JP2001523099A

JP2001523099A - 白血球免疫グロブリン様受容体（ｌｉｒ）と命名される免疫調節剤ファミリー

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Publication number: JP2001523099A
Application number: JP54635398A
Authority: JP
Inventors: コスマン，ディヴィッド・ジェイ
Original assignee: Immunex Corp
Current assignee: Immunex Corp
Priority date: 1997-04-24
Filing date: 1998-04-23
Publication date: 2001-11-20
Also published as: US20040253674A1; US20040138126A1; WO1998048017A1; US20030166073A1; US6448035B1; EP0977852A1; AU7154798A; DE977852T1; US7014853B2; ES2143450T1; JP2008131944A

Abstract

(57)【要約】免疫グロブリンスーパーファミリーの免疫受容体分子の新規のファミリー、ＬＩＲポリペプチドについて記載する。ＬＩＲファミリーメンバーをコードする配列およびそれらの推定アミノ酸配列、規定された配列を有すオリゴヌクレオチドプローブにハイブリダイズするＤＮＡにコードされるポリペプチド、ＬＩＲファミリーのポリペプチドを産生するための方法、およびＬＩＲファミリーメンバーに対するアンタゴニストな抗体が開示される。ＬＩＲファミリーメンバーは、自己免疫疾患、および抑制された免疫機能に関連する疾病状態の治療に使用することができる。

Description

【発明の詳細な説明】白血球免疫グロブリン様受容体（ＬＩＲ）と命名される免疫調節剤ファミリー発明の背景免疫系の細胞活性は、細胞表面の相互作用及び関連したシグナルプロセスの複雑なネットワークによって制御されている。細胞表面の受容体がそのリガンドによって活性化されると、シグナルがその細胞に送られるが、動員されるシグナル伝達経路に依存して、シグナルは阻害的又は活性的になり得る。多くの受容体システムに対して、細胞の活性は、活性シグナルと阻害性シグナルとのバランスによって調節される。これらのいくつかでは、そのリガンドによる細胞表面受容体の動員に関連した陽性シグナルが、そのリガンドによる別の細胞表面受容体の関与によって送られる陰性シグナルによってダウンモジュレートされる又は阻害されることが知られている。これらの陽性及び陰性シグナル伝達経路の生化学的メカニズムが、既知の多くの免疫系受容体及びリガンド相互作用に対して研究されてきた。陽性シグナル伝達に介在する多くの受容体は、イムノレセプターチロシンベース活性化モチーフ（ＩＴＡＭ）として知られている、チロシンホスファターゼのリン酸化部位を含む細胞質テールを有する。陽性シグナル伝達に共通する機械的な経路は、受容体の細胞質ドメイン及び他のシグナル伝達分子上の部位をリン酸化するチロシンキナーゼの活性化を含む。受容体がリン酸化されると、シグナル伝達分子の結合部位が形成され、シグナル伝達経路を発動し、細胞を活性化する。阻害的な経路は、ＩＴＡＭのようにチロシンキナーゼによってリン酸化されるイムノレセプターチロシンベース阻害性モチーフ（ＩＴＩＭ）を有する受容体を含む。これらのモチーフを有する受容体が阻害性のシグナル伝達に関わるのは、活性化された受容体又はシグナル伝達分子からチロシンを除去することによってシグナル伝達を妨害するチロシンホスファターゼのための結合部位を、これらのモチーフが提供するからである。活性化及び阻害メカニズムの詳細については多くのことがわかっていないが、免疫系における機能バランスが相反する活性及び阻害性シグナルに依存していることは明らかである。陽性及び陰性のシグナル伝達のバランスによって調節されている免疫系活動の１例は、Ｂ細胞の増殖である。Ｂ細胞抗原受容体はＢ細胞表面の免疫グロブリンであり、抗原と結合すると、Ｂ細胞の増殖を導く陽性シグナルを仲介する。しかしながら、Ｂ細胞はまた低親和性のＩｇＧ受容体であるＦｃγＲＩＩｂ１を発現している。ある抗原が可溶性免疫グロブリンとの免疫複合体の一部となるとき、この免疫複合体は、この抗原を介したＢ細胞抗原受容体と可溶性免疫グロブリンを介したＦｃγＲＩＩｂ１の両方を動員することによって、Ｂ細胞に結合し得る。Ｂ細胞受容体複合体とＦｃγＲＩＩｂ１の同時動員は、活性化シグナルをダウンモジュレートし、Ｂ細胞の増殖を妨げる。ＦｃγＲＩＩｂ１受容体はＩＴＩＭモチーフを含み、これがＢ細胞受容体との同時動員時のチロシンホスファターゼとの相互作用を介して阻害性のシグナルをＢ細胞へ伝達すると考えられている。ナチュラルキラー（ＮＫ）細胞の細胞溶解活性は、細胞機能を発動する陽性シグナルとその活動を妨げる阻害性シグナルとのバランスによって調節されている免疫系活動のもうひとつの例である。ＮＫの細胞毒性を活性化する受容体は完全には理解されていない。しかしながら、ＮＫ細胞が特定の受容体を有する細胞表面のＭＨＣクラスＩ抗原を標的細胞が発現していれば、標的細胞はＮＫによる殺細胞作用から防御される。キラー阻害性受容体（ＫＩＲ）として知られているこの特定の受容体は、そのＭＨＣリガンドによって動員されるときに陰性のシグナルを送り、ＮＫ細胞の細胞毒活性をダウンレギュレートする。ＫＩＲは、免疫グロブリンのスーパーファミリー又はＣ型レクチンファミリーに属する（Ｌａｎｉｅｒ等、ＩｍｍｕｎｏｌｏｇｙＴｏｄａｙ１７：８６〜９１，１９９６を参照のこと）。既知のヒトＮＫ−ＫＩＲは免疫グロブリンスーパーファミリーのメンバーであり、その細胞外、膜貫通及び細胞質領域に種々の相違点及び類似点を示す。ＫＩＲの多くに共通した細胞質ドメインのアミノ酸配列は、ＹｘｘＬ／Ｖという配列を有するＩＴＩＭモチーフである。ある場合には、リン酸化されたＩＴＩＭが、シグナル伝達経路の分子を脱リン酸化して細胞の活性化を妨げるチロシンホスファターゼを補充することが示されている（Ｂｕｒｓｈｔｙｎ等、Ｉｍｍｕｎｉｔｙ４：７７〜８５，１９９６を参照のこと）。ＫＩＲは、一般に、２６個のアミノ酸だけ離れたこれらモチーフの２つ［ＹｘｘＬ／Ｖ（ｘ）₂₆ＹＸＸＬ／Ｖ］を有する。ヒト白血球抗原（ＨＬＡ）Ｃ対立遺伝子（ＭＨＣクラスＩ分子）に対してそれぞれ特異的である少なくとも２つのＮＫ細胞受容体は、阻害性及び活性受容体として存在する。これら受容体は、細胞外部分では相同性が高いが、その膜貫通及び細胞質部分では主要な相違点を有する。この相違点の１つは、阻害性受容体ではＩＴＩＭモチーフが出現しているのに活性受容体ではＩＴＩＭモチーフが欠損していることである（Ｂｉａｓｓｏｎｉ等、ＪｏｕｒｎａｌＥｘｐ．Ｍｅｄ．１８３：６４５〜６５０，１９９６を参照のこと）。マウス肥満細胞、ｇｐ４９Ｂ１によって発現されるイムノレセプターも免疫グロブリンスーパーファミリーの一員であるが、細胞活性化をダウンレギュレートすることが知られていて、一対のＩＴＩＭモチーフを含む。ｇｐ４９Ｂ１は、ヒトＫＩＲと高度の相同性を共有する（Ｋａｔｚ等、ＣｅｌｌＢｉｏｌｏｇｙ、９３：１０８０９〜１０８１４，１９９６）。マウスＮＫ細胞もイムノレセプターファミリーであるＬｙ４９ファミリーを発現し、これもＩＴＩＭモチーフを含み、ヒトＫＩＲと同じように機能する。しかしながら、Ｌｙ４９イムノレセプターにはヒトＫＩＲとの構造的相同性が無く、細胞外にＣ型レクチンドメインを含み、レクチンスーパーファミリー分子のメンバーになっている（Ｌａｎｉｅｒ等、ＩｍｍｕｎｏｌｏｇｙＴｏｄａｙ１７：８６〜９１，１９９６を参照のこと）。相反するキナーゼとホスファターゼによって仲介される免疫系の活性及び阻害性シグナルが免疫系のバランスを維持するのにきわめて重要であるのは明らかである。活性シグナルが優勢であるシステムは自己免疫及び炎症につながる。阻害性シグナルが優勢であるシステムは被感染細胞又は癌細胞をより攻撃し得ない。新しい活性又は阻害性受容体を単離することは、受容体を介して伝達される生物学的なシグナルを研究するためにきわめて望ましい。さらに、そのような分子を同定することは、自己免疫、炎症及び感染に関連した病的状態を調節及び治療する手段を提供する。例えば、アゴニスト性の抗体又はリガンドのついたＩＴＩＭモチーフを有する新発見の細胞表面受容体を動員することは、免疫系が過剰に活動していて過度の炎症又は免疫病理が存在している病的状態にある細胞機能をダウンレギュレートするために使用され得る。一方、受容体又は受容体の可溶型に特異的なアンタゴニスト性の抗体を使用することは、細胞表面受容体と受容体リガンドとの相互作用を妨害し、抑制された免疫機能に関連している病的状態にある特定の免疫機能を活性化するために使用され得る。逆に、ＩＴＩＭモチーフを欠いている受容体は、上記のように、一度動員されれば活性シグナルを送るので、抗体及び可溶性受容体の効果は記載したものとは反対になる。発明の要約本発明は、本明細書で白血球免疫グロブリン様受容体（ＬＩＲ）ポリペプチドと呼ぶ、免疫グロブリンスーパーファミリーの新ファミリーのイムノレセプター分子を提供する。本発明の範囲内には、本明細書に開示されるＬＩＲファミリーメンバーをコードするＤＮＡ配列及びそれから導かれるアミノ酸配列がある。本発明にさらに含まれるのは、規定された配列を有するオリゴヌクレオチドプローブ又はそのプローブに相補的なＤＮＡ又はＲＮＡにハイブリダイズするＤＮＡにコードされるポリペプチドである。本発明はまた、ＬＩＲファミリーメンバーをコードするＤＮＡを含む組換え発現ベクターを含む。さらに本発明の範囲内には、上記の核酸配列及びその核酸配列に相補的な配列によってコードされるポリペプチドと実質的に同一である又は実質的に類似したポリペプチドを、遺伝子暗号の縮重性によりコードするヌクレオチド配列がある。さらに、本発明は、ＤＮＡ配列をコードするＬＩＲファミリーメンバーを含む組換え発現ベクターで形質転換された宿主細胞を、ＬＩＲポリペプチドファミリーメンバーを発現させるのに適した条件で培養し、発現されたＬＩＲポリペプチドを培養物から回収することによってＬＩＲファミリーのポリペプチドを産生するための方法を含む。本発明はまた、ＬＩＲ及びＬＩＲファミリーメンバーに対するアゴニスト性およびアンタゴニスト性の抗体を提供する。さらに本発明のなかには、ＬＩＲファミリーメンバーの可溶性部分及びＩｇのＦｃ部分を含む融合タンパク質がある。陰性シグナル伝達のＬＩＲが細胞機能をダウンレギュレートできないことに起因する自己免疫疾患が介在した障害は、ＬＩＲファミリーメンバーのアゴニスト性抗体又はリガンドの治療有効量を、そのような障害に罹っている患者へ投与することによって治療され得る。抑制された免疫機能に起因する病的状態が介在する障害は、陰性シグナル伝達ＬＩＲの可溶型を投与することによって治療され得る。逆に、活性シグナル伝達ＬＩＲの不全に起因した疾患によって介在される障害は、活性受容体のアゴニスト性抗体を投与することによって治療され得る。自己免疫機能に起因した状態によって介在される障害は、活性受容体の可溶型を投与することによって治療され得る。発明の詳細な説明ＭＨＣクラスＩ抗原との配列類似性を有するウイルスの糖タンパク質を使用して、ＬＩＲ−Ｐ３Ｇ２と名付ける新しいポリペプチド及びＬＩＲポリペプチドファミリーと命名する新しい細胞表面ポリペプチドファミリーを単離・同定した。このＬＩＲポリペプチドファミリーメンバーは、免疫グロブリン様ドメインを有する細胞外領域を含むことで、免疫グロブリンスーパーファミリーの新しいサブファミリーメンバーとされる。ＬＩＲファミリーメンバーは、非常に類似した細胞外部分を有することで特徴づけられる一方で、その膜貫通領域及び細胞質領域で区別され得る３つのポリペプチド・グループを含む。ＬＩＲポリペプチドの１グループは正に荷電した残基及び短い細胞質テールを含む膜貫通領域を有し、第二のグループは非極性の膜貫通領域及び長い細胞質テールを有する。第三のグループは、膜貫通領域も細胞質テールも無い可溶性タンパク質として発現されるポリペプチドを含む。ＬＩＲ−Ｐ３Ｇ２は様々な細胞によって発現され、ＨＬＡ−Ｂ４４分子、ＨＬＡ−Ａ２ＭＨＣ分子及び実施例１４に記載される対立形質（ａｌｌｅｌｅ）を認識する。ＬＩＲ−ｐｂｍ８と命名される別のＬＩＲファミリーメンバーも様々な細胞によって発現され、数多くのＭＨＣクラスＩ分子を認識する。既知の分子から類推して、ＬＩＲ−Ｐ３Ｇ２、ＬＩＲ−ｐｂｍ８及びＬＩＲメンバーは、免疫認識及び／又は自己／非自己の区別においてある役割を演じている。以下の実施例１〜３は、Ｐ３Ｇ２（ＬＩＲ−Ｐ３Ｇ２）及び１８Ａ３（ＬＩＲ −１８Ａ３）と命名される実質的に同一のポリペプチドをコードするｃＤＮＡを単離することを記載する。簡潔に言えば、クラスＩＭＨＣ様分子であるＵＬ１８をまず発現させ、ＵＬ１８を用いてＰ３Ｇ２及び１８Ａ３を単離・同定することによって、ＬＩＲ−Ｐ３Ｇ２ファミリーメンバーを単離した。単離されたＰ３Ｇ２のｃＤＮＡ及び１８Ａ３のｃＤＮＡのヌクレオチド配列は、それぞれＳＥＱＩＤＮＯ：１及びＳＥＱＩＤＮＯ：３と表示される。ＳＥＱＩＤＮＯ：１及びＳＥＱＩＤＮＯ：３と表されるｃＤＮＡによってコードされるアミノ酸配列は、それぞれＳＥＱＩＤＮＯ：２及びＳＥＱＩＤＮＯ：４と表示される。Ｐ３Ｇ２のアミノ酸配列（ＳＥＱＩＤＮＯ：２）は、１６個のアミノ酸（アミノ酸１〜１６）のシグナルペプチドを含む４５８個のアミノ酸（１〜４５８）の予測される細胞外ドメイン、２５個のアミノ酸（アミノ酸４５９〜４８３）からなる膜貫通ドメイン及び１６７個のアミノ酸（アミノ酸４８４〜６５０）からなる細胞質ドメインを有する。細胞外ドメインは４つの免疫グロブリン様ドメインを含む。Ｉｇ様ドメインＩはアミノ酸１７〜１１８付近を含み、Ｉｇ様ドメインＩＩはアミノ酸１１９〜２２０付近を含み、Ｉｇ様ドメインＩＩＩはアミノ酸２２１〜３１８付近を含み、Ｉｇ様ドメインＩＶはアミノ酸３１９〜４１９付近を含む。重要なことに、このポリペプチドの細胞質ドメインは４つのＩＴＩＭモチーフを含み、それぞれがＹｘｘＬ／Ｖのコンセンサス配列を有する。第一のＩＴＩＭモチーフ対がアミノ酸５３３−５３６及び５６２−５６５に見出され、第二の対はアミノ酸６１４−６１７及び６４４−６４７に見出される。この特徴は、ＫＩＲにはＩＴＩＭモチーフが１対しかないことを除けば、ＫＩＲに見出されるＩＴＩＭモチーフと同一である。１８Ａ３アミノ酸配列は、１６個のアミノ酸（アミノ酸１〜１６）のシグナルペプチドを含む４５９個のアミノ酸（１〜４５９）からなる予測される細胞外ドメイン、２５個のアミノ酸（アミノ酸４６０〜４８４）からなる膜貫通ドメイン及び１６８個のアミノ酸（アミノ酸４８５〜６５２）からなる細胞質ドメインを有する。１８Ａ３のアミノ酸配列（ＳＥＱＩＤＮＯ：４）は、Ｐ３Ｇ２のアミノ酸配列（ＳＥＱＩＤＮＯ：２）と実質的に同一であるが、ただし、１８Ａ３はさらに２つのアミノ酸（アミノ酸４３８及び５５２）を有し、アミノ酸１４２位がＰ３Ｇ２ではスレオニン残基であるのに対し、１８Ａ３ではイソロイシン残基になっている点が異なる。さらに、１８Ａ３は１５５位のアミノ酸にセリン残基を有するが、Ｐ３Ｇ２は１５５位にイソロイシン残基を有する。最後に、１８Ａ３ポリペプチドはアミノ酸６２７位にグルタミン酸を有するが、Ｐ３Ｇ２は、１８Ａ３ポリペプチドの６２７残基に相当する６２５位にリジンを有する。１８Ａ３細胞質ドメインのＩＴＩＭモチーフは、アミノ酸５３４−５３７と５６４−５６７位及び６１６−６１９と６４６−６４９位である。グリコシレーション部位はアミノ酸の３つ組、Ａｓｎ−Ｘ−Ｙに存在し、ここでＸはプロリンを除く任意のアミノ酸であり、ＹはＳｅｒ又はＴｈｒである。従って、ＬＩＲ−Ｐ３Ｇ２の潜在的なグリコシレーション部位は、アミノ酸１４０−１４２、２８１− ２８３、３０２−３０４及び３４１−３４３に存在し、ＬＩＲ−１８Ａ３上のグリコシレーション部位は、２８１−２８３、３０２−３０４及び３４１−３４３に存在する。これらのコードされるポリペプチドの特徴は、Ｉ型膜貫通糖タンパク質に一致している。実施例８〜１０は、ＬＩＲ−Ｐ３Ｇ２の細胞外領域をコードするＤＮＡから得られたプローブにハイブリダイズするプラスミドでｃＤＮＡライブラリーをプローブすることによって、８つの追加的なＬＩＲポリペプチドファミリーメンバーを単離同定することを記載する。単離されたＬＩＲファミリーメンバーのヌクレオチド配列（ｃＤＮＡ）は、ＳＥＱＩＤＮＯ：７（ｐｂｍ２５と命名）、ＳＥＱＩＤＮＯ：９（ｐｂｍ８と命名）、ＳＥＱＩＤＮＯ：１１（ｐｂｍ３６−２と命名）、ＳＥＱＩＤＮＯ：１３（ｐｂｍ３６−４と命名）、ＳＥＱＩＤＮＯ：１５（ｐｂｍｈｈと命名）、ＳＥＱＩＤＮＯ：１７（ｐｂｍ２と命名）、ＳＥＱＩＤＮＯ：１９（ｐｂｍ１７と命名）及びＳＥＱＩＤＮＯ：２１（ｐｂｍｎｅｗと命名）と表される。それらによってコードされるアミノ酸配列は、ＳＥＱＩＤＮＯ：８（ｐｂｍ２５と命名）、ＳＥＱＩＤＮＯ：１０（ｐｂｍ８と命名）、ＳＥＱＩＤＮＯ：１２（ｐｂｍ３６− ２と命名）、ＳＥＱＩＤＮＯ：１４（ｐｂｍ３６−４と命名）、ＳＥＱＩＤＮＯ：１６（ｐｂｍｈｈと命名）、ＳＥＱＩＤＮＯ：１８（ｐｂｍ２と命名）、ＳＥＱＩＤＮＯ：２０（ｐｂｍ１７と命名）及びＳＥＱＩＤＮＯ：２２（ｐｂｍｎｅｗと命名）とそれぞれ表される。ＳＥＱＩＤＮＯ：１０、１２、１４、１６、１８、２０及び２２のＬＩＲファミリーメンバーに対して同定された細胞外、膜貫通及び細胞質領域を以下に示す。ＳＥＱＩＤＮＯ：８に表されるポリペプチドは、膜貫通及び細胞質領域の無い可溶性タンパク質である。当業者に理解されるように、上記のＰ３Ｇ２及び１８Ａ３の膜貫通領域及び下記に示すＬＩＲポリペプチドファミリーメンバーのそれは、そのような領域に関連した疎水性ドメインを同定するための従来からの判断基準に準じて同定される。従って、任意に選択される膜貫通領域の正確な境界部分は、上記のものとは異なる可能性がある。典型的には、ドメインの両端で、膜貫通領域は５アミノ酸以上ずれない。当技術分野で知られていて、タンパク質のそのような疎水性領域を同定するために有用なコンピュータ・プログラムが入手可能である。ＳＥＱＩＤＮＯ：８（ＬＩＲ−ｐｂｍ２５）に示されるポリペプチドは、アミノ酸１−４３９及びシグナルペプチドのアミノ酸１−１６からなる全アミノ酸配列を含む細胞外ドメインを有する。ＳＥＱＩＤＮＯ：１０（ＬＩＲ−ｐｂｍ８）に示されるアミノ酸配列は、１６個のアミノ酸シグナルペプチド（アミノ酸１−１６）を含む、４５８アミノ酸の予測される細胞外領域（１−４５８）、アミノ酸４５９−４８３を含む膜貫通ドメイン、及びアミノ酸４８４−５９８を含む細胞質ドメインを有する。細胞外ドメインは４つの免疫グロブリン様ドメインを含み、細胞質ドメインはアミノ酸５３３−５３６及び５６２−５６５にＩＴＩＭモチーフを含む。ＳＥＱＩＤＮＯ：１２（ＬＩＲ−ｐｂｍ３６−２）に示されるアミノ酸配列は、アミノ酸１−１６由来の１６個のアミノ酸シグナルペプチドを含む、予測される細胞外ドメイン、アミノ酸２６２−２８０を含む膜貫通ドメイン、及びアミノ酸２８１−２８９からなる細胞質ドメインを有する。膜貫通ドメインは２６４位に荷電したアルギニン残基を含み、細胞質ドメインは短く、９アミノ酸だけの長さでしかない。ＳＥＱＩＤＮＯ：１４（ＬＩＲ−ｐｂｍ３６−４）に示されるアミノ酸配列は、アミノ酸１−１６由来のシグナルペプチドを含むアミノ酸１−４６１の予測される細胞外ドメイン、アミノ酸４６２−４８０を含み、アミノ酸４６４位に荷電したアルギニン残基を有する膜貫通ドメイン、及びアミノ酸４８１−４８９を含む細胞質ドメインを有する。ＳＥＱＩＤＮＯ：１４の細胞外領域は、ＳＥＱＩＤＮＯ：１２のそれとほとんど同一であるが、ＳＥＱＩＤＮＯ：１２の細胞外領域には２つの免疫グロブリン様ドメインがあるのに対し、それは４つの免疫グロブリンドメインを有する。ＳＥＱＩＤＮＯ：１２及びＳＥＱＩＤＮＯ：１４に示されるアミノ酸配列は、同一の遺伝子から選択的にスプライスされる転写産物によってコードされるタンパク質である可能性がある。ＳＥＱＩＤＮＯ：１６（ＬＩＲ−ｐｂｍｈｈ）に示されるアミノ酸配列は、アミノ酸１−４４９及びアミノ酸１−１６由来のシグナルペプチドを含む予測される細胞外ドメイン、荷電したアルギニン残基をアミノ酸４５２位に有するアミノ酸４５０−４６８を含む膜貫通ドメイン、及びアミノ酸４６９−４８３を含む細胞質ドメインを有する。細胞質ドメインは短くて、１５アミノ酸の長さである。細胞外ドメインは４つの免疫グロブリン様ドメインを含む。ＳＥＱＩＤＮＯ：１８（ＬＩＲ−ｐｂｍ２）に示されるアミノ酸配列は、アミノ酸１−２５９及びアミノ酸１−１６のシグナルペプチドを含む予測される細胞外領域、アミノ酸２６０−２８０を含む膜貫通ドメイン、及びアミノ酸２８１−４４８を含む細胞質ドメインを有する。このＬＩＲファミリーメンバーは、アミノ酸４１２−４１５及び４４２−４４５にＩＴＩＭモチーフを含む細胞質ドメインを有する。細胞外ドメインは２つの免疫グロブリン様ドメインを含む。ＳＥＱＩＤＮＯ：２０（ＬＩＲ−ｐｂｍ１７）に示されるアミノ酸配列は、アミノ酸１−１６のシグナルペプチドを含むアミノ酸１−４４３の予測される細胞外ドメイン、アミノ酸４４４−４６４を含む膜貫通ドメイン、及びアミノ酸４６５−６３１の細胞質ドメインを有する。細胞外ドメインは４つの免疫グロブリン様ドメインを含む。ＳＥＱＩＤＮＯ：２０は、２対のＩＴＩＭ−ＹｘｘＬ／Ｖモチーフを細胞質ドメインに有する。第一の対はアミノ酸５１４−５１７及び５４３−５４６にあり、第二の対はアミノ酸５９５−５９８及び６２５− ６２８にある。ＳＥＱＩＤＮＯ：２２（ＬＩＲ−ｐｂｍｎｅｗ）に示されるアミノ酸配列は、アミノ酸１−１６のシグナルペプチドを含むアミノ酸１−４５６の予測される細胞外ドメイン、アミノ酸４５７−５７９を含む膜貫通ドメイン、及びアミノ酸５８０−５９０の細胞質ドメインを有する。細胞外ドメインは、４つの免疫グロブリン様ドメインを含む。ＳＥＱＩＤＮＯ：２２は、アミノ酸５５４−５５７及び５８４−５８７にＩＴＩＭモチーフを有する。ＳＥＱＩＤＮＯ：２、４、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０及び２２に表される配列から、ＬＩＲファミリーが３つのグループのポリペプチドを含むことが示される。１つのグループは、膜貫通領域内の荷電アルギニン残基及びその短い細胞質領域によって区別されるＳＥＱＩＤＮＯ：１２、１４及び１６のポリペプチドを含む。第二のグループは、疎水性の細胞質ドメイン及び細胞質領域内におけるＩＴＩＭモチーフの存在によって区別されるＳＥＱＩＤＮＯ：２、４、１０、１８、２０及び２２を含む。第三のグループは、可溶性のポリペプチドとして発現され、膜貫通領域が無いＳＥＱＩＤＮＯ：８のポリペプチドを含む。この可溶性ポリペプチドは、細胞表面のファミリーメンバーのその受容体との相互作用を妨げるように機能する可能性がある。また、この可溶性ポリペプチドは、その受容体と結合したときには、活性シグナルとして作用し得る。一般にＬＩＲポリペプチドは、Ｐ３Ｇ２細胞外領域をコードするＤＮＡにハイブリダイズするそのコードＤＮＡの能力によって特徴づけられる。ＳＥＱＩＤＮＯ：２、４、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０及び２２に示されるＬＩＲファミリーメンバーの細胞外領域は、５９％〜８４％に及ぶ高度の相同性を有する。ＳＥＱＩＤＮＯ：１２とＳＥＱＩＤＮＯ：１４の細胞外領域は、これらポリペプチドが同一の遺伝子に由来するので、ほぼ１００％の配列相同性を共有する。同様に、ＳＥＱＩＤＮＯ：２とＳＥＱＩＤＮＯ：４は９５％以上の配列相同性を共有するが、これらは同一遺伝子の対立遺伝子（アリル）であり得ると考えられる。他の免疫グロブリンスーパーファミリーメンバーとの構造類似性を共有する一方で、ＬＩＲファミリーメンバーは免疫グロブリンスーパーファミリーのこれらメンバーに対して限られた相同性を有する。最も近い構造類似性を有する分子は、ヒトＫＩＲ及びマウスｇｐ４９である。しかしながら、ＬＩＲ細胞外領域は、ＮＫＡＴ３及びｐ５８ＣＬ−３９の細胞外領域とそれぞれ３８−４２％の同一性しか共有しない。ＬＩＲファミリーメンバーの細胞外領域は、マウスｇｐ４９と３５〜４７％しか相同でない。対照的に、ＫＩＲは、全般に、８１％相同であるＮＫＡＴ３及びｐ５８ＣＬ−３９とは少なくとも８０％のアミノ酸同一性を共有することが知られている。さらに、既知のＫＩＲ分子のなかには、ここで知られたＬＩＲファミリーメンバーの２つを除くすべてに特徴的である４つの細胞外免疫グロブリンドメインを有するものはない。本明細書に開示されるＬＩＲ関連ポリペプチド間の高度の配列相同性及びＫＩＲとの相対的に低い相同性に照らせば、このＬＩＲポリペプチドは新規の免疫調節剤ファミリーメンバーなのである。ＬＩＲポリペプチドのアミノ酸配列の分析から、ＬＩＲポリペプチドのアミノ酸にある特定の広がり部分が高度に保存されていることが明らかにされる。この保存領域の１つはアミノ酸５−５０の配列である。データベース検索から、ＬＩＲファミリーメンバーが、このＬＩＲ保存領域において、どんなに構造的に類似した先行ポリペプチドとも実質的に異なっていることが確かめられた。このデータベース検索及び構造分析は、データベースを検索し、アミノ酸配列を並置して、ある与えられた配列内の同一性及び変動性を決定するための局在配列検索ツールである、ＢＬＡＳＴＮＢＩを使用して実施された。ＢＬＡＳＴＮＢＩソフトウェアは、インターネットのｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ３．ｎｃｂｌ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／ｅｎｔｒｅｚ／ｂｌａｓｔでアクセス可能である。ＳＥＱＩＤＮＯ：２のアミノ酸５−５０の配列との相同性を有する配列をＢＬＡＳＴＮＢＩで検索したところ、最も構造的に類似したタンパク質であるＦｃγＩＩＲ、ｇｐ４９Ｂ２型及びｇｐ４９Ｂ１型が、ＳＥＱＩＤＮＯ：２のアミノ酸５−５０と、それぞれ６３％、６７％及び６７％の同一性を有することが見出された。これは、ＳＥＱＩＤＮＯ：２のアミノ酸５−５０に対するＬＩＲファミリーの７７％〜１００％の同一性と対照的である。特に言うと、本発明のＬＩＲファミリーメンバーは、ＳＥＱＩＤＮＯ：２のアミノ酸５−５０と以下の同一性を有する：ＳＥＱＩＤＮＯ：８は９６％の同一性、ＳＥＱＩＤＮＯ：１０は９０％の同一性、ＳＥＱＩＤＮＯ：１２は９６％の同一性、ＳＥＱＩＤＮＯ：１４は９１％の同一性、ＳＥＱＩＤＮＯ：１６は９７％の同一性、ＳＥＱＩＤＮＯ：１８は７７％の同一性、ＳＥＱＩＤＮＯ：２０は８０％の同一性、及びＳＥＱＩＤＮＯ：２２は８０％の同一性を有する。本明細書に使用される配列同一性とは、同一である並置アミノ酸の数を比較される２つの配列のより短いアミノ酸の全数で割ったものである。配列を並置して配列の同一性及び変動性を決定するための多数のコンピュータ・プログラムが市販されている。これらのプログラムは、上記の同一性の定義に基づいた同一性の情報を提供する。１つの適切なコンピュータ・プログラムは、Ｄｅｖｅｒｅｕｘ等によって記載され（Ｎｕｃｌ．ＡｃｉｄｓＲｅｓ．１２：３８７，１９８４）、ウィスコンシン大学遺伝学コンピュータ・グループ（ＵＷＧＣＧ）より供される、ＧＡＰプログラム、バージョン６．０である。ＧＡＰプログラムは、ＳｍｉｔｈとＷａｔｅｒｍａｎ（Ａｄｖ．Ａｐｐｌ．Ｍａｔｈ２：４８２，１９８１）によって修正された、ＮｅｅｄｌｅｍａｎとＷｕｎｓｃｈ（Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．４８：４４３，１９７０）の並置法を利用している。ＧＡＰプログラムに対する好ましいデフォルト・パラメータは、（１）ヌクレオチド用の単一比較マトリックス（同一性に対する１の値及び非同一性に対する０の値を含む）及び、ＳｃｈｗａｒｔｚとＤａｙｈｏｆｆ編「タンパク質の配列及び構造アトラス」国立バイオメディカル研究財団、３５３〜３５８頁、１９７９に記載されるような、ＧｒｉｂｓｋｏｖとＢｕｒｇｅｓｓ、Ｎｕｃｌ．ＡｃｉｄｓＲｅｓ．１４：６７４５，１９８６の加重比較マトリックス；（２）各ギャップに対する３．０のペナルティ及び各ギャップ内の各シンボルに対する追加的な０．１０のペナルティ；及び（３）エンドギャップに対してはノーぺナルティ、を含む。配列操作用ＧＣＧコンピュータ・パッケージの一部としてやはりウィスコンシン大学から供される他の類似プログラムに、ＢＥＳＴＦＩＴプログラムがある。もうひとつの態様では、本発明のポリペプチドは、アミノ酸配列（ＳＥＱＩＤＮＯ：２８）：ＬｅｕＸａａ_a ＬｅｕＳｅｒＸａａ_b Ｘａａ_c ＰｒｏＡｒｇＴｈｒＸａａ_d Ｘａａ_e ＧｌｎＸａａ_f ＧｌｙＸａａ_g Ｘａａ_h ＰｒｏＸａａ_i ＰｒｏＴｈｒＬｅｕＴｒｐＡｌａＧｌｕＰｒｏＸａａ_j ＳｅｒＰｈｅＩｌｅＸａａ_j Ｘａａ₇₀ ＳｅｒＡｓｐＰｒｏＬｙｓＬｅｕＸａａ_k ＬｅｕＶａｌＸａａ_m ＴｈｒＧｌｙ（ここで、Ｘａａ_aはＧｌｙ又はＡｒｇ；Ｘａａ_bはＬｅｕ又はＶａｌ；Ｘａａ_cはＧｌｙ又はＡｓｐ；Ｘａａ_dはＨｉｓＡｒｇ又はＣｙｓ；Ｘａａ_eはＶａｌ又はＭｅｔ；Ｘａａ_fはＡｌ_a又はＴｈｒ；Ｘａａ_gはＨｉｓＰｒｏ又はＴｈｒ；ｘａａ_hはＬｅｕＩｌｅ又はＰｈｅ；Ｘａａ_iはＧｌｙＡｓｐ又はＡｌａ；Ｘａａ_jはＴｈｒＩｌｅＳｅｒ又はＡｌａ；Ｘａａ_kはＧｌｙ又はＶａｌ；Ｘａａ_mはＭｅｔ又はＡｌａ；Ｘａａ₇₀は７０個のアミノ酸配列である）を有するものとして独自に特徴付けられる保存配列を有する。上記のように、ある種のＬＩＲファミリーメンバーは、細胞質ドメインにＩＴＩＭモチーフ（ＹｘｘＬ／Ｖ_25・26ＹｘｘＬ／Ｖ）を有する。ＫＩＲ、ＣＤ２２、ＦｃγＲＩＩｂｌのような多くの免疫調節レセプターもその細胞質ドメインにＩＴＩＭを有し、細胞機能をダウンレギュレート又は阻害する阻害性シグナルを送るように機能することが知られている。これら受容体は、ＩＴＩＭモチーフへの結合を介してＳＨＰ‐１ホスファターゼと結合することが示されている。受容体によるＳＨＰ‐１ホスファターゼの補充は、この受容体の阻害性機能を調節する細胞内シグナル伝達経路のために必要とされるようである。実施例１１に記載される実験は、ＬＩＲ−Ｐ３Ｇ２及びＬＩＲ−ｐｂｍ８がリン酸化とともにＳＨＰ‐１ホスファターゼと結合し、単球の活性化経路を介して阻害性シグナルを発生させることを実証している。ＫＩＲ、ＣＤ２２、ＦｃγＲＩＩｂｌのような多くの免疫調節レセプターは、その細胞質ドメインにＩＴＩＭを有し、細胞機能をダウンレギュレート又は阻害する阻害性シグナルを送るように機能することが知られている。従って、ＫＩＲ、ＣＤ２２、ＦｃγＲＩＩｂｌとの類推によれば、ＩＴＩＭモチーフを有するＳＥＱＩＤＮＯ：２、４、１０、１８、２０及び２２に示されるＬＩＲファミリーメンバーは、ＬＩＲが適切な受容体と共連結（ｃｏｌｉｇａｔｅ）されるとき、ＳＨＰ−１チロシンホスファターゼ又は他のチロシンホスファターゼとＩＴＩＭとの相互作用を介して阻害性シグナルを伝達する。また、ＩＴＩＭを有する免疫調節レセプターとの類推によれば、ＬＩＲファミリーメンバーは体液性、炎症性及びアレルギー性の応答に対して調節的な影響力を有する。ＳＥＱＩＤＮＯ：１２、１４及び１６に示されるＬＩＲファミリーメンバーは、比較的短い細胞質ドメインを有し、少なくとも１つの荷電残基を有する膜貫通領域を有し、ＩＴＩＭモチーフを持たない。ＩＴＩＭモチーフを欠き、荷電された膜貫通領域を有する膜タンパク質との類推によれば、これらのファミリーメンバーは細胞に対する刺激性又は活性シグナルを仲介する。例えば、膜貫通領域内に荷電残基を含む膜結合性のタンパク質は、イムノレセプターチロシンベース活性化モチーフ（ＩＴＡＭ）として知られるモチーフのある細胞質テールを有する他の膜結合性タンパク質と会合することが知られている。会合すると、ＩＴＡＭはリン酸化され、活性化シグナルを伝達する。ＬＩＲ−Ｐ３Ｇ２と命名されたＬＩＲポリペプチドは、トランスフェクトされた細胞又は正常細胞の表面で発現される。このことは、フローサイトメトリー及び沈降法によって、ＬＩＲ−Ｐ３Ｇ２が単球、ＮＫ細胞亜集団及びＢ細胞上に見出されることを示した、実施例３及び実施例５に記載された実験結果によって証明される。Ｐ３Ｇ２はＴ細胞の小サブセット（ｓｕｂｓｅｔ）上に検出された。Ｐ３Ｇ２は１１０〜１２０ｋＤａの糖タンパク質として発現される。Ｐ３Ｇ２には４つの潜在的なグリコシレーション部位があるので、その分子量はグリコシレーションの度合いによって変化するだろう。グリコシレーション部位はアミノ酸の３つ組、Ａｓｎ−Ｘ−Ｙに存在し、ここでＸはプロリンを除く任意のアミノ酸であり、ＹはＳｅｒ又はＴｈｒである。Ｐ３Ｇ２上の潜在的なグリコシレーション部位は、アミノ酸１３９−１４１、２８０−２８２、３０２−３０４及び３４０−３４２に存在する。実施例３に記載されるようにして単離されたＰ３Ｇ２−ＬＩＲの、ＵＬ１８とは異なる細胞表面リガンドに結合する能力が試験された。実施例７に詳述される実験結果によって示されるように、Ｐ３Ｇ２はクラスＩＭＨＣ抗原であるＨＬＡ −Ｂ４４及びＨＬＡ−Ａ２に結合する。同様に、実施例１４に示すように、ＬＩＲ−Ｐ３Ｇ２及びＬＩＲ−ｐｂｍ８は様々なＨＬＡ−Ａ、−Ｂ及び−Ｃの対立形質に結合し、広域スペクトルのＭＨＣクラスＩ特性を認識する。クラスＩＭＨＣ分子は、免疫監視、自己／非自己の区別、感染に対する免疫応答等において中心的な役割を担っているので、ＬＩＲ−Ｐ３Ｇ２及びＬＩＲ−ｐｂｍ８ポリペプチドも免疫応答の調節にある役割を演じている。腫瘍細胞及びウイルス被感染細胞を殺すＮＫ細胞の溶解活性は、活性及び阻害性シグナルの微妙なモジュレーションによって調節されていることが知られている。ＬＩＲ−Ｐ３Ｇ２及びＬＩＲ− ｐｂｍ８が結合する同じＨＬＡクラスＩ分子に特異的な受容体は、その引き金となるメカニズムにおいて、活性又は阻害性であり得る。類推すれば、ＭＨＣクラスＩ分子に結合するＬＩＲ−Ｐ３Ｇ２及びＬＩＲ−ｐｂｍ８は、免疫系の細胞活性を均衡化する役割を担っていて、免疫系のバランスが崩れている病態の治療に有用である。本発明の範囲内には、本明細書に教示されるような中等度から高度のストリンジェント条件のもとでＬＩＲ−Ｐ３Ｇ２の細胞外ＤＮＡプローブにハイブリダイズするＤＮＡによってコードされるアミノ酸配列を含むポリペプチドがある。本発明のポリペプチドをコードするＤＮＡにハイブリダイズするプローブは、ＳＥＱＩＤＮＯ：１のヌクレオチド３１０−１６８４又はそのフラグメントを包含するプローブを含む。ハイブリダイゼーション・プローブとして利用されるＳＥＱＩＤＮＯ：１のフラグメントは、好ましくは１７ヌクレオチド以上の長さであり、ヌクレオチド３５８−１６８４；ヌクレオチド３２２−４５９（ＬＩＲ保存配列をコードする）；又はＳＥＱＩＤＮＯ：５、６、２３、２４、２７及び１又はそれらのフラグメントに相補的であるＤＮＡ又はＲＮＡを含み得る。ＳＥＱＩＤＮＯ：５、６、２３、２４及び２７のフラグメントは制限部位のないこれらの配列を含む。ハイブリダイゼーション条件は、例えばＳａｍｂｒｏｏｋ等、「分子クローニング：研究室マニュアル」第２版、第１巻１．１０１〜１０４頁、コールドスプリングハーバーラボラトリープレス、１９８９に記載される中等度ストリンジェント条件であり得る。中等度ストリンジェント条件は、Ｓａｍｂｒｏｏｋ等によって定義されるように、５ｘＳＳＣ、０．５％ＳＤＳ、１．０ｍＭＥＤＴＡ（ｐＨ８．０）のプレ洗浄溶液、及び約５５℃、５ｘＳＳＣ、一晩、というハイブリダイゼーション条件を含む。高度ストリンジェント条件は、より高い温度のハイブリダイゼーション及び洗浄を含む。当業者は、プローブの長さのような要因に応じて、必要ならば温度及び洗浄溶液の塩濃度が調整され得ることを認知されよう。好ましい実施形態は、少なくとも１７のヌクレオチドを有するＬＩＲ−Ｐ３Ｇ２の細胞外領域のプローブにハイブリダイズするＤＮＡによってコードされるアミノ酸配列を含む。好ましいハイブリダイズ条件は、デンハート液、０．０５ＭＴＲＩＳ（ｐＨ７．５）、０．９ＭＮａＣｌ、０．１％ピロリン酸ナトリウム、１％ＳＤＳ及び２００μｇ／ｍＬのサケ精子ＤＮＡからなるハイブリダイゼーション溶液にて６３℃の温度で１６時間処理した後、６３℃で１時間２ｘＳＳＣで洗浄し、６３℃で１時間１ｘＳＳＣで洗浄することを含む。本発明は、ＳＥＱＩＤＮＯ：２、４、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０及び２２に示されるものと異なるが、高度に相同であるアミノ酸配列を有するポリペプチドを含む。この例は、限定しないが、他の哺乳類種由来の相同体、変異体（天然に存在する変異体及び組換えＤＮＡ技術によって産生される変異体）及び所望の生物学的活性を保持しているＬＩＲＰ３Ｇ２及びＬＩＲファミリーメンバーのフラグメントを含む。好ましくは、そのようなポリペプチドは、ＳＥＱＩＤＮＯ：２、４、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０及び２２に記載されるＬＩＲポリペプチドに関連した生物学的活性を示し、ＳＥＱＩＤＮＯ：２、４、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０及び２２に示されるポリペプチドのシグナルペプチド及び細胞外ドメインの任意のアミノ酸配列に対して少なくとも８０％同一であるアミノ酸配列を含む。好ましくは、そのようなポリペプチドは、ＳＥＱＩＤＮＯ：２、４、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０及び２２に示されるポリペプチドのシグナルペプチド及び細胞外ドメインの任意のアミノ酸配列に対して少なくとも９０％同一である。ポリペプチド間の同一性の程度を決定することは、タンパク質の配列を分析するために設計された任意のアルゴリズム又はコンピュータ・プログラムを使用して達成され得る。以下に記載される市販のＧＡＰプログラムは１つのそのようなプログラムである。他のプログラムは、やはり市販されているＢＥＳＴＦＩＴ及びＧＣＧプログラムを含む。本発明の範囲内には、ＭＨＣクラスＩ又は他のリガンドとの結合といった、ＬＩＲポリペプチドファミリーメンバーに所望される生物学的性質を保持しているＬＩＲポリペプチドフラグメントがある。１つのそのような実施形態では、ＬＩＲポリペプチドフラグメントは、細胞外ドメインのすべて又は部分を含むが、ポリペプチドの細胞膜上での保持を引き起こし得る膜貫通領域を欠く、可溶性のＬＩＲポリペプチドである。可溶性のＬＩＲポリペプチドは、それが発現される細胞から分泌され得る。有利には、この可溶性ＬＩＲが発現と同時に分泌されるように、異種のシグナルペプチドがＮ末端に融合する。可溶性のＬＩＲポリペプチドは、このシグナルペプチドをとりこんだ細胞外ドメイン及びシグナルペプチドが開裂されている細胞外ドメインを含む。可溶型ＬＩＲファミリーメンバーの使用は、ある応用にとって有利である。そのような１つの利点は、組換え宿主細胞から可溶型を精製することの容易さである。可溶性タンパク質は細胞から分泌されるので、回収プロセスの間に細胞からタンパク質を抽出する必要がない。さらに、一般に可溶性タンパク質は静脈内投与により適していて、所望の免疫機能を仲介するために、細胞表面のＬＩＲファミリーメンバーとそのリガンドとの相互作用を阻止することに使用され得る。可溶性ＬＩＲポリペプチドは、シグナルペプチドを排除した細胞外ドメインを含む、細胞外ドメイン全体又はその任意の所望されるフラグメントを含む。従って、例えば可溶性ＬＩＲポリペプチドは、ＳＥＱＩＤＮＯ：２のアミノ酸ｘ₁ −４５８（ｘ₁はアミノ酸１又は１７である）、ＳＥＱＩＤＮＯ：４のアミノ酸ｘ₂−４５９（ｘ₂はアミノ酸１又は１７である）、ＳＥＱＩＤＮＯ：８のアミノ酸ｘ₃−４３９（ｘ₃はアミノ酸１又は１７である）、ＳＥＱＩＤＮＯ：１０のアミノ酸ｘ₄−４５８（ｘ₄はアミノ酸１又は１７である）、ＳＥＱＩＤＮＯ：１２のアミノ酸ｘ₅−２４１（アミノ酸ｘ₅はアミノ酸１又は１７である）、ＳＥＱＩＤＮＯ：１４のアミノ酸ｘ₆−４６１（ｘ₆はアミノ酸１又は１７である）、ＳＥＱＩＤＮＯ：１６のアミノ酸ｘ₇ −４４９（ｘ₇はアミノ酸１又は１７である）、ＳＥＱＩＤＮＯ：１８のアミノ酸ｘ₈−２５９（ｘ₈はアミノ酸１又は１７である）、ＳＥＱＩＤＮＯ：２０のアミノ酸ｘ₉−４４３（ｘ₉はアミノ酸１又は１７である）、ＳＥＱＩＤＮＯ：２２のアミノ酸ｘ₁₀−４５６（ｘ₁₀はアミノ酸１又は１７である）、を含む。上記に同定された可溶性ＬＩＲポリペプチドは、シグナルペプチドを含む及び除外するＬＩＲ細胞外領域を含む。更なる可溶性ＬＩＲポリペプチドは、ＭＨＣクラスＩ分子を含むリガンドとの結合のような、所望される生物学的活性を保持しているファミリーメンバーの細胞外ドメイン・フラグメントを含む。可溶性ポリペプチドを含めて、ＬＩＲファミリーメンバーフラグメントは、数多くの従来技術の任意の技術によって製造され得る。フラグメントをコードする所望されるＬＩＲポリペプチドをコードするＤＮＡ配列は、ＬＩＲポリペプチドフラグメント産生用の発現ベクターの中へサブクローン化され得る。選択されたコードＤＮＡ配列は、有利にも、適切なリーダー又はシグナルペプチドをコードする配列に融合される。ＤＮＡフラグメントをコードする所望のＬＩＲメンバーは、既知のＤＮＡ合成技術を用いて化学的に合成され得る。ＤＮＡフラグメントはまた、完全な長さのクローン化ＤＮＡ配列を制限エンドヌクレアーゼで消化することによって産生され、適切なゲルに電気泳動することによって単離され得る。必要ならば、５’又は３’末端を所望される部位へ再構築するオリゴヌクレオチドを、制限酵素の消化によって産生されるＤＮＡフラグメントへ結合してもよい。そのようなオリゴヌクレオチドは、所望されるコード配列の上流に制限エンドヌクレアーゼ開裂部位を含み、開始コドン（ＡＴＧ）をコード配列のＮ末端に配置する可能性がある。所望されるタンパク質フラグメントをコードするＤＮＡ配列を入手するのに有用なもうひとつの技術は、有名なポリメラーゼ鎖反応（ＰＣＲ）法である。所望されるＤＮＡの末端を規定するオリゴヌクレオチドが、所望のＤＮＡテンプレートから追加のＤＮＡを合成するためのプローブとして使用される。オリゴヌクレオチドはまた制限エンドヌクレアーゼのための認識部位を含み、増幅されたＤＮＡフラグメントを発現ベクターへ挿入することを促進し得る。ＰＣＲ技術は、Ｓａｉｋｉ等、Ｓｃｉｅｎｃｅ２３９：４８７（１９８８）；「組換えＤＮＡの方法論」Ｗｕ等、編、アカデミックプレス社、サンディエゴ（１９８９）１８９〜１９６頁；及び「ＰＣＲプロトコール：方法と応用のガイド」Ｉｎｎｉｓ等、編、アカデミックプレス社（１９９０）に記載されている。本発明のＬＩＲファミリーメンバーのＤＮＡは、ｃＤＮＡ、化学合成されたＤＮＡ、ＰＣＲによって単離されたＤＮＡ、ゲノムＤＮＡ及びそれらの組み合わせを含む。ゲノムＬＩＲファミリーＤＮＡは、本明細書に開示されるＬＩＲファミリーｃＤＮＡとのハイブリダイゼーションによって、標準的な技術を使用して単離され得る。ＬＩＲファミリーＤＮＡから転写されるＲＮＡも本発明に包含される。本発明の範囲内には、ＬＩＲポリペプチドコード領域のようなＤＮＡフラグメント及び可溶性ポリペプチドをコードするＤＮＡフラグメントがある。可溶性ポリペプチドをコードするＤＮＡフラグメントの例は、ＬＩＲフアミリーメンバーの全細胞外領域をコードするＤＮＡ及びシグナルペプチドを欠く領域のような細胞外領域フラグメントをコードするＤＮＡを含む。より具体的には、本発明は、ＳＥＱＩＤＮＯ：１のヌクレオチド３１０−２２６２（Ｐ３Ｇ２コード領域）；ＳＥＱＩＤＮＯ：１のヌクレオチドｘ₁−１６８３（ここでＸ₁は３１０又は３５８であり、Ｐ３Ｇ２細胞外ドメインをコードする）；ＳＥＱＩＤＮＯ：３のヌクレオチド１６８−２１２６（１８Ａ３のコード領域）及びＳＥＱＩＤＮＯ：３のヌクレオチドｘ₂−１５４４（ここでｘ₂は１６８又は２１６であり、１８Ａ３の細胞外ドメインコード領域である）；ＳＥＱＩＤＮＯ：７のヌクレオチドｘ₃−１４１２（ここでｘ₃は９３又は１４１であり、ｐｂｍ２５のコード領域及び細胞外領域である）；ＳＥＱＩＤＮＯ：９のヌクレオチド１８４−１９８０（ｐｂｍ８のコード領域）及びＳＥＱＩＤＮＯ：９のヌクレオチドｘ₄−１５５７（ここでｘ₄は１８４又は２３２であり、ｐｂｍ８の細胞外ドメインコード領域である）；ＳＥＱＩＤＮＯ：１１のヌクレオチド１７１−１０４０（ｐｂｍ３６−２のコード領域）及びＳＥＱＩＤＮＯ：１１のヌクレオチドｘ₅−８７８（ここでｘ₅は１７１又は２１９であり、ｐｂｍ３６− ２の細胞外ドメインをコードする）；ＳＥＱＩＤＮＯ：１３のヌクレオチド１８３−１６５２（ｐｂｍ３６−４のコード領域）及びＳＥＱＩＤＮＯ：１３のヌクレオチドｘ₆−１５６５（ここでｘ₆は１８３又は２３１であり、ｐｂｍ３６−４の細胞外ドメインをコードする）；ＳＥＱＩＤＮＯ：１５のヌクレオチド４０−１４９１（ｐｂｍｈｈのコード領域）及びＳＥＱＩＤＮＯ：１５のヌクレオチドｘ₇−１３８６（ここでＸ₇は４０又は８８であり、ｐｂｍｈｈの細胞外ドメインをコードする）；ＳＥＱＩＤＮＯ：１７のヌクレオチド３０−１３７６（ｐｂｍ２のコード領域）及びＳＥＱＩＤＮＯ：１７のヌクレオチドｘ₈−８０６（ここでｘ₈は３０又は７８であり、ｐｂｍ２の細胞外領域をコードする）；ＳＥＱＩＤＮＯ：１９のヌクレオチド６６−１９６１（ｐｂｍ１７のコード領域）及びＳＥＱＩＤＮＯ：１９のヌクレオチドｘ₉ −１３９４（ここでｘ₉は６６又は１１４であり、ｐｂｍ１７の細胞外ドメインをコードする）；ＳＥＱＩＤＮＯ：２１のヌクレオチド６７−１８３９（ｐｂｍｎｅｗのコード領域）及びＳＥＱＩＤＮＯ：２１のヌクレオチドｘ₁₀− １４３４（ここでｘ₁₀は６７又は１１５であり、ｐｂｍｎｅｗの細胞外ドメインをコードする）を含む。本発明に含まれるのはＳＥＱＩＤＮＯ：２、４、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０及び２２に表されるＬＩＲファミリーメンバーの生物学的に活性なフラグメントをコードするＤＮＡである。本発明は、上記の核酸配列によってコードされるポリペプチドと実質的に同一である又は実質的に類似しているポリペプチドを、遺伝暗号の縮重性によりコードするヌクレオチド配列、及びそれらに相補的な配列を包含する。従って、本発明には、天然の（ｎａｔｉｖｅ）ヒトＬＩＲファミリーメンバーｃＤＮＡのコード領域を含む、生物学的に活性なＬＩＲファミリーメンバーをコードするＤＮＡ又はそのフラグメント、及び、天然のＬＩＲポリペプチドＤＮＡ配列又は本明細書に記載された天然のＬＩＲファミリーメンバーのＤＮＡに遺伝暗号の結果として縮重しているＤＮＡがある。もうひとつの態様では、本発明は、組換え体であれ非組換え体であれ、所望の生物学的活性を保持している、ＬＩＲの変異体及び誘導体、さらにＬＩＲファミリーポリペプチドの変異体及び誘導体を含む。本明細書に言及されるＬＩＲ変異体とは、本明細書に記載されるような天然のＬＩＲポリペプチドと実質的に相同なポリペプチドであるが、変異体のアミノ酸配列は、１つ又はそれ以上の欠失、挿入又は置換のために天然のポリペプチド配列とは異なる。ＬＩＲファミリーの変異体は、天然のＬＩＲヌクレオチド配列の突然変異から入手され得る。本発明には、ＬＩＲファミリーメンバーの天然のＤＮＡに比較して１つ又はそれ以上のヌクレオチド追加、ヌクレオチド欠失又はヌクレオチド置換があるヌクレオチド配列を含み、所望の生物学的活性を有する変異体のＬＩＲポリペプチド又は変異体のＬＩＲファミリーメンバーをコードする、そのようなＤＮＡの突然変異体又は変異体がある。好ましくは、この生物学的活性は、天然のＬＩＲポリペプチドのそれと実質的に同一である。本発明の変異体のアミノ酸配列及び変異体のヌクレオチド配列は、好ましくは天然のＬＩＲフアミリーメンバーの配列に対して少なくとも８０％同一である。天然のアミノ酸又はヌクレオチド配列と変異体のアミノ酸又はヌクレオチド配列との相同性又は同一性を決定するための１つの方法は、そのような目的のために供されるコンピュータ・プログラムを使用して配列を比較することである。１つの好適なコンピュータ・プログラムは、Ｄｅｖｅｒｅｕｘ等によって記載され（Ｎｕｃｌ．ＡｃｉｄｓＲｅｓ．１２：３８７，１９８４）、ウィスコンシン大学遺伝学コンピュータ・グループ（ＵＷＧＣＧ）より供される、ＧＡＰプログラム、バージョン６．０である。ＧＡＰプログラムは、ＳｍｉｔｈとＷａｔｅｒｍａｎ（Ａｄｖ．Ａｐｐｌ．Ｍａｔｈ２：４８２，１９８１）によって修正された、ＮｅｅｄｌｅｍａｎとＷｕｎｓｃｈ（Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．４８：４４３，１９７０）の並置法を利用している。簡潔に言うと、ＧＡＰプログラムは、同一である並置されたシンボル（即ち、ヌクレオチド又はアミノ酸）の数を、比較される２つの配列のより短い方のシンボルの全数で割った数として同一性を定義する。ＧＡＰプログラムに対する好ましいデフォルト・パラメータは、（１）ヌクレオチド用の単一比較マトリックス（同一性に対する１の値及び非同一性に対する０の値を含む）及び、ＳｃｈｗａｒｔｚとＤａｙｈｏｆｆ編「タンパク質の配列及び構造アトラス」国立バイオメディカル研究財団、３５３〜３５８頁、１９７９に記載の、ＧｒｉｂｓｋｏｖとＢｕｒｇｅｓｓ、Ｎｕｃｌ．ＡｃｉｄｓＲｅｓ．１４：６７４５，１９８６の加重比較マトリックス；（２）各ギャップに対する３．０のペナルティ及び各ギャップ内の各シンボルに対する追加的な０．１０のペナルティ；及び（３）エンドギャップに対してはノーペナルティ、を含む。天然のＬＩＲアミノ酸配列の変更は、数多くの既知技術から任意の技術を用いて提供され得る。上記のように、天然の配列フラグメントとの連結を可能にする制限部位が隣接した、突然変異体のコード配列を含むオリゴヌクレオチドを合成することによって、選択される配列部位に突然変異を導入し得る。合成されたオリゴヌクレオチドを天然の配列フラグメントと連結した後では、得られる再構成されたヌクレオチド配列は、所望のアミノ酸挿入、置換又は欠失を有する類似体又は変異体ポリペプチドをコードするだろう。変異体ポリペプチドを製造するのに適したもうひとつの方法は、所望される置換、欠失又は挿入に準拠して変更された特定のコドンを有する遺伝子を提供する、オリゴヌクレオチド指向性部位特異的突然変異誘発法である。このような変更をするための技術は、以下の参考文献に開示されるものを含む：Ｗａｌｄｅｒ等、Ｇｅｎｅ，４２：１３３，１９８６；Ｂａｕｅｒ等、Ｇｅｎｅ，３７：７３，１９８５；Ｃｒａｉｋ、Ｂｉｏｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ，１２−１９，１９８５年１月；Ｓｍｉｔｈ等、「遺伝子工学：原理と方法」、プレナムプレス、１９８１；及び米国特許第４，５１８，５８４号及び４，７３７，４６２号。これらはすべて参考文献として本明細書に援用する。本発明の変異体ポリペプチドは、保存的に置換されている（つまり、天然のＬＩＲポリペプチドファミリーメンバーの１つ又はそれ以上のアミノ酸残基が別の残基で置換されているが、変異体ポリペプチドは天然のＬＩＲファミリーメンバーのそれと本質的に同等である所望の生物学的活性を保持しているということ）アミノ酸配列を含み得る。一般に、保存的な置換への数多くのアプローチが当技術分野でよく知られていて、本発明の変異体の製造に応用され得る。例えば、天然のポリペプチド配列のアミノ酸は、ＬＩＲポリペプチドの二次及び／又は三次構造を変化させないアミノ酸に置換され得る。他の適切な置換は、所期のリガンド結合ドメインの外側のアミノ酸に関する置換を含む。保存的なアミノ酸置換に対する１つのアプローチは、１つ又はそれ以上のアミノ酸を類似の物理化学的特性を有するアミノ酸で置換することを含む。例えば、１つの脂肪族残基をＩｌｅ，Ｖａｌ，Ｌｅｕ又はＡｌａのような別の脂肪族残基に置換すること、１つの極性残基を別のもので置換すること（例えば、ＬｙｓとＡｒｇ；ＧｌｕとＡｓｐ；又はＧｌｎとＡｓｎ）又は、全領域を類似の疎水性又は親水性を有するものに置換する、といったことである。ＬＩＲポリペプチド変異体は、実施例５及び６に記載されるようにして細胞への結合性を試験され得るし、生物学的活性を確かめるために、実施例１１に記載されるようにしてホスファターゼ結合活性を試験され得る。本発明の他のＬＩＲ変異体は、選択されたポリペプチドのＣｙｓ残基が欠失又は１つ又はそれ以上の代替的なアミノ酸で置換されるような、ポリペプチドをコードするヌクレオチド配列の変化によって変更されるポリペプチドを含む。これらのＬＩＲ変異体は、再生時に分子内ジスルフィド架橋を形成しない。Ｃｙｓ残基の欠失又は変化によって変更するために選択された天然に存在するＬＩＲポリペプチドは、好ましくはＣｙｓ残基によって形成されるジスルフィド架橋に依存する生物学的活性を有さない。他の可能な変異体は、隣接する二塩基性アミノ酸残基を修飾して、ＫＥＸ２プロテアーゼ活性が存在する酵母系での発現を増強させる技術によって製造される。ＥＰ２１２，９１４は、タンパク質のＫＥＸ２プロテアーゼプロセシング部位を不活性化するための部位特異的突然変異誘発の技術を開示している。ＫＥＸ２プロテアーゼプロセシング部位は、Ａｒｇ−Ａｒｇ、Ａｒｇ−Ｌｙｓ及びＬｙｓ−Ａｒｇ対を変化させるために残基を欠失、追加または置換して、これらの隣接塩基性残基の出現をなくすことによって不活性化される。Ｌｙｓ−Ｌｙｓ及び対合は、ＫＥＸ開裂に対する感受性がずっと弱いので、Ａｒｇ−Ｌｙｓ又はＬｙｓ−ＡｒｇをＬｙｓ−Ｌｙｓへ変換することは、ＫＥＸ２部位を不活性化する、保存的で好ましいアプローチとなる。天然に存在するＬＩＲ変異体も本発明に包含される。このような変異体の例は、選択的ｍＲＮＡスプライシング又はＬＩＲポリペプチドのタンパク分解的な開裂から生じるタンパク質である。ｍＲＮＡの選択的スプライシングは、天然に存在するこのタンパク質の可溶型のような、切断されているが（ｔｒｕｎｃａｔｅｄ）生物学的には活性なＬＩＲポリペプチドを生じ得る。タンパク分解に帰せられる変異は、ＬＩＲポリペプチドから１つ又はそれ以上の末端アミノ酸がタンパク分解的に除去されることによって、Ｎ又はＣ末端が種々のタイプの宿主細胞で発現時に異なることを含む。さらに、タンパク分解的な開裂は、膜結合型のポリペプチドからＬＩＲの可溶型を遊離し得る。他の天然に存在するＬＩＲ変異には、アミノ酸配列ＳＥＱＩＤＮＯ：２、４、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０及び２２の相違が遺伝的多型性、つまり個体間の対立遺伝子変異によるものがある。本発明の範囲内には、選択される化学的成分と結合体（ｃｏｎｊｕｇａｔｅ）を形成するように修飾された天然の又は変異体のＬＩＲポリペプチドを含む、ＬＩＲファミリーポリペプチドの誘導体がある。結合体は、天然の又は変異体のＬＩＲにもうひとつの成分を共有結合することによって、又は天然の又は変異体のＬＩＲにもうひとつの成分を非共有結合することによって、形成され得る。適切な化学的成分は、限定しないが、グリコシル基、脂質、リン酸、アセチル基、及び他のタンパク質又はそのフラグメントを含む。化学的成分をタンパク質に共有結合するための技術は当技術分野でよく知られていて、誘導的なＬＩＲポリペプチドを製造するために概ね適している。例えば、アミノ酸側鎖上の活性な又は活性化された官能基が、化学的成分をＬＩＲポリペプチドに共有結合させるための反応部位として使用され得る。同様に、Ｎ末端又はＣ末端は、化学的成分のために反応部位を提供し得る。他のタンパク質又はタンパク質フラグメントと結合したＬＩＲポリペプチド又はフラグメントは、組換え培地において、Ｎ末端又はＣ末端融合生成物として製造され得る。例えば、結合又は融合部分は、Ｎ末端でＬＩＲ分子に結合したシグナル又はリーダー配列を含み得る。シグナル又はリーダーペプチドは、翻訳と同時に又は翻訳後に、結合体をその合成部位から細胞膜の内側又は外側へ移動させることを指令する。１つの有用なＬＩＲポリペプチド結合体は、ポリ−Ｈｉｓ又は、米国特許第５，０１１，９１２号及びＨｏｐｐ等、Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ６：１１２４，１９８８に記載された抗原同定ペプチドを取り込んでいるものである。例えば、ＦＬＡＧ（登録商標）ペプチド、Ａｓｐ−Ｔｙｒ−Ｌｙｓ−Ａｓｐ−Ａｓｐ−Ａｓｐ−Ａｓｐ−Ｌｙｓ（ＳＥＱＩＤＮＯ：２９）は抗原性が強く、特定のモノクローナル抗体に可逆的に結合するエピトープを提供し、発現された組換えタンパク質の迅速なアッセイ及び容易な精製がそれによって可能になる。この配列は、ウシ粘膜エンテロキナーゼによって、Ａｓｐ−Ｌｙｓ対合の直後の残基で特異的に開裂される。このペプチドでキャップされた融合タンパク質は、大腸菌内の細胞内分解に抵抗し得る。４Ｅ１１と命名されたマウスのハイブリドーマは、ある２価金属カチオンの存在下でＳＥＱＩＤＮＯ：２９のペプチドに結合するモノクローナル抗体を産生し、登録番号ＨＢ９２５９としてアメリカンタイプカルチャーコレクションに保管された。ＦＬＡＧ（登録商標）ペプチドと融合した組換えタンパク質を産生するのに有用な発現系、及びこのペプチドに結合し組換えタンパク質を精製するのに有用であるモノクローナル抗体は、イーストマンコダック社、サイエンティフィックイメージングシステム、ニューヘーヴン、コネティカットから入手可能である。特に適したＬＩＲ融合タンパク質は、ＬＩＲポリペプチドがオリゴマーの形態であるものである。オリゴマーは、１つ上のＬＩＲポリペプチドのシステイン残基間のジスルフィド結合によって、又はＬＩＲポリペプチド鎖間の非共有結合的な相互作用によって、形成され得る。もうひとつのアプローチでは、ＬＩＲオリゴマーは、ＬＩＲポリペプチドに融合したぺプチド成分間の共有結合的又は非共有結合的相互作用を介した、ＬＩＲポリペプチド又はそのフラグメントの結合によって形成され得る。好適なペプチド成分は、ペプチドリンカー又はスペーサー、又はオリゴマー化を促進する性質を有するペプチドを含む。抗体由来のロイシンジッパー及びある種のポリペプチドは、それのついたＬＩＲポリペプチドのオリゴマー化を促進し得るペプチドである。オリゴマー形成を促進する他のＬＩＲ融合タンパク質は、抗体由来のポリペプチド（Ｆｃドメインを含む）の様々な部分に融合した異種ポリペプチドを有する融合タンパク質である。そのような融合タンパク質の製造法は、Ａｓｈｋｅｎａｚｉ等、ＰＮＡＳＵＳＡ８８：１０５３５，１９９１；Ｂｙｒｎｅ等、Ｎａｔｕｒｅ３４４：６６７，１９９０及びＨｏｌｌｅｎｂａｕｇｈとＡｒｕｆｆｏ、「免疫学の最新プロトコール」補巻４，10．19．１〜１０．19．１１，１９９２に記載されているが、これらはすべて参考文献として本明細書に援用する。以下の実施例１及び５は、抗体由来のＦｃ領域ポリペプチドへＵＬ１８及びＰ３Ｇ２を融合することによって、それぞれＵＬ１８：Ｆｃ及びＰ３Ｇ２：Ｆｃ融合タンパク質を製造する方法を記載する。このことは、Ｐ３Ｇ２：Ｆｃ融合タンパク質をコードしてＰ３Ｇ２：Ｆｃ融合タンパク質を発現する遺伝子融合物を、発現ベクターへ挿入することによって達成される。融合タンパク質は、Ｆｃポリペプチド間に鎖間ジスルフィド結合が形成される抗体分子と同じようにアセンブルされ、２価のＰ３Ｇ２ポリペプチドを産生する。同様のアプローチでは、Ｐ３Ｇ２又は任意のＬＩＲポリペプチドは、抗体の重鎖又は軽鎖の可変部で置換され得る。抗体の重鎖及び軽鎖のついた融合タンパク質が作られるならば、４つものＬＩＲ領域を有するＬＩＲオリゴマーを形成することは可能である。本明細書に用いられているように、Ｆｃポリペプチドは天然の及びムテインの形態、さらに、ダイマー化を促進するヒンジ領域を含む切断されたＦｃポリペプチドを含む。１つの好適なＦｃポリペプチドは、ヒトＩｇＧ１由来の天然のＦｃ領域ポリペプチドであり、これはＰＣＴ出願ＷＯ９３／１０１５１に記載されていて、参考文献として本明細書に援用する。他の有用なＦｃポリペプチドは、米国特許第５，４５７，０３５号に記載されているＦｃムテインである。このムテインのアミノ酸配列は、アミノ酸１９がＬｅｕからＡｌａへ変化し、アミノ酸２０がＬｅｕからＧｌｕへ変化し、アミノ酸２２がＧｌｙからＡｌａへ変化していることを除けば、ＷＯ９３／１０１５１に示されている天然のＦｃ配列のそれと同一である。このムテインＦｃは、免疫グロブリン受容体に対して減少した親和性を示す。あるいは、オリゴマーのＬＩＲポリペプチド変異体は、ペプチドリンカーを介して結合した２つ又はそれ以上のＬＩＲペプチドを含み得る。この例は、米国特許第５，０７３，６２７号（参考文献として援用する）に記載されたペプチドリンカーを含む。ペプチドリンカーによって離されたいくつかのＬＩＲポリペプチドを含む融合タンパク質は、従来の組換えＤＮＡ技術によって産生され得る。オリゴマーのＬＩＲポリペプチド変異体を製造するもうひとつ方法は、ロイシンジッパーの使用を含む。ロイシンジッパードメインとは、それが見出されるタンパク質のオリゴマー化を促進するペプチドである。ロイシンジッパーは最初いくつかのＤＮＡ結合タンパク質において同定された（Ｌａｎｄｓｃｈｕｌｚ等、Ｓｃｉｅｎｃｅ２４０：１７５９，１９８８）。既知のロイシンジッパーのなかには、天然に存在するペプチド及び二量体化又は三量体化するペプチド誘導体がある。可溶性のオリゴマーＬＩＲポリペプチド又はＬＩＲファミリーのオリゴマーポリペプチドを産生するのに適したロイシンジッパードメインの例は、ＰＣＴ出願ＷＯ９４／１０３０８（本明細書に参考文献として援用する）に記載されたものである。溶液内で二量体化又は三量体化するペプチドと融合した可溶性ＬＩＲポリペプチドを有する組換え融合タンパク質は、適切な宿主細胞で発現され、得られた可溶性オリゴマーポリペプチドは、培養上澄液から回収される。タンパク質分子同士を架橋結合するのに有用な多くの試薬が知られている。例えば、この目的のために、ヘテロ二価性及びホモ二価性リンカーがピアスケミカルカンパニー、ロックフォード、イリノイから入手できる。このようなリンカーは、アミノ酸側鎖のある官能基と反応してポリペプチド同士をつなぐ、２つの官能基（例、エステル及び／又はマレイミド）を含む。本発明に利用され得る１つのタイプのペプチドリンカーは、所望の生物学的活性に必要な二次及び三次構造に各ドメインが正しく畳み込めることを確保するに十分な距離だけポリペプチドドメインを分離させる。リンカーはまた、リガンド結合部位を形成するために細胞外部分が適切な空間配向性をとることを可能にするべきである。適切なペプチドリンカーが当技術分野で知られていて、従来の技術によって利用され得る。適切なペプチドリンカーのなかには、米国特許第４，７５１，１８０号及び４，９３５，２３３号（いずれも参考文献として本明細書に援用する）に記載されたものがある。ペプチドリンカーは、ポリペプチド同士をつけるために使用される任意の従来法によって、ＬＩＲポリペプチドに結合され得る。上記のようなピアスケミカルカンパニーより入手できる架橋結合試薬は、利用され得るもののひとつである。このような試薬と反応する側鎖を有するアミノ酸は、例えばその末端で、ペプチドリンカーのなかに含まれ得る。好ましくは、ペプチドリンカーを介して形成される融合タンパク質は組換えＤＮＡ技術によって製造される。本発明の融合タンパク質は、あるタンパク質のＣ末端が別のタンパク質のＮ末端部分に融合しているリンカーと融合している構築体を含む。このように結合しているペプチドは、所望の生物学的活性を保持している単一のタンパク質を産生する。融合タンパク質の構成部分はその出現順に記載される（例えば、Ｎ末端ポリペプチドが最初に記載され、次いでリンカー、さらにＣ末端ポリペプチドが続く）。融合タンパク質をコードするＤＮＡ配列は、所望のタンパク質をコードする別々のＤＮＡフラグメントを適切な発現ベクターに挿入する組換えＤＮＡ技術を用いて構築される。１つのタンパク質をコードするＤＮＡフラグメントの３’末端は、配列の読み取りフレームがｍＲＮＡの翻訳から生物学的に活性な単一の融合タンパク質が生成される正しい位相になるようにして、（リンカーを介して）別のタンパク質をコードするＤＮＡフラグメントの５’末端に連結される。Ｎ末端のシグナル配列をコードするＤＮＡ配列は、Ｎ末端ポリペプチドをコードするＤＮＡ配列上に保持され得るが、第二の（Ｃ末端）ＤＮＡ配列への読み通しを妨げ得る終止コドンは除去される。逆に、翻訳停止に必要な終止コドンは第二のＤＮＡ配列上に保持される。シグナル配列をコードするＤＮＡは、好ましくはＣ末端ポリペプチドをコードするＤＮＡ配列から除去される。望ましいポリペプチドリンカーをコードするDNA配列は、任意の適切な慣用技術を用い、２つのタンパク質をコードするDNA配列の間に、そして同じ読み枠で、挿入されてもよい。例えば、リンカーをコードし、そして適切な制限エンドヌクレアーゼ切断部位を含む、化学的に合成されたオリゴヌクレオチドを、FcおよびP3G2ポリペプチドをコードする配列の間に連結してもよい。本発明の範囲内に、LIRファミリーのポリペプチドを発現するための組換え発現ベクター、および発現ベクターで形質転換された宿主細胞がある。本発明の発現ベクターには、哺乳動物、微生物、ウイルスまたは昆虫遺伝子由来のものなど、適切な転写または翻訳制御ヌクレオチド配列に、機能可能であるように連結された、LIRファミリーメンバーをコードするDNAが含まれる。制御配列の例には、転写プロモーター、オペレーター、またはエンハンサー、mRNAリボソーム結合部位、および転写および翻訳開始および終結を調節する適切な配列が含まれる。ヌクレオチド配列は、制御配列がLIR DNA配列と機能上、関連するとき、機能可能であるように連結されている。したがって、プロモーターヌクレオチド配列がLIR DNA配列の転写を調節するならば、プロモーターヌクレオチド配列は、LIR DNA配列に機能可能であるように連結されている。望ましい宿主細胞における複製能を与える複製起点、およびそれにより形質転換体が同定される選択遺伝子は、一般的に発現ベクターに組み込まれている。さらに、適切なシグナルペプチドをコードする配列を、発現ベクターに組み込んでもよい。シグナルペプチド（分泌リーダー）に対するDNA配列は、イン・フレームでLIR配列に融合させ、その結果LIRがまずシグナルペプチドを含む融合タンパク質として翻訳されてもよい。意図される宿主細胞において機能的なシグナルペプチドは、LIRポリペプチドの細胞外分泌を促進する。シグナルペプチドは、LIRポリペプチドが細胞から分泌される際、LIRポリペプチドから切断される。 LIRポリペプチドを発現するのに適した宿主細胞には、原核細胞、酵母またはより高次の真核細胞が含まれる。細菌、真菌、酵母および哺乳動物細胞宿主で用いるのに適したクローニングおよび発現ベクターは、例えば、Powelsら．Clonin g Vectors:A Laboratory Manual，ニューヨーク州エルセビア（1985）に記載されている。細胞不含翻訳系もまた、本明細書に開示されるDNA構築物由来のRNAを用い、P3G2ポリペプチドを産生するのに用いてもよい。本発明の実施に適した原核宿主細胞には、グラム陰性またはグラム陽性生物、例えば、大腸菌（E．coli）またはバチルス属（Bacilli）が含まれる。形質転換に適した原核宿主細胞には、例えば、大腸菌、枯草菌（Bacillus subtilis）、ネズミチフス菌（Salmonella typhimurium）、およびシュードモナス属（pseudo monas）、ストレプトミセス属（streptomyces）、およびブドウ球菌属（Staphyl ococcus）内の多様な他の種が含まれる。大腸菌などの原核宿主細胞において、組換えポリペプチドの発現を容易にするため、 P3G2ポリペプチドがN末端メチオニン残基を含んでもよい。N末端Metは、発現された組換えLIRポリペプチドから切断されてもよい。原核宿主細胞に用いるための発現ベクターは、一般的に、１つまたはそれ以上の表現型選択可能マーカー遺伝子を含む。表現型選択可能マーカー遺伝子は、例えば、抗生物質耐性を与える、または独立栄養必要条件を供給するタンパク質をコードする遺伝子である。原核宿主細胞に有用な発現ベクターの例には、クローニングベクターpBR322（ATCC 37017）など、商業的に入手可能なプラスミド由来のものが含まれる。pBR322は、アンピシリンおよびテトラサイクリン耐性遺伝子を含み、そしてしたがって、形質転換細胞を同定する簡単な手段を提供する。適切なプロモーターおよびLIRファミリーDNAをpBR322ベクター中に挿入してもよい。他の商業的に入手可能なベクターには、例えば、pKK223-3（Pharmacia Fine C hemicals、スウェーデン・ウプサラ）およびpGEM1（Promega Biotec、米国ウィスコンシン州マディソン）が含まれる。組換え原核宿主細胞発現ベクターに通常用いられるプロモーター配列には、β ラクタマーゼ（ペニシリナーゼ）、ラクトースプロモーター系（Changら.Nature 75:615，1978;およびGoeddelら，Nature 281:544，1979）、トリプトファン-（ trp）プロモーター系（Goeddelら，Nucl．Acids Res．8:4057，1980;およびEP-A -36776）およびtacプロモーター（Maniatis，Molecular Cloning:A Laboratory Manual，Cold Spring Harbor Laboratory，p.412，1982）が含まれる。特に有用な原核宿主細胞発現系は、ファージλP_LプロモーターおよびcI857ts熱不安定性リプレッサー配列を使用する。アメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション（American Type Culture Collection）から入手可能な、λP_Lプロモーターの誘導体を組み込んだプラスミドベクターには、プラスチドpHUB2（大腸菌株JMB9、A TCC 37092に常住）およびpPLc28（大腸菌RP1、ATCC 53082に常住）が含まれる。また別に、LIRポリペプチドは、酵母宿主細胞、好ましくはサッカロミセス（S accharomyces）属（例えば、S.セレビシエ（S．cerevisiae））において発現されてもよい。酵母の他の属、例えばピキア属（Pichia）またはクロイベロミセス属（Kluyveromyces）もまた使用してもよい。酵母ベクターは、しばしば、2μ酵母プラスミド由来の複製起点配列、自律複製配列（ARS）、プロモーター領域、ポリアデニル化のための配列、転写終結のための配列、および選択可能マーカー遺伝子を含むであろう。酵母ベクターに適したプロモーター配列には、とりわけ、メタロチオネイン、3−ホスホグリセリン酸キナーゼ（Hitzeman ら，J．Biol．Chem．255:2073，1980）または、エノラーゼ、グリセルアルデヒド−3−リン酸デヒドロゲナーゼ、ヘキソキナーゼ、ピルビン酸デカルボキシラーゼ、ホスホフルクトキナーゼ、グルコース−6−リン酸イソメラーゼ、3−ホスホグリセリン酸ムターゼ、ピルビン酸キナーゼ、トリオースリン酸イソメラーゼ、ホスホグルコースイソメラーゼ、およびグルコキナーゼなどの他の解糖酵素（ Hessら．J．Adv．Enzyme Reg.7:149，1968;およびHollandら，Biochem．17:4900 ，1978）のプロモーターが含まれる。酵母発現に用いるのに適した他のベクターおよびプロモーターはHitzeman．EPA-73,675にさらに記載されている。他の選択は、Russellら（J．Biol．Chem．258:2674，1982）およびBeierら（Nature 300: 724，1982）により記載されるADH2プロモーターである。大腸菌での選択および複製のため、pBR322由来のDNA（Amp^r遺伝子および複製起点）を上述の酵母ベクターに挿入することにより、酵母および大腸菌両方において複製可能なシャトルベクターを構築してもよい。酵母α因子リーダー配列を使用し、LIRポリペプチドを直接分泌させてもよい。α因子リーダー配列は、しばしば、プロモーター配列および構造遺伝子配列の間に挿入される。例えば、Kurjanら，Cell 30:933，1982およびBitterら，Proc ．Natl．Acad．Sci．USA．81:5330，1984を参照されたい。酵母宿主から組換えポリペプチドの分泌を容易にするのに適した他のリーダー配列が当業者に知られる。リーダー配列は、その3'端近傍に、1つまたはそれ以上の制限酵素部位を含むよう修飾されてもよい。これは、リーダー配列が構造遺伝子に融合するのを容易にするであろう。酵母形質転換プロトコルは当業者に知られる。こうしたプロトコルの1つがHin nenら，Proc．Natl．Acad．Sci．USA 75:1929，1978により記載される。Hinnenらのプロトコルは、Trp⁺形質転換体を、0.67％酵母窒素基剤、0. 5％カザミノ酸、2％グルコース、10μg/mlアデニン、および20μg/mlウラシルからなる選択培地中で選択する。 ADH2プロモーター配列を含むベクターにより形質転換された酵母宿主細胞は、発現を誘導するため「リッチ」培地中で増殖させてもよい。リッチ培地の例は、 80μg/mlウラシルを補った、1％酵母エキス、2％ペプトン、および1％グルコースを有するものである。ADH2プロモーターの抑制解除（derepression）は、培地からグルコースが枯渇したとき起こる。哺乳動物または昆虫宿主細胞培養系を用いて、組換えLIRポリペプチドを発現してもよい。昆虫細胞において異種タンパク質を産生するためのバキュロウイルス系がLuckowおよびSummers，Bio/Technology 6:47（1988）に論評されている。哺乳動物起源の樹立細胞株もまた、使用してもよい。適切な哺乳動物宿主細胞株の例には、サル腎臓細胞のCOS-7株（ATCC CRL 1651）（Gluzmanら，Cell 23:175 ，1981）、L細胞、C127細胞、3T3細胞（ATCC CCL 163）、チャイニーズハムスター卵巣（CHO）細胞、HeLa細胞、およびBHK（ATCC CRL 10）細胞株、およびMacMa hanら（EMBO J.10:2821，1991）により記載されるアフリカミドリザル（African green monkey）細胞株CVI（ATCC CCL 70）由来のcv-I/EBNA細胞株、COS-1（ATC C CRL-1650）が含まれる。哺乳動物宿主細胞発現ベクターのための転写および翻訳調節配列は、ウイルスゲノムより切り出されてもよい。よく用いられるプロモーター配列およびエンハンサー配列は、ポリオーマウイルス、アデノウイルス2、シミアンウイルス40（S V40）、およびヒトサイトメガロウイルス由来である。SV40ウイルスゲノム由来のDNA、例えばSV40起点、初期および後期プロモーター、エンハンサー、スプライシング、およびポリアデニル化部位を用い、哺乳動物宿主細胞における構造遺伝子配列の発現のための他の遺伝要素を提供してもよい。ウイルス初期および後期プロモーターは、どちらもウイルス複製起点をも含んでもよい断片として容易にウイルスゲノムから得られるため、特に有用である（Fiersら，Nature 273:11 3，1978）。SV40ウイルス複製起点部位に位置するHIND III部位からBgl I部位まで伸長するおよそ250 bp配列が含まれていれば、より小さいまたはより大きいSV40断片もまた用いてもよい。哺乳動物宿主細胞において用いるのに適した発現ベクターを、OkayamaおよびB erg（Mol．Cell．Biol．3:280，1983）に開示されたように構築してもよい。C12 7ネズミ乳腺上皮細胞における哺乳動物受容体cDNAの安定した高レベル発現に有用な1つの系を、実質的にCosmanら（Mol．Immunol.23:935，1986）に記載されたように構築してもよい。Cosmanら，Nature 312:768，1984に記載される高発現ベクター、PMLSV N1/N4はATCC 39890として寄託されている。さらなる哺乳動物発現ベクターは、EP-A-0367566、およびWO 91/18982に記載されている。さらに、哺乳動物宿主細胞に用いられるさらなる発現ベクターには、pDC201（Simsら，Sc ience 241:585，1988）pDC302（Mosleyら，Cell 59:335，1989）、およびpDC406 （McMahanら，EMBO J．10:2821，1991）が含まれる。レトロウイルス由来のベクターもまた使用してもよい。他の好ましい発現ベクター系は、以下の実施例5に論じられるように、pDC409を使用する。 LIRポリペプチド発現のための発現ベクターは、シグナルまたはリーダーペプチドをコードするDNAを含んでもよい。天然シグナル配列の代わりに、異種シグナル配列、例えば米国特許第4,965,195号に記載されるインターロイキン−7（IL -7）のシグナル配列；Cosmanら，Nature 312:768，1984に記載されるインターロイキン−2受容体のシグナル配列；EP 367,556に記載されるインターロイキン−4 シグナルペプチド；米国特許第4,968,607号に記載されるI型インターロイキン− 1受容体シグナルペプチド；およびEP 460,846に記載されるII型インターロイキン−1シグナルペプチドを添加してもよい。本発明内にさらに意図されるのは、精製LIRファミリーポリペプチドである。本発明の精製ポリペプチドは、上述の組換え発現系から精製してもよいし、または天然発生細胞から精製してもよい。望ましい純度は、タンパク質の意図される用法に依存する可能性があり、該タンパク質がin vivo使用に意図されるとき、比較的高い純度が好ましい。好ましくは、LIRポリペプチド精製方法は、望ましいLIRタンパク質以外のタンパク質に対応するタンパク質バンドがSDS−ポリアクリルアミドゲル電気泳動（SDS-PAGE）により検出されないものである。当業者には、異なる糖鎖付加、翻訳後プロセシングの変動、および上述のそれらに匹敵するもののため、任意のLIRポリペプチドにも対応する複数のバンドがSDS-P AGEにより検出される可能性があることが認識されるであろう。最も好ましくは、任意の特定のLIRポリペプチドも、SDS-PAGEによる解析の際、単一のタンパク質バンドに示されるように、実質的に均一に精製される。タンパク質バンドは銀染色、クーマシーブルー染色により、またはタンパク質が適切に標識されている場合は、オートラジオグラフィーまたは蛍光により、視覚化してもよい。精製LIRポリペプチドを提供する1つの方法には、まず望ましいポリペプチドをコードするDNA配列を含む発現ベクターで形質転換した宿主細胞を、所期のLIRポリペプチドの発現を促進する条件下で培養し、そしてその後LIRポリペプチドを回収することが含まれる。当業者が認識するであろうように、ポリペプチドを回収する方法は、使用した宿主細胞の種類、およびポリペプチドが培地中に分泌されるか、細胞から抽出されるかなどの要因にしたがい、異なるであろう。発現系がポリペプチドを培地中に分泌するとき、培地をまず、商業的に入手可能なタンパク質濃縮フィルター、例えば、AmiconまたはMillipore Pellicon限外ろ過装置を用い、濃縮する。濃縮段階に続き、濃縮物をゲルろ過媒体などの適切な精製マトリックスに適用する。あるいは、陰イオン交換レジン、例えばジエチルアミノエチル（DEAE）側鎖を有するレジンマトリックスまたはレジン基質を使用してもよい。マトリックスは、アクリルアミド、アガロース、デキストラン、セルロースまたはタンパク質精製に通常使用される他の種類のものであってもよい。同様に、陽イオン交換基、例えばスルホプロピルまたはカルボキシメチル官能性を不溶性マトリックス上に有する精製マトリックスも用いてもよい。スルホプロピル基が好ましい。精製LIRを提供するのに適した、さらに別の精製マトリックスおよび方法は、疎水性逆相媒体を用いた高性能液体クロマトグラフィー（ RP-HPLC）である。当業者は、前記の精製段階のいずれでもまたはすべてを、さまざまな組み合わせで使用し、精製LIRポリペプチドを提供してもよいことを認識するであろう。あるいは、LIRポリペプチドを免疫アフィニティー・クロマトグラフィーにより精製してもよい。LIRポリペプチドに結合する抗体を含むアフィニティー・カラムを慣用方法により調製し、そしてLIR精製に使用してもよい。実施例5は、免疫アフィニティー・クロマトグラフィーに利用してもよい、P3G2に向けられたモノクローナル抗体を生成する方法を記載する。細菌培養において産生された組換えタンパク質は、まず、凍結融解サイクル、超音波、機械的破壊、または細胞溶解剤の使用を含む、任意の簡便な方法によって宿主細胞を破壊してもよく、そしてその後、ポリペプチドが不溶性であれば細胞沈澱から、またはポリペプチドが可溶性であれば上清液体から、ポリペプチドを抽出することにより単離してもよい。最初の単離段階後、精製過程は、1つまたはそれ以上の濃縮、塩析、イオン交換、アフィニティー、またはサイズ排除クロマトグラフィー精製段階を含んでもよい。多くの適用に関し、最終的なRP-HPL C精製段階が有益である。 LIRポリペプチドおよび精製LIRポリペプチドを提供するさらなる方法は、タンパク質を分泌タンパク質として発現する、発酵酵母が関与する。大規模発酵により生じた分泌組換えタンパク質は、分離用HPLCカラム上での組換えタンパク質精製のための、2つの連続する逆相HPLC段階が含まれる、Urdalら（J.Chromatog．2 96:171，1984）に開示されたものと類似の方法により精製してもよい。 pDC406ベクター中のLIR-P3G2 DNAは、アメリカン・タイプ・カルチャー・コレクションに、1997年4月22日に寄託され、そして寄託番号第97995号を割り当てられた。寄託物はブダペスト条約に基づいて行われた。上記のように、そして実施例6および14に示されるように、LIR-P3G2およびLIR -pbm8は、ある種の単球、B細胞、およびNK細胞の表面上に見られるMHCクラスI受容体である。単球に関しては、MHCクラスI結合タンパク質であるLIRの発現により、単球がMHCクラスI分子を認識する何らかの必要性があることが示唆される。 LIR-P3G2、LIR-pbm8 LIRおよびある種のさらなるLIRファミリーメンバーは、細胞質ITIMモチーフを含む。既知のMHCクラスI受容体分子の構造および機能との類推から、これらのLIRは、陰性シグナル伝達を媒介する阻害性受容体である。実際、実施例11に示される結果により、LIRがSHP-1と結合し、そしてFcR媒介活性化事象を阻害することが明らかである。したがって、単球は、細胞媒介溶解機構を抑制するため、クラスI受容体を発現している可能性がある。単球はFcRを介し、細胞外病原体を迅速に貪食（Phagocyte）し、そして単球・FcR結合は、より多くの全身性媒介体、特にTNF-α、IL-6およびIL-8を産生することにより、免疫反応の伝播を誘導する。したがって、LIRは、自己組織に対する細胞溶解および炎症反応の単球およびマクロファージ制御において、役割を果たしている。FcRの活性化性シグナルおよびLIRの阻害性シグナルの間の相互作用により、自己反応性IgGが低レベルで循環中に存在し、そして免疫反応開始と共に単球膜に結合することが可能になる可能性がある。例えば、これらの阻害性受容体の発現は、発達する胚を母性抗体媒介同種認識から保護する可能性がある。 DC系列細胞上のLIRに関し、実施例13に記載されるように、CD33⁺CD14^-CD16^-HL A^-DR⁺DCは、LIR-P3G2およびLIR-pbm8を共発現する。DC FcRが免疫複合体の結合および結合に続くDC活性化の誘発において役割を果たしていることが示唆される。したがって、DC上に発現したLIRは、FcRの相互作用を通じてDC活性化を抑制する可能性がある。多くのLIRメンバーはITIMモチーフを欠いており、ITIMを欠く既知のMHCクラス I受容体の構造および機能との類推から、活性化受容体である。陰性シグナル伝達を媒介する受容体の不全により、自己免疫疾患が生じる可能性がある。したがって、ITIMモチーフを有するLIRファミリーメンバーをアゴニスト性抗体またはリガンドと結合させることを用い、免疫系が活発すぎ、そして過剰の炎症または免疫病理が存在する疾患状態における細胞機能を下方制御してもよい。一方、IT IMを有するLIR受容体に特異的なアンタゴニスト性抗体または該受容体の可溶性型を用い、細胞表面受容体と受容体のリガンドとの相互作用を遮断し、抑制された免疫機能に関連する疾患状態における特定の免疫機能を活性化させてもよい。 ITIMモチーフを欠く受容体は、上述のようにひとたび結合されると活性化型シグナルを送るため、活性化型シグナルを媒介する受容体の不全により、免疫機能の抑制が生じる可能性がある。受容体をそのアゴニスト性抗体またはリガンドと結合させることを用い、抑制された免疫機能に関連する疾患を治療してもよい。活性化型LIR受容体に特異的なアンタゴニスト性抗体または該受容体の可溶性型を用い、活性化型受容体と受容体のリガンドとの相互作用を遮断し、活性化型シグナル伝達を下方制御してもよい。 LIR-P3G2は多様な細胞に結合するため、LIR-P3G2を用い、これらの細胞を異種調製から精製または単離してもよい。さらに、P3G2プローブを用い、関連する分子を単離し、そして同定してもよい。欠陥のあるまたは不充分な量の任意のLIRポリペプチドが、直接または間接的に媒介する任意の疾患の治療の開発にも、本発明のLIRポリペプチドを用いてもよい。精製LIRタンパク質の治療的に有効な量を、こうした疾患を患う患者に投与する。また別に、こうした疾患を治療する遺伝子治療アプローチを開発するのに、LIR DNAを使用してもよい。本明細書における天然LIRヌクレオチド配列の開示により、欠陥のあるLIR遺伝子の検出、および正常なLIRコード遺伝子によるその置換が可能になる。欠陥のある遺伝子は、in vitro診断検定において、そして本明細書に開示される天然LIRヌクレオチド配列を、遺伝子に欠陥を持つと疑われる人由来のLIR遺伝子のものと比較することによって、検出してもよい。本発明はまた、LIRポリペプチド、またはその断片または変異体を生理学的に許容されるキャリアーまたは希釈剤と共に含んでもよい薬剤組成物も提供する。こうしたキャリアーおよび希釈剤は使用される投薬量および濃度で、レシピエントに無害であろう。こうした組成物はさらに、緩衝液、アスコルビン酸のような抗酸化剤、低分子量（約10残基未満）ポリペプチド、タンパク質、アミノ酸、グルコース、ショ糖またはデキストリンを含む炭水化物、EDTAなどのキレート剤、グルタチオンおよび通常薬剤組成物に用いられる他の安定化剤および賦形剤（ex cipient）を含んでもよい。本発明の薬剤組成物は、適切な賦形剤溶液を希釈剤として用いる凍結乾燥物（lyophilizate）として処方されてもよい。薬剤組成物は、限定されるわけではないが、活性変異体、断片およびオリゴマーを含む、本明細書に記載される任意のLIRポリペプチドを含んでもよい。LIRポリペプチドは、薬剤的に有用な組成物を調製するのに用いられる既知の方法にしたがい、処方することができる。薬剤処方に通常使用される成分には、Remingto n's Pharmaceutical Sciences，16^thed．（MackPublishing Company、ペンシルバニア州イーストン，1980）に記載されるものが含まれる。本発明の薬剤調製物は、患者、好ましくはヒトに、徴候に適した様式で投与されうる。したがって、例えば組成物を、静脈内投与、局所投与、連続注入、移植物からの持続放出などにより投与してもよい。適切な投薬量および投与頻度は、治療される徴候の性質および重症度、望ましい反応、患者の状態などの要因に依存するであろう。好ましい態様において、本発明の薬剤組成物に用いられるLIRポリペプチドは、LIRポリペプチドが実質的に天然または内因性起源の他のタンパク質を含まないように、望ましくは、産生過程のタンパク質汚染物質残留物の重量約1g未満を含むように、精製される。こうした組成物はしかし、安定剤、キャリアー、賦形剤または補治療剤（co-therapeutics）として添加される他のタンパク質を含んでもよい。本明細書に開示されるLIRをコードするDNAおよびDNA断片は、上述のようにLIR ポリペプチドの産生に使用を見出される。1つの態様において、こうした断片は、LIR DNAの少なくとも約17の連続するヌクレオチド、より好ましくは少なくとも30の連続するヌクレオチドを含む。断片のDNAおよびRNA相補体は類似の有用性を有する。LIR核酸断片の用法の中に、プローブまたはポリメラーゼ連鎖反応におけるプライマーとしてのものがある。例えば、LIRの細胞外ドメインをコードするDNAの断片に対応するプローブを使用し、ノーザンブロットおよびサザンブロット検定などの、in vitro検定および他のプローブを用いる検定（ｐｒｏｂｉｎｇａｓｓａｙ）においてLIR核酸の存在を検出してもよい。LIRポリペプチドを発現する細胞の種類を、当業によく知られるプローブアッセイを用い、LIRファミリー核酸を用いて同定してもよい。当業者は、適切な長さのプローブを選択し、そして慣用的なPCR技術を適用し、DNA配列を単離しそして増幅する知識を有する。核酸断片はまた、種間ハイブリダイゼーション法におけるプローブとして用い、他の哺乳動物種からLIR DNAを単離してもよい。1つの例として、LIRポリペプチドの細胞外ドメインに対応するプローブを用いてもよい。プローブを慣用技術により（例えば³²pで）標識してもよい。 LIR核酸の他の有用な断片は、標的LIR mRNA（センス）またはP3G2 DNA（アンチセンス）配列に結合することが可能な一本鎖核酸配列（RNAまたはDNAのどちらか）を含む、アンチセンスまたはセンスオリゴヌクレオチドである。こうした断片は一般的に、少なくとも約14ヌクレオチド、好ましくは約14から約30ヌクレオチドである。既定のタンパク質に対するcDNA配列に基づきアンチセンスまたはセンスオリゴヌクレオチドを生成する技量は、例えば、SteinおよびCohen，Cancer Res．48:2659，1988およびvan der Krolら，BioTechniques 6:958，1988に記載されている。標的核酸配列にアンチセンスまたはセンスオリゴヌクレオチドが結合することにより、二本鎖分解の冗進、転写または翻訳の早過ぎる終結を含む、いくつかの手段の1つにより、または他の手段により、翻訳（RNA）または転写（DNA）を遮断する二本鎖の形成が起こる。このように、アンチセンスオリゴヌクレオチドを用い、LIR発現を遮断してもよい。 1つの態様において、結合方法に用いられるアンチセンスまたはセンスLIRオリゴヌクレオチドは、修飾糖・リン酸ジエステル骨格（またはWO 91/06629に記載されるものなど、他の糖結合）を有し、そしてこうした糖結合が内因性ヌクレアーゼに耐性であるオリゴヌクレオチドを含んでもよい。内因性ヌクレアーゼに耐性である糖結合を有するオリゴヌクレオチドは、in vivoで安定である（すなわち、酵素分解に抵抗することが可能である）が、標的ヌクレオチド配列に結合することが可能となる配列特異性を保持している。センスまたはアンチセンスオリゴヌクレオチドの他の例には、WO 90/10448に記載されるものなど、有機部分に、およびポリ−（L−リシン）など、標的核酸配列へのオリゴヌクレオチドの親和性を増加させる他の部分に、共有結合されたオリゴヌクレオチドが含まれる。さらに、エリプチシンなどの挿入剤（intercalating agent）、およびアルキル化剤または金属錯体がセンスまたはアンチセンスオリゴヌクレオチドに結合し、標的ヌクレオチド配列へのアンチセンスまたはセンスオリゴヌクレオチドの結合特異性を修飾してもよい。アンチセンスまたはセンスオリゴヌクレオチドは、例えば、CaPO₄媒介DNAトランスフェクション、エレクトロポレーションを含む、任意の遺伝子トランスファー法により、またはエプスタイン・バーウイルスなどの遺伝子トランスファーベクターを用いることにより、標的核酸配列を含む細胞に導入されてもよい。アンチセンスまたはセンスオリゴヌクレオチドは、好ましくは、アンチセンスまたはセンスオリゴヌクレオチドを適切なレトロウイルスベクターに挿入し、その後in vivoまたはex vivoで挿入配列を含むレトロウイルスベクターと細胞を接触させることにより、標的核酸配列を含む細胞に導入される。適切なレトロウイルスベクターには、限定されるわけではないが、ネズミレトロウイルスM-MuLV、N2（M- MuLV由来のレトロウイルス）、またはDCT5A、DCT5B、DCT5Cと称される二重コピーベクター（PCT出願US 90/02656を参照されたい）由来のものが含まれる。センスまたはアンチセンスオリゴヌクレオチドはまた、WO 91/04753に記載されるように、リガンド結合分子との結合体の形成により、標的ヌクレオチド配列を含む細胞に導入されてもよい。適切なリガンド結合分子には、限定されるわけではないが、細胞表面受容体、増殖因子、他のサイトカイン、または細胞表面受容体に結合する他のリガンドが含まれる。好ましくは、リガンド結合分子の結合体形成は、実質的にリガンド結合分子がその対応する分子または受容体に結合する能力に干渉せず、またはセンスまたはアンチセンスオリゴヌクレオチドまたはその結合体型が細胞内に入るのを遮断しない。また別に、センスまたはアンチセンスオリゴヌクレオチドは、WO 90/10448に記載されるように、オリゴヌクレオチド・脂質複合体の形成により、標的核酸配列を含む細胞に導入されてもよい。センスまたはアンチセンスオリゴヌクレオチド・脂質複合体は、好ましくは、内因性リパーゼにより、細胞内で分離される。さらに別の側面において、本発明は、LIRポリペプチドに特異的に結合する抗体、すなわち抗体の抗原結合部位を通じ（非特異的結合と反対に）LIRポリペプチドに結合する抗体を提供する。本発明の抗体は、LIRポリペプチドまたはその免疫原性断片を用いて生成してもよい。ポリクローナルおよびモノクローナル抗体を慣用技術により調製することができる。例えば、Monoclonal Antibodies，H ybridomas:A New Dimension in Biological Analyses．Kennetら（監修），Plen um Press，New York 1980;およびAntibodies:A Laboratory Manual，HarlowおよびLand（監修），Cold Spring Harbor Laboratory Press，ニューヨーク州コールドスプリングハーバー，1988を参照されたい。P3G2-LIRと免疫反応するモノクローナル抗体を産生する典型的な方法は、さらに以下の実施例５に例示される。本発明の範囲に含まれるのは、LIRポリペプチドに特異的に結合する抗体の抗原結合断片である。こうした断片には、限定されるわけではないが、Fab、F(ab' )、およびF(ab')₂が含まれる。遺伝子工学技術により産生される抗体変異体および誘導体は、本発明の範囲内に意図される。本発明のモノクローナル抗体には、キメラ抗体、例えば、ネズミモノクローナル抗体のヒト化（humanized）型が含まれる。こうした抗体を既知の技術により調製し、そして抗体がヒトに投与されるとき、免疫原性を減少させる利点を提供してもよい。１つの態様において、ヒト化モノクローナル抗体は、ネズミ抗体の可変部（またはその抗原結合部位のみ）およびヒト抗体由来の定常部を含む。また別に、ヒト化抗体断片は、ネズミモノクローナル抗体の抗原結合部位およびヒト抗体由来の可変部断片（抗原結合部位を欠く）を含んでもよい。キメラおよび工学技術で作成されるさらなるモノクローナル抗体の産生方法は、 Riechmannら，Nature 332:232，1988;Lieら，PNAS 84:3439,1987;Larrickら，Bi o/Technology 7:934，1989;およびWinterおよびHaris TIPS 14:139，1993に記載されるものを含む。上述のように、本発明の抗体は、LIRポリペプチドの存在を検出するin vitro またはin vivo検定において、およびアフィニティー・クロマトグラフィーでLIR ポリペプチドを生成するのに有用である。さらに、LIRが標的細胞に結合するのを遮断することが可能な抗体を用い、LIR ポリペプチドの生物学的活性を阻害してもよい。より具体的には、ITIMモチーフを有する1つまたはそれ以上のLIRファミリーメンバーに対しアンタゴニスト性である抗体の薬剤組成物を、細胞表面LIRとそのリガンドとの相互作用を遮断するため、個人に投与してもよい。その結果、免疫機能の活性化が起こり、そして免疫系の反応性が減少しているかまたは抑制されている疾患状態において、特に有益である。逆に、ITIMモチーフを欠く1つまたはそれ以上のLIRファミリーメンバーに対しアンタゴニスト性である抗体の薬剤組成物を用いて逆の効果を得てもよく、そして免疫系が活発すぎ、そして過剰の炎症または免疫病理が存在する疾患状態において有益である可能性がある。 LIRポリペプチドと免疫反応する、少なくとも1つの抗体および適切な希釈剤、賦形剤またはキャリアーを含む薬剤組成物は、本発明に考慮される。適切な希釈剤、賦形剤、およびキャリアーは、本発明のポリペプチドを含む薬剤組成物に関連して記載される。以下の実施例は、本発明のある態様を例示するため提供され、そして本発明の範囲を限定すると解釈されるためではない。実施例実施例1 ウイルスタンパク質の単離および発現 HCMVで感染した細胞上に発現することが知られる、ウイルス糖タンパク質UL18 を単離し、そして発現し、そしてその後UL18受容体を探索するため、UL18/Fc融合タンパク質を発現させそして用いることにより、本発明のP3G2ポリペプチドをコードするDNAを同定した。UL18をコードするDNAおよびそのアミノ酸配列が知られており、そしてBeck，S.，B.G．Barrell，Nature 331:269-272，1988に記載されている。以下はUL18を単離し、そしてUL18/Fc融合タンパク質を調製することを記載する。標準的技術を用い、HCMV（AD 169）に感染したヒト包皮繊維芽細胞から、3つの異なる転写段階、極初期（IE、8 p.i.h.）、初期（24 p.i.h.）および後期（4 8 p.i.h.）で、総RNAを単離した。UL18は感染において初期に転写されることが知られるため、IE総RNAをポリA＋選択し、そしてcDNAキット（Pharmacia TIME S AVER cDNA Kit）を製造者の指示にしたがって用い、HCMV-IE cDNAライブラリーを構築するのに用いた。全長UL18遺伝子を単離するため、UL18遣伝子の末端配列を含むことが知られる２つのオリゴヌクレオチドプライマーを合成し、そしてUL 18遺伝子をHCMV-IE cDNAライブラリーから単離し、そして増幅するのに用いた。プライマーは以下の配列を有し、そしてPCR産物に組み込まれるNot I制限部位を含んだ。 PCR条件は、1つの５分95℃サイクルに続き、95℃で45秒、58℃で45秒および72 ℃で45秒を30サイクル、そしてその後72℃５分を1サイクル、含んだ。PCR産物を 1%アガロースゲル上で電気泳動し、そして分離したDNA産物を視覚化するためエチジウム・ブロミドを用い、大きさを決定した。およそ1.1kbの期待される大きさを有するDNAの存在を確認した。 pDC406（McMahanら，EMBO J．10:2821，1991）由来であるが、単一のBgl II部位を有するベクター、pDC409発現ベクターをクローニング法のため選択した。PC R産物を、Not I部位を通じてpDC409発現ベクターにサブクローンし、配列決定し、そしてアミノ酸配列をDNA配列から推定した。決定されたヌクレオチド配列およびアミノ酸配列は、以前公表された配列（本章中）と同一であった。 UL18の細胞外領域および突然変異タンパク質（mutein）ヒトIgG1 Fc領域の融合タンパク質（UL18:Fc）を、まずUL18の細胞外領域に隣接するプライマーを用い、UL18の細胞外領域をコードするcDNAを単離することにより、調製した。該プライマーは、5'および3'末端に挿入されたSal IおよびBgl II制限酵素部位と共に合成し、その結果PCR増幅cDNAが、5'および3'端に、それぞれSal IおよびBgl II制限酵素部位を導入された。プライマーは以下の配列を有した： PCR反応条件は、テンプレートがここに記載されたように単離された全長遺伝子であること以外は、上述のようであった。融合タンパク質、sUL18:Fcを発現するベクター構築物を、細胞結合研究において使用するために調製するため、ヒトIgG1抗体のFc領域をコードするDNA断片をB gl IIおよびNot I制限酵素を用いプラスミドから単離した。コードされるFc部分は、U.S．5,457,035に記載される、免疫グロブリン受容体への親和性が減少した、突然変異タンパク質であった。sUL18遺伝子上のBgl II部位を用い、sUL18遺伝子DNAをFc遺伝子のBgl II部位に連結し、N末端Sal I制限部位およびC末端Not I 制限部位を有するsUL18:Fc融合DNA構築物を形成した。この融合sUL18:Fc DNA構築物をその後、pDC409発現ベクターのSal IおよびNot I部位に連結し、409/sUL1 8/Fc DNA構築物を形成した。サル細胞株COS-1（ATCC CRL-1650）を用い、融合タンパク質の発現を確認した。6ウェルプレート中のCOS-1細胞（2x10⁵細胞／ウエル）を、ウエル当たり約2μ gのDNA構築物409/sUL18/Fcでトランスフェクションした。細胞を5%FBS/DMEM/F12 （GIBCOより入手可能）中で、2−3日培養し、その後 PBSで2回洗浄し、システイン／メチオニン枯渇RPMＩ（GIBCOよりRPMI 1640として入手可能）中で1時間飢餓させ、そして100μCi/mlの³⁵S-Met/Cysで4時間、代謝的に標識した。付着していない細胞を除去するため、上清をスピンして透明にし、上清150μlをRIPA緩衝液（PBS中の0.05%Tween 20、0.1%SDS、1%Triton X-10 0、0.5%デオキシコール酸）100μlおよび50%プロテインA−Sepharose固体支持体ビーズ50μlと4℃で1時間インキュベーションした。プロテインA−Sepharoseは、融合タンパク質のFc部分に結合する固定プロテインAを有するSepharose固体支持体（Pharmaciaより入手可能）である。非結合成分を除去するため、固体支持体をRIPAで洗浄した後、プロテインA−Sepharose固体支持体に結合した融合タンパク質を、SDS-PAGE還元試料緩衝液35μlを用い、プロテインA−Sepharoseから溶出し、そしてその後100℃で5分熱した。溶出物をその後、¹⁴C標識タンパク質分子量マーカーと共に、4−20％ SDSポリアクリルアミド勾配ゲル上で電気泳動した。電気泳動後、ゲルを8%酢酸で固定し、そしてAmershamから入手可能な増幅体（Amplifier）で室温で20分シグナルを増強した。ゲルを真空下で乾燥させた後、x線フィルムに曝露した。フィルム解析により、期待されたタンパク質、突然変異タンパク質IgGのFc領域およびFcに融合したUL18細胞外ドメインを含む100 −120kDaタンパク質が発現していることが確認された。ひとたび融合タンパク質を発現する細胞が同定されると、トランスフェクションされた細胞の大規模培養を増殖させ、融合タンパク質を発現する細胞から上清を収集した。この過程は、COS-1細胞をT175フラスコ中で、フラスコ当たり15μg のUL18/Fc/409融合DNAでトランスフェクションすることを含む。0.5%低免疫グロブリンウシ血清を含む培地中での培養７日後、0.2%アジ化物溶液を上清に添加し、そして上清を0.22μmフィルターを通し、ろ過した。その後およそ１１の培養上清を、4.6ｘ100mmプロテインAカラム（perSeptive BiosystemsのPOROS 20A）を用い、10ml／分で、BioCadプロテインAHPLCタンパク質精製系を通過させた。プロテインAカラムは、上清中のsUL18/Fc融合タンパク質のFC部分と結合し、融合タンパク質を固定し、そして上清の他の構成要素がカラムを通過するのを許す。カラムをPBS溶液30mlで洗浄し、そして結合したsUL18/FcをHPLCカラムから、pH3.0に調整されたクエン酸で溶出した。溶出される精製sUL18/Fcを、pH7.4の1M Hepes溶液を用い、溶出される際、中和した。集めた溶出タンパク質を、銀染色と共にSDS-PAGEを用い解析し、100−120kDaのUL18/Fc融合タンパク質の発現を確認した。実施例2 UL18 に結合する細胞株のスクリーニング実施例１に記載されるように単離されたsUL18/Fcタンパク質を用い、標準的フローサイトメトリー方法論にしたがい、定量的結合研究を用い、前記タンパク質が結合する細胞株をスクリーニングした。スクリーニングされる各細胞株に関し、該方法は、PBS中の2%FCS（ウシ胎児血清）、5%正常ヤギ血清および5%ウサギ血清でブロッキングされるおよそ100,000の細胞を1時間インキュベーションすることを含んだ。その後ブロッキングされた細胞をPBS中の2%FCS、5%ヤギ血清および 5%ウサギ血清中のsUL18/Fc融合タンパク質5μg/mlとインキュベーションした。インキュベーション後、試料をFACS緩衝液（PBS中の2%FCS）で2回洗浄し、そしてその後、マウス抗ヒトFc／ビオチン（Jackson Researchより購入）およびSAPE （Molecular Probesより購入したストレプトアビジン・フィコエリトリン）で処理した。この処理により、抗ヒトFc／ビオチンが結合した任意のsUL18/Fcにも結合するようになり、そしてSAPEが抗ヒトFc／ビオチンに結合するようになった結果、細胞に結合したsUL18/Fc上に蛍光同定標識が生じた。細胞を、蛍光検出フローサイトメトリーを用い、全ての結合したタンパク質に関しても解析した。結果により、UL18は、B細胞株CB23、RAJIおよびMP-1；単球性細胞株Thp-1およびU937 ；および初代B細胞および初代単球によく結合することが示された。UL18はT細胞株に検出可能であるように結合せず、または初代T細胞に結合しない。実施例3 P3G2 cDNA およびポリペプチドの単離以下は、UL18に結合することが見出された細胞株の1つのcDNAスクリーニングおよび該細胞株により発現される新規ポリペプチドの単離を記載する。米国特許第5,350,653号（本明細書に援用される）に記載されるように調製された、哺乳動物発現ベクターpDC406中のCB23 CDNAライブラリーを得、そしてプール当たりおよそ2,000クローンからなるプールから、プラスミドDNAを単離した。単離DNA をDEAE−デキストランを用いて、CV1-EBNA細胞（ATCC CRL 10478）にトランスフェクションした後、クロロキン処理を行った。CV1-EBNA細胞を完全培地（10%（v /v）ウシ胎児血清、50U/mlペニシリン、50U/mlストレプトマイシン、および2mM L−グルタミンを含むダルベッコの修飾イーグル培地）中で維持し、そして単一ウェルチャンバースライド中におよそ2x10⁵細胞／ウェルの密度で蒔いた。スライドをPBS中のヒトフィブロネクチン10μg/mlの溶液1mlで30分、前処理した後、 PBSで1回洗浄した。層状に増殖する付着細胞から培地を除去し、そして66.6μM 硫酸クロロキンを含む完全培地1.5mlと置き換えた。DNA溶液（クロロキンを含む完全培地中の2μgDNA、0.5mg/ml DEAE−デキストラン）約0.2mlを細胞に添加し、そして混合物を37℃で約5時間インキュベーションした。インキュベーション後、培地を除去し、そして10%DMSO（ジメチルスルホキシド）を含む完全培地を添加することにより、2.5分間細胞にショックを与えた。ショックを与えた後、溶液を新鮮な完全培地で置き換えた。細胞を培養中で2から3日増殖させ、挿入DN A配列の一過性発現を可能にした。これらの条件により、生存CV1-EBNA細胞において30%から80%のトランスフェクション頻度が得られた。各スライドを、結合緩衝液（25mg/mlウシ血清アルブミン、2mg/mlアジ化ナトリウム、20mM Hepes、PH7.2、および50mg/ml脱脂粉乳を含むRPMI 1640）中の1μ g/mlの濃度のUL18:Fc 1mlと、室温で1時間インキュベーションした。インキュベーションしたスライドを結合緩衝液で洗浄し、そしてその後Fc特異的¹²⁵Iマウス抗ヒトIgG（Goodwinら，Cell 73:447-456,1993を参照されたい）とインキュベーションした。この後、緩衝液での2回目の洗浄を行い、その後各スライドを、2.5 %グルタルアルデヒド／PBS溶液で固定し、PBS溶液で洗浄し、そして空気乾燥させた。乾燥させたスライドをKodak GTNB-2写真感光乳剤（水で6倍希釈）に浸した。空気乾燥の後、スライドを暗箱に入れ、そして冷蔵した。3日後、スライドをKodak D19現像剤で現像し、水でリンスし、そしてAgfa G433C固定剤で固定した。固定スライドを25−40倍の倍率で顕微鏡下で個々に調べた。sUL18:Fcの結合を示す陽性細胞は、フィルムのバックグラウンドに対し、オートラジオグラフィーの銀粒子が存在することにより視覚化された。2つの陽性プールを同定した。各プールから細菌クローンを力価決定し、そしてプレートがおよそ各200コロニーを含むように蒔いた。各プレートをこすり、上述のようにCV1-EBNA細胞にトランスフェクションしそしてスクリーニングするためのプールされたプラスミドDNAを提供した。続く分割およびスクリーニングに続き、2つの陽性独立コロニーを得た。2つの陽性クローンのcDNA挿入物は、自動DNA配列決定により決定されたように、2922および2777ヌクレオチド長であった。2つの挿入物のコード領域は、P3G2および18A3と名付けられ、それぞれ1953（ヌクレオチド310-2262）および1959（ヌクレオチド168−2126）ヌクレオチドであった。2つのcDNAクローンは、実質的に類似のタンパク質をコードし、そしておそらく同一遺伝子の異なる対立遺伝子に対応する。 P3G2のcDNA配列およびコードされるアミノ酸は、それぞれ配列番号1および配列番号2に示される。18A3のcDNA配列およびコードされるアミノ酸は、それぞれ配列番号3および配列番号４に示される。P3G2アミノ酸配列（配列番号2)は16アミノ酸（アミノ酸1−16）の予測されるシグナルペプチド；442アミノ酸（アミノ酸17−458）の細胞外ドメイン；25アミノ酸（アミノ酸459−483）の膜貫通ドメインおよび、167アミノ酸（アミノ酸484−650）の細胞質ドメインを有する。細胞外ドメインには、4つの免疫グロブリン様ドメインが含まれる。Ig様ドメインI はほぼアミノ酸17−118を含み；Ig様ドメインIIはほぼアミノ酸119−220を含み；Ig様ドメインIIIはほぼアミノ酸221−318を含み；そしてIg様ドメインIVはほぼアミノ酸319−419を含む。重要なことに、本ポリペプチドの細胞質ドメインは 4つのITIMモチーフを含み、各々はYxxL/Vのコンセンサス配列を有する。第一のI TIMモチーフ対はアミノ酸553−536および 562−565に見られ、そして第二の対はアミノ酸614−617および644−647に見られる。18A3のアミノ酸配列は、ほぼ同一で上述の特徴を有する。これらのコードされるポリペプチドの特徴は、I型膜貫通糖タンパク質に一致している。実施例4 P3G2 融合タンパク質の調製以下は、P3G2融合タンパク質を生成するのに用いられる方法を記載し、該タンパク質は、その後、前記タンパク質が結合する細胞株を同定し、そして最終的に UL18とは異なる、正常細胞表面P3G2リガンドを単離するのに用いられた。P3G2の細胞外領域および突然変異タンパク質ヒトFc領域の融合タンパク質（sP3G2:Fc）を、まずP3G2の細胞外領域に隣接するプライマーを用い、P3G2の細胞外領域をコードするcDNAを単離することにより、調製した。該プライマーは、5'および3'末端に挿入されたSal IおよびBgl II制限酵素部位と共に合成し、その結果PCR増幅 cDNAが、5'および3'端に、それぞれSal IおよびBgl II制限酵素部位を導入された。プライマーは以下の配列を有した： PCR反応条件は、上述のようであり、そしてテンプレートは、実施例3に上述されたように単離された全長遺伝子P3G2遺伝子だった。融合タンパク質、sP3G2:Fcを発現するベクター構築物を、細胞結合研究において使用するために調製するため、IgG Iの突然変異タンパク質ヒトFc領域を実施例1に上述されるように、Bgl IIおよびNot I制限酵素を用いプラスミドから切り出した。sP3G2遺伝子上のBgl II部位を用い、sP3G2遺伝子DNAをヒト突然変異タンパク質Fc遺伝子のBgl II部位に連結し、N末端Sal I制限部位およびC末端Not I制限部位を有するsP3G2/Fc融合DNA構築物を形成した。この融合s P3G2:F c DNA構築物を次いで、pDC409発現ベクターのSal IおよびNot I部位に連結し、4 09/sP3G2/Fc DNA構築物を形成した。サル細胞株COS-1（ATCC CTL-1650）を用い、融合タンパク質の発現を確認した。6ウェルプレート中のCOS-1細胞（2x10⁵細胞／ウェル）を、ウェル当たり約2μ gのDNA構築物409/sP3G2/Fcでトランスフェクションした。細胞を5%FBS/DMEM/F12 （GIBCOより入手可能）中で培養し、そしてトランスフェクションの2または3日後、細胞をシステイン／メチオニン枯渇RPMI中で1時間飢餓させ、そしてトランスフェクションされた細胞を100μCi/mlの³⁵S-Met/Cysで4時間、代謝的に標識した。付着していない細胞を除去するため、上清をスピンして透明にし、そして破片および上清150μlをRIPA緩衝液100μlおよび50%プロテインA−Sepharose固体支持体ビーズ50μlと4℃で1時間インキュベーションした。非結合成分を除去するため、固体支持体をRIPAで洗浄した後、プロテインA−Sepharose固体支持体に結合した融合タンパク質を、SDS-PAGE還元試料緩衝液30μlを用い、プロテインA −Sepharoseから溶出し、そしてその後100℃で５分熱した。溶出物をその後、¹⁴ C標識タンパク質分子量マーカーと共に、4−20％ SDSポリアクリルアミド勾配ゲル上で電気泳動した。電気泳動後、ゲルを8%酢酸で固定し、そしてAmershamから入手可能な増幅体で室温で20分シグナルを増強した。ゲルを真空下で乾燥させた後、X線フィルムに曝露した。フィルム解析により、120−130kDaの分子量を有する、期待されたタンパク質が発現していることが確認された。ひとたび融合タンパク質発現細胞が確認されると、実施例1に上述されるように、トランスフェクションされた細胞の大規模培養を増殖させ、融合タンパク質を発現するCOS-1細胞から上清を収集した。実施例3に上述される方法にしたがい、BioCad系およびPerSeptive BiosystemsのPOROS 20Aカラムを用いてP3G2/Fc融合タンパク質を精製した。プールされた溶出タンパク質を、銀染色と共にSDS-PA GEを用い解析し、発現を確認した。実施例5 LIR-P3G2 抗体の生成以下の実施例は、P3G2を細胞上に発現する細胞を同定するためにフローサイトメトリー解析に用いられる、P3G2に対するモノクローナル抗体の生成を記載する。実施例4に記載されるように、COS-1細胞発現およびアフィニティー精製により、精製P3G2/Fc融合タンパク質を調製した。精製タンパク質または全長タンパク質をコードする発現ベクターでトランスフェクションされた細胞は、例えば米国特許第4,411,993号に記載される技術など、慣用技術を用い、P3G2に対するモノクローナル抗体を生成することが可能である。簡潔には、BALB-CマウスをP3G2/F c 10μgで0、2および6週目に免疫した。一次免疫感作は、Vaxcell，Inc.のTITER MAXアジュバントと共に調製し、そして続く免疫感作は、不完全フロイントアジュバント（IFA）と共に調製した。11週目、PBS中の3−4μgのP3G2で、マウスをI V追加免疫した。IV追加免疫の3日後、脾臓細胞を採取し、そして50% PEG 1500水溶液を用い、Ag8.653骨髄腫融合パートナーと融合させた。ウェル当たり2x10³細胞のPBS中のP3G2でトランスフェクションしたCOS-1細胞を用い、そしてポリスチレン96ウェルマイクロタイタープレートにプレート被覆抗原として乾燥させ、EL ISAによりハイブリドーマ上清をスクリーニングした。次に、陽性上清をFACS解析およびP3G2でトランスフェクションしたCOS-1細胞を用いたRIPにより確認した。ハイブリドーマをクローン化し、そしてその後同一の検定を用いた。モノクローナル培養を拡大し、そして上清をBioRadプロテインAアガロースを用いたアフィニティー・クロマトグラフィーにより生成した。 P3G2/Fcに対するモノクローナル抗体を用い、細胞上にP3G2を発現する細胞を同定するための標準的なフローサイトメトリー法を用い、細胞および細胞株をスクリーニングした。フローサイトメトリー解析でスクリーニングされた細胞株および細胞は、CB23、CB39、RAJI、AK778、K299、PS-1、U937、THP-1、ジャーカットおよびHSB2であった。スクリーニングされる各細胞株または細胞試料に関し、該方法は、PBS中の2%Fcs（ウシ胎児血清）、5%正常ヤギ血清および5%ウサギ血清でブロッキングされたおよそ100,000の細胞を、FITC結合マウス抗P3G2抗体5μgと共に1時間インキュベーションすることを含んだ。インキュベーション後、試料をFACS緩衝液（PBS中の2%FCS）で2回洗浄した。細胞を、FITCを検出するための蛍光検出フローサイトメトリーを用い、全ての結合タンパク質に関しても解析した。結果により、LIR-P3G2抗体が、B細胞株CB23およびR AJI；単球性細胞株THP-1およびU937；および初代B細胞および初代単球によく結合することが示された。LIR-P3G2の最も高い発現は、CD16に対し明るく染色され、そしてCD14およびCD64に対してはそれより暗く染色される単球上で示された。該抗体はT細胞株に検出可能であるように結合せず、または初代T細胞に結合しない。関連する実験において、上述のように生成されたP3G2抗体を、免疫沈降実験に用いた。免疫沈降解析は、まずPBSで細胞を洗浄し、そして細胞を10mMホウ酸ナトリウムおよび150mM NaCl、pH8.8のビオチン化緩衝液に再懸濁することにより、その後、DMSO中のビオチン−CNHS−エステル（Amershamより購入されたD−ビオチノイル−e−アミノカプロン酸−N−ヒドロキシスクシンイミドエステル）の 10mg/ml溶液5μlを細胞に添加することにより、2.5x10⁶単球の表面をビオチン化することを含んだ。反応を、細胞1ml当たり1M塩化アンモニウム10μlで止め、そして細胞をPBSで洗浄した後、細胞を0.5%NP40-PBS1mlで溶解し、そして溶解物を遠心分離後に回収した。その後、溶解物150μlに0.5%NP40-PBS 100μlを添加し、そして生じた混合物を抗体2μg/mlと4℃で16時間インキュベーションした。50 %&プロテインA−Sepharoseスラリー（slurry）50μlを、抗体混合物に添加し、そしてスラリーを4℃で1時間震蕩した。スラリーを遠心分離し、そして生じた沈澱をPBS中の0.5%NP40 0.75mlで6回洗浄した。プロテインA−Sepharoseに結合したタンパク質を、SDS-PAGE還元試料緩衝液30μlで溶出し、そしてその後100℃で 5分熱した。溶出タンパク質を増強化学発光（ECL）タンパク質マーカーと共に4−20%巻勾配SDS-PAGEを用いて解析した。その後、ウェスタンブロットにおいて、電気泳動試料をニトロセルロース膜上に移した。膜をブロッキング試薬（PBS中の 0.1%Tween-20および３壱脱脂粉乳）で室温で1時間処理し、そしてその後PBS中の 0.1%Tween-20で15分間1回、そして5分間2回洗浄した。洗浄した膜を1:100HRP− ストレプトアビジン10mlと30分インキュベーションし、そしてその後、PBS中の0 .1%Tween-20で15分間1回、その後5分間4回洗浄した。結合したストレプトアビジンHRPをAmershamより購入し、そして製造者の指示にしたがい使用したECL検出試薬で検出した。現像した膜をX線フィルムに曝露し、そしてその後視覚化した。結果により、CB23細胞およびP3G2でトランスフェクションしたCOS-1細胞からLIR-P3G2が沈降したことが示され、P3G2がこれらの細胞により発現されていることが示された。実施例6 P3G2 に結合する細胞および細胞株のスクリーニング以下は、P3G2に結合する細胞および細胞株を同定するのに用いられるフローサイトメトリー解析を記載する。試験された細胞および細胞株は、CB23、HSB2、MP -1、ジャーカット、初代T細胞、初代B細胞、および初代NK細胞であった。試験される各細胞株または細胞に関し、該方法は、FACS緩衝液（0.2％アジ化物を含むP BS中の2%FCS）で細胞を3回洗浄し、そして各試料（10⁵細胞）をブロッキング緩衝液（PBS中の2%FCS、5%NGSおよび5%ウサギ血清）100μl中で1時間インキュベーションすることを含んだ。各細胞株の4つの試験試料を調製し、各々は、試料に添加されたブロッキング緩衝液100μl中のW6/32（ATCC HB−95）0、2、5、または10μgを有した。W6/32はMHCクラスI重鎖に対する抗体である（抗HLA-A、B、およびC分子）。W6/32溶液の添加後、試料を氷上で1時間インキュベーションし、そしてその後FACS緩衝液200μlで3回洗浄した。その後、ブロッキング緩衝液中のP3G2/Fc 5μgを各試料に添加し、そして氷上で1時間インキュベーションした。P3G2/Fcは細胞上の結合部位に関し、W6/32と競合した。インキュベーション後、試料をFACS緩衝液200μlで3回洗浄し、そしてマウス抗ヒトFc／ビオチンおよびSAPEで45分処理した。この処理により、抗ヒトFc／ビオチンが細胞に結合した任意のsP3G2/Fcにも結合するようになり、そしてSAPEが抗ヒトFc／ビオチンに結合するようになった。SAPEは蛍光化合物であるため、適切な励起および放出条件を用いたSAPEの検出は、細胞に結合したP3G2 /Fcを明確に同定する。最後に、処理細胞をFACS緩衝液で3回洗浄し、そしてフローサイトメトリーに供し、タンパク質に結合した細胞を同定した。結果により、W6/32は、試験されたすべての細胞および細胞株への結合に関し、P3G2と競合することが示された。P3G2結合は、W6/32 5μgで完全に遮断され、 W6/32およびP3G2がMHCクラスI重鎖上の同一のまたは重なる部位に結合することが示された。実施例7 P3G2 結合リガンドを単離するためのHSB2 cDNA ライブラリーのスクリーニング以下の実施例は、Tリンパ芽球白血球細胞株であり、P3G2に結合することが見出された細胞株の1つ、HSB-2由来のcDNAライブラリーをスクリーニングし、そしてP3G2結合リガンドを同定することを記載する。哺乳動物発現ベクターpDC302中のHSB2 cDNAライブラリーを、米国特許第5,516,658号に一般的に、そしてKozlos kyら，0ncogene 10:299-306，1995に具体的に記載されるように、調製した。簡潔には、選別されたHSB-2細胞からmRNAを単離し、そして第一のcDNA鎖をポリA⁺5 μgおよびLife Scienceの逆転写酵素、AMVRTaseを用いて合成した。第二のcDNA 鎖は、BRLのDNAポリメラーゼIを1.5U/μlの濃度で用い、合成した。Haymerleら，Nucl．Acids Res．14:8615，1986に記載されるような標準的技術を用い、cDNA をpDC302ベクターの適切な部位に連結した。大腸菌株DH5α細胞をpDC302中のcDNAライブラリーで形質転換した。ライブラリーを増幅した後、力価チェックにより、全部で157,200クローンがあることが示された。形質転換された細胞を15の異なるプレートに蒔いた。プール当たりおよそ2,000クローンからなるプールより、プラスミドDNAを単離した。単離DNAをD EAE−デキストランを用いて、CV1-EBNA細胞（ATCC CRL 10478-）にトランスフェクションした後、クロロキン処理を行った。CV1- EBNA細胞を完全培地（10%（v/v）ウシ胎児血清、50U/mlペニシリン、50U/mlストレプトマイシン、および2mM L−グルタミンを含むダルベッコの修飾イーグル培地）中で維持し、そして単一ウェルチャンバースライド中におよそ2x10⁵細胞／ウェルの密度で蒔いた。スライドをPBS中のヒトフィブロネクチン10μg/mlの溶液1mlで30分、前処理した後、PBSで1回洗浄した。層状に増殖する付着細胞から培地を除去し、そして66.6μM硫酸クロロキンを含む完全培地1.5mlと置き換えた。DNA溶液（クロロキンを含む完全培地中の2μgDNA、0.5mg/ml DEAE−デキストラン）約0.2mlを細胞に添加し、そして混合物を37℃で約5時間インキュベーションした。インキュベーション後、培地を除去し、そして10%DMSOを含む完全培地を添加することにより、2.5分間細胞にショックを与えた。ショックを与えた後、該完全培地を新鮮な完全培地で置き換え、そして細胞を培養中で3日増殖させ、挿入DNA配列の一過性発現を可能にした。これらの条件により、生存CV1-EBNA 細胞において30%から80%のトランスフェクション頻度が得られた。各スライドを、結合緩衝液（2５mg/mlウシ血清アルブミン、2mg/mlアジ化ナトリウム、20mM Hepes、pH7.2、および50mg/ml脱脂粉乳を含むRPMI 1640）中の0.4 5μg/mlの濃度のP3G2:Fc 1mlと、室温で1時間インキュベーションした。スライドをインキュベーションした後、結合緩衝液で洗浄し、そしてその後Fc特異的¹² ⁵ Iマウス抗ヒトIgG（Goodwinら，Cell73:447-456，1993を参照されたい）とインキュベーションした。この後、緩衝液で2回目の洗浄を行い、その後スライドを、2.5%グルタルアルデヒド／PBS溶液で固定し、PBS溶液で洗浄し、そして空気乾燥させた。スライドをKodak GTNB-2写真感光乳剤（水で6倍希釈）に浸した。空気乾燥の後、スライドを暗箱に入れ、そして冷蔵した。3日後、スライドをKodak D19現像剤で現像し、水でリンスし、そしてAgfa G433C固定剤で固定した。固定スライドを25−40倍の倍率で顕微鏡下で個々に調べた。sP3G2:Fcの結合を示す陽性プールは、フィルムのバックグラウンドに対し、オートラジオグラフィーの銀粒子が存在することにより視覚化された。2つの陽性プールの力価を決定し、そしてプレートがおよそ各200クローンを含むように蒔いた。各プレートをこすり、上述のように CV1-EBNA細胞にトランスフェクションしそしてスクリーニングするためのプールされたプラスミドDNAを提供した。続く分割およびスクリーニングに続き、各プールに対し1つの陽性独立コロニーを得た。陽性クローンのcDNA挿入物はクラスI のMHC抗原であるHLA-B44およびHLA-A2と同定された。実施例８：ノザンブロット分析実施例４に記載された実験により、多くの細胞系列においてＬＩＲ−Ｐ３Ｇ２の表面発現が検出されたことから、従来法であるノザンブロット分析操作を用いて異なる組織型におけるＬＩＲ−Ｐ３Ｇ２およびＬＩＲ−Ｐ３Ｇ２に関連するｍＲＮＡの発現を研究した。ノザンブロット分析のために選択した細胞系列は、ＲＡＪＩ、ＰＢＴ、ＰＢＭ、ＹＴ、ＨＥＰ３Ｂ、ＨＥＬＡ、ＫＢ、ＫＧ−１、ＩＭＴＬＨ、ＨＰＴ、ＨＦＦ、ＴＨＰ−１およびＵ９３７であった。以下に、ノザンブロット分析およびその結果について記載する。Ｐ３Ｇ２の細胞外領域をコードするｃＤＮＡを、Ｐ３Ｇ２の細胞外領域に隣接し、以下の配列を有すプライマーを用いて単離した：ＳａｌＩ５’−ＴＡＴＧＴＣＧＡＣＣＡＴＧＡＣＣＣＣＣＡＴＣＣＴＣＡＣＧＧＴ−３’（ＳＥＱＩＤＮＯ：５）ＢｇｌＩＩ５’−ＴＡＴＡＧＡＴＣＴＡＣＣＣＣＣＡＧＧＴＧＣＣＴＴＣＣＣＡＧＡＣＣＡ（ＳＥＱＩＤＮＯ：２７）ＰＣＲの鋳型は上記実施例３で単離されたＰ３Ｇ２遺伝子の全長であった。ＰＣＲ反応の条件は以下の通りであった：９５℃５分を１サイクル；９５℃４５秒、６４℃４５秒、７２℃４５秒を３０サイクル；そして７２℃５分を１サイクル。ＰＣＲ産物をＩｎｖｉｔｒｏｇｅｎから購入したＰＣＲＩＩベクターに、販売元の指示に従ってクローン化した。Ｐ３Ｇ２の細胞外領域をコードする単離されたＤＮＡを使用し、ＡｍｂｉｏｎＭＡＸＳＣＲＩＰＴキットを用いて製造元の指示に従ってリボプローブを作製した。種々のヒト細胞系列からのポリＡ選択ＲＮＡもしくは全ＲＮＡを含むノザンブロットは、ＲＮＡ試料を１．１％アガロース−ホルムアルデヒドゲルで分離、製造元（Ａｍｅｒｓｈａｍ社）の推奨に従ってＨｙｂｏｎｄ−Ｎ上にブロットし、そしてメチレンブルーで染色することでＲＮＡ濃度をモニターすることによって調製された。ブロットは１μｇのポリＡ＋ＲＮＡもしくは１０μｇの全ＲＮＡを用いて調製され、各ブロットは、前述のようにして調製された１０⁶ｃｐｍ／ｍＬのＲＮＡ細胞外Ｐ３Ｇ２リボプローブで６３℃１６時間反応させた。反応させたブロットに対して、２×ＳＳＣ、６３℃で３０分間の洗浄を２回；１×ＳＳＣ、６３℃で３０分間の洗浄を２回；０．１×ＳＳＣ、６３℃で５分間の洗浄を２回行った。反応させたブロットのオートラジオグラフを撮った。撮られたブロットから、Ｐ３Ｇ２ＲＮＡがＲＡＪＩ、ＣＢ２３およびＵ９３７で発現する３．５ｋｂのＲＮＡに；ＴＨＰ−１で発現するおよそ１．５ｋｂのＲＮＡに；そしてＰＢＭで発現する１．５ｋｂから３．５ｋｂの複数のＲＮＡにハイブリダイズすることが示された。これらの結果は、構造上Ｐ３Ｇ２と同様の細胞外ドメインを有する、異なる遺伝子群が、末梢血単球で発現しうることを示唆している。実施例９：ＬＩＲポリペプチドを単離するＰＢＭｃＤＮＡライブラリーの探索以下に、Ｐ３Ｇ２ポリペプチドに関連するポリペプチドを単離するための、従来的なサザンブロット法を用いた末梢血単球ｃＤＮＡライブラリースクリーニング工程について記載する。末梢血単球のｃＤＮＡライブラリーは、実施例７に記載された操作と実質的に同じ操作を用いて調製された。プールあたり１０，０００クローンを有すｃＤＮＡプールで、当初１５プールからのＤＮＡを、ＢｇｌＩＩ制限酵素で消化し、１％アガロースゲル上で１００Ｖ、２時間電気泳動した。電気泳動したＤＮＡを０．５５％ＴＢＥバッファー中でＨｙｂｏｎｄメンブレン上に電気ブロットすることによって、サザンブロットを調製した。ブロットされたＤＮＡを、０．５ＭＮａＯＨ、０．６ＭＮａＣｌ溶液中で５分間変性させ、それから０．５ＭＴＲＩＳ、１．５ＭＮａＣｌ（ｐＨ７．８）中で５分間中和した。メンブレンをＳＴＲＡＴＡＬＩＮＫＥＲＵＶクロスリンカーに20秒間置き、ブロットされたＤＮＡをメンブレンに固定させた。メンブレンおよび結合したＤＮＡを、１０ＸＤｅｎｈａｒｔ’ｓ溶液、０．０５ＭＴＲＩＳ（ｐＨ７．５）、０．９ＭＮａＣｌ、０．１％ピロリン酸ナトリウム、１％ＳＤＳおよび２００μｇ／ｍＬサケ精子ＤＮＡからなるプレハイブリダイゼーション溶液中に、６３℃で２時間置き、それからシグナルペプチド並びにＳａｌＩおよびＢｇｌＩＩ制限部位を含み、ＬＩＲ−Ｐ３Ｇ２細胞外領域をコードするＤＮＡの³²Ｐ標識されたプローブを用い、結合したＤＮＡを反応させた。ハイブリダイゼーション溶液中のＤＮＡプローブの濃度は、ハイブリダイゼーション溶液１ｍＬあたり１０⁶ＣＰＭであった。反応させたブロットは、６３℃で１６時間インキュベートした後、２×ＳＳＣ、６３℃で１時間（途中１回溶液交換する）；１×ＳＳＣ、６３℃で１時間（途中１回溶液交換する）；そして０．１×ＳＳＣ、６８℃で４５分間（途中１回溶液交換する）洗浄した。ブロットを乾燥させた後、オートラジオグラフを撮り、Ｐ３Ｇ２細胞外ＤＮＡプローブにハイブリダイズしたＤＮＡバンドを可視化した。オートラジオグラフィーの結果、すべてのプールにプローブとハイブリダイズするＤＮＡが含まれることが示された。７本の陽性ＤＮＡバンドを示した１つのプールを選択し、次いでプールあたり３，０００クローンを有す１０プールにさらに分割した。上記１０プールに対して続いて行われたサザンブロット分析により、陽性にハイブリダイズするＤＮＡ配列を９つ示すプールが１つ得られた。標準的なコロニーハイブリダイゼーション技術により、ハイブリダイズする単一のクローンが単離された。フィルター上に２つに複製された細菌のコロニーを、５００，０００ｃｐｍ／ｍＬの濃度の上記Ｐ３Ｇ２細胞外プローブと６３℃で１６時間反応させた。ハイブリダイズさせたフィルターを、２×ＳＳＣ、６３℃で３０分間；１×ＳＳＣ、６３℃で３０分間；そして最後に０．１×ＳＳＣ、６８℃で１５分間洗浄した。オートラジオグラフィーにより、複製したフィルター上で４８クローンがハイブリダイズするものとして可視化され、これらのクローンから標準的なＤＮＡ調製法を用いて得られたＤＮＡをＢｇｌＩＩで消化した。消化物のサザンブロットを得て、上記Ｐ３Ｇ２細胞外プローブに反応させた。７つの異なる大きさのクローン化されたインサートが、Ｐ３Ｇ２プローブに陽性にハイブリダイズするものとして同定された。各インサートのヌクレオチド配列は、自動シークエンス技術を用いて得られた。８つの異なるクローン化されたインサートの中で、１つはＬＩＲ−Ｐ３Ｇ２と同一の配列であった。その他は、新規のＬＩＲポリペプチドファミリーのポリペプチドをコードするＤＮＡとして同定された。単離されたＬＩＲファミリーメンバーのヌクレオチド配列（ｃＤＮＡ）は、ＳＥＱＩＤＮＯ：７（ｐｂｍ２５と命名）、ＳＥＱＩＤＮＯ：９（ｐｂｍ８と命名）、ＳＥＱＩＤＮＯ：１１（ｐｂｍ３６−２と命名）、ＳＥＱＩＤＮＯ：１３（ｐｂｍ３６−４と命名）、ＳＥＱＩＤＮＯ：１５（ｐｂｍｈｈと命名）、ＳＥＱＩＤＮＯ：１７（ｐｂｍ２と命名）、およびＳＥＱＩＤＮＯ：１９（ｐｂｍｌ７と命名）に示されている。それらによりコードされるアミノ酸配列は、ＳＥＱＩＤＮＯ：８（ｐｂｍ２５と命名）、ＳＥＱＩＤＮＯ：１Ｏ（ｐｂｍ８と命名）、ＳＥＱＩＤＮＯ：１２（ｐｂｍ３６−２と命名）、ＳＥＱＩＤＮＯ：１４（ｐｂｍ３６−４と命名）、ＳＥＱＩＤＮＯ：１６（ｐｂｍｈｈと命名）、ＳＥＱＩＤＮＯ：１８（ｐｂｍ２と命名）、およびＳＥＱＩＤＮＯ：２０（ｐｂｍ１７と命名）に示されている。実施例１０：ＬＩＲｃＤＮＡ配列に対するヒト樹状細胞ｃＤＮＡライブラリーのスクリーニング以下に、λＺａｐをベクターとするヒト骨髄由来樹状細胞ｃＤＮＡライブラリーを、放射線標識されたＨｈ０７７９ｃＤＮＡ断片でスクリーニングすることによる、ＬＩＲファミリーメンバーの単離および同定について記載する。Ｈｈ０７７９ｃＤＮＡ断片は、以前ヒト樹状細胞ｃＤＮＡライブラリーから単離されたＨｈ０７７９クローンの０．７ｋｂインサートであり、酵素ＰｓｔＩおよびＳｐｅＩによる制限消化によって得られる。Ｈｈ０７７９ｃＤＮＡ断片を、Ａｍｂｉｏｎから購入したＤＥＣＡｐｒｉｍｅＩＩＤＮＡラベリングキットを用いて［α−³²Ｐ］ｄＣＴＰでラベルした。 λＺａｐｃＤＮＡライブラリーを、プレートあたり２０，０００ｐｆｕの密度でまき、最初のスクリーニングに際し計４８０，０００プラークを供した。λ ＺａｐｃＤＮＡを、Ａｍｅｒｓｈａｍから購入したＨｙｂｏｎｄメンブレン上に２つに複製してブロットし、それから０．５ＮＮａＯＨおよび０．５ＭＮａＣｌ溶液で５分間変性させた。メンブレンは、０．５ＭＴｒｉｓ（ｐＨ７．８）および１．５ＭＮａＣｌの溶液で５分間中和させ、それから２×ＳＳＣで３分間洗浄した。ｃＤＮＡは、自動設定されたＳＴＲＡＴＡＬＩＮＫＥＲＵＶクロスリンカーを用いてＨｙｂｏｎｄメンブレンに固定された。メンブレンは、１０×Ｄｅｎｈａｒｄｔ’ｓ、０．０５ＭＴｒｉｓ（ｐＨ７．５）、０．９ＭＮａＣｌ、０．１％ピロリン酸ナトリウム、１％ＳＤＳおよび４ｍｇ／ｍＬ加熱変性済みサケ精子ＤＮＡを含むハイブリダイゼーションバッファー中で、６５℃で２．２５時間プレハイブリダイズさせた。プレハイブリダイゼーションの後、放射線標識されたＨｈ０７７９ｃＤＮＡを、終濃度０．５４×１０⁶ｃｐｍ／ｍＬとなるよう、ハイブリダイゼーションバッファーに添加した。ハイブリダイゼーション２４時間後、メンブレンを０．２５×ＳＳＣ、０．２５％ＳＤＳで６５℃、１．５時間洗浄した。ブロットはそれからオートラジオグラフ用フィルムに感光させ、陽性クローンを可視化した。複製したメンブレン両方にハイブリダイゼーションシグナルを示した計１４６の陽性クローンが同定、単離され、次の使用のために保存された。１４６クローンの内、３５個を２次スクリーニングのために選択した。選択されたクローンを低密度にまき、上述のハイブリダイゼーション条件を用いたＨｈ０７７９プローブへのハイブリダイゼーション後に単独コロニーを単離した。それから、Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅから購入したＶＣＳＭ１３ヘルパーファージを用いて、λＺａｐクローンからプラスミドを単離した。プラスミドＤＮＡを制限酵素消化およびＰＣＲにより分析し、２４個の最も大きなインサートを持つクローンを選択し塩基配列を決定した。２４個の配列決定されたクローンのうち、６個はＬＩＲ−Ｐ３Ｇ２を、３個はＬＩＲ−ｐｂｍ２を、８個はＬＩＲ−ｐｂｍ３６−４およびＬＩＲ−ｐｂｍ３６−２を、１個はＬＩＲ−ｐｂｍ８を、２個はＬＩＲ−ｐｂｍｈｈを、そして１個は新規の配列（ＬＩＲ−ｐｂｍｎｅｗと命名）をコードしていた。３つのクローンが、ＬＩＲポリペプチドファミリーとは関連性のないアミノ酸配列をコードしていると同定された。実施例１１：ＬＩＲ−Ｐ３Ｇ２およびＬＩＲ−ｐｂｍ８のチロシンホスファターゼＳＨＰ−１との会合以下に、ＬＩＲ−Ｐ３Ｇ２およびＬＩＲ−ｐｂｍ８がＳＨＰ−１と会合することを証明するために行われた試験について記載する。ヒト単球を１０％ＦＢＳ加ＲＰＭＩ培地で培養し、遠心により濃縮し、最終的に２つの液に分注した。一方を５０mM/mLの過バナジウム酸ナトリウム溶液で5分間刺激した。もう一方の分注液は刺激しなかった。刺激後、各分注液の細胞を、１％ＮＰ−４０、０．５％デオキシコール酸ナトリウム、５０mM Ｔｒｉｓ（ｐＨ８）、２ｍＭＥＤＴＡ、０．５ｍＭオルトバナジウム酸ナトリウム、５ｍＭフッ化ナトリウム、２５ｍＭ β−グリセロールリン酸塩、およびプロテアーゼ阻害剤を含むＲＩＰＡバッファー中で直ちに溶解させた。２４×１０⁶細胞相当の試料を、ＴｒａｎｓｄｕｃｔｉｏｎＬａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓから購入した５μｇ／ｍＬの抗ＳＨＰ −１抗体、もしくは５μｇ／ｍＬのアイソタイプの適合した抗体コントロール（抗Ｆｌａｇ−Ｍ５ＩｇＧ１）とともに４℃で２時間インキュベートした。得られた免疫複合体をプロテインＧ−アガロース（ＢｏｅｈｒｉｎｇｅｒＭａｎｎｈｅｉｍ）とともにインキュベートすることで沈殿させ、洗浄し、４０ｍＬの２ ×ＳＤＳ−ＰＡＧＥサンプルバッファーに再懸濁した。各々の免疫沈降物２０μ ｌを電気泳動ゲルにのせ、還元条件下で電気泳動し、Ａｍｅｒｓｈａｍから購入したニトロセルロースメンブレンに転移させた。ウエスタンブロットは、抗ＬＩＲ−Ｐ３Ｇ２モノクローナル抗体血清および抗ＬＩＲ−ｐｂｍ８モノクローナル抗体抗血清に反応させ、免疫沈降物を昂進された化学ルミネセンス（ＮＥＮ）により検出した。およそ１２ＯｋＤａ（ＬＩＲ−Ｐ３Ｇ２に相当）の分子量を持つ蛋白質が、ＳＨＰ−１免疫沈降物中に容易に検出された、しかし、抗Ｆｌａｇ−Ｍ５抗体コントロールで作製した免疫沈降物からは検出されなかった。同様に、ＬＩＲ−ｐｂｍ８に相当する、９０−１００ｋＤａの蛋白質がＳＨＰ−１免疫沈降物中に検出されたが、コントロール免疫沈降物からは検出されなかった。ＬＩＲ−Ｐ３Ｇ２のバンドもＬＩＲ−ｐｂｍ８のバンドも、過バナジウム酸ナトリウム処理をしなかったものでは見られなかった。これにより、ＬＩＲ−Ｐ３Ｇ２のチロシンリン酸化が、ＬＩＲ−Ｐ３Ｇ２とＳＨＰ−１の会合に必須であり、ＬＩＲ−ｐｂｍ８のリン酸化が、ＬＩＲ−ｐｂｍ８とＳＨＰ−１の会合に必須であることが確認された。ＬＩＲ結合にあたってＦｃγＲＩを介したチロシンリン酸化現象の阻害を研究するため、末梢血単球を、多くの抗体（α−ＬＩＲ−１＋α−ＬＩＲ−２、α− ＣＤ１１ｃ、αＣＤ１４、αＣＤ６４、α−ＣＤ６４＋α−ＬＩＲ−１、α−ＣＤ６４＋α−ＬＩＲ−２、α−ＣＤ６４＋α−ＬＩＲ−１＋α−ＬＩＲ−２、α −ＣＤ６４＋α−ＣＤ１１ｃ、α−ＣＤ６４＋α−ＣＤ１４）のＦ（ａｂ）₂型１０μｇ／ｍＬの存在下、非存在下でインキュベートした。続いてこれをポリクローナルＦ（ａｂ）₂ヤギ抗マウス３０μｇ／ｍＬで架橋した。細胞溶解物を、抗リン酸化チロシン−アガロースコンジュゲートで一晩、免疫沈降し、電気泳動し、ニトロセルロースに転移させた。ウェスタンブロット分析は、ＰＹ−２０および４Ｇ１０のＨＲＰ結合抗リン酸化チロシンｍＡｂを用いて行われた。このデータから、ＬＩＲ−Ｐ３Ｇ２およびＬＩＲ−ｐｂｍ８結合にあたり、ＦｃγＲＩを介したチロシンリン酸化現象が特異的に阻害されることが示された。実施例１２：ＬＩＲポリペプチドと免疫反応性のある抗体の作製以下に、ＬＩＲファミリーメンバーと免疫反応性のあるモノクローナル抗体の作製について記載する。精製したＬＩＲポリペプチドを、ＣＯＳ−１細胞発現および実施例４に記載したアフィニティー精製によって調製する。精製蛋白質もしくは蛋白質全長をコードする発現ベクターでトランスフェクトされた細胞は、従来の技術によって（例えば、米国特許第４，４１１，９９３号に記載された技術）、ＬＩＲポリペプチドに対するモノクローナル抗体を作製させることができる。簡単に記すと、ＢＡＬＢ−Ｃマウスを１０μｇのＬＩＲポリペプチドで０、２および６週目に免疫する。１次免疫は、ＴＩＴＥＲＭＡＸアジュバントで、以降の免疫は不完全なＦｒｅｕｎｄアジュバント（ＩＦＡ）で調製する。１１週目において、マウスは４回目のブーストを３−４μｇのＬＩＲポリペプチド（ＰＢＳ溶液）でかけられる。４回目のブーストの３日後に脾細胞を回収し、５０％ＰＥＧ１５００水溶液を用いて融合パートナーＡｇ８．６５３ミエローマと融合させる。ハイブリドーマ上清を、ＰＢＳに懸濁したＬＩＲでトランスフェクトされた細胞でウェルあたり７×１０³個をポリスチレン９６穴マイクロタイタープレートに乾燥させてプレートコート抗原として用いた、ＥＬＩＳＡによるスクリーニングを行う。陽性上清を、次いでＬＩＲトランスフェクト細胞を用いたＦＡＣＳ分析およびＲＩＰによって確認する。ハイブリドーマをクローン化し、同様にスクリーニングしていく。モノクローナル培養物を広げ、アフィニティークロマトグラフィーによって上清を精製する。実施例１３：リンパ細胞および骨髄細胞上でのＬＩＲ−p3G2およびＬＩＲ−ｐｂｍ８の発現に関するフローサイトメトリー分析リンパ球集団におけるＬＩＲ−Ｐ３Ｇ２およびＬＩＲ−ｐｂｍ８の異なる発現および分布を比較するため、新しく単離された末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）を、ビオチン標識された抗ＬＩＲ−p3G2もしくは抗ＬＩＲ−ｐｂｍ８ｍＡｂいずれかの存在下で、ＰＥ標識された抗ＣＤ３、抗ＣＤ１９、もしくは抗ＣＤ５６ｍＡｂで染色した。それから、染色された細胞を、ＡＰＣ標識されたストレプトアビジンで処理した。５×１０⁴の事象を表す密度プロットを、ＦＡＣＳキャリバー（ＢｅｃｋｔｏｎＤｉｃｋｉｎｓｏｎ）で収集した。その結果から、ＬＩＲ− Ｐ３Ｇ２がＣＤ１９⁺Ｂ細胞の８０−９５％、ＣＤ３⁺Ｔ細胞の５−１５％、並びにＣＤ５６⁺ＮＫ細胞の１０−３０％で発現していることが示された。同じ１２名のドナーから試験に供された細胞上で、ＬＩＲ−ｐｂｍ８発現はＣＤ１９⁺Ｂ細胞、ＣＤ３⁺Ｔ細胞およびＣＤ５６⁺ＮＫ細胞で検出されなかった。循環単球および樹状細胞（ＤＣ）を高率に含むカウンターカレントエルトリエイト画分（ｃｏｕｎｔｅｒｃｕｒｒｅｎｔｅｌｕｔｒｉａｔｅｄｆｒａｃｔｉｏｎ）を得た。単球は、表現型サブセットＣＤ１４⁺ＣＤ１６^-およびＣＤ１４⁺ ＣＤ１６⁺に従って特徴付けられる。末梢血ＤＣは、表現型ＣＤ３３⁺ＣＤ１４^- ＣＤ１６^-ＨＬＡ−ＤＲ⁺で特徴付けられる。単球サブセットおよびＤＣを、ＦＩＴＣ標識された抗ＣＤ１４、ＰＥ標識された抗ＣＤ３、ｐｅｒＣｐ標識された抗ＨＬＡ−ＤＲ、並びに、ビオチン標識された抗ＣＤ１６、抗ＬＩＲ−Ｐ３Ｇ２もしくは抗ＬＩＲ−ｐｂｍ８のいずれかで染色した。それから染色した細胞をＡＰＣ標識されたストレプトアビジンで処理した。単球サブセットは共に、同レベルのＬＩＲ−Ｐ３Ｇ２およびＬＩＲ−ｐｂｍ８を共発現しており、ＣＤ１４⁺ ＣＤ１６⁺サブセットにおいてＬＩＲ−Ｐ３Ｇ２およびＬＩＲ−ｐｂｍ８の発現が最も高く検出される。血液ＤＣは、単球に比べＬＩＲ−Ｐ３Ｇ２およびＬＩＲ −ｐｂｍ８の発現レベルが低い。これらの実験の結果は、ＬＩＲ−Ｐ３Ｇ２がリンパ球、単球およびＤＣ上で発現しており、ＬＩＲ−ｐｂｍ８が単球およびＤＣ上で発現していることを示す。実施例１４：ＨＬＡクラスＩアリルに結合するＬＩＲ−Ｐ３Ｇ２およびＬＩＲ−ｐｂｍ８のスクリーニング以下に、ＨＬＡクラスＩアリルに結合するＬＩＲ−Ｐ３Ｇ２およびＬＩＲ−ｐｂｍ８をスクリーニングするのに使われたフローサイトメトリー分析について記載する。一連のＨＬＡクラスIアリルをトランスフェクトされた、もしくはされていない、Ｂリンパ芽球細胞クラスＩ欠損７２１．２２１細胞系列を、染色に用いた。ＬＩＲ−Ｐ３Ｇ２／ＦｃおよびＬＩＲ−ｐｂｍ８／Ｆｃ融合蛋白質を結合研究に使用し、共に、試験した１１のＨＬＡ−Ａ、ＨＬＡ−Ｂ、およびＨＬＡ− Ｃアリルの７つに検出可能なほど結合した。ＬＩＲ−Ｐ３Ｇ２／ＦｃおよびＬＩＲ−ｐｂｍ８／Ｆｃは、概して、ＨＬＡ−ＡもしくはＨＬＡ−ＣアリルよりもＨＬＡ−Ｂアリルに強い親和性で結合する。ＭＨＣクラスＩ重鎖に対する抗体（抗ＨＬＡ−Ａ、ＢおよびＣ分子）である、Ｗ６／３２（ＡＴＣＣＨＢ−９５）は、ＬＩＲ−Ｐ３Ｇ２／ＦｃおよびＬＩＲ−ｐｂｍ８／Ｆｃの、全てのクラスＩトランスフェクタントへの結合を阻害する。最終的に、ＬＩＲ−Ｐ３Ｇ２およびＬＩＲ−ｐｂｍ８の結合は、ＭＨＣクラスＩ発現レベルには相関しない。以上のことから、ＬＩＲ−Ｐ３Ｇ２およびＬＩＲ−ｐｂｍ８は、いくつかの抗ＨＬＡ−Ａ、−Ｂおよび−Ｃアリルに結合し、同様の広範囲なＭＨＣクラスＩ特異性を認識する。

【手続補正書】特許法第１８４条の８第１項【提出日】平成１１年６月１６日（１９９９．６．１６）【補正内容】請求の範囲を補正し、以下と差し替える。『請求の範囲１．ＬＩＲポリペプチドをコードする単離されたＤＮＡで、上記ＬＩＲポリペプチドが：ａ）ＳＥＱＩＤＮＯ：２のアミノ酸ｘ₁から６５０（ｘ₁はアミノ酸１もしくは１７）；ｂ）ＳＥＱＩＤＮＯ：４のアミノ酸ｘ₂から６５２（ｘ₂はアミノ酸１もしくは１７）；ｃ）ＳＥＱＩＤＮＯ：８のアミノ酸ｘ₃から４３９（ｘ₃はアミノ酸１もしくは１７）；ｄ）ＳＥＱＩＤＮＯ：１０のアミノ酸ｘ₄から５９８（ｘ₄はアミノ酸１もしくは１７）；ｅ）ＳＥＱＩＤＮＯ：１２のアミノ酸ｘ₅から２８９（ｘ₅はアミノ酸１もしくは１７）；ｆ）ＳＥＱＩＤＮＯ：１４のアミノ酸ｘ₆から４８９（ｘ₆はアミノ酸１もしくは１７）；ｇ）ＳＥＱＩＤＮＯ：１８のアミノ酸ｘ₈から４４８（ｘ₈はアミノ酸１もしくは１７）；ｈ）ＳＥＱＩＤＮＯ：２０のアミノ酸ｘ₉から６３１（ｘ₉はアミノ酸１もしくは１７）；そしてｉ）ＳＥＱＩＤＮＯ：２２のアミノ酸ｘ₁₀から５９０（ｘ₁₀はアミノ酸１もしくは１７）からなるグループから選択されるアミノ酸配列を含む、前記ＤＮＡ。２．ＬＩＲポリペプチドが：ａ）ＳＥＱＩＤＮＯ：２；ｂ）ＳＥＱＩＤＮＯ：４；ｃ）ＳＥＱＩＤＮＯ：８；ｄ）ＳＥＱＩＤＮＯ：１０；ｅ）ＳＥＱＩＤＮＯ：１２；ｆ）ＳＥＱＩＤＮＯ：１４；ｇ）ＳＥＱＩＤＮＯ：１８；ｈ）ＳＥＱＩＤＮＯ：２０；そしてｉ）ＳＥＱＩＤＮＯ：２２からなるグループから選択されるアミノ酸配列を含む、請求項１に記載の単離されたＤＮＡ。３．可溶性ＬＩＲポリペプチドをコードする単離されたＤＮＡで、上記可溶性ＬＩＲポリペプチドが：ａ）ＳＥＱＩＤＮＯ：２のアミノ酸ｘ₁から４５８（ｘ₁はアミノ酸１もしくは１７）；ＳＥＱＩＤＮＯ：４のアミノ酸ｘ₂から４５９（ｘ₂はアミノ酸１もしくは１７）；ＳＥＱＩＤＮＯ：８のアミノ酸ｘ₃から４３９（ｘ₃はアミノ酸１もしくは１７）；ＳＥＱＩＤＮＯ：１０のアミノ酸ｘ₄から４５８（ｘ₄はアミノ酸１もしくは１７）；ＳＥＱＩＤＮＯ：１２のアミノ酸ｘ₅から２４１（ｘ₅はアミノ酸１もしくは１７）；ＳＥＱＩＤＮＯ：１４のアミノ酸ｘ₆から４６１（ｘ₆はアミノ酸１もしくは１７）；ＳＥＱＩＤＮＯ：１８のアミノ酸ｘ₈から２５９（ｘ₈はアミノ酸１もしくは１７）；ＳＥＱＩＤＮＯ：２０のアミノ酸ｘ₉から４４３（ｘ₉はアミノ酸１もしくは１７）；そしてＳＥＱＩＤＮＯ：２２のアミノ酸ｘ₁₀から４５６（ｘ₁₀はアミノ酸１もしくは１７）からなるグループから選択される配列を含むＬＩＲファミリーメンバーの細胞外ドメイン；ｂ）ａ）のＬＩＲ細胞外ドメインのいずれかの断片で、可溶性ＬＩＲポリペプチドがＭＨＣ分子もしくは他のリガンドに結合するものからなるグループから選択されるアミノ酸配列を含む、前記ＤＮＡ。４．ａ）ＬＩＲファミリーメンバーの細胞外ドメインで、ＳＥＱＩＤＮＯ：２のアミノ酸ｘ₁から４５８（ｘ₁はアミノ酸１もしくは１７）；ＳＥＱＩＤＮＯ：４のアミノ酸ｘ₂から４５８（ｘ₂はアミノ酸１もしくは１７）；ＳＥＱＩＤＮＯ：８のアミノ酸ｘ₃から４３９（ｘ₃はアミノ酸１もしくは１７）；ＳＥＱＩＤＮＯ：１０のアミノ酸ｘ₄から４５８（ｘ₄はアミノ酸１もしくは１７）；ＳＥＱＩＤＮＯ：１２のアミノ酸ｘ₅から２４２（ｘ₅はアミノ酸１もしくは１７）；ＳＥＱＩＤＮＯ：１４のアミノ酸ｘ₆から４６１（ｘ₆はアミノ酸１もしくは１７）；ＳＥＱＩＤＮＯ：１８のアミノ酸ｘ₈から２５９（ｘ₈はアミノ酸１もしくは１７）；ＳＥＱＩＤＮＯ：２０のアミノ酸ｘ₉から４４３（ｘ₉はアミノ酸１もしくは１７）；そしてＳＥＱＩＤＮＯ：２２のアミノ酸ｘ₁₀から４５６（ｘ₁₀はアミノ酸１もしくは１７）からなるグループから選択される、前記細胞外ドメイン；ｂ）ａ）のＬＩＲ細胞外ドメインのいずれかの免疫原性のある断片からなるグループから選択されるアミノ酸配列を含む、可溶性ＬＩＲポリペプチド。５．ＩｇのＦｃ領域、並びに、請求項４に記載の可溶性ＬＩＲポリペプチドおよびＳＥＱＩＤＮＯ：１６のアミノ酸ｘ₇から４４９（ｘ₇はアミノ酸１もしくは１７）からなるグループから選択されるポリペプチドを含む融合蛋白質。６．ＩｇのＦｃ領域をコードするＤＮＡ、並びに、請求項３に記載のＤＮＡおよびＳＥＱＩＤＮＯ：１６のアミノ酸ｘ₇から４４９（ｘ₇はアミノ酸１もしくは１７）をコードするＤＮＡからなるグループから選択されるＤＮＡを含む融合ＤＮＡ構築物。７．ＬＩＲポリペプチドをコードする単離されたＤＮＡで、ａ）ＳＥＱＩＤＮＯ：１；ｂ）ＳＥＱＩＤＮＯ：３；ｃ）ＳＥＱＩＤＮＯ：７；ｄ）ＳＥＱＩＤＮＯ：９；ｅ）ＳＥＱＩＤＮＯ：１１；ｆ）ＳＥＱＩＤＮＯ：１３；ｇ）ＳＥＱＩＤＮＯ：１７；ｈ）ＳＥＱＩＤＮＯ：１９；およびｉ）ＳＥＱＩＤＮＯ：２１からなるグループから選択されるヌクレオチド配列を有する、前記ＤＮＡ。８．ａ）ＳＥＱＩＤＮＯ：２のアミノ酸ｘ₁から６５０（ｘ₁はアミノ酸１もしくは１７）；ｂ）ＳＥＱＩＤＮＯ：４のアミノ酸ｘ₂から６５２（ｘ₂はアミノ酸１もしくは１７）；ｃ）ＳＥＱＩＤＮＯ：８のアミノ酸ｘ₃から４３９（ｘ₃はアミノ酸１もしくは１７）；ｄ）ＳＥＱＩＤＮＯ：１０のアミノ酸ｘ₄から５９８（ｘ₄はアミノ酸１もしくは１７）；ｅ）ＳＥＱＩＤＮＯ：１２のアミノ酸ｘ₅から２８９（ｘ₅はアミノ酸１もしくは１７）；ｆ）ＳＥＱＩＤＮＯ：１４のアミノ酸ｘ₆から４８９（ｘ₆はアミノ酸１もしくは１７）；ｇ）ＳＥＱＩＤＮＯ：１８のアミノ酸ｘ₈から４４８（ｘ₈はアミノ酸１もしくは１７）；ｈ）ＳＥＱＩＤＮＯ：２０のアミノ酸ｘ₉から６３１（ｘ₉はアミノ酸１もしくは１７）；そしてｉ）ＳＥＱＩＤＮＯ：２２のアミノ酸ｘ₁₀から５９０（ｘ₁₀はアミノ酸１もしくは１７）からなるグループから選択される、単離されたＬＩＲポリペプチド。９．請求項１、請求項２、請求項３、請求項６もしくは請求項７に記載のＤＮＡを含む、組換え発現ベクター。１０．請求項９に記載の発現ベクターで形質転換された宿主細胞をＬＩＲポリペプチドの発現を促進する条件下で培養し、ポリペプチドを回収することを含む、ＬＩＲポリペプチドを調製するための方法。１１．適当な希釈担体、並びに、請求項４、請求項５もしくは請求項８に記載のポリペプチドを含む組成物。１２．請求項９に記載の発現ベクターで形質転換もしくはトランスフェクトされた宿主細胞。１３．請求項４、請求項５もしくは請求項８に記載のポリペプチドに免疫反応性の抗体。』

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁷ 識別記号ＦＩテーマコート゛(参考）Ａ６１Ｐ 31/00 Ａ６１Ｐ 43/00 １１１ 37/02 Ｃ０７Ｋ 14/705 43/00 １１１ 16/28 Ｃ０７Ｋ 14/705 19/00 16/28 Ｃ１２Ｐ 21/02 Ｃ 19/00 Ｃ１２Ｎ 15/00 ＺＮＡＡＣ１２Ｎ 5/10 5/00 ＢＣ１２Ｐ 21/02 Ａ６１Ｋ 37/02 (81)指定国ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＣＹ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＧＨ，ＧＭ，ＫＥ，ＬＳ，ＭＷ，ＳＤ，ＳＺ，ＵＧ，ＺＷ)，ＥＡ(ＡＭ，ＡＺ，ＢＹ，ＫＧ，ＫＺ，ＭＤ，ＲＵ，ＴＪ，ＴＭ)，ＡＬ，ＡＭ，ＡＵ，ＢＡ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＣＡ，ＣＮ，ＣＵ，ＣＺ，ＥＥ，ＧＥ，ＨＵ，ＩＬ，ＩＳ，ＪＰ，ＫＰ，ＫＲ，ＬＣ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＴ，ＬＶ，ＭＧ，ＭＫ，ＭＮ，ＭＸ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＲＯ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ，ＳＬ，ＴＲ，ＴＴ，ＵＡ，ＵＳ，ＵＺ，ＶＮ，ＹＵ

Claims

【特許請求の範囲】１．ＬＩＲポリペプチドをコードする単離されたＤＮＡであって、上記ＬＩＲポリペプチドが：ａ）ＳＥＱＩＤＮＯ：２のアミノ酸５から５０；およびｂ）ａ）の配列に少なくとも７７％同一なアミノ酸配列からなるグループから選択されるアミノ酸配列を含む、前記単離されたＤＮＡ。２．ＬＩＲポリペプチドをコードするＤＮＡであって、前記ＬＩＲポリペプチドがアミノ酸配列：ＬｅｕＸａａ_a ＬｅｕＳｅｒＸａａ_b Ｘａａ_c ＰｒｏＡｒｇＴｈｒＸａａ_d Ｘａａ_e ＧｌｎＸａａ_f ＧｌｙＸａａ_g Ｘａａ_h ＰｒｏＸａａ_i ＰｒｏＴｈｒＬｅｕＴｒｐＡｌａＧｌｕＰｒｏＸａａ_j ＳｅｒＰｈｅＩｌｅＸａａ_j Ｘａａ₇₀ ＳｅｒＡｓｐＰｒｏＬｙｓＬｅｕＸａａ_k ＬｅｕＶａｌＸａａ_m ＴｈｒＧｌｙ（式中、Ｘａａ_aはＧｌｙもしくはＡｒｇ；Ｘａａ_bはＬｅｕもしくはＶａｌ；Ｘａａ_cはＧｌｙもしくはＡｓｐ；Ｘａａ_dはＨｉｓ、ＡｒｇもしくはＣｙｓ；Ｘａａ_eはＶａｌもしくはＭｅｔ；Ｘａａ_fはＡｌａもしくはＴｈｒ；Ｘａａ_gはＨｉｓ、ＰｒｏもしくはＴｈｒ；Ｘａａ_hはＬｅｕ、ＩｌｅもしくはＰｈｅ；Ｘａａ_iはＧｌｙ、ＡｓｐもしくはＡｌａ；Ｘａａ_jはＴｈｒ、Ｉｌｅ、ＳｅｒもしくはＡｌａ；Ｘａａ_kはＧｌｙもしくはＶａｌ；Ｘａａ_mはＭｅｔもしくはＡｌａ；そしてＸａａ７０は７０アミノ酸の配列）を含むものである、前記ＤＮＡ。３．ＬＩＲポリペプチドをコードするＤＮＡであって、前記ＬＩＲポリペプチドが：ａ）ＳＥＱＩＤＮＯ：１のヌクレオチド３１０から１６８４から実質的に構成されるプローブと高ストリンジェントな条件下でハイブリダイズしうるＤＮＡ；およびｂ）ａ）のプローブに相補的なＤＮＡに高ストリンジェントな条件下でハイブリダイズしうるＤＮＡここにおいて、前記高ストリンジェントな条件とは少なくとも６３℃のハイブリダイゼーション温度を含む条件である、からなるグループから選択されるＤＮＡにコードされる、前記ＤＮＡ。４．ＬＩＲポリペプチドをコードする単離されたＤＮＡであって、前記ＬＩＲポリペプチドが：ａ）ＳＥＱＩＤＮＯ：２；ｂ）ＳＥＱＩＤＮＯ：４；ｃ）ＳＥＱＩＤＮＯ：８；ｄ）ＳＥＱＩＤＮＯ：１０；ｅ）ＳＥＱＩＤＮＯ：１２；ｆ）ＳＥＱＩＤＮＯ：１４；ｇ）ＳＥＱＩＤＮＯ：１６；ｈ）ＳＥＱＩＤＮＯ：１８；ｉ）ＳＥＱＩＤＮＯ：２０；およびｊ）ＳＥＱＩＤＮＯ：２２；からなるグループから選択されるアミノ酸配列に少なくとも９０％同一なアミノ酸配列を含む、前記単離されたＤＮＡ。５．ＬＩＲポリペプチドが：ａ）ＳＥＱＩＤＮＯ：２；ｂ）ＳＥＱＩＤＮＯ：４；ｃ）ＳＥＱＩＤＮＯ：８；ｄ）ＳＥＱＩＤＮＯ：１０；ｅ）ＳＥＱＩＤＮＯ：１２；ｆ）ＳＥＱＩＤＮＯ：１４；ｇ）ＳＥＱＩＤＮＯ：１６；ｈ）ＳＥＱＩＤＮＯ：１８；ｉ）ＳＥＱＩＤＮＯ：２０；およびｊ）ＳＥＱＩＤＮＯ：２２；からなるグループから選択されるアミノ酸配列を含む、請求項４に記載の単離されたＤＮＡ。６．可溶性ＬＩＲポリペプチドをコードする単離されたＤＮＡで、上記可溶性ＬＩＲポリペプチドが：ａ）ＳＥＱＩＤＮＯ：２のアミノ酸ｘ₁から４５８（ｘ₁はアミノ酸１もしくは１７）；ＳＥＱＩＤＮＯ：４のアミノ酸ｘ₂から４５９（ｘ₂はアミノ酸１もしくは１７）；ＳＥＱＩＤＮＯ：８のアミノ酸ｘ₃から４３９（ｘ₃はアミノ酸１もしくは１７）；ＳＥＱＩＤＮＯ：１０のアミノ酸ｘ₄から４５８（ｘ₄はアミノ酸１もしくは１７）；ＳＥＱＩＤＮＯ：１２のアミノ酸ｘ₅から２４１（ｘ₅はアミノ酸１もしくは１７）；ＳＥＱＩＤＮＯ：１４のアミノ酸ｘ₆から４６１（ｘ₆はアミノ酸１もしくは１７）；ＳＥＱＩＤＮＯ：１６のアミノ酸ｘ₇から４４９（ｘ₇はアミノ酸１もしくは１７）；ＳＥＱＩＤＮＯ：１８のアミノ酸ｘ₈から２５９（ｘ₈はアミノ酸１もしくは１７）；ＳＥＱＩＤＮＯ：２０のアミノ酸ｘ₉から４４３（ｘ₉はアミノ酸１もしくは１７）；そしてＳＥＱＩＤＮＯ：２２のアミノ酸ｘ₁₀から４５６（ｘ₁₀はアミノ酸１もしくは１７）、からなるグループから選択される配列を含むＬＩＲファミリーメンバーの細胞外ドメインｂ）可溶性ＬＩＲポリペプチドがＭＨＣ分子に結合する、ａ）のＬＩＲ細胞外ドメインのいずれかの断片、からなるグループから選択される配列に少なくとも９０％同一のアミノ酸配列を含む、前記単離されたＤＮＡ。７．可溶性ＬＩＲポリペプチドが：ａ）ＳＥＱＩＤＮＯ：２のアミノ酸ｘ₁から４５８（ｘ₁はアミノ酸１もしくは１７）；ＳＥＱＩＤＮＯ：４のアミノ酸ｘ₂から４５９（ｘ₂はアミノ酸１もしくは１７）；ＳＥＱＩＤＮＯ：８のアミノ酸ｘ₃から４３９（ｘ₃はアミノ酸１もしくは１７）；ＳＥＱＩＤＮＯ：１０のアミノ酸ｘ₄から４５８（ｘ₄はアミノ酸１もしくは１７）；ＳＥＱＩＤＮＯ：１２のアミノ酸ｘ₅から２４１（ｘ₅はアミノ酸１もしくは１７）；ＳＥＱＩＤＮＯ：１４のアミノ酸ｘ₆から４６１（ｘ₆はアミノ酸１もしくは１７）；ＳＥＱＩＤＮＯ：１６のアミノ酸ｘ₇から４４９（ｘ₇はアミノ酸１もしくは１７）；ＳＥＱＩＤＮＯ：１８のアミノ酸ｘ₈から２５９（ｘ₈はアミノ酸１もしくは１７）；ＳＥＱＩＤＮＯ：２０のアミノ酸ｘ₉から４４３（ｘ₉はアミノ酸１もしくは１７）；そしてＳＥＱＩＤＮＯ：２２のアミノ酸ｘ₁₀から４５６（ｘ₁₀はアミノ酸１もしくは１７）からなるグループから選択される配列を含むＬＩＲファミリーメンバーの細胞外ドメインｂ）ａ）のＬＩＲ細胞外ドメインのいずれかの断片からなるグループから選択されるアミノ酸配列を含む、請求項６に記載のＤＮＡ。８．ａ）ＳＥＱＩＤＮＯ：２のアミノ酸５から５０；およびｂ）ａ）の配列に少なくとも７７％同一なアミノ酸配列からなるグループから選択されるアミノ酸配列を含むＬＩＲポリペプチド。９．アミノ酸配列：ＬｅｕＸａａ_a ＬｅｕＳｅｒＸａａ_b Ｘａａ_c ＰｒｏＡｒｇＴｈｒＸａａ_d Ｘａａ_e ＧｌｎＸａａ_f ＧｌｙＸａａ_g Ｘａａ_h ＰｒｏＸａａ_i ＰｒｏＴｈｒＬｅｕＴｒｐＡｌａＧｌｕＰｒｏＸａａ_j ＳｅｒＰｈｅＩｌｅＸａａ_j Ｘａａ₇₀ ＳｅｒＡｓｐＰｒｏＬｙｓＬｅｕＸａａ_k ＬｅｕＶａｌＸａａ_m ＴｈｒＧｌｙ（式中、Ｘａａ_aはＧｌｙもしくはＡｒｇ；Ｘａａ_bはＬｅｕもしくはＶａｌ；Ｘａａ_cはＧｌｙもしくはＡｓｐ；Ｘａａ_dはＨｉｓ、ＡｒｇもしくはＣｙｓ；Ｘａａ_eはＶａｌもしくはＭｅｔ；Ｘａａ_fはＡｌａもしくはＴｈｒ；Ｘａａ_gはＨｉｓ、ＰｒｏもしくはＴｈｒ；Ｘａａ_hはＬｅｕ、ＩｌｅもしくはＰｈｅ；Ｘａａ_iはＧｌｙ、ＡｓｐもしくはＡｌａ；Ｘａａ_jはＴｈｒ、Ｉｌｅ、ＳｅｒもしくはＡｌａ；Ｘａａ_kはＧｌｙもしくはＶａｌ；Ｘａａ_mはＭｅｔもしくはＡｌａ；そしてＸａａ７０は７０アミノ酸の配列）を含む、ＬＩＲポリペプチド。１０．ａ）ＳＥＱＩＤＮＯ：１のヌクレオチド３１０から１６８４から実質的に構成されるプローブと高ストリンジェントな条件下でハイブリダイズしうるＤＮＡ；およびｂ）ａ）のプローブに相補的なＤＮＡに高ストリンジェントな条件下でハイブリダイズしうるＤＮＡここにおいて、高ストリンジェントな条件とは、少なくとも６３℃のハイブリダイゼーション温度を含む条件であるからなるグループから選択されるＤＮＡにコードされる、単離されたポリペプチド。１１．ａ）ＬＩＲファミリーメンバーの細胞外ドメインでＳＥＱＩＤＮＯ：２のアミノ酸ｘ₁から４５８（ｘ₁はアミノ酸１もしくは１７）；ＳＥＱＩＤＮＯ：４のアミノ酸ｘ₂から４５８（ｘ₂はアミノ酸１もしくは１７）；ＳＥＱＩＤＮＯ：８のアミノ酸ｘ₃から４３９（ｘ₃はアミノ酸１もしくは１７）；ＳＥＱＩＤＮＯ：１０のアミノ酸ｘ₄から４５８（ｘ₄はアミノ酸１もしくは１７）；ＳＥＱＩＤＮＯ：１２のアミノ酸ｘ₅から２４２（ｘ₅はアミノ酸１もしくは１７）；ＳＥＱＩＤＮＯ：１４のアミノ酸ｘ₆から４６１（ｘ₆はアミノ酸１もしくは１７）；ＳＥＱＩＤＮＯ：１６のアミノ酸ｘ₇から４４９（ｘ₇はアミノ酸１もしくは１７）；ＳＥＱＩＤＮＯ：１８のアミノ酸ｘ₈から２５９（ｘ₈はアミノ酸１もしくは１７）；ＳＥＱＩＤＮＯ：２０のアミノ酸ｘ₉から４４３（ｘ₉はアミノ酸１もしくは１７）；そしてＳＥＱＩＤＮＯ：２２のアミノ酸ｘ₁₀から４５６（ｘ₁₀はアミノ酸１もしくは１７）からなるグループから選択される配列を含む、前記細胞外ドメインｂ）ａ）のＬＩＲ細胞外ドメインのいずれかの断片で、リガンドに結合しうる断片からなるグループから選択される配列に少なくとも９０％同一のアミノ酸配列を含む、可溶性ＬＩＲポリペプチド。１２．ａ）ＬＩＲファミリーメンバーの細胞外ドメインでＳＥＱＩＤＮＯ：２のアミノ酸ｘ₁から４５８（ｘ₁はアミノ酸１もしくは１７）；ＳＥＱＩＤＮＯ：４のアミノ酸ｘ₂から４５８（ｘ₂はアミノ酸１もしくは１７）；ＳＥＱＩＤＮＯ：８のアミノ酸ｘ₃から４３９（ｘ₃はアミノ酸１もしくは１７）；ＳＥＱＩＤＮＯ：１０のアミノ酸ｘ₄から４５８（ｘ₄はアミノ酸１もしくは１７）；ＳＥＱＩＤＮＯ：１２のアミノ酸ｘ₅から２４２（ｘ₅はアミノ酸１もしくは１７）；ＳＥＱＩＤＮＯ：１４のアミノ酸ｘ₆から４６１（ｘ₆はアミノ酸１もしくは１７）；ＳＥＱＩＤＮＯ：１６のアミノ酸ｘ₇から４４９（ｘ₇はアミノ酸１もしくは１７）；ＳＥＱＩＤＮＯ：１８のアミノ酸ｘ₈から２５９（ｘ₈はアミノ酸１もしくは１７）；ＳＥＱＩＤＮＯ：２０のアミノ酸ｘ₉から４４３（ｘ₉はアミノ酸１もしくは１７）；そしてＳＥＱＩＤＮＯ：２２のアミノ酸ｘ₁₀から４５６（ｘ₁₀はアミノ酸１もしくは１７）からなるグループから選択される配列を含む、前記細胞外ドメインｂ）ａ）のヒトＰ３Ｇ２細胞外ドメインのいずれかの断片からなるグループから選択されるアミノ酸配列を含む、請求項１１に記載の可溶性ポリペプチド。１３．ａ）ＳＥＱＩＤＮＯ：５およびＳＥＱＩＤＮＯ：６からなるグループから選択されるＤＮＡに高ストリンジェントな条件下でハイブリダイズしうるＤＮＡ、ここにおいて、高ストリンジェントな条件とは少なくとも６８℃でのハイブリダイゼーション温度を含む条件である：からなるグループから選択されるＤＮＡにコードされる単離されたポリペプチド。１４．ＳＥＱＩＤＮＯ：２のアミノ酸１７から４５８およびＩｇのＦｃ領域を含む、融合蛋白質。１５．ＳＥＱＩＤＮＯ：２のアミノ酸１７から４５８をコードするＤＮＡおよびＩｇのＦｃ領域をコードするＤＮＡを含む、融合ＤＮＡ構築物。１６．請求項１に記載のＤＮＡを含む組換え発現ベクター。１７．請求項１６に記載の発現ベクターで形質転換された宿主細胞を、ＬＩＲポリペプチドの発現を促進する条件下で培養し、ポリペプチドを回収することを含む、ＬＩＲポリペプチドを調製する方法。１８．適当な希釈担体および請求項８に記載のポリペプチドを含む、組成物。１９．請求項１６に記載の発現ベクターで形質転換もしくはトランスフェクトされた宿主細胞。２０．請求項８に記載のポリペプチドに免疫反応性の抗体。