HU205379B - Process for producing yeasts enriched with microelements - Google Patents

Process for producing yeasts enriched with microelements Download PDF

Info

Publication number
HU205379B
HU205379B HU283189A HU283189A HU205379B HU 205379 B HU205379 B HU 205379B HU 283189 A HU283189 A HU 283189A HU 283189 A HU283189 A HU 283189A HU 205379 B HU205379 B HU 205379B
Authority
HU
Hungary
Prior art keywords
yeast
medium
exponential phase
cerevisiae
amount
Prior art date
Application number
HU283189A
Other languages
Hungarian (hu)
Other versions
HUT54731A (en
Inventor
Bela Janzso
Agnes Suhajda
Laszlo Bezur
Laszlo Ernyei
Imre Sarudi
Merenyi Zsuzsa Lassune
Sandor Szakaly
Zoltan Varga
Geza Szabo
Sandor Exterde
Ildiko Marton
Piroska Horvath
Denis Zsuzsa Babitsne
Original Assignee
Budapesti Szeszipari Vallalat
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Budapesti Szeszipari Vallalat filed Critical Budapesti Szeszipari Vallalat
Priority to HU283189A priority Critical patent/HU205379B/en
Publication of HUT54731A publication Critical patent/HUT54731A/en
Publication of HU205379B publication Critical patent/HU205379B/en

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Coloring Foods And Improving Nutritive Qualities (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Candida utilis and saccharomyces cerevisiae yeasts are enriched by micro elements when these are added to the fermentation medium. The microelements enter into the yeasts as chemical cpds. The biotransformed elements show advantageous activity and may be used in fodder, foodstuffs, pharmaceutical prods. and in cosmetic

Description

A találmány tárgya eljárás mikroelemekkel, közelebbről vassal, rézzel, cinkkel, mangánnal, molibdénnel, kobalttal, vanádiummal, lítiummal, arzénnel, szilíciummal, titánnal, tellúiral, nikkellel, céziummal, rubidiummal, jóddal vagy fluorral dúsított gombák, előnyösen élesztők előállítására, melynél a mikroelemeket sóik formájában juttatjuk a tápoldatba vagy adagoljuk a gombák szaporítása során.FIELD OF THE INVENTION The present invention relates to a process for the preparation of micro-nutrients enriched with trace elements, preferably iron, copper, zinc, manganese, molybdenum, cobalt, vanadium, lithium, arsenic, silicon, titanium, tellurium, nickel, cesium, rubidium, iodine or fluorine, in the form of their salts in the medium or added during the growth of the fungi.

Az adagolt mikroelemek a gombákban intracellulárisan feldúsulnak, nagy részűk szerves vegyületbe épül be, és mint új típusú mikroelemforrások alkalmasabbá és 'előnyösebbé válnak emberi és állati szervezetekbe való bevitelre.The added micronutrients are enriched intracellularly in fungi, incorporated into a large proportion of organic compounds, and as new types of micronutrient sources are more suitable and advantageous for administration to human and animal organisms.

A gyakorlatban 65 olyan mikroelem ismert, amelynek fiziológiás hatásuk van vagy lehet (Szabó S. András és társai: Mikroelemek a mezőgazdaságban I., Mezőgazdasági Kiadó, Budapest, 1987., továbbá Pais István: A mikroelemek fontossága az életben, Kertészeti és Élelmiszeripari Egyetem, Budapest, 1989.)In practice, there are 65 known microelements that have or may have physiological effects (András Szabó S. et al., Microelements in Agriculture I, Agricultural Publisher, Budapest, 1987, and István Pais: The Importance of Micronutrients in Life, University of Horticulture and Food, Budapest, 1989)

A mikroelemek, amint ez ismeretes, úgy fejtik ki fiziológiai hatásukat, hogy beépülnek a szerves molekulába, szerkezeti és enzimfehérjékbe vagy jelenlétükkel az enzimet aktiválják. A szervezetnek meghatározott mennyiségű mikroelemre van szüksége, és az anyagcsere folyamán bekövetkező veszteségeket folyamatosan pótolni kell. A mikroelemszükséglet biztosítása a táplálék és az ivóvíz mellett a mikroelemek szerves és/vagy szervetlen sóival történik. Ezeknek kedvezőtlen felszívódása, értékesülése és kiürülése miatt a mikroelemellátás manapság sem megoldott probléma, itt például utalunk a legközismertebb, vas- és fluorhiány által okozott betegségekre.Trace elements, as it is known, exert their physiological effects by being incorporated into the organic molecule, structural and enzyme proteins, or by their presence activating the enzyme. The body needs a certain amount of micronutrients and the metabolic losses need to be compensated continuously. In addition to food and drinking water, the supply of trace elements is provided by the organic and / or inorganic salts of the trace elements. Due to their unfavorable absorption, distribution and depletion, micronutrient supply is still not a problem today, for example, we refer to the most common diseases caused by iron and fluoride deficiency.

A szabadalmi irodalomból ismert például a 3 345 211 sz. NSZK-beli közrebocsátási irat, mely szerint germániumban dúsított élesztőt állítanak elő. A 4 348 483 sz. USA-beli szabadalmi leírás szerint krómban dúsított, míg a 4 530 846 sz. USA szabadalmi leírásban szelénben dúsított élesztő előállítását írják le.For example, U.S. Patent No. 3,345,211 is known from the patent literature. A disclosure document in the Federal Republic of Germany stating that yeast enriched in germanium is produced. No. 4,348,483. U.S. Pat. No. 4,530,846; U.S. Pat.

Ismert tehát az a tény, hogy a gyógyászatban és prevencióban a mikroelemeknek igen jelentős szerepük van, és néhány olyan szabadalmi leírás ismert, melyek egy-egy mikroelemben dús élesztő előállítására adnak megoldást Ugyanakkor fennáll az igény arra nézve, hogy több, az emberi és állati szervezet számára fontos mikroelem is elkészíthető legyen fiziológiailag összekeverhető, új típusú, biotranszformált mikroelemet tartalmazó mikroelemforrás formájában.Thus, it is known that micronutrients play a very important role in medicine and prevention, and some patents are known which provide solutions for the production of yeast rich in micronutrients. However, there is a need for more human and animal organisms It is also possible to prepare a micronutrient which is important for it, in the form of a physiologically configurable, novel type of biotransformed micronutrient source.

A találmány célkitűzése ennek megfelelően olyan eljárás kidolgozása, amely e fenti igény kielégítésére nyújt lehetőséget.Accordingly, it is an object of the present invention to provide a process that can meet this need.

Közismert, hogy bizonyos mikroelemek szerves só formájában mérgezőek, természetes formában viszont a szervezet számárakedvezóek. Ezért a találmány értelmében még meghatároztuk azokat a további szempontokat, melyek döntőek ahhoz, hogy a fermentálás! eljárást úgy valósíthassuk meg a megadott konkrét mikroelemek tekintetében, hogy a fentiekben vázolt célkitűzésünket elérhessük. Felismertük, hogy az élesztő még további, az általunk megjelölt mikroelemekben dúsítható, amennyiben előzetesen az eljárási paramétereket meghatározzuk.It is well known that certain microelements in the form of organic salts are toxic, but in their natural form are harmful to the body. Therefore, in accordance with the invention, further aspects that are decisive for the fermentation process have been determined. to accomplish this process with respect to the particular micronutrients provided, so as to achieve the object outlined above. We have discovered that yeast can be further enriched in the micronutrients we label, provided that the process parameters are determined in advance.

A találmány szerinti eljárás azon a mechanizmuson alapul, hogy az élesztők szaporítása közben adagolt mikroelemeket azok intracellulárisan feldúsítják és szerves kötésbe viszik. Az élesztőket ismert módon és ismert tápoldatban szaporítjuk. A mikroelemek vízoldható sóit bemérjük a tápoldatba, vagy szaporítás közben adagoljuk. Az adagolást a mikroelem sójától és az élesztőtől függően egyszerre, több részletben vagy folyamatosan végezzük. Az adagolt só mennyiségét és milyenségét a mikroelem adott sójának a szaporodásra gyakorolt hatása határozza meg. Gátló hatású sókat kis koncentrációban és több részletben adagolunk. Az adagolt só mennyiségét és az adagolás módját és idejét a szaporodás és a mikroelem-koncentráció nyomon követésével határozzuk meg. Ezt minden mikroelem sójára külön- külön meg kell állapítani. Az adagolás körülményeit úgy határozzuk meg, hogy hatására ne csökkenjen jelentősen az élesztő sejttömege és a dúsulás megfelelő legyen. Szaporítás után a sejttömeget elválasztjuk, vízzel mossuk, szűrjük és kívánt esetben szárítjuk.The method of the present invention is based on the mechanism by which the micronutrients added during the growth of yeasts are enriched intracellularly and are organically bound. The yeasts are grown in a known manner and in a known medium. The water-soluble salts of the trace elements are weighed into the medium or added during growth. The addition is carried out simultaneously, in several portions or continuously, depending on the salt of the trace element and the yeast. The amount and nature of the salt added is determined by the effect of the particular salt of the micronutrient on reproduction. Inhibitory salts are added in low concentrations and in several portions. The amount of salt added and the mode and time of administration are determined by monitoring growth and micronutrient concentration. This should be stated separately for each trace element salt. The conditions of administration are determined so that they do not result in a significant reduction in the yeast cell mass and sufficient enrichment. After growth, the cell mass is separated, washed with water, filtered and dried if desired.

A szabadalmi irodalom, amint erre már hivatkoztunk, mikroelemek dúsítására eddig három eljárást ismertet. A 4 348 483 számú amerikai szabadalmi leírás szerint krómmal dúsított élesztőt állítanak elő krómklorid adagolásával mintegy 1000-4000 pg Cr/g szárazélesztő-dúsítással, A dúsítást Saccharomyces cerevisiae-ben végezték és a sót a szaporodás befejeztével adagolták. A 4 530 846 számú amerikai szabadalom leírása szelénnel dúsított élesztő előállítását ismerteti. A dúsításhoz nátrium-szelenitet használtak, melyet folyamatosan adagoltak a növekedési ciklusban és 14402000 pg/g szeléndúsulást értek el Saccharomyces cerevisiae-ben és S. uvarum-ban. A 3 345 211 számú német szabadalmi leírás gennániummal dúsított élesztő előállításával foglalkozik. Germánium-citrát adagolásával többfajta élesztőben (S. cerevlsiae, S. carlsbergensis, Torulopsis utilis) 400-700 pg/g germániumdúsulást értek el.The patent literature, as already mentioned, discloses three methods for enrichment of microelements. U.S. Pat. No. 4,348,483 discloses the production of chromium-enriched yeast by the addition of chromium chloride with about 1000-4000 pg Cr / g of dry yeast fortification. The enrichment was performed in Saccharomyces cerevisiae and the salt was added at the end of growth. U.S. Patent 4,530,846 describes the preparation of selenium-enriched yeast. Sodium selenite was used for enrichment, which was continuously added to the growth cycle and reached 14402000 pg / g of selenium enrichment in Saccharomyces cerevisiae and S. uvarum. German Patent No. 3,345,211 relates to the production of yeast enriched with gennanine. By the addition of germanium citrate, germanium enrichment of 400-700 pg / g was achieved in several types of yeast (S. cerevlsiae, S. carlsbergensis, Torulopsis utilis).

A találmány értelmében további 17 mikroelem dúsítására dolgoztunk ki eljárást, minden mikroelemre, illetve sóra külön-külön megállapítva a dúsítás körülményeit. A találmány szerinti eljárás során a következő paramétereket határozzuk meg:In accordance with the present invention, a method of enriching an additional 17 micronutrients has been developed, with each micronutrient or salt being individually identified for enrichment. In the process of the invention, the following parameters are determined:

a) az akkúmuláltatott só fejt-e ki gátló hatást az élesztő szaporodására:(a) whether the accumulated salt has an inhibitory effect on the growth of yeast:

b) az adott só milyen koncentrációknál nem csökkenti az élesztő szaporodását;(b) at what concentrations the salt does not reduce yeast growth;

c) az adott sót milyen módon kell adagolni (egy részletben, több részletben, folyamatosan);(c) the manner in which the salt is to be administered (in one, several, continuous);

d) az adott sót a szaporodás melyik fázisában kell a tápoldathoz adagolni;d) at which stage of the growth the particular salt is to be added to the culture medium;

e) az adott só milyen hatást fejt ki a biomassza feldolgozására;(e) the effect of the salt on the processing of biomass;

f) az adott só adagolása révén bevitt mikroelem milyen mértékben képes az élesztőben akkumulálódni.(f) the extent to which the micronutrient input by the addition of a given salt is capable of accumulating in yeast.

A találmány szerinti eljárással előállított termék esetében, ahol szerves kötésben lévő, biotranszformált mikroelemekről van sző, ezek jobb abszorpciós hányadossal rendelkeznek, csökkentik az anorganikus mikro2In the product of the present invention, where organic bonded biotransformed microelements are present, they have a better absorption coefficient, reducing inorganic microorganisms.

HU 205 379 Β elemek egymásra gyakorolt antagonisztikus hatásait, kevésbé toxikusak, kellemes ízűek, kedvezően dozírozhatók, és egyszerűbben kiszerelhetek. A kedvező hatáshoz hozzájárul az élesztősejt kémiai összetétele is. A Saccharomyces cerevisiae (pékélesztő) sejttömege 40-50% teljes értékű fehérjét tartalmaz. A sejttömegben legnagyobb mennyiségben megtalálható vitaminok: tiamin 390, riboflavin 2200, niacin 21 000, piridoxin 760, pantoténsav 12 000 és fólsav 170 pg/100 g koncentrációban. A mikroelemeknek élesztőben történő dúsításával természetes eredetű mikroelemforráshoz jutunk.EN 205 379 Β elements, they are less toxic, have a pleasant taste, can be positively dosed and can be formulated more easily. The chemical composition of the yeast also contributes to the beneficial effect. Saccharomyces cerevisiae (baker's yeast) has a cell weight of 40-50% protein. The most abundant vitamins are thiamine 390, riboflavin 2200, niacin 21,000, pyridoxine 760, pantothenic acid 12,000 and folic acid at 170 pg / 100g. By enriching the micronutrients in yeast, we obtain a source of naturally occurring micronutrients.

A találmány szerinti eljárásnál hasznosítjuk azt a felismerést, hogy az élesztőgombák egyes mikroelemeket meghatározott körülmények között képesek intracellulárisan a normál állapothoz képest többszörösére, akár ezerszeresére is feldúsítani, és szerves kötésbe vinni.The process of the present invention utilizes the recognition that yeasts are capable, under certain conditions, of enriching certain microelements intracellularly, up to thousands of times their normal state, and of bringing them into organic binding.

A következő, 1. táblázatban megadjuk az általunk vizsgált 17 mikroelem koncentrációját, a szokásos, önmagában ismert pékélesztőben, amit az ismert ipari eljárással, melaszon állítanak elő, és közöljük az általunk előállított, mikroelemekkel dúsított pékélesztők titereit is, ugyanazon elemekből. A normál pékélesztőre vonatkozó átlagértékeket irodalmi adatok és saját vizsgálataink alapján adtuk meg [Rodney, P. J. és Greenfield, P.F.: Process Biochemistry 4,4860 (1984)].The following Table 1 lists the concentrations of the 17 micronutrients we investigate in the conventional, self-known baker's yeast, which is produced by molasses in the known industrial process, and the titers of the micronutrient-enriched yeasts we produce from the same elements. Mean values for normal baker's yeast are based on literature data and our own studies (Rodney, P.J. and Greenfield, P.F., Process Biochemistry, 1984, 4, 4860).

1. táblázatTable 1

Mikroelem microelement Mikroelem-koncentráció ug/g The micronutrient concentration is µg / g normál élesztő normal yeast dúsított élesztő enriched yeast Fe Fe 80 80 1000-10 000 1000-10,000 Cu Cu 27 27 500-1000 500-1000 Zn Zn 150 150 500-5000 500-5000 Mn Mn 20 20 300-1200 300-1200 Mo Mo 4,04 4.04 2000-12 000 2000-12,000 Co Co 3 3 200-500 200-500 V V 0,05 0.05 1000-1500 1000-1500 Li Li <0,01 <0.01 10-100 10-100 As Dig 1 1 500-1000 500-1000 Si Ski 30 30 1000-6000 1000-6000 Ti You 0,1 0.1 2000-12 000 2000-12,000 Te You <1 <1 1000-2200 1000-2200 Ni Ni 1 1 100-300 100-300 Cs Thurs <1 <1 50-200 50-200 Rb rb <1 <1 100-400 100-400 11 11 20- 20 80 80 F F 1 1 50-100 50-100

A mikroelemekkel dúsított élesztők másik fontos tulajdonsága, hogy az akkumulált mikroelem nagyobbik részét szerves kötésben tartalmazza. Ennek illusztrálására közöljük a 2. táblázatot, melyben a vassal kapcsolatos eredményeket mutatjuk be, feltüntetve az összes felvett, és a szerves kötésben lévő vasat. Látható, hogy a szerves kötésbe való beépülés minden esetben nagyobb, mint 90%.Another important feature of yeast fortified micronutrients is that they contain most of the accumulated micronutrient in organic form. To illustrate this, we present Table 2, which shows the results for iron, listing all the iron in the organic bond and the iron in the organic bond. It can be seen that the incorporation into the organic bond is always greater than 90%.

2. táblázatTable 2

Élesztő Yeast Felvett Fe (Pg/g) Fe uptake (Pg / g) Beépült Fe (pg/g) Integrated Fe (pg / g) Beépülés (%) incorporation (%) Saccharomyces cerevisiae Saccharomyces cerevisiae 7300 7300 7100 7100 97 97 Saccharomyces cerevisiae Saccharomyces cerevisiae 3800 3800 3470 3470 ' 91 '91 Saccharomyces cerevisiae Saccharomyces cerevisiae 3400 3400 3220 3220 95 95 Saccharomyces cerevisiae Saccharomyces cerevisiae 8900 8900 8700 8700 98 98 Candida utilis Candida utilis 2300 2300 2260 2260 98 98 Candida utilis Candida utilis 1100 1100 1015 1015 92 92

A találmány szerinti eljárást a humán táplálkozásra is alkalmas pékélesztővel, Saccharomyces cerevisiaevel és egy takarmányélesztővel, Candida utilis-szel valósítottak meg, de az eljárás alkalmazható más élesztőgombákra is. Mindkét törzset malátatáptalajon tartottuk fenn, melynek összetétele: 5%-os malátalé és 2,5% Bacto-agar. Átoltás után a törzseket 48 órán keresztül 30 °C-on inkubáltuk, majd felhasználásig (24-48 órán át) hűtőszekrényben tároltuk.The process of the present invention has been carried out with baker's yeast Saccharomyces cerevisiae, which is also suitable for human consumption, and with a feed yeast Candida utilis, but it is also applicable to other yeasts. Both strains were maintained on malt medium containing 5% malt juice and 2.5% Bacto agar. After inoculation, the strains were incubated for 48 hours at 30 ° C and stored in a refrigerator until use (24-48 hours).

Az élesztők szaporítását, illetve a mikroelemek akkumulációját rázatott lombikokban és fermentorban végeztük. Rázatott tenyészetek voltak a fermentorok oltóanyagai is.Yeast propagation and accumulation of trace elements were performed in shake flasks and in a fermentor. Shake cultures were also inoculum for fermenters.

A rázatott lombikos tenyészet tápoldat-összetétele: glükóz 50,0 g/dm3 (NH4)2SO4 5,0 g/dm3 Culture composition of the shake flask culture: glucose 50.0 g / dm 3 (NH 4 ) 2 SO 4 5.0 g / dm 3

KH2PO4 1,0 g/dm3 élesztóki vonat 3,0 g/dm3 deztiobiotin 0,04 mg/dm3 pH 4,5 (15%-os HCl-dal)KH 2 PO 4 1.0 g / dm 3 yeast train 3.0 g / dm 3 desertobiotin 0.04 mg / dm 3 pH 4.5 (with 15% HCl)

A lombikos tápoldatot 1,2 bar nyomáson autokláv ban sterileztük 15 percig. A 750 nm3-es Erlenmeyerlombikokban levő steril 100-100 cm3 tápoldatot a kémcsöves agaros tenyészet 1-1 csövéről steril vízzel lemosott élesztőszuszpenzióval oltottuk be. A szaporítás 350 ford/perc fordulatszámú rázógépen 30 ’C-on 20-24 órán át történt, mind az oltóanyag, mind a lombikos sorozatok esetében. A lombikos sorozatoknál előzőleg indított lombikos inokulummal oltottunk 10%-nyi mennyiségben. A mikroelem sóját oltáskor, előzőleg elkészített törzsoldatból adagoltuk a beoltatlan tápoldathoz.The flask medium was sterilized in an autoclave at 1.2 bar for 15 minutes. Sterile medium was 100 to 100 cm 3 of 750 nm in three inch Erlenmeyerlombikokban inoculated agar culture tubes are washed in sterile water 1-1 csövéről yeast slurry. Propagation was carried out on a 350 rpm shaker at 30 ° C for 20-24 hours for both inoculum and flask series. Flask series were inoculated with a previously started flask inoculum at 10%. The micronutrient salt was added at the inoculation from a previously prepared stock solution to the uninoculated medium.

A fermentoros szaporításnál 10 dm3-es fermentorokat használtunk 5 dm3 tápoldattal, A fermentoros tenyészet tápoldat-összetétele:For fermentation growth, 10 dm 3 fermenters with 5 dm 3 medium were used.

glükóz 70,0 g/dm3 (NH4)2SO4 7,0 g/dm3 glucose 70.0 g / dm 3 (NH 4 ) 2 SO 4 7.0 g / dm 3

KH2PO4 1,5 g/dm3 élesztőkivonat 5,5 g/dm3 deztiobiotin 0,06 mg/dm3 pH 4,5 (15%-os HCl-dal)KH 2 PO 4 1.5 g / dm 3 yeast extract 5.5 g / dm 3 desertobiotin 0.06 mg / dm 3 pH 4.5 (with 15% HCl)

HU 205 379 ΒHU 205 379 Β

Feimentoros tenyésztésnél a glükóz melletti komponenseket külön sterileztük lombikban, a nemkívánatos bámulás (Maillard-reakció) elkerülése céljából, és oltás előtt tettük a fermentorba. Az oltóanyag mennyisége itt is 10% lombikos tenyészet volt. A 24 órás szaporítás során 1 dm3/perc/dm3 levegőztetést és 700 ford/perc keverést alkalmaztunk. A szaporítás hőmérséklete 30 °C volt A mikroelemek sóit a szaporítás folyamán adagoltuk a példákban leírt mennyiségben és módon.In Feimentor culture, the glucose components were sterilized separately in a flask to avoid undesired staring (Maillard reaction) and placed in the fermentor prior to inoculation. Again, the inoculum was 10% flask culture. Aeration of 1 dm 3 / min / dm 3 and stirring at 700 rpm was used for 24 h propagation. The growth temperature was 30 ° C. The salts of the trace elements were added during the propagation in the amounts and in the manner described in the examples.

A szaporítás befejeztével az élesztőtömeget centrifugán 30 percig 3000 ford/perc fordulatszámon elválasztottuk a szaporító tápoldattől. Háromszori csapvizes mosás és ismételt centrifugálás után a séjttömeghez feleslegben acetont adunk, melynek hatására a biomassza finom pelyhek formájában nuccson szúrhetővé vált. Szűrés után az élesztőt szobahőmérsékleten szántottuk meg. Az említett acetonos kezelés lehetővé tette a háromszori mosás után a maradék extracelluláris mikroelem teljes eltávolítását a sejtek felületéről. Ugyanakkor az intracelluláris nem szerves kötésű mikroelem egy része is kijött a sejtből a plazmamembrán tönkretétele következtében. A sejtfeltárásos kísérletek azt mutatták, hogy az előbbi módon kapott sejttömeg a dúsított mikroelemet legalább 90%-ban szerves kötésben tartalmazza, ahogy ezt a vas esetében a 2. táblázatban bemutattuk.At the end of the propagation, the yeast mass was separated from the growth medium by centrifugation for 30 minutes at 3000 rpm. After washing three times with tap water and repeated centrifugation, excess acetone was added to the pulp, causing the biomass to be punctured as fine flakes. After filtration, the yeast was dried at room temperature. The aforementioned acetone treatment allowed complete removal of the remaining extracellular trace element from the cell surface after washing three times. However, some of the intracellular inorganic-bound micronutrient also came out of the cell due to the destruction of the plasma membrane. Cell lysis experiments showed that the cell mass obtained above contained at least 90% of the enriched trace element in organic binding, as shown in Table 2 for iron.

Szaporítás közben mértük a szaporodásra jellemző optikai denzitás értékeket (OD), a mikroelem koncentrációjának változását, a glükőzfogyást és a pH-t.During growth, optical density values (OD), changes in micronutrient concentration, glucose depletion and pH were measured.

Az élesztő sejttömegének változását (OD) a sejtsűrűség mérésével követtük nyomon. Mintáinkat 10-szeres hígításban spektrofotometriásán, 550 nm-en mértük a beoltatlan tápoldat hasonlóan hígított változatával szemben. Hígításhoz 0,01 n HCI- oldatot használtunk.The change in yeast cell mass (OD) was monitored by measuring cell density. Our samples were measured at 10 nm dilution spectrophotometrically at 550 nm against a similar dilution of uninoculated medium. For dilution, 0.01 N HCl solution was used.

Mikroelem-koncentrációt a szaporító tápoldatból, a szárított élesztőmintákból és a feltárt minták szűrletéből mértünk. A különböző mikroelemek meghatározása a LABTEST cég (Los Angeles, Califomia) PLASMALAB nevű készülékén ICP-AES módszerrel történt.Trace element concentrations were measured from the culture medium, the dried yeast samples and the filtrate of the digested samples. The various micronutrients were determined on a LABTEST (Los Angeles, Califomia) PLASMALAB by ICP-AES.

Mintaelőkészítés ICP-vel történő méréshez:Sample preparation for ICP measurement:

Az élesztőmintákból 0,5 g-ot mértünk be roncsolás céljára készült speciális saválló teflonbombába. A mintát 3 cm3 cc. HNCb+3 cm3 H2O2 keverékével egy éjszakán át szobahőmérsékleten állni hagytuk, majd másnap 30 percig 100 °C-on forraltuk. Lehűtés után az analízishez 2-szer desztillált vízzel 10 cm3-re töltöttük fel.0.5 g of the yeast samples were weighed into a special acid-resistant Teflon bomb for destruction. The sample was 3 cm 3 cc. The mixture was left standing at room temperature overnight with HNCl2 + 3 cm 3 H2O2 and then heated at 100 ° C for the next 30 minutes. After cooling, the solution was made up to 10 cm 3 with 2 times distilled water for analysis.

A fermentlevek mikroelem-koncentrációját közvetlenül mértük a sejttömeg centrifugálással történő eltávolítása után.The micronutrient concentration of the fermentation broths was measured immediately after removing the cell mass by centrifugation.

A mérést LABTEST PLASMALAB induktív csatolású plazma atomemissziós (ICP-AES) módszerrel végeztük.Measurement was performed using the LABTEST PLASMALAB Inductively Coupled Plasma Atomic Emission (ICP-AES) method.

A meghatározás körülményei:Circumstances in which required:

rádiófrekvenciás teljesítmény: 1,3 kW külső argonáramlási sebesség: 12 dm3/perc közbenső argonsebesség: 0,8 dm3/perc belső argonnyomás: 300 kPa mintabeviteli sebesség: 2,9 cm3/percradio frequency power: 1.3 kW external argon flow rate: 12 dm 3 / min intermediate argon rate: 0.8 dm 3 / min internal argon pressure: 300 kPa sample rate: 2.9 cm 3 / min

A jel- és adatfeldolgozás digitális integrátorokkal csatornánként, ill. számítógépen futó speciális kalibráló- és mérőprogramok segítségével történtSignal and data processing with digital integrators per channel, respectively. using special calibration and measurement programs running on a computer

Halogének esetében (I, F) a mikroelemek koncentrációját íonszelektív elektródokkal mértük.In the case of halogens (I, F), micronutrient concentrations were measured with non-selective electrodes.

A jód koncentrációját a mintákban direkt potenciometriás módszemel, kalibrációs görbe alapján mértük, RADELKIS gyártmányú jodidszelektív elektród és telített kálóméi összehasonlító elektród alkalmazásával. A biomassza jódtartalmának mérését az AOAC Methods alapján kidolgozott módszerek szerinti roncsolás előzte megThe concentration of iodine in the samples was measured by direct potentiometric method using a calibration curve using a RADELKIS iodide selective electrode and a saturated cross-linking electrode. Measurement of iodine content of biomass was preceded by destruction according to methods developed by AOAC Methods

Nikkeltégelybe bemérünk 0,1-0,5 g mintát, majd 5 cm3 telített alkoholos KOH-dal szuszpendáljuk. Homokfürdőn beszárítjuk, lángon óvatosan elszenesítjük és 600-650 °C között 3 óráig kemencében hamvasztjuk. A hamut lehűlés után vízzel szuszpendáljuk, és 50 cm3-es mérőlombikba visszük át. 1:1 arányban HNCL-oldattal semlegesítjük, míg pezseg. Ezután 600 g/dm3-es K-acetát-oldattal az oldat pH-ját kb. 5-re állítjuk és vízzel 50 cm3-re töltjük fel.Weigh 0.1 to 0.5 g of the sample into a nickel crucible and suspend in 5 cm 3 of saturated alcoholic KOH. Dry in a sand bath, gently charcoal on flame and incinerate at 600-650 ° C for 3 hours. After cooling, the ash is slurried with water and transferred to a 50 cm 3 volumetric flask. Neutralize with HNCL (1: 1) while bubbling. Then, with 600 g / dm 3 K-acetate solution, the pH of the solution was adjusted to ca. Set to 5 and make up to 50 cm 3 with water.

A jódhoz hasonlóan a fluort is potenciometriás módszerrel, íonszelektív elektród segítségével mértük. A fluortartalom mérése előtt a szárított biomasszát a következő roncsolásnak vetettük alá:Like iodine, fluorine was measured by a potentiometric method using a selective electrode. Prior to measuring the fluorine content, the dried biomass was subjected to the following digestion:

Nikkeltégelybe 0,1-0,5 g meghatározandó mintát és 0,1 g CaO-ot mérünk be. (A CaO-ra a fluor megkötése céljából van szükség.) Kevés vízzel szuszpendáljuk, azbeszthálón melegítve beszárítjuk, lángon óvatosan elszenesítjük, majd 600-650 ’C-on kemencében 2 óráig hamvasztjuk. A további feldolgozás kétféle úton történhet:In a nickel crucible, weigh 0,1 to 0,5 g of the sample to be determined and 0,1 g of CaO. (CaO is needed to fix the fluorine.) Suspend in a little water, dry in an asbestos mesh, gently charcoal on flame, and incinerate at 600-650 ° C for 2 hours. There are two ways to process it further:

a) A hamuhoz lehűtés után 3 g NaOH-ot adunk, majd kemencében 600 °C-on megömlesztjük és 1 órán át tartjuk. Lehűtés után részletekben adagolt, összesen 38 cm3 1 mól/dm3-es citromsavoldatban szuszpendáljuk, illetve oldjuk. Végül 50 cm3-es mérőlombikban 50 cm3-re töltjük fel.a) After cooling to ash, 3 g of NaOH are added and the furnace is melted at 600 ° C for 1 hour. After cooling, the portionwise addition of a total of 38 cm 3 1 mol / dm 3 citric acid is suspended or dissolved. Finally, 50 cm 3 volumetric flask filled up to 50 cm 3rd

b) A hamvasztást mikrodifíűzió követi; a hamut 2 cm3 vízzel diffúziós edénybe mossuk át és 2 cm3 diffúziós savat (2 g Ag2SO4+l cm3 víz+50 cm3+cc. HCIO4) adunk hozzá. Az edény tetején 80 μΐ 9 g/dm3 koncentrációjú NaOH-oldattal átitatott szűrőpapírcsíkot helyezünk el, 60 °C-os szárítószekrényben 24 órát tartjuk. Kinyitás után a papír széleit levágjuk, a fluort tartalmazó papírdarabot 25 cm3-es főzőpohárba teszszük, 2 cm3 vizet és 2 cm3 USAB-oldatot (116,9 g NaCl+29,5 cm3 96%-os ecetsav+204,13 g Na-acetát»3H2O vízzel 2000 cm3-re feltöltve) adunk hozzá. Keverés nélkül mérjük a F'-tartalmat.b) Cremation is followed by microdiffusion; wash the ash with 2 cm 3 of water into a diffusion vessel and add 2 cm 3 of diffusion acid (2 g Ag 2 SO 4 + 1 cm 3 water + 50 cm 3 + cc HClO 4). At the top of the dish, place a strip of filter paper impregnated with 80 μΐ of 9 g / dm 3 NaOH solution and keep in a 60 ° C oven for 24 hours. After opening, cut the edges of the paper, place the piece of fluorine in a 25 cm 3 beaker, 2 cm 3 water, and 2 cm 3 USAB solution (116.9 g NaCl + 29.5 cm 3 96% acetic acid + 204, 13 g of sodium acetate »3H2O filled with water to 2000 cm 3) was added. Measure the F 'content without mixing.

Az élesztősejtekbe szerves kötéssel beépült, illetve csak adszorbeálódott mikroelemek arányának megállapítása céljából a biomasszát feltárásnak vetettük alá.To determine the proportion of microelements incorporated into yeast cells by organic binding or only adsorbed, the biomass was subjected to digestion.

A szárított biomasszából pH-6,0 foszfátpufferrel 10-szeres hígítású szuszpenziót készítettünk, majd 3*3 percig ULTRASONIC homogenizálókészülékben (Braun, 300 W) homogenizáltuk. A feltárt sejteket tartalmazó szuszpenziót felhasználásig -24 ’C fagyasztva tároltuk. ICP-s mérés előtt a felengedett mintákat VACA 10-fold dilution of the dried biomass was made with phosphate buffer pH 6.0 and homogenized in a ULTRASONIC homogenizer (Braun, 300 W) for 3 x 3 minutes. The suspension containing the digested cells was stored frozen at -24 ° C until use. Prior to ICP measurement, the thawed samples are VAC

HU 205 379 Β hűthető Janetzky-centrifugán 30 000 ford/perc mellett 30 percig centrifugálva elválasztottuk a felülúszót a sejttörmeléktől, majd 10 cm3 oldathoz 0,2 cm3 3%-os triklór-ecetsavat adtunk, s a kicsapódott fehérjéktől membránszűrőn átszűrtük. A születet analizáltuk, ennek mikroelem-tartalma jelenti az intracelluláris, szervetlen kötésű mikroelem jelenlétét.The supernatant was separated from the cellular debris by centrifugation at 30,000 rpm for 30 minutes at a cooled Janetzky centrifuge, then 0.2 cm 3 of 3% trichloroacetic acid was added to 10 cm 3 of solution and the precipitated proteins were filtered through a membrane filter. The birth was analyzed and its micronutrient content indicates the presence of an intracellular, inorganic-bound micronutrient.

A találmány szerinti eljárást a következőkben a már említett 17 mikroelemre nézve 35 példán keresztül mutatjuk be.The process of the present invention will now be described by way of example 35 with respect to the aforementioned trace element 17.

Kiviteli példákExecution examples

1. példaExample 1

Vassal dúsított Saccharomyces cerevisiaeIron-enriched Saccharomyces cerevisiae

Lombikos szaporítással megállapítottuk az alkalmazott só, ez esetben Fe(II)-szulfát esetleges gátló hatását az élesztő szaporodására. Az alkalmazott vaskoncentrációk a tápoldatban rendre 20,40,100 és 200 mg/dm3 Fe voltak. Az élesztő szaporodását tükröző optikai denzitás (OD) értékeken kívül a vasfelvételt is bemutatjuk a 3. táblázatban:The potential inhibitory effect of the salt used, in this case Fe (II) sulfate, on the growth of yeast was determined by flask growth. The iron concentrations used in the medium were 20.40,100 and 200 mg / dm 3 Fe, respectively. In addition to optical density (OD) values reflecting yeast growth, iron uptake is also shown in Table 3:

3. táblázatTable 3

Tápoldat Fe-tartalom (mg/dm3)Media Fe content (mg / dm 3 ) OD OD Felvett Fe/biomassza (pg/g) recorded Fe / biomass (Pg / g) 0 0 2,95 2.95 - 20 20 3,05 3.05 - - 40 40 3,20 3.20 1650 1650 100 100 3,15 3.15 3670 3670 200 200 2,75 2.75 9250 9250

Fermentoros szaporításnál a lombikos kísérletnél legjobbnak bizonyult vaskoncentrációt (100 mg/dm3) alkalmaztuk. A vas(II)-szulfátot a szaporítás kezdetekor egyszerre adtuk a tápoldathoz, a szaporítás pH-szabályozás nélkül történt (4. táblázat).The highest concentration of iron (100 mg / dm 3 ) was used for flask fermentation. Iron (II) sulfate was added simultaneously to the culture medium at the start of the growth, and the growth was done without pH control (Table 4).

4. táblázat Table 4 Idő (h) Time (H) OD OD Fe-konc. a fermentlében (mg/dm3)Fe conc. in the fermentation broth (mg / dm 3 ) 0 0 0,45 0.45 1,2 1.2 2 2 0,90 0.90 4 4 1,30 1.30 37,5 37.5 6 6 2,50 2.50 - - 8 8 3,75 3.75 39,3 39.3 10 10 5,15 5.15 12 12 5,40 5.40 39,5 39.5 24 24 6,25 6.25 41,0 41.0

Fe-felvétel: 13 000 gg/g szárított élesztő dúsulás: 160-szorosFe intake: 13,000 gg / g dried yeast enrichment: 160 fold

Az alkalmazott körülmények között a FeSCL csak fqlyamatosan, a pH fokozatos csökkenésével ment oldatba, ezzel magyarázható a Fe-koncentráció növekedés az idő függvényében,Under the conditions used, FeSCL only dissolved in solution with a gradual decrease in pH, which explains the increase in Fe concentration over time,

2. példaExample 2

Vassal dúsított Saccharomyces cerevisiaeIron-enriched Saccharomyces cerevisiae

Az első példánál bemutatott módon lombikos előkísérletben megállapítottuk az alkalmazott vassó, ez esetben Fe(IH)-citrát esetleges növekedésgátló hatását. Az alkalmazott Fe-koncentrációk rendre 25, 50, 125 és 250 mg/dm3 voltak. A szaporodást jellemző OD-értékek a felvett vasmennyiségek az 5. táblázatban olvashatók.As in the first example, the potential growth inhibitory effect of iron salt, in this case Fe (1H) citrate, was determined in a flask preliminary. The Fe concentrations used were 25, 50, 125 and 250 mg / dm 3, respectively. Reproductive OD values for iron uptake are shown in Table 5.

5. táblázatTable 5

Tápoldat Fe-tartalom (mg/dm3)Media Fe content (mg / dm 3 ) OD OD Felvett Fe/biomassza (pg/g) recorded Fe / biomass (Pg / g) 0 0 3,05 3.05 - 25 25 3,10 3.10 - - 50 50 3,25 3.25 2120 2120 125 125 3,20 3.20 4270 4270 250 250 3,20 3.20 10 180 10,180

A vasfelvétel közel egyenes arányban nőtt a bevitt vas mennyiségével, ugyanakkor az élesztőnél szaporodásgátlás nem lépett fel. A fermentoros szaporítás bemutatásához az első példához hasonlóan 100 mg/dm3 Fe kiindulási koncentrációt választottunk. A vas(III)-citrátot a szaporítás kezdetekor egy részletben adtuk a tápoldathoz, pH-szabályozás nem történt (6, táblázat).Iron uptake increased almost in direct proportion to the amount of iron ingested, but yeast did not inhibit reproduction. For demonstration of fermenter growth, a starting concentration of 100 mg / dm 3 Fe was selected as in the first example. Iron (III) citrate was added in one portion to the medium at the start of the propagation, and no pH control was performed (Table 6).

6.táblázatTable 6

Idő (h) Time (H) OD OD Fe/fermentlé (mg/dm3)Fe / fermentation broth (mg / dm 3 ) 0 0 0,45 0.45 80,3 80.3 2 2 0,85 0.85 - - 4 4 1,25 1.25 74,9 74.9 6 6 2,45 2.45 - - 8 8 3,20 3.20 71,4 71.4 10 10 5,00 5.00 - - 12 12 5,85 5.85 64,2 64.2 24 24 6,20 6.20 32,1 32.1 Fe-felvétel: 7300 gg/g szárított élesztő dúsulás: 90-szeres Fe uptake: 7300 gg / g dried yeast enrichment: 90-fold

Az 1. példához hasonlóan fermentorban a jó levegőztetést viszonyok hatására jobb vasfelvétel érhető el, mint azonos vaskoncentráciő mellett lombikos szaporításnál.As in Example 1, good aeration in the fermentor results in better iron uptake than in flask growth with the same iron concentration.

HU 205 379 ΒHU 205 379 Β

3. példaExample 3

Vassal dúsított Candida utilisIron-enriched Candida utilis

Az 1. példánál bemutatott módon a takarmányélesztőnél is lómbikos elókísérletekben határoztuk meg a legkedvezőbb vaskoncentrációt Vas(H)-szulfát esetében az alkalmazott Fe-koncentrációk rendre 20, 40, 100 és 200 mg/dm3 voltak. A szaporodást jellemző OD-értékek és a felvett vasmennyiségek a 7. táblázatban olvashatókAs in Example 1, for Fe (H) sulfate, Fe concentrations of 20, 40, 100, and 200 mg / dm 3 were used to determine the most favorable iron concentration in fodder yeast. Table 7 shows the proliferation OD values and iron uptake

7. táblázatTable 7

Tápoldat Fe-tartalom (mg/dm3)Media Fe content (mg / dm 3 ) OD OD Felvett Fe/biomassza (pg/g) recorded Fe / biomass (Pg / g) 0 0 9,8 9.8 - 20 20 11,5 11.5 - - 40 40 11,2 11.2 1820 1820 100 100 10,9 10.9 3580 3580 200 200 9,0 9.0 6990 6990

A takarmányélesztő esetében is a pékélesztőnél tapasztaltak szerint történt a vas felvétele, arányos volt a bevitt vas mennyiségével. Fermentoros szaporításnál az 1. példában leírtak szerint jártunk el, a szaporítás indításakor 100 mg/dm3 Fe-nak megfelelő vas(©-szulfátot adtunk a tápoldathoz. A szaporítási folyamat során pH-szabályozás nem történt (8. táblázat).In the case of feed yeast, iron intake was similar to that observed in baker's yeast and was proportional to the amount of iron intake. Fermentation propagation was carried out as described in Example 1, with 100 mg / dm 3 Fe (© sulfate) added to the culture medium at the start of the propagation. No pH control was performed during the propagation process (Table 8).

8. táblázatTable 8

Idő (h) Time (H) OD OD Fe/fermentlé (mg/dm3)Fe / fermentation broth (mg / dm 3 ) 0 0 1,15 1.15 105 105 2 2 1,25 1.25 - - 4 4 1,65 1.65 105 105 6 6 3,10 3.10 - - 8 8 4,75 4.75 93 93 10 10 7,20 7.20 - - 12 12 10,55 10.55 72 72 24 24 16,30 16,30 16 16 Fe-felvétel: 8380 pg/g szárított élesztő Fe uptake: 8380 pg / g dried yeast

Az I. példához hasonlóan fermentorban a jó levegőztetési viszonyok hatására jobb vasfelvétel érhető el, mint azonos koncentráció mellett lombikos szaporításnál.As in Example I, in a fermenter, good iron uptake results in better iron uptake than in flask growth at the same concentration.

4. példaExample 4

Vassal dúsított Candida utilisIron-enriched Candida utilis

A vas(III)-citrátos szaporítást is lombikos előkísérlet előzte meg. Az alkalmazott Fe-koncentrációk rendre 25, 50, 125 és 250 mg/dm3 voltak A szaporodást jellemző OD-értékek és a felvett vasmennyiségek a 9. táblázatban olvashatók.Fermentation of ferric citrate was also preceded by a flask preliminary experiment. The Fe concentrations used were 25, 50, 125, and 250 mg / dm 3, respectively. The OD values for growth and the iron uptake are shown in Table 9.

9. táblázat Table 9 Tápoldat Fe-tartalom (mg/dm3)Media Fe content (mg / dm 3 ) OD OD Felvett Fe/biomassza (pg/g) recorded Fe / biomass (Pg / g) 0 0 8,70 8.70 - 25 25 9,35 9.35 - - 50 50 9,70 9.70 2150 2150 125 125 10,05 10.05 4230 4230 250 250 8,85 8.85 10 150 10,150

Fermentoros szaporításnál az 1. példában leírtak szerint jártunk ei,_ a szaporítás indításakor 100 mg/dm3 Fenak megfelelő Yas(HI)-citrátot adunk a tápoldathoz. A szaporítási folyamat során pH-szabályozás nem történt (10. táblázat):For enzyme growth, the procedure described in Example 1 was followed by adding Yas (HI) citrate equivalent to 100 mg / dm 3 Fen at the start of the growth. No pH control during the propagation process (Table 10):

10. táblázatTable 10

Idő (h) Time (H) OD OD Fe/fermentlé (mg/dm3)Fe / fermentation broth (mg / dm 3 ) 0 0 1,10 1.10 92 92 2 2 1,30 1.30 - - 4 4 2,05 2.05 83 83 6 6 4,25 4.25 - - 8 8 6,95 6.95 71 71 10 10 9,10 9.10 - - 12 12 11,75 11.75 57 57 24 24 15,80 15.80 22 22

Fe-felvétel: 8800 pg/g szárított élesztőFe uptake: 8800 pg / g dried yeast

A vassal történő dúsítások jó levegőztetési viszonyok mellett, amint ez az 1-4. példák eredményeiből látható, jobb hatásfokúak, mint a gyengébb oxigénellátású lombikos szaporításoknál.Iron enrichments with good aeration as shown in Figures 1-4. are more effective than flask propagations with lower oxygen supply.

5. példaExample 5

Vassal dúsított Saccharomyces cerevisiaeIron-enriched Saccharomyces cerevisiae

A 2. példában bemutatott szaporítás elvégezhető vas(©)-ammónium-citrát, mint vasforrás felhasználásával is. Ez utóbbi sóval történt dúsítás adatai olvashatók a 11. táblázatban. Az adagolás 100 mg/dm3 Fe-nak megfelelő mennyiségű vas(III)-ammónium.-citrát, amit a szaporítás kezdetén adtunk a tápoldathoz. A szaporítás pH-szabályozás nélkül történt.The propagation described in Example 2 can also be carried out using iron (©) -ammonium citrate as a source of iron. See Table 11 for the latter salt enrichment. The administration is an amount of iron (III) ammonium citrate equivalent to 100 mg / dm 3 Fe added at the beginning of the growth. Propagation was carried out without pH control.

11. táblázatTable 11

Idő (h) Time (H) OD OD Fe/feimenüé (mg/dm3)Fe / main menu (mg / dm 3 ) 0 0 0,25 0.25 85 85 2 2 0,35 0.35 - - 4 4 0,65 0.65 69 69 6 6 1,30 1.30 - -

HU 205 379 ΒHU 205 379 Β

Idő (h) Time (H) OD OD Fe/fermentlé (mg/dm3)Fe / fermentation broth (mg / dm 3 ) 8 8 3,45 3.45 58 58 10 10 4,10 4.10 - - 12 12 4,25 4.25 51 51 24 24 4,30 4.30 35 35

Fe-felvétel: 5100 pg/g szárított élesztő dúsulás: 60-szorosFe uptake: 5100 pg / g dried yeast enrichment: 60 fold

6. példaExample 6

Vassal dúsított Candida utilis A 4. példában bemutatott szaporítás elvégezhető vas(III)-ammónium-citrát, mint vasforrás felhasználásával is. Ez utóbbi sóval történt dúsítás adatai olvashatók a 12. táblázatban. Az adagolás 100 mg/dm3 Fe-nak megfelelő mennyiségű vas(in)-ammónium-citrát, amit a szaporítás kezdetén adtunk a tápoldathoz. A szaporítás pH-szabályozás nélkül történt.Iron Enriched Candida Utilis The propagation described in Example 4 can also be performed using iron (III) ammonium citrate as an iron source. See Table 12 for the latter salt enrichment. The dosage is iron (in) ammonium citrate equivalent to 100 mg / dm 3 Fe added at the beginning of the growth. Propagation was carried out without pH control.

12. táblázatTable 12

Idő (h) Time (H) OD OD Fe/fermentlé (mg/dm3)Fe / fermentation broth (mg / dm 3 ) 0 0 0,80 0.80 87 87 2 2 1,05 1.05 - - 4 4 1,30 1.30 70 70 6 6 2,35 2.35 - - 8 8 7,05 7.05 46 46 10 10 12,50 12.50 21 21 12 12 15,00 15.00 13 13 24 24 26,85 26.85 10 10

Fe-felvétel: 3600 pg/g szárított élesztőFe uptake: 3600 pg / g dried yeast

7. példaExample 7

Rézzel dúsított Saccharomyces cerevisiae Különböző réztartalmú tápoldatokban szaporítva a pékélesztőt megvizsgáltuk, hogy a réz milyen koncentrációban jelent gátlást a szaporodásra. A rezet réz(H)-szulfát formájában adtuk a tápoldathoz. Lombikos kísérletekben az alkalmazott rézkoncentrációk a tápoldatban rendre 10, 20,50,100 és 200 mg/dm3 voltak. Aréz hatását az élesztő szaporodására a 13. táblázatban szemléltetjük.Copper-enriched Saccharomyces cerevisiae When cultivated in various copper-containing media, baker's yeast was tested for the concentration of copper that inhibits reproduction. Copper was added to the medium as copper (H) sulfate. In flask experiments, the copper concentrations used in the medium were 10, 20.50, 100 and 200 mg / dm 3, respectively. The effect of ares on the growth of yeast is shown in Table 13.

Tápoldat Cu-tartalom (mg/dm3)Media Cu content (mg / dm 3 ) OD OD Felvett Cu/biomassza (Hg/g) recorded Cu / biomass (Ug / g) 100 100 0,50 0.50 X X 200 200 0,45 0.45 X X x: a biomassza nem volt kinyerhető mennyiségű x: biomass was not recoverable

A réz(II)-szulfát lévén jó gombaölő szer, már kis koncentrációban is erősen gátolta az élesztő szaporodását. Ezért fermentoros szaporításnál 10 mg/dm3 koncentrációban adtuk a rezet a tápoldathoz. A 14. táblázatban egy olyan fermentoros szaporítás adatait mutatjuk be, ahol a réz(II)-szulfátot a szaporodás exponenciális fázisának kezdetén, egy részletben adtuk a tápoldathoz, pH-szabályozás nem történt.Being a good fungicide, copper (II) sulfate, even at low concentrations, strongly inhibited the growth of yeast. Therefore, copper was added to the nutrient medium at 10 mg / dm 3 concentration by fermentation propagation. Table 14 shows the data for a fermentation growth where copper (II) sulfate was added in one portion to the culture medium at the start of the exponential growth phase, without pH control.

14. táblázatTable 14

Idő OD Cu/fermentlé (h) (mg/dm3)Time OD Cu / fermentation broth (h) (mg / dm 3 )

0 0 0,30 0.30 2 2 0,45 0.45 - - 4 4 0,60 0.60 9,2 9.2 6 6 0,55 0.55 - - 8 8 0,65 0.65 8,3 8.3 10 10 0,85 0.85 - - 12 12 1,40 1.40 7,1 7.1 24 24 2,25 2.25 6,9 6.9

Cu-felvétel: 1330 pg/g szárított élesztő dúsulás: 50-szeresCu uptake: 1330 pg / g dried yeast enrichment: 50 fold

8. példaExample 8

Rézzel dúsított Saccharomyces cerevisiae A 7. példában bemutatott szaporítás során a réz már igen kis koncentrációban (10 mg/dm3) is gátolta a pékélesztő szaporodását, ugyanakkor a réz felvétele megfelelő volt. Ezért célszerű a réz(ü)-szulfátot a szaporítás exponenciális szakaszában több részletben adagolni a tápoldathoz, ahogyan azt a 15. táblázatban szemléltetjük. A szaporítás során pH-szabályozás nem történt, a sót 10 mg/dm3 ősszmennyiségben, 5 részletre elosztva, óránként adtuk a tápoldathoz.Copper-enriched Saccharomyces cerevisiae Copper inhibited the growth of baker's yeast at a very low concentration (10 mg / dm 3 ) during the propagation shown in Example 7, but the copper uptake was adequate. Therefore, it is expedient to add copper (µ) sulfate to the culture medium in several portions during the exponential phase of propagation as shown in Table 15. No pH control was performed during the propagation, and the salt was added to the broth at 10 mg / dm 3 in 5 divided portions.

13. táblázat Table 13 Tápoldat Cu-tartalom (mg/dm3)Media Cu content (mg / dm 3 ) OD OD Felvett Cu/biomassza (Fg/g) recorded Cu / biomass (Fg / g) 0 0 3,50 3.50 10 10 1,25 1.25 1650 1650 20 20 0,90 0.90 X X 50 50 0,55 0.55 X X

15. táblázatTable 15

Idő (h) Time (H) OD OD Cu/fermentlé (mg/dm3)Cu / fermentation broth (mg / dm 3 ) 0 0 0,30 0.30 - 2 2 0,45 0.45 - - 4 4 0,60 0.60 1,9 1.9 5 5 0,65 0.65 3,6 3.6 6 6 0,95 0.95 4,5 4.5 7 7 1,35 1.35 5,6 5.6

HU 205 379 BHU 205 379 B

Idő (h) Time (H) OD OD Cu/fermentlé (mg/dm3)Cu / fermentation broth (mg / dm 3 ) 8 8 1,70 1.70 7,3 7.3 10 10 2,45 2.45 - - 12 12 3,20 3.20 6,5 6.5 24 24 4,05 4.05 6,0 6.0

Cu-felvétel: 705 pg/g szárított élesztő dúsulás: 26-szorosCu uptake: 705 pg / g dried yeast enrichment: 26 fold

A folyamatos adagolással nem érhető el ugyanolyan mértékű dúsulás, mint az egyszeri rézbevitel esetén, viszont a biotömeg-kinyerés és a rézfelvétel optimuma szempontjából ez a kedvezőbb megoldás.Continuous dosing does not achieve the same degree of enrichment as single copper intake, but is more favorable in terms of bio mass recovery and optimum copper uptake.

9. példaExample 9

Rézzel dúsított Candida utilisCopper enriched Candida utilis

Különböző réztartalmű tápoldatokban szaporítva a takarmányélelsztőt megvizsgáltuk, hogy a réz milyen koncentrációban jelent gátlást a szaporodásra. A rezet réz(H)-szulfát formájában adtuk a tápoldathoz. Lombikos kísérletekben az alkalmazott rézkoncentrációk a tápoldatban rendre 10, 20 50, 100 és 200 mg/dm.3 voltak. A réz hatását az élesztő szaporodására a 16. táblázatban szemléltetjük.When propagated in various copper-containing media, the feed scavenger was tested for the concentration of copper that inhibits reproduction. Copper was added to the medium as copper (H) sulfate. In flask experiments, the copper concentrations used in the medium were 10, 20 50, 100 and 200 mg / dm, respectively. There were 3 . The effect of copper on yeast growth is shown in Table 16.

16. táblázatTable 16

Tápoldat Cu-tartalom (mg/dm3)Media Cu content (mg / dm 3 ) OD OD Felvett Cu/biomassza (pg/g) Cu / biomass absorbed (pg / g) 0 0 7,25 7.25 - 10 10 7,50 7.50 850 850 20 20 7,35 7.35 1700 1700 50 50 7,40 7.40 3150 3150 100 100 7,30 7.30 3580 3580 200 200 2,15 2.15 3760 3760

A takarmányélesztő szaporodását a pékélesztőnél tapasztaltakkal szemben nem gátolja jelentősen a réz 100 mg/dm3 koncentrációig. A réz dúsulása az élesztőben - bár nem arányos a bevitt mennyiséggel számottevő.The growth of feed yeast is not significantly inhibited by copper up to a concentration of 100 mg / dm 3 compared to that observed in baker's yeast. Enrichment of copper in yeast, although not commensurate with the amount ingested, is significant.

A fermentoros szaporítást 100 mg/dm3 Cu-bevitel mellett mutatjuk be (17. táblázat). A sót az exponenciális fázis kezdetén egy részletben adtuk a tápoldathoz, pH-szabályozás nem volt.Fermentation growth is shown at a Cu intake of 100 mg / dm 3 (Table 17). The salt was added in one portion to the medium at the start of the exponential phase, with no pH control.

17. táblázatTable 17

Idő OD Cu/fermentlé (h) (mg/dm3)Time OD Cu / fermentation broth (h) (mg / dm 3 )

0,700.70

0,950.95

1,05 991.05 99

1,851.85

Idő (h) Time (H) OD OD Cu/fermentlé (mg/dm3)Cu / fermentation broth (mg / dm 3 ) 8 8 4,20 4.20 96 96 10 10 9,85 9.85 - 12 12 14,75 14.75 76 76 24 24 17,00 17,00 77 77 Cu-felvétel: 890 pg/g szárított élesztő Cu uptake: 890 pg / g dried yeast

10. példaExample 10

Cinkkel dúsított Saccharomyces cerevisiae A cinket különböző koncentrációkban tartalmazó tápoldatokban szaporítva az élesztőt megvizsgáltuk, hogy jelent-e gátlást az élesztő szaporodására a tápoldat megemelt cinktartalma, valamint hogy az élesztő a különböző cinkkoncentrációjú tápoldatokból mennyi cinket képes akkumulálni. A cinket cink-szulfát formájában adtuk a tápoldathoz. A lombikos szaporítás eredményei a 18. táblázatban láthatók.Zinc Enriched Saccharomyces cerevisiae When grown in media containing various concentrations of zinc, the yeast was tested for inhibition of yeast growth by increased zinc content of the medium and the ability of the yeast to accumulate zinc from different concentrations of zinc. Zinc was added to the medium as zinc sulfate. The results of flask propagation are shown in Table 18.

18. táblázatTable 18

Tápoldat Zn-tartalom (mg/dm3)Media Zn content (mg / dm 3 ) OD OD Felvett Zn/biomassza (pg/g) Zn / biomass uptake (pg / g) 0 . 0. 3,25 3.25 - 10 10 3,30 3.30 750 750 20 20 3,20 3.20 1250 1250 50 50 3,20 3.20 2730 2730 100 100 3,15 3.15 3760 3760 200 200 3,10 3.10 4550 4550

Fermentoros szaporítást 50 mg/dm3 Zn-bevitel mellett mutatunk be, mivel a lombikos szaporítás adataiból (18. táblázat) jól látható, hogy efölött a koncentráció fölött már nem arányos a cink akkumulációja a bevitt mennyiséggel. A19. táblázatban közölt adatokat pH-szabályozás nélküli szaporításból nyertük, a cink-szulfátot egy részletben, a növekedés exponenciális fázisának elején adtuk a tápoldathoz.Enzymatic growth is shown at Zn intake of 50 mg / dm 3 , since from the flask growth data (Table 18), it is clear that above this concentration the zinc accumulation is no longer proportional to the amount administered. A19. The data shown in Table II were obtained from growth without pH control and zinc sulfate was added in one portion at the beginning of the exponential growth phase.

19. táblázatTable 19

Idő OD Felvett Zn/fermentlé (h) (mg/dm3)Time OD Recorded Zn / fermentation broth (h) (mg / dm 3 )

0 0 0,30 0.30 - - 2 2 0,45 0.45 - 4 4 0,75 0.75 55 55 6 6 0,90 0.90 51 51 8 8 1,95 1.95 48 48 10 10 3,05 3.05 - - 12 12 3,50 3.50 45 45 24 24 3,75 3.75 45 45

Zn-felvétel: 2050 pg/g szántott élesztő dúsulás: 14-szeresZn uptake: 2050 pg / g plowed yeast enrichment: 14-fold

HU 205 379 ΒHU 205 379 Β

11. példaExample 11

Cinkkel dúsított Candida utilisZinc enriched Candida utilis

Cinkes takarmányélesztő szaporítása során a 10. példában leírtak szerint járunk el. Lombikos szaporítást és fermentoros biomassza-előállítást végeztünk cink-szulfát-adagolás mellett. A cink esetleges gátló hatásának megállapítására vonatkozó mérési eredményeket a 20. táblázatban foglaltuk össze.Zinc forage yeast propagation was carried out as described in Example 10. Flask propagation and fermentor biomass production were carried out with the addition of zinc sulfate. The results of the test for the potential inhibitory effect of zinc are summarized in Table 20.

20. táblázatTable 20

Tápoldat Zn-tartalom (mg/dm3)Media Zn content (mg / dm 3 ) OD OD Felvett Zn/biomassza (pg/g) Zn / biomass uptake (pg / g) 0 0 9,40 9.40 - 10 10 11,30 11.30 720 720 20 20 11,20 11.20 850 850 50 50 9,95 9.95 1160 1160 100 100 10,80 10.80 2150 2150 200 200 9,25 9.25 4280 4280

Fermentoros szaporítást 100 mg/dm3 Zn-koncentráCióval mutatunk be. A cink-szulfátot a szaporodás exponenciális fázisának kezdetekor egy részletben adtuk a tápoldathoz, pH-szabályozás nem történt. Adataink a 21. táblázatban olvashatók.Enzyme growth was shown at a concentration of 100 mg / dm 3 Zn. Zinc sulfate was added in one portion to the medium at the start of the exponential growth phase, and no pH control was performed. See Table 21 for our data.

21. táblázatTable 21

Idő (h) Time (H) OD OD Zn/fermentlé (mg/dm3)Zn / fermentation broth (mg / dm 3 ) 0 0 0,65 0.65 2 2 0,85 0.85 - - 4 4 1,50 1.50 86 86 6 6 4,60 4.60 76 76 8 8 8,50 8.50 75 75 10 10 9,75 9.75 73 73 12 12 10,50 10.50 73 73 24 24 12,55 12.55 71 71 Zn-felvétel: 660 gg/g szárított élesztő Zn uptake: 660 gg / g dried yeast

A takarmányélesztő szaporodását jó levegőztetési viszonyok között már erősebben gátolta a cink-szulfát, mint lombikos szaporításnál, s a cinkfelvétel is kisebb mértékű.Under favorable aeration conditions, the growth of fodder yeast was already more strongly inhibited by zinc sulphate than by flask growth, and the uptake of zinc was also lower.

72, példaExample 72

Mangánnal dúsított Saccharomyces cerevisiaeManganese-enriched Saccharomyces cerevisiae

A mangánt különböző koncentrációkban (10,20,50, 100 és 200 mg/dm3) tartalmazó 'tápoldatokban szaporítva az élesztőt megvizsgáltuk, hogy jelent-e gátlást az élesztő szaporodására a tápoldat megemelt mangántartalma, valamint hogy az élesztő a különböző mangánkoncentrációjú tápoldatokból mennyi mangánt képes akkumulálni. A mangánt mangán-szulfát fonnájában adtuk a tápoldathoz. A lombikos szaporítás eredményeit a 22. táblázatban foglaltuk össze.When cultured in media containing different concentrations of manganese (10,20.50, 100 and 200 mg / dm 3 ), the yeast was tested for inhibition of the growth of the yeast by the increased manganese content of the medium and the amount of manganese in the medium containing can accumulate. Manganese was added in the form of manganese sulfate in the medium. The results of flask propagation are summarized in Table 22.

22. táblázatTable 22

Tápoldat Mn-tartalom (mg/dm3)Media Mn content (mg / dm 3 ) OD OD Felvett Mn/biomassza (pg/g) Intake Mn / biomass (pg / g) 0 0 3,10 3.10 - 10 10 3,15 3.15 45 45 20 20 3,20 3.20 60 60 50 50 3,05 3.05 120 120 100 100 2,95 2.95 185 185 200 200 2,20 2.20 420 420

Fermentoros szaporításhoz a 100 mg/dm3 Mn-koncentrációt választottuk, mivel számottevő szaporodásgátlás nem lépett föl a lombikos szaporítás során, a mangán akkumulációja viszont alacsony volt. A mangán-szulfátot a szaporítás exponenciális fázisában öt részletben, óránként adagolva vittük a tápoldatba, pH- szabályozás nem volt. Adataink a 23. táblázatban olvashatók.For enzyme growth, 100 mg / dm 3 Mn was chosen because no significant growth inhibition was observed in flask growth, but manganese accumulation was low. Manganese sulfate was added to the culture medium in five portions per hour during the exponential phase of propagation, with no pH control. See Table 23 for our data.

23. táblázatTable 23

Idő (h) Time (H) OD OD Mn/fermentlé (mg/dm3)Mn / fermentation broth (mg / dm 3 ) 0 0 0,35 0.35 2 2 0,45 0.45 - - 4 4 0,65 0.65 21 21 5 5 0,95 0.95 45 45 6 6 1,25 1.25 66 66 7 7 1,90 1.90 84 84 8 8 2,75 2.75 105 105 10 10 3,15 3.15 102 102 12 12 3,60 3.60 97 97 24 24 4,40 4.40 95 95

Mn-felvétel: 360 gg/g szárított élesztő dúsulás: 18-szorosMn uptake: 360 gg / g dried yeast enrichment: 18-fold

13. példaExample 13

Mangánnal dúsított Candida utilisManganese-enriched Candida utilis

Mangánnal dúsított takarmányélesztő előállítása során a 12. példában leírtak szerint járunk el. Lombikos szaporítást és fermentoros biomassza-előállítást végeztünk mangán-szulfát-adagolás mellett. A mangán esetleges gátló hatásának megállapítására, illetve az előzetes akkumulációra vonatkozó mérési eredményeket a 24. táblázatban foglaltuk, össze.The manganese-enriched feed yeast is prepared as described in Example 12. Flask propagation and fermentor biomass production were performed with the addition of manganese sulfate. Table 24 summarizes the results of manganese inhibitory activity and pre-accumulation.

24. táblázatTable 24

Tápoldat Mn-tartalom (mg/dm3 Media Mn content (mg / dm 3) OD OD Felvett Mn/biomassza; (pg/g) 'Mn / biomass uptake ; (pg / g) ' 0 0 10,85 10.85 10 10 10,90 10.90 145 145 20 20 11,40 11.40 220 220 50 50 11,85 11.85 480 480

HU 205379 ΒHU 205379 Β

Tápoldat Μη-tartalom OD Media oldη Content OD Felvett Mn/biomassza Intake Mn / biomass (mg/dm3 (mg / dm 3 (pg/g) (Pg / g) 100 12,90 100 12.90 1020 1020 200 10,55 200 10.55 1880 1880

Fermentoros szaporításhoz a 12. példához hasonlóan a 100 mg/dm3 Mn-koncentrációt választottuk. Az előzetes méréseknél (24. táblázat) itt volt a legnagyobb biotömeg-képződés és a mangán akkumulációja is kedvező volt. A mangán-szulfátot az exponenciális fázis kezdetén egy részletben adtuk a tápoldathoz, pH-szabályozás nem volt.Similarly to Example 12, a concentration of 100 mg / dm 3 Mn was chosen for enzyme growth. Preliminary measurements (Table 24) showed the highest bio-mass formation and the favorable accumulation of manganese. The manganese sulfate was added in one portion to the medium at the start of the exponential phase, with no pH control.

25. táblázatTable 25

Idő OD Mn/fermentlé (h) (mg/dm3)Time OD Mn / fermentation broth (h) (mg / dm 3 )

0 0 1,05 1.05 - - 2 2 1,15 1.15 - - 4 4 1,65 1.65 105 105 6 6 2,80 2.80 105 105 8 8 5,85 5.85 98 98 10 10 13,90 13.90 96 96 12 12 16,75 16.75 93 93 24 24 19,50 19.50 90 90

Mn-felvétel: 1100 pg/g szárított élesztőMn uptake: 1100 pg / g dried yeast

A pékélesztővel ellentétben a takarmányélesztőnél jó egyezés van a lombikos és az intenzíven levegőztetett fermentoros szaporításnál nyert eredmények között.In contrast to baker's yeast, feed yeast has a good agreement between flask and intensive aeration fermentation propagation.

14. példaExample 14

Molibdénnel dúsított Saccharomyces cerevisiaeSaccharomyces cerevisiae enriched with molybdenum

A molibdént különböző koncentrációkban (20, 50, 100 és 200 mg/dm3) tartalmazó tápoldatokban szaporítva az élesztőt megvizsgáltuk, hogy jelent-e gátlást az élesztő szaporodására a tápoldat molibdéntartalma, valamint hogy az élesztő a különböző molibdénkoncentrációjú tápoldatokból mennyi molibdént képes akkumulálni. A molibdént ammónium-molibdenát formájában adtuk a tápoldathoz. A lombikos szaporítás eredményeit a 26. táblázatban foglaltuk össze.By growing molybdenum in media containing various concentrations (20, 50, 100 and 200 mg / dm 3 ), the yeast was tested for inhibition of yeast growth by the molybdenum content of the medium and the ability of the yeast to accumulate molybdenum from different molybdenum concentration media. Molybdenum was added to the medium as ammonium molybdenate. The results of flask propagation are summarized in Table 26.

26. táblázatTable 26

Tápoldat Mo-tartalom (mg/dm3)Nutrient Mo content (mg / dm 3 ) OD OD Felvett Mo/biomassza (pg/g) Mo / Biomass uptake (Pg / g) 0 0 3,05 3.05 20 20 2,30 2.30 1650 1650 50 50 2,40 2.40 5570 5570 100 100 2,55 2.55 9520 9520 200 200 2,45 2.45 16230 16230

A pékélesztő a lombikos szaporítások során jól akkumulálta a molibdént 20-22%-os biotömeg-csökkenés mellett.Baking yeast accumulates molybdenum well during flask propagation with a 20-22% decrease in biomass.

Fermentorban 50 mg/dm3 Mo-koncentrácíő alkal-. mazásával szaporítottunk, az ammónium-molibdenátot egy részletben, a szaporítás exponenciális fázisának kezdetén adtuk a tápoldathoz, pH-szabályozás nem történt. Adataink a 27. táblázatban láthatók.In a fermenter, a concentration of 50 mg / dm 3 Mo is used. ammonium molybdenate was added in one portion at the beginning of the exponential phase of propagation, and no pH control was performed. Table 27 shows our data.

27. táblázatTable 27

Idő (h) Time (H) OD OD Mo/fermentlé (mg/dm3)Mo / fermentation broth (mg / dm 3 ) 0 0 0,35 0.35 - 2 2 0,45 0.45 - 3 3 0,75 0.75 52 52 5 5 1,15 1.15 - 7 7 2,50 2.50 52 52 9 9 3,05 3.05 51 51 11 11 3,25 3.25 45 45 23 23 3,50 3.50 41 41

Mo-felvétel: 2300 pg/g szárított élesztő dúsulás: 58 000-szeresMo-up: 2300 pg / g dried yeast enrichment: 58,000-fold

Az elért molibdénfelvétel extra magas dúsulást jelent a normál pékélesztő molibdéntartalmához képest.The molybdenum uptake achieved results in an extra high enrichment compared to the molybdenum content of normal baker's yeast.

15. példaExample 15

Molibdénnel dúsított Saccharomyces cerevisiae A14. példában bemutatott eljárást alkalmaztuk, azzal az eltéréssel, hogy a laboratóriumi fermentáció során az ammónium-molibdenátot öt részletben, a szaporodás exponenciális fázisában óránként adagoltuk a tápoldathoz. Eredményeinket a 28. táblázatban foglaltuk össze.Molybdenum-enriched Saccharomyces cerevisiae A14. The procedure described in Example 1B was used, except that during the laboratory fermentation, ammonium molybdenate was added in five portions per hour during the exponential phase of growth. Our results are summarized in Table 28.

28. táblázatTable 28

Idő (h) Time (H) OD OD Mo/fermentlé (mg/dm3)Mo / fermentation broth (mg / dm 3 ) 0 0 0,40 0.40 - 2 2 0,45 0.45 - - 3 3 0,65 0.65 11 11 4 4 0,80 0.80 23 23 5 5 1,45 1.45 34 34 6 6 1,55 1.55 45 45 7 7 2,30 2.30 51 51 11 11 2,75 2.75 46 46 24 24 3,15 3.15 45 45

Mo-felvétel: 3900 pg/g szárított élesztő dúsulás: 98 000-szeresMo intake: 3900 pg / g dried yeast enrichment: 98,000-fold

Az ammónium-molibdenát több részletben történő adagolásával a dúsulás még fokozható.The addition of ammonium molybdenate in several increments can further enhance the enrichment.

HU 205 379 ΒHU 205 379 Β

16. példaExample 16

Molibdénnel dúsított Candida utilis A 14. példában leírtak szerint lombikos szaporításokat végeztünk az ammónium-molibdenát esetleges gátló hatásának, illetve a molibdén akkumuláció mértékének becslésére. Adataink a 29. táblázatban olvashatók.Candida utilis Molybdenum Enriched As described in Example 14, flask propagations were performed to estimate the potential inhibitory effect of ammonium molybdenate and the extent of molybdenum accumulation. See Table 29 for our data.

29. táblázatTable 29

Tápoldat Mo-tartalom (mg/dm3)Nutrient Mo content (mg / dm 3 ) OD OD Felvett Mo/biomassza (pg/g) recorded Mo / biomass (Pg / g) 0 0 10,55 10.55 20 20 12,80 12.80 2750 2750 50 50 13,20 13.20 6900 6900 100 100 15,05 15.05 14520 14520 200 200 12,00 12.00 27 950 27,950 Fermentorban 100 mg/dm3 Mo-koncentráció alkalmazásával szaporítottunk, az ammónium-molibdenátotAmmonium molybdenate was grown in a fermenter at a concentration of 100 mg / dm 3 Mo egy részletben, in one installment, a szaporítás exponenciális fázisának the exponential phase of propagation kezdetén adtuk a tápoldathoz, pH-szabályozás nem történt. Adataink a 30. táblázatban találhatók. was added to the medium at the beginning, pH control was not performed. See Table 30 for our data.

30. táblázat Table 30 Idő (h) Time (H) OD OD Mo/fermentlé (mg/dm3)Mo / fermentation broth (mg / dm 3 ) 0 0 1,50 1.50 2 2 1,95 1.95 - - 3 3 2,40 2.40 98 98 4 4 3,30 3.30 76 76 6 6 4,25 4.25 69 69 8 8 4,50 4.50 64 64 12 12 7,85 7.85 55 55 24 24 13,00 13.00 12 12 Mo-felvétel: 3600 pg/g szárított élesztő Mo uptake: 3600 pg / g dried yeast

A takarmányélesztő ugyanolyan jól akkumulálja a molibdént, mint a pékélesztő.Feed yeast accumulates molybdenum as well as baker's yeast.

17. példaExample 17

Kobalttal dúsított Saccharomyces cerevisiae A kobaltot különböző koncentrációban (10, 20, 50,Cobalt-enriched Saccharomyces cerevisiae A cobalt at various concentrations (10, 20, 50,

100 és 200 mg/dm3) tartalmazó tápoldatokban szaporítva az élesztőt megvizsgáltuk, hogy jelent-e gátlást az élesztő szaporodására a tápoldat kobalttartalma, valamint hogy az élesztő a különböző kobaltkoncentrációjú tápoldatokból mennyi kobaltot képes akkumulálni. A kobaltot kobalt(H)-klorid formájában adtuk a tápoldathoz. A lombikos szaporítás eredményeit a 31. táblázatban foglaltuk össze.When cultured in media containing 100 and 200 mg / dm 3 ), the yeast was tested for inhibition of yeast growth by the cobalt content of the medium and the ability of the yeast to accumulate cobalt from media containing different concentrations of cobalt. Cobalt was added to the medium as cobalt (H) chloride. The results of flask propagation are summarized in Table 31.

31. táblázatTable 31

Tápoldat Co-tartalom (mg/dm3)Media Co content (mg / dm 3 ) OD OD Felvett Co/biomassza (pg/g) Recorded Co / biomass (pg / g) 0 0 2,85 2.85 - 10 10 2,20 2.20 250 250 20 20 1,90 1.90 310 310 50 50 1,75 1.75 820 820 100 100 1,70 1.70 3450 3450 200 200 1,45 1.45 X X

x: biomassza nem volt kinyerhető mennyiségűx: biomass was not recoverable

Mivel a kobalt(II)-klorid erősen gátolta az élesztő szaporodását, fermentorban csak 20 mg/dm3 Co-koncentrációval dolgoztunk. A sót a szaporodás exponenciális fázisának kezdetétől öt részletben óránként adtuk a tápoldathoz, pH-szabályozás nem volt. Mérési adataink a 32. táblázatban találhatók.Because cobalt (II) chloride strongly inhibited the growth of yeast, only 20 mg / dm 3 Co was used in the fermentor. The salt was added to the broth every five hours from the start of the exponential phase of growth, with no pH control. See Table 32 for our measurement data.

32. táblázatTable 32

Idő (h) Time (H) OD OD Co/fermentlé (mg/dm3)Co / fermentation broth (mg / dm 3 ) 0 0 0,45 0.45 - 2 2 0,60 0.60 - - 3 3 1,10 1.10 3,8 3.8 4 4 1,25 1.25 7,9 7.9 5 5 1,55 1.55 12,2 12.2 6 6 2,25 2.25 15,3 15.3 7 7 2,65 2.65 20,4 20.4 8 8 2,75 2.75 19,6 19.6 10 10 2,90 2.90 19,5 19.5 24 24 3,15 3.15 19,8 19.8

Co-felvétel: 250 pg/g szárított élesztő dúsulás: 80-szorosCo-uptake: 250 pg / g dried yeast enrichment: 80-fold

18. példaExample 18

Kobalttal dúsított Candida utilis A 17. példában leírtak szerint lombikos szaporításokat végeztünk a kobalt(H)-klorid gátló hatásának, illetve a kobalt akkumuláció mértékének becslésére. Adataink a 33. táblázatban olvashatók.Cobalt Enriched Candida utilis Flask propagations were performed as described in Example 17 to estimate the inhibitory effect of cobalt (H) chloride and the degree of cobalt accumulation. See Table 33 for our data.

33. táblázatTable 33

Tápoldat Co-tartalom OD Felvett Co/biomassza (mg/dm3) (pg/g)Nutrient Co-content OD Co / biomass absorbed (mg / dm 3 ) (pg / g)

0 0 11,45 11.45 10 10 11,90 11.90 235 235 20 20 11,05 11.05 590 590 50 50 8,15 8.15 1705 1705 100 100 4,30 4.30 3410 3410 200 200 2,65 2.65 11055 11055

HU 205 379 ΒHU 205 379 Β

Mivel a kobalt(II)-klorid 50 mg/dm3, illetve efölötti Co-koncentrációknál erősen gátolta az élesztő szaporodását, fermentorban csak 20 mg/dm3 co-koncentrációval dolgoztunk. A sót a szaporodás exponenciális fázisának kezdetén egy részletben adtuk a tápoldathoz, 5 pH-szabályozás nem volt Eredményeinket a 34. táblázatban foglaltuk össze.Since cobalt (II) chloride strongly inhibited the growth of yeast at concentrations of 50 mg / dm 3 and above, only 20 mg / dm 3 of co-concentration was used in the fermentor. The salt was added in one portion at the start of the exponential phase of growth, no pH control. Our results are summarized in Table 34.

34. táblázatTable 34

Idő (h) Time (H) OD OD Co/fermentlé (mg/dm3)Co / fermentation broth (mg / dm 3 ) 0 0 1,90 1.90 __ __ 2 2 2,35 2.35 - - 3 3 2,45 2.45 19,5 19.5 5 5 2,95 2.95 11,2 11.2 7 7 3,70 3.70 9,5 9.5 9 9 4,85 4.85 9,0 9.0 11 11 5,90 5.90 8,6 8.6 24 24 17,55 17.55 8,5 8.5

Co-felvétel: 280 pg/g szárított élesztőCo-uptake: 280 pg / g dried yeast

A fermentoros szaporításnál mindkét élesztő esetében nagyságrendileg a lombikossal azonos Co-felvételt érünk el, atitercsökkenés nem jelentős.In the case of fermentation propagation, the co-uptake of both yeasts is approximately the same as that of the flask, but the reduction in atiter is not significant.

19. példa 30Example 19 30

Vanádiummal dúsított Saccharomyces cerevisiaeVanadium-enriched Saccharomyces cerevisiae

A vanádiumot különböző koncentrációkban (20, 50,Vanadium in various concentrations (20, 50,

100 és 200 mg/dm3) tartalmazó tápoldatokban szaporítva az élesztőt megvizsgáltuk, hogy jelent-e gátlást az élesztő szaporodására a tápoldat vanádiumtartalma, va- 35 lamint hogy az élesztő a különböző vanádium koncentrációjú tápoldatokből mennyi vanádiumot képes akkumulálni. A vanádiumot VOSO4 formájában adtuk a tápoldathoz. A lombikos szaporítás eredményeit a 35. táblázatban foglaltuk össze. 40When grown in medium containing 100 and 200 mg / dm 3 ), the yeast was tested for inhibition of yeast growth by the vanadium content of the medium and the amount of vanadium that the yeast was able to accumulate in media containing different concentrations of vanadium. Vanadium was added to the medium as VOSO 4 . The results of flask propagation are summarized in Table 35. 40

35. táblázatTable 35

Tápoldat V-tartalom (mg/dm3)Media V content (mg / dm 3 ) OD OD Felvett V/biomassza (pg/g) recorded V / biomass (Pg / g) 0 0 2,85 2.85 20 20 2,30 2.30 490 490 50 50 2,15 2.15 1150 1150 100 100 1,70 1.70 1740 1740 200 200 1,45 1.45 X X

x: a biomassza nem volt kinyerhető mennyiségű 55x: biomass was not recoverable 55

Fermentoros szaporításnál 50 mg/dm3 V-koncentrációval dolgoztunk. A VOSO4-sót a szaporítás exponenciális fázisának kezdetekor egy részletben adtuk a tá- gg poldathoz, pH-szabályozás nem volt. A kapott eredmények a 36. táblázatban olvashatók.Fermentation propagation was performed at a concentration of 50 mg / dm 3 V. The VOSO 4 salt was added in one portion to the rig at the start of the exponential phase of propagation, with no pH control. The results are shown in Table 36.

36. táblázatTable 36

Idő (h) Time (H) OD OD V/fermentlé (mg/dm3)V / fermentation juice (mg / dm 3 ) 0 0 0,35 0.35 - 3 3 0,40 0.40 - - 4 4 0,85 0.85 54 54 5 5 1,45 1.45 54 54 7 7 2,05 2.05 52 52 9 9 3,15 3.15 51 51 11 11 3,65 3.65 49 49 24 24 4,20 4.20 47 47

V-felvétek 1460 pg/g szárított élesztő dúsulás: 30 000-szeresV-images 1460 pg / g dried yeast enrichment: 30,000-fold

20. példaExample 20

A19. példában bemutatott eljárás azzal az eltéréssel, hogy a laboratóriumi fermentáció során a VOSCL-sót öt részletben, a szaporodás exponenciális fázisában óránként adagoltuk a tápoldathoz. Eredményeinket aA19. except that during laboratory fermentation, VOSCL salt was added to the medium in five portions during the exponential phase of growth. Our results are a

37. táblázatban foglaltuk össze.Table 37 summarizes.

37. táblázatTable 37

Idő (h) Time (H) OD OD V/fennentlé (mg/dm3)V / above (mg / dm 3 ) 0 0 0,45 0.45 - 2 2 0,60 0.60 - - 3 3 0,85 0.85 9 9 4 4 1,15 1.15 20 20 5 5 1,70 1.70 35 35 6 6 1,95 1.95 42 42 7 7 2,35 2.35 50 50 9 9 3,10 3.10 48 48 11 11 3,60 3.60 46 46 24 24 4,65 4.65 44 44

V-felvétel: 1520 pg/g szárított élesztő dúsulás: 30 000-szeresV-uptake: 1520 pg / g dried yeast enrichment: 30,000-fold

A pékélesztő vanádiumfelvétele mindkét példában extra magas vanádium-koncentrációt eredményezett a normál pékélesztő vanádiumtartalmához képest.In both examples, the vanadium uptake of baker's yeast resulted in an extremely high vanadium concentration compared to the vanadium content of normal baker's yeast.

21. példaExample 21

Vanádiummal dúsított Candida utilisCandida utilis enriched with vanadium

A 19. példában leírtak szerint lombikos szaporításokat végeztünk a VOSO4 gátló hatásának, illetve a vanádium akkumuláció mértékének becslésére. Adataink aFlask propagations were performed as described in Example 19 to estimate the inhibitory effect of VOSO 4 and the degree of vanadium accumulation. Our data a

38. táblázatban olvashatók.See Table 38.

HU 205 379 ΒHU 205 379 Β

38. táblázatTable 38

Tápoldat V-tartalom (mg/dm3)Media V content (mg / dm 3 ) OD OD Felvett V/biomassza (pg/g) Intake V / Biomass (pg / g) 0 0 9,35 9.35 - 20 20 8,75 8.75 920 920 50 50 7,50 7.50 1350 1350 100 100 5,95 5.95 1810 1810 200 200 4,60 4.60 2950 2950

Fermentoros szaporításnál a 19. példához hasonló módon, 50 mg/dm3 V-koncentrációval dolgoztunk. A VOSO4-sót a szaporítás exponenciális fázisának kezdetekor egy részletben adtuk a tápoldathoz, pH-szabályozás nem volt. Eredményeink a 39. táblázatban találhatók.For enzyme propagation, a concentration of 50 mg / dm 3 V was used as in Example 19. VOSO 4 was added in one portion to the medium at the start of the exponential phase of propagation, with no pH control. Our results are shown in Table 39.

39. táblázatTable 39

Idő (h) Time (H) OD OD V/fermentlé (mg/dm3)V / fermentation juice (mg / dm 3 ) 0 0 1,90 1.90 - 2 2 2,65 2.65 - - 3 3 3,05 3.05 49 49 5 5 4,85 4.85 41 41 7 7 10,20 10.20 36 36 9 9 14,55 14.55 27 27 11 11 18,50 18.50 22 22 24 24 24,80 24.80 15 15

V-felvétel: 1290 pg/g szárított élesztőV-uptake: 1290 pg / g dried yeast

A pékélesztőhöz hasonlóan, Candida utilis is nagyon jól akkumulálja a vanádiumot.Like baker's yeast, Candida utilis accumulates vanadium very well.

22. példaExample 22

Lítiummal dúsított Saccharomyces cerevisiae Lombikos szaporításnál megállapítottuk az alkalmazott só, ez esetben Li2SO4 esetleges gátló hatását az élesztő szaporodására. Az alkalmazott koncentrációk rendre 20, 50, 100 és 200 mg/dm3 Li voltak. A 40. táblázatban csak az élesztő szaporodását tükröző optikai denzitás (OD) értékeket mutatjuk be, mivel a Lifelvétel a 200 mg/dm3-es koncentráció kivételével a kimutatási határ alatt volt.In the case of lithium-enriched Saccharomyces cerevisiae flask growth, the potential inhibitory effect of the salt used, in this case Li 2 SO 4, on the growth of yeast was determined. The concentrations used were 20, 50, 100 and 200 mg / dm 3 Li, respectively. Table 40 shows only the optical density (OD) values reflecting the growth of yeast, since the uptake was below the limit of detection with the exception of 200 mg / dm 3 .

40. táblázatTable 40

Tápoldat Li-tartalom (mg/dm3)Media Li content (mg / dm 3 ) OD OD Felvett Li/biomassza (pg/g) Liquid uptake / biomass (pg / g) 0 0 2,85 2.85 20 20 2,85 2.85 - - 50 50 2,70 2.70 - - 100 100 2,25 2.25 - - 200 200 1,80 1.80 <5 <5

Fermentoros szaporításnál 50 mg/dm3 Li-koncentrációnak megfelelő Li2SO4-ot adunk a tápoldathoz a növekedés exponenciális fázisának kezdetén egy részletben. A szaporítás során pH-állítás nem történt. Mérési adataink a 41. táblázatban találhatók.For fermentation propagation, Li 2 SO 4 corresponding to a concentration of 50 mg / dm 3 Li is added to the culture medium at the beginning of the exponential growth phase. No pH adjustment was made during propagation. See Table 41 for our measurement data.

41. táblázatTable 41

Idő (h) Time (H) OD OD Li/fermentlé (mg/dm3)Li / fermentation juice (mg / dm 3 ) 0 0 0,30 0.30 3 3 0,45 0.45 - - 4 4 0,60 0.60 48 48 6 6 0,95 0.95 45 45 8 8 2,35 2.35 44 44 10 10 3,05 3.05 43 43 12 12 3,80 3.80 43 43 24 24 4,50 4.50 45* * 45

Li-felvétel: 8 pg/g szárított élesztő dúsulás: 800-szoros *: koncentráció-növekedés a sejtek autolízisével magyarázhatóLi uptake: 8 pg / g dried yeast enrichment: 800-fold *: increase in concentration explained by cell autolysis

Az élesztő lítiumfelvétele fermentorban is 10 pg/g alatt marad, viszont a normál pékélesztő Li-tartalmához viszonyítva ez az érték többszázszoros dúsulást jelent.The lithium uptake of the yeast in the fermentor remains below 10 pg / g, but this value represents an increase of several hundred times that of the normal content of the normal yeast Li.

23. példaExample 23

Lítiummal dúsított Candida utilisLithium-enriched Candida utilis

A 22. példában leírtak szerint lombikos szaporításokat végeztünk a Li2SO4 gátló hatásának, ill. a lítium akkumuláció mértékének becslésére. Adataink a 42. táblázatban olvashatók.As described in Example 22, flask propagations were performed to inhibit or inhibit Li 2 SO 4 inhibition. to estimate the degree of lithium accumulation. See Table 42 for our data.

42. táblázatTable 42

Tápoldat Li-tartalom (mg/dm3)Media Li content (mg / dm 3 ) OD OD Felvett Li/biomassza (pg/g) recorded Li / biomass (Pg / g) 0 0 10,15 10.15 20 20 11,20 11.20 34 34 50 50 11,45 11.45 75 75 100 100 13,60 13.60 96 96 200 200 11,40 11.40 93 93

A takarmányélesztő szaporodását nem gátolta a Li2SO4, így fermentoros szaporításnál 200 mg/dm3 Li-koncentrációval dolgoztunk (43. táblázat). A sót a növekedés exponenciális fázisának kezdetén egy részletben adtuk a tápoldathoz, pH-szabályozás nem volt.The growth of feed yeast was not inhibited by Li 2 SO 4 , so for fermentation growth we used Li concentration of 200 mg / dm 3 (Table 43). The salt was added in one portion at the beginning of the exponential phase of growth, with no pH control.

HU 205379 ΒHU 205379 Β

43.táblázat43.táblázat

Idő (h) Time (H) OD OD Li/fermentlé (mg/dm3)Li / fermentation juice (mg / dm 3 ) 0 0 1,80 1.80 - 2 2 2,45 2.45 - - 3 3 2,65 2.65 205 205 5 5 3,75 3.75 200 200 7 7 8,60 8.60 200 200 9 9 12,40 12.40 198 198 12 12 14,45 14.45 200 200 24 24 17,90 17.90 196 196

Li-felvétel: 70 gg/g szárított élesztőLi uptake: 70 yg / g dried yeast

A takarmányélesztő szaporodását a pékélesztővel ellentétben nem gátolta a LÍ2SO4, s a Li-felvétel is nagyobb mértékű.In contrast to the baker's yeast, the growth of feed yeast was not inhibited by L2SO4, and the uptake of Li was also higher.

24. példaExample 24

Arzénnel dúsított Saccharomyces cerevisíaeArsenic-enriched Saccharomyces cerevisíae

Lombikos szaporításnál megállapítottuk az alkalmazott só, ez esetben nátrium-arzenit esetleges gátló hatását az élesztő szaporodására. Az alkalmazott koncentrációk rendre 10, 20, 50 és 100 mg/dm3 As voltak. A 44. táblázatban az optikai denzitás (OD) értékek mellett feltüntettük az élesztőminták arzéntartalmát is.In the case of flask growth, the possible inhibitory effect of the salt used, in this case sodium arsenite, on the growth of yeast was determined. The concentrations used were 10, 20, 50 and 100 mg / dm 3 As, respectively. Table 44 shows the arsenic content of the yeast samples in addition to the optical density (OD) values.

44. táblázatTable 44

Tápoldat As-tartalom (mg/dm3)Media As content (mg / dm 3 ) OD OD Felvett As/biomassza (gg/g) recorded As / biomass (Gg / g) 0 0 2,85 2.85 - 10 10 2,90 2.90 95 95 20 20 2,55 2.55 175 175 50 50 2,20 2.20 330 330 100 100 2,05 2.05 885 885

Az arzenit gátló hatása miatt fermentoros szaporításhoz az 50 mg/dm3 As-koncentrációt választottuk. A nátrium-arzenitet a megfelelő koncentrációban a szaporodás exponenciális fázisának kezdetén adtuk a tápoldathoz (45. táblázat). ApH-t nem szabályoztuk. 45. táblázatDue to the inhibitory effect of arsenite, 50 mg / dm 3 As concentration was chosen for fermentation propagation. Sodium arsenite was added to the medium at the appropriate concentration at the start of the exponential phase of growth (Table 45). ApH was not regulated. Table 45 Idő (h) Time (H) OD OD As/fermentlé (mg/dm3)As / fermentation juice (mg / dm 3 ) 0 0 0,45 0.45 2 2 0,60 0.60 - - 3 3 0,95 0.95 54 54 5 5 2,35 2.35 54 54 7 7 3,65 3.65 52 52 9 9 4,50 4.50 51 51

Idő (h) Time (H) OD OD As/fermentlé (mg/dm3)As / fermentation juice (mg / dm 3 ) 11 11 4,85 4.85 51 51 24 24 5,25 5.25 48 48

As-felvétel: 230 gg/g szárított élesztő dúsulás: 200-szeresAs-uptake: 230 yg / g dried yeast enrichment: 200-fold

25. példaExample 25

Arzénnel dúsított Saccharomyces cerevisíae A 24. példában leírtak szerint járunk el azzal a különbséggel, hogy nátrium-arzenit helyett nátrium-arzenátot alkalmaztunk As-forrásként.Arsenic Enriched Saccharomyces cerevisíae The procedure described in Example 24 was followed, except that sodium arsenate was used as the source of As instead of sodium arsenite.

46. táblázatTable 46

Tápoldat As-tartalom (mg/dm3)Media As content (mg / dm 3 ) OD OD Felvett As/biomassza (gg/g) Utilized As / Biomass (gg / g) 0 0 2,85 2.85 - 10 10 2,95 2.95 215 215 20 20 2,20 2.20 405 405 50 50 2,55 2.55 940 940 100 100 2,30 2.30 1720 1720

Az arzenát gátló hatása miatt fermentoros szaporításhoz az 50 mg/dm3 As-koncentráciőt választottuk. A nátrium-arzenátot a megfelelő koncentrációban a szaporodás exponenciális fázisának kezdetén adtuk a tápoldatot (47. táblázat). ApH-tnem szabályoztuk.Due to the inhibitory effect of arsenate, 50 mg / dm 3 As concentration was chosen for fermentation growth. Sodium arsenate was added at appropriate concentrations at the start of the exponential phase of growth (Table 47). ApH was not regulated.

47. táblázatTable 47

Idő (h) Time (H) OD OD As/fermentlé (mg/dm3)As / fermentation juice (mg / dm 3 ) 0 0 0,40 0.40 - 2 2 0,75 0.75 - - 3 3 0,95 0.95 50 50 5 5 1,35 1.35 51 51 7 7 2,70 2.70 51 51 9 9 3,55 3.55 49 49 11 11 4,05 4.05 48 48 24 24 4,60 4.60 47 47 As-felvétel 4,80 gg/g szárított élesztő dúsulás: 400-szoros As-up 4.80 gg / g dried yeast enrichment: 400-fold

A24. és 25. példában bemutatott szaporításoknál az As kismértékben gátolta az élesztő szaporodását, viszont az As felvétele kielégítő volt. Nátrium-arzenáttal jobb akkumulációt sikerült elérni, mint nátrium-arzenittel.A24. and 25, As inhibited slightly the growth of yeast but uptake of As was satisfactory. Sodium arsenate had a better accumulation than sodium arsenite.

26. példaExample 26

Szilíciummal dúsított Saccharmyces cerevisíaeSilicon-enriched Saccharmyces cerevisíae

Lombikos szaporításnál megállapítottuk az alkalma14In the case of flask propagation we have found the occasion14

HU 205 379 Β zott só, ez esetben nátrium-szilikát esetleges gátló hatását az élesztő szaporodására. Az alkalmazott koncentrációk rendre 40,200, 400 és 800 mg/dm* 2 3 Si voltak. A 48. táblázatban az optikai denzitás (OD) értékek mellett feltüntettük az élesztőminták szilíciumtartalmát is.EN 205 379 salt, in this case sodium silicate, to inhibit the growth of yeast. The concentrations used were 40,200, 400 and 800 mg / dm * 2 3 Si, respectively. Table 48 also shows the silicon content of the yeast samples in addition to the optical density (OD) values.

48. táblázatTable 48

Tápoldat Si-tartalom (mg/dm3)Media Si content (mg / dm 3 ) OD OD Felvett Si/biomassza (pg/g) Utilized Si / Biomass (pg / g) 0 0 3,15 3.15 - 40 40 3,30 3.30 710 710 200 200 3,45 3.45 795 795 400 400 3,50 3.50 1250 1250 800 800 3,80 3.80 1620 1620

Fermentorban először 50 mg/dm3 Si-koncentrációnál végeztünk szaporítást. A megfelelő mennyiségű nátriumszilikátot a növekedés exponenciális fázisának a kezdetén adtuk a tápoldathoz egy részletben, pH-szabályozás nem történt. Adataink a 49. táblázatban olvashatók.The fermentation was first carried out at 50 mg / dm 3 Si concentration. The appropriate amount of sodium silicate was added in one portion at the beginning of the exponential phase of growth and no pH control was performed. See Table 49 for our data. 49. táblázat Table 49 Idő Time OD OD Si/fermentlé Si / broth (h) (H) (mg/dm3)(mg / dm 3 ) 0 0 0,35 0.35 - 2 2 0,40 0.40 - - 3 3 0,60 0.60 52 52 4 4 0,80 0.80 51 51 6 6 1,40 1.40 48 48 8 8 2,85 2.85 45 45 10 10 3,10 3.10 44 44 12 12 3,90 3.90 42 42 24 24 4,60 4.60 38 38

Si-felvétel: 1160 gg/g szárított élesztő dúsulás: 40-szeresSi uptake: 1160 gg / g dried yeast enrichment: 40 fold

27. példaExample 27

Szilíciummal dúsított Saccharomyces cerevisiae Fermentoros szaporítás Si-kiegészítéssel a 26. példában bemutatott módon azzal a különbséggel, hogy a nátrium-szilikátból 100 mg/dm3 Si-nak megfelelő mennyiséget adagoltunk a tápoldatba. Mérési eredményeinket az 50. táblázatban foglaltuk össze.Silicon-enriched Saccharomyces cerevisiae Fermentor growth by Si supplementation as described in Example 26, except that 100 mg / dm 3 Si of sodium silicate was added to the medium. The measurement results are summarized in Table 50.

50. táblázatTable 50

Idő OD Si/fermentlé (h) (mg/dm3)Time OD Si / fermentation broth (h) (mg / dm 3 )

0,300.30

0,400.40

0,55 1030.55 103

0,90 100.90 10

Idő (h) Time (H) OD OD Si/fermentlé (mg/dm3)Si / fermentation juice (mg / dm 3 ) 7 7 1,25 1.25 98 98 9 9 2,60 2.60 95 95 11 11 3,50 3.50 92 92 24 24 4,65 4.65 89 89

Si-felvétel: 3200 gg/g szárított élesztő dúsulás: 100-szorosSi uptake: 3200 gg / g dried yeast enrichment: 100 fold

Mindkét példa azt tükrözi, hogy jól levegőztetett fermentorban szaporítva az élesztő jobban felveszi a szilíciumot, mint rázatott lombikos növekedésnél. A Si-felvétel az előbbi esetben közel arányos a bevitt mennyiséggel.Both examples show that, when grown in a well-aerated fermentor, yeast absorbs more silicon than shake flask growth. The Si uptake in the former case is almost proportional to the amount administered.

28. példaExample 28

Titánnal dúsított Saccharomyces cerevisiaeTitanium enriched Saccharomyces cerevisiae

Lombikos szaporítás során megvizsgáltuk a Ti-forrásként alkalmazott titán-aszkorbát kelát esetleges növekedésgátló hatását, valamint azt, hogy az élesztő képes-e sejtjeiben akkumulálni a titánt. A titán-aszkorbátot olyan mennyiségben adagoltuk a tápoldathoz, hogy a kialakított Ti-koncentrációk rendre a következők voltak: 10, 50, 100 és 200 mg/dm3. Eredményeink az 51. táblázatban olvashatók.During growth in flasks, we examined the potential growth inhibitory effect of Ti-source titanium ascorbate chelate and the ability of yeast to accumulate titanium in its cells. The titanium ascorbate was added in an amount such that the Ti concentrations were 10, 50, 100 and 200 mg / dm 3, respectively . See Table 51 for our results.

51. táblázatTable 51

Tápoldat Ti-tartalom (mg/dm3)Media Ti content (mg / dm 3 ) OD OD Felvett Ti/biomassza (pg/g) Ti / biomass uptake (pg / g) 0 0 3,45 3.45 10 10 3,30 3.30 540 540 50 50 3,50 3.50 8560 8560 100 100 3,40 3.40 15 370 15,370 200 200 3,05 3.05 25 310 25,310

Feimentorba 20 mg/dm3 Ti-Összmennyiséget vittünk be, a növekedés exponenciális szakaszának kezdetétől számított 2 órán belül. Az élesztő azonnal asszimilálta a titán-aszkorbátot, amint az az 52. táblázat adataiból jól követhető. A szaporítás során a pH-t 4-es értéken20 mg / dm 3 of Ti-Total was added to the Feimentor within 2 hours of the onset of the exponential growth phase. Titanium ascorbate was immediately assimilated by yeast, as can be seen from Table 52. During propagation, the pH was set at 4 tartottuk. We maintained. 52. táblázat Table 52 Idő Time OD OD Ti/fermentlé Ti / broth (h) (H) (mg/dm3)(mg / dm 3 ) 0 0 0,30 0.30 2 2 0,45 0.45 - 3 3 0,70 0.70 2,4 2.4 4 4 1,15 1.15 1,8 1.8 5 5 1,60 1.60 4,5 4.5 6 6 2,30. 2.30. 3,7 3.7 7 7 2,75 2.75 3,5 3.5

HU 205 379 ΒHU 205 379 Β

Idő (h) Time (H) OD OD Ti/fermentlé (mg/dm3)Ti / fermentation broth (mg / dm 3 ) 9 9 3,90 3.90 3,5 3.5 11 11 4,35 4.35 3,2 3.2 24 24 4,85 4.85 3,5 3.5

Ti-felvétel: 1500 gg/g szárított élesztő dúsulás: kb. 1000-szeresTi uptake: 1500 gg / g dried yeast enrichment: approx. 1000x

29. példaExample 29

Tellúrral dúsított Saccharomyces cerevisiae Lombikos szaporításnál megállapítottuk az alkalmazott só, ez esetben kálium-tellurit esetleges gátló hatását az élesztő szaporodására. Az alkalmazott koncentrációk rendre 5,10,20 és 50 mg/dm3 Te voltak. Az 53. táblázatban az optikai denzitás (OD) értékek mellett feltűntettük az élesztőminták tellúrtartalmát is.Tellurium-enriched Saccharomyces cerevisiae Flask growth revealed the potential inhibitory effect of the salt used, in this case potassium telluride, on the growth of yeast. The concentrations used were 5,10,20 and 50 mg / dm 3 Te, respectively. Table 53 also shows the tellurium content of the yeast samples in addition to the optical density (OD) values.

53. táblázatTable 53

Tápoldat Te-tartalom (mg/dm3)Nutrient solution Te content (mg / dm 3 ) OD OD Felvett Te/biomassza (gg/g) recorded You / biomass (Gg / g) 0 0 3,10 3.10 - 5 5 2,85 2.85 1050 1050 10 10 3,00 3.00 1750 1750 20 20 2,95 2.95 3170 3170 50 50 2,35 2.35 3240 3240

Fermentoros szaporításnál 20 mg/dm3 Te-koncentráciőt állítottunk be a szaporodás exponenciális fázisának kezdetén. A pH-t nem szabályoztuk. Mérési adatainkat az 54. táblázatban foglaltuk Össze.For enzyme growth, a Te concentration of 20 mg / dm 3 was set at the start of the exponential phase of growth. The pH was not controlled. Our measurement data are summarized in Table 54.

54. táblázat Table 54 Idő (h) Time (H) OD OD Te/fermenüé (mg/dm3)You / fermene (mg / dm 3 ) 0 0 0,35 0.35 2 2 0,50 0.50 - - 3 3 0,95 0.95 21 21 5 5 1,75 1.75 20 20 7 7 3,10 3.10 14 14 9 9 3,45 3.45 15 15 11 11 3,65 3.65 14 14 24 24 3,95 3.95 14 14

Te-felvéteh 2150 gg/g szárított élesztő dúsulás: 2000-szeresTe-uptake 2150 gg / g dried yeast enrichment: 2000 times

Az adatokból kitűnik, hogy a kálium-tellurit formájában tápoldatba vitt Te kismértékben gátolja a pékélesztő szaporodását, ugyanakkor jól felszívódik a sejtekben.The data indicate that Te, when added to culture medium in the form of potassium telluride, slightly inhibits the growth of baker's yeast, but is well absorbed by the cells.

30. példaExample 30

Nikkellel dúsított Saccharomyces cerevisiae Lombikos szaporításnál megállapítottuk a Ni-forrásként alkalmazott nikkel-szulfát esetleges gátló hatását az élesztő szaporodására. Az alkalmazott koncentrációk rendre 10,· 20, 50, 100 és 200 mg/dm3 Ni voltak. Az 55. táblázatban az optikai denzitás (OD) értékek mellett feltüntettük az élesztőminták nikkeltartalmát is.When nickel-enriched Saccharomyces cerevisiae Flask growth was used, the potential inhibitory effect of nickel sulfate nickel sulfate on yeast growth was determined. The concentrations used were 10, 20, 50, 100 and 200 mg / dm 3 Ni, respectively. Table 55 shows the nickel content of the yeast samples in addition to the optical density (OD) values.

55. táblázatTable 55

Tápoldat Ni-tartalom (mg/dm3)Media Ni content (mg / dm 3 ) OD OD Felvett Ni/bíomassza (gg/g) recorded Ni / biomass (Gg / g) 0 0 2,95 2.95 10 10 3,30 3.30 375 375 20 20 2,90 2.90 760 760 50 50 2,45 2.45 910 910 100 100 1,85 1.85 3750 3750 200 200 1,20 1.20 X X

x: nem volt kinyerhető mennyiségű biomasszax: there was no biomass available

A nagymérvű szaporodásgátlás miatt fermentorban 20 mg/dm3 Nl-koncentráciőnak megfelelő nikkel-szulfátot adagoltunk. Az adagolás egy részletben történt a növekedés exponenciális fázisának kezdetén, pH-szabályozás nem volt (56. táblázat).Due to the high degree of growth inhibition, a nickel sulfate corresponding to a concentration of 20 mg / dm 3 Nl was added to the fermentor. The dosing was done in one increment at the start of the exponential phase of growth with no pH control (Table 56). 56. táblázat Table 56 Idő Time OD OD Ni/fermentlé Ni / broth (h) (H) (mg/dm3)(mg / dm 3 ) 0 0 0,45 0.45 - 2 2 0,55 0.55 - - 3 3 0,70 0.70 18 18 5 5 1,10 1.10 16 16 7 7 1,95 1.95 15 15 9 9 3,10 3.10 11 11 11 11 3,80 3.80 10 10 24 24 5,30 5.30 11 11

Ní-felvétel: 290 gg/g szárított élesztő dúsulás: 250-szeresNi uptake: 290 gg / g dried yeast enrichment: 250 times

31. példaExample 31

Céziummal dúsított Saccharomyces cerevisiae Lombikos szaporításnál megállapítottuk a Cs-forrásként alkalmazott cézium-klorid esetleges gátló hatását az élesztő szaporodására. Az alkalmazott koncentrációk rendre 10, 20, 50, 100 és 200 mg/dm3 Cs voltak. Az 57. táblázatban az optikai denzitás (OD) értékek mellett feltüntettük az élesztőminták céziumtartalmát is.In cesium-enriched Saccharomyces cerevisiae Flask growth, a possible inhibitory effect of Cs-source cesium chloride on the growth of yeast was determined. The concentrations used were 10, 20, 50, 100 and 200 mg / dm 3 Cs, respectively. Table 57 shows the cesium content of the yeast samples in addition to the optical density (OD) values.

HU 205 379 ΒHU 205 379 Β

57. táblázatTable 57

Tápoldat Cs-tartalom (mg/dm* 2 3 4)Media Cs content (mg / dm * 2 3 4 ) OD OD Felvett Cs/biomassza (pg/g) Cs / biomass uptake (pg / g) 0 0 2,95 2.95 - 10 10 2,80 2.80 42 42 20 20 2,85 2.85 65 65 50 50 2,80 2.80 163 163 100 100 2,80 2.80 225 225 200 200 2,75 2.75 230 230

Fermentorban 100 mg/dm3 Cs-koncentráció mellett szaporítottuk a pékélesztőt. Az adagolás a növekedés exponenciális fázisának kezdetén történt, a pH-t nem állítottuk. Eredményeinket az 58. táblázatban foglaltukIn yeast fermentation, baker's yeast was grown at a concentration of 100 mg / dm 3 Cs. The addition was made at the beginning of the exponential phase of growth and the pH was not adjusted. The results are shown in Table 58

össze. together. 58. táblázat Table 58 Idő (h) Time (H) OD OD Cs/fermentlé (mg/dm3)Cs / fermentation juice (mg / dm 3 ) 0 0 0,35 0.35 2 2 0,40 0.40 - - 3 3 0,55 0.55 100 100 5 5 1,15 1.15 100 100 7 7 2,45 , 2.45, 98 98 9 9 3,25 3.25 100 100 11 11 3,95 3.95 95 95 24 24 5,30 5.30 95 95

Cs-felvétel: 120 pg/g szárított élesztő dúsulás: 100-szorosCs uptake: 120 pg / g dried yeast enrichment: 100 fold

Fermentoros szaporításnál a lombikban mért akkumulációnak csak a felét sikerült elérni, nagyságrendileg azonban azonos mértékű a cézium feldúsulása.In the case of fermentation propagation, only half of the accumulation in the flask was achieved, but the degree of cesium enrichment was the same.

32. példaExample 32

Rubídiummal dúsított Saccharomyces cerevisiaeRubidium enriched Saccharomyces cerevisiae

Rubídiummal nem végeztünk lombikos előkísérletet, mivel fizikai és kémiai tulajdonságai, valamint biokémiai viselkedése hasonló a céziuméhoz.Rubidium was not pre-tested in a flask because its physical and chemical properties and biochemical behavior are similar to those of cesium.

Fermentoros szaporításnál a 31. példában leírtakhoz hasonlóan jártunk el, azzal a különbséggel, hogy Rbforrásként rubídium- kloridot alkalmaztunk, s a bevitt Rb-mennyiség 200 mg/dm3 volt. Adataink az 59. táblázatban láthatók.For enzyme propagation, the procedure described in Example 31 was followed except that rubidium chloride was used as the Rb source and the amount of Rb introduced was 200 mg / dm 3 . See Table 59 for our data.

59. táblázatTable 59

Idő OD Rb/fermentlé (h) (mg/dm3)Time OD Rb / fermentation broth (h) (mg / dm 3 )

0,400.40

0,450.45

0,55 2020.55,202

0,90 2040.90.204

6 6 1,35 1.35 201 201 8 8 2,75 2.75 198 198 10 10 3,40 3.40 198 198 12 12 4,50 4.50 196 196 24 24 5,70 5.70 195 195

Rb-felvétel: 300 pg/g szárított élesztő dúsulás: 300-szorosRb uptake: 300 pg / g dried yeast enrichment: 300 fold

A rubídiummal történő dúsítás a vártnak megfelelően alakult, a pékélesztő százas nagyságrendben vette föl a fémet, hasonlóan a céziumhoz. A tényleges titer a nagyobb adagolási koncentrációnak megfelelően nagyobb érték, mint a céziumnál.Rubidium enrichment developed as expected, baker yeast picking up metal in the order of hundreds, similar to cesium. The actual titer at higher dosing concentrations is higher than that of cesium.

33. példaExample 33

Jóddal dúsított Saccharomyces cerevisiaeIodine-enriched Saccharomyces cerevisiae

Lombikos szaporításnál megállapítottuk a jódforrásként alkalmazott kálium-jodid esetleges gátló hatását az élesztő szaporodására. Az alkalmazott koncentrációk rendre 50, 100, 200 és 500 mg/dm31 voltak. Mivel a kálium-jodid a fenti koncentrációkban nem befolyásolta az élesztő szaporodását, s a kinyert biomassza nem volt elegendő a jódtartalmú meghatározásához, csak a fermentoros eredményeket mutatjuk be táblázatosán.In the case of flask propagation, the possible inhibitory effect of potassium iodide as a source of iodine on the growth of yeast was determined. The concentrations used were 50, 100, 200 and 500 mg / dm 3, respectively. Since potassium iodide at the above concentrations did not influence the growth of yeast and the recovered biomass was not sufficient to determine the iodine content, only the fermentor results are tabulated.

Fermentorban 200 mg/dm31 adagolás mellett szaporítottuk az élesztőt, az adagolás egy részletben történt a növekedés exponenciális fázisának kezdetén. A folyamatban pH-szabályozás nem volt. Adataink a 60. táblázatban láthatók.The yeast was grown in a fermenter at a dose of 200 mg / dm 3 , and was added in one increment at the start of the exponential phase of growth. There was no pH control in the process. Table 60 shows our data.

60. táblázatTable 60

Idő (h) Time (H) OD OD I/fermentlé (mg/dm3)I / ml of fermentation broth (mg / dm 3 ) 0 0 0,35 0.35 2 2 0,45 0.45 - - 3 3 0,70 0.70 205 205 5 5 2,30 2.30 205 205 7 7 3,95 3.95 203 203 9 9 4,60 4.60 200 200 11 11 5,15 5.15 198 198 24 24 5,65 5.65 196 196

I-felvétel: 80 pg/g szárított élesztő dúsulás: kb. 60-szorosI-uptake: 80 pg / g dried yeast enrichment: approx. 60 times

34. példaExample 34

Fluorral dúsított Saccharomyces cerevisiae Lombikos szaporításnál megállapítottuk a F-forrásként alkalmazott nátrium-fluorid esetleges gátló hatását az élesztő szaporodására. Az alkalmazott koncentrációk rendre 5, 10, 20 és 50 mg/dm3 F voltak. A 61. táblázatban csak az optikai denzitás (OD) értékeket tüntettük fel, mivel a kevés biomasszából nem volt mérhető a fluortartalom.Fluoride-enriched Saccharomyces cerevisiae Flask growth revealed the potential inhibitory effect of F-source sodium fluoride on yeast growth. The concentrations used were 5, 10, 20 and 50 mg / dm 3 F, respectively. Only optical density (OD) values are shown in Table 61, since fluorine content could not be measured from the low biomass.

HU 205 379 ΒHU 205 379 Β

61. táblázatTable 61

Tápoldat F-tartalom (mg/dm3)Media F content (mg / dm 3 ) OD OD Felvett F/biomassza (gg/g) Intake F / biomass (gg / g) 0 0 3,25 3.25 - 5 5 2,70 2.70 X X 10 10 2,05 2.05 X X 20 20 1,45 1.45 X X 50 50 0,90 0.90 X X

x: nem. volt kinyerhető mennyiségű biomasszax: no. was able to extract biomass

Fermentorban 20 mg/dm3 F-koncentráció mellett szaporítottuk a pékélesztőt. Az adagolás a növekedés exponenciális fázisának kezdetétől négy részletben történt óránként, a pH-t nem állítottuk. Eredményeinket aBaker yeast was grown in fermenter at 20 mg / dm 3 F concentration. Dosing was performed in four increments every hour from the start of the exponential phase of growth, and the pH was not adjusted. Our results are a

62. táblázatban foglaltuk össze.Table 62 below.

62. táblázatTable 62

Idő (h) Time (H) OD OD F/fermentlé (mg/dm3)F / fermentation juice (mg / dm 3 ) 0 0 0,40 0.40 2 2 0,55 0.55 - - 3 3 1,05 1.05 7 7 4 4 1,35 1.35 11 11 5 5 1,45 1.45 15 15 6 6 1,55 1.55 18 18 7 7 1,70 1.70 15 15 9 9 1,85 1.85 14 14 11 11 2,15 2.15 14 14 24 24 2,60 2.60 12 12

F-felvétel: 96 gg/g szárított élesztő dúsulás: 90-szeresF-uptake: 96 gg / g dried yeast enrichment: 90-fold

35. példaExample 35

Fluorral dúsított Saccharomyces cerevisiae A 34. példában leírt eljárás azzal a különbséggel, hogy nátrium-fluorid helyett ammónium-fluoridot adtunk fluor-forrásként a tápoldathoz. A lombikos szaporítás mérési adatait a 63. táblázatban adtuk meg.Fluorine Enriched Saccharomyces cerevisiae The procedure described in Example 34, except that ammonium fluoride was added to the culture medium as a source of fluorine instead of sodium fluoride. Measurement data for flask propagation are shown in Table 63.

63. táblázatTable 63

Tápoldat F-tartalom (mg/dm3)Media F content (mg / dm 3 ) OD OD Felvett F/biomassza (gg/g) Intake F / biomass (gg / g) 0 0 3,75 3.75 10 10 3,45 3.45 17 17 20 20 2,90 2.90 40 40 50 50 1,75 1.75 X X

x: nem volt kinyerhető mennyiségű biomasszax: there was no biomass available

Fermentoros szaporításnál is a 34. példában bemutatott eljárás szerint dolgoztunk. Az ammónium-fluoridot olyan mennyiségben adtuk négy részletben a tápoldathoz, hogy a fluor-koncentráció összesen 20 mg/dm3 volt. Mérési eredményeinket a 64. táblázatban szemléltetjük.Also for enzyme propagation, the procedure described in Example 34 was followed. Ammonium fluoride was added in four portions to the medium so that the total fluorine concentration was 20 mg / dm 3 . The measurement results are shown in Table 64.

64. táblázatTable 64

Idő (h) Time (H) OD OD F/fermentlé (mg/dm3)F / fermentation juice (mg / dm 3 ) 0 0 0,50 0.50 2 2 0,65 0.65 - 3 3 1,45 1.45 4 4 4 4 2,00 2.00 7 7 5 5 2,60 2.60 11 11 6 6 2,75 2.75 15 15 7 7 3,10 3.10 14 14 9 9 3,55 3.55 15 15 11 11 3,80 3.80 14 14 24 24 3,65 3.65 14 14

F-felvétel: 58 gg/g szárított élesztő dúsulás: 50-szeresF-uptake: 58 gg / g dried yeast enrichment: 50-fold

A jóddal ellentétben a fluor erősen gátolta a pékélesztő szaporodását, fokozatos adagolással azonban mindkét halogénelemet sikerült feldúsítani az élesztő sejtjeiben.In contrast to iodine, fluorine strongly inhibited the growth of baker's yeast.

Claims (1)

SZABADALMI IGÉNYPONTPATIENT PERSONALITY Eljárás mikroelemekkel, éspedig vassal, rézzel, cinkkel, mangánnal, molibdénnel, kobalttal, vanádiummal, lítiummal, arzénnel, szilíciummal, titánnal, tellúrral, nikkellel, céziummal, rubidiummal, jóddal vagy fluorral dúsított élesztők, különösen Saccharomyces cerevisiae vagy Candida utilis előállítására, azzaljellemezve, hogy megállapítjuk, hogy az adott mikroelem esetében annak mely sóját kell alkalmazni, a só milyenségét és mennyiségét a mikroelem adott sójának a szaporodásra gyakorolt hatásának függvényében választva meg; majd az élesztősejteket megfelelő tápoldatban ismert módon szaporítjuk, miközben a mikroelem kiválasztott vízoldhatő sóját a tápoldattal együtt vagy szaporítás közben az exponenciális fázis kezdetén vagy az exponenciális fázisban, egyszerre vagy több részletben vagy folyamatosan adagoljuk, előzőleg meghatározva az adagolt részlet mennyiségét, az adagolás módját és idejét; szaporítás után a sejttömeget elválasztjuk, vízzel mossuk, szűrjük, és kívánt esetben szárítjuk, amelyen belülProcess for the production of micronutrients, namely iron, copper, zinc, manganese, molybdenum, cobalt, vanadium, lithium, arsenic, silicon, titanium, tellurium, nickel, cesium, rubidium, iodine or fluorine enriched yeast, in particular Saccharomyces cerevisiae or Candida utilis. to determine which salt of the particular micro-nutrient is to be used, the nature and amount of the salt selected depending on the effect of the particular salt of the microelement on reproduction; then the yeast cells are propagated in a known medium in a manner known per se, while the selected water soluble salt of the microelement together with the nutrient solution or during the propagation at the beginning of the exponential phase or in the exponential phase, simultaneously or in several portions or continuously, predetermined the amount of the administered portion, the mode of administration and time. ; After propagation, the cell mass is separated, washed with water, filtered and, if desired, dried, within which a) vassal dúsított élesztő esetében vas(II)-szulfátot vagy vas(fll)-citrátot vagy vas(IH)-ammónium-citrátot alkalmazunk 50-100 mg Fe/dm3 tápoldat mennyiségében, és azt egyszerre adagoljuk a szaporítás kezdetén az élesztők bármelyikénél;a) In the case of iron-enriched yeast, iron (II) sulphate or iron (fll) citrate or iron (1H) -ammonium citrate is used in an amount of 50-100 mg Fe / dm 3 medium and is added at the beginning of the propagation at any of the yeasts. ; b) rézzel dúsított élesztő esetében réz(H)-szulfátot alkalmazunk 3-15 mg Cu/dm? tápoldat mennyiségbenb) For copper-enriched yeast, copper (H) sulfate is used at 3-15 mg Cu / dm? stock solution HU 205 379 ΒEN 205 379 Β S. cerevisiae-nél, és azt egyszerre adagoljuk az exponenciális fázis kezdetén vagy több részletben az exponenciális fázisban, és 50-100 mg Cu/dm3 tápoldat mennyiségben egyszerre adagolva az exponenciális fázis kezdetén Candida utilis-nél;S. cerevisiae and is administered simultaneously at the beginning of the exponential phase or in multiple portions in the exponential phase and at a dose of 50-100 mg of Cu / dm 3 medium at the start of the exponential phase at Candida utilis; c) cinkkel dúsított élesztő esetében cink-szulfátot használunk 10-250 mg Zn/dm3 tápoldat mennyiségben, és azt egyszerre adagoljuk az exponenciális fázis kezdetén S. cerevisiae-nél és C. utilis-nél;c) for zinc-enriched yeast, zinc sulfate is used in an amount of 10-250 mg of Zn / dm 3 medium and is administered simultaneously at the beginning of the exponential phase at S. cerevisiae and C. utilis; d) mangánnal dúsított élesztő esetében mangán-szulfátot alkalmazunk 50-150 mg Μη/dm3 tápoldat mennyiségben és azt 3-5 részletben adagoljuk az exponeneciális fázisban S. cerevisiae-nél és 50-300 mg Μη/dm3 tápoldat mennyiségben egyszerre adagolva az exponenciális fázis kezdetén Candida utilis-nél;d) in the case of manganese-enriched yeast, manganese sulphate is used in an amount of 50-150 mg Μη / dm 3 and is added in 3 to 5 increments in the exponential phase at S. cerevisiae and 50-300 mg Μη / dm 3 at the same time, exponentially administered. at the beginning of the phase at Candida utilis; e) molibdénnel dúsított élesztő esetén ammónium-molibdenátot alkalmazunk 10-300 mg Mo/dm3 tápoldat mennyiségben, és azt egyszerre adagoljuk az exponenciális fázis kezdetén S. cerevisiae-nél és C. utilisnél;e) in the case of molybdenum-enriched yeast, ammonium molybdenum is used in an amount of 10-300 mg Mo / dm 3 medium and is administered simultaneously at the beginning of the exponential phase at S. cerevisiae and C. utilis; f) kobalttal dúsított élesztő esetén kobalt(II)-kloridot alkalmazunk 10-100 mg Co/dm3 tápoldat mennyiségben, és azt 3-5 részletben adagoljuk az exponenciális fázisban S. cerevisiae-nél és egyszerre adagijuk az exponenciális fázis kezdetén Candida utilisnél;f) in the case of cobalt-enriched yeast, cobalt (II) chloride is used in an amount of 10 to 100 mg of Co / dm 3 medium and is administered in 3-5 portions in the exponential phase at S. cerevisiae and administered simultaneously at the beginning of the exponential phase at Candida utilis; g) vanádiummal dúsított élesztő esetén vanadil-szulfátot használunk 20-100 mg V/dm3 tápoldat mennyiségben, és azt egyszerre adagoljuk az exponenciális fázis kezdetén vagy 3-5 részletben az exponenciális fázisban S. cerevisiae-nél és C. utilis-nél;g) for vanadium-enriched yeast, vanadyl sulfate is used in an amount of 20-100 mg of V / dm 3 medium and is administered simultaneously at the start of the exponential phase or in 3-5 portions in the exponential phase at S. cerevisiae and C. utilis; h) lítiummal dúsított élesztő esetén lítium-szulfátot alkalmaztunk, és azt egyszerre adagoljuk az exponenciális fázis kezdetén 50-100 mg Li/dm3 tápoldat mennyiségben S. cerevisiae-nél és 50-300 mg Li/dm3 tápoldat mennyiségben Candida utilis-nél;h) for lithium-enriched yeast, lithium sulfate was used and co-administered at the beginning of the exponential phase in an amount of 50-100 mg Li / dm 3 medium at S. cerevisiae and 50-300 mg Li / dm 3 medium at Candida utilis; i) arzénnel dúsított élesztő esetén nátrium-arzenitet vagy nátrium-arzenátot használunk, és azt 50-100 mg As/dm3 tápoldat mennyiségben adjuk egy részletben az exponenciális fázis kezdetén S. cerevisiaenél és C. utilis-nél;i) using arsenic-enriched yeast sodium arsenite or sodium arsenate and adding 50-100 mg of As / dm 3 medium in one portion at the beginning of the exponential phase at S. cerevisiae and C. utilis; j) szilíciummal dúsított élesztő esetén nátrium-szilikátot alkalmazunk 20-500 rag Si/dm3 tápoldat menynyiségben, és azt egy részletben adjuk az exponenciális fázis kezdetén S. cerevisiae-nél és C. utilis-nél;j) for silicon-enriched yeast, sodium silicate is used in an amount of 20-500 µl Si / dm 3 medium and is added in one portion at the beginning of the exponential phase at S. cerevisiae and C. utilis; k) titánnal dúsított élesztő esetén titán-aszkorbátot használunk 10-100 mg Ti/dm3 tápoldat mennyiségben, és azt egy részletben adjuk az exponenciális fázisban S. cerevisiae-nél és C. utiEs-nél;k) for titanium-enriched yeast, titanium ascorbate is used in an amount of 10-100 mg Ti / dm 3 and added in one portion to the exponential phase at S. cerevisiae and C. utiEs; l) teliúrral dúsított élesztő esetén kálium-telluritet alkalmazunk 5-50 mgTe/dm3 tápoldat mennyiségben, és azt egyszerre adagoljuk az exponenciális fázis kezdetén S. cerevisiae-nél és C. utilis-nél;(l) in the case of the yeast-enriched yeast, potassium tellurite is used in an amount of 5-50 mgTe / dm 3 of the medium and is administered simultaneously at the beginning of the exponential phase at S. cerevisiae and C. utilis; m) nikkellel dúsított élesztő esetén nikkel-szulfátot alkalmazunk 10-100 mg Ni/dm3 tápoldat mennyiségben, és azt egyszerre adagoljuk az exponenciális fázis kezdetén S. cerevisiae-nél és C. utilis-nél;m) in the case of nickel-enriched yeast, nickel sulfate is used in an amount of 10-100 mg Ni / dm 3 medium and is administered simultaneously at the beginning of the exponential phase at S. cerevisiae and C. utilis; n) céziummal dúsított élesztő esetén cézium-kloridot használunk 50-200 mg Cs/dm3 tápoldat mennyiségben, és azt egyszerre adagoljuk az exponenciális fázis kezdetén S. cerevisiae-nél és C. utilis-nél;n) in the case of cesium-enriched yeast, cesium chloride is used in an amount of 50-200 mg of Cs / dm 3 medium and is administered simultaneously at the beginning of the exponential phase at S. cerevisiae and C. utilis; o) rubídiummal dúsított élesztő esetén rubídium-kloridot alkalmazunk 50-200 mg Rb/dm3 tápoldat mennyiségben, és azt egyszerre adagoljuk az exponenciális fázis kezdetén S. cerevisiae-nél és C. utilisnél;o) in the case of yeast enriched with rubidium, rubidium chloride is used in an amount of 50-200 mg of Rb / dm 3 medium and is simultaneously administered at the beginning of the exponential phase at S. cerevisiae and C. utilis; p) jóddal dúsított élesztő esetén kálium-jodidot alkalmazunk 50-300 mg I/dm3 tápoldat mennyiségben, és azt egyszerre adagoljuk az exponenciális fázis kezdetén S. cerevisiae-nél és C. utilis-nél;p) for iodine-enriched yeast, potassium iodide is used in an amount of 50-300 mg of I / dm 3 medium and is administered simultaneously at the beginning of the exponential phase at S. cerevisiae and C. utilis; r) fluorral dúsított élesztő esetén nátrium-fluoridot vagy ammónium-fluoridot használunk 5-20 mg F/dm3 tápoldat mennyiségben, és azt 3-5 részletben adagoljuk az exponenciális fázisban S. cerevisiaenél és C. utilis-nél.r) in the case of fluorinated enriched yeast, sodium fluoride or ammonium fluoride is used in an amount of 5-20 mg of F / dm 3 medium and is added in 3-5 parts in the exponential phase at S. cerevisiae and C. utilis.
HU283189A 1989-06-02 1989-06-02 Process for producing yeasts enriched with microelements HU205379B (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
HU283189A HU205379B (en) 1989-06-02 1989-06-02 Process for producing yeasts enriched with microelements

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
HU283189A HU205379B (en) 1989-06-02 1989-06-02 Process for producing yeasts enriched with microelements

Publications (2)

Publication Number Publication Date
HUT54731A HUT54731A (en) 1991-03-28
HU205379B true HU205379B (en) 1992-04-28

Family

ID=10961286

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HU283189A HU205379B (en) 1989-06-02 1989-06-02 Process for producing yeasts enriched with microelements

Country Status (1)

Country Link
HU (1) HU205379B (en)

Also Published As

Publication number Publication date
HUT54731A (en) 1991-03-28

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Grimm et al. Promotion by Zinc of the Formation of Cytochromes in Ustilago sphaerogena.
CN104447022A (en) Selenium-rich chitosan nutritional microbial fertilizer and preparation method thereof
CN104447021A (en) Selenium-enriched microorganism preparation prepared from fermentation of mixed bacterium liquid and preparation method of selenium-enriched microorganism preparation
CN107333564B (en) Production method of high-yield and high-selenium cordyceps militaris
CN107497838A (en) The method that removing heavy metals are removed from soil
CN106690395A (en) Bacterium enzyme mixed preparation containing bacillus subtilis bacterial strain SMXP-58
US6140107A (en) Organometallic-metabolizing yeast
CN105367307A (en) Selenium-rich biological agent for improving activity of microbes in soil and preparation method of selenium-rich biological agent
Shet et al. Enrichment of Saccharomyces cerevisiae with zinc and their impact on cell growth
US6368643B1 (en) Assimilation of inorganic selenium and organic germanium by yeast
HU205379B (en) Process for producing yeasts enriched with microelements
CN113025510B (en) Function-enhanced yeast culture rich in organic trace elements and preparation method thereof
CN111286518B (en) Preparation method of biostimulant capable of degrading pesticide residue and reducing heavy metal content
JP4284038B2 (en) High copper content yeast and method for producing the same, high copper content yeast crushed material, and food
CN110002919B (en) Fulvic acid chelated zinc biological fertilizer and application thereof in walnut planting
JP2007049917A (en) Sugar-reduced soy sauce, powdery soy sauce and method for producing the sugar-reduced soy sauce
JP2004350620A (en) Zinc replenishing food material
JPH08332082A (en) Yeast containing zinc at high concentration
CN1058055C (en) L-ascorbic acid production in microorganisms
JP3572281B2 (en) Fermented health food using deep ocean water and method for producing the same
KR100443131B1 (en) Plant culture solution containing selenium and method for culturing plant using the same
KR100193748B1 (en) Method for producing chlorella of high concentration by heterotrophic growth
WO1998037172A1 (en) Dietary supplementation with, and methods for preparation of yeast-derived selenium salts
JP3530510B2 (en) Fermented healthy tea using deep sea water and method for producing the same
JPH08332081A (en) Yeast containing magnesium at high concentration

Legal Events

Date Code Title Description
HPC4 Succession in title of patentee

Owner name: BUDAFOK ELESZTOE ES SZESZGYAR KFT., HU

HMM4 Cancellation of final prot. due to non-payment of fee