JP2000511543A - Pest control - Google Patents

Pest control

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Abstract

(57)【要約】 本発明は、穀物であるが、特にトウモロコシ種、および、以下の種を含むがこれに限定されない他の穀物におけるオストリニア・フルナカリス(アジア・コーン・ボーラー)種の駆除法を提供する:トウモロコシ、小麦、大麦、ライ麦、オート麦、米、モロコシ、黍および関連穀物、飼葉、竹およびサトウキビ。   (57) [Summary] The present invention provides a method of controlling Ostrina flunacharis (Asia corn borer) species in cereals, but especially corn species, and other cereals, including but not limited to: corn, wheat , Barley, rye, oats, rice, sorghum, corn and related cereals, fodder, bamboo and sugarcane.

Description

【発明の詳細な説明】 害虫の駆除法 本発明は、バチルス・チューリンゲンシスおよび/または他のバチルス属から 得られる毒素タンパク質を使用することによる、穀物における鱗翅目メイガ属、 好ましくはオストリアナ・フルナカリス(アジア・コーン・ボーラー)の駆除法に 関する。 バチルス・チューリンゲンシスはグラム陽性、好気性、内生胞子形成細菌の大 きなグループに属する。バチルス・セレウスまたはバチルス・アントラシスのよ うな非常に近い他のバチルス属と異なり、現在までバチルス・チューリンゲンシ スとして既知の大多数が、その胞子形成中にその結晶性構造のために結晶体と呼 ばれるパラスポラル(parasporal)封入体を形成する。この結晶体は殺虫活性結晶 プロ毒素タンパク質、いわゆるδ−エンドトキシンから成る。 タンパク質結晶はバチルス・チューリンゲンシスの昆虫への毒性を担う。δ− エンドトキシンは結晶体が経口に摂取され、後者が標的昆虫の腸液に溶解される 時まで、その殺虫活性を示さない。ほとんどの場合、実際の毒性成分は、昆虫消 化管のプロテアーゼの作用によるタンパク質分解の結果として、プロ毒素から放 出される。 種々のバチルス・チューリンゲンシス株のδ−エンドトキシンは、ある標的昆 虫、特に種々の鱗翅目、鞘翅目および双翅目幼虫への高い特異性、およびこのよ うな感受性幼虫に対する高度な活性により特徴付けられる。 バチルス・チューリンゲンシス由来の種々の殺虫結晶タンパク質が、その活性 Microbiol.Rev.53:242-255(1989)により発表された分類は、当時既知の殺虫結 晶タンパク質を4つの主要なクラスに分けた。一般に、主要なクラスはその活性 スペクトルにより定義し、CryIタンパク質が鱗翅目に活性であり、CryIIタンパ ク質が鱗翅目および双翅目の両方に対して、CryIIIタンパク質が鞘翅目に対して 活性であり、CryIVタンパク質が双翅目に対して活性である。各主要なクラス内 で、δ−エンドトキシンは配列類似性に従って分類される。 CryIタンパク質は典型的に130−140kDaプロ毒素タンパク質として製 造され、それはタンパク質分解開裂され、約60−70kDaの大きさの殺虫活 性毒素タンパク質を製造する。δ−エンドトキシンの活性部分は、完全長分子の N パク質を6群、IA(a)、IA(b)、IA(c)、IB、ICおよびIDに分類し た。それ以来、CryIE、CryIF、CryIG、CryIHおよびCryIXとして分類 されるタンパク質もまた特徴付けされている。 バチルス・チューリンゲンシス由来の個々のδ−エンドトキシンの殺虫活性の スペクトルは、幾分狭い傾向があり、あるδ−エンドトキシンは数種の昆虫に対 してのみ活性である。特異性は活性毒素タンパク質の製造に関与する種々の段階 の効率および続いてそれが昆虫消化管上皮細胞と相互作用する能力の結果である 。 植物、好ましくは、トウモロコシ、小麦、ライ麦、オート麦、米、モロコシ、 黍および関連作物、飼葉、竹およびびサトウキビを含むがこれらに限定されない 穀物のオストリアナ・フルナカリス(アジア・コーン・ボーラー)種を駆除する方 法を提供することが本発明の目的の一つである。この目的は、驚くべきことに、 CryIタイプ毒素タンパク質のようなバチルス・チューリンゲンシスの毒素タン パク質を、保護する穀物に投与することにより、本発明の範囲内で達成される。 本発明の他の態様において、バチルス種の栄養培養により得られる毒素タンパク 質、即ちVIP3[EP−A0690916;国際出願第EP/03826号、その 内容を全体を本明細書に引用して包含させる]のようないわゆるベジテーティブ ・インセクティシダル・プロテイン(VIP)もまたオストリアナ・フルナカリス(ア ジア・コーン・ボーラー)害虫駆除に使用できる。 本発明は、従って、保護する植物または植物種子または植物の生育領域に、バ チルス種の毒素タンパク質、好ましくは上記CryIタイプまたはVIPタイプタンパ ク質を、純粋または少なくとも一つの該タンパク質または毒素タンパク質をコー ドする少なくとも一つの毒素遺伝子を有する微生物、好ましくはバチルス・チュ ーリンゲンシスおよび/またはバチルス・セレウス株を含む殺昆虫性(entomocid al)組成物の形で直接または間接的に投与することを含む、オストリアナ・フル ナカリス(アジア・コーン・ボーラー)種によりもたらされる損傷に対する、植物 (その子孫を含む)を保護する方法に関する。本方法で使用する該微生 物は、天然に存在する株か、または、毒素をコードする組換え遺伝子を含む別の 、組換え株であり得る。 好ましい態様において、トランスジェニック植物を、オストリアナ・フルナカ リス(アジア・コーン・ボーラー)種によりもたらされる損傷に対して保護する植 物に毒素を投与するために使用する。このような植物は、Cry−タイプ、好まし くはCryI−タイプ毒素タンパク質またはVIP−タイプタンパク質のようなバチル ス種由来の殺虫毒素タンパク質をコードし、このように形質転換した植物を害虫 が発生する領域に植えた場合、オストリアナ・フルナカリス(アジア・コーン・ ボーラー)の駆除を提供するのに十分な量の該毒素タンパク質を発現する毒素遺 伝子での形質転換より得る。 オストリアナ・フルナカリス(アジア・コーン・ボーラー)害虫に対して穀物を 保護するための本発明の方法で使用する殺昆虫性組成物は、例えば、活性成分と して少なくとも一つのCry−タイプ毒素タンパク質、より好ましくは少なくとも ひとつのCryI−タイプタンパク質、より更に好ましくは少なくとも一つのCryI A−タイプ毒素タンパク質および最も特に好ましくは少なくとも一つの配列番号 53から55に従ったCryIA(b)タイプ毒素タンパク質、より更に好ましくは バチルス・チューリンゲンシスまたは少なくとも一つの該毒素タンパク質をコー ドする遺伝子を含む微生物、好ましくは該タンパク質をコードする少なくとも一 つの遺伝子を含むバチルス・チューリンゲンシス株、またはその誘導体またはそ の変異体を、担体、希釈剤、界面活性成分または適用促進アジュバントのような 農学的アジュバントと共に含む。殺昆虫性活性組成物中の活性成分は、EP−A −0690916およびPCT国際出願EP95/03826に記載のようなVI P−タイプ毒素タンパク質またはCryI−タイプおよびVIP−タイプタンパク質の 組み合わせでもあり得る。保護の範囲内で好ましいのは、VIP1A(a)タンパク 質またはVIP1(b)タンパク質のようなVIP1−タイプタンパク質、もしくはVIP 2(a)タンパク質またはVIP2(b)タンパク質のようなVIP2−タイプタンパク質 、またはVIP1−タイプタンパク質とVIP2−タイプタンパク質の組み合わせ、も しくはVIP3(a)タンパク質またはVIP3(b)タンパク質のようなVIP3−タイプ タンパク質である。保護の範囲内でより好ましいのは、配列番号1、2、4− 7、17−24、26−32、35、36、39、40、42、43、45、4 6、49、50、51または52に示すVIP−タイプ毒素タンパク質である。 本組成物は、更なる生物学的活性化合物も含み得る。該化合物は、肥料または 微小栄養素ドナーまたは植物生育に影響する他の製剤であり得る。所望により、 製剤の分野で慣用的に用いられる更なる農学的に許容される担体、界面活性成分 、適用促進アジュバントと共に、除草剤、殺虫剤、殺真菌剤、殺菌剤、殺線虫剤 、軟体動物駆除剤またはこれらの製剤の組み合わせを選択できる。適当な担体お よびアジュバントは、固体または液体であり得、製剤法で通常使用される物質に 対応し、例えば、天然または再生ミネラル物質、溶媒、分散剤、湿潤剤、粘着性 付与剤、結合剤または肥料である。 本組成物は0.1から99重量%の活性成分、1から99.9重量%の固体また は液体アジュバントおよび0から25重量%の界面活性成分を含み得る。活性成 分または該活性成分を含む組成物は、保護する植物または穀物に、ある他の殺虫 剤または薬品(1993 Crop Proteciton Chemicals Reference,Chemical and Phar maceutical Press,Canada)と共に、効果を損なうことなく投与し得る。ほとん どの他の一般に使用される農学的噴霧物質と適合性であるが、CryI−タイプ毒 素が関与する場合、非常にアルカリ性の噴霧溶液中で使用してはならない。粉剤 、懸濁液、水和剤または農学的適用に適当な他の物質形として適用し得る。 好ましくはバチルス・チューリンゲンシスのCryI−タイプ毒素タンパク質お よび/または前記のVIP−タイプタンパク質の一つである活性成分または該活性 成分を含む組成物を、(a)害虫が発生し得る環境に、(b)植物または植物の一部 を害虫によりもたらされる損傷から保護するために植物または植物の一部に、ま たは(c)種子から発芽する植物を害虫によりもたらされる損傷から保護するため に種子に適用し得る。 植物保護の領域で好ましい適用法は、植物の葉(葉面処理)であり、適用回数お よび適用割合は保護する稙物および害虫に感染する危険性に依存する。 本発明の方法で使用する組成物はまた果実、塊茎または穀粒または切断植物の ような植物繁殖材料、例えば種子を害虫から保護するためにも適している。繁殖 材料を植える前に製剤で処理する:種子は、例えば、蒔く前に浸すことができる 。 本発明の活性成分はまた穀粒(コーティング)に、穀粒に液体製剤を充填するか、 またはそれを固体製剤でコーティングすることにより適用できる。製剤は、繁殖 材料を植える場合に、植える場所に、例えば、蒔く間に畝にも適用できる。本発 明はまた植物繁殖材料を処理する方法およびこのように処理した植物繁殖材料に も関する。 本発明の範囲内で、本組成物は種子または土壌を細菌株で処理するために既知 の方法で適用し得る。例えば、米国特許第4,863,866号参照。株は、微生 物が生存してなくてさえ、生態的防除に有効である。好ましくは、しかし、生存 微生物を適用する。 本発明の範囲内で保護する標的穀物は、オストリアナ・フルナカリス(アジア ・コーン・ボーラー)種の宿主植物であるものであり、トウモロコシ、小麦、大 麦、ライ麦、オート麦、米、モロコシ、黍および関連作物、飼葉、竹およびサト ウキビを含むがこれらに限定されない。 本発明の活性成分は非修飾形でまたは、適当な農学的に許容される担体と共に 使用し得る。このような担体は、農学的製剤の分野で慣用的に用いられるアジュ バントであり、従って、濃乳剤、コート可能ペースト、直接噴霧可能または希釈 可能溶液、希釈乳剤、水和剤、可溶性粉末、散剤、顆粒および、例えば、ポリマ ー物質へのカプセル封入のために既知の方法で調剤し得る。組成物の性質と同様 に、噴霧、霧吹き、散剤、拡散または注入を、意図する目的および優勢な環境に 従って選択する。有利な投与の割合は、ヘクタール(“ha”、約2.471エーカ ー)当たり約50gから約5kgの活性成分(a.i.)の範囲であり、好ましくは約1 00gから約2kg a.i./haである。適用の好ましい割合は200gから約1kga. i./haまたは200gから500g a.i./haである。種子ドレッシングのため の有利な適用割合は、0.5gから1000g a.i./100kg種子の範囲、好 ましくは3gから100g a.i./100kg種子である。最も好ましくは、適用 割合は10gから50g a.i./100kg種子である。 適当な担体およびアジュバントは、固体または液体であり得、通常製剤法で使 用される物質に対応し、例えば、天然または再生ミネラル物質、溶媒、分散剤、 湿潤剤、粘着性付与剤、結合剤または肥料である。製剤、即ち殺昆虫性組成物、 調製物または他の活性成分および適当な場合、固体または液体アジュバントとの 混合物は、既知の方法、例えば、活性成分と増量剤、例えば溶媒、固体担体およ びある場合、界面活性化合物(界面活性成分)の均質混合および/または粉砕によ り製造する。 適当な溶媒は:芳香族炭化水素、好ましくは8から12炭素原子を有する分画 、例えばキシレン混合物または置換ナフタレン、フタル酸ジブチルまたはフタル 酸ジオクチルのようなフタレート、シクロヘキサンまたはパラフィンのような脂 肪族炭化水素、エタノール、エチレングリコール、モノメチルまたはモノエチル エーテルのようなアルコールおよびグリコールおよびそのエーテルおよびエステ ル、シクロヘキサノンのようなケトン、N−メチル−2−ピロリドン、ジメチル スルフオキシドまたはジメチルホルムアミドのような強極性溶媒ならびにエポキ シド化ココナッツ油または大豆油のような植物油またはエポキシド化植物油;ま たは水である。 例えば、粉剤および分散可能粉末に使用する固体担体は、通常、方解石、滑石 、カオリン、モンモリロナイトまたはアタパルガイトのような天然ミネラル充填 剤である。物理的特性を改善するために、高分散珪酸または高分散吸着ポリマー を添加することも可能である。適当な顆粒状吸着性担体は、多孔性タイプ、例え ば、軽石、破壊煉瓦、海泡石またはベントナイトである;そして非吸着担体は、 方解石または砂のような物質である。加えて、多くの無機または有機性質の前粒 状化物質、特に苦灰石または粉砕植物残渣を使用できる。 調剤する活性成分の性質に依存して、適当な界面活性化合物は、良好な乳化、 分散および湿潤特性の非イオン性、カチオン性および/またはアニオン性界面活 性成分である。“界面活性成分”なる用語は、界面活性成分の混合物も含むと理 解される。適当なアニオン性界面活性成分は、水溶性石鹸および水溶性合成界面 活性化合物の両方であり得る。適当な石鹸は、高級脂肪酸(C10鎖−C22鎖) のアルカリ金属塩、アルカリ土類金属塩もしくは非置換または置換アンモニウム 塩、例えばオレイン酸またはステアリン酸のナトリウムまたはカリウム塩、また は例えばココナッツ油または獣脂から得ることができる天然脂肪酸混合物である 。更に適当な界面活性成分は、また脂肪酸メチルタウリン塩ならびに修飾または 非 修飾リン脂質である。 より頻繁には、しかしながら、いわゆる合成界面活性成分、特に脂肪性スルホ ン酸エステル、脂肪性の硫酸塩、スルホン化ベンズイミダゾール誘導体またはア ルカリアリールスルホン酸を使用する。脂肪性スルホン酸エステルは通常アルカ リ金属塩、アルカリ土類金属塩もしくは非置換または置換アンモニウム塩の形で 使用し、一般にC8鎖−C22鎖アルキル基(これは更にまたアシル基のアルキ ル部分を含む)を含み、例えばリグノスルホン酸、ドデシルスルホン酸、または 天然脂肪酸から得られる脂肪性アルコールスルホン酸の混合物のナトリウムまた はカルシウム塩である。これらの化合物は、硫酸エステルおよびスルホン酸の脂 肪性アルコール/エチレンオキサイド付加物の塩も含む。スルホン化ベンズイミ ダゾール誘導体は好ましくは二つのスルホン酸基および約8から22炭素原子を 含む一つの脂肪酸基を含む。アルキルアリールスルホン酸の例は、ドデシルベン ゼンスルホン酸、ジブチルナフタレンスルホン酸またはナフタレンスルホン酸/ ホルムアルデヒド縮合産物のナトリウム、カルシウムまたはトリエタノールアミ ン塩である。また適当なのは対応するリン酸、例えば、p−ノニルフェノールの 付加物の4から14モルのエチレンオキサイドリン酸エステルの塩である。非イ オン性界面活性成分は、好ましくは脂肪族または環状脂肪族アルコール、または 飽和または不飽和脂肪酸およびアルキルフェノールのポリグリコールエーテル誘 導体であり、該誘導体は3から30グリコールエーテル基および8から20炭素 原子を(脂肪族)炭化水素部分に、そして6から18炭素原子をアルキルフェノー ルのアルキル部分に含む。 更に適当な非イオン性界面活性成分は、ポリエチレンオキサイドとポリプロピ レングリコール、エチレンジアミノプロピレングリコールおよびアルキル鎖に1 から10炭素原子を含むアルキルプロピレングリコールの水溶性付加物であり、 該付加物は20から250エチレングリコールエーテル基および10から100 プロピレングリコールエーテル基を含む。これらの化合物は、通常、プロピレン グリコール単位当たり1から5エチレングリコール単位含む。非イオン性界面活 性成分の代表例はノニルフェノールポリエトキシエタノール、ヒマシ油ポリグリ コールエーテル、ポリプロピレン/ポリエチレンオキサイド付加物、トリブチル フェノキシポリエトキシエタノール、ポリエチレングリコールおよびオクチルフ ェノキシポリエトキシエタノールである。ポリエチレンソルビタントリオレエー トのようなポリエチレンソルビタンの脂肪酸エステルもまた非イオン性界面活性 成分である。 カチオン性界面活性成分は、好ましくはN−置換基として、少なくとも一つの C8鎖−C22鎖アルキル基および更なる置換基として、低級非置換またはハロ ゲン化アルキル、ベンジルまたはヒドロキシル低級アルキル基を含む四級アンモ ニウム塩である。これらの塩は好ましくはハライド、メチル硫酸塩、エチル硫酸 塩、例えば、ステアリルトリメチルアンモニウムクロリドまたはベンジルジ−( 2−クロロエチル)エチルアンモニウムブロミドの形である。 製剤の分野で慣習的に使用される界面活性成分は、例えば、“McCutchenon's Detergents and Emulsifiers Annual”,MC Publishing Corp.Redgewood,N.J .,1979;Dr.Helmut Stache,“Tensid Taschenbuch”(Handbook of Surfactants ),Carl Hanser Verlag,Munich/Viennaに記載されている。 本発明の殺昆虫性組成物の他の特に好ましい特性は、植物および土壌に適用し た時の活性成分の持続性である。活性の減少の可能性のある原因は、紫外線、熱 、葉滲出物およびpHによる不活性化を含む。例えば、高pHでは、特に還元剤 存在下で、δ−エンドトキシン結晶が溶解し、従ってタンパク質分解による不活 性化を受けやすい。高葉pHは、また特に葉表面がpH8−10の範囲になり得 る点で、重要である。本発明の方法に使用する殺昆虫性組成物の調剤は、活性成 分の損失を防止するのを助ける添加剤を含むか、または活性成分が不活性化から 保護される方法でカプセル封入することにより、これらの問題を扱う。カプセル 封入は化学的(McGuireおよびShasha,J.Econ.Entomol.85:1425-1433,1992) または生物学的(BarnesおよびCummings,1986;EP−A−0192319)によ り達成できる。化学的カプセル封入は、活性成分をポリマーでコートする過程を 含み、一方生物学的カプセル封入は、微生物中でのδ−エンドトキシン遺伝子の 発現を含む。生物学的カプセル封入のために、毒素タンパク質を含むそのままの 微生物を製剤中の活性成分として使用する。UV保護剤の添加は照射損傷の減少 に有効である。熱による不活性化は、適当な添加剤の包含によりまた制御される 。 本発明の範囲内で好ましいのは、活性成分として生存微生物を、成長細胞また はより好ましくは、利用可能な場合胞子の形で含む製剤である。適当な製剤は、 例えば、多価カチオンと架橋し、これらの微生物を含むポリマーゲルから成り得 る。これは、例えば、ポリマー物質のアルギン酸塩がD.R.Fravel et al.Phyt opathology,Vol.75,No..7,774-777,1985に記載されている。この刊行物か ら、担体物質を共使用できることも既知である。これらの製剤は、該して、天然 に存在するまたは合成ゲルー形成ポリマー、例えばアルギン酸塩の溶液と個々の 小滴の形のような多価金属イオンの水性塩溶液の混合により製造し、微生物を二 つのうち一つの懸濁液または両方の反応溶液に懸濁することが可能である。ゲル 形成は小滴形への混合で開始する。これらのゲル粒子の続く乾燥が可能である。 この方法は向イオン性ゲル化と呼ばれる。乾燥の程度に応じて、構造的に多価カ チオンを介して架橋し、微生物および優れて均質に分散して存在する担体を含む ポリマーの密集した硬粒子を形成させる。粒子のサイズは5mmまでである。 微生物に加えて、担体物質として細分散珪酸を含み得、架橋が例えばCa++イ オンを介して起こる部分的に架橋したポリサッカライドを基本にした組成物は、 EP−A1−0097571に記載されている。本組成物は0.3より多くない 水活性を有する。W.J.Cornick et al.はレビュー文献[New Directions in Bio logical Control:Alternatives for Suppressing Agricultural Pests and Dise ases,p.345-372,Alan R.Liss,Inc.(1990)]で向イオン性ゲル化法により製 造した種々の製剤システムを記載し、担体としてバーミキュライトを含む顆粒お よび密集アルギン酸ビーズを述べている。このような組成物はまたD.R.Fravel ,Pesticide Formulations and Application Systems:11th Volume,ASTM STP 11 12 American Society for Testing and Materials,Philadelphia,1992,p.17 3-179にも記載され、本発明の組換え微生物を調剤するのに使用できる。生存微 生物を調剤する更なる方法はWO96/02638に記載されている。 本発明の組成物は、少ない割合の適用でさえ、害虫駆除の分野における予防的 および/または治療的処置に有効であり、温血動物種、魚および植物に非常に耐 容性であり、非毒性であり、非常に好ましい殺生物スペクトルを有する。本発明 の組成物は、オストリアナ・フルナカリス(アジア・コーン・ボーラー)害虫の全 てのまたは個々の生育段階に対して活性である。本発明の化合物の殺虫活性は、 直接的に、即ち、害虫をすぐにまたはわずかな時間経過後に破壊することにより 、明らかにできる。 本組成物は、実質的に純粋な形で毒素タンパク質を含む化学的混合物の形で、 または微生物またはトランスジェニック植物の一部として、少なくとも一つの毒 素タンパク質を含む混合物の形で提供できる。本発明の具体的態様において、活 性成分の一つを植物に直接、例えば、先に本明細書で述べたような葉面処理によ り、適用し得、一方第2の作用素因は該第2の素因をコードした遺伝子で先に形 質転換した遺伝子を発現することにより、植物自身により提供される。 本発明の方法で使用する殺昆虫性組成物は、通常約0.1から約99%、好ま しくは約0.1から約95%および最も好ましくは約3から約90%の活性成分 ;約1から約99.9%、好ましくは約1から約99%、および最も好ましくは 約5から約95%の固体または液体アジュバント;および約0から約25%、好 ましくは約0.1から約25%および最も好ましくは約0.1から約20%の界面 活性成分を含む。商品は濃縮剤として調剤するのが好ましいが、最終使用者はか なりの低濃度の希釈製剤を使用する。殺昆虫性組成物はまた安定化剤、消泡剤、 粘性調節剤、結合剤、粘着性付与剤および肥料のような更なる成分、ならびに特 定の効果を得るための他の活性成分も含み得る。 本発明はまた活性成分として、成長細胞の形で、または利用可能な場合、胞子 の形で存在する生存微生物を含む製剤にも関する。 本発明の更なる目的は、オストリアナ・フルナカリス(アジア・コーン・ボー ラー)種によりもたらされる損傷に対して穀物をコントロールする方法におけるC ryI−タイプタンパク質のようなバチルス・チューリンゲンシスの毒素タンパク 質をコードする毒素遺伝子を含む組換え微生物の使用に関し、組換え生物は直接 保護する植物に適用するか、または組換え的に製造した毒素を最初に組換え微生 物から単離し、保護する穀物に適用する前に前記のように調剤する。組換え微生 物はEP−A−690916および国際出願EP95/03826に記載のよう なVIP−タイプ毒素タンパク質をコードする毒素遺伝子またはそれぞれ少なくと も一つのCry−タイプ毒素および一つのVIP−タイプ毒素をコードする遺伝子 の組み合わせを含み得る。 宿主生物での毒素タンパク質の組換え製造のために、コード配列を選択した宿 主のために設計した発現カセットに挿入し、組換え的に製造する宿主に挿入する 。選択した宿主に適当なプロモーター、シグナル配列、5'および3'非翻訳配列 およびエンハンサーのような特異的調節配列は、当業者の技術範囲内である。適 当な読み取り枠に結合した個々のエレメントを含む得られた分子を、宿主細胞を 形質転換できるベクターに挿入する。タンパク質の組換え製造のための適当な発 現ベクターおよび方法は、エシェリキア・コリ(例えば、StudierおよびMoffatt ,J.Mol.Biol.189:113(1986);Brosius,DNA 8:759(1989)参照)、酵母(例えば 、SchneiderおよびGuarente,Meth.Enzymol.194:373(1991)参照)および昆虫細 胞(例えば、LuckowおよびSummers,Bio/Technol.6:47(1988)参照)のような宿主 生物で既知である。具体例は、pBluescript(Stratagene,La Jolla,CA)、pFLAG (International Biotechnologies,Inc.,New Haven,CT)、pTrcHis(Invitrogen ,La Jolla,CA)およびバキュロウイルス発現ベクター、例えばオートグラフィ カ・カリフォルニカ核多核体病ウイルス(AcMNPV)のゲノム由来のものを含む。好 ましいバキュロウイルス/昆虫システムはpVI11392/Sg21細胞(Invitrogen,La J olla,CA)である。 組換え製造毒素タンパク質は、種々の標準法を使用して単離および精製できる 。使用し得る実際の方法は、使用する宿主生物、毒素タンパク質が分泌のために 設計されたものか、および当業者が知っているこのような因子に依存する(例え ば、Ausbel,F.et al.,“Current Protocols in Molecular Biology”,John Wi ley & Sons,Inc.出版(1994)の16章参照)。 本発明の好ましい目的は、オストリアナ・フルナカリス(アジア・コーン・ボ ーラー)種の駆除に十分な量、バチルス・チューリンゲンシスの毒素タンパク質 、特にCryI−タイプ毒素タンパク質をコードする遺伝子を含み発現するトラン スジェニック植物の、オストリアナ・フルナカリス(アジア・コーン・ボーラー) 害虫によりもたらされる損傷に対して植物を保護する方法における使用に関する 。本植物は、核形質転換またはプラスチド形質転換(WO95/24492参照) によりもたらされ得る。特に好ましいのは、バチルス・チューリンゲンシスのCr y IA(b)毒素タンパク質を発現するトランスジェニック植物である。本発明はま た、その全体を本明細書に引用して包含させるEP−A−690916および国 際出願EP95/03826に記載のVIP−タイプタンパク質をコードする毒素 遺伝子を含むトランスジェニック植物の使用にも関する。本発明はまたオストリ アナ・フルナカリス(アジア・コーン・ボーラー)種の駆除を提供するのに十分な 量で、バチルス・チューリンゲンシスの毒素タンパク質をコードする毒素遺伝子 であるが、特にCry−タイプ毒素遺伝子を含み、発現し、またVIP−タイプタンパ ク質をコードする毒素遺伝子を含み、発現するトランスジェニックの使用にも関 する。該毒素遺伝子を発現する宿主植物は、オストリアナ・フルナカリス(アジ ア・コーン・ボーラー)種の昆虫攻撃に対する促進された抵抗性を有し、このよ うな攻撃に関する穀物損失への抵抗を備える。 一つの好ましい態様において、トランスジェニック植物における1個またはそ れ以上のBt δ−エンドトキシンは、1個またはそれ以上のVIP−タイプタン パク質の発現により達成される。この同じトランスジェニック植物内での殺虫素 因の1個以上の殺虫剤の同時発現は、必要な全ての遺伝子を含み、発現するよう に植物を遺伝子操作することにより達成される。あるいは、親1である植物をVI P−タイプタンパク質の発現のために遺伝子操作する。親2である第2植物をB t δ−エンドトキシンの発現のために遺伝子操作する。親1と親2を交配する ことにより、子孫植物を得、それは親1および2に挿入した全ての遺伝子を発現 する。特に好ましくは、Bt δ−エンドトキシンは本明細書に引用して包含さ せるEP−A−0618976に記載のものである。 本発明にまた包含されるものは、バチルス種の毒素タンパク質をコードするD NA分子であるが、好ましくは少なくとも10ヌクレオチド長の該毒素タンパク 質のコード配列の連続部分を含む該DNA分子から得られるオリゴヌクレオチド プローブと、ストリンジェントな条件下でハイブリダイズするDNA分子をコー ドする遺伝子を含む組換え微生物またはトランスジェニック植物の使用である。 本発明は、好ましくはバチルス・チューリンゲンシスまたはバチルス・セレウス の毒素タンパク質をコードするDNA分子、特にCry−タイプタンパク質をコー ドするDNA分子またはVIP−タイプ毒素タンパク質、好ましくは CryIA(b) タンパク質をコードする毒素遺伝子とハイブリダイズするDNA分子をコードす る遺伝子を含む組換え微生物またはトランスジェニック植物の使用を含む。 ハイブリダイズの安定性に作用する因子は、ハイブリダイゼーションのストリ ンジェンシーを決定する。一つのこのような因子は、DNA PROBES,Ge orgeH.KellerおよびMark M.Manak,Macmillan Publishers Ltd.1993,Sectio none:Molecular Hybridizatoin Technology:8頁以降に提供される式に従って容 易に計算できる融解温度Tmである。 好ましいハイブリダイゼーション温度は、計算融解温度Tmの約25℃下の範 囲であり、好ましくは計算融解温度Tmの約12−15℃下の範囲であり、オリ ゴヌクレオチドの場合、融解温度Tmの約5−10℃下の範囲である。 本発明は、更に、バチルス・チューリンゲンシス、好ましくはCry−タイプ毒 素タンパク質、より好ましくはCryI−タイプ毒素タンパク質をコードする毒素 遺伝子を少なくとも一つ含み、該毒素タンパク質を、オストリアナ・フルナカリ ス(アジア・コーン・ボーラー)の駆除に十分な量発現する、トランスジェニック の種子を含む、穀物のオストリアナ・フルナカリス(アジア・コーン・ボーラー) 害虫を駆除するための使用の指示のラベルをした商品袋に関する。本発明の範囲 内で好ましいのは、活性成分として、少なくとも一つのCry−タイプ毒素タンパ ク質およびVIP−タイプタンパク質をコードする遺伝子を含むトランスジェニッ ク植物の種子を含む商品袋である。特に好ましいのは、CryIA(b)毒素タンパ ク質とVIP−タイプタンパク質の組み合わせである。 本発明の更なる目的は、本発明の殺虫組成物を含む、穀物のオストリアナ・フ ルナカリス(アジア・コーン・ボーラー)の駆除のための使用の指示のラベルをし た商品袋である。 植物なる用語は、当分野の方法で遺伝的に形質転換できる植物種を意味するが 、特に、以下の植物種を含むがこれに限定されないオストリアナ・フルナカリス (アジア・コーン・ボーラー)種の宿主植物である植物である:トウモロコシ、小 麦、大麦、ライ麦、オート麦、米、モロコシ、黍および関連穀物、飼葉、竹(カ モガヤ、ウシノケグサ属等)およびサトウキビ。 植物形質転換のために既知の方法を下記に記載する。宿主植物は、先に標的穀 物として挙げたものを含むが、これらに限定されない。 本発明は、更にバチルス・チューリンゲンシスの毒素タンパク質をコードする 遺伝子を含み、害毒素タンパク質をオストリアナ・フルナカリス(アジア・コー ン・ボーラー)種の駆除を提供するのに十分な量発現するトランスジェニック植 物の種子および該種子を含む商品袋に関する。植物なる用語は、トウモロコシ、 小麦、大麦、ライ麦、オート麦、米、モロコシ、黍および関連穀物、飼葉、竹お よびサトウキビを含むが、これらに限定されないオストリアナ・フルナカリス( アジア・コーン・ボーラー)の宿主となる植物種を意味する。 天然バチルス・チューリンゲンシス毒素遺伝子のコドン使用性は、典型的植物 遺伝子のものとは明らかに異なる。特に、天然バチルス・チューリンゲンシス遺 伝子のコドン使用性は、トウモロコシ遺伝子のものと非常に異なる。結果として 、この遺伝子由来のmRNAは十分に利用されない。コドン使用性は、翻訳また は転写のレベルまたはmRNA処理で遺伝子の発現に影響を与える。毒素タンパ ク質を植物内、例えばトウモロコシ内での発現に最適とするために、コドン使用 性を、天然毒素遺伝子配列で発見された同じタンパク質をコードする合成遺伝子 の合成においてトウモロコシでもっとも好ましいコドン(トウモロコシ優先コド ン)の使用により最適化する。最適化トウモロコシ優先コドン取り扱いは、高レ ベルのBt殺虫タンパク質の発現に有効である。トウモロコシ最適化合成毒素遺 伝子の構築の更なる詳細は、本明細書にその全体を引用して包含させるWO93 /07278に見ることができる。微生物由来の毒素遺伝子は、植物遺伝子とも 異なり得る。植物遺伝子は、その転写RNAが開始メチオニンに隣接した定義さ れたリボソーム結合部位は配列を有しないことで、微生物で見られた遺伝子と異 なる。結果として、微生物遺伝子は、ATGの真核細胞コンセンサス翻訳イニシ エーターの包含により促進することができる。Clontech(1993/1994カタログ、2 10頁)は、植物内のエシェリキア・コリuidA遺伝子の発現のためのコンセンサ ス翻訳イニシエーターとして配列GTCGACCATGGTCを示唆する。更に 、Joshi(Nucl.Acids Res.15:6643-6653(1987))は、ATGに隣接した多くの植 物配列を比較し、コンセンサスTAAACAATGGCTを示している。植物内 での微生物ORFの発現が困難である状況において、これらの配列の一つの開始 ATGへの挿入が翻訳を改善し得る。このような場合、コンセンサスの少なくと も3つのヌクレオチドは、2次アミノ酸残基の修飾のために、修飾配列への包含 に適当でないことがある。好ましい開始メチオニンに隣接した配列は、異なる植 物種で異なり得る。GenBank/EMBLデーターベースに存在するトウモロコシ遺伝子 の配列を測量することにより、ATGに隣接したヌクレオチドがトウモロコシに 挿入した毒素遺伝子の翻訳を促進するために修飾すべきであることを認めること ができる。 加えて、異常スプライス部位の除去が挿入遺伝子の発現および安定性を増加で きることが示されている。非植物源からクローン化され、植物内での発現に最適 化されていない遺伝子は、5'または3'スプライス部位として植物内で認識でき るモチーフを含み得る。結果として、転写処理は早く停止し、切断または欠失m RNAを産生する。毒素遺伝子は、これらの異常スプライス部位を、当分野で既 知の方法を使用して除去することにより操作できる。 バチルス・チューリンゲンシス由来の多くのδ−エンドトキシンがプロ毒素と して発現される。これらのプロ毒素は、昆虫消化管のアルカリ環境で可溶性であ り、次いでタンパク質分解的にプロテアーゼにより開裂され、毒素コアフラグメ CryIクラスのδ−エンドトキシンタンパク質に関して、毒素コアフラグメント はプロ毒素のN−末端側半分に局在化する。新規毒素タンパク質の完全長プロ毒 素形または切断毒素コアフラグメントをコードする遺伝子が宿主植物で殺虫特性 を付与するための植物形質転換ベクターに使用できることが本発明の範囲内であ る。組換えDNA分子は、植物細胞内に多くの当分野で認識された方法で挿入で きる。当業者は、方法の選択が形質転換の標的の植物のタイプ、即ち単子葉また は双子葉に依存することを認識する。植物細胞を形質転換する適当な方法は、マ イクロインジェクション(Crossway et al.,BioTechniques 4:320-334(1986))、 エレクトロポレーション(Riggs et al.,Proc.Natl.Acad.Sci.USA 83/5602 −5606(1986))、アグロバクテリウム介在形質転換(Hinchee et al.,Biotechnol ogy 6:915-921(1988))、直接遺伝子移入(Paszkowski et al.,EMBO J.3:2717-2 722(1984))およびAgracetus,Inc.Madison,Wisconsinおよび Dupont,Inc.,Wilmington,Delaware(例えば、Sanford et al.,米国特許第4, 945,050号;およびcCabe et al.,Biotechnology 6:923-926(1988)参照) から入手可能な装置を使用した軌道粒子加速を含む。またWeissinger et al.,A nnual Rev.Genet.22:421-477(1988);Sanfordeet al .,Particulate Science and Technology 5:(27-3791987)(タマネギ);Chri stou et al.,Plant Physiol .87:671-674(1988)(大豆);McCabe et al.,Bio/Technology6:923-926(1988)( 大豆);Datta et al.,Bio/Technology 8:736-740(1990)(米);Klein et al.,Pro c.Natl.Acad.Sci.USA,85:4305-4309(1988)(トウモロコシ);Klein et al., Bio/Technology 6:559-563(1988)(トウモロコシ);Klein et al.,Plant Physiol .91:440-444(1988)(トウモロコシ);Fromm et al.,Bio/Technology 8:833−839 (1990);そしてGordon-Kamm et al.,Plant Cell 2:603-618(1990)(トウモロコ シ);Svab et al.,Proc.Natl.Acad.Sci.USA 87:8526-8530(1990)(タバコ葉 緑体);Koziel et al.(Biotechnology 11:194-200(1993))(トウモロコシ);Shima moto et al.,Nature 338:274-277(1989)(米);Christou et al.,Biotechnology 9:957-962(1991)(米);欧州特許出願EP0332584(カモガヤおよび他のプ ーイデアエ);Vasil et al.(Biotechnology 11:1553-1558(1993)(小麦);Weeks e t al.(Plant Physiol.102:1077-1084(1993)(小麦);Wan et al.(Plant Phys iol.104:37-48(1994)(大麦);Umbeck et al.,(Bio/Technology 5:263-266(1987 )(綿)もまた参照。組換えDNA分子をトウモロコシに、微粒子銃により挿入する 一つの特異的な好ましい態様が、その全体を引用して本明細書に包含させるWO 93/07278に見ることができる。更なる好ましい態様は、その全体を引用 して本明細書に包含させる出願EP−A−292435に記載のような、トウモ ロコシの原形質形質転換法である。 上記トランスジェニック種子および植物に操作された遺伝的特性は、有性生殖 または栄養生育で継代され、従って、子孫植物に維持され、繁殖する。一般に、 該維持および繁殖は、耕作、種蒔きまたは収穫のような特異的目的に適するため に開発された既知の農学的方法の使用をする。水耕栽培または温室法のような特 殊な目的もまた適用できる。生育穀物が昆虫によりもたらされる攻撃および損傷 または感染にならびに雑草植物との競争に無防備であるため、処置は雑草、植物 疾病、昆虫、線虫類および他の不利な条件の制御のために行い、収率を改善する 。これらは土壌の耕地または雑草および感染植物の除去の機械的処置、ならびに 除草剤、殺菌剤、殺配偶子剤、殺線虫剤、成長調節剤、成熟剤および殺虫剤のよ うな農薬の適用を含む。 本発明のトランスジェニック植物および種子の有利な遺伝的特性の使用は、更 に、害虫、除草剤または負荷への耐性、改善された栄養価、増加した収率、もし くは倒伏または破損による損失の減少をもたらす改善された構造の植物を開発す る目的の植物育種でも成し得る。種々の育種段階が、交配すべき系の選択、親系 の管理受粉または適当な子孫植物の選択のような明確な人の関与により特徴付け られる。所望の特性に依存して、異なる育種処理を行う。適切な方法は当分野で 既知であり、ハイブリダイゼーション、同系交配、戻し交配、多系育種、種々の 交雑、種間ハイブリダイゼーション、異数体法などを含むが、これらに限定され ない。ハイブリダイゼーション法は、また植物の断種を含み、機械的、化学的ま たは生化学的処理で雄性または雌性不稔植物を作る。雄性不稔植物と異なる系の 花粉の交差受粉は、雄性不稔であるが、雌性稔性植物のゲノムが均質に両方の親 系の特性を獲得することを確実とする。従って、本発明のトランスジェニック種 子および植物は、例えば、除草剤または農薬処置のような慣用法の効果を増加さ せるか、その修飾遺伝子の特性のために、該方法の施行をさせる改善された植物 系の育種に使用できる。あるいは、改善された負荷体制の新規植物は、その最適 化遺伝子“装備”のために、同等な不利な発育条件に耐性でないものの生産物よ りも良好な質の生産物を収穫することができる。 種子製造において、発芽質および種子の均一性は、必須の生産物特性であるが 、農家が収穫し、発売した種子の発芽質および均一性は重要ではない。穀物の他 の穀物および雑草種子から離しておくことが難しいため、種子運搬疾病をコント ロールするために、そして良好な発芽の種子を製造するために、かなり大量の、 そして明確な種子製造慣例が、純粋な種子の生育、条件付けおよび販売の分野の 経験者である種子生産者により開発されている。従って、自分の穀物から収穫し た種子を使用する変わりに、特異的な質的標準に合う保証できる種子を買うこと は農家にとって慣例である。種子として使用する繁殖材料は、除草剤、殺虫剤、 殺 真菌剤、殺菌剤、殺線虫剤、軟体動物駆除剤またはこれらの混合物を含む保護剤 コーティングで慣習的に処理される。慣習的に使用される保護剤コーティングは 、 化合物は、細菌、真菌または動物害虫によりもたらされる損傷に対する防御を提 供するために、調剤の分野で慣習的に用いられる更なる担体、界面活性成分また は適用促進アジュバントと調剤する。保護剤コーティングは、液体製剤を繁殖材 料に浸透させるか、または湿潤または乾燥製剤の組み合わせでコーティングする ことにより適用し得る。直接芽または果実を処置するような他の適用法もまた可 能である。 オストリアナ・フルナカリス(アジア・コーン・ボーラー)の駆除を提供するた めの、本発明のトランスジェニック植物、トランスジェニック植物材料またはト ランスジェニック種子使用により特徴付けられる、上記で例示の方法のような新 規農業的方法の提供は本発明の更なる態様である。 本発明の方法で形質転換した植物から子孫を育てるために、下記のような方法 を使用し得る:下記の実施例に記載のように製造したトウモロコシ植物を温室内 の鉢または土壌で、当分野で既知のように育て、花を咲かせる。花粉を成熟雄穂 から得、同じ植物、同朋種、または任意の望ましいトウモロコシ植物の雌穂の受 粉に使用する。同様に、形質転換植物から発育した雌穂を同じ植物、同朋種また は任意の望ましいトウモロコシ植物から得た花粉で受粉し得る。この方法で得た 形質転換子孫を導入遺伝子および/または随行DNA(遺伝子型)の存在、または 付与表現型により、非形質転換子孫と区別し得る。形質転換子孫は、同様に、所 望の特性を担持する植物で通常行うように、自家受粉するか、または他の植物と 交配させ得る。同様に、この方法で製造したタバコまたは他の形質転換植物を、 所望の特性を有する子孫を製造するために当分野で既知のように、自家受粉する か、交配し得る。同様に、他の当分野で既知の方法と本発明の方法の組み合わせ で製造したトランスジェニック生物は、当分野で既知のように育種し、所望の特 性の子孫を生産し得る。実施例 以下の実施例は、本発明の具体的態様を得るために使用する材料および方法を 更に記載する。それらは説明のために記載し、本発明の記載を限定するものと解 釈してはならない。実施例1: 一般法 DNA操作は、当分野で慣用的に実施されている方法を使用して行った。これ らの方法は、結果を実質的に変えることなく、しばしば修飾および/または置換 できる。他の引用文献が同定されていない限り、本方法は、Sambrook et al.,M olecular Cloning:A Laboratory Manual,Cold Spring Harbor Laboratory Pres s,第2版,1989のような一般的教則本に記載されている。実施例2: 植物形質転換ベクター 植物形質転換は、両方とも本明細書に引用して包含させるWO93/0727 8およびKozziel et al.(1993)[Biotechnology Vol.11,194-200]に記載の 形質転換ベクターpCIB4431およびpCIB3064を使用して行う。pCIB4431はトウモロ コシの形質転換のために設計されたベクターである。これはトウモロコシ中で発 現可能な二つのキメラ合成Bt CryIA(b)エンドトキシン遺伝子を含み、そ の中の一つはPEPカルボキシラーゼプロモーター/合成−CryIA(b)遺伝子 を含み、他方は花粉プロモーター/合成CryIA(b)遺伝子を含む。pCIB4431は 配列番号1に記載の合成CryIA(b)遺伝子を含み、アメリカ合衆国61604 イリノイ州、ペオリア、ノース・ユニバーシティー・ストリート1815番、ノ ーザン・レジオナル・リサーチ・センターのアグリカルチュラル・リサーチ・サ ービス、パテント・カルチャー・コレクション(NRRL)に受託番号NRRL B−18998で1992年9月21日に寄託した。pCIB3064は、本来ストレプ トマイセス・ヒグロスコピクスからクローン化した[Thompson et al.(1987)E MBO J.6,2519-2523]植物発現可能bar遺伝子(615bp)を含む。これはホスフ ィノトリシンアセチルトランスフェラーゼ(PAT)をコードし、ホスフィノトリ シンに対する耐性を付与する。bar遺伝子はCaMV35Sプロモーターおよび ターミネーター[OW et al.(1987)Proc.Natl.Acad.Sci.USA 84,4870-487 4]の 制御下にあり、ホスフィノトリシンに対する耐性を提供する。実施例3: 合成トウモロコシCryIA(b)遺伝子を含むトランスジェニックトウ モロコシ植物の製造 下記実施例は、DNAコート粒子をトウモロコシ細胞に挿入するために微粒子 銃装置を使用し、そこから形質転換植物を発生させる。 3.1 組織 1.5−2.5mm長の未成熟トウモロコシ胚を遺伝子型6N615の雌穂から、受粉 誤14−15日後に取った。母植物を温室で栽培した。取り出す前に、雌穂を2 0%Cloroxで20分表面殺菌し、3回滅菌水ですすいだ。個々の胚を胚盤側を上 に、2cm平方領域に置き、カルス開始培地、2DG4+5クロラムベン培地(N6主 要な塩、B5少ない塩、MS鉄、2%スクロース)で36個の胚を平板培養し、 5mg/lクロラムベン、20mg/lグルコースおよび10m1G4添加物(表1) をオートクレーブ後加えた。表1 :G4添加物 成分 培地1リットル当たり カゼイン加水分解産物 0.5g プロリン 1.38g ニコチン酸 0.2mg ピリドキシン−HCl 0.2mg チアミン−HCl 0.5mg コリン−HCl 0.1mg リボフラビン 0.05mg ビオチン 0.1mg 葉酸 0.05mg パントテン酸Ca 0.1mg p−アミノ安息香酸 0.05mg B12 0.136μg 3.2 送達のためのDNAの製造 本質的に微粒子銃装置に添付の説明書に従って、マイクロキャリアを製造した 。10μmマイクロキャリア50μlをボルテックス処理しながら、pCIB4431( 1.23μg/μl)[#898]+2μl pCIB3064(0.895μg/μl)[#456]、 続いて2. 5M CaCl2 50μl、次いで0.1Mスペルミジン(遊離塩基、TCグレ ード)を添加した。得られた混合物を3分ボルテックス処理し、10秒微量遠心 した。上清を除去し、マイクロキャリアを2回100%EtOH(HPLCグレ ード)250μlで、簡単にボルテックス処理し、遠心し、上清を除去すること により洗浄した。マイクロキャリアを100%EtOH 65μlに再懸濁した 。 3.3 照射 組織をPDS-100He Biolistics装置を使用して照射した。組織を停止スクリー ンシェルフの8cm下のシェルフに置いた。組織を、マクロキャリア上で乾燥させ た10μlのDNA/金マイクロキャリア溶液で1回撃った。使用した停止スク リーンを10×10ステンレススチールメッシュスクリーンを使用して、手で穿 孔した。1550psi値の破断ディスクを使用した。照射後、胚を暗中、25℃ で培養した。 3.4 カルス形成 胚を3mg/PPT含有カルス開始培地に、照射1日後に移した。胚を照射2お よび3週間後にカルス形成に関して計数した。反応のあったものをカルス維持培 地、3mg/L PPT添加2DG4+0.5 2,4−D培地に移した。カルス維 持培地はN6主要な塩、B5少ない塩、MS鉄、2%スクロースであり、0.5m g/l 2,4−D、20mg/lグルコースおよび10mg G4添加物をオートク レーブ後に添加した。胚形成カルスを2週間毎に3mg/L PPTを含む新鮮維 持培地に継代した。全てのカルスは暗中、25℃で保温した。タイプIカルス形 成反応は15%であった。カルスを形成した全ての胚を、個々の系を発生させる 個々の事象として培養した。 3.5 再生 選択12週間後、組織をPPT含有カルス維持培地から除き、再生培地に置い た。再生培地は2週間0.25MS3S5BA(0.25mg/l 2,4−D、5mg/l BA P、MS塩、3%スクロース)であり、続いて植物の再生のためにMS3S培地に継 代した。4から10週後、植物は再生し、GA7に蒔いた。実施例4: トランスジェニックトウモロコシ植物の分析 4.1 ELISAアッセイ トランスジェニックトウモロコシ中のcryIA(b)遺伝子発現の検出を、アジ ア・コーン・ボーラー昆虫バイオアッセイおよび得られたCryIA(b)のレベル の定量的測定のためのELISA分析を使用して追跡する。トランスジェニック 植物の葉のCryIA(b)殺虫タンパク質の定量的測定は、Clark M F,Lister RM ,Bar-Joseph M:ELISA Techniques.Weissbach A,Weissbach H(編)Methods in Enzymology 118:742-766,Academic Press,Florida(1986)に記載のような酵素 結合免疫収着検定(ELISA)を使用して行う。バチルス・チューリンゲンシス 亜種クルスタキ殺虫タンパク質に特異的な免疫親和性精製ポリクローナルウサギ およびヤギ抗体を使用して、葉サンプルの粗抽出物から可溶性タンパク質mg当た りの殺虫タンパク質の量を測定する。ダブルサンドイッチELISAの感度は、 ELISAマイクロタイター皿ウェル当たり50μgの全タンパク質を使用して 、可溶性タンパク質mg当たり1−5ng殺虫タンパク質である。トウモロコシ抽出 物を、抽出緩衝液(50mM Na2CO3、pH9.5、100mM NaCl、 0.05%トリトン、0.05%トゥイン、1mM PMSFおよび1μMロイペ プチン)の存在下、手持ちボールベアリングホモジナイザー(AGDIA)Elkart IN.)を使用して、ガーゼで裏打ちしたナイロン袋中で葉組織を挽くことにより行 う。タンパク質測定をBio-Rad(Richmond,CA)タンパク質アッセイを使用して行 う。 4.2 アジア・コーン・ボーラーッセイ 1から4cm切片をトウモロコシ植物の伸びた葉から切断する。各葉切片を50 ×9mmペトリ皿の湿らせたフィルターディスク上に置く。5匹の新生アジア・コ ーン・ボーラー幼虫を各葉切片上に置く(植物当たり合計5−20匹幼虫とする) 。ペトリ皿を29.5℃で保温する。食べられた葉の損傷および致死日を24、 48および72時間に採点する。実施例5: オストリアナ・フルナカリス(アジア・コーン・ボーラー)野外試験ア ッセイ 最初にトランスジーンの存在および発現を試験したトランスジェニック実生の 小さなピート鉢を野外に移植した。非トランスジェニック同系交配系を同じ場所 に6週間に渡り植え、コントロールとしておよび受粉のために使用する。野外で 植物が葉が40cmの長さに到達した時、研究室飼育オストリアナ・フルナカリス (アジア・コーン・ボーラー)幼虫の感染を、トランスジェニックおよび非トラン スジェニックコントロール植物の両方で開始する。ひきわりトウモロコシと混ぜ た約300匹の新生幼虫を各植物の輸生に、デービス・イノキュレーターを使用 して挿入する。感染は、週基本で4週間続け、アジア・コーン・ボーラーの最初 の発生を刺激した。最初の感染から2週間後に開始して、各植物を週毎に4週間 、1から9点(1=目に見える葉の損傷無し;9=ほとんどの葉は長い傷害部を 有する、数枚の葉は壊れた中央肋を有する、アジア・コーン・ボーラーによる成 長を妨げられた植物の可能性)を使用して採点する。平均アジア・コーン・ボー ラー損傷得点を各トランスジェニックおよび非トランスジェニックコントロール 植物で計算する。各植物が開花に達したため、300匹幼虫/植物を週単位で4 週間適用し、第2世代感染を刺激する。ひきわりトウモロコシ中の100匹の新 生幼虫を初期雌穂の葉腋および初期雌穂節の一節上または下の葉腋に挿入した。 従って、全部で約2400匹の幼虫を各植物に適用する。最初の第2世代感染の 約50日後、全ての移植およびある非トランスジェニック植物から茎を採取する 。全植物における内部第2世代感染穴形成損傷の程度を測定する。実施例6: 形質転換原形質抽出物の、オストリアナ・フルナカリス(アジア・コ ーン・ボーラー)に対する殺虫活性のアッセイ ウエスタンブロット分析を、トウモロコシ最適化遺伝子を発現するようにDN Aで一過性に形質転換したトウモロコシ細胞から得た抽出物を使用して行う。定 質的昆虫毒性試験を回収した原形質を使用して行う。懸濁液をバイオアッセイで 試験する各レプリケートで製造する。例えば、レプリケートはアジア・コーン・ ボーラー、オストリアナ・フルナカリスを使用して、鱗翅目の昆虫に対するその 活性を試験する。0.1%トリトンX−100中の100μlの原形質懸濁液を 、50mm×10mmのパチンと締まる蓋のペトリ皿中の人工タマナヤガ餌(Bioserv ,Inc.Frenchtown,NJ;F9240)の表面にピペットで移す。空気乾燥後、10匹の 新生幼虫を書くプレートに添加する。致死率を約4日後に記録する。実施例7: オストリアナ・フルナカリス(アジア・コーン・ボーラー)植物浸漬試 験 7.1 バチルス・チューリンゲンシス(Bt)結晶 バチルス・チューリンゲンシス(Bt)結晶を貯蔵懸濁液から、22ml蒸留水で調 製した。懸濁液は冷蔵庫に保管する。 7.2 パラメーター記録 3日齢オストリアナ・フルナカリス(アジア・コーン・ボーラー)幼虫にトウモ ロコシ葉を食べさせる。幼虫は非処理葉を既に食べている。120時間後、幼虫 の死んだ数を記録する。葉植物の食べられた損傷の種類を各場合に観察する。 7.3 試験法 アジア・コーン・ボーラーに感受性の二つのゼア・メイズのホモ接合体交配系 の植物を使用する(A系およびB系)。9−10日齢実生を種々の濃度のBtタン パク質懸濁液に浸し、幼虫を実生植物の乾燥葉に離す(植物当たり5−10幼虫) 、給餌実験に使用する。実生植物をナイロンメッシュ袋でカバーし、ナイロンメ ッシュケース内に保つ。4つづつ4−5濃度で試験し、致死率を測定する。温度 を21−30℃に保つ。 7.4 結果 表2 :A系の結果 表3:B系の結果 トウモロコシ葉で二つの種類の損傷が明らかに識別された:実生植物のBt浸 漬葉は軽い損傷であったが、コントロール実生の葉は非常に損傷を受けた。 以下のLC50値を得た: A系: LC50=23.412ppm(17.834から30.734の範囲) B系: LC50=12.234ppm(9.547から15.676の範囲)実施例8: オストリアナ・フルナカリス(アジア・コーン・ボーラー)植物浸漬ア ッセイ(VIP3A) 8.1 VIP 3Aタンパク質 VIP3Aタンパク質5mgを種々の濃度のVIP3タンパク質を調製するために50 ml蒸留水で調整した:100ppm、50ppm、25ppm、12.5ppm、6.25ppm および0ppm(照合用)。 8.2 オストリアナ・フルナカリス(アジア・コーン・ボーラー) ラチャ・ブリの農家から、Entomology and Animal Science Division DOAによ り得た蛹を、試験のための幼虫(L2)調製に注文する。 8.3 パラメーター記録 データーを5日保温後、死んだ幼虫の数を計数し、次いで幼虫の致死率をプロ ビット分析プログラムで分析した。 7.3 試験法 アジア・コーン・ボーラーに感受性の二つのゼア・メイズのホモ接合体交配系 の植物を使用する(B系およびC系)。B系を鉢植え植物試験(5つの各濃度およ び照合用で4つづつ)のために処置し、C系を葉浸漬試験(100、50、25pp mの濃度および照合用で4つづつ)のために処理した。10−14日齢実生を種々 の濃度のVIP3Aタンパク質懸濁液に浸し、幼虫を実生植物の乾燥葉に離す(植物 当たり5−10幼虫)、給餌実験に使用する。実生植物をナイロンメッシュ袋で カバーし、ナイロンメッシュケース内に保つ。切断葉をブラスチックブロックに 入れ、制御された室温に保ち、4つづつを本実験のために使用した。 7.4 結果 表4 :B系の結果 表5:C系の結果 120時間後、以下のLC50値を得た: B系: LC50=29.558ppm(21.298から41.022の範囲) C系: LC50=78.498ppm(53.644から114.866の範囲) 寄託 アメリカ合衆国61604イリノイ州ペオリア、ノース・ユニバーシティ・スト リート1815番、アグリカルチュラル・リサーチ・サービス、パテント・カル チャー・コレクション(NRRL)、ノーザン・レジオナル・リサーチ・センター に寄託。 株名称 受託番号 寄託日 バチルス・セレシウスAB78 NRRL B-21058 1993年3月18日 エシェリキア・コリpCIB4431 NRRL B-18998 1992年11月21日DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION                               Pest control   The present invention relates to Bacillus thuringiensis and / or other Bacillus spp. By using the obtained toxin protein, Lepidoptera mephida in cereals, Preferably for the control of Ostriana flunakaris (Asia corn borer) Related.   Bacillus thuringiensis is a large gram-positive, aerobic, endospore-forming bacterium. Belongs to the group. Bacillus cereus or Bacillus anthracis Unlike other Bacillus species that are very similar to Bacillus thuringiensis The majority, known as spores, are called crystals during their sporulation due to their crystalline structure. Forming parasporal inclusions This crystal is a pesticidally active crystal It consists of a protoxin protein, the so-called δ-endotoxin.   Protein crystals are responsible for Bacillus thuringiensis insect toxicity. δ- Endotoxin is taken orally in crystalline form, the latter being dissolved in the intestinal fluid of the target insect Until time, it does not show its insecticidal activity. In most cases, the actual toxic components are Release from protoxin as a result of proteolysis by the action of Will be issued.   Δ-Endotoxin from various Bacillus thuringiensis strains is High specificity for insects, especially various Lepidoptera, Coleoptera and Diptera larvae, and Larvae are characterized by a high activity against susceptible larvae.   Various insecticidal crystal proteins from Bacillus thuringiensis Microbiol. Rev. 53: 242-255 (1989), the classification reported at the time Crystal proteins were divided into four major classes. In general, the main class is its activity As defined by the spectrum, CryI protein is active in Lepidoptera and CryII protein Cry III protein against both Lepidoptera and Diptera, CryIII protein against Coleoptera Active, the CryIV protein is active against Diptera. Within each major class Where δ-endotoxins are classified according to sequence similarity.   CryI protein is typically produced as a 130-140 kDa protoxin protein. And it is proteolytically cleaved to produce insecticides of approximately 60-70 kDa in size. Produces sex toxin protein. The active part of δ-endotoxin is the full-length molecule N The proteins were classified into 6 groups, IA (a), IA (b), IA (c), IB, IC and ID. Was. Since then, it has been classified as CryIE, CryIF, CryIG, CryIH and CryIX The resulting protein has also been characterized.   Of the insecticidal activity of individual δ-endotoxins from Bacillus thuringiensis The spectra tend to be somewhat narrow, with some δ-endotoxins being present in some insects. Is only active. Specificity is the different steps involved in the production of active toxin proteins Is the result of the efficiency of and subsequently its ability to interact with insect gut epithelial cells .   Plants, preferably corn, wheat, rye, oats, rice, sorghum, Including but not limited to millet and related crops, fodder, bamboo and sugarcane For those who want to get rid of the cereal Ostriana flunacharis (Asia corn borer) It is one of the objects of the present invention to provide a method. The purpose of this is, surprisingly, Bacillus thuringiensis toxin protein such as CryI type toxin protein This is achieved within the scope of the present invention by administering the protein to the grain to be protected. In another embodiment of the present invention, a toxin protein obtained by vegetative culture of a Bacillus species Quality, ie VIP3 [EP-A-0690916; International Application No. EP / 03826, the Content is incorporated herein by reference in its entirety] ・ Insecticidal protein (VIP) is also available from Ostriana Flunakaris (A (Gia corn borer) Can be used for pest control.   The present invention therefore provides a method for protecting plants or plant seeds or plant growing areas with Chillus toxin protein, preferably the CryI or VIP type protein described above. Protein or pure or at least one such protein or toxin protein. A microorganism having at least one toxin gene to be administered, preferably a Bacillus -Insecticidal (including entomocid, including B. cereus strains) al) Ostriana flu, including administration directly or indirectly in the form of a composition Plants against damage caused by Nakaris (Asia corn borer) species (Including its descendants). The microbe used in the present method The product may be a naturally occurring strain or another containing a recombinant gene encoding a toxin. , A recombinant strain.   In a preferred embodiment, the transgenic plant is Plants to protect against damage caused by squirrel (Asia corn borer) species Used to administer toxins to objects. Such plants are Cry-type, preferably Bacillus such as CryI-type toxin protein or VIP-type protein Encoding a pesticidal toxin protein derived from Pseudomonas sp. When planted in an area where germination occurs, Ostriana flunakaris (Asia corn A toxin protein that expresses the toxin protein in an amount sufficient to provide Obtained from transformation with the gene.   Ostriana flunakaris (Asia corn borer) The insecticidal composition used in the method of the invention for protection may, for example, be combined with the active ingredient. And at least one Cry-type toxin protein, more preferably at least One CryI-type protein, even more preferably at least one CryI A-type toxin protein and most particularly preferably at least one SEQ ID NO: CryIA (b) type toxin protein according to 53 to 55, even more preferably Coding for Bacillus thuringiensis or at least one of said toxin proteins. A microorganism containing the gene to be loaded, preferably at least one Bacillus thuringiensis strain containing two genes, or a derivative or derivative thereof Of the carrier, diluent, surfactant or application-enhancing adjuvant Include with agricultural adjuvant. The active ingredient in the insecticidal active composition is EP-A VI-0609916 and VI as described in PCT International Application EP95 / 03826. P-type toxin protein or CryI-type and VIP-type protein It can be a combination. Preferred within the scope of protection is the VIP1A (a) protein Quality or VIP1-type protein such as VIP1 (b) protein, or VIP VIP2-type proteins such as 2 (a) protein or VIP2 (b) protein Or a combination of VIP1-type and VIP2-type proteins, Or VIP3-type such as VIP3 (a) protein or VIP3 (b) protein It is a protein. More preferred within the scope of protection are SEQ ID NOs: 1, 2, 4- 7, 17-24, 26-32, 35, 36, 39, 40, 42, 43, 45, 4 6, 49, 50, 51 or 52.   The composition may also include additional biologically active compounds. The compound may be a fertilizer or It can be a micronutrient donor or other formulation that affects plant growth. If desired Further agriculturally acceptable carriers and surfactants conventionally used in the field of formulation Herbicides, insecticides, fungicides, fungicides, nematicides, with application promoting adjuvants , A molluscicide or a combination of these preparations. Suitable carrier And adjuvants can be solid or liquid, and include materials commonly used in pharmaceutical processes. Corresponding, for example, natural or regenerated mineral substances, solvents, dispersants, wetting agents, stickiness Giving agents, binders or fertilizers.   The compositions may contain from 0.1 to 99% by weight of active ingredient, from 1 to 99.9% by weight of solids or May comprise a liquid adjuvant and 0 to 25% by weight of a surfactant component. Activation The composition comprising the active ingredient or the active ingredient can be used to protect the plant or crop to Agents or drugs (1993 Crop Proteciton Chemicals Reference, Chemical and Phar maceutical Press, Canada). Hoton Compatible with any other commonly used agricultural spray material, but with CryI-type poison If nitrogen is involved, it should not be used in very alkaline spray solutions. Powder , Suspensions, wettable powders or other substance forms suitable for agricultural applications.   Preferably, a Bacillus thuringiensis CryI-type toxin protein and And / or an active ingredient which is one of the above VIP-type proteins or the activity thereof (B) plants or parts of plants in an environment where pests can occur; The plant or part of the plant to protect it from damage caused by pests. Or (c) to protect plants that germinate from seeds from damage caused by pests To the seeds.   A preferred method of application in the area of plant protection is plant leaves (foliar surface treatment). And the rate of application depends on the planta being protected and the risk of infection with the pest.   The composition used in the method of the present invention may also be used for fruits, tubers or grains or cut plants. It is also suitable for protecting such plant propagation material, for example seeds, from pests. Breeding Treat with formulation before planting material: seeds can be soaked before sowing, for example . The active ingredient of the present invention may also be used to fill the grain (coating) with a liquid formulation, Or it can be applied by coating it with a solid formulation. The formulation breeds When planting the material, it can also be applied at the planting site, for example, on the ridges during sowing. Departure Ming also describes the method of treating plant propagation material and the plant propagation material thus treated. Also concerns.   Within the scope of the present invention, the composition is known for treating seed or soil with a bacterial strain. Can be applied. See, for example, U.S. Patent No. 4,863,866. Strains It is effective for ecological control even if the object is not alive. Preferably, but surviving Apply microorganisms.   Target grains protected within the scope of the present invention are Ostriana flunakaris (Asia (Corn-borer) is a host plant of corn, wheat, large Wheat, rye, oats, rice, sorghum, corn and related crops, fodder, bamboo and sato Including but not limited to cane.   The active ingredients of the present invention may be in unmodified form or with a suitable agriculturally acceptable carrier. Can be used. Such a carrier is an adjuvant commonly used in the field of agrochemical formulation. Bant and therefore a thick emulsion, coatable paste, directly sprayable or diluted Possible solutions, diluted emulsions, wettable powders, soluble powders, powders, granules and, for example, polymers It can be prepared in a known manner for encapsulation in a substance. Similar to the nature of the composition Spraying, spraying, dispersing, dispersing or injecting to the intended purpose and prevailing environment So choose. An advantageous rate of administration is in hectares ("ha", about 2.471 acres). -) Of about 50 g to about 5 kg of active ingredient (a.i.), preferably about 1 From 00 g to about 2 kg a.i./ha. The preferred rate of application is from 200 g to about 1 kga. i./ha or 200 g to 500 g a.i./ha. For seed dressing Advantageous application rates for the range from 0.5 g to 1000 g a.i./100 kg seed, Preferably, it is 3 g to 100 g ai / 100 kg seed. Most preferably, apply The proportion is between 10 g and 50 g a.i./100 kg seed.   Suitable carriers and adjuvants can be solid or liquid and are commonly used in pharmaceutical methods. Corresponding to the substance used, for example, natural or regenerated mineral substances, solvents, dispersants, Wetting agents, tackifiers, binders or fertilizers. A formulation, ie an insecticidal composition, Preparations or other active ingredients and, where appropriate, solid or liquid adjuvants The mixture is prepared in a known manner, for example, with an active ingredient and a bulking agent, such as a solvent, a solid carrier and In some cases, homogenous mixing and / or grinding of surfactant compounds (surfactants) Manufacturing.   Suitable solvents are: aromatic hydrocarbons, preferably fractions having 8 to 12 carbon atoms For example xylene mixtures or substituted naphthalenes, dibutyl phthalate or phthalates Phthalates such as dioctyl acid, fats such as cyclohexane or paraffin Aliphatic hydrocarbons, ethanol, ethylene glycol, monomethyl or monoethyl Alcohols and glycols such as ethers and their ethers and esthetics , Ketones such as cyclohexanone, N-methyl-2-pyrrolidone, dimethyl Strongly polar solvents such as sulfoxide or dimethylformamide and epoxy Vegetable oils such as sidified coconut oil or soybean oil or epoxidized vegetable oils; Or water.   For example, solid carriers used in powders and dispersible powders are typically calcite, talc , Natural mineral filling like kaolin, montmorillonite or attapulgite Agent. Highly dispersed silica or highly dispersed adsorptive polymer to improve physical properties Can also be added. Suitable granular adsorptive carriers are porous types, such as Is pumice, broken brick, sepiolite or bentonite; and the non-adsorbing carrier is It is a substance such as calcite or sand. In addition, many grains of inorganic or organic nature Conditioning substances, in particular dolomite or ground plant residues, can be used.   Depending on the nature of the active ingredient to be dispensed, suitable surfactant compounds will result in good emulsification, Nonionic, cationic and / or anionic surfactants with dispersing and wetting properties It is a sex component. The term “surfactant” is understood to include mixtures of surfactants. Understood. Suitable anionic surfactants include water-soluble soaps and water-soluble synthetic interfaces. It can be both active compounds. Suitable soaps are higher fatty acids (C10-C22 chains) Alkali metal salts, alkaline earth metal salts or unsubstituted or substituted ammonium Salts, such as the sodium or potassium salts of oleic or stearic acid, Is a natural fatty acid mixture obtainable, for example, from coconut oil or tallow . Further suitable surfactants are also fatty acid methyltaurine salts and modified or Non It is a modified phospholipid.   More often, however, so-called synthetic surfactants, especially fatty sulfo Acid esters, fatty sulfates, sulfonated benzimidazole derivatives or The use of rukariaryl sulfonic acid. Fatty sulfonic acid esters are usually In the form of metal salts, alkaline earth metal salts or unsubstituted or substituted ammonium salts And a C8 chain-C22 chain alkyl group (this is also an acyl group alkyl group). For example, lignosulfonic acid, dodecylsulfonic acid, or Sodium or fatty alcohol sulfonic acid mixture obtained from natural fatty acids Is a calcium salt. These compounds are based on the fatty acids of sulfates and sulfonic acids. Also includes salts of fatty alcohol / ethylene oxide adduct. Sulfonated benzimi The dazole derivative preferably has two sulfonic acid groups and about 8 to 22 carbon atoms. Contains one fatty acid group. An example of an alkylaryl sulfonic acid is dodecylben Zensulfonic acid, dibutylnaphthalenesulfonic acid or naphthalenesulfonic acid / Sodium, calcium or triethanolamide of formaldehyde condensation product Salt. Also suitable are the corresponding phosphoric acids such as, for example, p-nonylphenol. The adduct is a salt of 4 to 14 moles of ethylene oxide phosphate. Non-a The on-surfactant is preferably an aliphatic or cycloaliphatic alcohol, or Induction of polyglycol ethers of saturated or unsaturated fatty acids and alkylphenols A conductor, the derivative comprising 3 to 30 glycol ether groups and 8 to 20 carbon atoms Atom to the (aliphatic) hydrocarbon moiety and 6 to 18 carbon atoms to the alkylphenol Included in the alkyl portion of the   Further suitable non-ionic surfactants are polyethylene oxide and polypropylene. 1 for renglycol, ethylenediaminopropyleneglycol and alkyl chains A water-soluble adduct of alkyl propylene glycol containing from 10 to 10 carbon atoms, The adduct comprises 20 to 250 ethylene glycol ether groups and 10 to 100 Contains propylene glycol ether groups. These compounds are usually propylene Contains 1 to 5 ethylene glycol units per glycol unit. Nonionic surfactant Representative examples of the active ingredient are nonylphenol polyethoxyethanol and castor oil polyglycol. Coal ether, polypropylene / polyethylene oxide adduct, tributyl Phenoxypolyethoxyethanol, polyethylene glycol and octylph Enoxypolyethoxyethanol. Polyethylene sorbitan trioleate Fatty acid esters of polyethylene sorbitan, such as Component.   The cationic surfactant component is preferably at least one N-substituent. As a C8-C22 chain alkyl group and further substituents, lower unsubstituted or halo Quaternary ammogens containing alkyl benzyl, benzyl or hydroxyl lower alkyl groups Is a sodium salt. These salts are preferably halide, methyl sulfate, ethyl sulfate Salts, such as stearyltrimethylammonium chloride or benzyldi- ( 2-chloroethyl) ethylammonium bromide.   Surfactants commonly used in the field of formulation include, for example, "McCutchenon's Detergents and Emulsifiers Annual ”, MC Publishing Corp. Redgewood, NJ ., 1979; Dr. Helmut Stache, “Tensid Taschenbuch” (Handbook of Surfactants ), Carl Hanser Verlag, Munich / Vienna.   Other particularly preferred properties of the insecticidal compositions of the present invention are those applied to plants and soil. Is the continuity of the active ingredient when exposed. Possible causes of decreased activity include ultraviolet light, heat , Leaf exudates and inactivation by pH. For example, at high pH, especially reducing agents In the presence, the δ-endotoxin crystals dissolve and thus become inactive due to proteolysis. It is susceptible to sex. High leaf pH can also result in the leaf surface being particularly in the pH range 8-10. Is important in that The preparation of the insecticidal composition used in the method of the present invention comprises an active ingredient. Contains additives that help prevent loss of minutes or prevent active ingredients from inactivating These problems are addressed by encapsulation in a protected manner. capsule Encapsulation is chemical (McGuire and Shasha, J. Econ. Entomol. 85: 1425-1433, 1992). Or biologically (Barnes and Cummings, 1986; EP-A-0192319). Can be achieved. Chemical encapsulation involves the process of coating the active ingredient with a polymer. Biological encapsulation, while δ-endotoxin gene in microorganisms Including expression. As-is, containing toxin proteins for biological encapsulation Microorganisms are used as active ingredients in the formulation. UV protection reduces irradiation damage It is effective for Thermal inactivation is also controlled by the inclusion of suitable additives .   Preferred within the scope of the present invention are living microorganisms as active ingredients, growing cells or Are more preferably formulations containing spores when available. A suitable formulation is For example, it can consist of a polymer gel that crosslinks with multivalent cations and contains these microorganisms. You. This is the case, for example, when the alginate of the polymeric substance is D.C. R. Fravel et al. Phyt opathology, Vol. 75, No .. 7, 774-777, 1985. This publication It is also known that carrier materials can be used together. These preparations are Or a solution of a synthetic gel-forming polymer, such as alginate, present in the individual It is produced by mixing an aqueous salt solution of polyvalent metal ions in the form of droplets, and the microorganisms are It is possible to suspend in one of the two suspensions or in both reaction solutions. gel Formation begins with mixing into droplet form. Subsequent drying of these gel particles is possible. This method is called ionic gelation. Depending on the degree of drying, structurally polyvalent Crosslinks via thione and contains microorganisms and carriers present in excellent homogenous dispersion A dense hard particle of polymer is formed. The size of the particles is up to 5 mm.   In addition to the microorganism, it may comprise finely dispersed silicic acid as a carrier substance, with++I Partially crosslinked polysaccharide-based compositions that occur via on It is described in EP-A1-0097571. The composition is not more than 0.3 Has water activity. W. J. Cornick et al. Reviewed the review literature [New Directions in Bio logical Control: Alternatives for Suppressing Agricultural Pests and Dise ases, p. 345-372, Alan R. Liss, Inc. (1990)] by ionic gelation method Describes the various formulation systems that have been produced, including granules and granules containing vermiculite as a carrier. And compact alginate beads. Such compositions are also described in D.S. R. Fravel , Pesticide Formulations and Application Systems: 11th Volume, ASTM STP 11 12 American Society for Testing and Materials, Philadelphia, 1992, p. 17 3-179, which can be used to formulate the recombinant microorganism of the present invention. Survival Further methods of formulating organisms are described in WO 96/02638.   The compositions of the present invention are prophylactic in the field of pest control, even at low proportions of application. And / or is effective for therapeutic treatment and is very resistant to warm-blooded species, fish and plants. It is tolerable, non-toxic and has a very favorable biocidal spectrum. The present invention The composition of Ostriana flunacharis (Asia corn borer) pest Active against all or individual stages of development. The insecticidal activity of the compounds of the invention is Directly, that is, by destroying the pest immediately or after a short time , Can be apparent.   The composition comprises a chemical mixture comprising the toxin protein in substantially pure form, Or as part of a microorganism or transgenic plant, at least one poison It can be provided in the form of a mixture containing the native protein. In a specific embodiment of the present invention, One of the sex components is directly applied to the plant, for example, by foliar treatment as described hereinabove. The second predisposition is previously formed by the gene encoding the second predisposition. It is provided by the plant itself by expressing the transformed gene.   The insecticidal composition used in the method of the present invention is usually from about 0.1 to about 99%, preferably from about 0.1% to about 99%. Or from about 0.1 to about 95% and most preferably from about 3 to about 90% of the active ingredient About 1 to about 99.9%, preferably about 1 to about 99%, and most preferably About 5 to about 95% solid or liquid adjuvant; and about 0 to about 25%, preferably Preferably from about 0.1 to about 25% and most preferably from about 0.1 to about 20% of the interface Contains active ingredients. The product is preferably prepared as a concentrate, but the end user Use a rather low concentration of the diluted formulation. Insecticidal compositions also include stabilizers, defoamers, Additional ingredients such as viscosity modifiers, binders, tackifiers and fertilizers, and especially It may also contain other active ingredients to achieve a certain effect.   The present invention also provides the active ingredient in the form of growing cells or, where available, spores. The present invention also relates to a preparation comprising a living microorganism present in the form of:   A further object of the present invention is to provide for the use of Ostriana flunakaris (Asia (Ra) C in the method of controlling grain against damage caused by seeds Bacillus thuringiensis toxin proteins such as ryI-type proteins For the use of recombinant microorganisms containing toxin genes encoding quality, Apply the toxin to the plant to be protected or recombinantly It is isolated from the product and is formulated as described before it is applied to the grain to be protected. Recombinant microorganism The products are as described in EP-A-690916 and in international application EP 95/03826. Toxin genes encoding different VIP-type toxin proteins or at least Gene encoding one Cry-type toxin and one VIP-type toxin May be included.   A host where the coding sequence was selected for recombinant production of the toxin protein in the host organism. Insert into an expression cassette designed primarily for you and into a recombinantly produced host . Promoter, signal sequence, 5 'and 3' untranslated sequences appropriate for the chosen host Specific regulatory sequences such as and enhancers are within the skill of the art. Suitable The resulting molecule, which contains the individual elements bound in the appropriate reading frame, is Insert into a transformable vector. Suitable sources for recombinant production of proteins Current vectors and methods are described in Escherichia coli (e.g., Studier and Moffatt). J. Mol. Biol. 189: 113 (1986); Brosius, DNA 8: 759 (1989)), yeast (eg, Schneider and Guarente, Meth. Enzymol. 194: 373 (1991)) and insect cells Hosts such as vesicles (see, eg, Luckow and Summers, Bio / Technol. 6:47 (1988)). Known in living organisms. Examples are pBluescript (Stratagene, La Jolla, CA), pFLAG (International Biotechnologies, Inc., New Haven, CT), pTrcHis (Invitrogen , La Jolla, CA) and baculovirus expression vectors such as autography Includes those derived from the genome of the californica nuclear polynucleosis virus (AcMNPV). Good The preferred baculovirus / insect system is pVI11392 / Sg21 cells (Invitrogen, La J. olla, CA).   Recombinant toxin proteins can be isolated and purified using a variety of standard methods . The actual method that can be used depends on the host organism used and the toxin protein used for secretion. Depends on what was designed and on such factors known to those skilled in the art (e.g., For example, Ausbel, F. et al., “Current Protocols in Molecular Biology”, John Wi ley & Sons, Inc. (See Chapter 16 of Publishing (1994).)   A preferred object of the present invention is to provide for the use of Ostriana flunakaris (Asia corn botanical). Bacillus thuringiensis toxin protein in an amount sufficient to control the species In particular, a transgenic plant containing and expressing a gene encoding a CryI-type toxin protein. Ostriana flunakaris (Asia corn borer), a sgenic plant For use in methods of protecting plants against damage caused by pests . The plant may be nuclear transformed or plastid transformed (see WO 95/24492). Can be provided by Particularly preferred is Cr from Bacillus thuringiensis. y Transgenic plants expressing IA (b) toxin protein. The present invention EP-A-690916 and the state of the art which are hereby incorporated by reference in their entirety. Toxin encoding VIP-type protein described in International Application EP 95/03826 It also relates to the use of transgenic plants containing the gene. The present invention also provides Sufficient to provide control of Ana Furnakalis (Asia corn borer) species Toxin gene encoding a Bacillus thuringiensis toxin protein in quantity But specifically contains, expresses, and expresses the VIP-type toxin gene. It also involves the use of transgenics that contain and express toxin genes that encode proteins. I do. The host plant expressing the toxin gene is Ostriana flunakaris (Acorn bowler) species have enhanced resistance to insect attack, Provide resistance to grain loss in response to such attacks.   In one preferred embodiment, one or more of the transgenic plants One or more Bt δ-endotoxins may contain one or more VIP-type proteins. Achieved by expression of protein. Pesticides in this same transgenic plant Co-expression of one or more pesticides may include all necessary genes and be expressed This is achieved by genetically engineering the plant. Alternatively, the parent 1 plant is replaced with VI Genetically engineered for expression of P-type proteins. The second plant that is parent 2 is B Engineering for tδ-endotoxin expression. Mating parent 1 and parent 2 Thereby obtaining a progeny plant, which expresses all genes inserted into parents 1 and 2 I do. Particularly preferably, Bt δ-endotoxin is included herein by reference. EP-A-0618976.   Also encompassed by the present invention are D-encoding Bacillus sp. Toxin proteins. An NA molecule, preferably the toxin protein of at least 10 nucleotides in length Oligonucleotides derived from said DNA molecule comprising a contiguous portion of a quality coding sequence A probe and a DNA molecule that hybridizes under stringent conditions Use of recombinant microorganisms or transgenic plants containing the gene to be transferred. The invention preferably comprises Bacillus thuringiensis or Bacillus cereus. A DNA molecule encoding a toxin protein, particularly a Cry-type protein. DNA molecule or VIP-type toxin protein, preferably CryIA (b) Encodes a DNA molecule that hybridizes to a toxin gene that encodes a protein The use of recombinant microorganisms or transgenic plants containing the gene.   Factors affecting the stability of hybridization include the hybridization strategy. Determine your agency. One such factor is DNA PROBES, Ge. orgeH. Keller and Mark M. Manak, Macmillan Publishers Ltd. 1993, Sectio none: Molecular Hybridizatoin Technology: Melting temperature T that can be easily calculatedmIt is.   The preferred hybridization temperature is the calculated melting temperature TmRange of about 25 ° C And preferably the calculated melting temperature TmIn the range of about 12-15 ° C below For oligonucleotides, the melting temperature TmBelow about 5-10 ° C.   The invention further relates to Bacillus thuringiensis, preferably a Cry-type venom. Toxin encoding a native protein, more preferably a CryI-type toxin protein And at least one gene, wherein the toxin protein is Transgenic, which is expressed in sufficient quantities to control corn (Asia corn borer) Ostriana flunakaris (Asia corn borer), including cereals A product bag labeled with instructions for use for controlling pests. Scope of the invention Preferred among them are at least one Cry-type toxin protein as active ingredient. Transgene containing genes encoding proteins and VIP-type proteins This is a product bag containing the seeds of a plant. Particularly preferred are CryIA (b) toxin proteins It is a combination of protein and VIP-type protein.   It is a further object of the present invention to provide a cereal ostriana hull comprising an insecticidal composition of the invention. Label the instructions for use for the control of Lunakaris (Asia corn borer) Product bag.   The term plant refers to a plant species that can be genetically transformed by methods in the art. Ostriana flunacharis, in particular, including but not limited to the following plant species: (Asia corn borer) is a plant that is the host plant of the species: corn, small Wheat, barley, rye, oats, rice, sorghum, corn and related grains, fodder, bamboo Mogaya, Boletus genus etc.) and sugarcane.   Known methods for plant transformation are described below. The host plant is Including, but not limited to, those listed above.   The invention further encodes a Bacillus thuringiensis toxin protein. Gene and harmful toxin protein by Ostriana flunakaris (Asia Transgenic plants that are expressed in sufficient quantities to provide control of the species The present invention relates to a product seed and a product bag containing the seed. The term plant is corn, Wheat, barley, rye, oats, rice, sorghum, millet and related grains, fodder, bamboo Ostriana flunacharis (including but not limited to sugarcane and sugarcane) (Asian corn borer).   The codon usage of the native Bacillus thuringiensis toxin gene is It is clearly different from that of the gene. In particular, natural Bacillus thuringiensis remains The codon usage of the gene is very different from that of the maize gene. as a result However, mRNA derived from this gene is not fully utilized. Codon usage can be Affects gene expression at the level of transcription or mRNA processing. Toxin tampa Use codons to optimize protein in plants, e.g., corn Gender, a synthetic gene encoding the same protein found in the natural toxin gene sequence Most preferred codons in maize (maize preferred codons) Optimize by using Optimized maize priority codon handling is high It is effective for expressing Bell Bt insecticidal proteins. Corn optimized synthetic toxin Further details of the construction of genes can be found in WO 93, hereby incorporated by reference in its entirety. / 07278. Microbial toxin genes are also known as plant genes. Can be different. A plant gene is defined as one whose transcribed RNA is adjacent to the initiation methionine. The ribosome binding site, which has no sequence, differs from the gene found in microorganisms. Become. As a result, the microbial gene is the eukaryotic consensus translation initiator for ATG. It can be facilitated by the inclusion of eta. Clontech (catalog in 1993/1994, 2 10) is a consensus for the expression of the Escherichia coli uidA gene in plants. The sequence GTCGACC as a translation initiatorATGSuggests GTC. Further Joshi (Nucl. Acids Res. 15: 6643-6653 (1987)) describes a number of plants adjacent to the ATG. Product sequences, and consensus TAAACAATGGCT is shown. Inside the plant In the situation where expression of the microbial ORF is difficult in Insertion into the ATG can improve translation. In such cases, at least consensus Even three nucleotides are included in the modified sequence for modification of the secondary amino acid residues May not be appropriate. Sequences adjacent to the preferred initiating methionine may be different plants. Can vary by species. Maize genes present in the GenBank / EMBL database The nucleotide sequence adjacent to the ATG is converted to corn by measuring the sequence of Recognize that the inserted toxin gene should be modified to facilitate translation Can be.   In addition, removal of abnormal splice sites can increase expression and stability of the inserted gene. Is shown. Cloned from non-plant sources, ideal for expression in plants Unmodified genes can be recognized in plants as 5 'or 3' splice sites. Motifs. As a result, the transcription process stops prematurely and the truncated or deleted Produces RNA. The toxin gene identifies these abnormal splice sites in the art. It can be manipulated by removal using known methods.   Many δ-endotoxins from Bacillus thuringiensis are associated with protoxins Is expressed. These protoxins are soluble in the alkaline environment of the insect digestive tract. And then proteolytically cleaved by the protease to form the toxin core fragment. For the CryI class δ-endotoxin protein, the toxin core fragment Localizes to the N-terminal half of the protoxin. Full-length protoxin of a novel toxin protein Genes encoding the native or truncated toxin core fragment have insecticidal properties in host plants Within the scope of the present invention, it can be used for a plant transformation vector for imparting You. Recombinant DNA molecules can be inserted into plant cells in many art-recognized ways. Wear. One of skill in the art will appreciate that the choice of method depends on the type of plant targeted for transformation, i.e., monocotyledonous or Recognizes that it depends on dicotyledons. Suitable methods for transforming plant cells are described in Icroinjection (Crossway et al., BioTechniques 4: 320-334 (1986)), Electroporation (Riggs et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 83/5602. -5606 (1986)), Agrobacterium-mediated transformation (Hinchee et al., Biotechnol ogy 6: 915-921 (1988)), direct gene transfer (Paszkowski et al., EMBO J. 3: 2717-2). 722 (1984)) and Agracetus, Inc. Madison, Wisconsin and Dupont, Inc., Wilmington, Delaware (see, for example, Sanford et al., U.S. Pat. No. 945,050; and cCabe et al., Biotechnology 6: 923-926 (1988)). Orbital particle acceleration using equipment available from Weissinger et al., A nnual Rev. Genet. 22: 421-477 (1988); Sanforde et al., Particulate Science and Technology 5: (27-3791987) (Onion); Chri stou et al., Plant Physiol . 87: 671-674 (1988) (soy); McCabe et al., Bio / Technology 6: 923-926 (1988) ( Soybean); Datta et al., Bio / Technology 8: 736-740 (1990) (US); Klein et al., Pro c. Natl. Acad. Sci. USA, 85: 4305-4309 (1988) (maize); Klein et al., Bio / Technology 6: 559-563 (1988) (maize); Klein et al., Plant Physiol . 91: 440-444 (1988) (maize); Fromm et al., Bio / Technology 8: 833-839. (1990); and Gordon-Kamm et al., Plant Cell 2: 603-618 (1990) (Maize S); Svab et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 87: 8526-8530 (1990) (tobacco leaves Chloroplast); Koziel et al. (Biotechnology 11: 194-200 (1993)) (maize); Shima moto et al., Nature 338: 274-277 (1989) (US); Christou et al., Biotechnology  9: 957-962 (1991) (U.S.A.); European Patent Application EP0332584 (Camogaya and other programs). Vaide et al. (Biotechnology 11: 1553-1558 (1993) (wheat); Weeks e t al. (Plant Physiol. 102: 1077-1084 (1993) (wheat); Wan et al. (Plant Phys. iol. 104: 37-48 (1994) (barley); Umbeck et al., (Bio / Technology 5: 263-266 (1987 See also) (cotton). Recombinant DNA molecule is inserted into corn by microprojectile bombardment One specific preferred embodiment is described in WO WO, incorporated herein by reference in its entirety. 93/07278. Further preferred embodiments are cited in their entirety. Corn, as described in application EP-A-292435, which is incorporated herein by reference. This is a method for protoplasmic transformation of sorghum.   The genetic characteristics engineered into the transgenic seeds and plants are based on sexual reproduction Or they are passaged in vegetative growth and are therefore maintained and propagated in progeny plants. In general, The maintenance and breeding is suitable for a specific purpose such as cultivation, sowing or harvesting Use of known agronomic methods developed in Special features such as hydroponics or greenhouse method Special purposes can also be applied. Attack and damage caused by growing crops by insects Or treatment for weeds, plants, because they are vulnerable to infection and to competition from weeds Do for the control of diseases, insects, nematodes and other adverse conditions and improve the yield . These are the mechanical treatment of soil arable or removal of weeds and infected plants, and Herbicides, fungicides, gameticides, nematicides, growth regulators, ripening agents and insecticides Including the application of pesticides.   The use of the advantageous genetic properties of the transgenic plants and seeds of the present invention is further If the pest, herbicide or load resistance, improved nutritional value, increased yield, Develop plants with improved structure resulting in reduced losses due to lodging or breakage Plant breeding for any purpose. The various breeding stages are dependent on the choice of line to be crossed and the parent line. Characterized by distinct human involvement such as pollination or selection of appropriate progeny plants Can be Different breeding treatments are performed, depending on the properties desired. Appropriate methods are known in the art Known, hybridization, inbreeding, backcrossing, multibred breeding, various Including but not limited to hybridization, interspecies hybridization, aneuploidy, etc. Absent. Hybridization methods also include plant sterilization and include mechanical, chemical, and Alternatively, a male or female sterile plant is produced by biochemical treatment. Of a different line from the male sterile plant Cross-pollination of pollen is male-sterile, but the genomes of female-fertile plants are homogenous in both parents. Ensure that the characteristics of the system are obtained. Accordingly, the transgenic species of the present invention Offspring and plants can increase the effectiveness of conventional methods such as, for example, herbicide or pesticide treatment. Or improved plants that, due to the properties of the modified gene, cause the practice of the method Can be used to breed lines. Alternatively, a new plant with an improved loading regime is Products that are not tolerant to equivalent adverse developmental conditions because of the modified gene "equipment" A good quality product can be harvested.   In seed production, germplasm and seed uniformity are essential product characteristics. Germ quality and uniformity of the seeds harvested and released by the farmer are not important. Other grains It is difficult to keep seeds away from cereals and weed seeds. To roll, and to produce good germinating seeds, rather large quantities, And clear seed production practices are the key to growing, conditioning and selling pure seed. Developed by experienced seed producers. Therefore, harvest from your own grain Buying guaranteed seeds that meet specific qualitative standards instead of using fresh seeds Is customary for farmers. Breeding materials used as seeds include herbicides, insecticides, Killing Protective agents including fungicides, fungicides, nematicides, molluscicides or mixtures thereof Processed conventionally with coatings. Conventionally used protective coatings are , Compounds provide protection against damage caused by bacteria, fungi or animal pests. To provide additional carriers, surfactants or other ingredients conventionally used in the field of pharmacy. Is formulated with an application-enhancing adjuvant. Protective coating, breeding liquid formulation Material or coat with a combination of wet or dry formulations Can be applied. Other applications, such as treating the shoots or fruits directly, are also possible. Noh.   Provides control of Ostriana flunakaris (Asia corn borer) The transgenic plant, transgenic plant material or plant of the present invention. New methods, such as those exemplified above, characterized by the use of transgenic seeds Providing an agricultural method is a further aspect of the present invention.   In order to grow progeny from a plant transformed by the method of the present invention, the following method is used. Can be used: corn plants produced as described in the Examples below are used in a greenhouse In a pot or soil, grow and flower as known in the art. Mature ear with pollen From the same plant, the same species, or any desired maize plant Use for powder. Similarly, the ears grown from the transformed plants are May be pollinated with pollen obtained from any desired corn plant. Got this way Transforming the progeny with the presence of the transgene and / or accompanying DNA (genotype), or The conferred phenotype can distinguish it from non-transformed progeny. The transformed progeny is also Self-pollinate or combine with other plants, as is usually done with plants that carry the desired properties. Can be mated. Similarly, tobacco or other transformed plants produced by this method can be Self-pollinate as is known in the art to produce progeny with the desired properties Or can be crossed. Similarly, combinations of the methods of the present invention with other methods known in the art. The transgenic organisms produced in the above are bred as is known in the art, and Can produce offspring of sex.Example   The following examples illustrate the materials and methods used to obtain specific embodiments of the present invention. It will be further described. They are set forth by way of explanation and should not be construed as limiting the description of the invention. Don't excuse me.Example 1 General law   DNA manipulations were performed using methods routinely practiced in the art. this These methods often involve modification and / or substitution without substantially altering the result. it can. Unless other cited references were identified, the method described in Sambrook et al., M. olecular Cloning: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory Pres s, Second Edition, 1989.Example 2: Plant transformation vector   Plant transformation is described in WO 93/0727, both of which are incorporated herein by reference. 8 and Kozziel et al. (1993) [Biotechnology Vol. 11, 194-200] This is performed using the transformation vectors pCIB4431 and pCIB3064. pCIB4431 is corn It is a vector designed for transformation of Koshi. It originates in corn Containing two possible chimeric synthetic Bt CryIA (b) endotoxin genes, One of them is PEP carboxylase promoter / synthesis-CryIA (b) gene And the other contains the pollen promoter / synthetic CryIA (b) gene. pCIB4431 is It contains the synthetic CryIA (b) gene of SEQ ID NO: 1, 1815 North University Street, Peoria, Illinois Agricultural Research Services at the Southern Regional Research Center Service to Patent Culture Collection (NRRL) with accession number NRRL B-18998 and deposited on September 21, 1992. pCIB3064 is originally a strep Cloned from Tomyces hygroscopicus [Thompson et al. (1987) E MBO J. 6, 2519-2523] including the plant-expressable bar gene (615 bp). This is Phosph Encoding phosphinotricin acetyltransferase (PAT) Provides resistance to syn. The bar gene contains the CaMV35S promoter and Terminator [OW et al. (1987) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 84, 4870-487 4] It is under control and provides resistance to phosphinothricin.Example 3 Transgenic tow containing synthetic corn CryIA (b) gene Production of sorghum plants   The following example demonstrates the use of microparticles to insert DNA-coated particles into corn cells. A gun plant is used to generate transformed plants therefrom. 3.1Organization   1.5-2.5 mm immature maize embryos are pollinated from the ears of genotype 6N615. Taken 14-14 days after mistake. The mother plant was grown in the greenhouse. Before removing, 2 ears Surface sterilized with 0% Clorox for 20 minutes and rinsed three times with sterile water. Individual embryos with scutellum side up In a 2 cm square area, callus initiation medium, 2DG4 + 5 chlorambene medium (N6 Plate 36 embryos with essential salt, B5 low salt, MS iron, 2% sucrose) 5 mg / l chlorambene, 20 mg / l glucose and 10 ml G4 additive (Table 1) Was added after autoclaving.Table 1 : G4 additive              component Per liter of medium              Casein hydrolyzate 0.5g              Proline 1.38g              Nicotinic acid 0.2mg              Pyridoxine-HCl 0.2mg              Thiamine-HCl 0.5mg              Choline-HCl 0.1mg              Riboflavin 0.05mg              Biotin 0.1mg              Folic acid 0.05mg              0.1 mg of Ca pantothenate              p-Aminobenzoic acid 0.05 mg              B12 0.136 μg 3.2Production of DNA for delivery   Microcarriers were manufactured essentially according to the instructions attached to the particle gun device . While vortexing 50 μl of a 10 μm microcarrier, pCIB4431 ( 1.23 μg / μl) [# 898] +2 μl pCIB3064 (0.895 μg / μl) [# 456], Then 2. 5M CaClTwo  50 μl then 0.1 M spermidine (free base, TC gray) Was added. The resulting mixture is vortexed for 3 minutes and microcentrifuged for 10 seconds. did. The supernatant was removed and the microcarriers were washed twice with 100% EtOH (HPLC Vortex briefly with 250 μl, centrifuge and remove supernatant And washed. The microcarrier was resuspended in 65 μl of 100% EtOH . 3.3Irradiation   Tissue was irradiated using a PDS-100He Biolistics instrument. Hurt organization Placed on the shelf 8 cm below the shelf. Allow the tissue to dry on the macrocarrier One shot with 10 μl of the DNA / gold microcarrier solution. Used stop screen Lean by hand using a 10 × 10 stainless steel mesh screen Drilled. A 1550 psi rupture disc was used. After irradiation, the embryos are kept in the dark at 25 ° C. And cultured. 3.4Callus formation   Embryos were transferred to callus initiation medium containing 3 mg / PPT one day after irradiation. Irradiate the embryo 2 And counted after 3 weeks for callus formation. Callus maintenance culture after reaction The medium was transferred to 2DG4 + 0.5 2,4-D medium supplemented with 3 mg / L PPT. Callus The preservation medium was N6 major salt, B5 low salt, MS iron, 2% sucrose, 0.5m g / l 2,4-D, 20 mg / l glucose and 10 mg G4 additive Added after lave. Embryogenic callus every 3 weeks containing 3 mg / L PPT The culture was subcultured into a holding medium. All calli were incubated at 25 ° C. in the dark. Type I callus type The synthesis reaction was 15%. All callus-forming embryos develop individual lines Cultured as individual events. 3.5Playback   After 12 weeks of selection, the tissue is removed from the callus maintenance medium containing PPT and placed in regeneration medium. Was. The regeneration medium was 0.25 MS3S5BA (0.25 mg / l 2,4-D, 5 mg / l BA) for 2 weeks. P, MS salt, 3% sucrose) and subsequently transferred to MS3S medium for plant regeneration. Was replaced. After 4 to 10 weeks, the plants regenerated and were sown on GA7.Example 4: Analysis of transgenic corn plants 4.1ELISA assay   Detection of cryIA (b) gene expression in transgenic corn Acorn borer insect bioassay and the resulting CryIA (b) levels Follow up using ELISA analysis for quantitative measurement of. Transgenic Quantitative measurement of CryIA (b) insecticidal protein in plant leaves was performed using Clark MF, Lister RM. , Bar-Joseph M: ELISA Techniques. Weissbach A, Weissbach H (eds.) Methods in Enzymology 118: 742-766, Enzyme as described in Academic Press, Florida (1986) Performed using a binding immunosorbent assay (ELISA). Bacillus Thuringiensis An immunoaffinity purified polyclonal rabbit specific for the subspecies Krusutaki insecticidal protein And soluble protein from crude extracts of leaf samples using goat antibodies The amount of insecticidal protein is measured. The sensitivity of the double sandwich ELISA is Using 50 μg total protein per ELISA microtiter dish well , 1-5 ng of insecticidal protein per mg of soluble protein. Corn extraction The product is extracted with extraction buffer (50 mM Na).TwoCOThreePH 9.5, 100 mM NaCl, 0.05% Triton, 0.05% Tween, 1 mM PMSF and 1 μM Leupe (Putin) in the presence of hand-held ball bearing homogenizer (AGDIA) Elkart IN.) By grinding the leaf tissue in a nylon bag lined with gauze. U. Perform protein measurements using the Bio-Rad (Richmond, CA) protein assay. U. 4.2Asia corn bowlersey   1-4 cm sections are cut from the extended leaves of the corn plant. 50 pieces of each leaf section Place on a damp filter disc in a × 9 mm Petri dish. Five newborn Asian animals Larvae on each leaf section (total 5-20 larvae per plant) . Incubate the Petri dish at 29.5 ° C. 24 damage and fatal days of eaten leaves, Score at 48 and 72 hours.Example 5: Ostriana flunakaris (Asia corn borer) field test Sussey   First, the transgenic seedlings tested for the presence and expression of the transgene Small peat pots were transplanted outdoors. Non-transgenic inbred in the same place And planted for 6 weeks and used as control and for pollination. Outdoors When plants reach 40 cm long leaves, lab-grown Ostriana flunacharis (Asia corn borer) Infects larvae with transgenic and non-transgenic Start with both sgenic control plants. Mixed with corn About 300 newborn larvae were used to transplant each plant using Davis Inoculator And insert. The infection lasted four weeks on a weekly basis and was the first in the Asian corn borer. Stimulated the development of Starting each week 2 weeks after the first infection, each plant is weekly for 4 weeks 1 to 9 points (1 = no visible leaf damage; 9 = most leaves have long lesions) Some leaves have broken central ribs, formed by an Asian corn borer (Possibly a plant whose length has been disturbed). Average Asian corn bow Color damage score for each transgenic and non-transgenic control Calculate with plants. As each plant has reached flowering, 300 larvae / plant are increased by 4 per week. Apply weekly to stimulate second generation infection. 100 new corn in the corn The live larvae were inserted into the axilla of the initial ear and on or below one of the nodes of the initial ear. Thus, a total of about 2400 larvae are applied to each plant. Of the first second generation infection After about 50 days, stems are harvested from all transplants and certain non-transgenic plants . The extent of internal second generation infection hole formation damage in all plants is determined.Example 6: The transformed protoplasmic extract, Ostriana flunakaris (Asia Insecticidal activity assay   Western blot analysis was performed using DN to express the maize-optimized gene. This is done using extracts obtained from corn cells transiently transformed with A. Set A qualitative insect toxicity test is performed using the recovered protoplasm. Suspension in bioassay Manufactured at each replicate to be tested. For example, replicate is Asian corn Using a bowler, Ostriana flunakaris, against the insects of the order Lepidoptera Test for activity. 100 μl of the plasma suspension in 0.1% Triton X-100 Artificial banana bait in a Petri dish with 50 mm x 10 mm snap and lid (Bioserv , Inc. Pipette onto the surface of Frenchtown, NJ; F9240). After air drying, 10 Add the newborn larva to the writing plate. Mortality is recorded approximately 4 days later.Example 7: Ostriana flunacharis (Asia corn borer) plant immersion test Trial 7.1Bacillus thuringiensis (Bt) crystal   Bacillus thuringiensis (Bt) crystals were prepared from the stock suspension with 22 ml of distilled water. Made. Store the suspension in the refrigerator. 7.2Parameter recording   Three-day-old Ostriana flunacharis (Asia corn borer) larva Feed sorghum leaves. Larvae have already eaten untreated leaves. 120 hours later, larva Record the number of dead. The type of damage injured by leaf plants is observed in each case. 7.3Test method   Two zea maize homozygous crosses susceptible to Asian corn borers (A and B). 9-10 day old seedlings were treated with various concentrations of Bt tan Soak in parkin suspension and release larvae to dried leaves of seedlings (5-10 larvae per plant) Used for feeding experiments. Cover the seedlings with a nylon mesh bag. Keep in the case. Test in quadruplicate at 4-5 concentrations to determine mortality. temperature At 21-30 ° C. 7.4result Table 2 : Result of A system Table 3: Result of B system  Two types of damage were clearly identified in maize leaves: Bt soak of seedlings The pickled leaves were slightly damaged, but the control seedling leaves were very damaged. The following LC50Got the value: A system: LC50= 23.412 ppm (range from 17.834 to 30.734) B type: LC50= 12.234 ppm (range of 9.547 to 15.676)Example 8: Ostriana flunakaris (Asia corn borer) plant dipping ISSEY (VIP3A) 8.1VIP 3A protein   5 mg of VIP3A protein is used to prepare various concentrations of VIP3 protein. Adjusted with ml distilled water: 100 ppm, 50 ppm, 25 ppm, 12.5 ppm, 6.25 ppm And 0 ppm (for comparison). 8.2Ostriana Furnakalis (Asia corn borer)   Entology and Animal Science Division DOA from a farmer in Ratchaburi The resulting pupae are ordered for larval (L2) preparation for testing. 8.3Parameter recording   After keeping the data for 5 days, the number of dead larvae was counted, and the larval mortality was then estimated. Analyzed with a bit analysis program. 7.3Test method   Two zea maize homozygous crosses susceptible to Asian corn borers (B and C lines). Plant B was planted in pots (5 concentrations and And the C line was subjected to a leaf immersion test (100, 50, 25 pp). m for density and 4 for verification). Variety of 10-14 day old seedlings Immersed in VIP3A protein suspension at a concentration of 2. Per 5-10 larvae), used for feeding experiments. Seedlings in nylon mesh bags Cover and keep in nylon mesh case. Cut leaves into plastic blocks Four, four were used for this experiment, kept at a controlled room temperature. 7.4result Table 4 : Result of B system Table 5: Result of C system After 120 hours, the following LC50Got the value: B type: LC50= 29.558 ppm (range 21.298 to 41.022) C system: LC50= 78.498 ppm (range 53.644 to 114.866) Deposit North University strike, Peoria, Illinois, United States 61604 REIT 1815, Agricultural Research Services, Patent Cal Char Collection (NRRL), Northern Regional Research Center Deposit in. Stock name Deposit number Deposit date Bacillus ceresius AB78 NRRL B-21058 March 18, 1993 Escherichia coli pCIB4431 NRRL B-18998 November 21, 1992

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (81)指定国 EP(AT,BE,CH,DE, DK,ES,FI,FR,GB,GR,IE,IT,L U,MC,NL,PT,SE),OA(BF,BJ,CF ,CG,CI,CM,GA,GN,ML,MR,NE, SN,TD,TG),AP(GH,KE,LS,MW,S D,SZ,UG),EA(AM,AZ,BY,KG,KZ ,MD,RU,TJ,TM),AL,AM,AT,AU ,AZ,BA,BB,BG,BR,BY,CA,CH, CN,CU,CZ,DE,DK,EE,ES,FI,G B,GE,GH,HU,IL,IS,JP,KE,KG ,KP,KR,KZ,LC,LK,LR,LS,LT, LU,LV,MD,MG,MK,MN,MW,MX,N O,NZ,PL,PT,RO,RU,SD,SE,SG ,SI,SK,TJ,TM,TR,TT,UA,UG, US,UZ,VN,YU (72)発明者 ウィットデウィリヘン,ウィルヘルムス・ ペトルス・マリア ブラジル、コディゴ・デ・エンデレサメン ト・ポスタル―38401―097ミナス・ジェラ イス、ウベルランディア、ルア・ラファエ ル・リナルディ281番、アパルタメント 1700、エディフィシオ・サン・マルコ────────────────────────────────────────────────── ─── Continuation of front page    (81) Designated countries EP (AT, BE, CH, DE, DK, ES, FI, FR, GB, GR, IE, IT, L U, MC, NL, PT, SE), OA (BF, BJ, CF) , CG, CI, CM, GA, GN, ML, MR, NE, SN, TD, TG), AP (GH, KE, LS, MW, S D, SZ, UG), EA (AM, AZ, BY, KG, KZ , MD, RU, TJ, TM), AL, AM, AT, AU , AZ, BA, BB, BG, BR, BY, CA, CH, CN, CU, CZ, DE, DK, EE, ES, FI, G B, GE, GH, HU, IL, IS, JP, KE, KG , KP, KR, KZ, LC, LK, LR, LS, LT, LU, LV, MD, MG, MK, MN, MW, MX, N O, NZ, PL, PT, RO, RU, SD, SE, SG , SI, SK, TJ, TM, TR, TT, UA, UG, US, UZ, VN, YU (72) Inventors Whit de Willichen, Wilhelms             Petrus Maria             Brazil, Kodigo de Endere Samen             To Postal-38401-097 Minas Jella             Chair, Uberlandia, Rua Raphae             Le Rinaldi 281, apartment             1700, Edificio San Marco

Claims (1)

【特許請求の範囲】 1.直接または間接的に植物または植物種子もしくは植物の生育場所に、活性 成分としてバチルス種の毒素タンパク質を適用することを含む、オストリニア・ フルナカリス種によりもたらされる損傷に対して、植物(子孫を含む)を防護する 方法。 2.毒素タンパク質がバチルス・チューリンゲンシスの毒素タンパク質である 、請求項1記載の方法。 3.毒素タンパク質がバチルス・セレウスの毒素タンパク質である、請求項1 記載の方法。 4.毒素タンパク質がCry−タイプタンパク質、好ましくはCryI−タイプタン パク質、更に好ましくはCryIA−タイプタンパク質、および最も好ましくはCry IA(b)タンパク質である、請求項1記載の方法。 5.毒素タンパク質が配列番号53から55に記載のCryI−タイプタンパク 質である、請求項4記載の方法。 6.毒素タンパク質がVIP−タイプタンパク質、好ましくは、VIP1A(a)タン パク質またはVIPIA(b)タンパク質のようなVIP1−タイプタンパク質、または VIP2A(a)タンパク質またはVIP2A(b)タンパク質のようなVIP2−タイプタ ンパク質もしくはVIP1−タイプタンパク質とVIP2−タイプタンパク質の組み合 わせである、請求項1記載の方法。 7.毒素タンパク質がVIP3A(a)タンパク質またはVIP3A(b)タンパク質の ようなVIP3−タイプタンパク質である、請求項1記載の方法。 8.毒素タンパク質が配列番号1、2、4−7、17−24、26−32、3 5、36、39、40、42、43、45、46、49、50、51または52 に記載のVIP−タイプタンパク質である、請求項6または7に記載の方法。 9.毒素タンパク質を殺昆虫性組成物の形で植物に適用する、請求項1記載の 方法。 10.殺昆虫性組成物が微生物を含む、請求項9記載の方法。 11.毒素タンパク質がCryI−タイプタンパク質である、請求項1から9の いずれかに記載の方法。 12.殺昆虫性組成物が、少なくとも一つのCryI−タイプ毒素タンパク質ま たは、該毒素タンパク質をコードする少なくとも一つの遺伝子を有する微生物、 好ましくはバチルス・チューリンゲンシスおよび/またはバチルス・セレウス株 を、適当な担体と共に含むものである、請求項9記載の方法。 13.微生物が、毒素タンパク質をコードする少なくとも一つのcryI−タイ プ毒素遺伝子を含む天然に存在する生物である、請求項12記載の方法。 14.微生物が、少なくとも一つのcry−タイプ毒素遺伝子、好ましくはcryI −タイプ毒素遺伝子、より好ましくはcryIA−タイプ毒素遺伝子、および最も 好ましくはcryIA(b)毒素遺伝子を含む天然に存在する生物である、請求項1 0記載の方法。 15.微生物が毒素タンパク質をコードする組換え形の少なくとも一つのcry I−タイプ毒素遺伝子を含む組換え生物である、請求項12記載の方法。 16.微生物が、cry−タイプ毒素遺伝子、好ましくはcryI−タイプ毒素遺伝 子、より好ましくはcryIA−タイプ毒素遺伝子、および最も好ましくはcryIA (b)毒素遺伝子を含む組換え生物である、請求項10記載の方法。 17.殺昆虫性組成物が少なくとも一つのVIP−タイプ毒素タンパク質または 、毒素タンパク質をコードする少なくとも一つの遺伝子を有する微生物、好まし くはバチルス・スリンギエンシスおよび/またはバチルス・セレウス株を、適当 な担体と共に含むものである、請求項10記載の方法。 18.微生物がVIP−タイプタンパク質をコードする少なくとも一つの遺伝子 、好ましくは、VIP1A(a)タンパク質またはVIP1A(b)タンパク質遺伝子、ま たはVIP2A(a)タンパク質またはVIP2A(b)タンパク質遺伝子のようなVIP2 −タイプタンパク質遺伝子を有する天然に存在する生物である、請求項10記載 の方法。 19.微生物が少なくとも一つのVIP3A(a)タンパク質またはVIP3A(b)タ ンパク質遺伝子のようなVIP3−タイプタンパク質をコードする遺伝子を有する 天然に存在する生物である、請求項10記載の方法。 20.毒素タンパク質が配列番号1、2、4−7、17−24、26−32、 35、36、39、40、42、43、45、46、49、50、51または5 2に記載のVIP−タイプタンパク質である、請求項17−19のいずれかに記載 の方法。 21.毒素タンパク質が配列番号53−55に記載のCry−タイプタンパク質 である、請求項11−16のいずれかに記載の方法。 22.微生物が組換え生物である、請求項17−21のいずれかに記載の方法 。 23.植物をバチルス種の毒素タンパク質をコードする毒素遺伝子で形質転換 し、このように形質転換した植物を害虫が発生し得る領域に植えた場合に、毒素 タンパク質をオストリニア・フラカリス(アジア・コーン・ボーラー)種の駆除を するのに十分な量発現させることにより、毒素タンパク質を間接的に植物に適用 する、請求項1から22のいずれかに記載の方法。 24.毒素遺伝子がバチルス・チューリンゲンシスまたはバチルス・セレウス の毒素タンパク質をコードする、請求項23記載の方法。 25.毒素遺伝子がCry−タイプ毒素タンパク質、好ましくはCryI−タイプタ ンパク質、より好ましくはCryIA−タイプタンパク質、および最も好ましくは 配列番号53から55に記載のようなCryIA(b)タンパク質をコードする、請 求項23記載の方法。 26.毒素遺伝子がVIP−タイプ毒素タンパク質、好ましくはVIPIA(a)タン パク質またはVIP1A(b)タンパク質、またはVIP2A(a)タンパク質またはVIP 2A(b)タンパク質のようなVIP2−タイプタンパク質をコードする、請求項2 3記載の方法。 27.毒素遺伝子がVIP3A(a)タンパク質またはVIP2A(b)タンパク質のよ うなVIP3−タイプタンパク質をコードする、請求項23記載の方法。 28.毒素遺伝子が合成遺伝子であり、そのコドン使用性が植物に最も好まし いコドンを使用することにより最適化されてる、請求項23−27のいずれかに 記載の方法。 29.毒素遺伝子がCryI−タイプタンパク質をコードする、請求項23から 28のいずれかに記載の方法。 30.毒素遺伝子が、配列番号1、2、4−7、17−24、26−32、3 5、36、39、40、42、43、45、46、49、50、51または52 に記載のVIP−タイプタンパク質をコードする、請求項26または27に記載の 方法。 31.保護する植物が穀物である、請求項1から30のいずれかに記載の方法 。 32.保護する植物がトウモロコシ植物である、請求項31記載の方法。 33.Cry−タイプ毒素タンパク質を、直接または間接的に植物または植物種 子もしくは保護する植物の生育領域に、VIP−タイプ毒素タンパク質と組み合わ せて、アジア・コーン・ボーラー(オストリニア・フルナカリス)害虫を駆除する のに十分な量適用する、請求項1から32のいずれかに記載の方法。 34.活性成分がCry1A(b)タンパク質である、請求項1から32のいずれ かに記載の方法。 35.活性成分がVIP−タイプタンパク質である、請求項1から32のいずれ かに記載の方法。 36.穀物のオストリニア・フルナカリス(アジア・コーン・ボーラー)害虫の 駆除のための、請求項1から35のいずれかに記載の活性成分の使用。 37.穀物のオストリニア・フルナカリス(アジア・コーン・ボーラー)害虫の 駆除のための、請求項23記載のトランスジェニック植物の使用。 38.穀物のオストリニア・フルナカリス(アジア・コーン・ボーラー)害虫の 駆除のための、各毒素タンパク質をコードするcry−タイプまたはVIP−タイプ遺 伝子と、中位のストリンジェントな条件下でハイブリダイズするDNA分子を含 む、請求項23から30のいずれかに記載の組換え微生物またはトランスジェニ ック植物の使用。 39.バチルス・スリンギエンシスの毒素タンパク質をコードし、穀物のオス トリニア・フルナカリス(アジア・コーン・ボーラー)種の駆除に十分な量の毒素 タンパク質を発現する毒素遺伝子を含む種子を含み、穀物のオストリニア・フル ナカリス(アジア・コーン・ボーラー)害虫の駆除のためのその使用の指示のラベ ルの付いた、商品袋。 40.トランスジェニック植物の種子または、請求項1から30、32および 33のいずれかで定義の毒素タンパク質をコードする少なくとも一つの毒素遺伝 子を含み、オストリニア・フルナカリス(アジア・コーン・ボーラー)の駆除に十 分な量の毒素タンパク質を発現する微生物であるが、特にバチルス・チューリン ゲンシスおよび/またはバチルス・セレウス株を含み、穀物のオストリニア・フ ルナカリス(アジア・コーン・ボーラー)害虫の駆除のためのその使用の指示のラ ベルの付いた、商品袋。 41.請求項23から32のいずれかに定義のように、バチルス種の毒素タン パク質をコードする毒素遺伝子を含み、穀物のオストリニア・フルナカリス(ア ジア・コーン・ボーラー)種の駆除のために十分な量の毒素タンパク質を発現す るトランスジェニック植物またはその子孫、またはそのトランスジェニック種子 を使用する、農学的方法。 42.セサミア害虫の駆除を提供するのに十分な量、少なくとも一つのCry− タイプ毒素タンパク質を、VIP−タイプ毒素タンパク質と組み合わせて保護する 植物に発現する、請求項18から26のいずれかに記載の方法。 43.活性成分として少なくとも一つのCry−タイプ毒素タンパク質およびVIP −タイプタンパク質を、農学的に許容される担体と共に殺虫的に有効な量含む、 組成物。[Claims]   1. Active directly or indirectly on plants or plant seeds or plant habitats Ostrinia, including applying a Bacillus species toxin protein as an ingredient Protect plants (including progeny) against damage caused by flunacharis species Method.   2. Toxin protein is Bacillus thuringiensis toxin protein The method of claim 1.   3. The toxin protein is a Bacillus cereus toxin protein. The described method.   4. The toxin protein is a Cry-type protein, preferably a CryI-type protein; Protein, more preferably CryIA-type protein, and most preferably CryIA 2. The method according to claim 1, which is an IA (b) protein.   5. The toxin protein is a CryI-type protein according to SEQ ID NOS: 53 to 55. 5. The method of claim 4, wherein the method is quality.   6. The toxin protein is a VIP-type protein, preferably VIP1A (a) protein. VIP1-type proteins such as protein or VIPIA (b) protein, or VIP2-typeta such as VIP2A (a) protein or VIP2A (b) protein Combination of protein or VIP1-type protein and VIP2-type protein The method of claim 1, wherein   7. The toxin protein is a VIP3A (a) protein or a VIP3A (b) protein 2. The method of claim 1, wherein said VIP3-type protein.   8. The toxin protein is SEQ ID NO: 1, 2, 4-7, 17-24, 26-32, 3 5, 36, 39, 40, 42, 43, 45, 46, 49, 50, 51 or 52 The method according to claim 6 or 7, which is the VIP-type protein according to (1).   9. 2. The method of claim 1, wherein the toxin protein is applied to the plant in the form of an insecticidal composition. Method.   10. 10. The method of claim 9, wherein the insecticidal composition comprises a microorganism.   11. 10. The method of claim 1, wherein the toxin protein is a CryI-type protein. The method according to any of the above.   12. The insecticidal composition comprises at least one CryI-type toxin protein or A microorganism having at least one gene encoding the toxin protein, Preferably Bacillus thuringiensis and / or Bacillus cereus strains 10. A method according to claim 9, wherein the method comprises a suitable carrier.   13. The microorganism comprises at least one cryI-type encoding a toxin protein 13. The method of claim 12, which is a naturally occurring organism containing a putoxin gene.   14. The microorganism comprises at least one cry-type toxin gene, preferably cryI -Type toxin gene, more preferably cryIA-type toxin gene, and most 2. A naturally occurring organism, preferably comprising a cryIA (b) toxin gene. 0. The method of claim 0.   15. The microorganism has at least one cry recombinant form encoding a toxin protein 13. The method of claim 12, which is a recombinant organism containing an I-type toxin gene.   16. The microorganism is a cry-type toxin gene, preferably a cryI-type toxin gene. Offspring, more preferably the cryIA-type toxin gene, and most preferably cryIA (b) The method according to claim 10, which is a recombinant organism containing a toxin gene.   17. The insecticidal composition comprises at least one VIP-type toxin protein or A microorganism having at least one gene encoding a toxin protein, preferred Or Bacillus thuringiensis and / or Bacillus cereus strain The method according to claim 10, wherein the method is included together with a suitable carrier.   18. The microorganism has at least one gene encoding a VIP-type protein Preferably, the VIP1A (a) protein or VIP1A (b) protein gene, or Or VIP2 such as VIP2A (a) protein or VIP2A (b) protein gene 11. A naturally occurring organism having a -type protein gene. the method of.   19. The microorganism comprises at least one VIP3A (a) protein or VIP3A (b) protein; Has genes encoding VIP3-type proteins such as protein genes 11. The method of claim 10, wherein the organism is a naturally occurring organism.   20. The toxin protein is SEQ ID NO: 1, 2, 4-7, 17-24, 26-32, 35, 36, 39, 40, 42, 43, 45, 46, 49, 50, 51 or 5 20. The VIP-type protein according to claim 2, wherein the protein is a VIP-type protein. the method of.   21. The toxin protein is a Cry-type protein according to SEQ ID NOS: 53-55. 17. The method according to any of claims 11-16, wherein   22. The method according to any of claims 17-21, wherein the microorganism is a recombinant organism. .   23. Transform plants with a toxin gene encoding a Bacillus toxin protein When plants transformed in this way are planted in areas where pests can occur, Eliminate protein from Ostrinia flakalis (Asia corn borer) species Indirectly apply toxin proteins to plants by expressing them in sufficient amounts to A method according to any of the preceding claims.   24. Bacillus thuringiensis or Bacillus cereus 24. The method of claim 23, which encodes a toxin protein of the formula:   25. The toxin gene is a Cry-type toxin protein, preferably CryI-type Proteins, more preferably CryIA-type proteins, and most preferably A coding sequence encoding a CryIA (b) protein as set forth in SEQ ID NOs: 53-55. 24. The method of claim 23.   26. The toxin gene is VIP-type toxin protein, preferably VIPIA (a) protein; Protein or VIP1A (b) protein, or VIP2A (a) protein or VIP 3. Encoding a VIP2-type protein, such as the 2A (b) protein. 3. The method according to 3.   27. The toxin gene is different from the VIP3A (a) protein or VIP2A (b) protein. 24. The method of claim 23, which encodes such a VIP3-type protein.   28. The toxin gene is a synthetic gene and its codon usage is most preferred by plants. 28. The method according to any of claims 23 to 27, wherein the codons have been optimized by using different codons. The described method.   29. 24. From claim 23, wherein the toxin gene encodes a CryI-type protein. 29. The method according to any of 28.   30. The toxin gene is SEQ ID NO: 1, 2, 4-7, 17-24, 26-32, 3 5, 36, 39, 40, 42, 43, 45, 46, 49, 50, 51 or 52 The method according to claim 26 or 27, which encodes the VIP-type protein according to claim 26. Method.   31. 31. The method according to any of the preceding claims, wherein the plant to be protected is a grain. .   32. 32. The method according to claim 31, wherein the plant to be protected is a corn plant.   33. Cry-type toxin proteins can be directly or indirectly Combined with VIP-type toxin protein in growing areas of offspring or protected plants To control the Asian corn borer (Ostrina flunakaris) pests 33. A method according to any of the preceding claims, wherein the method applies an amount sufficient to:   34. 33. Any of claims 1 to 32 wherein the active ingredient is a Cry1A (b) protein. The method described in Crab.   35. 33. Any of claims 1-32, wherein the active ingredient is a VIP-type protein. The method described in Crab.   36. Ostrinia flunacharis (Asia corn borer) pest Use of an active ingredient according to any of claims 1 to 35 for controlling.   37. Ostrinia flunacharis (Asia corn borer) pest Use of the transgenic plant according to claim 23 for controlling.   38. Ostrinia flunacharis (Asia corn borer) pest Cry-type or VIP-type encoding each toxin protein for control Gene and DNA molecules that hybridize under moderately stringent conditions. 31. The recombinant microorganism or transgenic microorganism according to claim 23. Use of check plants.   39. It encodes a Bacillus thuringiensis toxin protein and is A sufficient amount of toxin to control Trinia flunakaris (Asia corn borer) Ostrine full of cereals, including seeds containing toxin genes that express proteins Label of instructions for its use for control of Nakaris (Asia corn borer) pests Product bag with   40. Seeds of a transgenic plant, or from claims 1 to 30, 32 and At least one toxin gene encoding a toxin protein as defined in any of 33. Ostrich flonacaris (Asia corn borer) Microorganisms that express small amounts of toxin proteins, especially Bacillus thuring Ostrich strains, including gensis and / or Bacillus cereus strains Lunakaris (Asia corn borer) instructions for its use for controlling pests Product bag with bell.   41. Bacillus toxin tan as defined in any of claims 23 to 32. It contains the toxin gene that encodes protein and contains (Dia corn borer) expresses sufficient amounts of toxin protein to control species Transgenic plant or progeny thereof, or transgenic seed thereof Use an agricultural method.   42. An amount sufficient to provide control of the sesame pest, at least one Cry- Protects type toxin proteins in combination with VIP-type toxin proteins The method according to any one of claims 18 to 26, wherein the method is expressed in a plant.   43. At least one Cry-type toxin protein and VIP as active ingredients -Comprising a pesticidally effective amount of a type protein together with an agriculturally acceptable carrier; Composition.
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