ｃ−１ ｃＤＮＡまたはそのフラグメントにより、ＴＢＣ−１遺伝子発現の定量
分析を実施することもできる。全長ＴＢＣ−１またはそのフラグメントをＰＣＲ
増幅し、膜上にスポットする。次いで、様々な組織または細胞由来のｍＲＮＡを
放射性ヌクレオチドで標識する。制御された条件下でのハイブリダイゼーション
および洗浄後、ハイブリダイズされたｍＲＮＡを、ホスホイメージング（ｐｈｏ
ｓｐｈｏ−ｉｍａｇｉｎｇ）またはオートラジオグラフィーにより検出する。２
連続実験を実施し、次いで、異なる発現のｍＲＮＡの定量分析を実施する。
【０３８８】 あるいは、Ｌｏｃｋｈａｒｔら（１９９６）およびＳｏｓｎｏｗｓｋｙら（１
９９７）に記載の高密度ヌクレオチドアレイまたはチップを介して、ＴＢＣ−１
ゲノムＤＮＡ、ＴＢＣ−１ ｃＤＮＡ、またはそのフラグメントを使用する発現
分析を行うことができる。ＴＢＣ−１ゲノムＤＮＡ、ＴＢＣ−１ ｃＤＮＡ配列
、特に本発明のバイアレリックマーカーの少なくとも１つ、好ましくは配列番号
７もしくは８の少なくとも１つを含む配列または変異を生じる形質を含む配列、
あるいはそれに相補的な配列は、チップ上で直接合成される（Ｌｏｃｋｈａｒｔ
ら、上掲）かまたは合成され、次いでチップにアドレス指定される（Ｓｏｓｎｏ
ｗｓｋｉら、上掲）。好ましくは、オリゴヌクレオチドは約２０ヌクレオチド長
である。
【０３８９】 ビオチン、ジゴキシゲニンまたは蛍光色素などの適切な化合物で標識されたＴ
ＢＣ−１ ｃＤＮＡは、適切なｍＲＮＡ集団から合成し、次いで、５０〜１００
ヌクレオチドの平均サイズは無作為にフラグメント化する。次いで、前記プロー
ブをチップにハイブリダイズする。Ｌｏｃｋｈａｒｔら、上掲に記載のように洗
浄および異なる電場の適用（Ｓｏｓｎｏｗｓｋｉら、１９９７）後、色素または
標識化合物を検出し、定量する。２連続のハイブリダイゼーションを実施する。
異なるＤＮＡサンプル中の同じ標的オリゴヌクレオチドから生じるｃＤＮＡプロ
ーブシグナルの強度の比較分析は、ＴＢＣ−１ ｍＲＮＡの差異発現を示す。
【０３９０】 従って、本発明のＴＢＣ−１遺伝子の発現を変調する候補物質または分子をス
クリーニングする方法も本発明の一部であり、該方法は以下の工程を含む。 ａ）核酸を含有する組換え細胞宿主を提供することであって、ここで、前記核
酸は、５’調節領域配列またはその生物学的に活性なフラグメントもしくは変異
体を含み、該５’調節領域配列またはその生物学的に活性なフラグメントもしく
は変異体は、検出可能なタンパク質をコードするポリヌクレオチドに作動可能に
連結している； ｂ）候補物質を取得すること、および ｃ）検出可能なタンパク質をコードするポリヌクレオチドの発現レベルを変調
する候補物質の能力を決定すること。
【０３９１】 上記のスクリーニング方法の好ましい実施態様において、５’調節領域配列ま
たは生物学的に活性なフラグメントもしくは変異体を含む核酸はまた、配列番号
３および４のＴＢＣ−１ ｃＤＮＡの１つの５’ＵＴＲ領域、またはその生物学
的に活性なフラグメントもしくは変異体の１つを含む。
【０３９２】 ＴＢＣ−１遺伝子の発現を変調する候補物質または分子をスクリーニングする
第２の方法は、以下の工程を含む。 ａ）核酸を含有する組換え細胞宿主を提供することであって、ここで、前記核
酸は、配列番号３および４のＴＢＣ−１ ｃＤＮＡの１つの５’ＵＴＲ配列、ま
たはその生物学的に活性なフラグメントもしくは変異体の１つを含み、該５’Ｕ
ＴＲ配列、またはそれらの生物学的に活性なフラグメントもしくは変異体は、検
出可能なタンパク質をコードするポリヌクレオチドに作動可能に連結している； ｂ）候補物質を取得すること、および ｃ）検出可能なタンパク質をコードするポリヌクレオチドの発現レベルを変調
する候補物質の能力を決定すること。
【０３９３】 上記のスクリーニング方法の好ましい実施態様において、配列番号３および４
のＴＢＣ−１ ｃＤＮＡの１つの５’ＵＴＲ配列から成る群より選択されるヌク
レオチド配列それらの生物学的に活性なフラグメントもしくは変異体の１つを含
む核酸は、プロモーター配列を含み、ここで、前記プロモーター配列は本明細書
に規定されるＴＢＣ−１ ５’ＵＴＲ配列に対して内因性または対照的に外因性
のいずれかであり得る。
【０３９４】 検出可能なタンパク質をコードする好ましいポリヌクレオチドのうち、βガラ
クトシダーゼ、グリーン蛍光タンパク質（ＧＦＰ）およびクロラムフェニコール
アセチルトランスフェラーゼ（ＣＡＴ）をコードするポリヌクレオチドが引用さ
れ得る。
【０３９５】 上記のスクリーニング方法を実施するのに有用な適切な組換えベクターの設計
については、本発明の好ましい組換えベクターについて詳述している本明細書の
セクションで言及する。
【０３９６】 トランスジェニック動物を使用するスクリーニング 薬物のスクリーニングのために、ｉｎ ｖｉｖｏ方法はトランスジェニック動
物を利用することができる。目的のバイアレリック多型の少なくとも１つを含む
核酸を使用して、遺伝的に改変された非ヒト動物を作製するかまたは細胞株にお
いて部位特異的遺伝子修飾を作製することができる。用語「トランスジェニック
」は、ＴＢＣ−１遺伝子活性の欠失もしくは他のノックアウトを有する遺伝的に
改変された動物、宿主細胞に安定に伝達された外因性ＴＢＣ−１遺伝子を有する
遺伝的に改変された動物、またはレポーター遺伝子に作動可能に連結された外因
性ＴＢＣ−１プロモーターを有する遺伝的に改変された動物を包含することが意
図される。トランスジェニック動物は相同組換えを介して作製することができ、
ここで、ＴＢＣ−１遺伝子座は変化する。あるいは、核酸構築物は無作為にゲノ
ムに組み込まれる。安定な組込みのためのベクターとしては、例えば、プラスミ
ド、レトロウイルスおよび他の動物ウイルス、およびＹＡＣが挙げられる。トラ
ンスジェニック動物、例えば、ウシ、ブタ、ヤギ、ウマ、ならびに特にラットお
よびマウスなどのげっ歯類が興味深い。トランスジェニック動物により候補薬物
の有効性および毒性の両方を研究することが可能である。
【０３９７】 ＴＢＣ−１遺伝子の発現を阻害する方法 本発明の他の治療用組成物は、対応するＴＢＣ−１遺伝子の発現を阻害するア
ンチセンス手段として、ＴＢＣ−１の核酸配列のオリゴヌクレオチドフラグメン
トを有利に含む。本発明のアンチセンスポリヌクレオチドを使用する好ましい方
法は、Ｓｃｚａｋｉｅｌら（１９９５）により記載の方法である。
【０３９８】 好ましくは、アンチセンス手段は、ＴＢＣ−１ ｍＲＮＡの５’末端に相補的
であるポリヌクレオチド（１５〜２００ｂｐ長）から選択される。もう１つの実
施態様では、所望される標的化された遺伝子の異なる部分に相補的な異なるアン
チセンスポリヌクレオチドの組み合わせを使用する。
【０３９９】 本発明の好ましいアンチセンスポリヌクレオチドは、翻訳開始コドンＡＴＧを
含有するＴＢＣ−１のｍＲＮＡの配列に相補的である。
【０４００】 遺伝子治療に使用すべきアンチセンス核酸分子は、ＤＮＡまたはＲＮＡ配列の
いずれであってもよい。それらは、ＰＴＣＡ−１ゲノムＤＮＡの標的化された配
列に相補的なヌクレオチド配列を含み、その配列は、本発明の検出方法の１つを
使用して決定することができる。好ましくは、標的化されたＤＮＡまたはＲＮＡ
配列は、本発明のバイアレリックマーカーの少なくとも１つを含む。アンチセン
ス核酸は、二本鎖のＴＢＣ−１ ｍＲＮＡの発現を阻害するのに十分な安定性を
有する細胞内二本鎖の形成を可能にするのに十分な長さおよび融解温度を有する
べきである。遺伝子治療における用途に適切なアンチセンス核酸を設計するため
の戦略は、Ｇｒｅｅｎら（１９８６）およびＩｚａｎｔおよびＷｅｉｎｔｒａｕ
ｂ（１９８４）において開示されている（内容は本明細書において参考として援
用される）。
【０４０１】 いくつかの戦略において、アンチセンス分子は、細胞で正常に転写される鎖の
対向鎖が転写されるように、プロモーターに対してＴＢＣ−１コード領域の方向
を逆転することによって得られる。アンチセンス分子は、Ｔ７またはＳＰ６ポリ
メラーゼを用いて転写物を作製するようなｉｎ ｖｉｔｒｏ転写系を使用して、
転写することができる。もう１つのアプローチは、適切な転写ベクターのプロモ
ーターにアンチセンス配列を含有するＤＮＡを作動可能に連結することによって
、ｉｎ ｖｉｖｏでのＴＢＣ−１アンチセンス核酸の転写を含む。
【０４０２】 あるいは、適切なアンチセンス戦略は、Ｒｏｓｓｉら（１９９１）、国際出願
ＷＯ９４／２３０２６、同ＷＯ９５／０４１４１、同ＷＯ９２／１８５２２およ
び欧州特許出願ＥＰ０５７２２８７Ａ２に記載の戦略である。
【０４０３】 本発明に従って使用されるアンチセンス技法の代替法は、相補的ポリヌクレオ
チドテイルを介して標的配列に結合し、標的部位にハイブリダイズすることによ
って、対応するＲＮＡを切断するリボヌクレオチド（即ち、ハンマーヘッド型リ
ボザイム）を使用することにある。簡単に説明すると、ハンマーヘッド型リボザ
イムの簡素化されたサイクルは、（１）相補的アンチセンス配列を介して標的Ｒ
ＮＡに特異的に結合する配列；（２）標的鎖の切断可能なモチーフの部位特異的
加水分解；および（３）もう１つの触媒サイクルを生じる切断産物の放出から成
る。実際に、長鎖アンチセンスポリヌクレオチド（少なくとも３０塩基長）また
は長アンチセンスアームを有するリボザイムの使用が有利である。アンチセンス
リボザイムの好ましい送達系は、これらのアンチセンスリボザイムを親油性基に
共有結合するかまたは簡便なベクターとしてリポソームを使用することによって
達成される。本発明の好ましいアンチセンスリボザイムは、Ｓｃｚａｋｉｅｌら
（１９９５）により記載のように調製され、該特定の調製方法は、本明細書にお
いて参考として援用される前記記事において言及されている。
【０４０４】 本出願を通して、様々な公開物、特許および公開された特許出願を引用してい
る。これらの公開物、特許および公開された特許明細書の開示内容は、本明細書
において本出願に参考として援用され、本発明が関する技術分野の現状をさらに
詳細に記載している。
【０４０５】 実施例 実施例１： 細胞によって合成されるＴＢＣ−１ポリペプチドをコードする第１のｍＲＮＡの
分析 ＴＢＣ−１ ｃＤＮＡを以下のようにして得た。１ｍｇのヒト前立腺総ＲＮＡ
（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．，Ｐｒｏ Ａｌｔｏ
，ＵＳＡ；カタログ番号６４０３８−１）を含有する４μｌのエタノール懸濁液
を遠心分離し、得られるペレットを室温で３０分間空気乾燥した。
【０４０６】 ＡｄｖａｎｔａｇｅＴＭ ＲＴ−ｆｏｒ−ＰＣＲキット（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ
ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．、カタログ番号Ｋ１４０２−１）を使用し
て、第１鎖ｃＤＮＡ合成を実施した。１μｌの２０ｍＭ特異的オリゴｄＴプライ
マー溶液を１２．５μｌのＲＮＡ水溶液に添加し、７４℃で２．５分間加熱し、
直ちに氷浴中でクエンチングした。１０μｌの５×ＲＴ緩衝液（５０ｍＭ Ｔｒ
ｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ８．３、７５ｍＭ ＫＣｌ、３ｍＭ ＭｇＣｌ2）、２．５
μｌのｄＮＴＰミックス（それぞれ１０ｍＭ）、１．２５μｌのヒト組換え胎盤
ＲＮＡ阻害剤を、１ｍｌのＭＭＬ逆転写酵素（２００単位）と混合した。この溶
液の６．５μｌをＲＮＡプライマーミックスに添加し、４２℃で１時間インキュ
ベートした。８０μｌの水を添加し、溶液を９４℃で５分間インキュベートした
。
【０４０７】 ５μｌの得られる溶液をＬｏｎｇ Ｒａｎｇｅ ＰＣＲ反応に使用し、熱開始
、５０μｌの最終容積で、２単位のｒｔＴＨＸＬ、それぞれ２０ｐｍｏｌの５’
−ＴＧＡＣＣＡＣＣＡＴＧＣＣＣＡＴＧＣＴ−３’（配列番号３の２７１〜２８
９）および５’−ＧＣＡＴＴＴＡＴＴＣＡＣＧＴＣＣＡＣＧＣＣ−３’（配列番
号３の３９２９〜３９４９）プライマーを用い、サーモサイクラー中で３５サイ
クルの６７℃、６分間の伸長を行った。
【０４０８】 増幅反応の特異性を確実にするために、両ｃＤＮＡ鎖に対応する増幅産物の一
部を配列決定した。
【０４０９】 前立腺ｍＲＮＡのノーザンブロット分析の結果は、配列番号３のヌクレオチド
配列である約４ｋｂ長を有する第１のＴＢＣ−１ ｃＤＮＡの存在を支持する。
【０４１０】 実施例２： ＴＢＣ−１バイアレリックマーカーの検出：ＤＮＡ抽出 ドナーは無関係かつ健常である。彼らは、仏国人異種集団の団表として十分な
多様性を呈していた。１００個体からＤＮＡを抽出し、バイアレリックマーカー
の検出のための試験を行った。
【０４１１】 それぞれのドナーより、ＥＤＴＡの存在下で３０ｍｌの末梢静脈血を採取した
。１０分間、２０００ｒｐｍの遠心分離後、細胞（ペレット）を回収した。溶解
溶液（５０ｍｌの最終容積：１０ｍＭ Ｔｒｉｓ ｐＨ７．６；５ｍＭ ＭｇＣ
ｌ2；１０ｍＭ ＮａＣｌ）により赤血球細胞を溶解した。ペレットを溶解溶液
に再懸濁後、上清に残存する赤血球を除去するのに必要な回数だけ溶液を遠心分
離（１０分間、２０００ｒｐｍ）した。
【０４１２】 白血球のペレットを１晩４２℃で、以下から成る溶解溶液の３．７ｍｌで溶解
した。 ３ｍｌ ＴＥ１０−２（Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ１０ｍＭ、ＥＤＴＡ２ｍＭ）／Ｎａ
Ｃｌ ０．４Ｍ ２００μｌ ＳＤＳ １０％ ５００μｌ プロテイナーゼＫ（ＴＥ１０−２／ＮａＣｌ０．４Ｍ中２ｍｇプ
ロテイナーゼＫ）。
【０４１３】 タンパク質の抽出のために、１ｍｌの飽和ＮａＣｌ（６Ｍ）（１／３．５ｖ／
ｖ）を添加した。激しく攪拌した後、溶液を２０分間、１００００ｒｐｍで遠心
分離した。
【０４１４】 ＤＮＡの沈殿のため、２〜３容量の１００％エタノールを先の上清に添加し、
溶液を３０分間、２０００ｒｐｍで遠心分離した。ＤＮＡ溶液を７０％エタノー
ルで３回濯いで塩を除去し、２０分間、２０００ｒｐｍで遠心分離した。ペレッ
トを３７℃で乾燥し、１ｍｌのＴＥ１０−１または１ｍｌの水に再懸濁した。２
６０ｎｍでＯＤを測定することにより、ＤＮＡ濃度を評価した（１単位ＯＤ＝５
０μｇ／ｍｌＤＮＡ）。
【０４１５】 ＤＮＡ溶液中のタンパク質の存在を決定するために、ＯＤ２６０／ＯＤ２８０
比を決定した。１．８〜２のＯＤ２６０／ＯＤ２８０を有するＤＮＡ調製物を、
以下に記載の以後の実施例に使用した。
【０４１６】 プールは、それぞれの個体由来のＤＮＡの等量を混合することによって構成さ
れた。
【０４１７】 実施例３： バイアレリックマーカーの検出：ＰＣＲによるゲノムＤＮＡの増幅 実施例２のＤＮＡサンプルの特定のゲノム配列の増幅を、先に得られたＤＮＡ
のプールについて行った。さらに、５０個体のサンプルを同様に増幅した。
【０４１８】 以下のプロトコルを使用して、ＰＣＲアッセイを行った。 最終容積 ２５μｌ ＤＮＡ ２ｎｇ／μｌ ＭｇＣｌ2 ２ｍＭ ｄＮＴＰ（それぞれ） ２００μＭ プライマー（それぞれ） ２．９ｎｇ／μｌ Ａｍｐｌｉ Ｔａｑ ＤＮＡ ポリメラーゼ ０．０５単位／μｌ ＰＣＲ緩衝液（１０×０．１Ｍ ＴｒｉｓＨＣｌ、 ｐＨ８．３、０．５Ｍ ＫＣｌ） １×
【０４１９】 それぞれの対のプライマーは、本明細書に開示されているＴＢＣ−１遺伝子の
配列情報およびＯＳＰソフトウェア（ＨｉｌｌｉｅｒおよびＧｒｅｅｎ、１９９
１）を使用して設計した。この第１の対のプライマーは約２０ヌクレオチド長で
あり、ＰＵおよびＲＰと表示された欄において表１で開示されている配列を有す
る。
【０４２０】
【表２】
【０４２１】 好ましくは、プライマーは、配列決定に有用である増幅のために標的化された
特異的塩基の上流に、共通オリゴヌクレオチドテイルを含有した。
【０４２２】 プライマーＰＵは、以下のさらなるＰＵ５’配列を含有する。 ＴＧＴＡＡＡＡＣＧＡＣＧＧＣＣＡＧＴ（配列番号６）；プライマーＲＰは以下
のＲＰ５’配列：ＣＡＧＧＡＡＡＣＡＧＣＴＡＴＧＡＣＣ（配列番号７）を含有
する。
【０４２３】 これらのプライマーの合成は、ＧＥＮＳＥＴ ＵＦＰＳ２４．１合成機におい
てホスホロアミダイト法により実施した。
【０４２４】 ＤＮＡ増幅をＧｅｎｉｕｓ ＩＩサーモサイクラー上で実施した。９５℃で１
０分間の加熱後、４０サイクルを実施した。それぞれのサイクルは、９５℃で３
０秒間、５４℃１分間、および７２℃で３０秒間から成った。最後の伸長のため
に７２℃、１０分間で増幅を終了した。得られた増幅産物の定量は、蛍光計およ
び挿入剤としてＰｉｃｏｇｒｅｅｎ（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｐｒｏｂｅｓ）を使
用して、９６穴マイクロタイタープレート上で決定した。
【０４２５】 実施例４ バイアレリックマーカーの検出：増幅されたゲノムＤＮＡの配列決定および多型
の同定 実施例３で得られた増幅されたＤＮＡの配列決定をＡＢＩ３７７シークエンサ
ー上で行った。増幅産物の配列決定は、ダイターミネーターサイクル配列決定プ
ロトコルによる自動化ジデオキシターミネーター配列決定試薬を使用して、決定
した。配列決定反応の産物をシークエンシングゲル上で泳動させ、ゲル画像分析
［ＡＢＩ Ｐｒｉｓｍ ＤＮＡ配列決定分析ソフトウェア（２．１．２バージョ
ン）］を使用して配列を決定した。
【０４２６】 プールされた増幅されたフラグメント間のバイアレリックマーカーの存在を検
出するために、配列データをさらに評価した。多型調査は、先に記載のように、
同じ場所で生じる異なる塩基から生じる電気泳動パターンにおいて重畳されたピ
ークの存在に基づく。
【０４２７】 増幅の１５のフラグメントを分析した。これらのセグメントにおいて、１９の
バイアレリックマーカーを検出した。バイアレリックマーカーの局在位置を表２
に示す。
【０４２８】
【表３】
【０４２９】 ＢＭは「バイアレリックマーカー」を指す。Ａｌｌ１およびＡｌｌ２はそれぞれ
バイアレリックマーカーの対立遺伝子１および対立遺伝子２を指す。
【０４３０】
【表４】
【０４３１】 実施例５： マイクロシークエンシングを介する多型の確認 実施例４において同定されたバイアレリックマーカーを確認し、それらのそれ
ぞれの頻度をマイクロシークエンシングにより決定した。実施例２に記載のそれ
ぞれの個体ＤＮＡサンプルについて、マイクロシークエンシングを行った。
【０４３２】 同じ組のＰＣＲプライマーでバイアレリックマーカーを検出するために、個体
のゲノムＤＮＡからの増幅を上記のようにＰＣＲにより実施した（表１）。
【０４３３】 マイクロシークエンシングに使用される好ましいプライマーは、約１９ヌクレ
オチド長であり、考慮される多型性塩基の直ぐ上流でハイブリダイズした。本発
明に従い、マイクロシークエンシングにおいて使用されるプライマーを表４に詳
述する。
【０４３４】
【表５】
【０４３５】 マイクロシークエンシング反応は以下のようにして実施した。
【０４３６】 増幅産物の精製後、２０μｌの最終容積に１０ｍＭマイクロシークエンシング
オリゴヌクレオチド、１Ｕ Ｔｈｅｒｍｏｓｅｑｕｅｎａｓｅ（Ａｍｅｒｓｈａ
ｍ Ｅ７９０００Ｇ）、１．２５μｌのＴｈｅｒｍｏｓｅｑｕｅｎａｓｅ緩衝液
（２６０ｍＭ Ｔｒｉｓ ＨＣｌ、ｐＨ９．５、６５ｍＭ ＭｇＣｌ2）、およ
び試験するそれぞれのバイアレリックマーカーの多型性部位でヌクレオチドに相
補的である２つの適切な蛍光ｄｄＮＴＰ（Ｐｅｒｋｉｎ Ｅｌｍｅｒ、Ｄｙｅ
Ｔｈｅｒｍｉｎａｔｏｒ Ｓｅｔ４０１０９５）を添加することによって、マイ
クロシークエンシング反応混合物を調製した。９４℃で４分間後、５５℃で１５
秒間、７２℃で５秒間、および９４℃で１０秒間の２０ＰＣＲサイクルを、Ｔｅ
ｔｒａｄ ＰＴＣ−２２５サーモサイクラー（ＭＪ Ｒｅｓｅａｒｃｈ）におい
て行った。次いで、組み入れられていないダイターミネーターをエタノール沈殿
によって除去した。最終的にサンプルをホルムアミド−ＥＤＴＡ充填緩衝液に再
懸濁し、ポリアクリルアミドシークエンシングゲルに充填する前に、９５℃で２
分間加熱した。データは、ＡＢＩ ＰＲＩＳＭ３７７ＤＮＡシークエンサーによ
って回収し、ＧＥＮＥＳＣＡＮソフトウェア（Ｐｅｒｋｉｎ Ｅｌｍｅｒ）を使
用して処理した。
【０４３７】 ゲル分析後、それぞれの増幅フラグメントに存在するバイアレリックマーカー
の対立遺伝子の決定を可能にするソフトウェアにより、データを自動的に処理し
た。
【０４３８】 ソフトウェアは、上記のマイクロシークエンシング方法から得られるシグナル
の強度が弱いか、正常か、もしくは飽和状態か、またはシグナルが曖昧でないか
に関するそのような因子を評価する。さらに、ソフトウェアは、（形状および高
さの基準に従って）重要なピークを同定する。重要なピークのうち、標的化され
た部位に対応するピークは、それらの位置に基づいて同定される。２つの重要な
ピークが同じ位置で検出される場合、それぞれのサンプルは、高さの比に基づく
ホモ接合体またはホモ接合型として分類される。
【０４３９】 参考文献 Altschul et al., 1990, J. Mol. Biol. 215(3):403-410 / Altschul et
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【０４４０】 配列表のフリーテキスト 添付の配列表において以下のフリーテキストが認められる。 ５’調節領域 多型性塩基 相補体 ３’調節領域 の欠失 または プローブ 参照におけるＧｅｎｓｅｔ５’ＥＳＴとの相同性 シークエンシングオリゴヌクレオチドプライマーＰＵ シークエンシングオリゴヌクレオチドプライマーＲＰ
【配列表】
【図面の簡単な説明】
【図１】 配列番号５のＴＢＣ−１タンパク質のアミノ酸配列の一部と、Ｔ
ＢＣ−１とアミノ酸相同性を共有する他のタンパク質とのアミノ酸アラインメン
ト。アミノ酸の番号付けはマウスＴＢＣ−１を指す。
【手続補正書】
【提出日】平成１３年３月７日（２００１．３．７）
【手続補正１】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】特許請求の範囲
【補正方法】変更
【補正内容】
【特許請求の範囲】
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.7 識別記号 ＦＩ テーマコート゛(参考） Ｃ１２Ｑ 1/68 Ｇ０１Ｎ 33/566 33/58 Ａ Ｇ０１Ｎ 33/53 37/00 １０２ 33/566 Ｃ１２Ｎ 15/00 ＺＮＡＡ 33/58 Ｆ 37/00 １０２ 5/00 Ｂ (81)指定国 ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＣＹ， ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，Ｉ Ｔ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＧＷ，ＭＬ， ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＧＨ，ＧＭ，Ｋ Ｅ，ＬＳ，ＭＷ，ＳＤ，ＳＬ，ＳＺ，ＵＧ，ＺＷ)，Ｅ Ａ(ＡＭ，ＡＺ，ＢＹ，ＫＧ，ＫＺ，ＭＤ，ＲＵ，ＴＪ ，ＴＭ)，ＡＥ，ＡＬ，ＡＭ，ＡＴ，ＡＵ，ＡＺ，ＢＡ ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＲ， ＣＵ，ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，Ｇ Ｄ，ＧＥ，ＧＨ，ＧＭ，ＨＲ，ＨＵ，ＩＤ，ＩＬ，ＩＮ ，ＩＳ，ＪＰ，ＫＥ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＣ， ＬＫ，ＬＲ，ＬＳ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，ＭＤ，ＭＧ，Ｍ Ｋ，ＭＮ，ＭＷ，ＭＸ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，ＲＯ ，ＲＵ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ，ＳＬ，ＴＪ， ＴＭ，ＴＲ，ＴＴ，ＵＡ，ＵＧ，ＵＳ，ＵＺ，ＶＮ，Ｙ Ｕ，ＺＡ，ＺＷ Ｆターム(参考） 2G045 AA25 AA35 CB01 DA12 DA13 DA14 DA36 DA77 FB01 FB02 FB03 FB07 4B024 AA11 BA80 CA01 CA09 CA11 DA02 EA04 GA11 HA12 4B029 AA07 CC03 FA12 4B063 QA01 QA17 QA19 QQ01 QQ42 QQ52 QR08 QR32 QR42 QR56 QR62 QR82 QS25 QS34 QS36 QX02 4B065 AA90X AA93Y AB04 BA02 CA46

Claims (39)

    【特許請求の範囲】
  1. 【請求項１】 配列番号１に記載の配列の少なくとも１２ヌクレオチドの連
    続スパンを含む単離された、精製された、もしくは組換体ポリヌクレオチドまた
    はその相補体。
  2. 【請求項２】 配列番号２に記載の配列の少なくとも１２ヌクレオチドの連
    続スパンを含む単離された、精製された、もしくは組換体ポリヌクレオチドまた
    はその相補体。
  3. 【請求項３】 配列番号３に記載の配列の少なくとも１２ヌクレオチドの連
    続スパンを含む単離された、精製された、もしくは組換体ポリヌクレオチドまた
    はその相補体。
  4. 【請求項４】 配列番号４に記載の配列の少なくとも１２ヌクレオチドの連
    続スパンを含む単離された、精製された、もしくは組換体ポリヌクレオチドまた
    はその相補体。
  5. 【請求項５】 配列番号１および２のいずれか１つに記載の配列の８〜５０
    ヌクレオチドの連続スパンから本質的に成る単離された、精製された、もしくは
    組換体ポリヌクレオチドまたはその相補体であって、前記スパンは前記配列中に
    ＴＢＣ−１関連バイアレリックマーカーを含む、上記ポリヌクレオチド。
  6. 【請求項６】 前記ＴＢＣ−１関連バイアレリックマーカーはＡ１〜Ａ１９
    から成る群より選択される、請求項５に記載のポリヌクレオチド。
  7. 【請求項７】 前記連続スパンは１８〜３５ヌクレオチド長であり、前記バ
    イアレリックマーカーは前記ポリヌクレオチドの中央部の４ヌクレオチド内にあ
    る、請求項５または６のいずれか１項に記載のポリヌクレオチド。
  8. 【請求項８】 前記ポリヌクレオチドは前記連続スパンから成り、前記連続
    スパンは２５ヌクレオチド長であり、前記バイアレリックマーカーは前記ポリヌ
    クレオチドの中央部にある、請求項７に記載のポリヌクレオチド。
  9. 【請求項９】 前記ポリヌクレオチドは、次の配列：Ｐ１〜Ｐ７、Ｐ９〜Ｐ
    １３、Ｐ１５〜Ｐ１９、およびそれらに相補的な配列から選択される配列から本
    質的に成る、請求項８に記載のポリヌクレオチド。
  10. 【請求項１０】 前記連続スパンの３’末端は前記ポリヌクレオチドの３’
    末端に存在する、請求項１〜６のいずれか１項に記載のポリヌクレオチド。
  11. 【請求項１１】 前記連続スパンの３’末端は前記ポリヌクレオチドの３’
    末端に位置し、前記バイアレリックマーカーは前記ポリヌクレオチドの３’末端
    に存在する、請求項５または６のいずれか１項に記載のポリヌクレオチド。
  12. 【請求項１２】 配列番号１および２のいずれか１つに記載の配列の８〜５
    ０ヌクレオチドの連続スパンから本質的に成る単離された、精製された、もしく
    は組換体ポリヌクレオチドまたはその相補体であって、前記連続スパンの３’末
    端は前記ポリヌクレオチドの３’末端に位置し、前記ポリヌクレオチドの３’末
    端は、前記配列中のＴＢＣ−１関連バイアレリックマーカーの２０ヌクレオチド
    上流内に存在する、上記ポリヌクレオチド。
  13. 【請求項１３】 前記ポリヌクレオチドの３’末端は、前記配列中の前記Ｔ
    ＢＣ−１関連バイアレリックマーカーの１ヌクレオチド上流に位置する、請求項
    １２に記載のポリヌクレオチド。
  14. 【請求項１４】 前記ポリヌクレオチドは、次の配列：Ｄ１〜Ｄ１９、およ
    びＥ１〜Ｅ１９から選択される配列から本質的に成る、請求項１３に記載のポリ
    ヌクレオチド。
  15. 【請求項１５】 次の配列：Ｂ１〜Ｂ１５およびＣ１〜Ｃ１５から選択され
    る配列から本質的に成る、単離された、精製された、または組換体ポリヌクレオ
    チド。
  16. 【請求項１６】 配列番号５に記載の配列の少なくとも６アミノ酸の連続ス
    パンを含むポリペプチドをコードする、単離された、精製された、または組換体
    ポリヌクレオチド。
  17. 【請求項１７】 ＴＢＣ−１関連バイアレリックマーカーのヌクレオチドま
    たはその相補体の正体を決定する遺伝子型アッセイにおいて使用するためのポリ
    ヌクレオチド。
  18. 【請求項１８】 前記ポリヌクレオチドはハイブリダイゼーションアッセイ
    において使用される、請求項１７に記載のポリヌクレオチド。
  19. 【請求項１９】 前記ポリヌクレオチドは、シークエンシングアッセイにお
    いて使用される、請求項１７に記載のポリヌクレオチド。
  20. 【請求項２０】 前記ポリヌクレオチドは、酵素に基づくミスマッチ検出ア
    ッセイにおいて使用される、請求項１７に記載のポリヌクレオチド。
  21. 【請求項２１】 前記ポリヌクレオチドは、前記バイアレリックマーカーマ
    ーカーを含むヌクレオチドのセグメントを増幅するのに使用される、請求項１７
    に記載のポリヌクレオチド。
  22. 【請求項２２】 固相支持体に結合した請求項１〜２１のいずれか１項に記
    載のポリヌクレオチド。
  23. 【請求項２３】 請求項２２に記載の少なくとも１つのポリヌクレオチドを
    含むポリヌクレオチドのアレイ。
  24. 【請求項２４】 前記アレイはアドレス指定可能である、請求項２３に記載
    のアレイ。
  25. 【請求項２５】 標識をさらに含む、請求項１〜２１のいずれか１項に記載
    のポリヌクレオチド。
  26. 【請求項２６】 請求項１〜４および１６のいずれか１項に記載のポリヌク
    レオチドを含む組換えベクター。
  27. 【請求項２７】 請求項２６に記載の組換えベクターを含む宿主細胞。
  28. 【請求項２８】 請求項２６に記載の組換えベクターを含む非ヒト宿主動物
    または哺乳動物。
  29. 【請求項２９】 生物学的サンプルにおいてＴＢＣ−１関連バイアレリック
    マーカーのヌクレオチドまたはその相補体の正体を決定することを含む、遺伝子
    型判定方法。
  30. 【請求項３０】 前記生物学的サンプルは単一の被験体に由来するものであ
    る、請求項２９に記載の方法。
  31. 【請求項３１】 前記バイアレリックマーカーのヌクレオチドの正体は、前
    記個体のゲノムに存在する前記バイアレリックマーカーの両コピーについて決定
    される、請求項３０に記載の方法。
  32. 【請求項３２】 前記生物学的サンプルは複数の被験体に由来するものであ
    る、請求項２９に記載の方法。
  33. 【請求項３３】 前記決定工程の前にバイアレリックマーカーを含む前記配
    列の部分を増幅することをさらに含む、請求項２９に記載の方法。
  34. 【請求項３４】 前記増幅は、ＰＣＲによって実施される、請求項３３に記
    載の方法。
  35. 【請求項３５】 前記決定は、ハイブリダイゼーションアッセイによって実
    施される、請求項２９に記載の方法。
  36. 【請求項３６】 前記決定は、シークエンシングアッセイによって実施され
    る、請求項２９に記載の方法。
  37. 【請求項３７】 前記決定は、マイクロシークエンシングアッセイによって
    実施される、請求項２９に記載の方法。
  38. 【請求項３８】 前記決定は、酵素に基づくミスマッチ検出アッセイによっ
    て実施される、請求項２９に記載の方法。
  39. 【請求項３９】 前記ＴＢＣ−１関連バイアレリックマーカーは、Ａ１〜Ａ
    １９およびそれらの相補体から選択される、請求項２９〜３８のいずれか１項に
    記載の方法。
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