FR3075204A1 - Chitine et procede d'obtention de chitine et/ou chitosan par voie chimique - Google Patents
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- C08B37/0006—Homoglycans, i.e. polysaccharides having a main chain consisting of one single sugar, e.g. colominic acid
- C08B37/0024—Homoglycans, i.e. polysaccharides having a main chain consisting of one single sugar, e.g. colominic acid beta-D-Glucans; (beta-1,3)-D-Glucans, e.g. paramylon, coriolan, sclerotan, pachyman, callose, scleroglucan, schizophyllan, laminaran, lentinan or curdlan; (beta-1,6)-D-Glucans, e.g. pustulan; (beta-1,4)-D-Glucans; (beta-1,3)(beta-1,4)-D-Glucans, e.g. lichenan; Derivatives thereof
- C08B37/0027—2-Acetamido-2-deoxy-beta-glucans; Derivatives thereof
- C08B37/003—Chitin, i.e. 2-acetamido-2-deoxy-(beta-1,4)-D-glucan or N-acetyl-beta-1,4-D-glucosamine; Chitosan, i.e. deacetylated product of chitin or (beta-1,4)-D-glucosamine; Derivatives thereof
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- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C08—ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
- C08B—POLYSACCHARIDES; DERIVATIVES THEREOF
- C08B37/00—Preparation of polysaccharides not provided for in groups C08B1/00 - C08B35/00; Derivatives thereof
- C08B37/0003—General processes for their isolation or fractionation, e.g. purification or extraction from biomass
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- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C08—ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
- C08L—COMPOSITIONS OF MACROMOLECULAR COMPOUNDS
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Abstract
La présente invention se rapporte à une chitine dont la masse moléculaire est supérieure à 855 kg.mol-1 et à un procédé d'obtention de chitine et/ou chitosan par séparation des cuticules de la partie molle de l'insecte et par traitement basique des cuticules.
Description
La présente invention concerne une chitine, un chitosan ainsi qu’un procédé de préparation de chitine et/ou chitosan à partir d’insectes.
Selon l’invention, par «chitine», on entend un polymère composé majoritairement d’unités glucosamine et N-acétyl-glucosamine, lesdites unités pouvant être optionnellement substituées par des acides aminés et/ou des peptides.
Par « composé majoritairement », on entend que ledit polymère comporte entre 55% et 98% en poids, de préférence entre 75 et 90% en poids d’unités glucosamine et N-acétyl-glucosamine.
La chitine serait le deuxième polymère le plus synthétisé dans le monde vivant après la cellulose. En effet, la chitine est synthétisée par de nombreuses espèces du monde vivant: elle constitue en partie l'exosquelette des crustacés et des insectes et la paroi latérale qui entoure et protège les champignons. Plus particulièrement, chez les insectes, la chitine constitue ainsi 3 à 60% de leur exosquelette.
Par « chitosan », on entend selon la présente invention les produits de désacétylation de la chitine. La limite usuelle entre le chitosan et la chitine est déterminée par le degré d'acétylation : un composé ayant un degré d’acétylation inférieur à 50% est nommé chitosan, au-delà, un composé ayant un degré d’acétylation supérieur à 50% est nommé chitine.
Les applications de la chitine et/ou du chitosan sont nombreuses: cosmétique (composition cosmétique), médicale et pharmaceutique (composition pharmaceutique, traitement des brûlures, biomatériaux, pansements cornéens, fils chirurgicaux), diététique et alimentaire (alimentation humaine notamment en œnologie et alimentation animale, plus spécifiquement en aquaculture et aviculture), technique (agent filtrant, texturant, floculant ou adsorbant notamment pour la filtration et dépollution de l'eau), etc. En effet, la chitine et/ou le chitosan sont des matériaux biocompatibles, biodégradables et non toxiques.
Usuellement, la chitine et le chitosan sont obtenus à partir des différentes espèces synthétisant la chitine, telles que celles citées ci-avant, et notamment à partir de crustacés ou d’insectes.
Il est particulièrement avantageux d’obtenir de la chitine et du chitosan à partir d’insectes, ces derniers représentant une matière première abondante et renouvelable.
L’obtention d’une chitine et/ou d’un chitosan de masse moléculaire élevée est recherchée dans de nombreuses applications, telles que par exemple en cosmétique et en pharmacie.
A titre d’exemple, l’utilisation d’un chitosan de masse moléculaire élevée permet de maximiser l’effet antimicrobien, limiter la perte d’eau trans-épidermique ou encore l’irritation de la peau.
Pour obtenir un chitosan de masse moléculaire élevée, il est indispensable d’obtenir, dans un premier temps, une chitine de masse moléculaire élevée.
En effet, le chitosan est obtenu par désacétylation de la chitine. Or, cette étape est susceptible de réduire la masse moléculaire de la molécule. Ainsi, plus la chitine aura une masse moléculaire élevée, plus le chitosan obtenu à partir de cette chitine aura une masse moléculaire élevée.
En outre, les techniques actuelles ne permettent pas d’augmenter la masse moléculaire de la chitine et/ou du chitosan, lorsque la chitine et/ou le chitosan obtenu(s) à l’issue d’un procédé a (ont) une masse moléculaire insuffisante pour l’application visée.
L’obtention d’une chitine et/ou d’un chitosan présentant, outre une masse moléculaire élevée, une pureté élevée, est également recherchée, notamment dans le cadre des applications mentionnées ci-avant.
L’invention concerne donc une chitine dont la masse moléculaire est supérieure ou égale à 855 kg.mol·1.
Avantageusement, la masse moléculaire de la chitine selon l’invention est supérieure ou égale à 900 kg.mol-1, de préférence supérieure ou égale à 950 kg.mol-1, plus préférentiellement supérieure ou égale à 1000 kg.mol-1.
La masse moléculaire est déterminée grâce à la mesure de la viscosité par chute de bille.
De préférence, la masse moléculaire est déterminée selon une méthode de mesure de la viscosité par chute de bille basée sur celle décrite dans la publication suivante : « Pacheco et al. ; Structural characterization of chitin and chitosan obtained by biological and chemical methods ; Biomacromolecules ; 12, 3285-3290, 2011 ».
Plus particulièrement, cette méthode est utilisée et décrite dans l’Exemple 1.
Avantageusement, la chitine selon l’invention comporte moins de 1,5% en poids d’acides aminés sur le poids sec total de chitine.
De préférence, la chitine selon l’invention comporte moins de 1% en poids, plus préférentiellement moins de 0,9% en poids, encore plus préférentiellement moins de
0,8% en poids, et encore plus préférentiellement moins de 0,7% en poids d’acides aminés sur le poids sec total de chitine.
Avantageusement, les acides aminés résiduels présents dans la chitine selon l’invention consistent en : Alanine, Cystéine, Valine, Histidine, Lysine, Tryptophane ou une combinaison de deux ou plus de ceux-ci, de préférence en une combinaison de tous ces acides aminés.
La teneur en acides aminés de la chitine selon l’invention est de préférence déterminée selon la méthode NF EN ISO 13904 pour le tryptophane et NF EN ISO 13903 pour les autres acides aminés.
L’abondance relative, exprimée en pourcentage, peut être calculée en rapportant la teneur de chaque acide aminé à la teneur totale en acides aminés.
Dans toute la demande, lorsqu’aucune date n’est précisée pour un règlement, une norme ou une directive, il s’agit du règlement, de la norme ou de la directive en vigueur à la date de dépôt.
Avantageusement, la chitine selon l’invention comporte moins de 3% en poids de cendres sur le poids sec total de chitine.
La chitine selon l’invention comporte de préférence moins de 2,5% en poids, plus préférentiellement moins de 2% en poids, encore plus préférentiellement moins de 1,8% en poids de cendres sur le poids sec total de chitine.
La méthode de détermination de la teneur en cendres est bien connue de l’homme du métier. De préférence, cette teneur est déterminée selon la norme NF V18-101.
Avantageusement, la chitine selon l’invention comporte moins de 1% en poids, de préférence moins de 0,5% en poids, plus préférentiellement moins de 0,2% en poids de lipides sur le poids sec total de chitine.
Encore plus préférentiellement, la chitine selon l’invention ne comporte pas de lipides.
Les méthodes de détermination de la teneur en lipides ou matière grasse sont bien connues de l’homme du métier. A titre d’exemple et de manière préférée, la détermination de cette teneur sera effectuée en suivant la méthode du règlement CE 152/2009.
La chitine selon l’invention possède ainsi des teneurs faibles en acides aminés, lipides et cendres, et présente donc une grande pureté.
En effet, dans le cadre de la présente demande, pour mesurer la pureté, les teneurs en impuretés connues, à savoir en acides aminés, lipides et cendres, sont soustraites à la valeur de pureté absolue (100%) pour obtenir la valeur de la pureté estimée par différence. Ainsi, par exemple, un échantillon qui contient 30% d’acides aminés, 10% de lipides et 1% de cendres, se voit dès lors attribuer une pureté par différence de 100-30-10-1=59%.
Ainsi, la chitine selon l’invention présente avantageusement une pureté par différence supérieure ou égale à 95%.
De préférence, la chitine selon l’invention a une pureté par différence supérieure ou égale à 96%, de préférence supérieure ou égale à 97%.
De préférence, la chitine selon l’invention est une chitine isolée.
Par chitine « isolée », on entend une chitine qui a été isolée ou extraite de son milieu naturel.
Plus particulièrement, dans le cadre de la présente demande, la chitine est isolée ou extraite d’insectes, plus spécifiquement de cuticules d’insectes.
L’invention concerne en outre un chitosan dont la masse moléculaire est supérieure ou égale à 250 kg.mol-1.
Avantageusement, la masse moléculaire du chitosan selon l’invention est supérieure ou égale à 300 kg.mol-1, de préférence supérieure ou égale à 325 kg.mol-1, plus préférentiellement supérieure ou égale à 350 kg.mol-1.
La masse moléculaire est déterminée de la même manière qu’indiquée ci-avant pour la chitine selon l’invention.
Le chitosan selon l’invention présente également une grande pureté.
En effet, le chitosan selon l’invention présente avantageusement une pureté par différence supérieure ou égale à 95%.
De préférence, le chitosan selon l’invention a une pureté par différence supérieure ou égale à 96%, de préférence supérieure ou égale à 97%.
La pureté par différence du chitosan selon l’invention est mesurée de la même manière qu’indiqué ci-avant pour la chitine.
De préférence, le chitosan selon l’invention est un chitosan isolé.
Par chitosan « isolé », on entend un chitosan qui a été obtenu à partir d’une chitine isolée ou extraite de son milieu naturel.
Plus particulièrement, dans le cadre de la présente demande, le chitosan est obtenu à partir d’une chitine isolée ou extraite d’insectes, plus spécifiquement de cuticules d’insectes.
L’invention concerne également un procédé d’obtention de chitine et/ou chitosan, à partir d’insectes, comprenant les étapes suivantes :
- la séparation des cuticules de la partie molle des insectes, puis
- le traitement basique des cuticules.
Le procédé d’obtention de chitine et/ou chitosan selon l’invention permet l’obtention d’une chitine et/ou d’un chitosan de masse moléculaire élevée. En outre, la chitine et/ou le chitosan présentent également une pureté, telle qu’une pureté par différence, élevée.
Par « insectes », on entend des insectes à n’importe quel stade de développement, tel qu’un stade adulte, larvaire ou un stade de nymphe (stade intermédiaire). Avantageusement, les insectes mis en œuvre dans le procédé selon l’invention sont à un stade larvaire lorsque les insectes sont des holométaboles, à un stade de nymphe (stade intermédiaire) lorsque les insectes sont des hétérométaboles, ou le cas échéant à un stade adulte.
Les insectes mis en œuvre dans le procédé selon l’invention peuvent être comestibles.
Avantageusement, les insectes préférés pour la mise en œuvre du procédé selon l’invention sont par exemple les coléoptères, les diptères, les lépidoptères, les isoptères, les orthoptères, les hyménoptères, les blattoptères, les hémyptères, les hétéroptères, les éphéméroptères et les mécoptères, de préférence, les coléoptères, les diptères, les orthoptères, les lépidoptères ou leurs mélanges, encore plus préférentiellement les coléoptères.
Les coléoptères préférentiellement mis en œuvre dans le procédé selon l’invention appartiennent aux familles des Tenebrionidae, Melolonthidae, Dermestidae, Coccinellidae, Cerambycidae, Carabidae, Buprestidae, Cetoniidae, Dryophthoridae, ou leurs mélanges.
Plus préférentiellement, il s’agit des coléoptères suivants : Tenebrio molitor, Alphitobius diaperinus, Zophobas morio, Tenebrio obscurus, Tribolium castaneum et Rhynchophorus ferrugineus, ou leurs mélanges. Encore plus préférentiellement, il s’agit de Tenebrio molitor.
Le procédé d’obtention de chitine et/ou chitosan selon l’invention comprend une étape de séparation des cuticules de la partie molle des insectes.
La cuticule est la couche externe (ou exosquelette) sécrétée par l'épiderme des insectes. Elle est en général formée de trois couches : l’épicuticule, l’exocuticule et l’endocuticule.
Par « partie molle », on vise la chair (comportant notamment les muscles et les viscères) et le jus (comportant notamment les liquides biologiques, l’eau et l’hémolymphe) des insectes. En particulier, la partie molle ne consiste pas en le jus des insectes.
La séparation des cuticules de la partie molle des insectes peut être effectuée à l’aide de tout type de séparateur adapté.
Selon un premier mode de réalisation, la séparation des cuticules de la partie molle est réalisée à l’aide d’un séparateur à bande.
Selon un second mode de réalisation, la séparation des cuticules de la partie molle est réalisée à l’aide d’un filtre presse.
Cette étape de séparation des cuticules de la partie molle des insectes est plus amplement décrite dans l’étape 2 du procédé détaillé d’obtention de chitine et/ou chitosan selon l’invention ci-après.
Cette séparation des cuticules de la partie molle de l’insecte permet notamment de séparer la chitine de la partie molle. En effet, les cuticules obtenues à l’issue de cette étape de séparation présentent une teneur en chitine élevée de l’ordre de 10 à 30% en poids sur le poids total de cuticules, comme indiqué ci-après.
En particulier, l’étape de séparation des cuticules de la partie molle s’effectue sans qu’aucune étape préalable de broyage des insectes, notamment sous forme de particules, n’ait été effectuée.
Le procédé d’obtention de chitine et/ou chitosan selon l’invention comprend avantageusement une étape d’abattage préalable à l’étape de séparation des cuticules de la partie molle.
Cette étape d’abattage est plus amplement décrite dans l’étape 1 du procédé détaillé d’obtention de chitine et/ou chitosan selon l’invention ci-après.
Avantageusement, suite à l’étape 1 d’abattage, les insectes sont directement utilisés pour la mise en œuvre de l’étape 2 de séparation des cuticules de la partie molle des insectes, c’est-à-dire que les insectes ne sont soumis à aucun traitement, tel qu’un broyage, une congélation ou une déshydratation entre l’étape 1 et l’étape 2.
Le procédé d’obtention de chitine et/ou chitosan selon l’invention comprend une étape de traitement basique des cuticules, suite à l’étape de séparation des cuticules de la partie molle des insectes.
Avantageusement, le traitement basique est réalisé à l’aide d’une base forte.
Avantageusement, la base forte est choisie parmi l’hydroxyde de sodium ou soude, de potassium, d’ammonium. De préférence, la base forte est l’hydroxyde de sodium.
De préférence, la base utilisée pour le traitement basique est sous forme d’une solution basique aqueuse.
Dans ce cas, la concentration molaire de la base en solution aqueuse est avantageusement comprise entre 0,1 et 5 mol.L-1, de préférence comprise entre 0,5 et 2 mol.L-1, encore plus préférentiellement égale à 1 mol.L-1 (par exemple soude molaire).
On notera que dans le cadre de la présente demande, et sauf stipulation contraire, les gammes de valeurs indiquées s’entendent bornes incluses.
De préférence, la concentration de la base est ajustée de manière à obtenir un ratio base en poids sec en g : cuticules en poids sec en g : eau en poids en g compris entre 0,4 : 0,45 :10 et 1,2 : 0,45 : 30, de préférence d’environ 0,9 :0,45 :22.
Cette étape de traitement basique des cuticules est plus amplement décrite dans l’étape 3 du procédé détaillé d’obtention de chitine et/ou chitosan selon l’invention ci-après.
Avantageusement, l’étape de traitement basique des cuticules est suivie d’une étape de récupération de la chitine.
Cette étape de récupération de la chitine est plus amplement décrite dans l’étape 4 du procédé détaillé d’obtention de chitine et/ou chitosan selon l’invention ciaprès.
Optionnellement, le procédé d’obtention de chitine et/ou chitosan selon l’invention comprend en outre une étape de lavage de la chitine.
Cette étape optionnelle de lavage de la chitine est plus amplement décrite dans l’étape 5 du procédé détaillé d’obtention de chitine et/ou chitosan selon l’invention ciaprès.
Optionnellement, le procédé d’obtention de chitine et/ou chitosan selon l’invention comprend en outre une étape de séchage de la chitine.
Cette étape optionnelle de séchage de la chitine est plus amplement décrite dans l’étape 6 du procédé détaillé d’obtention de chitine et/ou chitosan selon l’invention ci-après.
La chitine pouvant être commercialisée sous forme de poudre, le procédé d’obtention de chitine et/ou chitosan selon l’invention peut optionnellement comprendre une étape de broyage de la chitine.
Cette étape optionnelle de broyage de la chitine est plus amplement décrite dans l’étape 7 du procédé détaillé d’obtention de chitine et/ou chitosan selon l’invention ci-après.
L’étape de broyage peut également être effectuée afin de favoriser la réaction de désacétylation, qui permet de préparer du chitosan à partir de chitine.
L’étape de désacétylation, qui vise à transformer la chitine en chitosan, n’est donc mise en œuvre que lorsque le produit souhaité est le chitosan.
Cette étape de désacétylation de la chitine est plus amplement décrite à l’étape 8 du procédé détaillé d’obtention de chitine et/ou chitosan selon l’invention ci-après.
Avantageusement, l’étape de désacétylation de la chitine est suivie d’une étape de récupération du chitosan.
Cette étape de récupération du chitosan est plus amplement décrite dans l’étape 9 du procédé détaillé d’obtention de chitine et/ou chitosan selon l’invention ciaprès.
Optionnellement, le procédé d’obtention de chitine et/ou chitosan selon l’invention comprend en outre une étape de séchage du chitosan.
Cette étape optionnelle de séchage du chitosan est plus amplement décrite à l’étape 10 du procédé détaillé d’obtention de chitine et/ou chitosan selon l’invention ciaprès.
On notera que les étapes 5 à 7, 10 mentionnées ci-avant, et décrites plus amplement dans le procédé détaillé d’obtention de chitine et/ou chitosan selon l’invention ci-après, sont optionnelles. Toutefois, le procédé d’obtention de chitine et/ou chitosan selon l’invention comprend avantageusement une ou plusieurs de ces étapes, de préférence toutes ces étapes.
On notera par ailleurs que les caractéristiques des étapes 1 à 10 du procédé détaillé d’obtention de chitine et/ou chitosan selon l’invention, qui sont décrites ciaprès, ne sont pas limitées à une mise en œuvre dans ledit procédé détaillé, mais s’appliquent à tous les modes de réalisation du procédé d’obtention de chitine et/ou chitosan selon l’invention décrits dans la présente demande, indépendamment du nombre d’étapes prévu dans ces modes de réalisation.
Ces caractéristiques s’appliquent également à un procédé particulier d’obtention de chitine et à un procédé particulier d’obtention de chitosan selon l’invention, décrits ci-après.
L’invention vise donc plus particulièrement un procédé particulier d’obtention de chitine, à partir d’insectes, comprenant les étapes suivantes :
l’abattage des insectes,
- la séparation des cuticules de la partie molle des insectes,
- le traitement basique des cuticules,
- la récupération de la chitine.
Ce procédé comprend donc les étapes 1 à 4 du procédé détaillé d’obtention de chitine et/ou de chitosan ci-après et avantageusement une ou plusieurs des étapes optionnelles 5 à 7 de ce procédé détaillé.
L’invention concerne également la chitine susceptible d’être obtenue par le procédé d’obtention de chitine et/ou chitosan selon l’invention, ou par le procédé particulier d’obtention de chitine selon l’invention.
L’invention vise donc également un procédé particulier d’obtention de chitosan, à partir d’insectes, comprenant les étapes suivantes :
l’abattage des insectes,
- la séparation des cuticules de la partie molle des insectes,
- le traitement basique des cuticules,
- la récupération de la chitine,
- la désacétylation de la chitine, et
- la récupération du chitosan.
Ce procédé comprend donc les étapes 1 à 4, 8 et 9 du procédé détaillé d’obtention de chitine et/ou de chitosan ci-après et avantageusement une ou plusieurs des étapes optionnelles 5 à 7, 10 de ce procédé détaillé.
L’invention concerne également le chitosan susceptible d’être obtenu par le procédé d’obtention de chitine et/ou chitosan selon l’invention, ou par le procédé particulier d’obtention de chitosan selon l’invention.
La chitine et/ou le chitosan selon l’invention ainsi que la chitine et/ou le chitosan susceptible(s) d’être obtenu(s) par un procédé selon l’invention peu(ven)t avantageusement être utilisé(s) dans diverses applications :
- dans des compositions cosmétiques, pharmaceutiques, nutraceutiques ou diététiques,
- comme biomatériaux pour traiter des brûlures en tant que seconde peau, pour réaliser des pansements cornéens ou des fils chirurgicaux,
- comme agent filtrant, texturant, floculant et/ou adsorbant notamment pour la filtration et dépollution de l'eau.
Procédé détaillé d’obtention de chitine et/ou chitosan selon l’invention • Etape 1 : Abattage des insectes
Cette étape 1 d’abattage peut avantageusement s’effectuer par choc thermique, tel que par ébouillantage ou par blanchiment. Cette étape 1 permet d’abattre les insectes tout en abaissant la charge microbienne (réduction du risque d’altération et sanitaire) et en inactivant les enzymes internes des insectes pouvant déclencher une autolyse, et ainsi un brunissement rapide de ceux-ci.
Pour l’ébouillantage, les insectes, de préférence des larves, sont ainsi ébouillantés à l’eau pendant 2 à 20 minutes, préférentiellement, 5 à 15 minutes. De préférence, l’eau est à une température comprise entre 87 à 100°C, préférentiellement 92 à 95°C.
La quantité d’eau introduite lors de l’ébouillantage est déterminée de la façon suivante : le ratio du volume d’eau en ml sur le poids en g d’insecte est de préférence compris entre 0,3 et 10, plus préférentiellement entre 0,5 et 5, encore plus préférentiellement entre 0,7 et 3, encore plus préférentiellement de l’ordre de 1.
Pour le blanchiment, les insectes, de préférence des larves, sont blanchis à l’eau ou à la vapeur (buses ou lit de vapeur) à une température comprise entre 80 et 105°C, de préférence entre 87 et 105°C, plus préférentiellement entre 95 et 100°C, encore plus préférentiellement 98°C ou bien à l’eau à une température comprise entre 90 et 100°C, préférentiellement entre 92 et 95°C (par buses d’aspersion) ou en mode mixte (eau + vapeur) à une température comprise entre 80 et 130O, de préférence entre 90 et 120°C, plus préférentiellement entre 95 et 105Ό, encore plus préférentiellement 98°C. Lorsque les insectes sont blanchis uniquement à la vapeur, le blanchiment est avantageusement réalisé dans des blancheurs à vapeur à circulation forcée (« forced steaming >>). Le temps de séjour dans la chambre de blanchiment est compris entre 5 secondes et 15 minutes, préférentiellement entre 1 et 7 minutes.
Avantageusement, suite à l’étape 1 d’abattage, les insectes sont directement utilisés pour la mise en œuvre de l’étape 2 de séparation des cuticules de la partie molle des insectes, c’est-à-dire que les insectes ne sont soumis à aucun traitement, tel qu’un broyage, une congélation ou une déshydratation entre l’étape 1 et l’étape 2.
• Etape 2 : Séparation des cuticules de la partie molle des insectes
L’étape 2 a pour objectif de séparer les cuticules de la partie molle des insectes.
La séparation des cuticules de la partie molle des insectes peut être effectuée à l’aide de tout type de séparateur adapté.
Selon un premier mode de réalisation, la séparation des cuticules de la partie molle est réalisée à l’aide d’un séparateur à bande.
Par « séparateur à bande >>, on vise un dispositif permettant la séparation de la partie solide de la partie molle d’un produit, et qui comporte une bande de serrage (ou bande presseuse) et un tambour perforé.
A titre d’exemple, un séparateur à bande peut comprendre une bande de serrage et un tambour perforé, la bande de serrage entourant au moins une partie du tambour perforé.
La bande de serrage permet l’apport et l’application des insectes contre le tambour perforé de sorte à faire passer, par pression, la partie molle des insectes à travers les perforations du tambour, tandis que la partie solide des insectes (cuticules) reste à l’extérieur du tambour.
Les cuticules peuvent ensuite être récupérées à l’aide d’un couteau racleur.
A titre d’exemple, on peut citer les séparateurs à bande provenant de la société Baader, tels que les séparateurs à bande 601 à 607 (« soft separator 601 to 607 »), ou encore les séparateurs à bande SEPAmatic® de BFD Corporation (gamme 410 à 4000V).
Avantageusement, le diamètre des perforations du tambour est compris entre 0,5 et 3 mm, de préférence entre 1 et 2 mm.
Concernant la pression, l’homme du métier est à même de déterminer la pression à exercer permettant la séparation des cuticules de la partie molle des insectes.
Selon un second mode de réalisation, la séparation des cuticules de la partie molle est réalisée à l’aide d’un filtre presse.
Un filtre presse est composé de toiles filtrantes, et permet une séparation selon le principe de filtration sous pression.
Avantageusement, le filtre presse utilisé dans le procédé d’obtention de chitine et/ou chitosan selon l’invention est un filtre presse à bandes.
Un filtre presse à bandes comporte deux bandes de serrage perforées (également appelées « toiles filtrantes »). Les insectes sont placés entre les deux bandes de serrage perforées de sorte à faire passer, par pression, la partie molle des insectes à travers les perforations des bandes de serrage, tandis que la partie solide des insectes restent entre les deux bandes de serrage perforées.
L’homme du métier est à même de déterminer le diamètre des perforations des bandes de serrage ainsi que la pression à exercer, permettant la séparation des cuticules de la partie molle des insectes.
A titre d’exemple, on peut citer le filtre presse à bandes (ou « presse à bandes ») provenant de la société Flottweg, ou encore les filtres presses à bandes de la société ATR Créations.
Cette étape de séparation des insectes se distingue d’un pressage classique pouvant être réalisé par exemple avec une presse mono-vis ou bi-vis en ce qu’elle permet une séparation (nette) de la partie molle et des cuticules des insectes et non une séparation d’un jus d’une fraction solide.
Avantageusement, la séparation des cuticules de la partie molle des insectes est effectuée à l’aide d’un séparateur à bande.
Les cuticules obtenues dans l’étape 2 comportent entre 10 et 30%, de préférence entre 15 et 25% en poids de chitine, sur le poids sec total de cuticules.
La détermination du taux de chitine est effectuée par extraction de celle-ci. A titre d’exemple, une méthode de détermination du taux de chitine pouvant être utilisée est la méthode ADAC 991.43.
• Etape 3: Traitement basique des cuticules
Dans l’étape 3, les cuticules récupérées à l’issue de l’étape 2 sont soumises à un traitement basique, c’est-à-dire qu’elles sont mises en contact avec une base (ou agent basique).
Avantageusement, le traitement basique est réalisé à l’aide d’une base forte.
Avantageusement, la base forte est choisie parmi l’hydroxyde de sodium ou soude, de potassium, d’ammonium. De préférence, la base forte est l’hydroxyde de sodium.
De préférence, la base utilisée pour le traitement basique est sous forme d’une solution basique aqueuse.
Dans ce cas, la concentration molaire de la base en solution aqueuse est avantageusement comprise entre 0,1 et 5 mol.L-1, de préférence comprise entre 0,5 et 2 mol.L-1, encore plus préférentiellement égale à 1 mol.L-1 (par exemple soude molaire).
De préférence, la concentration de la base est ajustée de manière à obtenir un ratio base en poids sec en g : cuticules en poids sec en g : eau en poids en g compris entre 0,4 : 0,45 :10 et 1,2 : 0,45 : 30, de préférence d’environ 0,8 : 0,45 : 20.
Le traitement basique est avantageusement réalisé pendant une durée comprise entre 5 et 60 heures, de préférence pendant une durée comprise entre 10 et 60 heures, plus préférentiellement entre 15 et 55 heures.
La durée du traitement basique pourra avantageusement être adaptée selon les propriétés de la chitine que l’on souhaite obtenir, telles que sa blancheur.
Par exemple, dans le cas où l’obtention d’une chitine de couleur blanche n’est pas particulièrement souhaitée, la durée du traitement basique pourra être inférieure à 30 heures, telle que par exemple 20 heures environ.
A l’inverse, dans le cas où l’obtention d’une chitine de couleur blanche est souhaitée, la durée du traitement basique sera avantageusement d’au moins 30 heures, de préférence d’au moins 40 heures, telle que par exemple 48 heures environ.
Avantageusement, le traitement basique est réalisé à une température comprise entre 60 et 100O, de préférence comprise entre 80 et 100°C, plus préférentiellement d’environ 90 °C.
Pour cela, le milieu réactionnel peut être chauffé, par exemple à l’aide d’un bain d’huile, d’un échangeur de chaleur ou d’un système de chauffage à double enveloppe, de sorte à atteindre la température souhaitée.
L’étape de traitement basique est avantageusement réalisée sous agitation.
• Etape 4: Récupération de la chitine
L’étape 4 de récupération de la chitine, à partir du milieu réactionnel obtenu à la fin de l’étape 3, peut être réalisée par toute méthode de récupération appropriée. Ces méthodes sont connues de l’homme du métier.
A titre d’exemple, on peut citer la filtration, la centrifugation et la décantation.
Avantageusement, la récupération de la chitine est réalisée par filtration.
• Etape (optionnelle) 5: Lavage de la chitine
La chitine récupérée à l’issue de l’étape 4 est ensuite optionnellement lavée.
L’étape 5 de lavage de la chitine est avantageusement réalisée à l’aide d’eau du robinet. De préférence, cette eau a une température comprise entre 15 et 60°C.
De préférence, le lavage est réalisé jusqu’à neutralisation du pH.
• Etape (optionnelle) 6: Séchage de la chitine
La chitine est ensuite optionnellement séchée.
De préférence, l’étape de séchage est réalisée à une température comprise entre 40 et 105 O, de préférence à environ 60 °C.
L’étape de séchage est réalisée pendant une durée comprise entre 10 et 80 heures, de préférence pendant environ 24 heures.
Avantageusement, le séchage est réalisé à l’aide d’une étuve de séchage, telle que le modèle FED 115 de la société Binder®.
Afin de préparer du chitosan à partir de la chitine, les étapes suivantes peuvent en outre être réalisées :
• Etape (optionnelle) 7: Broyage de la chitine
La chitine obtenue à l’issue de l’étape 4, 5 ou 6 est ensuite optionnellement broyée, par exemple dans un broyeur ultracentrifuge à tamis.
La production de chitosan à partir de chitine, par la réaction de désacétylation, dépend en grande partie de la taille des particules de chitine. Ainsi, un broyage très fin de la chitine avant désacétylation permet d’augmenter significativement les rendements et la vitesse de la réaction de désacétylation, comme cela est illustré dans le Tableau 1 ci-après :
| Broyage 30 s | Broyage 45 s | Broyage 60 s | Broyage 120 s | |
| 50% des particules | < 174 pm | < 117 pm | < 95 pm | < 67 pm |
| 90% des particules | < 310 pm | < 244 pm | < 157 pm | < 159 pm |
| DA* | 99% | 90% | 85% | 80% |
*Mesure du Degré d’Acétylation DA
Tableau 1 : Efficacité de la désacétylation selon le broyage préalable de la chitine
Les conditions de la désacétylation effectuée dans l’essai rapporté dans le Tableau 1 sont les suivantes: 4 heures de réaction, 100°C, NaOH en solution aqueuse à 30% en volume, dans un ratio chitine estimée : solution de NaOH égal à 1:20.
Par conséquent, la chitine est préférentiellement broyée à une taille de particules inférieure à 200 pm, plus préférentiellement, inférieure à 160 pm.
• Etape 8 : Désacétylation de la chitine
Cette étape n’est mise en œuvre que dans le cas où l’obtention de chitosan est souhaitée.
La chitine est ensuite placée dans un réacteur où est ajoutée une base.
Avantageusement, la désacétylation de la chitine est réalisée à l’aide d’une base forte.
Avantageusement, la base forte est choisie parmi l’hydroxyde de sodium ou soude, de potassium, d’ammonium. De préférence, la base forte est l’hydroxyde de sodium.
De préférence, la base utilisée pour le traitement basique est sous forme d’une solution basique aqueuse, de préférence une solution basique aqueuse concentrée.
Dans ce cas, la concentration molaire de la base en solution aqueuse est avantageusement comprise entre 8 et 19 mol.L-1, de préférence comprise entre 10 et 15 mol.L-1, encore plus préférentiellement égale à 12,5 mol.L-1.
De préférence, la concentration de la base est ajustée de manière à obtenir un ratio base en poids sec en g : cuticules en poids sec en g : eau en poids en g compris entre 18:1 : 35 et 30 : 1 : 55, de préférence d’environ 24 : 1 : 45.
De préférence, la désacétylation est réalisée pendant 1 à 24 heures et préférentiellement 2 à 18 heures.
Avantageusement, cette désacétylation est réalisée en deux fois, avec une étape intermédiaire de neutralisation du pH. Par exemple, la désacétylation pourra être réalisée en deux fois deux heures, c’est-à-dire pendant 4 heures, avec une étape intermédiaire de neutralisation du pH intermédiaire.
La température de désacétylation se situe avantageusement entre 80 et 150 O, de préférence entre 90 et 120Ό et plus préférentiellement à 100O.
• Etape 9 : Récupération du chitosan
L’étape 9 de récupération du chitosan, à partir du milieu réactionnel obtenu à la fin de l’étape 8, peut être réalisée par toute méthode de récupération appropriée. Ces méthodes sont connues de l’homme du métier.
A titre d’exemple, on peut citer la filtration, la centrifugation et la décantation.
Avantageusement, la récupération du chitosan est réalisée par filtration.
Dans le cas où l’étape 7 de broyage de la chitine est mise en œuvre, le chitosan récupéré est sous forme de poudre.
Le chitosan peut ensuite subir toute opération connue de l’homme du métier permettant de le fonctionnaliser, notamment par l’ajout de radicaux (carboxylation, hydroxylation...) • Etape (optionnelle) 10 : Séchage
Le chitosan, pouvant être sous forme de poudre, est ensuite optionnellement séché entre 30 et 80 °C, avantageusement entre 50 et 70 °C, de préférence à environ 60°C, pour obtenir du chitosan ou une poudre de chitosan ayant une teneur en matière sèche supérieure à 85%, plus particulièrement supérieure à 90%.
L’invention sera mieux comprise au vu des exemples qui suivent, qui sont donnés à titre illustratif.
EXEMPLE 1 : Procédé d’obtention de chitine selon l’invention
I. Procédé d’obtention
Des larves de Tenebrio molitor ont été utilisées. A réception des larves, ces dernières peuvent être stockées à 4°C pendant 0 à 15 jours dans leurs bacs d’élevage avant l’abattage sans dégradation majeure. Le poids des larves (âge) utilisées est variable et par conséquent leur composition peut varier, comme cela est illustré dans le Tableau 2 ci-après :
| Biomasse (insectes) | mg | 23 | 35 | 58 | 80 | 108 | 154 |
| Matière sèche | %* | 34 | 34 | 34,2 | 37,9 | 39,6 | 39,5 |
| Cendres | O/ * /0 | 1,59 | 1,52 | 1,6 | 1,75 | 1,67 | 1,43 |
| Protéines brutes | o/ * /0 | 22,6 | 22,2 | 22 | 23,2 | 23,1 | 23,2 |
| Lipides | o/ * /0 | 6,62 | 6,88 | 7,98 | 10,3 | 10,9 | 11,7 |
* Les % sont exprimés en poids sec sur le poids humide de larves.
Tableau 2 : Composition biochimique des larves de Tenebrio molitor selon leur poids.
• Etape 1 : Abattage des insectes
Les larves vivantes (+4°C à + 25 °C) sont convoyées en couche d’épaisseur comprise entre 2 et 10 cm, sur un tapis à bande perforé (1 mm) jusqu’à une chambre de blanchiment. Les insectes sont ainsi blanchis à la vapeur (buses ou lit de vapeur) à 98°C sous ventilation forcée ou bien à l’eau à 92-95°C (buses d’aspersion) ou en mode mixte (eau + vapeur). Le temps de séjour dans la chambre de blanchiment est compris entre 5 secondes et 15 minutes, idéalement 5 minutes.
La température des larves en sortie de blanchiment est comprise entre 75°C et 98°C.
• Etape 2 : Séparation de la partie molle des cuticules des insectes
Les larves, une fois blanchies, sont convoyées jusqu’à la trémie d’alimentation d’un séparateur à bande, afin de séparer les cuticules de la partie molle des larves.
Avantageusement, la séparation s’effectue immédiatement après l’abattage de manière à ce que les larves n’aient pas le temps de refroidir à température ambiante.
Le séparateur à bande utilisé est un séparateur à bande 601 de la société Baader.
Le diamètre des perforations du tambour est de 1,3 mm.
La partie molle des insectes est récupérée dans une cuve.
Les cuticules sont récupérées à l’aide d’un couteau racleur.
Le pourcentage de matière sèche des cuticules est d’environ 45%.
Le taux d’humidité des cuticules est donc d’environ 55%.
• Etape 3: Traitement basique des cuticules
Dans un tricol de 2 L muni d’un réfrigérant et d’un agitateur mécanique (Heidolph® RZR1), on place 90,02 ± 0,02 g de cuticules humides obtenues à l’étape 2 (Matière Sèche = 40,1 ± 0,1 %) et 1,80 ± 0,02 L de solution aqueuse d’hydroxyde de sodium de concentration égale à 1 mol.L’1. Le milieu est chauffé avec un bain d’huile à une température de 90 ± 2 °C pendant 48 heures. Pendant toute la réaction, le milieu réactionnel est soumis à une agitation de 280 rpm.
Le ratio base en poids sec en g : cuticules en poids sec en g : eau en poids en g est environ égal à 0,9 :0,45 :22.
• Etape 4: Récupération de la chitine
Le milieu réactionnel obtenu à l’issue de l’étape 3 est ensuite filtré (Filtre SEFAR MEDIFAB® 03-60/42) de sorte à récupérer la chitine.
• Etape (optionnelle) 5: Lavage de la chitine
La chitine récupérée à l’issue de l’étape 4 est ensuite rincée à l’eau tiède du robinet jusqu’à neutralisation du pH.
• Etape (optionnelle) 6: Séchage de la chitine
La chitine est ensuite séchée pendant 24 heures, à 60°C, dans une étuve de séchage (Binder®, modèle FP53).
On obtient ainsi 6.3 ± 0.2 g de chitine.
II. Méthodes d’analyse
Mesure de la matière sèche et du taux d’humidité
Le pourcentage de matière sèche et le taux d’humidité sont calculés de la façon suivante.
g de chitine sont pesés dans des coupelles, introduits dans une étuve de séchage (Binder®, modèle FED 115) et séchés à 105 °C pendant 24 h (ou jusqu’à séchage complet).
Le pourcentage de matière sèche est obtenu en faisant le rapport de la masse sèche de chitine après séchage sur la masse de chitine avant séchage.
Le taux d’humidité est obtenu en ôtant le pourcentage de matière sèche à la valeur de 100%.
Cette méthode de mesure peut également être utilisée pour mesurer le pourcentage de matière sèche et le taux d’humidité des cuticules.
Mesure du taux de cendres
Le taux de cendres a été déterminé selon la méthode norme NF V18-101.
Mesure de la teneur en protéines brutes
Le taux de protéines est obtenu par la méthode Dumas, avec le coefficient de conversion de 6,25, adaptée de la norme NF EN ISO 16634-1.
Mesure de la teneur en lipides ou matières grasses
Le taux de lipides est obtenu par une méthode adaptée du règlement CE 152/2009 - procédé B - SN.
Teneur et abondance relative en acides aminés
La teneur en acides aminés de la chitine selon l’invention est de préférence déterminée selon la méthode NF EN ISO 13904 ou une méthode adaptée du règlement CE 152/2009 du 27-01-2009 - SN (ces deux méthodes étant équivalentes) pour le tryptophane, et selon la méthode NF EN ISO 13903 ou une méthode issue du règlement CE 152/2009 du 27-01-2009 - SN pour les autres acides aminés (ces deux méthodes étant équivalentes).
L’abondance relative a été calculée en rapportant la teneur de chaque acide aminé à la teneur totale en acides aminés.
Teneur totale en acides aminés
La teneur totale en acides aminés a été déterminée en additionnant les valeurs individuelles obtenues pour chaque acide aminé, y compris le tryptophane.
Pureté par différence
Dans le cas de cette mesure, les teneurs en impuretés connues (acides aminés, lipides et cendres) ont été soustraites à la valeur de pureté absolue (100%) pour obtenir la valeur de la pureté estimée par différence. Ainsi, par exemple, un échantillon qui contient 30% d’acides aminés, 10% de lipides et 1% de cendres, se voit dès lors attribuer une pureté par différence de 100-30-10-1=59%
Masse moléculaire de la chitine
La méthode de détermination de la masse moléculaire de la chitine repose sur des mesures de viscosité de solutions diluées de chitine. Les dilutions sont réalisées dans du diméthyleacétamide contenant 5% de chlorure de lithium (DMAc-LiCI 5%). En effet, les polymères en solution augmentent la viscosité d’un solvant. La viscosité du polymère en solution dépend de sa concentration et de sa masse moléculaire. La relation est définie par l’équation de Mark-Houwink-Sakurada :
[77] = KMa avec [77] : la viscosité intrinsèque, M : la masse moléculaire, K et a des constantes spécifiques d’un système solvant/polymère à une température donnée.
Les valeurs pour la chitine dissoute dans le solvant DMAc-LiCI 5 % à 25 °C sont : K = 0,24 mL.g-1 et a = 0,69 (Pacheco et al ; 2011 ).
La viscosité intrinsèque correspond à la viscosité spécifique quand la concentration du polymère tend vers zéro.
[77] =limc^0(^)
Pour mesurer la viscosité spécifique de la chitine, cinq solutions de faibles concentrations sont préparées dans le DMAc-LiCI 5 %. Les temps d’écoulement du solvant seul (t0) et des solutions (t) des différentes concentrations sont mesurés par un micro viscosimètre à chute de bille pour calculer la viscosité relative (η). A partir de la viscosité relative (?7r), il est nécessaire de calculer les viscosités spécifiques (?7sp)5 réduites (î7red) et inhérentes (z7inh) de chaque concentration de chitine.
„ „ H „ V SV „ ln0?r)
Vsp — hr 1 > ^7 red — c > ^inh — c
La viscosité intrinsèque est alors calculée en traçant les courbes « concentration vs. viscosité réduite » (pente positive) et « concentration vs. viscosité inhérente » (pente négative). Chacune de ces courbes est extrapolée à la concentration de zéro. L’ordonnée à l’origine correspond à la viscosité intrinsèque. Des résultats similaires sont attendus des deux courbes. Enfin, pour déterminer la masse moléculaire de la chitine, l’équation de Mark-Houwink-Sakurada est appliquée.
III. Résultats
Les propriétés de la chitine obtenue à l’issue de l’étape 6 sont présentées dans le Tableau 3 ci-dessous.
| Cendres (g/100 g MS*) | 1,71 +/-0,11 |
| Matières grasses (g/100 g MS*) | 0 +/- 0,00 |
| Teneur totale en aa** (g/100 g MS*) | 0,68 +/- 0,003 |
| Pureté par différence (%) | 97,61 +/-0,14 |
| Masse moléculaire (kg.mol·1) | 1015,5+/- 98,29 |
*MS : matière sèche **aa : acides aminés
Tableau 3 : Propriétés de la chitine obtenue dans l’Exemple 1
L’abondance relative en acides aminés de la chitine obtenue est présentée dans le Tableau 4 ci-dessous. Elle est exprimée en %.
| Thréonine (Thr) | 0,00 |
| Sérine (Ser) | 0,00 |
| Proline (Pro) | 0,00 |
| Glycine (Glu) | 0,00 |
| Acide glutamique (Glu) | 0,00 |
| Alanine (Ala) | 12,48 |
| Cystéine (Cys) | 5,87 |
| Valine (Val) | 8,07 |
| Méthionine (Met) | 0,00 |
| Isoleucine (Ile) | 0,00 |
| Acide aspartique (Asp) | 0,00 |
| Leucine (Leu) | 0,00 |
| Tyrosine (Tyr) | 0,00 |
| Phénylalanine (Phe) | 0,00 |
| Histidine (His) | 44,77 |
| Lysine (Lys) | 28,62 |
| Arginine (Arg) | 0,00 |
| Tryptophane (Trp) | 0,19 |
| Total | 100,00 |
Tableau 4 : Abondance relative en acides aminés de la chitine obtenue dans (Exemple acides aminés apparaissent particulièrement résistants au procédé, à savoir l’alanine, la cystéine, la valine, l’histidine et la lysine. L’histidine, la lysine et l’alanine sont les 3 acides aminés les plus résistants. Ils représentent en effet plus de 85% des acides aminés résiduels.
EXEMPLE 2 : Procédé d’obtention de chitosan selon l’invention
Pour préparer le chitosan, on utilise la chitine résultant de l’étape 4, 5 ou 6 de (Exemple 1.
• Etape (optionnelle) 7: Broyage de la chitine
La chitine a été broyée dans un broyeur ultracentrifuge à tamis à une taille de 250 pm.
• Etape 8 : Désacétylation de la chitine
La chitine est ensuite placée dans un réacteur où est ajoutée une solution de soude concentrée. L’hydroxyde de sodium en solution aqueuse à une teneur de 35% (soit une concentration d’hydroxyde de sodium en solution aqueuse de 12,5 mol/L) est ajouté selon un ratio poids en g de chitine broyée / volume en mL d’hydroxyde de sodium en solution aqueuse égal à 1 :50. La cuve est ensuite chauffée à une température de 100 O. La réaction de désacétylation est réalisée pendant 2 fois 2 heures, avec une étape intermédiaire de neutralisation du pH.
• Etape 9 : Récupération du chitosan
Le milieu réactionnel obtenu à l’issue de (étape 8 est ensuite filtré (Filtre SEFAR MEDIFAB® 03-60/42) de sorte à récupérer du chitosan.
On obtient ainsi du chitosan en poudre.
La masse moléculaire du chitosan obtenu est égale à 350 +/- 26 kg.mol-1.
La pureté par différence du chitosan obtenu est supérieure à 97%.
• Etape (optionnelle) 10 : Séchage
La poudre de chitosan est ensuite séchée à 60°C afin d’obtenir une poudre ayant une teneur en matière sèche supérieure à 85%.
EXEMPLE 3 : Procédé d’obtention de chitine comparatif
Ce procédé comparatif ne comprend pas d’étape de séparation de la partie molle des cuticules des insectes (étape 2 du procédé selon l’invention), mais comprend une étape de broyage puis pressage des insectes (étape 2 du procédé comparatif).
I. Matériel et méthodes • Etape 1 : Abattage des insectes
Cette étape est identique à celle de l’Exemple 1.
• Etape 2 : Broyage puis pressage des insectes
Suite à l’étape 1, 600 g de larves sont introduites dans un bêcher contenant 450 mL d’eau, et mixées à l’aide d’un mixeur Thermomix®, à vitesse maximale pendant 30 secondes. Le liquide ainsi obtenu est pressé avec une presse bi-vis de type Angel dans les conditions suivantes :
- Vitesse = 82 tr/min;
- W (énergie) = 3 HP (chevaux vapeur) soit 2,68 x 106 J;
Porosité (approximative) = 0,5 mm dans la première partie et 0,2 mm dans la dernière partie.
On obtient ainsi un jus de presse et un gâteau de presse de 133,1 ±0,1 g en poids humide.
• Etape 3: Traitement basigue du gâteau de presse
Dans un tricol de 2 L muni d’un réfrigérant et d’un agitateur mécanique (Heidolph® RZR1), on place 90,06 ± 0,05 g de gâteau de presse obtenu à l’étape 2 (Matière Sèche = 48 ± 1 %) et 1,80 ± 0,02 L de solution aqueuse d’hydroxyde de sodium de concentration égale à 1 mol.L’1. Le milieu est chauffé avec un bain d’huile à une température de 90 ± 2 °C pendant 48 heures. Pendant toute la réaction, le milieu réactionnel est soumis à une agitation de 280 rpm.
• Etape 4: Récupération de la chitine
Le milieu réactionnel obtenu à l’issue de l’étape 3 est ensuite filtré (Filtre SEFAR MEDIFAB® 03-60/42) de sorte à récupérer la chitine.
• Etape 5: Lavage de la chitine
La chitine récupérée à l’issue de l’étape 4 est ensuite rincée à l’eau tiède du robinet jusqu’à neutralisation du pH.
• Etape 6: Séchage de la chitine
La chitine est ensuite séchée pendant 24 heures, à 60°C, dans une étuve de séchage (Binder®, modèle FP53).
On obtient ainsi 8.1 ± 0.7 g de chitine.
II. Résultats
Les méthodes d’analyse sont identiques à celles décrites à l’Exemple 1.
Les propriétés de la chitine ainsi obtenue sont présentées dans le Tableau 5 cidessous.
| Cendres (g/100 g MS*) | 1,825 +/- 0,40 |
| Matières grasses (g/100 g MS*) | 0 +/- 0,00 |
| Teneur totale en aa** (g/100 g MS*) | 1,105 +/-0,18 |
| Masse moléculaire (kg.mol-1) | 799,5 +/- 53,03 |
*MS : matière sèche **aa : acides aminés
Tableau 5 : Propriétés de la chitine obtenue dans l’Exemple 2
L’abondance relative en acides aminés de la chitine obtenue est présentée dans le Tableau 6 ci-dessous. Elle est exprimée en %.
| Threonine (Thr) | 0,00 |
| Serine (Ser) | 0,00 |
| Proline (Pro) | 0,00 |
| Glycine (Glu) | 0,00 |
| Acide glutamique (Glu) | 0,00 |
| Alanine (Ala) | 26,56 |
| Cystéine (Cys) | 4,96 |
| Valine (Val) | 13,95 |
| Méthionine (Met) | 0,00 |
| Isoleucine (Ile) | 0,00 |
| Acide aspartique (Asp) | 0,00 |
| Leucine (Leu) | 0,00 |
| Tyrosine (Tyr) | 0,00 |
| Phénylalanine (Phe) | 0,00 |
| Histidine (His) | 38,71 |
| Lysine (Lys) | 15,30 |
| Arginine (Arg) | 0,00 |
| Tryptophane (Trp) | 0,52 |
| Total | 100,00 |
Tableau 6 : Abondance relative en acides aminés de la chitine obtenue dans l’Exemple acides aminés apparaissent particulièrement résistants au procédé, à savoir l’alanine, la cystéine, la valine, l’histidine et la lysine. L’histidine, la lysine et l’alanine sont les 3 acides aminés les plus résistants. Les abondances relatives respectives de l’alanine et de la valine sont nettement supérieures à celles calculées dans l’Exemple
Claims (15)
1. Chitine dont la masse moléculaire est supérieure ou égale à 855 kg.mol'1 et comportant moins de 1,5% en poids d’acides aminés sur le poids sec total de chitine.
2. Chitine selon la revendication 1, comportant moins de 3% en poids de cendres sur le poids sec total de chitine.
3. Chitine selon l’une quelconque des revendications 1 ou 2, dont la pureté par différence est supérieure ou égale à 95%.
4. Chitosan dont la masse moléculaire est supérieure ou égale à 250 kg.mol·1.
5. Chitosan selon la revendication 4, dont la pureté par différence est supérieure ou égale à 95%.
6. Procédé d’obtention de chitine et/ou chitosan, à partir d’insectes, comprenant les étapes suivantes :
- la séparation des cuticules de la partie molle des insectes, puis
- le traitement basique des cuticules.
7. Procédé selon la revendication 6, dans lequel la séparation des cuticules de la partie molle des insectes est effectuée à l’aide d’un séparateur à bande.
8. Procédé selon la revendication 6, dans lequel la séparation des cuticules de la partie molle des insectes est effectuée à l’aide d’un filtre presse.
9. Procédé selon l’une quelconque des revendications 6 à 8, dans lequel le traitement basique est réalisé avec une base forte.
10. Procédé selon l’une quelconque des revendications 6 à 9, dans lequel le traitement basique est réalisé à une température comprise entre 60 et 100°C.
11. Procédé selon l’une quelconque des revendications 6 à 10, dans lequel le traitement basique est réalisé pendant une durée comprise entre 5 et 60 heures.
12. Procédé d’obtention de chitine, à partir d’insectes, comprenant les étapes suivantes :
l’abattage des insectes,
- la séparation des cuticules de la partie molle des insectes,
- le traitement basique des cuticules,
- la récupération de la chitine.
13. Chitine susceptible d’être obtenue par le procédé selon l’une quelconque des revendications 6 à 12.
14. Procédé d’obtention de chitosan, à partir d’insectes, comprenant les étapes suivantes :
- l’abattage des insectes,
- la séparation des cuticules de la partie molle des insectes, le traitement basique des cuticules, la récupération de la chitine,
- la désacétylation de la chitine, et
- la récupération du chitosan.
15. Chitosan susceptible d’être obtenu par le procédé selon l’une quelconque des revendications 6 à 11,14.
RÉPUBLIQUE FRANÇAISE
N° d'enregistrement national
FA 849650
FR 1762303 irai — I INSTITUT NATIONAL
DE LA PROPRIÉTÉ
INDUSTRIELLE
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ANNEXE AU RAPPORT DE RECHERCHE PRÉLIMINAIRE
RELATIF A LA DEMANDE DE BREVET FRANÇAIS NO. FR 1762303 FA 849650
La présente annexe indique les membres de la famille de brevets relatifs aux documents brevets cités dans le rapport de recherche préliminaire visé ci-dessus.
Les dits membres sont contenus au fichier informatique de l'Office européen des brevets à la date du09“08-2ül8
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