FR3085250A1 - Procédé de fabrication de composition granulaire renfermant un matériel biologique - Google Patents

Procédé de fabrication de composition granulaire renfermant un matériel biologique Download PDF

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Abstract

La présente invention est située dans le domaine de l'agriculture. Elle concerne un procédé de fabrication d'une composition solide granulaire destinée à être distribuée sur ou dans un sol, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes consistant à : a. former un mélange solide comprenant un matériel biologique constitué d'un inoculum de microorganismes et/ou des macroorganismes vivants et/ou morts, un polymère non hydrosoluble et éventuellement un agent de formulation, b. extruder le mélange ainsi obtenu, à une température inférieure à 60°C, pour former un extrudât qui constitue la composition, c. éventuellement, l'extrudât obtenu à l'étape b) forme un cœur dont on enveloppe dans une gaine de structure en polymère biodégradable pour constituer la composition en forme de jonc, globalement plein, à découper

Description

Description
Titre de l’invention : PROCÉDÉ DE FABRICATION DE COMPOSITION GRANULAIRE RENFERMANT UN MATÉRIEL BIOLOGIQUE [0001] La présente invention est située dans le domaine de l’agriculture, plus particulièrement dans le domaine des supports solides transportant du matériel biologique à distribuer sur ou dans un sol de culture en vue d’y assurer des traitements de biocontrôle [0002] Les produits phytosanitaires sont utilisés depuis des années dans l’agriculture notamment dans le traitement contre une grande variété de ravageurs et de maladies ce qui permet de réduire l’utilisation de produits insecticides à base de molécules chimiques. La composition ainsi que le mode de dissémination des produits phytosanitaires varient tout autant que les effets ; ils peuvent être, entre autres, disséminés par différents moyens, notamment par épandage pour les compositions solides et par pulvérisation pour les compositions liquides.
[0003] Toutefois, une utilisation mal maîtrisée de ces produits peut parfois contribuer à la contamination des sols, des nappes phréatiques ainsi qu’à la disparition de microorganismes et macroorganismes du sol pourtant indispensables au bon fonctionnement de l’écosystème. Il en résulte de cette mauvaise maîtrise que l’utilisation de ces produits peut entraîner des phénomènes de résistance, voire une infestation par des nuisibles devenus résistants aux traitements.
[0004] L’utilisation de microorganismes et de macroorganismes comme agents de régulation des populations d’arthropodes ou d’agents de protection et de stimulation de la croissance des plantes séduit nombre d’utilisateurs notamment des agriculteurs et des particuliers. En effet, les macroorganismes tels que certains insectes jouent un rôle essentiel dans la lutte contre d’autres insectes ravageurs dans les champs de culture tout en maintenant l’équilibre dynamique et naturel de la communauté d’arthropodes. De même, les formulations à base de microorganismes permettent, à l’heure actuelle, d’envisager des traitements foliaires et racinaires de cultures à forte valeur ajoutée telles que la vigne et les cultures maraîchères par exemple.
[0005] En tout état de cause, il est nécessaire de réintroduire l’agent de contrôle biologique constitué essentiellement par des macroorganismes de type arthropodes en nombre suffisamment important pour atteindre l’effet recherché. Il découle de cet aspect que l’alimentation des arthropodes vivants est déterminante dans la préparation de compositions de contrôle biologique pour accroître la disponibilité des prédateurs d’intérêt à des endroits bien localisés, tels que par exemple, près des racines et des graines cibles.
[0006] La technique antérieure divulgue des conteneurs solides, notamment sous forme de capsule, de petite boule creuse, de boîte, de cylindre creux dont la partie intérieure renferme des macroorganismes. Une fois disséminée sur un sol de culture, les macroorganismes s’échappent via au moins un orifice pratiqué sur la coque.
[0007] Par exemple, pour les conteneurs pourvus d’orifice de sortie, il est connu par les brevets EPI 161863 et EP2870874 un conteneur creux, respectivement en plastique biodégradable et en amidon, destiné à épandre des œufs de trichogrammes collés sur la paroi intérieure du conteneur, lesdits œufs occupant moins de 50% du volume total du conteneur.
[0008] Les brevets US4785764 et EP2538775 décrivent des boules creuses en matériau cellulosique renfermant un mélange de colonies de macroorganismes et de réserves de nourriture. Les boules sont pourvues d’ouvertures de sortie.
[0009] Le brevet GB2211717 décrit une boite d’emballage en matériau cellulosique, pourvue d’ouvertures, renfermant des insectes à différents stades de développement, collés sur la paroi intérieure. Enfin, selon le document ER3047875, la Demanderesse décrit une capsule creuse en matériau cellulosique pourvue d’au moins une ouverture de sortie pour des macroorganismes ; la coque de la capsule étant doublement enrobée, successivement par un agent hydrofuge et par un agent filmogène hydrosoluble.
[0010] Pour les conteneurs dépourvus d’orifice de sortie, on connaît par le brevet
EPI399015 des billes poreuses et hydrophiles en biopolymère d’alginate, de carragénine ou en chitosan pour l’élevage in vitro des hyménoptères entomophages. Quant au brevet US4701326, il divulgue une capsule hydratée d’hydrogel et enrobée, faite notamment de gélatine dont la partie intérieure renferme des nématodes et des bactéries. Dans une variante, le brevet EP2866567 décrit une composition comprenant, d’une part, une population d’arthropodes vivants et, d’autre part, des nutriments pour lesdits arthropodes, constitués par des œufs de mites astigmates sans les larves ni les nymphes, éventuellement, un substrat organique et un support minéral de dissémination.
[0011] Concernant les supports de microorganismes, l’état de la technique décrit abondamment les supports hydrophiles d’origine minérale (argiles, vermiculites, etc.) ou d’origine végétale (bois, pépins, rafles, fibres, etc.). Pour les supports de microorganismes qui viennent d’être décrits, le moment d’application de l’inoculum intervient après leur mise en forme éventuelle, ce qui constitue une étape d’opération supplémentaire.
[0012] Or, il est utile de pouvoir apporter du matériel biologique d’intérêt en quantité importante à une zone bien ciblée afin d’y assurer l’effet de biocontrôle désiré. Les orifices de sortie peuvent constituer un inconvénient en ce sens qu’ils constituent également une porte d’entrée aux autres entités indésirables à effet nocif pour le matériel biologique d’intérêt.
[0013] Il existe, alors, un besoin de fournir un moyen permettant d’obtenir un support solide pour le transport, l’application et la conservation temporaire de matériel biologique, à savoir des macroorganismes et des microorganismes, moyen dont la mise en œuvre, en continu, est simplifiée par la réduction du nombre des étapes et dont le coût de revient est réduit.
[0014] Il est également utile de préserver la viabilité et l’intégrité physique du matériel biologique au cours de la mise en œuvre du moyen ainsi qu’au cours et après le stockage du support.
[0015] Il est également souhaitable la mise à disposition d’un moyen dont la mise en œuvre permet d’obtenir un support robuste, de structure cohésive dans son ensemble, renfermant du matériel biologique, tout en résistant aux contraintes mécaniques lors de l’épandage par des matériels adéquats usuels.
[0016] Il est également souhaitable la mise à disposition d’un moyen dont la mise en œuvre permet d’obtenir un support apte à se désagréger ou s’émietter progressivement au cours du temps du fait de sa mise en contact avec l’humidité du sol pour libérer ainsi, séquentiellement, le matériel biologique qu’il renferme.
[0017] Un des moyens qui permet d’atteindre les objectifs ci-dessus définis peut être notamment l’extrusion à basse température, en mélangeant simplement le matériel biologique avec le matériau qui constitue le support.
[0018] L’expression « globalement plein » signifie que la partie intérieure de la composition granulaire est sensiblement remplie, à savoir au moins à 80%, par le cœur.
[0019] L’expression « matériel biologique » englobe des microorganismes, des macroorganismes vivants, à savoir en diapause ou à l’état de quiescence, à différents stades de développement, ou des macroorganismes morts ou encore des fragments de macroorganismes. Les macroorganismes sont des arthropodes, particulièrement les insectes, les acariens, les araignées et les nématodes. Les microorganismes sont des bactéries et des champignons utiles et connus dans les domaines de la lutte contre les agents pathogènes, de la stimulation des défenses naturelles des plantes, et de la fixation des nutriments azotés et phosphorés.
[0020] La présente invention a, par conséquent, pour objet, un procédé de fabrication d’une composition solide granulaire destinée à être distribuée sur ou dans un sol, caractérisé en ce qu’il comprend les étapes consistant à :
[0021] a. former un mélange solide comprenant un matériel biologique constitué d’un inoculum de microorganismes et/ou des macroorganismes vivants et/ou morts, un polymère non hydrosoluble et éventuellement un agent de formulation, [0022] b. extruder le mélange ainsi obtenu, à une température inférieure à 60°C, pour former un extradât qui constitue la composition, [0023] c. éventuellement, l’extrudât obtenu à l’étape b) forme un cœur dont on enveloppe dans une gaine de structure en polymère biodégradable pour constituer la composition en forme de jonc, globalement plein, à découper.
[0024] Lorsque l’étape c) est absente, la composition granulaire est obtenue après la mise en œuvre de l’étape b) ; dans un tel cas, le cœur, dont la structure est suffisamment cohésive, correspond donc à la composition granulaire.
[0025] De manière inattendue, grâce à la mise en œuvre du procédé selon l’invention, il devient possible de préserver la viabilité ainsi que l’intégrité physique du matériel biologique tel que des microorganismes et des macroorganismes contenus dans la composition. De manière surprenante, malgré les mouvements de cisaillement importants de la vis dans le fourreau de l’extrudeuse, l’intégrité physique des macroorganismes comme les nématodes (larves et adultes), les larves d’insectes et d’acariens sont préservés au cours de l’extrusion. On note, par exemple, que les nématodes entomopathogènes résistent à des températures élevées tandis que certains acariens et certaines bactéries peuvent être sensibles à des températures de l’ordre de 50°C en des temps inférieurs à 5 minutes. Une telle composition est apte à se désagréger dans un intervalle de temps allant de quelques jours à plusieurs semaines, dans les conditions réelles d’utilisation, que la composition soit enterrée ou laissée libre en surface. Par ailleurs, la gaine de structure confère à la composition une robustesse suffisante pour pouvoir être distribuée notamment par des machines d’épandage.
[0026] Selon une mise en œuvre du procédé, on constitue le mélange à l’étape a) avec 20 à 95% en poids de polymère non hydrosoluble, de 0,01 à 50%, préférentiellement de 0,1 à 20% en poids de matériel biologique, le cas échéant, le complément à 100% étant constitué d’agent de formulation.
[0027] Selon une mise en œuvre du procédé, le matériel biologique est un macroorganisme mort dispersé dans la masse du cœur et/ou de la gaine de structure. Dans ce cas, le macroorganisme mort est un arthropode, à différents stades de développement, qui se présente sous forme de farine, de fragments, de cuticule, ou leurs mélanges, dont les dimensions moyennes varient de 5 à 1000 pm.
[0028] Selon une mise en œuvre du procédé, le matériel biologique est un macroorganisme vivant choisi parmi des insectes, des acariens, des araignées, des nématodes entomopathogènes, ou leurs mélanges, à différents stades de développement. Avantageusement, les insectes peuvent être des trichogrammes, des chrysopes, des hyménoptères et les acariens sont des punaises prédatrices.
[0029] Selon une variante de mise en œuvre du procédé, le polymère non hydrosoluble du mélange à l’étape a) est un polymère thermoplastique biodégradable qui peut être un polyester choisi parmi les polycaprolactones, les polyhydroxyalconates, les poly lactides, les polyesteramides, les copolyesters aliphatiques et aromatiques, ou un agropolymère choisi parmi les polysaccharides, l’amidon et ses dérivés, les esters de cellulose, ou un mélange de tous ces polymères. Les polymères thermoplastiques de polyesters sont les préférés, notamment les polycaprolactones dont la température de fusion est d’environ 60°C.
[0030] Avantageusement, dans un cas, le cœur peut être dépourvu d’agent de formulation. [0031] Dans un autre cas, on peut incorporer dans le cœur un agent de formulation, favorisant le délitement de la composition, qui peut être des sels métalliques hydrosolubles, notamment des sels de chlorures, de sulfates, de citrates, de phosphates, d’acétates, ou leurs mélanges, sous forme particulaire, dont la quantité est de 0 à 8%, préférentiellement de 0,1 à 5% en poids de la composition.
[0032] Selon une variante de mise en œuvre du procédé, le mélange à l’étape a) comporte, en outre, un agent de formulation qui peut être choisi parmi une matière d’origine végétale ou minérale sous forme particulaire ou de fibre, un sel, ou leurs mélanges. Avantageusement, la matière végétale peut être choisie parmi le liège, les fibres végétales, les débris de matières végétales, la rafle de maïs, les pépins, ou leurs mélanges. La matière d’origine minérale peut être choisie parmi les silices, les argiles, les talcs, les alumines, ou leurs mélanges. Le sel peut être des sels de carbonates, des sels d’oxydes métalliques, ou leurs mélanges. De manière avantageuse, on assure le maintien du taux d’humidité du cœur de la composition grâce aux les matières végétales et minérales qui sont poreuses et hydroabsorbantes. Avantageusement, le taux d’humidité du cœur est suffisant pour assurer la survie du matériel biologique au cours du stockage jusqu’à l’utilisation.
[0033] Selon une autre variante de mise en œuvre du procédé, le polymère non hydrosoluble du mélange à l’étape a) peut être une matière d’origine végétale ou minérale sous forme particulaire ou de fibre, ou leurs mélanges, et que l’agent de formulation est un liant qui peut être choisi parmi un polymère acrylique, un polymère vinylique, des résines végétales comme les acides résiniques et la colophane et ses dérivés, un latex d’origine végétale, d’éthers et/ou esters cellulosiques, un polysaccharide, ou leurs mélanges. Avantageusement, la matière végétale peut être choisie parmi des fibres végétales, du liège, des débris de matières végétales, de la rafle de maïs, des pépins, ou leurs mélanges. La matière d’origine minérale peut être choisie parmi les silices, les argiles, les talcs, les alumines, ou leurs mélanges. Dans un tel cas, l’agent de formulation peut représenter de 0,01 à 70%, préférentiellement de 0,1 à 50% en poids de la composition. Dans un tel cas, la gaine de structure peut être constituée d’un polymère de la famille des acryliques, des polyvinyliques, des résines végétales, de latex d’origine végétale, d’éthers et/ou esters cellulosiques, de polysaccharides, ou leurs mélanges.
[0034] Selon une mise en œuvre du procédé, le polymère biodégradable qui constitue la gaine de structure à l’étape c) peut être un polyester, ayant une température de fusion supérieure à 60°C, choisi parmi les polyhydroxyalconates, les polylactides, les polyesteramides, les copolyesters aliphatiques et aromatiques, ou un polymère de la famille des acryliques, des polyvinyliques, des résines végétales, de latex d’origine végétale, d’éthers et/ou esters cellulosiques, de polysaccharides, ou leurs mélanges. Dans le cas où la gaine de structure est en polyester, celle-ci peut être extrudée, à une température comprise entre 60 et 120°C, sous la forme d’un jonc tubulaire creux dont l’espace intérieur est garni par le cœur.
[0035] Selon une variante de mise en œuvre, lorsque la gaine de structure obtenue à l’étape c) est en polyester, on peut mettre en œuvre une étape d), pour former une couche superficielle protectrice sur ladite gaine en y appliquant une solution de polymère de la famille des acryliques, des polyvinyliques, des résines végétales, de latex d’origine végétale, d’éthers et/ou esters cellulosiques, de polysaccharides, ou leurs mélanges. Dans un tel cas, l’application de ladite couche superficielle peut être réalisée par pulvérisation.
[0036] Selon une variante de mise en œuvre, on peut incorporer dans l’agent de formulation des nutriments hydrosolubles, connus et adaptés, pour le développement et/ou la conservation du matériel biologique. De préférence, la croissance du matériel biologique a lieu après sa libération depuis la composition. Dans un tel cas, l’agent de formulation peut être choisi parmi une matière d’origine végétale ou minérale sous forme particulaire ou de fibre, ou leurs mélanges.
[0037] Avantageusement, on peut incorporer dans le cœur de la composition, un agent antifongique comme par exemple le citral, le néral, l’époxynéral, le géranial, le famésal, aou β-acaradial, le cycloheximide, des sulfates métalliques notamment la bouillie bordelaise.
[0038] La présente invention a aussi pour objet une composition solide granulaire comprenant du matériel biologique constitué d’inoculum de microorganisme et/ou de macroorganisme, caractérisée en ce qu’elle comporte :
un cœur en polymère non hydrosoluble au sein duquel est dispersé ledit matériel biologique, ledit cœur renferme éventuellement un agent de formulation, éventuellement une gaine de structure en polymère biodégradable.
[0039] Selon un mode de réalisation, le cœur est constitué de :
à 95% en poids de polymère non hydrosoluble choisi parmi un polymère thermoplastique biodégradable ou un agropolymère,
0,01 à 50%, préférentiellement de 0,1 à 20% en poids de microorganismes et/ou de macroorganismes morts ou vivants choisis parmi des insectes, des acariens, des araignées, des nématodes entomopathogènes, ou leurs mélanges, à différents stades de développement, le cas échéant, le complément à 100% étant constitué d’agent de formulation.
[0040] Selon un mode de réalisation, le polymère thermoplastique biodégradable est un polyester choisi parmi les polycaprolactones, les polyhydroxyalconates, les polylactides, les polyesteramides, les copolyesters aliphatiques et aromatiques, et que l’agropolymère est choisi parmi les polysaccharides, l’amidon et ses dérivés, les esters de cellulose, ou un mélange de tous ces polymères.
[0041] Selon un mode de réalisation, la gaine de structure est constituée d’un polyester, ayant une température de fusion supérieure à 60°C, choisi parmi les polyhydroxyalconates, les polylactides, les polyesteramides, les copolyesters aliphatiques et aromatiques, ou un polymère de la famille des acryliques, des polyvinyliques, des résines végétales, de latex d’origine végétale, de éthers et/ou esters cellulosiques, de polysaccharides, ou leurs mélanges.
[0042] Pour mieux comprendre l’invention qui vient d’être décrite, les exemples suivants sont fournis à titre purement illustratif sans qu’ils puissent être interprétés comme limitatifs.
[0043] Exemple 1 : Fabrication de granulés renfermant des acariens entomopathogènes ( Neoseiulus californiens) [0044] On dispose d’une polycaprolactone micronisée commercialisée sous le nom de CAPA 2205® dont le point de fusion est compris entre 40 et 50°C.
[0045] On utilise, comme matériel biologique, des acariens (Neoseiulus californiens) vivants sous forme de poudre, à différents stades de développement, commercialisés par la société Koppert B.V sous le nom commercial Spical Plus®. Les acariens, dispersés dans du son, sont conditionnés dans un conteneur en papier. Ces acariens ont notamment pour cibles d’autres acariens tels que les acariens rouges des serres ( Tetranychus urticae), les acariens rouges des fruits (Panonychus ulmi), les acariens des agrumes (Panonynchus citri), le tarsonème des serres (Polyphagotarsonemus latus).
[0046] Préparation du cœur du granulé :
[0047] On mélange, à la température ambiante, les acariens Spical Plus® ci-dessus avec la CAPA 2205® pour obtenir un mélange homogène dans lequel le ratio massique de Spical Plus®/CAPA 2205® est de 10:90.
[0048] Mise en forme de granulés par extrusion :
[0049] On introduit dans une extrudeuse (Teach-Line® type E 20 T SCR 15, Collin), le mélange ci-dessus pour obtenir un extrudât dont on découpe en granulés de 3 mm de diamètre et 5 mm de longueur. Le profil de températures d’extrusion se situe entre 25 °C à 30°C en sortie d’extrudeuse. Les granulés obtenus sont conservés entre 0 et 4°C.
[0050] Exemple 2 : Fabrication de granulés renfermant des nématodes entomopathogènes (Heterorhabditis bacteriophord) vivants lyophilisés ainsi que des Bacillius amyloliquefaciens [0051] On dispose d’un polymère thermoplastique biodégradable, commercialisé sous le nom d’Ecoflex® F Blend C1200. Il s’agit d’un copolyester synthétique biodégradable (poly butylène adipate téréphtalate) sous forme de granulés dont le point de fusion est compris entre 110°C et 120°C.
[0052] On dispose de la CAPA 2205® décrite dans l’exemple 1 ainsi que des rafles de maïs en poudre (granulométrie < 50 pm) commercialisée sous le nom d’Eu-Grits Powder®. On dispose également d’une résine d’ester de colophane dispersée dans l’eau, commercialisée sous le nom de Tacolyn 3519®.
[0053] On utilise, comme matériel biologique, d’une part, un inoculum liquide de Bacillius amyloliquefaciens à 106 UFC/mL qui a été préparé de manière connue dans son milieu de culture adapté ; et d’autre part, des larves de nématodes vivants lyophilisés fournis par la société Koppert B.V sous l’appellation Terranem® dont le conditionnement contient environ 250 millions de larves (3ème stade de développement) dans du gel. Ces nématodes ont pour cible notamment les vers blancs (Melolontha melolontha) nuisibles aux cultures maraîchères. On pulvérise sur les rafles de maïs Eu-Grits Powder®, préalablement stérilisées, 1’inoculum ci-dessus à raison de 1,3 mL d’inoculum par gramme de rafle. Ces bactéries sont responsables de la solubilisation des ions phosphates permettant le développement racinaire.
[0054] Préparation du cœur du granulé :
[0055] On mélange, à la température ambiante, la CAPA 2205®, l’Eu-Grits Powder® inoculé de Bacillius amyloliquefaciens et le Terranem®, selon un ratio massique Terranem® / CAPA 2205® de 20:80.
[0056] Mise en forme de granulés par co-extrusion :
[0057] On introduit dans une première extrudeuse (Teach-Line® type E 20 T SCR 15, Collin) les polymères d’ECOFLEX® ci-dessus pour obtenir un jonc creux tubulaire qui constitue la gaine externe de structure.
[0058] On introduit dans une seconde extrudeuse du même type le mélange de CAPA 2205® , l’Eu-Grits Powder® inoculé de Bacillius amyloliquefaciens et le Terranem®qui constitue le cœur du granulé.
[0059] Les deux extrudeuses sont connectées à une filière unique à section circulaire permettant de co-extruder un jonc gainé ; le cœur qui forme le jonc interne ayant un diamètre de 3 mm, et la gaine externe a un diamètre extérieur de 4 mm.
[0060] Les deux mélanges (ECOFLEX® et le cœur) sont co-extrudés à des profils de température adaptés soit entre 65 et 115 °C pour la gaine externe et entre 25 et 30°C pour le jonc interne. Les joncs gainés, qui constituent le produit final, sont ensuite refroidis dans un bac à eau en sortie de filière avant d’être découpés en granulés aux dimensions [0061] [0062] [0063] [0064] [0065] [0066] [0067] [0068] [0069] [0070] de 4 x 4 mm. Les granulés sont ensuite enrobés, par pulvérisation, à l’aide d’une pralineuse (modèle P2RE), avec du Tacolyn 3519® à température ambiante. Les granulés enrobés obtenus sont conservés entre 0 et 4°C.
Exemple 3 : Evaluation de la désagrégation des granulés issus de l’exemple 2 en fonction du temps.
On utilise les granulés obtenus à l’exemple 2 afin de suivre leur désagrégation en fonction du temps.
Pour ce faire, on introduit, dans un seau en polypropylène de 0,5 L dont le fond est percé de 3 trous de 2 cm de diamètre chacun, 200 g de terreau (terre végétale, Botanic® ). On prend 5 seaux. On enterre 20 granulés dans chaque seau, à une profondeur de 2 cm de la surface. On prévoit 4 points de lecture à 3, 7, 14 et 21 jours et que pour chaque point de lecture, on effectue 5 répétitions, soit un total de 20x4x5=400 granulés.
Après la mise en terre des granulés, on arrose le contenu de chaque seau avec 50 mL d’eau non stérile ; l’humidité de chaque seau est maintenue durant toute l’expérience. Tous les seaux sont ensuite entreposés dans un environnement où la température est régulée entre 8 et 14°C et l’hygrométrie maintenue entre 80 et 95% d’humidité relative (sonde thermo-hygro bouton Plug&Track, type 23, DAL0084).
Après 3 jours, on récupère les granulés en retournant délicatement la terre à l’aide d’une spatule. Des observations microscopiques (grossissement xlO) et visuelles ont été réalisées sur les granulés découpés. Pour chaque granulé découpé, on note leur aspect physique, ainsi que celui des nématodes. On note également la présence ou non de mycéliums indigènes ainsi que sa localisation (au centre ou à la périphérie du granulé).
On répète les mêmes opérations décrites précédemment aux temps 7, 14 et 21 jours.
Les résultats sont consignés dans le tableau 1.
'· Temps (jours) ' jftspect :du?graniilé: ' Mycélium ï- à:-+)
O Gaine : intègre Cœur : intègre Gaine r- ) 'Cœurt-
' % Gaine : intègre Cœur : intègre Gaine r - Cœur : -
τ Gaine : intègre Cœur : désagrégation modérée sur tes bordures et au centre Gaine : - Cîœùrr-
w Gaine r intègre Cœur : désagrégation importante sur les bordures et au centre - Gaine r - ' r ’CœurÇ-
21 Gaine ' intégré Cœur : désagrégation totale Gaine : - Cœur : +
Tableau 1 : Évolution de la désagrégation des granulés renfermant des larves de nématodes lyophilisés au cours du temps
- : absence de mycélium [0071] + : présence de mycélium [0072] On observe que, d’une part, les nématodes ont bien été conservés durant le processus de fabrication, et que d’autre part, les larves se sont transformées ultérieurement en adultes capables d’infecter leurs cibles à savoir des vers blancs.
[0073] Par ailleurs, les Bacillius amyloliquefaciens, connues pour leur activité antifongique, permet de protéger temporairement le cœur du granulé contre la colonisation de mycéliums indigènes. On note également que la gaine permet de protéger temporairement les nématodes contre la colonisation du granulé par des mycéliums.

Claims (1)

  1. Revendications [Revendication 1] Procédé de fabrication d’une composition solide granulaire destinée à être distribuée sur ou dans un sol, caractérisé en ce qu’il comprend les étapes consistant à : a. former un mélange solide comprenant un matériel biologique constitué d’un inoculum de microorganismes et/ou des macroorganismes vivants et/ou morts, un polymère non hydrosoluble et éventuellement un agent de formulation, b. extruder le mélange ainsi obtenu, à une température inférieure à 60°C, pour former un extrudât qui constitue la composition, c. éventuellement, l’extrudât obtenu à l’étape b) forme un cœur dont on enveloppe dans une gaine de structure en polymère biodégradable pour constituer la composition en forme de jonc, globalement plein, à découper. [Revendication 2] Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que l’on constitue la composition de l’étape a) avec 20 à 95% en poids de polymère non hydrosoluble, de 0,01 à 50%, préférentiellement de 0,1 à 20% en poids de matériel biologique, le cas échéant, le complément à 100% étant constitué d’agent de formulation. [Revendication 3] Procédé selon la revendication 1 ou 2, caractérisé en ce que le matériel biologique est un macroorganisme mort dispersé dans la masse du cœur et/ou de la gaine de structure. [Revendication 4] Procédé selon la revendication 3, caractérisé en ce que le macroorganisme mort est un arthropode, à différents stades de développement, qui se présente sous forme de farine, de fragments, de cuticule, ou leurs mélanges, dont les dimensions moyennes varient de 5 à 1000 pm. [Revendication 5] Procédé selon l’une des revendications 1 ou 2, caractérisé en ce que le matériel biologique est un macroorganisme vivant choisi parmi des insectes, des acariens, des araignées, des nématodes entomopathogènes, ou leurs mélanges, à différents stades de développement. [Revendication 6] Procédé selon la revendication 5, caractérisé en ce que les insectes sont des trichogrammes, des chrysopes, des hyménoptères et les acariens sont des punaises prédatrices. [Revendication 7] Procédé selon l’une des revendications 1 à 6, caractérisé en ce que le polymère non hydrosoluble du mélange à l’étape a) est un polymère thermoplastique biodégradable qui est un polyester choisi parmi les po-
    [Revendication 8] [Revendication 9] [Revendication 10] [Revendication 11] [Revendication 12] [Revendication 13] [Revendication 14] lycaprolactones, les polyhydroxyalconates, les polylactides, les polyesteramides, les copolyesters aliphatiques et aromatiques, ou un agropolymère choisi parmi les polysaccharides, l’amidon et ses dérivés, les esters de cellulose, ou un mélange de tous ces polymères.
    Procédé selon la revendication 7, caractérisé en ce que le polyester est une polycaprolactone dont la température de fusion est d’environ 60°C, le cœur étant dépourvu d’agent de formulation.
    Procédé selon la revendication 7, caractérisé en ce que l’on incorpore dans le cœur un agent de formulation, favorisant le délitement de la composition, qui est un sel hydrosoluble choisi parmi des sels de chlorures, des sulfates, de citrates, de phosphates, d’acétates, ou leurs mélanges, sous forme particulaire, dont la quantité est de 0 à 8%, préférentiellement de 0,1 à 5% en poids de la composition.
    Procédé selon l’une des revendications 1 à 7, caractérisé en ce que le mélange à l’étape a) comporte, en outre, un agent de formulation choisi parmi une matière d’origine végétale ou minérale sous forme particulaire ou de fibre, un sel, ou leurs mélanges.
    Procédé selon l’une des revendications 1 à 7, caractérisé en ce que le polymère non hydrosoluble du mélange à l’étape a) est une matière d’origine végétale ou minérale sous forme particulaire ou de fibre, ou leurs mélanges, et que l’agent de formulation est un liant choisi parmi un polymère acrylique, un polymère vinylique, une résine végétale, un latex d’origine végétale, d’éthers et/ou esters cellulosiques, un polysaccharide, ou leurs mélanges.
    Procédé selon la revendication 11, caractérisé en ce que l’agent de formulation représente de 0,01 à 70%, préférentiellement de 0,1 à 50% en poids de la composition.
    Procédé selon l’une des revendications 11 et 12, caractérisé en ce que la gaine de structure est constituée d’un polymère de la famille des acryliques, des polyvinyliques, des résines végétales, de latex d’origine végétale, de éthers et/ou esters cellulosiques, de polysaccharides, ou leurs mélanges.
    Procédé selon l’une des revendications 1 à 7, caractérisé en ce que le polymère biodégradable qui constitue la gaine de structure à l’étape c) est un polyester, ayant une température de fusion supérieure à 60°C, choisi parmi les polyhydroxyalconates, les polylactides, les polyesteramides, les copolyesters aliphatiques et aromatiques, ou un polymère de la famille des acryliques, des polyvinyliques, des résines végétales,
    de latex d’origine végétale, de éthers et/ou esters cellulosiques, de polysaccharides, ou leurs mélanges. [Revendication 15] Procédé selon la revendication 14, caractérisé en ce que la gaine de structure est en polyester, celui-ci étant extrudé, à une température comprise entre 60 et 120°C, sous la forme d’un jonc tubulaire creux dont l’espace intérieur est garni par le cœur. [Revendication 16] Procédé selon la revendication 14, caractérisé en ce que, on met en œuvre une étape d), pour former une couche superficielle protectrice sur ladite gaine en y appliquant une solution de polymère de la famille des acryliques, des polyvinyliques, des résines végétales, de latex d’origine végétale, d’éthers et/ou esters cellulosiques, de polysaccharides, ou leurs mélanges. [Revendication 17] Procédé selon la revendication 16, caractérisé en ce que l’application de ladite couche superficielle est réalisée par pulvérisation. [Revendication 18] Composition solide granulaire comprenant du matériel biologique constitué d’inoculum de microorganisme et/ou de macroorganisme, caractérisée en ce qu’elle comporte : - un cœur en polymère non hydrosoluble au sein duquel est dispersé ledit matériel biologique, ledit cœur renferme éventuellement un agent de formulation - éventuellement une gaine de structure en polymère biodégradable. [Revendication 19] Composition selon la revendication 18, caractérisée en ce que le cœur est constitué de : - 20 à 95% en poids de polymère non hydrosoluble choisi parmi un polymère thermoplastique biodégradable ou un agropolymère, - 0,01 à 50%, préférentiellement de 0,1 à 20% en poids de microorganismes et/ou de macroorganismes morts ou vivants choisis parmi des insectes, des acariens, des araignées, des nématodes entomopathogènes, ou leurs mélanges, à différents stades de développement, - le cas échéant, le complément à 100% étant constitué d’agent de formulation. [Revendication 20] Composition selon l’une des revendications 18 et 19, caractérisée en ce que le polymère thermoplastique biodégradable est un polyester choisi parmi les polycaprolactones, les polyhydroxyalconates, les polylactides, les polyesteramides, les copolyesters aliphatiques et aromatiques, et que l’agropolymère est choisi parmi les polysaccharides, l’amidon et ses dérivés, les esters de cellulose, ou un mélange de tous ces polymères. [Revendication 21] Composition selon l’une des revendications 18 et 19, caractérisée en ce
    que la gaine de structure est constituée d’un polyester, ayant une température de fusion supérieure à 60°C, choisi parmi les polyhydroxyalconates, les polylactides, les polyesteramides, les copolyesters aliphatiques et aromatiques, ou un polymère de la famille des acryliques, des polyvinyliques, des résines végétales, de latex d’origine végétale, de éthers et/ou esters cellulosiques, de polysaccharides, ou leurs mélanges
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