JP2002514067A - 神経栄養因子ｎｎｔ−１ - Google Patents

Abstract

(57)【要約】 ＮＮＴ−１と表される新規神経栄養因子をコードする核酸が開示される。ＮＮＴ−１ポリペプチドのためのアミノ酸配列、ＮＮＴ−１ポリペプチドを調製する方法、および他の関連局面も開示される。そのようなポリペプチドは、Ｂ細胞および／またはＴ細胞の生成の刺激、ならびに炎症反応の低減において活性である。

Description

【発明の詳細な説明】 神経栄養因子ＮＮＴ−１ 背景発明の分野 本発明は、神経栄養活性を有するＮＮＴ−１と称される新規ポリペプチドおよ び関連するポリペプチド、そのようなポリペプチドをコードする新規核酸分子、 および他の関連局面に関する。関連分野の記載 特定のクラスのニューロンの退化または死が少なくとも部分的原因となって、 多くの神経疾患または病気が引き起こされる。例えば、パーキンソン病は、随意 筋の動きが遅くなること、筋硬直、および震えにより特徴付けられる。そのよう な症候は、黒質と呼ばれる脳の特定領域に配されているドーパミン生成ニューロ ンの進行性退化に少なくとも部分的に起因する。これらニューロン（「ドーパミ ン作動性ニューロン」）の退化により、線条と呼ばれる脳の隣接領域におけるド ーパミン水準が低下する。線条は、ドーパミンのための受容体を発現するニュー ロン を含み：これらのニューロンは、運動活性の制御に含まれる。ドーパミン作動性 ニューロンの退化の原因は知られていないが、遊離基、過剰鉄含量、環境毒素、 興奮性アミノ酸神経毒性、および特定の神経栄養因子の欠損の可能性によるもの とされていた（Ｊｅｎｎｅｒ，Ｎｅｕｒｏｌｏｇｙ，補遺３巻、Ｓ６〜Ｓ１２［ １９９５年版］、Ａｄａｍｓおよびｖｉｃｔｏｒ編、Ｐｒｉｎｃｉｐｌｅｓ ｏ ｆ Ｎｅｕｒｏｌｏｇｙ、第４２章、Ｄｅｇｅｎｅｒａｔｉｖｅ Ｄｉｓｅａｓ ｅｓ ｏｆ ｔｈｅＮｅｒｖｏｕｓ ｓｙｓｔｅｍ、マグローヒル社、ニューヨ ーク［１９９３年版］）。 筋萎縮性側索硬化症（ＡＬＳ、ルイ・ゲーリッヒ（Ｌｏｕ Ｇｅｈｒｉｇ’ｓ ）病としても知られている）、退化性筋萎縮、および遺伝性運動および感覚神経 障害（シャルコー−マリー−ツース病）のような病気は全て、脊髄の前角に位置 する運動神経の崩壊を少なくとも部分的原因として生じる。 脳の大脳皮質の一部である充分に輪郭がはっきりした構造体である海馬は、長 期記憶の形成において重要である。例えば虚血による海馬の破壊により、新しい 記憶の形成が不可能になり得る。海馬のＣＡ１領域に位置する錐体ＣＡ１ニュー ロン退化 は、アルツハイマー病の１つの特徴である。これらの同じニューロンは、発作お よび頭部損傷のような条件において起こる虚血および無酸素障害により選択的に 障害を受ける。さらに、ＣＡ１錐体海馬ニューロンおよび海馬のＣＡ３領域に位 置する錐体ニューロンは、てんかんにおいて選択的に損傷される。 線条は、黒質からのドーパミン含有ニューロンの神経終末の神経支配領域であ る。線条ニューロンの大部分は、神経伝達物質としてＧＡＢＡ（４−アミノ酪酸 ）を利用する。線条は、主なニューロン損失が線条体ＧＡＢＡ利用ニューロンの 損失であるハンチントン病において起こる進行性神経退化の主な標的である。 セロトニン含有ニューロンは、後脳の中心あたりに集まって群になって位置し ている。これらのニューロンは、体温、気分および睡眠に制御される。セロトニ ン含有ニューロン系の疾患は、例えば、うつ病、他の気分疾患、および睡眠障害 を含む。 光受容体細胞は、網膜ニューロンの特別の一群であり、視角を司るものである 。光受容体細胞の損傷および／または死は、失明につながり得る。色素性網膜炎 、老化による黄斑退化および静止夜盲症によるような網膜の退化は、全て、進行 性萎縮、 および光刺激を電気的活性に変換する視覚色素を含む特別の構造体である光受容 体外側セグメントの機能の損失により特徴付けられる。 症状を治療しそのような病気の重さを軽減するために利用できる治療手段（例 えば、パーキンソン病を治療するためのレボドーパ）が幾つかあるが、前述した クラスの感染されたニューロンの大部分の退化を防止または低減させる、あるい はそれらの回復を促進するための有効な治療は現在存在しない。 最近では、種々のニューロンに対する栄養活性に基づき幾つかの天然産タンパ ク様分子が確認された。これらの分子は、「神経栄養因子」と呼ばれる。神経栄 養因子は、ニューロンの生存、成長および／または形状的柔軟性を刺激または制 御することができる内因性の可溶性タンパクである（ＦａｌｌｏｎおよびＬａｕ ｇｈｌｉｎ著、Ｎｅｕｒｏｔｒｏｐｈｉｃ Ｆａｃｔｏｒｓ、Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ、サンディエゴ、カリフォルニア［１９９３年版］を参照）。 既知の神経栄養因子は、アミノ酸配列相同性および／またはそれらの３次元構 造に基づいてポリペプチド成長因子の幾つかの異なるタンパク上科に属する（Ｍ ａｃＤｏｎａｌｄおよび Ｈｅｎｄｒｉｋｓｏｎ著、Ｃｅｌｌ、第７３巻、４２１〜４２４頁［１９９３年 ］）。神経栄養因子の１つの科は、ニューロトロフィン（ｎｅｕｒｏｔｒｏｐｈ ｉｎ）科である。この科は、現在のところ、ＮＧＦ（神経成長因子）、ＢＤＮＦ （脳誘導神経栄養因子）、ＮＴ−３（ニューロトロフィン−３）、ＮＴ−４（ニ ューロトロフィン−４）およびＮＴ−６（ニューロトロフィン−６）からなる。 ＣＮＴＦ（毛様体神経栄養因子）およびＬＩＦ（白血病抑制因子）は、神経栄 養活性を有するサイトカインポリペプチドである。その構造的特徴および受容体 成分故に、これらのポリぺプチドは、ＩＬ−６（インターロイキン−６）、ＩＬ −１１（インターロイキン−１１）、Ｇ−ＣＳＦ（顆粒球刺激因子）および腫瘍 放出因子（ｏｎｃｏｓｔａｔｉｎ）−Ｍを含む造血サイトカインの科に関係する 。本発明のＮＭＴ−１は、神経栄養因子のこの科の種々の成員に類似している。 図６を参照されたい。 ＧＤＮＦ（神経膠誘導神経栄養因子）は、ＴＧＦ−ベータ（形質転換成長因子 ベータ）上科に属する神経栄養因子である。ＧＤＮＦは、ドーパミン作動性およ び運動ニューロンについて有効な生存および分化促進作用を示す（Ｌｉｎら著、 Ｓｃｉｅｎｃｅ、 第２６０巻、１１３０〜１１３２頁［１９９３年版］、Ｙａｎら著、Ｎａｔｕｒ ｅ、第３７３巻、３４１〜３４４頁［１９９５年版］）。 これらの神経栄養因子は、ニューロンの成長および／または生存を向上させる ことが知られているが、これらの因子と一緒に作用する分子についてはあまり知 られていない。さらなるニューロトロフィンおよび関連する分子を識別する１つ の方法は、神経系に効果があることが知られている１種または２種以上の化合物 を動物に投与し、次に、化合物への神経反応に含まれる遺伝子の誘導について組 織を分析することである。例えば、脳の海馬領域のような神経系の特定の組織に おいて誘発される遺伝子についてスクリーンすることができる。この技術は、カ イニン酸塩（カイニン酸）と呼ばれるグルタミン酸塩の神経伝達物質類似体の投 与に反応して海馬の歯状回部分において誘発される新規遺伝子を識別するために Ｎｅｄｉｖｉらにより用いられた（Ｎａｔｕｒｅ、第３６３巻、７１８〜７２２ 頁［１９９３年版］、Ｎｅｄｉｖｉら著、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃ ｉ ＵＳＡ、第９３巻、２０４８〜２０５３頁［１９９６年版］）。 ＮＧＦＮ、ＢＤＮＦ、ＮＴ３、ＧＤＮＦ、ｂＦＧＦ、ＩＧＦ−１およびＴＧＦ− βのような多くの神経栄養因子の発現は、求心性神経活性および／または神経損 傷により制御される。これらの遺伝子の一部の強度の誘発が、グルタミン酸類似 体のカイニン酸塩に反応して海馬歯状回において観察することができる（Ｉｓａ ｃｋｓｏｎ著、Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｏｐｉｎｉｏｎｓ ｉｎ Ｎｅｕｒｏｂｉｏｌ ｏｇｙ、第５巻、５０〜３５７頁［１９９５年版］）。カイニン酸塩処理は、警 戒ラットの海馬からの新規化合物の放出を増加させるようであり、この活性は既 知の神経栄養因子の作用とは異なるようである（Ｈｕｍｐｅｌら著、Ｓｃｉｅｎ ｃｅ、第２６９巻、５５２〜５５４頁［１９９５年版］）。 多くの神経系の不全および疾患に治療法が知られていないことから、パーキン ソン病、筋萎縮性側索硬化（ＡＬＳ）、アルツハイマー病、発作、視覚に影響す る種々の退化性疾患のような神経症状および疾患を治療するための新規化合物を 見つけることが当該分野において必要とされている。 ＮＮＴ−１化合物が、特にＢ細胞およびＴ細胞生成の増加を引き起こすことに より免疫系を調整する生物学的活性を有する ことのさらなる証拠がここにある。 従って、本発明の目的は、ニューロン再生の促進および神経機能の回復におい て有用であり得る新規化合物を提供することにある。 本発明のさらなる目的は、ここに提示されたような神経疾患を治療する方法を 提供することにある。 本発明のなおさらなる目的は、ここに提示されたような免疫疾患を治療する方 法を提供することにある。 これらおよび他の目的は、ここの開示から当業者に明らかである。 発明の概要 １つの態様において、本発明は、 （ａ）配列番号１の核酸分子、 （ｂ）配列番号３の核酸分子、 （ｃ）配列番号２のポリペプチドまたはその生物学的活性フラグメントをコー ドする核酸分子、 （ｄ）配列番号２のポリペプチドに少なくとも７０％同一のポリペプチドをコ ードする核酸分子、 （ｅ）前記（ａ）〜（ｄ）のいずれかにストリンジェント条 件下にハイブリダイズする核酸分子、および （ｆ）前記（ａ）〜（ｅ）のいずれかの相補体である核酸分子 からなる群より選択される、ポリペプチドをコードする核酸分子を提供する。 もう１つの態様において、本発明は、 （ａ’）配列番号４の核酸分子、 （ｂ’）配列番号５のポリペプチドまたはその生物学的活性フラグメントをコ ードする核酸分子、 （ｃ’）配列番号５のポリペプチドに少なくとも７０％同一のポリペプチドを コードする核酸分子、 （ｄ’）前記（ａ’）〜（ｃ’）のいずれかにストリンジェント条件下にハイ ブリダイズする核酸分子、および （ｅ’）前記（ａ’）〜（ｄ’）のいずれかの相補体である核酸分子 からなる群より選択されるポリペプチドをコードする核酸分子を提供する。 もう１つの態様において、本発明は、これらの核酸分子を含むベクター、およ びそのベクターを含む原核または有核の宿主 細胞を提供する。 本発明は、さらに、 （ａ）配列番号２のポリペプチド、 （ｂ）配列番号２のアミノ酸１〜１９８であるポリペプチド、 （ｃ）（ａ）または（ｂ）のポリペプチドに少なくとも７０％同一のポリペプ チド、および （ｄ）（ａ）〜（ｃ）のいずれかの生物学的活性フラグメント からなる群より選択されるＮＮＴ−１ポリペプチドを提供する。 本発明は、さらに、 （ａ’）配列番号５のポリペプチド、 （ｂ’）配列番号５のアミノ酸１〜１９８であるポリペプチド、 （ｃ’）（ａ’）または（ｂ’）のポリペプチドに少なくとも７０％同一のポ リペプチド、および （ｄ’）（ａ’）〜（ｃ’）のいずれかの生物学的活性フラグメント からなる群より選択されるＮＮＴ−１ポリペプチドを提供する。 任意により、ＮＮＴ−１ポリペプチドは、アミノ末端メチオ ニンを有してよいまたは有さなくてよい。 もう１つの態様において、本発明は、配列番号２または配列番号５のＮＮＴ− １ポリペプチド、配列番号２のアミノ酸１〜１９８、配列番号５のアミノ酸１〜 １９８、またはその生物学的活性フラグメントを製造する方法であって、 （ａ）適当な宿主中においてＮＮＴ−１核酸分子によりコードされるポリペプ チドを発現する工程、および （ｂ）ポリペプチドを単離する工程 を含んでなる方法を提供する。 本発明は、さらに抗ＮＮＴ−１抗体を提供する。 図面の簡単な説明 図１は、ヒトＮＮＴ−１をコードするｃＤＮＡの核酸配列を示す（配列番号１ ）。 図２は、ＮＮＴ−１についてのヒトゲノムＤＮＡの核酸配列を示す（配列番号 ３）。 図３は、ｃＤＮＡ（配列番号２）から翻訳されるヒトＮＮＴ−１についてのア ミノ酸配列（配列番号１）を示す。最初の２７のアミノ酸は、シグナルペプチド 配列を表し、ＮＮＴ−１の成熟状態が、番号１で示されるロイシンにおいて開始 する。*は停 止コドンを示す。 図４は、ネズミＮＮＴ−１をコードするｃＤＮＡの核酸配列（配列番号４）を 示す。 図５は、ｃＤＮＡ（配列番号４）から翻訳されるネズミＮＮＴ−１についての アミノ酸配列（配列番号５）を示す。最初の２７のアミノ酸は、シグナルペプチ ド配列を表し、ネズミＮＮＴ−１の成熟状態が、番号１で示されるロイシンにお いて開始する。^*は停止コドンを示す。 図６は、ＮＮＴ−１、ＩＬ−１１（配列番号８）、ＩＬ−６（配列番号９）、 Ｇ−ＣＳＦ（配列番号１０）、カルジオトロフィン（ｃａｒｄｉｏｔｒｏｐｈｉ ｎ）（配列番号１１）、ＣＮＴＦ（配列番号１２）、腫瘍放出因子（配列番号１ ３）およびＬＩＦ（配列番号１４）のアミノ酸配列の比較を示す。各々の場合に おいて、ヒト分子が比較される。 図７は、ヒトＣＮＴＦと比較した、ヒトＮＮＴ−１についてのニワトリ運動神 経活性アッセイの結果のグラフを示す。 図８は、ヒトＣＮＴＦと比較した、ヒトＮＮＴ−１についてのニワトリ交換神 経活性アッセイの結果のグラフを示す。 図９は、負の対照マウス（＃２２）からの正常脾臓を示す、 ２０倍対物レンズ，Ｈ＆Ｅ染色。 図１０は、リンパ組織が過形成（矢印）されているＮＮＴ−１トランスジェニ ックマウス（＃６２）からの脾臓を示す。 図１１は、対照マウスからの正常肝臓を示す。１０倍対物レンズ，Ｈ＆Ｅ染色 。 図１２は、洞様毛細血管（矢印）中および血管周囲にリンパ凝集体を有するＮ ＮＴ−１トランスジェニックマウス（＃６０）からの肝臓を示す。 図１３は、ＮＮＴ−１が血清ＳＡＡ（ｐ＜０．００１）を誘発したことを表す データを示す。１群当り５匹のマウスとした。 図１４は、ＮＮＴ−１が、血清（ｐ＜０．０１）中のコルチコステロンのＩＬ −１による誘発を強化し、またＩＬ−１から独立してコルチコステロンの血清水 準を上昇（ｐ＜０．００１）させたことを表すデータを示す。 図１５は、ＮＮＴ−１が、血清（ｐ＜０．００１）中のＩＬ−１またはＩＬ− ６による誘発を強化したことを表すデータを示す。１群当り５匹のマウスとした 。 図１６は、ＮＮＴ−１が，血清ＴＮＦ水準（ｐ＜０．００１）のＬＰＳ誘発増 加を阻害したことを表すデータを示す。ＬＰＳ 処理群においては１０匹のマウス、他の群においては５匹のマウスとした。 図１７は、ＮＮＴ−１が、マウス（ｐ＜０．００１）中の末梢リンパ節中の合 計（ｐ＜０．０４）およびＣＤ４５陽性細胞の数を増加させたことを表すデータ を示す。 発明の詳細な説明 配列番号２および配列番号５のポリペプチドのようなＮＮＴ−１ポリペプチド 、および関連する生物学的活性ポリペプチドフラグメントならびにその誘導体が 本発明の範囲に含まれる。さらに、これらのポリペプチドをコードする核酸分子 、およびそのポリペプチドを調製する方法が本発明の範囲内に含まれる。 Ｉ． ＮＮＴ−１タンパク／ポリペプチド、フラグメントおよびその誘導体 ここで用いられる「ＮＮＴ−１タンパク」または「ＮＮＴ−１ポリペプチド」 という用語は、ＮＮＴ−１についてここで記載の特性を有するタンパクまたはポ リペプチドを意味する。ＮＮＴ−１ポリペプチドは、例えば調製される方法に依 存してアミノ末端メチオニンを有してよいまたは有さなくてよい。例として、Ｎ ＮＴ−１タンパクまたはＮＮＴ−１ポリペプチドは以 下の（１）〜（３）を表す。 （１）以下のいずれかにおいて定義されるようなＮＮＴ−１核酸分子によりコー ドされるアミノ酸配列： （ａ）配列番号１の核酸分子、 （ｂ）配列番号３の核酸分子、 （ｃ）配列番号２のポリペプチドまたはその生物学的活性フラグメントをコー ドする核酸分子、 （ｄ）配列番号２のポリペプチドに少なくとも７０％同一のポリペプチドをコ ードする核酸分子、 （ｅ）前記（ａ）〜（ｄ）のいずれかにストリンジェント条件下にハイブリダ イズする核酸分子、および （ｆ）前記（ａ）〜（ｅ）のいずれかの相補体である核酸分子、および （ａ’）配列番号４の核酸分子、 （ｂ’）配列番号５のポリペプチドまたはその生物学的活性フラグメントをコ ードする核酸分子、 （ｃ’）配列番号５のポリペプチドに少なくとも７０％同一のポリペプチドを コードする核酸分子、 （ｄ’）前記（ａ’）〜（ｃ’）のいずれかにストリンジェ ト条件下にハイブリダイズする核酸分子、および （ｅ’）前記（ａ’）〜（ｄ’）のいずれかの相補体である核酸分子、および （２）配列番号２または配列番号５のＮＮＴ−１ポリペプチドと比較して１また は２以上のアミノ酸置換、欠失および／または挿入を発生させることになるＮＮ Ｔ−１遺伝子の天然産対立変異体、および／または （３）ここに提示されるような化学的変性誘導体ならびにその核酸および／また はアミノ酸配列変異体。 本発明の実施において用いられるＮＮＴ−１ポリペプチドは、天然産全長ポリ ペプチド、または切形（ｔｒｕｎｃａｔｅｄ）ポリペプチドもしくはペプチド（ すなわち、「フラグメント」である）。 ポリペプチドは成熟形状である、または天然もしくは異質シグナルペプチドに 結合していてよい。例えば、ヒトおよびネズミＮＮＴ−１は、それぞれ配列番号 ２および配列番号５のアミノ酸２７〜１のシグナルペプチドを有する。 ポリペプチドまたはフラグメントは化学的に変性してよい、すなわち、以下に 記載のようにグリコシル化、リン酸化および ／またはポリマーに結合してよく、また、どのように調製されたかに依存してア ミノ末端メチオニンを有してよい。さらに、ポリペプチドまたはフラグメントは 、天然産ＮＮＴ−１ポリペプチドの変異体であってよい（すなわち、天然産ＮＴ Ｔ−１と比較して１または２以上のアミノ酸欠失、挿入および／または置換を含 んでよい）。 ここで用いられる「ＮＮＴ−１フラグメント」という用語は、天然産ＮＴＴ− １タンパクの全長アミノ酸配列より小さなペプチドまたはポリペプチドを意味す るが、前述のＮＮＴ−１ポリペプチドまたはＮＮＴ−１タンパクに対して、定性 的に実質的類似の生物学的活性を有する。そのようなフラグメントは、アミノ末 端、カルボキシ末端または両者において切断されてよく、化学的に変性されてよ い。そのようなＮＮＴ−１フラグメントは、アミノ末端メチオニンを用いてまた は用いないで調製することができる。フラグメントの活性は、全長（成熟）ＮＮ Ｔ−１ポリペプチドより大きい、同じまたは小さくてよい。この明細書の実施例 部分に示されているような標準的活性アッセイにより測定すると、フラグメント の活性は、好ましくは全長ポリペプチドの活性の５０％以上、より好ましくは６ ５％以上、最 も好ましくは８０％以上である。本発明の幾つかの例示フラグメントは、１〜２ ０のアミノ酸がＮＮＴ−１ポリペプチドのＣ末端、Ｎ末端または両末端から除去 されたポリペプチドを含む。 ここで用いられる「ＮＮＴ−１誘導体」または「ＮＮＴ−１変異体」という用 語は、 （１）例えば、１種または２種以上のポリエチレングリコール分子、糖、リン 酸塩、または野生型ＮＮＴ−１ポリペプチドに天然には結合していない他のその ような分子の付加により化学的に変性された、および／または （２）図３（ヒト）または図５（ネズミ）に示すＮＮＴ−１アミノ酸配列と比 較して１または２種以上の核酸またはアミノ酸配列置換、欠失および／または挿 入を含む ＮＮＴ−１ポリペプチド、タンパクまたはフラグメントを意味する。 ここで用いられる「生物学的活性ポリペプチド」および「生物学的活性フラグ メント」という用語は、（ａ）ニューロン（例えば、運動ニューロンおよび／ま たは交換ニューロン）または（ｂ）Ｂ細胞およびＴ細胞のような免疫細胞のため の成長因子として作用するＮＮＴ−１についての前述の記載に従うペプチ ドまたはポリペプチドを意味する。 活性アッセイにおいてそれ自体活性でないＮＮＴ−１のフラグメントおよび／ または誘導体は、生体外または生体内でのＮＮＴ−１受容体の調節物質（例えば 、抑制物質または刺激物質）として、またはＮＮＴ−１ポリペプチドへの抗体を 調製するために有用であり得る。 本発明のＮＮＴ−１のアミノ酸変異体は、配列番号２または配列番号５に好ま しくは少なくとも７０％同一、より好ましくは少なくとも約８０％同一、さらに より好ましくは少なくとも約９０％同一である。 配列同一性％は、２つのポリペプチドのアミノ酸の位置の類似性を比較するた めに通常用いられる標準的方法により決めることができる。例として、ＢＬＡＳ ＴまたはＦＡＳＴＡのようなコンピュータープログラムを用いて、配列同一性％ を決めるべき２つのポリペプチドが、それぞれのアミノ酸に最良に匹敵するよう に配列される（「匹敵範囲（ｍａｔｃｈｅｄ ｓｐａｎ）」は一方または両方の 配列の全長、または一方または両方の配列の予め決められた部分を含み得る）。 各コンピュータープログラムは、「デフォルト」開口ペナルティおよび「デフォ ルト」 ギャップペナルティ、ならびにＰＡＭ２５０のようなスコアリングマトリクスを 有する。標準的スコアリングマトリクス（Ｄａｙｈｏｆｆら著、Ａｔｌａｓ ｏ ｆ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｓｅｑｕｅｎｃｅ ａｎｄ Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ、第５巻 、補遺３［１９７８年版］）を、コンピュータープログラムと共に用いることが できる。次に、同一性％を、以下のようなＦＡＳＴＡのようなプログラムにおい て含まれるアルゴリズムを用いて計算することができる。 少なくとも７０％同一のポリペプチドは、典型的に、野生型ＮＮＴ−１と比較し て１種または２種以上のアミノ酸置換、欠失および／または挿入を有する。通常 、置換は、タンパクの全実効電荷、極性または疎水性に殆どまたは全く影響がな いように保存的であるが、任意にＮＮＴ−１の活性を増加させてよい。保存的置 換を下記表Ｉに示す。 表Ｉ 保存的アミノ酸置換 塩基性： アルギニン リシン ヒスチジン 酸性： グルタミン酸 アスパラギン酸 極性： グルタミン アスパラギン 疎水性： ロイシン イソロイシン バリン 芳香族： フェニルアラニン トリプトファン チロシン 小： グリシン アラニン セリン トレオニン メチオニン 本発明は、ＮＮＴ−１の種同族体も含み、例えば、イヌ、ネコ、マウス、ラッ ト、サル、ウマ、ブタ、ヤギ、ウサギ、ヒツジ等のような哺乳動物種からのＮＮ Ｔ−１同族体がヒトに加えて考えられる。ネズミｃＤＮＡおよびタンパクの配列 が、配列番号４および５として提供される。 本発明は、さらに、もう１つのポリペプチドの全てまたは一部に結合している ＮＮＴ−１のようなキメラポリペプチドを含む。好ましくは、キメラポリペプチ ドは、ＢＤＮＦ、ＧＤＮＦ、ＮＴ−３、ＮＴ−４、ＮＴ−５、ＮＴ−６等のよう なもう１つの神経栄養因子の全てまたは一部に結合しているＮＮＴ−１を含む。 ポリペプチドは、Ｎ−Ｃ末端、Ｃ−Ｃ末端、またはＮ−Ｎ末端に結合してよい。 ＩＩ． 核酸 ここで用いられる「ＮＮＴ−１」という用語は、核酸分子を表すために用いら れる場合、前述のように核酸分子またはそのフラグメントを意味する。 「ストリンジェント条件」という用語は、オリゴヌクレオチドまたはｃＤＮＡ 分子プローブのような核酸分子を、同族性の高い配列に結合させるだけの条件下 におけるハイブリダイズおよび洗浄を意味する。１つのストリンジェント洗浄溶 液は、５５℃〜６５℃の温度で用いられる０．０１５Ｍ ＮａＣｌ、０．００５ Ｍ クエン酸Ｎａおよび０．１％ＳＤＳである。もう１つのストリンジェント洗 浄溶液は、５０℃〜６５℃の温度で用いられる０．２ ＸＳＳＣおよび０．１％ ＳＤＳである。ｃＤＮＡまたはゲノムラ イブラリーをスクリーンするためにオリゴヌクレオチドプローブを用いる場合、 以下のストリンジェント洗浄条件を用いることができる。１つのプロトコールは 、オリゴヌタレオチドプローブの長さに依存して、３５℃〜６２℃の温度で６× ＳＳＣと０．０５％ピロリン酸ナトリウムを用いる。例えば、１４塩基対プロー ブを３５℃〜４０℃で洗浄し、１７塩基対プローブを４５℃〜５０℃で洗浄し、 ２０塩基対プローブを５２℃〜５７℃で洗浄し、２３塩基対プローブを５７℃〜 ６３℃で洗浄する。背景の非特異的結合が高いと思われるとき、温度を２〜３℃ 上げることができる。第２のプロトコールは、オリゴヌクレオチドプローブを洗 浄するために塩化テトラメチルアンモニウム（ＴＭＡＣ）を利用する。１つのス トリンジェント洗浄溶液は、３Ｍ ＴＭＡＣ、５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ，ｐ Ｈ８．０、および０．２％ＳＤＳである。この溶液を用いる洗浄温度は、プロー ブの長さの関数である。例えば、１７塩基対を約４５〜５０℃で洗浄する。 活性アッセイにおいて活性であるポリペプチドをそれ自体がコードしないＮＮ Ｔ−１核酸分子、フラグメントおよび／または誘導体は、哺乳動物組織または体 液サンプル中におけるＮＮＴ− １ＤＮＡまたはＲＮＡの存在について、定性的または定量的に試験するための診 断アッセイにおけるハイブリダイズプローブとして有用であり得る。 ここに記載のように、天然または異質シグナルペプチドにおよび／またはキメ ラポリペプチドに結合したＮＮＴ−１ポリペプチドをコードするＮＮＴ−１核酸 分子も、本発明の範囲に含まれる。 ＩＩＩ． ＮＮＴ−１ポリペプチドを調製するための方法 Ａ． 組換え方法 Ｓａｍｂｒｏｏｋらにより開示（ＭｏｌｅｃｕｌａｒＣｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｌ ａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ，コールド・スプリング・ハーバー、ニュー ヨーク［１９８９年版］）および／またはＡｕｓｕｂｅｌらが編集（Ｃｕｒｒｅ ｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ ＭｏｌｅｃｕｌａｒＢｉｏｌｏｇｙ，Ｇｒｅ ｅｎ Ｐｕｂｌｉｓｈｅｒｓ Ｉｎｃ．ａｎｄ Ｗｉｌｅｙ ａｎｄ Ｓｏｎｓ ，ニューヨーク［１９９４年版］）しているような良く知られた組換えＤＮＡ技 術を用いて、全長ＮＮＴ−１ポリペプチドまたはそのフラグメントを調 製することができる。ＮＮＴ−１タンパクまたはそのフラグメントをコードする 遺伝子またはｃＤＮＡは、例えば、ゲノムまたはｃＤＮＡライブラリーをスクリ ーニングすることにより、またはＰＣＲ増幅により得ることができる。また、Ｎ ＮＴ−１ポリペプチドまたはフラグメントをコードする遺伝子を、Ｅｎｇｅｌら により記載（Ａｎｇｅｗ．Ｃｈｅｍ．Ｉｎｔｌ．Ｅｄ．，第２８巻、７１６〜７ ３４頁［１９８９年版］）されているような当業者に良く知られている方法を用 いて化学的合成により調製することがてきる。これらの方法は、特に、核酸合成 のためのリン酸トリエステル、ホスホルアミダイトおよびＨ−ホスホネート法を 含む。そのような化学的合成のために好ましい方法は、標準的ホスホルアミダイ ト化学を用いるポリマー支持合成である。典型的に、ＮＮＴ−１ポリペプチドを コードするＤＮＡは、数百ヌクレオチドの長さである。これらの方法を用いて、 約１００ヌクレオチドより大きな核酸を複数のフラグメントとして合成すること ができる。次に、フラグメントを一緒に結合して全長ＮＮＴ−１ポリペプチドを 形成することができる。通常、ポリペプチドのアミノ末端をコードするＤＮＡフ ラグメントは、メチオニン残基をコードするＡＴＧを有する。 このメチオニンは、宿主細胞内で生成されたポリペプチドがその細胞から分泌さ れるかどうかによって、ＮＮＴ−１ポリペプチドの成熟形状の上に存在または存 在しなくてよい。 ある場合には、天然産ＮＮＴ−１の核酸および／またはアミノ酸変異体を調製 することが望ましいことがある。核酸変異体（１種または２種以上のヌクレオチ ドが、野生型すなわち天然産ＮＮＴ−１と異なるように設計される）を、特定部 位突然変異誘発、またはプライマーが所望の点突然変異を有するＰＣＲ増幅を用 いて生成することができる（Ｓａｍｂｒｏｏｋら、前記、およびＡｕｓｕｂｅｌ ら、前記、を参照）。そのような変異体を調製するために、前記Ｅｎｇｅｌらに より記載の方法を用いる化学的合成を用いることもできる。当業者に知られてい る他の方法も用いることができる。好ましい核酸変異体は、ＮＴＴ−１の生成の ために用いられるべき宿主細胞中のコドン選択性の説明となる核酸置換を含むも のである。他の好ましい変異体は、野生型と比較して前述したような保存性アミ ノ酸変化（例えば、天然産アミノ酸側鎖の電荷または極性が、異なるアミノ酸と の置換により実質的に変化しない）をコードするもの、および／または、ＮＮＴ −１上に新規グリコシル化および ／またはリン酸化部位を生成するように設計されたものまたはＮＮＴ−１上に存 在するグリコシル化および／またはリン酸化部位を欠失させるように設計された ものである。 ＮＮＴ−１遺伝子またはｃＤＮＡは、宿主細胞内における発現のための適当な 発現ベクター中に挿入することができる。ベクターは、用いられる特別の宿主細 胞内において機能的であるように選択される（すなわち、ベクターが、ＮＮＴ− １遺伝子の増幅および／または遺伝子の発現が起こり得るように宿主細胞加工に 適合性がある）。ＮＮＴ−１ポリペプチドまたはそのフラグメントは、原核細胞 、酵母、昆虫（バキュロウイルス系）および／または真核宿主細胞内において増 幅／発現することができる。宿主細胞の選択は、ＮＮＴ−１ポリペプチドまたは そのフラグメントがグリコシル化されるかどうかに少なくとも部分的に依存する 。その場合、酵母、昆虫または哺乳動物宿主細胞が好ましく、酵母細胞はポリペ プチドをグリコシル化し、昆虫および哺乳動物細胞は、ＮＮＴ−１ポリペプチド 上において自然に発生するときのポリペプチドをグリコシル化および／またはリ ン酸化（すなわち、「天然」グリコシル化および／またはリン酸化）することが できる。 典型的に、いかなる宿主細胞内において用いられるベクターも、５’側面配列 (ｆｌａｎｋｉｎｇ ｓｅｑｕｅｎｃｅ)（「プロモーター」とも呼ばれる）およ びエンハンサーのような他の調節要素、複製要素の起源、翻訳停止要素、供与体 および受容体スプライス部位を含む完全イントロン配列、シグナルペプチド配列 、リボソーム結合部位要素、ポリアデニル化配列、発現すべきポリペプチドをコ ードする核酸を挿入するためのポリリンカー領域、および選択し得るマーカー要 素を含む。これらの要素の各々は、以下に説明する。任意に、ベクターは、「タ グ」配列、すなわちｐｏｌｙＨｉｓ（例えばＨｅｘａＨｉｓ）をコードするＮＮ Ｔ−１コード配列、またはもう１つの小さな免疫原性配列の５’または３’末端 に配置されたオリゴヌクレオチド配列を含み得る。このタグはタンパク質に沿っ て発現され、宿主細胞からのＮＮＴ−１ポリペプチドの精製のために親和性タグ として作用することができる。任意に、続いてタグを、精製されたＮＮＴ−１ポ リペプチドから、例えば選択されたペプチダーゼを用いるような種々の手段によ り除去することができる。 ５’側面配列は、相同（すなわち、宿主細胞と同じ種および ／または菌株から）、非相同（すなわち、宿主細胞種または菌株以外の種から） 、雑種（すなわち、２以上の発生源からの５’側面配列の組み合わせ）、合成で あってよく、または天然ＮＮＴ−１ ５’側面配列であってよい。そのようなも のとして、５’側面配列の発生源は、任意の単細胞原核または真核有機体、任意 の脊椎または非脊椎有機体、または任意の植物であり得るが、但し５’側面配列 は、宿主細胞加工において機能的でありかつ活性化され得る。 本発明のベクターにおいて有用な５’側面配列は、当該分野で良く知られてい る幾つかの方法のいずれかにより得ることができる。典型的に、ＮＮＴ−１５’ 側面配列以外のここで有用な５’側面配列は、マッピングによりおよび／または 制限エンドヌクレアーゼ消化により既に同定されており、適切な制限エンドヌク レアーゼを用いる適当な組織源から単離することができる。ある場合には、５’ 側面配列の全長ヌクレオチド配列は知られていることがある。ここで、５’側面 配列は、核酸合成またはクローニングについて前述されている方法を用いて合成 することができる。 ５’側面配列の全てまたは一部のみが知られている場合、こ れは、ＰＣＲを用いることにより、および／または、適当なオリゴヌクレオチド および／または同じもしくはもう１つの種からの５’側面配列フラグメントを用 いてゲノムライブラリーをスクリーニングすることにより得ることができる。 ５’側面配列が知られていない場合、５’側面配列を含むＤＮＡのフラグメン トを、例えばコード配列または別の遺伝子さえ含み得るＤＮＡの大きな断片から 単離することができる。 単離は、適当なＤＮＡフラグメントを単離するために注意深く選択された１種ま たは２種以上の酵素を用いる制限エンドヌクレアーゼ消化により達成することが できる。消化後、所望のフ は当業者に知られている他の方法により単離することができる。この目的を達成 するための適当な酵素の選択は、当業者に容易に理解される。 複製要素の起源は、典型的には、市販の原核発現ベクターの一部であり、宿主 細胞内でのベクターの増幅を補助する。ベクターの特定コピー数までの増幅は、 ある場合には、ＮＮＴ−１ポリペプチドの最適発現に重要であり得る。選択され るベクターが複製部位の起源を含まない場合、それを既知の配列に基づ いて化学的に合成し、ベクター内に結合することができる。 転写終結要素は、典型的にＮＮＴ−１ポリペプチドコード配列の末端の３’に 位置し、ＮＮＴ−１ポリペプチドの転写を終結するように作用する。通常、原核 細胞内の転写終結要素は、ｐｏｌｙＴ配列が続くＧ−Ｃ富含フラグメントである 。要素は、容易にライブラリーからクローンされる、またはベタターの一部とし て市販さえされているが、前述のような核酸合成のための方法を用いて容易に合 成することもできる。 選択可能なマーカー遺伝子要素は、選択的培地中で成長した宿主細胞の生存お よび成長に必要なタンパク質をコードする。典型的な選択マーカー遺伝子は、（ ａ）原核宿主細胞についての抗体または他の毒素、例えばアンピシリン、テトラ サイクリン、またはカナマイシンに抵抗を与える、（ｂ）細胞の栄養要求欠損を 補う、または（ｃ）複合培地から得られない重要栄養を供給するタンパク質をコ ードする。好ましい選択性マーカーは、カナマイシン抵抗遺伝子、アンピシリン 抵抗遺伝子、およびテトラサイクリン抵抗遺伝子である。 一般的にシャイン−ダルガルノ配列（原核物質）またはコザク配列（真核物質 ）と呼ばれるリボソーム結合要素は、ｍＲＮＡ の翻訳開始に必要である。要素は、典型的に、合成すべきＮＮＴ−１ポリペプチ ドのプロモーターに対して３’の位置でコード配列に対して５’の位置に配され る。シャイン−ダルガルノ配列は変化するが、典型的にはポリプリンである（す なわち、高Ａ−Ｇ含量を有する）。多くのシャイン−ダルガルノ配列が同定され ており、その各々が前述の方法を用いて容易に合成され、原核ベクターにおいて 用いることができる。 ＮＮＴ−１が宿主細胞から分泌されることが望ましい場合、それが合成された 宿主細胞からＮＮＴ−１ポリペプチドを導き出すためにシグナル配列を用いるこ とができ、膜固着を防止するためにタンパク質のカルボキシ末端部分が欠失され 得る。典型的には、シグナル配列は、ＮＮＴ−１核酸配列のコード領域内に配置 される、またはＮＮＴ−１コード領域の５’末端に直接配置される。多くのシグ ナル配列が同定されており、選択された宿主細胞内において機能的である任意の ものをＮＮＴ−１遺伝子と一緒に用いることができる。従って、シグナル配列は ＮＮＴ−１ポリペプチドに相同または非相同であり得、ＮＮＴ−１ポリペプチド に相同または非相同であり得る。さらに、シグナル配列は、前述の方法を用いて 化学的に合成することがで きる。大部分の場合、シグナルペプチドの存在を介しての宿主細胞からのポリペ プチドの分泌により、ポリペプチドからアミノ末端メチオニンが除去される。Ｎ ＮＴ−１ポリペプチドの発現および分泌を行うために有用な分泌配列の例は、ｔ ＰＡリーダー配列（例えば、Ｒｉｃｋｌｅｓら著，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．第 ２６３巻，１５６３〜１５６０頁［１９８８年版］およびＦｅｎｇら著，Ｊ．Ｂ ｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．第２６５巻：２０２２〜２０２７頁［１９９０年版］を参照 ）、ＥＰＯリーダー配列およびカルジオトロフィンリーダー配列から選択される 。 多くの場合、ＮＮＴ−１ポリペプチドの転写は、ベクター上の１種または２種 以上のイントロンの存在により増加し；これは、特に、ＮＮＴ−１が、真核宿主 細胞、特に哺乳動物宿主細胞内で生成されるときにあてはまる。使用されるイン トロンは、特に用いられるＮＮＴ−１配列が全長ゲノム配列またはそのフラグメ ントである場合、ＮＮＴ−１核酸配列内に天然に発生し得る。イントロンがＮＮ Ｔ−１ＤＮＡ配列内で天然に発生しない場合（大部分のｃＤＮＡのように）、イ ントロンは別の源から得ることができる。イントロンは効果的に転写されなくて はならないので、５’側面配列およびＮＮＴ−１コード配列に対 するイントロンの位置が重要である。そのようであるので、ＮＮＴ−１核酸配列 がｃＤＮＡ配列の場合、イントロンについて好ましい位置は転写開始位置に対し て３’、およびｐｏｌｙＡ転写終結配列に対して５’である。ＮＮＴ−１ｃＤＮ Ａについて好ましくは、イントロンは、ＮＮＴ−１コード配列の一方または他方 （すなわち、５’または３’）に位置して、それによりこのコード配列を妨害し ない。任意のウイルス、原核および真核（植物または動物）有機体を含む任意の 源からの任意のイントロンを本発明の実施に用いることができるが、但し、それ が挿入される宿主細胞と適合性を有するものとする。ここで、合成イントロンも 含まれる。任意に、ベクター内に２種以上のイントロンを用いることができる。 用いられるベクター中に前述の１種または２種以上の要素が予め存在しない場 合、それらは個々に得られ、ベクター内に結合することができる。要素の各々を 得るために用いられる方法は、当業者に良く知られており、前述の方法（すなわ ち、ＤＮＡの合成、ライブラリーのスクリーニング等）に匹敵する。 本発明の実施に用いられる最終ベクターは、典型的に、市販のベクターのよう な開始ベクターから構築される。そのような ベクターは、完成されたベクター中に含まれるべき要素の要素の一部を含んでよ くも、含まなくてもよい。所望の要素が出発ベクター中に含まれない場合、結合 すべき要素の末端およびベクターの末端が結合に適するように適当な制限エンド ヌクレーゼを用いてベクターを切断することにより各要素を個々にベクター内に 結合させることができる。ある場合には、満足できる結合を得るために結合すべ き末端を平滑化（ｂｌｕｎｔ）することが必要な場合がある。平滑化は、全部で ４つのヌクレオチドの存在下にクレノウＤＮＡポリメラーゼまたはＴ４ＤＮＡポ リメラーゼを用いて最初に突出末端（ｓｔｉｃｋｙ ｅｎｄ）を埋めることによ り達成される。この手順は、当該分野において良く知られており、例えばＳａｍ ｂｒｏｏｋらの前記文献に記載されている。 また、ベクター内に挿入すべき要素の２種以上を、まず結合して一緒にし（そ れらが互いに隣接して位置する場合）、次にベクター内に結合してもよい。 ベクターを構築する１つの他の方法は、１つの反応混合物中において種々の要 素の全ての結合を同時に行うことである。ここで、多くのナンセンスまたは非機 能的ベクターが、要素の不 適当な結合または挿入により生成されるが、機能的ベクターは制限エンドヌクレ アーゼ消化により同定および選択することができる。 本発明を実施するのに好ましいベクターは、細菌、昆虫および／または哺乳動 物宿主細胞と適合性のあるベクターである。 そのようなベクターは、特に、ｐＣＲＩＩ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ Ｃｏｍｐａ ｎｙ製，サンディエゴ，カリフォルニア州）、ｐＢＳＩＩ（ｓｔｒａｔａｇｅｎ ｅ Ｃｏｍｐａｎｙ製，ラジョラ，カリフォルニア州）およびｐＥＴＬ（Ｂｌｕ ｅＢａｃＩＩ；Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ製）。 ベクターを組み立てＮＮＴ−１核酸をベクターの適当な部位に挿入した後、完 成されたベクターを、増幅および／またはＮＮＴ−１ポリペプチド発現のために 適当な宿主細胞内に挿入することができる。 宿主細胞は、原核宿主細胞（例えば、Ｅ．ｃｏｌｉ）または真核宿主細胞（例 えば、酵母細胞、昆虫細胞または脊椎動物細胞）であってよい。宿主細胞は、適 当な条件下で培養した場合、ＮＮＴ−１タンパク質を合成することができ、ＮＮ Ｔ−１タンパク質は続いて培地から（宿主細胞がそれを培地内に分泌する 場合）またはそれを生成する宿主細胞から直接（分泌しない場合）収集され得る 。収集後、ＮＮＴ−１タンパク質を、分子篩クロマトグラフィーおよび親和性ク ロマトグラフィー等のような方法を用いて精製することができる。 宿主細胞の選択は、ＮＮＴ−１タンパク質がグリコシル化されるかリン酸化さ れるか（この場合、真核宿主細胞が好ましい）に、および生物学的活性タンパク 質が細胞により調製されるように宿主細胞がタンパク質をその固有の３次構造（ 例えば、ジスルフィド橋の適当な配向）内に折り込み得る方法に部分的に依存す る。しかしながら、宿主細胞が生物学的活性ＮＮＴ−１を合成しない場合、ＮＮ Ｔ−１は、以下に記載の適当な化学的条件を用いて合成した後に“折り込まれ” 得る。 適当な細胞または細胞系は、チャイニーズハムスター卵巣細胞（ＣＨＯ）また は３Ｔ３細胞のような哺乳動物細胞であり得る。適当な哺乳動物宿主細胞の選択 、および形質転換、培養、増幅、スクリーニングおよび生成物の生成および精製 の方法は当該分野において知られている。他の適当な哺乳動物細胞系は、サルＣ ＯＳ−１およびＣＯＳ−７細胞系、およびＣＶ−１細胞系である。哺乳動物宿主 細胞のさらなる例は、形質転換した細 胞系を含む霊長類細胞系およびげっ歯類細胞系を含む。正常な２倍体細胞、一次 組織の生体外培地から誘導される細胞菌株、および一次外植体も好適である。使 用され得る細胞は、選択遺伝子において遺伝子型的に欠損、または主に作用して いる選択遺伝子を含み得る。他の適当な哺乳動物細胞系は、ＨｅＬａ、マウスＬ −９２９細胞、Ｓｗｉｓｓから誘導される３Ｔ３系、Ｂａｌｂ−ｃまたはＮＩＨ マウス、ＢＨＫまたはＨａＫハムスター細胞系を含むが、これらに限定されない 。 本発明に好適な宿主細胞として同様に有用なものは、細菌細胞である。例えば 、Ｅ．ｃｏｌｉの種々の菌株（例えば、ＨＢ１０１、ＤＨ５α、ＤＨ１０および ＭＣ１０６１）は、バイオテクノロジーの分野において宿主細胞として良く知ら れている。Ｂ．ｓｕｂｔｉｌｉｓ、Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｓｐｐ．、他のＢ ａｃｉｌｌｕｓ ｓｐｐ．、Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ ｓｐｐ．等の種々の菌 株もこの方法において用いることができる。 当業者に知られている酵母細胞の多くの菌株も、本発明のポリペプチドの発現 のための宿主細胞として利用することができる。さらに、要すれば、本発明の方 法において宿主細胞 として昆虫細胞を利用することができる（Ｍｉｌｌｅｒら著、Ｇｅｎｅｔｉｃ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ第８巻：２７７〜２９８頁［１９８６年版］）。 選択された宿主細胞内へのベクターの挿入（「形質転換」または「トランスフ ェクション」とも呼ばれる）は、塩化カルシウム、電気穿孔、マイクロインジェ クション、リポフェクションまたはＤＥＡＥデキストラン法のような方法を用い て達成することができる。選択される方法は、部分的に、使用すべき宿主細胞の タイプの関数である。これらの方法および他の適当な方法は、当業者に良く知ら れており、例えはＳａｍｂｒｏｏｋらの前記文献に記載されている。 ベクターを含む宿主細胞（すなわち、形質転換またはトランスフェクションさ れたもの）は、当業者に良く知られている標準的培地を用いて培養することがで きる。培地は、通常、細胞の成長および生存に必要な全ての栄養を含む。Ｅ．ｃ ｏｌｉ細胞を培養するために適当な培地は、例えば、Ｌｕｒｉａ Ｂｒｏｔｈ（ ＬＢ）および／またはＴｅｒｒｉｆｉｃ Ｂｒｏｔｈ（ＴＢ）である。真核細胞 を培養するために適当な培地は、ＲＰＭＩ１６４０、ＭＥＭ、ＤＭＥＭであり、 その全てが、要すれば、 培養すべき特定の細胞系により血清および／または成長因子を補足することがで きる。昆虫培地のために適当な培地は、要すればイーストレート（ｙｅａｓｔｏ ｌａｔｅ）、ラクトアルブミン加水分解産物および／またはウシ胎児血清を補足 したＧｒａｃｅ’ｓ培地である。 典型的には、形質転換細胞の選択的成長に有用な抗体または他の化合物のみを 補足として培地に添加する。使用すべき化合物は、それを用いて宿主細胞を形質 転換したプラスミド上に存在する選択可能なマーカー要素により誘導される。例 えば、選択可能なマーカー要素がカナマイシン抵抗性である場合、培地に添加さ れる化合物はカナマイシンである。 宿主細胞内で生成されるＮＮＴ−１ポリペプチドの量は、当該分野において知 られている標準的方法を用いて評価することができる。そのような方法は、制限 はされないが、ウエスタンブロット分析、ＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気 泳動、非変性ゲル電気泳動、ＨＰＬＣ分離、免疫沈降、および／または、ＤＮＡ 結合ゲルシフトアッセイのような活性アッセイを含む。 ＮＮＴ−１ポリペプチドが宿主細胞から分泌されるように設計されている場合 、細胞培地内において大部分のポリペプチド を見つけることができる。このように調製されたポリペプチドは、典型的に、ア ミノ末端メチオニンを有さない。何故なら、それは細胞からの分泌中に除去され るからである。しかしながら、ＮＮＴ−１ポリペプチドが宿主細胞から分泌され ない場合、それは、細胞質（真核生物グラム陽性細菌、および昆虫宿主細胞につ いて）中、または周辺質（グラム陰性細菌宿主細胞について）中に存在し、アミ ノ末端メチオニンを有し得る。 細胞内ＮＮＴ−１タンパク質について、宿主細胞は典型的には最初に機械的ま たは浸透圧により破壊されて細胞質内容物を緩衝溶液中に放出する。次に、ＮＮ Ｔ−１ポリペプチドをこの溶液から単離することができる。 溶液からのＮＮＴ−１ポリペプチドの精製は、種々の技術を用いて達成するこ とができる。カルボキシルまたはアミノ末端にヘキサヒスチジン（ＮＮＴ−１／ ｈｅｘａＨｉｓ）または他の小さなペプチドのようなのようなタグを含むように ポリペプチドを合成した場合、これは、カラムマトリクスがタグにまたは直接ポ リペプチドに高い親和性を有する親和性カラムを通して溶液を通過させることに より一段階プロセスにおいて実質的に精製することができる（ＮＮＴ−１を特異 的に認識するモノ クローナル抗体）。例えば、ポリヒスチジンは、大きな親和性で特異的にニッケ ルに結合する、すなわちニッケルの親和性カラム（例えばＱｉａｇｅｎニッケル カラム）を、ＮＮＴ−１／ｐｏｌｙＨｉｓの精製のために用いることができる（ 例えば、Ａｕｓｕｂｅｌら編，Ｃｕｒｒｅｎｔ ＰｒｏｔｏｃｏＴｓ ｉｎ Ｍ ｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ，セクション１０．１１．８，Ｊｏｈｎ Ｗ ｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ，ニューヨーク［１９９３年版］を参照）。 ＮＮＴ−１ポリペプチドがタグを有さず抗体が得られない場合、精製のための 他の良く知られている手順を用いることができる。そのような手順は、限定はさ れないが、イオン交換クロマトグラフィー、分子篩クロマトグラフィー、ＨＰＬ Ｃ、ゲル溶出と組み合わされた天然ゲル電気泳動、および分取等電点電気泳動（ 「Ｉｓｏｐｒｉｍｅ」機構／技術、Ｈｏｅｆｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ製）を 含む。ある場合には、これらの技術の２つ以上を組み合わせて高い純度を達成す ることができる。 精製のための好ましい方法は、ポリヒスチジン標識法、および分取等電点電気泳 動と組み合わされたイオン交換クロマトグラフィーを含む。 ＮＮＴ−１ポリペプチドが主に細菌の周辺質空間または真核細胞の細胞質中に 見つかることが予想されるなら、加工されたポリペプチドがそのような複合体を 形成する場合の封入体（例えば、グラム陰性細菌）を含む周辺質または細胞質の 内容物は、当業者に知られている標準的技術を用いて宿主細胞から抽出すること ができる。例えば、宿主細胞を、フレンチプレス、均質化および／または音波破 砕により破壊して周辺質の内容物を放出させることができる。次に、均質物を遠 心分離することができる。 ＮＮＴ−１ポリペプチドが周辺質中に封入体を形成する場台、封入体は内側お よび／または外側細胞膜に結合し得ることが多く、主に遠心分離後にペレット材 料中に見つかる。次に、封入体を放出、破壊分離および可溶化するために、ペレ ット材料を、グアニジンまたは尿素のようなカオトロピック剤で処理することが できる。ここで可溶状態になったＮＮＴ−１ポリペプチドを、次に、ゲル電気泳 動または免疫沈降等を用いて分析することができる。ＮＮＴ−１ポリペプチドを 単離することが望まれる場合、単離は、以下に記載およびＭａｒｓｔｏｎらの文 献（Ｍｅｔｈ．Ｅｎｚ．，第１８２巻：２６４〜２７５頁 ［１９９０年版］）に記載のような標準的方法を用いて達成することができる。 宿主細胞の周辺質内にＮＮＴ−１ポリペプチド封入体が有意な程度に形成され ない場合、細胞均質物の遠心分離後に主に上澄液中で見つかり、以下に記載のよ うな方法を用いて上澄液からＮＮＴ−１ポリペプチドを単離することができる。 ＮＮＴ−１ポリペプチドを部分的または完全に単離することが好ましい状況に おいて、精製は、当業者に良く知られている標準的方法を用いて達成することが できる。そのような方法は、限定はされないが、電気泳動による分離およびその 後の電気溶出、種々のタイプのクロマトグラフィー（免疫親和性、分子篩および ／またはイオン交換）、および／または高圧液体クロマトグラフィーを含む。あ る場合には、完全に精製するためにこれらの方法の２種以上を用いることが好ま しい。 Ｂ． 化学的合成法 組換えＤＮＡ技術を用いるＮＮＴ−１ポリペプチドの調製および精製に加えて 、Ｍｅｒｒｉｆｉｅｌｄらの文献（Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．，第８５巻： ２１４９頁［１９６４年版］）、Ｈｏｕｇｈｔｅｎらの文献（Ｐｒｏｃ Ｎａｔ ｌ Ａｃａｄ． Ｓｃｉ．ＵＳＡ，第８２巻：５１３２頁［１９８５年版］）ならびにＳｔｅｗａ ｒｔおよびＹｏｕｎｇの文献（Ｓｏｌｉｄ Ｐｈａｓｅ Ｐｅｐｔｉｄｅ Ｓｙ ｎｔｈｅｓｉｓ，Ｐｉｅｒｃｅ Ｃｈｅｍ Ｃｏ，ロックフォード，イリノイ州 ［１９８４年版］）により提示されるような当該分野で知られている方法を用い る化学的合成方法（例えば、固相ペプチド合成）によりＮＮＴ−１ポリペプチド 、フラグメントおよび／またはその誘導体を調製することができる。そのような ポリペプチドは、アミノ末端上のメチオニンを用いてまたは用いないで合成する ことができる。化学的に合成されたＮＮＴ−１ポリペプチドまたはフラグメント を、ジスルフィド橋を形成するための参考文献に提示されている方法を用いて酸 化することができる。ＮＮＴ−１ポリペプチドまたはフラグメントを、治療およ び免疫プロセスにおいて天然の精製ＮＮＴ−１ポリペプチドのための生物学的活 性または免疫代替物として用いることができる。 ＩＶ． 化学的に変性されたＮＮＴ−１誘導体 ＮＮＴ−１ポリペプチドがポリマーに結合（「ＮＮＴ−１−ポリマー」）され た化学的変性ＮＮＴ−１組成物（すなわち「誘導体」）が、本発明の範囲に含ま れる。選択されるポリマーは、 典型的には、それが結合するタンパク質が生理学的環境のような水生環境中にお いて沈殿しないように水溶性である。選択されるポリマーは、通常、アシル化の ための活性エステルまたはアルキル化のためのアルデヒドのような単一の反応性 基を有するように変性され、それにより重合度が、本方法において提供されるよ うに制御され得る。ポリマーは任意の分子量であってよく、分岐でも非分岐でも よい。ポリマーの混合物が、ＮＮＴ−１−ポリマーの範囲に含まれる。好ましく は、最終生成物製剤の治療的用途において、このポリマーは薬学的に許容できる 。 水溶性ポリマーまたはその混合物は、例えば、ポリエチレングリコール（ＰＥ Ｇ）、モノメトキシポリエチレングリコール、デキストラン、セルロース、また は他の炭水化物系ポリマー、ポリ（Ｎ−ビニルピロリドン）ポリエチレングリコ ール、プロピレングリコールホモポリマー、ポリプロピレンオキシド／エチレン オキシドコポリマー、ポリオキシエチル化ポリオール(例えば、グリセロール)お よびポリビニルアルコールからなる群より選択することができる。 アシル化反応のために、選択されるポリマーは、単一の反応性エステル基を有 すべきである。還元性アルキル化のために、 選択されるポリマーは単一の反応性アルデヒド基を有すべきである。好ましい反 応性アルデヒドは、水安定性のポリエチレングリコールプロピオンアルデヒド、 またはそのモノＣ１〜Ｃ１０アルコキシまたはアリーロキシ誘導体である（米国 特許第５，２５２，７１４号を参照）である。 ＮＮＴ−１のペギレーション（ｐｅｇｙｌａｔｉｏｎ）は、例えば以下の引例 に記載のような当該分野で知られている任意のペギレーション反応により行うこ とができる：Ｆｏｃｕｓｏｎ Ｇｒｏｗｔｈ Ｆａｃｔｏｒｓ第３巻：４〜１０ 頁（１９９２年版）；ＥＰＯ １５４ ３１６；およびＥＰ０４０１ ３８４。 好ましくは、ペギレーションは、以下に記載のように反応性ポリエチレングリコ ール分子（または、類似の反応性水溶性ポリマー）を用いるアシル化反応または アルキル化反応により行われる。 アシル化によるペギレーションは、通常、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ） の活性エステル誘導体とＮＮＴ−１タンパク質との反応を含む。既知のまたは続 いて発見された反応性ＰＥＧ分子を、ＮＮＴ−１のペギレーションを行うために 用いることができる。好ましい活性化ＰＥＧエステルは、Ｎ−ヒドロキシ スクシンイミド（「ＮＨＳ」）にエステル化されたＰＥＧである。ここで用いら れる「アシル化」という用語は、限定はされないが、Ｂｉｏｃｏｎｊｕｇａｔｅ Ｃｈｅｍ．第５巻：１３３〜１４０頁（１９９４年版）に記載のようにＰＥＧ のような水溶性ポリマーとＮＮＴ−１との間の以下の種類の結合：アミド、カル バメートおよびウレタン等を含むと考えられる。反応条件はペギレーション技術 において知られているものまたはその後に開発されたものから選択することがで きるが、但し、変性すべきＮＮＴ−１種を不活性化する温度、溶媒およびｐＨの ような条件は避けるものとする。 アシル化によるペギレーションは、通常、リシンε−アミノ基がアシル結合基 を介してペギル化されているポリペキル化ＮＮＴ−１生成物を発生させる。好ま しくは、結合はアミド結合である。また、得られる生成物の少なくとも約９５％ がモノ、ジまたはトリペギル化されていることも好ましい。しかしながら、ペギ ル化度が高い一部の種（ＮＮＴ−１のリシンε−アミノ酸基＋ＮＮＴ−１のアミ ノ末端における１つのアミノ基の最大数まで）は、通常、用いられる特定の反応 条件に依存する量で形成される。要すれば、特に透析、塩析、限外濾過、イオン 交換 クロマトグラフィー、ゲル濾過クロマトグラフィーおよび電気泳動を含む標準的 精製技術により混合物、特に未反応種から、より精製されたペギル化種を分離す ることができる。 アルキル化によるペギレーションは、通常、ＰＥＧの末端アルデヒド誘導体を 、還元剤の存在下に、ＮＮＴ−１のようなタンパク質と反応させることを含む。 ペギレーションの度合いに拘わらず、ＰＥＧ基は、好ましくは、−ＣＨ₂−ＮＨ −基を介してタンパク質に結合する。特に−ＣＨ₂−基に注目して、このタイプ の結合はここで「アルキル」結合と呼ぶ。 モノペギル化生成物を製造するための還元的アルキル化を介する誘導は、ＮＮ Ｔ−１の誘導に利用できる異なるタイプの第１アミノ基の異なる反応性（リシン 対Ｎ−末端）を開発する。典型的には、タンパク質のリン酸残基のε−アミノ基 とＮ−末端残基のα−アミノ基との間のＰＫ_aの相違を利用できるようにするｐ Ｈ（以下参照）において反応が行われる。そのような選択的誘導により、アルデ ヒドのような反応性基を含む水溶性ポリマーのタンパク質への結合は制御され： ポリマーとの共役は、主に、リシン側鎖アミノ基のような他の反応性基を大幅に 変性されることなくタンパク質のＮ−末端において生じる。本 発明は、ＮＮＴ−１−モノポリマータンパク質共役分子の実質的均質調製を提供 する（これは、ＮＮＴ−１タンパク質の実質的に単一位置においてのみ（すなわ ち、少なくとも約９５％の）ポリマー分子がＮＮＴ−１タンパク質に結合してい ることを意味する。）。より具体的には、ポリエチレングリコールを用いる場合 、本発明は、抗原性結合基を恐らく欠いていると共にＮＮＴ−１タンパク質に直 接結合しているポリエチレングリコール分子を有するペギル化ＮＮＴ−１タンパ ク質も提供する。 ここで用いるのに特に好ましい水溶性ポリマーは、ＰＥＧと略称されるポリエ チレングリコールである。ここで用いられるポリエチレングリコールという用語 は、モノ（Ｃ１〜Ｃ１０）アルコキシまたはアリーロキシポリエチレングリコー ルのような他のタンパク質を誘導するために用いられたＰＥＧを任意の形状を含 むことを意味する。 通常、化学的誘導は、生物学的活性物質を活性化ポリマー分子に反応させるた めに用いられる任意の適当な条件下に行うことができる。ペギル化ＮＮＴ−１を 調製する方法は、通常、（ａ）ＮＮＴ−１が１種または２種以上のＰＥＧ基に結 合される条件下にＮＮＴ−１ポリペプチドをポリエチレングリコール（例え ば、ＰＥＧの反応性エステルまたはアルデヒド誘導体）と反応させる工程、およ び（ｂ）反応生成物を得る工程を含む。通常、アシル化反応に最適の反応条件は 、既知のパラメーターおよび所望の結果に基づいて決められる。例えば、ＰＥＧ ：タンパク質の比が大きいほど、ポリペギル化生成物の割合が大きくなる。 モノポリマー／ＮＮＴ−１タンパク質共役分子の実質的に均質集合を生成する ための還元性アルキル化は、通常、（ａ）前記ＮＮＴ−１タンパク質のアミノ末 端におけるα−アミノ基を選択的に変性させるのに好適なｐＨにおいて、還元性 アルキル化条件下に、ＮＮＴ−１タンパク質を反応性ＰＥＧ分子を反応させる工 程；および（ｂ）反応生成物を得る工程を含む。 モノポリマー／ＮＮＴ−１タンパク質共役分子の実質的に均質の集合のために 、還元性アルキル化反応条件は、ＮＮＴ−１のＮ−末端に水溶性ポリマー部分を 選択的に結合させる条件である。そのような反応条件は、通常、リシンアミノ基 とＮ−末端におけるα−アミノ基との間のＰＫ_aの相違を提供する（ＰＫ_aは、ア ミノ基の５０％がプロトン化され５０％がプロトン化されないｐＨである）。ｐ Ｈは、用いるべきタンパク質へのポリマーの比にも影響を与える。通常、ｐＨが 低い場合、タンパク 質に対してかなり過剰のポリマーが望ましい（すなわち、Ｎ−末端α−アミノ基 の反応性がより低いと、最適条件の達成により多くのポリマーが必要とされる） 。ｐＨがより高いと、ポリマー：タンパク質比は同様に大きい必要はない（すな わち、より反応性の基が利用できると、必要とされるポリマー分子がより少なく なる。）。本発明の目的のために、ｐＨは、通常、３〜５、好ましくは４〜５の 範囲である。 もう１つの重要な考察は、ポリマーの分子量である。通常、ポリマーの分子量 がより高いと、タンパク質に結合し得るポリマー分子の数がより少なくなる。同 様に、これらのパラメーターを最適化する場合にはポリマーの分岐を考慮しなけ ればならない。通常、分子量がより高いと（または、より分岐していると）、ポ リマー：タンパク質比がより高い。通常、ここで考えられるペギル化反応におい て、好ましい平均分子量は約２ｋＤａ〜約１００ｋＤａである（「約」という用 語は、±１ｋＤａを意味する）。好ましい平均分子量は約５ｋＤａ〜約５０ｋＤ ａ、特に好ましくは約１２ｋＤａ〜約２５ｋＤａである。ＮＮＴ−１タンパク質 への水溶性ポリマーの比は、通常、１：１〜１００：１、好ましくは（ポリペギ レーションには）１：１〜２０：１、 および（モノペギレーションには）１：１〜５：１に及ぶ。 前述の条件を用いると、反応性アルキル化により、アミノ末端にα−アミノ基 を有するＮＮＴ−１タンパク質にポリマーが選択的に結合され、モノポリマー／ ＮＮＴ−１タンパク質共役体が実質的に均質に調製される。「モノポリマー／Ｎ ＮＴ−１タンパク質共役体」という用語は、ここで、ＮＮＴ−１タンパク質分子 に結合している単一ポリマー分子を含んでなる組成物を意味するために用いられ る。モノポリマー／ＮＮＴ−１タンパク質共役体は、好ましくは、Ｎ−末端に位 置するポリマー分子を有するが、リシンアミノ側基上には有さない。調製は、好 ましくは、９０％モノポリマー／ＮＮＴ−１タンパク質共役体を超え、より好ま しくは、９５％モノポリマー／ＮＮＴ−１タンパク質共役体を超え、観察され得 る分子の残りは未反応である（すなわち、タンパク質がポリマー部分を欠く）。 以下の例は、少なくとも約９０％のモノポリマー／タンパク質共役体および約１ ０％の未反応タンパク質の調製を提供する。モノポリマー／タンパク質共役体は 、生物学的活性を有する。 本還元性アルキル化のためには、還元剤は、水溶液中で安定で、好ましくは、 還元性アルキル化の初期プロセスにおいて形 成されるシッフ塩基のみを還元できなくてはならない。好ましい還元剤は、ホウ 水素化ナトリウム、シアノホウ水素化ナトリウム、ジメチルアミンボラン、トリ メチルアミンボランおよびピリジンボランからなる群より選択され得る。特に好 ましい還元剤は、シアノホウ水素化ナトリウムである。 溶媒、反応時間および温度等の他の反応パラメーター、および生成物の精製手 段は、水溶性ポリマーを用いるタンパク質の誘導に関する公表された情報に基づ いて決めることができる。 ポリマー−ＮＮＴ−１タンパク質共役分子の混合物は、前述のようなアシル化 および／またはアルキル化方法により調製することができ、その混合物に含まれ るモノポリマー／タンパク質共役体の割合を選択することができる。すなわち、 要すれば、結合する種々の数のポリマー分子（すなわち、ジ、トリ、テトラ等） と種々のタンパク質との混合物を調製し、本方法を用いて調製したモノポリマー ／ＮＮＴ−１淡白共役体材料と組み合わせることができる。 通常、本ポリマー／ＮＮＴ−１の投与により緩和または調整することができる 条件は、通常、ＮＮＴ−１分子のためにここに記載の条件を含む。しかしながら 、ここに開示のポリマー／ ＮＮＴ−１は、非誘導分子と比較して、さらなる活性、向上または低下した活性 、または他の特性を有し得る。 Ｖ．組合せ ＮＮＴ−１ポリペプチド類およびそのフラグメントは、化学的な改変が施され ているか否かにかかわらず、神経学的または免疫学的な系の異常を処置する際に 単独で用いることができ、あるいは他の薬学的組成物（例えば、神経栄養因子、 サイトカイン、インターフェロン、インターロイキン、増殖因子、抗生物質、抗 炎症剤、神経伝達物質受容体のアゴニストまたはアンタゴニスト、および／また は抗体など）と組み合わせて用いることができる。 ＶＩ．抗体 ＮＮＴ−１ポリペプチド類、そのフラグメントおよび／または誘導体を使用し て、標準的な方法によって作製される抗体を調製することができる。従って、Ｎ ＮＴ−１ポリペプチド類と反応する抗体は、そのような抗体の反応性フラグメン トと同様に本発明の範囲内であると見なされる。抗体は、ポリクローナル、ポリ クローナル、組換え、キメラ、単鎖および／または二重特異性であり得る。抗体 またはそのフラグメントは、典型的 には、「ヒト化」される。すなわち、患者に投与されたとき、抗体に対する免疫 反応を防止または最小限にするように調製される。抗体フラグメントは、本発明 のＮＮＴ−１と反応し得る任意のフラグメント（Ｆ_ab、Ｆ_ab，など）であり得る 。ハイブリドーマもまた本発明によって提供される。ハイブリドーマは、選択さ れた哺乳動物に抗原としてＮＮＴ−１またはそのフラグメントを与え、その後公 知の技術によって、哺乳動物の細胞(例えば、脾臓細胞)をある種のガン細胞と融 合し、不死化した細胞株を得ることによって作製される。そのような細胞株、お よび本発明のヒトＮＮＴ−１ポリペプチドの全体またはその部分に対する抗体を 作製するために用いられる方法もまた、本発明に含まれる。 抗体を治療的に使用して、ＮＮＴ−１がその受容体に結合することを阻害する ようにすることができる。抗体はさらに、標識された形態で、体液中のＮＮＴ− １の存在を検出するなどのインビボおよびインビトロでの診断目的に使用するこ とができる。 ＶＩＩ．治療組成物およびその投与 本明細書中で使用される用語の「有効量」および「治療有効 量」は、上記ＮＮＴ−１の１つまたは複数の生物学的活性を維持するのに必要な ＮＮＴ−１の量をいう。 様々な神経学的な異常または疾患を処置するための治療組成物は本発明の範囲 に含まれる。そのような組成物は、治療有効量のＮＮＴ−１ポリペプチドまたは そのフラグメント（それらはいずれも化学的に改変されていてもよい）を薬学的 に許容しうるキャリアとの混合物で含み得る。キャリア物質は、注射用の水、好 ましくは哺乳動物に投与するための溶液において一般的な他の物質が補充された 水であり得る。ＮＮＴ−１の治療化合物は、典型的には、精製されたＮＮＴ−１ ポリペプチドまたはフラグメント（それらは化学的に改変されていてもよい）を 、１つまたは複数の生理学的に許容しうるキャリア、賦形剤または希釈剤と一緒 に含む組成物の形態で投与される。中性に緩衝化された生理食塩水または血清ア ルブミンと混合された生理食塩水は、適切なキャリアの例である。製造物は、好 ましくは、適切な賦形剤（例えば、スクロース）を使用する凍結乾燥物として製 剤化される。他の標準的なキャリア、希釈剤および賦形剤を所望するように含む ことができる。代表的な組成物は、ＮａＣｌをさらに含み得るｐＨが約４．０〜 ４．５のクエン酸 緩衝液を含む。 ＮＮＴ−１組成物は、非経口的に全身投与することができる。あるいは、組成 物は、静脈内または皮下に投与することができる。全身投与される場合、本発明 において使用される治療組成物は、パイロジェンを含まない許容しうる非経口用 水溶液の形態であり得る。そのような薬学的に許容しうるタンパク質溶液の調製 は、ｐＨ、等張性および安定性などを十分考慮することによって当業者の範囲に 含まれる。 本発明を実施するために有用なＮＮＴ−１組成物の治療処方物は、貯蔵するた めに、所望の純度を有する選択された組成物を、必要に応じて生理学的に許容し うるキャリア、賦形剤または安定化剤と混合することによって、凍結乾燥塊また は水溶液の形態で調製することができる（Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ Ｐｈａｒｍ ａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ、第１８版、Ａ．Ｒ．Ｇｅｎｎａｒｏ編 、Ｍａｃｋ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｃｏｍｐａｎｙ［１９９０］）。許容しう るキャリア、賦形剤または安定化剤は、受容者に対して非毒性であり、用いられ る投与量および濃度で不活性であることが好ましく、下記の物質が含まれる：リ ン酸塩、クエン酸または他の有機酸塩などの緩 衝剤；アスコルビン酸などの抗酸化剤；低分子量ポリペプチド；血清アルブミン 、ゼラチンまたは免疫グロブリンなどのタンパク質；ポリビニルピロリドンなど の親水性ポリマー；グリシン、グルタミン、アスパラギン、アルギニンまたはリ ジンなどのアミノ酸；単糖類、二糖類および他の炭水化物（グルコース、マンノ ースまたはデキストリン類を含む）；ＥＤＴＡなどのキレート化剤；マンニトー ルまたはソルビトールなどの糖アルコール；ナトリウムなどの塩形成対イオン； および／または非イオン性界面活性剤（ツィーン（Ｔｗｅｅｎ）、プルロニック ス（Ｐｌｕｒｏｎｉｃｓ）類またはポリエチレングリコール（ＰＥＧ）など）。 インビボ投与するために使用され得るＮＮＴ−１組成物は無菌でなければなら ない。これは、滅菌ろ過膜を通してろ過することによって容易に行われる。ＮＮ Ｔ−１組成物を凍結乾燥するとき、このような方法を使用する滅菌化は、凍結乾 燥および再構成の前またはその後のいずれかで行うことができる。非経口投与さ れる組成物は、通常、凍結乾燥形態あるいは溶液で貯蔵される。 治療組成物は、一般に、無菌の取り出し部を有する容器、例 えば、皮下注射針によって突き通すことができる栓を有する静脈内溶液バッグま たはバイアルの中に入れられる。 組成物の投与経路は、公知の方法（例えば、経口、静脈内経路、腹腔内経路、 大脳内（実質内）経路、脳室内経路、筋肉内経路、眼内経路、心房内経路または 病巣内経路による注射または注入）によるか、あるいは必要に応じてカテーテル の使用を含み得る持続放出システムまたは埋め込みデバイスによる。所望する場 合には、組成物は、注入、ボーラス注射により、あるいは埋め込みデバイスによ り連続的に投与することができる。その代わりあるいはさらに、ＮＮＴ−１は、 移植によって局所的に、ＮＮＴ−１ポリペプチドが吸収されている膜、スポンジ または他の適切な物質の罹患領域に投与することができる。 埋め込みデバイスを使用する場合、デバイスは、任意の適切な組織または器官 の中に、例えば、脳室または脳実質の中に埋め込むことができる。ＮＮＴ−１の 送達は、ホーラスまたは連続的な投与、あるいは連続注入を使用するカテーテル によってデバイスから直接行うことができる。 ＮＮＴ−１ポリペプチドは持続放出処方物または持続放出調製物で投与するこ とができる。持続放出処方物の適切な例とし て、成形された物品（例えば、フィルムまたはマイクロカプセル）の形態の半透 過性ポリマーマトリックスか挙げられる。持続放出マトリックスには、ポリエス テル、ハイドロゲル、ポリラクチド（米国特許第３，７７３，９１９号、欧州特 許第５８，４８１号）、Ｌ−グルタミン酸とγ−エチル−Ｌ−グルタミンとのコ ポリマー（Ｓｉｄｍａｎら．、Ｂｉｏｐｏｌｙｍｅｒｓ、２２：５４７−５５６ ［１９８３］）、ポリ（２−ヒドロキシエチルメタクリレート）（Ｌａｎｇｅｒ ら．、Ｊ．Ｂｉｏｍｅｄ．Ｍａｔｅｒ．Ｒｅｓ．、１５：１６７−２７７［１９ ８１］およびＬａｎｇｅｒ、Ｃｈｅｍ．Ｔｅｃｈ．、１２：９８−１０５［１９ ８２］）、エチレンビニルアセテート（Ｌａｎｇｅｒら．、上記）、またはポリ −Ｄ（−）−３−ヒドロキシ酪酸（欧州特許第１３３，９８８号）が含まれる。 持続放出組成物にはまた、リポソームが含まれる。リポソームは、当該分野で公 知ないくつかの方法のいずれかによって調製することができる（例えば、ドイツ 国特許第３，２１８，１２１号；Ｅｐｓｔｅｉｎら．、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａ ｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ、８２：３６８８−３６９２［１９８５］；Ｈｗａｎｇ ら．、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ、７７：４０３０−４０ ３４［１９８０］； 欧州特許第５２，３２２号；欧州特許第３６，６７６号；欧州特許第８８，０４ ６号；欧州特許第１４３，９４９号）。 場合によっては、ＮＮＴ−１組成物をエクスビボ様式で、すなわち、患者から取 り出され、次いでその後患者に戻された細胞または組織を処置するために使用す ることが望ましいと考えられる。 他の場合においては、ＮＮＴ−１は、ＮＮＴ−１ポリペプチドを発現して分泌 するように遺伝子操作されたある種の細胞を患者に移植することによって送達す ることができる。そのような細胞は、動物またはヒトの細胞であってもよく、患 者自身の組織に由来し得るか、あるいは別の供給源（ヒトまたは非ヒトのいずれ か）に由来し得る。必要な場合には、細胞を不死化することができる。細胞は、 脳、副腎、あるいは患者の他の適切な身体組織または器官に移植することができ る。 ある種の状況においては、遺伝子治療法を使用して、いくつかの神経学的また は免疫学的な異常を患っている患者にＮＮＴ−１を投与することが望ましいと考 えられる。このような状況において、ＮＮＴ−１またはそのフラグメントまたは その変化種をコードするゲノムＤＮＡ、ｃＤＮＡおよび／または合成 ＤＮＡは、組成物が注射される組織において活性な構成的または誘導的なプロモ ーターに作動可能に連結することができる。このようなＮＮＴ−１構築物は、ベ クターに挿入されているかまたはベクターを用いずに単独で、脳または他の組織 （ニューロンまたは非ニューロンのいずれか）に直接注射することができる。 あるいは、ＮＮＴ−１のＤＮＡ構築物は、ＮＮＴ−１のＤＮＡが筋肉組織にお いて活性なプロモーター（サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）プロモーター、ラウ ス肉腫ウイルス（ＲＳＶ）プロモーター、または筋肉のクレアチンキナーゼプロ モーターなど）に作動可能に連結されている場合、ＮＮＴ−１のＤＮＡ構築物が 細胞に取り込まれて細胞内で発現し得る筋肉組織に直接注射することができる。 ＤＮＡ構築物は、典型的には、（ＮＮＴ−１ ＤＮＡおよびプロモーターに加え て）、アデノウイルスベクター、アデノ関連ウイルスベクター、レトロウイルス ベクター、および／またはヘルペスウイルスベクターなどのベクターから得られ るベクター配列を含むことができる。ベクター／ＤＮＡ構築物は、注射用の薬学 的に許容しうるキャリアと混合することができる。 治療的に用いることができるＮＮＴ−１組成物の有効量は、例えば、ＮＮＴ− １が使用されている適応症などの治療目的、投与経路および患者の状態に依存す る。従って、治療専門家は、最適な治療効果を得るために必要とされるように投 与の力価を測定し、投与経路を改変することが必要である。代表的な日用量は、 上記の要因に依存して、約０．１μｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇあるいはそれ以上 の範囲であり得る。臨床医は、典型的には、所望の効果が達成される投与量に達 するまでＮＮＴ−１組成物を投与する。従って、ＮＮＴ−１組成物は、単回用量 で、あるいは時間をかけて２回以上の用量（これは同じ量のＮＮＴ一１を含有し てもよいし、あるいは含有しなくてもよい）で、あるいは埋め込みデバイスまた はカテーテルによる連続的な注入として投与することができる。 研究をさらに行うと、様々な患者の様々な状態を処置するために必要な適切な 投与レベルに関する情報が得られる。当業者は、治療状況、処置されている異常 のタイプ、受容者の年齢および全身の健康状態を考慮して、適正な投与を決定す ることができる。 ＶＩＩＩ．ＮＮＴ−１で処置され得る状態 ＮＮＴ−１タンパク質類、そのフラグメントおよび／または誘導体を利用して 、ＮＮＴ−１の発現パターンの変化と関連し得るか、あるいはＮＮＴ−１または 抗ＮＮＴ−１抗体に曝すことから利益を受け得る中枢神経系または末梢神経系の 疾患および異常を処置することができる。 ＮＮＴ−１タンパク質および／またはそのフラグメントもしくは誘導体を使用 して、中枢神経系、自律神経系または末梢神経系の様々な細胞が、先天的な疾患 、外傷、機械的な損傷、手術、発作、虚血、感染、代謝性疾患、栄養不足、悪性 腫瘍、および／または毒性薬剤による変性および／または損傷を受けている患者 を処置することができる。より詳細には、ＮＮＴ−１タンパク質のレベルを、下 記のような適用症に対して調節（アップレギュレーションまたはダウンレギュレ ーション）することができる：アルツハイマー病、パーキンソン病、筋萎縮性側 索硬化症、シャルコー−マリー−トゥース（Ｃｈａｒｃｏｔ−Ｍａｒｉｅ−Ｔｏ ｏｔｈ）症候群、ハンチントン病、糖尿病または他の代謝異常によって誘導され る末梢神経障害、および／または神経網膜のジストロフィーまたは変性（色素性 網膜炎、薬物によって誘導される網膜障害、定常型の夜盲症、および進 行性錐体変性症など）など。ＮＮＴ−１はまた免疫系細胞において発現している ので（下記の実施例Ｖを参照のこと）、免疫異常によって引き起こされる疾患を 処置することもまた有用であると考えられる。さらに、ＮＮＴ−１はまた造血細 胞において発現しているので（下記の実施例Ｖを参照のこと）、造血系の異常に よって引き起こされる疾患を処置することもまた有用であると考えられる。 ＮＮＴ−１タンパク質類に加えて、そのフラグメントおよび／または誘導体を 利用して、Ｂ細胞および／またはＴ細胞、好ましくは、Ｂ細胞を含む免疫学的な 系の疾患および異常を処置することができる。本明細書中の実施例ＩＸ〜実施例 ＸＩに示すように、ＮＮＴ−１は、Ｂ細胞の刺激活性を有し、そしてそれより小 さい程度ではあるがＴ細胞産生の刺激活性を有する。 いくつかの原発性の体液性免疫不全は、本発明の因子の潜在的な標的である。 いくらか稀ではあるが、このような疾患はすベて慢性であり、長期間の処置を必 要とする。第１のものは、分類不能型免疫不全すなわちＣＶＩＤである。これは 、循環しているＢ細胞のレベルがほぼ正常であることを特徴とするが、Ｂ細胞は 免疫グロブリン産生細胞に正しく分化する能力を喪失 している。ＣＶＩＤのヒトは、再発性の細菌感染に罹りやすい。 ＮＮＴ−１が標的とする別の疾患は、選択的なＩｇＡ欠損である。これはまた 、通常は肺、胃腸管および泌尿生殖管に限定される再発性の感染をもたらす。選 択的なＩｇＡ欠損は、人口中の有病率が０．０３％〜０．９７％の間であるこの ような疾患のよりありふれたものの１つである。 ＮＮＴ−１が標的とする他の疾患には、様々な形態の低ガンマグロブリン血症 、Ｘ連鎖無低ガンマグロブリン血症、および／またはこれらの疾患の１つに関連 する状態（再発性感染、腎不全またはジアルジア鞭毛虫症など）が含まれる。Ｃ ｌｉｎ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．ａｎｄ Ｉｍｍｕｎｏｐａｔｈ．、４０(１)：１３− ２４［１９８６］を参照のこと。 いくつかのワクチンに対する体液性免疫応答を高めることは、ＮＮＴ−１ポリ ペプチド類に関する別の使用であると考えられる。例えば、経口ワクチンを投与 した後の抗体産生は十分でないことが多く、従って、限られた期間保護される。 ワクチン接種時の抗体産生を改善するためのアジュバントとしてＮＮＴ−１を使 用することが考えられる。 ＬＰＳによって誘導されるＴＮＦ−α産生の阻害におけるそ の能力のために、ＮＮＴ−１は敗血症の処置において使用することができる。生 物学的応答改変剤に基づく多くのアプローチは、この重要な臨床的問題を解決す るために、何ら納得できるほど有効であることは明らかにされていないが、他の 候補となる治療が失敗した場合、ＮＮＴ−１が成功し得る可能性は依然として存 在している。ジャリシュ−シュワルツマン（Ｊａｒｉｓｈ−Ｓｃｈｗａｒｚｍａ ｎｎ）反応は、敗血症に類似し、厳密にはＴＮＦの毒性作用の結果である臨床的 な状態である。抗ＴＮＦ抗体の使用は、この状態の処置に対する臨床的に成功し たアプローチであることが明らかにされた。これは、ＮＮＴ−１がその抗ＴＮＦ 特性および抗炎症特性による臨床的な示し得る状態である。 ＩＸ．ＮＮＴ−１阻害剤についてスクリーニングするためのアッセイ ある種の状況においては、ＮＮＴ−１活性を阻害するか、またはそのレベルを 著しく低下させることは望ましいことであると考えられる。ＮＮＴ−１活性を阻 害する化合物は、エクスビボ様式、あるいは局所注射もしくは静脈内注射による かまたは経口送達もしくは埋め込みデバイスなどによるインビボ様式の いずれかで投与することができる。下記のアッセイは、ＮＮＴ−１活性を阻害し 得る化合物を同定するために有用な方法の例である。 理解しやすくするために、下記の定義を、アッセイを説明するために本明細書 中で使用する。 「試験分子」は、評価のもとで、典型的にはＮＮＴ−１とその受容体との相互 作用を阻止するその潜在的な能力による、ＮＮＴ−１の阻害剤としての分子をい う。 ＮＮＴ−１受容体は、例えば、標識された（例えば、ヨード化された）ＮＮＴ −１を使用する発現クローニングによって単離することができる。 精製されたタンパク質を使用するいくつかのタイプのインビトロアッセイは、 ＮＮＴ−１活性を破壊する化合物を同定するために行うことができる。そのよう な破壊は、典型的にはＮＮＴ−１とその受容体との相互作用を阻害する化合物に よって達成することができる。 １つのアッセイにおいて、精製されたＮＮＴ−１タンパク質またはそのフラグ メント（例えば、上記の方法を使用して調製される）は、マイクロタイタープレ ートのウエルの底に結合さ せることによって固定化することができる。次いで、放射能標識されたＮＮＴ− １受容体ならびに試験化合物は、一度にあるいは同時にウエルに添加することが できる。インキュベーション後、ウエルを洗浄し、シンチレーションカウンター を使用して放射能を計数し、試験化合物の存在下でのＮＮＴ−１／受容体結合の 程度を決定することかできる。分子は、典型的には、ある範囲の濃度にわたって 試験される。試験アッセイの１つまたは複数の要素を有しない一連のコントロー ル「ウエル」を使用して、結果を精確に評価することができる。このようなアッ セイの１つの変法は、受容体のウエルへの結合、および放射能標識されたＮＮＴ −１を試験化合物と一緒にウエルに加えることを含む。インキュベーションおよ び洗浄の後に、ウエルを放射能について計数することができる。 放射能標識を含むいくつかの手段は、ＮＮＴ−１に「目印を付ける」ために用 いることができる。例えば、ＮＮＴ−１タンパク質は、１２５−Ｉまたは３５− Ｓを使用して放射能標識することができる。あるいは、ＮＮＴ−１の融合タンパ ク質がある。この場合、ＮＮＴ−１をコードするＤＮＡは、ｃ−ｍｙｃエピトー プなどのペプチドのコード配列に融合される。ＮＮＴ −１−ｍｙｃ融合タンパク質は、ｍｙｃに対する市販の抗体を用いて容易に検出 することができる。 マイクロタイタープレートタイプの結合アッセイの代替法は、ＮＮＴ−１また はその受容体のいずれかをアガロースビーズ、アクリル酸ビーズまたは他のタイ プのそのような不活性基質に固定化することを含む。ＮＮＴ−１またはその受容 体を含有する不活性基質は、試験化合物を、放射能標識または蛍光標識が行われ た相補的成分（受容体またはＮＮＴ−１タンパク質のいずれか）と一緒に含有す る溶液に入れることができる；インキュベーション後、不活性基質は遠心分離に よって沈澱させることかでき、ＮＮＴ−１と受容体との問の結合量を、上記の方 法を使用して評価することができる。あるいは、不活性基質複合体はカラム内に 固定化することができ、試験化合物および相補成分をそのカラムに通すことがで きる。次いで、ＮＮＴ−１／受容体複合体の形成を、上記の技術のいずれか（す なわち、放射能標識または抗体結合など）を使用して評価することができる。 ＮＮＴ−１活性を阻害する分子を同定するために有用な別のタイプのインビト ロアッセイは、表面プラスモン共鳴検出器を 使用し、製造者のプロトコルに従うＢｉａｃｏｒｅアッセイシステム（Ｐｈａｒ ｍａｃｉａ、Ｐｉｓｃａｔａｗａｙ、ＮＪ）である。このアッセイは、検出器内 に置かれているデキストランコーティングのセンサーチップにＮＮＴ−１または その受容体のいずれかが共有結合することを本質的に含む。次いで、試験分子お よび相補的成分は、センサーチップを含有するチャンバー内に、同時にまたは連 続的に注入することができる。ＮＮＴ−１／受容体の結合量は、センサーチップ のデキストランコーティング面と物理的に結合した分子量の変化に基づいて評価 することができる；分子量の変化は検出器システムによって測定することができ る。 いくつかの場合において、ＮＮＴ−１活性を低下させるかまたは阻害するとき に使用するためには、２つ以上の試験分子を一緒に評価することが望ましいと考 えられる。このような場合において、上記のアッセイは、そのようなさらなる試 験化合物を、最初の試験化合物と同時に、あるいは最初の試験化合物に引き続い て添加することによって容易に改変することができる。このアッセイの残りの工 程は上記の通りであり得る。 Ｘ．トランスジェニック哺乳動物 ＮＮＴ−１のヒト等価物をコードする遺伝子（または遺伝子群）が破壊され（ 「ノックアウトされ」）、その結果この遺伝子の発現レベルが著しく低下してい るかまたは完全になくなっているマウス、ラット、ウサギ、ヤギまたはヒツジな どの非ヒト哺乳動物もまた、本発明の範囲内に含まれる。そのような哺乳動物は 、米国特許第５，５５７，０３２号に記載される技術および方法などの技術およ び方法を使用して調製することができる。本発明はさらに、ＮＮＴ−１（哺乳動 物の天然型ＮＮＴ−１遺伝子または異種のＮＮＴ−１遺伝子のいずれか）をコー ドする遺伝子（または遺伝子群）が哺乳動物によって過剰発現し、それによって 「トランスジェニック」哺乳動物が作製されるマウス、ラット、ウサギ、ヤギま たはヒツジなどの非ヒト哺乳動物を含む。そのようなトランスジェニック哺乳動 物は、米国特許第５，４８９，７４３号およびＰＣＴ特許出願ＷＯ９４／２８１ ２２（１９９４年１２月８日発行）に記載される方法などの公知の方法を使用し て調製することができる。 下記の実施例は、例示目的のためにのみ意図され、いかなる点においても本発 明の範囲を限定するものとして解釈してはならない。 実施例 ライブラリー調製、ＤＮＡクローニングおよびタンパク質発現に関する標準的 な方法は、Ｓａｍｂｒｏｏｋら．（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ 、ＮＹ［１９８９］）およびＡｕｓｕｂｅｌら．編（Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔ ｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ、Ｗｉｌｅｙ、Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ、ＮＹ［１９９５］）に説明されている。実施例Ｉ：ＮＮＴ−１のｃＤＮＡおよびゲノムクローンのクローニング Ａ．ｃＤＮＡライブラリーの構築 ヒトＴ細胞リンパ腫細胞（Ｊｕｒｋａｔ細胞）を、３７℃で、５％ＣＯ₂下、 １０％ウシ胎児血清を含有するＰＲＭＩ４００培地で増殖させた。培地は、１０ ｍＭ ＨＥＰＥＳ（ｐＨ７．５）で緩衝化された。８代の継代培養の後に細胞を ２群に分けた。１群をコンフルエンスに達するまで増殖させ（２×１０⁷細胞／ フラスコ）、この細胞から集めたＲＮＡは「ドライバー」ＲＮＡ として役に立った。もう１群は「テスター」群であり、下記の処置を用いて活性 化した。 細胞を、８０ｎｇ／ｍｌのスーパー抗原の連鎖球菌エンテロトキシンＢおよび Ｆ（ＴＳＳＴ）；５０ｎｇ／ｍｌのＰＫＣ活性化剤ＰＭＡ；１２５ｎｇ／ｍｌの カルシウムイオノフォアＡ２１８３２を添加することによって８時間活性化した 。タンパタ質翻訳阻害剤のシクロヘキシミドもまた、１ｍｇ／ｍｌの濃度で添加 した。ＲＮＡを、異なる群の細胞から異なる時間で集めた。 １．全ＲＮＡの調製： 細胞を、３００×ｇで５分間遠心分離することによってペレット化し、ＰＢＳ （リン酸緩衝化生理食塩水）で洗浄し、Ｕｌｔｒａｓｐｅｃ ＩＩ（Ｂｉｏｔｅ ｘ，Ｉｎｃ．、ＴＸ）中に５×１０⁶細胞／ｍｌ（Ｕｌｔｒａｓｐｅｃ ＩＩ） の濃度で再懸濁した。次いで、細胞を、２１ゲージのシリンジに４回通して溶解 した。ホモジネートを氷上で１５分間インキュベーションし、その後０．２容量 のクロロホルムを加え、十分に混合し、氷上でさらに１０分間インキュベーショ ンし、３０ｍｌのコレックス（ｃｏｒｅｘ）チューブで、１２０００×ｇで３０ 分間遠心分離した。遠心分離後、上清を取り出し、残渣を廃棄した。単離キット の一部としてＢｉｏｔｅｘによって販売されているＲＮＡ結合性樹脂の０．０５ 容量を、０．５容量のイソプロパノールを添加した後に流加した。速心分離（３ ００×ｇ、５分問）によって樹脂をペレット化した後に、ＲＮａｓｅを含まない ７５％エタノールで樹脂を２回洗浄し、５０℃で１０分間風乾した。次いで、Ｒ Ｎａｓｅを含まない１容量の水に樹脂を再度懸濁し、１分間激しく攪拌し、次い で１３０００×ｇで１分間遠心分離することによって全ＲＮＡを樹脂から溶出し た。その後、全ＲＮＡを新しいエッペンドルフに移し、樹脂ペレットを廃棄した 。 ２．ポリ（Ａ）⁺ＲＮＡの単離： ＱｉａｇｅｎのオリゴテックスｍＲＮＡ単離システムを、製造者の説明に従っ て使用した；その手順を２回繰り返して、純粋なポリ（Ａ）⁺ＲＮＡを得た。こ れは、ランダムプライム化ライブラリーにおいてｃＤＮＡ中のリボソームＲＮＡ のコピー数を最小限にするためには特に重要である。次いで、ｍＲＮＡの完全性 を、分光学およびホルムアルデヒド変性ゲル電気泳動の両方によって調べた。 最初のストランドｃＤＮＡをＢＲＬのｃＤＮＡ合成プロトコルに従って合成し た。標的ｃＤＮＡから残存ｍＲＮＡを除くために、この最初のストランドｃＤＮ Ａ反応物を、フェノール／クロロホルムによって抽出し、２Ｍ酢酸アンモニウム および３容量のエタノールで沈澱させた。次いで、ｃＤＮＡ／ｍＲＮＡのハイブ リッドを、２ｍＭ ＥＤＴＡが存在する０．３Ｍ ＮａＯＨに再度懸濁し、６８ ℃で１５分間インキュベーションした。加水分解反応を、１．５Ｍの過剰の純粋 なＴｒｉｓ ＨＣｌを用いて中和した。次いで、ｃＤＮＡを、フェノール／クロ ロホルムによって抽出し、２Ｍ酢酸アンモニウムおよび３容量のエタノールで沈 澱させ、７５％エタノールで洗浄し、７ｍｌの滅菌水に再度葱濁した。この単一 ストランドｃＤＮＡを、Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ Ｍａｎｎｈｅｉｍテイリングキ ットのプロトコルに従ってテイル処理した。 ３．ドライバーｍＲＮＡ調製およびホトビオチン化反応： ポリ（Ａ）ＲＮＡを上記のように単離した。次いで、約２０ｍｇを、２０ｍｇ のホトビオチンアセテート（Ｓｉｇｍａ）を用いて２回ホトビオチン化し、ＲＮ ａｓｅを含まない水に１ｍｇ／ｍｌの濃度で再構成した。過剰のホトビオチンを 、水飽和イ ソブタノールを用いて除き、エタノール沈澱を行い、３０ｍｌのＤＥＰＣ処理水 に再度懸濁した。 ４．サブトラクティブハイブリダイゼーション反応： ホトビオチン化したドライバーｍＲＮＡをテスターｃＤＮＡと同時に沈澱させ 、ＲＮａｓｅを含まない２ｍｌの水に再度懸濁した。核酸を溶液に移行させるた めに、沈澱物を、時々穏やかに攪拌しながら室温で数時間放置し、その後６８℃ でさらに２０時間インキュベーションした。ホトビオチン化したドライバーを溶 解して最終濃度を２ｍｇ／ｍｌにした。一般に、ドライバーＲＮＡの濃度は、少 なくとも１ｍｇ／ｍｌで使用すべきである。 ５．ハイブリダイゼーション後のハイブリッドの除去： ハイブリダイゼーション後、ストレプトアビジンを０．２ｍｇ／ｍｌの最終濃 度に加え、室温で１０分間インキュベーションした。次いで、ストレプトアビジ ンを、フェノール／クロロホルム抽出によって除いた。抽出後、ｃＤＮＡをエタ ノールで沈澱させた。 １対のプライマー：ＡＧＣＧＣＴＡＣＧＧＴＣＧＡＣＣＣＧ ＧＣＧ ＴＴＴ ＴＴＴ ＴＴＴ ＴＴＴ ＴＴＴ ＴＴＴ ＴＴＴ （ＡＣＧ）Ｘ（配列番号１５）（ＳａｌＩ Ｔ２１アンカープライマー ）およびＧＧＡ ＡＧＧ ＡＡＡ ＡＡＡ ＧＣＧ ＧＣＣ ＧＣＴ ＡＣＡ（ 配列番号１６）（ＮｏｔＩＮ９プライマー）をＰＣＲにおいて使用して、ｃＤＮ Ａを増幅した。使い捨て式のＰＣＲキットを使用した。１５サイクルを行って、 ゲル分画法に関して十分な物質が得られ、等しいサイズのものがライブラリーに おいて示された。最初のプライマーをアニーリングさせるために、ＰＣＲの最初 の５サイクルのアニーリング温度は、３５℃で１分間実施した。異なるサイズ画 分を示すｃＤＮＡをゲルで分画した。ＳａｌＩアダプターを二重鎖ｃＤＮＡに加 え、次いでこれをＮｏｔＩで消化してｐＳｐｏｒｔベクターにクローン化した。 Ｂ．ｃＤＮＡクローンの単離 ライブラリーを発現配列タグ（ｅｓｔ）分析によってスクリーニングした。こ のライブラリーから得られた個々のクローンを無作為に選び、ベクタープライマ ーおよびＴａｑ色素ターミネーターの反応を使用するＡｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓ ｙｓｔｅｍｓ３７３Ａ自動配列決定機（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ ）で配列決定を行った。無作為に選んだクローンＮＮＴ−１から 得られた最終ヌクレオチド配列を翻訳し、次いでＦＡＳＴＡプログラムの改変版 を使用して、既知のタンパク質配列の既存データベースと比較した。 １つのクローン（ｋｈｊ１−００００８−ｆ２）は、翻訳されたアミノ酸配列 レベルでＣＮＴＦと約２１％の相同性を有する。このｃＤＮＡクローンの挿入物 全体を配列決定し、全長のクローンをコードしていることを見出した。すなわち 、それは、５’末端でのＭｅｔおよびＭｅｔの上流での１つの停止コドンおよび ３’末端での別の停止コドンを含有する。 この全長ｃＤＮＡの配列を図１に示す。タンパク質の予想アミノ酸配列を図３ に示す。推定のシグナルペプチドがアミノ酸−２７（Ｍｅｔ）〜アミノ酸−１（ Ａｌａ）に拡がっていた。 Ｃ．ゲノムクローンの単離 ＮＮＴ−１のゲノムＤＮＡをヒトのゲノムＰ１ライブラリー（Ｇｅｎｏｍｅ Ｓｙｓｔｅｍｓ Ｔｎｃ．、ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ；カタログ番号Ｐ１−２５ ３５）から得た。このライブラリーを、ＮＮＴ−１ｃＤＮＡをプローブとして使 用してスクリーニングした。ｃＤＮＡを、Ａｍｅｒｓｈａｍ Ｒｅｄｉｐｒｉｍ ｅキット（Ａｍｅｒｓｈａｍ、Ａｒｌｉｎｇｔｏｎ Ｈｅｉｇｈｔｓ、 ＩＬ；カタログ番号ＲＰＮ−１６３３）を使用して放射能標識した。ハイブリダ イゼーション溶液およびプレハイブリダイゼーション溶液は下記の通りであった ：５０％ホルムアミド、５×ＳＳＣ、５×デンハルト溶液、０．０５％ピロリン 酸ナトリウム、０．１％ＳＤＳ、および１００ｍｇ／ｍｌサケ精子ＤＮＡ。プレ ハイブリダイゼーションは４２℃で約１時間であり、ハイブリダイゼーションは ４２℃で約１６時間であった。 ハイブリダイゼーション後、フィルターを０．２×ＳＳＣおよび０．１％ＳＤ Ｓで、４２℃で約３０分間洗浄し、次いでフィルムに感光させた。２つの陽性ク ローンが確認され、これらのクローンを含有するプラスミドをＧｅｎｏｍｅ Ｓ ｙｓｔｅｍｓ Ｉｎｃ．のプロトコルに従って精製した。次いで、プラスミドＤ ＮＡを直接配列決定した。 ＮＮＴ−１をコードするゲノム配列を図２に示す（配列番号３）。この遺伝子 は、３つのエキソンおよび２つのイントロンから構成されている。コード領域を 大文字で表す。一方、５’非翻訳領域、イントロンおよび３’非翻訳領域を含む 非コード領域を小文字で表す。実施例ＩＩ：ＮＮＴ−１の組換え哺乳動物タンパク質の調製 ヒトＮＮＴ−１ｃＤＮＡおよびフラッグ標識ペプチドを含有する発現ベクター を、融合遺伝子のＰＣＲ増幅によって構築した。５’末端にＨｉｎｄＩＩＩ部位 を有するセンスプライマーを下記に示す： （５’−ＡＧＣＡＡＧＣＴＴＣＡＣＣＡＴＧＧＡＣＣＴＣＣＧＡＧＣＡＧＧＧＧ ＡＣＴＣ−３’）（配列番号６） これは、アミノ酸−２７（Ｍｅｔ)〜アミノ酸−２１（Ａｓｐ）をコードする。 ５’末端にＮｏｔＩ部位を有し、フラッグ標識ペプチドおよび３’末端の最後の ８アミノ酸をコードするアンチセンスプライマーを下記に示す： （５’ＡＧＣＧＧＧＧＣＣＧＣＡＣＴＡＣＴＴＧＲＣＡＴＣＧＴＣＧＲＣＧＴＣ ＣＴＴＧＴＡＣＴＣＧＡＡＧＣＣＡＴＧＡＧＣＣＣＣＣＡＧＧＴＧＣＡＧ−３’ ）（配列番号７） これらのプライマーをＰＣＲにおいて使用して、融合遺伝子を増幅した。融合遺 伝子をＰＣＥＰ４ベタター（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ Ｔｎｃ．、Ｓａｎ Ｄｉｅ ｇｏ、ＣＡ）に連結した。この発現ベクターを、製造者が推奨する方法を使用し て、リポフェクチン（ＢＲＬ、Ｇａｉｔｈｅｒｓｂｕｒｇ、ＭＤ）を用 いてＥＢＮＡ−１ ２９３細胞にトランスフェクションした。トランスフェクシ ョンの４８時間後、２９３細胞およびその順化培地の両方を集め、抗フラッグ標 識抗体（Ｅａｓｔｍａｎ Ｋｏｄａｋ Ｃｏ．、Ｎｅｗ Ｈａｖｅｎ ＣＴ）を 使用することによってウエスタンブロットで分析した。大部分の組換えタンパク 質が、２９３細胞の溶解物の中に見出された。従って、抗フラッグ抗体ゲル（Ｅ ａｓｔｍａｎ Ｋｏｄａｋ Ｃｏ．、Ｎｅｗ Ｈａｖｅｎ ＣＴ）を使用して、 ２９３細胞の溶解物からタンパク質を精製した。２８〜３０ｋｄのタンパク質を 製造者のプロトコルに従って精製した。この組換えタンパク質を、（運動ニュー ロンおよび交感神経ニューロンの生存アッセイに関する）生物学的な機能分析に おいて使用した。タンパク質のＮ末端アミノ酸は、Ｌｅｕ（アミノ酸１）である ことが決定された。このことは、シグナルペプチドと考えられる部分（アミノ酸 −２７〜アミノ酸−１）が切断されたことを示している。実施例ＩＩＩ：組換えＥ．ｃｏｌｉ ＮＮＴ−１タンパク質の調製 配列番号２のアミノ酸Ｌｅｕ（１）〜Ｐｈｅ（１９８）をコードするＮＮＴ− １のｃＤＮＡクローンをｐＡＭＧ２１ベクタ ーに挿入した。ｐＡＭＧ２１は、ｐＣＦＭ１６５６（ＡＴＣＣ寄託番号６９５７ ６）の誘導体であり、ｌｕｘ ＰＲプロモーターの下流に遺伝子を挿入するため の適切な制限部位を含有する（ｌｕｘ発現系の説明に関しては米国特許第５，１ ６９，３１８号を参照のこと）。使用した宿主細胞は、Ｅ．ｃｏｌｉ Ｋ１２の ＣＧＳＧ６１５９株であった（Ｙａｌｅ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ遺伝子ストック 、Ｎｅｗ Ｈａｖｅｎ、ＣＴ）。宿主細胞を、標準的な形質転換手順を使用して ベクターで形質転換し、次いで、約５０μｌ／ｍｌのカナマイシンを含有する２ ＸＹＴ培地中で、３０℃でインキュベーションした。ＮＮＴ−１遺伝子産物の誘 導を、自己誘導剤Ｎ−（３−オキソヘキサノイル）−ＤＬ−ホモセリンラクトン を培養培地に約３０ｎｇ／ｍｌの最終濃度に添加することによって開始した。培 養物を３０℃または３７℃のいずれかで６時間インキュベーションした。その後 、細胞を封入体について顕微鏡で調べた。 大部分のＮＮＴ−１タンパク質が、封入体内に存在していることが見出された 。従って、細胞ペーストを、細胞をペレット化することによって調製した。封入 体を低ｐＨで可溶化し、タンパク質を連続的な沈澱によって精製した。タンパク 質を透析 し、その後純度を評価するために、ＳＤＳ−ＰＡＧＥにサンプルを負荷した。ゲ ルのクーマシー染色によって、タンパク質は少なくとも９５％の純度であること が示された。実施例ＩＶ：ＮＮＴ−１の神経生物学的な機能 Ａ．ヒヨコの運動ニューロンアッセイ 腰椎部の脊髄から得られた運動ニューロン（ＭＮ）の濃縮培養物を、胎芽Ｅ５ ．５日目のヒヨコから調製した。ＭＮニューロンを、６．８％メトリザミドグラ ジエントを使用して濃縮した。簡単に記載すると、腰椎部の脊髄を切開し、髄膜 およびＤＲＧを除いた。脊髄を、パパイン含有Ｌ１５培地（Ｇｉｂｃｏ／ＢＲＬ 、Ｇｒａｎｄ Ｉｓｌａｎｄ、ＮＹ）中で２０分間、３７℃でインキュベーショ ンした（Ｗｏｒｔｈｉｎｇｔｏｎ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃｏｒｐ、Ｆｒｅ ｅｈｏｌｄ、ＮＪ）。酵素的に軟化させた脊髄断片を、ピペッティングによって １個ずつの細胞に解離した。次いで、この細胞懸濁液を６．８％メトリザミド（ Ｓｅｒｖａ、Ｆｅｉｎｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌａ、Ｇｅｒｍａｎｙ）層の上に重 層し、チューブを５００ｇで２０分間遠心分離した。メトリザミド層と細胞懸濁 液との間の界面を採取し、培養培地に希釈した。次いで、この画分を４％ＢＳＡ 層の上に静かに重層し、２８０ｇで１０分間遠心分離した。１０％ウシ胎児血清 を有するＬ１５培地を含有し、３．６ｍｇ／ｍｌグルコース、５ｎｇ／ｍｌ亜セ レン酸ナトリウム、６．２５ｎｇ／ｍｌプロゲステロン、０．１ｍｇ／ｍｌコン アルブミン、１６ｍｇ／ｍｌプトレッシンおよび５ｍｇ／ｍｌインスリンが補充 された培養培地でペレットを再度懸濁した。１０，０００細胞／ウエルを９６ウ エル組織培養プレートに播種した。神経栄養因子（ＮＮＴ−１またはＣＮＴＦ） の連続希釈物を培養物に添加し、３日間インキュベーションした。３日目に、Ｍ ＴＴを培養物に４．５時間添加した。ホルマザン産物を可溶化した。プレートを 、可視部の妨害のために、６５０ｎｍサブストラクションで５７０ｎｍの波長で の読み取りを行った。光学密度（ＯＤ）の読み取り値は、培養中の生存ニューロ ンの数に比例する。３連のウエルにおける５７０ｎｍでの吸光度（ニューロン生 存を増大させる）をＮＮＴ−１またはＣＮＴＦの最終濃度の関数としてプロット する。 分析の結果を図７に示す。５７０ｎｍでの吸光度を実際の読み取り値の１００ ０倍として表す。結果は、ＮＮＴ−１はヒヨコの運動ニューロン増殖を支持し得 ることを示した。その最大 活性は、ＣＮＴＦの最大活性の約９０％に達する。 Ｂ．ヒヨコの交感神経ニューロンアッセイ ヒヨコ肝の始原交感神経鎖神経節の培養物を調製した。簡単に記載すると、交 感神経節を、加湿雰囲気下、３７．６℃で９日間インキュベーションした、病原 体を含まないニワトリ受精卵から取り出した。神経節を、最初に、２価陽イオン 類を含まず、１０ｍＭ ＨＥＰＥＳ緩衝液（ｐＨ７．２）を含有するハンクス平 衡塩溶液に１０分間、３７℃で曝し、次いで、上記のように改変されたハンクス 平衡塩溶液における０．１２５％のバクトトリプシン１：２５０（Ｄｉｆｃｏ、 Ｄｅｔｒｏｉｔ、Ｍｉｃｈｉｇａｎ）溶液に曝すことによって化学的に解離した 。トリプシン処理を、ウシ胎児血清を１０％の最終濃度に添加することによって 停止した。 この処理後、神経節を、重炭酸塩とともに１０％ウシ胎児血清および１０ｍＭ ＨＥＰＥＳ（ｐＨ７．２）を含有するクルベッコ高グルコース改変イーグル培 地からなる溶液に移し、２０ゲージで１インチの二重に型押しされたステンレス スチール針に約１４回通して粉砕することによって機械的に解離した。 次いで、解離した神経節を、直径が１００ｍｍの組織培養デ ィッシュ内の培養培地（１０％ウシ胎児血清、４ｍＭグルタミン、６０ｍｇ／Ｌ ペニシリン−Ｇ、２５ｍＭ ＨＥＰＥＳ（ｐＨ７．２）を補充したダルベッコ改 変イーグル培地）に２〜３時間置床した（ディッシュあたり約４０個の解離神経 節）。この予備置床は、ディッシュに接着する非ニューロン細胞を、接着しない 神経細胞から分離するために行った。予備置床後、非接着性の神経細胞を遠心分 離によって集め、培養培地で再度懸濁し、ウエルあたり５０ｍｌで、９６ウエル マイクロタイター組織培養プレートの半分の領域に、ウエルあたり２５００個の 神経細胞の密度で置床した。マイクロタイターのウエルは、１０ｍＭホウ酸ナト リウム（ｐＨ８．４）におけるポリ−Ｌ−オルニチンの１ｍｇ／ｍｌの溶液に一 晩、４℃で予め曝され、滅菌した精製水で洗浄され、風乾されていた。 細胞が曝された神経栄養因子の最終濃度は下記の通りである：１）ＣＮＴＦ標 品に関して、１００ｎｇ／ｍｌ〜６ｐｇ／ｍｌの範囲にわたる９点の連続希釈列 ；２）ＮＮＴ−１タンパク質に関して、１００ｎｇ／ｍｌ〜０．１２ｐｇ／ｍｌ の範囲にわたる９点の連続希釈列。神経栄養因子活性についてアッセイされるべ きサンプルの２５ｍｌの連続希釈物を各ウエルに添 加し、７．５％ＣＯ₂を含有する加湿雰囲気中で、ディッシュを３８〜４６時間 、３７℃でインキュベーションした。次いで、重炭酸塩とともに１０ｍＭ ＨＥ ＰＥＳ（ｐＨ７．２）を含有するダルベッコ高グルコース改変イーグル培地にお けるテトラゾリウム色素ＭＴＴの１．５ｍｇ／ｍｌの溶液を１８ｍｌ／ウエルで 加えた。培養物を３７℃のインキュベーターに４．５時間入れた。次いで、２０ ％ドデシル硫酸ナトリウム（ｐＨ４．７）を含有する５０％Ｎ，Ｎ−ジメチルホ ルムアミドの溶液の７５ｍｌを添加し、結晶性のホルマザン産物を溶解し、プレ ートを３７℃のインキュベーターで少なくとも１２時間インキュベーションした 。５７９ｎｍでの吸光度を、自動マイクロタイタープレート読み取り機を使用し て各ウエルについて６５０ｎｍを参照として測定した。得られる吸光度は、各ウ エルにおける生存細胞の数に比例し、色素を還元し得るそのような神経細胞とし て定義される。 分析結果を図８に示す。結果は、ＮＮＴ−１はヒヨコの交感神経ニューロン増 殖を支持することを明らかにする。実施例Ｖ：組織分布のノーザンブロット分析 ヒト組織のノーザンブロットをＣｌｏｎｔｅｃｈ（Ｐａｌｏ Ａｌｔｏ、ＣＡ）から購入した。このノーザンブロットをヒトＮＮＴ−１ｃＤＮ Ａプローブで調べた。ＮＮＴ−１の５’および３’のコード領域に拡がる２つの ｃＤＮＡフラグメントを標識し、ＮＮＴ−１遺伝子の組織発現を分析するための プローブとして使用した。結果は、ＮＮＴ−１が、下記の組織において２．２ｋ ｂの転写物として発現していることを明らかにした：脾臓、リンパ節および末梢 血液リンパ球、骨髄および胎児肝臓、腎臓、肺、結腸直腸腺ガン細胞ＳＷ４８０ 、Ｈｅｌａ細胞Ｓ３、肺ガンＡ５４９、慢性骨髄性白血病Ｋ−５６２細胞、バー キットリンパ腫Ｒａｊｉ細胞。遺伝子の組織分布は、この遺伝子がまた、免疫系 の発達または造血細胞の発達に関与し得ることを示唆する。実施例ＶＩ：ＮＮＴ−１遺伝子の染色体での局在性 遺伝子の染色体での位置をＦＩＳＨによって決定した。１４ｋｂのゲノムフラ グメントを、ＢＲＬ ＢｉｏＮｉｃｋ標識キットを使用してｄＡＴＰでビオチン 化した。（１５℃で１時間）。ＦＩＳＨの手順をＨｅｎｇら．（Ｐｒｏｃ．Ｎａ ｔ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ＵＳＡ ８９：９５０９−９５１３、１９９２）に従っ て行った。結果は、この遺伝子が第１１染色体のｑ１３に位 置していることを明らかにした。この位置は、ヒトＣＮＴＦの遺伝子座（第１１ 染色体のｑ１２）に近い。実施例ＶＩＩ：マウスｃＤＮＡクローンの単離 マウスの部分的なｃＤＮＡクローンを、ヒトに特異的なプライマーを使用して 、マウスの１１目目の肝ｃＤＮＡ（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ、Ｐａｌｏ Ａｌｔｏ、Ｃ Ａ）からＰＣＲ増幅によって単離した。全長のｃＤＮＡクローンは、さらに、５ ’ＲＡＣＥおよび３’ＲＡＣＥによって得られた。マウスのｃＤＮＡヌクレオチ ド配列およびアミノ酸配列を、それぞれ、図４およひ図５に示す。マウスのタン パク質は、ヒトのタンパク質と９６％の同一性を有する。このことは、タンパク 質が進化を通して高度に保存されていることを示す。ヒトのタンパク質と同様に 、マウスのタンパク質はまた、アミノ酸２（Ａｓｎ）にＮ結合型グリコシル化部 位と考えられる部位を含有する。実施例ＶＩＩＩ：ＮＮＴ−１とファミリーの他のメンバーとの比較 ＮＮＴ−１のアミノ酸配列は、このタンパク質がＣＮＴＦ（配列番号１２）の ファミリーに属することを示唆する。このファミリーには、ＩＬ−１１（配列番 号８）、ＩＬ−６（配列番号 ９）、カルジオトロフィン（配列番号１１）、オンコスタチン（配列番号１３） 、および顆粒球コロニー刺激因子（Ｇ−ＣＳＦ）（配列番号１０）が含まれる。 本発明者らは、コンピュータプログラムＰＩＬＥＵＰによって、ＮＮＴ−１のア ミノ酸配列をこのファミリーのすべてのメンバーと比較した。結果を図６に示す 。このファミリーの他のメンバーすべてについて同様に、ＮＮＴ−１タンパク質 の二次構造は、４つの反平行α鎖を含有することが予想された。実施例ＩＸ：ＮＮＴ−１トランスジェニックマウスの表現型 Ａ．ＮＮＴ−１トランスジェニックマウスの表現型 ＮＮＴ−１遺伝子によってコードされるタンパク質は、ＣＮＴＦとある程度の 相同性を有し、骨髄アッセイおよび神経細胞アッセイにおけるインビトロ活性を 有する。ＮＮＴ−１でトランスフェクションされた骨髄が移植されたマウスの研 究によって、胃腸に関連したリンパ様組織において穏やかなリンパ球増殖が明ら かにされたが、他の明瞭な表現型の変化は見られなかった。材料および方法 種：マウス 株：ＢＤＦ１ 齢：１７週齢（１２０日）試験品：ＮＮＴ− １（ＷＸ２４０） 性別：雄／雌試験群 この２つの群において、明らかな異常は検出されなかった。 全体的な剖検を、組織病理学的な試験のために緩衝化亜鉛ホルマリンで固定化 した組織を選択することによって行った［脳、心臓、腎臓、副腎、十二指腸、膵 臓、膀胱、肝臓、肺、脾臓、任意の大きな病巣］。組織を一晩固定化し、その後 、日常的な組織学的処理を行った。データを、ＪＭＰ（ＳＡＳ Ｉｎｓｔｉｔｕ ｔｅ、Ｃａｒｙ、ＮＣ）ソフトウエアプログラムを使用して分析した。 試験：臓器重量、体重、組織病理学、免疫組織学、ノーザンブロット。 下記の処置に関連する変化が、ＮＮＴ−１トランスジェニックマウスに存在し た： 日臓は、トランスジェニックマウスの小胞（Ｂ細胞）領域および細動脈周囲（ Ｔ細胞）領域を含む中程度から顕著な反応性リンパ様過形成（図１０）を有して いた。リンパ様過形成は、 高発現マウス＃６２において最も突出しており（図１０）、剖検で認められた巨 脾腫とよく相関していた。他の高発現マウス＃６０は、３系列すべてのかなりの 散在性骨髄外造血を伴うリンパ様領域の穏やかな過形成を有するだけであった。 この２匹の高発現マウスに基づいてＮＮＴ−１の脾臓作用に関する何らかの一般 的な結論を下すことは困難であるが、マウス＃６２において認められたリンパ球 増殖は、注射したタンパク質（下記の実施例Ｘ Ａを参照のこと）による本発明 者らの知見と一致する。一方、マウス＃６０で見出されたＥＭＨは、以前のイン ビトロ骨髄培養知見のインビボ相関を反映し得る。 マウス＃６０の肝臓は、脈管周囲空間に浸潤し、肝臓内の「リンパ球産生の島 」に似た独特のパターンで隣接の洞様毛細血管に拡がるリンパ球および血漿細胞 の多病巣性凝集を有していた（図１２）。免疫組織学によって、リンパ様凝集は 、Ｂ２２０＋細胞およびＣＤ３＋細胞から構成されていた。同様ではあるが、よ り穏やかで典型的な管脈周囲のリンパ様浸潤が、マウス＃６２においても見出さ れた。肝臓において見出された他の変化は、対照群および／またはトランスジェ ニック群の個々のマウスにおいて突発的に起こっていた。 胃腸管は、パイヤー斑（腸結合リンパ様組織）の最小から中程度の反応性リン パ様過形成を有していた。同様に、頸部リンパ節および腸間膜リンパ節は、トラ ンスジェニックマウスにおいて、対照群よりも反応的であった。しかし、この変 化は、この研究において、注射したＮＮＴ−１タンパク質による本発明者らの研 究（下記の実施例Ｘ Ａ参照のこと）ほどの突出した特徴ではなかった。 トランスジェニックマウスの骨髄、中枢神経系および末梢神経系は正常な様で あった。一般に、これ以外の組織での変化は、陰性対照群および／またはトラン スジェニック群の１つまたは複数の動物において突発的に見出され、導入遺伝子 に関連しているとは考えられなかった。 この研究から得られるデータによって、ＮＮＴ−１トランスジェニックマウス は、脾臓、リンパ節、腸結合リンパ様組織、腎臓および肝臓を含む多数の末梢組 織におけるＴリンパ球およびＢリンパ球および血漿細胞の増殖を特徴とする興味 深い表現型を有していることが示される。ＮＮＴ−１はまた、脾臓および膵臓な どのいくつかの末梢組織における骨髄外リンパ球産生を、末梢血または骨髄にお ける著しい変化を有することなく誘 導し得る。従って、ＮＮＴ−１トランスジェニックマウスから得られるデータは 、骨髄または中枢神経系に検出可能な影響を伴うことなく、リンパ様組織の増殖 を誘導した注射可能なＮＮＴ−１タンパク質による本発明者らの７日目マウスの 研究（下記の実施例Ｘ Ａ）から得られる知見を一般に支持する。 興味深いことに、２匹の高発現ＮＮＴ−１トランスジェニック雌性マウスにお いて検出された糸球体腎炎は、ＭＲＬ／１ｐｒ（Ｆａｓ欠損）マウスにおいて認 められた自発性糸球体腎炎と非常によく似ている。ＭＲＬ／１ｐｒマウスは、ポ リクローナルＢ細胞の活性化、多数の自己抗体、循環性の免疫複合体、および二 重陰性（ＣＤ４−、ＣＤ８−、ＴＣＲａｂ＋、ＣＤ３＋）Ｔ細胞の異常な集団の 蓄積を伴って初期に開始するＳＬＥ様の自己免疫症候群を発症する。このような 二重陰性Ｔ細胞はまた、通常はＢ細胞のマーカーであるＢ２２０＋と呼ばれるＣ Ｄ４５Ｒのイソ型を発現する（Ｓｉｎｇｅｒら．、Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．Ｉｍｍ ｕｎｏｌ．、６：９１３−９２０、１９９４）。さらに、ＮＮＴ−１のいくつか の生物学的効果はまた、インターロイキン−６の生物学的効果を模倣する。イン ターロイキン−６は、（ＣＮＴＦ、ＬＩＦおよびＩＬ−１１と同様に）、ｇｐ１ ３０ のシグナル伝達トランスデューサーを利用し、肝臓、腎臓、脳、皮膚、免疫系お よび造血系に対して多面発現性作用を有する（Ｒｙｆｆｅｌら．、Ｉｎｔ．Ｒｅ ｖ．Ｅｘｐ．Ｐａｔｈｏｌ．、３４Ａ：７９−８９、１９９３）。従って、末梢 血または末梢組織において見出されるリンパ球が、フローサイトメトリー分析に よって、Ｔ細胞マーカーおよびＢ細胞マーカーの二重発現を有する異常な表現型 を有し得るかどうかを決定することは重要である。 Ｂ．ＮＮＴ−１トランスジェニック創始動物のＦＡＣＳ免疫表現型決定分析組織 末梢血液サンプルを後眼窩採血によって得た。創始動物の同腹子の対照マウス および（ＰＣＲによる）ＮＮＴ−１陽性マウスの各群から９サンプルを採取した ；どれも凝固させなかった。１サンプルあたり約２０〜４０μｌの血液を、Ｆｃ 阻止抗体と最初にインキュベーションし、その後、様々な細胞表面抗原の蛍光抗 体とインキュベーションした。 抗体を、循環している末梢血液中の大部分の造血細胞集団を分化させるための マーカーについて選択した。同様に、Ｂ細胞 およびＴ細胞のいくつかの活性化／分化マーカーを、この発現配列タグ（ｅｓｔ ）に関するライブラリーの起源に基づいて選択した。ライブラリーを、トキシッ クショック症候群毒素（ＴＳＳＴ）で活性化したＪｕｒｋａｔ細胞（Ｔ細胞株） から作製した。抗体 Ｆｃ阻止（ＣＤ３２／１６）−非特異的な結合を阻止するためのプレインキュ ベーションの一部として、合計で２１個の抗体を使用した。データを単色ヒスト グラムとして分析した。ラットＩｇＧフルオレセインイソチオシアネート（ＦＩ ＴＣ）＋ ラット１ｇＧフィコエリトレン（ＰＥ） Ｈａｍ ＩｇＧ ＦＩＴＣ ＋ Ｈａｍ ＩｇＧ ＰＥ ＣＤ４５ ＦＩＴＣ ＋ ＧＲ−１（ＣＤ９７）ＰＥ −−− 汎（Ｐａｎ）白血球対顆粒球 ＣＤ４ ＦＩＴＣ ＋ ＣＤ８ ＰＥ −−− Ｔ細胞サブセットのヘルパー対 キラー Ｔｈ１．２ ＦＩＴＣ ＋ Ｂ２２０ ＰＥ −−− Ｔ細胞対汎Ｂ細胞のマー カー ＣＤ６９ ＦＩＴＣ ＋ ＣＤ２８ ＰＥ −−− Ｔ細胞＆ Ｂ細胞またはＴ細胞のみに関する活性化マーカー ＣＤ３ ＦＩＴＣ ＋ ＣＴＬＡ４ ＰＥ −−− 汎Ｔ細胞対Ｔ細胞の活性化 ｃｋｉｔ ＦＩＴＣ ＋ Ｓｃａ−１ ＰＥ −−− 骨髄様細胞および始原細 胞対始原細胞および末梢リンパ球 ＣＤ４０ ＦＩＴＣ ＋ ＣＤ４０Ｌ ＰＥ −−− Ｂ細胞分化抗原対そのＴ 細胞リガンド ＣＤ６２Ｌ ＦＴＴＣ ＋ ＣＤ５４ ＰＥ −−− Ｂ細胞およびＴ細胞に対 する活性化接着分子 ＣＤ３４ ＦＩＴＣ（データを分析せず）結果 著しい増大が、Ｂ２２０＋、ＣＤ４０＋、ＣＤ６２Ｌ＋およびＣＤ５４＋の細 胞に関して、４匹のＮＮＴ−１陽性動物に関する細胞の絶対数において観測され た。これらの４匹の動物(＃２４、＃３５、＃６０、＃６２)は、後に、ノーザン ブロットによって発現体として確認された。Ｂ２２０＋およびＣＤ４０＋の細胞 における増加は、対照の２倍〜４倍の範囲であった。ＣＤ６２Ｌ＋（ＬＥＣＡＭ ）およびＣＤ５４＋（ＩＣＡＭ）は、対照群の１．５倍〜３倍の範囲であった。 ４匹の発現体のうち ３匹において増大を示すマーカーには、Ｓｃａ−１（対照の２倍〜６倍）および ｃｋｉｔ（対照の２倍〜３倍）が含まれた。ＣＤ３、ＣＤ４、ＣＤ８、Ｔｈｙ１ ．２を含むさらなるマーカーは、４匹の発現体のうち２匹において緩やかな増大 を示したが、一貫した様式ではなかった（これらはすべてＴ細胞のマーカーであ るが、同じ発現体においてそれらは必ずしもすべて陽性ではなかった）。ＧＲ１ は１匹の発現体で増大していたが、対照動物の１匹においては、ＧＲ１＋細胞の 数はさらに多かった。従って、このマーカーは重要でないと考えられる。残りの 抗体は、陽性ではなく、あるいは有意な違いはなく、あるいはＣＤ３４の場合に は分析することができなかった。要約 循環しているリンパ様細胞の絶対的な細胞数の非常に明確な増大が、これらの マウスにおいて観測される。リンパ様集団のこのような増大は、主にＢ細胞と一 致するようであるが、Ｔ細胞の数においてもまた、いくらかの増大を認めること ができる。リンパ様集団はいすれも、活性化された細胞タイプを増大しないよう である。循環している骨髄様細胞集団に対する効果はほとんど見られないか、あ るいは全く見られない。ｃｋｉｔおよ びＳｃａ−１における増大は、始原細胞での増大と必ずしも相関していない。な ぜなら、これらのマーカーは、循環している成熟細胞についても同様に見出され るからである。 データは、増殖に向かうＢ細胞を示唆する。なぜなら、これらの細胞はすべて 、発現と良好に相関するからである。いくつかの動物におけるＴ細胞の増大は、 増大したＢ細胞によって産生されるいくつかの他の因子の二次的な効果であり得 る。Ｂ細胞に関する１つの興味深い観察は、Ｂ２２０＋細胞の数とＣＤ４０＋細 胞の数との間の差はわずかではあるが、非常に一貫していることである。これら はともにＢ細胞のマーカーであるが、ＣＤ４０はまた、樹状細胞についても同様 に見出されている。実施例Ｘ：ＮＮＴ−１を注射したマウスのリンパ様過形成 Ａ．ＮＮＴ−１処置ＢＤＦ１雌性マウスにおける７日間の実験的な静脈内／皮下 研究 ＮＮＴ−１によってコードされるタンパク質は、ＣＮＴＦに対していくらかの 相同性を有し、骨髄アッセイおよび神経細胞アッセイにおけるインビトロ活性を 有する。この研究の目的は、マウスに７日間毎日投与したときのＮＮＴ−１タン パク質の全身効果および潜在的毒性を測定することであった。材料および方法 ２６週齢の雌性ＢＤＦ１マウスをこの研究に使用した。マウスを、下記の処置 群に無作為に振り分けた（ｎ＝５／群）： １． ＰＢＳ緩衝液対照（７日間にわたり１日に１回の静脈内投与） ２． １．５ｍｇ／ｋｇのＮＮＴ−１（静脈内） ３． ０．１５ｍｇ／ｋｇのＮＮＴ−１（静脈内） ４． １．５ｍｇ／ｋｇのＮＮＴ−１（皮下） マウスは、全体的な剖検の前に絶食させなかった。剖検の１時間前（最後の投 与の２４時間後）に、マウスにＢｒｄＵ（細胞増殖研究のために５０ｍｇ／ｋｇ で）の腹腔内注射を施した。血液を、血液学的測定（ヘモグロビン、ヘマトクリ ット、赤血球数、血小板数、平均血小板量、全白血球数および較差白血球数）お よび臨床化学的パラメーター（アラニンアミノトランスフェラーゼ、アスパラギ ン酸アミノトランスフェラーゼ、アルカリホスファターゼ、乳酸デヒドロゲナー ゼ、グルコース、尿素窒素、クレアチニン、総タンパク質、アルブミン、グロブ リン、カルシウム、リン、総ビリルビン、尿酸、コレステロールおよびトリグリ セリド類）のために心臓穿刺によって得た。 全体的な剖検を、組織病理学的試験のために緩衝化亜鉛ホルマリンで固定化した 組織を選択することによって行った［副腎、骨髄、骨（大腿骨）、脳、盲腸、近 位および遠位の結腸、十二指腸、食道、心臓、回腸、空腸、腎臓、肝臓、肺、乳 腺、卵巣、膵臓、骨格筋、皮膚、脾臓、胃、胸腺、甲状腺、気道、膀胱、子宮、 膣、白色脂肪組織および褐色脂肪組織、任意の大きな病巣］。組織を一晩固定化 し、その後、日常的な組織学的処理を行った。臓器重量を、脾臓、肝臓、胃、腎 臓および胸腺について測定した。結果 脾臓。脾臓の白色脾髄での顕著なリンパ様過形成が、ＮＮＴ−１処置群におい て、細動脈周囲のリンパ様鞘（Ｔ細胞領域）および小胞（Ｂ細胞領域）の膨大を 伴って見られた。しかし、骨髄外造血の程度は、これらの群においては明瞭には 増大していなかった。このことは、このタンパク質が、インビボにおいては、造 血細胞に対するよりもむしろリンパ球に対する刺激因子様効果または増殖因子様 効果を有し得ることを示唆する。 リンパ節。ＮＮＴ−１処置マウスは、リンパ節皮質の小胞（Ｂ細胞）領域およ び副皮質（Ｔ細胞）領域の穏和〜著しい反応性 リンパ様過形成を有していた。この変化は組換えタンパク質に対する初期の免疫 応答を反映し得るが、脾臓、リンパ節、パイヤー斑および骨髄に存在していた一 般化された反応性リンパ様過形成の程度によって、これはＮＮＴ−１の処置に関 連する特異的な効果であり得ることが示唆される。要約および結論 この研究から得られる最も重要な知見は、７日間のマウスのＮＮＴ−１処置は 、リンパ様組織の増殖、特に脾臓およびリンパ節における増殖を誘導するようで あるということであった。しかし、このタンパク質は、この研究の条件下におい て、造血系または中枢神経系に対する検出可能な何らかの効果を有さないようで あった。 Ｂ．ＮＮＴ−１注射マウスのＦＡＣＳ分析 試薬およびマウス。組換えヒトＮＮＴ−１およびｒｈＩＬ−１をＡｍｇｅｎ Ｉｎｃ．（Ｔｈｏｕｓａｎｄ Ｏａｋｓ、ＣＡ）から得た。ＬＰＳ（Ｅｓｃｈｅ ｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ ０１１１：Ｂ４）をＬＩＳＴ Ｂｉｏｌｏｇｉｃ Ｌ ａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ（Ｃａｍｐｂｅｌｌ、ＣＡ）から購入した。約２０ｇの 雌性Ｂａｌｂ／ｃマウスをＣｈａｒｌｅｓ Ｒｉｖｅｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ（Ｗｉｌｍｉｎｇｔｏｎ、ＭＡ）から購入した。マウ スを、一定の温度および湿度で維持し、１２時間の明／暗サイクルに設定された 部屋で飼育した。マウスは、標準的な実験餌および水を自由に摂取した。動物お よびその管理に関する手順は、国家および国際的な法律および行動（Ｕ．Ｓ．Ｎ ａｔｉｏｎａｌ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｃｏｕｎｃｉｌ、実験動物の管理および使 用に関する指針、１９９６）に適合している研究所の指針に従って行った。 リンパ節の重量および細胞数。７日間にわたり、マウスは、毎日、５ｍｇ／Ｋ ｇのＮＮＴ−１または緩衝液の腹腔内注射を受けた。７回目の注射の２４時間後 に、マウスを屠殺し、末梢（頸部および腋窩）リンパ節を採取した。リンパ節を まとめ、重量を測定し、ホモジネートして細胞懸濁腋を調製した。次いで、細胞 をＳｉｓｍｅｘ細胞計数器（Ｔｏａ Ｍｅｄｉｃａｌ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ 、Ｋｏｂｅ、Ｊａｐａｎ）によって計測し、ラットの抗マウス抗ＣＤ４５Ｒ（抗 Ｂ２２０）ＭＡｂ（Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ、Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ、ＣＡ）を使用 する直接的なＩＦによって染色し、Ｃｅｌｌ Ｑｕｅｓｔソフトウエア（Ｂｅｃ ｔｏｎ ａｎｄ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ、Ｓａｎ Ｊｏｓｅ、ＣＡ）を使用するＦＡＣＳＣＡＮで分析した。 統計分析。結果を平均±ＳＤとして表す。ＴＮＦの値を対数変換して、その歪 んだ分布を小さくし、それらを正規化した。シャピローウィルクス検定を使用し て、変換の前後でのそれらの分布の正規性を分析した。群間の差をスチューデン トｔ検定によって分析した。ＢＷを各個体において繰り返し測定したので、群内 および群間のＢＷの差を、繰り返した測定について分散分析（ＡＮＯＶＡ）によ って検定した。 リンパ節の重量および細胞数。ＮＮＴ−１処置によって、末梢リンパ節におけ る総細胞数およびＣＤ４５陽性細胞の数は増大した（図１７）。実施例ＸＩ：ＮＮＴ−１はＩＬ−６ファミリーのサイトカイン類に特徴的なイン ビボ活性を示す 試薬、マウスおよび統計分析は、上記の実施例Ｘ Ｂに示した通りである。 血清アミロイドＡ（ＳＡＡ）誘導、ＩＬ−１によるコルチコステロンおよびＩ Ｌ−６誘導の増強、およびＬＰＳ誘導によるＴＮＦの阻害。 ＮＮＴ−１を、５ｍ ｇ／ｋｇの用量で、単独あるいはＩＬ−１（１００ｎｇ／マウス）またはＬＰＳ （１００ ｎｇ／マウス）と一緒に腹腔内に投与した。対照のマウスには、ＮＮＴ−１に対 する溶媒（１０ｍＭ酢酸塩を含む生理食塩水）を投与した。血液を、ＳＡＡ測定 のためにはＮＮＴ−１または生理食塩水を投与した８時間後に、コルチコステロ ンおよびＩＬ−６に関しては投与の２時間後に、そしてＴＮＦに関しては投与の １．５時間後に後眼窩叢から採取した。実験を、５匹のマウスまたは１０匹のマ ウスからなる群で行った。 ＳＡＡ、ＩＬ−６およびＴＮＦを、市販のキット（Ｂｉｏｇｅｎ、Ｃａｍａｒ ｉｌｌｏ、ＣＡ）を使用するＥＬＩＳＡによって血清で測定した；結果を、それ ぞれ、μｇ、ｎｇおよびｐｇ／ｍｌで表した。コルチコステロンを、市販のキッ ト（ＩＣＢ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ、Ｃｏｓｔａ Ｍｅｓａ、ＣＡ）を使用す るＲＴＡによって測定した；結果をｎｇ／ｍｌで表した。 ＳＡＡ誘導、ＩＬ−１によるコルチコステロンおよびＩＬ−６誘導の増強、お よびＬＰＳ誘導によるＴＮＦの阻害。 ＮＮＴ−１は循環性ＳＡＡを誘導した（図１３）。 ＮＮＴ−１は、低用量のＩＬ−１によって、血清コルチコステロンまたはＩＬ −６のいずれかの誘導を増強した（図１４および図１５）。ＮＮＴ−１はまた、 単独で注射されたときに、 コルチコステロンの循環レベルを増大させ得ることを示した。 ＮＮＴ−１は、ＬＰＳによる血清ＴＮＦの誘導を阻害した（図１６）。結果の要約 炎症プロセスは、炎症関連の病理学を区別する組織の損傷および機能の悪化に 大きく関わっているサイトカインであるＴＮＦの産生を伴う。しばしば、ＩＬ− １はＴＮＦと同時に産生され、炎症の病原性メディエーターであることもまた考 えられる。コルチコステロイド類は幅広い作用範囲を有し、効率的な負のフィー ドバック回路を介してＩＬ−１により誘導される非常に強力な抗炎症剤である。 コルチコステロイド類は、ＴＮＦ産生およびＩＬ−１産生の両方を阻害する。Ｉ Ｌ−６は、またＴＮＦおよびＩＬ−１の両方によって誘導されるが、別の負のフ ィードバック回路を介してＴＮＦ産生およびＩＬ−１産生をもまた阻害し得る。 少なくともＩＬ−１の存在下でコルチコステロイド類およびＩＬ−６を誘導す るＮＮＴ−１の能力によって、この分子が２つの生理学的な抗炎症回路を増強し 得ることが示唆される。これによって、ＴＮＦ産生およびＩＬ−１産生の阻害を 促進する ことができ、従って炎症プロセスの消散を促進することができる。コルチコステ ロイド類の誘導およびＩＬ−６産生に加えて、そしてそれらから独立して、ＮＮ Ｔ−１は、ＴＮＦ産生を直接阻止する特性を示す。これは、興味深いことに、上 記に概略される抗炎症性の特徴に加えられる。ＤＮＡの寄託 ＮＮＴ−１のヒトゲノムＤＮＡをコードするＰ１ベクターを含有するＥ．ｃｏ ｌｉ細胞ＤＨ１０Ｂ、およびＮＮＴ−１のヒトｃＤＮＡをコードするＰＳＰＯＲ Ｔベタターを含有するＥ．ｃｏｌｉ細胞ＤＨ１０Ｂを、ＡＴＣＣ（Ａｍｅｒｉｃ ａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ、１２３０１Ｐａｒｋ ｌａｗｎ Ｄｒｉｖｅ、Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ、ＭＤ、ＵＳＡ）に１９９７年１月 ２１日に寄託し、それぞれ、９８２９４および９８２９５の受入番号が割り当て られた。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁷ 識別記号 ＦＩ テーマコート゛(参考） Ａ６１Ｐ 25/28 Ａ６１Ｐ 37/00 29/00 Ｃ０７Ｋ 14/475 37/00 16/22 Ｃ０７Ｋ 14/475 Ｃ１２Ｎ 1/15 16/22 1/19 Ｃ１２Ｎ 1/15 1/21 1/19 Ｃ１２Ｐ 21/02 Ｃ 1/21 21/08 5/10 Ｃ１２Ｎ 15/00 ＺＮＡＡ Ｃ１２Ｐ 21/02 5/00 Ａ 21/08 Ａ６１Ｋ 37/02 (81)指定国 ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＤＥ， ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，Ｌ Ｕ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ，ＣＦ ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ， ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＧＨ，ＧＭ，ＫＥ，ＬＳ，Ｍ Ｗ，ＳＤ，ＳＺ，ＵＧ，ＺＷ)，ＥＡ(ＡＭ，ＡＺ，ＢＹ ，ＫＧ，ＫＺ，ＭＤ，ＲＵ，ＴＪ，ＴＭ)，ＡＬ，ＡＭ ，ＡＴ，ＡＵ，ＡＺ，ＢＡ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ， ＣＡ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＵ，ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＥ，Ｅ Ｓ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＥ，ＧＨ，ＧＭ，ＧＷ，ＨＵ，ＩＤ ，ＩＬ，ＩＳ，ＪＰ，ＫＥ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ， ＬＣ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＳ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，ＭＤ，Ｍ Ｇ，ＭＫ，ＭＮ，ＭＷ，ＭＸ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ，ＳＬ， ＴＪ，ＴＭ，ＴＲ，ＴＴ，ＵＡ，ＵＧ，ＵＳ，ＵＺ，Ｖ Ｎ，ＹＵ，ＺＷ (72)発明者 エリオツト，ゲリー・エス アメリカ合衆国、カリフオルニア・91361、 サウザンド・オークス、グリーンムーア・ プレイス・324 (72)発明者 セナルデイ，ジヨルジ アメリカ合衆国、カリフオルニア・91362、 サウザンド・オークス、ホワイト・リツ ジ・プレイス・2846 (72)発明者 サルミエント，ウラ アメリカ合衆国、カリフオルニア・93021、 ムーアパーク、ブロードビユウ・ドライ ブ・11340

Claims (1)

1. 【特許請求の範囲】 １．（ａ）配列番号１の核酸分子； （ｂ）配列番号３の核酸分子； （ｃ）配列番号２のポリペプチドまたはその生物学的活性フラグメントをコー ドする核酸分子； （ｄ）配列番号２のポリペプチドに少なくとも７０％同一のポリペプチドをコ ードする核酸分子； （ｅ）前記（ａ）〜（ｄ）のいずれかにストリンジェント条件下にハイブリダ イズする核酸分子；および （ｆ）前記（ａ）〜（ｅ）のいずれかの相補体である核酸分子 からなる群より選択される，ポリペプチドをコードする核酸分子。 ２．（ａ’）配列番号４の核酸分子； （ｂ’）配列番号５のポリペプチドまたはその生物学的活性フラグメントをコ ードする核酸分子； （ｃ’）配列番号５のポリペプチドに少なくとも７０％同一のポリペプチドを コードする核酸分子； （ｄ’）前記（ａ’）〜（ｃ’）のいずれかにストリンジェント条件下にハイ ブリダイズする核酸分子；および （ｅ’）前記（ａ’）〜（ｄ’）のいずれかの相補体である核酸分子 からなる群より選択される，ポリペプチドをコードする核酸分子。 ３．配列番号１の核酸分子。 ４．配列番号３の核酸分子。 ５．配列番号２のポリペプチドをコードする核酸分子。 ６．配列番号２のアミノ酸１〜１９８をコードする核酸分子。 ７．請求項１〜６のいずれかの核酸分子を含むベクター。 ８．請求項７のベクターを含む宿主細胞。 ９．（ａ）適当な宿主内において請求項１〜６のいずれかの核酸によりコードさ れるポリペプチドを発現する工程；および （ｂ）そのポリペプチドを単離する工程 を含んでなるＮＮＴ−１ポリペプチドを製造する方法。 １０．（ａ）配列番号２のポリペプチド； （ｂ）配列番号２のアミノ酸１〜１９８であるポリペプチド； （ｃ）（ａ）または（ｂ）のポリペプチドに少なくとも７０％同一のポリペプ チド；および （ｄ）（ａ）〜（ｃ）のいずれかの生物学的活性フラグメント からなる群より選択されるＮＮＴ−１ポリペプチド。 １１．（ａ’）配列番号５のポリペプチド； （ｂ’）配列番号５のアミノ酸１〜１９８であるポリペプチド； （ｃ’）（ａ’）または（ｂ’）のポリペプチドに少なくとも７０％同一のポ リペプチド；および （ｄ’）（ａ’）〜（ｃ’）のいずれかの生物学的活性フラグメント からなる群より選択されるＮＮＴ−１ポリペプチド。 １２．配列番号２のポリペプチドまたはその生物学的に活性なフラグメントであ るＮＮＴ−１ポリペプチド。 １３．配列番号５のポリペプチドまたはその生物学的に活性なフラグメントであ るＮＮＴ−１ポリペプチド。 １４．アミノ末端メチオニンを有さない請求項１２または１３のＮＮＴ−１ポリ ペプチド。 １５．アミノ末端メチオニンをさらに有する請求項１２または１３のＮＮＴ−１ ポリペプチド。 １６．特異的にヒトＮＮＴ−１と結合する抗体またはそのフラグメント。 １７．モノクローナル抗体である請求項１６に記載の抗体。 １８．神経または免疫疾患または不全を患っている患者を治療する方法であって 、前記患者に請求項１２〜１５のいずれかに記載のＮＮＴ−１ポリペプチドの有 効量を投与することを含んでなる方法。 １９．前記疾患または不全が、アルツハイマー病、パーキンソン病、筋萎縮性側 索硬化、シャルコー−マリー−ツース症候群、ハンチントン病、末梢神経障害、 ジストロフィー、または神経性網膜の退化から選択される請求項１８に記載の方 法。 ２０．前記疾患または不全がＢ−細胞またはＴ−細胞の欠損により特徴付けられ る請求項１８に記載の方法。 ２１．前記疾患または不全が、後天性免疫グロブリン血症（ＣＶＩＤ）、選択的 ＩｇＡ不全、低γ−グロブリン血症、および伴性無ガンマグロブリン血症である 請求項２０に記載の方法。 ２２．ワクチン摂取時に免疫反応性および抗体生成を促進する 方法であって、それを必要としている患者に詰求項１２〜１５のいずれかに記載 のＮＮＴ−１ポリペプチドの有効量を投与することを含んでなる方法。 ２３．それを必要としている患者における炎症条件を治療する方法であって、前 記患者に請求項１２〜１５のいずれかに記載のＮＮＴ−１ポリペプチドの有効量 を投与することを含んでなる方法。