JP2000236875A - Malathion haptenic compound, antibody and measurement - Google Patents

Malathion haptenic compound, antibody and measurement

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JP2000236875A JP11044450A JP4445099A JP2000236875A JP 2000236875 A JP2000236875 A JP 2000236875A JP 11044450 A JP11044450 A JP 11044450A JP 4445099 A JP4445099 A JP 4445099A JP 2000236875 A JP2000236875 A JP 2000236875A
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malathion
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充康 川田
Kosuke Morimune
孝介 森宗
Shiyunichi Takewaki
俊一 竹脇
Shiro Miyake
司郎 三宅
Masaki Yamaguchi
優樹 山口
Katsuya Oide
勝也 大出
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Kankyo Meneki Gijutsu Kenkyusho KK
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Abstract

PROBLEM TO BE SOLVED: To obtain a new malathion haptenic compound which consists of a malathion haptenic compound having a specific structure and is useful in the production of an antibody for measuring the residual amount of malathion of a dithio type low toxic oroganophosphorus insecticide by the immunological measurement method. SOLUTION: This malathion haptenic compound is a new haptenic compound of malathion [S-1,2-bis(ethoxycarbonyl)ethyl O,O-dimethylphosphorodithioate] having the structure represented by formula I [X is NH or S; Z is NH or O; (k) is 0 or 1; (m) is an integer of 0-2; (n) is an integer of 1-20] and is useful as an antigen, or the like, for producing an antibody used in the immunological measurement, or the like, of the residual agrochemical concentration of malathion of a dithio type low toxic organophosphorus insecticide. This compound is obtained by reacting methanol with diphosphorus pentasulfide in an organic solvent followed by reacting a compound of formula II (L is a halogen) in the presence of a base to form the compound of formula III, reacting this product with a compound of formula IV (P is a protective group of carboxylic groups) in the presence of a lithium compound and then eliminating the protective group.

Description

【発明の詳細な説明】DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION

【0001】[0001]

【発明の属する技術分野】本発明は、S−1,2−ビス
(エトキシカルボニル)エチル O,O−ジメチルホス
ホロジチオアート(以下、本明細書中「マラチオン」と
言う)のハプテン化合物、抗原、抗体及びそのフラグメ
ントに関する。
The present invention relates to a hapten compound of S-1,2-bis (ethoxycarbonyl) ethyl O, O-dimethylphosphorodithioate (hereinafter referred to as "malathion" in the present specification) and an antigen. , Antibodies and fragments thereof.

【0002】本発明はさらに、前記抗原、抗体及びその
フラグメントを用いた免疫学的測定方法に関する。
[0002] The present invention further relates to an immunological assay method using the antigen, antibody and fragment thereof.

【0003】[0003]

【従来の技術】マラチオンは、以下の式(2):2. Description of the Related Art Malathion has the following formula (2):

【0004】[0004]

【化3】 Embedded image

【0005】で表される構造を有する、ジチオ型の低毒
性有機リン系殺虫剤である。ウンカ・ヨコバイ類、アブ
ラムシ、スリップス、アザミウマなどの吸汁性害虫に効
力を示す。本剤の殺虫機構の主体はパラチオン剤、EP
N剤などと同様にコリンエステラーゼの阻害にある。殺
虫力はそれらよりも一般に弱いが、虫の種類によっては
強く、選択的であり、速効的である。浸透移行性はかな
りあるが、植物体組織中で分解されやすく、また、植物
体表面からの揮散や分解によっても失われるので残効期
間は短いと考えられる。そのため果樹や野菜に対して収
穫の数日前まで使用できるが、発生期間の長い害虫や世
代の短い害虫には反覆して使用しないと効果が少ない。
土壌害虫や潜食性害虫にも効果は少ない。薬害として
は、特にウリ類、トマト類の苗はマラチオン剤に対して
感受性が高いので注意する必要がある(農薬ハンドブッ
ク 第28頁−第32頁及び第514頁、1994年
版、日本植物防疫協会;「最新農薬の残留分析法」 第
384頁−第386頁、農薬残留分析法研究班編集 中
央法規出版)。
A dithio-type low-toxic organophosphorus insecticide having a structure represented by the following formula: It is effective against sucking pests such as planthoppers, leafhoppers, aphids, thrips, and thrips. The main insecticidal mechanism of this drug is parathion, EP
It is in the inhibition of cholinesterase in the same way as the N agent. Insecticidal activity is generally weaker than them, but it is strong, selective and fast-acting depending on the type of insect. Although there is considerable osmotic migration, it is considered that the residual effect period is short because it is easily degraded in plant tissues and is also lost by volatilization and decomposition from the plant surface. Therefore, it can be used for fruit trees and vegetables up to several days before harvesting, but it is less effective unless used repeatedly for pests with a long outbreak or short generation.
It has little effect on soil pests and larvae. As for the chemical damage, it is necessary to pay particular attention to the seedlings of cucurbits and tomatoes because they are highly sensitive to malathion agents (Agrochemical Handbook pages 28-32 and 514, 1994 edition, Japan Plant Protection Association; "Recent Analytical Methods for the Latest Pesticides", pp. 384-386, edited by the Research Group for Pesticide Residue Analytical Methods, published by Chuo Hoshin).

【0006】近年、土壌、水、大気等の環境中での残留
農薬や、最近特に増加してきた輸入農産物のポストハー
ベスト農薬等の残留に大きな社会的関心が寄せられてい
る。マラチオンについては、食品衛生法に基づき残留基
準値が、米(0.1ppm)、穀類(2−8ppm)、
豆類、果実、野菜(0.5−8ppm)、小麦粉(1.
2ppm)、オイルシード(0.1−8ppm)、ナッ
ツ類(8ppm)、ホップ(1ppm)等定められてい
る(「最新農薬の残留分析法」 同上)。さらに、水質
に関しても、水質汚濁に係る登録保留基準値が0.1m
g/lと定められている(改訂3版 農薬登録保留基準
ハンドブック 第874頁−第876頁1998年9月
25日 化学工業日報社)よって、環境や食品に関する
安全確保のためには、これらに含有される、マラチオン
の量を迅速かつ正確に測定することが必要である。
[0006] In recent years, there has been a great social interest in pesticide residues in environments such as soil, water, and the atmosphere, and in residues of post-harvest pesticides in imported agricultural products, which have recently increased in particular. Regarding malathion, based on the Food Sanitation Law, the residual standard value is rice (0.1 ppm), cereals (2-8 ppm),
Beans, fruits, vegetables (0.5-8 ppm), flour (1.
2 ppm), oil seeds (0.1-8 ppm), nuts (8 ppm), hops (1 ppm), etc. ("Recent Analytical Methods for Pesticides" Same as above). Regarding water quality, the standard value for registration suspension for water pollution is 0.1 m.
g / l (Revised 3rd edition Agricultural Chemical Registration Suspension Standard Handbook pp. 874-876, September 25, 1998 Chemical Daily, Inc.) It is necessary to quickly and accurately determine the amount of malathion contained.

【0007】従来、例えば農作物中のマラチオンは、穀
類、豆類、種実類、ホップ、果実、野菜等の試料から抽
出し、精製した後、ガスクロマトグラフィー(GC)に
より分析されてきた。即ち、例えば試料をアセトンで抽
出し、ヘキサンに転溶し、必要によりヘキサン−アセト
ニトリル分配し、フロリジルカラムクロマトグラフィー
で精製後、GCで測定する方法等が採用されている。こ
れらの方法は、試料の調製が煩雑で多大の手順と時間を
必要とし、分析に熟練を要すること、並びに、測定装置
や設備等に高額の費用を必要とする等の問題点がある。
マラチオンの測定は短時間で膨大な数の試料の分析結果
を出す必要があり、精度面だけでなく、簡便性、迅速性
及び経済性をも具備した新規測定方法が要求されてきて
いる。
Conventionally, for example, malathion in agricultural crops has been extracted from samples of cereals, beans, seeds, seeds, hops, fruits, vegetables, etc., purified, and then analyzed by gas chromatography (GC). That is, for example, a method of extracting a sample with acetone, dissolving the sample in hexane, partitioning with hexane-acetonitrile as necessary, purifying by florisil column chromatography, and measuring by GC is adopted. These methods have problems in that the preparation of the sample is complicated, requires a large amount of procedures and time, requires a high level of skill in the analysis, and requires high costs for measuring devices and equipment.
In the measurement of malathion, it is necessary to obtain an analysis result of an enormous number of samples in a short time, and a new measurement method which is not only accurate but also simple, quick and economical has been demanded.

【0008】免疫学的測定方法は、抗体が抗原を特異的
に認識する抗原抗体反応に基づいて抗原や抗体の検出を
行う方法であり、その優れた精度、簡便性、迅速性、経
済性から近年注目を集めてきている。免疫学的測定方法
においては検出方法として非常に多種の標識、例えば、
酵素、放射性トレーサー、化学発光あるいは蛍光物質、
金属原子、ゾル、ラテックス及びバクテリオファージが
適用されてきた。
[0008] The immunological measurement method is a method for detecting an antigen or an antibody based on an antigen-antibody reaction in which the antibody specifically recognizes the antigen. Due to its excellent accuracy, simplicity, rapidity, and economy, In recent years, it has been attracting attention. In an immunoassay, a very wide variety of labels can be used as a detection method, for example,
Enzymes, radiotracers, chemiluminescent or fluorescent substances,
Metal atoms, sols, latexes and bacteriophages have been applied.

【0009】免疫学的測定方法の中でも、酵素を使用す
る酵素免疫測定法(EIA)は経済性・利便性から特に
優れたものとして広く使用されるに至っている。酵素免
疫測定法についての優れた論評が、Tijssen
P,“Practice and theory of
enzyme immunoassays” inL
aboratory techniques in b
iochemistry and molecular
biology, Elsevier Amster
dam New York, Oxford ISBN
0−7204−4200−1 (1990) に記載
されている。
[0009] Among the immunoassays, enzyme immunoassay (EIA) using an enzyme has been widely used as being particularly excellent in terms of economy and convenience. An excellent review of enzyme immunoassays can be found in Tijssen
P, "Practice and theory of
Enzyme immunoassays ”inL
laboratory technologies in b
iochemistry and molecular
biology, Elsevier Amster
dam New York, Oxford ISBN
0-7204-4200-1 (1990).

【0010】一般に、分子量が大きな分子については、
それ以上修飾することなく動物に接種することにより、
適当な免疫反応を惹起し、抗原を認識する抗体を産生さ
せることができる。しかし、マラチオンのような低分子
化合物は通常動物に接種したとき免疫応答を引き出すこ
とができない。これらの分子は免疫原性を有する高分子
化合物に結合させることによって初めて一団のエピトー
プとして行動し、T細胞受容体の存在下で免疫応答を起
こし、その結果、一群のBリンパ球により抗体が産生さ
れる。このように高分子化合物と結合させて初めて免疫
原性を生じる分子を総称して「ハプテン」と言う。
Generally, for a molecule having a large molecular weight,
By inoculating animals without further modification,
An appropriate immune response can be elicited to produce an antibody that recognizes the antigen. However, small molecule compounds such as malathion usually cannot elicit an immune response when inoculated into animals. For the first time, these molecules act as a panel of epitopes by binding to immunogenic macromolecules and elicit an immune response in the presence of the T cell receptor, resulting in the production of antibodies by a group of B lymphocytes. Is done. Molecules that produce immunogenicity only when bound to a polymer compound in this way are collectively referred to as “haptens”.

【0011】しかし、低分子化合物を高分子化合物と結
合させたものを抗原としても、得られた抗体は望む分子
を認識しないか、あるいはごく低い親和性しかもたない
場合がしばしばある。そのため、一般に低分子化合物そ
のものではなく、結合に利用できる官能基と共にスペー
サーアーム(結合手)を導入したものをハプテンとして
使用する必要がある。しかしその場合に、結合手/官能
基の配置、結合手の大きさ等の全ての問題を考慮して導
入が適切に行われたものを使用しないと、好ましい抗体
は得られない。適切な導入は個々の分子に応じて工夫し
なければならない。
However, even when a low molecular compound is combined with a high molecular compound as an antigen, the resulting antibody often does not recognize the desired molecule or has only a very low affinity. Therefore, it is generally necessary to use not a low molecular compound itself but a hapten into which a spacer arm (bond) is introduced together with a functional group available for bonding. However, in such a case, a preferable antibody cannot be obtained unless one having been appropriately introduced in consideration of all problems such as the arrangement of the bond / functional group and the size of the bond is used. Proper introduction must be devised for each molecule.

【0012】このように、マラチオンについては、その
必要性が非常に高かったにもかかわらず、適切な抗体は
もとより、そのような抗体を作製するためのハプテンも
本発明前には得られていなかった。
As described above, although malathion was very highly required, a hapten for producing such an antibody as well as a suitable antibody had not been obtained before the present invention. Was.

【0013】[0013]

【発明が解決しようとする課題】本発明は、マラチオン
に反応する新規な抗体もしくはそのフラグメント、及び
その作製方法を提供することを目的とする。尚、本明細
書において抗体の「フラグメント」とは、抗原と結合可
能な抗体の一部分、例えばFab断片等を意味する。
An object of the present invention is to provide a novel antibody or a fragment thereof which reacts with malathion, and a method for producing the same. As used herein, the term “fragment” of an antibody means a part of an antibody capable of binding to an antigen, for example, a Fab fragment or the like.

【0014】本発明はその一態様において、マラチオン
に反応性を有するモノクローナル抗体を提供する。
[0014] In one aspect, the present invention provides a monoclonal antibody reactive to malathion.

【0015】本発明は、また、マラチオンに反応性を有
する新規な抗体を作製するための抗原を構成するハプテ
ン化合物を提供することを目的とする。
Another object of the present invention is to provide a hapten compound constituting an antigen for preparing a novel antibody reactive to malathion.

【0016】本発明は、さらに、マラチオンハプテンと
高分子化合物との結合体を提供することを目的とする。
Another object of the present invention is to provide a conjugate of a malathion hapten and a polymer compound.

【0017】本発明は、さらにまた、前記抗体又はその
フラグメントを産生するハイブリドーマを提供すること
を目的とする。
[0017] It is still another object of the present invention to provide a hybridoma that produces the antibody or a fragment thereof.

【0018】本発明は、さらに、前記抗体もしくはその
フラグメント及び/又は前記マラチオンハプテンと高分
子化合物との結合体を使用することを含む、マラチオン
の免疫学的測定方法を提供することを目的とする。
Another object of the present invention is to provide a method for immunologically measuring malathion, which comprises using a conjugate of the antibody or its fragment and / or the malathion hapten with a polymer compound. .

【0019】[0019]

【課題を解決するための手段】本発明者らは、鋭意研究
を重ねた結果、マラチオン又はその部分にスペーサーア
ーム及び高分子化合物との結合に利用できる官能基を導
入したマラチオンハプテンを使用することにより、前記
化合物に反応性を有する抗体を得ることに成功し、本発
明の完成に至った。
Means for Solving the Problems As a result of intensive studies, the present inventors have used malathion haptens in which a functional group which can be used for bonding to a spacer arm and a polymer compound is introduced into malathion or a portion thereof. As a result, an antibody reactive with the compound was successfully obtained, and the present invention was completed.

【0020】本発明の対象となるマラチオンは、以下の
式(2):
The malathion which is an object of the present invention is represented by the following formula (2):

【0021】[0021]

【化4】 Embedded image

【0022】で表される化合物である。本発明におい
て、化合物の立体異性体は特に限定されず、全ての立体
異性体を含む。
Is a compound represented by the formula: In the present invention, the stereoisomers of the compound are not particularly limited, and include all stereoisomers.

【0023】本発明の抗体は、例えば、マラチオンにス
ペーサーアーム及び結合に利用できる官能基を導入した
化合物をハプテンとして適当な高分子化合物と結合させ
たものを抗原として用いることによって得ることができ
る。例えば、以下の式(1):
The antibody of the present invention can be obtained, for example, by using malathion obtained by introducing a compound obtained by introducing a spacer arm and a functional group available for binding as a hapten with a suitable polymer compound as an antigen. For example, the following equation (1):

【0024】[0024]

【化5】 Embedded image

【0025】[式(1)中、Xは、NH又はSであり;
Zは、NH又はOであり;kは0又は1であり;mは0
ないし2の整数であり;そしてnは1ないし20の整数
である]で表される構造を有する化合物を、抗体作製の
ためのハプテンとして使用する。
[In the formula (1), X is NH or S;
Z is NH or O; k is 0 or 1; m is 0
And n is an integer of 1 to 20], is used as a hapten for the production of an antibody.

【0026】好ましくは、kは0である。好ましくは、
mが2である。好ましくは、nが5ないし10の整数で
ある。
Preferably, k is 0. Preferably,
m is 2. Preferably, n is an integer from 5 to 10.

【0027】より好ましくは、XがNHであり、kが0
であり、mが2であり、そしてnが5である。
More preferably, X is NH and k is 0
Where m is 2 and n is 5.

【0028】本発明は、前記ハプテン化合物、ハプテン
化合物と高分子化合物との結合体、マラチオンに反応す
る抗体及びその作製方法、並びに該ハプテン化合物又は
該抗体を用いるマラチオンの免疫学的測定方法に関す
る。マラチオンハプテンの作製 式(1)で表されるマラチオンハプテンは、公知の方法
に従って製造することができる。限定するわけではない
が、例えば以下のような方法を用いることができる。I.X=Sの場合 i)k=0かつZ=NHの場合 先ず、五硫化二リンに有機溶媒中、メタノールを反応さ
せる。反応は、0℃から溶媒の沸点、好ましくは40℃
から70℃で、1時間から24時間、好ましくは2時間
から5時間、撹拌しながら行う。
The present invention relates to the hapten compound, a conjugate of the hapten compound and a polymer compound, an antibody reacting with malathion, a method for producing the same, and a method for immunologically measuring malathion using the hapten compound or the antibody. Malathion hapten The malathion hapten represented by the formula (1) can be produced according to a known method. Although not limited, for example, the following method can be used. I. When X = S i) When k = 0 and Z = NH First, methanol is reacted with diphosphorus pentasulfide in an organic solvent. The reaction is carried out at 0 ° C. to the boiling point of the solvent, preferably at 40 ° C.
To 70 ° C. for 1 to 24 hours, preferably 2 to 5 hours, with stirring.

【0029】有機溶媒としては、例えば、トルエン、ア
セトニトリル、アセトン、ヘキサン、ペンタン、ベンゼ
ン、ジクロロメタン、クロロホルム、1,2−ジクロロ
エタン、酢酸エチル、ジグリム、N,N−ジメチルホル
ムアミド、ヘキサメチルリン酸トリアミド等、又はこれ
らの混合溶媒を用いることができる。
Examples of the organic solvent include toluene, acetonitrile, acetone, hexane, pentane, benzene, dichloromethane, chloroform, 1,2-dichloroethane, ethyl acetate, diglyme, N, N-dimethylformamide, hexamethylphosphoric triamide and the like. Or a mixed solvent thereof can be used.

【0030】次いで、塩基を加え、さらに、以下の式
(Y1):
Next, a base is added, and further, the following formula (Y1):

【0031】[0031]

【化6】 Embedded image

【0032】[式(Y1)中、LはF、Cl、Br又は
Iから選択されるハロゲン原子である]で表される構造
を有するエステル化合物を反応させて、以下の式(Y
2):
In the formula (Y1), L is a halogen atom selected from F, Cl, Br or I, and is reacted with an ester compound having a structure represented by the following formula (Y
2):

【0033】[0033]

【化7】 Embedded image

【0034】で表される構造を有する化合物を得る。塩
基としては、例えば、炭酸カリウム、炭酸ナトリウム、
炭酸リチウム、炭酸水素カリウム、炭酸水素ナトリウ
ム、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム、ナトリウムメ
チラート、ナトリウムエチラート、トリエチルアミン、
N,N−ジメチルアニリン、リチウムジイソプロピルア
ミド等を用いることができる。
A compound having a structure represented by the following formula is obtained. As the base, for example, potassium carbonate, sodium carbonate,
Lithium carbonate, potassium bicarbonate, sodium bicarbonate, sodium hydroxide, potassium hydroxide, sodium methylate, sodium ethylate, triethylamine,
N, N-dimethylaniline, lithium diisopropylamide, and the like can be used.

【0035】反応は、0℃から溶媒の沸点、好ましくは
40℃から70℃で、1時間から24時間、好ましくは
1時間から3時間行う。
The reaction is carried out at 0 ° C. to the boiling point of the solvent, preferably at 40 ° C. to 70 ° C., for 1 hour to 24 hours, preferably for 1 hour to 3 hours.

【0036】次いで、リチウムビス(トリメチルシリ
ル)アミド、リチウムジイソプロピルアミド等の存在
下、有機溶媒中、式(Y2)の化合物を以下の式(Y
3):
Next, the compound of the formula (Y2) is converted to a compound of the following formula (Y) in an organic solvent in the presence of lithium bis (trimethylsilyl) amide, lithium diisopropylamide or the like.
3):

【0037】[0037]

【化8】 Embedded image

【0038】[式(Y3)中、Pはカルボキシル基の保
護基であり;そしてL及びmは、先に定義した通りであ
る]で表される構造を有するエステル化合物を反応させ
て、以下の式(Y4):
Wherein, in the formula (Y3), P is a protecting group for a carboxyl group; and L and m are as defined above, by reacting an ester compound having a structure represented by the following formula: Formula (Y4):

【0039】[0039]

【化9】 Embedded image

【0040】[式(Y4)中、P及びmは先に定義した
通りである]で表される構造式を有する化合物を得る。
A compound having a structural formula represented by the following formula (Y4), wherein P and m are as defined above, is obtained.

【0041】有機溶媒としては、テトラヒドロフラン
(THF)、ジオキサン、ジエチルエーテル、ジメトキ
シエタン等を用いることができる。
As the organic solvent, tetrahydrofuran (THF), dioxane, diethyl ether, dimethoxyethane and the like can be used.

【0042】Pで表されるカルボキシル基の保護基は公
知のものでよく、具体例として例えばメチル基、エチル
基、tert−ブチル基、ベンジル基、p−メトキシベ
ンジル基、3,4−ジメトキシベンジル基、トリクロロ
エチル基、トリメチルシリル基、tert−ブチルジメ
チルシリル基、tert−ブチルジフェニルシリル基、
トリエチルシリル基、トリイソプロピルシリル基、トリ
メチルシリルエトキシメチル基等が挙げられる。但し、
後述する加水分解による除去工程においてエチル基より
もカルボキシル基から遊離しやすいものがよく、例え
ば、t−ブチル基、p−メトキシベンジル基、3,4−
ジメトキシベンジル基等が好ましい。
The protecting group for the carboxyl group represented by P may be a known group, and specific examples include a methyl group, an ethyl group, a tert-butyl group, a benzyl group, a p-methoxybenzyl group and a 3,4-dimethoxybenzyl group. Group, trichloroethyl group, trimethylsilyl group, tert-butyldimethylsilyl group, tert-butyldiphenylsilyl group,
Examples include a triethylsilyl group, a triisopropylsilyl group, a trimethylsilylethoxymethyl group, and the like. However,
Those which are more easily released from the carboxyl group than the ethyl group in the removal step by hydrolysis described below are preferable. For example, t-butyl group, p-methoxybenzyl group, 3,4-
A dimethoxybenzyl group is preferred.

【0043】反応は、マイナス100℃から溶媒の沸
点、好ましくはマイナス80℃から30℃で、1時間か
ら20時間、好ましくは1時間から3時間行う。
The reaction is carried out at a temperature of −100 ° C. to the boiling point of the solvent, preferably at −80 ° C. to 30 ° C., for 1 hour to 20 hours, preferably 1 hour to 3 hours.

【0044】次いで、式(Y4)の化合物からPで表さ
れるカルボキシル基の保護基を除去することにより、以
下の式(Y5):
Next, the protecting group of the carboxyl group represented by P is removed from the compound of the formula (Y4) to give the following formula (Y5):

【0045】[0045]

【化10】 Embedded image

【0046】[式(Y5)中、mは先に定義した通りで
ある]で表される構造を有する化合物を得る。
In the formula (Y5), m is as defined above to obtain a compound having a structure represented by the following formula:

【0047】保護基の除去は、アルカリ加水分解、酸加
水分解等の公知の方法で行うことができる。
The removal of the protecting group can be carried out by a known method such as alkali hydrolysis and acid hydrolysis.

【0048】すなわち、酸加水分解の場合は、式(Y
4)の化合物を、好ましくは酢酸、蟻酸、ベンゼン、ジ
クロロメタン、1,2−ジクロロエタン等の有機溶媒に
溶解し、次いで塩酸、硫酸、三フッ化ホウ素ジエチルエ
ーテル錯体、トリフルオロ酢酸、トリフルオロメタンス
ルホン酸、p−トルエンスルホン酸等を加えて、0℃か
ら溶媒の沸点、好ましくは0℃から50℃で、5分から
10時間、好ましくは1時間から5時間撹拌反応させる
ことにより式(Y5)の化合物を得ることができる。
That is, in the case of acid hydrolysis, the formula (Y
The compound of 4) is preferably dissolved in an organic solvent such as acetic acid, formic acid, benzene, dichloromethane, 1,2-dichloroethane and the like, and then hydrochloric acid, sulfuric acid, boron trifluoride diethyl ether complex, trifluoroacetic acid, trifluoromethanesulfonic acid , P-toluenesulfonic acid and the like, and the mixture is stirred at 0 ° C. to the boiling point of the solvent, preferably at 0 ° C. to 50 ° C. for 5 minutes to 10 hours, preferably 1 hour to 5 hours to give a compound of the formula (Y5) Can be obtained.

【0049】また、アルカリ加水分解の場合は、式(Y
4)の化合物を、好ましくはメタノール、エタノール、
THF、エチレングリコール等の有機溶媒に溶解し、次
いで炭酸水素ナトリウム、炭酸ナトリウム、炭酸カリウ
ム、水酸化リチウム、水酸化ナトリウム又は水酸化カリ
ウム水溶液等を加えて、0℃から溶媒の沸点、好ましく
は0℃から室温で、5分から10時間、好ましくは1時
間から2時間撹拌反応させることにより式(Y5)の化
合物を得ることができる。
In the case of alkali hydrolysis, the formula (Y
The compound of 4) is preferably methanol, ethanol,
Dissolve in an organic solvent such as THF and ethylene glycol, and then add sodium hydrogencarbonate, sodium carbonate, potassium carbonate, lithium hydroxide, sodium hydroxide or potassium hydroxide aqueous solution, etc., and bring the solvent to a boiling point of 0 ° C, preferably 0 ° C. The compound of formula (Y5) can be obtained by stirring and reacting at a temperature of from 0 ° C. to room temperature for 5 minutes to 10 hours, preferably 1 hour to 2 hours.

【0050】更に、Pがベンジル基の場合、除去は水素
による加水素分解によっても行うことができる。
Further, when P is a benzyl group, the removal can be carried out by hydrogenolysis with hydrogen.

【0051】更にまた、Pがシリル基の場合、脱保護は
テトラ−n−ブチルアンモニウムフルオリド、ピリジニ
ウムフルオリド等のフッ素アニオンを発生させる試薬に
よっても行うことができる。
Further, when P is a silyl group, deprotection can be carried out by a reagent which generates a fluorine anion such as tetra-n-butylammonium fluoride and pyridinium fluoride.

【0052】次に、好ましくはTHF、メタノール、エ
タノール、エチレングリコール等の有機溶媒中、式(Y
5)の化合物を以下の式(Y6):
Next, the compound represented by the formula (Y) is preferably dissolved in an organic solvent such as THF, methanol, ethanol and ethylene glycol.
The compound of 5) is represented by the following formula (Y6):

【0053】[0053]

【化11】 Embedded image

【0054】[式(Y6)中、P及びnは先に定義した
通りである]で表される構造を有する化合物を反応させ
ることにより、以下の式(Y7):
By reacting a compound having a structure represented by the formula (Y6), P and n are as defined above, the following formula (Y7):

【0055】[0055]

【化12】 Embedded image

【0056】[式(Y7)中、P、m及びnは先に定義
した通りである]で表される構造を有する化合物を得
る。
A compound having a structure represented by the formula (Y7), wherein P, m and n are as defined above, is obtained.

【0057】反応は、マイナス20℃から溶媒の沸点、
好ましくはマイナス15℃から30℃で、30分から2
0時間、好ましくは1時間から2時間行う。
The reaction is carried out at a temperature of −20 ° C. to the boiling point of the solvent,
Preferably at minus 15 ° C to 30 ° C for 30 minutes to 2
It is carried out for 0 hour, preferably for 1 hour to 2 hours.

【0058】反応溶液中には、N−メチルモルホリン等
の塩基、及びイソブチルクロロ蟻酸等のハロ蟻酸エステ
ルを存在させることが望ましい。
It is desirable that a base such as N-methylmorpholine and a haloformate such as isobutyl chloroformate be present in the reaction solution.

【0059】さらに、(Y7)の化合物よりPで表され
るカルボキシル基の保護基を除去することにより、式
(1)の化合物(X=S、Z=NHかつk=0)を得る
ことができる。カルボキシル基の保護基の除去は、式
(Y5)の化合物の合成において上述したのと同様の方
法によって行うことができる。
Further, by removing the protecting group of the carboxyl group represented by P from the compound of (Y7), a compound of the formula (1) (X = S, Z = NH and k = 0) can be obtained. it can. The removal of the protecting group for the carboxyl group can be performed by the same method as described above in the synthesis of the compound of the formula (Y5).

【0060】ii)k=0かつZ=Oの場合 i)において上述した式(Y2)の化合物に、リチウム
ビス(トリメチルシリル)アミド、リチウムジイソプロ
ピルアミド等の存在下、有機溶媒中、以下の式(Y
8):
Ii) In the case where k = 0 and Z = 0, the compound of the formula (Y2) described above in i) is added to an organic solvent in the presence of lithium bis (trimethylsilyl) amide, lithium diisopropylamide, etc. Y
8):

【0061】[0061]

【化13】 Embedded image

【0062】[式(Y8)において、L、P、m及びn
は先に定義した通りである]で表される構造を有する化
合物を反応させて、以下の式(Y9):
[In the formula (Y8), L, P, m and n
Is as defined above], and a compound having a structure represented by the following formula (Y9):

【0063】[0063]

【化14】 Embedded image

【0064】[式(Y9)において、P、m及びnは先
に定義した通りである]で表される構造を有する化合物
を得る。
In the formula (Y9), P, m and n are as defined above to obtain a compound having a structure represented by the formula:

【0065】有機溶媒は、式(Y4)の化合物の合成に
使用したものと同様のものを使用できる。反応は、マイ
ナス100℃から溶媒の沸点、好ましくはマイナス80
℃から30℃で、1時間から20時間、好ましくは1時
間から3時間行う。
As the organic solvent, those similar to those used for the synthesis of the compound of the formula (Y4) can be used. The reaction is carried out at a temperature of −100 ° C. to the boiling point of the solvent, preferably −80 ° C.
C. to 30.degree. C. for 1 hour to 20 hours, preferably 1 hour to 3 hours.

【0066】式(Y9)の化合物から、Pのカルボキシ
ル基の保護基を除去することにより、式(1)の化合物
(X=S、Z=Oかつk=0)を得ることができる。カ
ルボキシル基の保護基の除去は、上述したのと同様の方
法によって行うことができる。
The compound of the formula (1) (X = S, Z = O and k = 0) can be obtained by removing the protecting group for the carboxyl group of P from the compound of the formula (Y9). Removal of the carboxyl-protecting group can be performed by the same method as described above.

【0067】iii)k=1かつZ=NHの場合 先ず、式(Y1)の化合物の合成と同様に、五硫化二リ
ンに有機溶媒中、メタノールを反応させる。次いで、塩
基を加え、さらに、以下の式(Y10):
Iii) In the case of k = 1 and Z = NH First, as in the synthesis of the compound of the formula (Y1), diphosphorus pentasulfide is reacted with methanol in an organic solvent. Next, a base is added, and further, the following formula (Y10):

【0068】[0068]

【化15】 Embedded image

【0069】[式(Y10)中、L、P及びmは先に定
義した通りである]で表される構造を有するエステル化
合物を反応させて、以下の式(Y11):
In the formula (Y10), L, P and m are as defined above, and an ester compound having the structure represented by the following formula (Y11) is reacted:

【0070】[0070]

【化16】 Embedded image

【0071】[式(Y11)中、P及びmは先に定義し
た通りである]で表される構造を有する化合物を得る。
式(Y11)の化合物の合成は、式(Y2)の化合物の
合成と同様に行うことができる。
A compound having a structure represented by the formula (Y11), wherein P and m are as defined above, is obtained.
The synthesis of the compound of the formula (Y11) can be carried out in the same manner as the synthesis of the compound of the formula (Y2).

【0072】次いで、式(Y11)の化合物を以下の式
(Y12):
Next, the compound of the formula (Y11) is converted into the following formula (Y12):

【0073】[0073]

【化17】 Embedded image

【0074】[式(Y12)中、Lは先に定義した通り
である]で表される構造を有するエステル化合物を反応
させて、以下の式(Y13):
In the formula (Y12), L is as defined above, and an ester compound having a structure represented by the following formula (Y13) is reacted:

【0075】[0075]

【化18】 Embedded image

【0076】[式(Y13)中、P及びmは先に定義し
た通りである]で表される構造式を有する化合物を得
る。式(Y13)の化合物の合成は、式(Y4)の化合
物の合成と同様に行うことができる。
A compound having the structural formula represented by the formula (Y13), wherein P and m are as defined above, is obtained. The compound of the formula (Y13) can be synthesized in the same manner as in the synthesis of the compound of the formula (Y4).

【0077】次いで、式(Y13)の化合物からPで表
されるカルボキシル基の保護基を除去することにより、
以下の式(Y14):
Next, the protecting group of the carboxyl group represented by P is removed from the compound of the formula (Y13),
The following formula (Y14):

【0078】[0078]

【化19】 Embedded image

【0079】[式(Y14)中、mは先に定義した通り
である]で表される構造を有する化合物を得る。カルボ
キシル基の保護基の除去は上述したのと同様の方法によ
って行うことができる。
A compound having a structure represented by the formula (Y14), wherein m is as defined above, is obtained. Removal of the carboxyl-protecting group can be performed by the same method as described above.

【0080】次いで、式(Y14)の化合物に、上述し
た式(Y6)の化合物を反応させて、以下の式(Y1
5):
Next, the compound of the formula (Y6) is reacted with the compound of the formula (Y14) to give a compound of the following formula (Y1)
5):

【0081】[0081]

【化20】 Embedded image

【0082】[式(Y15)中、P、m及びnは先に定
義した通りである]で表される構造を有する化合物を得
る。式(Y15)の化合物の合成は、式(Y7)の化合
物の合成と同様に行うことができる。
A compound having a structure represented by the formula (Y15), wherein P, m and n are as defined above, is obtained. The compound of the formula (Y15) can be synthesized in the same manner as in the synthesis of the compound of the formula (Y7).

【0083】さらに、(Y15)の化合物よりPで表さ
れるカルボキシル基の保護基を除去することにより、式
(1)の化合物(X=S、Z=NHかつk=1)を得る
ことができる。カルボキシル基の保護基の除去は、上述
したのと同様の方法によって行うことができる。II.X=NHの場合 Z=Oかつk<mの場合 先ず、以下の式(Y16):
Further, the compound of formula (1) (X = S, Z = NH and k = 1) can be obtained by removing the protecting group of the carboxyl group represented by P from the compound of (Y15). it can. Removal of the carboxyl-protecting group can be performed by the same method as described above. II. When X = NH When Z = O and k <m First, the following formula (Y16):

【0084】[0084]

【化21】 Embedded image

【0085】[式(Y16)中、k及びmは先に定義し
た通りである]で表される構造を有する化合物の−(C
2m側に近いカルボキシル基に保護基を導入し、以下
の式(Y17):
In the formula (Y16), k and m are as defined above.
H 2 ) A protecting group is introduced into a carboxyl group near the m side, and is represented by the following formula (Y17):

【0086】[0086]

【化22】 Embedded image

【0087】[式(Y17)中、Pはカルボキシル基の
保護基であり;そしてk及びmは先に定義した通りであ
る]で表される構造を有する化合物を合成する。
In the formula (Y17), P is a protecting group for a carboxyl group; and k and m are as defined above.

【0088】Pで表されるカルボキシル基の保護基は公
知のものを使用でき、保護基の導入も既知の方法を用い
て行うことができる。例えば、保護基としてベンジル基
を導入する場合、ジエチルエーテル等の有機溶媒あるい
は水中、硫酸等の縮合剤の存在下、ベンジルアルコール
を反応させて、縮合反応によりベンジル基を(Y16)
の化合物に導入する。
As the protecting group for the carboxyl group represented by P, a known protecting group can be used, and the protecting group can be introduced by a known method. For example, when a benzyl group is introduced as a protective group, benzyl alcohol is reacted in an organic solvent such as diethyl ether or water in the presence of a condensing agent such as sulfuric acid, and the benzyl group is converted to a compound (Y16) by a condensation reaction.
To the compound.

【0089】反応は、0℃から溶媒の沸点、好ましくは
20℃から30℃で、1時間から40時間、好ましくは
20時間から30時間行う。
The reaction is carried out at 0 ° C. to the boiling point of the solvent, preferably at 20 ° C. to 30 ° C., for 1 hour to 40 hours, preferably 20 hours to 30 hours.

【0090】次に、式(Y17)の化合物のアミノ基に
保護基を導入して、以下の式(Y18):
Next, a protecting group is introduced into the amino group of the compound of the formula (Y17) to give the following formula (Y18):

【0091】[0091]

【化23】 Embedded image

【0092】[式(Y18)中、P’はアミノ基の保護
基であり;そしてP、k及びmは先に定義した通りであ
る]で表される構造を有する化合物を合成する。
In the formula (Y18), a compound having a structure represented by the formula: P ′ is a protecting group for an amino group; and P, k and m are as defined above.

【0093】P’で表されるアミノ基の保護基は公知の
ものを使用でき、例えば、ベンジルオキシカルボニル
基、tert−ブトキシカルボニル基等を用いることが
できる。保護基の導入も既知の方法を用いて行うことが
できる。
As the protecting group for the amino group represented by P ′, known groups can be used, and for example, a benzyloxycarbonyl group, a tert-butoxycarbonyl group and the like can be used. Introduction of a protecting group can also be performed using a known method.

【0094】例えば、保護基としてベンジルカルボニル
基を導入する場合、水中、塩基の存在下、ベンジルオキ
シカルボニルクロリドを反応させて、保護基を(Y1
7)の化合物に導入する。塩基としては、炭酸水素ナト
リウム、炭酸カリウム、炭酸ナトリウム、炭酸リチウ
ム、炭酸水素カリウム、水酸化ナトリウム、水酸化カリ
ウム、ナトリウムメチラート、ナトリウムエチラート、
トリエチルアミン、N,N−ジメチルアニリン等を用い
ることができる。反応は、0℃から溶媒の沸点、好まし
くは0℃から80℃で、1時間から20時間、好ましく
は1時間から3時間行う。
For example, when a benzylcarbonyl group is introduced as a protecting group, benzyloxycarbonyl chloride is reacted in water in the presence of a base to convert the protecting group to (Y1
The compound of 7) is introduced. As the base, sodium hydrogen carbonate, potassium carbonate, sodium carbonate, lithium carbonate, potassium hydrogen carbonate, sodium hydroxide, potassium hydroxide, sodium methylate, sodium ethylate,
Triethylamine, N, N-dimethylaniline and the like can be used. The reaction is carried out at 0 ° C. to the boiling point of the solvent, preferably 0 ° C. to 80 ° C., for 1 hour to 20 hours, preferably 1 hour to 3 hours.

【0095】次に、式(Y18)の化合物に塩化水素の
ジエチルエーテル溶液を反応させて、以下の式(Y1
9):
Next, the compound of the formula (Y18) is reacted with a solution of hydrogen chloride in diethyl ether to give the compound of the following formula (Y1)
9):

【0096】[0096]

【化24】 Embedded image

【0097】[式(Y19)中、P、P’、k及びmは
先に定義した通りである]で表される構造を有する化合
物を合成する。
A compound having a structure represented by the formula (Y19), wherein P, P ', k and m are as defined above, is synthesized.

【0098】反応は、エタノール中、0℃から溶媒の沸
点、好ましくは40℃から60℃で、1時間から20時
間、好ましくは1時間から3時間行う。
The reaction is carried out in ethanol at 0 ° C. to the boiling point of the solvent, preferably at 40 ° C. to 60 ° C., for 1 hour to 20 hours, preferably for 1 hour to 3 hours.

【0099】次に、式(Y19)の化合物から、Pで表
されるカルボキシル基の保護基及びP’で表されるアミ
ノ基の保護基を除去することにより、以下の式(Y2
0):
Next, the protecting group for the carboxyl group represented by P and the protecting group for the amino group represented by P ′ are removed from the compound of the formula (Y19) to give the following formula (Y2)
0):

【0100】[0100]

【化25】 Embedded image

【0101】[式(Y20)中、k及びmは先に定義し
た通りである]で表される構造を有する化合物を得る。
保護基の除去は、カルボキシル基の保護基の除去に関し
て上述したような公知の方法によって行うことができ
る。
In the formula (Y20), k and m are as defined above, to obtain a compound having a structure represented by the following formula:
The removal of the protecting group can be performed by a known method as described above for the removal of the protecting group of the carboxyl group.

【0102】例えば、P及び/又はP’がベンジル基の
場合、除去は水素による加水素分解によって行うことが
できる。
For example, when P and / or P 'is a benzyl group, the removal can be carried out by hydrogenolysis with hydrogen.

【0103】次に、式(Y20)の化合物にアミノ基の
保護基を再び導入し、以下の式(Y21):
Next, the protecting group for the amino group is introduced again into the compound of the formula (Y20), and the compound of the following formula (Y21):

【0104】[0104]

【化26】 Embedded image

【0105】[式(Y21)中、P’、kよびmは先に
定義した通りである]で表される構造を有する化合物を
得る。
In the formula (Y21), a compound having a structure represented by the formula: P ′, k and m are as defined above is obtained.

【0106】次に、式(Y21)の化合物に、有機溶媒
中、以下の式(Y22):
Next, the compound of the formula (Y21) is added to the compound of the following formula (Y22) in an organic solvent:

【0107】[0107]

【化27】 Embedded image

【0108】[式(Y22)中、P及びnは先に定義し
た通りである]で表される構造を有する化合物を反応さ
せることにより、以下の式(Y23):
By reacting a compound having a structure represented by the formula (Y22), P and n are as defined above, the following formula (Y23):

【0109】[0109]

【化28】 Embedded image

【0110】[式(Y23)中、P、P’、k、m及び
nは先に定義した通りである]で表される構造を有する
化合物を得る。
In the formula (Y23), P, P ′, k, m and n are as defined above, to obtain a compound having a structure represented by the formula:

【0111】反応は、テトラヒドロフラン(THF)、
ジオキサン、ジエチルエーテル、ジメトキシエタン、ジ
クロロメタン、1,2−ジクロロエタン等の有機溶媒
中、0℃から溶媒の沸点、好ましくは20℃から30℃
で、1時間から40時間、好ましくは20時間から30
時間行う。
The reaction is carried out in tetrahydrofuran (THF),
In organic solvents such as dioxane, diethyl ether, dimethoxyethane, dichloromethane, and 1,2-dichloroethane, the temperature is from 0 ° C to the boiling point of the solvent, preferably from 20 ° C to 30 ° C.
And 1 hour to 40 hours, preferably 20 hours to 30 hours
Do time.

【0112】反応は、好ましくは、N,N−ジメチルア
ミノピリジン(DMAP)等の塩基触媒、カンファース
ルホン酸等の酸触媒、並びに、N,N−ジシクロヘキシ
ルカルボジイミド(DCC)、N,N−ジイソプロピル
カルボジイミド等の縮合剤の存在下において行う。
The reaction is preferably carried out using a base catalyst such as N, N-dimethylaminopyridine (DMAP), an acid catalyst such as camphorsulfonic acid, N, N-dicyclohexylcarbodiimide (DCC), N, N-diisopropylcarbodiimide. And the like in the presence of a condensing agent.

【0113】次に、式(Y23)の化合物よりP’で表
されるアミノ基の保護基を除去することにより、以下の
式(Y24):
Next, the protecting group for the amino group represented by P ′ is removed from the compound of the formula (Y23) to give the following formula (Y24):

【0114】[0114]

【化29】 Embedded image

【0115】[式(Y24)中、P、k、m及びnは先
に定義した通りである]で表される構造を有する化合物
を得る。アミノ基の保護基の除去は、式(Y20)の化
合物の合成について上述したのと同様の方法によって行
うことができる。
A compound having a structure represented by the formula (Y24), wherein P, k, m and n are as defined above, is obtained. The removal of the protecting group for the amino group can be carried out by the same method as described above for the synthesis of the compound of the formula (Y20).

【0116】次に、式(Y24)の化合物に、以下の式
(Y25):
Next, the compound of the formula (Y24) is added to the compound of the following formula (Y25):

【0117】[0117]

【化30】 Embedded image

【0118】[式(Y25)中、Lは先に定義した通り
である]で表される構造を有するハロゲン化チオリン酸
ジメチルを、有機溶媒中、塩基の存在下で反応させて、
以下の式(Y26):
[0118] In the formula (Y25), L is as defined above, and reacted with a halogenated dimethyl thiophosphate having a structure represented by the following formula in an organic solvent in the presence of a base:
The following formula (Y26):

【0119】[0119]

【化31】 Embedded image

【0120】[式(Y26)中、P、k、m及びnは先
に定義した通りである]で表される構造を有する化合物
を得る。
A compound having a structure represented by the formula (Y26), wherein P, k, m and n are as defined above, is obtained.

【0121】式(Y26)の化合物の合成のための有機
溶媒としては、例えば、アセトニトリル、アセトン、ヘ
キサン、ペンタン、ベンゼン、トルエン、ジクロロメタ
ン、クロロホルム、1,2−ジクロロエタン、酢酸エチ
ル、ジグリム、N,N−ジメチルホルムアミド、ヘキサ
メチルリン酸トリアミド等、あるいはこれらの混合溶液
を用いることができる。塩基としては、例えば、炭酸カ
リウム、炭酸ナトリウム、炭酸リチウム、炭酸水素カリ
ウム、炭酸水素ナトリウム、水酸化ナトリウム、水酸化
カリウム、ナトリウムメチラート、ナトリウムエチラー
ト、トリエチルアミン、N,N−ジメチルアニリン、リ
チウムジイソプロピルアミド等を用いることができる。
Examples of the organic solvent for synthesizing the compound of the formula (Y26) include acetonitrile, acetone, hexane, pentane, benzene, toluene, dichloromethane, chloroform, 1,2-dichloroethane, ethyl acetate, diglyme, N, N-dimethylformamide, hexamethylphosphoric triamide, etc., or a mixed solution thereof can be used. As the base, for example, potassium carbonate, sodium carbonate, lithium carbonate, potassium hydrogen carbonate, sodium hydrogen carbonate, sodium hydroxide, potassium hydroxide, sodium methylate, sodium ethylate, triethylamine, N, N-dimethylaniline, lithium diisopropyl Amides and the like can be used.

【0122】反応は、0℃から溶媒の沸点、好ましくは
40℃から60℃で、1時間から10時間、好ましくは
1時間から2時間行う。
The reaction is carried out at 0 ° C. to the boiling point of the solvent, preferably at 40 ° C. to 60 ° C., for 1 hour to 10 hours, preferably for 1 hour to 2 hours.

【0123】次に、式(Y26)の化合物からPで表さ
れるカルボキシル基の保護基の除去を行うことにより、
式(1)の化合物(X=NHかつZ=Oの場合)を得る
ことができる。
Next, the protecting group of the carboxyl group represented by P is removed from the compound of the formula (Y26), whereby
The compound of formula (1) (when X = NH and Z = O) can be obtained.

【0124】カルボキシル基の保護基の除去は前述した
ような公知の方法によって行うことができる。上述した
ような製造方法によって得られた化合物を、必要に応じ
シリカゲルクロマトグラフィー又は再結晶操作等を行う
ことにより、さらに高純度の精製品とすることができ
る。
The removal of the carboxyl-protecting group can be carried out by a known method as described above. By subjecting the compound obtained by the above-mentioned production method to silica gel chromatography or recrystallization operation or the like as necessary, a purified product with higher purity can be obtained.

【0125】以下、本発明の抗原、抗体の作製、及び免
疫化学的測定法について説明する。尚、これらの調製は
公知の方法、例えば続生化学実験講座、免疫生化学研究
法(日本生化学会編)等に記載の方法に従って行うこと
ができる。マラチオンハプテンと高分子化合物との結合体の作製 上述のように合成されたマラチオンハプテンを適当な高
分子化合物に結合させてから免疫用抗原もしくは固相化
用抗原として使用する。
Hereinafter, the preparation of the antigen and antibody of the present invention and the immunochemical assay will be described. In addition, these preparations can be carried out according to a known method, for example, a method described in Seikagaku Experimental Lecture, Immunobiochemical Research Method (edited by the Japanese Biochemical Society), or the like. Preparation of Conjugate of Malathion Hapten and Polymer Compound The malathion hapten synthesized as described above is bound to an appropriate polymer compound and then used as an antigen for immunization or immobilization.

【0126】好ましい高分子化合物の例としては、スカ
シガイへモシアニン(以下、「KLH」と言う)、卵白
アルブミン(以下、「OVA」と言う)、ウシ血清アル
ブミン(以下、「BSA」と言う)、ウサギ血清アルブ
ミン(以下、「RSA」と言う)などがあるが、KLH
及びBSAが好ましい。
Examples of preferable high molecular compounds include keyhole limpet hemocyanin (hereinafter, referred to as “KLH”), ovalbumin (hereinafter, referred to as “OVA”), bovine serum albumin (hereinafter, referred to as “BSA”), Rabbit serum albumin (hereinafter referred to as "RSA") and the like, but KLH
And BSA are preferred.

【0127】マラチオンハプテンと高分子化合物との結
合は、例えば、活性化エステル法(A.E.KARU
et al.:J.Agric.Food Chem.
42301−309(1994))、又は混合酸無水物
法(B.F.Erlanger et al.:J.B
iol.Chem.234 1090‐1094(19
54))等の公知の方法によって行うことができる。
The binding between the malathion hapten and the polymer compound can be performed, for example, by the activated ester method (AEKARU).
et al. : J. Agric. Food Chem.
42301-309 (1994)) or the mixed acid anhydride method (BF Erlanger et al .: JB).
iol. Chem. 234 1090-1094 (19
54)) and the like.

【0128】活性化エステル法は、一般に以下のように
行うことができる。まず、ハプテン化合物を有機溶媒に
溶解し、カップリング剤の存在下にてN−ヒドロキシこ
はく酸イミドと反応させ、N−ヒドロキシこはく酸イミ
ド活性化エステルを生成させる。
The activated ester method can be generally carried out as follows. First, a hapten compound is dissolved in an organic solvent and reacted with N-hydroxysuccinimide in the presence of a coupling agent to form an N-hydroxysuccinimide activated ester.

【0129】カップリング剤としては、縮合反応に慣用
されている通常のカップリング剤を使用でき、例えば、
ジシクロヘキシルカルボジイミド、カルボニルジイミダ
ゾール、水溶性カルボジイミド等が含まれる。有機溶媒
としては、例えば、ジメチルスルホキシド(以下、「D
MSO」と言う)、N,N−ジメチルホルムアミド(D
MF)、ジオキサン等が使用できる。反応に使用するハ
プテン化合物とN−ヒドロキシこはく酸イミドのモル比
は好ましくは1:10から10:1、より好ましくは
1:1から1:10、最も好ましくは1:1である。反
応温度は、0℃から100℃、好ましくは5℃から50
℃、より好ましくは22℃から27℃で、反応時間は5
分から24時間、好ましくは30分から6時間、より好
ましくは1時間から2時間である。
As the coupling agent, an ordinary coupling agent commonly used in a condensation reaction can be used.
Dicyclohexylcarbodiimide, carbonyldiimidazole, water-soluble carbodiimide and the like. Examples of the organic solvent include dimethyl sulfoxide (hereinafter referred to as “D
MSO "), N, N-dimethylformamide (D
MF), dioxane and the like can be used. The molar ratio of the hapten compound to N-hydroxysuccinimide used in the reaction is preferably from 1:10 to 10: 1, more preferably from 1: 1 to 1:10, most preferably 1: 1. The reaction temperature is from 0 ° C to 100 ° C, preferably from 5 ° C to 50 ° C.
C., more preferably 22 ° C. to 27 ° C .;
Minutes to 24 hours, preferably 30 minutes to 6 hours, more preferably 1 hour to 2 hours.

【0130】カップリング反応後、反応液を高分子化合
物を溶解した溶液に加え反応させると、例えば高分子化
合物が遊離のアミノ基を有する場合、当該アミノ基とハ
プテン化合物のカルボキシル基の間に酸アミド結合が生
成される。反応温度は、0℃から60℃、好ましくは5
℃から40℃、反応時間は5分から24時間、好ましく
は1時間から16時間である。反応物を、透析、脱塩カ
ラム等によって精製して、マラチオンハプテンと高分子
化合物との結合体を得ることができる。
After the coupling reaction, the reaction solution is added to a solution in which the polymer compound is dissolved and reacted. For example, when the polymer compound has a free amino group, an acid is added between the amino group and the carboxyl group of the hapten compound. An amide bond is formed. The reaction temperature is from 0 ° C to 60 ° C, preferably 5 ° C.
The reaction time is 5 minutes to 24 hours, preferably 1 hour to 16 hours. The reaction product can be purified by dialysis, a desalting column or the like to obtain a conjugate of malathion hapten and a polymer compound.

【0131】一方、混合酸無水物法において用いられる
混合酸無水物は、通常のショッテン−バウマン反応によ
り得られ、これを高分子化合物と反応させることにより
目的とするハプテン−高分子化合物結合体が製造され
る。ショッテン−バウマン反応は塩基性化合物の存在下
に行われる。塩基性化合物としては、ショッテン−バウ
マン反応において慣用されている化合物を使用すること
ができる。例えば、トリブチルアミン、トリエチルアミ
ン、トリメチルアミン、N−メチルホルマリン、ピリジ
ン、N,N−ジメチルアニリン、DBN、DBU、DA
BCO等の有機塩基、炭酸カリウム、炭酸ナトリウム、
炭酸水素カリウム、炭酸水素ナトリウム等の無機塩基等
が挙げられる。該反応は、通常マイナス20℃から15
0℃、好ましくは0℃から100℃において行われ、反
応時間は5分から10時間、好ましくは5分から2時間
である。得られた混合酸無水物と高分子化合物との反応
は、通常マイナス20℃から100℃、好ましくは0℃
から50℃において行われ、反応時間は5分から10時
間、好ましくは5分から5時間である。混合酸無水物法
は一般に溶媒中で行われる。溶媒としては、混合酸無水
物法に慣用されているいずれの溶媒も使用可能であり、
具体的にはジオキサン、ジエチルエーテル、テトラヒド
ロフラン、ジメトキシエタン等のエーテル類、ジクロロ
メタン、クロロホルム、ジクロロエタン等のハロゲン化
炭化水素類、ベンゼン、トルエン、キシレン等の芳香族
炭化水素類、酢酸メチル、酢酸エチル等のエステル類、
N,N−ジメチルホルムアミド、ジメチルスルホキシ
ド、ヘキサメチルリン酸トリアミド等の非プロトン性極
性溶媒等が挙げられる。混合酸無水物法において使用さ
れるハロ蟻酸エステルとしては、例えばクロロ蟻酸メチ
ル、ブロモ蟻酸メチル、クロロ蟻酸エチル、ブロモ蟻酸
エチル、クロロ蟻酸イソブチル等が挙げられる。当該方
法におけるハプテンとハロ蟻酸エステルと高分子化合物
の使用割合は、広い範囲から適宜選択され得る。
On the other hand, the mixed acid anhydride used in the mixed acid anhydride method is obtained by a usual Schotten-Baumann reaction, and the desired hapten-polymer compound conjugate is obtained by reacting this with a polymer compound. Manufactured. The Schotten-Baumann reaction is performed in the presence of a basic compound. As the basic compound, a compound commonly used in the Schotten-Baumann reaction can be used. For example, tributylamine, triethylamine, trimethylamine, N-methylformalin, pyridine, N, N-dimethylaniline, DBN, DBU, DA
Organic bases such as BCO, potassium carbonate, sodium carbonate,
Inorganic bases such as potassium bicarbonate and sodium bicarbonate are exemplified. The reaction is usually carried out at a temperature of −20 ° C. to 15 ° C.
The reaction is carried out at 0 ° C., preferably at 0 ° C. to 100 ° C., and the reaction time is 5 minutes to 10 hours, preferably 5 minutes to 2 hours. The reaction between the obtained mixed acid anhydride and the polymer compound is usually carried out at a temperature of −20 ° C. to 100 ° C., preferably 0 ° C.
To 50 ° C., and the reaction time is 5 minutes to 10 hours, preferably 5 minutes to 5 hours. The mixed anhydride method is generally performed in a solvent. As the solvent, any solvent commonly used in the mixed acid anhydride method can be used,
Specifically, ethers such as dioxane, diethyl ether, tetrahydrofuran and dimethoxyethane, halogenated hydrocarbons such as dichloromethane, chloroform and dichloroethane, aromatic hydrocarbons such as benzene, toluene and xylene, methyl acetate, ethyl acetate and the like Esters,
Aprotic polar solvents such as N, N-dimethylformamide, dimethylsulfoxide, hexamethylphosphoric triamide and the like; Examples of the haloformate used in the mixed acid anhydride method include methyl chloroformate, methyl bromoformate, ethyl chloroformate, ethyl bromoformate, and isobutyl chloroformate. The proportions of the hapten, the haloformate and the polymer compound used in the method can be appropriately selected from a wide range.

【0132】また、上記と同様の方法により、酵素等の
標識物質をマラチオンハプテンに結合させたものを、免
疫学的測定方法において使用することができる。標識物
質としては、西洋わさびペルオキシダーゼ(以下「HR
P」と言う)、アルカリフォスファターゼ等の酵素、フ
ルオレセインイソシアネート、ローダミン等の蛍光物
質、32P、125I等の放射性物質、化学発光物質などが
ある。ポリクローナル抗体の作製 マラチオンハプテンと高分子化合物との結合体を使用し
て、慣用化された方法により本発明のポリクローナル抗
体を作製することができる。例えば、マラチオンハプテ
ン−KLH結合体をリン酸ナトリウム緩衝液(以下、
「PBS」と言う)に溶解し、フロイント完全アジュバ
ント又は不完全アジュバント、あるいはミョウバン等の
補助剤と混合したもので、動物を免疫することによって
得ることができる。免疫される動物としては当該分野で
常用されるものをいずれも使用できるが、例えば、マウ
ス、ラット、ウサギ、ヤギ、ウマ等を挙げることができ
る。
[0132] In the same manner as described above, a substance obtained by binding a labeling substance such as an enzyme to a malathion hapten can be used in an immunoassay. As a labeling substance, horseradish peroxidase (hereinafter “HR”)
P "), enzymes such as alkaline phosphatase, fluorescent substances such as fluorescein isocyanate and rhodamine, radioactive substances such as 32 P and 125 I, and chemiluminescent substances. Preparation of Polyclonal Antibody The polyclonal antibody of the present invention can be prepared by a conventional method using a conjugate of malathion hapten and a polymer compound. For example, a malathion hapten-KLH conjugate is added to a sodium phosphate buffer (hereinafter, referred to as a sodium phosphate buffer)
It can be obtained by immunizing an animal with a solution dissolved in an adjuvant such as Freund's complete adjuvant or incomplete adjuvant, or alum. As the animal to be immunized, any of those commonly used in the art can be used, and examples thereof include mice, rats, rabbits, goats, and horses.

【0133】免疫の際の投与法は、皮下注射、腹腔内注
射、静脈内注射、皮内注射、筋肉内注射のいずれでもよ
いが、皮下注射又は腹腔内注射が好ましい。免疫は1回
又は適当な間隔で、好ましくは1週間ないし5週間の問
隔で複数回行うことができる。
The method of administration at the time of immunization may be any of subcutaneous injection, intraperitoneal injection, intravenous injection, intradermal injection, and intramuscular injection, but subcutaneous injection or intraperitoneal injection is preferred. Immunization can be performed once or at appropriate intervals, preferably multiple times at intervals of one to five weeks.

【0134】免疫した動物から血液を採取し、そこから
分離した血清を用い、マラチオンと反応するポリクロー
ナル抗体の存在を評価することができる。モノクローナル抗体の作製 マラチオンハプテンと高分子化合物との結合体を使用し
て、公知の方法により本発明のモノクローナル抗体を作
製することができる。
Blood is collected from the immunized animal, and the serum separated therefrom can be used to evaluate the presence of a polyclonal antibody that reacts with malathion. Preparation of Monoclonal Antibody The monoclonal antibody of the present invention can be prepared by a known method using a conjugate of malathion hapten and a polymer compound.

【0135】モノクローナル抗体の製造にあたっては、
少なくとも下記のような作業工程が必要である。 (a)免疫用抗原として使用するマラチオンハプテンと
高分子化合物との結合体の作製 (b)動物への免疫 (c)血液の採取、アッセイ、及び抗体産生細胞の調製 (d)ミエローマ細胞の調製 (e)抗体産生細胞とミエローマ細胞との細胞融合とハ
イブリドーマの選択的培養 (f)目的とする抗体を産生するハイブリドーマのスク
リーニングと細胞クローニング (g)ハイブリドーマの培養又は動物へのハイブリドー
マの移植によるモノクローナル抗体の調製 (h)調製されたモノクローナル抗体の反応性の測定等 モノクローナル抗体を産生するハイブリドーマを作製す
るための常法は、例えば、ハイブリドーマ テクニック
ス(Hybridoma Techniques),コ
ールド スプリング ハーバー ラボラトリーズ(Co
ld Spring Harbor Laborato
ry,1980年版)、細胞組織化学(山下修二ら、日
本組織細胞化学会編;学際企画、1986年)に記載さ
れている。
In producing a monoclonal antibody,
At least the following work steps are required. (A) Preparation of a conjugate of malathion hapten used as an antigen for immunization and a polymer compound (b) Immunization of animals (c) Collection of blood, assay, and preparation of antibody-producing cells (d) Preparation of myeloma cells (E) Cell fusion between antibody-producing cells and myeloma cells and selective culture of hybridomas (f) Screening and cell cloning of hybridomas producing the desired antibody (g) Monoclones by culturing hybridomas or transplanting hybridomas into animals Preparation of Antibodies (h) Measurement of Reactivity of Prepared Monoclonal Antibodies Conventional methods for producing hybridomas that produce monoclonal antibodies include, for example, Hybridoma Technologies, Cold Spring Harbor Laboratories (Co.)
ld Spring Harbor Laborato
ry, 1980 edition), and Cell Histochemistry (Shuji Yamashita et al., edited by the Japanese Society for Tissue and Cellular Chemistry; Interdisciplinary Planning, 1986).

【0136】以下、本発明のマラチオンに対するモノク
ローナル抗体の作製方法を説明するが、これに制限され
ないことは当業者によって明らかであろう。
Hereinafter, a method for producing a monoclonal antibody against malathion of the present invention will be described, but it will be apparent to those skilled in the art that the present invention is not limited thereto.

【0137】(a)−(b)の工程は、ポリクローナル
抗体に関して記述した方法とほぼ同様の方法によって行
うことができる。
The steps (a) and (b) can be carried out by substantially the same method as described for the polyclonal antibody.

【0138】(c)の工程における抗体産生細胞はリン
パ球であり、これは一般には脾臓、胸腺、リンパ節、末
梢血液又はこれらの組み合わせから得ることができるが
脾細胞が最も一般的に用いられる。従って、最終免疫
後、抗体産生が確認されたマウスより抗体産生細胞が存
在する部位、例えば脾臓を摘出し、脾細胞を調製する。
The antibody-producing cells in the step (c) are lymphocytes, which can be generally obtained from the spleen, thymus, lymph nodes, peripheral blood or a combination thereof, but spleen cells are most commonly used. . Therefore, after the final immunization, a site where antibody-producing cells are present, for example, a spleen is excised from a mouse in which antibody production has been confirmed, and splenocytes are prepared.

【0139】(d)の工程に用いることのできるミエロ
ーマ細胞としては、例えば、Balb/cマウス由来骨
髄腫細胞株のP3/X63−Ag8(X63)(Nat
ure,256,495−497(1975))、P3
/X63−Ag8.U1(P3U1)(Current
Topics.in Microbiologyan
d Immunology,81, 1−7(198
7))、P3/NSI−1−Ag 4−1(NS−1)
(Eur.J.Immunol.,6,511−519
(1976))、Sp2/0−Ag14(Sp2/0)
(Nature, 276,269−270(197
8))、FO(J.Immuno.Meth.,35,
1−21(1980))、MPC−11、X63.6
53、S194等の骨髄腫株化細胞、あるいはラット由
来の210.RCY3.Ag 1.2.3.(Y3)
(Nature, 277,131−133,(197
9))等を使用できる。
The myeloma cells that can be used in the step (d) include, for example, P3 / X63-Ag8 (X63) (Nat) of a myeloma cell line derived from a Balb / c mouse.
ure, 256, 495-497 (1975)), P3
/ X63-Ag8. U1 (P3U1) (Current
Topics. in Microbiology
d Immunology, 81, 1-7 (198
7)), P3 / NSI-1-Ag 4-1 (NS-1)
(Eur. J. Immunol., 6, 511-519).
(1976)), Sp2 / 0-Ag14 (Sp2 / 0)
(Nature, 276, 269-270 (197
8)), FO (J. Immuno. Meth., 35,
1-21 (1980)), MPC-11, X63.6.
Myeloma cell lines such as S.53 and S194, or rat-derived 210. RCY3. Ag 1.2.3. (Y3)
(Nature, 277, 131-133, (197
9)) etc. can be used.

【0140】上述したミエローマ細胞をウシ胎児血清を
含むダルベッコ改変イーグル培地(DMEM)又はイス
コフ改変ダルベッコ培地(IMDM)で継代培養し、融
合当日に約3×103以上の細胞数を確保する。
The above-described myeloma cells are subcultured in Dulbecco's modified Eagle's medium (DMEM) or Iscove's modified Dulbecco's medium (IMDM) containing fetal bovine serum, and a cell number of about 3 × 10 3 or more is secured on the day of fusion.

【0141】(e)の工程の細胞融合は公知の方法、例
えばミルスタイン(Milstein)らの方法(Me
thods in Enzymology,73,3
(1981))等に準じて行うことができる。現在最も
一般的に行われているのはポリエチレングリコール(P
EG)を用いる方法である。PEG法については、例え
ば、細胞組織化学、山下修二ら(上述)に記載されてい
る。別の融合方法としては、電気処理(電気融合)によ
る方法を採用することもできる(大河内悦子ら、実験医
学 5.1315−19、1987)。その他の方法を
適宜採用することもできる。また、細胞の使用比率も公
知の方法と同様でよく、例えばミエローマ細胞に対して
脾細胞を3倍から10倍程度用いればよい。
The cell fusion in the step (e) is performed by a known method, for example, the method of Milstein et al.
things in Enzymology, 73, 3
(1981)). Currently, the most commonly used is polyethylene glycol (P
EG). The PEG method is described in, for example, Cell Histochemistry, Shuji Yamashita et al. (Supra). As another fusion method, a method by electric treatment (electric fusion) can be adopted (Etsuko Okochi et al., Experimental Medicine 5.1315-19, 1987). Other methods can be appropriately adopted. In addition, the ratio of cells used may be the same as in a known method. For example, spleen cells may be used about 3 to 10 times as much as myeloma cells.

【0142】脾細胞とミエローマ細胞とが融合し、抗体
分泌能及び増殖能を獲得したハイブリドーマ群の選択
は、例えば、ミエローマ細胞株としてヒポキサンチング
アニンホスホリボシルトランスフェラーゼ欠損株を使用
した場合、例えば上述のDMEMやIMDMにヒポキサ
ンチン・アミノプテリン・チミジンを添加して調製した
HAT培地の使用により行うことができる。
[0142] Selection of a hybridoma group in which spleen cells and myeloma cells are fused to obtain antibody secretion ability and proliferation ability is performed, for example, when a hypoxanthine guanine phosphoribosyltransferase-deficient strain is used as a myeloma cell line, for example, as described above. It can be performed by using a HAT medium prepared by adding hypoxanthine / aminopterin / thymidine to DMEM or IMDM.

【0143】(f)の工程では、選択されたハイブリド
ーマ群を含む培養上清の一部をとり、例えば後述するE
LISA法により、マラチオンに対する抗体活性を測定
する。
In the step (f), a part of the culture supernatant containing the selected hybridoma group is taken, and for example, E
The antibody activity against malathion is measured by the LISA method.

【0144】さらに、測定によりマラチオンに反応する
抗体を産生することが判明したハイブリドーマの細胞ク
ローニングを行う。この細胞クローニング法としては、
限界希釈により1ウェルに1個のハイブリドーマが含ま
れるように希釈する方法「限界希釈法」;軟寒天培地上
に撒きコロニーをとる方法;マイクロマニピュレーター
によって1個の細胞を取り出す方法;セルソーターによ
って1個の細胞を分離する「ソータークローン法」等が
挙げられる。限界希釈法が簡単であり、よく用いられ
る。
Further, cell cloning of a hybridoma found to produce an antibody reactive with malathion by measurement is performed. As this cell cloning method,
Method for limiting one hybridoma to one well by limiting dilution "Limiting dilution method"; Method for collecting colonies on a soft agar medium; Method for removing one cell with a micromanipulator; One method using a cell sorter "Sorter clone method" for separating the cells. The limiting dilution method is simple and often used.

【0145】抗体価の認められたウェルについて、例え
ば限界希釈法によりクローニングを1−4回繰り返して
安定して抗体価の得られたものを、抗マラチオンモノク
ローナル抗体産生ハイブリドーマ株として選択する。ハ
イブリドーマを培養する培地としては、例えば、ウシ胎
児血清(FCS)を含むDMEM又はIMDM等が用い
られる。ハイブリドーマの培養は、例えば二酸化炭素濃
度5−7%程度及び37℃(100%湿度の恒温器中)
で培養するのが好ましい。
For wells in which an antibody titer has been recognized, cloning is repeated 1-4 times, for example, by the limiting dilution method, and a stably obtained antibody titer is selected as an anti-malathion monoclonal antibody-producing hybridoma strain. As a medium for culturing the hybridoma, for example, DMEM or IMDM containing fetal calf serum (FCS) is used. The culture of the hybridoma is performed, for example, at a carbon dioxide concentration of about 5 to 7% and at 37 ° C. (in a thermostat at 100% humidity).
It is preferable to culture the cells.

【0146】(g)の工程で抗体を調製するための大量
培養は、フォローファイバー型の培養装置等によって行
われる。又は、同系統のマウス(例えば、上述のBal
b/c)あるいはNu/Nuマウスの腹腔内でハイブリ
ドーマを増殖させ、腹水液より抗体を調製することも可
能である。
The mass culture for preparing the antibody in the step (g) is performed by a follow-fiber type culture device or the like. Alternatively, mice of the same strain (for example, Bal
b / c) or hybridomas can be grown in the peritoneal cavity of Nu / Nu mice, and antibodies can be prepared from ascites fluid.

【0147】これらにより得られた培養上清液あるいは
腹水液を抗マラチオンモノクローナル抗体として使用す
ることできるが、さらに透析、硫酸アンモニウムによる
塩析、ゲル濾過、凍結乾燥等を行い、抗体画分を集め精
製することにより抗マラチオンモノクローナル抗体を得
ることができる。さらに、精製が必要な場合には、イオ
ン交換カラムクロマトグラフィー、アフィニティークロ
マトグラフィー、高速液体クロマトグラフィー(HPL
C)などの慣用されている方法を組合わせることにより
実施できる。
The culture supernatant or ascites fluid thus obtained can be used as an anti-malathion monoclonal antibody. Further, dialysis, salting out with ammonium sulfate, gel filtration, freeze-drying, etc. are performed to collect and purify the antibody fraction. By doing so, an anti-malathion monoclonal antibody can be obtained. Further, when purification is necessary, ion exchange column chromatography, affinity chromatography, high performance liquid chromatography (HPL)
It can be carried out by combining commonly used methods such as C).

【0148】以上のようにして得られた抗マラチオンモ
ノクローナル抗体は、例えば後述するELISA法など
の公知の方法を使用して、サブクラス、抗体価等を決定
することができる。抗体によるマラチオンの測定 本発明で使用する抗体によるマラチオンの測定法として
は、放射性同位元素免疫測定法(RIA法)、ELIS
A法(Engvall,E.,Methodsin E
nzymol.,70,419−439(198
0))、蛍光抗体法、プラーク法、スポット法、凝集
法、オクタロニー(Ouchterlony)等の一般
に抗原の検出に使用されている種々の方法(「ハイブリ
ドーマ法とモノクローナル抗体」、株式会社R&Dプラ
ニング発行、第30頁−第53頁、昭和57年3月5
日)が挙げられる。感度、簡便性等の観点からELIS
A法が汎用されている。
The anti-malathion monoclonal antibody obtained as described above can be determined for its subclass, antibody titer and the like by using a known method such as the ELISA method described later. Measurement of Malathion by Antibody As a method of measuring malathion by an antibody used in the present invention, radioisotope immunoassay (RIA), ELISA
Method A (Engval, E., Methods in E)
nzymol. , 70, 419-439 (198).
0)), various methods generally used for detection of antigens such as a fluorescent antibody method, a plaque method, a spot method, an agglutination method, and Ouchterlony (“Hybridoma method and monoclonal antibody”, published by R & D Planning, Inc. Pages 30-53, March 5, 1982
Days). ELIS from the viewpoint of sensitivity, simplicity, etc.
Method A is widely used.

【0149】マラチオンの測定は、各種ELISA法の
うち例えば間接競合阻害ELISA法により、以下のよ
うな手順により行うことができる。
[0149] Malathion can be measured by the following procedure using, for example, an indirect competitive inhibition ELISA method among various ELISA methods.

【0150】(a)まず、固相化用抗原であるマラチオ
ンハプテンと高分子化合物との結合体を担体に固相化す
る。
(A) First, a conjugate of malathion hapten, which is an antigen for immobilization, and a polymer compound is immobilized on a carrier.

【0151】(b)固相化用抗原が吸着していない固相
表面を抗原と無関係な、例えばタンパク質によりブロッ
キングする。
(B) The surface of the solid phase on which the antigen for immobilization is not adsorbed is blocked by a protein unrelated to the antigen, for example, a protein.

【0152】(c)これに各種濃度のマラチオンを含む
試料及び抗体を加え、該抗体を前記固相化抗原及びマラ
チオンに競合的に反応させて、固相化抗原−抗体複合体
及び、マラチオン−抗体複合体を生成させる。
(C) A sample containing various concentrations of malathion and an antibody are added thereto, and the antibody is allowed to react competitively with the immobilized antigen and malathion to thereby form an immobilized antigen-antibody complex and malathion-malathion. Generate antibody conjugates.

【0153】(d)固相化抗原−抗体複合体の量を測定
することにより、予め作成した検量線から試料中のマラ
チオンの量を決定することができる。
(D) By measuring the amount of the immobilized antigen-antibody complex, the amount of malathion in the sample can be determined from a previously prepared calibration curve.

【0154】(a)工程において、固相化用抗原を固相
化する担体としては、特別な制限はなく、ELISA法
において常用されるものをいずれも使用することができ
る。例えば、ポリスチレン製の96ウェルのマイクロタ
イタープレートが挙げられる。
In step (a), the carrier for immobilizing the antigen for immobilization is not particularly limited, and any carrier commonly used in ELISA can be used. An example is a 96-well microtiter plate made of polystyrene.

【0155】固相化用抗原を担体に固相化させるには、
例えば、抗原を含む緩衝液を担体上に載せ、インキュベ
ーションすればよい。緩衝液としては公知のものが使用
でき、例えば、リン酸緩衝液を挙げることができる。緩
衝液中の抗原の濃度は広い範囲から選択できるが、通常
0.01μg/mlから100μg/ml程度、好まし
くは0.05μg/mlから5μg/mlが適してい
る。また、担体として96ウェルのマイクロタイタープ
レートを使用する場合には、300μl/ウェル以下で
20μl/ウェルから150μl/ウェル程度が望まし
い。更に、インキュベーションの条件にも特に制限はな
いが、通常4℃程度で一晩インキュベーションが適して
いる。
To immobilize the solid phase antigen on a carrier,
For example, a buffer containing an antigen may be placed on a carrier and incubated. As the buffer, a known buffer can be used, and examples thereof include a phosphate buffer. The concentration of the antigen in the buffer solution can be selected from a wide range, but is usually about 0.01 μg / ml to 100 μg / ml, preferably 0.05 μg / ml to 5 μg / ml. When a 96-well microtiter plate is used as a carrier, it is desirable that the concentration be about 300 μl / well or less and about 20 μl / well to about 150 μl / well. Furthermore, the conditions for incubation are not particularly limited, but usually incubation at about 4 ° C. overnight is suitable.

【0156】なお、担体に固相化させる固相化用抗原と
しては、抗体を作製したマラチオンハプテンと高分子化
合物との結合体自体のみならず、式(1)で表される他
のハプテンと高分子化合物との結合体を固相化抗原とし
て使用することも可能である。例えば、式(1)におい
てX、Z、k、m又はnが抗体作製用抗原と相違する化
合物を、固相化抗原として使用することもできる。さら
に、式(1)に含まれない他のマラチオン類似化合物
も、固相化抗原として使用可能である。
The immobilization antigen to be immobilized on the carrier includes not only the conjugate of the malathion hapten for which the antibody was prepared and the polymer compound itself, but also other hapten represented by the formula (1). A conjugate with a polymer compound can also be used as an immobilized antigen. For example, in formula (1), a compound in which X, Z, k, m or n is different from the antigen for preparing an antibody can be used as the immobilized antigen. Further, other malathion-like compounds not included in the formula (1) can be used as the immobilized antigen.

【0157】(b)工程のブロッキングは、固相化用抗
原(マラチオンハプテンと高分子化合物との結合体)を
固相化した担体において、マラチオンハプテン部分以外
に後で添加する抗体が吸着され得る部分が存在する場合
があり、もっぱらそれを防ぐ目的で行われる。ブロッキ
ング剤として、例えば、BSAやスキムミルク溶液を使
用できる。あるいは、ブロックエース(「Block‐
Ace」、大日本製薬社製、コードNo.UK−25
B)等のブロッキング剤として市販されているものを使
用することもできる。具体的には、限定されるわけでは
ないが、例えば固相化用抗原を固相化した部分に、ブロ
ッキング剤を含む緩衝液[例えば、1%BSAと60m
M NaClを添加した85mM ホウ酸緩衝液(pH
8.0)]を適量加え、約4℃、室温で、1時間から5
時間インキュベーションした後、洗浄液で洗浄すること
により行われる。洗浄液としては特に制限はないが、例
えば、60mM NaClを添加した85mM ホウ酸
緩衝液(pH8.0)を用いることができる。
In the blocking in the step (b), an antibody to be added later besides the malathion hapten portion can be adsorbed on a carrier on which an antigen for immobilization (malathion hapten and a polymer compound) is immobilized. Parts may be present and are used solely to prevent them. As a blocking agent, for example, BSA or skim milk solution can be used. Or, Block Ace ("Block-
Ace ", manufactured by Dainippon Pharmaceutical Co., Ltd., code No. UK-25
A commercially available blocking agent such as B) can also be used. Specifically, although not limited, for example, a buffer solution containing a blocking agent [eg, 1% BSA and 60 mM
85 mM borate buffer (pH
8.0)], and at about 4 ° C. and room temperature, for 1 hour to 5 hours.
After incubation for a period of time, washing is performed with a washing solution. The washing solution is not particularly limited, but for example, an 85 mM borate buffer (pH 8.0) to which 60 mM NaCl is added can be used.

【0158】次いで(c)工程において、マラチオンを
含む試料と抗体を固相化抗原と接触させ、抗体を固相化
抗原及びマラチオンと反応させることにより、固相化抗
原−抗体複合体及びマラチオン−抗体複合体が生成す
る。
Next, in step (c), the sample containing malathion and the antibody are brought into contact with the immobilized antigen, and the antibody is reacted with the immobilized antigen and malathion, whereby the immobilized antigen-antibody complex and malathion- An antibody complex is formed.

【0159】この際、抗体としては、第一抗体として本
願発明のマラチオンに対する抗体を加え、更に第二抗体
として標識酵素を結合した第一抗体に対する抗体を順次
加えて反応させる。
At this time, as the antibody, an antibody against malathion of the present invention is added as a first antibody, and an antibody against the first antibody to which a labeling enzyme is bound is sequentially added as a second antibody to react.

【0160】第一抗体は緩衝液に溶解して添加する。限
定されるわけではないが、反応は、10℃から40℃、
好ましくは25℃から37℃で約1時間行えばよい。反
応終了後、緩衝液で担体を洗浄し、固相化抗原に結合し
なかった第一抗体を除去する。洗浄液としては、例え
ば、60mM NaClを添加した85mM ホウ酸緩
衝液(pH8.0)を用いることができる。
The first antibody is dissolved in a buffer and added. Although not limited, the reaction is carried out at 10 to 40 ° C,
Preferably, the heat treatment may be performed at 25 ° C. to 37 ° C. for about 1 hour. After completion of the reaction, the carrier is washed with a buffer to remove the first antibody that has not bound to the immobilized antigen. As the washing solution, for example, 85 mM borate buffer (pH 8.0) to which 60 mM NaCl is added can be used.

【0161】次いで第二抗体を添加する。例えば第一抗
体としてマウスモノクローナル抗体を用いる場合、酵素
(例えば、ペルオキシダーゼ又はアルカリホスファター
ゼ等)を結合した抗マウス−ヤギ抗体を用いるのが適当
である。担体に結合した第一抗体に約500倍から約1
0000倍、好ましくは最終吸光度が4以下、より好ま
しくは0.5−3.0となるように希釈した第二抗体を
反応させるのが望ましい。希釈には緩衝液を用いる。限
定されるわけではないが、反応は室温で約1時間行い、
反応後、緩衝液で洗浄する。以上の反応により、第二抗
体が第一抗体に結合する。また、標識した第一抗体を用
いてもよく、その場合、第二抗体は不要である。
Next, a second antibody is added. For example, when a mouse monoclonal antibody is used as the first antibody, it is appropriate to use an anti-mouse-goat antibody conjugated with an enzyme (for example, peroxidase or alkaline phosphatase). About 500-fold to about 1-fold for the first antibody bound to the carrier
It is desirable to react the second antibody diluted so as to have a final absorbance of 0000 times, preferably 4 or less, more preferably 0.5 to 3.0. Buffer is used for dilution. Without limitation, the reaction is carried out at room temperature for about 1 hour,
After the reaction, the plate is washed with a buffer. By the above reaction, the second antibody binds to the first antibody. Alternatively, a labeled first antibody may be used, in which case the second antibody is not required.

【0162】次いで(d)工程において担体に結合した
第二抗体の標識物質と反応する発色基質溶液を加え、吸
光度を測定することによって検量線からマラチオンの量
を算出することができる。
Next, in step (d), a chromogenic substrate solution that reacts with the labeling substance of the second antibody bound to the carrier is added, and the amount of malathion can be calculated from the calibration curve by measuring the absorbance.

【0163】第二抗体に結合する酵素としてペルオキシ
ダーゼを使用する場合には、例えば、過酸化水素、並び
に3,3’,5,5’−テトラメチルベンジジン又はο
−フェニレンジアミン(以下、「OPD」と言う)を含
む発色基質溶液を使用することができる。限定されるわ
けではないが、発色基質溶液を加え室温で約10分間反
応させた後、1Nの硫酸を加えることにより酵素反応を
停止させる。3,3’,5,5’−テトラメチルベンジ
ジンを使用する場合、450nmの吸光度を測定する。
OPDを使用する場合、492nmの吸光度を測定す
る。一方、第二抗体に結合する酵素としてアルカリホス
ファターゼを使用する場合には、例えばp−ニトロフェ
ニルリン酸を基質として発色させ、2NのNaOHを加
えて酵素反応を止め、415nmでの吸光度を測定する
方法が適している。
When peroxidase is used as the enzyme that binds to the second antibody, for example, hydrogen peroxide and 3,3 ′, 5,5′-tetramethylbenzidine or o
-A chromogenic substrate solution containing phenylenediamine (hereinafter referred to as "OPD") can be used. Although not limited, a chromogenic substrate solution is added and reacted at room temperature for about 10 minutes, and then the enzyme reaction is stopped by adding 1N sulfuric acid. When 3,3 ', 5,5'-tetramethylbenzidine is used, the absorbance at 450 nm is measured.
If OPD is used, measure the absorbance at 492 nm. On the other hand, when alkaline phosphatase is used as the enzyme that binds to the second antibody, for example, color is developed using p-nitrophenyl phosphate as a substrate, the enzyme reaction is stopped by adding 2N NaOH, and the absorbance at 415 nm is measured. The method is suitable.

【0164】マラチオンを添加しない反応溶液の吸光度
に対して、それらを添加して抗体と反応させた溶液の吸
光度の減少率を阻害率として計算する。既知の濃度のマ
ラチオンを添加した反応液の阻害率により予め作成して
おいた検量線を用いて、試料中のマラチオンの濃度を算
出できる。
With respect to the absorbance of the reaction solution to which malathion was not added, the rate of decrease in the absorbance of the solution in which malathion was added and reacted with the antibody was calculated as the inhibition rate. The concentration of malathion in a sample can be calculated using a calibration curve prepared in advance based on the inhibition rate of a reaction solution to which malathion of a known concentration has been added.

【0165】あるいはマラチオンの測定は、例えば以下
に述べるような本発明のモノクローナル抗体を用いた直
接競合阻害ELISA法によって行うこともできる。
Alternatively, the measurement of malathion can be carried out, for example, by a direct competitive inhibition ELISA using the monoclonal antibody of the present invention as described below.

【0166】(a)まず、本発明のモノクローナル抗体
を、担体に固相化する。 (b)抗体が固相化されていない担体表面を抗原と無関
係な、例えばタンパク質により、ブロッキングする。
(A) First, the monoclonal antibody of the present invention is immobilized on a carrier. (B) Blocking the surface of the carrier on which the antibody is not immobilized, with a protein unrelated to the antigen, for example, a protein.

【0167】(c)各種濃度のマラチオンを含む試料及
び、マラチオンハプテンと酵素を結合させた酵素結合ハ
プテンを、担体に固相化した抗体と反応させる。
(C) A sample containing malathion at various concentrations and an enzyme-bound hapten obtained by binding a malathion hapten to an enzyme are reacted with an antibody immobilized on a carrier.

【0168】(d)固相化抗体−酵素結合ハプテン複合
体の量を測定することにより、あらかじめ作成した、検
量線から試料中のマラチオンの量を決定する。
(D) By measuring the amount of the immobilized antibody-enzyme-bound hapten complex, the amount of malathion in the sample is determined from a previously prepared calibration curve.

【0169】(a)工程においてモノクローナル抗体を
固相化する担体としては、特別な制限はなくELISA
法において常用されるものを用いることができ、例えば
96ウェルのマイクロタイタープレートが挙げられる。
モノクローナル抗体の固相化は、例えばモノクローナル
抗体を含む緩衝液を担体上にのせ、インキュベートする
ことによって行える。緩衝液の組成・濃度は前述の間接
競合阻害ELISA法と同様のものを採用できる。
The carrier on which the monoclonal antibody is immobilized in the step (a) is not particularly limited and may be an ELISA.
Conventional methods can be used, and examples include a 96-well microtiter plate.
The immobilization of the monoclonal antibody can be carried out, for example, by placing a buffer containing the monoclonal antibody on a carrier and incubating. The composition and concentration of the buffer can be the same as in the indirect competitive inhibition ELISA method described above.

【0170】(b)工程のブロッキングは、抗体を固相
化した担体において、後に添加する試料中のマラチオン
並びに酵素結合ハプテンが、抗原抗体反応とは無関係に
吸着される部分が存在する場合があるので、それを防ぐ
目的で行う。ブロッキング剤及びその方法は、前述の間
接競合阻害ELISA法と同様のものを使用できる。
In the blocking in the step (b), there is a case where the carrier on which the antibody is immobilized has a portion where malathion and enzyme-bound hapten in the sample to be added later are adsorbed independently of the antigen-antibody reaction. So do it to prevent it. As the blocking agent and the method therefor, those similar to the indirect competitive inhibition ELISA method described above can be used.

【0171】(c)工程において用いる酵素結合ハプテ
ンの調製は、マラチオンハプテンを酵素に結合する方法
であれば特に制限なく、いかなる方法で行ってもよい。
例えば、前述した活性化エステル法を採用することがで
きる。調製した酵素結合ハプテンは、マラチオンを含む
試料と混合する。
The preparation of the enzyme-linked hapten used in the step (c) is not particularly limited as long as it is a method of binding the malathion hapten to the enzyme, and may be carried out by any method.
For example, the activated ester method described above can be employed. The prepared enzyme-linked hapten is mixed with a sample containing malathion.

【0172】なお、酵素等の標識物質に結合させるハプ
テンとしては、間接競合阻害ELISA法における固相
化抗原の場合と同様に、抗体作製に使用したマラチオン
ハプテン自体のみならず、式(1)で表される他のハプ
テンと高分子化合物との結合体を標識競合用抗原として
使用することも可能である。例えば、式(1)において
X、Z、k、m又はnが抗体作製用抗原と相違する化合
物を、標識競合用抗原として使用することもできる。さ
らに、式(1)に含まれない他のマラチオン類似化合物
も、標識競合用抗原として使用可能である。
The hapten to be bound to a labeling substance such as an enzyme is not limited to the malathion hapten itself used for preparing the antibody, but also to the formula (1), as in the case of the immobilized antigen in the indirect competitive inhibition ELISA method. It is also possible to use a conjugate of another represented hapten and a polymer compound as an antigen for labeling competition. For example, a compound in which X, Z, k, m, or n in formula (1) is different from the antigen for preparing an antibody can be used as the antigen for labeling competition. Further, other malathion-like compounds not included in the formula (1) can also be used as antigens for labeling competition.

【0173】(c)工程においてマラチオンを含む試料
及び酵素結合ハプテンを抗体固相化担体に接触させ、マ
ラチオンと酵素結合ハプテンとの競合阻害反応により、
これらと固相化担体との複合体が生成する。マラチオン
を含む試料は適当な緩衝液で希釈して使用する。限定さ
れるわけではないが、反応は例えば、室温でおよそ1時
間行う。反応終了後、緩衝液で担体を洗浄し、固相化抗
体と結合しなかった酵素結合ハプテンを除去する。洗浄
液は、例えば60mM NaClを添加した85mM
ホウ酸緩衝液(pH8.0)を使用することができる。
In the step (c), a sample containing malathion and an enzyme-bound hapten are brought into contact with an antibody-immobilized carrier, and a competition inhibition reaction between malathion and the enzyme-bound hapten is carried out.
A complex of these and the solid-phased carrier is formed. The sample containing malathion is used after being diluted with an appropriate buffer. Without limitation, the reaction is carried out, for example, at room temperature for approximately one hour. After the completion of the reaction, the carrier is washed with a buffer to remove the enzyme-bound hapten that has not bound to the immobilized antibody. The washing solution is, for example, 85 mM containing 60 mM NaCl.
A borate buffer (pH 8.0) can be used.

【0174】さらに、(d)工程において酵素結合ハプ
テンの酵素に反応する発色基質溶液を前述の間接競合阻
害ELISA法と同様に加え、吸光度を測定することに
より検量線からマラチオンの量を算出することができ
る。
Further, in step (d), a chromogenic substrate solution which reacts with the enzyme of the enzyme-bound hapten is added in the same manner as in the indirect competitive inhibition ELISA method described above, and the absorbance is measured to calculate the amount of malathion from the calibration curve. Can be.

【0175】例えば、本発明のモノクローナル抗体ML
T2−23及びMLT40−4を用いた直接競合阻害E
LISA法では5ng/mlから1000ng/ml、
好ましくは10ng/mlから300ng/mlの範囲
で、MLT45−3では、直接競合阻害ELISA法に
おいて50ng/mlから5000ng/ml、好まし
くは100ng/mlから1000ng/mlの範囲で
マラチオンを測定できる(実施例13、図1)。
For example, the monoclonal antibody ML of the present invention
Direct competitive inhibition E using T2-23 and MLT40-4
In the LISA method, 5 ng / ml to 1000 ng / ml,
Malathion can be measured preferably in the range of 10 ng / ml to 300 ng / ml, and with MLT45-3, in the direct competitive inhibition ELISA method, malathion can be measured in the range of 50 ng / ml to 5000 ng / ml, preferably 100 ng / ml to 1000 ng / ml. Example 13, FIG. 1).

【0176】さらに、前述したように直接競合阻害EL
ISA法において抗体作製用と異なるハプテンを標識競
合用ハプテンとして使用できる。例えば、本発明のモノ
クローナル抗体MLT2−23はマラチオンハプテン−
5を用いて得られた抗体であるが、標識競合用ハプテン
としてマラチオンハプテン−6を用いた場合、4ng/
mlから100ng/mlの濃度範囲で、マラチオンハ
プテン−4を用いた場合10ng/mlから1000n
g/mlの濃度範囲でマラチオンと反応する。また、モ
ノクローナル抗体MLT40−4もマラチオンハプテン
−5を用いて得られた抗体であるが、標識競合用ハプテ
ンとしてマラチオンハプテン−6を用いた場合40ng
/mlから1000ng/mlの濃度範囲で、マラチオ
ンハプテン−4を用いた場合10ng/mlから300
ng/mlの濃度範囲でマラチオンと反応する(実施例
14、図2)。
Further, as described above, the direct competitive inhibition EL
In the ISA method, a hapten different from that for antibody production can be used as a hapten for labeling competition. For example, the monoclonal antibody MLT2-23 of the present invention is a malathion hapten-
5, but when malathion hapten-6 was used as the hapten for labeling competition, 4 ng /
When malathion hapten-4 is used in a concentration range of 100 ng / ml to 100 ng / ml, 10 ng / ml to 1000 n is used.
Reacts with malathion in a concentration range of g / ml. Monoclonal antibody MLT40-4 is also an antibody obtained using malathion hapten-5, but 40 ng when malathion hapten-6 is used as a hapten for labeling competition.
When malathion hapten-4 is used in a concentration range of 10 ng / ml to 300 ng / ml to 300 ng / ml.
Reacts with malathion in a concentration range of ng / ml (Example 14, FIG. 2).

【0177】このように本発明のモノクローナル抗体
は、標識競合用ハプテンとの組み合わせによって直接競
合阻害ELISA法において固有の反応性を示す。特に
モノクローナル抗体MLT2−23とマラチオンハプテ
ン−6/HRPを組み合わせた場合、マラチオンと最も
高い反応性となる。本発明の抗体の交差反応性 上述した直接競合阻害ELISA法又は間接競合阻害E
LISA法により、本発明のモノクローナル抗体の交差
反応性を調べることができる。
As described above, the monoclonal antibody of the present invention exhibits a unique reactivity in the direct competitive inhibition ELISA method in combination with the hapten for labeling competition. Particularly, when the monoclonal antibody MLT2-23 and malathion hapten-6 / HRP are combined, the reactivity with malathion is highest. Cross Reactivity of Antibodies of the Invention Direct Competition Inhibition ELISA or Indirect Competition Inhibition E
The cross-reactivity of the monoclonal antibody of the present invention can be examined by the LISA method.

【0178】例えば、MLT2−23はマラチオンの代
謝物であるマラオクソンと1.6%の交差反応性を示す
ものの、他の化合物に対してはすべて1%以下しか交差
反応をせず、マラチオンに対する高い特異性を有する
(実施例15、表28)。以下、実施例によって本発明
を具体的に説明するが、これらは本発明の技術的範囲を
限定するためのものではない。当業者は本明細書の記載
に基づいて容易に本発明に修飾、変更を加えることがで
き、それらは本発明の技術的範囲に含まれる。
For example, MLT2-23 shows 1.6% cross-reactivity with malathion, a metabolite of malathion, but all other compounds only cross-react with less than 1%, indicating high reactivity with malathion. It has specificity (Example 15, Table 28). Hereinafter, the present invention will be described specifically with reference to Examples, but these are not intended to limit the technical scope of the present invention. Those skilled in the art can easily modify and change the present invention based on the description in the present specification, and they are included in the technical scope of the present invention.

【0179】[0179]

【実施例】実施例1 マラチオンハプテン−1の合成 EXAMPLES Example 1 Synthesis of Malathion Hapten-1

【0180】[0180]

【化32】 Embedded image

【0181】(2)の合成 22.2g(100mmol)の五硫化二リンをトルエ
ン溶液100mlに溶解し、メタノール16g(500
mmol)を50℃で滴下して3.5時間撹拌した。こ
の溶液を氷冷しながら2Nの水酸化ナトリウム水溶液で
pHを6に調整した。34g(200mmol)のブロ
モ酢酸エチルを室温で滴下し、60℃で30分、そして
70℃で30分撹拌した。トルエン層を集めて、脱水
(無水硫酸マグネシウム)、ろ過、濃縮後にシリカゲル
カラム(n−ヘキサン:酢酸エチル=49:1→19:
1→9:1→2:1)で精製すると、黄色の透明油状物
として22.4g(収率46%)の(2)を得た。
Synthesis of (2) 22.2 g (100 mmol) of diphosphorus pentasulfide was dissolved in 100 ml of a toluene solution, and methanol (16 g, 500 g) was dissolved.
mmol) was added dropwise at 50 ° C. and stirred for 3.5 hours. The pH of this solution was adjusted to 6 with a 2N aqueous sodium hydroxide solution while cooling with ice. 34 g (200 mmol) of ethyl bromoacetate was added dropwise at room temperature and stirred at 60 ° C. for 30 minutes and at 70 ° C. for 30 minutes. The toluene layer was collected, dehydrated (anhydrous magnesium sulfate), filtered and concentrated, and then subjected to a silica gel column (n-hexane: ethyl acetate = 49: 1 → 19:
Purification (1 → 9: 1 → 2: 1) afforded 22.4 g (46% yield) of (2) as a clear yellow oil.

【0182】[0182]

【表1】1 H−NMR(CDCl3) 1.21−1.34(3H,t)、3.53−3.65(2H,d) 4.13−4.26(2H,q)(3)の合成 1.0Mのリチウムビス(トリメチルシリル)アミド
(LiHMDS:ヘキサメチルジシラザン・リチウム)
31mlをドライアイス−アセトンでマイナス70℃以
下に冷却し、窒素気流下で7.5g(30mmol)の
(2)を滴下した。1時間撹拌後、6.0g(30mm
ol)のブロモ酢酸tert−ブチルのTHF溶液5m
lを滴下した。滴下終了後にデュアーバスをはずして1
時間撹拌した。反応溶液を減圧濃縮して、シリカゲルク
ロマトグラフィー(n−ヘキサン:酢酸エチル=19:
1→9:1)で精製すると、透明油状物として7.1g
(収率66%)の(3)を得た。
TABLE 1 1 H-NMR (CDCl 3) 1.21-1.34 (3H, t), 3.53-3.65 (2H, d) 4.13-4.26 (2H, q) ( Synthesis of 3) 1.0 M lithium bis (trimethylsilyl) amide
(LiHMDS: lithium hexamethyldisilazane)
31 ml was cooled to −70 ° C. or less with dry ice-acetone, and 7.5 g (30 mmol) of (2) was added dropwise under a nitrogen stream. After stirring for 1 hour, 6.0 g (30 mm
ol) in THF solution of tert-butyl bromoacetate 5m
1 was added dropwise. After dropping, remove the Dewar bath and remove
Stirred for hours. The reaction solution was concentrated under reduced pressure and subjected to silica gel chromatography (n-hexane: ethyl acetate = 19:
1 → 9: 1), 7.1 g as a clear oil
(Yield 66%) (3) was obtained.

【0183】[0183]

【表2】1 H−NMR(CDCl3) 1.21−1.33(3H,t)、1.37−1.49(9H,s) 2.75−3.00(2H,m)、3.70−3.87(6H,m) 3.99−4.27(3H,m)(4)の合成 7.0g(19mmol)の(3)を100mlのジク
ロロメタンに溶解させ、トリフルオロ酢酸(TFA)5
mlを加えて室温で1時間撹拌し、更にTFA5mlを
添加して1.5時間撹拌した。反応溶液を減圧濃縮し
て、シリカゲルクロマトグラフィー(n−ヘキサン:酢
酸エチル=4:1→2:1→1:1)で精製すると、透
明油状物として5.06g(収率86%)の(4)を得
た。
1 H-NMR (CDCl 3 ) 1.21-1.33 (3H, t), 1.37-1.49 (9H, s) 2.75-3.00 (2H, m), 3.70-3.87 (6H, m) 3.99-4.27 (3H, m) Synthesis of (4) 7.0 g (19 mmol) of (3) was dissolved in 100 ml of dichloromethane, and trifluoroacetic acid was dissolved. (TFA) 5
The mixture was stirred at room temperature for 1 hour, and 5 ml of TFA was further added and stirred for 1.5 hours. The reaction solution was concentrated under reduced pressure, and purified by silica gel chromatography (n-hexane: ethyl acetate = 4: 1 → 2: 1 → 1: 1) to obtain 5.06 g (yield 86%) of a transparent oil as a transparent oil (yield: 86%). 4) was obtained.

【0184】[0184]

【表3】1 H−NMR(CDCl3) 1.23−1.35(3H,t)、2.90−3.18(2H,m) 3.76−3.87(6H,d)、4.06−4.29(3H,m)(5)の合成 2.46g(8.1mmol)の(4)をテトラヒドロ
フラン(THF)30mlに溶解し、この溶液を塩−氷
で冷却しながら0.82g(8.1mmol)のN−メ
チルモルホリン(NMM)のTHF溶液10ml、次い
で蟻酸イソブチル1.1g(8.1mmol)のTHF
溶液10mlを滴下した。10分間撹拌後に、1.5g
(8.1mmol)の6−アミノヘキサン酸tert−
ブチルのTHF溶液10mlを滴下した。5分間氷冷下
で撹拌後、4℃で20分、更に室温で10分撹拌した。
溶媒を留去後に残渣をジクロロメタンで再溶解させて、
水洗、脱水(無水硫酸マグネシウム)、ろ過、濃縮後に
シリカゲルクロマトグラフィー(n−ヘキサン:酢酸エ
チル=2:1→1:1)で粗精製した。(6)の合成 (5)を含む粗精製物を100mlのジクロロメタンに
溶解させ、TFA10mlを加えて室温で2時間撹拌し
た。反応溶液を減圧濃縮して、シリカゲルクロマトグラ
フィー(n−ヘキサン:酢酸エチル=2:1→1:1→
酢酸エチル)で精製すると、透明油状物として1.94
g((4)からの通算収率57%)の(6)を得た。
Table 3 1 H-NMR (CDCl 3 ) 1.23-1.35 (3H, t), 2.90-3.18 (2H, m) 3.76-3.87 (6H, d), 4.06-4.29 (3H, m) Synthesis of (5) 2.46 g (8.1 mmol) of (4) was dissolved in 30 ml of tetrahydrofuran (THF), and the solution was cooled to 0 with salt-ice. 10 ml of a THF solution of 0.82 g (8.1 mmol) of N-methylmorpholine (NMM) and then 1.1 g (8.1 mmol) of isobutyl formate in THF
10 ml of the solution was added dropwise. 1.5g after stirring for 10 minutes
(8.1 mmol) of tert- 6-aminohexanoic acid
10 ml of a THF solution of butyl was added dropwise. After stirring under ice-cooling for 5 minutes, the mixture was stirred at 4 ° C. for 20 minutes and further at room temperature for 10 minutes.
After evaporating the solvent, the residue was redissolved with dichloromethane,
After washing with water, dehydration (anhydrous magnesium sulfate), filtration and concentration, crude purification was performed by silica gel chromatography (n-hexane: ethyl acetate = 2: 1 → 1: 1). Synthesis of (6) The crude product containing (5) was dissolved in 100 ml of dichloromethane, 10 ml of TFA was added, and the mixture was stirred at room temperature for 2 hours. The reaction solution was concentrated under reduced pressure, and silica gel chromatography (n-hexane: ethyl acetate = 2: 1 → 1: 1 →
(Ethyl acetate) to give 1.94 as a clear oil.
g (57% of the total yield from (4)) was obtained.

【0185】[0185]

【表4】1 H−NMR(CDCl3) 1.14−1.71(9H,重複)、2.25−2.41(2H,t) 2.61−2.94(2H, m)、3.12−3.31(2H,m) 3.67−3.86(6H, m)、4.03−4.27(3H,重複) 5.59−5.65(1H,br)実施例2 マラチオンハプテン−2の合成 TABLE 4 1 H-NMR (CDCl 3) 1.14-1.71 (9H, overlapping), 2.25-2.41 (2H, t) 2.61-2.94 (2H, m), 3.12-3.31 (2H, m) 3.67-3.86 ( 6H, m), 4.03-4.27 (3H, overlapping) 5.59-5.65 (1H, br) carried Example 2 Synthesis of Malathion Hapten-2

【0186】[0186]

【化33】 Embedded image

【0187】(2)の合成 22.2g(100mmol)の五硫化二リンをトルエ
ン溶液100mlに溶解し、メタノール16g(500
mmol)を50℃で滴下して3.5時間撹拌した。こ
の溶液を氷冷しながら2Nの水酸化ナトリウム水溶液で
pHを6に調整した。ブロモ酢酸tert−ブチル35
g(179mmol)を室温で滴下し、60℃で1時間
撹拌した。トルエン層を集めて、脱水(無水硫酸マグネ
シウム)、ろ過、濃縮後にシリカゲルカラム(n−ヘキ
サン:酢酸エチル=49:1→9:1)で精製すると、
黄色の透明油状物として18.7g(収率34%)の
(2)を得た。
Synthesis of (2) 22.2 g (100 mmol) of diphosphorus pentasulfide was dissolved in 100 ml of a toluene solution, and methanol (16 g, 500 g) was dissolved.
mmol) was added dropwise at 50 ° C. and stirred for 3.5 hours. The pH of this solution was adjusted to 6 with a 2N aqueous sodium hydroxide solution while cooling with ice. Tert-butyl bromoacetate 35
g (179 mmol) was added dropwise at room temperature, and the mixture was stirred at 60 ° C. for 1 hour. The toluene layer was collected, dehydrated (anhydrous magnesium sulfate), filtered, concentrated, and then purified by a silica gel column (n-hexane: ethyl acetate = 49: 1 → 9: 1).
18.7 g (34% yield) of (2) was obtained as a yellow transparent oil.

【0188】[0188]

【表5】1 H−NMR(CDCl3) 1.48(9H,s)、3.41−3.57(2H,d) 3.68−3.87(6H,d)(3)の合成 1.0Mのリチウムビス(トリメチルシリル)アミド1
9mlをドライアイス−アセトンでマイナス70℃以下
に冷却し、窒素気流下で5.0g(18mmol)の
(2)を滴下した。1時間撹拌後、3.1g(18mm
ol)のブロモ酢酸エチルのTHF溶液5mlを滴下し
た。滴下終了後にデュアーバスをはずして1時間撹拌し
た。反応溶液を減圧濃縮後、酢酸エチルに溶解して水洗
した。その濃縮液をシリカゲルクロマトグラフィー(n
−ヘキサン:酢酸エチル=19:1→9:1)で精製す
ると、透明油状物として3.5g(収率53%)の
(3)を得た。
Table 5 Synthesis of 1 H-NMR (CDCl 3 ) 1.48 (9H, s), 3.41-3.57 (2H, d) 3.68-3.87 (6H, d) (3) 1.0 M lithium bis (trimethylsilyl) amide 1
9 ml was cooled to −70 ° C. or less with dry ice-acetone, and 5.0 g (18 mmol) of (2) was added dropwise under a nitrogen stream. After stirring for 1 hour, 3.1 g (18 mm
ol) in 5 ml of a THF solution of ethyl bromoacetate. After completion of the dropping, the Dewar bath was removed and the mixture was stirred for 1 hour. The reaction solution was concentrated under reduced pressure, dissolved in ethyl acetate, and washed with water. The concentrate is subjected to silica gel chromatography (n
-Hexane: ethyl acetate = 19: 1 → 9: 1) gave 3.5 g (53% yield) of (3) as a clear oil.

【0189】[0189]

【表6】1 H−NMR(CDCl3) 1.20−1.30(3H,t)、1.48(9H,s) 2.79−3.05(2H,m)、3.73−3.87(6H,m) 3.97−4.23(3H,m)(4)の合成 3.4g(9.5mmol)の(3)を100mlのジ
クロロメタンに溶解させ、トリフルオロ酢酸(TFA)
5mlを加えて室温で3時間撹拌し、更にTFA5ml
を添加して40分間撹拌した。反応溶液を減圧濃縮し
て、シリカゲルクロマトグラフィー(n−ヘキサン:酢
酸エチル=4:1→2:1)で精製すると、透明油状物
として2.2g(収率76%)の(4)を得た。
TABLE 6 1 H-NMR (CDCl 3) 1.20-1.30 (3H, t), 1.48 (9H, s) 2.79-3.05 (2H, m), 3.73- 3.87 (6H, m) 3.97-4.23 (3H, m) Synthesis of (4) 3.4 g (9.5 mmol) of (3) was dissolved in 100 ml of dichloromethane, and trifluoroacetic acid (TFA) was dissolved. )
5 ml was added and the mixture was stirred at room temperature for 3 hours.
Was added and stirred for 40 minutes. The reaction solution was concentrated under reduced pressure and purified by silica gel chromatography (n-hexane: ethyl acetate = 4: 1 → 2: 1) to obtain 2.2 g (yield 76%) of (4) as a transparent oil. Was.

【0190】[0190]

【表7】1 H−NMR(CDCl3) 1.20−1.31(3H,t)、2.84−3.11(2H,m) 3.72−3.88(6H,m)、4.06−4.27(3H,m)(5)の合成 1.5g(5mmol)の(4)をテトラヒドロフラン
(THF)30mlに溶解し、この溶液を塩−氷で冷却
しながら0.67g(6.6mmol)のN−メチルモ
ルホリン(NMM)のTHF溶液5ml、次いで0.9
g(6.6mmol)の蟻酸イソブチルのTHF溶液5
mlを滴下した。20分間撹拌後に、1.1g(5.9
mmol)の6−アミノヘキサン酸tert−ブチルの
THF溶液5mlを滴下した。30分間氷冷下で撹拌
後、更に室温で15分撹拌した。溶媒を留去後に残渣を
ジクロロメタンで再溶解させて、水洗、脱水(無水硫酸
マグネシウム)、ろ過、濃縮後にシリカゲルクロマトグ
ラフィー(n−ヘキサン:酢酸エチル=9:1)で精製
すると、透明油状物として390mg(収率16%)の
(5)を得た。
Table 7 1 H-NMR (CDCl 3 ) 1.20-1.31 (3H, t), 2.84-3.11 (2H, m) 3.72-3.88 (6H, m), 4.06-4.27 (3H, m) synthesis 1.5g of (5 mmol) of (5) (4) was dissolved in tetrahydrofuran (THF) 30 ml, the solution salt - 0.67 g while cooling with ice (6.6 mmol) of N-methylmorpholine (NMM) in 5 ml of THF and then 0.9
g (6.6 mmol) of isobutyl formate in THF 5
ml was added dropwise. After stirring for 20 minutes, 1.1 g (5.9
5 mmol of tert-butyl 6-aminohexanoate in THF was added dropwise. After stirring for 30 minutes under ice-cooling, the mixture was further stirred at room temperature for 15 minutes. After the solvent was distilled off, the residue was redissolved in dichloromethane, washed with water, dehydrated (anhydrous magnesium sulfate), filtered, concentrated and purified by silica gel chromatography (n-hexane: ethyl acetate = 9: 1) to give a transparent oil. 390 mg (16% yield) of (5) were obtained.

【0191】[0191]

【表8】1 H−NMR(CDCl3) 1.20−1.67(18H,m)、2.16−2.27(2H,t) 2.81−3.15( 2H,m)、3.20−3.31(2H,m) 3.71−3.83( 6H,m)、3.99−4.19(3H,m) 6.49−6.58( 1H,m)(6)の合成 390mg(830μmol)の(5)を50mlのジ
クロロメタンに溶解させ、TFA5mlを加えて室温で
1時間撹拌した。反応溶液を減圧濃縮して、シリカゲル
クロマトグラフィー(n−ヘキサン:酢酸エチル=2:
1→1:1→酢酸エチル)で精製すると、透明油状物と
して260mg(収率76%)の(6)を得た。
Table 8 1 H-NMR (CDCl 3 ) 1.20-1.67 (18H, m), 2.16-2.27 (2H, t) 2.81-3.15 (2H, m), 3.20-3.31 (2H, m) 3.71-3.83 (6H, m), 3.99-4.19 (3H, m) 6.49-6.58 (1H, m) ( Synthesis of 6) 390 mg (830 μmol) of (5) was dissolved in 50 ml of dichloromethane, 5 ml of TFA was added, and the mixture was stirred at room temperature for 1 hour. The reaction solution was concentrated under reduced pressure, and silica gel chromatography (n-hexane: ethyl acetate = 2:
Purification by (1 → 1: 1 → ethyl acetate) yielded 260 mg (76% yield) of (6) as a clear oil.

【0192】[0192]

【表9】1 H−NMR(CDCl3) 1.22−1.74(9H,m)、2.32−2.43(2H,t) 2.82−3.14(2H,m)、3.22−3.33(2H,m) 3.73−3.84(6H,m)、3.99−4.20(3H,m) 6.56−6.77(1H,m)、8.69−9.25(1H,br)実施例3 マラチオンハプテン−3の合成 Table 9 1 H-NMR (CDCl 3 ) 1.22-1.74 (9H, m), 2.32-2.43 (2H, t) 2.82-3.14 (2H, m), 3.23-3.33 (2H, m) 3.73-3.84 (6H, m), 3.99-4.20 (3H, m) 6.56-6.77 (1H, m), 8.69-9.25 (1H, br) Example 3 Synthesis of Malathion Hapten-3

【0193】[0193]

【化34】 Embedded image

【0194】(2)の合成 22.2g(100mmol)の五硫化二リンをトルエ
ン溶液100mlに溶解し、メタノール16g(500
mmol)を50℃で滴下して3.5時間撹拌した。こ
の溶液を氷冷しながら2Nの水酸化ナトリウム水溶液で
pHを6に調整した。34g(200mmol)のブロ
モ酢酸エチルを室温で滴下し、60℃で30分、そして
70℃で30分撹拌した。トルエン層を集めて、脱水
(無水硫酸マグネシウム)、ろ過、濃縮後にシリカゲル
カラム(n−ヘキサン:酢酸エチル=49:1→19:
1→9:1→2:1)で精製すると、黄色の透明油状物
として22.4g(収率46%)の(2)を得た。
Synthesis of (2) 22.2 g (100 mmol) of diphosphorus pentasulfide was dissolved in 100 ml of a toluene solution, and methanol (16 g, 500 g) was dissolved.
mmol) was added dropwise at 50 ° C. and stirred for 3.5 hours. The pH of this solution was adjusted to 6 with a 2N aqueous sodium hydroxide solution while cooling with ice. 34 g (200 mmol) of ethyl bromoacetate was added dropwise at room temperature and stirred at 60 ° C. for 30 minutes and at 70 ° C. for 30 minutes. The toluene layer was collected, dehydrated (anhydrous magnesium sulfate), filtered and concentrated, and then subjected to a silica gel column (n-hexane: ethyl acetate = 49: 1 → 19:
Purification (1 → 9: 1 → 2: 1) afforded 22.4 g (46% yield) of (2) as a clear yellow oil.

【0195】[0195]

【表10】1 H−NMR(CDCl3) 1.21−1.34(3H,t)、3.53−3.65(2H,d) 4.13−4.26(2H,q)(3)の合成 1.0Mのリチウムビス(トリメチルシリル)アミド
5.3mlをドライアイス−アセトンでマイナス70℃
以下に冷却し、窒素気流下で1.3g(5.3mmo
l)の(2)を滴下した。1時間撹拌後、2.0g
(5.3mmol)の11−(ブロモアセトキシ)ウン
デカン酸tert−ブチルのTHF溶液2mlを滴下し
た。滴下終了後にデュアーバスをはずして1時間撹拌し
た。反応溶液を減圧濃縮後、酢酸エチルに溶解して水洗
した。その濃縮液をシリカゲルクロマトグラフィー(n
−ヘキサン:酢酸エチル=19:1→9:1)で精製す
ると、黄色の透明油状物として1.3g(収率45%)
の(3)を得た。
Table 10 1 H-NMR (CDCl 3 ) 1.21-1.34 (3H, t), 3.53-3.65 (2H, d) 4.13-4.26 (2H, q) ( dry ice lithium bis (trimethylsilyl) amide 5.3ml synthesis 1.0M 3) - minus 70 ° C. with acetone
The mixture was cooled to 1.3 g (5.3 mmo) under a nitrogen stream.
1) (2) was added dropwise. After stirring for 1 hour, 2.0 g
2 ml of a THF solution of (5.3 mmol) tert-butyl 11- (bromoacetoxy) undecanoate was added dropwise. After completion of the dropping, the Dewar bath was removed and the mixture was stirred for 1 hour. The reaction solution was concentrated under reduced pressure, dissolved in ethyl acetate, and washed with water. The concentrate is subjected to silica gel chromatography (n
-Hexane: ethyl acetate = 19: 1 → 9: 1) to give 1.3 g (yield 45%) as a yellow transparent oil.
(3) was obtained.

【0196】[0196]

【表11】1 H−NMR(CDCl3) 1.17−1.47(28H,m)、2.11−2.23(2H,t) 2.82−3.11( 2H,m)、3.71−3.86(6H,m) 4.00−4.27( 5H,m)(4)の合成 1.3g(2.4mmol)の(3)を50mlのジク
ロロメタンに溶解させ、トリフルオロ酢酸5mlを加え
て室温で1.5時間撹拌した。反応溶液を減圧濃縮し
て、シリカゲルクロマトグラフィー(n−ヘキサン:酢
酸エチル=4:1→1:1)で精製すると、黄色の透明
油状物として1.0g(収率88%)の(4)を得た。
[Table 11] 1 H-NMR (CDCl 3 ) 1.17-1.47 (28H, m), 2.11-2.23 (2H, t) 2.82-3.11 (2H, m), 3.71-3.86 (6H, m) 4.00-4.27 ( 5H, m) (4) synthesis 1.3g of (2.4 mmol) of (3) was dissolved in dichloromethane 50ml of tri 5 ml of fluoroacetic acid was added, and the mixture was stirred at room temperature for 1.5 hours. The reaction solution was concentrated under reduced pressure and purified by silica gel chromatography (n-hexane: ethyl acetate = 4: 1 → 1: 1) to obtain 1.0 g (88% yield) of (4) as a yellow transparent oil. I got

【0197】[0197]

【表12】1 H−NMR(CDCl3) 1.17−1.40(15H,m)、1.50−1.70(4H,m) 2.24−2.40( 2H,t)、2.79−3.10(2H,m) 3.68−3.86( 6H,m)、3.99−4.26(5H,m)実施例4 マラチオンハプテン−4の合成 Table 1 1 H-NMR (CDCl 3 ) 1.17 to 1.40 (15H, m), 1.50 to 1.70 (4H, m) 2.24-2.40 (2H, t), 2.79-3.10 (2H, m) 3.68-3.86 (6H, m), 3.99-4.26 (5H, m) Example 4 Synthesis of Malathion Hapten-4

【0198】[0198]

【化35】 Embedded image

【0199】(2)の合成 22.2g(100mmol)の五硫化二リンをトルエ
ン溶液100mlに溶解し、メタノール16g(500
mmol)を50℃で滴下して3.5時間撹拌した。こ
の溶液を氷冷しながら2Nの水酸化ナトリウム水溶液で
pHを6に調整した。34g(200mmol)のブロ
モ酢酸エチルを室温で滴下し、60℃で30分、そして
70℃で30分撹拌した。トルエン層を集めて、脱水
(無水硫酸マグネシウム)、ろ過、濃縮後にシリカゲル
カラム(n−ヘキサン:酢酸エチル=49:1→19:
1→9:1→2:1)で精製すると、黄色の透明油状物
として22.4g(収率46%)の(2)を得た。
Synthesis of (2) 22.2 g (100 mmol) of diphosphorus pentasulfide was dissolved in 100 ml of a toluene solution, and methanol (16 g, 500 g) was dissolved.
mmol) was added dropwise at 50 ° C. and stirred for 3.5 hours. The pH of this solution was adjusted to 6 with a 2N aqueous sodium hydroxide solution while cooling with ice. 34 g (200 mmol) of ethyl bromoacetate was added dropwise at room temperature and stirred at 60 ° C. for 30 minutes and at 70 ° C. for 30 minutes. The toluene layer was collected, dehydrated (anhydrous magnesium sulfate), filtered and concentrated, and then subjected to a silica gel column (n-hexane: ethyl acetate = 49: 1 → 19:
Purification (1 → 9: 1 → 2: 1) afforded 22.4 g (46% yield) of (2) as a clear yellow oil.

【0200】[0200]

【表13】1 H−NMR(CDCl3) 1.21−1.34(3H,t)、3.53−3.65(2H,d) 4.13−4.26(2H,q)(3)の合成 1.0Mのリチウムビス(トリメチルシリル)アミド8
mlをドライアイス−アセトンで−70℃以下に冷却
し、窒素気流下で1.96g(8mmol)の(2)を
滴下した。1時間撹拌後、2.35g(8mmol)の
6−(ブロモアセトキシ)ヘキサン酸tert−ブチル
のTHF溶液5mlを滴下した。滴下終了後にデュアー
バスをはずして1時間撹拌した。反応溶液を減圧濃縮
後、酢酸エチルに溶解して水洗した。その濃縮液をシリ
カゲルクロマトグラフィー(n−ヘキサン:酢酸エチル
=19:1→9:1)で粗精製した。(4)の合成 (3)を含んだ粗精製物を50mlのジクロロメタンに
溶解させ、トリフルオロ酢酸5mlを加えて室温で2時
間撹拌した。反応溶液を減圧濃縮して、シリカゲルクロ
マトグラフィー(n−ヘキサン:酢酸エチル=4:1→
1:1)で精製すると、透明油状物として0.54g
((2)からの通算収率20%)の(4)を得た。
Table 13 1 H-NMR (CDCl 3 ) 1.21-1.34 (3H, t), 3.53-3.65 (2H, d) 4.13-4.26 (2H, q) ( Synthesis of 3) 1.0 M lithium bis (trimethylsilyl) amide 8
The mixture was cooled to −70 ° C. or lower with dry ice-acetone, and 1.96 g (8 mmol) of (2) was added dropwise under a nitrogen stream. After stirring for 1 hour, 5 ml of a THF solution of 2.35 g (8 mmol) of tert-butyl 6- (bromoacetoxy) hexanoate was added dropwise. After completion of the dropping, the Dewar bath was removed and the mixture was stirred for 1 hour. The reaction solution was concentrated under reduced pressure, dissolved in ethyl acetate, and washed with water. The concentrate was roughly purified by silica gel chromatography (n-hexane: ethyl acetate = 19: 1 → 9: 1). Synthesis of (4) The crude product containing (3) was dissolved in 50 ml of dichloromethane, 5 ml of trifluoroacetic acid was added, and the mixture was stirred at room temperature for 2 hours. The reaction solution is concentrated under reduced pressure and silica gel chromatography (n-hexane: ethyl acetate = 4: 1 →
Purification in 1: 1) yielded 0.54 g as a clear oil.
(4) of (total yield from (2) 20%) was obtained.

【0201】[0201]

【表14】1 H−NMR(CDCl3) 1.20−1.50(5H,重複)、1.58−1.76(4H,m) 2.31−2.43(2H, t)、2.82−3.11(2H,m) 3.71−3.88(6H, m)、4.03−4.27(5H,重複)実施例5 マラチオンハプテン−5の合成 Table 1 1 H-NMR (CDCl 3 ) 1.20-1.50 (5H, overlap), 1.58-1.76 (4H, m) 2.31-2.43 (2H, t), 2.82-3.11 (2H, m) 3.71-3.88 (6H, m), 4.03-4.27 (5H, duplicate) Example 5 Synthesis of Malathion Hapten-5

【0202】[0202]

【化36】 Embedded image

【0203】(2)の合成 硫酸10mlをジエチルエーテル100mlに加えた
後、撹拌しながらベンジルアルコール100mlを加え
た。ジエチルエーテルを留去後に13.4g(100m
l)のL−アスパラギン酸を少しずつ加えた。室温で1
日撹拌後に、エタノール200mlとピリジン50ml
を加えて、一晩冷蔵庫に放置した。析出した結晶をろ別
し、エーテルと水で洗浄した後に乾燥させると、11g
(収率49%)の(2)を得た。(3)の合成 11g(49mmol)の(2)を600mlの水に加
えて、80℃で溶解させた。加熱を停止して60℃まで
冷却した時に、10.5g(125mmol)の炭酸水
素ナトリウムと12g(70mmol)のベンジルオキ
シカルボニルクロリド(Z−Cl)を加えて3時間撹拌
した。ジエチルエーテルで洗浄後に、氷冷しながら濃塩
酸でpHを1にして酢酸エチルで抽出した。脱水(無水
硫酸ナトリウム)、ろ過、濃縮後にシリカゲルカラム
(n−ヘキサン:酢酸エチル=9:1→1:2)で精製
すると、白色結晶として4.5g(収率25%)の
(3)を得た。
[0203] After addition of synthetic sulfate 10ml of (2) in diethyl ether 100ml, was added benzyl alcohol 100ml with stirring. After distilling off diethyl ether, 13.4 g (100 m
l) L-Aspartic acid was added in small portions. 1 at room temperature
After stirring for 200 days, ethanol 200 ml and pyridine 50 ml
Was added and left in the refrigerator overnight. The precipitated crystals were collected by filtration, washed with ether and water, and dried, to give 11 g.
(Yield 49%) (2) was obtained. Synthesis of (3) 11 g (49 mmol) of (2) was added to 600 ml of water and dissolved at 80 ° C. When heating was stopped and cooled to 60 ° C., 10.5 g (125 mmol) of sodium hydrogen carbonate and 12 g (70 mmol) of benzyloxycarbonyl chloride (Z-Cl) were added, and the mixture was stirred for 3 hours. After washing with diethyl ether, the mixture was adjusted to pH 1 with concentrated hydrochloric acid while cooling with ice, and extracted with ethyl acetate. After dehydration (anhydrous sodium sulfate), filtration and concentration, purification by a silica gel column (n-hexane: ethyl acetate = 9: 1 → 1: 2) gave 4.5 g (yield 25%) of (3) as white crystals. Obtained.

【0204】[0204]

【表15】1 H−NMR(CDCl3) 2.80−3.17(2H,m)、4.54−4.76(1H,m) 5.11(4H,s)、 5.74−5.89(1H,d) 7.31(10H,s)、 9.38−10.02(1H,br)(4)の合成 4.5g(12.6mmol)の(3)をエタノール1
50mlに溶解し、1.0Mの塩化水素ジエチルエーテ
ル溶液15mlを加えて30分間環流させた。更に該溶
液15mlを加えて30分環流させた後、三度15ml
の該溶液を加えて30分間環流させた。反応液をろ過し
て濃縮後にシリカゲルカラム(n−ヘキサン:酢酸エチ
ル=4:1→2:1)で精製すると、透明油状物として
1.8g(収率37%)の(4)を得た。
Table 15 1 H-NMR (CDCl 3 ) 2.80-3.17 (2H, m), 4.54-4.76 (1H, m) 5.11 (4H, s), 5.74- 5.89 (1H, d) 7.31 (10H, s), 9.38-10.02 (1H, br) Synthesis of (4) 4.5 g (12.6 mmol) of (3) in ethanol 1
The mixture was dissolved in 50 ml, and 15 ml of a 1.0 M solution of hydrogen chloride in diethyl ether was added, followed by reflux for 30 minutes. Further, 15 ml of the solution was added, and the mixture was refluxed for 30 minutes.
Was added and refluxed for 30 minutes. The reaction solution was filtered and concentrated, and then purified by a silica gel column (n-hexane: ethyl acetate = 4: 1 → 2: 1) to obtain 1.8 g (yield 37%) of (4) as a transparent oil. .

【0205】[0205]

【表16】1 H−NMR(CDCl3) 1.13−1.27(3H,t)、2.83−3.14(2H,m) 4.08−4.22(2H,m)、4.58−4.69(1H,m) 5.11(4H,s)、 5.69−5.81(1H, d) 7.34(10H,s)(5)の合成 8.6g(22mmol)の(4)をエタノール200
mlに溶解して、5%パラジウムカーボン2.0gを加
えて水素雰囲気下、室温で1時間撹拌した。反応液をろ
過、濃縮して(5)を得た。(6)の合成 4.2gの粗カルボン酸(5)を300mlの水に加え
て、80℃で溶解させた。加熱を停止して60℃まで冷
却した時に、炭酸水素ナトリウム0.88g(10.5
mmol)を加えた後に3.0g(17.6mmol)
のZ−Clを加えた。更に1.3g(15.5mmo
l)の炭酸水素ナトリウムを加えて3時間撹拌した。ジ
エチルエーテルで洗浄後に、氷冷しながら濃塩酸でpH
を2に調整して酢酸エチルで抽出した。脱水(無水硫酸
ナトリウム)、ろ過、濃縮後にシリカゲルカラム(n−
ヘキサン:酢酸エチル=1:1→1:2)で精製する
と、白色結晶として1.63g((4)からの通算収率
50%)の(6)を得た。
Table 16 1 H-NMR (CDCl 3 ) 1.13-1.27 (3H, t), 2.83-3.14 (2H, m) 4.08-4.22 (2H, m), 4.58-4.69 (1H, m) 5.11 (4H, s), 5.69-5.81 (1H, d) 7.34 (10H, s) Synthesis of 8.6 g of ( 5) 22 mmol) of (4) in ethanol 200
Then, 2.0 g of 5% palladium carbon was added, and the mixture was stirred at room temperature for 1 hour under a hydrogen atmosphere. The reaction solution was filtered and concentrated to obtain (5). Synthesis of (6) 4.2 g of crude carboxylic acid (5) was added to 300 ml of water and dissolved at 80 ° C. When heating was stopped and cooled to 60 ° C., 0.88 g (10.5 g) of sodium hydrogencarbonate was added.
3.0 g (17.6 mmol) after the addition of
Of Z-Cl was added. 1.3 g (15.5 mmo)
1) Sodium bicarbonate was added and stirred for 3 hours. After washing with diethyl ether, pH was adjusted with concentrated hydrochloric acid while cooling with ice.
Was adjusted to 2 and extracted with ethyl acetate. After dehydration (anhydrous sodium sulfate), filtration and concentration, the silica gel column (n-
Purification with hexane: ethyl acetate = 1: 1 → 1: 2) gave 1.63 g (total yield 50% from (4)) of (6) as white crystals.

【0206】[0206]

【表17】1 H−NMR(CDCl3) 1.11−1.30(3H,t)、2.74−3.12(2H,m) 4.06−4.25(2H,m)、4.55−4.70(1H,m) 5.10(2H,s)、 5.84−5.99(1H,d) 7.33(5H,s)、 8.49−9.26(1H,br)(7)の合成 1.63g(5.5mmol)の(6)、224mg
(1.8mmol)のN,N−ジメチルアミノピリジン
(DMAP)、426mg(1.8mmol)のカンフ
ァースルホン酸(CSA)、1.4g(7.4mmo
l)の6−ヒドロキシヘキサン酸tert−ブチルをテ
トラヒドロフラン(THF)50mlに加えた。1.7
g(8.3mmol)のN,N−ジシクロヘキシルカル
ボジイミド(DCC)のTHF溶液10mlを滴下し
た。室温で1日撹拌後、反応液をろ過、濃縮後にシリカ
ゲルカラム(n−ヘキサン:酢酸エチル=4:1→2:
1)で精製すると、透明油状物として2.16g(収率
84%)の(7)を得た。
Table 17 1 H-NMR (CDCl 3 ) 1.11-1.30 (3H, t), 2.74-3.12 (2H, m) 4.06-4.25 (2H, m), 4.55-4.70 (1H, m) 5.10 (2H, s), 5.84-5.99 (1H, d) 7.33 (5H, s), 8.49-9.26 ( 1H, br) Synthesis of (7) 1.63 g (5.5 mmol) of (6), 224 mg
(1.8 mmol) N, N-dimethylaminopyridine (DMAP), 426 mg (1.8 mmol) camphorsulfonic acid (CSA), 1.4 g (7.4 mmol)
l) Tert-butyl 6-hydroxyhexanoate was added to 50 ml of tetrahydrofuran (THF). 1.7
g (8.3 mmol) of N, N-dicyclohexylcarbodiimide (DCC) in 10 ml of THF was added dropwise. After stirring at room temperature for 1 day, the reaction solution was filtered and concentrated, and then silica gel column (n-hexane: ethyl acetate = 4: 1 → 2:
Purification in 1) gave 2.16 g (84% yield) of (7) as a clear oil.

【0207】[0207]

【表18】1 H−NMR(CDCl3) 1.20−1.46(14H,重複)、1.51−1.69(4H,m) 2.15−2.26( 2H, t)、2.77−3.07(2H,m) 4.02−4.26( 4H, m)、4.57−4.67(1H,m) 5.12(2H,s)、 5.73−5.82(1H,d) 7.37(5H,s)(8)の合成 2.16g(4.6mmol)の(7)をエタノール2
00mlに溶解し、5%パラジウムカーボン300mg
を加えて水素雰囲気下、室温で1時間撹拌した。反応液
をろ過、濃縮して(8)を得た。これを精製せずに次の
反応に用いた。 (9)の合成 粗アミン(8)と0.8g(5mmol)のクロロチオ
リン酸ジメチル、0.7g(5mmol)の炭酸カリウ
ムをアセトニトリル80mlに加えて50℃で1時間撹
拌した。ろ過、濃縮後にシリカゲルカラム(n−ヘキサ
ン:酢酸エチル=4:1)で精製すると、1.71g
((7)からの通算収率100%)の(9)を得た。
[Table 18]1 H-NMR (CDClThree1.20-1.46 (14H, duplication), 1.51-1.69 (4H, m) 2.15-2.26 (2H, t), 2.77-3.07 (2H, m) 4.02-4.26 (4H, m), 4.57-4.67 (1H, m) 5.12 (2H, s), 5.73-5.82 (1H, d) 7.37 (5H, s)Synthesis of (8) 2.16 g (4.6 mmol) of (7) in ethanol 2
Dissolve in 00ml and 300mg 5% palladium carbon
Was added and the mixture was stirred at room temperature for 1 hour under a hydrogen atmosphere. Reaction liquid
Was filtered and concentrated to obtain (8). Without purification
Used for reaction. Synthesis of (9) Crude amine (8) and 0.8 g (5 mmol) of chlorothio
Dimethyl phosphate, 0.7 g (5 mmol) of potassium carbonate
Was added to 80 ml of acetonitrile and stirred at 50 ° C for 1 hour.
Stirred. After filtration and concentration, a silica gel column (n-hexa
And purified with ethyl acetate = 4: 1).
(9) of (total yield 100% from (7)) was obtained.

【0208】[0208]

【表19】1 H−NMR(CDCl3) 1.23−1.49(14H,重複)、1.54−1.71(4H,m) 2.15−2.27( 2H, t)、2.71−3.00(2H,m) 3.63−3.75( 6H, m)、4.00−4.11(5H,t) 4.17−4.34( 3H,重複)(10)の合成 1.71g(4.6mmol)の(9)を100mlの
ジクロロメタンに溶解させ、トリフルオロ酢酸(TF
A)5mlを加えて室温で1時間撹拌した。更にTFA
5mlを添加して1時間撹拌した。反応溶液を減圧濃縮
して、シリカゲルクロマトグラフィー(n−ヘキサン:
酢酸エチル=4:1→1:1)で精製すると、透明油状
物として1.44g(収率99%)の(10)を得た。
Table 19 1 H-NMR (CDCl 3 ) 1.23-1.49 (14H, duplication), 1.54-1.71 (4H, m) 2.15-2.27 (2H, t), 2.71-3.00 (2H, m) 3.63-3.75 (6H, m), 4.00-4.11 (5H, t) 4.17-4.34 (3H, duplicate) ( Synthesis of 10) 1.71 g (4.6 mmol) of (9) was dissolved in 100 ml of dichloromethane, and trifluoroacetic acid (TF
A) 5 ml was added and the mixture was stirred at room temperature for 1 hour. Further TFA
5 ml was added and stirred for 1 hour. The reaction solution is concentrated under reduced pressure and subjected to silica gel chromatography (n-hexane:
Purification with ethyl acetate = 4: 1 → 1: 1) gave 1.44 g (99% yield) of (10) as a clear oil.

【0209】[0209]

【表20】1 H−NMR(CDCl3) 1.22−1.33(3H, t)、1.35−1.49(2H,m) 1.59−1.75(4H, m)、2.31−2.42(2H,t) 2.71−3.00(2H, m)、3.62−3.76(6H,m) 4.01−4.34(5H,重複)実施例6 マラチオンハプテン−6の合成 Table 20 1 H-NMR (CDCl 3 ) 1.22-1.33 (3H, t), 1.35-1.49 (2H, m) 1.59-1.75 (4H, m), 2.31-2.42 (2H, t) 2.71-3.00 ( 2H, m), 3.62-3.76 (6H, m) 4.01-4.34 (5H, overlapping) carried Example 6 Synthesis of Malathion Hapten-6

【0210】[0210]

【化37】 Embedded image

【0211】(2)の合成 58.8g(400mmol)のL−グルタミン酸と4
8g(440mmol)のベンジルアルコールを60%
硫酸(濃硫酸39.2g+水26ml)に加えて、70
℃で45分間撹拌した。70℃で3時間濃縮後、67.
2g(800mmol)の炭酸水素ナトリウムを含む冷
水200ml中に撹拌しながら注ぎ、冷水150mlを
加えた後放置した。析出した結晶をろ別し、水で洗浄し
た。その結晶を水で再結晶すると、白色結晶として35
g(収率37%)の(2)を得た。(3)の合成 4.74g(20mmol)の(2)を300mlの水
に加えて、80℃で溶解させた。加熱を停止して60℃
まで冷却した時に、4.2g(50mmol)の炭酸水
素ナトリウムと4.1g(24mmol)のベンジルオ
キシカルボニルクロリド(Z−Cl)を加えて3時間撹
拌した。ジエチルエーテルで洗浄後に、氷冷しながら濃
塩酸でpHを1にして酢酸エチルで抽出した。脱水(無
水硫酸ナトリウム)、ろ過、濃縮後にシリカゲルカラム
(n−ヘキサン:酢酸エチル=1:2)で精製すると、
白色結晶として6.4g(収率86%)の(3)を得
た。
Synthesis of (2) 58.8 g (400 mmol) of L-glutamic acid and 4
8 g (440 mmol) of benzyl alcohol to 60%
In addition to sulfuric acid (39.2 g of concentrated sulfuric acid + 26 ml of water), 70
Stir at 45 ° C. for 45 minutes. After concentration at 70 ° C. for 3 hours, 67.
The mixture was poured into 200 ml of cold water containing 2 g (800 mmol) of sodium hydrogen carbonate with stirring, 150 ml of cold water was added, and the mixture was allowed to stand. The precipitated crystals were separated by filtration and washed with water. The crystals were recrystallized from water to give 35 as white crystals.
g (37% yield) of (2) was obtained. Synthesis of (3) 4.74 g (20 mmol) of (2) was added to 300 ml of water and dissolved at 80 ° C. Stop heating and 60 ℃
When cooled down, 4.2 g (50 mmol) of sodium hydrogen carbonate and 4.1 g (24 mmol) of benzyloxycarbonyl chloride (Z-Cl) were added, and the mixture was stirred for 3 hours. After washing with diethyl ether, the mixture was adjusted to pH 1 with concentrated hydrochloric acid while cooling with ice, and extracted with ethyl acetate. After dehydration (anhydrous sodium sulfate), filtration and concentration, purification by a silica gel column (n-hexane: ethyl acetate = 1: 2)
6.4 g (yield 86%) of (3) was obtained as white crystals.

【0212】[0212]

【表21】1 H−NMR(CDCl3) 1.93−2.37(2H,m)、2.37−2.61(2H,m) 4.30−4.50(1H,m)、5.10(4H,s) 5.40−5.53(1H,d)、7.33(10H,s)(4)の合成 6.0g(16mmol)の(3)をエタノール150
mlに溶解し、1.0Mの塩化水素ジエチルエーテル溶
液1mlを加えて30分間環流させた。更に該溶液3m
lを加えて30分環流させた後、三度3mlの該溶液を
加えて1時間環流させた。反応液をろ過して濃縮後にシ
リカゲルカラム(n−ヘキサン:酢酸エチル=9:1→
4:1→2:1)で精製すると、透明油状物として4.
2g(収率65%)の(4)を得た。
Table 21 1 H-NMR (CDCl 3 ) 1.93-2.37 (2H, m), 2.37-2.61 (2H, m) 4.30-4.50 (1H, m), 5.10 (4H, s) 5.40-5.53 (1H, d), 7.33 (10H, s) Synthesis of (4) 6.0 g (16 mmol) of (3) was treated with ethanol 150
Then, 1 ml of a 1.0 M hydrogen chloride diethyl ether solution was added, and the mixture was refluxed for 30 minutes. 3m of the solution
After 1 minute was added and refluxed for 30 minutes, 3 ml of the solution was added three times and refluxed for 1 hour. The reaction solution was filtered and concentrated, and then concentrated on a silica gel column (n-hexane: ethyl acetate = 9: 1 →
4: 1 → 2: 1) to give a clear oil.
2 g (yield 65%) of (4) was obtained.

【0213】[0213]

【表22】1 H−NMR(CDCl3) 1.15−1.33(3H,q)、1.87−2.32(2H,m) 2.33−2.58(2H,m)、4.07−4.25(2H,m) 4.32−4.48(1H,m)、5.10(4H,s) 5.32−5.45(1H,d)、7.34(10H,s)(5)の合成 16g(40mmol)の(4)をエタノール250m
lに溶解して、5%パラジウムカーボン2.5gを加え
て水素雰囲気下、室温で1時間撹拌した。反応液をろ
過、濃縮して(5)を得た。粗収量8.6g(粗収率1
22%)。(6)の合成 8.6gの粗カルボン酸(5)を300mlの水に加え
て、80℃で溶解させた。加熱を停止して60℃まで冷
却した時に、8.4g(100mmol)の炭酸水素ナ
トリウムと8.2g(48mmol)のZ−Clを加え
て3時間撹拌した。ジエチルエーテルで洗浄後に、氷冷
しながら濃塩酸でpHを1にして酢酸エチルで抽出し
た。脱水(無水硫酸ナトリウム)、ろ過、濃縮後にシリ
カゲルカラム(n−ヘキサン:酢酸エチル=1:1→
1:2)で精製すると、白色結晶として5.4g
((4)からの通算収率43%)の(6)を得た。
Table 22 1 H-NMR (CDCl 3 ) 1.15-1.33 (3H, q), 1.87-2.32 (2H, m) 2.33-2.58 (2H, m), 4.07-4.25 (2H, m) 4.32-4.48 (1H, m), 5.10 (4H, s) 5.32-5.45 (1H, d), 7.34 ( 10H, s) Synthesis of (5) 16 g (40 mmol) of (4) was treated with 250 ml of ethanol.
Then, 2.5 g of 5% palladium carbon was added, and the mixture was stirred at room temperature for 1 hour under a hydrogen atmosphere. The reaction solution was filtered and concentrated to obtain (5). 8.6 g of crude yield (crude yield 1
22%). Synthesis of (6) 8.6 g of crude carboxylic acid (5) was added to 300 ml of water and dissolved at 80 ° C. When heating was stopped and the temperature was cooled to 60 ° C., 8.4 g (100 mmol) of sodium hydrogen carbonate and 8.2 g (48 mmol) of Z-Cl were added, and the mixture was stirred for 3 hours. After washing with diethyl ether, the mixture was adjusted to pH 1 with concentrated hydrochloric acid while cooling with ice, and extracted with ethyl acetate. After dehydration (anhydrous sodium sulfate), filtration and concentration, a silica gel column (n-hexane: ethyl acetate = 1: 1 →
1: 2), 5.4 g as white crystals
(6) of (Total yield 43% from (4)) was obtained.

【0214】[0214]

【表23】1 H−NMR(CDCl3) 1.17−1.35(3H,q)、1.88−2.30(2H,m) 2.33−2.57(2H,m)、4.06−4.26(2H,m) 4.34−4.49(1H,m)、5.11(2H,s) 5.38−5.51(1H,d)、7.34(5H,s)(7)の合成 1.0g(3.2mmol)の(6)、130mg
(1.1mmol)のN,N−ジメチルアミノピリジン
(DMAP)、250mg(1.1mmol)のカンフ
ァースルホン酸(CSA)、600mg(3.2mmo
l)の6−ヒドロキシヘキサン酸tert−ブチルをテ
トラヒドロフラン(THF)15mlに加えた。1.0
g(4.9mmol)のN,N−ジシクロヘキシルカル
ボジイミド(DCC)のTHF溶液15mlを滴下し
た。室温で20時間撹拌後、反応液をろ過、濃縮後にシ
リカゲルカラム(n−ヘキサン:酢酸エチル=4:1→
2:1)で精製すると、透明油状物として940mg
(収率60%)の(7)を得た。
Table 23 1 H-NMR (CDCl 3 ) 1.17-1.35 (3H, q), 1.88-2.30 (2H, m) 2.33-2.57 (2H, m), 4.06-4.26 (2H, m) 4.34-4.49 (1H, m), 5.11 (2H, s) 5.38-5.51 (1H, d), 7.34 ( 5H, s) Synthesis of (7) 1.0 g (3.2 mmol) of (6), 130 mg
(1.1 mmol) N, N-dimethylaminopyridine (DMAP), 250 mg (1.1 mmol) camphorsulfonic acid (CSA), 600 mg (3.2 mmol)
l) Tert-butyl 6-hydroxyhexanoate was added to 15 ml of tetrahydrofuran (THF). 1.0
g (4.9 mmol) of N, N-dicyclohexylcarbodiimide (DCC) in 15 ml of THF was added dropwise. After stirring at room temperature for 20 hours, the reaction solution was filtered and concentrated, and then silica gel column (n-hexane: ethyl acetate = 4: 1 →
2: 1), 940 mg as a clear oil
(7) of (yield 60%) was obtained.

【0215】[0215]

【表24】1 H−NMR(CDCl3) 1.21−1.47(14H,重複)、1.52−1.70(4H,m) 1.90−2.06( 1H, m)、2.16−2.27(3H,m) 2.34−2.47( 2H, m)、4.00−4.10(2H,t) 4.14−4.26( 2H, q)、4.33−4.44(1H,m) 5.11(2H,s)、 5.37−5.46(1H,d) 7.36(5H,s)(8)の合成 5.9g(12.3mmol)の(7)をエタノール1
50mlに溶解し、5%パラジウムカーボン600mg
を加えて水素雰囲気下、室温で30分間撹拌した。反応
液をろ過、濃縮して(8)を得た。これを精製せずに次
の反応に用いた。(9)の合成 粗アミン(8)と2.0g(12、4mmol)のクロ
ロチオリン酸ジメチル、1.7g(12.3mmol)
の炭酸カリウムをアセトニトリル100mlに加えて6
0℃で1時間撹拌した。ろ過、濃縮後にシリカゲルカラ
ム(n−ヘキサン:酢酸エチル=4:1)で精製する
と、4.7g((7)からの通算収率100%)の
(9)を得た。
Table 24 1 H-NMR (CDCl 3 ) 1.21-1.47 (14H, overlap), 1.52-1.70 (4H, m) 1.90-2.06 (1H, m), 2.16-2.27 (3H, m) 2.34-2.47 (2H, m), 4.00-4.10 (2H, t) 4.14-4.26 (2H, q), 4.33-4.44 (1H, m) 5.11 (2H, s), 5.37-5.46 (1H, d) 7.36 (5H, s) Synthesis of 5.9 g of ( 8) 12.3 mmol) of (7) in ethanol 1
Dissolve in 50 ml, 5% palladium carbon 600mg
Was added and stirred at room temperature for 30 minutes under a hydrogen atmosphere. The reaction solution was filtered and concentrated to obtain (8). This was used for the next reaction without purification. Synthesis of (9) Crude amine (8) and 2.0 g (12, 4 mmol) of dimethyl chlorothiophosphate, 1.7 g (12.3 mmol)
Of potassium carbonate in 100 ml of acetonitrile
Stirred at 0 ° C. for 1 hour. After filtration and concentration, the residue was purified by a silica gel column (n-hexane: ethyl acetate = 4: 1) to obtain 4.7 g (total yield 100% from (7)) of (9).

【0216】[0216]

【表25】1 H−NMR(CDCl3) 1.21−1.47(14H,重複)、1.54−1.70(4H,m) 1.83−2.15( 2H, m)、2.18−2.26(2H,t) 2.37−2.48( 2H, m)、3.60−3.73(6H,m) 3.93−4.11( 3H,重複)、4.15−4.27(2H,q)(10)の合成 4.7g(12.3mmol)の(9)を80mlのジ
クロロメタンに溶解させ、トリフルオロ酢酸(TFA)
5mlを加えて室温で1時間撹拌した。TFA5mlを
追加して、更に1時間撹拌した。反応溶液を減圧濃縮し
て、シリカゲルクロマトグラフィー(n−ヘキサン:酢
酸エチル=4:1→1:1)で精製すると、透明油状物
として3.5g(収率87%)の(10)を得た。
Table 25 1 H-NMR (CDCl 3 ) 1.21-1.47 (14H, overlap), 1.54-1.70 (4H, m) 1.83-2.15 (2H, m), 2.18-2.26 (2H, t) 2.37-2.48 (2H, m), 3.60-3.73 (6H, m) 3.93-4.11 (3H, duplication), 4.15-4.27 (2H, q) Synthesis of (10) 4.7 g (12.3 mmol) of (9) was dissolved in 80 ml of dichloromethane, and trifluoroacetic acid (TFA) was dissolved.
5 ml was added and the mixture was stirred at room temperature for 1 hour. 5 ml of TFA was added, and the mixture was further stirred for 1 hour. The reaction solution was concentrated under reduced pressure and purified by silica gel chromatography (n-hexane: ethyl acetate = 4: 1 → 1: 1) to obtain 3.5 g (87% yield) of (10) as a transparent oil. Was.

【0217】[0219]

【表26】1 H−NMR(CDCl3) 1.24−1.36(3H, t)、1.36−1.50(2H,m) 1.60−1.74(4H, m)、1.83−2.20(2H,m) 2.34−2.50(4H,重複)、3.61−3.76(6H,m) 3.94−4.28(5H, m)実施例7 免疫用抗原及びスクリーニング用抗原の作製 実施例1ないし6で作製したマラチオンハプテン−1な
いし6をハプテンとして、各々3.6μmolをDMS
O 100μlに溶解させた。これらの溶液に、N−ヒ
ドロキシこはく酸イミド(16μmol)を10μlの
DMSOに溶解した溶液を添加した。次いで、1−エチ
ル−3−(3−ジメチルアミノプロピル)カルボジイミ
ド・塩酸塩(5.6μmol)を20μlのDMSOに
溶解した溶液を加え、室温にて1.5時間反応させた。
これらの反応溶液に、BSA又はKLH各々10mgを
85mM ホウ酸緩衝液(pH8.0)500μlに溶
解したものを加え、再び室温にて1.5時間反応させ
た。反応終了後、ダルベッコのリン酸緩衝液(以下、
「PBS(−)」と言う)で透析し、マラチオンハプテ
ン−1ないし6とKLHとの結合体(以下、「マラチオ
ンハプテン−1ないし6/KLH」と言う)、マラチオ
ンハプテン−1ないし6とBSAとの結合体(以下、
「マラチオンハプテン−1ないし6/BSA」と言う)
を各々調製した。実施例8 免疫感作 免疫には、Balb/cマウス(7週令、メス)を用い
た。実施例7で調製したマラチオンハプテン−1ないし
6/KLH100μgを各々PBS(−)50μlに溶
解した。これを等量のフロイント完全アジュバントと乳
化混合した後、マウスの腹腔内に接種した。1カ月後、
初回免疫量の1/4量を追加免疫し、さらにその5週間
後、追加免疫と同量を最終免疫した。実施例9 ハイブリドーマの作製 モノクローナル抗体を産生するハイブリドーマを得るた
めの細胞融合は、実施例8の最終免疫後3日目のマウス
の脾臓細胞を用いて行った。
Table 26 1 H-NMR (CDCl 3 ) 1.24 to 1.36 (3H, t), 1.36-1.50 (2H, m) 1.60-1.74 (4H, m), 1.83-2.20 (2H, m) 2.34-2.50 ( 4H, overlapping), 3.61-3.76 (6H, m) 3.94-4.28 (5H, m) carried Example 7 Preparation of Antigen for Immunization and Antigen for Screening Malathion haptens-1 to 6 prepared in Examples 1 to 6 were used as haptens, and 3.6 μmol of each was DMS.
O was dissolved in 100 μl. To these solutions, a solution of N-hydroxysuccinimide (16 μmol) dissolved in 10 μl of DMSO was added. Next, a solution of 1-ethyl-3- (3-dimethylaminopropyl) carbodiimide hydrochloride (5.6 μmol) dissolved in 20 μl of DMSO was added, and the mixture was reacted at room temperature for 1.5 hours.
A solution prepared by dissolving 10 mg each of BSA or KLH in 500 μl of 85 mM borate buffer (pH 8.0) was added to these reaction solutions, and the reaction was performed again at room temperature for 1.5 hours. After completion of the reaction, Dulbecco's phosphate buffer (hereinafter referred to as
Dialysed with “PBS (−)”), a conjugate of malathion hapten-1 to 6 and KLH (hereinafter, referred to as “malathion hapten-1 to 6 / KLH”), malathion hapten-1 to 6 and BSA And a conjugate with
"Malathion hapten-1 to 6 / BSA")
Was prepared respectively. Example 8 Immunization Balb / c mice (7 weeks old, female) were used for immunization. 100 µg of malathion hapten-1 to 6 / KLH prepared in Example 7 was dissolved in 50 µl of PBS (-). This was emulsified and mixed with an equal volume of Freund's complete adjuvant, and then inoculated intraperitoneally into mice. One month later,
A booster immunization was performed with a quarter of the initial immunization amount, and 5 weeks later, the same immunization as the booster immunization was finally performed. Example 9 Preparation of Hybridoma Cell fusion for obtaining a hybridoma producing a monoclonal antibody was performed using the spleen cells of a mouse 3 days after the final immunization in Example 8.

【0218】摘出した脾臓から、DMEM中に脾臓細胞
を取り出し、DMEMにて3回洗浄した。洗浄後、マウ
スのミエロ−マ細胞P3−X63−Ag8.653と細
胞数の比で5:1(脾臓細胞:ミエローマ細胞)となる
ように混合し、遠心(1,200rpm、5分間)して
細胞沈渣を集めた。この細胞沈渣に予め37℃に加温し
ておいた50%ポリエチレングリコール(分子量150
0)1mlを加え、細胞を融合した。DMEM 10m
lを徐々に添加し、牛胎児血清(以下、「FBS」と言
う)1mlを更に添加することにより、細胞融合を停止
した。融合した細胞は、DMEMに10% FBS、ヒ
ポキサンチン(100μM)、アミノプテリン(0.4
μM)、及びチミジン(16μM)を添加したHAT培
地に懸濁後、96ウェルのマイクロプレートの各ウェル
に2×105細胞/ウェルで分注した。37℃、5%二
酸化炭素存在下で10ないし14日間培養した後、各ウ
ェルにハイブリドーマのコロニーが形成された。実施例10 モノクローナル抗体の作製 実施例9でコロニーが形成された各ウェルの内、それら
の培養上清中にマラチオンに反応するモノクローナル抗
体を産生しているものを、以下のように間接競合阻害E
LISA法を用いてスクリーニングした。
From the excised spleen, spleen cells were taken out in DMEM and washed three times with DMEM. After washing, the cells were mixed with mouse myeloma cells P3-X63-Ag8.653 at a cell ratio of 5: 1 (spleen cells: myeloma cells), and centrifuged (1,200 rpm, 5 minutes). The cell sediment was collected. To this cell sediment, 50% polyethylene glycol (molecular weight: 150
0) 1 ml was added to fuse the cells. DMEM 10m
1 was gradually added, and 1 ml of fetal bovine serum (hereinafter, referred to as “FBS”) was further added to stop the cell fusion. The fused cells were prepared by adding 10% FBS, hypoxanthine (100 μM), aminopterin (0.4 μM) to DMEM.
μM) and thymidine (16 μM), and suspended in a HAT medium, and dispensed at 2 × 10 5 cells / well into each well of a 96-well microplate. After culturing at 37 ° C. in the presence of 5% carbon dioxide for 10 to 14 days, colonies of hybridomas were formed in each well. Example 10 Preparation of Monoclonal Antibody Among the wells in which colonies were formed in Example 9, those producing a monoclonal antibody that reacts with malathion in their culture supernatant were subjected to indirect competitive inhibition E as follows.
Screening was performed using the LISA method.

【0219】まずPBS(−)に溶解したマラチオンハ
プテン−1ないし6/BSA(4μg/ml)を、96
ウェルのマイクロタイタープレートの各ウェルに100
μl/ウェルで加え、4℃で1晩静置することにより固
相化した。次に300μl/ウェルのブロッキング緩衝
液(1% BSAと60mM NaClを添加した85
mMホウ酸緩衝液(pH8.0))で置き換え、室温で
1時間ブロッキングした。これらに希釈液A(150m
M NaClを添加した85mM ホウ酸緩衝液(pH
8.0))で適当な濃度に段階的に希釈したマラチオン
溶液を50μl/ウェルで添加した。次いで、直ちに培
養上清を同じ希釈液で適当な濃度に希釈したものを50
μl/ウェルで加えて混合し、室温で1時間反応させ
た。適当な濃度とは、マラチオン未添加条件での本EL
ISA法の吸光度が抗体飽和時の1/2を示し得る抗体
濃度である。
First, malathion hapten-1 to 6 / BSA (4 μg / ml) dissolved in PBS (−) was added to 96
100 wells per well of a microtiter plate
The mixture was added at μl / well, and allowed to stand at 4 ° C. overnight to immobilize the solid phase. Next, 300 μl / well of blocking buffer (85% with 1% BSA and 60 mM NaCl) was added.
mM borate buffer (pH 8.0)) and blocked for 1 hour at room temperature. Add diluent A (150m
85 mM borate buffer (pH
The malathion solution serially diluted to an appropriate concentration in 8.0)) was added at 50 μl / well. Then, immediately dilute the culture supernatant to the appropriate concentration with the same diluent, and add 50
The mixture was added at μl / well, mixed, and reacted at room temperature for 1 hour. Appropriate concentration refers to this EL without malathion added.
This is the antibody concentration at which the absorbance of the ISA method can be の of that at the time of antibody saturation.

【0220】洗浄液(60mM NaClを添加した8
5mM ホウ酸緩衝液(pH8.0))で3回洗浄した
後、2次抗体用の希釈液B(0.3% BSAと60m
MNaClを添加した85mM ホウ酸緩衝液(pH
8.0))で1000倍希釈したHRP結合抗マウスI
gG抗体(カペル社製)を100μl/ウェルで添加
し、室温で1時間反応させた。再び3回洗浄後、HRP
基質溶液(100μg/mlの3,3’5,5’−テト
ラメチルベンチジン及び0.006%過酸化水素を添加
した0.1M酢酸ナトリウム緩衝液(pH5.5))で
10分間発色させ、1N硫酸で反応停止後、450nm
の吸光度を測定した。
Wash solution (8 with 60 mM NaCl added)
After washing three times with 5 mM borate buffer (pH 8.0), a diluent B for secondary antibody (0.3% BSA and 60 mM
85 mM borate buffer (pH
8.0)) HRP-conjugated anti-mouse I diluted 1000-fold
A gG antibody (manufactured by Capel) was added at 100 μl / well, and reacted at room temperature for 1 hour. After washing 3 times again, HRP
Color was developed for 10 minutes with a substrate solution (0.1 M sodium acetate buffer (pH 5.5) supplemented with 100 μg / ml 3,3′5,5′-tetramethylbenzidine and 0.006% hydrogen peroxide), After stopping the reaction with 1N sulfuric acid, 450 nm
Was measured for absorbance.

【0221】各ウェルの反応性を定性的にスクリーニン
グした後、マラチオンとの反応性を示したウェルのハイ
ブリドーマを限界希釈法によってクローニングした。こ
のようにして、マラチオンに反応性を有する抗体を産生
するモノクローナル抗体産生細胞を3株(MLT2−2
3、MLT40−4、MLT45−3)分離した。これ
らの3株はいずれもマラチオンハプテン−5/BSAを
抗原として得られたハイブリドーマである。
After qualitatively screening the reactivity of each well, the hybridomas in the wells that showed reactivity with malathion were cloned by the limiting dilution method. In this manner, three monoclonal antibody-producing cells (MLT2-2) that produce antibodies reactive to malathion were prepared.
3, MLT40-4, MLT45-3). All of these three strains are hybridomas obtained using malathion hapten-5 / BSA as an antigen.

【0222】さらにFBSを10%添加したDMEM中
でこれらのモノクローナル抗体産生細胞を培養し、得ら
れた培養上清を各々モノクローナル抗体とした。以後、
各モノクローナル抗体は、これらを産生するモノクロー
ナル抗体産生細胞と同一の名称を用いる。
Further, these monoclonal antibody-producing cells were cultured in DMEM supplemented with 10% of FBS, and the resulting culture supernatants were used as monoclonal antibodies. Since then
Each monoclonal antibody has the same name as the monoclonal antibody-producing cells that produce them.

【0223】作製したモノクローナル抗体のサブクラス
を、以下の表27に示した。
The subclasses of the prepared monoclonal antibodies are shown in Table 27 below.

【0224】[0224]

【表27】 表27 作製したモノクローナル抗体のサブクラスモノクローナル抗体 サブクラス MLT2−23 IgG2a MLT40−4 IgG1 MLT45−3 IgG1 得られたモノクローナル抗体のうちMLT2−23を平
成11年1月22日に、寄託番号FERM P−171
57で工業技術院生命工学工業研究所(〒305−00
46 茨城県つくば市東1丁目1番3号)に寄託した。実施例11 モノクローナル抗体の精製 実施例10で得られた各モノクローナル抗体の精製を行
った。まず、Balb/cマウスの腹腔内に各モノクロ
ーナル抗体産生細胞を接種し、腹水を得た。MLT2−
23産生細胞由来の腹水には、35%飽和となるよう
に、また MLT40−4産生細胞及びMLT45−3
産生細胞由来の腹水には、33%飽和となるように硫安
を加え、各々4℃で撹拌したのち遠心し、沈殿物を得
た。これらの沈殿物はPBS(−)で可溶化した後、さ
らにPBS(−)で2晩透析し、精製抗体とした。これ
らの抗体の純度は、SDS−ポリアクリルアミドゲル電
気泳動法により測定した結果、少なくとも90%以上で
あった。実施例12 マラチオンハプテンとHRPとの結合体の
調製 マラチオンハプテン−4ないし6の各々1.25μmo
lをDMSO50μlに溶解した。これらの溶液へ、N
−ヒドロキシこはく酸イミド(5.5μmol)を3.
4μlのDMSOに溶解した溶液、次いで1−エチル−
3−(3−ジメチルアミノプロピル)カルボジイミド・
塩酸塩(1.9μmol)を6.8μlのDMSOに溶
解した溶液を加え、室温にて1時間反応させた。これら
の反応液に1M 炭酸水素ナトリウム40μlを加え、
さらにHRP(5mg)を蒸留水250μlに溶解した
溶液を加えて、室温で3時間反応させた。得られた反応
液から、ゲル濾過カラム(セファデックスG−25)を
用いて低分子化合物を除去し、マラチオンハプテン−4
ないし6とHRPとの結合体(以下、「マラチオンハプ
テン−4ないし6/HRP」と言う)とした。実施例13 直接競合阻害ELISA法におけるマラチ
オンに対するモノクローナル抗体の反応性 得られたモノクローナル抗体のマラチオンに対する反応
性を、直接競合阻害ELISA法を用いて調べた。
Table 27: Subclass of the prepared monoclonal antibody Monoclonal antibody Subclass MLT2-23 IgG2a MLT40-4 IgG1 MLT45-3 IgG1 Of the obtained monoclonal antibodies, MLT2-23 was deposited on January 22, 1999, and deposited under FERM. P-171
At 57, the Institute of Biotechnology, Institute of Industrial Science (¥ 305-00
46 1-3-1 Higashi, Tsukuba City, Ibaraki Prefecture). Example 11 Purification of Monoclonal Antibody Each monoclonal antibody obtained in Example 10 was purified. First, Balb / c mice were inoculated with each monoclonal antibody-producing cell intraperitoneally to obtain ascites. MLT2-
The ascites from the 23-producing cells had 35% saturation, and the MLT40-4 producing cells and the MLT45-3
Ammonium sulfate was added to the ascites from the producing cells so as to be 33% saturated, and each was stirred at 4 ° C. and then centrifuged to obtain a precipitate. After these precipitates were solubilized with PBS (-), they were further dialyzed against PBS (-) for 2 nights to obtain purified antibodies. The purity of these antibodies was at least 90% or more as a result of measurement by SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. Example 12 Conjugate of Malathion Hapten and HRP
Each of the prepared malathion haptens-4 to 6 was 1.25 μmo
was dissolved in 50 μl of DMSO. To these solutions, N
-Hydroxysuccinimide (5.5 μmol).
Solution in 4 μl of DMSO, then 1-ethyl-
3- (3-dimethylaminopropyl) carbodiimide.
A solution of hydrochloride (1.9 μmol) dissolved in 6.8 μl of DMSO was added, and the mixture was reacted at room temperature for 1 hour. 40 μl of 1 M sodium bicarbonate was added to these reaction solutions,
Further, a solution in which HRP (5 mg) was dissolved in 250 μl of distilled water was added, and reacted at room temperature for 3 hours. The low-molecular-weight compound was removed from the obtained reaction solution using a gel filtration column (Sephadex G-25), and malathion hapten-4 was removed.
-6 and HRP (hereinafter referred to as "malathion hapten-4 to 6 / HRP"). Example 13 Malachi in Direct Competition Inhibition ELISA
Reactivity of Monoclonal Antibody to On The reactivity of the obtained monoclonal antibody to malathion was examined using a direct competitive inhibition ELISA method.

【0225】実施例11で精製したMLT2−23、M
LT40−4は3μg/mlの濃度で、MLT45−3
は5μg/mlの濃度でPBS(−)に溶解した。これ
らを96ウェルのマイクロタイタープレートの各ウェル
に100μl/ウェルで加え、4℃で1晩静置すること
により固相化した。つぎに300μl/ウェルのブロッ
キング緩衝液で置き換え、室温で1時間ブロッキングし
た。一方、希釈液C(0.3% BSAと150mM
NaClを添加した100mM リン酸緩衝液(pH
7.0))で適当な濃度に段階的に希釈したマラチオン
と、同じく適当な濃度に希釈したマラチオンハプテン−
5/HRPの混合液を調製した。適当な濃度とは、マラ
チオン未添加の条件での本ELISA法の吸光度がHR
P結合ハプテン飽和時の1/2を示し得るHRP結合ハ
プテンの濃度である。これらを先のブロッキング済みの
各ウェルに100μl/ウェルで加え、室温で1時間反
応させた。洗浄液で3回洗浄した後、実施例10に示し
た間接競合阻害ELISA法と同様の方法で発色させ、
450nmの吸光度を測定した。
MLT2-23 purified in Example 11
LT40-4 has a concentration of 3 μg / ml, and MLT45-3
Was dissolved in PBS (−) at a concentration of 5 μg / ml. These were added to each well of a 96-well microtiter plate at 100 μl / well, and allowed to stand at 4 ° C. overnight for immobilization. Then, it was replaced with 300 μl / well of a blocking buffer, and blocked at room temperature for 1 hour. On the other hand, diluent C (0.3% BSA and 150 mM
100 mM phosphate buffer containing NaCl (pH
7.0)), and malathion diluted serially to an appropriate concentration, and malathion hapten, also diluted to an appropriate concentration.
A mixture of 5 / HRP was prepared. The appropriate concentration means that the absorbance of this ELISA method under the condition where malathion is not added is HR
It is the concentration of the HRP-bound hapten that can show half of the P-bound hapten saturation. These were added at 100 μl / well to each of the previously blocked wells, and reacted at room temperature for 1 hour. After washing three times with the washing solution, color was developed in the same manner as in the indirect competitive inhibition ELISA shown in Example 10,
The absorbance at 450 nm was measured.

【0226】結果を図1に示す。ここで阻害率は以下の
式で計算した。
The results are shown in FIG. Here, the inhibition rate was calculated by the following equation.

【0227】[0227]

【化38】 Embedded image

【0228】図1に示されるように、モノクローナル抗
体MLT2−23及びMLT40−4は10ng/ml
から300ng/ml、モノクローナル抗体MLT45
−3は100ng/mlから1000ng/mlの濃度
範囲でマラチオンと反応した。よって、特にモノクロー
ナル抗体MLT2−23及びMLT40−4がマラチオ
ンに対して高い反応性を示すことが明らかとなった。実施例14 ヘテロロガスなハプテンを用いた直接競合
阻害ELISA法における、モノクローナル抗体MLT
2−23及びMLT40−4のマラチオンに対する反応
実施例13でマラチオンに対して高い反応性を示したモ
ノクローナル抗体MLT2−23及びMLT40−4に
ついて、直接競合阻害ELISA法に用いるHRP結合
ハプテンを変えてマラチオンに対する反応性の変化を調
べた。具体的にはHRP結合ハプテンとして、マラチオ
ンハプテン−5/HRPの代わりにマラチオンハプテン
−6/HRP又はマラチオンハプテン−4/HRPを用
いた他は、実施例13と同様にして行った。
As shown in FIG. 1, the monoclonal antibodies MLT2-23 and MLT40-4 were 10 ng / ml.
To 300 ng / ml, monoclonal antibody MLT45
-3 reacted with malathion in a concentration range of 100 ng / ml to 1000 ng / ml. Therefore, it was revealed that the monoclonal antibodies MLT2-23 and MLT40-4 show high reactivity to malathion. Example 14 Direct competition using a heterologous hapten
Monoclonal antibody MLT in inhibition ELISA
Response of 2-23 and MLT40-4 to malathion
For the monoclonal antibodies MLT2-23 and MLT40-4 showing high reactivity to malathion in Example 13, changes in reactivity to malathion were examined by changing the HRP-binding hapten used in the direct competitive inhibition ELISA method. Specifically, the same procedure as in Example 13 was carried out except that malathion hapten-6 / HRP or malathion hapten-4 / HRP was used instead of malathion hapten-5 / HRP as the HRP-bound hapten.

【0229】その結果を図2に示す。図2に示されるよ
うに、用いるHRP結合ハプテンの種類により各抗体と
もマラチオンに対する反応性が変化した。すなわち、モ
ノクローナル抗体MLT2−23は、実施例13の結果
と異なり、マラチオンハプテン−6/HRPを用いた場
合4ng/mlから100ng/mlの濃度範囲で、マ
ラチオンハプテン−4/HRPを用いた場合10ng/
mlから1000ng/mlの濃度範囲でマラチオンと
反応した。一方、モノクローナル抗体MLT40−4
は、マラチオンハプテン−6/HRPを用いた場合40
ng/mlから1000ng/mlの濃度範囲で、マラ
チオンハプテン−4/HRPを用いた場合10ng/m
lから300ng/mlの濃度範囲でマラチオンと反応
した。
The results are shown in FIG. As shown in FIG. 2, the reactivity of each antibody to malathion varied depending on the type of HRP-binding hapten used. That is, the monoclonal antibody MLT2-23 is different from the result of Example 13 in the concentration range of 4 ng / ml to 100 ng / ml when malathion hapten-6 / HRP is used, and 10 ng when malathion hapten-4 / HRP is used. /
Reacted with malathion in a concentration range from ml to 1000 ng / ml. On the other hand, monoclonal antibody MLT40-4
Is 40 when malathion hapten-6 / HRP is used.
10 ng / m when malathion hapten-4 / HRP is used in a concentration range of ng / ml to 1000 ng / ml.
It reacted with malathion in a concentration range of 1 to 300 ng / ml.

【0230】このようにモノクローナル抗体MLT2−
23及びMLT40−4は、いずれも標識競合用ハプテ
ンとの組み合わせによって固有の反応性を示した。特に
モノクローナル抗体MLT2−23とマラチオンハプテ
ン−6/HRPを組み合わせた場合、マラチオンと最も
高い反応性となることが明らかとなった。実施例15 モノクローナル抗体MLT2−23の交差
反応性 実施例14の結果より、マラチオンへ最も高い反応性を
示したモノクローナル抗体MLT2−23とマラチオン
ハプテン−6/HRPの組み合わせを用い、マラチオン
の代謝物及び類縁化合物に対する交差反応性を調べた。
As described above, the monoclonal antibody MLT2-
23 and MLT40-4 all showed unique reactivity in combination with the hapten for labeling competition. In particular, when the monoclonal antibody MLT2-23 and malathion hapten-6 / HRP were combined, it was revealed that the reactivity with malathion was the highest. Example 15 Cross-over of monoclonal antibody MLT2-23
Reactivity From the results of Example 14, cross-reactivity with malathion metabolites and related compounds was examined using a combination of the monoclonal antibody MLT2-23 and malathion hapten-6 / HRP that showed the highest reactivity to malathion.

【0231】結果を以下の表28に示す。The results are shown in Table 28 below.

【0232】[0232]

【表28】 [Table 28]

【0233】表28において、IC50は、反応を50
%阻害する化合物の濃度であり、交差反応率はマラチオ
ンのIC50値/各化合物のIC50値×100であ
る。表28より、モノクローナル抗体MLT2−23
は、マラチオンの代謝物であるマラオクソンと1.6%
の交差反応性を示したものの、他の化合物に対してはす
べて1%以下しか交差反応をせず、マラチオンに対する
高い特異性を持つことが明らかとなった。
In Table 28, IC50 indicates the reaction
% The concentration of the compound that inhibits, and the cross-reactivity is the IC50 value of malathion / IC50 value of each compound x 100. From Table 28, it can be seen that the monoclonal antibody MLT2-23
Is 1.6% with malaoxon, a metabolite of malathion
Despite showing cross-reactivity, all compounds cross-reacted less than 1% with all other compounds, revealing high specificity to malathion.

【図面の簡単な説明】[Brief description of the drawings]

【図1】図1は、直接競合阻害ELISA法による本発
明のモノクローナル抗体MLT2−23、MLT40−
4及びMLT45−3のマラチオンに対する反応性を示
す。
BRIEF DESCRIPTION OF THE DRAWINGS FIG. 1 shows monoclonal antibodies MLT2-23 and MLT40- of the present invention obtained by direct competitive inhibition ELISA.
4 shows the reactivity of MLT4 and MLT45-3 to malathion.

【図2】図2は、ヘテロロガスな直接競合阻害ELIS
A法による本発明のモノクローナル抗体MLT2−23
及びMLT40−4のマラチオンに対する反応性を示
す。
FIG. 2 shows a heterologous direct competitive inhibition ELISA
The monoclonal antibody MLT2-23 of the present invention by the method A
And MLT40-4 shows reactivity to malathion.

フロントページの続き (51)Int.Cl.7 識別記号 FI テーマコート゛(参考) C12P 21/08 G01N 33/53 G 4H050 G01N 33/53 33/531 A 33/531 33/577 B 33/577 A01N 57/12 Z // A01N 57/12 C12N 5/00 B (C12P 21/08 C12R 1:91) (72)発明者 竹脇 俊一 東京都港区浜松町1丁目27番14号 株式会 社環境免疫技術研究所内 (72)発明者 三宅 司郎 東京都港区浜松町1丁目27番14号 株式会 社環境免疫技術研究所内 (72)発明者 山口 優樹 東京都港区浜松町1丁目27番14号 株式会 社環境免疫技術研究所内 (72)発明者 大出 勝也 東京都港区浜松町1丁目27番14号 株式会 社環境免疫技術研究所内 Fターム(参考) 4B024 AA11 BA53 GA03 4B064 AG26 AG27 CA10 CA20 CC24 DA13 4B065 AA90X AA91X AB02 AB05 AC14 BA08 CA25 CA46 4H011 AC01 BB17 4H045 AA11 BA10 CA40 DA75 DA76 EA50 FA72 FA74 4H050 AA01 AA03 AB20 Continued on the front page (51) Int.Cl. 7 Identification symbol FI Theme coat II (reference) C12P 21/08 G01N 33/53 G 4H050 G01N 33/53 33/531 A 33/531 33/577 B 33/577 A01N 57 / 12Z // A01N 57/12 C12N 5/00 B (C12P 21/08 C12R 1:91) (72) Inventor Shunichi Takewaki 1-27-14 Hamamatsucho, Minato-ku, Tokyo Research on environmental immunity technology Institution (72) Inventor Shiro Miyake 1-27-14 Hamamatsucho, Minato-ku, Tokyo Inside the Institute for Environmental Immunity Technology (72) Inventor Yuki 1-27-14 Hamamatsucho, Minato-ku, Tokyo Co., Ltd. Within the Institute for Environmental Immunity Technology (72) Inventor Katsuya Oide 1-27-14 Hamamatsucho, Minato-ku, Tokyo F-term within the Institute for Environmental Immunity Technology 4B024 AA11 BA53 GA03 4B064 AG26 AG27 CA10 CA20 CC24 DA13 4B065 AA90X AA91X AB02 AB05 AC14 BA08 CA25 CA46 4H011 AC01 BB17 4H045 AA11 BA10 CA40 DA75 DA76 EA50 FA72 FA74 4H050 AA01 AA03 AB20

Claims (11)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】以下の式(1): 【化1】 [式(1)中、Xは、NH又はSであり;Zは、NH又
はOであり;kは0又は1であり;mは0ないし2の整
数であり;そしてnは1ないし20の整数である]で表
される構造を有する化合物。
(1) The following formula (1): [In the formula (1), X is NH or S; Z is NH or O; k is 0 or 1; m is an integer of 0 to 2; Which is an integer].
【請求項2】式(1)において、XがNHであり、Zが
Oであり、kが0であり、mが2であり、そしてnが5
である、請求項1に記載の化合物。
2. In the formula (1), X is NH, Z is O, k is 0, m is 2, and n is 5
The compound of claim 1, wherein
【請求項3】請求項1又は2に記載された化合物と高分
子化合物又は標識物質との結合体。
3. A conjugate of the compound according to claim 1 or 2 with a polymer compound or a labeling substance.
【請求項4】請求項1又は2に記載の化合物と高分子化
合物を結合させることにより抗原を作製し、当該抗原を
用いることにより、以下の式(2): 【化2】 で表される構造を有する化合物に反応性を示す抗体を製
造することを特徴とする、式(2)で表される構造を有
する化合物に反応性を示す抗体又はそのフラグメントの
製造方法。
4. An antigen is prepared by binding the compound according to claim 1 or 2 with a polymer compound, and the antigen is used to obtain the following formula (2): A method for producing an antibody or a fragment thereof reactive to a compound having a structure represented by the formula (2), characterized by producing an antibody reactive to a compound having a structure represented by the formula:
【請求項5】請求項3に記載の結合体を抗原として用い
ることにより製造された、式(2)の化合物に反応性を
示す抗体又はそのフラグメント。
5. An antibody or a fragment thereof, which is produced by using the conjugate according to claim 3 as an antigen, and which is reactive with the compound of the formula (2).
【請求項6】モノクローナル抗体である、請求項5に記
載の抗体又はそのフラグメント。
6. The antibody or fragment thereof according to claim 5, which is a monoclonal antibody.
【請求項7】モノクローナル抗体MLT2−23又はそ
のフラグメントである、請求項5若しくは6に記載の抗
体又はフラグメント。
7. The antibody or fragment according to claim 5, which is the monoclonal antibody MLT2-23 or a fragment thereof.
【請求項8】請求項5ないし7のいずれか1項に記載の
抗体又はフラグメントを産生するハイブリドーマ。
A hybridoma that produces the antibody or fragment according to any one of claims 5 to 7.
【請求項9】寄託番号FERM P−17157で寄託
されている、請求項8に記載のハイブリドーマ。
9. The hybridoma according to claim 8, which has been deposited under accession number FERM P-17157.
【請求項10】請求項5ないし7のいずれか1項に記載
の抗体又はフラグメントを用いることを特徴とする、式
(2)で表される化合物の免疫学的測定方法。
10. An immunoassay for a compound represented by the formula (2), comprising using the antibody or fragment according to any one of claims 5 to 7.
【請求項11】さらに、請求項1若しくは2に記載の化
合物又は請求項3に記載の結合体を用いることを含む、
請求項10に記載の免疫学的測定方法。
11. The method according to claim 11, further comprising using the compound according to claim 1 or 2 or the conjugate according to claim 3.
The immunological measurement method according to claim 10.
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* Cited by examiner, † Cited by third party
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JP2001275682A (en) * 2000-03-31 2001-10-09 Kankyo Meneki Gijutsu Kenkyusho:Kk Gene encoding antimalathion monoclonal antibody
CN110981907A (en) * 2019-11-05 2020-04-10 华南农业大学 Malathion hapten, artificial antigen and preparation method thereof
CN112876506A (en) * 2021-02-02 2021-06-01 中国人民解放军火箭军工程设计研究院 Halin stimulant hapten, artificial antigen and antibody and preparation method thereof

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