JP2000095787A - Hapten compound for butamifos, antibody and assay - Google Patents

Hapten compound for butamifos, antibody and assay

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JP2000095787A
JP2000095787A JP10268245A JP26824598A JP2000095787A JP 2000095787 A JP2000095787 A JP 2000095787A JP 10268245 A JP10268245 A JP 10268245A JP 26824598 A JP26824598 A JP 26824598A JP 2000095787 A JP2000095787 A JP 2000095787A
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antibody
compound
butamiphos
formula
antigen
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JP10268245A
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Japanese (ja)
Inventor
Michiyasu Kawada
充康 川田
Kosuke Morimune
孝介 森宗
Shozo Kanai
正三 金井
Yasuhiro Kagawa
康浩 香川
Kazuaki Watanabe
和明 渡辺
Megumi Saito
恵 斉藤
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KANKYO MENEKI GIJUTSU KENKYUSH
Kankyo Meneki Gijutsu Kenkyusho KK
Original Assignee
KANKYO MENEKI GIJUTSU KENKYUSH
Kankyo Meneki Gijutsu Kenkyusho KK
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Publication date
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Abstract

PROBLEM TO BE SOLVED: To obtain a new compound having a structure in which a spacer arm and a functional group usable for binding butamifos, to a polymeric compound are introduced into the butamifos, and useful as a hapten compound for constructing an antigen for preparing a new antibody having reactivity against butamifos. SOLUTION: A compound of formula I (R1 is a 1-4C alkyl; R2 is H or methyl; A is a 1-10C alkylene), for example, a compound of formula II. The compound of formula I is obtained, for example, by reacting a compound of formula III (L1 and L2 are each a halogen) (e.g. ethyl dichlorothiophosphate) with a compound of formula IV (e.g. 5-methyl-2-nitrophenol) in an organic solvent such as benzene in the presence of a base such as potassium carbonate, and further reacting the resultant compound with a compound of the formula H2NACOOZ (Z is a protecting group for a carboxyl) (e.g. tert-butyl 6-aminocaproate) in the same organic solvent as above in the presence of the same base as above followed by the removal of the protection group.

Description

【発明の詳細な説明】DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION

【0001】[0001]

【発明の属する技術分野】本発明は、O−エチル−O−
(3−メチル−6−ニトルフェニル)セコンダリーブチ
ルホスホロアミドチオエート(以下、本明細書中「ブタ
ミホス」と言う)のハプテン化合物、抗原、抗体および
そのフラグメントに関する。
TECHNICAL FIELD The present invention relates to an O-ethyl-O-
The present invention relates to a hapten compound, an antigen, an antibody and a fragment thereof of (3-methyl-6-nitrophenyl) secondary butyl phosphoramidothioate (hereinafter, referred to as "butamiphos").

【0002】本発明は、さらに前記抗原、抗体およびそ
のフラグメントを用いた免疫学的測定方法に関する。
[0002] The present invention further relates to an immunoassay method using the above-mentioned antigens, antibodies and fragments thereof.

【0003】[0003]

【従来の技術】ブタミホスは、以下の式(2):BACKGROUND OF THE INVENTION Butamiphos has the following formula (2):

【化3】 で表される構造を有する有機リン系の化合物で、土壌処
理剤として使用されている。1年生雑草特にイネ科雑草
に高い効果を示す。芝生の雑草防除などに用いられる。
Embedded image An organic phosphorus compound having a structure represented by the following formula, which is used as a soil treatment agent. It shows a high effect on annual weeds, especially grasses. It is used for controlling weeds on lawns.

【0004】より詳しくは、ブタミホスは非ホルモン型
の除草剤で、雑草発生前の土壌処理剤としてメヒシバ、
スズメノカタビラなどの1年生イネ科及び広葉雑草に有
効である。キク科雑草及び多年生雑草には効果が劣る。
本剤は主として幼芽部に接触吸収され、細胞分裂阻害に
より生育異常、さらには生育停止を起こして、雑草を枯
死させる。土壌中での移動性は小さく、効力持続期間は
30日から40日である(農薬ハンドブック 1994
年版、624頁、410頁−411頁、 (社)日本植
物防疫協会;「最新農薬の残留分析法」 第97頁−第
98頁、農薬残留分析法研究班編集 中央法規出版 ’
95.4.1発行)。
[0004] More specifically, butamiphos is a non-hormonal herbicide, and is used as a soil treatment agent before weed emergence.
It is effective for annual grasses and broadleaf weeds such as Poa annua. Less effective against Asteraceae and perennial weeds.
This agent is mainly absorbed into the germ area and causes abnormal growth and further cessation of growth due to inhibition of cell division, causing weeds to die. Mobility in soil is small, potency duration is 30 to 40 days (Agrochemical Handbook 1994)
624, 410-411, Japan Plant Protection Association; "Residual Analysis Method for the Latest Pesticides", pp. 97-98, edited by the Research Group for Pesticide Residue Analysis Method, Chuo Law Publishing.
95.4.1).

【0005】近年、水、土壌、大気等の環境中や食品の
残留農薬が人の健康に及ぼす影響について大きな社会的
関心が寄せられている。ブタミホスは、食品衛生法に基
づく残留農薬基準が、米、らっかせい、並びに、さとい
も、やまいも等のいも類、はくさい、キャベツ等のあぶ
らな科野菜、レタス等のキク科野菜、たまねぎ、にんに
く等のゆり科野菜、にんじん等のせり科野菜、トマト、
なす等のなす科野菜、きゅうり、カボチャ等のうり科野
菜およびスイカ、メロン等の果実類で0.05ppm、
ばれいしょで0.2ppm等と定められている(「残留
農薬基準便覧」改正表 −平成8年9月2日付告示によ
る改正− 厚生省生活衛生局食品化学課監修、社団法人
日本食品衛生協会)。さらに、農薬登録保留基準につ
いても米で0.05ppm、果実で0.1ppm、野菜
で0.05ppm、いも類で0.2ppm、豆類で0.
05ppm等と基準値が定められている(最新農薬の規
制・基準値便覧 1995年版 299頁、(社)日本
植物防疫協会)。
[0005] In recent years, there has been great social interest in the effects of pesticide residues in the environment, such as water, soil, and air, and foods on human health. Butamiphos has a pesticide residue standard based on the Food Sanitation Law, which is based on rice, sea cucumber, potatoes such as sweet potato, yam, etc. Lily vegetables, carrots and other vegetables, tomatoes,
Eggplant vegetables such as eggplant, cucumbers, cucurbits such as pumpkins and fruits such as watermelon, melon 0.05ppm,
It is specified as 0.2 ppm etc. in potatoes (Revision table of "Standards for Pesticide Residues"-Revised by notification on September 2, 1996-Food Chemistry Division, Ministry of Health and Welfare, Ministry of Health and Welfare, Japan Food Sanitation Association). In addition, regarding the pesticide registration suspension standard, 0.05 ppm for rice, 0.1 ppm for fruits, 0.05 ppm for vegetables, 0.2 ppm for potatoes, and 0.1 ppm for beans.
The reference value is set at 05 ppm, etc. (Handbook of Regulations and Reference Values for the Latest Agrochemicals, 1995 edition, p. 299, Japan Plant Protection Association).

【0006】また、水質に関しても環境庁による「ゴル
フ場で使用される農薬による水質汚濁の防止に係る暫定
指導指針」(1990年)において、ブタミホスのゴル
フ場排水に係る暫定指導指針値が0.04mg/lと定
められている。当該指針値の性格は、ゴルフ場の使用農
薬が外部に流出することによる水質汚濁を防止する観点
から、上限値として定められている。さらに、公共用水
域等における農薬の水質評価指針として、ブタホミスは
基準値が0.004mg/lと定められている。これ
は、公共用水域の水質保全対策の一環として、水質汚濁
に係る環境基準(いわゆる水質環境基準)などの他に、
農薬成分について環境庁が示した指針である(最新農薬
の規制・基準値便覧 上述)。
[0006] Regarding the water quality, the provisional guidance guideline on the prevention of water pollution by the pesticides used in golf courses by the Environment Agency in 1990 (1990) shows that the provisional guidance guideline on the drainage of golf courses by butamiphos is 0. It is determined to be 04 mg / l. The nature of the guideline value is set as an upper limit value from the viewpoint of preventing water pollution due to the outflow of pesticides used in the golf course. Further, as a guideline for evaluating the water quality of pesticides in public water bodies, butafomis has a standard value of 0.004 mg / l. As part of water quality preservation measures for public water bodies, in addition to environmental standards related to water pollution (so-called water quality environmental standards),
These are guidelines provided by the Environment Agency for pesticide components (the latest handbook of regulations and standard values for pesticides).

【0007】よって、食品や環境に関する安全確保のた
めには、これらに含有される、ブタミホスの量を迅速か
つ正確に測定することが必要である。
Therefore, in order to ensure the safety of foods and the environment, it is necessary to quickly and accurately measure the amount of butamiphos contained therein.

【0008】従来、例えば農産物中のブタミホスは、米
・果実・野菜・いも類・豆類等の試料から抽出し、精製
した後、ガスクロマトグラフィー(GC)により分析さ
れてきた。即ち、試料をアセトンで抽出し、その濃縮液
をC18ミニカラム及びシリカゲルミニカラムで精製し
た後に、GCで分析する方法が採用されてきた(「最新
農薬の残留分析法」、前出)。この方法は、試料の調製
が煩雑で多大の手間と時間を必要とし、分析に熟練を有
すること、並びに、測定装置や設備等に高額の費用を必
要とする等の問題点がある。ブタミホスの測定は短時間
で膨大な数の試料の分析結果を出す必要があり、精度面
だけでなく、簡便性、迅速性及び経済性をも具備した新
規測定方法が要求されてきている。
Conventionally, for example, butamiphos in agricultural products has been extracted from samples of rice, fruits, vegetables, potatoes, beans, etc., purified, and then analyzed by gas chromatography (GC). That is, a method has been adopted in which a sample is extracted with acetone, the concentrate is purified by a C18 mini column and a silica gel mini column, and then analyzed by GC ("Residual analysis method of latest agricultural chemicals", supra). This method has problems that the preparation of the sample is complicated and requires a great deal of labor and time, that the analysis is skilled, and that the measuring device and the equipment require high costs. In the measurement of butamiphos, it is necessary to obtain an analysis result of an enormous number of samples in a short time, and a new measurement method having not only accuracy but also simplicity, speed, and economy has been demanded.

【0009】免疫学的測定方法は、抗体が抗原を特異的
に認識する、抗原抗体反応に基づいて抗原の検出を行う
方法であり、その優れた精度、簡便性、迅速性、経済性
から近年注目を集めてきている。免疫学的測定方法にお
いては検出方法として非常に多種の標識、例えば、酵
素、放射性トレーサー、化学発光あるいは蛍光物質、金
属原子、ゾル、ラテックス及びバクテリオファージが適
用されてきた。
The immunoassay is a method for detecting an antigen based on an antigen-antibody reaction in which the antibody specifically recognizes the antigen. Due to its excellent accuracy, simplicity, rapidity, and economical efficiency, it has recently It's getting attention. In immunoassays, a great variety of labels have been applied as detection methods, for example enzymes, radiotracers, chemiluminescent or fluorescent substances, metal atoms, sols, latexes and bacteriophages.

【0010】免疫学的測定方法の中でも、酵素を使用す
る酵素免疫測定法(EIA)は経済性・利便性から特に
優れたものとして広く使用されるに至っている。酵素免
疫測定法についての優れた論評が、Tijssen
P,“Practice and theory of
enzyme immunoassays” inL
aboratory techniques in b
iochemistry and molecular
biology, Elsevier Amster
dam New York, Oxford ISBN
0−7204−4200−1(1990)に記載され
ている。
[0010] Among the immunoassays, the enzyme immunoassay (EIA) using an enzyme has been widely used as being particularly excellent in terms of economy and convenience. An excellent review of enzyme immunoassays can be found in Tijssen
P, "Practice and theory of
Enzyme immunoassays ”inL
laboratory technologies in b
iochemistry and molecular
biology, Elsevier Amster
dam New York, Oxford ISBN
0-7204-4200-1 (1990).

【0011】一般に、分子量が大きな分子については、
それ以上修飾することなく動物に接種することにより、
適当な免疫反応を惹起し、抗原を認識する抗体を産生さ
せることができる。しかし、ブタミホスのような低分子
化合物は通常動物に接種したとき免疫応答を引き出すこ
とができない。これらの分子は免疫原性を有する高分子
化合物に結合させることによって初めて一団のエピトー
プとして行動し、T細胞受容体の存在下で免疫応答を起
こし、その結果、一群のBリンパ球により抗体が産生さ
れる。このように高分子化合物と結合させて初めて免疫
原性を生じる分子を総称して「ハプテン」と言う。
Generally, for a molecule having a large molecular weight,
By inoculating animals without further modification,
An appropriate immune response can be elicited to produce an antibody that recognizes the antigen. However, small molecule compounds such as butamiphos usually cannot elicit an immune response when inoculated into animals. For the first time, these molecules act as a panel of epitopes by binding to immunogenic macromolecules and elicit an immune response in the presence of the T cell receptor, resulting in the production of antibodies by a group of B lymphocytes. Is done. Molecules that produce immunogenicity only when bound to a polymer compound in this way are collectively referred to as “haptens”.

【0012】しかし、低分子化合物を高分子化合物と結
合させたものを抗原としても、得られた抗体は望む分子
を認識しないか、あるいはごく低い親和性しかもたない
場合がしばしばある。そのため、一般に低分子化合物そ
のものではなく、結合に利用できる官能基と共にスペー
サーアーム(結合手)を導入したものをハプテンとして
使用する必要がある。しかしその場合に、結合手/官能
基の配置、結合手の大きさ等の全ての問題を考慮して導
入が適切に行われたものを使用しないと、好ましい抗体
は得られない。適切な導入は個々の分子に応じて工夫し
なければならない。
However, even when a low molecular compound is combined with a high molecular compound as an antigen, the resulting antibody often does not recognize the desired molecule or has only a very low affinity. Therefore, it is generally necessary to use not a low molecular compound itself but a hapten into which a spacer arm (bond) is introduced together with a functional group available for bonding. However, in such a case, a preferable antibody cannot be obtained unless one having been appropriately introduced in consideration of all problems such as the arrangement of the bond / functional group and the size of the bond is used. Proper introduction must be devised for each molecule.

【0013】しかしながら、ブタミホスについてはその
必要性が非常に高かったにもかかわらず、適切な抗体は
もとより、抗体を作製するためのハプテンも本発明前に
は得られていなかった。
[0013] However, despite the very high need for butamiphos, not only a suitable antibody but also a hapten for producing the antibody had not been obtained before the present invention.

【0014】[0014]

【発明が解決しようとする課題】本発明は、ブタミホス
に反応する新規な抗体もしくはそのフラグメント、及び
その作製方法を提供することを目的とする。尚、本明細
書において抗体の「フラグメント」とは、抗原と結合可
能な抗体の一部分、例えばFab断片等を意味する。
SUMMARY OF THE INVENTION An object of the present invention is to provide a novel antibody or a fragment thereof that reacts with butamiphos, and a method for producing the same. As used herein, the term “fragment” of an antibody means a part of an antibody capable of binding to an antigen, for example, a Fab fragment or the like.

【0015】本発明はその一態様において、ブタミホス
に反応性を有するモノクローナル抗体を提供する。
[0015] In one aspect, the present invention provides a monoclonal antibody reactive with butamifos.

【0016】本発明は、また、ブタミホスに反応性を有
する新規な抗体を作製するための抗原を構成するハプテ
ン化合物となる、当該化合物の誘導体を提供することを
目的とする。
Another object of the present invention is to provide a derivative of the compound which is a hapten compound constituting an antigen for producing a novel antibody reactive with butamiphos.

【0017】本発明は、さらに、ブタミホス誘導体と高
分子化合物との結合体を提供することを目的とする。当
該結合体はブタミホスに反応性を有する抗体を作製する
ための抗原となる。
Another object of the present invention is to provide a conjugate of a butamiphos derivative and a polymer compound. The conjugate serves as an antigen for producing an antibody reactive with butamiphos.

【0018】本発明は、さらにまた、前記抗体及びその
フラグメントを産生するハイブリドーマを提供すること
を目的とする。
[0018] It is still another object of the present invention to provide a hybridoma that produces the antibody and its fragment.

【0019】本発明は、さらに、前記抗体もしくはその
フラグメント及び/又は前記ブタミホス誘導体と高分子
化合物との結合体を使用することを含む、ブタミホスの
免疫学的測定方法を提供することを目的とする。
Another object of the present invention is to provide a method for immunological measurement of butamiphos, which comprises using a conjugate of the above-mentioned antibody or fragment thereof and / or the above-mentioned butamiphos derivative with a polymer compound. .

【0020】[0020]

【課題を解決するための手段】本発明者らは、鋭意研究
を重ねた結果、ブタミホス又はその部分にスペーサーア
ーム及び高分子化合物との結合に利用できる官能基を導
入した、ブタミホスの誘導体をハプテンとして使用する
ことにより、前記化合物に反応性を有する抗体を得るこ
とに成功し、本発明の完成に至った。
Means for Solving the Problems As a result of intensive studies, the present inventors have found that a derivative of butamiphos in which a functional group which can be used for binding to a spacer arm and a polymer compound has been introduced into butamiphos or a portion thereof. As a result, an antibody having reactivity with the compound was successfully obtained, and the present invention was completed.

【0021】本発明の対象となるブタミホスは、以下の
式(2):
The butamiphos to be used in the present invention has the following formula (2):

【化4】 で表される化合物である。Embedded image It is a compound represented by these.

【0022】本発明の抗体は、例えば、ブタミホス又は
その部分にスペーサーアーム及び結合に利用できる官能
基を導入した誘導体をハプテンとして適当な高分子化合
物と結合させたものを抗原として用いることによって得
ることができる。例えば、以下の式(1):
The antibody of the present invention can be obtained, for example, by using, as an antigen, butamiphos or a derivative obtained by introducing a spacer arm and a functional group available for bonding into a portion thereof, with a suitable polymer compound as a hapten. Can be. For example, the following equation (1):

【化5】 [式(1)中、R1は所望により枝分かれしていてもよ
い炭素数1−4のアルキル基であり;R2は水素原子又
はメチル基であり;そしてAは所望により枝分かれして
いてもよい炭素数1−10のアルキレン基である]で表
される構造を有する化合物を、抗体作製のためのハプテ
ンとして使用する。
Embedded image [In the formula (1), R 1 is an optionally branched alkyl group having 1 to 4 carbon atoms; R 2 is a hydrogen atom or a methyl group; and A is optionally branched. A good alkylene group having 1 to 10 carbon atoms] is used as a hapten for preparing an antibody.

【0023】R1は、所望により枝分かれしてもよい炭
素数1−4のアルキル基であり、例えばメチル基、エチ
ル基、プロピル基、イソプロピル基、ブチル基、イソブ
チル基、tert−ブチル基が挙げられ、好ましくはエ
チル基である。
R 1 is an alkyl group having 1 to 4 carbon atoms which may be branched if desired, and examples thereof include a methyl group, an ethyl group, a propyl group, an isopropyl group, a butyl group, an isobutyl group and a tert-butyl group. And preferably an ethyl group.

【0024】R2は、水素原子またはメチル基であり、
好ましくはメチル基である。
R 2 is a hydrogen atom or a methyl group,
Preferably it is a methyl group.

【0025】Aは、所望により枝分かれしてもよい炭素
数1−10のアルキレン基であり、例えば以下の表1に
挙げられたものが含まれ、好ましくは炭素数1−10の
ポリメチレン基、より好ましくは炭素数5のペンタメチ
レン基である。
A is an alkylene group having 1 to 10 carbon atoms which may be branched if desired, and includes, for example, those listed in Table 1 below, preferably a polymethylene group having 1 to 10 carbon atoms, It is preferably a pentamethylene group having 5 carbon atoms.

【0026】[0026]

【表1】 表1 炭素数1−10のポリメチレン基 −CH(CH3)−(CH2n− (n=1−8) −C(CH32−(CH2n− (n=1−7) −C(CH3)(C25)−(CH2n− (n=1−6) −C(CH3)(C37)−(CH2n− (n=1−5) −C(C252−(CH2n− (n=1−5) −C(C25)(C37)−(CH2n− (n=1−4) −C(C25)(C49)−(CH2n− (n=1−3) −C(C372−(CH2n− (n=1−3) 本発明において、化合物の立体異性体は特に限定されず
全ての立体異性体を含む。
TABLE 1 polymethylene groups -CH carbon number 1-10 (CH 3) - (CH 2) n - (n = 1-8) -C (CH 3) 2 - (CH 2) n - (n = 1-7) -C (CH 3) (C 2 H 5) - (CH 2) n - (n = 1-6) -C (CH 3) (C 3 H 7) - (CH 2) n - (n = 1-5) -C (C 2 H 5) 2 - (CH 2) n - (n = 1-5) -C (C 2 H 5) (C 3 H 7) - (CH 2) n - (n = 1-4) -C ( C 2 H 5) (C 4 H 9) - (CH 2) n - (n = 1-3) -C (C 3 H 7) 2 - (CH 2) n − (n = 1-3) In the present invention, the stereoisomer of the compound is not particularly limited and includes all stereoisomers.

【0027】本発明は、前記ハプテン化合物、ハプテン
化合物と高分子化合物との結合体、ブタミホスに反応す
る抗体及びその作製方法、ならびに該ハプテン化合物又
は該抗体を用いるブタミホスの免疫学的測定方法に関す
る。
The present invention relates to the hapten compound, a conjugate of the hapten compound and a polymer compound, an antibody reacting with butamiphos, a method for producing the same, and a method for immunological measurement of butamiphos using the hapten compound or the antibody.

【0028】ブタミホスの誘導体の作製 式(1)で表されるブタミホス誘導体は、公知の方法に
従って作製することができる。限定されるわけではない
が、例えば、以下に記載するような方法がある。
Preparation of Derivative of Butamiphos The butamiphos derivative represented by the formula (1) can be prepared according to a known method. Although not limited, for example, there is a method as described below.

【0029】まず、以下の式(X1):First, the following equation (X1):

【化6】 [式(X1)中、L1及びL2はハロゲン原子であり(本
明細書中、ハロゲン原子はF、Cl、Br又はIを意味
する)、同一であっても、又は異なっていてもよい;そ
してR1は先に定義した通りである]で表されるジハロ
ゲン化チオリン酸エステルに、以下の式(X2):
Embedded image [In the formula (X1), L 1 and L 2 are halogen atoms (the halogen atom means F, Cl, Br or I in the present specification), and may be the same or different. And R 1 is as defined above], with the following formula (X2):

【化7】 [式(X2)中、R2は先に定義した通りである]で表
される化合物を、有機溶媒中、塩基の存在下で反応させ
ることにより、以下の式(X3):
Embedded image By reacting the compound represented by the formula (X2), wherein R 2 is as defined above, in an organic solvent in the presence of a base, the following formula (X3):

【化8】 [式(X3)中、R1、R2及びL1(L2)は先に定義し
た通りである]で表される化合物を合成する。
Embedded image [In the formula (X3), R 1 , R 2 and L 1 (L 2 ) are as defined above].

【0030】式(X3)の化合物の合成のための有機溶
媒としては、例えば、アセトニトリル、アセトン、ヘキ
サン、ペンタン、ベンゼン、トルエン、ジクロロメタ
ン、クロロホルム、1,2−ジクロロエタン、酢酸エチ
ル、ジグリム、N,N−ジメチルホルムアミド、ヘキサ
メチルリン酸トリアミド等、又はこれらの混合溶液を用
いることができる。塩基としては、例えば、炭酸カリウ
ム、炭酸ナトリウム、炭酸リチウム、炭酸水素カリウ
ム、炭酸水素ナトリウム、水酸化ナトリウム、水酸化カ
リウム、ナトリウムメチラート、ナトリウムエチラー
ト、トリエチルアミン、N,N−ジメチルアニリン、水
酸化ナトリウム、リチウムジイソプロピルアミド等を用
いることができる。
Examples of the organic solvent for synthesizing the compound of the formula (X3) include acetonitrile, acetone, hexane, pentane, benzene, toluene, dichloromethane, chloroform, 1,2-dichloroethane, ethyl acetate, diglyme, N, N-dimethylformamide, hexamethylphosphoric triamide, or the like, or a mixed solution thereof can be used. Examples of the base include potassium carbonate, sodium carbonate, lithium carbonate, potassium hydrogen carbonate, sodium hydrogen carbonate, sodium hydroxide, potassium hydroxide, sodium methylate, sodium ethylate, triethylamine, N, N-dimethylaniline, and hydroxide. Sodium, lithium diisopropylamide and the like can be used.

【0031】反応は、マイナス78℃から溶媒の沸点の
温度、好ましくは0℃から80℃で、1時間から40時
間、好ましくは1時間から24時間行う。
The reaction is carried out at a temperature between −78 ° C. and the boiling point of the solvent, preferably at 0 ° C. to 80 ° C., for 1 hour to 40 hours, preferably for 1 hour to 24 hours.

【0032】次に、式(X3)の化合物と、以下の式
(X4):
Next, a compound of the formula (X3) and the following formula (X4):

【化9】 [式(X4)中、Zはカルボキシル基の保護基であり;
そしてAは先に定義した通りである]で表されるエステ
ル化合物とを有機溶媒中、塩基の存在下で反応させて、
以下の式(X5):
Embedded image [In the formula (X4), Z is a carboxyl-protecting group;
And A is as defined above] in an organic solvent in the presence of a base,
The following formula (X5):

【化10】 [式(X5)中、Z、R1、R2及びAは先に定義した通
りである]で表される化合物を合成する。
Embedded image [In the formula (X5), Z, R 1 , R 2 and A are as defined above].

【0033】式(X4)で表されるエステル化合物は、
公知の方法、例えば、Skerritらの文献(J.A
gric.Food Chem.1992,40,14
66−1470)に記載されている方法に従って、容易
に合成することができる。
The ester compound represented by the formula (X4) is
Known methods, for example, Skerrit et al.
gric. Food Chem. 1992, 40 , 14
66-1470), and can be easily synthesized.

【0034】有機溶媒及び塩基は、上述した式(X3)
の化合物を合成する場合と同様のものを使用することが
できる。
The organic solvent and the base are represented by the formula (X3) described above.
The same compounds as in the case of synthesizing the compound can be used.

【0035】反応は、マイナス78℃から溶媒の沸点の
温度、好ましくは0℃から60℃で、1時間から50時
間、好ましくは1時間から24時間行う。
The reaction is carried out at a temperature between −78 ° C. and the boiling point of the solvent, preferably at 0 ° C. to 60 ° C., for 1 hour to 50 hours, preferably for 1 hour to 24 hours.

【0036】Zで示されるカルボキシル基の保護基は公
知のものでよく、具体例として、例えばメチル基、エチ
ル基、tert−ブチル基、ベンジル基、p−メトキシ
ベンジル基、3,4−ジメトキシベンジル基、トリクロ
ロエチル基、トリメチルシリル基、tert−ブチルジ
メチルシリル基、tert−ブチルジフェニルシリル
基、トリエチルシリル基、トリイソプロピルシリル基、
トリメチルシリルエトキシメチル基等を挙げることがで
きる。
The protecting group for the carboxyl group represented by Z may be a known group, and specific examples include a methyl group, an ethyl group, a tert-butyl group, a benzyl group, a p-methoxybenzyl group and a 3,4-dimethoxybenzyl group. Group, trichloroethyl group, trimethylsilyl group, tert-butyldimethylsilyl group, tert-butyldiphenylsilyl group, triethylsilyl group, triisopropylsilyl group,
And a trimethylsilylethoxymethyl group.

【0037】なお、式(X1)の化合物から式(X5)
の化合物の合成は、式(X1)の化合物に式(X4)で
表されるエステル化合物を先ず反応させて、次に、式
(X2)の化合物を反応させることによって行ってもよ
い。
The compound of the formula (X1) is converted to the compound of the formula (X5)
The compound of formula (X1) may be synthesized by first reacting a compound of formula (X1) with an ester compound represented by formula (X4), and then reacting a compound of formula (X2).

【0038】さらに、式(X5)の化合物からZで表さ
れるカルボキシル基の保護基を除去することにより、式
(1)の化合物を得ることができる。カルボキシル基の
保護基の除去は、アルカリ加水分解、酸加水分解等の公
知の方法で行うことができる。
Further, the compound of the formula (1) can be obtained by removing the protecting group for the carboxyl group represented by Z from the compound of the formula (X5). The removal of the carboxyl-protecting group can be carried out by a known method such as alkali hydrolysis and acid hydrolysis.

【0039】すなわち、酸加水分解の場合は、式(X
5)の化合物を、好ましくは酢酸、蟻酸、ベンゼン、ジ
クロロメタン、1,2−ジクロロエタン等の有機溶媒に
溶解し、次いで塩酸、硫酸、三フッ化ホウ素ジエチルエ
ーテル錯体、トリフルオロ酢酸、トリフルオロメタンス
ルホン酸、p−トルエンスルホン酸等を加えて、0℃か
ら溶媒の沸点の温度、好ましくは0℃から50℃で、5
分から10時間、好ましくは1時間から5時間撹拌反応
させることにより式(1)の化合物を得ることができ
る。
That is, in the case of acid hydrolysis, the formula (X)
The compound of 5) is preferably dissolved in an organic solvent such as acetic acid, formic acid, benzene, dichloromethane, 1,2-dichloroethane and the like, and then hydrochloric acid, sulfuric acid, boron trifluoride diethyl ether complex, trifluoroacetic acid, trifluoromethanesulfonic acid , P-toluenesulfonic acid or the like, and the mixture is heated at 0 ° C to the boiling point of the solvent, preferably at 0 ° C to 50 ° C.
The compound of formula (1) can be obtained by stirring and reacting for 1 to 5 hours, preferably for 1 to 5 hours.

【0040】また、アルカリ加水分解の場合は、式(X
5)の化合物を、好ましくはメタノール、エタノール、
テトラヒドロフラン、エチレングリコール等の有機溶媒
に溶解し、次いで炭酸水素ナトリウム、炭酸ナトリウ
ム、炭酸カリウム、水酸化リチウム、水酸化ナトリウム
又は水酸化カリウム水溶液等を加えて、0℃から溶媒の
沸点の温度、好ましくは0℃から室温で、5分から10
時間、好ましくは1時間から2時間撹拌反応させること
により式(1)の化合物を得ることができる。
In the case of alkali hydrolysis, the formula (X
The compound of 5) is preferably methanol, ethanol,
Dissolve in an organic solvent such as tetrahydrofuran and ethylene glycol, and then add sodium hydrogencarbonate, sodium carbonate, potassium carbonate, lithium hydroxide, sodium hydroxide or potassium hydroxide aqueous solution and the like, and the temperature is preferably from 0 ° C to the boiling point of the solvent, preferably. From 0 ° C to room temperature for 5 minutes to 10
The compound of formula (1) can be obtained by stirring and reacting for 1 hour to 2 hours.

【0041】更に、Zがベンジル基の場合、除去は水素
による加水素分解によっても行うことができる。
Further, when Z is a benzyl group, the removal can be carried out by hydrogenolysis with hydrogen.

【0042】更にまた、Zがシリル基の場合、脱保護は
テトラ−n−ブチルアンモニウムフルオリド、ピリジニ
ウムフルオリド等のフッ素アニオンを発生させる試薬に
よっても行うことができる。
Further, when Z is a silyl group, deprotection can be carried out by a reagent which generates a fluorine anion such as tetra-n-butylammonium fluoride or pyridinium fluoride.

【0043】上述したような製造方法によって得られた
化合物を、必要に応じシリカゲルクロマトグラフィー又
は再結晶操作等を行うことにより、さらに高純度の精製
品とすることができる。
By subjecting the compound obtained by the above-described production method to silica gel chromatography or recrystallization as required, a purified product having a higher purity can be obtained.

【0044】以下、本発明の抗原、抗体の作製、及び免
疫化学的測定法について説明する。尚、これらの調製は
公知の方法、例えば続生化学実験講座、免疫生化学研究
法(日本生化学会編)等に記載の方法に従って行うこと
ができる。
Hereinafter, the preparation of the antigen and antibody of the present invention and the immunochemical assay will be described. In addition, these preparations can be carried out according to a known method, for example, a method described in Seikagaku Experimental Lecture, Immunobiochemical Research Method (edited by the Japanese Biochemical Society), or the like.

【0045】ブタミホス誘導体と高分子化合物との結合
体の作製 上述のように合成されたブタミホス誘導体は適当な高分
子化合物に結合させてから免疫用抗原として使用する。
Bonding between butamiphos derivative and polymer compound
Preparation of body The butamiphos derivative synthesized as described above is used as an immunizing antigen after binding to an appropriate polymer compound.

【0046】好ましい高分子化合物の例としては、スカ
シガイへモシアニン(以下、「KLH」と言う)、卵白
アルブミン(以下、「OVA」と言う)、ウシ血清アル
ブミン(以下、「BSA」と言う)、ウサギ血清アルブ
ミン(以下、「RSA」と言う)などがある。KLH及
びBSAが好ましい。
Examples of preferred high molecular compounds include keyhole limpet hemocyanin (hereinafter referred to as “KLH”), ovalbumin (hereinafter referred to as “OVA”), bovine serum albumin (hereinafter referred to as “BSA”), Rabbit serum albumin (hereinafter referred to as “RSA”) and the like. KLH and BSA are preferred.

【0047】ブタミホス誘導体と高分子化合物との結合
は、例えば、混合酸無水物法(B.F.Erlange
r et al.:J.Biol.Chem.234
090‐1094(1954))、又は活性化エステル
法(A.E.KARU etal.:J.Agric.
Food Chem.42 301−309(199
4))等の公知の方法によって行うことができる。
The binding between the butamiphos derivative and the polymer compound can be performed, for example, by the mixed acid anhydride method (BF Erlange).
r et al. : J. Biol. Chem. 234 1
090-1094 (1954)) or the activated ester method (AEKARU et al .: J. Agric.
Food Chem. 42 301-309 (199
It can be performed by a known method such as 4)).

【0048】混合酸無水物法において用いられる混合酸
無水物は、通常のショッテン−バウマン反応により得ら
れ、これを高分子化合物と反応させることにより目的と
するハプテン−高分子化合物結合体が作製される。ショ
ッテン−バウマン反応は塩基性化合物の存在下に行われ
る。塩基性化合物としてはショッテン−バウマン反応に
慣用の化合物を使用することができ、例えば、トリ−n
−ブチルアミン、トリエチルアミン、トリメチルアミ
ン、ピリジン、ジメチルアニリン、N−メチルモルホリ
ン、DBN、DBU、DABCO等の有機塩基、炭酸カ
リウム、炭酸ナトリウム、炭酸水素カリウム、炭酸水素
ナトリウム等の無機塩基等が挙げられる。該反応は、通
常マイナス20℃から100℃、好ましくは0℃から5
0℃において行われ、反応時間は5分から10時間、好
ましくは5分から2時間である。得られた混合酸無水物
と高分子化合物との反応は、通常マイナス20℃から1
50℃、好ましくは0℃から100℃において行われ、
反応時間は5分から10時間、好ましくは5分から5時
間である。混合酸無水物法は一般に溶媒中で行われる。
溶媒としては、混合酸無水物法に慣用されているいずれ
の溶媒も使用可能であり、具体的にはジクロロメタン、
クロロホルム、ジクロロエタン等のハロゲン化炭化水素
類、ベンゼン、トルエン、キシレン等の芳香族炭化水素
類、ジエチルエーテル、ジオキサン、テトラヒドロフラ
ン、ジメトキシエタン等のエーテル類、酢酸メチル、酢
酸エチル等のエステル類、N,N−ジメチルホルムアミ
ド、ジメチルスルホキシド、ヘキサメチルリン酸トリア
ミド等の非プロトン性極性溶媒等が挙げられる。混合酸
無水物法において使用されるハロ蟻酸エステルとして
は、例えばクロロ蟻酸メチル、ブロモ蟻酸メチル、クロ
ロ蟻酸エチル、ブロモ蟻酸エチル、クロロ蟻酸イソブチ
ル等が挙げられる。当該方法におけるハプテンとハロ蟻
酸エステルと高分子化合物の使用割合は、広い範囲から
適宜選択され得る。
The mixed acid anhydride used in the mixed acid anhydride method is obtained by a usual Schotten-Baumann reaction, and this is reacted with a high molecular compound to produce a desired hapten-high molecular compound conjugate. You. The Schotten-Baumann reaction is performed in the presence of a basic compound. As the basic compound, a compound commonly used in the Schotten-Baumann reaction can be used. For example, tri-n
Organic bases such as -butylamine, triethylamine, trimethylamine, pyridine, dimethylaniline, N-methylmorpholine, DBN, DBU, and DABCO; and inorganic bases such as potassium carbonate, sodium carbonate, potassium hydrogencarbonate, and sodium hydrogencarbonate. The reaction is usually carried out at a temperature between -20 ° C and 100 ° C, preferably between 0 ° C and 5 ° C.
The reaction is performed at 0 ° C., and the reaction time is 5 minutes to 10 hours, preferably 5 minutes to 2 hours. The reaction between the resulting mixed acid anhydride and the polymer compound is usually carried out at a temperature of -20 ° C to 1 ° C.
Carried out at 50 ° C, preferably at 0 ° C to 100 ° C,
The reaction time is 5 minutes to 10 hours, preferably 5 minutes to 5 hours. The mixed anhydride method is generally performed in a solvent.
As the solvent, any solvent commonly used in the mixed acid anhydride method can be used, and specifically, dichloromethane,
Halogenated hydrocarbons such as chloroform and dichloroethane; aromatic hydrocarbons such as benzene, toluene and xylene; ethers such as diethyl ether, dioxane, tetrahydrofuran and dimethoxyethane; esters such as methyl acetate and ethyl acetate; Aprotic polar solvents such as N-dimethylformamide, dimethylsulfoxide, hexamethylphosphoric triamide and the like; Examples of the haloformate used in the mixed acid anhydride method include methyl chloroformate, methyl bromoformate, ethyl chloroformate, ethyl bromoformate, and isobutyl chloroformate. The proportions of the hapten, the haloformate and the polymer compound used in the method can be appropriately selected from a wide range.

【0049】一方、活性化エステル法は、一般に以下の
ように行うことができる。まず、ハプテン化合物を有機
溶媒に溶解し、カップリング剤の存在下にてN−ヒドロ
キシこはく酸イミドと反応させ、N−ヒドロキシこはく
酸イミド活性化エステルを生成する。
On the other hand, the activated ester method can be generally carried out as follows. First, a hapten compound is dissolved in an organic solvent and reacted with N-hydroxysuccinimide in the presence of a coupling agent to produce an N-hydroxysuccinimide activated ester.

【0050】カップリング剤としては、縮合反応に慣用
されている通常のカップリング剤を使用でき、例えば、
ジシクロヘキシルカルボジイミド、カルボニルジイミダ
ゾール、水溶性カルボジイミド等が含まれる。有機溶媒
としては、例えばN,N−ジメチルホルムアミド(DM
F)、ジメチルスルホキシド、ジオキサン等が使用でき
る。反応に使用するハプテン化合物とN−ヒドロキシこ
はく酸イミドのモル比は好ましくは1:10から10:
1、最も好ましくは1:1である。反応温度は、0℃か
ら50℃、好ましくは22℃から27℃で、反応時間は
5分−24時間、好ましくは1時間から2時間である。
反応温度は各々の融点以上沸点以下の温度で行うことが
できる。
As the coupling agent, an ordinary coupling agent commonly used in a condensation reaction can be used.
Dicyclohexylcarbodiimide, carbonyldiimidazole, water-soluble carbodiimide and the like. Examples of the organic solvent include N, N-dimethylformamide (DM
F), dimethylsulfoxide, dioxane and the like can be used. The molar ratio of the hapten compound and N-hydroxysuccinimide used in the reaction is preferably from 1:10 to 10:
1, most preferably 1: 1. The reaction temperature is 0 ° C to 50 ° C, preferably 22 ° C to 27 ° C, and the reaction time is 5 minutes to 24 hours, preferably 1 hour to 2 hours.
The reaction can be carried out at a temperature from the melting point to the boiling point.

【0051】カップリング反応後、反応液を遠心し、上
清液を高分子化合物を溶解した溶液に加え反応させる
と、例えば高分子化合物が遊離のアミノ基を有する場
合、当該アミノ基とハプテン化合物のカルボキシル基の
間に酸アミド結合が生成される。反応温度は、0℃から
60℃、好ましくは5℃から40℃、より好ましくは2
2℃から27℃で、反応時間は5分から24時間、好ま
しくは1時間から16時間、より好ましくは1時間から
2時間である。反応物を、透析、脱塩カラム等によって
精製して、ブタミホス誘導体と高分子化合物との結合体
を得ることができる。
After the coupling reaction, the reaction solution is centrifuged, and the supernatant is added to a solution in which the polymer compound is dissolved. When the polymer compound has a free amino group, for example, the amino group and the hapten compound An acid amide bond is formed between the carboxyl groups of The reaction temperature is 0 ° C to 60 ° C, preferably 5 ° C to 40 ° C, more preferably 2 ° C to 40 ° C.
At 2 ° C. to 27 ° C., the reaction time is 5 minutes to 24 hours, preferably 1 hour to 16 hours, more preferably 1 hour to 2 hours. The reaction product is purified by dialysis, a desalting column, or the like to obtain a conjugate of a butamiphos derivative and a polymer compound.

【0052】また、上記と同様の方法により、酵素等の
標識物質をブタミホス誘導体に結合させたものを、免疫
学的測定方法において使用することができる。標識物質
としては、西洋わさびペルオキシダーゼ(以下、「HR
P」と言う)、アルカリフォスファターゼ等の酵素、フ
ルオレセインイソシアネート、ローダミン等の蛍光物
質、32P、125I等の放射性物質、化学発光物質などが
ある。
In a similar manner as described above, a product obtained by binding a labeling substance such as an enzyme to a butamiphos derivative can be used in an immunological assay. As a labeling substance, horseradish peroxidase (hereinafter, “HR”)
P "), enzymes such as alkaline phosphatase, fluorescent substances such as fluorescein isocyanate and rhodamine, radioactive substances such as 32 P and 125 I, and chemiluminescent substances.

【0053】ポリクローナル抗体の作製 ブタミホス誘導体と高分子化合物との結合体を使用し
て、慣用化された方法により本発明のポリクローナル抗
体を作製することができる。例えば、ブタミホス誘導体
−KLH結合体をリン酸ナトリウム緩衝液(以下、「P
BS」と言う)に溶解し、フロイント完全アジュバント
又は不完全アジュバント、あるいはミョウバン等の補助
剤と混合したものを、免疫用抗原として動物を免疫する
ことによって得ることができる。免疫される動物として
は当該分野で常用されるものをいずれも使用できるが、
例えば、マウス、ラット、ウサギ、ヤギ、ウマ等を挙げ
ることができる。
Preparation of Polyclonal Antibody The polyclonal antibody of the present invention can be prepared by a conventional method using a conjugate of a butamiphos derivative and a polymer compound. For example, a butamiphos derivative-KLH conjugate is added to a sodium phosphate buffer (hereinafter referred to as “P
BS) and mixed with an adjuvant such as Freund's complete adjuvant or incomplete adjuvant, or alum, as an antigen for immunization. As the animal to be immunized, any of those commonly used in the art can be used,
For example, mouse, rat, rabbit, goat, horse and the like can be mentioned.

【0054】免疫の際の投与法は、皮下注射、腹腔内注
射、静脈内注射、皮内注射、筋肉内注射のいずれでもよ
いが、皮下注射又は腹腔内注射が好ましい。免疫は1回
又は適当な間隔で、好ましくは1週間ないし5週間の間
隔で複数回行うことができる。
The administration method upon immunization may be any of subcutaneous injection, intraperitoneal injection, intravenous injection, intradermal injection, and intramuscular injection, but subcutaneous injection or intraperitoneal injection is preferred. Immunization can be performed once or at appropriate intervals, preferably multiple times at intervals of one to five weeks.

【0055】免疫した動物から血液を採取し、そこから
分離した血清を用い、ブタミホスと反応するポリクロー
ナル抗体の存在を評価することができる。
[0055] Blood is collected from the immunized animal, and the serum separated therefrom can be used to evaluate the presence of a polyclonal antibody that reacts with butamifos.

【0056】モノクローナル抗体の作製 ブタミホス誘導体と高分子化合物との結合体を使用し
て、公知の方法により本発明のモノクローナル抗体を作
製することができる。
Preparation of Monoclonal Antibody The monoclonal antibody of the present invention can be prepared by a known method using a conjugate of a butamiphos derivative and a polymer compound.

【0057】モノクローナル抗体の製造にあたっては、
少なくとも下記のような作業工程が必要である。
In producing a monoclonal antibody,
At least the following work steps are required.

【0058】(a)免疫用抗原として使用するブタミホ
ス誘導体と高分子化合物との結合体の作製 (b)動物への免疫 (c)血液の採取、アッセイ、及び抗体産生細胞の調製 (d)ミエローマ細胞の調製 (e)抗体産生細胞とミエローマとの細胞融合とハイブ
リドーマの選択的培養(f)目的とする抗体を産生する
ハイブリドーマのスクリーニングと細胞クローニング (g)ハイブリドーマの培養又は動物へのハイブリドー
マの移植によるモノクローナル抗体の調製 (h)調製されたモノクローナル抗体の反応性の測定
等。
(A) Preparation of a conjugate of a butamiphos derivative and a polymer compound used as an antigen for immunization (b) Immunization of animals (c) Collection of blood, assay, and preparation of antibody-producing cells (d) Myeloma Preparation of cells (e) Cell fusion between antibody-producing cells and myeloma and selective culture of hybridomas (f) Screening and cloning of hybridomas producing the desired antibody (g) Culture of hybridomas or transplantation of hybridomas into animals (H) Measurement of reactivity of the prepared monoclonal antibody and the like.

【0059】モノクローナル抗体を産生するハイブリド
ーマを作製するための常法は、例えば、ハイブリドーマ
テクニックス(Hybridoma Techniq
ues),コールド スプリング ハーバー ラボラト
リーズ(Cold Spring Harbor Lab
oratory,1980年版)、細胞組織化学(山下
修二ら、日本組織細胞化学会編;学際企画、1986
年)に記載されている。
A conventional method for producing a hybridoma producing a monoclonal antibody is described in, for example, Hybridoma Techniq.
us), Cold Spring Harbor Laboratories
laboratory, 1980 edition), cytohistochemistry (Syuji Yamashita et al., edited by the Japanese Society for Tissue and Cellular Chemistry; interdisciplinary project, 1986
Year).

【0060】以下、本発明のブタミホスに対するモノク
ローナル抗体の作製方法を説明するが、これに制限され
ないことは当業者によって明らかであろう。
Hereinafter, a method for preparing a monoclonal antibody against butamifos of the present invention will be described, but it will be apparent to those skilled in the art that the present invention is not limited thereto.

【0061】(a)−(b)の工程は、ポリクローナル
抗体に関して記述した方法とほぼ同様の方法によって行
うことができる。
The steps (a) and (b) can be performed by a method substantially similar to the method described for the polyclonal antibody.

【0062】(c)の工程における抗体産生細胞はリン
パ球であり、これは一般には脾臓、胸腺、リンパ節、末
梢血液又はこれらの組み合わせから得ることができるが
脾細胞が最も一般的に用いられる。従って、最終免疫
後、抗体産生が確認されたマウスより抗体産生細胞が存
在する部位、例えば脾臓を摘出し、脾細胞を調製する。
The antibody-producing cells in the step (c) are lymphocytes, which can be generally obtained from the spleen, thymus, lymph nodes, peripheral blood or a combination thereof, but spleen cells are most commonly used. . Therefore, after the final immunization, a site where antibody-producing cells are present, for example, a spleen is excised from a mouse in which antibody production has been confirmed, and splenocytes are prepared.

【0063】(d)の工程に用いることのできるミエロ
ーマ細胞としては、例えば、Balb/cマウス由来骨
髄腫細胞株のP3/X63−Ag8(X63)(Nat
ure,256,495−497(1975))、P3
/X63−Ag8.U1(P3U1)(Current
Topics.in Microbiology an
d Immunology,81, 1−7(198
7))、P3/NSI−1−Ag 4−1(NS−1)
(Eur.J.Immunol.,,511−519
(1976))、Sp2/O−Ag14(Sp2/O)
(Nature, 276,269−270(197
8))、FO(J.Immuno.Meth.,35,
1−21(1980))、MPC−11、X63.65
3、S194等の骨髄腫株化細胞、あるいはラット由来
の210.RCY3.Ag 1.2.3.(Y3)(N
ature, 277,131−133,(1979))
等を使用できる。
The myeloma cells that can be used in the step (d) include, for example, P3 / X63-Ag8 (X63) (Nat) of a myeloma cell line derived from a Balb / c mouse.
ure, 256 , 495-497 (1975)), P3
/ X63-Ag8. U1 (P3U1) (Current
Topics. in Microbiology an
d Immunology, 81 , 1-7 (198
7)), P3 / NSI-1-Ag 4-1 (NS-1)
(Eur. J. Immunol., 6 , 511-519).
(1976)), Sp2 / O-Ag14 (Sp2 / O)
(Nature, 276 , 269-270 (197
8)), FO (J. Immuno. Meth., 35 ,
1-21 (1980)), MPC-11, X63.65.
3, myeloma cell line such as S194, or rat-derived cell line 210. RCY3. Ag 1.2.3. (Y3) (N
ature, 277 , 131-133, (1979))
Etc. can be used.

【0064】上述した株化細胞をウシ胎児血清を含むダ
ルベッコ改変イーグル培地(DMEM)又はイスコフ改
変ダルベッコ培地(IMDM)で継代培養し、融合当日
に約3×103以上の細胞数を確保する。
The above-described cell line is subcultured in Dulbecco's modified Eagle's medium (DMEM) or Iscove's modified Dulbecco's medium (IMDM) containing fetal bovine serum, and a cell number of about 3 × 10 3 or more is secured on the day of fusion. .

【0065】(e)の工程の細胞融合は公知の方法、例
えばミルスタイン(Milstein)らの方法(Met
hods in Enzymology,73,3(19
81))等に準じて行うことができる。現在最も一般的
に行われているのはポリエチレングリコール(PEG)
を用いる方法である。PEG法については、例えば、細
胞組織化学、山下修二ら(上述)に記載されている。別
の融合方法としては、電気処理(電気融合)による方法
を採用することもできる(大河内悦子ら、実験医学
.1315−19、1987)。その他の方法を適宜
採用することもできる。また、細胞の使用比率も公知の
方法と同様でよく、例えばミエローマ細胞に対して脾細
胞を3倍から10倍程度用いればよい。
The cell fusion in the step (e) is performed by a known method, for example, the method of Milstein et al. (Met
hods in Enzymology, 73 , 3 (19
81)) and the like. Currently the most commonly used is polyethylene glycol (PEG)
It is a method using. The PEG method is described in, for example, Cell Histochemistry, Shuji Yamashita et al. (Supra). As another fusion method, a method using electric processing (electric fusion) can be adopted (Etsuko Okochi et al., Experimental Medicine)
5 . 1315-19, 1987). Other methods can be appropriately adopted. In addition, the ratio of cells used may be the same as in a known method. For example, spleen cells may be used about 3 to 10 times as much as myeloma cells.

【0066】脾細胞とミエローマ細胞とが融合し、抗体
分泌能及び増殖能を獲得したハイブリドーマ群の選択
は、例えば、ミエローマ細胞株としてヒポキサンチング
アニンホスホリボシルトランスフェラーゼ欠損株を使用
した場合、例えば上述のDMEMやIMDMにヒポキサ
ンチン・アミノプテリン・チミジンを添加して調製した
HAT培地の使用により行うことができる。
The selection of a hybridoma group in which spleen cells and myeloma cells are fused to obtain antibody secretion ability and proliferation ability is performed, for example, when a hypoxanthine guanine phosphoribosyltransferase-deficient strain is used as a myeloma cell line, for example, as described above. It can be performed by using a HAT medium prepared by adding hypoxanthine / aminopterin / thymidine to DMEM or IMDM.

【0067】(f)の工程では、選択されたハイブリド
ーマ群を含む培養上清の一部をとり、例えば後述するE
LISA法により、ブタミホスに対する抗体活性を測定
する。
In the step (f), a part of the culture supernatant containing the selected hybridoma group is taken and subjected to, for example, E
The antibody activity against butamiphos is measured by the LISA method.

【0068】さらに、測定によりブタミホスに反応する
抗体を産生することが判明したハイブリドーマの細胞ク
ローニングを行う。この細胞クローニング法としては、
限界希釈により1ウェルに1個のハイブリドーマが含ま
れるように希釈する方法「限界希釈法」;軟寒天培地上
に撒きコロニーをとる方法;マイクロマニピュレーター
によって1個の細胞を取り出す方法;セルソーターによ
って1個の細胞を分離する「ソータークローン法」等が
挙げられる。限界希釈法が簡単でありよく用いられる。
Further, cell cloning of a hybridoma which has been found by measurement to produce an antibody reactive with butamiphos is performed. As this cell cloning method,
Method for limiting one hybridoma to one well by limiting dilution "Limiting dilution method"; Method for collecting colonies on a soft agar medium; Method for removing one cell with a micromanipulator; One method using a cell sorter "Sorter clone method" for separating the cells. The limiting dilution method is simple and often used.

【0069】抗体価の認められたウェルについて、例え
ば限界希釈法によりクローニングを1−4回繰り返して
安定して抗体価の得られたものを、抗ブタミホスモノク
ローナル抗体産生ハイブリドーマ株として選択する。ハ
イブリドーマを培養する培地としては、例えば、ウシ胎
児血清(FCS)を含むDMEM又はIMDM等が用い
られる。ハイブリドーマの培養は、例えば二酸化炭素濃
度5−7%程度及び37℃(100%湿度の恒温器中)
で培養するのが好ましい。
For the wells in which the antibody titer has been recognized, cloning is repeated 1-4 times, for example, by the limiting dilution method, and those with a stable antibody titer are selected as anti-butamiphos monoclonal antibody-producing hybridoma strains. As a medium for culturing the hybridoma, for example, DMEM or IMDM containing fetal calf serum (FCS) is used. The culture of the hybridoma is performed, for example, at a carbon dioxide concentration of about 5 to 7% and at 37 ° C. (in a thermostat at 100% humidity).
It is preferable to culture the cells.

【0070】(g)の工程で抗体を調製するための大量
培養は、フォローファイバー型の培養装置等によって行
われる。又は、同系統のマウス(例えば、上述のBal
b/c)あるいはNu/Nuマウスの腹腔内でハイブリ
ドーマを増殖させ、腹水液より抗体を調製することも可
能である。
The mass culture for preparing the antibody in the step (g) is performed by a follow-fiber type culture device or the like. Alternatively, mice of the same strain (for example, Bal
b / c) or hybridomas can be grown in the peritoneal cavity of Nu / Nu mice, and antibodies can be prepared from ascites fluid.

【0071】これらにより得られた培養上清液あるいは
腹水液を抗ブタミホスモノクローナル抗体として使用す
ることできるが、さらに透析、硫酸アンモニウムによる
塩析、ゲル濾過、凍結乾燥等を行い、抗体画分を集め精
製することにより抗ブタミホスモノクローナル抗体を得
ることができる。さらに、精製が必要な場合には、イオ
ン交換カラムクロマトグラフィー、アフィニティークロ
マトグラフィー、高速液体クロマトグラフィー(HPL
C)などの慣用されている方法を組合わせることにより
実施できる。
The culture supernatant or ascites fluid obtained as described above can be used as an anti-butamiphos monoclonal antibody. The antibody fraction is further subjected to dialysis, salting out with ammonium sulfate, gel filtration, lyophilization, etc. By collecting and purifying, an anti-butamiphos monoclonal antibody can be obtained. Further, when purification is necessary, ion exchange column chromatography, affinity chromatography, high performance liquid chromatography (HPL)
It can be carried out by combining commonly used methods such as C).

【0072】以上のようにして得られた抗ブタミホスモ
ノクローナル抗体は、例えば後述したELISA法など
の公知の方法を使用して、サブクラス、抗体価等を決定
することができる。
The anti-butamiphos monoclonal antibody obtained as described above can be determined for its subclass, antibody titer and the like by using a known method such as the ELISA method described below.

【0073】抗体によるブタミホスの測定 本発明で使用する抗体によるブタミホスの測定法として
は、放射性同位元素免疫測定法(RIA法)、ELIS
A法(Engvall,E.,Methodsin E
nzymol.,70,419−439(198
0))、蛍光抗体法、プラーク法、スポット法、凝集
法、オクタロニー(Ouchterlony)等の一般
に抗体の検出に使用されている種々の方法(「ハイブリ
ドーマ法とモノクローナル抗体」、株式会社R&Dプラ
ニング発行、第30頁−第53頁、昭和57年3月5
日)が挙げられる。感度、簡便性等の観点からELIS
A法が汎用されている。
Measurement of Butamiphos with Antibodies As a method for measuring butamiphos with antibodies used in the present invention, radioisotope immunoassay (RIA), ELISA
Method A (Engval, E., Methods in E)
nzymol. , 70 , 419-439 (198
0)), fluorescent antibody method, plaque method, spot method, agglutination method, Ouchterlony, etc., various methods generally used for detection of antibodies ("Hybridoma method and monoclonal antibody", published by R & D Planning, Inc. Pages 30-53, March 5, 1982
Days). ELIS from the viewpoint of sensitivity, simplicity, etc.
Method A is widely used.

【0074】ブタミホスの測定は、各種ELISA法の
うち例えば間接競合阻害ELISA法により、以下のよ
うな手順により行うことができる。
The measurement of butamiphos can be carried out by the following procedure using, for example, an indirect competitive inhibition ELISA method among various ELISA methods.

【0075】(a)まず、抗原であるブタミホス誘導体
と高分子化合物との結合体を担体に固相化する。
(A) First, a conjugate of a butamiphos derivative as an antigen and a polymer compound is immobilized on a carrier.

【0076】(b)抗原が吸着していない固相表面を抗
原と無関係な、例えばタンパク質によりブロッキングす
る。
(B) The solid surface on which the antigen is not adsorbed is blocked by a protein unrelated to the antigen, for example, a protein.

【0077】(c)これに各種濃度のブタミホスを含む
試料及び抗体を加え、該抗体を前記固相化抗原及びブタ
ミホスに競合的に結合させて、固相化抗原−抗体複合体
及びブタミホス−抗体複合体を生成させる。
(C) A sample containing various concentrations of butamiphos and an antibody are added thereto, and the antibody is competitively bound to the immobilized antigen and butamyphos to form an immobilized antigen-antibody complex and butamyphos-antibody. Allow the complex to form.

【0078】(d)固相化抗原−抗体複合体の量を測定
することにより、予め作成した検量線から試料中のブタ
ミホスの量を決定することができる。
(D) By measuring the amount of the immobilized antigen-antibody complex, the amount of butamiphos in the sample can be determined from a previously prepared calibration curve.

【0079】(a)工程において、抗原を固相化する担
体としては、特別な制限はなく、ELISA法において
常用されるものをいずれも使用することができる。例え
ば、ポリスチレン製の96ウェルのマイクロタイタープ
レートが挙げられる。
In step (a), the carrier on which the antigen is immobilized is not particularly limited, and any carrier commonly used in the ELISA method can be used. An example is a 96-well microtiter plate made of polystyrene.

【0080】抗原を担体に固相化させるには、例えば、
抗原を含む緩衝液を担体上に加え、インキュベーション
すればよい。緩衝液としては公知のものが使用でき、例
えば、145mM NaClを含む10mMのPBSを
挙げることができる。緩衝液中の抗原の濃度は広い範囲
から選択できるが、通常0.01μg/mlから100
μg/ml程度、好ましくは0.05μg/mlから5
μg/mlが適している。また、担体として96ウェル
のマイクロタイタープレートを使用する場合には、30
0μl/ウェル以下で20μl/ウェルから150μl
/ウェル程度が望ましい。更に、インキュベーションの
条件にも特に制限はないが、通常4℃程度で一晩インキ
ュベーションが適している。
For immobilizing an antigen on a carrier, for example,
A buffer containing an antigen may be added to the carrier and incubated. Known buffers can be used as the buffer, for example, 10 mM PBS containing 145 mM NaCl. The concentration of the antigen in the buffer can be selected from a wide range, but is usually from 0.01 μg / ml to 100 μg / ml.
μg / ml, preferably from 0.05 μg / ml to 5 μg / ml.
μg / ml is suitable. When a 96-well microtiter plate is used as a carrier, 30
20 μl / well to 150 μl below 0 μl / well
/ Well is desirable. Furthermore, the conditions for incubation are not particularly limited, but usually incubation at about 4 ° C. overnight is suitable.

【0081】なお、抗体に固相化させる抗原としては、
抗体に作製したブタミホス誘導体と高分子化合物との結
合体自体のみならず、式(1)で表される他の誘導体と
高分子化合物との結合体を用いることもできる。例え
ば、式(1)で表される化合物でR1、R2又はAが相違
する抗原を各々抗体作製用と固相化用に用いることもで
きる。さらに、式(1)に含まれない、他のブタミホス
類似化合物も、固相化抗原として使用することも可能で
ある。
The antigen to be immobilized on the antibody includes:
Not only the conjugate of the butamiphos derivative and the polymer compound prepared in the antibody itself, but also the conjugate of another derivative represented by the formula (1) and the polymer compound can be used. For example, antigens having different R 1 , R 2 or A in the compound represented by the formula (1) can be used for antibody production and solid phase immobilization, respectively. Furthermore, other butamiphos-like compounds not included in the formula (1) can also be used as the immobilized antigen.

【0082】(b)工程のブロッキングは、抗原(ブタ
ミホス誘導体と高分子化合物との結合体)を固相化した
担体において、ブタミホス誘導体部分以外に後で添加す
る抗体が吸着され得る部分が存在する場合があり、もっ
ぱらそれを防ぐ目的で行われる。ブロッキング剤とし
て、例えば、BSAやスキムミルク溶液を使用できる。
あるいは、ブロックエース(「Block‐Ace」、
大日本製薬、コードNo.UK−25B)等のブロッキ
ング剤として市販されているものを使用することもでき
る。具体的には、限定されるわけではないが、例えば抗
原を固相化した部分に、ブロックエースを適量加え、約
4℃で、一晩インキュベーションした後、緩衝液で洗浄
することにより行われる。緩衝液としては特に制限はな
いが、例えば、10mM PBS(pH7.2)、0.
8%(w/v)NaCl、0.02%(w/v)KC
l、0.02%(v/v)Tween20の組成のもの
が適している。
In the blocking in the step (b), in the carrier on which the antigen (combination of the butamiphos derivative and the high molecular compound) is immobilized, there is a portion other than the butamiphos derivative portion to which the antibody to be added later can be adsorbed. May be done solely to prevent it. As a blocking agent, for example, BSA or skim milk solution can be used.
Or, Block Ace ("Block-Ace",
Dainippon Pharmaceutical, code No. A commercially available blocking agent such as UK-25B) can also be used. Specifically, the method is carried out by, for example, but not limited to, adding an appropriate amount of Block Ace to a portion where the antigen is immobilized, incubating at about 4 ° C. overnight, and then washing with a buffer. The buffer is not particularly limited, but may be, for example, 10 mM PBS (pH 7.2), 0.1 mM PBS.
8% (w / v) NaCl, 0.02% (w / v) KC
1, a composition of 0.02% (v / v) Tween 20 is suitable.

【0083】次いで(c)工程において、ブタミホスを
含む試料と抗体を固相化抗原と接触させ、抗体を固相化
抗原及びブタミホスと反応させることにより、固相化抗
原−抗体複合体及びブタミホス−抗体複合体が生成す
る。
Next, in step (c), the sample containing butamiphos and the antibody are brought into contact with the immobilized antigen, and the antibody is reacted with the immobilized antigen and butamiphos, whereby the immobilized antigen-antibody complex and butamiphos- An antibody complex is formed.

【0084】この際、抗体としては、第一抗体として本
願発明のブタミホスに対する抗体を加え、更に第二抗体
として標識酵素を結合した第一抗体に対する抗体を順次
加えて反応させる。
At this time, as the antibody, an antibody against butamyphos of the present invention is added as a first antibody, and an antibody against the first antibody to which a labeling enzyme is bound is sequentially added as a second antibody to react.

【0085】第一抗体は緩衝液に溶解して添加する。限
定されるわけではないが、反応は、37℃程度で約1時
間行えばよい。反応終了後、緩衝液で担体を洗浄し、固
相化抗原に結合しなかった第一抗体を除去する。この反
応に用いる試薬としては、10mM PBS(pH7.
2)、0.8%(w/v)NaCl、0.02%(w/
v)KClの組成のものが好ましい。
The first antibody is added after being dissolved in a buffer. Although not limited, the reaction may be performed at about 37 ° C. for about 1 hour. After completion of the reaction, the carrier is washed with a buffer to remove the first antibody that has not bound to the immobilized antigen. As a reagent used in this reaction, 10 mM PBS (pH 7.
2), 0.8% (w / v) NaCl, 0.02% (w / v)
v) KCl compositions are preferred.

【0086】次いで第二抗体を添加する。例えば第一抗
体としてマウスモノクローナル抗体を用いる場合、酵素
(例えば、ペルオキシダーゼ又はアルカリホスファター
ゼ等)を結合した抗マウス−ヤギ抗体を用いるのが適当
である。担体に結合した第一抗体に約500−1000
0倍、好ましくは最終吸光度が4以下、より好ましくは
0.5−3.0となるように希釈した第二抗体を反応さ
せる。希釈には緩衝液を用いる。限定されるわけではな
いが、反応は約37℃で約1時間行い、反応後、緩衝液
で洗浄する。以上の反応により、第二抗体が第一抗体に
結合する。また、標識した第一抗体を用いてもよく、そ
の場合、第二抗体は不要である。
Next, a second antibody is added. For example, when a mouse monoclonal antibody is used as the first antibody, it is appropriate to use an anti-mouse-goat antibody conjugated with an enzyme (for example, peroxidase or alkaline phosphatase). About 500-1000 for the first antibody bound to the carrier
A second antibody diluted to a 0-fold, preferably a final absorbance of 4 or less, more preferably 0.5 to 3.0 is reacted. Buffer is used for dilution. The reaction is carried out, but not limited to, at about 37 ° C. for about 1 hour, followed by washing with a buffer after the reaction. By the above reaction, the second antibody binds to the first antibody. Alternatively, a labeled first antibody may be used, in which case the second antibody is not required.

【0087】次いで(d)工程において担体に結合した
第二抗体の標識物質と反応する発色基質溶液を加え、吸
光度を測定することによって検量線からブタミホスの量
を算出することができる。
Next, in step (d), a chromogenic substrate solution that reacts with the labeling substance of the second antibody bound to the carrier is added, and the amount of butamiphos can be calculated from the calibration curve by measuring the absorbance.

【0088】第二抗体に結合する酵素としてペルオキシ
ダーゼを使用する場合には、例えば、過酸化水素、並び
に3,3’,5,5’−テトラメチルベンジジン又はο
−フェニレンジアミン(以下、「OPD」と言う)を含
む発色基質溶液を使用することができる。限定されるわ
けではないが、発色基質溶液を加え約25℃で約20分
間反応させた後、2Nの硫酸を加えることにより酵素反
応を停止させる。OPDを使用する場合、480−50
0nmの吸光度を測定する。3,3’,5,5’−テト
ラメチルベンジジンを使用する場合、450nmの吸光
度を測定する。一方、第二抗体に結合する酵素としてア
ルカリホスファターゼを使用する場合には、例えばp−
ニトロフェニルリン酸を基質として発色させ、2NのN
aOHを加えて酵素反応を止め、415nmでの吸光度
を測定する方法が適している。
When peroxidase is used as the enzyme that binds to the second antibody, for example, hydrogen peroxide and 3,3 ′, 5,5′-tetramethylbenzidine or o
-A chromogenic substrate solution containing phenylenediamine (hereinafter referred to as "OPD") can be used. Although not limited, a chromogenic substrate solution is added and reacted at about 25 ° C. for about 20 minutes, and then the enzyme reaction is stopped by adding 2N sulfuric acid. 480-50 when using OPD
Measure the absorbance at 0 nm. When 3,3 ', 5,5'-tetramethylbenzidine is used, the absorbance at 450 nm is measured. On the other hand, when alkaline phosphatase is used as the enzyme that binds to the second antibody, for example, p-
The color is developed using nitrophenyl phosphate as a substrate and 2N N
A method of stopping the enzymatic reaction by adding aOH and measuring the absorbance at 415 nm is suitable.

【0089】ブタミホスを添加しない反応溶液の吸光度
に対して、ブタミホスを添加して抗体と反応させた溶液
の吸光度の減少率を阻害率として計算する。既知の濃度
のブタミホスを添加した反応液の阻害率により予め作成
しておいた検量線を用いて、試料中のブタミホスの濃度
を算出できる。
With respect to the absorbance of the reaction solution without the addition of butamiphos, the decrease in the absorbance of the solution reacted with the antibody with the addition of butamiphos is calculated as the inhibition rate. The concentration of butamiphos in the sample can be calculated using a calibration curve prepared in advance based on the inhibition rate of the reaction solution to which a known concentration of butamiphos has been added.

【0090】あるいはブタミホスの測定は例えば以下に
述べるような本発明のモノクローナル抗体を用いた直接
競合阻害ELISA法によって行うこともできる。
Alternatively, the measurement of butamiphos can be carried out, for example, by a direct competitive inhibition ELISA method using the monoclonal antibody of the present invention as described below.

【0091】(a)まず、本発明のモノクローナル抗体
を、担体に固相化する。
(A) First, the monoclonal antibody of the present invention is immobilized on a carrier.

【0092】(b)抗体が固相化されていない担体表面
を抗原と無関係な、例えばタンパク質により、ブロッキ
ングする。
(B) The surface of the carrier on which the antibody is not immobilized is blocked with a protein unrelated to the antigen, for example, a protein.

【0093】(c)各種濃度のブタミホスを含む試料、
及びブタミホス誘導体と酵素を結合させた酵素結合ハプ
テンを、担体に固相化した抗体と反応させる。
(C) a sample containing various concentrations of butamiphos,
And an enzyme-bound hapten in which a butamiphos derivative is bound to an enzyme is reacted with an antibody immobilized on a carrier.

【0094】(d)固相化抗体−酵素結合ハプテン複合
体の量を測定することにより、あらかじめ作成した、検
量線から試料中のブタミホスの量を決定する。
(D) By measuring the amount of the immobilized antibody-enzyme-bound hapten complex, the amount of butamiphos in the sample is determined from a previously prepared calibration curve.

【0095】(a)工程においてモノクローナル抗体を
固相化する担体としては、特別な制限はなくELISA
法において常用されるものを用いることができ、例え
ば、96ウェルのマイクロタイタープレートが挙げられ
る。モノクローナル抗体の固相化は、例えばモノクロー
ナル抗体を含む緩衝液を担体上にのせ、インキュベート
することによって行える。緩衝液の組成・濃度は前述の
間接競合阻害ELISA法と同様のものを採用できる。
The carrier on which the monoclonal antibody is immobilized in the step (a) is not particularly limited and may be an ELISA.
Conventional methods can be used, and examples include a 96-well microtiter plate. The immobilization of the monoclonal antibody can be carried out, for example, by placing a buffer containing the monoclonal antibody on a carrier and incubating. The composition and concentration of the buffer can be the same as in the indirect competitive inhibition ELISA method described above.

【0096】(b)工程のブロッキングは、抗体を固相
化した担体において、後に添加する試料中のブタミホス
及び酵素結合ハプテンが、抗原抗体反応とは無関係に吸
着される部分が存在する場合があるので、それを防ぐ目
的で行う。ブロッキング剤及びその方法は、前述の間接
競合阻害ELISA法と同様のものを使用できる。
In the blocking in the step (b), there may be a case where a part to which butamiphos and an enzyme-bound hapten in a sample to be added later are adsorbed irrespective of the antigen-antibody reaction is present on the carrier on which the antibody is immobilized. So do it to prevent it. As the blocking agent and the method therefor, those similar to the indirect competitive inhibition ELISA method described above can be used.

【0097】(c)工程において用いる酵素結合ハプテ
ンの調製は、ブタミホス誘導体を酵素に結合する方法で
あれば特に制限なく、いかなる方法で行ってもよい。例
えば、前述した活性化エステル法を採用することができ
る。調製した酵素結合ハプテンはブタミホスを含む試料
と混合する。
The method of preparing the enzyme-bound hapten used in the step (c) is not particularly limited as long as the method binds the butamiphos derivative to the enzyme, and may be performed by any method. For example, the activated ester method described above can be employed. The prepared enzyme-linked hapten is mixed with a sample containing butamiphos.

【0098】なお、酵素等の標識物質に結合させるハプ
テンとしては、間接競合阻害ELISA法における固相
化抗原の場合と同様に、抗体作製に使用したブタミホス
誘導体のみならず、式(1)で表される他の誘導体を用
いることもできる。例えば、式(1)で表される化合物
でR1、R2又はAが相違する抗原を各々抗体作製用と標
識競合用に用いることもできる。さらに、式(1)に含
まれない、他のブタミホス類似化合物も、酵素に結合さ
せるハプテンとして使用可能である。
The hapten to be bound to a labeling substance such as an enzyme is not limited to the butamiphos derivative used for preparing the antibody, but may be represented by the formula (1) as in the case of the immobilized antigen in the indirect competitive inhibition ELISA method. Other derivatives described can also be used. For example, antigens having different R 1 , R 2 or A in the compound represented by the formula (1) can be used for antibody production and label competition, respectively. Further, other butamiphos-like compounds not included in the formula (1) can be used as haptens to be bound to the enzyme.

【0099】(c)工程においてブタミホスを含む試料
及び酵素結合ハプテンを抗体固相化担体に接触させ、ブ
タミホスと酵素結合ハプテンとの競合阻害反応により、
これらと固相化担体との複合体が生成する。ブタミホス
を含む試料は適当な緩衝液で希釈して使用する。限定さ
れるわけではないが、反応は例えば、室温でおよそ1時
間行う。反応終了後、緩衝液で担体を洗浄し、固相化抗
体と結合しなかった酵素結合ハプテンを除去する。緩衝
液は、例えばPBSを使用することができる。
In the step (c), the sample containing butamiphos and the enzyme-bound hapten are brought into contact with the antibody-immobilized carrier, and the competition inhibition reaction between butamiphos and the enzyme-bound hapten is performed.
A complex of these and the solid-phased carrier is formed. The sample containing butamiphos is used after being diluted with an appropriate buffer. Without limitation, the reaction is carried out, for example, at room temperature for approximately one hour. After the completion of the reaction, the carrier is washed with a buffer to remove the enzyme-bound hapten that has not bound to the immobilized antibody. As the buffer, for example, PBS can be used.

【0100】さらに(d)工程において酵素結合ハプテ
ンの酵素に反応する発色基質溶液を前述の間接競合阻害
ELISA法と同様に加え、吸光度を測定することによ
り、検量線からブタミホスの量を算出することができ
る。
Further, in step (d), a chromogenic substrate solution that reacts with the enzyme of the enzyme-bound hapten is added in the same manner as in the indirect competitive inhibition ELISA method described above, and the absorbance is measured to calculate the amount of butamiphos from the calibration curve. Can be.

【0101】本発明のモノクロ−ナル抗体BTF2−7
7は、直接競合阻害ELISA法でブタミホスの量を
0.01ng/mlから1000ng/ml、好ましく
は0.1ng/mlから100ng/mlの範囲で測定
できる(実施例9、図1)。
The monoclonal antibody BTF2-7 of the present invention
No. 7 can measure the amount of butamiphos in the range of 0.01 ng / ml to 1000 ng / ml, preferably 0.1 ng / ml to 100 ng / ml by the direct competitive inhibition ELISA method (Example 9, FIG. 1).

【0102】本発明の抗体の交差反応性 上述した直接競合阻害ELISA法又は間接競合阻害E
LISA法により、本発明のモノクローナル抗体の交差
反応性を調べることができる。
Cross-reactivity of the Antibody of the Present Invention The above-described direct competitive inhibition ELISA or indirect competitive inhibition E
The cross-reactivity of the monoclonal antibody of the present invention can be examined by the LISA method.

【0103】例えば、本発明のモノクローナル抗体BT
F2−77はブタミホスの代謝物であるブタミホスオキ
ソン、並びに類縁する有機リン系化合物であるアミプロ
ホス、アニロホスとは交差反応性を示さない(実施例1
0、図2)。
For example, the monoclonal antibody BT of the present invention
F2-77 does not show cross-reactivity with butamifos oxone, a metabolite of butamiphos, and the related organophosphorus compounds amiprofos and anilofos (Example 1).
0, FIG. 2).

【0104】以下、実施例によって本発明を具体的に説
明するが、これらは本発明の技術的範囲を限定するため
のものではない。当業者は本明細書の記載に基づいて容
易に本発明に修飾、変更を加えることができ、それらは
本発明の技術的範囲に含まれる。
Hereinafter, the present invention will be described in detail with reference to Examples, but these are not intended to limit the technical scope of the present invention. Those skilled in the art can easily modify and change the present invention based on the description in the present specification, and they are included in the technical scope of the present invention.

【0105】[0105]

【実施例】実施例1 ブタミホス誘導体−1の合成 EXAMPLES Example 1 Synthesis of Butamiphos Derivative-1

【化11】 ジクロロチオリン酸エチル(1)3.6g(20mmo
l)と5−メチル−2−ニトロフェノール3.1g(2
0mmol)をベンゼン100mlに溶解させ、炭酸カ
リウム8.4g(61mmol)を加えて80℃で2時
間撹拌した。反応液をセライトでろ過して、濃縮後、シ
リカゲルカラム(n−ヘキサン:酢酸エチル=19:
1)で精製すると、透明油状物として2.0g(収率3
4%)の(2)を得た。
Embedded image 3.6 g of ethyl dichlorothiophosphate (1) (20 mm
l) and 3.1 g of 5-methyl-2-nitrophenol (2
0 mmol) was dissolved in 100 ml of benzene, 8.4 g (61 mmol) of potassium carbonate was added, and the mixture was stirred at 80 ° C for 2 hours. The reaction solution was filtered through celite, concentrated, and then concentrated on a silica gel column (n-hexane: ethyl acetate = 19:
Purification in 1) gave 2.0 g (yield 3) as a clear oil.
4%) of (2) was obtained.

【0106】クロロチオリン酸誘導体(2)2.0g
(6.77mmol)と6−アミノカプロン酸tert
−ブチル1.27g(6.77mmol)のアセトニト
リル溶液50mlに、炭酸カリウム1.0g(7.25
mmol)を加えて60℃で1時間撹拌した。反応溶液
をセライトでろ過し、ろ液を濃縮後にシリカゲルクロマ
トグラフィー(n−ヘキサン:酢酸エチル=19:1→
9:1)で精製すると、透明油状物として2.43g
(収率80%)の(3)を得た。
2.0 g of chlorothiophosphoric acid derivative (2)
(6.77 mmol) and 6-aminocaproic acid tert
To a solution of 1.27 g (6.77 mmol) of -butyl in 50 ml of acetonitrile was added 1.0 g of potassium carbonate (7.25 mmol).
mmol) and stirred at 60 ° C. for 1 hour. The reaction solution was filtered through celite, and the filtrate was concentrated and then subjected to silica gel chromatography (n-hexane: ethyl acetate = 19: 1 →
Purification in 9: 1) gave 2.43 g as a clear oil.
(Yield 80%) (3) was obtained.

【0107】ハプテンエステル(3)2.43g(5.
4mmol)を50mlのジクロロメタンに溶解させ、
トリフルオロ酢酸(TFA)5mlを加えて室温で2.
5時間撹拌した。反応溶液を減圧濃縮して、シリカゲル
クロマトグラフィー(n−ヘキサン:酢酸エチル=4:
1→1:1)で精製すると、透明油状物として1.94
g(収率91%)の(4)を得た。
The hapten ester (3) 2.43 g (5.
4 mmol) in 50 ml of dichloromethane,
1. Add 5 ml of trifluoroacetic acid (TFA) and add at room temperature.
Stir for 5 hours. The reaction solution was concentrated under reduced pressure and subjected to silica gel chromatography (n-hexane: ethyl acetate = 4:
1 → 1: 1) to give 1.94 as a clear oil.
g (yield 91%) of (4) was obtained.

【0108】ブタミホス誘導体−1の1H−NMRによ
る化学シフトのデータを以下に示す。
The chemical shift data of the butamiphos derivative-1 by 1 H-NMR is shown below.

【0109】1 H−NMR(CDCl3) 1.19−1.46(重複,5H)、1.46−1.72(重複,4H) 2.30−2.41(t,2H)、 2.43(s,3H) 3.02−3.22(m,2H)、 3.22−3.42(m,1H) 4.04−4.21(m,2H)、 7.01−7.10(d,1H) 7.41(s,1H)、 7.77−7.85(d,1H)実施例2 ブタミホス誘導体−2の合成 1 H-NMR (CDCl 3 ) 1.19-1.46 (overlap, 5H), 1.46-1.72 (overlap, 4H) 2.30-2.41 (t, 2H), 2 .43 (s, 3H) 3.02-3.22 (m, 2H), 3.22-3.42 (m, 1H) 4.04-4.21 (m, 2H), 7.01-7 .10 (d, 1H) 7.41 (s, 1H), 7.77-7.85 (d, 1H) Example 2 Synthesis of butamiphos derivative-2

【化12】 ジクロロチオリン酸エチル(1)4.1g(23mmo
l)と6−アミノカプロン酸tert−ブチル3.8g
(20mmol)をアセトニトリル100mlに溶解さ
せ、炭酸カリウム8.4g(61mmol)を加えて室
温で24時間撹拌した。反応液をセライトでろ過して、
濃縮後、シリカゲルカラム(n−ヘキサン:酢酸エチル
=9:1→4:1)で精製すると、透明油状物として
3.9g(収率58%)の(2)を得た。
Embedded image 4.1 g of ethyl dichlorothiophosphate (1) (23 mmol)
l) and 3.8 g of tert-butyl 6-aminocaproate
(20 mmol) was dissolved in 100 ml of acetonitrile, 8.4 g (61 mmol) of potassium carbonate was added, and the mixture was stirred at room temperature for 24 hours. The reaction solution was filtered through Celite,
After concentration, silica gel column (n-hexane: ethyl acetate
= 9: 1 → 4: 1) to give 3.9 g (58% yield) of (2) as a clear oil.

【0110】クロロチオリン酸誘導体(2)3.3g
(10mmol)と2−ニトロフェノール1.5g(1
0.8mmol)のアセトニトリル溶液100mlに、
炭酸カリウム4.3g(31mmol)を加えて80℃
で2時間撹拌した。反応溶液をセライトでろ過し、ろ液
を濃縮後にシリカゲルクロマトグラフィー(n−ヘキサ
ン:酢酸エチル=9:1)で精製すると、透明油状物と
して1.0g(収率23%)の(3)を得た。
3.3 g of chlorothiophosphoric acid derivative (2)
(10 mmol) and 1.5 g of 2-nitrophenol (1
0.8 mmol) in 100 ml of acetonitrile solution,
Add 4.3 g (31 mmol) of potassium carbonate and add 80 ° C
For 2 hours. The reaction solution was filtered through celite, and the filtrate was concentrated and purified by silica gel chromatography (n-hexane: ethyl acetate = 9: 1) to give 1.0 g (yield 23%) of (3) as a transparent oil. Obtained.

【0111】ハプテンエステル(3)1.0g(2.3
mmol)を100mlのジクロロメタンに溶解させ、
トリフルオロ酢酸10mlを加えて室温で2時間撹拌し
た。反応溶液を減圧濃縮して、シリカゲルクロマトグラ
フィー(n−ヘキサン:酢酸エチル=4:1→1:1)
で精製すると、透明油状物として0.77g(収率89
%)の(4)を得た。
Hapten ester (3) 1.0 g (2.3
mmol) in 100 ml of dichloromethane,
10 ml of trifluoroacetic acid was added and the mixture was stirred at room temperature for 2 hours. The reaction solution is concentrated under reduced pressure, and silica gel chromatography (n-hexane: ethyl acetate = 4: 1 → 1: 1)
And 0.77 g as a clear oil (yield 89
%) Of (4) was obtained.

【0112】ブタミホス誘導体−2の1H−NMRによ
る化学シフトのデータを以下に示す。
The chemical shift data of the butamiphos derivative-2 by 1 H-NMR is shown below.

【0113】1 H−NMR(CDCl3) 1.19−1.44(重複,5H)、1.44−1.72(重複,4H) 2.27−2.40(t,2H)、3.00−3.20(m,2H) 3.22−3.40(m,1H)、4.02−4.22(m,2H) 7.20−7.33(m,1H)、7.50−7.69(m,2H) 7.83−7.94(d,1H)実施例3 免疫用抗原の作製 実施例1で作製したブタミホス誘導体−1をハプテンと
して免疫用抗原を混合酸無水物法により作製した。
1 H-NMR (CDCl 3 ) 1.19-1.44 (duplicate, 5H), 1.44-1.72 (duplicate, 4H) 2.27-1.40 (t, 2H), 3 0.000-3.20 (m, 2H) 3.22-3.40 (m, 1H), 4.02-4.22 (m, 2H) 7.20-7.33 (m, 1H), 7 .50-7.69 (m, 2H) 7.83-7.94 (d, 1H) Example 3 Preparation of Antigen for Immunization Using the butamiphos derivative-1 prepared in Example 1 as a hapten as a hapten, a mixed acid was prepared. It was prepared by the anhydride method.

【0114】先ず、ブタミホス誘導体−1の7mgを無
水ジオキサン0.7mlに溶解し、10℃から12℃に
冷却した後、トリ−n−ブチルアミン4μlおよびクロ
ロ蟻酸イソブチル24μlを添加し、10℃から12℃
にて30分間撹拌した(以下、これを「A液」とす
る)。
First, 7 mg of butamiphos derivative-1 was dissolved in 0.7 ml of anhydrous dioxane, cooled to 10 ° C. to 12 ° C., and 4 μl of tri-n-butylamine and 24 μl of isobutyl chloroformate were added. ° C
For 30 minutes (hereinafter referred to as “solution A”).

【0115】一方、蒸留水1mlにKLHを20mg溶
解し、0.5%NaHCO3(pH9.4)を外液とし
て一晩透析した。透析後3000rpm、30分間遠心
し得られた上清1.5mlにA液をゆっくり添加した。
4℃にて2時間反応させた後、スパーテル1杯のグリシ
ンを添加してさらに、4℃にて30分間撹拌することに
より反応を終了させた。この反応液を145mM Na
Cl−10mM PBS(pH7.4)中で1週間透析
して免疫用抗原を得た。
On the other hand, 20 mg of KLH was dissolved in 1 ml of distilled water, and dialyzed overnight using 0.5% NaHCO 3 (pH 9.4) as an external solution. After the dialysis, the solution A was slowly added to 1.5 ml of the supernatant obtained by centrifugation at 3000 rpm for 30 minutes.
After reacting at 4 ° C. for 2 hours, one spatula of glycine was added, and the mixture was further stirred at 4 ° C. for 30 minutes to complete the reaction. This reaction solution was 145 mM Na
The antigen for immunization was obtained by dialysis for one week in Cl-10 mM PBS (pH 7.4).

【0116】このようにして得られたブタミホス誘導体
−1とKLHとの結合体(以下、「ブタミホス誘導体1
−KLH結合体」と言う)を免疫用抗原として用いた。
The conjugate of the thus obtained butamiphos derivative-1 and KLH (hereinafter referred to as "butamiphos derivative 1")
-KLH conjugate ") was used as the antigen for immunization.

【0117】実施例4 スクリーニング用抗原の作製 スクリーニング用抗原として実施例3と同様の方法によ
りブタミホス誘導体1−BSA結合体を得た。
Example 4 Preparation of Antigen for Screening A butamiphos derivative 1-BSA conjugate was obtained as a screening antigen in the same manner as in Example 3.

【0118】実施例5 免疫感作 実施例3において調製したブタミホス誘導体1−KLH
結合体を免疫用抗原としてマウスに免疫をおこなった。
免疫用抗原100μgをPBS 100μlに溶解し、等
量のフロイント完全アジュバントと混合した後、Bal
b/cマウスに接種した。17日後にフロイント不完全
アジュバントを用いて調製した免疫用抗原を、前記と同
様の操作によりマウスに追加免疫をおこなった。また、
41日後にはPBSに溶解した免疫抗原をマウスに追加
免疫した。
Example 5 Immunization The butamiphos derivative 1-KLH prepared in Example 3
Mice were immunized using the conjugate as an antigen for immunization.
After 100 μg of the antigen for immunization was dissolved in 100 μl of PBS and mixed with an equal volume of Freund's complete adjuvant, Bal
b / c mice were inoculated. Seventeen days later, mice were boosted with the immunizing antigen prepared using Freund's incomplete adjuvant in the same manner as described above. Also,
Forty-one days later, mice were boosted with an immunizing antigen dissolved in PBS.

【0119】実施例6 抗血清による測定 実施例5で調製した抗血清の力価を、実施例4で調製し
たスクリーニング用抗原を用いた間接競合阻害ELIS
A法によって評価した。
Example 6 Measurement with Antiserum The titer of the antiserum prepared in Example 5 was determined by an indirect competitive inhibition ELISA using the screening antigen prepared in Example 4.
The evaluation was performed by the method A.

【0120】まず、実施例4で調製したブタミホス誘導
体1−BSA結合体の溶液(0.1μg/ml)を10
0μl/ウェルにて96ウェルプレートにコーティング
した。洗浄の後、4倍に希釈したブロックエース(「B
lock Ace」:大日本製薬、コードNo.UK−
25B)でブロッキングした後、抗血清希釈液と各種濃
度のブタミホスあるいはその類似化合物を含む10%メ
タノ−ル溶液とを等量混合し、その100μlをウェル
に入れ、37℃にて1時間反応させた。反応終了後、
0.05%Tween20−PBSにて1回洗浄の後、
PBSを用いて5000倍希釈したペルオキシダ−ゼ結
合抗マウスIgGヤギ抗体(カッペル社製)を100μ
lずつ各ウェルに添加し、37℃にて1時間反応させ
た。さらに反応終了後、0.05%Tween20−P
BSにて2回洗浄し、0.4mg/ml o-フェニレ
ンジアミン(OPD)及び0.04%過酸化水素を含む
0.05Mリン酸クエン酸緩衝液(pH4.5)を10
0μlずつ各ウェルにいれ室温にて20分間放置し、発
色させた。反応後、2N硫酸100μlを各ウェルに加
え、反応を停止させた後、490nmの吸光度を測定し
た。
First, a solution (0.1 μg / ml) of the butamiphos derivative 1-BSA conjugate prepared in Example 4 was added to 10
Coated to 96-well plate at 0 μl / well. After washing, Block Ace diluted 4 times (“B
lock Ace ": Dainippon Pharmaceutical, code No. UK-
After blocking with 25B), an equal amount of an antiserum diluent and 10% methanol solution containing various concentrations of butamiphos or a similar compound were mixed, 100 μl of the mixture was added to a well, and reacted at 37 ° C. for 1 hour. Was. After the reaction,
After washing once with 0.05% Tween 20-PBS,
100 μl of peroxidase-conjugated anti-mouse IgG goat antibody (manufactured by Kappel) diluted 5000 times with PBS
l of the mixture was added to each well and reacted at 37 ° C. for 1 hour. After the reaction is completed, 0.05% Tween 20-P
After washing twice with BS, 10% of a 0.05 M phosphate citrate buffer (pH 4.5) containing 0.4 mg / ml o-phenylenediamine (OPD) and 0.04% hydrogen peroxide was added.
0 μl was added to each well and left at room temperature for 20 minutes to develop color. After the reaction, 100 μl of 2N sulfuric acid was added to each well to stop the reaction, and the absorbance at 490 nm was measured.

【0121】実施例7 ハイブリド−マ細胞の作製 実施例5に続き、血清中の抗ブタミホス抗体の活性が高
くなったマウスの脾臓細胞と、マウスミエロ−マ細胞
(P3U1)とを電気融合法にて細胞融合をおこなっ
た。細胞増殖が認められた培養上清液について以下の方
法でブタミホスに対する抗体活性を調べた。ブタミホス
誘導体1−BSA結合体の溶液(0.1μg/ml)を
50μl/ウェルにて96ウェルプレートにコーティン
グした。洗浄の後、4倍に希釈したブロックエースでブ
ロッキングした後、培養上清液と各種濃度のブタミホス
あるいはその類似化合物を含む10%メタノ−ル溶液と
を等量混合し、その100μlをウェルに入れ、37℃
にて1時間反応させた。反応終了後、0.05%Twe
en20−PBSにて1回洗浄の後、PBSを用いて、
5000倍希釈したペルオキシダ−ゼ結合抗マウスIg
Gヤギ抗体(カッペル社製)を50μlずつ各ウェルに
て37℃1時間反応させた。さらに反応終了後、0.0
5%Tween20−PBSにて2回洗浄の後、0.4
mg/ml OPD及び0.04%過酸化水素を含む
0.05Mリン酸クエン酸緩衝液(pH4.5)を10
0μlずつ各ウェルにいれ室温にて20分間放置し、発
色させた。反応後、2N硫酸100μlを各ウェルに加
え、反応を停止させた後、490nmの吸光度を測定
し、特異性のある抗体活性が認められたものを選抜し
た。
Example 7 Preparation of Hybridoma Cells Following Example 5, spleen cells of a mouse with increased anti-butamiphos antibody activity in serum and mouse myeloma cells (P3U1) were electrofused. Cell fusion was performed. The culture supernatant in which cell proliferation was observed was examined for antibody activity against butamiphos by the following method. A solution of the butamiphos derivative 1-BSA conjugate (0.1 μg / ml) was coated on a 96-well plate at 50 μl / well. After washing, after blocking with Block Ace diluted 4 times, equal amounts of the culture supernatant and 10% methanol solutions containing various concentrations of butamiphos or a similar compound are mixed, and 100 μl of the mixture is placed in a well. , 37 ° C
For 1 hour. After completion of the reaction, 0.05% Tween
After washing once with en20-PBS, using PBS,
Peroxidase-conjugated anti-mouse Ig diluted 5000-fold
A G goat antibody (manufactured by Kappel) was reacted in an amount of 50 μl / well in each well at 37 ° C. for 1 hour. After the reaction is completed, 0.0
After washing twice with 5% Tween 20-PBS, 0.4
mg / ml OPD and 0.05 M phosphate citrate buffer (pH 4.5) containing 0.04% hydrogen peroxide
0 μl was added to each well and left at room temperature for 20 minutes to develop color. After the reaction, 100 μl of 2N sulfuric acid was added to each well to stop the reaction, and the absorbance at 490 nm was measured to select those having specific antibody activity.

【0122】次に、選抜されたウェルの細胞について限
界希釈法を用いた細胞クロ−ニングをおこなった。その
結果、抗ブタミホス抗体を産生するハイブリド−マ細胞
株をクロ−ン化した。そのうちのBTF2−77を平成
10年7月23日に寄託番号FERM−16907とし
て工業技術院生命工学工業研究所(〒305−0046
茨城県つくば市1丁目1番3号)に寄託した。
Next, the cells in the selected wells were subjected to cell cloning using the limiting dilution method. As a result, the hybridoma cell line producing the anti-butamiphos antibody was cloned. Among them, BTF2-77 was deposited on July 23, 1998 under accession number FERM-16907, by the Institute of Biotechnology and Industrial Science, National Institute of Advanced Industrial Science and Technology (〒305-0046).
Deposited at 1-3-1 Tsukuba City, Ibaraki Prefecture).

【0123】実施例8 ブタミホス誘導体とHRPとの
結合体作製 実施例3と同様な混合無水物法により実施例1で作製し
たブタミホス誘導体−1とHRPの結合体を作製した。
1mgのブタミホス誘導体を無水ジオキサン0.2ml
に溶解した後、トリ−n−ブチルアミン0.5μl、ク
ロロ蟻酸イソブチル0.3μlを添加し、10℃から1
2℃にて30分間撹拌した。(以下、これを「B液」と
する)一方、0.5%NaHCO3をNaOHでpH
9.4に調整した溶液1mlにHRP5mgを溶解し、
B液をこの中に滴下した。4℃にて2時間撹拌し、さら
にグリシンを添加して30分間撹拌することにより反応
を終了させた。反応物をPBSにて透析することによ
り、精製ブタミホス誘導体1−HRP結合体を得た。
Example 8 Production of Butamiphos Derivative with HRP
Conjugate Preparation A conjugate of butamiphos derivative-1 and HRP prepared in Example 1 was prepared by the same mixed anhydride method as in Example 3.
1 mg of butamiphos derivative in 0.2 ml of anhydrous dioxane
Then, 0.5 μl of tri-n-butylamine and 0.3 μl of isobutyl chloroformate were added thereto, and
Stirred at 2 ° C. for 30 minutes. (Hereinafter, this is referred to as “solution B”) On the other hand, 0.5% NaHCO 3 is pH-adjusted with NaOH.
Dissolve 5 mg of HRP in 1 ml of the solution adjusted to 9.4,
Liquid B was dropped into this. The mixture was stirred at 4 ° C. for 2 hours, glycine was further added, and the mixture was stirred for 30 minutes to complete the reaction. The reaction product was dialyzed against PBS to obtain a purified butamiphos derivative 1-HRP conjugate.

【0124】実施例9 直接競合阻害ELISA法によ
るブタミホスの測定 実施例7で得られたハイブリド−マ細胞(BTF2−7
7)をマウスの腹腔に移植し、10−15日後に得られ
た腹水を採取し、硫安分画法によりモノクロ−ナル抗体
を精製した。この操作によって、抗ブタミホス抗体、B
TF2−77を得た(以降、モノクローナル抗体はこれ
らを産生するハイブリドーマと同一名称を用いる)。抗
ブタミホス抗体BTF2−77を用いて以下の試験法に
てブタミホスを測定した。
Example 9 By direct competitive inhibition ELISA
Determination of butamiphos The hybridoma cells obtained in Example 7 (BTF2-7
7) was transplanted into the abdominal cavity of a mouse, and the ascites fluid obtained 10 to 15 days later was collected, and the monoclonal antibody was purified by ammonium sulfate fractionation. By this operation, anti-butamiphos antibody, B
TF2-77 was obtained (hereinafter, monoclonal antibodies use the same names as the hybridomas that produce them). Using the anti-butamiphos antibody BTF2-77, butamiphos was measured by the following test method.

【0125】モノクロ−ナル抗体溶液( BTF2−7
7抗体 40μg/ml)を100μl/ウェルで96
ウェルプレ−トに加え、4℃で一晩静置し、翌日4倍希
釈したブロックエ−スでブロッキングした後、ブタミホ
ス及び実施例8で作製した適度に希釈されたブタミホス
誘導体1−HRP結合体を含む10%メタノ−ル−PB
S溶液を50μl/ウェルで加え、37℃1時間静置し
た。反応終了後、0.05%Tween20−PBSに
て2回洗浄の後、0.4mg/mlのOPD及び0.0
4%過酸化水素を含む0.05Mリン酸クエン酸緩衝液
(pH4.5)を100μlずつ各ウェルにいれ室温に
て20分間放置し、発色させた。反応後、2N硫酸10
0μlを各ウェルに加え、反応を停止させた後、490
nmの吸光度を測定した。
Monoclonal antibody solution (BTF2-7
7 antibody (40 μg / ml) at 100 μl / well for 96
After addition to the well plate, the mixture was allowed to stand at 4 ° C. overnight, and then blocked with a block ace diluted 4 times the next day. Then, butamiphos and the appropriately diluted butamiphos derivative 1-HRP conjugate prepared in Example 8 were ligated. Containing 10% methanol-PB
The S solution was added at 50 μl / well and left at 37 ° C. for 1 hour. After the completion of the reaction, the cells were washed twice with 0.05% Tween 20-PBS, and then 0.4 mg / ml OPD and 0.0%
100 μl of a 0.05 M phosphate citrate buffer (pH 4.5) containing 4% hydrogen peroxide was added to each well, and allowed to stand at room temperature for 20 minutes to develop color. After the reaction, 2N sulfuric acid 10
After adding 0 μl to each well to stop the reaction,
The absorbance at nm was measured.

【0126】結果を図1に示す。◎ ここで%最高吸光
度は以下の式で計算した。
The results are shown in FIG.こ こ Here, the% maximum absorbance was calculated by the following equation.

【0127】[0127]

【化13】 モノクローナル抗体BTF2−77は直接競合阻害EL
ISA法においてもブタミホスを測定することができ、
その測定範囲はブタミホス0.01ng/mlから10
00ng/mlであった(図1)。
Embedded image Monoclonal antibody BTF2-77 is a direct competitive inhibition EL
Butamiphos can also be measured by the ISA method,
The measurement range is from 0.01 ng / ml of butamiphos to 10
00 ng / ml (FIG. 1).

【0128】実施例10 モノクロ−ナル抗体の評価 ブタミホス誘導体−1を用いて得られた、モノクロ−ナ
ル抗体BTF2−77について実施例9と同様の方法を
用いてブタミホスおよびその代謝物、並びに類縁する有
機リン系化合物に対する反応性について調べた。
Example 10 Evaluation of Monoclonal Antibody Using the same method as in Example 9, butamiphos, its metabolites, and analogs were obtained for monoclonal antibody BTF2-77 obtained using butamiphos derivative-1. The reactivity to organic phosphorus compounds was investigated.

【0129】結果を図2に示す。ここで交差反応性は、
%最高吸光度が50を示すときのブタミホスの濃度(n
g/ml)を%最高吸光度が50を示すときの対象化合
物(アミプロホス等)の濃度(ng/ml)で除して1
00を乗じた数値(%)で判定する。
The results are shown in FIG. Where the cross-reactivity is
% Butamifos concentration when the maximum absorbance is 50 (n
g / ml) by the concentration (ng / ml) of the target compound (amiprofos or the like) when the% maximum absorbance shows 50, and 1
Judgment is made by the numerical value (%) multiplied by 00.

【0130】モノクローナル抗体BTF2−77は、ブ
タミホスの代謝物であるブタミホスオキソン、並びに類
縁する有機リン系化合物であるアミプロホス、アニロホ
スとはいずれも交差反応性が0.5%以下であった(図
2)。
The monoclonal antibody BTF2-77 had a cross-reactivity of 0.5% or less with both butamifos oxone, a metabolite of butamiphos, and the related organophosphorus compounds amiprofos and anilofos. (Fig. 2).

【図面の簡単な説明】[Brief description of the drawings]

【図1】図1は、本発明のモノクロ−ナル抗体BTF2
−77の直接競合阻害ELISA法によるブタミホスの
測定を示す。
FIG. 1 shows the monoclonal antibody BTF2 of the present invention.
Fig. 3 shows the measurement of butamiphos by the direct competitive inhibition ELISA method of -77.

【図2】図2は、モノクロ−ナル抗体BTF2−77を
用いた直接競合阻害ELISA法によるブタミホス及び
その代謝物、並びに類縁化合物との交差反応性を示す。
FIG. 2 shows cross-reactivity with butamifos and its metabolites and related compounds by a direct competitive inhibition ELISA using the monoclonal antibody BTF2-77.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.7 識別記号 FI テーマコート゛(参考) G01N 33/53 C12N 5/00 B 33/531 15/00 A 33/577 C //(C12P 21/08 C12R 1:91) (72)発明者 金井 正三 東京都港区浜松町1丁目27番14号 株式会 社環境免疫技術研究所内 (72)発明者 香川 康浩 東京都港区浜松町1丁目27番14号 株式会 社環境免疫技術研究所内 (72)発明者 渡辺 和明 東京都港区浜松町1丁目27番14号 株式会 社環境免疫技術研究所内 (72)発明者 斉藤 恵 東京都港区浜松町1丁目27番14号 株式会 社環境免疫技術研究所内──────────────────────────────────────────────────の Continued on the front page (51) Int.Cl. 7 Identification symbol FI Theme coat ゛ (Reference) G01N 33/53 C12N 5/00 B 33/531 15/00 A 33/577 C // (C12P 21/08 (72) Inventor Shozo Kanai 1-27-114 Hamamatsucho, Minato-ku, Tokyo Inside the Institute for Environmental Immunity Technology (72) Inventor Yasuhiro Kagawa 1-27-114 Hamamatsucho, Minato-ku, Tokyo No. Inside the Institute for Environmental Immunity Technology (72) Inventor Kazuaki Watanabe 1-27-114 Hamamatsucho, Minato-ku, Tokyo Inside the Institute for Environmental Immunity Technology (72) Inventor Megumi Saito, Minato-ku, Tokyo 1-27-14, Inside the Institute for Environmental Immunity Technology

Claims (11)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】以下の式(1): 【化1】 [式(1)中、 R1は所望により枝分かれしていてもよい炭素数1−4
のアルキル基であり;R2は水素原子又はメチル基であ
り;そしてAは所望により枝分かれしていてもよい炭素
数1−10のアルキレン基である]で表される構造を有
する化合物。
(1) The following formula (1): [In the formula (1), R 1 may have 1 to 4 carbon atoms which may be branched if desired.
R 2 is a hydrogen atom or a methyl group; and A is an optionally branched alkylene group having 1 to 10 carbon atoms].
【請求項2】請求項1に記載の化合物と高分子化合物又
は標識物質との結合体。
2. A conjugate of the compound according to claim 1 with a polymer compound or a labeling substance.
【請求項3】請求項1に記載の化合物と高分子化合物を
結合させることにより抗原を作製し、当該抗原を用いる
ことにより、以下の式(2): 【化2】 で表される構造を有する化合物に反応性を示す抗体を製
造することを特徴とする、式(2)の化合物に反応性を
示す抗体又はそのフラグメントの製造方法。
3. An antigen is prepared by binding the compound according to claim 1 with a polymer compound, and the antigen is used to obtain the following formula (2): A method for producing an antibody or a fragment thereof reactive to a compound of the formula (2), characterized by producing an antibody reactive to a compound having a structure represented by the formula:
【請求項4】請求項2に記載の結合体を抗原として用い
ることにより製造された、式(2)の化合物と反応性を
示す抗体又はそのフラグメント。
4. An antibody or a fragment thereof, which is produced by using the conjugate according to claim 2 as an antigen, and which is reactive with the compound of the formula (2).
【請求項5】請求項2に記載の結合体の請求項1に記載
された式(1)の化合物において、R1がエチル基であ
り、R2がメチル基であり、そしてAが炭素数5のペン
タメチレン基である、請求項4に記載の抗体又はフラグ
メント。
5. A compound according to claim 1, wherein R 1 is an ethyl group, R 2 is a methyl group, and A is a conjugate according to claim 2. 5. The antibody or fragment according to claim 4, which is a pentamethylene group.
【請求項6】モノクローナル抗体である、請求項4又は
5に記載の抗体又はそのフラグメント。
6. The antibody or fragment thereof according to claim 4, which is a monoclonal antibody.
【請求項7】モノクローナル抗体BTF2−77であ
る、請求項4ないし6のいずれか1項に記載の抗体又は
そのフラグメント。
7. The antibody or a fragment thereof according to claim 4, which is a monoclonal antibody BTF2-77.
【請求項8】請求項4ないし7のいずれか1項に記載の
抗体を産生するハイブリドーマ。
8. A hybridoma producing the antibody according to any one of claims 4 to 7.
【請求項9】寄託番号FREM P−16907で寄託
されている請求項8に記載のハイブリドーマ。
9. The hybridoma according to claim 8, which has been deposited under accession number FREM P-16907.
【請求項10】請求項4ないし7のいずれか1項に記載
の抗体又はフラグメントを用いることを特徴とする、式
(2)で表される化合物の免疫学的測定方法。
10. A method for immunologically measuring a compound represented by the formula (2), comprising using the antibody or fragment according to any one of claims 4 to 7.
【請求項11】さらに、請求項1に記載の化合物又は請
求項2に記載の結合体を用いることを含む、請求項10
に記載の免疫学的測定方法。
11. The method according to claim 10, further comprising using the compound according to claim 1 or the conjugate according to claim 2.
The immunological measurement method according to the above.
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Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN105273003A (en) * 2015-10-12 2016-01-27 深圳市检验检疫科学研究院 Isocarbophos semiantigen, and preparation method and application thereof

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